ES2206493T3 - Superficies altamente especificas para reacciones biologicas, procedimiento para su preparacion y procedimiento para su utilizacion. - Google Patents
Superficies altamente especificas para reacciones biologicas, procedimiento para su preparacion y procedimiento para su utilizacion.Info
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Abstract
LA PRESENTE INVENCION SE REFIERE PARTICULARMENTE A UNA SUPERFICIE ALTAMENTE ESPECIFICA PARA REACCIONES BIOLOGICAS, CARACTERIZADA POR QUE LLEVA UN SOPORTE QUE PRESENTA EN SUPERFICIE AL MENOS UNA CAPA ESENCIALMENTE COMPACTA DE UN COMPUESTO ORGANICO QUE PRESENTA, EN EL EXTERIOR DE LA CAPA, UN GRUPO EXPUESTO QUE LLEVA UNA DOBLE ENLACE ETILENICO QUE TIENE UNA AFINIDAD PARA UN TIPO DE MOLECULA CON ACTIVIDAD BIOLOGICA EN CIERTAS CONDICIONES DE REACCION, SIENDO LOS OTROS ELEMENTOS DE LA CAPA ESENCIALMENTE NO ACCESIBLES PARA DICHAS MOLECULAS EN DICHAS CONDICIONES DE REACCION.
Description
Superficies altamente específicas para reacciones
biológicas, procedimiento para su preparación y procedimiento para
su utilización.
La presente invención se refiere en particular a
unas superficies muy altamente específicas utilizables en biología
así como a sus aplicaciones y a unos procedimientos para su
preparación.
Es conocida desde hace tiempo la especificidad
tan elevada y la selectividad tan elevada de determinadas
reacciones biológicas, en particular las reacciones
antígenos/anticuerpos, las reacciones de hibridación de ADN o de
ARN, las reacciones interproteínas o de tipo
avidina/estreptavidina/biotina, así como las reacciones de los
ligandos y de sus receptores.
En la actualidad se sabe sacar partido de dichas
especificidades, en particular para poner de manifiesto la
presencia o la ausencia de uno de los elementos del par de reacción
en una muestra o bien eventualmente para separar uno de los
elementos de un par de un medio más complejo.
Sin embargo, cuando se desea detectar la
presencia de una molécula a una concentración muy baja en un medio
muy complejo, los procedimientos conocidos actualmente proporcionan
a veces unos resultados muy aleatorios, teniendo en cuenta el
problema de los ruidos de fondo que intervienen en el momento de las
etapas de separación y/o de detección.
Por dicha razón, lo que se denominará en lo
sucesivo "pesca molecular", es decir la posibilidad de poder
poner de manifiesto cada una de las moléculas que se investigan
cuando se encuentran a unas concentraciones muy bajas, no ha sido
posible hasta el momento.
A título de ejemplo, el análisis de una muestra
de ADN pasa por la utilización de una sonda denominada de
"hibridación" correspondiente a la secuencia complementaria de
la secuencia investigada. En estas condiciones, el problema
planteado es aislar el híbrido del medio y detectar con una buena
proporción señal/ruido (S/N) el número eventualmente reducido de
reacciones positivas.
Por dicha razón se utiliza actualmente, en la
mayoría de los casos, una etapa intermedia destinada a amplificar
la secuencia que se quiere detectar, por ejemplo utilizando el
método PCR o unos métodos de amplificación que conducen a los mismos
resultados, en estas condiciones se aumenta la concentración de la
secuencia a determinar en la muestra y dicha detección es
evidentemente mucho más cómoda.
Sin embargo, la etapa de amplificación es
sensible a los contaminantes y conduce a unos errores que le son
propios.
Sería por lo tanto preferible, en la medida de lo
posible, poder detectar la presencia de la secuencia de ácido
nucleico sin una fase de amplificación.
Se ha propuesto utilizar, de manera que se ponga
de manifiesto la reacción de hibridación específica, una etapa
intermedia de anclaje del producto de hibridación sobre una
superficie sólida que presenta determinadas especificidades. Por
ejemplo, es posible utilizar determinadas superficies pretratadas
que permiten fijar determinadas proteínas o ADN, haya sido
modificado o no.
Dichas superficies se encuentran comercialmente
disponibles (Covalink, Costar, Estapor, Bangs, Dynal por ejemplo)
en forma de bolas o de pozos que presentan en su superficie unos
grupos COOH, NH_{2} u OH por ejemplo.
Se ha propuesto asimismo, para obtener dichos
grupos, utilizar una etapa intermedia que presenta un grupo vinilo
que se oxida a continuación para presentar unos grupos COOH u OH
(documento USA 4.539.061 y documento EP 435 785).
El documento EP 0 388 940 describe unas
partículas magnéticas a base de poliacrilamida o de poliestireno
recubiertas por una capa monomolecular que comprende una parte
hidrófila (radicales COOH, NH_{2}, OH...) y una parte hidrófoba
(olefina tal como vinileno o vinilideno). Estas partículas permiten
la absorción de anticuerpos y se utilizan en unos ensayos de
inmuno-aglutinación.
Se puede por lo tanto funcionalizar el ADN con un
grupo reactivo, amina por ejemplo, y proceder a una reacción con
estas superficies. Estos métodos necesitan sin embargo una
funcionalización particular del ADN a fijar.
Se ha descrito asimismo una técnica que permite
el anclaje sin tratamiento previo del ADN. Dicho procedimiento
consiste en hacer reaccionar el fosfato libre del extremo 5' de la
molécula con una amina secundaria (superficie NH Covalink).
Se puede asimismo fijar el ADN a un grupo o una
proteína P_{0} para hacerla reaccionar con una superficie
recubierta por un grupo o una proteína P_{1}, susceptible de
reaccionar específicamente con P_{0}. El par P_{0}/P_{1} puede
ser un par del tipo biotina/estreptavidina o
digoxigenina/anticuerpo dirigido contra la digoxigenina,
(anti-DIG) por ejemplo.
Tales superficies son, sin embrago, en la mayoría
de los casos insuficientemente específicas (V. Lund et al.,
Nucl. Acids Res., 16, 1861 (1988)). De este modo, la presencia de
interacciones parásitas, incluso débiles, de tipo adsorción no
específica conduce a unas adsorciones ineficaces para unas
moléculas largas, capaces de establecer con el sólido un gran
número de puntos de interacción débil. Dichas superficies conducen a
unas aplicaciones potenciales que carecen de sensibilidad y/o con
una gran tasa de ruido de fondo en el caso de un pequeño número de
moléculas a pescar. Además, algunas de estas superficies muestran
una elevada tasa de fluorescencia parásita potencialmente molesta en
el momento de la detección.
Por lo que se refiere a la detección propiamente
dicha, en particular para la puesta de manifiesto del ADN, la
patente francesa 78 10975 describe un procedimiento que une la
sonda a un enzima que permite la revelación con la ayuda de un
sustrato cromógeno. Es, además, posible cuantificar la reacción
mediante una medición de colorimetría.
Una técnica no se adapta como ésta directamente a
la detección de trazas, por lo cual, aquí también, debe ser
precedida en la mayoría de los casos por una etapa de amplificación
de la cantidad de ácido nucleico investigado, por ejemplo mediante
el método PCR.
Este procedimiento de detección denominado "por
sonda fría" se ha desarrollado para evitar la utilización de
marcadores radioactivos que proporcionan unos resultados que en
sensibilidad son cercanos pero que evidentemente presentan unos
problemas de manipulación, teniendo en cuenta la presencia de
productos radioactivos y unos problemas de tiempo de revelado
largos si se desea una gran sensibilidad.
Para determinadas aplicaciones particulares, en
particular los métodos derivados de la captación de imagen
ex-vivo, se ha propuesto un método directo de
observación de la reacción acoplando el producto de hibridación a
unas microbolas, en particular PMMA, convenientemente tratadas
químicamente en su superficie. El método reside en la identificación
directa bajo un microscopio de barrido electrónico de la presencia
de estas microbolas de un diámetro típico de 60 nm y además reside
en las técnicas de anclaje sobre sólidos conocidas pero
insuficientemente específicos, tal como se ha descrito
anteriormente.
Las técnicas anteriores evidentemente no se
limitan a la detección de ácidos nucleicos. Con el mismo espíritu,
se ha propuesto por ejemplo la detección de anticuerpos. Se trata
de unos ensayos de tipo ELISA que no serán descritos de nuevo y que,
para resumir, permiten acoplar la presencia de un anticuerpo a un
anclaje asociado de una molécula de antígeno sobre un sólido. De
nuevo, se plantean los problemas de especificidad y de reacciones
parásitas. La fase de detección puede basarse a continuación en un
acoplamiento con una reacción cromógena que presenta sus propios
problemas de sensibilidad.
En resumen, los métodos de la técnica anterior o
sus combinaciones adolecen de un determinado número de
inconvenientes, en particular:
- -
- o bien son potencialmente peligrosos debido a la utilización de productos radioactivos,
- -
- o bien necesitan unos tiempos de revelado demasiado largos;
- -
- o bien son interferidos por unos problemas específicos a nivel de la fase de amplificación,
- -
- o bien pasan por unas superficies sólidas insuficientemente específicas,
- -
- o bien son demasiado poco sensibles,
- -
- o bien, por último, necesitan además de la fase de enganchado sobre un sólido la utilización poco cómoda, evidentemente, de un microscopio electrónico.
Por último, en la mayoría de los casos, los
procedimientos conocidos no permiten reconocer sobre una molécula
determinada la posición específica del grupo buscado. Ahora bien,
este tipo de reconocimiento es importante cuando se quiere realizar
una cartografía, en particular en el marco de la cartografía del
genoma, se intenta conocer en un primer momento la posición
espacial aproximada con respecto a un extremo de la molécula de un
gen determinado sobre un ADN o un ARN.
La presente invención que se intenta evitar los
inconvenientes de los procedimientos anteriores radica en la
utilización de superficies altamente específicas que en el momento
de su utilización conducen a unos ruidos de fondo excesivamente
limitados, en particular debido a que eliminan las fijaciones
parásitas.
Más particularmente, la presente invención se
refiere a una superficie altamente específica para unas reacciones
biológicas, caracterizada porque comprende un soporte que presenta
en la superficie por lo menos una capa esencialmente compacta de un
compuesto orgánico que presenta, en el exterior de la capa, un grupo
expuesto que muestra un doble enlace etilénico, en particular un
grupo vinilo, que presenta una afinidad por un tipo de molécula con
actividad biológica en determinadas condiciones de reacción, en
particular de pH o de contenidos iónicos, siendo los otros elementos
de la capa esencialmente inaccesibles para dichas moléculas en
dichas condiciones de reacción.
Por "afinidad", debe entenderse en la
presente memoria, tanto una reactividad química como una adsorción
de un tipo cualquiera, y ello en las condiciones de fijación de
dichas moléculas biológicas.
Por "soporte", se entiende que designa tanto
un soporte sólido como un soporte constituido por un elemento no
sólido tal como una partícula líquida o gaseosa que presenta, en
particular, una capa compacta tal como se ha descrito
anteriormente.
La superficie es "esencialmente compacta",
es decir que limita el acceso de la molécula con actividad
biológica a las capas inferiores y/o al soporte, entendiendo que
los defectos de cobertura de la superficie son tolerables.
Estas superficies altamente específicas para
reacciones biológicas, comprenden un soporte que presenta en
superficie unos grupos de doble enlace, en particular vinilo
(-CH=CH_{2}, en lo sucesivo superficies C=C) accesibles en la
solución. Son capaces de anclar directamente unas moléculas de
interés biológico (ADN, ARN, PNA, proteínas, lípidos, sacáridos) en
determinadas condiciones de pH o de contenido iónico del medio. En
particular, dichas superficies no necesitan ninguna modificación
química particular ni de la superficie, ni de las moléculas
biológicas a anclar. No existen documentos que mencionen tal
utilización de la superficie en grupos vinilo.
Por "anclaje", hay que entender en la
presente memoria una fijación mediante un enlace covalente
resultante de una reactividad química, o un enlace no covalente
resultante de interacciones fisicoquímicas tales como una adsorción
de cualquier tipo, y ello en las condiciones de pH o de contenido
iónico del medio de fijación de dichas moléculas biológicas.
Las superficies según la presente invención
pueden ser obtenidas mediante la utilización de diversos
procedimientos. Se pueden mencionar a título de ejemplo:
- (A)
- una capa de polímero carbonado, eventualmente ramificado, de por lo menos 1 mm de espesor, que comprende:
- \bullet
- unos grupos que presentan un doble enlace etilénico,
- \bullet
- estando el resto de la capa constituido por grupos hidro- o fluorocarbonados;
- (B)
- unas superficies obtenidas mediante el depósito o anclaje sobre un sólido de una o diversas capas moleculares, estas capas pueden ser obtenidas mediante la formación de capas sucesivas fijadas mediante enlaces no covalentes, del tipo película de Langmuir-Blodget, o mediante autoensamblaje molecular, permitiendo la formación de una capa fijada mediante un enlace covalente.
En el primer caso, la superficie puede ser
obtenida mediante la polimerización de por lo menos un monómero que
genera en la superficie del polímero dicho grupo que presenta un
doble enlace etilénico, o bien mediante la despolimerización parcial
de la superficie de un polímero para generar dicho grupo, o bien
mediante el depósito de polímero.
En este procedimiento, el polímero formado
presenta unos enlaces vinilos tal como un derivado poliénico, en
particular unas superficies de tipo caucho sintético, tal como
polibutadieno, el poliisopreno o el caucho natural.
En el segundo caso, la superficie altamente
específica para reacciones biológicas según la presente invención
comprende:
- -
- sobre un soporte, una capa sensiblemente monomolecular y compacta de un compuesto orgánico de estructura alargada que presenta por lo menos:
- \bullet
- un grupo de fijación que presenta una afinidad por el soporte, y
- \bullet
- un grupo expuesto que presenta un doble enlace etilénico, que no muestra o muestra poca afinidad por dicho soporte y por dicho grupo de fijación en las condiciones de fijación, pero que muestra una afinidad por un tipo de molécula biológica.
Con el fin de obtener una capa esencialmente
compacta, los diferentes compuestos orgánicos son, preferentemente,
susceptibles de reaccionar entre ellos fuera del grupo expuesto
para crear unos enlaces transversales, se obtiene de este modo una
capa monomolecular "esencialmente" compacta gracias a la cual
el soporte no se vuelve o se vuelve poco accesible para las
reacciones parásitas.
Preferentemente, el compuesto orgánico presenta
un grupo de fijación en un extremo y un grupo expuesto en el otro
extremo. Evidentemente, es posible prever unos modos de realización
diferentes en los cuales, por ejemplo, el grupo de fijación estaría
situado en medio de la molécula, disponiendo éste en cada uno de sus
extremos de un grupo expuesto.
Las superficies se puede analizar según:
- a)
- el soporte,
- b)
- la molécula que presenta un grupo expuesto y un grupo de fijación sobre el soporte,
- c)
- la interacción entre el soporte y dicha molécula que asegura la fijación.
La fijación puede ser en primer lugar de tipo no
covalente, en particular de tipo hidrófilo/hidrófilo y
hidrófobo/hidrófobo, como en las películas de
Langmuir-Blodgtet (K.B. Blodgett, J. Am. Chem. Soc.
57, 1007 (1935) y el documento US 5.102.798.)
En este caso, el grupo de fijación será, o bien
hidrófilo, o bien hidrófobo, en particular unos grupos alquilos o
halogenoalquilos tales como CH_{3}, CF_{3}, CHF_{3},
CH_{2}F.
La fijación puede asimismo ser de tipo covalente,
el grupo de fijación reaccionará entonces químicamente sobre el
soporte.
Determinadas superficies de estructura similar se
han mencionado con anterioridad en el campo electrónico, en
particular cuando las fijaciones son covalentes, L. Netzer y J.
Sagiv. J. Am. Chem. Soc. 105, 674 (1983) y el documento
US-A- 4 539 061.
El experto en la materia dispone de una gama muy
amplia de grupos. A título de ejemplo no limitativo se mencionarán
los grupos de tipo alcóxido de metal, tal como silano, cloruro de
silano, etoxisilano, metoxisilano.
El grupo de fijación se selecciona evidentemente
en función del soporte empleado. EL soporte según la invención
puede estar constituido por lo menos en la superficie, por un
polímero, un metal, un óxido de metal, un elemento semiconductor o
un óxido de un elemento semiconductor tal como un óxido de silicio
o una de sus combinaciones. Se menciona en particular, el vidrio y
el sílice oxidado en superficie.
De entre los grupos de fijación hay que mencionar
más particularmente los grupos de tipo alcóxido de metal tal como
silano, clorosilano, clorosilano, silanol, metoxisilano,
etoxisilano, silazano, fosfato, hidroxi, hidracida, hidracina,
amina, amida, diazonio, piridina, sulfato, sulfónico, carboxílico,
borónico, halógeno, halogenuro de ácido, aldehído.
Más particularmente, como grupo de fijación se
preferirá utilizar unos grupos susceptibles de reaccionar
transversalmente con un grupo equivalente, vecino, para
proporcionar los enlaces transversales, se tratará por ejemplo de
derivados de tipo silano, en particular diclorosilano,
triclorosilano, dimetoxisilano, trimetoxisilano, dietoxisilano y
trietoxisilano.
Estos enlaces transversales se pueden asimismo
llevar a cabo en un punto cualquiera en el espesor de la monocapa
polimerizándola con la ayuda de grupos reactivos eventualmente
presentes sobre la cadena entre el sitio de fijación y el grupo
expuesto. De este modo, los grupos diacetilénicos son conocidos para
permitir una polimerización uni- o bidimensional de la
monocapa.
La selección del grupo de fijación dependerá
evidentemente de la naturaleza del soporte, los grupos de tipo
silano se adaptan bien para la fijación covalente sobre el vidrio y
el sílice.
Preferentemente, las cadenas que unen el grupo
expuesto al grupo de fijación son unas cadenas que presentan por lo
menos 1 átomo de carbono , preferentemente más de 6 y en general de
3 a 30 átomos de carbono. Cuando se produce la formación de un
acoplamiento lateral en el interior mismo de la capa, aunque dicho
acoplamiento sea iónico, de coordinación o covalente, se obtienen
unas capas altamente ordenadas obtenidas por autoensambaje, incluso
si la superficie inicial sólo presenta un número reducido de
lugares de anclaje activos comparado con el número de moléculas
obtenidas en una monocapa compacta.
Se puede utilizar ventajosamente, en el caso del
vidrio o del sílice, las técnicas conocidas de funcionalización de
superficie que utilizan unos derivados silanos, por ejemplo;
Si-OH +
Cl_{3}-Si-R-CH=CH_{2}
proporciona
Si-O-Si-R-CH=CH_{2},
siendo R por ejemplo (CH_{2})_{4}. Tal reacción es
conocida en la literatura, con la utilización de solventes ultra
puros. La reacción conduce a una serie de moléculas que presentan su
extremo C=C en la superficie expuesta al exterior.
En el marco de la obtención de superficie de muy
alta especificidad , la presente invención se refiere asimismo para
tales reacciones de implantación de molécula de doble enlace C=C a
la utilización de una fase gaseosa, que permita evitar la
utilización de un solvente.
En el caso del oro, encontrándose éste
eventualmente en forma de una capa fina sobre un sustrato, las
técnicas conocidas de funcionalización de superficie utilizan unos
derivados tioles, por ejemplo: Au +
HS-R-CH=CH_{2} proporciona
Au-S-R-CH=CH_{2},
siendo R por ejemplo (CH_{2})_{4}. Tal reacción se
describe en un medio líquido y conduce, al igual que la reacción
anterior triclorosilano-sílice, a una serie de
moléculas que presentan su extremo C=C en la superficie expuesta al
exterior.
Por supuesto, el término "soporte" engloba
tanto una superficie única tal como una lámina, como también unas
partículas ya se traten de polvo de sílice o de bolas de polímero,
y asimismo cualesquiera formas tales como una barra, una fibra o un
soporte estructurado, las cuales pueden por otra parte convertirse
en magnéticas, fluorescentes o coloreadas, tal como es conocido en
diferentes técnicas de dosificación.
Preferentemente, el soporte se seleccionará por
no ser fluorescente o poco fluorescente cuando la detección se
realice por fluorescencia.
Las superficies obtenidas según los modos (A) o
(B) anteriores presentan una gran especificidad gracias a la
presencia de sitios reactivos específicos procedentes, o bien de
grupos expuestos, o bien de la molécula fijada.
Además, las superficies obtenidas según los modos
(A) o (B) presentan las características inesperadas y destacables
siguientes:
- (i)
- un anclaje específico de fuerte pH que depende del ADN por sus extremos sin necesidad de una funcionalización particular de la molécula, acompañado de una tasa muy débil de interacciones no específicas;
- (ii)
- la posibilidad de anclar en ellas unas proteínas y otras moléculas de interés biológico, sin modificación química particular,
- (iii)
- la posibilidad de preparar unas superficies específicas con respecto a un antígeno (por ejemplo digoxigenina) o a un ligando (por ejemplo biotina);
- (iv)
- una tasa de fluorescencia intrínseca muy baja, cuando se requiere, un ruido de fondo de fluorescencia (de un área típica de 100 x 100 \mum) más débil que la señal de fluorescencia de una sola molécula a detectar;
- (v)
- la posibilidad de detectar unas moléculas aisladas con una proporción S/N independiente del número de moléculas, que es posible gracias a diferentes técnicas con una gran proporción S/N descritas más adelante y basadas en la identificación de la presencia de un marcador macroscópico que presenta una débil interacción no específica con la superficie.
Las superficies obtenidas de este modo están,
preferentemente, revestidas de una molécula con actividad biológica
seleccionada de entre:
- -
- las proteínas,
- -
- los ácidos nucleicos,
- -
- los lípidos,
- -
- los polisacáridos y sus derivados.
De entre las proteínas, hay que mencionar los
antígenos y los anticuerpos, los ligandos, los receptores, pero
asimismo unos productos de tipo avidina o estreptavidina así como
los derivados de estos compuestos.
De entre los ARN y los ADN, hay que mencionar
igualmente los derivados \alpha, \beta así como los derivados
tio y los compuestos mixtos tales como las PNA.
Se pueden asimismo fijar unos compuestos mixtos
tales como los glicopéptidos y los lipopolisacáridos por ejemplo, o
bien otros elementos tales como los virus, las células en
particular, o los compuestos químicos tales como la biotina.
La fijación de las moléculas biológicas puede ser
covalente o no covalente, por ejemplo, por adsorción, enlaces
hidrogenados, interacciones hidrófobas, iónicas, por ejemplo, en
cuyo caso se podrá proceder ventajosamente a un puente
("cross-linking") entre las moléculas
implantadas mediante los métodos conocidos ("Chemistry of Protein
Conjugation and Cross-linking", S.C. Wong, CRC
Press (1991)) y ello con el fin de reforzar su cohesión.
Con un grupo expuesto que presenta un radical
-CH=CH_{2} que se denominará en lo sucesivo "superficie C=C"
o "superficie con unión etilénica", es posible un anclaje
directo, en particular del ADN o de las proteínas. En el marco de la
presente invención, se ha demostrado que estas superficies
presentan una reactividad fuerte pH dependiente. Esta
particularidad permite anclar los ácidos nucleicos o las proteínas,
en particular por su(s) extremo(s), utilizando una
zona de pH determinada y frecuentemente a una velocidad de reacción
que puede ser controlada por el pH.
De este modo, para el ADN a un pH de 5,5, la
reacción de anclaje es total en una hora (si no se limita por la
difusión) y se produce por los extremos. A un pH 8, por el
contrario, el anclaje es muy débil (velocidad de reacción de 5 a 6
órdenes de magnitud más débil). Este efecto de anclaje pH
dependiente y específico de los extremos, presenta una mejora en
relación con las otras superficies que necesitan una
funcionalización del ADN (biotina, DIG, NHS, ...) o de los
reactivos específicos (carbodiimida, pimelidato de dimetilo) que
realizan un enlace peptídico o fosforimido entre NH_{2} y -COOH o
-POOH.
Las superficies según la invención pueden anclar
unas proteínas directamente (proteína A, anti-DIG,
anticuerpos, estreptavidina, etc...). Se ha observado que (i) la
actividad de la molécula se puede preservar y (ii) que la
reactividad de la superficie preparada (inicialmente C=C) se oculta
totalmente para dar lugar a la reactividad única de la molécula de
interés. Es posible por lo tanto, a partir de una reactividad
inicial relativamente elevada, pasar a una superficie que presenta
una reactividad muy altamente específica, por ejemplo la de los
sitios específicos sobre una proteína.
Anclando un anticuerpo específico sobre la
superficie (por ejemplo anti-DIG), se crea una
superficie cuya reactividad se limita al antígeno (por ejemplo el
grupo DIG). Todo ello indica que los grupos químicos iniciales
están todos ocultado por los anticuerpos anclados.
Se puede asimismo anclar sobre las superficies
reactivas (químicamente o bioquímicamente) otras moléculas con
actividad biológica, virus u otros componentes: membranas,
receptores de membranas, polisacáridos, PNA, en particular.
Asimismo es posible fijar el producto de una
reacción de interés biológico (por ejemplo PCR) sobre las
superficies preparadas.
La presente invención se refiere asimismo a las
superficies obtenidas mediante la utilización de los procedimientos
según la presente invención y a todos los procedimientos que
utilizan este tipo de superficie, aunque se trate de procedimientos
que permiten la puesta de manifiesto y/o la cuantificación de
moléculas biológicas, pero asimismo la separación de determinadas
moléculas biológicas, en particular una extracción mediante la
utilización de las técnicas de acoplamiento antígeno/anticuerpo y/o
ADN, ADN/ARN.
La presente invención se refiere asimismo a unos
procedimientos de preparación de las superficies altamente
específicas para reacciones biológicas tales como las descritas
anteriormente para la obtención de las capas según (A) y (B) y, en
particular, el procedimiento caracterizado porque:
- -
- se fija sobre un soporte una capa sensiblemente monomolecular y compacta de un compuesto orgánico de estructura alargada que presenta por lo menos.
- \bullet
- un grupo de fijación que muestra una afinidad por el soporte, y
- \bullet
- un grupo expuesto que presenta un doble enlace etilénico, que no muestra o muestra poca afinidad por dicho soporte y el grupo de fijación en las condiciones de fijación, pero que muestra una afinidad por un tipo de molécula biológica.
La presente invención se refiere asimismo a las
aplicaciones de las superficies tratadas para la detección de
moléculas aisladas con la ayuda de reactivos específicos y de
métodos de detección con proporción S/N independiente del número de
moléculas detectadas.
De este modo, de forma general, la presente
invención se refiere a un procedimiento de puesta de manifiesto y/o
de dosificación de una molécula con actividad biológica en una
muestra, caracterizado porque se utiliza una superficie tal como la
descrita anteriormente, sobre la cual se encuentra fijada una
molécula con actividad biológica capaz de reconocer la molécula de
la muestra, y porque la puesta de manifiesto o la dosificación se
llevan a cabo gracias a un reactivo fluorescente o no que detecta la
presencia de la molécula fijada.
De entre los reactivos se distinguen los
reactivos fluorescentes y los reactivos no fluorescentes.
Los reactivos fluorescentes contienen unas
moléculas fluorescentes, seleccionadas ventajosamente por ser unas
moléculas largas de un tamaño superior a 0,1 \mum y que
reaccionan de forma específica directamente o indirectamente con las
superficies pretratadas. Por ejemplo, pero sin limitarse a ello,
una molécula de ADN de doble hebra teñida con la ayuda de unas
sondas fluorescentes (bromuro de etidio, YOYO, nucleótidos
fluorescentes, etc...) que pueden anclarse directamente sobre una
superficie C=C, o mediante una modificación de la molécula (DIG,
biotina, etc...) sobre una superficie que presenta unas proteínas
complementarias (anti-DIG, estreptavidina,
etc...).
Los reactivos no fluorescentes consisten, en
particular, en unas bolas ancladas por medio de una molécula fijada
de forma específica directamente o indirectamente a una superficie
pretratada. Gracias al tratamiento de las superficies, estas bolas
presentan una interacción no específica débil con la superficie. Por
ejemplo, pero sin limitarse a ello, unas bolas Dynal recubiertas de
estreptavidina y ancladas por medio de un ADN biotinilado a una
superficie según la presente invención, que presentan unos sitios
capaces de reaccionar con el otro extremo de la molécula de
ADN.
Según si la molécula investigada se detecta
directamente mediante fluorescencia o indirectamente con la ayuda
de los reactivos anteriores, se hablará de "detección directa"
o "mediante bandera".
Con el fin de limitar los problemas asociados a
unos tiempos de reacción prohibitivamente lentos, se pueden reducir
ventajosamente los tiempos de difusión de los reactivos hacia la
superficie utilizando pequeños volúmenes de reacción. Por ejemplo,
pero sin limitarse a ello, conduciendo la reacción a un volumen de
algunos microlitros determinado por la separación entre dos
superficies de las cuales una es tratada para presentar unos sitios
reactivos según la presente invención y la otra es inerte o es
tratada para no presentar sitios reactivos.
La detección del número de reacciones específicas
que se han producido se puede llevar a cabo sobre un pequeño número
de moléculas (típicamente 1 a 1000), mediante un ensayo físico
macroscópico de ruido débil que no necesita ni microscopio
electrónico ni radiactividad ni necesariamente PCR.
Los procedimientos de detección son susceptibles
de ser utilizados por unas personas que posean una experiencia de
laboratorio reducida.
Según el reactivo, se pueden emplear dos
aplicaciones de la presente invención (modo X y modo Y) para la
detección macroscópica de ruido débil de un pequeño número de
reacciones de anclaje del reactivo.
En la utilización denominada del modo X de la
presente invención, se obtiene directamente un ensayo del número de
reacciones específicas producidas mediante una técnica de
fluorescencia, que permite identificar para determinadas formas de
realización de la presente invención individualmente el número de
sitios que han reaccionado. En este caso, la superficie altamente
específica se toma ventajosamente para presentar una tasa muy débil
de fluorescencia, en particular el soporte debe presentar una
fluorescencia débil.
Después del anclaje del reactivo fluorescente, la
detección y el recuento del número eventualmente pequeño de
reacciones de anclaje puede llevarse a cabo ventajosamente con la
ayuda de un microscopio óptico de fluorescencia que utiliza un
objetivo de gran apertura numérica, que permite localizar o bien
directamente a simple vista, o bien después de la adquisición de la
señal, el número de moléculas fluorescentes ancladas.
Se puede proceder ventajosamente a un barrido del
campo de observación para explorar una superficie mayor que el
campo fijo solo.
En la utilización denominada de modo Y de la
presente invención, se detecta un reactivo macroscópico de tipo
bola (fluorescente, magnética, coloreada, por ejemplo).
Tal técnica se deriva de Manning et al. en
el sentido de que la reacción se ha revelado por la presencia o la
ausencia de microbolas. En un modo de realización un nuevo
procedimiento comprende:
- (i)
- la utilización de bolas de reactividad específica,
- (ii)
- la utilización de bolas de tamaño no nanoscópicos sino que se sitúa en la gama de 0,1 \mum a 200 \mum, visibles mediante una técnica macroscópica, y
- (iii)
- la ausencia de reacción no específica entre bolas y superficie debida a la utilización del producto según la presente invención.
El número de estas bolas macroscópicas que
caracterizan cada una una reacción de anclaje se determina a
continuación mediante un método físico macroscópico en el rango de
las cuales, pero sin limitarse a ello, se puede mencionar la
difusión de la luz sobre las bolas, la microscopia óptica y la
fluorescencia de las bolas.
La especificidad de determinadas reacciones
biológicas puede ser limitada. De este modo, en el marco de la
hibridación, los híbridos pueden ser imperfectos (reacciones con
otros sitios) presentando al mismo tiempo un número reducido de
apareamiento y por lo tanto una calidad de enlace menor. La
presente invención cubre asimismo la posible utilización de una
etapa de ensayo de la calidad de los enlaces obtenidos. Este ensayo
permite disociar los productos apareados de forma no específica
débil, por adsorción, fuerzas hidrófobas, enlaces hidrogenados
imperfectos, hibridación imperfecta, en particular.
Por esta razón, la invención se refiere asimismo
a un procedimiento de puesta de manifiesto o de dosificación tal
como se ha descrito anteriormente, un procedimiento en el cual se
somete el producto de la reacción entre la molécula con actividad
biológica y la molécula de la muestra a una tensión con el fin de
destruir los malos apareamientos antes de la detección.
Este procedimiento ofrece, además de la
posibilidad de destruir los pares desapareados, la posibilidad de
orientar los productos del acoplamiento, lo cual facilita las
mediciones o las observaciones.
Se puede asimismo aplicar a las superficies,
después de la fijación de los elementos complementarios, una
tensión que puede estar constituida por la utilización simple o
combinada de:
- -
- centrifugación,
- -
- gradiente de campo magnético aplicado a los reactivos no fluorescentes considerados para incluir unas microbolas magnetizables o magnéticas,
- -
- agitación,
- -
- derrame líquido,
- -
- paso de menisco,
- -
- electroforesis,
- -
- variación de temperatura, y/o gradiente de temperatura.
Se determina entonces mediante las técnicas de
detección de ruido débil descritas a continuación el número de
sistemas que quedan íntegros o que están destruidos.
Conviene destacar que gracias a las superficies
según la presente invención, es posible orientar las moléculas
después de su fijación por lo menos en un punto mediante el paso
del menisco aire/agua, en particular sobre el ADN. De este modo,
debe observarse que el paso del menisco aire/agua sobre el ADN en
solución y anclado en la superficie, resultaba en una extensión
regular de las moléculas ancladas. Se presentan por lo tanto al
aire libre en forma de bastoncillos fluorescentes alargados. Estas
moléculas alargadas son estables al aire libre y pueden ser
observadas incluso después de diversas semanas, sin presentar una
degradación aparente.
Estas observaciones destacables e inesperadas
sugieren una posibilidad de contar el número de moléculas de ADN
ancladas a la superficie: por una parte, al ser las superficies
poco fluorescentes, la relación señal/ruido (S/N) es buena, por otra
parte, al buscar un objeto muy correlacionado (forma de
bastoncillos), es muy fácil aumentar la relación S/N. Es decir,
ignorar el polvo, las inhomogeidades, que no presentan una
correlación espacial particular. Hay que citar que en solución, las
moléculas en pelota fluctúan térmicamente, lo cual implica unas
variaciones muy importantes de su señal de fluorescencia recogida,
en general, con una débil profundidad de campo y limita su
observación. La presente invención cubre asimismo esta técnica de
alineación y de inmovilización que permite por lo tanto la
observación de moléculas aisladas con una gran relación S/N.
Es destacable que esta relación es independiente
del número de reacciones de anclaje. La relación S/N propuesta por
la detección de una molécula es la misma que para 10.000. Además,
esta técnica de estirado permite discriminar holgadamente entre
unas moléculas de longitudes variadas.
Se puede proceder ventajosamente a las etapas
siguientes para mejorar aún la relación S/N:
- -
- Al estar la molécula inmóvil, se puede integrar su señal de fluorescencia.
- -
- La observación al microscopio presenta un campo reducido (típicamente 100 \mum x 100 \mum con un objetivo de x 100 de inmersión, N.A. = 1,25). Para una muestra de 1 cm^{2} se puede o bien proceder a un barrido, o bien se puede prever la utilización de objetivos de aumentos menores (x 10 o x 20) pero con una apertura numérica elevada.
- -
- Al ser los bastoncillos siempre paralelos, se puede prever un método de filtrado espacial óptico para aumentar más la relación S/N.
- -
- Se pueden prever otros métodos de fluorescencia global (documento EP nº 103426).
- -
- La alineación de las moléculas se observa tanto en el marco de una implantación química (C=C) como en el caso de enlaces de tipo inmunológico (DIG/anti DIG).
- -
- Una vez la superficie está al aire libre, las moléculas de ADN son estables (permanecen íntegras, incluso después de varias semanas) y siguen fluorescentes. Se puede utilizar ventajosamente esta propiedad para diferenciar la etapa de anclaje de la etapa de localización/recuento de las moléculas ancladas, si dicha detección se hace por ejemplo, pero sin limitarse a ello, por microscopia de fluorescencia. Tal utilización está cubierta por la presente invención.
- -
- Una técnica de doble (o multi) fluorescencia puede servir eventualmente para mejorar la relación S/N o para detectar una doble o multi funcionalidad.
- -
- Es posible extender el menisco aire/agua utilizado en la presente invención con el fin de estirar la molécula a otros sistemas tales como aceite/agua o agua/surfactante/aire, en particular.
Se puede asimismo utilizar una orientación
dinámica de las moléculas en solución ancladas en un extremo, por
electroforesis o flujo en una o diversas direcciones sucesivas,
pudiendo esta técnica de este modo conducir a una detección
sincrónica de la presencia de moléculas en una dirección
determinada, mediante el análisis de las variaciones temporales de
la señal de fluorescencia correspondiente a una dirección
determinada (por ejemplo, pero sin limitarse a ello, mediante la
utilización de un filtro espacial óptico convenientemente
dispuesto, que permite obtener una señal preferente para
determinadas orientaciones de las moléculas observadas.)
Sin embargo, los resultados observados muestran
que dicha técnica, en su versión más simple (estiramiento en una
sola dirección, sin detección sincrónica) es mucho más rentable que
la utilización del menisco.
Las superficies y/o los reactivos y/o las
técnicas de detección descritos en la presente invención se pueden
utilizar para numerosas aplicaciones de entre las que, pero sin
limitarse a ellas:
- -
- La identificación de uno o diversos elementos de secuenciación del ADN o del ARN que se puede utilizar ventajosamente para el diagnóstico de patógenos o la cartografía genética;
- -
- la medición del tamaño de fragmentos de ADN que se pueden utilizar ventajosamente para la cartografía genética;
- -
- la mejora de la sensibilidad de las técnicas ELISA con la posibilidad de detectar un número bajo (eventualmente inferior a 1.000) de reacciones inmunológicas.
La identificación de secuencias de ADN/ARN se
puede realizar en primer lugar mediante la reacción en el volumen
de la solución de moléculas de ADN/ARN con unas sondas
complementarias (por ejemplo por hibridación o con la ayuda de
proteínas específicas del segmento buscado). Por lo tanto son
posibles dos formas de realización.
Las descripciones que siguen a continuación se
realizarán, en determinados casos, refiriéndose a las figuras
adjuntas en las cuales:
- -
- la figura 1 esquematiza la detección de un patógeno en una molécula de ADN fluorescente mediante la hibridación con una molécula ancla;
- -
- la figura 2 esquematiza la cartografía genética por extensión del ADN y la utilización de un ADN marcador;
- -
- la figura 3 esquematiza la detección de una reacción inmunológica (ELISA) con la ayuda de una molécula "bandera": un ADN fluorescente utilizado como marcador de la reacción;
- -
- la figura 4 es una microfotografía de fluorescencia que muestra la extensión de ADN de fago \lambda mediante el avance del menisco, a la izquierda se perciben unas moléculas de ADN en solución estiradas mediante el flujo de evaporación paralelo al menisco, a la derecha unas moléculas de ADN al aire libre después de su estirado perpendicularmente al menisco;
- -
- las figuras 5 (a) y 5 (b) son unas microfotografías de fluorescencia que muestran, respectivamente, un ADN marcado con la digoxigenina (DIG) sobre una superficie recubierta de anti-DIG y estirada por el menisco, y, en control, un ADN no marcado sobre una superficie anti-DIG, se resaltará la especificidad tan grande de las superficies y la ausencia de anclaje no específico;
- -
- la figura 6 es una microfotografía de fluorescencia que muestra una superficie comercial clásica tal como NUNC, se observarán las grandes inhomogeneidades de fluorescencia que convierten dichas superficies en imposibles de utilizar para la detección fluorescente de una sola molécula.
En el modo "diagnóstico", las sondas (los
"anclajes") presentan un grupo reactivo (DIG, biotina, etc...)
capaz de anclarse de forma específica en una superficie según la
presente invención (presentando por ejemplo como sitio de anclaje un
anticuerpo anti-DIG o la estreptavidina). La
detección de la reacción de anclaje se puede realizar directamente
mediante la detección de la fluorescencia de la molécula de ADN
teñida por unas moléculas fluorescentes (bromuro de etidio, YOYO,
nucleótidos fluorescentes) (figura 1). Se puede asimismo realizar
indirectamente mediante la detección de una "molécula
bandera": un reactivo según la presente invención capaz de
fijarse sobre la molécula de ADN/ARN (por ejemplo por hibridación,
interacción proteína-ADN, etc...), pero que no
muestra afinidad por los sitios de anclaje de la sonda.
En el modo "cartografía", las sondas
complementarias se pueden acoplar directamente a un reactivo
fluorescente según la presente invención. Se puede tratar por
ejemplo de una hebra simple de ADN complementaria que presenta unas
bases modificadas para ser fluorescentes o de una doble hebra larga
de ADN teñida con un fluoróforo A y que se termina en un segmento
de hebra simple complementario de la secuencia buscada. Para unas
sondas diferentes, se puede utilizar unos fluoróforos diferentes. Se
puede asimismo, ventajosamente, teñir la molécula de ADN sobre la
que se van a hibridar las sondas con fluoróforo de otro color. El
híbrido ADN-sondas se ancla en uno de sus extremos y
se estira mediante uno de los métodos descritos anteriormente. La
distancia del punto de anclaje a los puntos de hibridación, o entre
los puntos de hibridación, se determina mediante la detección de la
fluorescencia de la sonda, según los métodos descritos anteriormente
(figura 2).
Por ejemplo, sin limitarse a ello, un ADN
marcador, de aproximadamente 3.000 pares de bases y que presenta en
una de sus extremos un segmento de hebra simple complementario del
gen buscado, se tiñe con un fluoroforo A (por ejemplo YOYO 1). Este
ADN se híbrida y posteriormente se liga con el ADN de hebra simple a
cartografiar, después este último se tiñe con un segundo fluoroforo
B (POPO 1) (después de la reacción por "random primming", para
transformarlo en un ADN de doble hebra). La molécula se ancla por
lo tanto por uno de sus extremos (por ejemplo por enlace DIG/anti
DIG) y se estira mediante la acción del menisco. La distancia entre
el extremo de la molécula y la posición del gen marcado, observable
al microscopio por doble fluorescencia (2 colores A y B) permite
establecer la posición de un gen buscado con una precisión del orden
de 1.000 pares de bases (0,3 \mum).
La identificación de secuencias de ADN/ARN se
puede realizar asimismo por la reacción entre la secuencia
investigada y los sitios reactivos de una superficie según la
presente invención (por ejemplo unos oliginucleótidos
complementarios o el sitio de reacción de una proteína específica
del segmento investigado). La detección de la reacción de anclaje
se puede realizar entonces directamente o indirectamente (con la
ayuda de una "molécula bandera") tal como se ha descrito
anteriormente.
Se entiende que la identificación de las
secuencias de ADN/ARN según la presente invención puede servir
tanto para unos fines de diagnóstico (por ejemplo la detección de
la presencia o la ausencia de un patógeno viral o cromosómico) como
para unos fines de cartografía genética. Puede estar precedida de
una etapa de amplificación mediante un método cualquiera, en
particular PCR.
Por otra parte, tal como ha mencionado K.R. Allan
et al. (documento US 84 114), la cartografía genética se
puede llevar a cabo mediante la medición del tamaño de los
fragmentos de ADN. Ahora bien el acoplamiento entre las superficies
según la presente invención y las técnicas originales de estirado
de las moléculas descritas anteriormente (en particular y
ventajosamente el estirado por el menisco) permite una medición de
la longitud de las moléculas estiradas y ello sobre una muestra muy
pequeña (algunos miles de moléculas).
Se puede, por ejemplo, pero sin limitarse a ello,
proceder de la siguiente forma:
Se fragmenta una muestra de ADN (con la ayuda de
enzimas de restricción), se tiñe con un fluoróforo y posteriormente
se ancla sobre una superficie que presenta unos grupos reactivos
(por ejemplo las superficies C=C). Las moléculas se estiran a
continuación por el menisco y se determina el tamaño de los
fragmentos estirados por microscopia óptica de fluorescencia con
una resolución y un tamaño límite del orden de 1000 bp (0,3
\mum).
Las superficies según la presente invención se
pueden utilizar para la aplicación de los procedimientos conocidos
que permiten la puesta de manifiesto y/o la cuantificación de un
antígeno o de un anticuerpo, en particular los métodos ELISA que
utilizan unos sistemas enzimáticos o unos métodos de tipo RIA que
utilizan unos marcadores radioactivos. Se trata de tecnologías que
no serán descritas de nuevo en detalle.
Se puede asimismo y ventajosamente utilizar las
superficies según la presente invención como un soporte de
reacciones inmunológicas de un procedimiento ELISA que presenta una
etapa de anclaje de un reactivo según la presente invención
("bandera") sobre uno de los reactivos ELISA (figura 3). La
detección puede realizarse naturalmente de forma global mediante la
medición de fluorescencia. Es posible asimismo proceder al recuento
del número de reacciones, lo cual puede realizarse ventajosamente
siguiendo los métodos de detección descritos en la presente
invención, en particular la extensión del menisco, y ello gracias a
la débil tasa de fluorescencia y de interacción no específica del
producto de la presente invención. Ello permite la detección de un
número pequeño de reacción, eventualmente inferior a 1.000) con una
excelente relación S/N.
Se puede por lo tanto, mediante una modificación
menor de los métodos ELISA en sándwich
(anticuerpo-antígeno-anticuerpo
modificado, por ejemplo biotinilado), implantar sobre la superficie
un reactivo según la presente invención, por ejemplo ADN
fluorescente anclado a la estreptavidina.
Todas las variantes de la técnica ELISA se
aplican con una sensibilidad mucho mejor. Unas técnicas de medición
de fluorescencia global se han utilizado con anterioridad para
determinar la calidad de las reacciones ELISA. Sin embargo, el
procedimiento según la invención permite una detección mucho mejor
porque es sensible a la señal de fluorescencia de una sola
molécula.
Evidentemente, es posible utilizar estas
superficies como unas superficies de fijación de por lo menos un
producto de una reacción de interés biológico, a título de ejemplo
sin limitarse a él, unos productos de la reacción de amplificación,
ya sea PCR u otro método parecido y, por último, es posible
utilizar este tipo de superficies como soporte para una
cromatografía de afinidad, ya sea preparativa o bien de
detección.
En tal caso, se puede por ejemplo implantar una
población de oligonucleótidos sobre unas bolas de sílice que
constituirán la fase estacionaria de una columna de
cromatografía.
La etapa de cromatografía debe permitir una
especificidad particular de la columna con respecto a los
eluyentes, por ejemplo una mezcla de ADN de los cuales algunos
presentan unas secuencias complementarias o muy próximas al
oligonucleótido implantado.
La presente invención se refiere por último a la
utilización de las superficies según la presente invención en unos
estuches de diagnóstico o de separación.
Otras características y ventajas de la presente
invención se pondrán de manifiesto a partir de la lectura de los
ejemplos siguientes.
El ADN-\lambda y el anticuerpo
monoclonal (anti-DIG) proceden de
Boehringer-Mannheim. Los triclorosilanos proceden de
Roth-Sochiel. Las sondas nucleicas fluorescentes
(YOYO1, YOYO3 y POPO1) proceden de Molecular Probes. Las láminas de
vidrio ultralimpias proceden de Erie Scientific (Laminas (ESCO).
Las partículas magnéticas proceden de Dynal. El microscopio es un
microscopio invertido Diaphot de NIKKON, equipado con una lámpara
Xenon para la epifluorescencia y con una cámara CCD intensificada
Hamamatsu para la visualización.
Unas láminas de vidrio se limpian durante una
hora por irradiación UV bajo una atmósfera de oxígeno (por
formación de ozono). A continuación se depositan inmediatamente en
un desecador previamente purgado de trazas de agua por una corriente
de argón. Un volumen de aproximadamente 100 a 500 \mul del
triclorosilano adecuado
(H_{2}C=CH-(CH_{2})_{N}-SiCl_{3}) se
introduce en el desecador, del que se retiran las superficies
después de aproximadamente 12 horas (n = 6) ó 1 hora (n = 1). Al
salir, las superficies están limpias y no húmedas.
Las láminas así funcionalizadas pueden reaccionar
con unas proteínas. Un volumen de 300 \mul de una solución acuosa
(20 \mug/ml) de proteínas (proteína A, estreptavidina, etc...) se
deposita sobre una lámina funcionalizada en grupos (H_{2}C=CH-).
Esta lámina se incuba aproximadamente dos horas a temperatura
ambiente, posteriormente se aclara tres veces en agua ultrapura.
Las superficies así tratadas son nítidas y húmedas. Las superficies
tratadas con la proteína A pueden reaccionar a continuación con un
anticuerpo, por ejemplo anti-DIG, por incubación en
una solución de 20 \mug/ml de anticuerpo.
Una gota de 2 \mul de una solución de
ADN-\lambda marcado por fluorescencia (YOYO1,
POPO1 o YOYO3, pero sin terminación particular) de concentración
variable y en diferentes tampones (número total de moléculas <
10^{7}) se deposita sobre una lámina pretratada (H_{2}C=CH-) y
recubierta con una lámina de vidrio no tratada (diámetro 15 mm). La
preparación se incuba aproximadamente 1 hora a temperatura ambiente
en una atmósfera saturada de vapor de agua. En un tampón de 0,05 M
MES (ph = 5,5) se observa un anclaje casi general de las moléculas
de ADN. Al contrario, en un tampón de 0,01 M Tris (ph = 8) no hay
casi ninguna molécula anclada (relación > 10^{6}). Esta
dependencia puede permitir el control de la
activación/desactivación de las superficies (en relación con el ADN)
por medio del pH.
Transfiriendo la preparación anterior a una
atmósfera seca, la solución al evaporarse estirará las moléculas de
ADN, ancladas en la superficie, perpendicularmente al menisco. La
fuerza capilar sobre la molécula de ADN (algunas decenas de
picoNewtons) es en efecto suficiente para estirar completamente la
molécula (mayor que las fuerzas de la elasticidad entrópica), pero
demasiado débil para romper el enlace entre el extremo de la
molécula y la superficie tratada. Al estar el ADN marcado por
fluorescencia, se observan individualmente y cómodamente las
moléculas estiradas (longitud total aproximadamente 22 \mum). Al
estar anclaje entre la superficie y el ADN limitando los extremos,
se ha podido estirar tanto unos ADN del fago \lambda, como de YAC
o de E.coli (longitud total superior a 400 \mum). Esta
preparación de ADN estirada, fluorescente y al aire libre es estable
durante varios días y se puede observar de forma no destructiva,
por epifluorescencia (microscopio invertido Nikkon Diaphot con un
objetivo x100, O.N: 1,25).
Una célula electroforética está formada por una
anilla de parafina (espesor aproximadamente 100 \mum) puesta
entre una lámina tratada y una lámina de vidrio no tratado entre
las cuales se insertan dos electrodos de platino. El conjunto se
convierte en solidario fundiendo brevemente el anillo de parafina.
Gracias a dos aberturas practicadas en la anilla de parafina se
introduce la solución de ADN en esta célula por capilaridad,
posteriormente se sellan las dos aberturas con parafina. Se incuba,
como anteriormente, a temperatura ambiente. Aplicando una tensión
débil (algunos voltios) entre los dos electrodos de platino, se
observa por fluorescencia un movimiento de las moléculas de ADN
libre (algunas decenas de micrones por segundo) y una extensión en
la dirección del flujo de las moléculas ancladas que se puede de
este modo identificar cómodamente e individualmente por microscopia
de epifluorescencia.
Tratando las superficies tal como se ha descrito
anteriormente con un anticuerpo monoclonal específico, se puede
controlar muy precisamente su especificidad. De este modo, se ha
ensayado la especificidad de superficies tratadas
anti-DIG frente al ADN \lambda hibridado con un
oligonucleótido complementario de una de los extremos Cos y que
presenta un grupo digoxigenina (DIG) y frente al ADN no hibridado.
En el primer caso, se ha observado una extensión, por acción del
menisco, casi general de las moléculas ancladas. En el segundo
caso, sólo se han observado algunas moléculas de ADN (< 10)
ancladas en toda la muestra. Se estima por lo tanto que la
especificidad del método según la invención es mejor que
10^{6}.
Con el fin de determinar la sensibilidad del
método de detección por extensión del menisco, se ha depositado
sobre unas superficies de doble enlace unas gotas de 2,5 \mul de
una solución de ADN- \lambda en 0,05 M MES (pH = 5,5) que
contienen un total de 10^{5}, 10^{4} y 1000 moléculas. El
anclaje se lleva a cabo tal como se ha descrito anteriormente. Las
láminas se observan a continuación en un microscopio por
epifluorescencia, para determinar la densidad de las moléculas
ancladas. Esta corresponde a la estimada: aproximadamente
4-6 moléculas de ADN por campo de visión (100
\mum x 100 \mum) para un total de 10^{5} moléculas de ADN.
Para la concentración más baja, se ha podido observar una decena de
moléculas extendidas por acción del menisco. Este número está
limitado esencialmente por el gran número de campos de visión
necesarios para cubrir toda la muestra (aproximadamente 25.000), lo
que representa una investigación manual difícil, pero que puede ser
ventajosamente realizada automáticamente o también con un objetivo
más débil, pero a un campo mucho mayor. En conclusión, la
sensibilidad del método según la invención permite una detección y
un recuento individual de menos de 1.000 moléculas de ADN.
Claims (52)
1. Superficie altamente específica para
reacciones biológicas, caracterizada porque comprende un
soporte que presenta en superficie por lo menos una capa
esencialmente compacta de un compuesto orgánico que presenta en el
exterior de la capa, un grupo expuesto que presenta un doble enlace
etilénico que muestra una afinidad por un tipo de molécula con
actividad biológica en determinadas condiciones de pH o de contenido
iónico, siendo los otros elementos de la capa esencialmente
inaccesibles para dichas moléculas en dichas condiciones de
reacción.
2. Superficie según la reivindicación 1,
caracterizada porque el soporte es un soporte sólido.
3. Superficie altamente específica según una de
las reivindicaciones 1 ó 2, caracterizada porque el grupo
expuesto es un grupo vinilo.
4. Superficie según una de las reivindicaciones 1
a 3, caracterizada porque se obtiene mediante polimerización
de por lo menos un monómero que genera en la superficie del
polímero de doble enlace etilénico dicho grupo expuesto, por
depósito del polímero sobre el soporte o por despolimerización
parcial de la superficie de un polímero para generar dicho grupo
expuesto.
5. Superficie según la reivindicación 4,
caracterizada porque el polímero es una poliolefina o un
derivado poliénico.
6. Superficie altamente específica según una de
las reivindicaciones 1 a 5, caracterizada porque
presenta:
- -
- sobre un soporte una capa sensiblemente monomolecular y compacta de un compuesto orgánico de estructura alargada que presenta por lo menos:
- \bullet
- un grupo de fijación que muestra una afinidad por el soporte, y
- \bullet
- un grupo expuesto que presenta un doble enlace etilénico, que no muestra o muestra poca afinidad por dicho soporte y dicho grupo de fijación en las condiciones de fijación, pero que muestra una afinidad por un tipo de molécula biológica.
7. Superficie según la reivindicación 6,
caracterizada porque la fijación es de tipo no
covalente.
8. Superficie según la reivindicación 7,
caracterizada porque la fijación se lleva a cabo por unas
interacciones hidrófilas o hidrófobas.
9. Superficie según la reivindicación 8,
caracterizada porque la molécula biológica es capaz de
anclarse directamente por adsorción sobre dicha superficie en
determinadas condiciones de pH o de contenido iónico del medio.
10. Superficie según una de las reivindicaciones
6 a 9, caracterizada porque el grupo de fijación se
selecciona de entre los grupos alquilo y alquilo halogenado para
realizar unos enlaces hidrófobos.
11. Superficie según la reivindicación 10,
caracterizada porque el grupo de fijación se selecciona de
entre: -CH_{3}, CF_{3}, -CH_{2}F, CHF_{2}.
12. Superficie según la reivindicación 6,
caracterizada porque la fijación es de tipo covalente.
13. Superficie según una de las reivindicaciones
1 a 12, caracterizada porque los compuestos orgánicos son
susceptibles de reaccionar entre ellos fuera del grupo expuesto
para crear unos enlaces transversales.
14. Superficie según una de las reivindicaciones
6 a 13, caracterizada porque el compuesto orgánico presenta
un grupo de fijación con un extremo y un grupo expuesto en el otro
extremo.
15. Superficie según una de las reivindicaciones
6 a 14, caracterizada porque el grupo de fijación se
selecciona de entre los grupos de tipo alcóxido de metal tal como
silano, clorosilano, metoxisilano y etoxisilano, silanol, silazano,
de tipo fosfato, hidroxi, hidracida, hidracina, amina, amida,
diazonio, piridina, sulfato, sulfónico, carboxílico, borónico,
halógeno, halogenuro de ácido, aldehído.
16. Superficie según la reivindicación 15,
caracterizada porque el grupo de fijación se selecciona de
entre los silanos tales como el mono-, di- o tri- clorosilano,
mono, di o tri- etoxisilanos y mono -, di o tri -metoxisilanos.
17. Superficie según una de las reivindicaciones
1 a 16, caracterizada porque el grupo expuesto está o bien
unido directamente al grupo de fijación, o bien mediante unas
cadenas que presentan por lo menos un átomo de carbono y
preferentemente de 3 a 30 átomos.
18. Superficie según una de las reivindicaciones
1 a 17, caracterizada porque el soporte está constituido por
lo menos en superficie por un polímero, un metal o un óxido de
metal, un elemento semiconductor, un óxido de elemento
semiconductor, en particular un óxido de sílice, o una de sus
combinaciones.
19. Superficie según una de las reivindicaciones
1 a 18, caracterizada porque el soporte está constituido por
lo menos en superficie por vidrio o sílice.
20. Superficie según una de las reivindicaciones
1 a 19, caracterizada porque el soporte está en forma de
placa de bola, de fibra o de partículas.
21. Superficie según la reivindicación 20,
caracterizada porque dichas partículas son magnéticas,
fluorescentes o coloreadas.
22. Superficie según una de las reivindicaciones
1 a 20, caracterizada porque la molécula con actividad
biológica se selecciona de entre:
- -
- las proteínas,
- -
- los ácidos nucleicos,
- -
- los lípidos,
- -
- los polisacáridos y sus derivados.
23. Superficie según una de las reivindicaciones
1 a 22, caracterizada porque la molécula con actividad
biológica es un compuesto químico que presenta una actividad
biológica.
24. Superficie según una de las reivindicaciones
1 a 23, caracterizada porque la molécula con actividad
biológica se selecciona de entre:
- -
- las proteínas,
- -
- el ADN,
- -
- el ARN y sus derivados.
25. Superficie según la reivindicación 24,
caracterizada porque la molécula con actividad biológica se
selecciona de entre:
- -
- los anticuerpos,
- -
- los antígenos,
- -
- los ADN y ARN,
- -
- los ligandos o sus receptores así como sus derivados.
26. Procedimiento de preparación de una
superficie altamente específica para reacciones biológicas según
una de las reivindicaciones 1 a 25, caracterizado
porque:
- -
- se fija sobre un soporte sólido una capa sensiblemente monomolecular y esencialmente compacta de un compuesto orgánico de estructura alargada que presenta por lo menos.
- -
- un grupo de fijación que muestra una afinidad por el soporte, y
- -
- un grupo expuesto que no muestra o muestra poca afinidad por dicho soporte y el grupo de fijación en las condiciones de fijación, pero que muestra una afinidad por un tipo de molécula con actividad biológica.
27. Superficie revestida por una molécula con
actividad biológica, caracterizada porque presenta una
superficie altamente específica para reacciones biológicas según
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 25, sobre la que se fija
dicha molécula con actividad biológica.
28. Superficie según la reivindicación 27,
caracterizada porque la molécula con actividad biológica se
selecciona de entre:
- -
- las proteínas,
- -
- los ácidos nucleicos,
- -
- los lípidos,
- -
- los polisacáridos y sus derivados.
29. Superficie según la reivindicación 28,
caracterizada porque el ADN fijado presenta la secuencia
complementaria de una secuencia de ADN a aislar de una muestra.
30. Superficie según la reivindicación 28,
caracterizada porque la proteína fijada es capaz de
reconocer y fijar específicamente una proteína a aislar de una
muestra.
31. Superficie según una de las reivindicaciones
28 y 29, caracterizada porque dicha molécula con actividad
biológica se selecciona de entre la biotina, la avidina, la
estreptavidina o sus derivados.
32. Procedimiento de identificación de la
presencia de un ADN o de un ARN que utiliza una superficie según
una de las reivindicaciones 1 a 31.
33. Procedimiento de identificación de la
presencia de una proteína o de un anticuerpo que utiliza una
superficie según una de las reivindicaciones 1 a 31.
34. Procedimiento de puesta de manifiesto y/o de
dosificación de una molécula con actividad biológica en una
muestra, caracterizado porque se utiliza una superficie
según cualquiera de las reivindicaciones 27 a 31 sobre la cual se
encuentra fijada una molécula con actividad biológica capaz de
reconocer la molécula de la muestra, y porque la puesta en
evidencia o la dosificación se llevan a cabo gracias a un reactivo
fluorescente o no que detecta la presencia de la molécula
fijada.
35. Procedimiento según la reivindicación 34,
caracterizado porque la superficie presenta una
fluorescencia débil y porque el reactivo es fluorescente.
36. Procedimiento según la reivindicación 35,
caracterizado porque el reactivo está constituido por unas
bolas.
37. Procedimiento según una de las
reivindicaciones 34 a 36, caracterizado porque la detección
se realiza por microscopia.
38. Procedimiento según una de las
reivindicaciones 34 a 37, caracterizado porque se somete el
producto de reacción entre la molécula con actividad biológica y la
molécula de la muestra a una tensión con el fin de destruir los
malos apareamientos antes de la detección.
39. Procedimiento de puesta de manifiesto de una
secuencia de ADN o de una proteína en una muestra,
caracterizado porque:
- -
- se utiliza una superficie altamente específica según una de las reivindicaciones 1 a 31;
- -
- se pone la muestra en contacto con la superficie en unas condiciones de formación del híbrido ADN/ADN, ADN/ARN o proteína/proteína.
- -
- al estar el híbrido marcado, se le estira por cualquier medio físicoquímico para orientar las moléculas y se realiza una medición o la observación de las moléculas orientadas de este modo.
40. Procedimiento según una de las
reivindicaciones 38 y 39, caracterizado porque se estira el
híbrido o producto de la reacción por el paso de un menisco en el
sentido del estirado.
41. Procedimiento según la reivindicación 40,
caracterizado porque el menisco es un menisco aire/agua.
42. Procedimiento según una de las
reivindicaciones 38 y 39, caracterizado porque el estirado
se lleva a cabo mediante un campo eléctrico que actúa sobre las
moléculas o un campo magnético que actúa sobre una partícula
magnetizable o magnética.
43. Procedimiento según una de las
reivindicaciones 38 y 39, caracterizado porque el estirado
se lleva a cabo por vía mecánica.
44. Procedimiento según una de las
reivindicaciones 38 a 43, caracterizado porque el ADN fijado
y el ADN de la muestra son "coloreados" de forma diferente y
porque, después del estiramiento, se mide la posición de la
secuencia complementaria con respecto al extremo del ADN de la
muestra.
45. Procedimiento según la reivindicación 44,
destinado a la cartografía de genes.
46. Procedimiento según cualquiera de las
reivindicaciones 44 a 45, caracterizado porque se trata de
un método ELISA o RIA.
47. Procedimiento según una de las
reivindicaciones 44 a 45, caracterizado porque la muestra es
el producto de una amplificación de ácido nucleico.
48. Procedimiento de fijación de un ácido
nucleico o de una proteína sobre una superficie tal como la
definida según una de las reivindicaciones 1 a 25, en el cual se
realiza un anclaje por adsorción del ADN o de la proteína en
particular por un extremo poniendo el ADN o la proteína en
presencia de la superficie en una zona de pH determinada.
49. Procedimiento de fijación del ADN sobre una
superficie que presenta unos grupos con doble enlace etilénico
según la reivindicación 48, caracterizado porque se pone el
ADN en presencia de la superficie a un pH inferior a 8.
50. Procedimiento de fijación según la
reivindicación 49, caracterizado la reacción se realiza a un
pH comprendido entre 5 y 6 y posteriormente es detenida a pH 8.
51. Estuche de diagnóstico, caracterizado
porque comprende por lo menos una superficie altamente específica
según una de las reivindicaciones 1 a 33.
52. Estuche de diagnóstico según la
reivindicación 51, caracterizado porque comprende, además,
un reactivo fluorescente o un reactivo que presenta unas bolas.
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