DE3104886C2 - - Google Patents

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DE3104886C2
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Yukio Miyazaki
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KAKEN CHEMICAL CO Ltd TOKIO/TOKYO JP
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KAKEN CHEMICAL CO Ltd TOKIO/TOKYO JP
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    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P1/00Preparation of compounds or compositions, not provided for in groups C12P3/00 - C12P39/00, by using microorganisms or enzymes
    • C12P1/06Preparation of compounds or compositions, not provided for in groups C12P3/00 - C12P39/00, by using microorganisms or enzymes by using actinomycetales
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04Antibacterial agents
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20Bacteria; Culture media therefor
    • C12N1/205Bacterial isolates
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12RINDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/01Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales
    • C12R2001/03Actinomadura

Description

Die vorliegende Anmeldung betrifft die in den Patentansprüchen 1 bis 3 angegebenen Antibiotika Actinomadura-L-31 A und Actinomadura-L-31 B.
Es sind bereits bestimmte, schwefelhaltige Peptid-Antibiotika bekannt. Typische, bekannte, schwefelhaltige Peptid- Antibiotika umfassen Thiopeptin [J. Antibiot, 23, 113 (1970)], Thiostrepton [Antibiotics Annual, S. 554 (1955/56)], Taitomycin [J. Antibiot, A 12, 1 (1959)], Siomycin [J. Antibiot, 22, 364 (1969)], Pepthiomycin [J. Antibiot, 21, 429 (1968)], Gardimycin [J. Antibiot, 29, 501 (1976)], Kobenomycin [J. Antibiot, 21, 320 k(1968)], Leucinamycin [J. Antibiot, A 20, 194 (1967)], Macromomycin [J. Antibiot, 21, 44 (1968)] und Neocarzinostatin [J. Antibiot, A 18, 68 (1965)].
Aufgabe der vorliegenden Erfindung ist die Schaffung neuer Actinomadura-L-31 A, B, wobei es sich um neue Antibiotika handelt.
Das Antibiotikum Actinomadura-L-31 A hat als Chlorwasserstoffsalz folgende Eigenschaften:
Aussehen:weißes oder blaßgelbes Pulver Schmelzpunkt:kein klarer Schmelzpunkt spezifische Drehung:[α] -34° (C: 0,5; pH: 7,5, Wasser) Elementaranalyse: (gefunden)
C 51,71%; H 6,23%; O 21,03%; N 13,94%; S 5,82%; Cl 1,17%
konstituierende Aminosäuren:Asparaginsäure; Glutaminsäure; Glycerin; Valin; Phenylalanin; Histidin; Leucin; Tryptophan UV-Absorptionsspektrum:Fig. 1
Absorptionsmaximum:280 nm: E = 45,2290 nm: Schulter E = 38 IR-Spektrum:Fig. 2
Absorptionen (cm-1)
3350, 3050, 2950, 1660, 1530, 1430, 1395, 1340, 1255, 1235, 1100, 745, 700.
Das Antibiotikum Actinomadura-L-31 B hat als Chlorwasserstoffsalz die folgenden Eigenschaften:
Aussehen:weißes bis blaßgelbes Pulver Schmelzpunkt:kein klarer Schmelzpunkt spezifische Drehung:[α] -26° (C: 0,5; pH: 7,5 Wasser) Elementaranalyse: (gefunden)
C 51,10%; H 6,34%; O 20,75%; N 14,81%; S 5,91%; Cl 1,08%
konstituierende Aminosäuren:Asparaginsäure; Threonin, Glutaminsäure; Prolin; Glycin; Valin; Phenylalanin; Tryptophan UV-Absorptionsspektrum:Fig. 3
Absorptionsmaximum:280 nm: E = 44,8290 nm: Schulter E = 37,3 IR-Spektrum:Fig. 4
Absorptionen (cm-1)
3350, 3050, 2950, 1660, 1520, 1440, 1390, 1340, 1260, 1230, 1100, 745, 700.
Es ist den Erfindern gelungen, bei der Kultivierung eines zur Gattung Actinomadura gehörenden Mikroorganismus, der von den Erfindern isoliert wurde, antibiotische Substanzen herzustellen und anzureichern sowie die antibiotischen Substanzen abzutrennen. Im Hinblick auf die physikochemischen Eigenschaften werden die Antibiotika der vorliegenden Erfindung als schwefelhaltige Peptid-Antibiotika angesehen. Die Antibiotika unterscheiden sich jedoch von Thiopeptin, Thiostrepton, Taitomycin, Siomycin, Pepthiomycin, Gardimycin, Kobenomycin, Leucinamycin, Macromomycin und Neocarzinostatin. Die Antibiotika der vorliegenden Erfindung sind neue Antibiotika, die als Actinomadura-L-31 bezeichnet werden und die bei der Herstellung als Gemisch von L-31 A und L-31 B anfallen.
Das Antibiotikum Actinomadura-L-31 kann durch Kultivieren eines bestimmten Mikroorganismus der Gattung Actinomadura und Abtrennen des L-31 aus dem Kulturmedium hergestellt werden. Eingesetzt wird den Stamms Actinomadura sp. L-31, der bei American Type Culture Collection als ATCC Nr. 31793 hinterlegt worden ist und von den Erfindern erstmals isoliert wurde.
Der Mikroorganismenstamm Actinomadura sp. L-31, der bei der vorliegenden Erfindung verwendet wird, hat echtes Substratmycel und Luftmycel. Der Stamm bildet eine Kette von Sporen, jedoch weder Sporangium noch Planosporen in seinem Sporophor. Der Stamm hat aerobe und mesophile Eigenschaften. Die diagnostischen Komponenten des Gesamtzellhydrolysats von Actinomadura sp. L-31-Stamm enthalten meso-Diaminopimelinsäure, 3-o-Methylgalactose und Galactose. Es ist jedoch keine L,L-Diaminopimelinsäure, Arabinose und Xylose enthalten. Es wird angenommen, daß es sich bei Actinomadura sp. L-31 um einen Stamm der Gattung Actinomadura in der Ordnung Actinomycetales handelt. Der Actinomadura sp. L-31-Stamm weist folgende charakteristische Eigenschaften auf.
(I) Morphologische Charakteristika
Das Substratmycel ist gut entwickelt und verzweigt und bildet keine echten Sporen. Das Substratmycel hat einen Durchmesser von etwa 0,5 µm und bildet keine zickzack-verzweigte Form. Das Mycel verursacht keine Fragmentierung und umfaßt somit keine bazillären oder coccoiden Elemente, die bei der statischen Kultur in einem flüssigen Medium, wie Trypton-Hefe-Extrakt-Brühemedium, bei 28°C während 2 Wochen zu einer Trübung des flüssigen Mediums führen würden. Das Luftmycel verursacht ein mäßiges oder stärkeres Anhaften in Stärkeagar-Medium, Glycerin-Calciummalatagar und Glucoseasparaginagar plus Hefeextrakt. Das führt zu einem pulvrigen, hellgräulich-blauen Aussehen des Luftmycels. Bei der Untersuchung unter dem Mikroskop zeigen sich gutentwickelte, gerade oder zickzackförmige lange Achsen und kurze Sporophoren, die gegenüberliegend oder alternierend verzweigt sind. Es finden sich jedoch keine echten Verticile. Das Sporophor bildet eine kurze Kette von Sporen mit 15 oder weniger in einer Haken-, Schleifen- oder Wellenform. Es bildet jedoch keine echte Spiralform in den oben erwähnten Agarmedien oder in Tyrosinagarmedium, Hefeextrakt-Malzextrakt- Agarmedium und Weizenmehlagarmedium. Die Spore hat eine längliche (rechteckige) Form mit den Abmessungen von etwa 0,8 µm×1,2 µm. Sie hat eine warzige Oberfläche und klare Grenzlinien, jedoch kein Sporangium, Pseudosporangium, Sclerotium, Coremium und Planospor.
(II) Kultivierungscharakteristika
Die Tests werden durchgeführt gemäß dem Test, der von E. B. Shirling et al., Int. J. Syst. Bacteriol, Band 16, Seiten 313-340 (1966), beschrieben wurde, und zwar zusammen mit zusätzlichen, bekannten Tests unter Verwendung bekannter Medien.
Die Farbe wird unter der Standardlichtquelle einer Xenonlampe bestimmt. Dabei werden als Farbstandards diejenigen des Color Harmony Manual Fourth edition (Container Corporation of America, Chicago, 1958), verwendet. Bei Auffinden der korrespondierenden Farbtafeln werden jeweils die dort angegebenen allgemeinen Namen wiedergegeben; diese allgemeinen Namen werden jedoch im Verlauf der Beschreibung nicht wiederholt. Der Farbtafel-Code des Color Harmony Manual ist jeweils in Klammern angegeben.
Die nachfolgende Zusammenstellung der Daten zeigt die Wachstumsbedingungen bei der Kultivierung in dem jeweiligen Medium bei 28°C während eines Monats, falls nichts anderes angegeben ist.
(1) Saccharose-Nitratagar(Difco-Bacto)-Medium
Wachstumdünn, teilweise einigermaßen gut Farbe der Oberfläche: farblos bis Lt. Apricot (4 ea). Keine Farbänderung in 0,05 N wäßr. HCl oder 0,05 N wäßr. NaOH Luftmycelkeines lösliches Pigmentkeines
(2) Glucose-Asparaginagarmedium
Wachstummäßig; Farbe: bamboo, buff, straw, wheat (2fb) Luftmycelkeines (mit bloßem Auge betrachtet) lösliches Pigmentkeines
(3) Glycerin-Asparaginagarmedium (ISP-5, Difco-Bacto)
Wachstumim wesentlichen keines Luftmycelkeines (mit bloßem Auge betrachtet) lösliches Pigmentkeines
(4) Stärke-Agarmedium (ISP-4 Difco-Bacto)
Wachstummäßig; im wesentlichen farblos Luftmycelpulvrig, gut, Haze Blue (13 ec) lösliches Pigmentkeines Sonstigesbemerkenswert schwache Hydrolyse der Stärke: keine Auflösung von Calciumcarbonat
(5) Tyrosinagarmedium (ISP-7 Difco-Bacto)
Wachstumgut: geringfügig spreitend, (4 ea) (keine Farbänderung in einer Säure oder einer Base) Luftmycelmäßig, pulverförmig, Farbe: flesh pink, pale pink, petal pink, shell pink (6 ca) lösliches Pigmentkeines Sonstigeskeine Bildung von melanoiden Pigmenten
(6) Nähragarmedium (Difco-Bacto)
Wachstummäßig; cremefarben Luftmycelgering, punktförmig; weiß lösliches Pigmentkeines
(7) Hefeextrakt-Malzextrakt-Agarmedium (ISP-2 Difco-Bacto)
Wachstummäßig bis gut; Farbe: Lt.Tan(3 gc) Luftmycelgut, pulvrig, Farbe: dusty white lösliches Pigmentkeines
(8) Hafermehlagarmedium (ISP-3)
Wachstumgut, flach spreitend, perlenförmig; Farbe: shell tint (3 ba) Luftmycelgut, pulvrig; Farbe: alabaster tint like (13 ba) lösliches Pigmentkeines
(9) Glycerin-Calciummalat-Agarmedium
Wachstummäßig, flach; Farbe: ivory like (3 db) Luftmycelmäßig, pulvrig; Farbe: dusty blue, Lt. gray blue, mist blue (16 ge) lösliches Pigmentkeines Sonstigeskeine Auflösung des Calciummalats
(10) Glucose-Asparagin-Agarmedium mit 0,2% Hefeextraktzusatz
Wachstummäßig; Farbe: camel, maple sugar tan (3 ie) oder bluish gray Luftmycelmäßig oder gut, pulvrig, Farbe: claud blue (15 cb) lösliches Pigmentleuchtendbraun (bright brown)
(III) Physiologische und biochemische Charakteristika
(1) Temperaturbereich (Glucose-Asparagin-Agarmedium mit 0,2% Hefeextraktzusatz; 2 Wochen)
optimale Temperatur 28 bis 35°C
Nicht-Wachstums-Temperatur: obere Grenze 40°C, untere Grenze 16°C
(2) Versuch der Verflüssigung von Glucose-Pepton-Gelatine (26°C); 1 Monat)
positiv
(3) Hydrolyse von Stärke (Stärkeagarmedium, ISP-4 I-IK- Reaktion):
negativ bis schwach positiv
(4) Koagulation und Peptonisation von Magermilch (37°C):
keine Koagulation, im wesentlichen Peptonisation
(5) Bildung von Melanin: negativ in Trypton-Hefeextraktbrühe, Pepton-Hefeextrakt-Eisen-Agarmedium oder Tyrosin- Agarmedium:
in Melaninbildungs-Agarmedium bei 28°C negativ nach einer Woche, geringfügig positiv nach 2 Wochen (rötlichbraun); positiv nach 3 Wochen (braun)
(6) Löslichkeit von Xanthin, Hypoxanthin, Adenin, Tyrosin:
positiv: Tyrosin, Hypoxanthin,
negativ: Adenin, Xanthin
(7) NaCl-Toleranz (Bennet's Agarmedium + 0, 4, 7, 10, 13% NaCl):
Wachstum bis zu 4%
kein Wachstum bei 7%.
(IV) Kohlenstoffquellenausnutzung (Pridham and Gottlieb's basal agar medium, ISP-9, Difco-Bacto; C-2 Agarmedium):
positivD-Glucose, L-Arabinose, D-Xylose, L-Rhamnose negativD-Fructose, Saccharose, i-Inosit, Raffinose, D-Mannit, Salicin.
Die gleichen Ergebnisse erhält man unabhängig von der Art der Basismedien und der Zugabe oder Nicht-Zugabe von Vitaminen B (0,5 mg Thiamin-HCl, 0,5 mg Riboflavin, 0,5 mg Niacin, 0,5 mg Pyridoxin-HCl, 0,5 mg i-Inosit, 0,5 mg Ca- Pantothenat, 0,5 mg PABA und 0,25 mg Biotin in 1 l).
(V) Diagnostische Komponenten des Gesamtzellhydrolysats
Die diagnostischen Komponenten enthalten meso-Diaminopimelinsäure, 3-O-Methyl-D-galactose und Galactose, jedoch enthalten sie nicht L,L-Diaminopimelinsäure, 3-Hydroxydiaminopimelinsäure, Arabinose und Xylose.
Gemäß dem Stand der Technik umfassen die bekannten Stämme der Gattung Actinomadura mit taxonomen Charakteristika:
Actinomadura verrucosospora: Nonomura und Ohare 1971 (Hakko Kogaku 49, 11, Seite 904, 1971);
Actinomadura citrea: Lavrova et al., 1972 (Antibiotiki 17, 11, Seiten 965, 1972);
Actinomadura coerulea: Preobrazhenskaya et al., 1975 (Antibiotiki 20, 5, Seite 404, 1975);
Actinomadura luteofluorescens: (Shinobu) Preobrazhenskaya et al. (Microbiologa 44, S. 524, 1975).
In Actinomycetes and Related Microorganisms 12, 1, Seite 30, 1977, wurde von Preobrazhenskaya et. al. beschrieben, daß die Farbe des Luftmycels auf synthetischen Medien zunächst rosa ist und sich nach Blau ändert. Andererseits ist in International J. Systematic Bacteriology 19, Seiten 391 bis 512, 1969, beschrieben worden, daß die Farbe des Luftmycels auf ISP-Medien gelb ist oder der rote Serie angehört und die Farbe des Substratmycels auf Hefeextrakt- Malzextrakt-Agarmedium gelb oder grünlich-gelb und auf Stärkeagarmedium oder dem Glycerin-Asparagin-Agarmedium rötlich-orange oder gelblich-rose ist. Hingegen tritt beim Wachstum des Actinomadura sp. L-31-Stamm auf den ersteren Medien eine beige Farbe auf und auf den letzteren beiden Medien ist die Kultur im wesentlichen farblos. Der neue Stamm verhält sich somit ganz anders als die vorstehenden.
Der neue Stamm unterscheidet sich von den bekannten auch hinsichtlich der Kohlenstoffquellennutzung. Die bekannten Stämme nutzen D-Fructose, Saccharose und D-Mannit, wohingegen der Actinomadura sp. L-31-Stamm diese Quellen nicht nutzt. Hierin ist einer der Unterschiede zu sehen.
Die Farbe des Luftmycels von Actinomadura citrea ist zunächst gelb und ändert sich nach blau. Das lösliche Pigment auf synthetischen Medien ist gelb. Darin unterscheidet sich dieser Stamm von Actinomadura sp. L-31.
Bei Actinomadura verrucosospora ist die Farbe des Substratmycels auf Stärkeagarmedium und Glycerin-Asparagin-Agarmedium rosa oder orange und es bildet sich ein hellgraues Luftmycel auf dem Stärkeagarmedium. D-Fructose und D-Mannit werden genutzt. Darin besteht ein Unterschied zu dem Actinomadura sp. L-31-Stamm.
Actinomadura coerulea kann nicht identifiziert werden, da dieser Mikroorganismus nicht hinterlegt wurde.
Die Kultur kann unter Verwendung herkömmlicher Kultivierungsverfahren für Actinomycetes oder unter Modifizierung derselben durchgeführt werden. Bei der industriell durchgeführten Kultivierung wird es bevorzugt, die aerobe Fermentation in einem Fermentationstank durchzuführen. Die Temperatur für die Kultivierung kann in einem Bereich liegen, der für das Wachstum des Mikroorganismus unter Bildung von Actinomadura L-31 geeignet ist. Die Temperatur liegt gewöhnlich in einem Bereich von 25 bis 35°C.
Die Kulturmedien können unter Verwendung von Substanzen hergestellt werden, die für die Kultivierung von Actinomycetes eingesetzt werden. Die Kohlenstoffquellen können Glucose, Dextrin, Stärke und dgl. sein. Als Stickstoffquellen kommen Weizenkeime, Sojabohnenpulver, Maisquellwasser, Fleischextrakt und Ammoniumsulfat in Frage. Es können anorganische Salze, wie Natrium-, Kalium- oder Calciumsalze, einverleibt werden. Vorzugsweise wird der pH- Wert für für Kultivierung eingestellt, und zwar beispielsweise auf 5 bis 9. Das Kulturmedium umfaßt vorzugsweise 0,5 bis 20% (Gew./Vol.) der Kohlenstoffquelle und 0,5 bis 10% (Gew./Vol.) der Stickstoffquelle. Die Kultivierungszeit hängt von den Bedingungen ab und beträgt gewöhnlich 3 bis 8 Tage. Das Actinomadura L-31 ist in dem Mycel und in dem Filtrat enthalten. Abhängig von den Bedingungen der Kultivierung und der Art des Stammes, können Actinomadura-L-31 A und L-31 B in unterschiedlichen Mengen gebildet werden.
Um Actinomadura-L-31 aus dem Kultivierungsprodukt abzutrennen und zu reinigen, können herkömmliche Verfahren gewählt werden und im Hinblick auf die physikochemischen Eigenschaften des Produktes entsprechend kombiniert werden. Beispielsweise können Extraktionsverfahren mit verschiedenen organischen Lösungsmitteln, das Phasentransfer-Verfahren oder die Absorptions- oder Trennchromatographie in zweckentsprechender Weise kombiniert werden.
Das Antibiotikum Actinomadura-L-31, das in dem kultivierten Produkt gebildet wurde, kann vorzugsweise folgendermaßen abgetrennt werden. Ein organisches Lösungsmittel, wie Methanol, Äthanol und Aceton, wird dem Kultivierungsprodukt zugesetzt, um das Actinomadura-L-31 zu extrahieren. Die Mycele werden durch Filtration abgetrennt und der pH des Filtrats wird auf 2 bis 3 eingestellt. Anschließend wird das Actinomadura-L-31 mit dem genannten organischen Lösungsmittel extrahiert. Nach dem gleichen Verfahren kann das Actinomadura-L-31 aus den Mycelen extrahiert werden. Die extrahierte Lösung wird anschließend weiterbehandelt, und zwar wird z. B. eine Lösungsmitteldestillation, eine Phasenübertragung, eine nochmalige Extraktion, eine Präzipitation oder eine Konzentrierung bis zur Trockene oder dgl. durchgeführt, um ein Gemisch von Actinomadura-L-31 A und L-31 B abzutrennen. Das Gemisch wird unter Verwendung eines zweckentsprechenden Lösungsmittels, wie Butanol- Essigsäure-Wasser, chromatographiert. Dabei wird die Fraktion aufgefangen, die antibiotische Aktivität gegenüber Bacillus stearothermophilus aufweist. Die Fraktion wird unter vermindertem Druck konzentriert und gegebenenfalls einer weiteren Behandlung unterworfen, um reines Actinomadura- L-31 A und L-31 B zu erhalten. Bei Actinomadura- L-31 A und L-31 B handelt es sich um schwach saure Verbindungen, die in einer freien Form getrennt werden können. Sie können auch in Form des Natrium- oder Kaliumsalzes oder in der Hydrochlorid- oder Sulfat-Form getrennt werden.
Die erfindungsgemäßen Verbindungen Actinomadura-L-31 A und L-31 B haben antibiotische Wirkungen. Sie sind als Antibiotika wirksam oder können in effektiver Weise als Ausgangsmaterialien für Antibiotika verwendet werden. Obwohl die antibiotische Wirksamkeit in einem Plattentest festgestellt wurde, so hat sich doch bei einem Test zur Infektion von Mäusen mit Escherichia coli und dgl. ein ausgezeichneter Schutzeffekt herausgestellt.
Im folgenden wird die Erfindung anhand von Beispielen näher erläutert.
Beispiel 1
70 ml eines flüssigen Mediums mit einem Gehalt an 1% Glycerin, 1% Glucose, 1% Stärke, 1% Weizenkeimen, 0,5% NZ-Amin, 0,2% Bierhefe, 0,5% Maisquellwasser und 0,2% Calciumcarbonat wird mit dem Actinomadura sp. L-31-Stamm (ATCC Nr. 31793) okuliert. Durch ein Schüttelkultivierungsverfahren bei 28°C während 5 Tagen wird der Mikroorganismus kultiviert, um eine Präkulturlösung herzustellen. In einen 200 l Fermentationstank werden 100 l eines flüssigen Mediums mit einem Gehalt an 2% Glycerin, 2% Glucose, 2% Stärke, 1% Weizenkeimen, 0,5% NZ-Amin, 0,2% Bierhefe, 0,5% Maisquellwasser und 0,2% Calciumcarbonat gegeben und mit 1 l der Präkulturlösung okuliert. Während 6 Tagen wird bei 28°C eine Kultivierung durchgeführt, und zwar unter den Bedingungen einer Lufteinsprudelrate von 100 l/min und einer Umdrehungszahl pro Minute von 250 U/min.
Nach der Kultivierung wird das Kultivierungsprodukt mit HCl auf einen pH von 2 eingestellt. Dem Kultivierungsprodukt werden 2% Diatomeenerde zugesetzt, und es wird filtriert. Anschließend wird eine Extraktion des Produkts durchgeführt, wobei man 80 l des Filtrats ein gleiches Volumen an Butanol zusetzt. Andererseits werden die Mycele mit 80 l eines 80% Aceton-Wasser-Lösungsmittels extrahiert. Nach dem Abdestillieren des Acetons wird die Wasserphase mit Butanol extrahiert. Der Butanolextrakt wird mit der Lösungsmittelphase kombiniert, die aus dem Kulturfiltrat erhalten wurde, und das Gemisch wurde unter vermindertem Druck konzentriert. Die konzentrierte Lösung wird mit 10 l Äthylacetat vermischt, um ein Präzipitat zu bilden. Das Präzipitat wird abfiltriert und unter vermindertem Druck getrocknet. Man erhält 50 g eines rohen Pulvers der Mischung von Actinomadura-L-31 A und L-31 B.
2 g des rohen Pulvers werden in einer geringen Menge eines gemischten Lösungsmittels aus Butanol-Essigsäure- Wasser (4 : 1 : 1) aufgelöst. Mit dem genannten, gemischten Lösungsmittel wird eine Chromatographie an einer Cellulosesäule durchgeführt, wobei zunächst Actinomadura-L-31 B und daraufhin L-31 A eluiert wird. Die Fraktionen werden aufgefangen und unter vermindertem Druck getrocknet. Der Rückstand wird in 300 ml Butanol aufgelöst und anschließend werden 300 ml einer 1%igen Natriumbicarbonatlösung zugesetzt, um die Phasentrennung durchzuführen. Die wäßrige Phase wird mit Chlorwasserstoffsäure auf einen pH von 1,5 bis 2,0 angesäuert. Das Produkt wird mit dem gleichen Volumen Butanol extrahiert. Die Butanolschicht wird mit Wasser gewaschen und unter vermindertem Druck getrocknet. Man erhält reines Actinomadura-L-31 A (15 mg) und L-31 B (18 mg) als Chlorwasserstoffsalze in Form eines Pulvers.
Beispiel 2
Gemäß dem Verfahren des Beispiels 1 wird die Kultivierung durchgeführt und das Kultivierungsprodukt in die Mycelien und das Filtrat aufgetrennt. Die Mycelien werden nach dem Verfahren von Beispiel 1 behandelt, wobei man eine konzentrierte Butanolextrakt-Lösung erhält. Andererseits wird das Filtrat auf etwa 3 l Diaion HP-20 adsorbiert und der beladene Träger wird mit Wasser und anschließend mit 3 l 50%igem Methanol-Wasser gewaschen. Das Produkt wird mit 5 l 70%igem Aceton-Wasser, das einen pH von 2 bis 3 aufweist, extrahiert, wobei die aktive Fraktion aufgefangen wird. Die Fraktion wird unter vermindertem Druck konzentriert. Die konzentrierte Lösung wird mit 10 l Butanol vermischt, um das Produkt zu extrahieren, und die Butanollösung wird mit 5 l der Butanolextrakt-Lösung vermischt.
Die Butanollösung wird mit 5 l einer 1%igen Natriumbicarbonatlösung vermischt, um die Phasentrennung durchzuführen. Die Wasserphase wird mit Chlorwasserstoffsäure auf einen pH von 2 bis 3 angesäuert und das Produkt wird mit 5 l Butanol extrahiert. Die Butanolextrakt-Lösung wird mit Wasser gewaschen und unter vermindertem Druck bis zur Trockene konzentriert. Man erhält etwa 30 g eines rohen Gemisches von Actinomadura-L-31 A und L-31 in Form eines Pulvers.
Gemäß dem Verfahren von Beispiel 1 werden 2 g des rohen Gemisches durch Chromatographie an Cellulose gereinigt. Man erhält reines Actinomadura-L-31 A (18 mg) und L-31 B (20 mg) als Chlorwasserstoffsalze in Form eines Pulvers.
Die Antibiotika Actinomadura-L-31 A und L-31 B haben die folgenden physikochemischen Eigenschaften.
Actinomadura-L-31 A (Hydrochlorid)
(1) Aussehenweißes oder blaßgelbes Pulver (2) Schmelzpunktkein klarer Schmelzpunkt (3) spezifische Drehung[α] -34° (C: 0,5; pH: 7,5 Wasser) (4) Löslichkeitlöslich in Methanol, Äthanol, Propanol, Butanol, Essigsäure und Dimethylformamid; unlöslich in Äthylacetat, Chloroform, Äther, Hexan und Wasser (5) Stabilitätrelativ stabil bei pH 2 bis 8 (6) Farbreaktionpositiv bei der Kaliumpermanganat-, Ninhydrin- und Ehrlich's-Reaktion; negativ bei der Eisen(III)-chlorid- Reaktion (7) ElementaranalyseC 51,71%; H 6,23%; O 21,03%; N 13,94%; S 5,82%; Cl 1,17% (8) UV-AbsorptionsspektrumFig. 1, gemessen in Methanol
Absorptionsmaximum:280 nm: (E = 45,2)290 nm: (Schulter, E = 38) (9) IR-SpektrumFig. 2, gemessen nach der KBr- Methode; Absorptionen (cm-1)
3350, 3050, 2950, 1660, 1530, 1430, 1395, 1340, 1255, 1235, 1100, 745, 700 (10) Silikagel-Dünnschichtchromatographie, Rf-Wert)
LösungsmittelRf-Wert
mit Wasser gesättigtes Butanol0,0 Butanol : Essigsäure : Wasser (2 : 1 : 1)0,6 Butanol : Essigsäure : Wasser (4 : 1 : 1)0,2
(11) Konstitutive Aminosäuren
(a) Das Produkt wird vor der Analyse mit 6N HCl bei 110°C während 17 h hydrolysiert.
Asparaginsäure, Glutaminsäure, Glycin, Valin, Leucin, Phenylalanin, Histidin, zwei weitere unbekannte Aminosäuren;
(b) Analyse des UV-Spektrums: Tryptophan
(12) Antimikrobielles Spektrum
In Tabelle 1 sind die Wachstumsinhibierungsdurchmesser angegeben, die nach der Plattenmethode bestimmt wurden.
Actinomadura-L-31 B (Hydrochlorid)
(1) Aussehenweiß oder blaßgelb (2) Schmelzpunktkein klarer Schmelzpunkt (3) spezifische Drehung[α] -26° (C: 0,5; pH: 7,5, Wasser) (4) Löslichkeitlöslich in Methanol, Äthanol, Propanol, Butanol, Essigsäure und Dimethylformamid;
unlöslich in Äthylacetat, Chloroform, Äther, Hexan und Wasser (5) Stabilitätrelativ stabil bei pH 2 bis 8 (6) Farbreaktionpositiv bei der Kaliumpermanganat-, Ninhydrin- und Ehrlich's-Reaktion;
negativ bei der Eisen(III)- chlorid-Reaktion (7) ElementaranalyseC 51,10%; H 6,34%; O 20,75%; N 14,81%; S 5,91%; Cl 1,08% (8) UV-AbsorptionsspektrumFig. 3, gemessen in Methanol
Absorptionsmaximum:280 nm: (E = 44,8)290 nm: (Schulter E = 37,3) (9) IR-SpektrumFig. 4, gemessen nach der KBr- Methode; Absorptionen (cm-1)
3350, 3050, 2950, 1660, 1520, 1440, 1390, 1340, 1260, 1230, 1100, 745, 700 (10) Silikagel-Dünnschichtchromatographie
LösungsmittelRf-Wert
mit Wasser gesättigtes Butanol0,0 Butanol : Essigsäure : Wasser (2 : 1 : 1)0,7 Butanol : Essigsäure : Wasser (4 : 1 : 1)0,5
(11) Konstitutive Aminosäuren
(a) Das Produkt wird vor der Analyse 17 h mit 6N HCl bei 110°C hydrolysiert.
Asparaginsäure, Threonin, Glutaminsäure, Proplin, Glycin, Valin, Phenylalanin und zwei weitere unbekannte Aminosäuren
(b) Analyse des UV-Spektrums: Tryptophan
(12) Antimikrobielles Spektrum
In Tabelle 1 sind die Wachstumsinhibierungsdurchmesser angegeben, die nach der Plattenmethode bestimmt wurden.
Tabelle 1
Antimikrobielles Spektrum
(13) Obwohl mittels der Plattenmethode kein Wachstumsinhibitionseffekt festgestellt wurde, findet man einen Schutzeffekt bei Lebewesen. Beispielsweise wird die Infektion von Mäusen mit Escherichia coli mit einer Rate von 40 bis 80% und 50 bis 100% verhindert, indem man Mäusen Actinomadura- L-31 A und L-31 B mit einer Dosis von 50 bis 100 mg intraperitoneal injiziert.
Untersuchungen von bakterieller Infektion
Zehn weibliche ICR/JCL-Mäuse (5 Wochen alt) werden als eine Gruppe verwendet. Das jeweilige Mittel wird im Falle von Actinomadura-L-31 A auf dem Wege der intraperitonealen Injektion (i. p.) mit einer Dosis von 50 mg/kg/Maus und im Falle von Actinomadura-L-31 B mit einer Dosis von 25 mg/ kg/Maus verabreicht, und zwar 3 Tage vor der Infektion mit den Bakterien. 7 Tage nach der Infektion wird die Zahl der überlebenden Mäuse bestimmt. Die Ergebnisse sind in Tabelle 2 aufgeführt.
Tabelle 2
(14) Untersuchung der akuten Toxizität
Zur Bestimmung der LD₅₀-Werte werden weibliche ICR/JCL- Mäuse (5 Wochen alt) (Gewicht 22,0±1,0 g) verwendet. Der Wirkstoff wird auf dem Wege der intraperitonealen Injektion appliziert und die Ergebnisse werden nach einer Woche festgestellt. Bei Actinomadura-L-31 A ist der LD₅₀-Wert größer als 300 mg/kg und bei Actinomadura-L-31 B liegt der Wert in einem Bereich von 150 bis 250 mg/kg.
Im folgenden werden die Zeichnungen näher erläutert; es zeigt
Fig. 1 das Ultraviolett-Absorptionsspektrum von Actinomadura-L-31 A;
Fig. 2 das Infrarot-Spektrum von Actinomadura-L- 31 A, gemessen nach der KBr-Tablettenmethode;
Fig. 3 das Ultraviolett-Absorptionsspektrum von Actinomadura-L-31 B; und
Fig. 4 das Infrarot-Spektrum von Actinomadura-L- 31 B, gemessen nach der KBr-Tablettenmethode.

Claims (4)

1. Antibiotikum Actinomadura-L-31, dadurch gekennzeichnet, daß es Actinomadura-L-31 A und Actinomadura-L-31 B umfaßt, wobei
  • (a) Actinomadura-L-31 A in Form des Hydrochloridsalzes die folgenden Eigenschaften Aussehen:weißes oder schwachgelbes Pulver Schmelzpunktkein klarer Schmelzpunkt spezifische Dehnung:[α] -34° (C: 0,5; pH: 7,5, Wasser) Elementaranalyse: (gefunden)
    C 51,71%; H 6,23%; O 21,03%; N 13,94%; S 5,82%; Cl 1,17%
    konstitutive Aminosäuren:Asparaginsäure, Glutaminsäure, Glycerin, Valin, Phenylalanin, Histidin, Leucin, Tryptophan UV-Absorptionsspektrum:Fig. 1
    Absorptionsmaximum:280 nm: E = 45,2290 nm: Schulter E = 38 IR-Spektrum:Fig. 2
    Absorptionen (cm-1)
    3350, 3050, 2950, 1660, 1530, 1430, 1395, 1340, 1255, 1235, 1100, 745, 700,
und
  • (b) Actinomadura-L-31 B in Form des Hydrochloridsalzes die folgenden Eigenschaften aufweist: Aussehen:weißes bis schwachgelbes Pulver Schmelzpunktkein klarer Schmelzpunkt spezifische Dehnung:[α] -26° (C: 0,5; pH: 7,5, Wasser) Elementaranalyse: (gefunden)
    C 51,10%; H 6,34%; O 20,75%; N 14,81%; S 5,91%; Cl 1,08%
    konstitutive Aminosäuren:Asparaginsäure, Threonin, Glutaminsäure, Prolin, Glycerin, Valin, Phenylalanin, Tryptophan UV-Absorptionsspektrum:Fig. 3
    Absorptionsmaximum:280 nm: E = 44,8290 nm: Schulter E = 37,3 IR-Spektrum:Fig. 4
    Absorptionen (cm-1)
    3350, 3050, 2950, 1660, 1520, 1430, 1390, 1340, 1260, 1230, 1100, 745, 700,und die Fig. 1 bis 4 Bestandteil dieses Anspruchs sind.
2. Actinomadura-L-31 A gemäß Anspruch 1.
3. Actinomadura-L-31 B gemäß Anspruch 1.
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