DE2602478B2 - Impfstoff gegen die Panleukopenie . der Feliden - Google Patents
Impfstoff gegen die Panleukopenie . der FelidenInfo
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Description
Gegenstand der Erfindung ist ein Impfstoff gegen die Katzenseuche, auch infektiöse Gastroenteritis oder —
nach ihrem Hauptsymptom — Panleukopenie genannt, sowie ein Verfahren zur Herstellung eines solchen
Impfstoffes.
Die Katzenseuche ist eine felidenspezifische Viruserkrankung. Der Erreger, ein Parvovirus, besitzt eine
dektronenmikroskopische Größe von 20 — 25 nm. Das Virus wird über den Atmungs- und Verdauungstrakt
übertragen, über Nasensekret und Kot wird es ausgeschieden. Nach einer Inkubationszeit von 2 bis 6
Tagen beginnt die Erkrankung mit Futterverweigerung, Fieber, Erbrechen, meist Durchfall und zunehmender
Hinfälligkeit mit Exsikkose durch Flüssigkeitsverlust. Als Charakteristikum tritt eine hochgradige Panleukopenie auf. Die Letalität beträgt bis zu 90%.
Katzen, die die Erkrankung überstehen, werden immun. Sie können über die Kolostralmilch Antikörper
auf junge Katzen übertragen. Aber auch sie sind bald ohne Schutz, da die maternalen Antikörper allmählich
abgebaut werden.
Die Katzenseuche ist weltweit verbreitet, die Infektiosität und Pathogenität ihres Erregers sind sehr
groß und die Katzen dadurch sehr gefährdet.
Es ist schon versucht worden, ein zur Herstellung eines Katzenseuchelebendimpfstoffs geeignetes attenuiertes Virus durch Passagen in Gewebekulturen zu
gewinnen. Wenigstens sechs Passagen, besonders zehn bis dreißig Passagen reichen jedoch nicht aus, ein
stabiles attenuiertes Virus, das als aktives Prinzip der Vaccine dienen kann, zu erhalten. Es ist nämlich
beobachtet worden, daß das Impfvirus ausgeschieden und von anderen Katzen aufgenommen wird. Durch
solche Tierpassagen kann es zu Rückmutationen kommen.
Zur Vermehrung des attenuierten Katzenseuchevirus ist auch schon Embryonalgewebe von Katzen benutzt
worden. Die Katzenembryonen liefern jedoch sehr wenig Gewebe, so daß diese Methode sich aus
wirtschaftlichen Gründen verbietet.
Es wurde nun ein Verfahren zur Herstellung eines Impfstoffes gegen die Panleukopenie gefunden, das
dadurch gekennzeichnet ist, daß man pathogenes
Panleukopenie-Virus mindestens 80mal auf Katzennierenzellen, sodann mindestens 18ma! auf permanente
Gewebezellen von Feliden oder Musteliden passagiert und das so erhaltene attenuierte Virus auf Katzenfetal·
zellen vermehrt und zu einem Impfstoff aufarbeitet
gegen die Panleukopenie, der das attenuierte Virus
enthält, sowie ein Verfahren zu seiner Herstellung.
ίο 80 bis 100 Passagen umfaßt erfolgt in Zellkulturen von
Katzennieren, die in einem der für die Zellvermehrung üblichen Nährmedien kultiviert werden. Die Kultur der
Zellen kann sowohl als Zellrasen als auch als Zellsuspension erfolgen. Es ist eine Temperatur von 35
bis 39° C, vorzugsweise 364 bis 374° C, einzuhalten. Eine
solche Kultur ist frühzeitig, spätestens jedoch wenn die Zellen zu etwa 75% ausgewachsen sind, ~u infizieren.
Als Infektionsmedium dient der Überstand der vorhergehenden infizierten Zellkultur. Er wird der neuen
Zellkultur im Verhältnis 1 :5 bis 1 :20 zugefügt 2 bis 6
Tage nach der Infektion kann der Oberstand gewonnen und auf die nächste Zellkultur übertragen werden.
Nach 80 bis 100 Passagen in der beschriebenen Weise wird der virushaltige Überstand auf eine permanente
Gewebezellkultur von Feliden oder Musteliden übertragen. Entsprechende permanente Kulturen sind aus der
Literatur bekannt Ein Beispiel für solche permanente Zellkulturen ist die Crandell-Zelle, eine permanente
Katzennierenzelle. Die Infektion dieser Zellkultur mit
dem Überstand einer infizierten Zellkultur und die
weitere Verarbeitung erfolgt wie vorher beschrieben.
Nach mindestens 18 Passagen in permanenten Gewebezellen ist das Virus ausreichend attenuiert Es ist
völlig apathogen, unschädlich und gut verträglich. Durch
die Attenuierung büßt es nicht an Immunogenität ein
und die daraus ' ergestellte Vaccine weist vorzügliche immunisierende Eigenschaften auf. Es war überraschend, daß das auf Katzennierenzellen nicht ausreichend attenuierbare Virus durch eine geringe Zahl von
Passagen auf permanenten Zellinien attenuiert werden kann, ohne seine Immunogenität zu verlieren.
Das so attenuierte Virus kann in Gewebekulturen von Katzenfeten vermehrt werden. Hierzu eignen sich
insbesondere Feten, die im Stadium der Organogenese,
etwa im letzten Drittel der Trächtigkeit, entnommen
wurden. Für die Anlage der Gewebekulturen können die
Feten insgesamt oder Teile davon verarbeitet werden. Es empfiehlt sich, die Extremitäten, den Kopf und die
Haut nicht für die Zellkultur zu verwenden. Die Zellen
werden in üblicher Weise z. B. durch Trypsinierung
aufgearbeitet, als stationäre Kultur, als Rollerkultur oder als Suspensionskultur angelegt und wie vorher
beschrieben mit dem attenuierten Virus zwecks Vermehrung infiziert. Die Aberntung des Überstandes
erfolgt nach 2 bis 6 Tagen. Die infizierten Zellkulturen können unter Zusatz neuer Nährlösung weiter kultiviert
werden. Diese Operation kann mehrmals wiederholt werden, z. B. bei der stationären Kultur mindestens
4—6mal und bei der Rollerkultur mindestens 20 — 25mal.
Danach sind die Zellen im allgemeinen erschöpft. Bei der letzten Aufarbeitung können die Zellen zur
Gewinnung einer größeren Ausbeute beispielsweise durch Tieffrieren oder Ultraschallbehandlung zerstört
werden.
Auf diese Weise wurde erfindungsgemäß erstmalig ein attenuiertes Panleukopenie-Virus erhalten, das für
Feliden und Musteliden nicht mehr pathogen ist und die Krankheit nicht mehr übertragen kann.
Weiterbin erwies sich die Katzenfetalzellenkultur als
überraschend produktiv; das attenuierte Virus läßt sich
nämlich mehrmals, das heißt 20- bis 25mal von einer Kultur hintereinander abernten.
Das durch Aufarbeitung der Vermehrungskultur erhaltene Material kann in der Üblichen Weise zu einem
Impfstoff aufgearbeitet werden. Es empfiehlt sich, einen Stabilisator, beispielsweise Gelatine, Fleischextrakt,
Pepton- oder Zuckerlösungen zuzusetzen, insbesondere, wenn eine Lyophilisierung des Impfstoffes vorgesehen
ist Eine solche empfiehlt sich wegen der besseren Haltbarkeit. Der Impfstoff kann jedoch auch als
Flüssigimpfstoff verwendet werden. Der Zusatz eines der üblichen Adjuvantien ist gewünschtem*alls möglich.
Der Impfstoff kann — falls er in lyophilisierter Form vorliegt, nach Auflösen in einem der hierfür üblichen
Lösungsmittel — subcutan oder intramuskulär verabreicht werden. Er weist gegenüber bekannten Impfstoffen die folgenden Vorteile auf:
1.) Große Reinheit der Antigene.
2.) Durch Vermehrung auf homologem Gewebe keine Fremdeiweißreaktionen. Bei wiederholter Verabreichung keine Schockreaktionen oder Allergien.
3.) Gleichbleibende Qualität und Reinheit der Impfviren, da die Vermehrung auf einem einheitlichen
geprüften Zellsubstrat erfolgt
4.) Schneller Schutz.
Der erfindungsgemäße Panleukopenielebendimpfstoff wurde in einer Reihe von Untersuchungen und
Prüfungen im Laboratorium und im Tierversuch auf seine Eigenschaften, Verträglichkeit, Unschädlichkeit
und Wirksamkeit getestet
Versuche und Ergebnisse
Unschädlichkeit
Die Prüfung der Unschädlichkeit erfolgte an weißen
Mäusen und Meerschweinchen. 5 Mäuse werden mit je 0,5 ml der wiedergelösten Vaccine subkutan geimpft 2
Meerschweinchen erhalten je 2 ml intraperitoneal. Während einer Beobachtungszeit von 10 Tagen nüssen
die Versuchstiere gesund bleiben. Besonderer Wert wurde auf die Unschädlichkeits- und Verträglichkeitsprüfung bei Katzen gelegt In kontrollierten Labor- und
Feldversuchen wurden bislang 962, überwiegend isoliert gehaltene Katzen und 174 Großkatzen — wie Löwen,
Tiger, Geparden usw. — mit dem erfindungsgemäßen Impfstoff subkutan oder intramuskulär geimpft und
gewöhnlich 14 Tage, zum Teil mehrere Wochen, beobachtet Neben der Kontrolle von örtlichen und
allgemeinen Reaktionen wurden bei den Laborversuchen auch Leukozytenzählungen vorgenommen. Dabei
ergab sich, daß der Impfstoff gut vertragen wurde. Auch die Impfung von SPF (SPF=spezifiziert pathogenfrei)-Katzen, die zum Teil über 2 Jahre isoliert gehalten
wurden, ergab keinen Anlaß zu einer Beanstandung.
Für eine gleichbleibende gute Wirksamkeit des erfindungsgemäßen Impfstoffes ist nehen dem Virustiter eine gute Haltbarkeit erforderlich. Die Prüfung
derselben erfolgte nach Ermittlung des Gehalts an Impfvirus nach Lageiung des Impfstoffs bei verschiedenen Temperaturen bis zu 24 Monaten nach Herstellung.
Die erhaltenen Antigentiter sind aus Tabelle 1 abzulesen (Tabelle 1).
Lagerzeit
+37"C
+ 20° C
+ 100C
+4"C
-35° C
1 Woche
3 Wochen
1 Monat
2 Monate
3 Monate
4 Monate
6 Monate
9 Monate
12 Monate
18 Monate
24 Monate
10«"
ΙΟ3·375
ΙΟ'·»
10'J»
kein Virus
104.166
104J75
104,166
10340
ΙΟ3·*
102.625
102 625
Neben der Prüfung des Gehalts an lebendem Impfvirus durch Virustitration in der Zellkultur wurde
das erfindungsgemäße Produkt in einer Reihe von Immunisierungsversuchen an Katzen geprüft. Der
weiten Verbreitung des Panleukopenievirus und anderer felidenpathogener Erreger muß bei Vornahme von
Versuchen mit zugekauften Katzen durch entsprechende Quarantänehallung Rechnung getragen werden. Um
Fremdinfektionen zu vermeiden und exakte Versuchsergebnisse zu erhalten, ist es zweckmäßig, spezifiziert
pathogenfreie Katzen, sogenannte SPF-Katzen,
verwenden.
10*333 | 10*333 |
104333 | 10*625 |
10 | |
104.625 | 10*·8» |
1O4·625 | 10**33 |
10*-5 | 10*333 |
Tierversuch Nr. 1 |
10*833
10*333
10*3)3
10*333
10*3)3
10*333
In einem ersten Tierversuch wurde die Wirksamkeit und Verträglichkeit des Impfstoffs an 6 SPF-Katzen
geprüft. Von den in einer Isolieranlage gemeinsam
bo untergebrachten Katzen wurden 4 mit dem Impfstoff subkutan vacciniert 2 Katzen verblieben als ungeimpfte
Kontrollen. Neben einer Prüfung des allgemeinen Gesundheitszustandes wurde besonders darauf geachtet, ob nach Verabreichung des Impfstoffes ein
h', signifikantes Absinken der Leukozytenwerte gegenüber
nichtgeimpften Katzen auftritt. Dies war im vorliegenden und in weiteren Versuchen nicht der Fall. Die
Wirksamkeit wurde serologisch durch Antikörpermes-
sung und nachfolgender Belastungsinfektion geprüft Das Ergebnis dieser Prüfung wird in Tabelle 2
zusammengefaßt wiedergegeben. Aus ihr ist zu ersehen, daß vor der Impfung die Katzen panleukopenieemp-
fänglich waren, 2 Wochen später waren die geimpften Katzen bereits serologisch immun und belastbar, die
Kontrollen dagegen blieben schutzlos und erlager der Infektion.
KaUe Nr. | PL-Anti- Geimpft mit: | Impfstoff | O ) | Kontrollen | Zeichenerklärung: | dies post vaccinationem. | Klinische! | PL-Antikörper- | 14 dp.v. | Belastungsinfektion | Ergebnis | bereits die |
körpertiter |
gemäß Erfindung
al Ds.-ImI subkutan |
O | d. ρ. ν. = | ohne Besonderheit | Verlauf bis titer NDso/ml | der Be | ||||||
vor d | ο. Β. = | an Panleukopenie erkrankt | 14 dp. v. | 681 | lastung | |||||||
Impfung | kr = | an Panleukopenie erkrankt und verendet |
1466
1466 3 162 |
|||||||||
59 | O | kr+ = | o. B. | O | o. B. | |||||||
62
65 67 |
O
O O |
Tierversuch Nr. 2 |
O. B.
o. B. O. B. |
O |
4 1 ml pro kg Kgw.
pathogenes PL-Virus peroral |
o.B.
o.B. o. B. |
||||||
61 | o. B. | kr.t | ||||||||||
64 | o.B. | Penleukopenie | kr. | |||||||||
Körpergewicht | ||||||||||||
PL = | ||||||||||||
KGW = | ||||||||||||
ND50 = | 50%ig neutralisierender Endwert | |||||||||||
schützen. Alle '. | Catzen waren vor der Impfung | |||||||||||
uneeschützt. 3 Ta | ee soäter widerstander | |||||||||||
Impfstoffe, die lebende apathogene Panleukopenieviren enthalten, führen in der Regel zu einem raschen
Impfschutz, der vor allem dem Phänomen der Interferenz zuzuschreiben ist. Dabei wird die Vermehrung von pathogenem Virus in der Wirtszelle durch das
Impfvirus verhindert. In einem Versuch an 12 jungen Katzen wurde geprüft, ob diese bereits 72 Stunden nach
der Verabreichung des erfindungsgemäßen Impfstoffes ausreichend gegen eine Belastungsinfektion geschützt
sind. Das Ergebnis dieser Untersuchungen wird in der Tabelle 3 wiedergegeben. Der Versuch zeigt, daß der
Impfstoff in der Lage ist, gegen die Panleukopenie kurzfristig — nämlich innerhalb von 3 Tagen — zu
geimpften Tiere einer Belastungsinfektion mit pathogenem Panleukopenievirus. Durch eine nach der BeIa-
stungsinfektion vorgenommene tägliche Leukozytenzählung, die sich über zwei Wochen erstreckte, wurde
festgestellt, daß die Katzen äußerlich gesund blieben und keinen signifikanten Leukozytenabfall aufzeigten.
Die während der Untersuchungsdauer ermittelten
Ausgangs- und Minimalwerte wurden in die Tabelle 3
eingetragen. Ein Leukozytenabfall unter 2000/mm3 ist im allgemeinen ein charakteristisches Krankheitszeichen für Panleukopenie. Die nichtgeimpften Kontrollkatzen erkrankten mehr oder weniger stark an
Panleukopenie, wobei 4 von 6 Tieren der Infektion erlagen.
Katze | Nr. PL-Antikörper Geimpft mit: | Impfstoff | Belastung | Ergebnis der | Bclastungsinfektion | bis 2 Wochen |
vor d. Impfg. |
gemäß
Erfindung je 1 Ds.-1 ml |
72h p. v. | Allgemein | Leukozytenwerte | ||
subkutan | befinden | p.v. | Minimal | |||
Ausgangs | werte | |||||
werte | 10 200 mi.13 | |||||
268 | 0 | o.B. | 13 400 | 10 600 mm3 | ||
598 | 0 | o.B. | 20 000 | 5 600 mm* | ||
599 | 0 | Kontrollen | o.B. | 12 100 | 10 300 mm3 | |
602 | 0 | je 1 ml | o.B. | 14 600 | 10100 mm3 | |
684 | 0 |
«■ IUU IIJ50
pro kg Körpergewicht |
o.B. | 11300 | 10 200 mm3 | |
606 | 0 | t « an | pathogenes | o.B. | 18 800 | 600 mm3 t |
269 | 0 | = an Panleukc jenie erkrankt. lDwi - 50 | PL-Virus Nr. I | kr. | 11400 | 5 700 mm3 f |
620 | 0 | peraral | kr. | 10100 | 1 200 mm3 f | |
691 | 0 | kr. | 13 200 | 1 200 mm3 t | ||
685 | 0 | kr. | 12 300 | 4 200 mm3 | ||
603 | 0 | kr. | 10 600 | 3 800 mm3 | ||
607 | 0 | kr. | 15 800 | |||
o.B. | - ohne Besonderheit. | Panleukopenie verendet. | ||||
kr. | %ie infizierende Dosis. | |||||
Gemäß Tierversuch 2 schützt der erfindungsgemäß hergestellte Impfstoff Katzen bereits 3 Tage nach der
Vaccination (3 d. p. v.) vor einer Erkrankung an Panleukopenie (PL). Um zu ermitteln, ob die gleiche
Vaccine auch schon vor dem 3. d. p. v. einen Schutz gegen PL verleiht, wurde nachstehend beschriebener
Versuch ausgeführt.
16 für Panleukopenie empfängliche Katzen wurde mit
je 1 Dosis des Impfstoffs vacciniert und in 4 Gruppen zu je 4 Tieren aufgeteilt. Eine Gruppe davon wurde bereits
unmittelbar nach der Vaccination, die anderen Gruppen nacheinander jeweils im Abstand von einem Tag mit
pathogenem Panleukopenie-Virus belastet, sechs unbehandelte Kontroll-Katzen wurden zusammen mit der
letzten Gruppe am 3. d. p. v. infiziert. Wie Tabelle 4
ausweist, zeigt dieser Versuch, daß der Impfstoff bereits
einen Tag nach der Vaccination einen Teil der geimpften Katzen vor einer Erkrankung an Panleukopenie zu schützen vermag. Von vier Katzen der
betreffenden Gruppe erkrankte und verendete nur ein Tier an Panleukopenie, die anderen drei Tiere blieben
gesund.
Von den Tieren, die zwei Tage nach der Vaccination belastet wurden, zeigte lediglich eine von vier Katzen
am 4. und 5. Tag nach der Infektion einen geringgradigen Leukozytenabfall (auf 4200 bzw. 5100/mm').
Diejenigen Katzen, die drei Tage nach der Vaccination infiziert wurden, widerstanden der Belastung reaktionslos.
Von den Kontroll-Katzen verendeten alle an Panleukopenie.
Weitere Einzelheiten können der Tabelle 4 entnommen werden.
Katze Nr. | PL-Anti | Vacciniert am Belastungsinfektion | Datum | je 1 ml Impfstoff | 1 d. p. v. | Material | Ergebnis |
körper in | 26. 11.1974 mit: | subkutan | |||||
NDio/ml | + 7. d. p. i. | ||||||
3. V. 3ΓΠ 26. 11.74 |
am 28.11.74 | + 12. d. p. i. | |||||
1017 | 0 | 2 d. p. v. | + 8. d. p. i. | ||||
1022 | 32 | + 10. | |||||
1028 | 0 | o.B. | |||||
1166 | 0 | am 26. 11.74 | o.B. | ||||
1018 | 0 | 0 d. p. v. | + 9. d. p. i. | ||||
1023 | 0 | o.B. | |||||
1029 | 0 | je 1 ml | o.B. | ||||
1167 | 0 | am 27.11.74 | am 29.11.74 | PL-Infektions | o.B. | ||
1019 | 0 | 3d.p.v. | material, Nr. 1, | L (4200) | |||
1024 | 0 | 1 :5 verdünnt. | 4. d. p. i. | ||||
1160 | 0 | pro kg Kgw. | o.B. | ||||
per os | o.B. | ||||||
1168 | 0 | Kontrollen am 29.11.74 | o.B. | ||||
1020 | 0 | o.B. | |||||
1025 | 0 | o.B. | |||||
1165 | 0 | + 6. d. p.i. | |||||
1169 | 0 | + 6. d. p. i. | |||||
1021 | 0 |
+ 6. d. p. i.
+ 6. d. p. i. |
|||||
1031 | 0 | + 6. d. p. i. | |||||
1158
1159 |
0 0 |
+ 8. d.p.i. | |||||
1163 | 7 | ||||||
1164 | 0 |
a. v. = ante vaccinationem.
d. p. v. = dies post vaccinationem.
+ = verendet an PL
L = Leukozytenafafail.
(...) = niedrigster Leukozytenwert
d. ρ. ι. = dies post infectionem.
Zur Überprüfung der Schutzdauer wurde ein weiterer Versuch an SPF-Katzen, die unter strenger Isolierung
gehalten wurden, durchgeführt. Von 10 SPF-Katzen erhielten 8 je eine Dosis des Impfstoffs subkutan. Die
beiden nichtgeimpften Kontroiikatzen wurden zur
Überprüfung der Ausscheidung und einer eventuellen Weiterverbreitung des Impfvirus bzw. PL-Virusein
bo schleppung im gleichen Raum untergebracht Bei allen
Katzen wurden Blutproben zur Antikörpermessung entnommen. Die Ergebnisse dieser Untersuchung sind
aus Tabelle 5 zu entnehmen. Der Versuch zeigt, daß der Impfstoff zu einer aktiven Immunität mit einem
hochwertigen Antikörpertiter führt, der den geimpften Katzen über den gesamten Beobachtungszeitraum
einen verläßlichen Schutz gegen Panleukopenie verleiht Er zeigt auch, daß die Kontrollkatzen antikörper-
ίο
frei blieben. Das bedeutet, daß während des Versuchszeitraumes weder eine Weiterverbreitung des Impfvirus, noch eine Einschleppung von PL-Viren erfolgte, die
bei den Impflingen zu einer natürlichen Boosterung bzw. bei den Kontrollen zu einer Panleukopenieerkrankung mit nachfolgender Antikörperentwicklung geführt
hätte. Da die Versuchskatzen täglich gewartet und beobachtet wurden, konnte festgestellt werden, daß
während des gesamten Versuchszeitraumes keine Reaktionen auftraten, die auf eine Unverträglichkeit
oder Schädlichkeit schließen ließen.
Katze Nr. Geimpft mit:
Vor der Panleukopenieantikörpertiler in ND',n/ml
Impfung
2 Wo. p. v. 1 Mo. p. v. 2 Mo. p. v. 4 Mo. p. v. 6 Mo. p. v. 8 Mo. ρ ν.
151 | je 1 Ds. (=1 ml) | O | 4217 | 6813 | 4210 | 6813 | 3 162 | 6813 |
152 | des erfindungs | O | 3 162 | 3 162 | 6813 | 3 162 | 3 162 | 3 162 |
154 | gemäßen Impf | O | 3 162 | 6813 | 1 466 | 4217 | 1 466 | *) |
155 | stoffes subkutan | O | 4217 | 14 660 | 6813 | 3 162 | 2 371 | 4217 |
156 | O | 4217 | 4217 | 4217 | 3 162 | 2 371 | 3 162 | |
157 | O | 3 162 | 6813 | 4217 | 3 162 | 3 162 | 4217 | |
158 | Kontrollen | O | 3 162 | 6813 | 14 660 | 4217 | 6813 | 4 217 |
159 | O | 14 660 | 23710 | 23 710 | 4217 | 2 371 | 6 162 | |
153 160 |
O O |
O O |
0 0 |
0 0 |
0 0 |
0 0 |
0 0 |
|
Wo. p. v. = Wochen post vaccinationem.
Mo. p. v. = Monate post vaccinationem.
·) = Katze ist bei der Herzpunktion verendet.
Mo. p. v. = Monate post vaccinationem.
·) = Katze ist bei der Herzpunktion verendet.
Katze Nr. | Panleukopanieantikörpertiter in NDss/ml | 14 Mo. p. v. | 17 Mo. p. v. | 23 Mo. p. v. | 26 Mo. ρ |
11 Mo. p. v. | 422 | 2 371 | 1 466 | 6813 | |
151 | 3 162 | 1466 | 3 162 | 3 162 | 3 162 |
152 | 3 162 | ||||
154 | 316 | 422 | 1 466 | 4217 | |
155 | 4217 | 1466 | 1466 | 3 162 | 3 162 |
156 | 3 162 | 2 371 | 3 152 | 6813 | 6813 |
157 | 3 162 | 3 162 | 3 162 | 6813 | 6813 |
158 | 14 660 | 2 371 | 4217 | 4217 | 6813 |
159 | 6813 | 0 | 0 | 0 | 0 |
153 | 0 | 0 | 0 | t | 0 |
160 | 0 | ||||
' Verendet | interkurrent. |
1) Herstellung einer Kultur von
Katzenfetalzellen
Eine trächtige Katze wird schmerzlos getötet und die Feten werden unter sterilen Bedingungen entnommen,
Von einem Fetus werden Kopf, Extremitätenenden und Haut entfernt und der verbleibende Körper wird mit
einer Schere in Stücke von etwa 2—4 mm Größe zerteilt
Die Stücke werden in eine 0,25%ige Trypsinlösung eingebracht und unter Rühren auf 37° C erwärmt In
Abständen von etwa 10—20 Minuten wird die Trypsinlösung mit den darin enthaltenen suspendierten
Zellen abgegossen und durch neue Trypsinlösung ersetzt
6 ml des abgegossenen Zellsediments werden in einer Verdünnung von 1 :300 in einem Medium der folgenden
Zusammensetzung aufgeschwemmt:
10% Eagle's Medium (1 Ofach)
10% Hammel-oder Kälberserum
2% Lactalbuminhydrolysat (5%ig)
1% NSP-Lösung (Neomycin-Streptomycin-Penicillin
200 000 mg/ml bzw. 20 000 I E/ml)
2% Natriumhydrogencarbonat (5%ig)
'" Aquabidest.adlOO%
Das Gemisch wird in einen Kulturkolben eingebracht und auf 37° C gehalten.
> > 10. Tag wird die Nährlösung von den Zellen abgegossen
und durch eine Lösung ersetzt, die 95% eines
einer l%igen Trypsinlösung und 3% einer 5%igen
ho Natriumhydrogencarbonatlösung enthält
1 Liter Aqua bidest
7,27 g Natriumchlorid
036 g Kaliumchlorid
0,91 g Dextrose
In dieser Lösung lösen sich die Zellverbände in Einzelzellen oder kleinere Gruppen auf. Die so
erhaltenen Zellen werden in der oben beschriebenen Weise mehrmals kultiviert.
2) Herstellung des Panleukopenie-Saatvirus
Eine Katze wird mit pathogenem Panleukopenievirus, das von einer an Panleukopenie erkrankten und
verendeten Ka! ze isoliert wurde, infiziert und 7 Tage später im schwerkranken Zustand mit einem Leukozytenwert
von 200/mm3 getötet. Die Nieren werden entnommen und wie oben beschrieben in einer 25%igen
Trypsinlösung zwecks Gewinnung einer Zellsuspension behandelt. Die erhaltene Virussuspension wird sedimentiert
und das Sediment im Verhältnis I : 300 in einem Kulturmedium folgender Zusammensetzung suspendiert:
52,2% Hanks'Medium
5,8% Lactalbuminhydrolysat
5,8% Lactalbuminhydrolysat
-»λ λλ/_ T-: /"·..!· _fcinj: ι nn
AU,l/7U I 13JUt \^UItUI t IYH UIUIII IJ3
20,0% Kälberserum
1,0% Natnumhydrogencarbonat (5%ig)
1,0% NSP-Lösung
1,0% Natnumhydrogencarbonat (5%ig)
1,0% NSP-Lösung
Die Suspension wird bei 37°C gehalten. Dabei kommt es zu einer Vermehrung des Panleukopenievirus in den
Zellen. Das Virus kann durch Übertragung des Kulturüberstafides auf gesunde Katzen nachgewiesen
werden.
Die Weiterkultivierung des Virus geschieht folgendermaßen: Von gesunden Katzen werden Nieren
entnommen und in der oben beschriebenen Weise trypsiniert und in Nährlösung suspendiert. Wenn der
Prüfung des Attenuierungsgrades des über 86 Katzennierenkulturpassagen und anschließend über 19 Mustelidenkulturpassagen
geführten Panleukopenievirus ( = Unschädlichkeitsprüfung)
Katze-Nr.: 254 |
255
-je vacciniert mit je 1 ml Panleukopenievierussuspension, gewonnen vom 05.09. 1975
257 I
— = nicht untersucht
— = nicht untersucht
Zellrasen zu ungefähr 75% ausgewachsen ist, wird er mit dem virushaltigen Überstand der Panleukopenieviruskultur
beimpft.
Hierzu wird der Überstand mit frischem Nährmedium im Verhältnis 1:10 gemischt und über die Zellen
geschichtet. Nach 4 Tagen wird der Überstand, der das vermehrte Panleukopenievirus enthält, abgegossen.
Nach etwa 80maliger Wiederholung werden die bis dahin verwendeten Katzenierenzellen durch eine
permanente Katzennieren-Zellinie nach Crandell ersetzt und die Passagen werden noch 17mal wiederholt.
Für die Kultivierung von stabilen Katzennierenzellen wird folgendes Medium verwendet:
10% Eagle's Medium
10% Kälberserum
10% Kälberserum
1,5% Natriumhydrogencarbonat(5%ig)
1,0% NSP-Lösung
„j innriA. a „..« u;,4~„*
ClU i W /V riUUU L>IUVi3t·
Bei der Virusbeimpfung wird der Serumanteil auf 3% reduziert.
Nach der 103. Passage hat das Virus seine Pathogenität verloren, aber seine guten immunisierenden
Eigenschaften behalten. Es kann für die Herstellung eines Impfstoffes verwendet werden.
Statt auf einer permanenten Katzennieren-Zellinie nach Crandell kann auf einer solchen von Musteliden
passagiert werden.
Die Tabellen 6 und 7 zeigen die Ergebnisse einer Verfahrensweise, in welcher eine Mustelidenkultur in
der zweiten Stufe verwendet wurde.
Katze-Nr. | Leukozytenwerte pro mm'/Tage | 1 | Leukozytenwerte | 8 | nach der Vaccination | 17 18 | 4 | 5 | 6 | 9 200 |
0 | 16 400 | 14 15 | 12 400 | 2 3 | 9 000 | 8 500 | 10100 | |||
254 | 15 900 | 12 500 | 16400 - | 9 800 | 16 800 12 700 | 8 200 | 7 300 | 4 200 | ||
255 | 13 600 | 12 300 | 20 000 - | 4 200 | 9 600 7 700 | 100 16 400 13 500 12 400 | 8 600 | 5 900 | 8 200 | |
256 | — | 14 600 | 20000 12 | 9 800 | 11200 10 700 | 10500 10 700 12 600 12 100 10 700 | 7 500 | 9 100 | ||
257 | — | 13 200 8 200 | ||||||||
Tabelle 6 | (Fortsetzung) | Leukozyten werte pro mmVTage | 13 | |||||||
K.atze-Nr. | 7 | nach der Vaccination | 11 | 12 | 16 800 | |||||
10 600 | 9 10 | 16 300 | 13 400 | 16 800 | ||||||
254 | 7000 | 15 800 15 900 | 16 700 | 18000 | 11800 | |||||
255 | 6000 | 18 200 16 300 | 15 300 | 13 400 | 10 700 | |||||
256 | 4 600 | 9 600 10 400 | 16 300 | 11300 | ||||||
257 | Tabelle 6 (Fortsetzung) | 11 200 8 000 | ||||||||
Katze-Nr. | 21 | |||||||||
pro mmVTage nach der Vaccination | 19 | 20 | _. | |||||||
254 | 16 | _ | ||||||||
255 | , | , | 12 400 | |||||||
256 | 14 400 | 11300 | 14 200 | |||||||
257 | 12 400 | 10 500 | ||||||||
Wirks?mkeitspr(ifung des über 86 Katzennierenkulturen
und anschließend über 19 Musteiidenkulturpassagen geführten Panleukopenievirus
Untersuchung auf Serumantikörper im Neutralisationstest in der Gewebekultur
Katze-
Serumprobe
vor der
Impfung
keine PL-AK
keine PL-AK
keine PL-AK
Serumprobe 3 Wochen nach der Impfung
104.625^42.176 ND5(i/ml
PL-AK = Panleukopenie-Antikörper.
ND50 = 50% neutralisierende Dosis.
3) Herstellung des Impfstoffes
Eine Katzen-Felal-Zellkultur, die nach (1) vermehrt
wurde, \Ard in einem Medium der folgenden Zusammensetzung
suspendiert:
10% Eagle's Medium (lOfach)
10% Kälberserum
10% Kälberserum
2% Lactalbuminhydrolysat (5%ig)
2% Natriumhydrogencarbonat (5%ig)
1% NSP-Lösung
75% Aquabidest.
2% Natriumhydrogencarbonat (5%ig)
1% NSP-Lösung
75% Aquabidest.
Nach 1—2 Tagen wird die Nährlösung erneuert.
Wenn der Zellrasen zu 50-75% ausgewachsen ist, wird auf die Zellkultur eine 10%ige Virussuspension —
erhalten nach (2) — pipettiert.
Nach 4 Tagen wird der virushaltige Überstand abgegossen und die Zellkultur unter Hinzufügung neuer
Nährlösung weiterkultiviert. Der Überstand weist einen Virustiter von etwa lOMDw/ml auf. Dieser Virusüberstand
wird in an sich bekannter Weise durch Zugabe eines Stabilisators der folgenden Zusammensetzung zu
einem Impfstoff verarbeitet.
4 Teile Gelatine-Bouillon 2%ig
1 Teil Glucose 50%ig.
1 Teil Glucose 50%ig.
Der Impfstoff wird in Portionen von 1 ml in 3-ml-Rollrandfläschchen abgefüllt, gefriergetrocknet
und unter Vakuum verschlossen.
Die Virusvermehrung kann in der vorstehend beschriebenen Weise auch in Roller- oder Suspensionskuituren
durchgeführt werden.
Claims (2)
1. Impfstoff gegen die Panleukopenie der Peliden,
enthaltend das auf Katzenniercnzellen passagierte pathogene Panleukopenie-Virus, das nach mindestens 80 Passagen auf den Katzennierenzellen durch
mindestens 18 Passagen auf permanenten Gewebezellen von Feliden oder Musteliden attenuiert
worden ist
2. Verfahren zum Herstellen des Impfstoffes nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man das
nach Anspruch 1 attenuierte Virus auf Katzenfetalzellen vermehrt und zu einem Impfstoff aufarbeitet
wobei die zur Vermehrung des attenuierten Virus verwendeten Kulturen aus Katzenfetalzellen gegebenenfalls mehrmals abgeerntet werden.
Priority Applications (19)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
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ES455137A ES455137A1 (es) | 1976-01-23 | 1977-01-18 | Procedimiento para la preparacion de una vacuna contra la panleucopenia de los felinos. |
NL7700482A NL7700482A (nl) | 1976-01-23 | 1977-01-18 | Werkwijze voor het bereiden van een vaccin tegen de panleucopenie bij de kat. |
FI770181A FI60408C (fi) | 1976-01-23 | 1977-01-20 | Foerfarande foer framstaellning av vaccin mot parvovirus-panleukopeni hos felider |
NO770208A NO152936C (no) | 1976-01-23 | 1977-01-21 | Fremgangsmaate til fremstilling av et podningsstoff mot panelukopeni i felider. |
CH76477A CH629962A5 (de) | 1976-01-23 | 1977-01-21 | Verfahren zur herstellung einer vaccine gegen die panleukopenie der katze. |
IT19537/77A IT1076012B (it) | 1976-01-23 | 1977-01-21 | Processo per la preparazione di un vaccino contro la panleucopenia del gatto |
IE127/77A IE44691B1 (en) | 1976-01-23 | 1977-01-21 | Feline distempr vaccine |
FR7701805A FR2338708A1 (fr) | 1976-01-23 | 1977-01-21 | Vaccin contre la panleucopenie des felides et son procede de preparation |
PT66097A PT66097B (de) | 1976-01-23 | 1977-01-21 | Verfahren zur herstellung einer vaccine gegen die panleukopenie der katze |
SE7700652A SE426550B (sv) | 1976-01-23 | 1977-01-21 | Forfarande for framstellning av ett vaccin mot panleukopeni hos katt |
US05/761,438 US4312947A (en) | 1976-01-23 | 1977-01-21 | Process for the preparation of a vaccine against panleucopenia of the cat |
DK24977A DK147033C (da) | 1976-01-23 | 1977-01-21 | Fremgangsmaade til fremstilling af en vaccine mod panleukopeni hos felider |
LU76616A LU76616A1 (de) | 1976-01-23 | 1977-01-21 | |
AT38277A AT360147B (de) | 1976-01-23 | 1977-01-21 | Verfahren zur herstellung eines attenuierten panleukopenie-virus bzw. eines dieses attenuierte virus enthaltenden impfstoffes |
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BE174334A BE850696A (fr) | 1976-01-23 | 1977-01-24 | Vaccin contre la panleucopenie des felides et son procede de preparation |
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