DE2560155C2 - Humanimmunglobulin-Derivat - Google Patents
Humanimmunglobulin-DerivatInfo
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Description
Die Erfindung betrifft ein Humanimmunglobulln-Derlvat,
wie es im Anspruch 1 gekennzeichnet ist. Verfahren zur Herstellung dieses Humanimmunglobulin-Dcrivats.
sowie eine parenteral applizierbare Lösung, die dieses enthüll, sind bereits Gegenstand des liauplpatents 4(<
DE-PS 25 08 123.
Aul dem Gebiet der Proteinchemie wurde in letzter Zeit die Beziehung zwischen der Struktur und den Funktionen
des Immunglobulins, welche eine wichtige Rolle für die medizinisch äußerst signifikante Humorallmmunitilt
spielt, näher untersucht.
Es wurde dabei festgestellt, daß das lmmunglobulin in
fünf Typen unterteilbar ist, d. h. IgG, IgA, IgM, IgD und IgE. wovon IgG (das Humanimmunglobulin G) nicht
weniger als 70 Gew.-% einnimmt.
Die Humanimmunglobuline, ausgenommen IgM, sind jeweils hauptsächlich aus vier Peptidketten aufgebaut
und es sind mehrere Dlsulfidbindungen in den Interketten und den Intraketten vorhanden. Beispielswelse kann
das IgG. das typischste der Immunglobulinde, falls es j5
mit Papain digeriert wird, in zwei Fragmente »Fab« mit Antigenbindungsaktlvität und einem Fragment »Fc« mit
Komplement- und Gewebebindungsaktivität fraktioniert werden. Es wurde weiterhin festgestellt, daß das IgG aus
zwei Polypeptidschwerketten (Η-Ketten) und zwei Poly- b0
peptidleichtketten/(L-Ketten) aufgebaut ist, welche durch Disulfidhindungcn und nichikovalcmc Bindungen
unter Bildung eines Proteinmoleküls mit einem Molekulargewicht von etwa 160 000 stark verbunden sind, und
daß das Molekül durchschnittlich etwa 4.5 Interkettcn- h>
disulfldblndungen und etwa 12 Intrakeuendisulfidbindungcn
enthüll [B. Frangione & C. Mllstein; J. Mol.
Biol.. Band 33. Seite 893 (1968)].
Bezogen auf die vorstehenden empirisch festgestellten Sachverhalte wurden verschiedene Untersuchungen hinsichtlich lmmunglobulin für intravenöse Injektion ausgeführt. Die Verwendung des Immunglobulins setzte sich
nach der Beendigung der Cohn-Fraktionierung [E. G. Cohn und Mitarbeiter; J. Amer. Chem. Soc, Band i58,
Seite 459 (1946)] rasch durch.
Cohn und Mitarbeiter fraktionierten eine große Menge Humanplasma durch Äthanolausfällung. Die Fraktion II
ist überwiegend IgG, welches kleinere Mengen an IgA und IgM enthält, und zeigt Antikörperaktivität gegen
verschiedene Mikroorganismen, die Infektionskrankheiten verursachen. Deshalb ist die Verabfolgung der Frak
tion II wirksam für die Prophylaxe und die Therapie von Virusinfektionskrankheiten, wie Masern, Viralhepatitis
und dergleichen, sowie Infektlonskranhkeiten von gegenüber Anitbiotika beständigen Bakterien, wie Streptococcus aureus.
Die einzige bisher zur Verabfolgung des auf diese Weise fraktionierten und rezeptierten Humanimmunglo
bulins angewandte Maßnahme war die intramuskuläre Injektion. Jedoch kann die intramuskuläre Injektion
lediglich P-irtialosmosen der Injektionsfiüssigkeit in den
Körper bewirken und kann nicht eine augenblickliche Wirkung zeigen. Weiterhin erlaubt die intramuskuläre
Injektion nicht die Verabfolgung großer Mengen. Deshalb war das Auffinden eines Humanimmunglobulins,
das für intravenöse Injektion geeignet ist, erwünscht.
Die intravenöse Injektion des bekannten Humanimmunglobulins verursacht heftige pyrogene und cardiovaskuläre
Reaktionen, welche bei einem gammaglobulinämischen Patienten besonders auffällig sind. Diese
ungünstigen Reaktionen der intravenösen Injektion werden durch Aggregate von Humanimmunglobulin, die in
den Fraktionen des Humanimmunglobulins enthalten sind, verursacht. Das aggregiene Humanimmunglobulin
verbindet sich mit Komplement und Gewebe in ähnlicher Weise wie beim Antigen-Antikörper-Komplex. so
daß sich nachteilige Reaktionen ergeben, die durch den im Körper ausgebildeten anaphylaktischen Faktor verursacht
werden. Die nachteiligen Reaktionen können dadurch verhindert werden, daß die von dem rezeptierten
lmmunglobulin durch Ultrazentrifugierung mit 100 000 xg abgetrennte überstehende Flüssigkeit verwendet
wird, jedoch findet unvermeidlich eine langsame Reaggregierung in dem auf diese Weise behandelten
lmmunglobulin statt.
Im Hinblick auf eine sichere Intravenöse Injection von
lmmunglobulin wurden zahlreiche Untersuchungen unternommen. In der Schweiz wurde versucht, das
Humanimmunglobulin einer pH 4-Behandlung zur zeitweiligen Denaturierung seines »Fc-Anteiles zu unterwerfen,
so daß dieses für die intravenöse Injektion geeignet wird [S. Barandun und Mitarbeiter; Vox Sang.
Band 7, Seite 157 (1962)]. Jedoch ist die Behandlung
unvollkommen und die nachteiligen Reaktionen werden gelegentlich noch beobachtet.
Pepsinbehandeltes lmmunglobulin wird technisch für intravenöse Injektionen geliefert [H Koblet, S. Barandun
und H. Dlggelman; Vox Sang, Band 13. Seite 92 (1967)]. Da 60 bis 80% des behandelten Immunglobulins aus dem
Fragment F (ab'); aufgebaut sind, wird in vivo die lnjek-Uonsflüssigkeit
rasch verschlechtert, was sich durch ihre Halbwertszeit von einigen Stunden anzeigt, die einige
Zehntel derjenigen des unherundelten Immunglobulins
ist [B. Jäger; Arch. Intern. Mcd.. Band 114. Seite 60 (1967)).
fiine weiterhin verbesserte Injektionsflüssigkeii kann
erhalten werden, wenn das Pepsin durch Plasmin als Behandlungsmittel ersetzt wird, jedoch hat das Verfahren
den Nachteil, daß das Plasmin später nicht entfernt werden kann [L. Ä. Hanson & B. G. Johonson; Int.
Arch. Allergy, Band 31, Seite 380 (1967)].
Jn letzter Zeit wurde vorgeschlagen, selektiv hauptsächlich die Interkettendisulfidbindungen des Humanimmunglobulins
zu spalten und die gebildeten Schwefelatome (S-) zu S-alkylieren und die Immunglobulin-terivate
mit verringerten unerwünschten Reaktionen für die intravenöse injektion zu verwenden.
Beispielsweise Ist als Versuch zur Spaltung der Interkettendisulfidbindungen
des Humanimmunglobulins, um Polypeptidketten zu erhalten, das Verfahren von S T. Stevenson und Mitarbeiter [Bio. Chem., J.,
Band 118, Seite 703 (I960)] bekannt, welches in der reduzierenden
Spaltung der Interkettendisulfidbindungen von Humanimmunglobulin In Dithiothreitol und der
S-Alkylierung desselben in Jodacetamid besteht. Das
Verfahren erfordert jedoch zweistufige Reaktionen und weiterhin besteht das Produkt aus S-aiky!ferten Polypeptiden,
die eine potentielle Gefahr für eine neue Antigenizität darstellen.
Weiterhin ist es in keiner Weise einfach, den S-TeIl in
Thiolgruppen zu überführen. Deshalb ist es auch schwierig, hiervon ein brauchbares Reagens abzuleiten. Indem
dieses auf einem Träger, beispielsweise einem geeigneten Polymeren, unter Anwendung des aktiven Thiols getragen
wird.
Das Franek-Verfahren [F. Franek, Coll. Czech. Chem.
Commun.. Band 29, Seite 1401 (1964)] besteht In der Behandlung von Schweineimmunglobulin mit Natriumsulfit
und KupferdD-ionen zur Bildung von S-sulfonierten Polypeptiden.
Wiederholungsversuche des vorstehenden Verfahrens von Franek und Mitarbeitern zeigten die dem Verfahren
anhaftenden Mängel auf. nämlich:
(i) die erhaltenen denaturierten Polypeptide enthalten Kupfer oder KupferdD-ionen, wobei die Entfernung des
Kupfers oder der KupferdD-ionen aus dem Produkt äußerst schwierig oder praktisch unmöglich ist;
(Ii) die denaturierten Polypeptide zeigen eine rasche
Abnahme der Antigenbindungsaktivitäl, wenn sie die gewünschte niedrige Antikomplementaktlvität haben,
(iii) die ursprüngliche Gestalt des lmmunglobulins wird
verzerrt und geändert, wie durch optische Drehungsmessungen bestätigt und wie In den später angegebenen Vergleichen
und Kontrollen gezeigt wird.
Die Tatsache, daß es praktisch unmöglich Ist, den kleinen
Rest an Kupfer aus dem denaturierten Polypeptidprodukt nach dem Verfahren von Franek und Mitarbeitern
zu entfernen, belegt, daß dieses Produkt thermisch instabil ist, zur Bildung von Aggregaten neigt und offensichtlich
physiologisch unerwünscht ist, wenn es für intravenöse Injektion verv/endet werden soll [D. A. Derber;
Arthritis and Rheumatism, Band 17, Seite 85 (1974)].
Aufgabe der Erfindung Ist daher die Schaffung eines
Humanimmunglobulin-Derivats, das weder Kupfer noch KupferdD-ionen enthält, worin entweder die Interkettendisulfidbindungen,
welche zwei Polypeptldschwerketten (Η-Ketten) und zwei Polypeptldleichtketten (L-Ketten)
im Humanlummunglobulin verbinden, selektiv gespalten
sind oder außer den angegebenen Interkettendisulfidbindungen ein geringer Teil der Intraketiendisulfidbindungen
gespalten ist und die gespaltenen Schwefelatome (-S)
S-sulfoniert (S-SO",) sind, und das eine verringerte Anti-
10
komplementaktivität hat und eine ausgezeichnete hohe
Antikörperaktivität während längerer Zeiträume im menschlichen Körper beibehalten kann, nur wenige
nachteilige Reaktionen zeigt und das das native Humanimmunglobulin in vivo rekonstruieren kann.
Insbesondere bezweckt die Erfindung die Bereitstellung
eines neuen Humanimmunglobulin-Derivats, welches durch selektive Spaltung von praktisch lediglich der
Interkettendisulfidbindungen, die die schweren Ketten (Η-Ketten) und die leichten Ketten (L-Ketten) des
Humanimmunglobulins verbinden, und durch S-Sulfonierung der gebildeten Schwefelatome gebildet wird und
eine gleichförmige Qualität besitzt.
Gemäß der Erfindung werden die vorstehenden Aufga-
Gemäß der Erfindung werden die vorstehenden Aufga-
ben gelöst und die Vorteile erreicht durch die Bereitstellung des neuen Humanimmunglobulin-Derivats, das von
oxidierenden Metallionen wie KupferdD-ionen frei ist und das dadurch gekennzeichnet ist, daß darin durchschnittlich
3 bis 5 der Interkeitendisulfidbindungen des
nativen Humanimmunglobulins vorwiegend gespalten sind, und die so erzeugten Schwefelatome (S-) S-sulfoniert
(-S-SO")) sind, und daß es
(1) einen Antidiphterie-Titer, der praktisch gleich mit demjenigen von nativem Humanimmunglobulin ist,
hat,
(2) eine optische Drehung, die praktisch gleich derjenigen von nativem Humanimmunglobulin ist, hat und
(3) in vivo zu nativem Humanimmunglobulin zurückgebildet wird.
Samtliche beanspruchten Humanimmunglobulinderivate besitzen die vorstehend angegebenen Merkmale (1),
(2) und (3).
Besonders bevorzugt wird ein Humanimmunglobulin- !·'> Derivat gemäß der Erfindung, das dadurch gekennzeichnet
ist, daß durchschnittlich 3 bis 4,5, Insbesondere 4,5 der Interkettendisulfidbindungen des nativen Humanimmunglobulins
Im wesentlichen selektiv gespalten sind und daß die dabei gespaltenen Schwefelatome S-sulfo-4(1
niert sind.
Unabhängig von den Stellen oder Plätzen der gespaltenen Disulfidbindungen ist das neue Humanimmunglobulin-Derivat
gemäß der Erfindung dadurch charakterisiert, daß
(1) es durch Spaltung von durchschnittlich 3 bis 5 Interkettendisulfidbindungen und gegebenenfalls von
Intrakettendlsulfidblndungen in geringem Ausmaß des nativen Humanimmunglobulins und S-Sulfonierung
-(1 (-S-SO",) der hierbei gespaltenen Schwefelatome gebildet
wird, und daß
(2) das Humanimmunglobulin-Derivat mindestens 1,0 1. E./ml des Antldlphterie-Titers bei einer Konzentration
von 10,0 Gew.-% aufweist.
" Das Humanimmunglobulin-Derivat gemäß der Erfindung
liefert eine wasserlösliche Zusammensetzung, die zur Bildung von Injektionsflüssigkeiten brauchbar ist,
wenn sie mit Löslichmachungsmitteln, die für Menschen ungefährlich sind, vermischt wird. Auch durch Auflö-
sung der wasserlöslichen Zusammensetzung in Wasser können wäßrige Zusammensetzungen für intravenöse
Injektion erhalten werden.
Hin besonders bevorzugtes Humanimmunglobulin-Derivat gemäß der Erfindung ist ein solches, worin
durchschnittlich 4,5 Interkettendisulfidbindungen des
natlven Humanimmunglobulins im wesentlichen selektiv gespalten sind und die auf diese Weise gebildeten Schwefelatome
(praktisch 9 Atome durchschnittlich) S-sulfo-
nlert (S-SO ι) sind. Anhand von Untersuchungen werden
diese bevorzugten Humanimmunglobulin-Derlvate gebildet, wenn Im wesentlichen allein die Η-Ketten und
L-Ketten des nativen Humanlmmunglobulins verbindenden
lnierkettendisulfidbindungen gespalten sind und die
dabei gebildeten Schwefelatome S-sulf'onlert sind.
Das neue Humanimmunglobulln-Derlvat gemäß der Erfindung kann durch Umsetzung von nativem Humanimmunglobulin
In Wasser mit
(A) einer zur Bildung des Tetrathionatlons fähigen Verbindung
und
(B) einer zur Bildung von Sulfitionen fähigen Verbindung zur Spaltung von durchschnittlich 3 bis 5 Interkettendisulfidbindungen
oder zusätzlich zu den praktisch gesamten Interkettendlsulfldblndungen von einer kleineren
Menge der intrakettendisuifidbindungen des nativen Humanimmunglobullns, wobei die Anzahl der gespaltenen
Disulfidbindungen maximal durchschnittlich 5 nicht übersteigt, und gleichzeitige S-Sulfonierung (-S-SO"])
der auf diese Weise gebildeten Schwefelatome hergestellt werden.
Nach dem vorstehend angegebenen Verfahren ist es möglich, in erster Linie die Interkettendisulfidbindungen
des nativen Humanimmunglobulins vorwiegend zu spalten.
Deshalb können die Humanimmunglobulin-Derivate gemäß der Erfindung, worin durchschnittlich 3 bis 5 Disulfidbindungen
des nativen Humanimmunglobulins gespalten und die gebildeten Schwefelatome S-sulfoniert
sind, als Produkte betrachtet werden, worin praktisch die Interkettendisulfidbindungen allein des nativen Humanimmunglobulins
gespalten sind und die erhaltenen Schwefelatome S-sulfoniert sind.
Das Verfahren wird im wesentlichen in Wasser ausgeführt, jedoch ist das Medium in keiner Weise auf Wasser
begrenzt, sondern es können auch andere wäßrige Medien verwendet werden, sofern sie für die Reaktion
zur Bildung des Humanimmunglobulins gemäß der Erfindung nicht schädlich sind.
Als Verbindung (A). welche zur Bildung des Tetrathionations
in Wasser fähig ist, werden Tetrathionsäure, Alkalisalze hiervon, wie Natrlumtetrathionat, Kaliumtetrathi^nat
und dergleichen, und wasserlösliche Salze hiervon, wie Ammoniumtetrathionat, bevorzugt, obwohl
auch andere Verbindungen verwendet werden können, sofern sie das Tetrathionation in Wasser bilden können.
Typische Beispiele für Verbindungen (B), welche das Sulfition in Wasser liefern können, umfassen schweflige
Säure, Natriumsulfit, Kaliumsulfit und Natriumsulfit, wobei jedoch auch andere Verbindungen verwendet werden
können, sofern sie Sulfitionen in Wasser bilden können.
Die Verbindung (A), welche zur Bildung des Tetrathionations in Wasser fähig ist, wirkt als Oxidationsmittel.
Hingegen dient die Verbindung (B), die das Sulfition in Wasser bildet, als Reduktionsmittel, sowie als S-Sulfonierungsmittel.
Die Mengen von Sulfitionen und Tetrathionationen sollen jeweils nicht weniger als die 2fache molare Menge
der zu spaltenden Disulfidbindungen (-S-S-Bindungen) des als Ausgangsmaterial dienenden, nativen Humanimmunglobulin
sein. Sie können bis hinauf zu jeweils der lOOfachen molaren Menge der zu spaltenden Bindungen
oder sogar noch darüber liegen.
Es wird bevorzugt, daß die Verbindungen (A) und (B), insbesondere (B), in Wasser oder einer Pufferlösung vor
ihrem Zusatz zu dem Reaktionssystem dieses Verfahrens eelöst werden.
Die bei diesem Verfahren stattfindende Reaktion kann
so beschrieben werden, daß die Interkettendlsulfidbindungen
des nativen Humanimmunglobulins durch das Sulfition gespalten werden, eines der Schwefelatome in
eine S-Sulfonatgruppe (-S-SO-!) und das andere zur
Thiolgruppe (-SH) gespalten werden und jeweils zwei der dabei gebildeten Thiolgruppen durch das Tetrathionalion
zur Bildung einer Disulfidbindung oxidiert werden oder daß die Thiolgruppe mit dem Tetrathionation zur Überführung
in S-Thiosulfat (-S-S;O~i) reagiert und erneut
durch das Sulfitlon angegriffen wird. Dadurch wiederholt sich die Reaktion. Infolge dieser Reaktion werden die
Interkettendisulfidbindungen des nativen Humanimmunglobulins gespalten und die dadurch getrennten
Schwefelatome werden in die S-Sulfonatgruppe (-S-SO~j)
in den schweren Ketten und den leichten Ketten umgewandelt.
Das Verfahren wird bei Temperaturen von nicht höher als 50° C, insbesondere bei IO bis 50° C, möglichst bei 15
bis 48° C, ausgeführt, wobei es auch möglich ist, das Verfahren bei niedrigeren Temperaturen durchzuführen.
Normalerweise besteht bei hohen, 50° C übersteigenden Temperaturen, insbesondere oberhalb 55° C, eine
Neigung, daß das native Humanimmunglobulin denaturiert wird und eine Spaltung der Intrakettendisuifidbindungen
eintritt. Deshalb sollten derartig hohe Temperaturen vermieden werden.
In diesem Verfahren soll die Anwesenheit von solchen proteinstörenden Mitteln, wie Harnstoff oder Guanidin,
welche bei der S-Sulfitolyse von Insulin oder Rlbonuclease
[J. L. Bailey und Mitarbeiter, L. Biol. Chem., Band 234, Seite 1733 (1959)] verwendet werden, besser
vermieden werden. Falls verwendet, sollte jedoch das quantitative Verhältnis dieser störenden Mittel nicht
mehr als 2,0 Mol je Mol des nativen Humanimmunglobulins betragen.
Die Reaktionszeit variiert in Abhängigkeit von solchen Faktoren, wie Menge der Reaktionsteilnehmer, Reaktionstemperatur
und Anwesenheit eines Denaturierungsmittels, wie Harnstoff und dergleichen. Der bevorzugte
pH-Wert der Reaktionsflüssigkeit liegt im Bereich von etwa 3,5 bis 10, insbesondere 6 bis 9. Bei einem pH-Wert
niedriger als 3,5 zeigt sich eine Neigung zur Spaltung der Intrakettendisulfidbindung im Fc-Teil des nativen
Humanimmunglobulins. Hingegen wird bei einem pH-Wert oberhalb 10 das globulinbildende Protein denaturiert,
was zu solchen nachteiligen Ergebnissen, wie Hemmung der Antikomplementaktivitätsverringerung und
Verringerung der Antigenbindungsaktivltät, führt. Es besteht keine kritische Reihenfolge für den Zusatz
der Reaktionsteilnehmer zu dem Reaktionssystem.
Nach der Reaktion wird das Reaktionsgemisch einer anschließenden Dialyse gegen Wasser oder eine geeignete
Pufferlösung, wie Salzlösung mit einem Gehalt von O,01m-Phosphatpuffer (pH 7,4) und 2,5% Glycin unterzogen,
worauf die neuen Humanimmunglobulin-Derivate gemäß der Erfindung erhalten werden können.
Die neuen Humanimmunglobulin-Derivate gemäß der Erfindung können weiterhin in die L-Ketten und H-Ketten
durch Säulenchromatographie unter Anwendung einer mit geeigneten Harzen, beispielsweise Sephadex G-75
gefüllten Säule und einem Lösungsmittel, wie Im-Propionsäure, getrennt werden.
Die Anzahl der S-Sulfonatgruppen (-S-SO~3) In dem
neuen Humanimmunglobulln-Derlvat gemäß der Erfindung kann beispielsweise bestimmt werden, indem das
Herstellungsverfahren unter Anwendung von radioaktivem Natriumsulfit ausgeführt wird und die mit 35S mar-
kierien S-Sulfonaie in dem erhaltenen Humanlmmunglobulin-Derivat
mit einem Füsslgkeitssclntlllationszähler gezählt werden, wie in den späteren Beispielen ausgeführt
ist.
Die eine Hälfte der auf diese Welse bestimmten durchschnittlichen
Anzahl der markierten S-Sulfonatgruppen je Molekül des llumanimmunglobulln-Derivats entspricht
der durchschnittlichen Anzahl der gespaltenen intermolekularen Dlsulfidbindungen in dem als Ausgangsmaterial
verwendeten nativen Humanlmmunglobulin.
Andererseits können die Humanimmunglobuiln-Derlvate,
die durchschnittlich etwa 9 S-Sulfonatgruppen je Molekül enthalten, d. h. die durch Spaltung von durchschnittlich
4,5 Disulfldblndungen des nativen Humanimnvüngiobülins
und S-Sulfonierung der gebildeten Schwefelatome
nach dem Verfahren gebildet wurden, in H-Ketten und L-Ketten fraktioniert werden, wobei beispielsweise
Sephadex G-75 oder G-200 für die Säulenchromatographie, vorzugsweise In Gegenwart einer geringen
Menge von Harnstoff oder Guanidin, beispielsweise mit Propionsäure als Lösungsmittel, wie vorstehend abgehandelt,
verwendet werden.
Es kann somit jeder Satz von Bedingungen für die Durchführung des Verfahrens angewandt werden, sofern
sie die Herstellung von Humanimmunglobuün-Derivaten erlauben, welche durchschnittlich praktisch 9 S-Sulfonatgruppen
je Molekül enthalten, die weiterhin in H-Ketten und L-Ketten nach der anpegebenen Säulenchromatographie
fraktioniert werden können. Wenn ein derartiger Satz von Bedingungen empirisch einmal bestimmt
wurde, kann die Anzahl der gespaltenen Dlsulfldbindungen
in dem nativen Humanimmunglobulin in geeigneter Weise durch Einstellung der Reaktionszeit unter dem
gewählten Satz von Bedingungen geregell werden.
Die vorliegende Erfindung wird nachfolgend anhand von Arbeitsbeispielen weiter erläutert.
Die in den Beispielen eingesetzten Reagenzien waren die folgenden:
Humanimmunglobulin I:
15%ige Lösung von Humanimmunglobulin, das Im
wesentlichen aus 98 Gew.-% nativem Humanimmunglobulin
G und 2 Gew.-% nativem Humanimmunglobulin A besteht, für intramuskuläre Injektion In gepufferter
Salzlösung (pH neutral) mit einem Gehalt von 2,5% Glycin (Produkt der Chems-Sero-Therapeutlc
Research Institute).
y-Globulin-Human Fr, II (Produkt der Nutritional BIochemicals
Corporation, USA), das mehr als 95 Gew.-% natives Humanimmunglobulin G enthält.
Natrlumtetrathionai:
Unmittelbar vor dem Gebrauch aus Natrlumthiosulfat (Na7S2O3 · 5H2O) und Jod (J2) in wäßrigem Äthanol
hergestellt.
Natriumsulfit (special grade. Produkt der Komune Kagaku Yakuhln Co).
Na2SO3 markiert mit 55S* (Produkt der New England
Nuclear (USA))
Tris-HCl:
Tris-(hydroxyrnethyl)-arninomethan (Produkt der
Nakarai Kagaku Yakuhin Co) Chemikalie spezieller Qualität für biochemische Untersuchungen mit einem
mit wäßriger 1 n-HCl verringerten pH-Wert.
Die Antikörperaktiv Itäts- und die Antlkomplementaktivitätswerte
wurden in folgender Weise bestimmt:
Bestimmung des Antidiphtherie-Titers
Reaktion:
Senslbilislerte positive Haem-Agglutlnatlonsreaklion
(Fußnote 1) wurde angewandt
Bestimmungsverfahren:
Bestimmungsverfahren:
Mikroplatten verfahren
Blutzellen:
Blutzellen:
Menschliche rote Blutzellen vom O-Typ (Fußnote 2), welche mit Formalin und mit BDB (Bls-diazobenzidin)
behandelt waren (Fußnote 3) und mit dlphtheritlschem
Toxoid senslbilislert waren.
Kontrolle:
Kontrolle:
Standard-Antikörper für Diphtherie (NIH Japan)
Fußnote 1)
NIH-Japanverfahren: F. Murata, Nr. 21, Tokyo Veterinaian &
Animal Husbandry (1975)
Fußnoie 2)
Fußnoie 2)
W. T. Butler: J. Immunol, Band 90, Seite 663, 1963)
Fußnoie 3)
Fußnoie 3)
J. Dordon, B. Rose, A. H. Sehon: J. Exp. Med., Band 108,
Bestimmung des Antikörpers für Masern, Röteln und
Mumps (Fußnoten 4 bis 9)
Reaktion:
Mikroplattenverfahren mit Ausnahme von Masern, wofür das Reagenzglasverfahren angewandt wurde.
Antigen:
Antigene für die Haem-Agglutlnation (von Toshiba
Chemicals hergestellt).
Kontrollserum:
Standard-Antiserum (der Toshiba Chemicals) mit Ausnahme für Masern, für die Standard-Antiserum (NIH
Japan) verwendet wurde.
Fußnote 4)
Dulde por Hemagglutionations Inhibition-Test für Masern
nach dem Mikroilterverfahren: NIH Japan
Fußnote 5)
Fußnote 5)
Sequenze zur Bestimmung des Humanlmmunglobullns G ist
die Antikörperaktivliäi gegenüber Masern (NIH Japan)
Fußnoie 6)
Fußnoie 6)
T. Toyarna, Clinical Examinations, Band 16 Nr. 29 (1972)
Fußnoie 7)
Fußnoie 7)
An Introduction to Virus Empirical Science, herausgegeben
von NIH Japan Alumni. Maruzen Bookslone (1973)
Fußnoie 8)
Fußnoie 8)
Empfohlene Vorschriften für Mikrobiologische Reagenzien,
US-Depl. of HEW, April 1965
Fußnoie 9)
Fußnoie 9)
Mumps-Hl-Reaktlonsverfahren: (NlII Japan).
Bestimmung der Antikomplementaktivltäi:
Das von Kabat & Mayer »Experimental lmmunochemlstry« Seite 225 (1961) beschriebene Verfahren wurde angewandt. Eine l%ige Immunglobullnlösung mit einem Genau von Meerschweinchcnscrurr·., 20 CV.a/ml. wurde auf 5 ml mit GVB~ gebracht, auf 37° C während Stunde erwärmt und das verbrauchte Antlkomplement wurde nach diesem Verfahren bestimmt. Die Antikomplementaktivitätswerte sind durch die Prozentsätze des Verbrauchs, bezogen auf 20 CH5o/ml, angegeben.
Das von Kabat & Mayer »Experimental lmmunochemlstry« Seite 225 (1961) beschriebene Verfahren wurde angewandt. Eine l%ige Immunglobullnlösung mit einem Genau von Meerschweinchcnscrurr·., 20 CV.a/ml. wurde auf 5 ml mit GVB~ gebracht, auf 37° C während Stunde erwärmt und das verbrauchte Antlkomplement wurde nach diesem Verfahren bestimmt. Die Antikomplementaktivitätswerte sind durch die Prozentsätze des Verbrauchs, bezogen auf 20 CH5o/ml, angegeben.
Beziehung der Reaktionsbedingungen zur Anzahl der Spaltungen der Disulfidbindungen
Bedingung I
Zu 51 mg des vorstehend angegebenen Humanimmunglobulins II wurden 36 mg mit "S-markiertes Na2SO3*
und 22 mg Na2S4O6, sowie wäßrige 0,Im-TfIs-HCL (pH
8,2) zur Bildung einer Probe von 5,0 ml zugesetzt, welche auf 45° C erhitzt wurde, wobei die anschließende Reak-
tion bei dieser Temperatur ausgeführt wurde. Jeweils 0.5 mi des Reaktionsgemisches wurden unmittelbar nach
Beginn und nach 30 Minuten, 1 Stunde, 2 Stunden, 4 Stunden, 7,4 Stunden und 24 Stunden der Reaktion als
Probe genommen. Jede Probe wurde mit 10 ml einer 50%igen gesättigten Ammoniumsulfatlösung unter Eiskühlung
vermischt, während 15 Minuten unter Eiskühlung stehengelassen und der erhaltene Niederschlag zentrifugal
abgetrennt. Nach der Wäsche, wiederum mit 50llniger gesättigter Ammoniumsulfatlösung, wurde der
Niederschlag hinsichtlich Radioaktivität mit einem Flüssigkeltsscintillatlonszählgeräl
gemessen und aus dem Ergebnis die Anzahl der darin enthaltenen -S-SOj-Gruppen
berechnet.
Bedingung II
Die Umsetzung wurde unter Identischen Bedingungen wie der vorstehenden Bedingung I ausgeführt, jedoch
wurde während der Reaktion keine Probe genommen. 4 Stunden, nachdem die Reaktion begonnen hatte, wurde
eine wäßrige lOm-Harnstofflösung zu dem Reaktionssystem zugesetzt, so daß die Harnstoffkonzentration
darin 4m betrug. Nach einer Umsetzung während 5 und 6 Stunden (bzw. 1 uder 2 Stunden Reaktion nach der
Harnstoffzugabe) wurden jeweils 0.5 ml der Reaktionsflüssigkeit als Probe genommen und in gleicher Welse
wie die unter Bedingung I genommenen Proben behandelt.
Bedingung 111
Reaktion und Probebehandlung unter der Bedingung 1 wurde wiederholt, wobei jedoch die Reaktionstemperaiur
0c C betrug.
Bedingung IV
Reaktion und Probebehandlung gemäß Bedingung 1 wurden wiederholt, wobei jedoch die Reaktlonstemperatür
25° C betrug.
Bedingung V
Reaktion und Probebehandlung gemäß Bedingung I wurden wiederholt, wobei jedoch kein Na2S4O,, ■ 2H2O
verwendet wurde.
Die Ergebnisse der Umsetzungen unter den vorstehenden
Bedingungen 1. II. III. IV und V sind in der folgenden Tabelle I zusammengefaßt.
Beziehung der Reaktionsbedingungen zur Anzahl der gebildeten -S-SO.rGruppen
Reaktionsbedingung
Reaktionszeil (Stunden)
0 0,5 1 2
7.4 24
I | (45° C) | O | 6,1 | 9,0 | 8,9 | 9.4 |
II | (45° C, Harnstoff- | _ | _ | - | _ | _ |
Zusatz nach 4 Std.) | ||||||
III | ( O0C) | O | 0.5 | 1,6 | 2.5 | 2.9 |
IV | (25° C) | 0,2 | 1,6 | 4,1 | 5.0 | 4.5 |
V | (frei von | 0 | 0,5 | 0,8 | 1.1 | 0.8 |
Na-.S4O„ 2H2O) |
8.9 10.4
10.9 13.3
3.4
7.0
7.0
5.0
8.5
4,5
8.5
4,5
Die Anzahl der gespaltenen Dlsulfldbindungen entspricht einer Hälfte der Anzahl der -S-SOi-Gruppen.
Aus den in Tabelle I angegebenen Ergebnissen der Reaktion läßt sich das Folgende schließen. Wenn das
Verfahren in Gegenwart von Tetrathionat und Natriumsulfit bei 45° C unter der Bedingung I durchgeführt wird,
werden etwa 3 Disulfldblndungen im Verlauf von einer
halben Stunde gespalten, wobei der Durchschnitt etwa 4,5 im Verlauf νυπ 1 bis 7 Stunden Reaktion und etwa
5,2 nach 24 Stunden Reaktion erreichte.
Wenn die Reaktion in Identischer Weise, abgesehen
von der Temperatur, bei 25° C (Bedingung IV) durchgeführt wurde, wurde die Anzahl der gespaltenen Disulfidblndungen
verringert, wobei die Anzahl der gespaltenen Bindungen einen durchschnittlichen Wert von etwa 4,3
nach einer so langen Reaktionszeit wie 24 Stunden erreichte. Wenn die Reaktionstemperatur 0° C betrug
(Bedingung III). nahm die durchschnittliche Anzahl der gespaltenen Disulfidbindungen noch weiter ab. Jedoch in
Abwesenheit von Natriumtetrathionat (Bedingung V) konnte die Spaltung der Disulfidbindungen nicht glatt
fortschreiten. Wenn hingegen Harnstoff zu dem Reaktionssystem zugegeben wurde (Bedingung II), nahm die
durchschnittliche Anzahl der gespaltenen Disulfidbindungen nach der Harnstoffzugabe rasch zu.
Vergleich der Verschlechterung der physikalischen Eigenschaften, wenn Na2S4O0 oder Cu"" als Oxidationsmittel
verwendet wurden.
Bedingung I
Zu 2,0 g des vorstehend angegebenen Humanimmungiobuiins Π wurden i,42 g Na2SOi und Ο,βό g
Na:S,O„ ■ 2H2O. 0,1 m-Tris-HCl (pH 8,2) zugesetzt, um
ein Gemisch von 200 ml zu erhalten, welches dann bei einer Anfangstemperatur von 45° C umgesetzt wurde.
Unmittelbar nach Beginn der Reaktion und bei 30 Minuten, 1 Stunde. 2 Stunden und 4 Stunden danach wurden
jeweils 15 ml der Reaktionsflüssigkeit als Probe genommen. Unmittelbar anschließend an die fünfte Probenähme
wurde eine lOrn-Hamstofflösung zu dem Rest der
Reaktionsflüssigkeit zugegeben, um die Harnstoffkonzentration darin auf 4m zu bringen, und die Reaktion
wurde fortgesetzt. Nach 5 und 6 Stunden der Reaktion (bzw. 1 und 2 Stunden nach der Harnstoffzugabe) wurden
jeweils 22,5 ml der Reaktionsflüssigkeit als Probe genommen und hierzu 22,5 ml einer eisgekühlten gesättigten
Ammoniumsulfatlösung zugegeben, worauf 30 Minuten unter Kühlung mit Eis stehengelassen wurde.
ZD OU l3D
Der erhaltene Niederschlag wurde zentrifugal abgetrennt, mit 50'Uger gesättigter Ammoniumsulfatlösung gewaschen
und während 24 Stunden gegen gepufferte Salzlösung von pH 7,4 durch ein Visking-Rohr dialysieri. Nach
der Dialyse wurden Proben in der jeweilig erforderlichen Menge für bestimmte Analysen genommen, welche mit
gepufferter Salzlösung von pH 7,4, die 2.5'ί, Glycin enthielt,
verdünnt und analysiert wurden
Bedingung H
Die Reaktion und die Behandlung gemäß Bedingung 1 ■wurden wiederholt, wobei jedoch Na2S4O,, ■ 2H2O durch
50 mg CuSO4 ■ 5H2O ersetzt wurde, und die Reaktion
wurde am Ende der 4. Stunde beendet.
Die dabei erhaltenen Lösungen der verschiedenen Humanimmunglobulin-Derivate wurden den folgenden
Testen und Bestimmungen unterzogen.
(a) Beziehung von Reaktionszeit und Anzahl der -S-SO.-Gruppen:
Die Anzahl der -S-SOj-Gruppen in den mit Tetrathionat
(Na2S4Ot 2H2O) oxidierten Proben sind in der F i g. 1
durch »O« zusammen mil den entsprechenden Werten, die unter den Bedingungen I und II von Beispiel 1 erhalten
wurden, aufgetragen. Die Werte der anderen mil Cu" oxidierten Proben, die in identischer Weise mil der
Bedingung I von Beispiel 1 umgesetzt und behandelt wurden, wobei jedoch Na2S4O6 · 2H2O durch 50 mg
CuSO4 ■ 5H2O ersetzt wurde, sind in Fig. 1 mit schwarzen
Punkten »·« aufgetragen.
(b) Beziehung der Reaktionszeit zur Antlkomplementaktivität:
Die Antikomplemeniaktivitäten der durch Oxidation mit Na2S4O6 ■ 2H2O unter der Bedingung 1 von Beispiel 2
erhaltenen Proben, bestimmt nach dem bereits angegebenen Verfahren, sind in Fig. 2 aufgetragen. Auch die
Antikomplementaktivltäten der mit Cu" unter der
Bedingung II oxidierten Proben sind aus Fig. 2 ersichtlich.
Es ergibt sich aus Fi g. 2. daß die Antikomplementaktivitäten
sämtlicher Proben auf nicht höher als 30% nach einer Reaktion von 30 Minuten verringert waren.
(c) Beziehung der Reaktionszeit zum Antidiphiherie-Titcr:
Die gleichen vorstehend unter (b) angewandten Proben wurden 3mal hinsichtlich des Antidipht'nerie-Titers nach
dem bereits angegebenen Verfahren untersucht. Die Abweichung und die Mittelwerte ergeben sich aus
Fig. 3. Aus der graphischen Darstellung ist ersichtlich, daß die mit Cu" oxidierten Proben einen bereits nicht
höher als 0,3 IE liegenden Titer nach einer Reaktion von 30 Minuten zeigen.
(d) Beziehung der Reaktionszeit zur optischen Drehung Die für die Antikompiementaküviiälsbesiinimungcn
nach (b) vorstehend verwendeten Proben (Proteinkonzentration 2,5%) wurden hinsichtlich der optischen Drehung
untersucht, wobei die Ergebnisse in Fig. 4 gezeigt sind. Aus den gezeigten Werten ergibt es sich, daß die
Anwesenheit von Kupfer(II)ionen im Reaktionssystem eine fortschreitende Denaturierung während der Reaktion
verursacht, und daß die Anwesenheit von Harnstoff die Denaturierung begünstigt, wie sich durch die erhebliche
Zunahme der optischen Drehung zeigt.
Die optische Drehung wurde dabei bei 25° C unter Anwendung einer 1-cm-Zelle bestimmt.
e) Beziehung der Reaktionszeit zur Trübung nach der Wärmebehandlung:
Die gleichen für die Antikomplementaktivitälsbestimmung
gemäß (b) angewandten Proben wurden bei einer Konzentration von 2,5% In Luft während 4 Stunden bei
5OC C wärmebehandelt, wobei die In Fig. 5 aufgeführten
Ergebnisse (optische Dichte OD) erhalten wurden. Wie sich aus Fig. 5 ergibt, verursacht die Anwesenheit von
bereits einer sehr geringen Menge an KupferUD-ionen eine Verschlechterung der Wärmestabilität und begünstigt
die Neigung zur Aggregation.
(O Beziehung der Reaktionszeit zum Kupfergehall:
Die gleichen für die AntlkomplementakUvitätsbestimmung
gemäß (b) angewandten Proben wurden auf ihren KupferdDionengehalt durch Atomabsorptionsanalyse
untersucht, wobei die Ergebnisse in Fig. 6 aufgeführt sind. Aus den Werten zeigt es sich, daß, falls Kupfer (II)-ionen
angewandt werden, selbst durch Wäsche und Dialyse der Probe der KupferdDionengehalt nicht entternl
werden kann.
(g) Trennung der schweren Kelten von den leichten Ketten:
Die gleiche Probe, wie sie nach 2 Stunden Reaktion unter Bedingung 1 von Beispiel 2 erhalten wurde, wurde
während 24 Stunden mit ln-Propionsäure mit einem Gehalt von 6m-Harnstoff dialysiert und einer Säulenchromatographie
mit Sephadex G 200 (1,5 cm Durchmesser χ 80 cm), das mit der angegebenen wäßrigen Lösung
ins Gleichgewicht gesetzt worden war, unterzogen, wobei die in Fig. 7 aufgeführten Ergebnisse erhalten wurden.
Die erste Spitze von links der Zeichnung bezeichnet nicht gelrennte H2L2-Ketten, die zweite Spitze bezeichnet
Η-Ketten und die dritie Spitze bezeichnet L-Ketten. Die
Ergebnisse belegen, daß die Probe in Η-Ketten und L-Ketten getrennt war.
Bei einer Zusammenfassung der in den Fig. 1 bis 7 aufgeführten Ergebnisse werden die nachsiehenden Folgerungen
erhalten:
(1) Wie sich aus den Ergebnissen der Versuche unter Bedingung I in Beispiel 1 ergibt, beträgt, falls das Verfahren
in Gegenwart von Tetrathlonat- und Sulfitionen durchgeführt wird, bei jeder Reaktionsdauer im Bereich
von 1 bis 4 Stunden die durchschnittliche Anzahl der gespaltenen Disulfidbindungen etwa 4,5 und die dabei
gebildeten Schwefelatome sind S-suifoniert (durchschnittliche
Anzahl der S-Sulfonatgruppen etwa 9), so daß das S-sulfonierte Immunglobulin erhalten wird
(Fig. 1), welches in Η-Ketten und L-Ketten beispielsweise
mittels Säulenchromatographie mit Sephadex G 200 (Fig. 7) trennbar ist und eine praktisch identische
optische Drehung zu derjenigen des nativen Humanimmunglobulins hat (Fig. 4).
Aufgrund der vorstehenden Ergebnisse kann für das neue Kuffianimmunglubuiin-Dcrivat mit Sicherheit
" angenommen werden, daß es praktisch durch Spaltung
lediglich der Interkettendisulfidbindungen des nativen Humanimmunglobulins und S-Sulfonierung der gespaltenen
Schwefelatome erhalten wurde, und zwar im Hinblick auf die Tatsache, daß die Anzahl der Interkettendisulfidbindungen
des nativen Humanimmunglobulins durchschnittlich 4,5 beträgt.
Dieses Humanimmunglobulin-Derivat hat eine auf nicht höher als 10% verringerte Antikomplementaktivität,
d. h. eine weit niedrigere als diejenige des nativen Humanimmunglobulins (F i g. 2), zeigt jedoch einen
nicht merklich schlechteren Antidiphtherie-Titer gegenüber nativem Humanimmunglobulin, wie sich durch die
nahezu äauivalente Antlgenbindungsaktivität zeigt. Wie
aus F i g. 3 ersichtlich, behält bei einer Konzentration von 10 Gew.-% das Humanimmunglebulin-Derlvat eine Antigenbindungsaktlvität
von mindestens 1,0 IE/ml bei.
(2) Die durch Spalt".'ng von weniger oder mehr als durchschnittlich 4,5 der Disulfidbindungen des natlven
Humanimmunglobulins, beispielsweise durchschnittlich nicht weniger als 3 oder bis hinauf zu 5, und S-Sulfonierung
der Schwefelatome erhaltenen S-sulfonlerteri
Immunglobulin-Derivate zeigen eine etwas niedrigere Verringerung ihrer Antikomplementaktlvitäten und eine
schlechtere Antlgenbindungsaktivität im Vergleich zu den bevorzugten Immunglobulln-Derlvaten, die vorstehend
unter (1) angegeben sind (Fig. 2 und 3), zeigen jedoch eine noch merklich verbesserte Antikomplementaktivität
gegenüber derjenigen von natlvem Humanimmunglobulin.
(3) Wenn hingegen das Tetrathionation als Oxidationsmittel durch das KupferdDion ersetzt wird, enthalten
die sich ergebenden Humanimmunglobulln-Derivate KupferdDionen, wenn auch nur In sehr geringen Konzentrationen,
die jedoch mit Zunahme der Reaktionszeit erhöht werden (Fig. 6). Auch die Anzahl der gespaltenen
Disulfidbindungen des natlven Humanimmunglobulins nehmen bei einer Verlängerung der Reaktionszelt zu
(Fig. 1). und infolgedessen ist es schwierig, die gewünschten Humanimmunglobulin-Derlvate durch
Spaltung von durchschnittlich praktisch 4,5 Disulfidbindungen des nativen Humanlmmunglobllns in stabiler
Weise herzustellen.
Darüber hinaus zeigen die unter Anwendung von KupferdDionen erhaltenen Humanimmunglobulin-Derivale
eine verringert!. Antikomplementaktlvität (Fig. 2), jedoch ist auch gleichzeitig Ihr Antldlphtherle-Titer
beträchtlich gesenkt im Vergleich zu demjenigen des natlven Humanimmunglobulins. Somit ist auch ihre
Antlgenbindungsaktivität äußerst verringert (Flg. 3). Die
Humanimmunglobulin-Derlvate zeigen wiederum, falls die Reaktionszeit 1 Stunde überschreitet, unterschiedliche
optische Drehungen gegenüber derjenigen des natlven Humanimmunglobulins, was belegt, daß Strukturänderungen
Im Protein aufgetreten sind.
(4) Ähnliche Änderungen der optischen Drehungen sind gleichfalls bei Humanlmrnunglobulln-Derivaten
feststellbar, welche nach dem vorliegenden Verfahren erhalten wurden, wobei jedoch Harnstoff im Reaktionsverlauf zugegeben wurde. Aus diesem Grund Ist auch die
Abwesenheit von Harnstoff, Guanidin und dgl. Im Reaktionssystem erwünscht.
Beispiel 3
Selektive Spaltung der Interkettendlsulfldblndungen
Selektive Spaltung der Interkettendlsulfldblndungen
2 ml einer wäßrigen Lösung mit einem Gehalt von 20 mg Humanlmmunglobulin 1, 80 mg 15S-Na2SO1* (8,22
χ 10"dpm/Mol) und 40 mg Na2S4O,, ■ 2H2O wurden auf
einen pH von 7,2 mit AcOH eingestellt und bei 39° C wahrend 2 Stunden umgesetzt. Anschließend wurde die
Reaktionsflüssigkeit gegen 5 I Wasser während 24 Stunden dialyslert. Dann wurden Harnstoff und Propionsäure
langsam zu dem System bis zu Endkonzentratlonen von 4m bzw. In zugefügt. Vor der Einbringung in die Chromaiogruphicsäule
wurde als Probe 0,1 ml Lösung abgenommen, deren Werte auf der linken Seite tier Ordinate
in Fig. 8 angegeben .sind. Der Rest des Systems wurde
der Säulenchromalographle unter Anwendung von Sephadex G 200 (1,5m Durchmesser χ 100 cm), welche
mil ln-Proplonsäure mit einem Gehalt von 4m-Harnstoff
ins Gleichgewicht gesetzt worden war. unterworfen.
Die Radioaktivität der Proben wurde durch OD28O jeder
Fraktion und mit dem Flüsslgkeltssclntlllationszählgerät
gemessen; die Ergebnisse sind In Fig. 8 enthalten.
Fraktionierung der schweren Ketten
und leichten Ketten
und leichten Ketten
Zu einer wäßrigen Lösung mit einem Gehalt von iOOmg Human-y-Globulin-II wurden 0,4 g NaiSOj und
0,2 g Na2S4O6 · 2H2O zugesetzt und der pH-Wert des
Systems wurde auf 9,0 mit In-HCl eingestellt, worauf während 48 Stunden bei Raumtemperatur umgesetzt
wurde. Nach der Umsetzung wurde eir.e kleine Menge des im System gebildeten unlöslichen Materials zentrifugal
entfernt. Die ReaktionsflOssigkeit wurde dann unter Anwendung eines Vlsking-Rchres gegen 2,5 1 Wasser bei
5° C während 15 Stunden dialyslert und weiterhin gegen 2,5 I einer wäßrigen Lösung von ln-Proplonsäure bei 5° C
während 28 Stunden dialysiert.
Das Dialysat wurde der Säulenchromatographie unter Anwendung von Sephadex G 7:5 (3,5 cm Durchmesser χ
111cm), die mit 1 n·Propionsäure ins Gleichgewicht
gesetzt war, ur srzogen, und dabei wurden die Polvpcptldketten
fraktioniert. Wie aus der in Flg. 9 gezeigten graphischen Darstellung erslchtllich, waren drei Spitzen
feststellbar, welche in der Reihenfolge des größeren Molekulargewichtes als unfraktlonlertes S-sulfoniertes
Immunglobulin, S-sulfonlerte Η-Ketten und S-sulfonierte
L-Ketten Identifiziert wurden. Die Identifizierung wurde durch Immunologische Maßnahmen, beispielsweise dem
Ouchterlony-Vcrfahren und der Immuno-Elektrophorese,
sowie durch chemische Analyse, wie Aminosäureanalyse. Hexosegehaltbestimmung und dgl. durchgeführt.
Aus den in den Fi g. 8 und 9 aufgeführten Werten lassen sich die nachstehenden Folgerungen ableiten:
(1) Da die erste Spitze als unfraktioniertes S-sulfoniertes
Immunglobulin, die zweite Spitze als S-sulfonlertc H-Ketten
und die dritte Spitze als S-sulfonierte L-Kelten aufgrund Immunologischer und chemischer Methoden
entsprechend Fig. 9 von links nach rechts Identifizier!
wurden. Ist es logisch zu folgern, daß in gleicher Weise
die drei Spitzen In der Fig. 8 von links nach rechts zu
dem unfraktlonicrten S-sulfonicxten Immunglobulin, S-sulfonierten
Η-Kelten und S-sulfonlcrtrn L-Kettcn zuzuordnen
sind. Die Unterschiede zwischen den Chromatographiemustern werden durch die Anwesenheit vor
Harnstoff im ersteren Reaktionssystem verursacht.
(2) Gemäß Fi g. 8 wurde aus der Menge des Protein;
In den die dritte Spitze bildenden L-Ketten die molare Konzentration berechnet und aus der molaren Konzentration
und dem Radioakvivltätswert wurde festgestellt daß die die dritte Spitze bildenden L-Ketten 1,0 -S-SO, *·
Gruppen enthielten. In der gleichen Welse wurden die
Anzahl der -S-SO^-üruppen in den Η-Ketten der zwei
ten Spitze zu 3.4. diejenigen im unfraktionlerten S-sulfo
nlerten Immunglobulin zu 8,8 und diejenigen In den·
Gemisch vor der Einbringung in die Chromatographiesäule
zu 8,6 berechnet. Wie bereits erläutert. Ist eine Di
sulfidbindung zur Verbindung der L-Kette und der 11 Kelte vorhanden, während durchschnittlich 2.5 Disulfidbindungen
/wischen /we! ll-keiten vorhanden sind
Infolgedessen enthalt das native Hiimanlmmunglobulir
b5 durchschnittlich 4.5 Interkcttentlsulfidblndungcn.
(3) Nach dem Chromatographiemuster der Flg. 8 is' der (jriißic fei! des S-sulfonierten Immunglobulins. wcf
chcs durchschnittlich 8.6 -S--SO."-Gruppen einhalt, ir
Η-Ketten und L-Ketten auftrennbar. Daraus ist ersichtlich,
daß die Interkeitendlsulfidblndungen selektiv
gespalten sind, während die Intrakettendisulfldbindungen praktisch unversehrt geblieben sind.
Beispiel 5 Ausführungsformen der Reaktionsbedingungen
133 ml Human-y-globulin 1 wurden in 1667 ml eines
O,06m-Phosphatpuffers (pH 8,2) mit einem Gehalt von 2,5% Glycin gelöst. Zu der Lösung wurden 7,0 g Na2SO3,
gelöst in 100 ml des gleichen Puffers, und 4,4 g Na2S4O6 · 2H2O, gelöst in 100 ml des gleichen Puffers,
zugesetzt und bei 45° C während 3 Stunden umgesetzt. Die Reaktionsflüssigkeit wurde während 6 Stunden
gegen 20 Liter Puffersalzlösung, gebildet aus Natriumsalz, unter Anwendung eines Dow Chemical-Bechers,
Ultrafilter b/HFU-1, dialysiert. Die Außenflüssigkeit der Dialyse wurde alle 2 Stunden ausgetauscht. Das Dialysat
wurde auf ein Volumen von 180 ml durch das gleiche Filter konzentriert und hierzu wurden 50 g Glycin zugesetzt.
Die Lösung wurde steril durch eine 0,25 μιη-Membran
filtriert, in 10 ml-Ampullen zu jeweils 5,0 ml gegossen
und lyophilisieri. Die Antikomplementaktivitäi CHS0 der
sterilen Lösung bei 50%lger Konzentration betrug 4,3%.
Anwendungsbeispiel 1
Vergleich der Antikörperaktivitäten gegenüber Antlgenen
In Versuchen unter Anwendung von Na2SiO6 oder
Cu" als Oxidationsmittel
Bedingung I
Zu 67 ml Human-y-globulln I wurden 7,1g Na2SO3
und 0,43 g Na2S4O6-2H2O sowie eine O.lm-Tris-HCl-Pufferlösursg
mit einem Gehalt von 2,5% Glycin zu einem Gesamtvolumen von 3,0 1 zugesetzt. Nach 3 Stunden
Umsetzung bei 45° C wurde die Reaktionsflüssigkeit unter Anwendung eines Dow Chemical-Bechers, Ultra-Filter
b/HFU-1, dialysiert und das Dialysai auf ein Volumen von 200 ml konzentriert, durch einen Seitz-0,25 μίτι-Filter
steril filtriert, unter Zusatz von 2,5 g Glycin lyophillsiert und mit Wasser auf eine 5,0%ige Lösung verdünnt.
Die Antikörperaktivität der Probelösung ergibt slrh aus
Tabelle II.
Bedingung II
Die Reaktion und die Behandlungen unter der Bedingung
I wurden wiederholt, wobei jedoch Reaktionstemperatur und Reaktionszeit auf 25° C bzw. 24 Stunden
geändert wurden.
Bedingung HI
Reaktion und Behandlung unter der Bedingung I wurde wiederholt, wobei jedoch Na2S4O6 ■ 2H2O durch
0,16 g CuSO4 ■ 5H2O ersetzt wurde.
Die unter den vorstehenden Bedingungen 1 bis III
erhaltenen Lösungen der Humanimmunglobulin-Derivate
wurden hinsichtlich Antikörperaktivitäten gegenüber verschiedenen Antigenen uniersucht, wobei die
Ergebnisse in Tabelle II aufgebührt sind.
10
15
Antikörperaktivitäten für verschiedene Antigene
Reaktionsbedingung
Antigen
Diphtherie (Einheiten/ml) Masern
(Einhcitcn/ml)
(Einhcitcn/ml)
Röieln
(relativ)
(relativ)
Mumps
(relativ)
(relativ)
Intakt 0,8
I (Na2S4O6, 45° C - 3 Std.) 0,8
II (Na2S4O,, 25° C- 24 Std.) -
III (Cu+\ 45° C- 3 Std.) <0,l
6,7
5,0
4,4
<2
171
170
170
Aus den Werten der vorstehenden Tabelle 11 lassen sich nachstehende Folgerungen ableiten:
(1) Wenn Tetrathionat verwendet wurde (Bedingung I),
war der Diphlherle-Titer des S-sulionlerten Immunglobulins
praktisch äqulvplent mit demjenigen des natlven Humanlmmunglobullns, während, wenn Kupfer-(Il)ionen
verwendet wurden, (Bedingung III), die
Immunglobullnderlvate praktisch keine Aktivität zeigten.
(2) Hinsichtlich des Titers für Masern behielt das S-sulfonierte Immunglobulin, welches mit Tetrathionat
oxidiert worden war (Bedingung I und II), mehr als 60% desjenigen des natlven Humanimmunglobullns bei. während
das mit Kupfer!II(ionen (Bedingung III) oxidierte
einen Aktiviiätsabfall auf weniger als 30% zeigte.
Hieraus ist ersichtlich, daß hei Verwendung von Kupfer!
IDionen die Verringerung der Antikörperaktivität größer isl als bei Verwendung von Tetrathionat.
50 Anwendungsbeispiel 2
Antikomplementtest in vivo des S-sulfonicrten Humanlmmunglobullns
In gleicher Welse wie bei Bedingung 1 von Anwendungsbeispiel
1 wurde S-sulfoniertes Humanimmunglobulln erhalten.
3 ml der 5iygcn. gepufferten Salzlösung mit einem
Gehalt von 2,5% Glycin, pH 7,4, 3 ml der gepufferten Salzlösung allein als Kontrolle und 1 ml eines 15%igen
unbehandelten Humanlmmunglobulin I in gepufferter Salzlösung mit einem Gehalt von 2,5% Glycin, ebenfalls
als Kontrolle, wurden intravenös an weibliche Meerschweinchen mit einem Körpergewicht von 200 bis 300 g
verabreicht und die Serumkomplcmentwerte der Testkörh5
per mit den Seren von jeweils 1,0 ml bestimmt, die jeweils durch Cardlo-Punktur in regelmäßigen Abständen
abgenommen wurden.
Die Ergebnisse sind in Fi g. 10 aufgeführt. Aus Fi g. 10
25
ist ersichtlich, daß ein abrupter Abfall des Serumkomplementwertes
in den Tesikörpern nach der intravenösen
injektion von intaktem Humanimmunglobulin beobachtet wurde, der bei der gleichen Verabreichung von S-sulfoniertem
Humanimmunglobulin Null betrug. Auch wurde ein gelegentliches Zittern bei den Meerschweinchen
nach der Injektion des ersteren beobachtet, das andererseits bei Meerschweinchen nicht auftrat, an die
das S-sulfonlerte Humanimmunglobulin intravenös injiziert
war. Aus diesem Sachverhalt läßt sich mit Sicherhell erwarten, daß die Humanimmunglobuün-Derivate
gemäß der Erfindung auch in vivo frei von ungünstigen Reaktionen sind.
Anwendungsbeispiel 3
Beständigkeit von S-sulfonierten Kaninchen-immunglobulin
und Rückbildung der Disulfidbindungen in vivo
(a) Herstellung von Kaninchen-Anti-BSA-DNP-Anükörper:
Rinderserumalbumin (BSA) wurde mit Dinitrofluorphcnol
zur Bildung einer Verbindung umgesetzt, welche nachfolgend mit der Abkürzung BSA-DNP bezeichnet
wird. BSA-DNP wurde an Kaninchen (Species New
Zealand White, weiblich) an den Fußpolstern zusammen mit vollständigem Adjuvans nach Freund Injiziert und
immunisiert. Am 30. Tag nach der Injektion wurden die
Kaninchen aus der Corotidartcrie ausgeblutet. Das dabei
erhaltene Aniiscrum wurde in an sich bekannter Weise
nach dem Ausfallungsverfahren mit 45'v,iger gesättigter Ammonlumsulfatlösung behandelt und Kaninchen-Anti-BSA-DNI'-Immunglobulin
wurde erhalten.
(b) Herstellung der Proben:
Bedingung 1
Das Anti-BSA-DNP-lmmunglohulin wurde bei 37'C
während 24 Stunden zusammen mil I Gew.-'*, Pepsin
bezogen auf Immunglobulin gemäß dem A. Nisonoll-Verrahrcn (Arch. Biochm. Biophys.. 89, Seite 230. I960)
hydrolysiert. Das Hydrolysat wurde der Säulcnchromatographie
mit Sephadex G 150 unterworfen und das F (ab')2-Fragment wurde erhalten.
Bedingung 2
250 ml des Anti-BSA-DNP-lmmunglobulins, 180 mg
Nn2SO, und 79 mg Na2S4O,, · 2H2O wurden in 25 ml
O.lm-Tris-HCI mit einem Gehalt von 2,5% Glycin (pH
8,2) gelöst und bei 37° C während 4 Stunden umgesetz.t. Die Reaktionsflüssigkeit wurde während 24 Stunden
gegen gepufferte Salzlösung (pH 7,4) dialysiert und ergab S-sulfoniertes Kaninchen-Immunglobulin.
Bedingung 3
Das vorstehend aufgeführte BSA-DNP-lmmunglobulin
wurde als solches verwendet.
35
40
45
50
55 Tabelle 111
Verblichene Radioa
Verblichene Radioa
(c) Bestimmung des Umwandlungsausmaßes und der Haltbarkeit
Die in der vorstehenden Welse hergestellten Proben wurden jeweils zu Lösungen mit einer Konzentralion von
5".· verarbeitet.
Die Probelösungcn wurden intravenös an Kaninchen (Species New Zealand White ': Probe 1 an drei Kanin- Μ
dien. Pp.be 2 an drei Kaninchen und Probe 3 an zwei
Kaninchen) mit einer Dosierung von etwa 3 ml injiziert. Pie Versuchstiere wurden In bestimmten Zeitabstiinden 15 Minuten
ausgeblutet und ihr Plasma wurde extrahiert. Die Anti-BSA-DNP-Aktivität im Plasma wurde durch passive
Haem-Agglutinationsreaklion bestimmt (T. Matsuhashi,
Chemistry & Biology, 9, 396, 1971), wobei BSA-DNP auf roten Blutzellen der Schafe unter Anwendung von Glutaraldehyd
fixiert wurde und das Mikrotiterverfahren angewandt wurde, wobei die in F i g. 11 aufgeführten Ergebnisse
erhalten wurden.
Wie sich klar aus Fig. 11 ergibt, ist das Umwandlungsausmaß
in vivo äußerst kurz für das handelsübliche F(ab')2, was eine kurze Dauer der pharmazeutischen
Wirksamkeit anzeigt. Im Gegensatz hierzu zeigt das S-sulfonierte Immunglobulin praktisch die gleiche Halbwertszeit
wie diejenige des nativen Humanimmunglobulins, woraus sich eine beständige pharmazeutische Wirksamkeit
ergibt.
(d) Bestimmung der hämolytischen Aktivität der Antikörper
Das angegebene native Anti-BSA-DNP-Immunglobulin
wurde intravenös an Kaninchen injiziert und deren Plasma IO Minuten nach der Injektion gesammelt, welches
auf das lOOfachc Volumen verdünnt wurde und mit Meerschweinchenkomplement und roten Blutzellen der
Schafe, aufweiche BSA-DNP durch Gerbsäure adsorbiert
worden war, bei 37° C während 1 Stunde umgesetzt.
Der intakte Antikörper gemäß Bedingung 3 verursachte eine IOO%ige Hämolyse. während F(ab')2 gemäß
Bedingung 1 und die S-sulfonierte Probe gemäß Bedingung 2 keine hämolyiischc Aktivität zeigten.
Von dem aus den Kaninchen 24 Stunden nach der Injektion genommenen Plasma verursacht das Produkt
unter Bedingung 2 bei dem gleichen Test, wie vorstehend angegeben, eine 100%ige Hämolyse.
Diese Erscheinung ist vermutlich auf die Rückwandlung des S-sulfonierten Immunglobulins In natives
Humanimmunglobulin in vivo zurückzuführen, d. h. die Reduktion von -S-SO1 in -SH und die Wiederbildung
der Disulfidbindungen.
(e) Bestimmung der Verringerung der Markierungskonzcntration
in vivo:
30 mg Kaninchen-Immunglobulin. 21 mg '5S-Na2SOi
und 13 mg Na2S1O1, ■ 21I2O wurden in 3 ml O.lm-Tris-HCI
mit einem Gehalt von 2.5% Glyc'n (pH 8.2) gelöst
und bei 45 C während 3 Stunden umgesetzt. Die Reaktionsflüssigkeit
wurde während 24 Stunden gegen gepufferte Salzlösung (pH 7.4) dialysiert und auf diese Weise
wurde das "S-markiene S-sulfoniertc Kaninchen-Immunglobulin
hergestellt.
Die vorstehende, aul eine 51JgC Konzentration verdünnte
Probe wurde intravenös an zwei Kaninchen (New Zealand White, ■) mit jeweils 1.5 ml injiziert und das
Kaninchenplasma in bestimmten Zeitabständen in einer Menge von 0.5 ml je Kaninchen abgenommen. Die
Radioaktivitäten des Plasmas wurden durch einen Flüsslgkeitsscintillationszähler
gemessen, wobei die in Tabelle IH aufgeführten Ergebnisse erhalten wurden.
iil im Blut
BIiIlCnInMlInIc-ZCiI nach
der intravenösen Injektion
der intravenösen Injektion
Rcstraduiakliutat im Bin!
Kaninchen Λ Kaninchen Ii
Kaninchen Λ Kaninchen Ii
KlO
100
Fortsetzung
Blutentnahme-Zeit nach | Restradioaktivität im Blut | A Kaninchen B |
der intravenösen Injektion | Kaninchen | 64 % |
3 Stunden | 64 % | 34 % |
7 Stunden | 34 % | 8,0% |
»4 Stunden | 9,5% | 1,0% |
18 Stunden | 2,2% | 0 % |
72 Stunden | 0,7% |
Aus den vorstehenden Werten ergibt es sich, daß die -S-SOj*-Gruppen in dem S-sulfonierten Immunglobulin
im Blut gespalten werden.
Wie sich aus den vorstehenden Beispielen zeigt, ist es möglich, selektiv die Disulfidbindungen. welche die H-Ketten
und die L-Ketten im nativen Immunglobulin verbinden,
zu spalten und die dabei gebildeten Schwefelatome einer S-Sulfonierung zu unterziehen. Die Anzahl
der Spaltung kann weiterhin auf einen durchschnittlichen Bereich von 3 bis 5, etwa 4,5, geregelt werden, was die
durchschnittliche Anzahl der Interkeilendisulfidbindungen von natlvem Humanimmunglobulin ist, und die bei
der Spaltung gebildeten Schwefelatome können S-sulfoniert werden.
Diese neuen Humanimmunglobulin-Derivate gemäß
der Erfindung besitzen eine weit niedrigere Antikomplementaktivität
als natives Humanimmunglobulin, wie sich aus den Beispielen ergibt, und verursachen infolgedessen
weit weniger ungünstige Reaktionen der ar-aphylaktischen Faktoren. Deshalb sind die Derivate nicht nur
intramuskulär injizierbar, sondern auch intravenös. Darüber hinaus zeigen die neuen Humanimmunglobulin-Derivate
gemäß der Erfindung praktisch eine äquivalente Antigenbindungsaktivitäl wie natives Humanimmunglobulin
und besitzen deshalb ausgezeichnete Bindungsaktivitäten gegenüber verschiedenen Antigenen.
Es ist bereits bekannt, Aggregate aus dem durch Fraktionierung hergestellten nativen Humanimmunglobulin
durch Absorption oder Sedimentation mit Aktivkohle oder Polymersubstanzen zu entfernen. Jedoch verursacht
das auf diese Weise behandelte Immunglobulin nicht selten ungünstige Reaktionen beim Empfänger der Injektion.
Darüber hinaus wird eine Rtaggregation des auf
diese Weise behandelten Immunglobulins während der Lagerung beobachtet. Das Produkt ist somit für eine
sicher injizierbare Zusammensetung noch nicht zufriedenstellend (L. A. Hanson & B. G. Johanson; Int. Arch.
Allergy, 31,380, 1967).
Es wurde bereits erwähnt und gezeigt, daß die Humanimmunglobulin-Derivate
gemäß der Erfindung weit weniger ungünstige Reaktionen zeigen und in dieser Hinsicht
ganz ausgezeichnet sind, wozu auf Fig. 2 verwiesen wird.
Die Humanimmunglobulin-Derivate gemäß der Erfinlä dung behalten auch die Antigenbindungaktivität während
eines langen Zeitraumes bei, wie in Anwendungsbeispiel 3 belegt ist. Weiterhin werden die S-Sulfonatgruppen
in den Derivaten in Disulfidbindungen in vivo zurückgewandelt, während die Sulfonatgruppen aus dem
Körper ausgeschieden werden. Somit werden schließlich die Derivate in natives Humanimmungiobulin zurückverwandelt.
Auch aus diesem Grund hat das S-sulfonierte Immunglobulin gemäß der Erfindung ganz augenscheinliche
Vorteile gegenüber den bekannten S-alkylierten Immunglobulinen.
Wie bereits gezeigt, sind die neuen Humanimmunglobulin-Derivate gemäß der Erfindung als pharmazeutisch
wirksame Bestandteile nicht nur für die intramuskuläre Injektion sondern auch für die intravenöse Injektion
geeignet.
Die neuen Immunglobulin-Derivate gemäß der Erfindung ergeben wasserlösliche Zusammensetzungen für
injizierbare Flüssigkeiten, wenn sie mit Löslichmachungsmiueln. wie Glycin. Natriumphosphat, Citrat,
Natriumchlorid und dgl. in geeigneten Konzentrationen vermischt werden. Weiterhin können die Zusammensetzungen
in Wasser bei Konzentrationen von beispielsweise 1 bis 20 Gew.-χ vorzugsweise 2 bis 10 Gew.-",,,
gelöst werden, wobei sich intravenös injizierbare Präpa-"»o
rate ergeben.
Das S-sulfonierte Immunglobulin-Derivat gemäß der
Erfindung ist offensichtlich für die Therapie beim Menschen brauchbar.
Hierzu 7 Blatt Zeichnungen
Claims (3)
1. Humanimmunglobulinderivat, das von oxidierenden Meialllonen, wie KupferOD-ionen, frei 1st, dadurch gekennzeichnet, daß darin durchschnittlich 3 bis 5 der Interkettend'.sulfldbindungen des nativen Humanimmunglobulins vorwiegend gespalten
sind, und die so erzeugten Schwefelatome (S-) S-sulfonien (-S-SO",) sind, und daß es
(Deinen Antidiphterie-Titer, der praktisch gleich
mit demjenigen von nativem Humanimmunglobulin ist, hat,
(2) eine optische Drehung, die praktisch gleich derjenigen von nativem Humanimmunglobulin ist,
hat und
(3) In vivo zu nativem Humanimmunglobulin
zurückgebildet wird.
2. Humanimmunglobulinderivat nach Anspruch ), Jo
dadurch gekennzeichnet, daß durchschnittlich 3 bis 4,5 Interkettendisulfldbindungen des nativen Humanimmunglobulins
Im wesentlichen selektiv gespalten sind und die so erzeugten Schwefelatome S-sulfoniert
sind.
3. Humanimmunglobulinderivat nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß durchschnittlich 4.5
lnterkcttendlsulfidblndungen des nativen Humanimmunglobulins im wesentlichen selektiv gespulten sind
und die so erzeugten Schwefelatome S-sulfoniert sind, so
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JPS5821623A (ja) * | 1981-07-28 | 1983-02-08 | Tetsuzo Sugizaki | 抗原抗体複合体沈着疾患治療剤 |
US4470925A (en) * | 1982-05-05 | 1984-09-11 | E. I. Du Pont De Nemours And Company | Immunoglobulin half-molecules and process for producing hybrid antibodies |
US4479895A (en) * | 1982-05-05 | 1984-10-30 | E. I. Du Pont De Nemours And Company | Immunoglobulin half-molecules and process for producing hybrid antibodies |
CA1194415A (en) * | 1982-05-05 | 1985-10-01 | E. I. Du Pont De Nemours And Company | Immunoglobulin half-molecules and process for producing hybrid antibodies |
US4465670A (en) * | 1982-07-23 | 1984-08-14 | Dainippon Pharmaceutical Co., Ltd. | Method for the treatment of systemic lupus erythematosus and primary glomerulonephritis and agent therefor |
US4877868A (en) * | 1986-03-12 | 1989-10-31 | Neorx Corporation | Radionuclide antibody coupling |
WO1991017440A1 (en) * | 1990-05-07 | 1991-11-14 | Immunomedics, Inc. | Improved method for radiolabeling monovalent antibody fragments |
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Non-Patent Citations (1)
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