DE2440927A1 - Verfahren zur herstellung von aktivierten hb-ag-vaccinen - Google Patents
Verfahren zur herstellung von aktivierten hb-ag-vaccinenInfo
- Publication number
- DE2440927A1 DE2440927A1 DE2440927A DE2440927A DE2440927A1 DE 2440927 A1 DE2440927 A1 DE 2440927A1 DE 2440927 A DE2440927 A DE 2440927A DE 2440927 A DE2440927 A DE 2440927A DE 2440927 A1 DE2440927 A1 DE 2440927A1
- Authority
- DE
- Germany
- Prior art keywords
- solution
- stabilizer
- vaccines
- infectivity
- percent
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K39/12—Viral antigens
- A61K39/29—Hepatitis virus
- A61K39/292—Serum hepatitis virus, hepatitis B virus, e.g. Australia antigen
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K39/12—Viral antigens
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K2039/51—Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
- A61K2039/525—Virus
- A61K2039/5252—Virus inactivated (killed)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2730/00—Reverse transcribing DNA viruses
- C12N2730/00011—Details
- C12N2730/10011—Hepadnaviridae
- C12N2730/10111—Orthohepadnavirus, e.g. hepatitis B virus
- C12N2730/10134—Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Virology (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Mycology (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Immunology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Public Health (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Communicable Diseases (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Medicinal Preparation (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
Description
" Verfahren zur Herstellung von aktivierten HB-Ag-Vaccinen "
Priorität: 28. Dezember 1973, Japan, Nr. 1 648/74
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur'Herstellung von
HB-Ag-Vaccinen (Heptatitis B-Antigen-Vaccinen.). Ferner betrifft die Erfindung die nach diesem Verfahren hergestellten
HB-Ag-Vaccinen.
Es v/ird angenommen, daß HB-Ag ein Virus oder ein virusähnliches
Gebilde ist, das beim Menschen Hepatitis hervorruft. Plasma-HB-Ag
gehört elektrophoretisch zu den α- oder ß-Globulinen und
ist bei einer Plasmafraktionierung nach üblichen Verfahren in den meisten Fraktionen verteilt.
Um die Infektivität von HB-Ag zu beseitigen, wird eine Hitzebehandlung
durchgeführt. Im allgemeinen wird ein Plasmaalbuminpräparat 10 Stunden bei 600C einer Hitzebehandluiig unterworfen,
um nach der Verabreichung an Menschen das Auftreten von
509 827/0784
~ 2 " 244092?
Hepatitis zu verhindern. Bei der Verabreichung derartiger Präparate
läßt sich jedoch die Bildung von HB-Ab (Antikörper zu HB-Ag) im Blut nicht beobachten. Da Gewebekulturen von HB-Ag
bisher nicht erfolgreich durchgeführt werden konnten, stand kein Verfahren zur Herstellung von konzentrierten Vaccinen zur
Verfügung.
In der US-PS 3 735 004 wird die Herstellung einer inaktivierten Vaccine durch 1- bis 3-minütiges Sieden (1 bis 3-minütige Behandlung
bei 98°C) eines von Hepatitispatienten entnommenen verdünnten Serums beschrieben. Durch intramuskuläre Verabfolgung
dieser Vaccine wird das Auftreten von Hepatitis verhindert und auch bei bereits hervorgerufener Hepatitis wird der
Krankheitsverlauf gemildert. Im allgemeinen wird jedoch die antigene Wirkung durch Erhitzen vermindert. Zur besseren
Prophylaxe und Therapie von Hepatitis besteht daher ein Bedarf an inaktivierten Vaccinen mit einer stärkeren antigenen Wirkung
und einer geringeren Infektivität, die in großen Dosen verabfolgt
werden können.
Aufgabe der Erfindung ist es, HB-Ag-Vaccinen mit stark antigener
Wirkung zur Verfügung zu stellen.
Es wurde überraschenderweise festgestellt, daß beim Erhitzen einer HB-Ag enthaltenden wäßrigen Lösung in Gegenwart eines
Monosaccharide, wie Glucose, eines Disaccharids, wie Saccharose,
oder eines Zuckeralkohols, wie Mannit, die antigene Wirkung dieser Lösung deutlich stabilisiert v/erden kann.
509827/0784 8ADORiQlNAL
Gegenstand der Erfindung ist somit ein Verfahren zur Herstellung von inaktivierten HB-Ag-7/accinen, das dadurch gekennzeichnet
ist, daß man eine wäßrige Lösung von menschlichem, HB-Ag enthaltendem Plasmaprotein in Gegenwart eines Monosaccharide,
Disaccharide, Zuckeralkohols oder eines Gemisches dieser Verbindungen als Stabilisator eine ausreichende Z.eit auf 60 bis
1200C erhitzt, daß die. Infektivität des HB-Ag ohne Verlust seiner
antigenen Wirkung verlorengeht, und anschließend den Stabilisator entfernt.
Eine wäßrige Lösung (pH-Wert 5) mit einem Gehalt an menschli- .'
chem Plasmaprotein von 1 Prozent (Gewicht/Volumen) und einem
HB-Ag-Titer von 8x, gemessen durch gekreuzte Immunelektrophorese,
(im folgenden als IES-Verfahren bezeichnet; vgl. Shojiro
Nakamura, Electrophoretic Experimental Method, erschienen bei Bunko-do, (1963), S. 287) wird durch Lösen von α- und ß-Globulinfraktionen
von' menschlichem Plasma in. destilliertem Viasser hergestellt. Ferner wird eine entsprechende Lösung hergestellt,
die zusätzlich 20 Prozent (Gewicht/Volumen) Mannit enthält.
Teile dieser Lösung/T^erden auf Temperaturen von 60 bis 1200C
erhitzt. Die Abhängigkeit des HB-Ag-Titers von der Erhitzungsdauer ist in Tabelle I angegeben.
5OC 3 27/078 4
Temp«; | HB-Ag-Titer vor dem Erhitzen |
1 | (Minuten); | 10 | 30 | . 1 | 3 | (Stund | en) | 24 48 | |
- | - | - | 8x | 8x | Ix | ||||||
8x | - | 3 | 8x ! I |
4x | 4x | I I 2x I |
. 6 | 10 | _ _ | ||
8x | 8x 4x |
- | 4x 4x |
4x ' I I _2x |
IV) IV)
X M |
2x | ! 4x J |
4x j I |
0 | ||
wäßrige Lösung |
8x 8x |
4x | 8x | 2x | 2x | Ix | - | Ix | - | . - — | |
8x | 4x | ! Ax I 4x |
Ix | 0 | 0 | - | Ix | Ix | |||
8x | 4x | - | - | ||||||||
^ratur, 5C) |
- | - | |||||||||
60 | |||||||||||
70 | |||||||||||
80 90 |
|||||||||||
100 | |||||||||||
120 |
Tabelle I - Fortsetzimg
60 | 8x | - | - | - | * | 8x | I | 8x | 8x | Γ | I I I I J |
8x | 8x j j |
4x 4x | |
' 70 | 8x | - | 8x | 8x | 8x | 8x | 8z | I I I |
4x | 4x ! | 2x | ||||
mit Mannit versetzte |
80 | 8x | 8x | 8x | 8x | 8x | I 8x j |
4x | 4x | 4x ; I |
2x | ||||
Lösung | 90 . | 8x | 8x | 8x | 8x | 8x | 4x | 4x | 2x | 2x | O1 | ||||
100 | 8x | 8x | 8x | 8x | I" 4x ! I I |
Ix | Ix , | 0 | |||||||
120 | 8x | .8x | 8x | 4x | 2 χ | Ix | Ix | Q | 0 |
.. 6
Die zu untersuchenden Lösungen wurden nacheinander jeweils auf das doppelte Volumen verdünnt. Als Maß für den HB-Ag-Titer wird,
die maximale Verdünnung der Lösung angegeben, bei der sich HB-Ag mit dem IES-Verfahren noch nachweisen läßt.
"-" bedeutet, daß keine. Messung durchgeführt wurde. Die strichpunktierte
Linie gibt die Grenze für die Erhitzungszeiten an,
innerhalb derer der HB-Ag-Titer kleiner wird als vor dem Erhitzen. Die gestrichelte Linie gibt die Grenze für die
Erhitzungszeiten an, bei der der HB-Ag-Titer um die Hälfte bis
ein Viertel kleiner wird als vor dem Erhitzen.
Aus Tabelle I geht hervor, daß Mannit eine starke Stabilisierung der antigenen Wirkung von HB-Ag hervorruft. Im Fall der
wäßrigen Lösung ohne Mannitzusatz bleibt der vor dem Erhitzen bestehende HB-Ag-Titer nur bei relativ niedrigen Temperaturen
im Bereich von 60 bis 800C erhalten. Selbst bei diesen niedrigen
Temperaturen dürfen die Erhitzungszeiten nur relativ kurz sein, so daß sie als nicht ausreichend zur Beseitigung der
Infektivität anzusehen sind. Beispielsweise ist beim Erhitzen der Lösung auf 60°C die maximal mögliche Erhitzungszeit., bei
der der vor dem Erhitzen vorhandene HB-Ag-Titer erhalten bleibt, 3 Stunden und somit wesentlich kürzer als die bisher zur Beseitigung
der Infektivität notwendige Erhitzungsdauer von 10 Stunden. Durch den erfindungsgemäßen Mannitzusatz können nicht nur'
die Erhitzungszeiten über den ganzen in Tabelle I angegebenen Temperaturbereich unter Beibehaltung des HB-Ag-Titers
ausgedehnt werden, sondern es können auch die maximalen Erhitzungszeiten so' verlängert werden, wie sie zur Beseitigung der
509827/0784
Infektivität notwendig sind, d.h. man kann 10 Stunden auf 600C
bzw. 3 Minuten auf 1000C erhitzen.
Nimmt man im erfindungsgemäßen Verfahren einen Verlust der antigenen Aktivität durch die Hitzebehandlung um die Hälfte in :
Kauf, so läßt sich eine weiter verlängerte Hitzebehandlung durchführen, um eine eventuell hoch vorhandene Infektivität
noch gründlicher zu beseitigen. Die Tatsache, daß nach dem erfindungsgemäßen Verfahren die Hitzebehandlung 48 Stunden bei
60°C oder 1 Stunde bei 100°C durchgeführt werden kann, bedeutet,
daß die dadurch hergestellten inaktivierten Vaceinen in ihrem HB-Ag-Titer
mit herkömmlichen inaktiverten Präparaten oder Vaccinen vergleichbar sind und eine geringere Aktivität als
diese aufweisen,
Die Stabilisierung der antigenen Wirkung von HB-Ag läßt sich
nicht nur durch Mannit erreichen, sondern auch durch Zuckeralkohole,
wie Sorbit und Xylit, Monosaccharide, wie Glucose, Mannose, Galactose und Fructose, und Disaccharide, wie Saccharose,
Maltose und Lactose, sowie durch Gemische der vorgenannten Verbindungen. Diese Stabilisatoren werden in Konzentrationen
von mindestens 5 Prozent (Gewicht/Volumen) vorzugsweise 15 bis
20 Prozent, verwendet.
Im erfindungsgemäßen Verfahren können nicht nur HB-Ag enthaltende menschliche Plasmaproteine verwendet werden, die beim Menschen tatsächlich Hepatitis verursachen, sondern auch alle
anderen Proteine,' in denen sich HB-Ag durch das IES-Verfahren
oder auf radioimmunologischem Wege (im folgenden als RIA-Ver-
509827/0784
2U0927
fahren bezeichnet; vgl. Shige.shi Toyoshima et al., "Pediatric
Clinic"/ nachweisen läßt/
/(Japan) Bd. 24, 1971, S. 3044)/. Es können also Plasma, Serum
und verschiedene, durch übliche Verfahren zur Plasmafraktionierung erhaltene Proteinfraktionen verwendet v/erden.
Wie sich elektrbnenmikroskopisch feststellen läßt, ist HB-Ag
von unterschiedlicher Gestalt und Größe. Ebenso hängt auch die Infektivität in spezifischer Weise von der einzelnen,HB-Ag
enthaltenden Plasmaproteinfraktion ab. Beispielsweise weist eine Fibrinogenfraktion trotz ihres geringen HB-Ag-Gehalts, gemessen
nach dem RIA-Verfahren,eine deutlich höhere Hepatitisinfektivität
auf als andere Plasmaproteinfraktionen. Dies ist vermutlich der Tatsache zuzuschreiben, daß die Fibrinogenfraktion
stark infektiöse Teilchen enthält. Die HB-Ag-Menge in einem Albuminpräparat ist, gemessen nach dem RIA-Verfahren,
zumindest äquivalent der in der Fibrinogenfraktion enthaltenen Menge, jedoch ist ihre Infektivität so gering, daß sie kaum
Hepatitis verursacht, wenn das Präparat einer lOstündigen Hitzebehandlung
bei 600C unterzogen wird. Andererseits ist der
HB-Ag-Gehalt von α- und ß-Globulinfraktionen höher als der der
Albuminfraktion. Demgemäß ist die in aus diesen Fraktionen fraktionierten Transferrin- und Haptoglobinpräparaten festgestellte
HB-Ag-Menge größer als im Albuminpräparat. Diese Transferrin- und Haptoglobinpräparate verursachen jedoch beim
Menschen keine Hepatitis, wenn sie nach einer unter den gleichen. Bedingungen wie beim Albuminpräparat durchgeführten Hitzebehandlung
verabfolgt v/erden. Es'ist daher anzunehmen, daß das in den α- und ß-Globulinfraktionen enthaltene HB-Ag eine
geringe Infektivität aufweist.
509 827/0 7 84
Als Ausgangsmaterialien werden im erfindungsgemäßen Verfahren
α- und ß-Globulinfraktionen, die große Mengen an HB-Ag enthalten
und eine geringe Infektivität aufweisen, besonders bevorzugt. Diese Fraktionen werden zweckmäßigerweise als Unterfraktionen
bei der Gewinnung anderer wertvoller Plasmaproteinfraktionen erhalten. Die im erfindungsgemäßen Verfahren verwendeten
Plasmaproteinfraktionen werden nach herkömmlichen Verfahren zur Fraktionierung von Plasmaprotein gewonnen, beispielsweise
durch Fällung mit Ammoniumsulfat oder durch Fällung mit Äthanol bei niedrigen Temperaturen nach Cohn; vgl. E.J. Cohn,
L.E. Strong, W.L. Hughes, D.J. Mulford, J.N. Ashworth, M. Melin
und H.L. Taylor, Journal of the American Chemical Society, Bd. 68 (1946), S. 459. Beispielsweise werden α- und ß-Globulinfraktionen
als Fraktionen IV und IV-1 gemäß der Cohn1sehen
Fraktionierung oder als Niederschläge bei der Fällung mit Ammoniumsulfat bei 35 bis 50prozentiger Sättigung erhalten.
Falls die wäßrigen Lösungen der Proteinfraktionen trübe sind, können sie zur Erleichterung der weiteren Verarbeitung geklärt
v/erden. Die Klärung wird beispielsweise durch Zentrifugieren oder durch Erhitzen der Lösung auf etwa 600C bei neutralem
pH-Wert und anschließendes Abfiltrieren der Niederschläge durchgeführt.
Beispiele für wäßrige Medien, in denen das erfindungsgemäße Erhitzen
des HB-Ag enthaltenden Ausgangsmaterials in Gegenwart des Stabilisators durchgeführt werden kannf sind Wasser und
physiologisch verträgliche Salzlösungen. Die zu" erhitzende Lösung
weist zweckmäßigerweise einen im wesentlichen neutralen pH-Wert auf und wird in einem pH-Bereich von 5 bis 9» Vorzugs»
. 509827/0784
weise 6,5 bis 7,5 gehalten. Zur Aufrechterhaltung eines gewünschten
pH-Werts wird zweckmäßigerweise ein Puffer verwendet. Als Puffersubstanzen eignen sich anorganische Salze, wie
Phosphate und Carbonate oder organische Salze, wie Acetate, Trisarainomethan-hydroChlorid und Glycin-hydrochlorid.
Wie bereits erwähnt, liegt die Erhitzungsteraperatur im Bereich
von 60 bis 120°C. Die Erhitzungszeiten hängen von der Erhitzungstemperatur
ab. In jedem Fall wird die Erhitzungszeit so
gewählt, daß sie ausreicht, die Infektivität ohne Verlust der antigenen Wirkung,wiedergegeben durch den HB-Ag-Titer, zu beseitigen.
Gemäß dem erfindungsgemäßen Verfahren lassen sich die bisher zur Hitzebehandlung von Albuminfraktionen und a- und
ß-Globulinfraktionen üblichen Hitzebehandlungen von 10 Stunden
bei 6O0C bzw. 3 Minuten bei 1000C auf 48 Stunden bzw. 1 Stunde
ausdehnen. Ebenso lassen sich die Erhitzungszeiten bei anderen Temperaturen verlängern. Wenn von den verschiedenen verlängerten
Erhitzungszeiten bei verschiedenen Temperaturen eine relativ kurze Zeit ausgewählt wird, bei der die Infektivität
aber nicht die antigene Wirkung beseitigt wird, läßt sich eine Vaccine erhalten, die im Bezug auf herkömmliche Vaccine eine
geringere oder höchstens gleich große Infektivität aufweist. Die antigene Wirkung der erfindungsgemäß hergestellten Vaccines
wiedergegeben durch den HB-Ag~Titer, entspricht der vor dem Erhitzen vorhandenen Wirkung. Werden andererseits unter den erfindungsgemäßen
Bedingungen relativ lange Erhitzungszeiten ausgewählt, läßt sich inaktiviertes HB-Ag erhalten, dessen antigene
Wirkung zwar abgenommen hat, dessen Infektivität aber wesentlich gesenkt oder vollkommen beseitigt ist. Durch Einengen
509827/0784
des inaktivierten HB-Ag erhält man Vaccinen, die in großen Dosen verabfolgt werden können.
Nach der Hitzebehandlung wird die Lösung gegebenenfalls durch Filtrieren geklärt und anschließend gegen eine isotonische Lösung, wie isotonische Kochsalzlösung, zur Entfernung von Stabilisator,
Pufiersalz und gebildeten niedermolekularen Substanzen
dialysiert, wonach eine Vaccine erhalten wird. Durch Dialyse unter vermindertem Druck nach einem üblichen Verfahren
läßt sich die Lösung gleichzeitig mit der Entfernung der vorgenannten
Substanzen einengen. Die so erhaltenen Vaccinelösungen
werden auf eine geeignete Konzentration eingestellt und anschließend der Sterilfiltration unterzogen, wodurch an Menschen
verabreichbare Vaccinen erhalten werden.
Die Beispiele erläutern die Erfindung. Die HB-Ag-Titer sind nach dem IES-Verfahren bestimmt.
Aus 1000 ml Sammelpiasrna (HB-Ag-Titer 8x) das aus 28 einzelnen
Plasmaproben mit HB-Ag-Titern von 4x bis 32x besteht, werden die Fraktionen IV-1 und IV-4 nach dem Cohn1sehen Verfahren durch
Fällung mit Äthanol bei niedrigen Temperaturen gewonnen. Das Gemisch wird bei 40C in destilliertem Wasser suspendiert. Die
erhaltene Suspension wird dialysiert und von unlöslichen Bestandteilen befreit. Man erhält 200 ml einer wäßrigen Lösung,
die 1 Stunde auf 600C erhitzt, vom gebildeten Niederschlag befreit
und sodann gegen Phosphatpuffer vom pH-Wert 7,6 dialysiert wird. Man erhält 180 ml Lösung. Diese Lösung wird bis zu
509827/0784
- 12 - 2UQ927
(Gew.
einer Konzentration von 20 Prozent/mit Mannit versetzt und
1 Stunde unter Verwendung eines Ölbads in einem verschlossenen Gefäß auf 1050C erhitzt, um Niederschläge abzuscheiden. Anschließend
wird die Lösung vom Niederschlag abzentrifugiert und sodann unter vermindertem Druck gegen eine isotonische
Kochsalzlösung dialysiert, wobei Mannit entfernt und gleichzeitig die Lösung eingeengt wird. Man erhält 30 ml einer Lösung
mit einem HB-Ag-Titer von 128x. Diese. Lösung ergibt nach Sterilfiltration 25 ml einer injizierbaren Lösung/
100 ml Sammelplasma aus 12 einzelnen Plasmaproben mit einem HB-Ag-Titer \^on 4x werden in 100 ml destilliertem Wasser suspendiert.
Die erhaltene Suspension wird durch Zugabe von 1 η HCl bzw. 1 η NaOH auf den pH-Wert 7,0 eingestellt. .Anschließend
wird zur Ausfällung von Fibrinogen und y-Globulin Ammoniumsulfat bis zum Erreichen von 35 Prozent der Sättigungskonzentration zugesetzt. Nach dem Abzentrifugieren der gebildeten
Niederschläge wird die Ammoniumsulfatkonzentration auf 50 Prozent der Sättigungskonzentration angehoben, und die gebildeten
Niederschläge werden abzentrifugiert. Sodann werden die Niederschläge in 0,06 m Phosphatpuffer vom pH-Wert 7,2 ge-
24 Stunden
löst und/gegen den gleichen Puffer dialysiert. Man erhält
löst und/gegen den gleichen Puffer dialysiert. Man erhält
20 ml Lösung. Diese Lösung wird bis zu einer Konzentration von
(Gew./Vol.)/
20 Prozent/mit Saccharose versetzt und anschließend 10 Minuten auf 1200C erhitzt. Der dabei gebildete Niederschlag wird anschließend abzentrifugiert. Der erhaltene Überstand wird 24 Stunden gegen einen 0,06 m Phosphatpuffer vom pH-Wert 7,2, der 0,14 m an'Natriumchlorid ist, dialysiert. Nach Sterilfil-
20 Prozent/mit Saccharose versetzt und anschließend 10 Minuten auf 1200C erhitzt. Der dabei gebildete Niederschlag wird anschließend abzentrifugiert. Der erhaltene Überstand wird 24 Stunden gegen einen 0,06 m Phosphatpuffer vom pH-Wert 7,2, der 0,14 m an'Natriumchlorid ist, dialysiert. Nach Sterilfil-
50982 7/0784
- 13 tration erhält man 2 ml einer injizierbaren Lösung,
Aus Sammelplasma mit einem HB-Ag-Titer von 8x wird gemäß dem Cohn1sehen Verfahren durch Fällung mit Äthanol bei niedrigen
Temperaturen die Fraktion IV-1 gewonnen. lOLiter einer wäßrigen
Suspension dieser Fraktion werden 48 Stunden gegen Wasser dialysiert und anschließend zur Entfernung der Niederschläge
zentrifugiert. Der Überstand wird 2 Stunden auf 60 C erhitzt. Die dabei gebildeten Niederschläge werden abzentrifugiert. Die
erhaltene Lösung wird bis zu einer Konzentration von 0,05 m
mit dibasischem Natriumphosphat (NapHPO^.12HpO) und anschließend
mit monobasischem Kaliumphosphat (ΚΗρΡΟΛ.2HaO) bis zu einem
pH-Wert von 7,2 versetzt. Die erhaltene, gepufferte Lösung wird bis zu einer Konzentration von 20 Prozent (Gewicht/Volumen)
Glucose versetzt, 10 Stunden auf 800C erhitzt und anschließend
gegen einen 0,06 m Phosphatpuffer, der 0,14 m an Natriumchlorid ist und einen pH-Wert von 7,2 aufweist, dialysiert.
Man erhält 40 ml einer klaren Lösung. Diese Lösung ergibt nach Sterilfiltration eine injizierbare Lösung mit einem
HB-Ag-Titer von 512x.
Beispie 14
Beispiel 3 wird wiederholt, mit der Abänderung, daß die Phosphatpufferlösung anstelle von Glucose mit 15 Prozent
(Gewicht/Volumen) Xylit, Lactose bzw. Mannose versetzt wird. Man erhält Lösungen mit einem HB-Ag-Titer von 128x, 128x bzw;-256x.
- ■ ·
509827/0 7 8 4
Claims (12)
- Patentansp r'ü ehefly Verfahren zur Herstellung von inaktivierten HB-Ag-Vaccinen, dadurch gekennzeichnet, daß man eine wäßrige Lösung von menschlichem, HB-Ag enthaltendem Plasmaprotein in Gegenwart eines Monosaccharids, Disaccharids, Zuckeralkohols oder eines Gemisches dieser Verbindungen als Stabilisator eine ausreichende Zeit auf 60 bis 12O0C erhitzt, daß die Infektivität des HB-Ag ohne Verlust seiner antigenen Wirkung verlorengeht und anschließend den Stabilisator entfernt.
- 2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man als Monosaccharid,Glucose, Mannose, Galactose oder Fructose verwendet.
- 3. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man als Disaccharid Saccharose, Maltose oder Lactose verwendet.
- 4. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man als Zuckeralkohol Mannit, Sorbit oder Xylit verwendet.
- 5. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man als menschliches Plasmaprotein α- und ß-Globulinfraktionen verwendet.
- 6. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man eine Lösung mit einem pH-Wert von etwa 5 bis 9 verwendet.509827/0784
- 7. Verfahren nach Anspruch 6, dadurch gekennzeichnet, daß man eine Lösung mit einem pH-Wert von 6,5 bis 7,5 verwendet.
- 8. Verfahren nach Anspruch 55 dadurch gekennzeichnet, daß man eine Lösung verwendet, deren pH-Wert mit einem Puffer eingestellt ist. ' -
- 9. Verfahren nach Anspruch 7, dadurch gekennzeichnet, daß man eine Lösung verwendet, deren pH-Wert mit einem Phosphatpuffer eingestellt ist.
- 10. Verfahren nach Anspruch .1, dadurch gekennzeichnet, daß man den Stabilisator in einer Konzentration von mindestens 5 Prozent (Gewicht/Volumen) einsetzt.
- 11. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man den Stabilisator in einer Konzentration von 15 bis 20 Prozent (Gewicht/Volumen) einsetzt.
- 12. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man den Stabilisator durch Dialyse entfernt.509827/0784
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP164874A JPS5523253B2 (de) | 1973-12-28 | 1973-12-28 |
Publications (3)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE2440927A1 true DE2440927A1 (de) | 1975-07-03 |
DE2440927B2 DE2440927B2 (de) | 1978-04-20 |
DE2440927C3 DE2440927C3 (de) | 1978-12-07 |
Family
ID=11507324
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE2440927A Expired DE2440927C3 (de) | 1973-12-28 | 1974-08-27 | Injizierbarer inaktivierter Impfstoff gegen Hepatitis B |
Country Status (6)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS5523253B2 (de) |
CA (1) | CA1023663A (de) |
CH (1) | CH611338A5 (de) |
DE (1) | DE2440927C3 (de) |
FR (1) | FR2256247B1 (de) |
GB (1) | GB1442564A (de) |
Families Citing this family (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS591981B2 (ja) * | 1976-08-27 | 1984-01-14 | 株式会社ミドリ十字 | HBs抗体検出用受身赤血球凝集試験用担体の製造方法 |
US4181713A (en) * | 1978-10-30 | 1980-01-01 | Merck & Co., Inc. | Isolation of HBs Ag |
JPS6013718A (ja) * | 1983-07-05 | 1985-01-24 | Chemo Sero Therapeut Res Inst | B型肝炎ワクチン |
JPS6094917A (ja) * | 1983-10-28 | 1985-05-28 | Green Cross Corp:The | B型肝炎感染予防用ワクチンの製造方法 |
NL8401066A (nl) * | 1984-04-04 | 1985-11-01 | Stichting Centraal Lab | Werkwijze ter bereiding van preparaten, die de humorale en cellulaire immuunreaktiviteit vergroten. |
US4639371A (en) * | 1984-10-02 | 1987-01-27 | New York Blood Center, Inc. | Hepatitis B antigenic compositions and vaccines against hepatitis B derived therefrom |
-
1973
- 1973-12-28 JP JP164874A patent/JPS5523253B2/ja not_active Expired
-
1974
- 1974-08-14 CA CA207,018A patent/CA1023663A/en not_active Expired
- 1974-08-15 GB GB3604274A patent/GB1442564A/en not_active Expired
- 1974-08-27 DE DE2440927A patent/DE2440927C3/de not_active Expired
- 1974-08-27 FR FR7429290A patent/FR2256247B1/fr not_active Expired
- 1974-12-10 CH CH1637074A patent/CH611338A5/xx not_active IP Right Cessation
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPS5523253B2 (de) | 1980-06-21 |
CA1023663A (en) | 1978-01-03 |
FR2256247B1 (de) | 1976-12-31 |
DE2440927C3 (de) | 1978-12-07 |
CH611338A5 (en) | 1979-05-31 |
JPS5095420A (de) | 1975-07-29 |
DE2440927B2 (de) | 1978-04-20 |
GB1442564A (en) | 1976-07-14 |
FR2256247A1 (de) | 1975-07-25 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
DE2751717C2 (de) | ||
AT407707B (de) | Hochkonzentriertes immunglobulin-präparat und verfahren zu seiner herstellung | |
DE68907124T3 (de) | Verfahren zum Stabilisieren von menschlichen Albuminlösungen und so erhaltene Lösung. | |
DE69626022T3 (de) | Verfahren zur industriellen herstellung eines japanischen enkephalitis impfstoffes, und so erhaltener impfstoff | |
DE2801123A1 (de) | Verfahren zur herstellung eines intravenoes applizierbaren serumeiweiss- praeparates | |
DE2936047A1 (de) | Verfahren zur herstellung eines intravenoes verabreichbaren antikoerperhaeltigen immunglobulinpraeparates und danach hergestellte praeparate | |
DE3043857A1 (de) | Verfahren zur herstellung von blutgerinnungsfaktoren und danach hergestellte praeparation der faktoren ii und vii | |
DE2827027B2 (de) | Gefriergetrocknetes natives T -globulin-Präparat zur intravenösen Verabreichung | |
EP0659767A1 (de) | Verfahren zur Herstellung eines Konzentrates von Anti-D-Immunoglobulin G und pharmazeutische Zusammensetzung, die dieses enthält | |
DE2734150C3 (de) | Verfahren zur Herstellung von Human-Lysozympräparaten | |
DE2636757C2 (de) | Verfahren zum Aufkonzentrieren und Reinigen des Antihämophiliefaktors | |
EP0085747B2 (de) | Intravenös verabreichbares humanes Immunglobulin und Verfahren zu dessen Herstellung | |
EP0247998A2 (de) | Verfahren zur Inaktivierung von vermehrungsfähigen filtrierbaren Krankheitserregern | |
DE2440927A1 (de) | Verfahren zur herstellung von aktivierten hb-ag-vaccinen | |
DE3152621C2 (de) | ||
DE2703620C2 (de) | Verfahren zur Herstellung eines Konzentrats des Antihämophiliefaktors | |
DE2440926C3 (de) | Injizierbarer inaktivierter Impfstoff gegen Hepatitis B und Verfahren zu seiner Herstellung | |
DE19600939C1 (de) | Verfahren zur Trennung von IgG und IgA | |
DE3813464A1 (de) | Verfahren zur waermebehandlung von fibrinogen | |
DE2515666C3 (de) | Piasminreiche Gammaglobulinfraktion, Verfahren zu deren Herstellung und das Verfahrensprodukt enthaltendes Gammaglobulinpräparat | |
EP0249167B1 (de) | Verfahren zur Herstellung einer pasteurisierten Immunglobulinpraeparation | |
DE2409650C3 (de) | Verwendung wäßriger Lösung von menschlichem Serum-Haptoglobin bei der Bekämpfung von hämolytischen Nierenstörungen | |
DE3005495C2 (de) | Herstellung von Fragmenten von Viren mit Lipidhülle und sie enthaltende Arzneimittelzubereitungen | |
DE4115910C2 (de) | ||
DE2415079B2 (de) | Verfahren zum Isolieren von Albumin aus Blutplasma |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C3 | Grant after two publication steps (3rd publication) |