DE2417291B2 - Verfahren zur Herstellung von a- Galactosidase - Google Patents

Verfahren zur Herstellung von a- Galactosidase

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Description

Die Erfindung bezieht sich auf ein Verfahren zur Herstellung von a-Galactosidase durch Kultivierung eines Mikroorganismus in einem Milieu, welches mindestens einen Zucker enthält, der mindestens eine a-D-Ga!actopyranosy!bindung aufweist.
Es ist allgemein bekannt, daß α-Galactosidase, ein Enzym, welches Galactose enthaltende Oligosaccharide zu hydrolysieren vermag, d. h. Zucker, die mindestens eine a-D-Galactopyranosylbindung enthalten (das sind also blähende Zucker, wie z. B. Stachyose oder Raffinose), eine wichtige industrielle Rolle auf dem Gebiet der Herstellung von Nahrungsmittel auf der Basis von Hülsenfrüchten und bei der Herstellung von Rübenzucker spielen kann.
Von den Hülsenfrüchten werden insbesondere Sojabohnen in großen Mengen zur Ernährung von Vieh verwendet. Außerdem ersetzt es mehr und mehr vollständig oder einen Teil der Nahrungsmittel auf Fleischbasis und Milchprodukte, die für den Menschen bestimmt sind. Die Assimilationsschwierigkeiten, die auf die Anwesenheit von nicht-resorbierbaren Oligosacchai iden zurückgehen, und die Blähungserscheinungen können weitgehend durch eine Behandlung des Ausgangsmaterials, wie z. B. entfettetes Sojamehl, mit Hilfe von enzymatischen Präparaten mikrobiellen Ursprungs, die α-Galactosidase enthalten, beseitigt werden.
Weiterhin wird die Erzeugung von Saccharose aus
Zuckerrüben durch die Anwesenheit von Raffinose gestört, welche die normale Kristallisation von Saccharose inhibiert. Ein bekanntes Verfahren zur Erhöhung der Ausbeute an Saccharose bei Verwendung
'·■ von Zuckerrüben als Ausgangsmaterial besteht darin, den Melassen oder behandelten Rüben a-Galactosidase zuzusetzen, welche die Raffinose in Saccharose und Galactose zersetzt.
Es ist bekannt, daß gewisse Mikroorganismen in
Medien, die ein Galacto-Oligosaccharid, wie z. B. Raffinose oder Lactose, enthalten, gute Erzeuger von a-Galactosidase sind. Für die Kultivierung solcher Mikroorganismen sind verschiedene Kulturmedien bekanntgeworden, die z. B. auf einer Zusammenset-
> zung aus Sojapulver, Reiskleie und Wasser basieren und die an Raffinose angereichert sind.
Aus der US-PS 3 562113 ist es bekannt, zur Erzeugung von a-Galactosidase den Mikroorganismus E. coli subsp. communior ATCC 7009 zu verwenden.
*» Aus der DT-AS 1642581 ist für den gleichen Zweck die Verwendung des Mikroorganismus Mortierella vinacea var Raffinoseverwerter ATCC 20034 zu verwenden. Zwar vermögen diese Mikroorganismen beträchtliche Mengen a-Galactosidase zu erzeugen,
-'> trotzdem läßt die Bildungsgeschwindigkeit zu wünschen übrig. Der Erfindung lag die Aufgabe zugrunde, ein Verfahren zu schaffen, das eine raschere Bildung von a-Galactosidase ermöglicht. Zur Lösung dieser Aufgabe wird das in den vorstehend beschriebenen
«· Ansprüchen beschriebene Verfahren vorgeschlagen.
Wie in der US-PS 3562113 berichtet wird, kann bei dem dort beschriebenen Verfahren eine a-Galactosidaseaktivität von 22250 U/50 ml Kulturmedium
r> erreicht werden. Bei Verwendung des Mikroorganismus Penicillium duponti ATCC 10518 wird unter gleichen Versuchsbedingungen jedoch eine Aktivität von 28000 U/50 ml Kulturmedium erreicht. Noch günstiger fällt ein Vergleich des erfindungsgemäßen
M) Verfahrens mit dem aus der DT-AS 1642581 bekannten Verfahren aus. Hierzu wurden die Mikroorganismen M. vinacea ATCC 20034 und P. duponti ATCC 10518 unter Verwendung von Stachyose als Substrat verglichen. Beim erfindungsgemäßen Ver-
■>> fahren wurde in einer Zeit von 24 st eine Aktivität von 45 000 U/l erreicht, während bei Verwendung des in der DT-AS 1642581 genannten Mikroorganismus erst in 72 st eine Aktivität von nur 1800 U/l erreicht wurde. (IU= 1 μ§ an reduzierenden Gruppen, die
>(» aus einer 0,05 %igen Stachyoselösung bei einem pH von 6,2 in 30 min bei 55° C in Freiheit gesetzt werden.)
Ein besonderer Vorteil des erfindungsgemäßen Verfahrens ist darin zu sehen, daß als Nährmedium
Ϊ5 ein Wasser verwendet werden kann, das beim Bleichen von Gemüse, insbesondere weißen Bohnen, vor der Verarbeitung in Konserven gedient hat. Es hat sich gezeigt, daß die gebildete a-Galactosidase nicht von Invertase begleitet ist, die unglücklicherweise
bo Saccharose von Zuckerrüben abbaut. Außerdem ist auch keine Lipase enthalten, welche den Geschmack und den Geruch von Produkten auf Sojabasis in ungünstiger Weise beeinträchtigen.
Vorzugsweise ist das Kulturmedium ein Bleichwas-
b5 ser von weißen Bohnen, das gegebenenfalls konzentriert ist. Es kann je Liter Wasser 6 bis 20 g Trockenfeststoffe enthalten, die zu 30-40 Gew.% aus
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Gew.% Lipiden und 13-18 Gew.% Asche besteht.
Die Zucker können zu 30-40% aus Stachyose, 40-50% Saccharose, 7-9% Raffinose und 1,5 bis 3,5% reduzierenden Zuckern bestehen.
Der pH des Mediums kann auf einen Wert zwischen 6 und 7 eingestellt werden. Die Fermentation kann unter Rühren während 24 bis 48 Stunden bei einer Temperatur von 40 bis 50° C ausgeführt werden.
Das Enzym wird in den Zellen des Mikroorganismus synthetisiert. Wenn das Mycel, beispielsweise durch Filtration, vom Kulturmedium abgetrennt wird, dann findet man keine extracellular α-Galactosidase im Filtrat. Als enzymatisches Präparat kann man das Mycel selbst oder einen Mycelextrakt gewinnen. Im ersten Fall wird vorteilhafterweise das vom Medium abgetrennte und gewaschene Mycel zerrieben. Im zweiten Fall kann man das Mycel in einem Puffer bei einem pH zwischen 5,5 und 7,5 homogenisieren und zentrifugieren, worauf man den Überstand abtrennt. Die OE-Galactosidaseaktivität des letzteren ist genauso gut wie diejenige des Mycels selbst. Ein kleiner Unterschied kann sich auf Grund gewisser Verluste während der Homogenisation ergeben. Das Mycel wie das Enzym können in einer lyophilisierten Form konserviert werden, wobei ihre Eigenschaften nur gering verschlechtert werden.
Das Verfahren gestattet die Herstellung einer Biomasse, deren Trockengewicht je Liter Kulturbouillon in der Größenordnung von 2 bis 3 g liegt. Wenn man eine o-Galactosidaseaktivitätseinheit (U) als diejenige Menge Enzym definiert, die 1 μg reduzierende Gruppen von einer 0,05%igen Stachyoselösung in 30 Minuten in Freiheit setzt, dann ergibt sich, daß die Aktivität des nicht-homogenisierten Mycels, das durch das erfindungsgemäße Verfahren erhalten wird, 45000 U/g trockenes Mycel erreichen kann und daß die Aktivität des Mycels nach der Homogenisierung 42000 U/g trockenes Mycel erreichen kann. Diese Aktivität eröffnet vorzügliche industrielle Perspektiven. Anwendungsversuche, nämlich die Verwendung des lyophilisierten Enzyms für die Behandlung einer Sojamilch und die Verwendung des lyophilisierten Mycels zum Abbau von Raffinose in einem Zuckerrübensaft haben durchaus vorzügliche Resultate ergeben.
Die vorliegende Erfindung wird nun an Hand der folgenden Beispiele näher erläutert:
Beispiel 1
Ein Bleichwasser von weißen Bohnen (Phaseolus vulgaris) zeigt die folgende Zusammensetzung:
Stachyose 1,0 g/l
Raffinose 0,2 g/l
andere Zucker 1,6 g/l
Gesamtstickstoff 0,4 g/l
Lipide 1,7 g/l
Asche 1,1 g/l
Der pH dieses Wassers wird auf 6,5 eingestellt und in 2 Liter-Flaschen in einer Menge von 500 ml je Flasche abgefüllt. In die Flaschen wird ein Inoculum des Pilzes Penicillium duponti (Talaromyces thermophilus) (ATCC 10518, CBS 23658) eingebracht. Die inoculierten Flaschen werden in einem Schüttler mit 120 Drehbewegungen/min 24 Stunden lang bei 45 ° C bewegt. Die Kulturbouillon wird durch Absaugen auf einer gewöhnlichen Glasfritte abfiltriert. Das Mycel wird in einer Menge von 2,7 g Trockenfeststoffe/I Bouillon erhalten. Ein Versuch an Stachyose ergibt, daß die a-Galactosidaseakiivität des so erhaltenen Mycels 45000 U/g trockenes Mycel beträgt, wobei eine Aktivitätseinheit (U) definiert ist als die Enzymmenge, die in 30 Minuten aus einer 0,05%igen Stachyoselösung 1 μg reduzierende Gruppen in Freiheit setzt.
Beispiel 2
Ein Bleichwasser von weißen Bohnen besitzt die
1(1 folgende Zusammensetzung:
Stachyose 1,2 g/l
Raffinose 0,3 g/l
andere Zucker 2,1 g/l
Gesamtstickstoff 0,4 g/l
|-> Lipide 1,3 g/l
Asche 1,8 g/l
In diesem Wasser wird der Pilz Penicillium duponti
(ATCC 10518) unter den gleichen Bedingungen wie in Beispiel 1 kultiviert. Das während einer 48stündi-
-" gen Kultivierung erhaltene Mycel macht 2,9 g Trokkenfeststoffe je Liter Kultur aus. Nch Lyophilisierung des Mycels zeigt dieses eine an Stachyose getestete Aktivität von 39000 U/g Trockenfeststoffe.
)-, Beispiel 3
Ein Bleichwasser von weißen Bohnen, welches die gleiche Ausgangszusammensetzung wie in Beispiel 2 aufweist, wird einer Konzentrierung unterworfen, während der das Volumen auf die Hälfte verringert
«ι wird. Der Pilz Penicillium duponti (ATCC 10518) wird in diesem Medium kultiviert, welches die doppelte Konzentration an Nährelementen enthält, wie das in Beispiel 2 genannte Medium. Die Fermentationsbedingungen bind die gleichen wie in Beispiel 1.
Das nach 48 Stunden Kultivierung erhaltene Mycel enthält 5,5 g Trockenfeststoffe je Liter Kulturmedium. Nach Lyophilisierung besitzt das an Stachyose getestete Mycel eine Aktivität von 34000 U/g Trokkenfeststoffe.
Beispiel 4
Ein Mycel von Penicillium duponti (ATCC 10518) wird gemäß Beispiel 1 hergestellt. Dieses Mycel wird in einem 0,05 m Acetatpuffer mit pH 6 homogenisiert. 4> Hierauf wird mit 23000 U/min 60 Minuten lang zentrifugiert. Der Überstand wird gewonnen. Die Aktivität des Überstands gegenüber den folgenden Substraten wird getestet.
1. Saccharose
1K) 2. Raffinose
3. Stachyose
4. 4-Nitrophenyl-/3-D-glucopyranosid
5. 2-Nitrophenyl-/3-D-galactopyranosid
6. 2-Nitrophenyla-D-galactopyranosid
r>"> 7. Azocoll
8. Olivenöl
Beiden Substraten 1,5,7 und 8 wird keinerlei Aktivitätfestgestellt. Der Überstand enthält keine Invertase, keine /3-Galactosidase, keine Protease und keine bü Lipase. Er enthält eine α-Galactosidase und eine ß-Glucosidase. Die a-Galactoseaktivität des Überstands bei Stachyose ist 42000 U gemäß obiger Definition.
b5 Beispiel 5
Es wird ein Mycel von Penicillium duponti (ATCC 10518) hergestellt, wie es in Beispiel 2 beschrieben ist. Dieses Mvcel wird in einem 0,05 m AcetatDuffer
mit pH 6 homogenisiert. Hierauf wird 30 Minuten lang mit 23000 U/min zentrifugiert. Die a-Galactosidaseaktivität des Überstands beträgt, an Stachyose getestet, 40000 U.
Beispiel 6
Zu 500 ml Sojamilch, die 3,7% Stachyose enthält, werden 100 mg des Enzyms oder Überstands zugegeben, das bzw. der gemäß Beispiel 4 hergestellt und dann lyjphilisiert worden ist. Die enzymatische Behandlung wird während 30 Minuten bei 55 ° C durchgeführt. Nach der Behandlung ist der Gehalt an Stachyose in der Sojamiich auf 40% reduziert, jedoch
ist der Geschmack der Milch praktisch nicht verändert.
Beispiel 7
Zu 200 ml eines Zuckerrübensafts, der 22% Saccharose und 2% Raffinose enthält, werden 1 g des gemäß Beispiel 1 hergestellten Mycels zugegeben. Die enzymatische Behandlung wird während 24 Stunden fortgesetzt, wobei fortlaufend der Abbau der Raffinose beobachtet wird. Nach ungefähr 1 Stunde sind 40%, nach ungefähr 2 V2 Stunden 60% und nach ungefähr 4 Stunden 80% abgebaut. Nach 8 Stunden ergibt sich eine Stabilisierung bei etwa 85%.

Claims (7)

Patentansprüche:
1. Verfahren zur Herstellung von a-Galactosidase durch Kultivierung eines Mikroorganismus in einem Medium, welches mindestens einen Zukker enthält, der mindestens eine a-D-Galactopyranosyibindung aufweist, dadurch gekennzeichnet, daß man den Pilz Penicillium dupouti in wäßriger Suspension kultiviert und das so erhaltene Mycel gewinnt.
2. Verfahren nach Anspruch 1, daß als Kulturmedium ein Bleichwasser von weißen Bohnen verwendet wird.
3. Verfahren nach Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet, daß das Kulturmedium 6 bis 20 g Trockenfeststoffe/l Wasser enthält und daß die Trockenfeststoffe 30 bis 40 Gew.% Zucker und 2 bis 5 Gew.% Stickstoff enthalten.
4. Verfahren nach Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, daß die Zucker zu 30 bis 40% Stachyose, 40 bis 50% Saccharose, 7 bis 9% Raffinose und 1,5 bis 3,5% reduzierenden Zuckern bestehen.
5. Verfahren nach Anspruch 4, dadurch gekennzeichnet, daß der pH des Mediums auf einen Wert zwischen 6 und 7 eingestellt wird.
6. Verfahren nach Anspruch 5, dadurch gekennzeichnet, daß während der Fermentierung das Medium auf eine Temperatur von 40 bis 50° C gehalten wird.
7. Verfahren nach Anspruch 6, dadurch gekennzeichnet, daß die Fermentation 24 bis 48 Stunden durchgeführt wird.
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