DE1949719C2 - Mikrobiologische Herstellung von Dextranase - Google Patents

Mikrobiologische Herstellung von Dextranase

Info

Publication number
DE1949719C2
DE1949719C2 DE1949719A DE1949719A DE1949719C2 DE 1949719 C2 DE1949719 C2 DE 1949719C2 DE 1949719 A DE1949719 A DE 1949719A DE 1949719 A DE1949719 A DE 1949719A DE 1949719 C2 DE1949719 C2 DE 1949719C2
Authority
DE
Germany
Prior art keywords
dextranase
dextran
cultivation
chaetomium
water
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired
Application number
DE1949719A
Other languages
English (en)
Other versions
DE1949719A1 (de
Inventor
Masatoshi Tokyo Arai
Atsushi Hattori
Keijiro Ishibashi
Tokio Okaniwa
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Sankyo Co Ltd
Original Assignee
Sankyo Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Sankyo Co Ltd filed Critical Sankyo Co Ltd
Publication of DE1949719A1 publication Critical patent/DE1949719A1/de
Application granted granted Critical
Publication of DE1949719C2 publication Critical patent/DE1949719C2/de
Expired legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14—Hydrolases (3)
    • C12N9/24—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
    • C12N9/2402—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
    • C12N9/2405—Glucanases
    • C12N9/2451—Glucanases acting on alpha-1,6-glucosidic bonds
    • C12N9/2454—Dextranase (3.2.1.11)
    • Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/814—Enzyme separation or purification
    • Y10S435/816—Enzyme separation or purification by solubility
    • Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215—Microorganisms
    • Y10S435/822—Microorganisms using bacteria or actinomycetales
    • Y10S435/886—Streptomyces
    • Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215—Microorganisms
    • Y10S435/911—Microorganisms using fungi

Description

Erfindungsgegenstand ist das im Patentanspruch genannte Verfahren.
Teilweise durch Dextranase hydrolysiertes Dextran ist zur Herstellung von Blutserum-Ersatzstoffen verwendet worden. In letzter Zeit ist Dextranase auf verschiedenen Anwendungsgebieten eingesetzt worden, so z. B. auf dem Gebiet der Zahnhygiene (z. B. als enzymatische Zubereitung zur Verhinderung von Zahnkaries oder Zahnsteinablagerung).
Es ist auch bekannt, daß Dextranase durch Kultivierung von Mikroorganismen gewonnen werden kann, die zur Gattung Penknllium, Aspergillus, Verticillium und Spicaria sowie Celluvibrio gehören (vgl. z. B. Acta. Chem. Scand. 3,1405 [1949]; US-PS 27 09 150; J. BacL 64, 513 [1952]; Acta. Chem. Scand. 2, 803 [1948]; und Canadian Journal of Microbiology 3, 239 [1957] und US-PS 27 42 399).
Nach dem Stand der Technik wurde es angestrebt, Dextran als Blutserum-Ersatzstoff herzustellen. Danach war man jedoch stets bestrebt, eine Dextranase zu gewinnen, die nur zu einer begrenzten Zersetzung des Dextrans Anlaß geben sollte, während kein besonderes Interesse an anderen charakteristischen Kennzeichen dieses Enzyms bestand.
Der Erfindung liegt die Aufgabe zugrunde, ein Verfahren zur Herstellung einer solchen Dextranase vorzuschlagen, die sich im Hinblick auf ihre Eigenschaften, wie eine besondere Wirksamkeit und Stabilität, z. B. innerhalb optimaler pH-Bereiche, von der herkömmlichen Dextranase unterscheidet, um für eine derartige besondere Dextranase neue Anwendungsbereiche zu erschließen, wobei z. B. die Verhinderung von Zahnkaries oder Zahnsteinablagerungen, die Reinigung von Rohrzucker usw. in Frage kommen soll.
Erfindungsgemäß wird diese Aufgabe mit den Maßnahmen des Patentanspruchs gelöst.
Es wurde überraschenderweise gefunden, daß diese Arten, deren Dextranase bildende Aktivität bisher nicht bekannt war, sehr gut zur biochemischen Herstellung von Dextranase in großem Maßstab geeignet sind.
Geeignete Stämme dieser Arten sind bekannt und wemerj in der nachfolgenden Aufstellung beispielsweise genannt. In dieser Aufstellung sind in der rechten Spalte die Literaturstellen angegeben, in denen die mykologischen Merkmale der betreffenden Mikroorganismen beschrieben sind. Die Code-Nummern, die angegeben sind, sind solche der Anmelderin zur genauen Klassifizierung.
Chaetomium spirale F-216-3
Chaetomium gracile F-212-8
(Fermentation Research Institute of Japan, Deposit No. 334)
Journal of General and Applied Microbiology 6, 223-251(1960)
Sporotrichum asteroides F-60-9
(Fermentation Research Institute of Japan Deposit No. 337)
»Pathogenic microbiology« (part Bacertia), 956-957 (1966), Igakushoin, Japan
Bei der Durchführung des Verfahrens gemäß der Erfindung in der Praxis wird ein geeigneter Dextranaseerzeugender Stamm einem flüssigen oder festen Kulturmedium eingeimpft, das verschiedene Nährstoffe enthält, die üblicherweise für ein künstliches oder ein natürliches Medium verwendet werden. Die Kultivierung wird dann in der Regel durch Oberflächenkultivierung oder submerse Kultur durchgeführt Geeignete Nährmedien sind unter anderem beispielsweise Weizenkleie, Sojabohnenmehl, Maisquellwasser, Pepton, Stärke, Glucose, Saccharose, Ammoniumsulfat Harnstoff und verschiedene andere anorganische Salze. Eine Zufügung von 1-2% Dextran zum Kulturmedium ist besonders vorteilhaft da eine solche Zugabe in der Regel die Dextranase-Produktivität bis auf das lOfache oder noch mehr erhöht, und zwar im Vergleich mit der Kultivierung unter Bedingungen, in denen kein Dextran vorhanden ist Die geeignete Züchtungstemperatur liegt bei etwa 300C Geeignete pH-Werte liegen im Bereich von etwa 5,5 bis 7,0. Die Kultivierungszeit schwankt in Abhängigkeit von den sonstigen Kultivierungs-Bedingungen. In der Regel liegt sie jedoch bei etwa 3 bis 5 Tagen, in welcher Zeit ein maximaler Gehalt der gewünschten Dextranase erzielt wird.
Die Isolierung und gegebenenfalls Reinigung der Dextranase aus der flüssigen Kulturbrühe kann in der üblichen Weise durchgeführt werden, die zur Gewinnung von Enzymen aus Fermentationsbrühen bekannt ist Beispielsweise kann die durch die Kultivierung erhaltene Kulturbrühe einer der folgenden Behandlungen unterworfen werden; Konzentration unter vermindertem Druck, Aussalzen mit Natriumsulfat oder NaHumchlorid, fraktionierte Ausfällung mit Methanol, Äthanol, Acetor. oder einem ähnlichen Lösungsmittel, Adsorptions-Elutions-Zyklen unter Verwendung eines geeigneten Adsorptions-Materials, Ausfällung unter Verwendung eines Protein-fallenden Mittels, Ausfällung beim isoelektrischen Punkt, Abtrennung von Verunreinigungen mit einem Schwermetall, elektrische Dialyse usw. Diese Behandlungsmethoden können alleine oder in Kombination angewandt werden, wobei eine Dextranase der gewünschten Reinheit erhalten werden kann.
Die enzymatische Aktivität von Dextranase kann wie folgt bestimmt werden: 5 ml einer M/20 Acetat-Puff erlösung (pH 5,1) mit 4,95% Dextran wird mit 0,5 ml einer geeigneten verdünnten Enzym-Lösung versetzt, und die Versuchsmischung wird bei 4O0C aufbewahrt. Es wird die Zeit gemessen, die erforderlich ist, um die
Anfangsviskosität des Dextrans auf die Hälfte herabzusetzen (diese wird nachfolgend als »Halbwerts-Zerfalls* ' zeit« bezeichnet), Der gemessene Wert ist proportional der enzymatischen Aktivität,
Die technische Fortschrittlichkeit der Erfindung gegenüber dem nächstüegenden Stand der Technik, wie er durch die US-Patentschrift 27 42 399 repräsentiert wird, ergibt sich aufgrund der nachfolgend beschriebenen Vergleichsversuche, deren Ergebnisse in der weiter unten folgenden Tabelle zusammengefaßt sind.
Zur Durchführung der Versuche wurde unter Anwendung eines mikrobiologischen Verfahrens Dextranase hergestellt unter Anwendung des erfindungsgemäßen Verfahrens unter Verwendung der nachfolgend angegebenen erfindungsgemäß eingesetzten, Dextranase bildenden Mikroorganismen einerseits:
15
(A) Chaetomium ,uracile
(B) Chaetomium epirale
(C) Sporotrichum asteroides
bzw, gemäß dem Stand der Technik (US-PS 27 42 399) unter Verwendung der folgenden Mikroorganismen andererseits:
(1) Apsergillus fumigatus
(2) Penicillium funiculosum
(3) Penicillium lilacinunt
(4) Penicillium luteum
(5) Penicillium verruclosum
(6) Spicaria violacea
Dabei wurden die folgenden Ergebnisse erhalten:
Eingesetzter Stabiler pH-Wertbereich Optimale Temperatur Bemerkungen
Mikroq«r£anismus (0C)
(A) 5 -10 65
(B) 4-8 65
(C) 5 -10 60
(1) 3-6 55
(2) 6 - 7,5 40 Bbchimica et Bio-
physica Acta, 309,
:i973) 357-562
(3) 6 - 8,5 60 Can. J. Microbiol., 3
(1957), 239-247
(4) 3,5- 7 50 J. Biochem., 69,
1113-1121 (1971)
(2)
(3) 4,J- 7,9 40 J. Bacteriol.,64,
(5)
(6)		 513-519(1952)
Wie aus den vorstehenden Angaben hervorgeht, 40 dem Stand der Technik hergestelltem Dextranase weist die nach dem erfindungsgemäßen Verfahren eindeutig überlegen, was für den Fachmann keineswegs
vorhersehbar war.
Die folgenden Beispiele sollen das erfindungsgemäße Verfahren noch näher erläutern.
hergestellte Dextranase nicht nur eine ausgezeichnete Stabilität bei hoher Temperatur, sondern gleichzeitig auch eine ausgezeichnete Stabilität innerhalb eines breiten pH-Wertbereiches auf und ist somit der gemäß
Beispiel 1
100 ml eines flüssigen Kulturmediums (auf pH 6,0 eingestellt), welches 1% Kartoffelstärke, 0,5% Maisquellwasser, 03% Pepton und 03% Sojabohnenmehl enthält, wird ohne Dextran oder zusammen mit 1% Dextran in einen 500-ml-Erlenmeyer-Kolben gegeben, sterilisiert und da.nn mit den verschiedenen nachfolgend genannten Stämmen geimpft. Die Kultivierung erfolgt durch Schüttelkultur bei 3O0C 4 Tage lang. Die enzymatische Dextranase-Aktivität der so erhaltenen Kulturbrühe wird bestimmt. Die Versuchsergebnisse der einzelnen Versuche sind in der nachfolgenden Tabelle 1 zusammengestellt.
Tabelle 1 Benutzter Stamm
Halbwerts-Zcrfallszeit
Ohne Zugabe von Dextran
(keine Verdünnung)
Mit Zugabe von Dextran (4fache Verdünnung)
Chaetomium spirale F-216-3
Chaetomium gracile F-212-8
60 Min.
60 Min.
(Anfängliche Viskosität der Versuchsmischung 150 Sek.) (Wasser als Kontrolle IO Sek.)
15 Min. 15 Min.
Beispiel 2
Θη festes Kulturmedium wird dadurch hergestellt, daß Weizenkleie mit der halben Menge Sojabohnenmehl ohne oder zusammen mit 2% Dextran vermischt werden und dazu eine gleiche Menge Wasser gegeben wird, wobei eine pastige Masse erhalten wird. Nach Sterilisation wird dieses feste Kulturmedium mit den verschiedenen nachfolgend genannten Stämmen geimpft Die Kultivierung wird 5 Tage lang nach der Koji-Kultivierungs-Methqde bei 3O0C durchgeführt. Die Kultivierungsmasse wird mit Wasser in einer Menge von 10 oder IQO Teilen der erwähnten festen Masse extrahiert Der wäßrige Extrakt wird zur Bestimmung der eitzymatjschen Aktivität untersucht Die Versuchsergebnisse sind in der Tabelle 2 zusammengestellt
10
Tabelle 2
Benutzter Stamm
Halbwerts-Zerfallszeit
Ohne Dextran
(Extraktion
mit 1OX Wasser)
Mit Dextran
(Extraktion
mit 100 X Wasser)
Chaetomium spirale F-216-3
Chaetomium gracüe F-212-8
30 Min. 30 Min.
(Anfängliche Viskosität der Versuchsmischung 150 Sek.) (Wasser als Kontrolle 10 Sek.)
Beispiel 3
13 Min.
16 Min.
Die unter Verwendung von Dextran erhaltene Kultivierungsmasse von Beispiel 2 wird mit Wasser in einer Menge von 3 Volumteilen pro Volumteil der Masse extrahiert Zu der erhaltenen Enzymlösung wird Aceton in einer Menge von 3 Volumteilen pro Teil der Enzymlösung gegeben. Der erhaltene Niederschlag wird durch Filtration abgetrennt und dann unter vermindertem Druck getrocknet. Eine Enzymprobe wird so als weißes Pulver erhalten. Die Ausbeute beträgt 3-5% berechnet auf das Gesamtgewicht der eingesetzten festen Nährmedium-Komponenten. Die enzymatische Aktivität dieser Probe wird wie folgt festgestellt
Tabelle 3
Benutzter Stamm
35 Halbwerts-Zerfallszeit
der 0.05% Enzym-Probenlösung
Chaetomium spirale F-216-3 25 Min.
Chaetomium gracile F-212-8 20 Min.
(Anfängliche Viskosität der Versuchsmischung
(V-'asser als Kontrolle
150 Sek.) 10 Sek.)
Beispiel 4
100 ml eines flüssigen Kulturmediums (auf pH 6,0 eingestellt), welches 1% Kartoffelstärke, 0,5% Maisquellwasser, 0,5% Pepion und 0,5% Sojabohnenmehl enthält, wird ohne Zugabe von Dextran oder mit 1% Dextran Li einen 500-ml-Erlenmeyer-Kolben gegeben, sterilisiert und dann mit dem nachfolgend genanntem Stamm geimpft. Die Kultivierung wird 4 Tage lang als so Schüttelkultur bei 30° C durchgeführt Die enzymatische Dextranase-Aktivität der Kulturbrühe wird bestimmt. Die jeweils erhaltenen Versuchsergebnisse sind in der Tabelle 4 zusammengestellt.
Tabelle 4
Benutzter Stamm
Halbwerts-Zerfallszeil
Ohne Dextran
(keine Verdünnung)
Mit Dextran
(4fäche
Verdiinnung)
Sporotrichum asteroidcs F-60-9
90 Min. 20 Min.
(Anfängliche Viskosität der Versuchsmischun;·, 150 Sek.) (Wasser als kontrolle 10 Sek.)
Beispiel 5
Ein festes Kulturmedium wird dadurch hergestellt, daß Weizenkleie mit seiner halben Menge Sojabohnenmehl vermischt wird, einmal ohne Zugabe von Dextran und das andere Mal mit 2% Dextran. Dann wird zu diesem Gemisch die gleiche Menge Wasser gegeben, wobei eine pastige Masse erhalten wird. Nach Sterilisation wird dieses feste Kulturmedium mit dem
nachfolgend genanntem Stamm geimpft. Die Kultivierung wird nach der Koji-Kultivierungs-Methode 5 Tage lang bei 30°C durchgeführt. Die Kultiviervngsmasse wird mit Wasser in einer Menge von 10 bzw. 100 Teilen pro Teil der Masse extrahiert Der wäßrige Extrakt wird auf seine enzymatische Aktivität untersucht. Die Versuchsergebnisse sind in der Tabelle 5 zusammengestellt.
Tabelle S Benutzter Stumm Halowerts-Zerfalls/eit Ohne Dextran
(HxIr.iktion
mil WX Wasser)
Mit Dextran
(Extraktion
mit 100X Wasser)
Sporotrichum asteroides F-60-9
10 Min.
55 Min.
(Anfängliche Viskosität der Versuchsmischung 150 Sek.) (Wasser als Kontrolle 10 Sek.)
Beispiel 6
Aktivität wird untersucht, wobei das folgende Ergebnis erhalten wird.
Tabelle
Die in Gegenwart von Dextran erhaltene Kultivierungsmasse von Beispiel 5 wird mit Wasser in einer
Menge von 3 Volumteilen pro Teil Masse extrahiert. Zu
der erhaltenen Enzymlösung wird Aceton in einer jn Benutzter Stamm Menge von 3 Volumteilen pro Teil der Enzym-Lösung gegeben. Der erhaltene Niederschlag wird durch
Filtration abgetrennt und dann unter vermindertem
Druck getrocknet. Es wird so als weißes Pulver eine Enzym-Probe erhalten. Die Ausbeute beträgt 3-5%, berechnet auf das Gesamtgewicht der anfänglichen festen Nährmedium-Komponenten. Die enzymatische Halbwerts-Zerfallszeit
einer 0.01% Enzym-Proben-Lösuiig
Sporotrichum asteroides F-60-9 30 Min.
(Anfängliche Viskosität der Versuchsmischung 150 Sek.) (Wasser als Kontrolle 10 Sek.)

Claims (1)

  1. Patentanspruch:
    Verfahren zur mikrobiologischen Herstellung von Dextranase, dadurch gekennzeichnet, daß ein Dextranase erzeugender Stamm von Chaetomium spirale, Chaetomium gracile und/oder Sporotrichum asteroides in einem geeigneten Nährmedium kultiviert und aus dem kultivierten Nährmedium die darin angereicherte Dextranase abgetrennt und gegebenenfalls gereinigt wird.
DE1949719A 1968-10-03 1969-10-02 Mikrobiologische Herstellung von Dextranase Expired DE1949719C2 (de)

Applications Claiming Priority (4)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP7202668 1968-10-03
JP8087168 1968-11-05
JP510869 1969-01-24
JP3600469 1969-05-10

Publications (2)

Publication Number Publication Date
DE1949719A1 DE1949719A1 (de) 1970-05-06
DE1949719C2 true DE1949719C2 (de) 1982-09-09

Family

ID=27454231

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DE1949719A Expired DE1949719C2 (de) 1968-10-03 1969-10-02 Mikrobiologische Herstellung von Dextranase

Country Status (6)

Country Link
US (1) US3702805A (de)
DE (1) DE1949719C2 (de)
FR (1) FR2019829B1 (de)
GB (1) GB1240620A (de)
NL (1) NL6914830A (de)
SE (1) SE360380B (de)

Families Citing this family (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS5020155B2 (de) * 1972-04-17 1975-07-12
AU5830373A (en) * 1972-07-28 1975-01-23 Kenneth Trevor Glasziou Biological products
JPS58118509A (ja) * 1981-12-29 1983-07-14 Lion Corp 口腔用組成物
US4490470A (en) * 1983-01-03 1984-12-25 Polydex Chemicals Ltd. Process for the separation and purification of dextranase
US6509184B1 (en) 1999-08-24 2003-01-21 Midwest Research Institute Alkaline tolerant dextranase from streptomyces anulatus
CN102399770A (zh) * 2011-09-06 2012-04-04 广西大学 一种利用细丽毛壳菌发酵制备右旋糖酐酶粗酶的方法

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US2742399A (en) * 1951-08-24 1956-04-17 Henry M Tsuchiya Production of dextranase
US2776925A (en) * 1952-10-03 1957-01-08 Corman Julian Enzymic production of dextran of intermediate molecular weights

Also Published As

Publication number Publication date
GB1240620A (en) 1971-07-28
FR2019829B1 (de) 1973-03-16
DE1949719A1 (de) 1970-05-06
FR2019829A1 (de) 1970-07-10
NL6914830A (de) 1970-04-07
US3702805A (en) 1972-11-14
SE360380B (de) 1973-09-24

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DE3149931C2 (de)
DE2559218C2 (de) Verfahren zur Herstellung von α-Galactosidase und ihre Verwendung zur Hydrolyse von Raffinose
DE2731570C3 (de) Verfahren zur Gewinnung eines Polysaccharide mit therapeutischer Wirkung
CH645408A5 (de) Verfahren zur herstellung von pectin aus pflanzengeweben.
DE1949719C2 (de) Mikrobiologische Herstellung von Dextranase
DE2021465C3 (de) Verfahren zur Herstellung eines Enzympräparates, welches die OH-Gruppe in der ibeta-Stellung des Cholesterin« dehydriert
DE2153232C3 (de) Verfahren zur Herstellung einer Amylose
DE1767653A1 (de) Verfahren zur Erzeugung von Isoamylase
DE3806423C2 (de) Verfahren zur Herstellung von Pectin
DE2537028A1 (de) Antibioticum, ein verfahren zu seiner herstellung sowie seine verwendung als pflanzenschutzmittel
CH644896A5 (de) Polysaccharid, verfahren zur herstellung desselben und dasselbe enthaltendes, den cholesterinspiegel senkendes mittel.
DE2120930A1 (de) Pepsin-Inhibitor und Verfahren zu dessen Herstellung
DE1291744B (de) 3-(2-Nitro-3-chlorphenyl)-4-chlorpyrrol
DE2319242C3 (de) Verfahren zur Herstellung von Dextranase
DE2239210C3 (de) Verfahren zur Herstellung von a- Galactosidase, die eine starke a- Galactosidase-Aktivität und eine äußerst geringe Invertase-Aktivität aufweist, und deren Verwendung zur Zerlegung von Raffinose
DE3617368C2 (de) Verfahren zur Herstellung eines stickstoffhaltigen Polysaccharids
DE1442108A1 (de) Verfahren zur Zersetzung der Zellwaende von Hefearten mittels ss-Glucanase,welche durch Mikroorganismen erzeugt wird
DE2164018B2 (de) Verfahren zur biotechnischen herstellung von uricase
DE2431297C3 (de) Biochemisches Verfahren zur Herstellung einer extrazellulären ß- Galactosidase, welche säureaktiv und säurestabil ist
DE810534C (de) Verfahren zur Erzeugung von Streptomycin
DE3205074A1 (de) Neue carcinostatische und immunostimulierende substanzen, verfahren zur herstellung derselben und carcinostatische mittel mit einem gehalt derselben
DD202891A5 (de) Neue carcinostatische und immunostimulierende substanzen,verfahren zu ihrer herstellung und carcinostatische mittel mit einem gehalt derselben
DE2044004C3 (de) Verfahren zur Herstellung des Antibiotikumkomplexes Polyfungin
DE939397C (de) Verfahren zur Herstellung und Gewinnung eines Produktes mit antiviraler Aktivitaet
DE1642581C3 (de) Verfahren zur Herstellung von alpha-D-Galactosidase

Legal Events

Date Code Title Description
D2 Grant after examination
8328 Change in the person/name/address of the agent

Free format text: TUERK, D., DIPL.-CHEM. DR.RER.NAT. GILLE, C., DIPL.-ING., PAT.-ANW., 4000 DUESSELDORF