DE1908290B2 - Acrylamid-mischpolymerisat - Google Patents
Acrylamid-mischpolymerisatInfo
- Publication number
- DE1908290B2 DE1908290B2 DE1908290A DE1908290A DE1908290B2 DE 1908290 B2 DE1908290 B2 DE 1908290B2 DE 1908290 A DE1908290 A DE 1908290A DE 1908290 A DE1908290 A DE 1908290A DE 1908290 B2 DE1908290 B2 DE 1908290B2
- Authority
- DE
- Germany
- Prior art keywords
- protein
- carrier
- bound
- acrylamide
- proteins
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K39/395—Antibodies; Immunoglobulins; Immune serum, e.g. antilymphocytic serum
- A61K39/44—Antibodies bound to carriers
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C08—ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
- C08F—MACROMOLECULAR COMPOUNDS OBTAINED BY REACTIONS ONLY INVOLVING CARBON-TO-CARBON UNSATURATED BONDS
- C08F20/00—Homopolymers and copolymers of compounds having one or more unsaturated aliphatic radicals, each having only one carbon-to-carbon double bond, and only one being terminated by only one carboxyl radical or a salt, anhydride, ester, amide, imide or nitrile thereof
- C08F20/02—Monocarboxylic acids having less than ten carbon atoms, Derivatives thereof
- C08F20/52—Amides or imides
- C08F20/54—Amides, e.g. N,N-dimethylacrylamide or N-isopropylacrylamide
- C08F20/56—Acrylamide; Methacrylamide
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C08—ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
- C08F—MACROMOLECULAR COMPOUNDS OBTAINED BY REACTIONS ONLY INVOLVING CARBON-TO-CARBON UNSATURATED BONDS
- C08F22/00—Homopolymers and copolymers of compounds having one or more unsaturated aliphatic radicals each having only one carbon-to-carbon double bond, and at least one being terminated by a carboxyl radical and containing at least one other carboxyl radical in the molecule; Salts, anhydrides, esters, amides, imides or nitriles thereof
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C08—ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
- C08F—MACROMOLECULAR COMPOUNDS OBTAINED BY REACTIONS ONLY INVOLVING CARBON-TO-CARBON UNSATURATED BONDS
- C08F8/00—Chemical modification by after-treatment
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N11/00—Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
- C12N11/02—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier
- C12N11/08—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier the carrier being a synthetic polymer
- C12N11/082—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier the carrier being a synthetic polymer obtained by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N11/00—Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
- C12N11/02—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier
- C12N11/08—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier the carrier being a synthetic polymer
- C12N11/082—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier the carrier being a synthetic polymer obtained by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds
- C12N11/087—Acrylic polymers
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S530/00—Chemistry: natural resins or derivatives; peptides or proteins; lignins or reaction products thereof
- Y10S530/81—Carrier - bound or immobilized peptides or proteins and the preparation thereof, e.g. biological cell or cell fragment as carrier
- Y10S530/812—Peptides or proteins is immobilized on, or in, an organic carrier
- Y10S530/815—Carrier is a synthetic polymer
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S530/00—Chemistry: natural resins or derivatives; peptides or proteins; lignins or reaction products thereof
- Y10S530/81—Carrier - bound or immobilized peptides or proteins and the preparation thereof, e.g. biological cell or cell fragment as carrier
- Y10S530/812—Peptides or proteins is immobilized on, or in, an organic carrier
- Y10S530/815—Carrier is a synthetic polymer
- Y10S530/816—Attached to the carrier via a bridging agent
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Polymers & Plastics (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Mycology (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Public Health (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Immunology (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
- Graft Or Block Polymers (AREA)
- Addition Polymer Or Copolymer, Post-Treatments, Or Chemical Modifications (AREA)
- Other Resins Obtained By Reactions Not Involving Carbon-To-Carbon Unsaturated Bonds (AREA)
Description
Die Erfindung betrifft das in den Patentansprüchen definierte Mischpolymerisat.
Als unlösliche, biologisch aktive Proteine haben die an Trägermaterialien fixierten Proteine Bedeutung, da
sie definierte Materialien darstellen, die sich universell für Enzyme, Inhibitoren, Antigene bzw. Antikörper, für
Eiweißstoffe allgemein anwenden lassen.
Es ist bereits bekannt unter den Bedingungen der Acrylamidpoiymerisation Proteine in gut quellbarem
Material zu fixieren. Das Enzym wird dabei radialisch an die Ketten gebunden. Weiter wurden Proteine bereits
an Äthylen-Maleinsäureanhydridcopolymere (EMA) und an Styrol-Maleinsäure-anhydrid-copolymere gebunden.
Die bisher bekannten Methoden sind nicht befriedigend und nicht allgemein für Proteine anwendbar. Bei
der Acrylamidpolymerisalion werden nur 18 bis 20% des eingesetzten Proteins gebunden, wovon nur wenige
Prozent Aktivität gegenüber Substraten entwickeln können. Höhermolekulare Substrate (Hämoglobin)
werden nur zu 1 bis 2% umgesetzt.
Derzeit ergibt EMA die befriedigensten Ergebnisse. Es findet für Antigene, Inhibitoren und Enzyme
Anwendung. Die Bindungsreaktion erfolgt schonend in wäßrigem Milieu; etwa 50 bis 60% des Proteins lassen
sich unter optimalen Bedingungen fixieren.
Jedoch ist das verwendete Ausgangsmaterial sehr uneinheitlich, es hat niedermolekulare (z. T. lösliche) und
höhermolekulare (unlösliche) Fraktionen, die sich weder sieben noch auf andere Weise trennen lassen. Daher
werden nur bis zu 60% Protein an den unlöslichen Träger gebunden, der Rest geht als lösliches Material
verloren. Aber auch das gebundene Protein befriedigt noch nicht.
In der Bindung des Proteins an den Träger (EMA) hat das Protein Comonomer-Funktion; es kann nicht nur an
einer Stelle, sondern an mehreren (d.h. vernetzt) gebunden werden. In Abhängigkeit von der Proteinkonzentration
werden mehr oder weniger gut quellbare Protein-auf-Träger-Substanzen erhalten. Das Protein
liegt dabei in einem Netzwerk covalent gebunden vor, so daß die Diffusion bei diesem Material eine
wesentliche Rolle spielt, und es nur teilweise für Substrate zugänglich ist. Auch durch Zugabe von
Vernetzern (Hexamethylendiamin) wird dieser Nachteil nicht aufgehoben. Von dem gebundenen Protein sind
daher nur noch etwa 50% für niedermolekulare Substrate erreichbar, so daß die Gesamtaktivität nicht
mehr als 30% beträgt. Gegenüber hochmolekularen
Substraten sind nur 10% und weniger gefunden worden.
Ein zusätzlicher Nachteil dieses Materials liegt darin,
daß es von Protein zu Protein verschieden, auch in Abhängigkeit von der Proteinkonzeniration, z. B.
flockig, schwer filtrierbar anfällt und nicht ohne weiteres in Säulen gepackt werden kann.
S tyrol-Maleinsäureanhydrid·· Polymere lassen sich zur
Entfernung von Proteinen, z. B. Reinigung des Trinkwassers zur Anwendung bringea Diese Träger haben
ίο ähnlich dem Polyaminopolystyrol ausgesprochen lypophilen
Charakter. Proteine können nicht ohne Verlust ihrer Struktur gebunden werden, auch könnten sie mit
Proteinen beladen nicht lyophilisiert werden.
Die nicht durch Protein verknüpften funktioneilen Gruppen der EMA tragen als COrGruppen in
entsprechenden pH-Bereichen positive bzw. negative Ladungen. Zusätzlich entstehen CC>2-Gruppen bei der
Proteinbindung des cyclischen Anhydrids. Dieser polyvalente Charakter des Proteinträgers verursacht
Adsorption an der Matrix, ähnlich den Ionenaustauschern, erhöhte Inaktivierung bzw. Denaturierung der
Proteinstruktur und Verschiebung der pH-Optima bei gebundenen Enzymen.
Es besteht daher großes Interesse an der Schaffung
Es besteht daher großes Interesse an der Schaffung
2ri eines geeigneten Trägers für wasserunlösliche Proteine.
Die Erfindung löst die anstehenden Probleme durch das Mischpolymerisat gemäß den Patentansprüchen.
Vorzugsweise liegt die einpolymerisierte Dicarbonsäure als Anhydrid vor. Der Bestandteil c), d. h.
jo Ν,Ν'-Methylen-bis-acrylamid oder/und Äthylendiacrylat,
macht vorzugsweise nicht mehr als 0,45 Teile im oben angegebenen Gewichtsverhältnis aus.
Ein weiterer Gegenstand der Erfindung ist die Verwendung der oben beschriebenen Mischpolymerisa-
Y-, te zur Fixierung von Protein.
Im folgenden wird das erfindungsgemäße Mischpolymerisat, seine Herstellung und Verwendung näher
beschrieben.
Acrylamid, Ν,Ν'-Methylen-bis-acrylamid oder/und
Acrylamid, Ν,Ν'-Methylen-bis-acrylamid oder/und
4(i Äthylendiacrylat sowie Maleinsäure bzw. deren Anhydrid
werden in Gegenwart von Radikalbildnern und Radikalbeschleunigern in den oben angegebenen
Verhältnissen nach an sich bekannten Methoden polymerisiert. An sich ist es möglich, Maleinsäure- bzw.
<r> Maleinsäure-anhydridgruppen in breiten Konzentrationsbereichen
einzupolymerisieren. Im Hinblick auf die der Erfindung zugrunde liegende Aufgabenstellung
erwies sich jedoch die oben näher gekennzeichnete Zusammensetzung als Bedingung für die Erzielung eines
i» Mischpolymerisats, welches als Trägersubstanz die
gewünschten günstigen Eigenschaften aufweist.
Bei der Herstellung läßt sich das Mengenverhältnis von Acrylamid zu Maleinsäure bzw. Äthylenmaleinsäure
oder den entsprechenden Anhydriden in verhältnis-
V) mäßig weiten Bereichen variieren, ohne daß hierdurch
die erforderliche Vernetzermenge wesentlich beeinflußt wird.
Für die Verwendung zur Fixierung von Proteinen ergaben sich besonders gute Ergebnisse bei Verwen-
feo dung von Acrylamid und Maleinsäure bzw. deren
Anhydrid im Gewichtsverhältnis 3 :0,5 bis 1,0. Bei Erhöhung der Konzentration der Dicarbonsäure bis 1,5
wird das Mischpolymerisat zwar spröder und weniger quellbar, zeigt jedoch immer noch gute Eigenschaften
ei als Träger. Bei einem Verhältnis von Acrylamid zu
Vernetzer, d. h. Ν,Ν'-Methylen-bis-acrylamid bzw. Äthylendiacrylat, von 3 :0,075 bis 0,450 werden
gelartige Polymerisate mit besonders bevorzugten
Eigenschaften erhalten. Ein Verhältnis von 3:0,075
stellt die untere Grenzkonzentration dar, bei der die Maleinsäure noch befriedigend eingeschlossen wird.
Für die Fixierung von Proteinen in wäßrigem Milieu erwiesen sich auch Verrietzerkonzentrationen entsprechend
einem Verhältnis von Acrylamid zu Vernetzer von mehr als 3:0,45 bis 3 :0,6 noch als gut geeignet Bei
Arbeiten mit höheren Salzkonzentrationen, d. h. mehr als 0,05 M, erwiesen sich jedoch die hierbei erhaltenen
relativ eng vernetzten Gele für die Proteinstruktur als ι ο nachteilig.
Die Herstellung der erfindungsgemäßen Mischpolymerisate läßt sich beispielsweise in wäßriger Lösung,
vorzugsweise in inerter Atmosphäre, durchführen. Beispiele für geeignete Radikalbildner bzw. Radiakalbeschleuniger
sind Propionsäurenitril und Ammoniumperoxydisulfat Die Polymerisation kann bei Zimmertemperatur,
aber auch bei höheren Temperaturen bis zu 100° oder bei niedrigerer Temperatur durchgeführt
werden. Die Polymerisationsdauer ist von der gewählten Polymerisationstemperatur, den gewählten Beschleunigern
bzw. Katalysatoren und der mengenmäßigen Zusammensetzung des Ansatzes abhängig. Sie liegt
gewöhnlich zwischen etwa 5 Minuten und mehreren Stunden. ^
Nach dem Erstarren wird der polymerisierte Ansatz zur Erzielung einer für die Handhabung besonders
günstigen Körnung durch ein Sieb der gewünschten Maschenweite gedrückt, mit Wasser gewaschen und
lyophilisiert · )(1
Für die Fixierung des Proteins ist es notwendig, daß die Dicarbonsäure in Form des Anhydrids vorliegt. Es
müssen daher vor der Proteinverknüpfung sämtliche Säuregruppen wieder in das cyclische Anhydrid
überführt werden. Dies erfolgt beispielsweise durch v>
Erhitzen des lyophilisierten Mischpolymerisats im Vakuum auf eine Temperatur von etwa 80 bis 120°C
oder unter Atmosphärendruck bei einer Temperatur von etwa 160 bis 220, vorzugsweise 18Cbis 200° C.
Die erfindungsgemäßen Mischpolymerisate sind in to Abhängigkeit von der Vernetzerkonzentration wasserklare
bis milchig-trübe Substanzen mit gummiartiger bis spröder Konsistenz.
Die Mischpolymerisate lassen sich leicht körnen, beispielsweise indem man sie durch ein Metallsieb ■*>
drückt Als günstig für die Zwecke der Proteinverknüpfung erwiesen sich hierbei Korngrößen von etwa 0,35
bis 0,8 mm. Dieses Granulat quillt bei Zusatz von Wasser nach. Die Stärke der Quellung ist vom
Vernetzergehalt abhängig. Je enger die erfindungsge- so
mäßen Mischpolymerisate vernetzt sind, desto weniger quellbar sind sie.
Die Entquellung ist z. B. mit Alkohol oder noch einfacher durch Gefriertrocknung möglich. .
In mancher Hinsicht gleichen die Teilchen der ·3Γ>
erfindungsgemäßen Mischpolymerisate denen des bekannten Polyacrylamidmolekularsiebes. Bei Behandlung
mit Pufferlösungen erfolgt eine Schrumpfung in Abhängigkeit von der Zahl der vorhandenen Carboxylgruppen,
ähnlich wie bei den Ionenaustauschern auf ^o Dextran- oder Polyacrylamidbasis.
Wenn die Carboxylgruppen durch Erhitzen auf etwa 2000C in das cyclische AnhydriH überführt werden, tritt
häufig eine leichte Gelbfärbung auf. Wird längere Zeit erhitzt so vertieft sich die Farbe von gelb bis braun und hi
gleichzeitig nimmt die Bindungskapazität deutlich ab. Eine länger dauernde Erhitzung auf die erforderliche
TemDeratur unter Normaldruck wird daher tunlichst vermieden.
Die Porosität und die Härte des erfindungsgemäßen Mischpolymerisats im Zustand eines gequollenen Gels
wird in erster Linie durch den Vernetzergehalt bestimmt Das Material weist Molekularsiebeigenschaften
auf, ähnlich wie bei den Polyacrylamidgelen, wobei die Ausschlußgrenzen beliebig durch den Vernetzergehalt
festgelegt werden können. In gequollenem Zustand läßt sich das erfindungsgemäße Mischpolymerisat leicht
filtrieren oder zentrifugieren und zeigt als Säulenfüllung ideale Eigenschaften. In Wasser- oder Pufferlösungen
gequollen und in entquollenen Zustand ist das gelartige Mischpolymerisat uneingeschränkt haltbar.
Das erfindungsgemäße Mischpolymerisat ermöglicht eine schonende Bindung des Proteins, weil es hydrophil
und stark quellbar ist, und die Proteinverknüpfung nur durch Solvolyse der cyclischen Anhydridgruppen
erfolgt Die Proteinstruktur bleibt nach erfolgter Bindung des Proteins erhalten, wobei Aktivitätsausbeuten
bis zu 100% (und sogar darüber durch Steigerung der Aktivität) gewonnen werden. Das nicht gebundene
Protein läßt sich ohne Aktivitätsverlust zurückgewinnen. Bei der Bindung übernimmt das Protein nicht eine
Vernetzerfunklion in der Matrix sondern die erhaltenen, als »Enzymgele« zu bezeichnenden trägergebundenen
Enzyme sind vollkommen einheitlich und weisen nicht in Abhängigkeit von der Proteinkonzentration unterschiedliche
Festigkeit auf.
Durch die gezielte Vernetzung können die Molekularsiebeigenschaften
des Mischpolymerisats so eingestellt werden, daß Proteine nur in gewünschte Bereiche
gelangen können. So ist es möglich, das Mischpolymerisat für bestimmte Proteine so zu vernetzen, daß die
Proteinbindung nur an der Oberfläche des Gelpartikels erfolgen kann, wahlweise aber auch im gesamten Gel.
Die Polymerisationsparameter lassen sich je nach dem wirksamen Moiekülradius, sterischen Effekten und
Ladungsverteüung variieren.
Die erfindungsgemäßen Mischpolymerisate besitzen Adsorptionseigenschaften, so daß in Wasser oder
schwachen Pufferlösungen (bis etwa 0,01 M) das Eiweiß 100%ig am Träger fixiert wird. Bis zu 85% des Eiweißes
werden hierbei kovalent, der Rest heteropolar gebunden. Bei Verwendung der erfindungsgemäßen Mischpolymerisate
ohne vorherige Cyclisierung der Säuregruppen erfolgt die Eiweißbindung nur adsorptiv. Es wurde
gefunden, daß sich unter diesen Bedingungen das Protein mit Salzlösungen ohne Aktivitätsverlust vom
Träger wieder eluieren läßt.
Die Proteinbindungskapazität des erfindungsgemäßen Mischpolymerisats ist abhängig von der Zahl der
vorhandenen Anhydridgruppen und der Porengröße. Bei einem enger vernetzten Produkt ist die Bindungskapazität
geringer als bei einem weniger eng vernetzten Produkt bei gleicher Anzahl an vorhandenen Anhydridgruppen,
da das Proteinmolekül bei engerer Vernetzung nicht alle zur Verfügung stehenden bindungsfähigen
Gruppen erreichen kann.
Liegen im erfindungsgemäßen Mischpolymerisat zu viele Ladungen vor, die nicht von Protein durch
kovalente Bindung besetzt werden können, so erfolgt im allgemeinen eine Verschiebung der pH-Optima bei den
gebundenen Enzymen. Entsprechend wurde bei den bekannten trägergebundenen Enzymen beobachtet, daß
es bei negativ geladenen Trägermaterialien zu einer Verschiebung um zwei pH-Einheiten und bei positiv
gelagerten Trägern eine Verschiebung in den sauren Bereich erfolgt. Bei dem erfindungsgemäßen Mischpo-
lymerisat ist es möglich, die bindungsfähigen Gruppen
maximal auszunutzen, so daß sich trägergebundene Proteine erhalten lassen, die keine Verschiebung des
pH-Wert-Optimums zeigen.
Eine besonders interessante Eigenschaft der auf Träger gebundenen wasserunlöslichen Proteine besteht
darin, daß unier Umständen höhere Michaelis-Konstanten
erhalten werden als bei nichtgebundenem Enzym. So wurde beispielsweise gefunden, daß die Aktivität von
gebundenem Trypsin gegenüber N-Benzoyl-1-argininp-nitranilid
erhöht wird in Vergleich zu nichtgebundenem Enzym.
Die trägergebundenen Enzyme weisen eine Fülle höchsterwünscht.er Eigenschaften auf und lassen sich für
zahlreiche Anwendungsgebiete verwenden. So ermöglichen sie es, Substratumsätze weitaus gezielter als bisher
auszuführen, da das Enzym zu jedem gewünschten Zeitpunkt aus dem Inkubationsansatz wieder entfernt
werden kann. Ist der Umsatz noch nicht quantitativ, so läßt sich das gleiche Enzym erneut zusetzen. Bei
Proteasen kann das zu spaltende Protein bei jeder gewünschten Hydrolyserate isoliert werden. Die Spaltungsreaktion
läßt sich damit direkt verfolgen. Das enzymatisch aktive Protein muß nicht mehr, wie bisher,
nach dem Substratumsatz ausgefällt werden — hierdurch wurden oftmals die Substratumsätze verändert —
sondern es läßt sich durch einfaches Filtrieren oder Abdekantieren oder dgl. entfernen.
Substratumsätze lassen sich mit derartigen trägergebundenen enzymatisch aktiven Proteinen auch über in
Säulen ausführen. In ein käfigartiges Gefäß gepackte
Trägerenzyme lassen sich ähnlich wie ein Tee-Ei zu einem Inkubationsansatz geben und jederzeit wieder
daraus entfernen.
Mit proteolytisch wirksamen trägergebundenen Enzymen lassen sich auf einfache Weise Inhibitoren
isolieren. Die Stabilität der Proteasen wird dabei durch die Bindung an das Trägermaterial wesentlich erhöht, da
die Proteasen keiner Autolysereaktion mehr unterliegen.
Mit den trägergebundenen Proteasen-Inhibitoren lassen sich Proteasen einfach, schnell und ganz
spezifisch isolieren. Mit ihrer Hilfe ist es auch möglich, Proteasen enthaltende Proteinlösungen von den Proteasen
zu reinigen und damit zu stabilisieren.
Durch auf Träger fixierte Antigene bzw. Antikörper läßt sich eine einfache Isolierung von Antigenen bzw.
Antikörpern durchführen. Mit derartigen trägergebundenen Enzymantikörpern kann eine besonders einfache
und wirksame Enzymisolierung durchgeführt werden.
Die gebundenen Proteine lassen sich ganz allgemein wiederholt benutzen und zeigen zum Teil auch bei
verlängertem Gebrauch keinerlei Aktivitätsschwund.
Aufgrund der Molekularsiebeigenschaften der erfindungsgemäßen Mischpolymerisate lassen sich die
trägergebundenen Proteine auch zur Substrattrennung einsetzen.
Die erfindungsgemäßen Mischpolymerisate sind hinsichtlich ihrer Eignung zur Fixierung von biologisch
aktiven Proteinen den bisher bekannten, für gleiche Zwecke verwendeten Trägermaterialien in hohem
Ausmaße überlegen, wie die in der nachstehenden Tabelle 1 zusammengefaßten Ergebnisse zeigen.
Trügermaterial | Einheitlichkeil | Träger: Protein | Ausheule | Aktivität4) | Ausbeute |
des Materials | geh. Protein | niedcrmolck. | Aktivität | ||
in "■:, | Substrate | v. cingcs. | |||
in "/■ | in % | ||||
PAAD1) | einheitlich | 20:1 | 15-18 | 90') | 10-13 |
CMC-HYDRAZ1D | einheitlich | 10:0,5-1 | 25-30 | bis 40") | bis 14 |
(ENZYME)2) | |||||
EMA3) | nicht einheitlich | 5:! | 40-45 | 60-70') | bis 30 |
erfindungsgcm. | einheitlich | beliebig 1:2 |
bis 80 | bis 100s) | bis 80 |
Anmerkungen:
') Polyacrylamid
") Carboxymethylcellulosehydrazid
■') Äthylenmaleinsäurcanhydrid-Copolymerisat
4) Trypsin-Aktivitäl
*) Alle niedermolekularen Aminosäuren-Substrate
'') Chymotrypsin-Aktivität
7) Am Stickstoff geschützte Aminosäure-Ester
8) N-Benzoyl-l-arginin-p-nitranilid
Die Überlegenheit der trägergebundenen Proteine liegt nicht nur in ihrer überlegenen Ausbeute und
Aktivität, sondern auch in dem weitaus vorteilhafteren zulässigen Verhältnis von Träger zu Protein.
Die erfindungsgemäßen Mischpolymerisate lassen sich zur Fixierung von Proteinen sehr unterschiedlicher
Molekülgröße und Eigenschaften verwenden, da sich die Eigenschaften dieses Trägermaterials ohne weiteres je
nach den Erfordernissen des zu bindenden Proteins einstellen lassen. Wenn z. B. das Protein ein besonders
großes Molekül aufweist, so kann durch Verringerung des Vernetzungsgrades in weitern Umfange noch ein
Eindringen des Proteins in die Matrix und Bindung in derselben bewirkt werden. Bei Proteinmolekülen, die so
groß sind, daß auch durch eine Vernetzung im geringstmöglichen Ausmaß ihr Eindringen in die Matrix
wesentlich erschweren wird, ist es auch möglich, eine Fixierung des Proteins lediglich an der Oberfläche der
Teilchen vorzunehmen, wobei in diesem Falle das Mischpolymerisat vorzugsweise so fein gekörnt wird,
daß eine sehr große Oberfläche erhalten wird, wobei die dann allein an der Oberfläche stattfindende Fixierung
des Proteins zu einem völlig ausreichenden Fixierungsgrad führt.
Das Verhältnis von homöopolar zu adsorptiv bzw. heteropolar am Träger gebundenen Enzym läßt sich
beeinflussen durch die Art der Herstellung der Bindung zwischen Protein und Träger. Wird beispielsweise das
Protein vorgelegt in relativ hoher Pufferkonzentration und langsam das nichtgequollene Gel zugegeben, so ist
die Ausbeute an homöopolar gebundenem Enzym sehr hoch und praktisch kein adsorptiv gebundenes Hnzym
nachzuweisen. Wird andererseits mit niedriger Pufferkonzentration gearbeitet und Träger und Enzym rasch
zusammengegeben, so ist zwar die Ausbeute an gebundenem Protein höher, von diesem an den Träger -'»
gegangenen Protein läßt sich jedoch mit hohen Pufferkonzentrationen wieder ein erheblicher Anteil
eluieren, der also nicht homöopolar gebunden gewesen sein kann. Wird beispielsweise wie oben angegeben mit
hoher Pufferkonzentration und langsamer Trägerzugabe gearbeitet, so gehen etwa 80% des vorgelegten
Enzyms an den Träger und es läßt sich dann nichts mehr davon eluieren. Das Enzym ist also annähernd
vollständig homöopolar gebunden und seine Aktivität wird lediglich noch durch die Zugänglichkeit für das jo
Substrat bestimmt. Im zweiten Fall hingegen bei niedriger Pufferkonzentration und rascher Zugabe
werden zwar 100% des vorgelegten Proteins am Träger absorbiert. Hiervon lassen sich aber bis 35% wieder mit
hohen Salz- oder Pufferkonzentrationen eluieren, r> waren also nicht homöopolar gebunden.
Die folgenden Beispiele erläutern die Erfindung.
Herstellung der Mischpolymerisate
Beispiel 1 4"
3 g Acrylamid (AAD), 0,075 g Äthylendiacrylat und 1 g Maleinsäure werden iii 23 ml 0,05 M Phosphatpuffer
pH 7,6 suspendiert und unter starkem Rühren in Stickstoffatmosphäre bei Raumtemperatur mit je 1 ml 4·-,
5%igem Propionsäurenitril und 5%igem Ammoniumperoxydisulfat versetzt, 15 Stunden bei Raumtemperatur
stehengelassen und dann durch ein Metallsieb mit einer lichten Maschenweite von 0,5 mm gedrückt Das
erhaltene Granulat wird mit etwa 51 destilliertem 3«
Wasser gewaschen.
Das so erhaltene gequollene Mischpolymerisat wird zum Entquellen gefriergetrocknet. In getrocknetem
Zustand beträgt das Gewicht (Ausbeute) 2,3 g.
Zur Cyclisierung zum Säureanhydrid wird anschließend
!,5 bis 2 Stunden bei 2000C im Trockenschrank
erhitzt Nach der Cyclisierung beträgt das Gewicht des Produktes 2,05 g.
60
3 g Acrylamid, 03 g N.N'-Methylen-bis-acrylamid und
1 g Maleinsäure werden wie in Beispiel 1 beschrieben mischpolymerisiert Die Polymerisationsdauer beträgt
15 Stunden. Die Weiterverarbeitung erfolgt ebenfalls wie in Beispiel 1 beschrieben. Die Ausbeute an
Lyophilisat beträgt 2,67 g. Nach Cyclisierung beträgt das Gewicht des Produktes 2,45 g.
Wie in Beispiel 1 beschrieben werden 3 g Acrylamid, 0,6 g Ν,Ν'-Methylen-bis-acrylamid und 1 g Maleinsäure
mischpolymerisiert. Die Polymerisationsdauer beträgt 5 Stunden. Die Weiterverarbeitung erfolgt ebenfalls wie
in Beispiel 1 beschrieben. Die Ausbeute an Lyophilisat beträgt 2,8 g. Nach der Cyclisierung werden 2,6 g
Endprodukt erhalten.
Verwendung der Mischpolymerisate
Beispiel 4
Beispiel 4
Es wird ein cyclisiertes Mischpolymerisat aus 3 g Acrylamid, 0,15 g Ν,Ν'-Methylen-bis-acrylamid und 1 g
Maieinsäure ais Träger verwendet. iOö mg Trypsin
werden mit 1 g Träger in 15 ml eiskaltem Wasser, pH = 5,2, eingerührt und bei 400C 15 Stunden im
Kühlraum reagieren lassen. Anschließend wird das Produkt in eine Säure gepackt.
Das heteropolar gebundene Protein wurde mit 65 ml Waschwasser eluiert. Mit 0,2 M Phosphatpuffer,
pH = 7,8, konnte danach kein weiteres Protein mehr eluiert werden.
Heteropolar gebundenes Protein
bei pH 7,0,8,5,10
Rest-Aktivität, bezogen auf nicht
gebundenes Trypsin
bei pH 7,0,8,5,10
Rest-Aktivität, bezogen auf nicht
gebundenes Trypsin
31%
20%
50%
Es wird der gleiche Träger wie in Beispiel 4 verwendet. 100 mg Träger und 200 mg Trypsin werden
wie in Beispiel 1 beschrieben reagieren gelassen.
Nichtgebundenes Protein 50%
Aktivität des gebundenen Proteins
Aktivität des gebundenen Proteins
vor Behandlung mit 0,2 M Puffer 100%
nach Behandlung mit 0,2 M Puffer 48%
Es wird das Produkt von Beispiel 2 als Träger verwendet 100 mg Rinderserumalbumin werden mit 1 g
Träger wie in Beispiel 1 beschrieben reagieren gelassen.
Nichtgebundenes Protein: 32%.
Weder mit 0,2 M Phosphatpuffer, pH = 7,8, noch mit 0,2 M Glycinpuffer, pH = 1,8, kann Protein vom Träger
eluiert werden. Die Ausbeute an homöopolar gebundenem Protein beträgt 68%, bezogen auf eingesetztes
Protein, und 100%, bezogen auf gebundenes Protein.
Bei Verwendung von Humanserumalbumin anstelle von Rinderserumalbumin wird das gleiche Ergebnis
erhalten.
Es wird das Produkt von Beispiel 2 als Träger verwendet 1 g Träger wird portionsweise innerhalb von
60 Minuten zu 200 mg Trypsin gelöst in 18 ml Phosphatpuffer (0,1 M, pH = 7,8) gegeben und 18
Stunden bei 4° C reagieren gelassen.
Nichtgebundenes Protein
Aktivität des gebundenen Proteins,
bezogen auf eingesetzte Aktivität
Aktivität des gebundenen Proteins,
bezogen auf eingesetzte Aktivität
50%
40%
Mit OZ 033 bzw. 0,5 M Phosphatpuffer kann kein
Protein und keine Aktivität vom Träger eluiert werden.
Claims (2)
1. Acrylamid-mischpolymerisate, dadurch gekennzeichnet, daß sie durch Polymerisation
von a) Acrylamid, b; Maleinsäure bzw. deren Anhydriden sowie c) Ν,Ν'-Methylen-bis-acrylamid
oder Äthylendiacrylat im Gewichtsverhältnis a : b : c von 3:0,5-1,5:0,075-0,6 in wäßriger Lösung in
Gegenwart von Radikalbildnern und Beschleunigern und gegebenenfalls anschließendes Lyophilisieren
und Erhitzen unter Anhydridbildung erhalten worden sind.
2. Verwendung des Mischpolymerisats nach Anspruch 1 zur Fixierung von Protein.
Priority Applications (13)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE1908290A DE1908290C3 (de) | 1969-02-19 | 1969-02-19 | Acrylamid-mischpolymerisat |
DE1935711*A DE1935711C3 (de) | 1969-02-19 | 1969-02-19 | Wasserunlösliches Protein. Ausscheidung aus: 1908290 |
AT717671A AT306239B (de) | 1969-02-19 | 1970-01-08 | Verfahren zur Herstellung von fixiertem Protein |
AT15070A AT300344B (de) | 1969-02-19 | 1970-01-08 | Verfahren zur Herstellung eines Mischpolymerisates |
NL7001407A NL7001407A (de) | 1969-02-19 | 1970-01-30 | |
US00009442A US3711574A (en) | 1969-02-19 | 1970-02-06 | Copolymers of acrylamide gas |
CH204570A CH536861A (de) | 1969-02-19 | 1970-02-12 | Verfahren zur Herstellung eines Mischpolymerisats und seine Verwendung zur Fixierung von Proteinen |
GB7538/70A GB1294591A (en) | 1969-02-19 | 1970-02-17 | New copolymers suitable as carrier-binders for proteins and proteins bound to said copolymer carrier-binders |
SE7001997A SE377572B (de) | 1969-02-19 | 1970-02-17 | |
JP45014507A JPS4824513B1 (de) | 1969-02-19 | 1970-02-19 | |
FR7006017A FR2032906A5 (de) | 1969-02-19 | 1970-02-19 | |
US00263058A US3775253A (en) | 1969-02-19 | 1972-06-15 | Water-insoluble carrier-bound proteins |
JP48022588A JPS5121070B1 (de) | 1969-02-19 | 1973-02-24 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE1908290A DE1908290C3 (de) | 1969-02-19 | 1969-02-19 | Acrylamid-mischpolymerisat |
Publications (3)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE1908290A1 DE1908290A1 (de) | 1970-09-10 |
DE1908290B2 true DE1908290B2 (de) | 1981-07-02 |
DE1908290C3 DE1908290C3 (de) | 1982-04-08 |
Family
ID=5725718
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE1908290A Expired DE1908290C3 (de) | 1969-02-19 | 1969-02-19 | Acrylamid-mischpolymerisat |
Country Status (9)
Country | Link |
---|---|
US (2) | US3711574A (de) |
JP (2) | JPS4824513B1 (de) |
AT (2) | AT300344B (de) |
CH (1) | CH536861A (de) |
DE (1) | DE1908290C3 (de) |
FR (1) | FR2032906A5 (de) |
GB (1) | GB1294591A (de) |
NL (1) | NL7001407A (de) |
SE (1) | SE377572B (de) |
Families Citing this family (32)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5677132A (en) * | 1971-05-20 | 1997-10-14 | Strahilevitz; Meir | Immunological assay reagent package |
BE791750A (fr) * | 1971-11-23 | 1973-05-22 | Bayer Ag | Penicillinacylase liee a un support et son procede de production |
BE791748A (fr) * | 1971-11-23 | 1973-05-22 | Bayer Ag | Procede de production d'acide 6-aminopenicillanique par ruptureenzymatique de penicillines |
DE2215687C3 (de) * | 1972-03-30 | 1980-12-11 | Bayer Ag, 5090 Leverkusen | Neue wasserunlösliche Proteinpräparate |
US3941756A (en) * | 1972-03-20 | 1976-03-02 | Bayer Aktiengesellschaft | New water-insoluble preparations of peptide materials, their production and their use |
DE2214442C3 (de) * | 1972-03-24 | 1981-09-10 | Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim | Verfahren zur Überführung von Glucose in Gluconsäure |
US4044196A (en) * | 1972-03-30 | 1977-08-23 | Bayer Aktiengesellschaft | Crosslinked copolymers of α,β-olefinically unsaturated dicarboxylic anhydrides |
DE2215539C2 (de) * | 1972-03-30 | 1984-08-02 | Bayer Ag, 5090 Leverkusen | Neue wasserunlösliche Enzym-, insbesondere Penicillinacylase-oder Enzyminhibitor-Präparate |
DE2247163A1 (de) * | 1972-09-26 | 1974-03-28 | Merck Patent Gmbh | Traegermatrix zur fixierung biologisch wirksamer stoffe und verfahren zu ihrer herstellung |
CA1023287A (en) * | 1972-12-08 | 1977-12-27 | Boehringer Mannheim G.M.B.H. | Process for the preparation of carrier-bound proteins |
US4081329A (en) * | 1972-12-08 | 1978-03-28 | Boehringer Mannheim Gmbh | Preparation of carrier-bound macromolecular compounds |
CH593992A5 (de) * | 1972-12-23 | 1977-12-30 | Roehm Gmbh | |
CS167593B1 (de) * | 1973-02-05 | 1976-04-29 | ||
US4070348A (en) * | 1973-07-25 | 1978-01-24 | Rohm Gmbh | Water-swellable, bead copolymer |
DE2363854C3 (de) * | 1973-12-21 | 1980-01-03 | Behringwerke Ag, 3550 Marburg | Substrat zur Proteinasebestimmung sowie dessen Herstellung |
CS173849B1 (de) * | 1974-04-25 | 1977-03-31 | ||
IT1008202B (it) * | 1974-07-31 | 1976-11-10 | Lostia Onofrio | Fibre inglobanti anticorpi antige ni antisieri procedimento per la loro preparazione e loro impieghi |
DK143689C (da) * | 1975-03-20 | 1982-03-15 | J Kreuter | Fremgangsmaade til fremstilling af en adsorberet vaccine |
JPS5443763Y2 (de) * | 1975-10-21 | 1979-12-17 | ||
US4035316A (en) * | 1975-11-24 | 1977-07-12 | California Institute Of Technology | Cell specific, variable density, polymer microspheres |
US4197220A (en) * | 1976-08-27 | 1980-04-08 | California Institute Of Technology | Impregnated metal-polymeric functional beads |
US4065607A (en) * | 1977-03-23 | 1977-12-27 | Pfizer Inc. | Terpolymers of maleic anhydride and their use as scale control agents |
US4223120A (en) * | 1977-03-23 | 1980-09-16 | Pfizer Inc. | Terpolymers of maleic anhydride and their use as scale control agents |
JPS5470384A (en) * | 1977-08-22 | 1979-06-06 | Inst Obu Kiyansaa Risaachi Roi | High molecular complex |
GB2137637B (en) * | 1983-04-06 | 1986-10-15 | Int Paint Plc | Polymers containing anhydride groups |
US4898824A (en) * | 1986-12-09 | 1990-02-06 | Miles Inc. | Crosslinked polyacrylamide-sulfhydryl polymer for immobilization of biologically active substances |
US4988568A (en) * | 1988-03-30 | 1991-01-29 | Nippon Zeon Co., Ltd. | Hydrophilic fine gel particles and process for production thereof |
US5213893A (en) * | 1990-09-14 | 1993-05-25 | Nippon Shokubai Co., Ltd. | Waterproofing agent for cable |
US6090925A (en) * | 1993-03-09 | 2000-07-18 | Epic Therapeutics, Inc. | Macromolecular microparticles and methods of production and use |
US5981719A (en) * | 1993-03-09 | 1999-11-09 | Epic Therapeutics, Inc. | Macromolecular microparticles and methods of production and use |
GB201005382D0 (en) | 2010-03-30 | 2010-05-12 | Croda Int Plc | Copolymer |
CN105708892A (zh) * | 2016-03-11 | 2016-06-29 | 李志鹏 | 一种治疗足部骨伤裂口的外敷中药及其制备方法 |
Family Cites Families (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US2977334A (en) * | 1956-10-04 | 1961-03-28 | Monsanto Chemicals | Derivatives of ethylene/maleic anhydride copolymers |
US3450680A (en) * | 1962-06-27 | 1969-06-17 | Nalco Chemical Co | Acrylamide terpolymers and their use in paper making process |
GB1058260A (en) * | 1963-01-02 | 1967-02-08 | Monsanto Co | Removal of surface active agents from water |
US3536587A (en) * | 1967-10-14 | 1970-10-27 | Mark A Stahmann | Enzyme resin and a process for the preparation thereof |
US3488215A (en) * | 1968-06-21 | 1970-01-06 | Nat Patent Dev Corp | Nonfogging transparent material |
US3597219A (en) * | 1968-09-27 | 1971-08-03 | Monsanto Co | Chillproofing of beverages using insoluble polymer-enzyme product |
-
1969
- 1969-02-19 DE DE1908290A patent/DE1908290C3/de not_active Expired
-
1970
- 1970-01-08 AT AT15070A patent/AT300344B/de not_active IP Right Cessation
- 1970-01-08 AT AT717671A patent/AT306239B/de not_active IP Right Cessation
- 1970-01-30 NL NL7001407A patent/NL7001407A/xx unknown
- 1970-02-06 US US00009442A patent/US3711574A/en not_active Expired - Lifetime
- 1970-02-12 CH CH204570A patent/CH536861A/de not_active IP Right Cessation
- 1970-02-17 GB GB7538/70A patent/GB1294591A/en not_active Expired
- 1970-02-17 SE SE7001997A patent/SE377572B/xx unknown
- 1970-02-19 JP JP45014507A patent/JPS4824513B1/ja active Pending
- 1970-02-19 FR FR7006017A patent/FR2032906A5/fr not_active Expired
-
1972
- 1972-06-15 US US00263058A patent/US3775253A/en not_active Expired - Lifetime
-
1973
- 1973-02-24 JP JP48022588A patent/JPS5121070B1/ja active Pending
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
GB1294591A (en) | 1972-11-01 |
DE1908290A1 (de) | 1970-09-10 |
AT306239B (de) | 1973-03-26 |
AT300344B (de) | 1972-07-25 |
FR2032906A5 (de) | 1970-11-27 |
NL7001407A (de) | 1970-08-21 |
JPS5121070B1 (de) | 1976-06-30 |
US3711574A (en) | 1973-01-16 |
JPS4824513B1 (de) | 1973-07-21 |
SE377572B (de) | 1975-07-14 |
US3775253A (en) | 1973-11-27 |
DE1908290C3 (de) | 1982-04-08 |
CH536861A (de) | 1973-05-15 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
DE1908290C3 (de) | Acrylamid-mischpolymerisat | |
DE2426988C2 (de) | Verfahren zur Trägerbindung biologisch aktiver Proteine | |
EP0088964B1 (de) | Verfahren zur Herstellung von unlöslichen, nur wenig quellbaren Polymerisaten von basischen Vinylheterocyclen und deren Verwendung | |
DE2633259C3 (de) | Verfahren zum Unbeweglichmachen von Enzymen oder enzymhaltigen Zellen | |
DE2624002C2 (de) | Verfahren zur Verwendung eines Enzyms zur Umwandlung einer organischen Substanz in mindestens eine andere organische Substanz durch enzymatische Reaktion | |
DE2839170C2 (de) | Chromatographisches Material | |
DE2527884C2 (de) | ||
DE1915970B2 (de) | Verfahren zur Herstellung von durch Brückenbildner an inaktive Proteine gebundenen aktiven Proteinsubstanzen durch Polymerisation | |
CH619003A5 (de) | ||
CH621561A5 (en) | Process for producing a bromocyan-activated, hydrophilic, polymeric carrier for biologically active compounds in dried form | |
EP1402008B1 (de) | Verfahren zur aufreinigung eines enzyms und hiernach hergestelltes, aufgereinigtes enzym sowie verwendung des enzyms | |
DE1948273A1 (de) | Verfahren zur enzymatischen Verarbeitung eines Substrates mittels einer Enzym-Polymer-Verbindung | |
DE2363201B2 (de) | Verfahren zur Isolierung und Reinigung von Kallikrein aus biologischem Material | |
DE69434001T2 (de) | Reinigung von vitamin-k abhaengigen proteinen durch membrane chromatographie | |
DE1935711C3 (de) | Wasserunlösliches Protein. Ausscheidung aus: 1908290 | |
DE2501840C3 (de) | Verfahren zur Unlöslichmachung eines Enzyms | |
DE2417265A1 (de) | Traegergebundene enzyme | |
DE2061009A1 (de) | Verfahren zur Fixierung von Polymeren | |
DE2131139C2 (de) | Quervernetzte, perlförmig ausgebildete Agar- oder Agarose-Derivate, Verfahren zu ihrer Herstellung und ihre Verwendung | |
DE2413694B2 (de) | Wasserunlösliches, enzymatisch aktives, unbeweglich gemachtes Enzymmaterlal | |
DE2260184C3 (de) | Verfahren zur Herstellung einer trägerfixierten makromolekularen Verbindung | |
DE2724081A1 (de) | Immobilisierte, nicht-spezifische proteasen und verfahren zu deren herstellung | |
DE2805366C2 (de) | ||
DE2839737A1 (de) | Verfahren zur enzymatischen umsetzung mittels traegergebundener enzyme | |
DE2260185C3 (de) | Trägergebundenes Protein und Verfahren zu seiner Herstellung |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C3 | Grant after two publication steps (3rd publication) | ||
8339 | Ceased/non-payment of the annual fee |