DE1770740C3 - Neue Pyrimidinnucleoside (Polyoxine ], K und L) und Verfahren zu ihrer Herstellung - Google Patents
Neue Pyrimidinnucleoside (Polyoxine ], K und L) und Verfahren zu ihrer HerstellungInfo
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Description
HOOC OC-NCH O H2NCH
HCOH
HCOH
OH OH
HOCH
CH2OCONH2
(D
(ID Streptomyces cacaoi var. asoensis ATCC 19 093
oder 19 094 in einem Kulturmedium, das eine Kohlenstoff-, eine Stickstoffquelle und anorganische
Stoffe enthält, bei einer Temperatur von ?5 -35°C dadurch gekennzeichnet, daß man die
angereicherten, antibiotisch wirksamen Stoffe in
üblicher Weise aus dem Medium isoliert und in die einzelnen Verbindungen trennt.
Die Erfindung betrifft neue antibiotische Pyrimidin-
,o nucleoside, nachfolgend als Polyoxine J K und L
bezeichnet, sowie ein Verfahren zu ihrer Herstellung.
Diese neuen Polyoxine J, K und L zeigen spezifische
fungicide Wirksamkeiten gegen verschiedene Arten
von phytopathogenen Pilzen und sind als landwirt-
schaftliche Fungizide zum Schutz von Pflanzen ver-
wendbar. , , . ,. r ,
Die neuen Polyoxine J, K und L besitzen die folgenden
chemischen Strukturformeln:
J:
40
CH2OCONH2
(HI)
f'5
OH OH
2. Verfahren zur Herstellung der Verbindungen emäß Anspruch 1 durch Züchten eines Stammes
HOCH
CH2OCONH2
0,05N-ItCI
ina x
K:
χ IMISN-NnO
L: /
HOOC
OC-NCH 0
OC-NCH 0
I
H2NCH
H2NCH
HCOH
(ΠΙ)
OH OH
HOCH
CH2OCONH2
15
Folgende physikochemischen Eigenschaften der Poiyoxine J, K und L wurden ermittelt:
1. Zersetzungspunkte
Die Poiyoxine J, K und L nachstehend auch mit J1 K und L bezeichnet, zeigen keinen definierten
Schmelzpunkt, sie zersetzen sich allmählich bei Temperaturen oberhalb 20O0C.
2. Analysewerte der Elementarzusammensetzung
J, K und L enthalten die Elemente Kohlenstoff, Wasserstoff, Stickstoff und Sauerstoff in den folgenden
Gew.-Prozenten, wobei die Differenz zu 100 Sauerstoff ist:
J: C 41,71, H 5,25,
K: C 44,25, H 5,07,
L: C 40,45, H 5,09,
K: C 44,25, H 5,07,
L: C 40,45, H 5,09,
N 13,90;
N 13,92;
N 14,37.
N 13,92;
N 14,37.
= 259 πΐμ (E!*m 138).
1 = 262 ηΐμ (Ε1,* 109).
1 = 262 ηΐμ (Ε1,* 109).
= 259 mix (EJ* 170).
'= 262 πΐμ (Ei*. 132).
'= 262 πΐμ (Ei*. 132).
Abbauuntersuchungen zeigen, daß die Absorption von J auf den Thymin-Rest und die Absorptionen
von K und L auf den Uracil-Rest zurückzuführen ist.
7. IR-Absorptionsspektren
Die IR-Absorptionsspektren für J, K und L, in Kaliumbromidtabletten gemessen, werden in den
Abb. 4, 5 bzw. 6 gezeigt. Die Hauptabsorption trat bei den folgenden Wellenlängen auf:
J: 3300—3400, 1680, 1600, 1475, 1408, 1350,
1278, 1125, 1060,783,572 cm-'.
1278, 1125, 1060,783,572 cm-'.
K: 3300—3400, 1690, 1640, 1470, 1378, 1315,
1283, Π27, 1058, 780, 565 cm-'.
1283, Π27, 1058, 780, 565 cm-'.
L. 3300—3400, 1670, 1600, 1480, 1412, 1350,
1275, 1120, 1060,770,570 cm-'.
1275, 1120, 1060,770,570 cm-'.
8. Löslichkeiten
Jede der Verbindungen J, K und L ist leicht löslich in Wasser, aber schwerlöslich in Methanol,
Äthanol, Aceton, Chloroform, Benzol und Äther.
9. PK-Werte
Jede der Verbindungen J, K und L ist amphoter und besitzt drei titrierbare Gruppen. Die PK-Werte
sind folgende:
35 J: 3,0,
K: 3,0,
L: 3,0,
K: 3,0,
L: 3,0,
7,1,
7,2,
7,1,
7,2,
7,1,
9,9.
9,3.
9,4.
9,4.
3. Molekulargewichte
Da J, K und L amphotere Verbindungen sind, wurden die Molekulargewichte durch Titration aus
den Äquivalentgewichten bestimmt und ergaben sich zu:
J: 499.
K: 590.
L: 495.
K: 590.
L: 495.
4. Summenformeln
J: C17H25N5O12.
K: C22H30N11O13.
L: C16H23N5O12.
K: C22H30N11O13.
L: C16H23N5O12.
5. Spezifische optische Drehungen
j: [„]«■' = +37,7° (C = 1%, in Wasser).
K: [«] ψ = -16,5" (C = 1%, in Wasser).
L: [„]r = +34,4° (C = 1%, in Wasser).
j: [„]«■' = +37,7° (C = 1%, in Wasser).
K: [«] ψ = -16,5" (C = 1%, in Wasser).
L: [„]r = +34,4° (C = 1%, in Wasser).
10. Beständigkeiten
Jede der Verbindungen J, K und L ist etwas instabil in alkalischer Lösung, aber extrem beständig in sauren
und neutralen Lösungen. Es tritt keine Zersetzung ein beim Erhitzen auf 1000C während 15 Minuten
im pH-Bereich von 2,0—7,0. J, K und L sind auch
gegenüber UV-Bestrahlung stabil.
Antimikrobielles Wirkungsspektrum
Tabelle 1 zeigt die minimalen Hemmkonzentrationen der Poiyoxine J, K und L gegen phytopathogene
Organismen und Bakterien. Die minimale Hemmkonzentration wurde 48 Stunden nach der Inkubation
unter Verwendung eines Kartoffel-Saccharose-Agarmediums
bestimmt.
Testorganismus
Minimale llemmkonzcnlralion
6. UV-Absorptionsspektren fto
Die Spektren für J, K und L in HCl 0,05 N HCl (durchgezogene Kurve) und in NaOH 0,05 N (gestrichelte
Kurve) werden in den Abb. 1 bzw. 2 bzw. 3 gezeigt. Diese Spektren zeigen die folgenden
Maxima: fts
j;
/EVNaO" =
= 264 πΐμ (E|* 158).
= 267 ΐημ (El*, 133).
= 267 ΐημ (El*, 133).
Alternaria kikuchiana | 50 | 25 | 12,5 |
Cochliobolus miyabeiuuis | 6,25 | 3,12 | 6,25 |
Pellicularia sasakii | KX) | 100 | KX) |
Piricularia oryzae | 12,5 | 1,56 | 6,25 |
Guignardia laricina | 1,56 | 1,56 | 1,56 |
Corticium rolfsii | KX) | 12,5 | :oo |
Fortsetzung
Sclerotinia cinerea
Cladosporium fulvum
Helminthosporium
sigmoideum
Cladosporium fulvum
Helminthosporium
sigmoideum
Minimale llcmmkon/cnlratuin
(|ig/ml)
J K 1.
6,25
12,5
6,25
12,5
6,25
1.56
50
50
25
3,12 100
3.12
3.12
Bei folgenden Mikroorganismen ist die minimale Hemmkonzentration der Polyoxinc J, K und L
jeweils > 50 μg/ml.
Trichophyton asteroides,
Trichophyton interdigitalis,
Trichophyton rubrum,
Candida albicans,
Candida tropicalis,
Candida crusei,
Cryptococcus ncoformans,
Aspergillus fumigatus,
Aspergillus lcrreus,
Mucor racemosus,
Nocardis asteroides,
Trichomonas vaginalis.
Staphylococcus aureus 209 p,
Micrococcus luteus.
Bacillus subtilis,
Mycobacterium smcgmatis,
Mycobacterium 607,
Mycobacterium phlci,
Mycobacterium BCG,
Eschcrichia coli,
Pscudomonas acruginosa,
Scrratia marscens,
Proteus viilgalis,
Xanthomonas oryzac.
Trichophyton interdigitalis,
Trichophyton rubrum,
Candida albicans,
Candida tropicalis,
Candida crusei,
Cryptococcus ncoformans,
Aspergillus fumigatus,
Aspergillus lcrreus,
Mucor racemosus,
Nocardis asteroides,
Trichomonas vaginalis.
Staphylococcus aureus 209 p,
Micrococcus luteus.
Bacillus subtilis,
Mycobacterium smcgmatis,
Mycobacterium 607,
Mycobacterium phlci,
Mycobacterium BCG,
Eschcrichia coli,
Pscudomonas acruginosa,
Scrratia marscens,
Proteus viilgalis,
Xanthomonas oryzac.
Die Polyoxinc J, K und L zeigen hohe Wirksamkeit gegen z. B. Schwarzflcckigkcit bei Birnen (Alternaria
kikuchiana), Blattpilz bei Tomaten (Cladosporium fulvum), Sproß-Trockcnfäulc bei japanischer Lärche
(Guignardia laricina), Blattrost (Cochliobolus miyabcanus) und Braunflcckigkcit (Sclerotinia cinerea).
Phytotoxizität
Von keiner der erfindungsgemäßen Polyoxinc wurden phytotoxisehc Anzeichen beim Besprühen von
Reispflanzen mit einer Konzentration von 800 ppm oder beim Besprühen von anderen Nut2:pflanzcn, wie
Äpfel, Birnen und Tomaten mit einer Konzentration von 2(X) ppm festgestellt.
Toxizität
Beim ToxiziUHsversueh mit Mäusen waren die Polyoxinc J, K und L nichttoxisch bei intravenöser
Injektion von 5(K) mg/kg oder oraler Verabreichung von 15 g/kg.
Beim ToxizilUtsvcrsuch mit Kaninchen erzeugte eine Lösung von 400 mg/ml keine Reizung, wenn sie
in den Konjunclivalsaek von Kaninchen eingeträufelt wurde.
Beim Toxizitatsversuch mil Fischen erwiesen sich
alle Polyoxinc J, K und L in Konzentrationen von IO ppm als nichttoxisch während einer Einwirkiingszcit
von 75 Stunden.
Die folgenden Versuche zeigen die verbesserten fungiciden Wirkungen der Polyoxinc J, K und L
gegenüber bisher bekannten Substanzen. Die jeweiligen Konzentralionsangaben in ppm sind die Konzentrationen
der wirksamen Substanz in der Tcstlösung, die zum Einsatz gelangte.
Schwarzflcckcn-Krankhcit (Alternaria kikuchiana)
bei Birnen
bei Birnen
Es wurden zwei Birnbäume in Topfen je Standort
(Sorten: Pyrus aromatica Kikuehi el Nakai) zum Test ausgewählt und mit festgelegten Konzentrationen
der zu untersuchenden Substanz und der Vergleichssubstanz besprüht. Nach dem Trocknen an der Luft
wurde eine Sporensuspension des Schwarzfieckcrregcrs durch einen Sprüher inokuliert. Nach dci
Inokulation wurden die behandelten Pflanzen ir eine Vakuumglocke gesetzt und bei einer Temperatui
von 28° C gehalten. Nach 4 Tagen wurden 11 Blatte!
je Baum auf das Auftreten der Krankheiten nach der folgenden 5 Indexgraden geprüft:
treten der Krankheit
(Bcfallindcx)
2
3
4
3
4
0—20%
20—40%
40 60%
60-80%
80-100%
20—40%
40 60%
60-80%
80-100%
Die Ergebnisse sind in Tabelle II zusamincngcstcll Tabelle 11
jo
Substanz |
Konzen
tration (ppm) |
Mittlerer
Bcfallindcx je Blatt |
Priivenliv-
wcrt (%) |
Polyoxin .1 | 100 50 |
0.9 | 78,6 |
Polyoxin K so |
100 50 |
1.2 | 71.4 |
Polyoxin L | U)O 50 |
1,1 | 73,8 |
Äthylen-1,2-bis- ss (dimethylthio- earbamoyl-thio- carbamoyl- disuH'id) |
500 | 1,8 | 57.2 |
Kontrolle
4.2
Allcrnaria-Blatlfleekkrankhcit am Apfel
In Feldversuchen mit benetzbarem Polyoxinpiilv
das jeweils die Polyoxinc J, K und L enthielt, wurd
Apfelbaume 8mal alle IOTage besprüht. Die Ergi
nisse sind in Tabelle 111 angegeben.
das jeweils die Polyoxinc J, K und L enthielt, wurd
Apfelbaume 8mal alle IOTage besprüht. Die Ergi
nisse sind in Tabelle 111 angegeben.
tration
der
tivwerl kranke
(ppm) | Krank | (%) | Fleck- s | IO | 0 | |
heits- | bcrcichc/ | 0,5 | ||||
KX) | flecken | 97,5 | BlatlfUiche | |||
50 | je BIaH | 94,2 | 1 | |||
0.5 15 | ||||||
100 | 91,5 | |||||
Polyoxin J | 50 | 2.5 | 98,9 | 0 | ||
(benetzbares | 5.8 | 0 | ||||
Pulver) | 100 | 97,9 | ||||
Polyoxin K | 50 | 8,5 | 94,6 | 0 20 | ||
(benetzbares | 12,1 | |||||
Pulver) | KX) | 96.5 | ||||
Polyoxin L | 2.1 | |||||
(benetzbares | 5,4 | |||||
Pulver) | 0 | |||||
Polyoxin B | 3 5 | |||||
(benetzbares | ||||||
Pulver) | ||||||
Unbchandclt | 100 | |||||
25
Brauntlcckcn-Krankhcit (Coehliobolus miyabeanus)
bei Rcispflanzen
Festgelegte Konzentrationen einer Lösung der Polyoxinc und der Vergleichssubstanz wurden auf
Reispflanzen in Topfen (Sorte: Jukkoku) gesprüht. Nachdem die Testpflanzen 1 Stunde an der freien
Luft belassen worden waren, wurde eine Sporensuspension des Testpilzes mittels eines Sprühers
inokuliert. Danach wurden sie innerhalb eines Gc- j.s
wächshauscs gehalten, und nach 3 Tagen wurde die Anzahl der kranken Flecken geprüft (drei Töpfe je
Standort). Die Ergebnisse sind in Tabelle IV angegeben.
40
Tabelle IV |
Konzen
tration (ppm) |
Mittlere
Zahl der kranken Flecken je UIaIt |
Piäventix
wert |
Substanz. | SSSS | 3,5 3.4 4,6 5.5 |
89,2 89,5 85.8 83,0 |
Polyoxin ,1 Polyoxin K Polyoxin L Polyoxin B |
500 | 6.5 | 80,0 |
2,4-Dichlor- 6-(o-chlor- anilino)- 1,3,5-1 ria/.in |
32,5 | 0 | |
Unbchandclt | |||
In den deutschen Patentanmeldungen P 1492 111.0
und 16 17 768 ist bereits ein Verfuhren zur Herstellung von neuen als Polyoxin A und Polyoxin B
bzw. als Polyoxinc D. E, F. O und H bezeichneten
Pyrimidinnuclcosidcn durch Züchtung eines Stummes von Strcplomyccs cacuoi var. asoensis ATCC-Nr.
19 093 oder 19 094 vorgeschlagen worden.
Das Verfahren zur Herstellung der Polyoxinc J. K und L umfaßt die gleiche Züchtung eines Stammes
Slreptomyces cacaoi var. asoensis ATCC-Nr. 19 093 oder 19 094 in einem Kulturmedium, das eine Kohlenstoff-,
eine Stickstoffquelle und anorganische Stoffe enthält, bei einer Temperatur von 25—350C und ist
dadurch gekennzeichnet, daß man die angereicherten, antibiotisch wirksamen Stoffe in üblicher Weise aus
dem Kulturmedium isoliert und in die einzelnen Polyoxinc J, K und L auftrennt.
Die erfindungsgemäß verwendeten polyoxinproduzierenden
Mikroorganismenstämme gehören zu einer neuen Art der Gattung Streptomyces und wurden aus
dem Boden von Bochu, Asogun, Kumamoto Prefecture, Japan, isoliert.
In der Praxis der Erfindung kann die Fermentation
entsprechend dem üblichen Fermentationsverfahren für die bekannten Streptomyces-Arten durchgeführt
werden. Als Kohlenstoffquellen werden z. B. Stärke, Dextrin. Glukose, Glycerin, Maltose, Fruktose verwendet.
Fleischextrakte, Pepton, Maisquellflüssigkeit, Sojabohnenpulver, Erdnußpulver, Baumwollsamcnpulvcr.
Hefe werden als Stickstoffquellen verwendet. Anorganische Stoffe, wie Natriumchlorid, Kaliumchlorid,
Calciumcarbonat, Phosphate können zu dem fast neutralen flüssigen Nährmedium hinzugefügt
werden. In das Medium wird der Stamm Streptomyces cacaoi var. asoensis eingeimpft, und die Züchtung
wird unter Rühren bei einer Temperatur von 25—35'1C ausgeführt. Im allgemeinen erreicht die
Konzentration der produzierten Antibiotika ein Maximum nach etwa 40 bis 120 Stunden der Züchtung.
Da dieser Zeitpunkt der maximalen Konzentration entsprechend den Belüftungs- und Rührbedingungen
variieren kann, selbst wenn dieselbe Temperatur und ein Züchtungsmedium gleicher Zusammensetzung
verwendet werden, ist es ratsam, den Zeitpunkt in jedem Falle durch Bestimmung der
Aktivität zu ermitteln.
Die üblichen physikochemischcn Methoden können
zur Isolierung der Polyoxinc aus der Kulturbrühc angewendet werden. Zum Beispiel kann das Myccl
zuerst durch Filtration unter Zugabe einer Filtrierhilfe, wie z. B. einer sauren oder neutralen Diatomecncrdc,
abfiltriert und das Filtrat sodann an Aktivkohle bei saurem oder neutralem pH-Wert adsorbiert
werden. Die Polyoxinc können von der Aktivkohle durch ein Lösungsmittel, wie ein Gemisch aus Wasser
und wassermischbaren Lösungsmitteln, ζ. Β Methanol. Äthanol, Propanol, Butanol. Aceton
Essigsaure und Pyridin, cUiicrl werden. Du Polyoxinc
ampholcrc Verbindungen sind, werden sie ai
Kationen- oder Anioncnuustuuseherhurzcn adsor bicrt und lassen sich durch geeignete siuurc, alkalisch!
oder Sulzlösungcn eluicren. Zum Beispiel kann da Ztlchtungsültrat, nachdem mun es ungesäuert hat
Über cine SUuIc geschickt werden, die ein start siuires Kutionenuustuuschcrharz des Sulfonsuuretyp
mit 8% Vernetzung enthält; die Polyoxine wcrclci darun udsorbiert und können mittels einer wlllhigei
Lösung von 5% Natriumchlorid oder eines Phosphat puffers von pH 4,3 eluicrt werden. Dus rohe Pulvc
des Polyoxinkomplcxcs kunn dann durch Säulen
Chromatographie unter Verwendung eines Ionen aiiHluuschcrs, wie z. B. eines lonenutisluiischcrs au
sulfoiUhyliertem vernetzten! Dextran, Sulfolllhyleellti
lose oder Sulfomethylcellulose oder durch Zonen
elektrophorese gereinigt werden,
inn nth ic
9 X 10
Die vollständige Trennung der Polyoxine J. K gegeben, und die erhaltenen Ausfüllungen wurden
und L kann durch Verteilungschromatographie unter unter vermindertem Druck getrocknet, wobei J-Us
Verwenduntt von Cellulosepulver oder Silicagel durch- eines braunen pulverförmigen Rohproduktes erhal-
lieführl werden. Es kann mittels eines geeigneten icn wurden. 300 g dieses Pulvers wurden in passer
Lösungsmittels z.B. eines Gemisches aus Wasser 5 aufgelöst und auf einen pH-Wert von 2,0 angesäuert.
und wassermischbaren Lösungsmittel!·, wie Mctha- Die angesäuerte Lösung wurde durch eine baue
nol Äthanol, Propanol, Butanol, Aceton, Essigsäure. geschickt, die mit 4,>
Litern eines stark sauren KaI-
Pvridin und 75%iges Phenol, entwickelt werden. Da- mnenaustauscherhar/.es gefüllt war (H-l-orm; M)
bei werdet die Polyoxine J, K und L und die anderen HX. mesh). Nach Waschen mit Wasser wurden die
Polyoxinkomponenten getrennt eluiert. m Polyoxine mit einer 5%igcn wäßrigen Natriumehlo-
Durch Umkristallisierung aus wäßrigem Alkohol ridlösung eluiert. Die aktiven Eluate wurden gesam-
werden die Polyoxine J. K und L einzeln als weiße melt und mit Kohle behandelt, um anorganische
PnWerVrh-ilten Salzc zu entfernen. Nach Konzentrieren der Eluate
' aus der Kohle-Behandlung wurden 60 g eines hell-
Beispiel 1 15 braunen Pulvers erhalten.
Dieses Pulver wurde nochmals am Kationenaus-
Es wurde ein Züchtungsmediuni der folgenden tauscher Chromatographien. Das Pulver wurde in
Zusammensetzung hergestellt: 0,1 -m Phosphatpuffer vom pH-Wert 2,0 gelost und an
einer Säule adsorbiert, die mit 2 Litern des stark
Glukose '-s£ 20 sauren Kationenaustauscherharzes (100- 200 mesh)
Stärke · · 5ιί u iicfüllt und mit Phosphatpuffer vom pH-Wert 2,0 ab-
SojabohncnmehV'.'. 20 g gepuffert war. Die Polyoxine wurden mittels
Ammoniumsulfat 5 g 0,1 -m Phosphatpuffer vom pH-Wert 4,3 eluiert. Die
Trockenhefe 1() S aktiven Eluate wurden, wie oben besehrieben, mn
Natriumchlorid 5 g j.s Kohle behandelt, um anorganische Salze zu ent-
Calciumcarbonat 2 g fernen, wobei sich eine Ausbeute von 35 g eines hell-
\Vasscr..' ll)()() ml gelben Pulvers ergab. Dieses wurde durch Chromato
graphie unter Verwendung eines stark sauren lonen-
Das Medium wurde auf einen pH-Wert 7,6 einge- austauschers aus sulfoäthyliertcin vernetzten! Dexstellt
und sterilisiert. }° trän weiter gereinigt. Hierzu wurde das gelöste PuI-
Der Stamm Streplomyces cacaoi var. asoeiiM* ver auf eine Säule von 50 g des Austauschers, die /u-ATCC
19 093 wurde in das Züchtungsmedium ein- vor mit 0,01-m Phosphatpuffer (pH 2,0) gepuffert
ueimpft und darin bei einer Temperatur von 27"C worden war, aufgebracht. Durch allmähliches Erhöiinter
Rühren, das aufrechterhalten wurde, bis maxi- hen der Pufferkonzentralion bis auf 0,1-m wurden
male Aktivität erzielt worden war. gezüchtet. Die .15 die Polyoxine eluiert. Es wurden 18 g eines gerei-Priifung
wurde durchgerührt unter Verwendung von nigten weißen Pulvers des Polyoxin-Gcmisches
Allcrnaria kikuchiana und Cochliobolus miyabeanus erhalten.
als Test-Organismen. Wenn der Stamm als,Schul .IcI- Trennung von Polyoxin J, K und L
kiillur in 300-ml-Eiiennieyerkolben, die 70ml des
Mediums enthielten, gezüchtet wurde, erreicht die 40 Das erhaltene Polyoxin-Gemisch wurde in Was-
Aktivität ihr Maximum nach 72 96 Stunden. Wenn ser gelöst und die gebildete Lösung durch eine Säule
die Züchlungsflüssigkeil aus der 48stündigcn Schiit- gegeben, die mit 500 Litern eines schwach hasischen
lelkullur in einen Fermenlalionslank enthaltend Anionenaustauscherhar/es aus Formaldehyd-Phenol-400
ml des gleichen Mediums eingerührt und die Polydiamin-Polykondensalionsmaterialien (100
Züchtung unter Rühren mit einer Geschwindigkeit .|s 200 mesh) gelullt war.
von 220 Upm und einem Luftdurchsatz.von 400 Litern Der Abfluß wurde mit dem Waschwässern ver-
pro Minute durchgeführt wurde, erreichte die Pro- einigt. Die erhaltene Lösung wurde unter verminduklion
der Polyoxine ein Maximum nach etwa dertem Druck konzentriert, wobei sich 10 μ oines
% 120/üchtungsstunden. weißen Pulvers ergaben, das ein Gemisch der Poly-
Die Aktivität betrug I K(K) μμ/ml auf der Hasis von s<
> oxine A. I). Ci, H1J, K und L war; die Polyoxine I). I'·
Polyoxin B. und I·' waren an dem Austauscherhaiv. adsorbiert.
Weiterhin wurde eine Chromatographie an einer
Isolierung und Reinigung Cellulosesatile (55 χ 1000 mm) unter Verwendung
des Lösungsmittelsystems Hutanol-Essigsa1 ure-Wasser
430 Liter der FcrmenlalionslUlssiigkeil wurden mit 55 (4:1:2) durchgeführt.
IO%iger Salzsilure bis zu einem pll-Werl von 2.0 Zunächst wurde Polyoxin H eluiert, sodann IOIg-
angesäuert und dann auf 70"C erhitzt. Bs wurden ten die Polyoxine K, A, J, G, L und B,
9 kg Dialomeenerde hinzugefügt, darin wurde durch Wenn diese nicht vollständig getrennt waren, wurde
eine Filterpresse nitriert. Das Fillral wurde mit 8 kg die Collulnse-Sllulcnchromatogrnphie nochmals uiiiei
Aktivkohle und 8 kg Dialoineencide behandelt. f)0 Verwendung von 75%igem Phenol als LösungsmiHc
diirchgerllhrt und lillriert. Die Aktivkohle wurde vorgenommen, um die Polyoxine J, K und L voll·
mit 350 L iter Wasser ausgewaschen. Die aktiven ständig abzutrennen.
Materialien wurden dann zweimal mit 100 Liter Auf diese Weise wurden 0,1 g Polyoxin J, 0.OiU
60%igem wäßrigem Aceton eluierl. Die eluierte Polyoxin K und 0,08 g Polyoxin L aus 10 g dos
Lösung wurde im Vakuum konzentriert. So wurden („ Polyoxin-Gemisehcn erhalten
54 Liter Flüssigkeit, die das erwünschte Produkt ent- Die Kristallisation schließlich wurde aus wäßrigen
hielten, gewonnen. Äthanol durchgeführt. Die Polyoxine J, K und I
50 Liier Aceton wurden zu der Flüssigkeit hinzu- wurden als farblose Pulver uewonnen,
17
F.in Züehtungsmedium der folgenden Zusammensetzung
wurde hergestellt:
Saccharose W) g
Glukose 15 g
Trocken hefe 35 μ.
Sojabohnenmehl 15 g
Kaliumphosphat 2 g
Calciumearbonat 4 g
Wasser HH)OmI
Die Züchtung wurde bei dem pH-Wert des Me- is
diiims in ähnlicher Weise wie nach Beispiel I durchgeführt.
72 bis 96 Stunden nach dem Beimpfen mit Slreplomyces cacaoi var. asocnsis ATCC 19 093
betrug die Aktivität 3 mg/ml auf der Basis von Polyoxin B bei Verwendung von Alternaria kikuehiana
als Test-Organismus.
Die PoI)OXInC J, K und L wurden von dem
Züchtungsmedium in ähnlicher Weise wie es im Beispiel I beschrieben worden ist abgetrennt.
Ausheute: Polyoxin J 0,5 g, Polyoxin K. 0,3 g und ^
Poiyoxin 1. 04 g aus 28 g des Polyoxingeniisches.
740
Min Züchtungsmedium der folgenden Zusammensetzung wurde hergestellt:
Lösliche Stärke 70 g
(ilukose 5 g
Sojahohnenmehl 15 g
Natriumchlorid 2 g
Calciumcarbonat 4 ü
Wasser HKH) ml
Der pH-Wert des Mediums wurde auf 7,0 eingestellt und die Züchtung in ähnlicher Weise wie im
Beispiel I ausgeführt, mit der Abwandlung, daß das Beimpfen mit Strcptomyees cacaoi var. asocnsis
ATCC 19 094 vorgenommen wurde.
72 bis 96 Stunden nach dem Beimpfen des Mediums erreichte die Konzentration der Polyoxine
7 mg/ml, berechnet auf der Basis der Aktivität von Polyoxin B gegenüber Alternaria kikuehiana als
Test-Organismus.
Die Polyoxine .1. K. und 1. wurden von dem Ziich
lungs medium in ähnlicher Weise wie im Beispiel I
abgetrennt.
Ausbeute: Polyoxin .1 1,2 g. Polyoxin K 0.65 g um
Polyoxin 1. O.Hg aus 62 g lies Polyoxingeniisches.
Hier/u 2 Blau Zeiehnuimen
Claims (1)
- Patentansprüche: 1. Pyrimidinnucleoside der FormelnHOOCHN CH OCOH2NCHOH OH HCOHHOCHCH2OCONH2CH3-CH
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP4189467 | 1967-06-30 | ||
JP4189467 | 1967-06-30 |
Publications (3)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE1770740A1 DE1770740A1 (de) | 1972-04-13 |
DE1770740B2 DE1770740B2 (de) | 1976-12-16 |
DE1770740C3 true DE1770740C3 (de) | 1977-07-28 |
Family
ID=
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