DE1642578B2 - Verfahren zur Herstellung einer enzymatischen Zusammensetzung mit proteolytischem Enzym und Kollagenase-Aktivität - Google Patents
Verfahren zur Herstellung einer enzymatischen Zusammensetzung mit proteolytischem Enzym und Kollagenase-AktivitätInfo
- Publication number
- DE1642578B2 DE1642578B2 DE1642578A DE1642578A DE1642578B2 DE 1642578 B2 DE1642578 B2 DE 1642578B2 DE 1642578 A DE1642578 A DE 1642578A DE 1642578 A DE1642578 A DE 1642578A DE 1642578 B2 DE1642578 B2 DE 1642578B2
- Authority
- DE
- Germany
- Prior art keywords
- tissue
- collagenase
- enzymatic
- enzymatic composition
- proteolytic enzyme
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
- A61K9/0012—Galenical forms characterised by the site of application
- A61K9/0019—Injectable compositions; Intramuscular, intravenous, arterial, subcutaneous administration; Compositions to be administered through the skin in an invasive manner
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
- A61K9/06—Ointments; Bases therefor; Other semi-solid forms, e.g. creams, sticks, gels
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/48—Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
- C12N9/50—Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25)
- C12N9/52—Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from bacteria or Archaea
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K38/00—Medicinal preparations containing peptides
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
- Y10S435/8215—Microorganisms
- Y10S435/822—Microorganisms using bacteria or actinomycetales
- Y10S435/842—Clostridium
Description
sammensetzung wirkt hemmend auf das Wachstum von Mikroben, Diese neue, die Wirksamkeit von
Kollagenase und proteolytischem Enzym aufweisende
Zusammensetzung verhindert in Konzentrationen von mehr als etwa 0,1 mg/ml das Wachstum verschiedener
Mikroben, wie Staph. aureus und Organismen der Gattung Clostridium. Das Verdünnen der
enzymatischen Zusammensetzung auf Konzentrationen von 0,1 mg/ml oder weniger erlaubt hingegen
das Wachstum dieser Bakterien.
Das im erfindungsgemäßen Verfahren eingesetzte Clostridium histolyticum ATCC 21000 unterscheidet
sich von dem gewöhnlichen Clostridium histolyticum, das in »Manual of Determinative Bacteriology« von
B er ge y (7. Auflage 1957, S. 690 und 691) beschrieben
worden ist, dadurch, daß der neue Stanui
keine Flagellen enthält und deshalb nicht beweglich ist.
Die Fermentation gemäß der Erfindung wird unter Bedingungen durchgeführt, die für das Wachstum
von Clostiidium histolyticum üblich sind. Die Fermentation
erfolgt bei etwa 32 bis 37° C (vorzugsweise 37° C) für 21 bis 26 Stunden in einem Nährmedium,
das eiweißartige Stoffe, wie trypsinbehandeltes Soja und Proteasepepton sowie auch Vitamine
und Mineralsalze, wie Magnesiumsulfat, einbasisches und zweibasisches Kaliumphosphat und Ferrosulfat
enthält. Das eiweißartige Material dient als Quelle von sowohl Nährkohlenstoff als auch Nährstickstoff.
Der bevorzugte pH-Wert des Fermentationsmediums liegt zwisc' en 6,5 und 7,5. Andere Fermentationsmedien für das Wachstum von Clostridium histolyticum
sind bekam.t und können gegen das oben beschriebene Medium ausgetauscht werden. Das
Fermentationsgefäß wird mit einer Kultur von Clostridium histolyticum ATCC 21 000 geimpft,
wobei übliche Tmpftechniken angewandt werden. Vor dem Impfen werden das Fermentationsgefäß und
sein Inhalt in einem Autoklav 30 Minuten bei erhöhter Temperatur und erhöhtem Druck gehalten,
beispielsweise bei 121° C und 1,05 kg/cmä, und
werden dann auf Zimmertemperatur gekühlt, am das Medium zu sterilisieren.
Die Fermentationsflüssigkeit wird zentrifugiert, um die Zellen des Mikroorganismus von der Flüssigkeit
zu trennen. Die reine zentrifugierte Flüssigkeit wird dann in eine gesättigte v/äßrige Ammoniumsulfatlösung
gegossen, um die enzymatische Zusammensetzung auszufällen. Die Ammoniumsulfatlösung
wird auf einer niedrigen Temperatur, nicht über 6" C
und gewöhnlich auf etwa 4° C, gehalten. Diese Lösung enthält etwa 500 g Salz je Liter, wobei die
genaue Menge hauptsächlich in Abhängigkeit von der in der gesättigten Lösung bei der bestimmten
gewählten Arbeitstemperatur enthaltenen Menge variiert. Das Material verbleibt über einen beträchtlichen
Zeitraum in dieser Ammoniumsulfatlösung, etwa i8 Stunden, bei einer Temperatur, welche 60C
nicht übersteigen darf. Der Niederschlag wird in üblicher Weise filtriert ode:r zentrifugiert. Die enzymatische
Zusammensetzung wird gekühlt, in Dialysierrohre gefüllt, die im allgemeinen aus Cellophan
sind, und gegen rinnendes Wasser etwa 24 Stunden dialysiert, um Salz zu entfernen. Das Vorliegen von
Ammoniak im abströmenden Wasser kann durch Nesslers Reagens bestimmt werden. Die Dialyse wird
fortgesetzt, bis der Nessler-Reagens-Test negativ ist.
Das dialysicrte Enzym wird gefroren und dann
gefriergetrocknet. Dies kann dadurch erfolgen, daß das Enzym aus dem Dialysierrohr in Schalen gebracht
wird, in denen das Gefrieren und Gefriertrocknen stattfindet. Der Gefriertrockner wird auf
einem Druck von 0,25 mm Hg oder weniger gehalten. Obwohl die Temperaturen beim Gefriertrocknen
weitgehend variieren können, wird die Arbeitsweise beschleunigt, wenn eine verhältnismäßig hohe Temperatur,
etwa 21° C, aufrechterhalten wird. Die Zeit in dem Gefriertrockner beträgt im allgemeinen etwa
18 Stunden. Das gefriergetrocknete Material wird aus den Trockenschalen entfernt und in Polyäthylenbeutel
gebracht.
Die durch Gefriertrocknen erhaltene enzymatische Zusammensetzung muß bei der ins Auge gefaßten
Verwendung (s. oben) sterilisiert werden. Es wurde nun festgestellt, daß dies mit geringen Kollagenaseverlusten
wirkungsvoll durch an sich bekanntes Bestrahlen geschehen kann. Kobalt 60 und andere
radioaktive Isotope können als Strahlenquelle verwendet werden. Die Bestrahlung kann auch mit
Röntgenstrahlen durchgeführt werden.
Bei der Bestrahlung wird die lyophilisierte enzymatische Zusammensetzung einer Gesamtstrahlungsmenge von mindestens 2,5 Megarad oder etwa 4,5
bis 5,5 Megarad ausgesetzt. Die Dosierung darf etwa 7 Megarad nicht übersteigen, da höhere Dosen die
Enzyme zersetzen können. Die Bestrahlung wird mit herkömmlicher Apparatur ausgeführt. Die zu bestrahlenden
Enzyme befinden sich in den PoIyäthylenbeuieln. welche in einem solchen Abstand
angeordnet sind, daß die Strahlungsintensität durch den Beutel ziemlich gleichmäßig ist. Die Gesamtbestrahlungszeit
beträgt etwa 120 bis 160 Stunden, wenn die Strahlungsintensität in der Giößenordnung
von etwa 0,03 bis 0,04 Megarad pro Stunde n'egt.
Die erfindungsgemäß hergestellte enzymatische Zusammensetzung kann, wenn gewünscht, auf andere
Weise sterilisiert werden., beispielsweise durch Filtrieren.
Das sterilisierte Matenal wird sowohl auf KoI- !agenase-Aktivität als auch auf proteolytische Aktivität
geprüft, wobei der Ninhydrin-Test bzw. der Azocoll-Test verwendet wird. Bekannte Standardversuchsverfahren
werden zur Durchführung dieser Tests verwendet. Beispielsweise werden die Azocoll-
und Ninhydrin-Testverfahren gemäß Mandl et al, J. Clin. Invest. 32, 1953, S. 1323 oben, durchgeführt.
Das Material wird auch auf Sterilität geprüft.
Beim Sterilitätstest wird das Enzym auf 0.1 mg/ml verdünnt und aliquote Mengen des Enzyms in zwei
Sätze von Röhren gebracht, von denen einer einen Nährboden und eine kleine Anzahl, beispielsweise
etwa 5 bis 10, lebensfähiger mikrobieller Zellen enthält
und der andere den Nährboden, aber keine Zellen enthält. Für diesen Zweck werden typische
Versuchsmikroorganismen, wie Staph. aureus, verwendet. Wenn die enzymatische Zusammensetzung
steril ist, entwickelt sich Wachstum in den Röhren, die Zellen enthalten, aber nicht in den Röhren, in
die keine Zellen zugefügt wurden. Das Verdünnen des Enzyms auf etwa 0,1 mg/ml oder weniger ist
wesentlich bei der Durchführung des Sterilitätstests, da das Enzym in größeren Konzentrationen das
Wachstum von Mikroorganismen hemmen kann.
Die erfindungsgemäß hergestellte enzymatische Zusammensetzung kann als lokal aufzutragende
Salbe angewendet weiden. Zu diesem Zweck wird
5 Γ ό
die erfindungsgemäß hergestellte enzymatische Zu- Wirkungen verursacht. Es entsteht höchstens gelegentsammensetzung
in einen üblichen Salbenträ'ger, z, B, Hch leichte Entzündung von umgebendem Gewebe,
Vaseline, in Konzentrationen von etwa 0,1 bis etwa Die erfindiingsgemäß hergestellte enzymatische
0,2 Gewichtsprozent eingebracht. Eine Salbe kann Zusammensetzung verhindert das Wachstum von
auch 0,5 Prozent der enzymatischen Zusammen- 5 Mikroorganismen, wenn sie in Konzentrationen von
setzung: bezogen auf das Gewicht der Vaseline, ent- etwa 1 mg/ml oder größer vorhanden ist. In vielen
halten. Die Salben können, wenn gewünscht, auch Fällen, besonders wenn keine bakterielle Infektion
Antibiotika enthalten, um Infektionen an der Ver- eingesetzt hat, ist die Verwendung von Antibiotika
letzungsstelle zu bekämpfen. Die Salbe wird direkt in Verbindung mit der erfindungsgemäß hergestellten
auf die Verletzung aufgetragen. Der Bereich wird ία enzymatisohen Zusammensetzung nicht nötig. Diese
zuerst gereinigt, um alle Stoffe zu entfernen, welche kann jedoch, wenn gewünscht, mit einem Antidie
Wirkung der enzymatischen Zusammensetzung biotikum verwendet werden. Es wurde auch festbeeinträchtigen
können. Dies kann mit einem sterilen gestellt, daß ihre Wachstumshemmeigenschaften ihre
Gazebausch geschehen, der mit sterilem Wasser oder Verdünnung auf etwa 0,1 mg/ml oder weniger erfor-Puffer
mit einem pH-Wert von 7,0 bis 7,5 getränkt 15 dem, indem Sterilitätsversuche, wie oben beschrieben,
ist. Die Salbe wird auf einen Gazeüberzug gegeben., durchgeführt wurden.
welcher direkt auf die Verletzung gelegt wird. Das Die Erfindung wird nun an Hand nachfolgender
Aufbringen der Salbe geschieht täglich oder jeden Beispiele beschrieben,
zweiten Tag. Die Gaze, die die Salbe enthält, wird
zweiten Tag. Die Gaze, die die Salbe enthält, wird
mit einem sterilen Überzug bedeckt. 20 B e ic ρ i e 1 1
Die Zersetzungswirksamkeit der erfindungsgemäß
hergestellten enzymatischen Zusammensetzung mit Der Stamm Clostridium his*olyticum ATCC 21 000
proteolytischem Enzym und Kollagenase-Aktivität wird zur Impfung eines Keimmediums verwendet,
kann durch kontrollierte Experimente an Versuchs- das 3 Gewichtsprozent trypsinbehandeltes Sojaöl,
tieren, wie Meerschweinchen, demonstriert werden. 25 1 Gewichtsprozent Proteasepepton und als Rest Was-
Für Versuchszwecke werden Brandwunden von vor- ier enthält und einen pH-Wert zwischen 6,5 und 7.5
herbestimmter Intensität auf den Versuchstieren her- aufweist, welches vorher in einem Autoklav bei
gestellt. Das Aufbringen einer Salbe, welche die 121,5' C und einem Druck von 1,05 kp/em"2 mehr
erfindungsgemäß hergestellte enzymatische Zusam- als 15 Minuten sterilisiert worden war und anschliemensetzung
enthält, auf die verbrannten Flächen er- 30 ßend auf Raumtemperatur abgekühlt wurde. Das
gibt eine ungewöhnlich wirksame Zersetzung von Volumen jedes Keimkolbens beträgt 250 ml. Die
verbranntem Gewebe. Keimkolben werden 48 Stunden auf 37° C gehalten.
Diese Salbe hat sich bei Raumtemperatur über Nach Ablauf dieses Zeitraums werden Proben des
einen Zeitraum von 48 Wochen als haltbar erwiesen. Fermemationsmodiums mikroskopisch auf Reinheit
Das Enzym ist jedoch wärmeempfindlich, und Tem- 35 geprüft, und die proteolytische Aktivität wird durch
peraturen beträchtlich über der Raumtemperatur die Azocoll-Miethode gemessen, die unten beschrieben
sollten vermieden werden. Um eine lange Lagerfähig- wird.
keit sicherzustellen, sollte die Salbe bei einer Tempe- Es werden 10 1 Fermentationsmedium mit folgen-
ratur nicht über 24° C gelagert werden. der Zusammensetzung hergestellt:
Die erfindungsgemäß hergestellte enzymatische 40
Die erfindungsgemäß hergestellte enzymatische 40
Zusammensetzung kann injiziert werden, um interne Trypsinbehandeltes Sojaöl 1,5 %
Verschorfung und Reabsorption von physiologisch Proteasepepton 5,00O
antagonistischem Gewebe zu erleichtern. Beispiels- MgSO4 · 7H2O 800 mg
weise werden Injektionslösungen verwendet, um das KH2PO4 19.2g
Verschorfen von operablen Vorsteherdrüsen zu be- 45 Wa2HPO4 90 g
schleunigen, deren Lebensfähigkeit durch Injektion Vitaminkonzentrat *) 50 ml
von flüssigem Stickstoff zerstört worden ist, um das FeSO4-Lösung
Stroma von Tumormassen zu zerstören und die (0.120 Gewichtsprozent) 60 ml
Kollagenmatrix von überflüssigen Calciumablagerun- pH-Wert 6.5 bis 7,5
gen aufzulösen. Geeignete Injektionslösungen ent- 50 *) 100 ml dieses Konzentrates enthalten:
halten etwa 0,2 bis 5 Gewichtsprozent der erfindungs- Calciump<mtothenat 20 mg
gemäß hergestellten enzymatischen ZusammensetzuiiE Nikotinsäure 20 mg
in physiologischer Salzlösung. " ^Γία.?χ'Π ?0 mg
Die erfindungsgemäß hergestellte enzymatische ThiLmiT"^ '.'.'.'.'.'.'.'.'.'.'.'.'.'..''.''.'.'..''.'.'.'. 20 mg
Zusammensetzung besitzt eine kombinierte Aktivität 55 Riboflavin ................. '. 2,0 mg
von proteolytischem Enzym u>id Kollagenase, wodurch
sie bei der Zersetzung von Gewebe unerreicht 8 1 d-s obigen Mediums werden in ein 10-1-Fcrwirksam
wird. Diese enzymatische Zusammensetzung mcntationsgeläß gebracht.
kann zur wirksamen Zersetzung von nekrotischcm Das Fermentationsgefäß wird 30 Minuten bei
und absterbendem Gewebe verwendet werden, wäh- 60 121,5° C und 1,05 kp/cm2 im Autoklav behandelt
rend bekannte Kollagenase, wenn sie allein venven- und auf Raumtemperatur gekühlt. Es wird dann mit
det wurde, schlechtere Ergebnisse ergab. Die gemein- den Keimkulturen von Clostridium histolyticum
same Verwendung von bekannter Kollagenase und ATCC 21 000 beimpft und 21 bis 26 Stunden bei
einem proteolytüchen Enzym führt zu keiner verlaß- 37° C inkubiert. Die Zellen werden dann von der
liehen wirksamen Zersetzung, weil die zwei Enzyme Flüssigkeit abgetrennt, indem letztere bei 10000UpM
häufig unvereinbar sind. °5 zentrifugiert wird, bis man eine reine Flüssigkeit
Durch die ejf.ndungsgemäß erhältliche cnzy- erhält. Die Flüssigkeit wird dann in eine Ausfäll-
matische Zusammensetzung werden keine Neben- trommel gegossen, die eine gesättigte wäßrige
7 8
Ammoniumsulfatlösung (ungefähr 500 g/l) bei 4° C auf das Vorhandensein von Chloridionen geprüft,
enthält, und 10 Minuten gründlich umgerührt. Die wobei der Silbernitrat-Test angewendet wird. Die
Ausfälltrommel und ihr Inhalt werden 18 Stunden Wasserwaschung wird fortgesetzt, bis der Test negaauf
4° C gehalten. Der Niederschlag wird dann tiv ist. Die vorstehende Bearbeitung erfolgt bei einer
filtriert, gesammelt und in ein Cellophan-Dialyse- 5 Temperatur von nicht höher als 60C. Nach dem
rohr gebracht und 24 Stunden gegen laufendes Was- Waschvorgang wird überschüssiges Wasser abgezogen,
ser dialysiert. Während der letzten Stunde läßt man und die Sehnenstücke werden lyophilisiert
das Wasser mit dem Rohr in Berührung stehen. Das 25 mg geschnitzeltes, nicht denaturiertes Kollagen Wasser wird mit Kesslers Reagens auf Ammoniak werden in ein Versuchsrohr gebracht, und 0,1 ml geprüft. Wenn die Reaktion positiv ist, wird die io einer O,l°/oigen wäßrigen Lösung des lyophilisierten Dialyse drei Stunden fortgesetzt und das Wasser Enzyms und 5 ml eines Puffers, werden zugegeben, wieder mit Nesslers Reagens geprüft. Wenn die Der Puffer hat folgende Zusammensetzung:
Reaktion negativ ist, wird der dialysierte Niederschlag in Lyophilisierschalen aus rostfreiem Stahl Tris-(hydroxymethyl)-aminomcthan
das Wasser mit dem Rohr in Berührung stehen. Das 25 mg geschnitzeltes, nicht denaturiertes Kollagen Wasser wird mit Kesslers Reagens auf Ammoniak werden in ein Versuchsrohr gebracht, und 0,1 ml geprüft. Wenn die Reaktion positiv ist, wird die io einer O,l°/oigen wäßrigen Lösung des lyophilisierten Dialyse drei Stunden fortgesetzt und das Wasser Enzyms und 5 ml eines Puffers, werden zugegeben, wieder mit Nesslers Reagens geprüft. Wenn die Der Puffer hat folgende Zusammensetzung:
Reaktion negativ ist, wird der dialysierte Niederschlag in Lyophilisierschalen aus rostfreiem Stahl Tris-(hydroxymethyl)-aminomcthan
geleert, gefroren und in einen Gefriertrockner ge- 15 (0,2 M) 50 ml
bracht. Der Gefriertrockner wird bei einem Druck HCl (O,2 M) 44,2 ml
von nicht über 0,25 mm Hg und einer Temperatur Calciumacetat (0.02 M) 100 ml
von 2PC gehalten. Die Gefriertrocknungszeit be- Destilliertes Wasser 200 ml
trägt etwa 18 Stunden. Das gefriergetrocknete . .
Material wird entfernt, leicht gemahlen und in Poly- 20 Ein Kontrollrohr A wird wie oben hergestellt, ausäthvlenbcutcl gebracht. Ein Beutel wird für jede genommen, daß das Enzym weggelassen wird. Ein Schale verwendet. Jeder Beutel enthält im Durch- 7Weites Kontrollrohr B wird wie ooen hergestellt, schnitt 35 g eefriereetrocknete enzymatischc Zu- ausgenommen das Weglassen des Kollagens (Rohr B samn-wnsetzung " " enthalt Enzym). Ein drittes Kontrollrohr C wird wie "Das Enzym'wird durch Bestrahlung sterilisiert. 25 oben hergestellt, ausgenommen, daß 0,1 ml 0,l«/.iges wobei eine Kobalt-60-StrahlungsquelIe verwendet Τ0Φ*'η an Stelle des obigen Enzyms zugegeben wird. wird. Ein Paar Beutel und ecgebenenfalls znsätz- Jedes der vier Rohre wird 24 Stunden bei 37° C liehe kleine Probenteile mit einem Gesamtgewicht mkubiert. Nach der Intaibiening werden 0,5 ml der von etwa 75 g werden in einen Behälter von 108 mm klaren· oben schwimmenden Flüssigkeit von jedem Durchmesser und 127 mm Höhe gebracht. Der Be- 30 Rohr dekantiert und in einen 10-ml-Meßkolben gehälter wird in. einer Vorrichtune bestrahlt, die einen bracht- In Jeden Meßkolben werden 1 ml l°/oige abgeschirmter Bereich, eine Kobalt-60-Sirahlung-;- wäßn?e Ninhydrinlösung und 2 ml 5%>iige wäßrige quelle und einen um eine durch die Strahlungsquelle f'yridinlösung zugefügt. Die Meßkolben werden verlaufende vertikale Achse rotierenden Drehtisch -° Minuten in ein siedendes Wasserbad gebracht, enthält. Bei einem typischen Versuch wird ein mit 35 Genügend destilliertes Wasser wird zugefügt, um ein Enzym gefüllter Behälter auf einen Drehtisch ge- Gesamtvolumen von 10 ml zu ergeben, und die Testbracht, wobei sich seine Basis 178 mm oberhalb lösungen werden in einem photoelektrischen Klettdcs Bodens der Abschirmung und seine Achse Colorimeter bei 570 Millimikron gegen diie Kontrolle 127 mm von der Quelle befinden. Die Durchschnitts- abgelesen. Die Kollagenaseaktivität wird in C-Emhöhe des Behälters oberhalb des Bodens ist dieselbe 40 heiten ausiedruckt. Eine C-Einheit stellt die Abwie die Höhe der Quelle. In einem typischen Ver- Iesun? der optischen Dichte dar, die erreicht wird, such wurde der Behälter inseesamt 142 Stunden wenn l m? Enzym auf 25 mg Kollagena;;e unter den bestrahlt, wobei er eine Durchschnittsdosis von oblSen Bedingungen einwirkt. Die Kollagenase muß 5.0 Megarad erhielt, die von 4,77 Megarad am eine Mindestaktivität von 40 000 C-Einheiten je Boden des Behälters bis 5.25 Megarad in der Mitte 45 Gramm haben, sonst wird sie ausgeschieden,
variierte.
Material wird entfernt, leicht gemahlen und in Poly- 20 Ein Kontrollrohr A wird wie oben hergestellt, ausäthvlenbcutcl gebracht. Ein Beutel wird für jede genommen, daß das Enzym weggelassen wird. Ein Schale verwendet. Jeder Beutel enthält im Durch- 7Weites Kontrollrohr B wird wie ooen hergestellt, schnitt 35 g eefriereetrocknete enzymatischc Zu- ausgenommen das Weglassen des Kollagens (Rohr B samn-wnsetzung " " enthalt Enzym). Ein drittes Kontrollrohr C wird wie "Das Enzym'wird durch Bestrahlung sterilisiert. 25 oben hergestellt, ausgenommen, daß 0,1 ml 0,l«/.iges wobei eine Kobalt-60-StrahlungsquelIe verwendet Τ0Φ*'η an Stelle des obigen Enzyms zugegeben wird. wird. Ein Paar Beutel und ecgebenenfalls znsätz- Jedes der vier Rohre wird 24 Stunden bei 37° C liehe kleine Probenteile mit einem Gesamtgewicht mkubiert. Nach der Intaibiening werden 0,5 ml der von etwa 75 g werden in einen Behälter von 108 mm klaren· oben schwimmenden Flüssigkeit von jedem Durchmesser und 127 mm Höhe gebracht. Der Be- 30 Rohr dekantiert und in einen 10-ml-Meßkolben gehälter wird in. einer Vorrichtune bestrahlt, die einen bracht- In Jeden Meßkolben werden 1 ml l°/oige abgeschirmter Bereich, eine Kobalt-60-Sirahlung-;- wäßn?e Ninhydrinlösung und 2 ml 5%>iige wäßrige quelle und einen um eine durch die Strahlungsquelle f'yridinlösung zugefügt. Die Meßkolben werden verlaufende vertikale Achse rotierenden Drehtisch -° Minuten in ein siedendes Wasserbad gebracht, enthält. Bei einem typischen Versuch wird ein mit 35 Genügend destilliertes Wasser wird zugefügt, um ein Enzym gefüllter Behälter auf einen Drehtisch ge- Gesamtvolumen von 10 ml zu ergeben, und die Testbracht, wobei sich seine Basis 178 mm oberhalb lösungen werden in einem photoelektrischen Klettdcs Bodens der Abschirmung und seine Achse Colorimeter bei 570 Millimikron gegen diie Kontrolle 127 mm von der Quelle befinden. Die Durchschnitts- abgelesen. Die Kollagenaseaktivität wird in C-Emhöhe des Behälters oberhalb des Bodens ist dieselbe 40 heiten ausiedruckt. Eine C-Einheit stellt die Abwie die Höhe der Quelle. In einem typischen Ver- Iesun? der optischen Dichte dar, die erreicht wird, such wurde der Behälter inseesamt 142 Stunden wenn l m? Enzym auf 25 mg Kollagena;;e unter den bestrahlt, wobei er eine Durchschnittsdosis von oblSen Bedingungen einwirkt. Die Kollagenase muß 5.0 Megarad erhielt, die von 4,77 Megarad am eine Mindestaktivität von 40 000 C-Einheiten je Boden des Behälters bis 5.25 Megarad in der Mitte 45 Gramm haben, sonst wird sie ausgeschieden,
variierte.
Jede Enzymprobe wird nach der Bestrahlung auf Proteaseprüfung
Kollagenaseaktivität, Proteaseaktivität und Sterilität
Kollagenaseaktivität, Proteaseaktivität und Sterilität
geprüft. »Azocolk wird nach dem Verfahren von D a k 1 e y
Kollaeenaseprüfune 5° et aI· Joumal of Pathology and Bacteriology,
Band LVIII, Nr. 2, S. 227 und 232 (1946), hergestellt.
Nicht denaturiertes Kollagen wird für die KoI- Die proteolytische Enzymaktivität bei Verwendung
lagenase wie folgt hergestellt: von Azocoll-Reagenz wird nach dem Verfahren von
Von einem frisch geschlachteten Tier genommene Ma η dl et al., journal of Clinical Investigation, 32
Rinder-Achillessehne wird von Fett und Unregel- 55 (1953), S. 1323, bestimmt. Die Proieaseaktivität dar!
mäßigkeiten befreit und dann in Stücke von etwa nicht weniger als 4000 Q-Einheiten betragen, sonsi
6 mm im Quadrat geschnitten. Diese Stücke werden wird das Enzym ausgeschieden,
nacheinander bei 60C in drei Lösungen von wäßrigem zweibasischem Natriumphosphat (m/15) drei Anwendungsbeispiel A
Tage in jede Lösung getaucht. Nach dem dritten 60
nacheinander bei 60C in drei Lösungen von wäßrigem zweibasischem Natriumphosphat (m/15) drei Anwendungsbeispiel A
Tage in jede Lösung getaucht. Nach dem dritten 60
Eintauchen wird die Sehne 24 Stunden in Leitungs- Es wird eine Salbe durch Vermischen von 5 g gewässer
gelegt. Die gewaschene Sehne wird dann nach- maß Beispiel 1 hergestellter enzymatischer Zusameinander
in drei 25prozentige wäßrige Kaliumchlorid- mensetzung mit 995 g weißer Vaseline hergestellt,
lösungen getaucht, wobei sie drei Tage in jeder
Lösung verbleibt. Nach dem dritten Tränken mit 65 Anwendun«sbeispielB
Kaliumchlorid wird die Sehne eine Woche lang in ° ... "
Leitungswasser gelegt, wobei das Wasser täglich ge- Es wird eine Salbe durch Vermischet der folgen
wechselt wird. Die oben schwimmende Lösung wird den Bestandfeile hergestellt: ; ·
ίο
Enzymatische Zusammensetzung
(erhalten gemäß Beispiel 1) 5 g
Antibiotikum*) 10 g
Weiße Vaseline 985 g
*) Das verwendete Antibiotikum ist ein parenteral« Antibiotikum
in Einheitsdosierungsform und enthält 0,5 g Streptomycin, 300 000 Einheiten Procain-Penicillin G
und 100'000 Einheiten gepuffertes Penicillin G. Es wird dei Salbe einverleibt, um nicht-spezifische Zersetzung
zu vernic'den.
Anwendungsbeispiel C
20 Meerschweinchen mit einem Gewicht von 500 bis 800 g wurden mit Natriumpentobarbital anästhetisiert.
Beide Seiten der Tiere wurden mit einer elektrischen Haai schneidemaschine geschoren und dann
rasiert. Ein kreisförmiger Bereich von 5 cm Durchmesser wurde auf jeder Seite tangierend an eine
Linie markiert, die parallel und in einem Abstand *o
von 13 mm zum Rückgrat des Tieres verlief. Ein i25-ml-Becheirglas mit Wasser wurde auf 8O0C erhitzt,
was mit einem gerade unter die Oberfläche des Wassers getauchten Quecksilber-Thermometer gemessen
wurde:. Der markierte Bereich des Tieres as
wurde 20 Sekunden mit der Oberfläche des Wassers in Berührung gebracht. Der Verbrennungsbereich
wurde mit denaturiertem Äthylalkohol gereinigt, der dann verdampfen konnte.
Es wurde eine Testsalbe wie im Anwendungsbeispiel E und eine Kontrollsalbe, bestehend aus Vaseline
und dem Antibiotikum in den Mengen, wie im AnwenduEgsbeispiel B, aber ohne die erfindungsgemäß
hergestellte enzymatische Zusammensetzung hergestellt und bewertet.
Von den 20 bei dieser Untersuchung verwendeten Tieren wurden 16 Tiere auf einer Seite mit der erfindungsgemäß
hergestellten, enzymatische Zusammensetzung enthaltenden Salbe und auf der anderen
Seite mit Kontrolkalbe behandelt. Davon erhielten acht die Salbe auf die rechte Seite. Zwei Tiere wurden
auf beiden Seiten mit der Salbe behandelt, und zwei Tiere schließlich erhielten die Kontrollsalbe auf
beide Seiten.
Die Salben wurden täglich auf jedes Versuchstier « aufgetragen. Die Salben wurden auf Gazekissen verteilt,
die mit der Wunde in Berührung gebracht wurden. Diese wurden mit einem Klebestreifen am Umfang
des Tieres befestigt, und eine zusätzliche Streifenlänge wurde um den Nacken des Tieres ge- 50
führt, um ein Losreißen zu verhindern. Die Salben wurden mit einem Code versehen, so daß die Person,
die sie auflegte, nicht wußte, ob sie eine Salbe mit der erfindungsgemäßen Zusammensetzung oder eine
Kontrollsalbe auflegte. Die Reihenfolge, in welcher 55 die Tiere beobachtet wurden, wurde täglich verändert.
Vor jeder Beobachtung wurde die Wunde mit einem in Wasser getauchten Baumwollbausch leicht
abgerieben. Die Behandlung wurde insgesamt 96 Stunden lang durchgeführt Am Ende dieser Zeit 60
wurden die Tiere beobachtet, und der Prozentsatz der Zersetzung wurde durch Messen des zersetzten
Bereiches bestimmt Die Prozentsätze der Zersetzung bei Verwendung sowohl der Salbe mit der erfindungsgemäß hergestellten enzymatischen Zusammeaset- 65
zung als auch der Kontrollsalbe und die Differenzen
zwischen diesen Prozentsätzen der 2&Set»ffig für ATCC 21 OfK)
die 16 Tiere, welche die Salbe auf dnnrSäK und ATCC 8034 .
Kontrollsalbe auf der anderen Seite erhielten, sind in der folgenden Tabelle I wiedergegeben.
Seite der Tiere, | °/o der Zersetzung | rechte Seite |
Differenz | |
die mit der die | 0 | |||
erfindungsgemäß | 100 | |||
hergestellte | 25 | |||
Tier-Nr. | enzymatische | linke Seite |
95 | 90 |
Zusammen | 90 | 70 | 100 | |
setzung enthal | 0 | 0 | 70 | |
tenden Salbe behandelt wurde |
95 | 100 | 95 | |
8-1 | links | 0 | 0 | 70 |
8-2 | rechts | 0 | 20 | 80 |
8-3 | links | 80 | 90 | 90 |
9-1 | rechts | 10 | 30 | 15 |
9-2 | rechts | 15 | 95 | 75 |
9-3 | links | 95 | 15 | 60 |
9-4 | rechts | 30 | 95 | 65 |
9-5 | links | 95 | 15 | 95 |
10-1 | links | 0 | 70 | 60 |
10-2 | rechts | 75 | 70 | 90 |
10-3 | links | 5 | 70 | 75 |
10-4 | rechts | 90 | 5 | 70 |
10-5 | links | 0 | 0 | |
10-6 | rechts | 85 | — | |
10-7 | links | 90 | ||
10-8 | rechts | 0 | — | |
10-9 | beide | 20 | ||
10-10 | beide | |||
Ii -11 | keine | |||
10-12 | keine | |||
Vergleichsversuche
Die erfindungsgemäß unter Einsatz des unbeweglichen flagellenlosen Stammes Clostridium histolyticum
ATCC 21 000 hergestellte enzymatische Zusammensetzung und eine unter der aus der USA.-Patentschrift
3 201325 bekannten Verwendung eines Clostridium-histolyticum-Stammes, wozu hier der
bewegliche, mit Fiagellen versehene Stamm Clostridium histolyticum ATCC 8034 eingesetzt wurde, erhaltene
Präparation mit proteolytischem Enzym und Kollagenase-Aktivität wurden hinsichtlich der Wirksamkeit
und Tcxizität bewertet.
Jeder dieser Clostridium-histolyticum-Stämme
wurde zur Herstellung des kollagenasehaltiger Enzympräparates unter sonst identischen Verfahrensmaßnahmen
eingesetzt, die denen des im Beispiel 1 beschriebenen Verfahrens ähnlich waren.
a) Jede dieser Enzymproben wurde hinsichtlicl der Kollagenase-Aktivität sowohl vor als auch nacl
Bestrahlung untersucht, wobei folgende Ergebnis» erhalten wurden:
Tabelle Π
Untersuchungen zur Kollagenase-Aktivität
Untersuchungen zur Kollagenase-Aktivität
Stamm
vorder
Bestrahlung
Bestrahlung
Wirksamkeit
nach der
Bestrahlung
Bestrahlung
16
10
10
6,5
4,5
4,5
Das vom ATCC 21 000 abgeleitete Enzympräparat besaß somit eine größere Kollagenasewirksamkeit als
das von ATCC 8034 abgeleitete Enzympräparat.
b) Jede der wie oben erhaltenen Enzymproben wurde auf ihre nroteolytische Wirksamkeit sowohl
vor als räch der Bestrahlung geprüft, wobei folgende Ergebnisse erhalten wurden:
Tabelle III
Untersuchungen zur proteolytischen Aktivität
Untersuchungen zur proteolytischen Aktivität
Sitamm
ATCC 21 000
ATCC 8034 ..
ATCC 8034 ..
vor der
Bestrahlung
Bestrahlung
Wirksamkeit
nach der
Bestrahlung
Bestrahlung
190
140
140
100
70
70
Wiederum besaß die aus dem Stamm ATCC 21 000 hergestellte, enzymatische Zusammensetzung überlegene
Wirksamkeit im Vergleich mit der Wirksamkeit des von dem bekannten Stamm abgeleiteten
Enzympräparates.
c) Jede der wie oben erhaltenen kollagenasehaltigen Proben wurde nach ihrer Bestrahlung auf
akute Säugetiertoxizität untersucht, indem Schweizer Albinomäusen Lösungen (durch Auflösung von
30 mg des jeweiligen Enzympräparats in 1 ml wäßrigem 0,85°/oigem NaCl) injiziert wurden. Folgende
Ergebnisse wurden erhalten:
Akute Toxizität der bestrahlten Enzymprobe
von ATCC 21 000
von ATCC 21 000
Maus-Nr. | Maus- Gewicht, g |
Dosis, mg | Ergebnis |
1 | 26,3 | 2 | überlebte |
2 | 25,0 | 4 | überlebte |
3 | 27,0 | 6 | überlebte |
4 | 27,5 | 6 | verendete |
5 | 28,5 | 8 | verendete |
6 | 27,5 | 10 | verendete |
7 | 26,2 | 5 | verendete |
8 | 25,0 | 5 | überlebte |
Akute Toxizität der bestrahlten Enzymprobe
von ATCC 21 000
von ATCC 21 000
Maus-Nr. | Maus- Gewicht, g |
Dosig, mg | Er3ebnis |
1 | 27,5 | 3 | überlebte |
2 | 26,0 | 6 | verendete |
3 | 26,5 | 9 | verendete |
4 | 25,0 | 4 | überlebte |
5 | 25,0 | 5 | verendete |
6 | 24,5 | 3 | überlebte |
7 | 25,0 | 5 | verendete |
8 | 29,0 | 6 | verendete |
9 | 27,0 | 4 | überlebte |
Aul Grund der obigen Daten beträgt die minimale letale Dosis des aus ATCC 21000 hergestellten
kollagenasehaltigen Enzyms etwa 5,5 mg, während die minimale letale Dosis der aus ATCC 8034 hergestellten
Enzymprobe etwa 4,5 mg beträgt. Somit ist die aus ATCC 21 000 hergestellte enzymatische Zusammensetzung
weniger toxisch als die unter Verwendung des bekannten Stammes hergestellte Enzymprobe.
ίο Ferner wurden unter Anwendung ähnlicher Verfahrensmaßnahmen
wie im Anwendungsbeispiel C Wundausscheidungsversuche durchgeführt. Bei diesen Versuchen wurde eine vorher hergestellte Salbe
(Kollagenasewirksamkeit 5 · 10* Einheiten/g) mit der
erfindungsgemäß hergestellten enzymatischen Zusammensetzung, die aus 0,5% der erfiiidungsgemäß
hergestellten enzymatischen Zusammensetzung und 99,5 Vo Vaseline bestand, mit einer Salbe verglichen,
die jedoch Kollagenase enthielt, welche unter Verwendung von ATCC 8034 hergestellt worden war,
durch Milliporenfiltration an Stelle von Bestrahlung sterilisiert worden war und eine Kollagenasewirksamkeit
von etwa 12,5 · 104 Einheiten/g besaß und in einer Konzentration in der Salbe von etwa 0,2%
verwendet wurde, wobei eine Salbe mit einer Kollagenasewirksamkeit von etwa 5 · 104 Einheiten/g
erhalten wurde. Die Ergebnisse dieses Versuchs sind nachfolgend zusammengefaßt:
Tier- | ATCC- | Behandelte | •/0 Wund | Diffe |
Nr. | Stamm | Seite des Tieres |
ausscheidung | renz |
1 | 21000 | R | 98 | 23 |
8 034 | L | 75 | ||
2 | 21000 | L | 65 | 15 |
8 034 | R | 50 | ||
3 | 21000 | R | 65 | 63 |
8 034 | L | 2 | ||
4 | 21000 | L | 95 | 10 |
8 034 | R | 85 | ||
5 | 21000 | R | 90 | 20 |
8 034 | L | 70 | ||
6 | 21000 | L | 70 | 20 |
8 034 | R | 50 | ||
7 | 21000 | R | 95 | 65 |
8 034 | L | 30 | ||
8 | 21000 | L | 45 | -50 |
8 034 | R | 95 | ||
9 | 21000 | R | 70 | -10 |
8 034 | L | 80 | ||
10 | Vergleich*) | R, L | 0,0 | |
11 | Vergleich*) | R, L | 0,0 | |
12 | Vergleich*) | R, L | 0,0 |
*) Salbe ohne Kollagenase.
Diese Daten zeigen, daß bei der Application d gleichen Mengen von Kollagenaseaktivität die a
dem Stamm ATCC 21 000 hergestellte kollagenas haltige enzymatische Zusammensetzung bei d
Unterstützung der Wundancscheidung wirksam
war als die aus dem Stamm 8034 hergestel Kollagenase.
Claims (1)
- Patentanspruch;Verfahren zur Herstellung einer enzyraatischen Zusammensetzung mit proteolytischem Enzym und Kollagenase-Aktivität durch aerobes Züchten eines Clostridium histolyticum in hierfür üblichen Nährmedien und bei hierfür üblichen Temperatur- und pH-Wert-Verhältnissen, dadurch ge-io kennzeichnet, daß man das flagellenlose Clostridium histolyticum ATCC 21 000 einsetzt, die Zellen entfernt und die enzymatische Zusammensetzung mit proteolytischem Enzym und Kollagenase-Aktivität aus der Fermentationsflüssigkeit gewinnt.Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung einer enzymatischen Zusammensetzung mit proteolytischem Enzym und Kollagenase-Aktivität. Diese besitzt ausgezeichnete Eigenschaften zum Entfernen von nekrotischem Gewebe. Der Heilungsprozeß bei infeküerten Wunden, Hautgeschsvüren, Verbrennungen zweiten und dritten Grades und anderen Zuständen, welche Hautverletzungen beim Menschen und anderen Säugetieren erzeugen, ist gewöhnlich recht langsam. Eine der Eigenschaften solcher Verletzungen ist das Vorhandensein von totem Gewebe an der Verletzungsstelle. Es ist nötig, dieses tote Gewebe zu entfernen, um eine gesunde Grundlage für das Wachstum neuen Gewebes zu schaffen. Das Entfernen dieses toten Gewebes kann entweder durch chirurgisches oder enzymatisches Zerlegen beschleunigt werden. Chirurgisches Zerlegen hat den Nachteil, daß es recht schmerzhaft ist, wenn das gesamte tote Gewebe weggeschnitten wird und das lebende Gewebe freiliegt. Es ist jedoch wesentlich, daß das gesamte tote Gewebe entfernt wird, um die Heilung der Verletzung und das Wachsen von neuem Gewebe zu erleichtern. Enzymatisches Zerlegen bietet ein weniger schmerzvolles und zufriedenstellendes Verfahren zum Entfernen von totem Gewebe. Wirksames enzymatisches Zerlegen erfordert nicht nur das Entfernen des offensichtlich nekrotischen Gewebes, sondern auch jenes Materials, gewöhnlich an der Peripherie der Wunde, welches, obgleich offensichtlich lebensfähig, nachklinische Nekrose enthält.Das Säugetiergewebe, welches das Verschorfen aller Nekrose verhindert und Nekrose entwickelt, ist Bindegewebe oder Kollagen. Dies ist ein Protein, welches gegen alle Säugetierenzyme widerstandsfähig ist, so daß das Verschorfen von langsamen Denaturierungsvorgängen abhängig ist. welche das Kollagen in eine neue Form bringen, die dann durch lokale oder systemisclie Enzyme zersetzt werden kann. Um dann das nicht denaturierte Kollagen schneller zu entfernen, muß der Patient mit einer Kollagenase versehen werden, d. h. einem Emzym, welches nicht denaturiertes Kollagen zersetzt. Die Dringlichkeit, Nekrose zu entfernen, geht auf zwei wichtige Faktoren zurück. Erstens neigt Nekrose zur Beschleunigung mjkrobieller Infektionen, Ferner verbindert dieses tote und absterbende Gewebe die Einleitung des Heüungsprozesses, bei dem Menschen Granulation und Epithelisation.Die Verwendung von Kollagenase als ein Material zum Zerlegen derartiger Gewebe wurde bereits vorgeschlagen. Jedoch sind die bisher bekannten Kollagenasen keine so wirkungsvollen Zersetzstoffe wie die erfindungsgemäß hergestellte enzymatische Zusammensetzung. In einigen Fällen besaßen die bisher bekannten Kollagenasen nur Kollagenasenwirksamkeit, ohne wesentliche Wirksamkeit gegen die anderen vorhandenen Proteine.Auch ist. aus der USA.-Patentschrift 3 201325 bereits bekannt, daß zentrifugierte Fermentationsmedien, welche durch aerobes Züchten, eines Stammes von Clostridium histolyticum in bermentationsmedien erhalten wurden, proteolytisches Enzym und Kollagenase enthalten. Dort wird jedoch nicht der bestimmte erfindungsgemäß einzusetzende Stamm verwendet. Die nach diesem bekannten Verfahren hergestellte Kollagenase ist der erfindungsgemäß hergestellten enzymatischen Zusammensetzung sowohl hinsichtlich der Wirksamkeit als auch der Toxizitätswerte unterlegen.Die Aufgabe der Erfindung besteht in einem Verfahren zur Herstellung einer enzymatischen Zusammensetzung mit proteolytischem Enzym und Kollagenase-Aktivität, die ein wirksameres Zersetzungsmittel als die gegenwärtig bekannte Kollagenase darstellt. Darüber hinaus soll diese enzymatische Zusammensetzung nicht toxisch sein und praktisch keine Nebenwirkungen zeigen. Ferner soll diese enzymatische Zusammensetzung als lokal anzuwendende Salbe zur Auftragung auf Hautverletzungen oder als injizierbares Mittel, das bei der Zersetzung von Bindegewebe in den inneren Teilen des Körpers wirksam ist, verwendbar sein und das Wachstum von Bakterien verhindern.Gegenstand der Erfindung ist ein Verfahren zur Herstellung einer enzymatischen Zusammensetzung mit proteolytischem Enzym und Kollagenase-Aktivität durch aerobes Züchten eines Clostridium histolyticum in hierfür üblichen Nährmedien und bei hierfür üblichen Temperatur und pH-Wert-Verhältnissen, das dadurch gekennzeichnet ist, daß man das flagellenlose Clostridium histolyticum ATCC 21 000 e;nsetzt, die Zellen entfernt und die enzymatische Zusammensetzung mit proteolytischem Enzym und Kollagenase-Aktivität aus der Fermentationsflüssigkeit gewinnt.Das erfindungsgemäß eingesetzte flagellenlose und somit unbewegliche Clostridium histolyticum ATCC 21 000 ist erstmals als Mutante in einer Kultur von üblichem mit Flagellen versehenem Clostridium histolyticum isoliert worden. Überraschenderweise hat die gemäß dem erfindungsgemäßen Verfahren hergestellte enzymatische Zusammensetzung unerwartete hervorragende Eigenschaften als Zersetzungswirkstoff. Diese neue enzymatische Zusammensetzung beseitigt nämlich wirksam das gesamte nekrotische Gewebe und einen kleinen umgebenden Bereich von gemischtem, d. h. lebendem und totem Gewebe, wobei sowohl Kollagen als auch andere Proteine angegriffen werden. Dadurch verbleibt eine reine Oberfläche, auf welcher das Wachstum von neuem, gesundem Gewebe einsetzen kann.Die erfindungsgemäß erhaltene enzymatische Zu-
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US56370266A | 1966-07-08 | 1966-07-08 |
Publications (3)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE1642578A1 DE1642578A1 (de) | 1972-03-09 |
DE1642578B2 true DE1642578B2 (de) | 1974-02-14 |
DE1642578C3 DE1642578C3 (de) | 1974-09-19 |
Family
ID=24251557
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE1642578A Expired DE1642578C3 (de) | 1966-07-08 | 1967-06-29 | Verfahren zur Herstellung einer enzymatischen Zusammensetzung mit proteolytischem Enzym und Kollagenase-Aktivität |
Country Status (5)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US3705083A (de) |
JP (1) | JPS4924669B1 (de) |
BR (1) | BR6791131D0 (de) |
DE (1) | DE1642578C3 (de) |
GB (1) | GB1192937A (de) |
Families Citing this family (20)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
FR2216992A1 (en) * | 1973-02-12 | 1974-09-06 | Anvar | Low MW, purified collagenase prepn - by ion-exchange chromatography of enzyme from first-stage larvae of hypoderma spp. |
US4524065A (en) * | 1983-08-04 | 1985-06-18 | Bio-Specifics N.V. | Method for the prevention and treatment of scars with enzymes |
JPS60188066A (ja) * | 1984-03-09 | 1985-09-25 | Akira Endo | 新コラゲナ−ゼ、デイスコリシン及びその製造法 |
US5177017A (en) * | 1990-03-22 | 1993-01-05 | Trigen, Inc. | Molecular cloning of the genes responsible for collagenase production from Clostridium histolyticum |
CA2047306A1 (en) * | 1990-07-23 | 1992-01-24 | Milan Holjevac | Mutant bacterium clostridium histolyticum, a process for the obtaining thereof, and its use in the production of clostripain-free collagenase |
US5173295A (en) * | 1990-10-05 | 1992-12-22 | Advance Biofactures Of Curacao, N.V. | Method of enhancing the regeneration of injured nerves and adhesive pharamaceutical formulation therefor |
US5393792A (en) * | 1991-11-20 | 1995-02-28 | Advance Biofactures Of Curacao, N.V. | High dosage topical forms of collagenase |
US5332503A (en) * | 1993-04-16 | 1994-07-26 | Baxter International Inc. | Process for purifying collagenase |
WO1996000283A1 (en) * | 1994-06-24 | 1996-01-04 | Boehringer Mannheim Corporation | A purified mixture of collagenases and two other proteases obtained from clostridium histolyticum |
US5851522A (en) * | 1995-06-07 | 1998-12-22 | Trustees Of Tufts College | Enhancing keratinocyte migration |
US5989888A (en) * | 1996-01-24 | 1999-11-23 | Roche Diagnostics Corporation | Purified mixture of collagenase I, collagenase II and two other proteases |
US5830741A (en) * | 1996-12-06 | 1998-11-03 | Boehringer Mannheim Corporation | Composition for tissue dissociation containing collagenase I and II from clostridium histolyticum and a neutral protease |
US8323642B2 (en) * | 2006-12-13 | 2012-12-04 | Depuy Mitek, Inc. | Tissue fusion method using collagenase for repair of soft tissue |
US10071143B1 (en) | 2007-05-03 | 2018-09-11 | The Research Foundation For The State University Of New York | Methods for non-surgical treatment of carpal tunnel syndrome |
US20100159564A1 (en) * | 2007-11-30 | 2010-06-24 | Dwulet Francis E | Protease resistant recombinant bacterial collagenases |
BR112012013812A2 (pt) | 2009-12-08 | 2018-05-29 | Healthpoint Ltd | "composições para desbridamento enzimático de feridas com atividade enzimática melhorada" |
WO2014066622A2 (en) | 2012-10-24 | 2014-05-01 | The Research Foundation For The State University Of New York | Use of collagenase to treat glaucoma |
WO2016094675A1 (en) | 2014-12-12 | 2016-06-16 | Smith & Nephew, Inc. | Use of clostridium histolyticum protease mixture in promoting wound healing |
CN110199016A (zh) | 2016-11-17 | 2019-09-03 | 艾欧凡斯生物治疗公司 | 残余肿瘤浸润淋巴细胞及其制备和使用方法 |
WO2019118631A1 (en) * | 2017-12-12 | 2019-06-20 | Bio Med Sciences, Inc. | Debriding wound dressing, process of manufacture and useful articles thereof |
-
1966
- 1966-07-08 US US563702A patent/US3705083A/en not_active Expired - Lifetime
-
1967
- 1967-06-26 GB GB29324/67A patent/GB1192937A/en not_active Expired
- 1967-06-29 DE DE1642578A patent/DE1642578C3/de not_active Expired
- 1967-07-07 BR BR191131/67A patent/BR6791131D0/pt unknown
- 1967-07-07 JP JP42043453A patent/JPS4924669B1/ja active Pending
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPS4924669B1 (de) | 1974-06-25 |
DE1642578A1 (de) | 1972-03-09 |
US3705083A (en) | 1972-12-05 |
BR6791131D0 (pt) | 1973-05-10 |
GB1192937A (en) | 1970-05-28 |
DE1642578C3 (de) | 1974-09-19 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
DE1642578C3 (de) | Verfahren zur Herstellung einer enzymatischen Zusammensetzung mit proteolytischem Enzym und Kollagenase-Aktivität | |
EP0060553B1 (de) | Präparat zur Behandlung von Wunden der Hautoberfläche und Verfahren zur Herstellung des Präparats | |
DE602004002717T2 (de) | Blattförmige Wundauflage aus mikrobieller Zellulose, enthaltend PHMB, für chronische Wunden | |
DE60203264T2 (de) | Mikrobieller Cellulose-Wundverband zur Behandlung chronischer Wunden | |
EP0103878B1 (de) | Präparate zur Behandlung von Wunden der Hautoberfläche und Verfahren zur Herstellung derartiger Präparate | |
DE2635508A1 (de) | Antiseptischer verband | |
DD147251A5 (de) | Verfahren zur herstellung eines stoffs mit bakteriostatischer aktivitaet | |
DE2923144C2 (de) | Impfstoff zur Prophylaxe und Behandlung von durch Trichophyton mentagrophytes hervorgerufenen Trichophytien bei Pelztieren und Kaninchen und seine Herstellung | |
DD267994A5 (de) | Verfahren zur Herstellung von Algen mit verbesserter biologischer Wirkung | |
DE2414156A1 (de) | Arzneimittel zur beseitigung uraemischer symptome und verfahren zu seiner herstellung | |
EP0493662A1 (de) | Verwendung von Superoxiddismutasen für die Herstellung von Arzneimitteln zur Prophylaxe und/oder Behandlung von Organversagen bei Risikopatienten mit Polytrauma als Unfallfolge | |
CH639133A5 (de) | Verfahren zur herstellung einer antitumor wirksamen substanz mit immunostimulierender wirkung. | |
EP0069995B1 (de) | Verfahren zur Herstellung eines Bienenpollengemisches mit verbesserter Resorbierbarkeit sowie ein zur Hyposensibilisierung geeignetes Bienenpollengemisch | |
Wong et al. | Pseudomonas tolaasii in mushroom (Agaricus bisporus) crops: activity of formulations of 2‐bromo‐2‐nitropropane‐1, 3‐diol (bronopol) against the bacterium and the use of this compound to control blotch disease | |
EP1446441A1 (de) | Verfahren zur behandlung von materialien biologischen ursprungs und kollagen-elastin-produkt | |
US2187766A (en) | Therapeutic composition | |
AT392003B (de) | Verfahren zur herstellung eines insbesondere zur wundheilung oder zur behandlung in der geriatrie verwendbaren wirkstoffes aus saeugetierblut durch papainhydrolyse und ein einen solchen wirkstoff enthaltendes praeparat | |
EP0380675A1 (de) | Verfahren zur herstellung von sauermilchprodukten | |
HARTLEY et al. | Experimental osteogenesis in rabbit muscle | |
DE1115888B (de) | Verfahren zur Herstellung eines Streptokinase-Praeparates | |
DE1617868C3 (de) | Verfahren zur Herstellung einer anticancerös wirksamen Substanz durch Züchten von Mikroorganismen in einem Nährmedium | |
AT203149B (de) | Verfahren zur Keimfreimachung zersetzlicher Materialien | |
DE1910715A1 (de) | Antimikrobielle Faktoren und deren Verwendung | |
DE946061C (de) | Verfahren zur enzymatischen Hydrolyse von Eiweissstoffen und Autolyse von tierischen Geweben | |
DE663748C (de) | Verfahren zur Herstellung eines wirksamen Mittels zur Zersetzung von koerperfremdem Eiweiss, insbesondere fuer Krebserkrankungen |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C3 | Grant after two publication steps (3rd publication) | ||
E77 | Valid patent as to the heymanns-index 1977 |