DE1617902A1 - Verfahren zur Herstellung des Antibiotikums Armentomycin - Google Patents
Verfahren zur Herstellung des Antibiotikums ArmentomycinInfo
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Description
cin .
Die vorliegende Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellüng-jies Antibiotikums Armentomycin (U-10,923).
■
Armentomycin ist ein biosynthetisches Produkt, das durch Züchten eines armentomycin-bildenden Actinoniyzeten
in einem wässrigen Mhrmedium hergestellt
wird. Es ist eine amphoter« Substanz^ die die Eigen schaft
besitzt, das Wachstum gewisser Organismen, insbesondere
Bakterien, z.B. Pseudomonas aeruginpsas
Proteus vulgaris» Proteus mirabilis* Saliaonella gallinarum,
Proteus rettgeri und Bscüerichia eoli zu beeinträchtigen
und kaHH allein oder in iiosibinatioK mit
anderen antibakteriellen Mitteln vertjeiidet x-ieröss.,, vm
das Wachstum derartiger in vei^sehiedsnen
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vorkommender Organismen zu verhindern oder ihre An zahl zu verringern. Beispielsweise kann es in Papierfabriken
verwendet werden, um das Wachstum von Aero bacter
aerogenes zu verhindern, das bekanntlich in derartigen Anlagen Schleim erzeugt. Es ist auch als Öl konservierungsmittel
geeignet, z.B. als bakteriostatisches Mittel zur Wachstumshemmung von Proteus vul garis,
das bekanntlich das Verderben von Schneidölen verursacht. Außerdem ist es in Waschlösungen für sanitäre
Zwecke geeignet, z.B. zum Händewaschen und zum Reinigen von Geräten, Böden oder Einrichtungen verun reinigter
Bäume oder Laboratorien; es ist ferner als industrielles Schutzmittel geeignet, z.B. als bacteriostatisches
Spülmittel für gewaschene Kleidungsstücke und zum Imprägnieren von Papier und Geweben und es ist
zur Wachstumshemmung empfindlicher Organismen in Plattenkultüren und anderen biologischen Medien geeignet.
Es kann auch als Nahrungsmittelzusatz verwendet
werden, um das Wachstum von Tieren, z.B. Säugetieren, Vögeln, Fischen und Reptilien zu fördern.
Der erfindungsgemäß zur Herstellung von Armentomycin
verwendete Actinomyzet wurde als S. armentosus var. armentosus nov. sp. bezeichnet. Eine seiner Zucht eigenschaften
ist die Bildung von Armentomycin. Eine Subkultur des lebenden Organismus kann unter der
Nummer NRRL 3176 von der ständigen tJamialung -er Nor them
Utilization and Research Divir^ion, Agvicul tural
Research Service, U.S. Department of Agricul tures
Peorias Illinois, U.S.A. erhalten werden.
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Die Eigenschaften von Streptomyces armentosus var. armentosus nov. sp., NEHL 3176» sind in den folgenden
Tabellen angegeben:
Tabelle I : Tabelle II: Tabelle III
Tabelle IV: Tabelle V :
Aussehen auf Ektachrom; Mikroskopische Eigenschaften;
Assimilierung von Kohlenstoffverbindungen in synthetischem Medium
(J. Bact. Band 56, Seite 107-114, 1948);
Kultureigenschaften;
Farbe nach dem Color Harmony Manual, 3. Auflage, 1948 und dem ISCC-NBS-Verfahren
zur Bestimmung von Farben und einem Wörterbuch von Farbnamen, NBS Rundschreiben, 553.
Aussehen von Streptomyces armentosus var. armentosus nov. sp. auf Ektachrom .
Oberfläche
Bennett's Medium Czapek*s Sucrose
Maltose Trypton Pepton-Eisen 0,1 io Tyrosin
Kaseinstärke
lacherosa blassrosa
lachsrosa Spur rosa blassrosa rosa
gelblich-braungelb farblos bis blassrosa
braungelb braun
blassrosa blass braungelb
blassrosa blass braungelb
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- 4 -Tabelle II:
Mikroskopische Eigenschaften von Streptomyoes annen -tosuB var. annentoeus nov. sp«
Lichtmikroskop: Sporophoren gradef offene
Schleifen und Spiralen;
£1ekt ronenmikrο ek op:
Direkt Sporen wurstart ig, glatt;
Kohlenstoffreplika Sporen glatt mit Leistenbildung und etwas Korb flechteffekt.
Aeaimilierung von Kohlenstoffverbindungen in synthetischem Medium (J. Bact. Band 56. Seite 107-114. 1948)
durch Streptomyces araentosus var. annentosus nov.sp.
Kontrolle (+)
1. D-Xylose +
2. L-Arabinose . +
3. Rhamnose +
4. D-Fructose (+)
5. D-Galactoee +
6. B-Ölucose +
7. IVMannose +
8. Maltose +
9. Saccharose (+)
10. Lactose (+)
11. Cellobiose +
12. Raffinose (-)
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- 5 -Tabelle III (Fortsetzung)
13. Dextrin +
14. Inulin (-)
15. lösliche Stärke +
16. Glycerin +
17. DuIoit (-)
18. D-Mannit (-)
19. D-Sorbit (-)
20. D-Inoait +
21. Salicin (-)
22. Phenol (-)
23. Cresol (-)
24. Na-Format (-)
25. Na-Oxalat (-)
26. Na-Tartrat (-)
27. Ha-Salioylat
28. Na-Acetat
29. Na-Citrat
30. Ha-Suocinat
+ 3 poaitire Asaimilierung; (-) » leichtes Wachstum, kein· Aesimilierune
(+) - positive AeeiBilierung
leichtes Wachstue; - * kein Wachetua.
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Tab·11· IVt
Kultureigenachaften τοη Streptomyces
armentosua Tar, armentosus nov. sp.
Medium
Pepton-Eisen-Agar
Calciuamalatagar
Glucoae-Aaparagin-Agar
(Luftwach a turn)
weiß
gut, Sandalhols
grauweiß
Tyroain-Agar
Xanthin-Agar
Agar
weißgrau .
weiß
rosa und grau
Rückseite
braungelb
farblos
cremefarben
gelbbraungelb
gelbbraungelb
hellgelb
Pigment
braungelbbraun
keines
keines
braun -braungelb
braungelb
keines
cremefarben keines
sonstige Angaben
Melanin +
Malat löslich gemacht
keine
Kasein um das Wachstum herum löal. gemacht
Tyrosin löslich ge · macht
Xanthin löslich gemacht
Stärke löslich gemacht
co • ο
Medium |
Oberfläche
(Luftwachstum) |
Rückseite |
Tomatenpaste-
Hafermehl-Agar |
weiß | farblos |
sythetischer
Nitratbrei |
weiß | keine |
Nähr-Nitrat- | rosa-weiß | keine |
Lakmusmilch | keine | keine |
einfache Gelatine Spur weiß
Spur weiß
keine
keine Pigment
keines keines
keineβ
blau
gelbbraungelb
gelb-braungelb in 1/3 des Glases
sonstige Angaben
keine
keine Reduktion
keine Reduktion
gewisse Peptonisierung, pH-Wert 7,1
Spuren von Ver- -J flüssigung '
Verflüssigung in des Glases
Farbe von Streptomyces armentosus var. armentosus nov,
ep. nach dem Color Harmony Manual, 3· Auflage, 1946
und dem ISOO-NBS-Verfahren der Bezeichnung von Farben
und einem Wörterbuch von Farbnamen, NBS Runde ehr ei -
ben 553.
Medium
Bennets
Bennets
Czapeks
Saccharose
Saccharose
Maltose-Trypton
l) 5 ob = unbezeichnet
2)
1) 5 ba = muschelrosa
2) 9m
weiß
» rosa-
1) 5 ba = muschelrosa
2) 9 m = rosaweiß
Rückseite
2 ge β bambus, chamois
90 gm = graugelb
2 db
bein
bein
89 gm
gelb
gelb
90 g β graugelb
121 m = blaßgelb-grUn
2 gc = bambus,
chamois
chamois
90 gm
gelb
gelb
grau
Pigment
2 gcM+ = bambuß, chamois
90 gm = graugelb
β elfen- keines
blaß- keines
2 gcM = bambus, mois
90 gm = graugelb
cha-
= Matte Oberfläche (alle anderen glänzend).
Die erfindungsgemäße Verbindung wird gebildet, wenn der produzierende Organismus in einem wässrigen
β 8 7 /
Nähnnedium unter submersen aeroben Bedingungen ge züchtet
wird* Ee ist ferner zu beachten, daß für die Herstellung begrenzter Mengen, Oberfläohenkultüren
in Flaschen verwendet werden können. Der Organismus
wird in einem Nährmedium gezüchtet, das eine Kohlen stoffquelle,
z.B. eine assimilierbare Stickstoffverbindung oder »inen proteinhaltigen Stoff enthält. Bevorzugte
Kohlenstoffquellen sind u.a. Glucose, brauner
Zucker, Saccharose, Glycerin, Stärke, Maisstärke, Galactose, Dextrin, Melassen und dgl.. Bevorzugte Stickstoffquellen
sind u.a. Maiaquellwasser, Hefe, autolysierte
Brauereihefe mit Milchfeststoffen, Sojabohnen mehl, Baumwollsamenmehl, Maismehl, Milchfeststoffe,
Pancreas-Digest von Kasein, Schlempe, Fischmehl, tierische
Peptonfltissigkeiten, Fleisch- und Knoohenabfälie
und dgl.. Vorteilhaft erweise kann eine Kombination die-?
ser Kohlenstoff- und Stickstoffquellen verwendet werden. Spurenmetalle, z.B. Zink, Magnesium, Mangan, Kobalt,
Bisen und dgl. brauchen der Gärung nicht züge setzt werden, da Leitungswasser und ungereinigte Stoffe
als Beetandteile der Medien verwendet werden.
SLe Herstellung der erfindungsgemäflen Verbin dung
kann bei jeder beliebigen Temperatur erfolgen, die ein zufriedenstellendes Wachstum des Mikroorganis raus
zuläßt, z.B. zwischen etwa 18 und 40 C und vorzugsweise zwischen etwa 25° und 500C. Gewöhnlich wird eine
optimale Bildung der Verbindung in etwa 2 bis 10 Sagen erhalten» Während der Gärung bleibt das Medi« sä>f «=»
malerweise nahezu neutral oder etwas sauer. Be? ©siel "«
gültige pH-Wert hängt teilweise von eventuall
denen Puffern und teilweise von dem anfängliches
.iöiSII/HSS
Wert des Kulturmediums ab, das vorteilhaft erweise vor der Sterilisierung auf einen pH-Wert von 6 bis 8
eingestellt wird.
Wenn die Züchtung in großen Gefäßen oder Tanks durchgeführt wird, ist es vorzuziehen, statt der Sporenform die vegetativ« Fora der Mikroorganismen für
die Impfung zu verwenden, um eine deutliche Verzögerung bei der Bildung der neuen Verbindung und die
sich daraus ergebend· unwirtschaftliche Ausnutzung der
Anaige zu vermeiden. Dementsprechend ist es erwünscht, ein vegetatives Inokulum in einer Nährbruhenkultur
herzustellen, indem man die Mährbrühenkultur mit einer
gleichen Menge einer Boden- oder Schrägbodenkultur impft. Wenn ein junges, aktives, vegetatives Inokulum
auf diese Welse sichergestellt ist, wird es aseptisch
in große Gefäße oder Tanks überführt. Das Medium, in dem das vegetative Inokulum hergestellt wird, kann das
gleiche oder verschieden von dem sein, das für die Herstellung der neuen Verbindung verwendet wird, so -lange es so beschaffen ist, daß ein gutes Wachstum das
Mikroorganismus erzielt wird.
IHe erfindungsgemäß herstellbare Verbindung
ist eine amphoter» Verbindung, die die empirisch· formel C^H7CX2HO2 bet. sie hat eine basische Funktion von etwa pKa( 8,28. Sie ist löslich in Wasser
und niederen Alkanolen, z.B. Methanols Äthanol, Isopropanol, den Butanole^ und dgl.; sie ist relativ unlöslich in chlorierten niederen Alkanen» 8,3. Methylenchlorid, Chloroform, Xthylendichlorid und dgl·; niederen Alkanouen, z.B. Aceton, MethyläthylKeton und
dgl., höheren Alkoholen und gesättigten Kohlenwaeeer-
st of f-!lösungsmitteln·
Pur die Isolierung und Reinigung von Armentomycin
kann eine Vielzahl von Verfahren angewendet werden, z.B. Lösungsmittelextraktion, Flüssigkeits-Flüssigkeit
s -Verteilung in einem Craig-Apparat, die Verwendung von Adsorptionsmitteln und Auskristallisieren
aus Lösungsmitteln.
In einem bevorzugten Verfahren wird Armentomycin aus seinem Kulturmedium durch Abtrennen des My eel s
und ungelöster Feststoffe durch übliche Maßnahmen wie
Filtrieren oder Zentrifugieren gewonnen. Bas Antibiotikum wird dann aus der filtrierten oder zentrifugierten
Brühe durch die Verwendung von oberflächenaktiven Adsorptionsmitteln, z.B. von entfärbender Kohle oder
entfärbenden Harzen und Auswaschen des adsorbierten Stoffs mit einem Lösungsmittel entfernt. Es kann irgend
eines der vorgenannten Lösungsmittel verwendet werden, in dem Armentomycin löslich 1st. Ein geeignetes
entfärbendes Harz ist Permutit DR (U.S,-Patentschrift
2 702 265). Die bei dem oberflächenaktiven Adsorptionsmittel erhaltenen Eluate können zur Trockne
eingedampft werden und ergeben ein verunreinigtes Präparat des Antibiotikums Armentomycin. Dieses Präparat
kann in Fällen verwendet werden, bei denen eine ,hohe Reinheit des Antibiotikums nicht erforderlieh ist.
Hochgradig reines Armentomycin kann erhalten werden, indem man ein verunreinigtes trockenes Präparat
von Armentomycin, das auf die vorstehende Weise erhalten wurde, einer Flüssigkeits-Flüssigkeits-Ver-
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teilung In einem Craig-Apparat unterwirft. Vor der. Verwendung des Craig-Apparates kann das trockne Präparat
mit einem niederen Alkanol ausgelaugt werden; hierbei wird Methanol bevorzugt.
Sie Gegenstromverteilung im Craig-Apparat kann unter Verwendung eines Lösungsmittelsystems, das aus
gleichen Mengen n-Butanol und Wasser besteht, durch geführt werden. Wirksame Fraktionen, die vom Craig-Apparat
erhalten werden, können zu einer wässrigen Lösung eingeengt und dann gefriergetrocknet werden.
Aus einer Lösung eines niederen Alkanols (Äthanol wird bevorzugt) und Wasser läßt sich dieser Stoff dann als
kristallines Armentomycin gewinnen.
Die erfindungsgemäß herstellbare Verbindung läßt sich außerdem durch aufeinanderfolgende Über führungen
aus der freien Form in die gebundene Form und umgekehrt reinigen, insbesondere wenn andere Behandlungsarten
dazwischengeschaltet werden, z.B. Lösungsmittelextraktionen und Auswaschen, Chromatographie
und fraktionierte Flüssigkeits-Flüssigkeits-Extraktion.
Auf diese Weise lassen sich die Salze von Armentomycin verwenden, um das Antibiotikum zu isolieren und zu
veredeln. Beispielsweise kann das Antibiotikum in ein unlösliches Salz, z.B. das Picrat, überführt werden,
das gereinigt wird und dann zur Regenerierung des Antibiotikums verwendet wird, oder das Antibiotikum
kann in ein wasserlösliches Salz, z.B. das Hydrochlorid oder Sulfat überführt werden und die wässrige Lösung
des Salzes kann mit verschiedenen mit Wasser nicht mischbaren Lösungsmitteln extrahiert werden bevor das
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Ba Armentomycin eine amphotere Substanz ist,
bildet es mit Säuren, Alkalimetallen, Erdalkali -metallen und Aminen-Salze. Es lassen sich Metallsalze
dadurch herstellen, daß man Armentomycin in Wasser
löst, eine verdünnte Metallbase zusetzt, bis der pH-Wert der Lösung etwa 7 bis 8 beträgt und die Lösung gefriertrocknet, wobei man «inen getrockneten Bücketand
erhält, der aus dem Armentomycinmetallsalz besteht» Zu den Armentomycin-Me tall salzen gehören Natrium-,
Kalium» und Caloiumealze· Aminsalze von Armentomycin einschließlich derjenigen mit organischen Basen wie
primären, sekundären und tertiären Mono-, Pi- und Polyaminen, lassen sich ebenfalls nach den vorstehend
beschriebenen oder anderen Üblicherweise angewandten
Verfahren herstellen. Andere Salze.werden mit therapeutisch wirksamen Basen erhalten, die ihnen zusätzliche therapeutische Wirkungen verleihen. Derartige
Basen sind z.B. die Purinbasen, wie z.B. Theophyllin, Theobromin, Koffein oder Derivate derartiger Purinbasen; antihistamin Basen, die imstande sind, Salze
mit schwachen Säuren zu bilden; Pyridinverbindungen wie Nikotinsäureamid, Isonlootinsäurehydrazid sind
dgl.; Phenyl alkyl amine wie Adrenalin, Bphedrin und dgl., Cholin und andere.
Durch Neutralisieren des Armentomycin mit der
geeigneten Säure auf einen pH-Wert unter etwa 7,0 und vorzugsweise Einstellen auf einen pH-Wert von etwa 2 bis 6 lassen sich die sauren Salze von Armen-
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tomycin herstellen. Geeignete Säuren für diesen Zweck
sind 2.B. Salzsäure, Schwefelsäure, Phosphorsäure,
Essigsäure, Bernsteinsäure, Zitronensäure, Milchsäure» Maleinsäure, Fumarsäure, Pamoineäure, Cholsäure, PaI-mitinsäure, Mucinsäure, Kamphersäure, Glutarsäure, Glycolsäure, Phthalsäure, Weinsäure, Laurinsäure, Stearinsäure, Salicylsäure, 3-Phenylsalicylsäure, 5-Phenyl -salicylsäure, 2-Methylglutarsäure, ortho-Sulfobenzoe -säure, Cyclohexansulfaminsäure, Cyclopentanproplonsäure,
1,2-Cyclohexandicarbonsäure, 4— Cyclohexencarbonsäure *
Octadecenylbernsteinsäure, Octenylbernsteinsäure,
Methansulfonsäure, Benzolsulfonsäure, Helianthsäure,
Reineckes Dimethyldithiocarbaminsäure, Sorbinsäure,
Monochloressigsäure, Undecylensäure, 4'-Hydroxy -azobenxol-4-sulfonsäure, Octadecylschwefelaäure, Picrinsäure, Benzoesäure, Zimtsäure und ähnliche Säuren.
Saure und basische Salze von Armentomycin können für
die gleichen biologischen Zwecke verwendet werden wie die Auigangsverbindung.
StLe erfindungßgemäße Verbindung kann außerdem
aus der gefilterten Brühe durch Adsorption an ein Kationenauetauscherhar* gewonnen werden. Es können sowohl di· Carbonsäure- als auch die SuIfonsäuretypen
verwendet werden. Geeignet· Carbonsäureharze sind die Polyacrylsäureharze, die durch die Mischpolymerisation
von Acrylsäure und BLvinylbenzol nach dem Verfahren
erhalten werden, das von Kunin, Ion Exchange Resins, 2. Auflage, Seite 87 (1958), John Wiley <fc Sens Inc.
beschrieben wurde. Carbonsäure-Kationaustauscherharze
dieses Typs werden unter den Handelsnamen Amberlit· IRC-50 und Zeokarb 226 vertrieben. Geeignete Sulfon -
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säureharze sind am Kern sulfonierte Polystyrol harze,
die mit Divinylbenzol vernetzt sind und nach dem von Kunin, Seite 84 siehe oben beschriebenen Verfahren
erhalten wurden. Sulfonierte Kationenaustauscherharze dieses Typs werden unter den Handelsnaffien Dowex 50,
Amberlite IR-120, Halcite HCR, Chempro C-20, Per mutit
Q und Zeokarb 225 vertrieben.
Das Antibiotikum wird aus dem Harz bei einem sauren
pH-Wert, vorzugsweise einem niedrigeren pH-Wert als der pKa'-Wert des verwendeten Kationenaustauscherharzes
mit Wasser ausgewaschen. Zufriedenstellende Ergebnisse
werden mit einem pH-Wert von etwa 1 bis 6 erhalten. Die überschüssige Säure in dem Eluat wird auf
einen pH-Wert von etwa 7,5 bis 8,5 mit einer Base, z.B. Natriumhydroxyd oder einem stark basischen
Anionenaustauscherharz neutralisiert und das Antibiotikum wird mit einem Lösungsmittel nach dem obigen
Verfahren extrahiert.
Armentomycin kann jedoch aus dem Kulturmedium auch durch Verwendung eines starken basischen Anionaustauscherharzes
abgetrennt werden. Geeignete AnionenaustauBcherharze für diesen Zweck werden erhalten,
indem man nach dem von Kunin auf Seite 88 und 97, Ion Exchange Resins, 2. Auflage (1958) John Wiley
and Sons, Inc. beschriebenen Verfahren gegebenenfalls mit Divinylbenzol vernetztes Polystyrol, das nach dem
auf Seite 84 von Kunin, s. o. beschriebenen Verfahren
hergestellt wird, ehlormethyliert und mit Trimethylamin oder Dirnethyläthanolamin nach dem auf Seite 97
von Kunin s.o. beschriebenen Verfahren quaterniert.
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Anionaustauscherharze dieses Typs werden unter den· Handelsnamen Dowex-1, Dowex-2, Dowex-3, Amberlite
IRA-400, Duolite A-102 und Permutit S-I vertrieben.
Die erfindungsgemäß herstellbare Verbindung, Armentomycin, ist gegen proteus mirabilis wirksam
und kann verwendet werden, um Gerüche zu beseitigen oder zu verhindern, die durch diesen Organismus in
Papierfabriken hervorgerufen werden. Sie kann außer dem Fabriken der geilügelverarbeitenden Industrie verwendet werden, um durch den Organismus Salmonella
gallinarum hervorgerufene Infektionen zu bekämpfen.
Die folgenden Beispiele dienen zur Erläuterung des erfindungsgemäßen Verfahrens und dessen Produkte.
Alle Prozentsätze beziehen sich auf das Gewicht und alle Verhältniese von Lösungsmittelgemi sehen
beziehen sich auf das Volumen, sofern nichts anderes angegeben ist.
Beispiel 1:
A Gärung.
A Gärung.
Eine Bodenkultur von Streptomyces armentosus var. armentosus nov. sp. HHRL 3176 wurde zum Impfen von
500 CBr Erlenmeyerkolben verwendet, die 100 ecm steriles
Vorimpfmedium enthielten, das aus folgenden Komponenten bestand:
Glucosemonohydrat 25 g
Ö09887/17S5
1617102
Pharmamedia ist ein Baumwollsamenmehl In -dustrieller Reinheit, das durch die Trader's
Oil Mill Company, Fort Worth Texas herge -stellt wird.
Der pH-Wert des Vorimpfmediums vor dem Sterili -sieren betruf 7,2. Bas Vorimpfinokulum wurde 2 Hage
bei 28°C auf einer rotierenden öuap-SchUttelmaschine
gezüchtet, die «it 260 Umdrehungen pro Minute arbeitete.
Das Vorimpfinokulum (100 ecm) wurde sum Impfen
eines 40 Liter fassenden Impf tanks verwendet, der 20 Liter des folgenden sterilen Impfmediums enthielt:
+Wilson»· Peptonflüssiglceit Hr. 159 ist ·ίϋ Präparat ensymatisch hydrolysiert er Proteine tierischen Ursprungs.
Der pK-Wert des Impftankmediuata betrug vor dem
Sterilisieren 7,2. Diesea Inoculum wurde 24 Stunden
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lang bei einer Temperatur von 25°C unter Belüftung
mit einer Menge von 10 Standardlitern pro Hinute und
Rühren alt einer Geschwindigkeit von 400 Umdrehungen pro Minute gezüchtet.
Sin Teil des vorstehend beschriebenen Impftankinokulums (12,5 Liter) wurde dann zum Impfen eines
400 Liter fassenden Gärgefäßes verwendet, das 250 Liter des folgenden sterilen Gärmediums enthielt:
fharmamedia . 15 g/Liter
fischmehl 15 g/Literv
Der pH-Wert des Gärtankmediums vor dem Sterilisieren betrug 7,2. Sie Gärung dauerte 4 Tage und während dieser Zeit wurde die Temperatur auf 25 C gehalten· filtrierte Luft wurde in einer Menge von 100 Standardlitern pro Minute zugeführt und es wurde mit einer
Geschwindigkeit von 200 Umdrehungen/Minute gerührt. Steriles Schmalzöl wurde zur Regulierung des Schaums
zugesetzt. Bine vor der Veiterverarbeitung entnommene
Probe ergab 213 Bioeinheiten pro ecs» gegen P, airabilis.
Bas Gewicht der gesamten Brühe betrug 263 kg.
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BLe gesamte Brühe der oben beschriebenen Gärung wurde mit 7 i» ihres Gewichts Diatomeenerde ange schlämmt
und filtriert. Das FiItrat (286 Liter) würde
im Vakuum auf ein Volumen von 47 Liter eingeengt. Nachdem es mit 2,5 kg Aktivkohle 45 Minuten lang gerührt
worden war, wurde es mit Hilfe von Diatomeenerde filtriert. Dem Filtrat wurde unter Rühren Aceton auge setzt.
Der erhaltene Niederschlag wurde mit Hilfe von 3,5 kg Diatomeenerde abfiltriert. Das Aeetonfiltrat
(250 Liter) wurde zu einem wässrigen PiItrat einge engt
und gefriertrocknet und ergab 1991 S rohes Armentomycin, dessen Probe gegen P. mirabilis 12 Bioeinheiten
pro mg ergab. ^
C. Reinigung.
In einem Waring-Mischer wurden 200 g Armentomycin ,
die auf die vorstehend beschriebene Weise erhalten wurden, mit 1200 com absolutem Methanol 10 Minuten
ausgelaugt. Das Gemisch wurde filtriert und der unlösliche Bilcketand verworfen. Das Filtrat (1000 acm)
wurde mit 5 Volumen Aceton (5000 com) gemischt und der
sich bildende Niederschlag wurde abfiltriert und verworfen. Das verbleibende Piltrat wurde zur Trockne
eingedampft und ergab 22,6 g Armentomycin. Dieser Stoff wurde durch Gegenstromverteilung auf die nach stehend
weiter beschriebene Weise gereinigt.
(1) Erste Gegenstromverteilung .
Das verwendete Lösungsmittel syst em bestand aus
909887/1755
gleichen Mengen n-Butanol und Wasser. Der Ausgangs stoff
10 g Armentomycin aus Teil C wurde in der unteren
Phase des obigen Systems (200 ecm) gelöst und diese wurde in einem ganz aus Glas bestehenden Craig-Gegenstromapparat
(20 Rohre) eingeführt. Die obere Phase 200 ecm aus gleichen Mengen n-Butanol und Wasser
wurde zugesetzt und die Verteilung wurde bei lOOÖDurchgängen durchgeführt*
£e wurden die folgenden Fraktionen gesammelt ι
Fraktion I Rohre 20-40
Fraktion II Rohre 41-60
Fraktion III Rohre 61-80
Fraktion IV Rohre 81-120
Fraktion V Rohre 121-210
Fraktion VI Rohre 211-260
Jede Fraktion wurde zur Trockne eingedampft,
indem man sie zuerst zu einer wässrigen Lösung im Vakuum einengt und dann gefriertroeknete. Die gefriertrockneten
Präparate der Fraktionen I bis V erwiesen sich als nicht wirksam gegen P. mirabilis. Die gesamte
Wirksamkeit befand sich In dem gefriertrockneten Präparat (480 mg), das aus der Fraktion VI hergestellt worden war.
Sine ähnliche Gegenstromverteilung, bei der 12 g Ausgangsstoff verwendet wurde* das auf die in Teil C
beschriebene Weise erhalten worden war, ergab 870 Bg
wirksames Armentomycinpräparat ♦
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Diese beiden Präparate (480 mg und 870 mg) von Armentomycin wurden vereinigt und unter Erhitzen in
125 ecm absolutem Methanol und 7 ecm Wasser gelöst. Die klare Lösung wurde bei 5°C 24 Stunden lang stehenge lassen
und danach wurde ausgefallenes Armentomycin abfiltriert und getrocknet; die Ausbeute betrug 400 mg
Armentomycin.
(2) Zweite Gegenstromverteilung.
Um die Reinheit des obigen kristallinen Annen tomyeins
au bestimmen, wurde dieses Präparat in einem Craig-Gegenstrom-Verteilungsapparat (2 ccm/Phase) un ter
Verwendung gleicher Mengen n-Butanoli Wasser als
Lösungsmittelsystem verteilt. Nach 1000 Durchgängen wurden die Rohre 181 bis 245 vereinigt. Die Lösung
wurde zu einer wässrigen Lösung eingeengt und gefriertrocknet; die Ausbeute betrug 300 mg Armentomycin.
Dieses Präparat wurde aus 25 ecm absolutem Äthanol und 2,2 ecm Wasser umkristallisiert; die Ausbeute betrug
250 mg kristallines Armentomycin.
Die in dar ganzen vorliegenden Anmeldung durchgeführte
Probe gegen Proteus mirabilis ist eine mikrobiologische Plattenkulturprobe auf synthe ti scheiß Agar»
das auf einen pH-Wert von 7»0 eingestellt ist. Das verwendete synthetische Agar wird von den Baltimore Biological
Laboratoriess Baltimore» Maryland hergestellt.
Es wird aia "Upjoha Mineral Salts Agar " bezeichnet
und enthält folgend® Bastandteiles
& <0 υ
Prim, Kaliumphosphat sek. Kaliumphosphat Magnesiumsulfat
Ammoniumsulfat Natriumeitrat Agar
3 g/Liter
7 g/Liter
0,1 g/Liter 1,0 g/Liter 1,0 g/Liter 15 g/Liter
7 g/Liter
0,1 g/Liter 1,0 g/Liter 1,0 g/Liter 15 g/Liter
Es werden 27,1 g des obigen Mediums pro Liter destillierten Wassers verwendet. Bei den verwendeten
Platten handelt es sich um übliche 12,7 mm standard platten auf die 0,08 ecm der Testlösung aufgebracht
wird. Eine Bioeinheit ergibt einen Hemmungshof von 20 mm.
Chemische und physikalische Eigenschaften von Armentomycin.
Elementaranalyse: berechnet für Ο
C 27,93; H 4,10; N 8,14; Cl 41.23; 0 18,60;
gefunden:
G 28,39; H 4,44; N 9,09; Cl 40,60; 0 17,48
Berechnetes Molekulargewicht: 172
Äquivalent gewicht s 168 (Titration mit KOH)
174 (in Essigsäurelösung unter Verwendung von Perchlorsäure als Titrationsmittel)
Titration:
pKa1 8,28
Ultraviolettspektrum: Armentomycin zeigt keine
Maxima zwischen 220 und 400
Infrarotspektrum: Das Infrarotabsorptionsspektrum von Armentomycin» suspendiert
in Hujolmull ist in Fig. 1 der Zeichnungen wiedergegeben.
Armentomycin zeigt Maxima bei den folgenden, in reziproken Zentime tern
ausgedrückten Wellen längen:
3060 (S) | 1553 (S) | 1195 (W) |
2990 (S) | 1509 (S) | 1188 (W) |
2950 (S) | 1503 (S) | 1162 (W) |
2920 (S) | 1437 (S) | 1150 (M) |
2850 (S) | 1417 (S) | 1037 (W) |
2740 (M) | 1410 (W) | 1022 (W) |
2610 (M) | 1375 (M) | 971 (W) |
2585 (M) | 1362 (M) | 955 (W) |
2470 (W) | 1357 (S) | 914 (W) |
2085 (W) | 1328 (M) | 855 (M) |
1612 (S) | 1272 (M) | 785 (M) |
1588 (S) | 1225 (M) | 760 (W) |
1562 (S) | 1215 (W) | 675 (W) |
642 (S) |
Die Bandintensitäten sind als "S", 11M" bzw.
NWN angegeben und stellen Annäherungen bezogen auf den
Hintergrund in der Sähe des Bandes dar. Ein 11S"-Band
besitzt die gleiche Größenordnung an Intensität wie das stärkste Band im Spektrum; "M"-Bänder sind 1/3 bis
2/3 so intensiv wie das stärkste Band und "W"-Bänder sind weniger als 1/3 so intensiv wie das stärkste Band.
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Diese Schätzungen erfolgten auf der Grundlage einer die prozentuale Durchlässigkeit anzeigenden Skala.
Optische Drehung:
6,7 (c = 0,74, Wasser)
26,24° ( c * 0,74, pH 1, Wasser)
Löslichkeit:
Armentomycin ist löslich in Wasser und niederen Alkoholen, z.B. Methanol und Äthanol. Es
ist relativ unlöslich in weniger polaren Lösungsmitteln höheren Alkoholen, Alkanonen,
chlorierten Kohlenwasser stoffen und gesättigten Kohlenwasserstoff lösungsmitteln.
Papierchromatogramm:
Das papierchromatographisehe Muster von Armentomycin in den
folgenden Lösungsmittelsystemen
ist in Fig. 2 der Zeichnungen gezeigt ί
I 1-Butanol, Wasser (84-16), 16 Stunden?
II 1-Butanol, Wasser (84-16), plus 0,25 ^ p-Toluol·
sulfonsäure, 16 Stunden;
III 1-Butanol Essigsäure, Wasser (2il:l),
16 Stunden;
IV 2$ Piperidin (V./V.) in n-Butanol, Waeeer
(84 : 16), 16 Stunden;
V 1-Butanol, Wasser (4:96), 5 Stunden;
VI 1-Butanol, Wasser (4i96), plus 0,25 1· p-Toluol-
sulfonsäure, 5 Stunden .
900667/1755
Claims (1)
- Patentanspruch:Verfahren zur Herstellung des Antibiotikums Armentomycin, dadurch gekennzeichnet, daß man den Streptomyces armentosuB var. annentosus nov. sp. NRRL 3176 in einem wässrigen Nährmedium züchtet und die Gärlösung aufarbeitet.The Upjohn CompanyRechtsanwalt7/-1TI5
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Family Applications (1)
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DE (1) | DE1617902A1 (de) |
GB (1) | GB1131079A (de) |
NL (1) | NL6604978A (de) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE2311655A1 (de) * | 1972-03-13 | 1973-09-27 | Upjohn Co | Neue antibiotikum und verfahren zu seiner herstellung |
CN108048366A (zh) * | 2018-01-19 | 2018-05-18 | 曲阜师范大学 | 一株海洋放线菌及其应用 |
Families Citing this family (2)
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US3454696A (en) * | 1968-02-19 | 1969-07-08 | Schering Corp | Antibiotics 460 and methods for their production |
US3458626A (en) * | 1968-02-26 | 1969-07-29 | Schering Corp | Antibiotics 15 and methods for their production |
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- 1966-04-14 DE DE19661617902 patent/DE1617902A1/de active Pending
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Also Published As
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NL6604978A (de) | 1966-10-17 |
GB1131079A (en) | 1968-10-23 |
US3342681A (en) | 1967-09-19 |
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