DE1598008A1 - Diagnostizierungsmittel und Verfahren zum Nachweis von Zuckerarten in animalischem,biologischem Material - Google Patents

Diagnostizierungsmittel und Verfahren zum Nachweis von Zuckerarten in animalischem,biologischem Material

Info

Publication number
DE1598008A1
DE1598008A1 DE19661598008 DE1598008A DE1598008A1 DE 1598008 A1 DE1598008 A1 DE 1598008A1 DE 19661598008 DE19661598008 DE 19661598008 DE 1598008 A DE1598008 A DE 1598008A DE 1598008 A1 DE1598008 A1 DE 1598008A1
Authority
DE
Germany
Prior art keywords
paper
detection
sugar
urine
tolidine
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
DE19661598008
Other languages
English (en)
Other versions
DE1598008B2 (de
DE1598008C3 (de
Inventor
Habil Dahlqvist Arne Lenna Med
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Phadia AB
Original Assignee
Kabi AB
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority claimed from SE152/66A external-priority patent/SE317532B/xx
Application filed by Kabi AB filed Critical Kabi AB
Publication of DE1598008A1 publication Critical patent/DE1598008A1/de
Publication of DE1598008B2 publication Critical patent/DE1598008B2/de
Application granted granted Critical
Publication of DE1598008C3 publication Critical patent/DE1598008C3/de
Expired legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • HELECTRICITY
    • H01ELECTRIC ELEMENTS
    • H01MPROCESSES OR MEANS, e.g. BATTERIES, FOR THE DIRECT CONVERSION OF CHEMICAL ENERGY INTO ELECTRICAL ENERGY
    • H01M4/00Electrodes
    • H01M4/86Inert electrodes with catalytic activity, e.g. for fuel cells
    • H01M4/88Processes of manufacture
    • H01M4/8875Methods for shaping the electrode into free-standing bodies, like sheets, films or grids, e.g. moulding, hot-pressing, casting without support, extrusion without support
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01JCHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
    • B01J39/00Cation exchange; Use of material as cation exchangers; Treatment of material for improving the cation exchange properties
    • B01J39/04Processes using organic exchangers
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01JCHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
    • B01J39/00Cation exchange; Use of material as cation exchangers; Treatment of material for improving the cation exchange properties
    • B01J39/08Use of material as cation exchangers; Treatment of material for improving the cation exchange properties
    • B01J39/16Organic material
    • B01J39/18Macromolecular compounds
    • B01J39/22Cellulose or wood; Derivatives thereof
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01JCHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
    • B01J41/00Anion exchange; Use of material as anion exchangers; Treatment of material for improving the anion exchange properties
    • B01J41/08Use of material as anion exchangers; Treatment of material for improving the anion exchange properties
    • B01J41/12Macromolecular compounds
    • B01J41/16Cellulose or wood; Derivatives thereof
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/54Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving glucose or galactose
    • HELECTRICITY
    • H01ELECTRIC ELEMENTS
    • H01MPROCESSES OR MEANS, e.g. BATTERIES, FOR THE DIRECT CONVERSION OF CHEMICAL ENERGY INTO ELECTRICAL ENERGY
    • H01M4/00Electrodes
    • H01M4/86Inert electrodes with catalytic activity, e.g. for fuel cells
    • H01M4/8605Porous electrodes
    • HELECTRICITY
    • H01ELECTRIC ELEMENTS
    • H01MPROCESSES OR MEANS, e.g. BATTERIES, FOR THE DIRECT CONVERSION OF CHEMICAL ENERGY INTO ELECTRICAL ENERGY
    • H01M4/00Electrodes
    • H01M4/86Inert electrodes with catalytic activity, e.g. for fuel cells
    • H01M4/8663Selection of inactive substances as ingredients for catalytic active masses, e.g. binders, fillers
    • H01M4/8668Binders
    • HELECTRICITY
    • H01ELECTRIC ELEMENTS
    • H01MPROCESSES OR MEANS, e.g. BATTERIES, FOR THE DIRECT CONVERSION OF CHEMICAL ENERGY INTO ELECTRICAL ENERGY
    • H01M4/00Electrodes
    • H01M4/86Inert electrodes with catalytic activity, e.g. for fuel cells
    • H01M4/90Selection of catalytic material
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02EREDUCTION OF GREENHOUSE GAS [GHG] EMISSIONS, RELATED TO ENERGY GENERATION, TRANSMISSION OR DISTRIBUTION
    • Y02E60/00Enabling technologies; Technologies with a potential or indirect contribution to GHG emissions mitigation
    • Y02E60/30Hydrogen technology
    • Y02E60/50Fuel cells
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S436/00Chemistry: analytical and immunological testing
    • Y10S436/904Oxidation - reduction indicators

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Electrochemistry (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Manufacturing & Machinery (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Emergency Medicine (AREA)
  • Materials Engineering (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Inert Electrodes (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Description

DR. PHIL, DR. RER. POL
KURTKOHLER -_. 8 MÖNCHEN 2
PATENTANWALT ' AMALIENSTRASSE15 - _ _.
Telephon 224541 15 98 OQ
Aktiebols/ret K a b i, Stockholm,
Idagnostizierungsmittel und Verfahren zum Nachweis von Zuckerarten in animalischem, biologischem Material,
jjie vorliegende Erfindung betrifft ein Diagnostizie- ; rungsmittel zum Nachweis von Zuckerarten im Urin und ahn- ^ lichem animalisch biologischen Material«
Bekannt sind Methoden, die auf der Einwirkung von spezifischen Oxydasen auf die Zuckerart, die man nachweisen will, " basiereneivbenso sind bekannt Verfahren, bei denen durch Oxydation eines gleichzeitig anwesenden Farbindikators eine Verschiebung der Lichtabsorption do*s Indikators in den sichtbaren Teil des Spektrums zustandekommt. Diese bekannten i.Iethoden können in gewissem Umfange auch zu Teststreiien adaptiert werden,die mit Oxydase,Peroxydase und Farbindikator imprägniert werden»
In Lösungen,die nur die Zuckerart enthalten,die man nachweisen will, fungieren die bisher angewendeten Teststreifen zufriedenstellend.Dies gilt zum Beispiel von G-lykose und G-alaktose. (Vgl. :Analytical Biochemistry 5. (1962): 230-235)»Bei der Prüfung von mehr komplexem,biologischem
209816/0125 bad
Material aber, wie Urin, variiert die Anwendbarkeit eier Methodik stark von einer Zuckerart zu einer anderen. Ebenso können Variationen zwischen verschiedenen Proben,die dieselbe Zuckerart enthalten, vorkommen. Während man in einer Mehrzahl von Urinproben mit einem auf gewöhnliche ,/eise präpariertem Teststreifen Glykose im Urin zufriedenstellend nachweisen kann, ist das nicht bei Galaktose im Urin der .Fall.Sichere Daten ™ werden hier nicht erhalten.
Die Ursache dieser bisweilen bedeutenden Variationen bei Zuckerbestimmungen in verschiedenen Urinproben sind die gleichzeitig vorkommenden, varierenden Mengen von körpereigenen stoffen, sowie Heste oder Metaboliten von Nahrungs- oder Arzneimitteln»
Durch die vorliegende Erfindung ist es möglich geworden, den Einfluss solcher Stoffe zu eliminieren,die den Wachweis derjenigen Zuckerart stören, über die man Aufschluss im Urin oder ähnlichem animalischen,biologischen Material wünscht.
Die Probe,die man zu untersuchen wünscht,muss ein Ionenaustauachmaterial passieren,das die mit der Zuckerart gleichzeitig vorkommenden stoffe absorbiert,die mit dem nachfolgenden Nachweis der aktuellen Zuckerart interferiert«
BAD ORIGINAL
209816/0125
Das,Diagnogtizierungsmittel gemäes der Erfindung erhält · ' zweckentsprechend die j?orm eines Teststreifens aus einem J^ilterpapiertyp mit einer Ionenaustausch-Aufsaugzone,welche die Probe passieren muss, bevor sie die Heagenszone erreichten der durch die Farbenveränderung das Vorkommen der Zuckerart nachgewiesen y/ird«
Vorzugsweise wird das aufsaugende zellulosehaltige Material, das als Trä.:;er des spezifischen Heagenz für die aktuelle Zuckerart aient, derart behandelt,dass die Zellulose mit sauren oder basischen Resten substituiert wird, wodurch sie lonenaustausch-Eigenschaften erhält, Zellulosederivate vom erstgenannten Typ sind Zellulosephopphat, Zellulosesulfat und Carboxymethylzellulose, während Aminoaethylzellulose,Diaethylaminoaethylzellulose und ^cteolazellulose - hergestellt aus Zellulose, i^pichlorhydrin und / iriaethanolamin - dem zweitgenannten Typ angehören. In dem zellulopohnlti.^en Träger können bei der Papierzubereitung andere Typen von Ionenaustauschmaterial verwendet werden,so zum Beispiel Amberlite SB-2 oder Dov/ex 2 χ 8#üas beste Resultat bei der Bestimmung von ΰ-alaktose wurde bei starken Ionenaustauschern erhalten.
Die nachfolgenden Beispiele dienen zur Erläuterung der vorliegenden Erfindung»
2 0 9 816/0125
Beispiel 1
Diaethylaminoaethyl-Ionenaustausch-Papier, das man durch Behandlung von einem aufsaugenden zellulosehaltigen Material in dem die Zellulose als Natrium- oc!er anderes Alkalisalz vorliegt -mit Diaethylaminoaethylchlorid erhalten hat, wird nach Auswaschen mit Wasser und nachheriger Trocknung während 10 Minuten mit 0,01 M Natriumphosphatpuffer, pH=7,O,behandelt und danach wieder mit destilliertem Wasser gewaschen und getrocknet*
Ca. 50 χ 50 cm des so behandelten Papiers werden hierauf mit o-Tolidin-methanol - einem Farbenindikator - imprägniert, hergestellt durch Auflösung von 0,75 g o-Tolidin in 50 ml Methanol, und im Uunkelraum getrocknet«Das Papier wird dann in Streifen von ca. 1Ox 60 mm geschnitten,
Falls nur ein Teil des Papierstreifens,z.B.das halbe Papier, befeuchtet werden soll, wird ca.40 /ul einer Lösung von folgender Zusammensetzung pro Streifen appliziert.
2 ml 0,5 M Natriumphosphatpuffer pH=6,9
50 mg Polyaethylenglykol Mol-gewicht ca. 4000
2 mg Peroxydase
5 mg Galaktoseoxydase
.Die Papierstreifen müssen im Dunkelraum trocknen und werden trocken verwahrt.Anstelle von o_Tolidin kann ein anderer Farbenindikator mit gleichen Charakteristica gewählt werden,z.B. o-Dianisidin.
BAD 2 0 9 8 16/0125 BA
Beispiel 2
Ecteola-Ionenaustausch-Papier,erhalten durch Behandlung von Zellulose in Form des Alkalisalzes mit Epichlorhydrin und nachfolgender Umsetzung mit Triaethanolamin unter V/asseraustritt, wird nach Waschen und Trocknen während 15 Minuten mit 0,014 M Natriumphosphatpuffer, pH=7>0 behandelt und hierauf
getrocknet». I
Oa. 50 χ 50 cm des so behandelten Papiers werden hierauf mit einem Farbenindikator - o-Tolidin-methanol - imprägniert, der durch Auflösung von 0,75 g o-Tolidin in 50 ml Methanol hergestellt ist, und im Dunkelraum getrocknet.Das Papier wird dann in Streifen von ca. 10 χ 60 mm geschnitten.
Falls nur ein Teil des Papierstreifens z.B« das halbe Papier, befeuchtet werden soll, wird pro Streifen ca 40 ixl einer Lösung folgender Komposition appliziert:
2 ml 0,5 M Natriumphosphatpuffer pH=6,9
50 mg Polyaethylenglykol Mol-gewicht ca. 4000 (
2 mg Peroxydase
5 mg G-alaktoseoxydase
Die Papierstreifen müssen im Dunkelraum trocknen und werden trocken verwahrt.Anstelle von o-Tolidin kann ein anderer l'arbenindikator mit gleichen Gharaktristicis gewählt werden, z.B. o-Dianisidin,
BAD
209816/0125
Beispiel 3
Aminoaethyl-Ionenaustauschpapier, hergestellt durch Behandlung von ^atriumzellulose mit Aminoaethylchlorid,wird mit destilliertem Wasser gewaschen und getrocknet.Das Material wird mit einer Pufferlösung pH=7»O getränkt und getrocknet. Ca. 50 χ 50 cm des so behandelten Papiers werden hierauf mit o-Tolidin-methanol - einem Farbenindikator-imprägniert, der P durch Auflösung von 0,75 g o-Tolidin in 50 ml Methanol hergestellt ist, und im Dunkelraum getrocknet«Das Papier wird dann in Streifen von ca. 10 χ 60 mm geschnitten.
Falls nur ein Teil des Papierstreifens,z.B. das halbe Papier befeuchtet werden soll, wird ca. 40 -ul einer Lösung folgender Zusammensetzung pro Streifen appliziert: 2 ml 0,5 M Natriumphosphatpuffer pH=6,9
50 mg Polyaethylenglykol Mol-gewicht ca. 4000
2 mg Peroxydase
5 mg Galaktoseoxydase
" Die Papierstreifen müssen im Dunkelraum trocknen und werden trocken verwahrt.AnsteHe von o-Tolidin kann ein anderer Farbenindikator mit gleichen Gharakteristicis,z.B.o-Dianisidin, gewählt werden.
Beispiel 4
Nachweis von Galaktose im Urin. Man wendet ein bis zwei ml Urin in einem 10 ml Becher an.Ein Teststreifen,hergestellt gemäss
BAD ORIG1NAL
209816/0125
der Erfindung,wird mit seinem Ionenaustausch-präparierten Teil teilweise in die Probe eingesenkt,die durch Kapillarkraft in den mit dem ßeagenz imprägnierten Teil hinaufgesaugt wird* V/ährend des Durchgangs durch das Ionenaustausch-Papier werden die ^Substanzen,welche mit der Galaktosebestimmung interferieren und dieselben stören wurden, im Urin absorbiert,während anwesende Galaktose die Aufsau,£zone passiert und einen Ausschlag in der mit dem Farbenindikator und dem jieagenz präparierten Zone be- ^ wirkt.Bei o-Tolidin tritt sehr bald ein blau-blaugrüner Farbton bei Anwesenheit von· Galaktose in der Probe auf»Eine Urinprobe von einem Patienten mit Galaktosurie und einem Galaktoseinhalt von 400 rag/100 ml ergibt eine Farbenreaktion innerhalb 15 Sekunden«
Eine Urinprobe mit einem Galaktose-Gehalt von 100 mg/100 ml ergibt eine Farbenreaktion innerhalb von 1-2 Minuten.Eine Urinprobe ohne Galaktose ergibt keine Farbenreaktion,
Beispiel 5
Diaethylaminoaethyl-Ionenaustausch-Papier,erhalten durch Behandlung eines aufsaugenden zellulosehaltigen Materials,in dem die Zellulose als Natrium-oder anderes Alkalisalz vorliegt, mit Diaethylaminoaethylchlorid,wird nach Auswaschen mit Wasser und nachherigem Trocknen während 10 Minuten mit φ,01 Μ Natrium phoaphatpuffer,pH=7,0>behandelt und danach wieder mit der-tnlliertem Wasser gewaschen und getrocknet.
2098Ϊ6/0125
-S-
Ca, 50 χ 50 era des so behandelten Papiers -.-erden hierauf imprägniert mit o-Tolidin-methanol - einem Farbenindikotor -, welcher durch Auflösung von 0,75 g o-'iolidin in 50 ml Methanol hergestellt wurde» und im Dunkelrmuffi getrocknet.Uas Papier wird dann in otreifen von ca* 10 χ 60 mm geschnitten»
falls nur ein Teil des Papierstreifens, z.B. das halbe Papier, befeuchtet werden soll,werden ca# 40 al einer Lösung von folgen der Zusammensetzung pro Streifen appliziert; 2 ml 0,5 M fiatriumphosphatpuffer pH=s6,9
50 mg Pölyaethylenglykol Mol-gev/icht ca# 4000
2 mg ΐeroxydase
13 mg ÖlykoSüöxidase
Die Papierstreifen müssen im Ptmkeiraum trocknen una v-ercien trocken verv/ahrt«Anstelle von o-Tolidin kann ein anderer Ferbenindikator mit gleichen Öharakferir-ticis gev/ählt -'.irden, ζ«3, o-
Ecteola-Ionenaustötiech-Pepier,erhalten durch Behandlung von Zellulose in Form des Alteligalzes mit Epichlorhvorin una n;.ch· folgender Umsetzung mit Triaethanolaüiin unter /asseraustritt, wird nach ΐ/aschen und -ffoek-neö während 15 Minuten mit 0,014 Ii Nötriumphösphatpuifer,pHa-7*Ö,behandelt und danach getrocknet*·
BAD
ca. 50 χ 50 cm des so behandelten Papiers v/erden hierauf mit o-Tolidin-methanol -. einem Parbenindikator - hergestellt durch ·' Auflösung von 0,75 g o-Tolidin in 50 ml Methanol,imprägniert und im Dunkelraum getrocknet.Das Papier wird dann in otreifen von ca. 10 χ 60 mm geschnitten,
i'alls nur ein Teil des Papierstreifens,z.B.das halbe Papier, befeuchtet v/erden soll,werden ca. 40 yul einer Lösung folgender Zusammensetzung pro Streifen appliziert: "
2 ml 0,5 M Natriumphosphatpuffer pH=6,9
50 mg Polyaethylenglykol Mol-gewicht ca.4000
2 mg Peroxydase
13 mg Glykoseoxidase
Die Papierstreifen müssen im Dunkelraum trocknen und werden trocken verwahrt.Anateile von o-Tolidin kann ein anderer Parbenindikator mit gleichen Charakteristicis gewählt werden, z.B.o-Dianisidin»
Beispiel 7 *
Aminoaethyl-Ionenaustauscher,erhalten dutch Behandlung von Natriumzellulose mit üininoaethylchlorid,wird mit destilliertem „asser gewaschen und getrocknet.Das Material wird mit einer .;.- uff er lös un^ pH=7,0 getränkt und getrocknet.
öae50 χ 50 cm deis so behandelten Papier werden hierauf mit o-Toliciin-mothanol - einem Parbenindikator ,hergestellt durch auflösen von 0,75 r, o-Tolidln in 1JO ml MethanolT präpariert unci im ijunkcli/iium f/etrocKnjt."Dar. Papier wird dann in Streifen von cn. 10 χ 60 mm ^ .:;chni t ten.
BAD 209 8 16/0 125 ■
Palls nur ein Teil des Papierstreifen,z.B. das halbe Papier, befeuchtet werden soll,werden ca. 40 ul einer Lösung folgender Zusammensetzung pro Streifen appliziert: 2 ml 0,5 M Natriumphosphatpuffer pH=6,9
50 mg Polyaethylenglykol Mol-gewicht ca. 4000
2 mg Peroxydase
13 mg G-lykoseoxidase
Die Papierstreifen müssen im Dunkelraum trocknen und werden trocken verwahrt.Anatelle von o-Tolidin kann ein anderer Farbenindikator mit gleichen Charakteristicis gewählt werden, z.B. o--L)ianisidin.
Beispiel 8
Diaethylaminoaethyl-Ionenaustausch-Papier,erhalten durch Behandlung eines aufsaugenden zellulosehaltigen Materials,in dem die Cellulose als ^atrium- oder anderes Alkalisalz vorliegt,mit JJiäthy laminoäthylchlorid,wird nach Auswaschen mit Y/asser und nachheriger Trocknung während 10 Minuten mit 0, 01 M Natriumphoaphatpuffer, pH=7>0,behandelt und danach wieder mit destillier· tem .asser gewaschen und getrocknet.
Ca. 50 χ 50 cm des so behandelten Papiers werden hierauf mit o-Tolidin-methanol - einem i?arbenindikator,erhalten durch Auflösung von 0,75 g o-Tolidin in 50 ml Methanol - imprägniert und im Dunkelraum getrocknet.Das Papier wird dann in Streifen von ca.. 10 χ 60 mm geschnitten.
20981 6/0125
Falls nur( ein Teil des Papierstreif ens, z.B. das halbe Papier, . ·· befeuchtet werden soll, werden ca. 40 pl einer Lösung folgender Zusammensetzung pro Streifen appliziert* 2 ml 1,0 M Natriumphthalatpuffer ρΗ«6,7 20 mg Albumin
2 mg Peroxydase
13 mg Glyfcoseoxidaae
Die Papierstreifen müssen im Dunkelraum trocknen und werden trocken > verwahrt.Anstelle von oJDolidin kann ein anderer Farbenindikator mit gleichen Charakteristicis gewählt werden,z«B. o-Dianisidin,
Beispiel 9
Nachweis von Glykose im Urin.Bei einem teststreifen ohne Ionenaus— tauscheigenschaften in dem aufsaugenden feil liegt die Empfindlichkeitsgren&e bei 30 bis 60 mg/100 ml#Fositive Reaktion kann zuweilen bereits bei ca. 20 mg/100 al und negativer Beseheid bei ca. 130 mg/100 ml erhalten werden«
Über 95 $ einer Rormalbevölkerung weist geringere Werte als 20 mg/100 ml auf .Die V/er te, die mit einem nichtpräparlerten !Pest-» streifen erhalten v*/erdenfsind hierdurch ganz unsicher.
Es liegt ein diagnostischer Bedarf vor, Glykosemengen von einer aröFsenordnong kleiner als 3 mg/100 ml,nachznweisen#Bies ist mit einem in den vorhergehenden Beispielen beschriebenen feststreifeö möglich,welcher einen Nachweis von den Grössenordnungen 0,5-3 mg/100 ml Urin bei positiver iarbenreaktlon innerhalb von 3 Minuten ^-.-stattet»Bei einem Miveau von mehr als 4 mg/100 ml wirä eine positive Parbenreaktion bereits innerhalb von ca.l Min«te erhalten.
209816/0125 bad original

Claims (1)

Patentansprüche
1. Diagnostizierungsmittel zum Nachweis von Zuckerarten in animalischem, biologischem Material, vorzugsweise Urin, vorzugsweise ein mit der Reagenzmischung Peroxydase und Farbenindikator sowie mit einer fttr Zuckerarten spezifisehen Oxydase imprägniertes Diagnostizierungsmittel, gekennzeichnet durcb einen Teststreifen mit einer aus einem Ionenaustauschmaterial bestehenden Aufsaugzone«
2t Diagnostizierungsmittel zum Nachweis von Galaktose gemäss Anspruch !,dadurch gekennzeichnet,dass die Aufsaugzone ein Anionaustauschmaterial,vorzugsweise Diäthylaminoäthylcellulose enthält.
3« Biagnostizierungsmittfil zum Nachweis von Glykose gemäss Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet,dass die Aufsaugzone ein Anionaustauschmaterial, vorzugsweise Diäthylaminoäthyl— cellulose enthält«
4# Teststreifen, teilweise imprägniert mit der Reagensmischunf Peroxydase und Farbenindikator, vorzugsweise o-Tolidin, sowie mit einer für Zuckerarten spezifischen Oxydase, zum Nachweis von ^uckerarten, vorzugsweise Galaktose und Glykose, in animalischem, biologischem Material, vorzugsweise Urin.dadurch gekennzeichnet,dass der mit dem Reagenz unbe-
209816/0125 bad original
handelte Teil des Teststreifena,der als Aufsaugzone für die Probe dienen soll,aus Ionenaustauschmaterial,vorzugsweise vom Typ Anionaustauscher wie Diäthylaminoäthylzellulose, besteht*
209816/0125
BAD
DE1598008A 1966-01-05 1966-12-22 Teststreifen Expired DE1598008C3 (de)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SE152/66A SE317532B (de) 1966-01-05 1966-01-05
US57431566A 1966-08-23 1966-08-23

Publications (3)

Publication Number Publication Date
DE1598008A1 true DE1598008A1 (de) 1972-04-13
DE1598008B2 DE1598008B2 (de) 1974-12-19
DE1598008C3 DE1598008C3 (de) 1975-08-28

Family

ID=26654123

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DE1598008A Expired DE1598008C3 (de) 1966-01-05 1966-12-22 Teststreifen

Country Status (7)

Country Link
US (2) US3537906A (de)
BE (1) BE692196A (de)
CH (1) CH493849A (de)
DE (1) DE1598008C3 (de)
FR (1) FR1508430A (de)
GB (2) GB1171788A (de)
NL (1) NL154597B (de)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE3016618A1 (de) * 1980-04-30 1981-11-05 Gerhard 3560 Biedenkopf Scharf Testmittel unter verwendung von polymer gebundenen, bezueglich des systems peroxydase-wasserstoffperoxyd oxydierbaren chromogenen

Families Citing this family (26)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
NL7208092A (de) * 1972-06-14 1973-12-18
US3920580A (en) * 1973-07-12 1975-11-18 Miles Lab Liquid control solution
US3992158A (en) * 1973-08-16 1976-11-16 Eastman Kodak Company Integral analytical element
JPS5240239B2 (de) * 1973-09-18 1977-10-11
US3915639A (en) * 1973-10-18 1975-10-28 Robert M Friedenberg Drug abuse dipstick
JPS5143796B2 (de) * 1973-11-08 1976-11-24
JPS50123493A (de) * 1974-03-15 1975-09-27
CA1048390A (en) * 1975-02-14 1979-02-13 James B. Dugle Method, composition, and device for determining the specific gravity of a liquid
US4110164A (en) * 1977-04-19 1978-08-29 Standard Brands Incorporated Agglomerated fibrous cellulose
US4283491A (en) * 1977-09-06 1981-08-11 Eastman Kodak Company Analytical elements with improved reagent stability
JPS5592698A (en) * 1978-12-31 1980-07-14 Kyoto Daiichi Kagaku:Kk Test strip for glucose determination
US4376827A (en) * 1979-07-30 1983-03-15 Miles Laboratories, Inc. Composition, test device and method for determining the ionic strength or specific gravity of a liquid sample utilizing a strong polyelectrolyte
DE3012368C2 (de) * 1980-03-29 1982-04-15 Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim Verfahren und diagnostische Mittel zum Nachweis von Redox-Reaktionen
ATE4328T1 (de) * 1980-09-19 1983-08-15 Boehringer Mannheim Gmbh Verfahren und reagens zur bestimmung von glycerin.
US4318985A (en) * 1981-01-29 1982-03-09 Miles Laboratories, Inc. Method and device for detecting glucose concentration
US4956300A (en) * 1982-01-05 1990-09-11 Helena Laboratories Corporation Aid for determining the presence of occult blood, method of making the aid, and method of using the aid
US5702913A (en) * 1983-12-21 1997-12-30 Helena Laboratories Corporation Chromgen-reagent test system
US5273888A (en) * 1984-01-16 1993-12-28 Helena Laboratories Corporation Chemical test kit and method for determining the presence of blood in a specimen and for verifying the effectiveness of the chemicals
US4729956A (en) * 1986-05-01 1988-03-08 Phillips Petroleum Company Stabilized alcohol oxidase compositions and method for producing same
US5178831A (en) * 1986-10-08 1993-01-12 Dai Nippon Insatsu Kab Ushiki Kaisha Device for testing body fluids
US5081040A (en) * 1987-06-29 1992-01-14 Helena Laboratories Corporation Composition and kit for testing for occult blood in human and animal excretions, fluids, or tissue matrixes
US5217874A (en) * 1989-04-04 1993-06-08 Helena Laboratories Corporation Fecal occult blood test product with positive and negative controls
US5196167A (en) * 1989-04-04 1993-03-23 Helena Laboratories Corporation Fecal occult blood test product with positive and negative controls
JPH02296152A (ja) * 1989-05-11 1990-12-06 Hidenobu Akutsu 病状示唆検知用紙
US9966609B2 (en) 2013-06-20 2018-05-08 Gencell Ltd. Gas diffusion electrode and process for making same
CN106025150A (zh) * 2016-07-01 2016-10-12 南京清辉新能源有限公司 一种用于二次电池的生物质隔膜及其制备方法

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3305400A (en) * 1963-05-27 1967-02-21 American Cyanamid Co Preparation of fuel cell electrodes
FR1387243A (fr) * 1963-12-17 1965-01-29 Accumulateurs Fixes Procédé de préparation de pâtes contenant en suspension une poudre métallique
US3377160A (en) * 1964-12-31 1968-04-09 Allis Chalmers Mfg Co Process of making a high surface area silver catalyst

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE3016618A1 (de) * 1980-04-30 1981-11-05 Gerhard 3560 Biedenkopf Scharf Testmittel unter verwendung von polymer gebundenen, bezueglich des systems peroxydase-wasserstoffperoxyd oxydierbaren chromogenen

Also Published As

Publication number Publication date
GB1171708A (en) 1969-11-26
CH493849A (de) 1970-07-15
NL154597B (nl) 1977-09-15
BE692196A (de) 1967-06-16
FR1508430A (fr) 1968-01-05
NL6700128A (de) 1967-07-06
US3598704A (en) 1971-08-10
DE1598008B2 (de) 1974-12-19
GB1171788A (en) 1969-11-26
DE1598008C3 (de) 1975-08-28
US3537906A (en) 1970-11-03

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DE1598008A1 (de) Diagnostizierungsmittel und Verfahren zum Nachweis von Zuckerarten in animalischem,biologischem Material
DE2265122C2 (de) Verfahren zur Bestimmung von Cholesterin
EP0037056B1 (de) Verfahren und diagnostische Mittel zum Nachweis von Redox-Reaktionen
DE1598752A1 (de) Zubereitung zum Nachweis chemischer Substanzen
DE2711684A1 (de) Pruefmittel zum nachweis und zur bestimmung einer komponente in einer probe
DE1240306B (de) Mittel zum Nachweis von Harnstoff im Blut
DE1598809B2 (de) Diagnostiziermittel fuer glukose in fluessigkeiten
DE2162122A1 (de) Indikator zum nachweis von metallionen
EP0349934A2 (de) Verfahren zur Bestimmung der Ionenstärke oder des spezifischen Gewichts von Wässrigen Flüssigkeiten
DE2330106A1 (de) Verfahren zur bestimmung einer komponente mit hilfe eines testpapiers
DE1598756C3 (de) Mittel zum Nachweis von Harnstoff in Körperflüssigkeiten
DE2439348C3 (de) Diagnostisches Mittel zum Nachweis und zur Bestimmung von Cholesterin und Cholesterinestern in Körperflüssigkeiten
DE1673330C3 (de) Verfahren zur Bestimmung der weiblichen Fruchtbarkeilsperiode
DE3446714A1 (de) Verfahren zum nachweis des vorliegens einer allergie und zum spezifischen nachweis des fuer die allergie verantwortlichen allergens
DE1498901C3 (de) Diagnostisches Mittel und Ver fahren zum Nachweis bzw zur Be Stimmung von Harnsaure im Blut
DE2500689A1 (de) Diagnosemittel und diese enthaltende diagnosevorrichtung
DE2921023C2 (de) Zusammensetzung, Testmittel und Verfahren zum Bestimmen von Urobilinogen in einer Probe unter Verwendung der Zusammensetzung, sowie Verfahren zum Herstellen des Testmittels
EP0340511B2 (de) Trägergebundenes mehrkomponentiges Nachweissystem zur kolorimetrischen Bestimmung esterolytisch oder/und proteolytisch aktiver Inhaltsstoffe von Körperflüssigkeiten
AT271735B (de) Diagnostizierungsmittel zum Nachweis von Zuckerarten im Urin
DE1255354B (de) Diagnostiziermittel zum Nachweis von Glukose in Fluessigkeiten, insbesondere Urin
DD211874A5 (de) Verbesserter proben-teststreifen und testverfahren fuer okkultes blut
DE3539772C2 (de)
DE2011679A1 (de) Diagnostisches Mittel zur Nitritfeststellung
DE1169699B (de) Diagnostisches Mittel zum Nachweis von Phenylketonen in Koerperfluessigkeiten
DE1932419A1 (de) Diagnostiziermittel zum Glukosenachweis und zur pH-Bestimmung

Legal Events

Date Code Title Description
C3 Grant after two publication steps (3rd publication)
E77 Valid patent as to the heymanns-index 1977