CS236765B2 - Agent for determining of alpha amylase - Google Patents

Agent for determining of alpha amylase Download PDF

Info

Publication number
CS236765B2
CS236765B2 CS798241A CS824179A CS236765B2 CS 236765 B2 CS236765 B2 CS 236765B2 CS 798241 A CS798241 A CS 798241A CS 824179 A CS824179 A CS 824179A CS 236765 B2 CS236765 B2 CS 236765B2
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
amylase
mmol
substrate
reagent
alpha
Prior art date
Application number
CS798241A
Other languages
English (en)
Inventor
Elli Rauscher
Ulrich Neumann
August W Wahlefeld
Alexander Hagen
Wolfgang Gruber
Joachim Ziegenhorn
Eugen Schaich
Ulfert Deneke
Gerhard Michal
Guenter Weimann
Original Assignee
Boehringer Mannheim Gmbh
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority claimed from DE2741192A external-priority patent/DE2741192C2/de
Priority claimed from DE19772755803 external-priority patent/DE2755803A1/de
Application filed by Boehringer Mannheim Gmbh filed Critical Boehringer Mannheim Gmbh
Publication of CS236765B2 publication Critical patent/CS236765B2/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/34Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving hydrolase
    • C12Q1/40Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving hydrolase involving amylase
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2334/00O-linked chromogens for determinations of hydrolase enzymes, e.g. glycosidases, phosphatases, esterases
    • C12Q2334/10O-linked chromogens for determinations of hydrolase enzymes, e.g. glycosidases, phosphatases, esterases p-Nitrophenol derivatives
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/805Test papers
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/81Packaged device or kit

Description

Vynález se týká činidla ke stanovení a-amylázy.
Stanovení hladiny -α-amylázy v séru je důležitým klinickým ukazatelem pro- funkci slinivky břišní. Komerční činidla ke stanovení -α-amylázy se zakládají převážně na postupu, při němž se škrob odbourá a-amylázou ' a vzniklé štěpné produkty se stanoví ve viditelném nebo ultrafialovém rozsahu, podle toho, zda se při stanovení použije obarveného nebo přírodního škrobu jako substrátu pro amylázu. Podstatnou nevýhodou těchto způsobů popřípadě činidel je, že škrob jakožto makromolekulu lze jen nedostatečně charakterizovat a standardizovat, takže stupeň konverze jednotlivých sázek vychází velmi rozdílný a při stanovení měřením je nutno vždy použít zároveň standardu. Pro získání lepších výsledků by bylo zapotřebí jednotnějšího· substrátu, který při štěpení skýtá spolehlivé výsledky.
Krok vpřed k jednotnějšímu substrátu přineslo použití maltopentózy. Maltopentóza je štěpena α-amylázou v maltotriózu a maltózu, - maltotrióza a maltóza se převedou působením -α-glukozidázy v glukózu, kterou je pak - možno stanovit libovolnými postupy, například známou metodou používající hexokinázy.
Kromě maltopentózy byla jako substrát již navržena maltotetróza a maltohexóza (patentové spisy USA 3 879 263 a 4 000 042). Přitom však bylo s tetrózou dosaženo^ zřetelně horších výsledků než s pentózou a s hexózou ještě horších výsledků než s tetrózou. Tak se pro- maltotetrózu a maltopentózu uvádí ještě stechiometrlcká reakce, zatímco· pro hexózu byly již zjištěny odchylky od stechiometřické reakce, které jsou právě tak ještě tolerovatelné.
Nevýhodou maltopentózy, která byla zjištěna i u tetrózy, však je, že vzniká značná slepá hodnota činidla, tj. že měřící reakce probíhá již dříve, než se přidá vzorek, - jenž se má stanovit.
K tomu přistupuje, že ani tato slepá hodnota činidla není při vyšších koncentracích substrátu konstantní, nýbrž se mění po dobu delší než 25 minut, dříve než se dosáhl ne konstantností této vedlejší reakce. Též se ukázalo, že k předpokládanému rozdílnému štěpení maltopentózy α-amylázou ze slinivky břišní a α-amylázou ze slin, kteréžto- štěpení by bylo umožnilo rozlišení obou těchto amyláz, ve skutečnosti nedochází (J. Bc. 1970, 245, str. 3917 až 3927; J. Biochem. 51, str. - XVIII, 1952).
Podnětem k vynálezu byl proto- úkol, poskytnout činidlo ke stanovení α-amylázy, jehož složkou je substrát, vyznačující se lep236765 ší čistotou a jednotností než · známé substráty, který by byl snadno dostupný a ’ odpovídal by potřebným požadavkům, pokud jde o slepou hodnotu bez séra, dobu trvání fáze lag a dosažitelnou maximální aktivitu. Dále má být tímto · činidlem umožněn · jednoduchý postup stanovení bez drahé a složité aparatury, jakož i vhodnost pro okamžité stanovení, například zkušebními proužky.
Vynález řeší tento úkol činidlem ke stanovení α-amylázy, obsahujícím substrát pro α-amylázu a soustavu ke stanovení štěpného produktu, vzniklého působením a-amylázy na substrát pro α-amylázu, kteréžto činidlo’ se vyznačuje tím, že substrátem je sloučenina obecného vzorce I
R znamená glukózidovou, fenylglukózidovou, mononitrofenylglukózidovou, dinitrofenylglukózidovou nebo sorbitolovou skupinu nebo· zbytek kyseliny glukonové.
Překvapivě se ukázalo, že se maltoheptóza jako substrát pro- α-amylázu vyznačuje lepšími vlastnostmi, i když u oligomaltóz, navržených již pro tento· účel, byl od · maltopentózy k maltohexóze zjištěn podstatný pokles vhodnosti, ’ protože · se jejím použitím dosáhne · podstatně horších výsledků· · než použitím pentózy. Bylo . · proto možno očekávat, že .pří dalším· prodloužení maltózoroligosacharidového řetězce dojde k · chybám, které již . nebude · možno tolerovat. Překvapivě. se .však · použitím maltoheptózy dosáhne. ... lepších výsledků než. použitím pentózy. Tak dosahuje slepá hodnota ’ Činidla u vzorku. 0,02 ml při použití maltopentózy jako substrátu 73 %, zatímco· při použití · maltoheptózy · jen 13 %·, · vztaženo na koncovou hodnotu stanovení v normálním rozsahu.
Kromě toho· bylo zjištěno, že místo maltohepótzy · samotné je možno použít · i určitých derivátů maltoheptózy, které při působení α-amylázy tvoří derivatizovaný štěpný produkt, který je možno obzvláště výhodně stanovit.
Výhodnou soustavou pro stanovení štěpných produktů je· α-glukózidázová soustava, která obsahuje α-glukózidázu, chlorid alkalického kovu a · pufru. Sestává-li substrát ze samotné maltoheptózy, obsahuje činidlo jako· · enzymy ještě · hexokinázu (HK) a glukózo-6-f osf át-dehydrogenázu (G6PDH) jakož i NAD (oxidovaný nikotinamidadenindinukleotid), ATP (adenosintrifosfát j a hořčík. Z pufrů jsou vhodné ty, · které · jsou ú činné v oblasti hlavní ’ aktivity použitých enzymů. Výhodně se používá fosfátu, HEPES [ kyselina N- (2-hydroxyethyl )piperazin-N-2-ethansulfonová) a glycylglycinu. Výhodné koncentrace iontů jsou v rozmezí od 10 do· 200 mmolů/1.
Sloučenin obecného vzorce I se v činidle podle vynálezu používá obvykle v množství od 0,1 do· 250 mmolů/1. Výhodná množství jsou v rozmezí od 0,5 do 100 mmolů/1.
Nasycení substrátu pro α-amylázu maltoheptózou odpovídá koncentraci 8 až 10 mmolů. Účelně se proto· používá minimální koncentrace maltoheptózy 8 mmolů, má-li se pracovat za podmínek nasycení substrátu, jak tomu zpravidla je.
Kromě toho· obsahuje činidlo podle vynálezu účelně aktivační prostředek pro a-amylázu. Takovéto aktivační prostředky jsou známy. S výhodou se používá chloridu sodného· nebo chloridu draselného.
Výhodně sestává činidlo na bázi a-glukczidázové soustavy z x 103 až 3 x 104 j./l a-glukózidázy,
103 až 5 x 104 hexokinázy (HK),
103 až 5 x 104 glukózo-6-fosfát-dehydrogenázy (G6PDH),
0,5 až 8 mmolů/1 oxidovaného nikotinamidadenindinukleotidu (NAD)
0,5 až · 5 mmolů/1 adenosintrifosfátu (ATP) 1 až 3 Mg2+, až 100 mmolů chloridu sodného nebo chloridu draselného, až 200 mmolů/1 pufru o pH v rozmezí od
6,2 do 7,8 a až 100 mmolů/1 maltoheptózy nebo z násobku nebo· zlomku těchto množství v suchém nebo rozpuštěném· stavu.
Při jiném výhodném provedení sestává činidlo· podle vynálezu z α-glukózidázy, chloridu draselného· nebo chloridu sodného, pufru a substrátu. Takovéto činidlo obsahuje ’ zejména 102 až 5 x 106 j./l a-glukózidázy, 1 až 100 mmolů/1 chloridu sodného nebo chloridu draselného, 10 až 250 mmolů/1 pufru ’ o pH 5 až 9 a 0,1 až 250 mmolů/1 derivátu maltoheptózy obecného vzorce I, vztaženo· na · koncentraci při testu. Činidlo může být v suché, zejména lyofilizované podobě, nebo· v podobě roztoku, jako· směs všech složek nebo· v podobě oddělených složek.
Podle dalšího· provedení obsahuje činidlo· podle vynálezu výše uvedeného· typu navíc ještě · β-glukózidázu a/nebo fenoloxidázu a
3-méthyl-6-sulfonblbenéihiozolon-hrdrazon-(2) (HSK). -
Podle ještě jiného· provedení obsahuje činidlo podle vynálezu kromě ·a-glukózidázy, chloridu sodného nebo chloridu draselného, pufru a substrátu · ještě sorbitol-dehydrogenázu a oxidovaný nikotinamidadenindinukleotid (NAD) nebo glukonát-kinázu, adenosintrifosfát (ATP), dehydrogenázu kyseliny 6-fosfoglukonové a oxidovaný nikotinamidadenindinukleotid-fosfát (NADP) jakož · popřípadě i tetrazoliovou sůl a diaforázu popřípadě · fenazinmethosulfát (PMS).__________
Výhodné činidlo tohoto druhu obsahuje 1 χ 102 až 3 χ 106 j./l a-glukózidázy, 2 x χ 103 až 5 x 104 j./l sorbitol-dehydrogenázy, 1 χ 103 až 5 χ 104 j./l hexokinázy, 0,5 až 50 mmolů/1 ATP, 10 až 500 j./l diaforázy (Chlostridium a Kluyveri), 0,01 až 0,5 mmolů/1 tetrazoliové soli, 0,1 až 10 mmolů/1 NAD, 0,2 až 5 mmolů/1 chloridu horečnatého MgCl2, 0,5 až 20 mmolů/1 maltoheptitu, 1 až 100 mmolů/1 chloridu sodného nebo chloridu draselného! a 10 až 250 mmolů/1 pufru o pH 5,5 až 8,5.
Popřípadě je ještě přítomna neiontová povrchově aktivní látka v množství 5 až 50 mmolů/1.
Rovněž výhodné provedení obsahuje 100 až 3 χ 106 j./l of-glukózidázy, 10 až 104 j./l
6-fosfoglukónát-dehydrogenázy, 20 až 2 x χ 104 j./l glukonát-kinázy, 0,5 až 25 mmolů/1 ATP, 0,05 až 1,0 mmolů/1 NADP, 1,0 až 20 mmolů/1 kyseliny maltoheptaglukonové, 0,5 až 5 mmolů/1 chloridu hořečnatého, 1 až 100 mmolů/1 chloridu sodného a 10 až 250 mmolů/1 pufru o pH 5.5 až 8,5.
Další činidlo podle vynálezu obsahuje 0,1 až 250 mmolů/1 a-nitrofenylmaltoheptózidu nebo dinitrofenylmaltoheptózidu, 1 χ 102 až 2,5 x 10 j./l a-glukózidázy, 1 až 100 mmolů/1 chloridu sodného nebo chloridu draselného a až 250 mmolů/1 fosfátového pufru o pH v romezí 7,0 až 8,0.
Podle opět jiného provedení činidlo podle vynálezu obsahuje:
0,1 až 250 mmolů/1 a-fenylmaltoheptozidu, 1 χ 102 až 1,5 x 10G j./l a-glukózidázy, 10 až 10δ j./l monofenoxidázy,
0,1 až 10 mmolů/1 3-methyl-6-sulfonyl-benzthiazolonhydrazonu-(2) (HSK), až 100 mmolů/1 chloridu sodného nebo chloridu draselného a až 250 mmolů/1 pufru.
Další výhodnou soustavou pro stanovení štěpných produktů je maltózofosforylázová soustava, která sestává v podstatě z maltózyfosforylázy, β-ϊosfoglukomutázy (^PGM. ], glukózo-6-f osf át-dehydrogenázy [ G6PDH), glukózo-l,6-difosfátu (Gl, 6DP), oxidovaného nikotinamidadenindinukleotidu (NAD), pufru, maltoheptózy a popřípadě 6-fosfoglukonát-dehydrogenázy (6PGDH).
Obzvlášť výhodné činidlo s toutou důkazovou soustavou sestává z
0,5 χ 103 až 20 χ 103 j./l maltózofosforylázy, χ 102 až 1 x 10ú /3-fosforglukomutázy, χ 102 až 3 χ 104 j./l glukózo-6-fosfát-dehydrogenázy,
0,5 až 10 mmolů/1 oxidovaného nikotinamidadenindinukleotidu (NAD),
0,001 až 1 mmol/1 glukózo-l,6-difosfátu, 0,5 až 100 mmolů/1 pufru o pH v rozmezí
6,0 až 7,5, až 50 mmolů/1 maltoiieptózy, a popřípadě
1,0 χ 102 až 1,0 χ 104 j./l 6-fosfoglukonát-dehydrogenázy.
Činidlo podle vynálezu může být v suchém nebo rozpuštěném stavu, může též být naneseno na nosiči v podobě listu, například na fólii, nebo jím může být napuštěn savý papír apod. V posledně uvedeném případu sestává účelně z alespoň tří vrstev popřípadě nánosů, přičemž první vrstva obsahuje substrát, druhá vrstva slouží jako krycí vrstva a třetí vrstva obsahuje soustavu pro stanovení štěpných produktů. Uvede-li se takovýto vícevrstvý reagenční materiál, který se hodí pro jednoduchou rychlou zkoušku ke stanovení α-amylázy, ve styk s kapalným vzorkem obsahujícím « amylázu, dojde ke štěpení substrátu a-amylázou a štěpné produkty difundují mezivrstvou do třetí vrstvy obsahující soustavu pro stanovení štěpných produktů. Jako důkazové reakce se v tomto případě účelně používá barvotvorné reakce, aby na základě vzniklého zbarvení byla koncentrace .a-amylázy učiněna vizuálně viditelnou, když štěpné produkty ]iž samy nejsou barevné.
Deriváty maltoheptózy, použité v činidle podle vynálezu, je možno vyrobit podle postupů, popsaných v německých zveřejňovacích spisech DOS 27 41 191 a 27 41 192. Níže uvedené příklady vynález blíže objasňují.
Příklad 1
Maltogenní metoda (α-glukózidázová soustava) ...
Směs reagencií, obsahující a-glukózidázu, glukózo-6-fosfát-dehydrogenázu, hexokinázu, oxidovaný nikotinamidadenindinukleotid, adenosintrifosfát, maltoheptózu, hořečnatý ion Mg2h, chlorid sodný a fosfátový pufr, se rozpustí ve 2,0 ml destilované vody. Trvanlivost činidla při teplotě místnosti je asi 1 hodinu, při teplotě pod 8 °C 6 hodin.
Vzniklý roztok obsahuje tyto· látky v níže uvedených koncentracích:
fosfátový pufr 50 mmolů/1; pH 7,0
NaCl 50 mmolů/1
Mg2+ 2 mmoly/1
maltoheptóza 10 mmolů/1
adenosintrifosfát 1,2 mmolu/1
oxidovaný nikotinamid-
adenindinukleotid 2 mmoly/1
hexokináza 12 j./l
glukózo-6-fosfát-
dehydrogenáza 12 j./l
a-glukózidáza 110 j./l
К roztoku se při teplotě 25 °C přidá 0,02 mililitru vzorku séra, směs se přenese do kyvety o tloušťce vrstvy 1 cm a pak se ve fotometru určí extinkce při Hg 365 nm, 340 nm nebo Hg 334 nm. Po 10 minutách se extinkce odečte a pak se odečet pětkrát opakuje v intervalech 1 minuty.
Z takto určených rozdílů extinkce za minutu (ΔΕ/min.) se vypočte průměrná/ hodnota, od ní se odečte slepá hodnota činidla a takto opravená hodnota se použije pro výpočet.
Výpočet se provádí takto:
j./l 25 °C = = 4244 x ΔΕ 365 nm/min.
= 2290 x ΔΕ 340 nm/min.
= 2355 x ΔΕ 334 nm/min.
Na grafu v připojeném výkresu jsou znázorněny výsledky u zřeďovací řady lidského séra za použití fyziologického roztoku soli, které byly získány tímto činidlem. Na ose X tohoto grafu je vyneseno složení vzorku: horní řada (1 až 10) představuje počet objemových dílů lidského séra, dolní řada (9 až 0) představuje počet objemových dílů 0,9% roztoku chloridu sodného (fyziologický roztok soli). Na ose Y jsou vyneseny rozdíly extinkce za minutu (ΔΕ/min.).
Rozdělí-li se činidlo ve dvě vsázky, z nichž jedna obsahuje maltoheptózu a*druhá obsahuje směs všech zbývajících reagencií, je možno trvanlivost roztoků z nich vyrobených zvýšit. Tato trvanlivost je pro směs reagencií při teplotách od 8 °C 30 hodin, při teplotě místnosti přibližně 8 hodin. Trvanlivost roztoku maltoheptózy činí analogicky 6 týdnů, popřípadě přibližně 1 týden.
Příklad 2
Stanovení maltózofosforylázovou soustavou
Připraví se dvě činidla, sestávající z amylázového substrátu a z maltózoíosforylázové soustavy. Jedno1 činidlo obsahuje maltoheptózový substrát, druhé činidlo obsahuje rozpustný škrob podle dosavadního stavu techniky. Koncentrace činidel po rozpuštění ve vodě je tato:
činidlo podle vynálezu činidlo podle dosavadního . stavu techniky
fosfátový pufr 20 mmolů; pH 6,5 20 mmolů; pH 6,5
oxidovaný nikotinamidadenin-
dinukleotid 2 mmoly 2 mmoly
maltoheptóza 10 mmolů
rozpustný škrob 5 mg/ml
glukózo-l,6-difosfát stopy stopy
maltózofosforyláza 3 j./ml 3 j./ml
(mikroorg. ]
β-fosforoglukomutáza 1 j./ml 1 j./ml
(mikroorg.)
glukózo-6-fosfátdehydrogenáza 9 j./ml 9 j./ml
(Leuconostoc mesent)
6-fosfoglukonát-dehydroge- 1 j./ml 1 j./ml
náza (Leuconostoc mesent)
Vzniklý roztok se inkubuje při teplotě 30 stupňů Celsia, načež se к němu přidá roztok vzorku a stanoví se fotometrem extinkční rozdíl při Hg 334 nm. Po lOminu tové předběžné inkubaci se extinkční roz díl měří po dobu 10 minut. Pro 2,0 ml či nidla a 0,10 ml vzorku plyne pak tento vý početní vzorek:
ΔΕ/min x -Q~—-W- = ΔΕ/min x 1699 j./l
6,18 x 0,1 x 0,2
Při použití pěti různých lidských sér byly pomocí výše uvedených činidel stanoveny tyto hodnoty:
sérum podle vynálezu škrob
1 37,4 j./l 15,3 j./l
2 61,2 j./l 27,3 j./l
3 95,1 j./l 39,1 j./l
4 114 j./l 44,2 j./l
5 374 j./l 161 j./l
о
Příklad 3
Důkaz α-amylázy pomocí fenyl-α maltoheptozidu jakožto substrátu
Fenyl-a-maltoheptozid se rozštěpí a-amy- lázou na fenyl-a-maltotriid nebo fenyl-a-maltotetraid, které se pomocí a-glukózidázy přemění na fenol a glukózu. Uvolněný fenol se monofenoloxidázou. oxidačně kopuluje s nukleofilním činidlem, S-methyl-6-sulfonylbenzthiazolon-hydrazonem-(2) (HSK) za vzniku červeného barviva, jehož rychlost tvorby je úměrná amylázové aktivitě ve vzorku a může být rotometricky sledována.
Princip testu:
rx-amyláza
a) fenyl-α maltoheptozid 4- H2O ----------->
-> fenyl-a-D-tri- (tetra) -glukopyranozid 4- maltotetra-(tri)-óza
b] fenyl-α D-tri- [ tetra )-glukopyranozid 4- tt-glukózidáza
4- 3 (4) H2O---------------> fenol 44 3(4) glukózy ni o n o f e η ol ox i d á z a
c) fenol 4- HSK 4- O2------------->
-+ barvivo 4- 2 H2O
Podmínky při měření:
°C, délka, vlny 492 nm, 1 cm kyvety; složení činidla je uvedeno v následující tabulce:
T a b u 1 к a činidlo koncentrace při testu fosfátový pufr, pH 7,4 chlorid sodný fenyl-a-D-maltohepto-zid HSK monofenoloxidáza a-glukózidáza
0,05 molu/1
0,05 molu/1 mmolů/1 mmol/l
j./ml
j./ml
Obejm směsi při testu: 2,0 ml.
Příklad 4
Stanovení a amylázy pomocí p-nitrofenylmaltoheptozidu
Princip testu:
a-amyláza p-nitrofenyl-a-maltoheptozid------> (glukóza )n 4- p-nitrofenyl-a-( glukóza )ni -> a-glukózidáza
-------->n glukóza + p-nitrofenol.
Po rozštěpení maltoheptozidu se štěpné produkty odbourají na glukózu a p-nitrofenol. Vzniklý p-nitrofenolátový anion je v alkalickém roztoku zbarven žlutě a lze jej tudíž měřením stanovit přímo opticky.
Testovací soustava:
Reagenční směs:
mmolů/1 fosfátového pufru, pH 7,4 mmolů/1 chloridu sodného až 50 j./ml a-glukózidázy pepř. 10 mmolů/1 p-nitrofenyl-a-maltoheptozidu
Násada při testu:
ml reagenční směsi ψ 50 ul vzorku (sérum) teplota 30 °C, vlnová délka 405 nm zahájení testu přidáním séra po dosažení měřicí teploty (10 minut předběžné inkubace).
Příklad 5
Stanovení α-amylázy pomocí maltoheptitu
Princip testu:
•a-amyláza maltoheptil 4- H2O.........—-> maltotriit 44- maltotetróza ír-glukózidáza inalíotriit 4- H2O----------> sorbitol 4J maltóza
SDH scrbiLol 4- NAD 1---> fruktóza 4- NADH 44- Hb diaforáza
NADH + INT 4- H4'-------> formazan +
4- NAD ·
Místo fosfátového pufru je možno použít i glycinového, glycylglycinového, hepesového, tris, tra- a jiných pufrů.
SDH = sorbitoddehydrogenáza
Testovací soustava:
Reagenční násada
Na-/K—PO4-pufr 0,02 molu/1 + triton x 100 2 ml/100 ml + NaCl 10 mmolů/1, pH 6,9
MgCl2 0,3 molu/1 roaltoheptit 100 mmolů/1
NAD c -= 40 mg/ml
INT c — 0,6 mg/ml diaforáza (Clostr. Kluyveri) 5 mg/ml+) ATP c = 50 mg/ml hexokináza 280 j./ml+)
SDH 180 j./ml+) a-glukózidáza 1120 j./ml+) vzorek (sérum) + ) v testovém· pufru
Zahájení testu přidáním vzorku: měření se provádí při délce vlny 492 nm; teplota 25 °C.
Příklad 6
Stanovení α-amylázy pomocí kyseliny maltoheptaglukonové
Princip testu:
kyselina maltoheptaglukonová + H2O -> «-amyláza
-----+ kyselina maltotriglukonová + + maltotetróza kyselina maltotriglukonová + H2O a-glukózidáza
-------> kyselina glukonová + + maltóza
ml koncentrace při testu
1,92 12,8 mmolu/1 PO4
6,4 mmolu/1
0,01 1,0 mmol/1
0,10 3,3 mmolu/1
0,05 1,0 mmo>l/1
0,20 0,09 mmolu/1
0,05 167 j./l
0,10 3,29 mmolu/1
0,05 4 666 j./l
0,30 18 000 j./l
0,20 74 670 j./l
glukonát-kináza kyselina glukonová + ATP---------->
-> G-fosfát kyseliny glukonové. + adenosindifosfát (ADP)
6-f ostát kyseliny · glukonové + NADP + -> dehydrogenáza kyseliny
------------ ribulóza-5-fosfát +
6-f(fstogk^ko]vové + NADPH + CO2 + H +
ATP = adenosintrifosfát
NADP = oxidovaný nikotinamidadenindinukleotid-fosfát
NADPH = redukovaný niko-tinamidadenindinukleotid-fosfát
Testovací soustava:
Reagenční násada ml koncentrace při testu
Na-/K—PO4-pufr 0,02 molu/1 + NaCl 10 mmolů/1, pH 6,9 MgCla 1 mol/1 kyselina maltoheptaglukonová
150 mmolů/1
NADP c = 10 mg/ml
ATP c = 50 mg/ml glukonátkináza 40 j./l dehydrogenáza kyseliny O-fostoglukonové 24 j./ml a-glukozidáza 1120 j./ml vzorek (sérum)
2,19 14,6 mmolu/1 fosfátu
7,3 mmolu/1 NaCl
0,01 3,3 mmolu/1
0,10 5 mmolů/1
0,10 0,38 mmolu/1
0,10 2,7 mmolu/1
0,03 1066 j./l
0,10 800 j./l
0,30 11,2 χ 104 j./l
0,02
Zahájení testu přidáním vzorku; měření se provádí při délce vlny 340 nm nebo 365 nm; teplota: 25 °C objem směsi při zkoušce 3,00 ml.
Příklad 7 fosfátový pufr pH 7,4 0,05 mo-lu/litr
NaCl 0,05 molu/litr fenyl-a-D-maltoheptozid 10 molů/litr
HSK 1 mmol/litr monofenoloxidáza 1000 až 5000 j./litr a-glukózidáza 100 000 až 50 000 j./litr
Po rozřezání na proužky o· šířce 6 mm a upevnění na vhodnou nosnou fólii se z ní zhotoví diagnostické proužky o šířce 6 mm, které po nanesení přibližně 10 μΐ séra uVhodné rouno z plastické hmoty například Binzer VS 532 (vhodné jsou i jiné savé materiály, papír atd.) se napustí roztokem dále uvedeného, složení a pak se suší přibližně 30 minut při teplotě 50 °C:
3 6 7 6 5 možní podle různě intenzivního· červeného· zbarvení (Amax přibližně 500 nm) zjistit obsah .«-amylázy v séru. Vyhodnocení )e možno provést vizuálně, porovnáním s barevnými stupnicemi, měřením remise atd.
Příklad 8
Vhodný materiál, obdobný materiálu popsanému v příkladu 7, se napustí roztokem popsaným v příkladu 5, přičemž se však množství diaforázy zvýší na 2000 j./litr. Po napuštění se materiál suší 30 minut při teplotě 50 °C, načež se postupuje jako v příkladu 7. I zde vznikne po nakapání 10 μ\ séra červené zbarvení (Amax 500 nm), které je možno vyhodnotit jak uvedeno· v příkladu 7. Jako tetrazoliové soli je přirozeně možno použít i MTT, NBT apod.

Claims (4)

1. Činidlo ke stanovení α-amylázy, obsahující substrát pro α-amylázu a soustavu ke stanovení štěpného produktu, vzniklého působením α-amylázy na substrát pro a-amylázu, vyznačující se tím, že substrátem je sloučenina obecného vzorce I kde - '
R znamená glukózidovou, fenylglukózidovou, mononitrofenylglukózidovou, dinitrofenylglukózidovou nebo sorbitolovou skupinu nebo· zbytek kyseliny glukonové.
2. Činidlo podle bodu 1, obsahující substrát · pro α-amylázu a · soustavu ke stanovení štěpného produktu, vzniklého působením α-amylázy na substrát pro α-amylázu, vyznačující se tím, že substrátem je sloučenina obecného vzorce I, kde R znamená glukózidovou skupinu.
3. Činidlo· podle bodu 1, obsahující substrát pro· α-amylázu a soustavu ke stanovení štěpného· produktu, vzniklého působením α-amylázy na substrát pro· α-amylázu, vyznačující se tím, že substrátem je sloučenina obecného vzorce I, kde R znamená fenylglukózldovou, mononitrofenylglukózidovou, din.itrofen^y^l^g^l^L^k^č^z^i^c^c^vou nebo sorbitolovou skupinu · nebo zbytek kyseliny glukonové.
4. Činidlo· podle bodů 1 až 3, vyznačující se tím, že je včleněno do listového nosíčového materiálu nebo je tento materiál jím napuštěn.
CS798241A 1977-09-13 1979-11-29 Agent for determining of alpha amylase CS236765B2 (en)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE2741192A DE2741192C2 (de) 1977-09-13 1977-09-13 Verfahren zur Bestimmung von alpha- Amylase
DE19772755803 DE2755803A1 (de) 1977-12-14 1977-12-14 Verfahren und reagens zur bestimmung von alpha-amylase

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS236765B2 true CS236765B2 (en) 1985-05-15

Family

ID=25772710

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS798241A CS236765B2 (en) 1977-09-13 1979-11-29 Agent for determining of alpha amylase

Country Status (25)

Country Link
US (2) US4544631A (cs)
JP (1) JPS5451892A (cs)
AR (1) AR217476A1 (cs)
AT (1) AT362526B (cs)
AU (1) AU521908B2 (cs)
CA (1) CA1120836A (cs)
CH (1) CH651590A5 (cs)
CS (1) CS236765B2 (cs)
DD (1) DD138921A5 (cs)
DK (1) DK153335C (cs)
ES (2) ES473296A1 (cs)
FI (1) FI61916C (cs)
FR (1) FR2402872A1 (cs)
GB (2) GB2004646B (cs)
HK (1) HK54785A (cs)
HU (1) HU182005B (cs)
IE (1) IE47953B1 (cs)
IL (2) IL55408A (cs)
IT (1) IT1099451B (cs)
LU (1) LU80213A1 (cs)
MY (1) MY8600101A (cs)
NL (1) NL190818C (cs)
SE (2) SE433857B (cs)
SG (1) SG21085G (cs)
YU (1) YU44180B (cs)

Families Citing this family (28)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE2741192C2 (de) * 1977-09-13 1982-07-01 Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim Verfahren zur Bestimmung von alpha- Amylase
JPS60997B2 (ja) * 1978-01-31 1985-01-11 東洋紡績株式会社 アミラ−ゼ活性測定法
EP0048035B1 (en) * 1978-06-06 1983-12-07 Flow General, Inc. Maltodextrin phosphorylase limit dextrin and method of producing it
JPS5768798A (en) * 1980-10-14 1982-04-27 Toyo Jozo Co Ltd Novel measurement of amylase activity
EP0104047B1 (en) * 1982-09-16 1987-07-29 Wako Pure Chemical Industries, Ltd. Modified oligosaccharides used as substrate for measuring alpha-amylase activity
DE3323245A1 (de) * 1983-06-28 1985-01-10 Merck Patent Gmbh, 6100 Darmstadt Verfahren und reagenz zur bestimmung von (alpha)-amylase
DE3328616A1 (de) * 1983-08-08 1985-02-28 Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim Oligoglucosidderivate
JPS60114193A (ja) * 1983-11-22 1985-06-20 Toyo Jozo Co Ltd 新規なマルトースデヒドロゲナーゼおよびその製法それを用いる分析法
US4794078A (en) * 1984-07-26 1988-12-27 Genzyme Corporation Alpha amylase assay
US4649108A (en) * 1984-07-26 1987-03-10 Genzyme Corporation Alpha amylase assay
JPS6183195A (ja) * 1984-08-24 1986-04-26 Wako Pure Chem Ind Ltd 新規なオリゴサツカライド誘導体、及びこれを基質として用いるα−アミラ−ゼ活性測定法
JPS61124397A (ja) * 1984-11-22 1986-06-12 Toyobo Co Ltd α−アミラ−ゼの活性測定用試薬
DE3508384A1 (de) * 1985-03-08 1986-11-06 Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim Hemmung humaner speichel- und pankreasamylase durch monoklonale antikoerper
SE451849B (sv) * 1985-12-11 1987-11-02 Svenska Sockerfabriks Ab Sett att syntetisera glykosidiska bindningar samt anvendning av pa detta sett erhallna produkter
US4782018A (en) * 1986-01-17 1988-11-01 Eastman Kodak Company Detection of hydrolyzing enzymes
DE3621271A1 (de) * 1986-06-25 1988-01-07 Boehringer Mannheim Gmbh Verfahren und reagenz zur bestimmung von alpha-amylase
US4963479A (en) * 1986-10-07 1990-10-16 Hoechst Celanese Corporation Reagent system for an alpha-amylase assay containing aromatic substituted glycoside
US5158872A (en) * 1986-10-07 1992-10-27 Hoechst Celanese Corporation Aromatic substituted glycoside
ATE124719T1 (de) * 1987-07-17 1995-07-15 Modrovich Ivan Endre Stabiles alpha-amylase-reagenz.
US4932871A (en) * 1987-11-20 1990-06-12 Miles Inc. Rapid method for preparing chromogenic alpha-amylase substrate compounds at high preparative yields
DE3743908A1 (de) * 1987-12-23 1989-07-06 Boehringer Mannheim Gmbh Neue oligoglucoside
DE3929355A1 (de) * 1989-09-04 1991-03-07 Boehringer Mannheim Gmbh Verfahren zur spezifischen bestimmung von pankreas-(alpha)-amylase
JP2576910B2 (ja) * 1990-04-13 1997-01-29 富士写真フイルム株式会社 免疫分析要素および免疫分析方法
US5300634A (en) * 1991-05-07 1994-04-05 Wako Pure Chemical Industries, Ltd. Process for producing maltooligosaccharide derivative
JP3075377B2 (ja) * 1991-11-06 2000-08-14 東洋紡績株式会社 α−アミラーゼ活性の測定法およびα−アミラーゼ活性測定用試薬
WO2000005398A1 (en) * 1998-07-24 2000-02-03 Samsung Fine Chemicals Co., Ltd. Process for preparing alpha-(1,4) linked oligosaccharide
KR100374358B1 (ko) * 2000-07-13 2003-03-04 주식회사 코메드 미생물 동정을 위한 비피검사법과 구연산염 검사법을대체하는 글루코시드 분해검사배지와 셀로비오스분해검사배지 및 그 검사법
US20040096948A1 (en) * 2002-11-15 2004-05-20 Yunping Huang Glycoprotein cleavage protocol for oligosaccharide analysis

Family Cites Families (18)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
IT986838B (it) * 1972-05-12 1975-01-30 Sclavo Inst Sieroterapeut Complesso di reagenti per la deter minazione enzimatica del glucosio sistema glucosio ossidasi perossi dasi con metodo manuale e automati co con lettura a termine o in cinetica
US3879263A (en) * 1973-09-06 1975-04-22 Du Pont Method for the determination of amylase
US4000042A (en) * 1973-09-06 1976-12-28 E. I. Du Pont De Nemours And Company Diagnostic reagent for the determination of amylase
US3867259A (en) * 1973-11-08 1975-02-18 American Cyanamid Co Lactate dehydrogenase test material
DE2600526C3 (de) * 1976-01-08 1981-06-19 Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim Verfahren zur quantitativen Bestimmung von mit Sauerstoff unter Oxidaseeinwirkung H↓2↓O↓2↓ bildenden Substanzen und Reagens zu seiner Durchführung
US4036697A (en) * 1976-02-13 1977-07-19 Beckman Instruments, Inc. Kinetic assay for alpha-amylase
US4097336A (en) * 1976-02-13 1978-06-27 Beckman Instruments, Inc. Reagent system for beta-amylase assay
US4059407A (en) * 1976-04-14 1977-11-22 Becton, Dickinson And Company Disposable chemical indicators
NL179399C (nl) * 1976-07-13 1986-09-01 Du Pont Werkwijze voor de bepaling van het amylase-gehalte van een monster en reagens-proefpakket daarvoor.
NL188646C (nl) * 1976-07-13 1992-08-17 Du Pont Werkwijze voor het bereiden van nitroaromatische glycosiden.
US4071407A (en) * 1976-11-16 1978-01-31 The Board Of Trustees Of The University Of Alabama Novel maltase enzyme produced by a new yeast strain
US4081326A (en) * 1976-10-07 1978-03-28 The Board Of Trustees Of The University Of Alabama A method for removing maltotetraose and lower saccharides from solution
US4102747A (en) * 1977-07-28 1978-07-25 American Hospital Supply Corporation Amylase determination
DE2748036C2 (de) * 1977-10-26 1986-08-21 Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim Verfahren zur Gewinnung von Maltose-phosphorylase oder/und β-Phosphoglucose-mutase und Verwendung derselben
US4233403A (en) * 1978-02-27 1980-11-11 E. I. Du Pont De Nemours And Company Amylase assay
US4219571A (en) * 1978-06-15 1980-08-26 Kabushiki Kaisha Hayashibara Seibutsu Kagaku Kenkyujo Process for producing a sweetener
US4225672A (en) * 1979-02-27 1980-09-30 Hall Leo M Method for producing maltooligosaccharide glycosides
US4932871A (en) * 1987-11-20 1990-06-12 Miles Inc. Rapid method for preparing chromogenic alpha-amylase substrate compounds at high preparative yields

Also Published As

Publication number Publication date
FI61916B (fi) 1982-06-30
YU216278A (en) 1989-02-28
SG21085G (en) 1985-09-13
ES473296A1 (es) 1979-10-16
IT1099451B (it) 1985-09-18
AT362526B (de) 1981-05-25
CH651590A5 (de) 1985-09-30
AR217476A1 (es) 1980-03-31
SE8400206D0 (sv) 1984-01-17
AU521908B2 (en) 1982-05-06
SE454357B (sv) 1988-04-25
IL55408A0 (en) 1978-10-31
GB2058780A (en) 1981-04-15
FR2402872B1 (cs) 1984-11-30
IE781838L (en) 1979-03-13
SE8400206L (sv) 1984-01-17
IE47953B1 (en) 1984-08-08
NL190818B (nl) 1994-04-05
FR2402872A1 (fr) 1979-04-06
FI782789A (fi) 1979-03-14
ATA589778A (de) 1980-10-15
JPS6250119B2 (cs) 1987-10-22
DD138921A5 (de) 1979-11-28
DK372178A (da) 1979-03-14
IL55408A (en) 1982-12-31
SE7809278L (sv) 1979-03-14
US4544631A (en) 1985-10-01
CA1120836A (en) 1982-03-30
DK153335C (da) 1988-11-28
DK153335B (da) 1988-07-04
HU182005B (en) 1983-12-28
US5108913A (en) 1992-04-28
GB2004646B (en) 1982-09-08
FI61916C (fi) 1982-10-11
GB2004646A (en) 1979-04-04
ES480028A1 (es) 1979-12-01
SE433857B (sv) 1984-06-18
NL7808528A (nl) 1979-03-15
LU80213A1 (de) 1979-03-07
NL190818C (nl) 1994-09-01
JPS5451892A (en) 1979-04-24
AU3975078A (en) 1980-03-20
GB2058780B (en) 1982-07-28
IL62923A0 (en) 1981-07-31
HK54785A (en) 1985-07-26
MY8600101A (en) 1986-12-31
YU44180B (en) 1990-04-30
IT7827180A0 (it) 1978-08-30

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CS236765B2 (en) Agent for determining of alpha amylase
EP0171960B1 (en) An alpha-amylase assay method and reagent kit
Lorentz et al. Evaluation of a direct α-amylase assay using 2-chloro-4-nitrophenyl-α-D-maltotrioside
CS244665B2 (en) Method of enzymatic determination of enzyme substrates
US4698300A (en) Process and reagent for the determination of α-amylase
CS273162B2 (en) Diagnostic agent for glicosidases activity determination
Dike et al. Tegumentary phosphohydrolases of Hymenolepis diminuta
US5962248A (en) Quantitative determination method for chloride ions
US4012286A (en) Determination of creatine phosphokinase in body fluids
US4794078A (en) Alpha amylase assay
JPH06315399A (ja) α−アミラーゼ活性測定用試薬および測定方法
CS236758B2 (en) Method of determining of alpha-amylase
EP0557021A2 (en) Oligosaccharide derivatives suitable for alpha-amylase determination
JPH0824598B2 (ja) アミラ−ゼ定量用試験試薬
JPS63109798A (ja) α−アミラ−ゼの定量法及び定量用試薬
JPS60160898A (ja) 無機燐酸塩の酵素による測定方法
SI7812162A8 (sl) Postopek za določitev alfa-amilaze
JP2000189194A (ja) α―アミラ―ゼ活性測定試薬及び測定方法
Kirkeby et al. A Multiple Enzyme Method for Maasurement of K, Na ATPase
KR100715924B1 (ko) 1,5-안하이드로글루시톨의 정량 분석법 및 시약
EP1008853A2 (en) Reagent compositions for measuring electrolyte using alpha-amylase
JPH08291A (ja) α−アミラーゼ活性の測定方法及びα−アミラーゼ活性測定用試薬
JPH11196899A (ja) クレアチンキナーゼ測定のための方法及び試薬
JPS60160897A (ja) アミラーゼ・アイソザイム測定用試薬
JPH03200801A (ja) アンヒドロマルトオリゴシド誘導体、これを有効成分とするα―アミラーゼ活性測定用試薬及びこれを用いたα―アミラーゼ活性の測定方法