CN109628527B - 一种梯度pH法制备胸苷的方法 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及一种梯度pH法制备胸苷的方法,以DNA水解液为底物与胸腺嘧啶混合,以固定化大肠杆菌细胞为催化剂反应制备胸苷,在制备过程中通过利用梯度pH法加入磷酸盐缓冲液调节体系反应前期、反应后期的pH值,可有效提高反应速率,大大缩短反应时间;利用包埋‑交联法制备固定化大肠杆菌,较好的提高了菌体对底物的耐受性,其中添加的活性炭能降低固定化大肠杆菌的内扩散阻力,有利于物质在固定化大肠杆菌中的扩散,有效提高反应速率,且固定化大肠杆菌细胞操作稳定性好,重复利用性高;采用本发明方法制备胸苷的工艺简单,转化率较好,收率达61%以上,提纯后胸苷纯度可达96%以上。
Description
技术领域
本发明属于药物化学技术领域,具体涉及一种梯度pH法制备胸苷的方法。
背景技术
胸苷是抗艾滋病有效治疗药物齐多夫定和叠氮胸苷的重要原料,在抗病毒、抗肿瘤方面起到了不可替代的作用。目前胸苷的生产方法主要有四种:化学合成法,DNA酶解法,发酵法和酶法。
化学合成法有多种途径,但是其在制备胸苷的过程中糖苷键缺乏立体专一性,原料不易得,且胸苷收率非常低,而且生产过程中有大量废水产生,环境污染大。发酵法是利用微生物培养使其在培养基中积累胸苷,虽然能够规模且单一地生产胸苷,但该方法周期长、易染菌、收率低。酶法是以2′-脱氧核苷和胸腺嘧啶为原料,以菌体或酶为催化介质,催化得到胸苷,尽管酶法具有专一性强、操作简单、反应时间短等优点,但是原料2′-脱氧核苷价格昂贵。目前工业制造主要是以DNA酶解后所得2′-脱氧核苷混合液为原料,但是这种方法受反应平衡的限制,收率较低。
发明内容
本发明的目的在于:针对现有酶法制备胸苷技术的不足,以DNA水解液(即2′-脱氧核苷混合物)为原料,采用梯度pH法,经酶法转化,提高反应阶段的转化率及缩短反应时间;并利用包埋-交联法对大肠杆菌菌体进行固定,解决目前菌体易于受底物抑制,转化率低的问题,同时提高菌体重复使用率。
本发明为解决上述技术问题所采用的技术方案是:以DNA水解液为底物和胸腺嘧啶混合,以固定化大肠杆菌细胞为催化剂反应制备胸苷,在制备过程中加入磷酸盐缓冲液,采用梯度pH法调节体系反应前期pH为弱酸性,反应后期调节体系pH为弱碱性。
本发明通过如下方案实现:
将DNA水解液和胸腺嘧啶混合,在反应前期加入磷酸盐缓冲溶液并调节体系pH值为5.0~6.0,加入固定化大肠杆菌细胞,在此弱酸性体系下于50~70℃反应2.0~2.5h,反应后期调节体系pH值为7.5~8.5,在此弱碱性体系下反应1.5~2.0h,反应结束;将反应液置于4℃冰箱2~5d,过滤,弃去滤渣,加入活性炭脱色,过滤得到透明液体,减压蒸干,得到微黄色固体粉末;然后用硅胶柱进行等度洗脱分离,制得白色晶体胸苷。
进一步地,所述DNA水解液在磷酸盐缓冲溶液中的浓度为30~100mmol/L,固定化大肠杆菌细胞的质量浓度为80~200g/L,胸腺嘧啶浓度为DNA水解液浓度的3倍。
进一步地,所述磷酸盐缓冲溶液的pH为7.0。
进一步地,所述固定化大肠杆菌细胞采用包埋-交联法以PVA和卡拉胶为包埋有机材料、活性炭为添加剂、饱和硼酸和KCI溶液为固定剂溶液制得,具体为:
①将PVA浸泡在水中,加入卡拉胶,加热使两者充分溶解并灭菌,得到混合溶液并待用;
②将大肠杆菌种子接种于液体培养基中,依次经过培养、离心、洗涤和再次离心,得到大肠杆菌细胞;
③将步骤②的大肠杆菌细胞和灭菌活性炭加入到步骤①中的混合溶液中,混匀后,滴加灭菌固定剂溶液进行成型,得到固定化大肠杆菌细胞。
进一步地,所述混合溶液中PVA、卡拉胶、水的质量比为3:0.3:50;所述大肠杆菌细胞和活性炭的质量比为5:1,大肠杆菌细胞在所述混合溶液中的质量浓度为1g/L。
进一步地,所述固定剂溶液为KCl-饱和硼酸溶液,其中KCl的质量分数为4%。
有益效果为:本发明采用梯度pH法通过调节反应前期、反应后期体系的pH值,有效提高反应速率,大大缩短反应时间;采用包埋-交联法制备固定化大肠杆菌,较好的提高了菌体对底物的耐受性,其中添加的活性炭能降低固定化大肠杆菌的内扩散阻力,有利于物质在固定化大肠杆菌中的扩散,有效地提高了反应速率,且固定化大肠杆菌细胞操作稳定性好,重复利用性高;采用本发明方法制备胸苷的工艺简单,转化率较好,收率达61%以上,提纯后胸苷纯度可达96%以上。
具体实施方式
以下结合具体实施例进一步描述本发明,但不限制本发明范围。
实施例1
固定化大肠杆菌细胞的制备:
①将3g PVA浸泡在50ml蒸馏水中24h,再加入0.3g卡拉胶,在110℃保温30min灭菌并使两者充分溶解,混合溶液降温到45℃并保温待用。
②将一环成熟的大肠杆菌种子接种于30mL液体培养基中,30℃、100r/min振荡培养28h,培养液装于无菌离心管中;3000r/min离心10min,然后用无菌生理盐水洗涤,再次离心,得到大肠杆菌细胞。
③将50mg步骤②所得大肠杆菌细胞和10mg灭菌的超细活性碳加入到步骤①的混合溶液中,混匀后用针管滴入经灭菌的KCl-饱和硼酸(pH=7.0,KCl的质量分数为4%)固定剂溶液进行成型36h,得到固定化大肠杆菌细胞,置于pH7.0的磷酸缓冲溶液中,于4℃下保存待用。
胸苷的制备:
将含3mmol 2′-脱氧核苷的DNA酶解液和9mmol(1.13g)胸腺嘧啶混合,在反应前期加入磷酸盐缓冲溶液至100mL并调节体系pH值为6.0,加入10g步骤③制备的固定化大肠杆菌细胞,60℃下反应2.5h,反应后期调节体系pH值为8.0,继续反应1.5h,反应结束,进行固定化细胞分离;将反应液置于4℃冰箱2~5d,过滤,弃去滤渣,加入活性炭脱色,过滤得到透明液体,60℃减压蒸干,得到微黄色固体粉末;然后用硅胶柱进行分离,选用洗脱剂为V(甲醇):V(二氯甲烷)=1:15,进行等度洗脱,得到白色晶体样品1.47g,收率61%,纯度97.2%。
实施例2~5
实施例2~5制备胸苷的方法与实例1的制备方法相同,不同之处见表1,其中底物是DNA水解液(即2′-脱氧核苷混合物),胸腺嘧啶的浓度为2′-脱氧核苷的3倍。
表1
由表1可以看出,实施例7中DNA水解液含2′-脱氧核苷80mmol/L,反应温度60℃,反应前期pH 5.5,反应时间2.5h,反应后期pH8.5,反应时间1.5h,胸苷收率达到72.6%,纯度97.2%。
下面对照实验(对比例)采用实施例7的制备方法及工艺参数。
对比例1~4
对比例1~4与实施例7的工艺及参数相同,不同之处见表2。
表2
由表2可以看出,实施例7中固定化大肠杆菌细胞催化产物收率明显高于对比例1中游离大肠杆菌,可见采用包埋-交联法制得的固定化大肠杆菌细胞具有良好的底物耐受性,同时也具有良好的操作稳定性和重复利用性;实施例7中采用梯度pH法调节反应前期、反应后期pH值,与对比例2、对比例3、对比例4中维持体系pH值为中性、弱酸性及弱碱性的实验工艺相比,采用梯度pH法调节体系反应前期、反应后期的pH值能较大程度地提高反应速率并缩短反应时间,在一定程度上提高产物收率。
对比例5
对比例5与的实施例7的工艺及参数相同,不同之处见表3。
表3
由表3可知,在制备固定化大肠杆菌细胞的过程中采用活性炭为添加剂,能有效提高收率,这得益于包埋材料中活性碳的吸附性能,它能有效降低固定化大肠杆菌的内扩散阻力,有利于物质在固定化大肠杆菌中的扩散,因此在一定程度上能提高反应速率,增加产物收率。
以上所述,仅为本发明的较佳实施例,并不用以限制本发明,凡是依据本发明的技术实质对以上实施例所作的任何细微修改、等同替换和改进,均应包含在本发明技术方案的保护范围内。
Claims (4)
1.一种梯度pH法制备胸苷的方法,其特征在于,以DNA水解液为底物与胸腺嘧啶混合,以固定化大肠杆菌细胞为催化剂反应制备胸苷,包括以下步骤制备胸苷:将DNA水解液和胸腺嘧啶混合,在反应前期加入磷酸盐缓冲溶液并调节体系pH值为5.0~6.0,加入固定化大肠杆菌细胞,在此弱酸性体系下于50~70℃反应2.0~2.5 h,反应后期调节体系pH值为7.5~8.5,在此弱碱性体系下反应1.5~2.0h,反应结束;将反应液置于4℃冰箱2~5d,过滤,弃去滤渣,加入活性炭脱色,过滤得到透明液体,减压蒸干,得到微黄色固体粉末;然后用硅胶柱进行等度洗脱分离,制得白色晶体胸苷;
所述固定化大肠杆菌细胞采用包埋-交联法以PVA和卡拉胶为包埋有机材料、活性炭为添加剂、饱和硼酸和KCI溶液为固定剂溶液制得,具体为:
①将PVA浸泡在水中,加入卡拉胶,加热使两者充分溶解并灭菌,得到混合溶液并待用;
②将大肠杆菌种子接种于液体培养基中,依次经过培养、离心、洗涤和再次离心,得到大肠杆菌细胞;
③将步骤②的大肠杆菌细胞和灭菌活性炭加入到步骤①中的混合溶液中,混匀后,滴加灭菌固定剂溶液进行成型,得到固定化大肠杆菌细胞;
所述混合溶液中PVA、卡拉胶、水的质量比为3:0.3:50;所述大肠杆菌细胞和活性炭的质量比为5:1,大肠杆菌细胞在所述混合溶液中的质量浓度为1g/L。
2.根据权利要求1所述的一种梯度pH法制备胸苷的方法,其特征在于,所述DNA水解液在磷酸盐缓冲溶液中的浓度为30~100 mmol/L,固定化大肠杆菌细胞的质量浓度为80~200g/L,胸腺嘧啶浓度为DNA水解液浓度的3倍。
3.根据权利要求2所述的一种梯度pH法制备胸苷的方法,其特征在于,所述磷酸盐缓冲溶液的pH为7.0。
4.根据权利要求1所述的一种梯度pH法制备胸苷的方法,其特征在于,所述固定剂溶液为KCl-饱和硼酸溶液,其中KCl的质量分数为4%。
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