CN107523619A - 包含mcr基因的耐药菌的PCR检测试剂盒及其应用 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了包含mcr基因的耐药菌的PCR检测试剂盒及其应用,属于生物检测技术领域。本发明的检测用引物及探针的核苷酸序列如SEQ ID NO:1‑3所示;PCR检测试剂盒,包括荧光PCR检测混合液,所述检测混合液中含有前述的引物和探针。利用本发明的试剂盒和引物探针能快速检测出包括mcr‑1、mcr‑2共2种mcr高耐药基因的微生物,具有操作简便、灵敏度高、特异性好、准确度高等优点,能够及时发现和确诊可疑病例,提高对各类感染疾病的监测水平。
Description
技术领域
本发明涉及包含mcr基因的耐药菌的PCR检测试剂盒及其应用,具体涉及一种能够同时 快速检测目前所有已知mcr基因型,包括mcr-1、mcr-2的PCR引物、探针及试剂盒,属于生物检测技术领域。
背景技术
众所周知,多黏菌素药物是对抗革兰氏阴性菌严重感染的最后一道屏障。然而,随着临 床的广泛使用应用,特别是滥用,已经陆续出现了高耐药基因(mcr),包含mcr基因的微生物 将使多黏菌素药物失去作用。迄今,已经发现了两种mcr耐药基因,包括mcr-1和mcr-2,含有 这些耐药基因的微生物将对多粘菌素类抗生素失去敏感性。
到目前为止,临床对包含mcr基因的耐药菌的检测仍然主要是通过对标本进行选择性培养 计数菌落数后,再通过传统药敏试验和PCR扩增并与标准文库对比。随着分子生物学的发展 以及分子生物学技术在微生物的应用,特别是荧光PCR技术出现,由于其具有省时省力、敏 感性高、特异性强、操作简单快速等特点,且不受试验时间限制,而被广泛应用于临床诊断、 疾病研究和病原体检测等方面。然而,迄今使用PCR鉴别诊断mcr耐药菌的方法仍然非常复杂, 不仅耗时、费力,而且准确度并不比传统的药敏试验更佳,特别是,迄今已经有2种mcr基因 型被发现,现有的mcr耐药菌检测试剂盒都是只能够检测单一的耐药基因,例如只能够检测 mcr-1耐药基因,导致确切一一鉴别2种不同mcr基因型具有效率低、成本高的缺陷。
因此,寻找一种能有效鉴别产各种mcr的“超级细菌”的方法已经迫在眉睫。
发明内容
本发明的目的在于提供一种鉴别并诊断各种包含mcr基因的耐药菌的荧光PCR检测试剂 盒及其制备方法、检测方法,可用于检测并诊断包含mcr基因的耐药菌的感染,用于临床对可 疑感染患者进行病原学鉴别诊断。
本发明的PCR引物、探针及试剂盒能够方便地检测目前已知的所有的mcr耐药基因,不仅 简便、快速、准确、灵敏,而且目前国内外尚未见类似的技术报道。
本发明的第一个目的是提供一种针对各种包含mcr基因耐药菌的检测引物,所述引物包括 序列如SEQ ID NO:1和SEQ ID NO:2的两条核苷酸序列。
在一种实施方式中,所述针对包含mcr基因耐药菌的检测引物的组成如下:
上游引物:5’-GGCACATCGACGGCGTAT-3’(SEQ ID NO:1)
下游引物:5’-GGTATTTGGCGGTATCGACATC-3’(SEQ ID NO:2)。
本发明的第二个目的是提供一种包含mcr基因耐药菌的检测试剂盒,所述检测试剂盒中包 括本发明的检测引物。
在一种实施方式中,所述检测试剂盒中,还包括序列如SEQ ID NO:3所示探针。
在一种实施方式中,所述探针的一端标记有荧光报告基团,探针另一端标记有荧光淬灭 基团。
在一种实施方式中,所述探针的5’端包括荧光报告基团,3’端包括荧光淬灭基团。
在一种实施方式中,所述探针为5’-荧光报告基团-GTGCCGTGTATGTTCAG-荧光淬灭基 团-3’(SEQ ID NO:3)。
在一种实施方式中,所述荧光报告基团为FAM、VIC、ROX、Cy5、JOE或者Quasar705荧光基团中的任意一种。
在一种实施方式中,所述荧光淬灭基团为BHQ或者ECLIPSE系列。
在一种实施方式中,所述检测试剂盒中还包括普通PCR或者荧光PCR扩增用的PCRbuffer 和H2O。
在一种实施方式中,所述PCR MIX中含有优化的双阳离子缓冲液、dNTPS、PCR增强剂、 PCR稳定剂。
在一种实施方式中,所述检测试剂盒中还包括PCR酶、阴性对照品及阳性对照品中的至 少一种。
在一种实施方式中,所述酶为DNA聚合酶,比如taq DNA聚合酶。
在一种实施方式中,所述阳性对照品为灭活或减毒阳性菌株的DNA或相应的对照质粒。
在一种实施方式中,所述阴性对照品为DEPC-H2O。
在一种实施方式中,所述检测试剂盒为荧光检测试剂盒,包括本发明的引物、探针、qPCR master mix、taq DNA聚合酶。优选地,还包括水或TE。
本发明的第三个目的是提供所述的检测引物在制备包含mcr基因的耐药菌检测试剂中的 应用。
本发明的第四个目的是提供包含mcr基因耐药菌的检测方法,是利用本发明的所述引物或 者检测试剂盒进行检测。
在一种实施方式中,所述耐药菌为以下任意一种或多种:鲍氏不动杆菌Acinetobacterbaumannii,产气肠杆菌Enterobacteraerogenes,阴沟肠杆菌Enterobactercloacae, 大肠杆菌Escherichiacoli,奥克西托克雷白杆菌KlebsiellaOxytoca,臭鼻克雷白氏杆菌 Klebsiellaozaenae,肺炎克雷伯氏菌Klebsiellapneumoniae,摩根(氏)菌Morganellamorganii, 奇异变形杆菌Proteusmirabilis,雷氏普罗威登斯菌Providenciarettgeri,铜绿假单胞菌Pseudomonasaeruginosa,粘质沙雷氏菌Serratiamarcescens,念珠菌Candidaspecies。
在一种实施方式中,所述检测方法,是采用荧光PCR进行检测。
在一种实施方式中,荧光PCR扩增体系包括(20μl体系):8~12μl的qPCR mastermix(2X)、 一定浓度的引物和探针、0.1~1μl的taqDNA聚合酶、一定浓度的待测品、其余为水。
在一种实施方式中,荧光PCR扩增体系为:10μl的qPCR master mix(2X),1μl的引物 探针混合液,0.3μl的taqDNA聚合酶,待检DNA模板5μl,加灭菌去离子水补足体积到20μl。
在一种实施方式中,荧光PCR扩增体系制备方法如下:取10μl的qPCR master mix(2X), 与1μl的MCR引物探针混合液和3.7μl的H2O混合,再加入0.3μl的taqDNA聚合酶,取15μl上述混 合液加入5μl待测DNA样本,获得反应总体系为20μl的PCR反应液。
在一种实施方式中,所述PCR酶由0.3μl Taq酶(5U/μl),无尿嘧啶-N-糖基化酶制成。
在一种实施方式中,所述的MCR引物探针混合液由等体积的10pmol/μl的MCR上游引物、 10pmol/μl的MCR下游引物和5pmol/μl探针组成。
在一种实施方式中,所述待测品为样本的DNA模板溶液、阳性对照品或阴性对照品(DEPC-H2O)。
在一种实施方式中,所述阳性对照品中,对照质粒可以单独包装也可以混合包装。
本发明针对鉴别并诊断包含mcr基因的耐药菌的荧光PCR检测的试剂盒所用的方法,采用 的是Taqman荧光定量PCR原理,分别针对mcr耐药基因设计特异性引物,扩增特异性核酸序 列,同时分别设计Taqman探针,并标记不同的荧光报告基团,并位于上下游引物之间。探针 5’端标记荧光报告基团,3’端标记非荧光淬灭基团。当探针完整的时候,报告基团所发射的 荧光能量被淬灭基团吸收,仪器检测不到信号。随着PCR的进行,Taq酶在链延伸过程中遇到 与模板结合的探针,其5’→3’外切核酸酶活性就会将探针切断,报告基团远离淬灭基团,其 能量不能被吸收,即产生荧光信号。因此,本发明采用的荧光定量PCR技术具有实时检测、 定量和高通量检测等特点,且操作简便、灵敏度高、特异性好等优点。
使用本发明针对包含mcr基因的耐药菌的荧光PCR检测试剂盒检测时,其使用方法如下:
1)提取待测样本的DNA,得到DNA模板溶液;
2)加入本发明制备的检测混合溶液,制备反应体系;
3)PCR扩增并检测。
本发明PCR检测的待测样本来自ATCC定性清楚菌株、疾控中心(CDC)、本公司实验室 从获得的患者标本,包括,但不限于粪便、尿液、痰、血液、组织液、分泌物等获取的菌株。样本的核酸提取为现有细菌DNA提取技术,具体可根据取样方式不同,按各核酸提取说明书操作进行。
检测加样的方法为:每个反应取10μl的荧光PCR检测混合液与0.3μlTaqPCR酶(Taq酶 5U/μl),混合,再加入1μl的MCR引物探针混合液和3.7μlddH2O,振荡混匀数秒,3000rpm离 心5秒,获得混合液。取前述混合液15μl置于PCR管中,然后将5μl的DNA模板溶液、阳性对照品、或者阴性对照品加入PCR反应管中,盖好PCR反应管盖,立即进行PCR扩增反应。
本发明推荐的PCR反应条件:
ABI7500fastdx仪器:95℃2min,(95℃15s,60℃30s)40个循环
博日9600plus仪器:94℃2min,(94℃10s,60℃40s)40个循环。
PCR反应阈值设定:阈值设定原则以阈值线刚好超过阴性对照品检测荧光曲线的最高点。
本发明荧光PCR质量控制:阴性对照品检测结果在Ct栏显示Undetermined(ABI7500)或 N/A(CFX96)或No Ct(SLAN);阳性对照品检测结果应为:cy5通道Ct值均≤35(其他荧光 标记结果判断依据同Cy5);否则实验视为无效。具体见表1。
表1试验结果的判断标准
序列 | 通道 | 结果判断 |
1 | Undetermined/No Ct/(N/A) | 阴性 |
2 | Ct≤35 | 阳性 |
3 | 38≤Ct≤40 | 待定,复测 |
若待检样本Ct值在38~40之间,需重复测定,如重复测定得到的Ct值仍在38~40之间, 则判为低于检测限,报告为阴性。
本发明最后公开了前述针对包含mcr基因的耐药菌的荧光PCR检测用引物及探针、前述包 含mcr基因的耐药菌的荧光PCR检测试剂盒在制备和/或检测试剂中的应用。
本发明的有益效果:
本发明的试剂盒及其应用大大缩短检测时间,操作简便。特异性引物和和探针的设计保 证了引物和探针的高度保守和特异性,避免了两对引物和探针之间无互补配对或交叉扩增的 情况。
附图说明
图1实施例8第一天的检测灵敏度的扩增曲线图;
图2实施例8第二天检测灵敏度的扩增曲线图;
图3实施例8第三天检测灵敏度的扩增曲线图;
图4实施例10的批内重复性的扩增曲线图;
图5实施例10的批间重复性第一天的扩增曲线图;
图6实施例10的批间重复性第二天的扩增曲线图;
图7实施例10的批间重复性第三天的扩增曲线图;
图8实施例11的线性度的扩增曲线图;
图9实施例11的检测革兰氏阴性菌株中mcr基因的线性度的标准曲线;
图10实施例12的特异性的扩增曲线图。
具体实施方案
下面结合具体实施例进一步阐述本发明,应理解,以下实施例仅用于说明本发明而不用 于限制本发明的保护范围。
实施例1
核酸测定试剂盒引物探针的设计和合成1
在探针的5’标记FAM荧光基团,探针的3’标记BHQ1荧光基团。
合成针对产各种mcr耐药菌的PCR检测的引物、探针:
上游引物:5’-GGCACATCGACGGCGTAT-3’(SEQ ID NO:1)
下游引物:5’-GGTATTTGGCGGTATCGACATC-3’(SEQ ID NO:2)
探针:5’-FAM-GTGCCGTGTATGTTCAG-BHQ1-3’(SEQ ID NO:3)
实施例2
核酸测定试剂盒引物探针的设计和合成2
在探针的5’标记VIC荧光基团,探针的3’标记BHQ1荧光基团。
合成针对产各种mcr耐药菌的PCR检测的引物、探针:
上游引物:5’-GGCACATCGACGGCGTAT-3’(SEQ ID NO:1)
下游引物:5’-GGTATTTGGCGGTATCGACATC-3’(SEQ ID NO:2)
探针:5’-VIC-GTGCCGTGTATGTTCAG-BHQ1-3’(SEQ ID NO:3)
实施例3
核酸测定试剂盒引物探针的设计和合成3
在探针的5’标记ROX荧光基团,探针的3’标记BHQ2荧光基团。
合成针对产各种mcr耐药菌的PCR检测的引物、探针:
上游引物:5’-GGCACATCGACGGCGTAT-3’(SEQ ID NO:1)
下游引物:5’-GGTATTTGGCGGTATCGACATC-3’(SEQ ID NO:2)
探针:5’-ROX-GTGCCGTGTATGTTCAG–BHQ2-3’(SEQ ID NO:3)
实施例4
核酸测定试剂盒引物探针的设计和合成4
在探针的5’标记CY5荧光基团,探针的3’标记BHQ2荧光基团。
合成针对产各种mcr耐药菌的PCR检测的引物、探针:
上游引物:5’-GGCACATCGACGGCGTAT-3’(SEQ ID NO:1)
下游引物:5’-GGTATTTGGCGGTATCGACATC-3’(SEQ ID NO:2)
探针:5’-CY5-GTGCCGTGTATGTTCAG–BHQ2-3’(SEQ ID NO:3)
实施例5
核酸测定试剂盒引物探针的设计和合成5
在探针的5’标记Quasar705荧光基团,探针的3’标记BHQ3荧光基团。
合成针对产各种mcr耐药菌的PCR检测的引物、探针:
上游引物:5’-GGCACATCGACGGCGTAT-3’(SEQ ID NO:1)
下游引物:5’-GGTATTTGGCGGTATCGACATC-3’(SEQ ID NO:2)
探针:5’-Quasar705-GTGCCGTGTATGTTCAG–BHQ3-3’(SEQ ID NO:3)
实施例6
核酸测定试剂盒引物探针的设计和合成6
在探针的5’标记JOE荧光基团,探针的3’标记DAB荧光基团。
合成针对产各种mcr耐药菌的PCR检测的引物、探针:
上游引物:5’-GGCACATCGACGGCGTAT-3’(SEQ ID NO:1)
下游引物:5’-GGTATTTGGCGGTATCGACATC-3’(SEQ ID NO:2)
探针:5’-JOE-GTGCCGTGTATGTTCAG–DAB-3’(SEQ ID NO:3)
实施例7
核酸测定试剂盒的制备及使用
1、核酸荧光PCR检测混合液的制备:
制备方法如下:配制10pmol/μl的上游引物、下游引物以及5pmol/μl的探针,再取等体积 的上述引物探针混匀制成一管引物探针混合液。取qPCR master mix(2X)10μl,与1μl的引物 探针混合液、0.3μl的taq DNA聚合酶、工艺用水3.7μl混合,获得体积为15μl的核酸荧光PCR 检测混合液。制备n×15μl核酸荧光PCR检测混合液(n为反应管数)。
2、加样
每支PCR管中取上述混合液15μl,然后向每支PCR管中再分别加入待测样品DNA制备液 5μl,盖好PCR管盖,立即进行PCR扩增反应。
3、PCR扩增
反应管置于定量荧光PCR仪上,推荐循环参数设置:
ABI7500fastdx仪器:95℃2min,(95℃15s,60℃30s)40个循环
博日9600plus仪器:94℃2min,(94℃10s,60℃40s)40个循环。
实施例8
核酸测定试剂盒的灵敏度分析
根据美国临床实验室标准化研究所的规程确定了本PCR检测灵敏度实验方案。
(1)制备一管106cfu/ml浓度的菌悬液:mcr基因采用菌株CDC346。
(2)将上述菌悬液逐级稀释成8个浓度梯度的稀释液,各稀释浓度分别见下表2。将稀 释浓度约100CFU/ml浓度的菌混合液液按照标准微生物学方法进行细菌计数。
(3)提取上述8个浓度梯度稀释液的菌混合液DNA,备用。
(4)实时PCR分析本实时PCR检测的灵敏度。每个稀释度三个重复,重复三天,故每个稀释度一共得到9个数据,利用SPSS统计软件版本22.0(95%阳性率水平)统计本实时PCR检测mcr基因的灵敏度。结果见下表2,三天检测灵敏度的扩增曲线见附图1,2和3。 通过SPSS软件分析,95%阳性率水平上本实时荧光定量PCR检测mcr基因的灵敏度为405 CFU/mL。
表2 PCR对mcr灵敏度分析结果
实施例9
核酸测定试剂盒的精确度分析
根据美国临床实验室标准化研究所的规程确定了本PCR检测灵敏度实验方案。通过检测 以下类型的样本,对本实时PCR检测的准确性进行了评估,菌株的来源:
参考菌株从ATCC、CDC(n=88)或者本实验室收集的患者样本(n=200),以及单个或多个 外添加目标基因的标本((n=13),共301份样本,其中包括283株革兰氏阴性菌株和5种念珠 菌,如下:
鲍氏不动杆菌Acinetobacterbaumannii(n=17),弗罗因德(氏)枸橼酸杆菌Citrobacterfreundii(n=1),产气肠杆菌Enterobacteraerogenes(n=2),阴沟肠杆菌Enterobactercloacae(n=12),大肠杆菌Escherichiacoli(n=165),催产克雷白(氏)杆菌KlebsiellaOxytoca(n=1),臭鼻克雷白氏杆菌Klebsiellaozaenae(n=2),肺炎克雷伯氏菌 Klebsiellapneumoniae(n=55),摩根(氏)菌Morganellamorganii(n=1),奇异变形杆菌 Proteusmirabilis(n=1),雷氏普罗威登斯菌Providenciarettgeri(n=1),绿浓杆菌Pseudomonasaeruginosa(n=21),灵杆菌Serratiamarcescens(n=4)和念珠菌Candidaspecies(n=5)。
从ATCC或CDC获得的菌株是否含有mcr基因,在菌株说明书中都有详细的说明;而对于临床菌株,采用IlluminaMiSeq或HiSeq对菌株全基因组测序,再在全基因组序列的基础 上,采用基因从头组装技术来确定临床菌株中是否含有mcr基因,301份样本中,其中确定 的mcr阳性样本共15份。
提取这301份样本的DNA,采用本实时荧光定量PCR检测这301份样本mcr基因。结果见表3,其中15份阳性,与已知的阳性样本数一致,PCR对mcr基因的敏感性为100%, 特异性为100%,总体精度为100%。
表3本PCR对mcr基因精确度的检测结果
实施例10
核酸测定试剂盒的重复性分析
1、批内重复性
以美国临床和实验室标准协会(CLSI)的定性分析方法为指南检测本PCR实验的批内重 复性。准备含mcr基因浓度为108cfu/ml菌悬液,制备高中低三个浓度(浓度分别为107、105、 103cfu/ml)的菌悬液提取DNA备用。实时PCR分析本实时PCR检测的批内重复性,每个稀释度每次三个重复,计算得到的三个Ct值的平均值和标准差(SD),结果见表4,扩增曲线 见附图4。结果表明,PCR检测mcr基因批内重复性达到了100%。
表4本PCR检测mcr基因批内重复性结果
2、批间重复性
以美国临床和实验室标准协会(CLSI)的定性分析方法为指南检测本PCR实验的批间重 复性。准备含mcr基因的菌悬液,制备4个浓度的菌悬液提取DNA备用。每个浓度每次两个重复,连续做三天,则每个浓度得到6个数据。计算得到的6个Ct值的平均值和标准差(SD)。 结果见表5,扩增曲线见附图5,6和7。结果表明,PCR检测mcr基因批间重复性为95.8% (23/24)。
表5本PCR检测mcr基因批间重复性结果
实施例11
核酸测定试剂盒的线性分析
制备含mcr靶基因10cfu/ml到108cfu/ml的8个浓度的稀释液,提取各稀释液DNA备用。 运用本PCR检测对耐药基因mcr的线性度,线性度的扩增曲线见附图8,线性度的标准曲线 见附图9。
如图8、9所示,本PCR对mcr基因的线性度检测结果跨度超过七个对数单位。
实施12
本核酸测定试剂盒的特异性分析
为了研究本PCR的分析特异性,本实验分析了88株参考菌株的耐药性,其中包括了常 见的多重耐药革兰氏阴性菌,如鲍氏不动杆菌Acinetobacterbaumannii(n=14),产气肠杆菌 Enterobacteraerogenes(n=2),阴沟肠杆菌Enterobactercloacae(n=9),大肠杆菌 Escherichiacoli(n=15),奥克西托克雷白杆菌KlebsiellaOxytoca(n=1),臭鼻克雷白氏杆菌 Klebsiellaozaenae(n=2),肺炎克雷伯氏菌Klebsiellapneumoniae(n=23),摩根(氏)菌 Morganellamorganii(n=1),奇异变形杆菌Proteusmirabilis(n=1),雷氏普罗威登斯菌 Providenciarettgeri(n=1),铜绿假单胞菌Pseudomonasaeruginosa(n=12),粘质沙雷氏菌 Serratiamarcescens(n=2),念珠菌Candidaspecies(n=5)。
这88株菌株中,mcr-1阳性株2例,其余为耐mcr基因阴性菌株。
提取这88份样本的DNA,研究本实时PCR的特异性,结果扩增曲线如附图10所示,阳性结果为2株,与已知的一致,其余为耐药基因阴性菌株,本PCR正确检测所有的mcr靶 基因,无交叉反应。
对于干扰物质的研究中,本实验采用了高水平的人类血红蛋白和粪便标本进行了分析, 均不会干扰本PCR检测。
本研究中的PCR能够同时检测包括mcr-1、mcr-2高耐药基因,具有良好的灵敏度、精确 度和可重复性,这是目前其他的同类PCR试剂盒无法做到的。
虽然本发明已以较佳实施例公开如上,但其并非用以限定本发明,任何熟悉此技术的人, 在不脱离本发明的精神和范围内,都可做各种的改动与修饰,因此本发明的保护范围应该以 权利要求书所界定的为准。
SEQUENCE LISTING
<110> 北京紫萌医药科技有限公司
<120> 包含mcr基因的耐药菌的PCR检测试剂盒及其应用
<130> 3
<160> 3
<170> PatentIn version 3.3
<210> 1
<211> 18
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 1
ggcacatcga cggcgtat 18
<210> 2
<211> 22
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 2
ggtatttggc ggtatcgaca tc 22
<210> 3
<211> 17
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 3
gtgccgtgta tgttcag 17
Claims (10)
1.一种检测引物,其特征在于,所述引物包括序列如SEQ ID NO:1和SEQ ID NO:2的两条核苷酸序列。
2.一种含mcr基因耐药菌的检测试剂盒,其特征在于,所述检测试剂盒中包括权利要求1所述的检测引物。
3.根据权利要求2所述的检测试剂盒,其特征在于,所述检测试剂盒中还包括序列如SEQ ID NO:3所示的探针。
4.根据权利要求3所述的检测试剂盒,其特征在于,所述探针的一端标记有荧光报告基团,探针另一端标记有荧光淬灭基团。
5.根据权利要求4所述的检测试剂盒,其特征在于,所述荧光报告基团为FAM、VIC、ROX、Cy5、JOE或者Quasar705荧光基团中的任意一种;所述荧光淬灭基团为BHQ或者ECLIPSE系列。
6.根据权利要求2所述的检测试剂盒,其特征在于,所述检测试剂盒中还含有PCR MIX和H2O。
7.根据权利要求2所述的检测试剂盒,其特征在于,所述检测试剂盒中还包括PCR酶、阴性对照品及阳性对照品中的至少一种。
8.权利要求1所述的检测引物在制备包含mcr基因的耐药菌检测试剂中的应用。
9.一种含mcr基因耐药菌的检测方法,其特征在于,是利用权利要求1所述的引物、权利要求2-7任一所述的检测试剂盒或者权利要求8所述的检测试剂进行检测。
10.根据权利要求9所述的检测方法,其特征在于,所述耐药菌为以下任意一种或多种:所述耐药菌为以下任意一种或多种:鲍氏不动杆菌Acinetobacterbaumannii,产气肠杆菌Enterobacteraerogenes,阴沟肠杆菌Enterobactercloacae,大肠杆菌Escherichiacoli,奥克西托克雷白杆菌KlebsiellaOxytoca,臭鼻克雷白氏杆菌Klebsiellaozaenae,肺炎克雷伯氏菌Klebsiellapneumoniae,摩根(氏)菌Morganellamorganii,奇异变形杆菌Proteusmirabilis,雷氏普罗威登斯菌Providenciarettgeri,铜绿假单胞菌Pseudomonasaeruginosa,粘质沙雷氏菌Serratiamarcescens,念珠菌Candidaspecies。
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Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN109880896A (zh) * | 2019-03-13 | 2019-06-14 | 中山大学 | 一种用于快速鉴别细菌多粘菌素耐药基因mcr具体分型的多重LAMP试剂盒和检测方法 |
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CN112063735A (zh) * | 2020-09-28 | 2020-12-11 | 山东省兽药质量检验所(山东省畜产品质量检测中心) | 一种用于检测多粘菌素耐药基因mcr-5的引物、探针及应用 |
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CN117417989A (zh) * | 2023-11-17 | 2024-01-19 | 河北省畜牧兽医研究所 | 一种用于检测耐药基因的多重荧光定量pcr试剂盒和方法 |
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2017
- 2017-08-15 CN CN201710695726.5A patent/CN107523619A/zh not_active Withdrawn
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