具体实施方式
实施例1 荧光强度检测仪
请参见图1-7;一种荧光强度检测仪,包括:台架1、激发光源2、八孔板3、荧光检测装置4;
其中所述的八孔板3上设有微孔31,微孔31为锥形圆柱凹槽,呈圆周排列在八孔板3上;
所述的台架1包括底板14、载物台13、可调支架12、光源固定板11;
所述的载物台13、设置在底板14上方,可调支架12固定在载物台13上,光源固定板11设置载物台在上方,固定在可调支架12上;
所输的可调支架12可以调节载物台13与光源固定板11之间的高度;
所述的载物台13、光源固定板11上均设有与八孔板3位置相对应的通孔;
所述的激发光源2固定在光源固定板11的通孔上;
所述的荧光检测装置4固定在载物台13上的通孔内;
所述的荧光检测装置4包括荧光检测探头41、凸透镜42、锥孔43;
荧光检测装置4上部设有与微孔31外形相对应的锥孔43,锥孔43下部设有凸透镜42,凸透镜42下部设有荧光检测探头41;
所述的荧光检测探头41设置在凸透镜42焦点处;
荧光检测探头41的输出光纤与荧光光谱仪5连接,荧光光谱仪5与电脑6连接;
所述的微孔31为锥形圆柱凹槽,上底面直径为6.8mm,下底面直径为6.21mm,高11.7mm。
使用时,将待测液体注入八孔板3的微孔31中,液面低于微孔31,调节可调支架12,升高激发光源2,将八孔板3放在荧光检测装置4上,使微孔31完全进入锥孔43内,节可调支架12,降低激发光源2,使激发光源2的探头位于待测液体上表面;打开激发光源2,待测液体发出的荧光经荧光检测探头42传递至荧光光谱仪5,最后输送至电脑6。
实施例2 量子点和抗体的偶联
1)量子点选择:ZnSe/ZnS(粒径 4nm,紫色)、CdS/ZnS(粒径 8nm,蓝色)、CdSe/ZnS(粒径 10nm,青色)、CdSe/ZnS(粒径 12nm,绿色)、CdSe/ZnS(粒径 5nm,黄色)CdSe/ZnS(粒径 6nm,橙色)、CdSe/ZnS(粒径 7nm,红色)(苏州星烁纳米科技有限公司提供)
2)量子点的活化:
取1mLPBS缓冲溶液,加入量子点ZnSe/ZnS 100μL,加入EDC20μL,加入NHS20μL,涡旋,放于避光处活化30min;
3)量子点与BSA全抗原的偶联:
加入20μLBSA全抗原,30℃,10rpm摇床避光偶联2h;
4)封闭:
加入50μL10%BSA封闭30min;
5)终洗:
15000rpm 离心30min,收集沉淀,向沉淀中加入500μL PBS缓冲溶液后重悬回收,4℃避光备用。
实施例3基底的包被与检测
1)八孔板处理:
在紫外灯下,用254nm波长的紫外光照射八孔板1h;
2)包被:
三聚氰胺单抗包被于八孔板的微孔中,用0.01 M,pH7.4 PBS 缓冲液将三聚氰胺单抗稀释为10μg/mL,每孔加入200μL,4°C包被过夜;
3) 纯化:
由于量子点-BSA全抗原的粒径要比游离的量子点大很多,所以截留分子质量为100000的超滤膜可以使游离的量子点通过,而截留下ZnSe/ZnS -三聚氰胺-BSA全抗原的量子点,加入100μL PBS缓冲溶液后重悬回收,4℃避光备用;
4)封闭:
加入200 μL 5%BSA封闭微孔中未被包被的位点,防止非特异性吸附,37°C孵育2h后取出;PBS洗涤除去多余的BSA溶液,洗涤3次,每次3分钟,甩干,4℃保存。
实施例4 应用荧光强度检测仪检测三聚氰胺
1)应用荧光强度检测仪检测三聚氰胺的方法
加入100μL待测液到采用实施例3中的方法制备的三聚氰胺单抗基底上,37°C下孵育2h,每孔加入200μL由实施例2提供的方法制备的浓度为200ng/mL的ZnSe/ZnS-三聚氰胺-BSA全抗原偶联量子点,经PBS洗涤离心3次,去除未与基底结合的量子点-三聚氰胺-BSA全抗原后每个微孔中加入0.01M,pH7.4的PBS缓冲液200μL,在370nm激发波长下用荧光强度检测仪检测405nm时的发射峰强度。
2)检测灵敏度的确定
采用上述检测方法,分别在基底中加入浓度为0μg/L、0.1μg/L、0.2μg/L、0.3μg/L、0.4μg/L、0.5μg/L、0.6μg/L的三聚氰胺溶液及空白溶液,在370nm激发波长下用荧光强度检测仪检测405nm时的发射峰强度。测试结果如图8所示,检出限为0.1μg/L。
3)特异性试验
根据实施例2和实施例3制备好ZnSe/ZnS -三聚氰胺-BSA全抗原和三聚氰胺单抗基底,将三聚氰胺、伏马毒素B1、T-2毒素、黄曲霉毒素B1、赭曲霉毒素A、呕吐毒素和玉米赤霉烯酮分别配成系列浓度采用上述的检测方法进行特异性交叉试验,同时空白对照。计算各竞争物的 IC50。计算公式为:交叉反应率 (%)=[IC50(三聚氰胺)/IC50(待测药物 )]×100。
测定及计算结果如表 1 所示,结果表明该方法异性较强,只对三聚氰胺发生反应,而对其他毒性化合物没有交叉反应。
4)待测液的制备
用粉碎机粉碎待测谷物,粒度小于2mm。称取5g试样(精确到0.01 g)加入不同浓度的三聚氰胺水平的标准品,置于具塞塑料离心管中,加人PBS溶液25 mL,超声振荡15 min后4000 r/min离心10 min。取上层17. 5 mL PBS溶液于干净的容器,通过微纤维滤纸过滤,将滤液收集于干净的容器(提取液A)。向下层固体样品中加人17. 5 mL甲醇,超声振荡15 min后4 000 r/min离心10 min,取上层溶液10 mL,用90 mL PBS溶液稀释后通过微纤维滤纸过滤,将滤液收集于干净的容器(提取液B)。
将免疫亲和柱连接于10mL玻璃针筒下,准确移取50mL提取液B过免疫亲和柱,以每秒1~2滴的流速全部通过亲和柱,直至空气流经亲和柱;将20mLPBS溶液以每秒1~2滴的流速通过亲和柱,直至空气流经亲和柱;准确移取5mLA以每秒1~2滴的流速全部通过亲和柱,直至空气流经亲和柱;将20mL超纯水以每秒1~2滴的流速淋洗柱子,直至空气流经亲和柱;弃去全部流出液。将1.5mL甲醇以每秒1滴的流速洗脱亲和柱,将洗脱液收集于玻璃试管中,当甲醇大部分过柱后,不要完全过柱,停止加压,静止5min,再将1.5mL甲醇以每秒1滴的流速洗脱亲和柱,将全部洗脱液收集于同一玻璃试管中,待测。
5)准确度和精密度的检测
以重复测定某一浓度样品的检测结果变异系数(CV%)作为精密度评价指标。以回收率作为准确度评价指标。变异系数 CV% 计算公式为:CV% =SD/ X ×100% ;其中 SD 为标准偏差,X 为测定数据的平均值。回收率计算公式为:回收率(%)= 实际测定值/理论值×100%。其中理论值为模拟样品的添加浓度。
采用上述待测液的制备方法,对玉米样品进行三聚氰胺阳性添加,三聚氰胺分别添加0.1μg/kg、0.2μg/kg、0.5μg/kg三个浓度水平的样品,每个添加水平做4个平行,选取PBSS作为空白对照1,再选取未添加的玉米样品做空白对照2,利用实施例1中的荧光强度检测仪,参照实施例4中1)的试验步骤进行添加回收测定。样品的平均回收率及精密度结果见表2。
实验结果表明:平均回收率在90.6~91.5之间。变异系数均小于11%,说明方法精密度和准确度好,检测效果好。
实施例5应用荧光强度检测仪检测伏马毒素B1
1)应用荧光强度检测仪检测伏马毒素B1的方法
加入100μL待测液到采用实施例3中的方法制备的伏马毒素B1单抗基底上,37°C下孵育2h,每孔加入200μL由实施例2提供的方法制备的浓度为200ng/mL的ZnSe/ZnS-伏马毒素B1-BSA全抗原偶联量子点,经PBS洗涤离心3次,去除未与基底结合的量子点-伏马毒素B1-BSA全抗原后,每个微孔中加入0.01M,pH7.4的PBS缓冲液200μL,在370nm激发波长下用荧光强度检测仪检测450nm时的发射峰强度。
2)检测灵敏度的确定
采用上述检测方法,分别在基底中加入浓度为0μg/L、0.25μg/L、0.3μg/L、0.35μg/L、0.4μg/L、0.45μg/L、0.5μg/L的伏马毒素B1溶液及空白溶液,在370nm激发波长下用荧光强度检测仪检测450nm时的发射峰强度。测试结果如图9所示,检出限为0.25μg/L。
3)交叉反应试验
根据实施例2和实施例3制备好CdS/ZnS-伏马毒素B1-BSA全抗原和伏马毒素B1单抗基底,将三聚氰胺、伏马毒素B1、T-2毒素、黄曲霉毒素B1、赭曲霉毒素A、呕吐毒素和玉米赤霉烯酮分别配成系列浓度采用上述的检测方法进行特异性交叉试验,同时空白对照。计算各竞争物的 IC50。计算公式为:交叉反应率 (%) = [IC50(伏马毒素B1)/IC50(待测药物 )]×100。
测定及计算结果如表3所示,结果表明该方法异性较强,只对伏马毒素B1发生反应,而对其他毒性化合物没有交叉反应。
4)待测液的制备
用粉碎机粉碎待测谷物,粒度小于2mm。称取5g试样(精确到0.01 g)加入不同浓度的伏马毒B1水平的标准品,置于具塞塑料离心管中,加人PBS溶液25 mL,超声振荡15 min后4000 r/min离心10 min。取上层17. 5 mL PBS溶液于干净的容器,通过微纤维滤纸过滤,将滤液收集于干净的容器(提取液A)。向下层固体样品中加人17. 5 mL甲醇,超声振荡15 min后4 000 r/min离心10 min,取上层溶液10 mL,用90 mL PBS溶液稀释后通过微纤维滤纸过滤,将滤液收集于干净的容器(提取液B)。
将免疫亲和柱连接于I0mL玻璃针筒下,准确移取50mL提取液B过免疫亲和柱,以每秒1~2滴的流速全部通过亲和柱,直至空气流经亲和柱;将20mLPBS溶液以每秒1~2滴的流速通过亲和柱,直至空气流经亲和柱;准确移取5mLA以每秒1~2滴的流速全部通过亲和柱,直至空气流经亲和柱;将20mL超纯水以每秒1~2滴的流速淋洗柱子,直至空气流经亲和柱;弃去全部流出液。将1.5mL甲醇以每秒1滴的流速洗脱亲和柱,将洗脱液收集于玻璃试管中,当甲醇大部分过柱后,不要完全过柱,停止加压,静止5min,再将1.5mL甲醇以每秒1滴的流速洗脱亲和柱,将全部洗脱液收集于同一玻璃试管中,待测。
5)准确度和精密度的检测
以重复测定某一浓度样品的检测结果变异系数(CV%)作为精密度评价指标。以回收率作为准确度评价指标。变异系数 CV% 计算公式为:CV% =SD/ X ×100% ;其中 SD 为标准偏差,X 为测定数据的平均值。回收率计算公式为:回收率(%)= 实际测定值/理论值×100%。其中理论值为模拟样品的添加浓度。
采用上述待测液的制备方法,对玉米样品进行伏马毒素B1阳性添加,伏马毒素B1分别添加0.25μg/kg、0.35μg/kg、0.45μg/kg三个浓度水平的样品,每个添加水平做4个平行,选取PBS作为空白对照1,再选取未添加的玉米样品做空白对照2,利用实施例1中的荧光强度检测仪,参照实施例5中1)的试验步骤进行添加回收测定。样品的平均回收率及精密度结果见表4。
实验结果表明:平均回收率在87.7~90.5之间。变异系数均小于11%,说明方法精密度和准确度好,检测效果好。
实施例6应用荧光强度检测仪检测T-2毒素
1)应用荧光强度检测仪检测T-2毒素的方法
加入100μL待测液到采用实施例3中的方法制备的T-2毒素单抗基底上,37°C下孵育2h,每孔加入加入200μL浓度为200ng/mL的ZnSe/ZnS-T-2毒素-BSA全抗原偶联量子点,经PBS洗涤离心3次,去除未与基底结合的量子点-T-2毒素-BSA全抗原后每个微孔中加入0.01M,pH7.4的PBS缓冲液200μL,在370nm激发波长下用荧光强度检测仪检测500nm时的发射峰强度。
2)检测灵敏度的确定
采用上述检测方法,分别在基底中加入浓度为0μg/L、0.25μg/L、0.3μg/L、0.35μg/L、0.4μg/L、0.45μg/L、0.5μg/L的T-2毒素溶液及空白溶液,在370nm激发波长下用荧光强度检测仪检测500nm时的发射峰强度。测试结果如图10所示,检出限为0.25μg/L。
3)交叉反应试验
根据实施例2和实施例3制备CdSe/ZnS-T-2毒素-BSA全抗原和-T-2毒素单抗基底,将三聚氰胺、伏马毒素B1、T-2毒素、黄曲霉毒素B1、赭曲霉毒素A、呕吐毒素和玉米赤霉烯酮分别配成系列浓度采用上述的检测方法进行特异性交叉试验,同时空白对照。计算各竞争物的 IC50。计算公式为:交叉反应率 (%) = [IC50(T-2毒素)/IC50( 待测药物 )]×100。
测定及计算结果如表5所示,结果表明该方法异性较强,只对T-2毒素发生反应,而对其他毒性化合物没有交叉反应。
4)待测液的制备
用粉碎机粉碎待测谷物,粒度小于2mm。称取5g试样(精确到0.01 g)加入不同浓度的三聚氰胺水平的标准品,置于具塞塑料离心管中,加人PBS溶液25 mL,超声振荡15 min后4000 r/min离心10 min。取上层17. 5 mL PBS溶液于干净的容器,通过微纤维滤纸过滤,将滤液收集于干净的容器(提取液A)。向下层固体样品中加人17. 5 mL甲醇,超声振荡15 min后4 000 r/min离心10 min,取上层溶液10 mL,用90 mL PBS溶液稀释后通过微纤维滤纸过滤,将滤液收集于干净的容器(提取液B)。
将免疫亲和柱连接于10mL玻璃针筒下,准确移取50mL提取液B过免疫亲和柱,以每秒1~2滴的流速全部通过亲和柱,直至空气流经亲和柱;将20mLPBS溶液以每秒1~2滴的流速通过亲和柱,直至空气流经亲和柱;准确移取5mLA以每秒1~2滴的流速全部通过亲和柱,直至空气流经亲和柱;将20mL超纯水以每秒1~2滴的流速淋洗柱子,直至空气流经亲和柱;弃去全部流出液。将1.5mL甲醇以每秒1滴的流速洗脱亲和柱,将洗脱液收集于玻璃试管中,当甲醇大部分过柱后,不要完全过柱,停止加压,静止5min,再将1.5mL甲醇以每秒1滴的流速洗脱亲和柱,将全部洗脱液收集于同一玻璃试管中,待测。
5)准确度和精密度的检测
以重复测定某一浓度样品的检测结果变异系数(CV%)作为精密度评价指标。以回收率作为准确度评价指标。变异系数 CV% 计算公式为:CV% =SD/ X ×100% ;其中 SD 为标准偏差,X 为测定数据的平均值。回收率计算公式为:回收率(%)= 实际测定值/理论值×100%。其中理论值为模拟样品的添加浓度。
采用上述待测液的制备方法,对玉米样品进行T-2毒素阳性添加,T-2毒素分别添加0.25μg/kg、0.35μg/kg、0.45μg/kg三个浓度水平的样品,每个添加水平做4个平行,选取PBS作为空白对照1,再选取未添加的玉米样品做空白对照2,利用实施例1中的荧光强度检测仪,参照实施例6中1)的试验步骤进行添加回收测定。样品的平均回收率及精密度结果见表6。
实验结果表明:平均回收率在88.2~89.6之间。变异系数均小于11%,说明方法精密度和准确度好,检测效果好。
实施例7应用荧光强度检测仪检测黄曲霉毒素B1
1)应用荧光强度检测仪检测黄曲霉毒素B1的方法
加入100μL待测液到采用实施例3中的方法制备的黄曲霉毒素B1单抗基底上,37°C下孵育2h,每孔加入200μL由实施例2提供的方法制备的浓度为200ng/mL的ZnSe/ZnS-黄曲霉毒素B1-BSA全抗原偶联量子点,经PBS洗涤离心3次,去除未与基底结合的量子点-黄曲霉毒素B1-BSA全抗原后每个微孔中加入0.01M,pH7.4的PBS缓冲液200μL,在370nm激发波长下用荧光强度检测仪检测520nm时的发射峰强度。
2)检测灵敏度的确定
采用上述检测方法,分别在基底中加入浓度为0μg/L、0.3μg/L、0.35μg/L、0.4μg/L、0.45μg/L、0.5μg/L、0.55μg/L的黄曲霉毒素B1溶液及空白溶液,在370nm激发波长下用荧光强度检测仪检测520nm时的发射峰强度。测试结果如图11所示,检出限为0.3μg/L。
3)交叉反应试验
根据实施例2和实施例3的方法制备好CdSe/ZnS-黄曲霉毒素B1-BSA全抗原和-黄曲霉毒素B1单抗基底,将三聚氰胺、伏马毒素B1、T-2毒素、黄曲霉毒素B1、赭曲霉毒素A、呕吐毒素和玉米赤霉烯酮分别配成系列浓度采用上述的检测方法进行特异性交叉试验,同时空白对照。计算各竞争物的 IC50。计算公式为:交叉反应率 (%) = [IC50(黄曲霉毒素B1)/IC50( 待测药物 )]×100。
测定及计算结果如表7所示,结果表明该方法异性较强,只对黄曲霉毒素B1发生反应,而对其他毒性化合物没有交叉反应。
4)待测液的制备
用粉碎机粉碎待测谷物,粒度小于2mm。称取5g试样(精确到0.01 g)加入不同浓度的三聚氰胺水平的标准品,置于具塞塑料离心管中,加人PBS溶液25 mL,超声振荡15 min后4000 r/min离心10 min。取上层17. 5 mL PBS溶液于干净的容器,通过微纤维滤纸过滤,将滤液收集于干净的容器(提取液A)。向下层固体样品中加人17. 5 mL甲醇,超声振荡15 min后4 000 r/min离心10 min,取上层溶液10 mL,用90 mL PBS溶液稀释后通过微纤维滤纸过滤,将滤液收集于干净的容器(提取液B)。
将免疫亲和柱连接于10mL玻璃针筒下,准确移取50mL提取液B过免疫亲和柱,以每秒1~2滴的流速全部通过亲和柱,直至空气流经亲和柱;将20mLPBS溶液以每秒1~2滴的流速通过亲和柱,直至空气流经亲和柱;准确移取5mLA以每秒1~2滴的流速全部通过亲和柱,直至空气流经亲和柱;将20mL超纯水以每秒1~2滴的流速淋洗柱子,直至空气流经亲和柱;弃去全部流出液。将1.5mL甲醇以每秒1滴的流速洗脱亲和柱,将洗脱液收集于玻璃试管中,当甲醇大部分过柱后,不要完全过柱,停止加压,静止5min,再将1.5mL甲醇以每秒1滴的流速洗脱亲和柱,将全部洗脱液收集于同一玻璃试管中,待测。
5)准确度和精密度的检测
以重复测定某一浓度样品的检测结果变异系数(CV%)作为精密度评价指标。以回收率作为准确度评价指标。变异系数 CV% 计算公式为:CV% =SD/ X ×100% ;其中 SD 为标准偏差,X 为测定数据的平均值。回收率计算公式为:回收率(%)= 实际测定值/理论值×100%。其中理论值为模拟样品的添加浓度。
采用上述待测液的制备方法,对玉米样品进行黄曲霉毒素B1阳性添加,黄曲霉毒素B1分别添加0.30μg/kg、0.40μg/kg、0.50μg/kg三个浓度水平的样品,每个添加水平做4个平行,选取PBS作为空白对照1,再选取未添加的玉米样品做空白对照2,利用实施例1中的荧光强度检测仪,参照实施例7中1)的试验步骤进行添加回收测定。样品的平均回收率及精密度结果见表8。
实验结果表明:平均回收率在91.2~94.7之间。变异系数均小于9%,说明方法精密度和准确度好,检测效果好。
实施例8应用荧光强度检测仪检测赭曲霉毒素A
1)应用荧光强度检测仪检测赭曲霉毒素A的方法
加入100μL待测液到采用实施例3中的方法制备的赭曲霉毒素A单抗基底上,37°C下孵育2h,每孔加入200μL由实施例2提供的方法制备的浓度为200ng/mL的ZnSe/ZnS-赭曲霉毒素A-BSA全抗原偶联量子点,经PBS洗涤离心3次,去除未与基底结合的量子点-赭曲霉毒素A-BSA全抗原后每个微孔中加入0.01M,pH7.4的PBS缓冲液200μL,在370nm激发波长下用荧光强度检测仪检测550nm时的发射峰强度。
2)检测灵敏度的确定
采用上述检测方法,分别在基底中加入浓度为0μg/L、0.2μg/L、0.25μg/L、0.3μg/L、0.35μg/L、0.4μg/L、0.45μg/L的赭曲霉毒素A溶液及空白溶液,在370nm激发波长下用荧光强度检测仪检测550nm时的发射峰强度。测试结果如图12所示,检出限为 0.2μg/L。
3)交叉反应试验
根据实施例2和实施例3制备好CdSe/ZnS-赭曲霉毒素A-BSA全抗原和-赭曲霉毒素A单抗基底,将三聚氰胺、伏马毒素B1、T-2毒素、黄曲霉毒素B1、赭曲霉毒素A、呕吐毒素和玉米赤霉烯酮分别配成系列浓度采用上述的检测方法进行特异性交叉试验,同时空白对照。计算各竞争物的 IC50。计算公式为:交叉反应率 (%) = [IC50(赭曲霉毒素A)/IC50( 待测药物 )]×100。
测定及计算结果如表9所示,结果表明该方法异性较强,只对赭曲霉毒素A发生反应,而对其他毒性化合物没有交叉反应。
4)待测液的制备
用粉碎机粉碎待测谷物,粒度小于2mm。称取5g试样(精确到0.01 g)加入不同浓度的三聚氰胺水平的标准品,置于具塞塑料离心管中,加人PBS溶液25 mL,超声振荡15 min后4000 r/min离心10 min。取上层17. 5 mL PBS溶液于干净的容器,通过微纤维滤纸过滤,将滤液收集于干净的容器(提取液A)。向下层固体样品中加人17. 5 mL甲醇,超声振荡15 min后4 000 r/min离心10 min,取上层溶液10 mL,用90 mL PBS溶液稀释后通过微纤维滤纸过滤,将滤液收集于干净的容器(提取液B)。
将免疫亲和柱连接于10mL玻璃针筒下,准确移取50mL提取液B过免疫亲和柱,以每秒1~2滴的流速全部通过亲和柱,直至空气流经亲和柱;将20mLPBS溶液以每秒1~2滴的流速通过亲和柱,直至空气流经亲和柱;准确移取5mLA以每秒1~2滴的流速全部通过亲和柱,直至空气流经亲和柱;将20mL超纯水以每秒1~2滴的流速淋洗柱子,直至空气流经亲和柱;弃去全部流出液。将1.5mL甲醇以每秒1滴的流速洗脱亲和柱,将洗脱液收集于玻璃试管中,当甲醇大部分过柱后,不要完全过柱,停止加压,静止5min,再将1.5mL甲醇以每秒1滴的流速洗脱亲和柱,将全部洗脱液收集于同一玻璃试管中,待测。
5)准确度和精密度的检测
以重复测定某一浓度样品的检测结果变异系数(CV%)作为精密度评价指标。以回收率作为准确度评价指标。变异系数 CV% 计算公式为:CV% =SD/ X ×100% ;其中 SD 为标准偏差,X 为测定数据的平均值。回收率计算公式为:回收率(%)= 实际测定值/理论值×100%。其中理论值为模拟样品的添加浓度。
采用上述待测液的制备方法,对玉米样品进行赭曲霉毒素A阳性添加,赭曲霉毒素A分别添加0.20μg/kg、0.30μg/kg、0.40μg/kg三个浓度水平的样品,每个添加水平做4个平行,选取PBSS作为空白对照1,再选取未添加的玉米样品做空白对照2,利用实施例1中的荧光强度检测仪,参照实施例8中1)的试验步骤进行添加回收测定。样品的平均回收率及精密度结果见表10。
实验结果表明:平均回收率在83.3~89.3之间。变异系数均小于10%,说明方法精密度和准确度好,检测效果好。
实施例9 应用荧光强度检测仪检测呕吐毒素
1)应用荧光强度检测仪检测呕吐毒素的方法
加入100μL待测液到采用实施例3中的方法制备的呕吐毒素单抗基底上,37°C下孵育2h,每孔加入200μL由实施例2提供的方法制备的浓度为200ng/mL的ZnSe/ZnS-呕吐毒素-BSA全抗原偶联量子点,经PBS洗涤离心3次,去除未与基底结合的量子点-呕吐毒素-BSA全抗原后每个微孔中加入0.01M,pH7.4的PBS缓冲液200μL,在370nm激发波长下用荧光强度检测仪检测580nm时的发射峰强度。
2)检测灵敏度的确定
采用上述检测方法,分别在基底中加入浓度为0μg/L、0.35μg/L、0.4μg/L、0.45μg/L、0.5μg/L、0.55μg/L、0.6μg/L的呕吐毒素溶液及空白溶液,在370nm激发波长下用荧光强度检测仪检测580nm时的发射峰强度。测试结果如图13所示,检出限为0.35μg/L。
3)交叉反应试验
根据实施例2和实施例3制备好CdSe/ZnS-呕吐毒素-BSA全抗原和呕吐毒素单抗基底,将三聚氰胺、伏马毒素B1、T-2毒素、黄曲霉毒素B1、赭曲霉毒素A、呕吐毒素和玉米赤霉烯酮分别配成系列浓度采用上述的检测方法进行特异性交叉试验,同时空白对照。计算各竞争物的 IC50。计算公式为:交叉反应率 (%) = [IC50(呕吐毒素)/IC50( 待测药物 )]×100。
测定及计算结果如表11所示,结果表明该方法异性较强,只对呕吐毒素发生反应,而对其他毒性化合物没有交叉反应。
4)待测液的制备
用粉碎机粉碎待测谷物,粒度小于2mm。称取5g试样(精确到0.01 g)加入不同浓度的三聚氰胺水平的标准品,置于具塞塑料离心管中,加人PBS溶液25 mL,超声振荡15 min后4000 r/min离心10 min。取上层17. 5 mL PBSS溶液于干净的容器,通过微纤维滤纸过滤,将滤液收集于干净的容器(提取液A)。向下层固体样品中加人17. 5 mL甲醇,超声振荡15min后4 000 r/min离心10 min,取上层溶液10 mL,用90 mL PBS溶液稀释后通过微纤维滤纸过滤,将滤液收集于干净的容器(提取液B)。
将免疫亲和柱连接于10mL玻璃针筒下,准确移取50mL提取液B过免疫亲和柱,以每秒1~2滴的流速全部通过亲和柱,直至空气流经亲和柱;将20mLPBS溶液以每秒1~2滴的流速通过亲和柱,直至空气流经亲和柱;准确移取5mLA以每秒1~2滴的流速全部通过亲和柱,直至空气流经亲和柱;将20mL超纯水以每秒1~2滴的流速淋洗柱子,直至空气流经亲和柱;弃去全部流出液。将1.5mL甲醇以每秒1滴的流速洗脱亲和柱,将洗脱液收集于玻璃试管中,当甲醇大部分过柱后,不要完全过柱,停止加压,静止5min,再将1.5mL甲醇以每秒1滴的流速洗脱亲和柱,将全部洗脱液收集于同一玻璃试管中,待测。
5)准确度和精密度的检测
以重复测定某一浓度样品的检测结果变异系数(CV%)作为精密度评价指标。以回收率作为准确度评价指标。变异系数 CV% 计算公式为:CV% =SD/ X ×100% ;其中 SD 为标准偏差,X 为测定数据的平均值。回收率计算公式为:回收率(%)= 实际测定值/理论值×100%。其中理论值为模拟样品的添加浓度。
采用上述待测液的制备方法,对玉米样品进行呕吐毒素阳性添加,呕吐毒素分别添加0.35μg/kg、0.45μg/kg、0.55μg/kg三个浓度水平的样品,每个添加水平做4个平行,选取PBS作为空白对照1,再选取未添加的玉米样品做空白对照2,利用实施例1中的荧光强度检测仪,参照实施例9中1)的试验步骤进行添加回收测定。样品的平均回收率及精密度结果见表12。
实验结果表明:平均回收率在83.5~91.5之间。变异系数均小于10%,说明方法精密度和准确度好,检测效果好。
实施例10 应用荧光强度检测仪检测玉米赤霉烯酮
1)应用荧光强度检测仪检测玉米赤霉烯酮的方法
加入100μL待测液到采用实施例3中的方法制备的玉米赤霉烯酮单抗基底上,37°C下孵育2h,每孔加入200μL由实施例2提供的方法制备的浓度为200ng/mL的ZnSe/ZnS-玉米赤霉烯酮-BSA全抗原偶联量子点,经PBSST洗涤离心3次去除未与基底结合的量子点-玉米赤霉烯酮-BSA全抗原后,每个微孔中加入0.01M,pH7.4的PBS缓冲液200μL,在370nm激发波长下用荧光强度检测仪检测620nm时的发射峰强度。
2)检测灵敏度的确定
采用上述检测方法,分别在基底中加入浓度为0μg/L、0.35μg/L、0.4μg/L、0.45μg/L、0.5μg/L、0.55μg/L、0.6μg/L的玉米赤霉烯酮溶液及空白溶液,在370nm激发波长下用荧光强度检测仪检测620nm时的发射峰强度。测试结果如图14所示,检出限为0.35μg/L。
3)交叉反应试验
根据实施例2和实施例3制备好CdSe/ZnS-玉米赤霉烯酮-BSA全抗原和玉米赤霉烯酮单抗基底,将三聚氰胺、伏马毒素B1、T-2毒素、黄曲霉毒素B1、赭曲霉毒素A、呕吐毒素和玉米赤霉烯酮分别配成系列浓度采用上述的检测方法进行特异性交叉试验,同时空白对照。计算各竞争物的 IC50。计算公式为:交叉反应率 (%) = [IC50(玉米赤酮)/IC50( 待测药物 )]×100。测定及计算结果如表13所示,结果表明该方法异性较强,只对玉米赤霉烯酮发生反应,而对其他毒性化合物没有交叉反应。
4)待测液的制备
用粉碎机粉碎待测谷物,粒度小于2mm。称取5g试样(精确到0.01 g)加入不同浓度的三聚氰胺水平的标准品,置于具塞塑料离心管中,加人PBS溶液25 mL,超声振荡15 min后4000 r/min离心10 min。取上层17. 5 mL PBS溶液于干净的容器,通过微纤维滤纸过滤,将滤液收集于干净的容器(提取液A)。向下层固体样品中加人17. 5 mL甲醇,超声振荡15 min后4 000 r/min离心10 min,取上层溶液10 mL,用90 mL PBS溶液稀释后通过微纤维滤纸过滤,将滤液收集于干净的容器(提取液B)。
将免疫亲和柱连接于10mL玻璃针筒下,准确移取50mL提取液B过免疫亲和柱,以每秒1~2滴的流速全部通过亲和柱,直至空气流经亲和柱;将20mLPBS溶液以每秒1~2滴的流速通过亲和柱,直至空气流经亲和柱;准确移取5mLA以每秒1~2滴的流速全部通过亲和柱,直至空气流经亲和柱;将20mL超纯水以每秒1~2滴的流速淋洗柱子,直至空气流经亲和柱;弃去全部流出液。将1.5mL甲醇以每秒1滴的流速洗脱亲和柱,将洗脱液收集于玻璃试管中,当甲醇大部分过柱后,不要完全过柱,停止加压,静止5min,再将1.5mL甲醇以每秒1滴的流速洗脱亲和柱,将全部洗脱液收集于同一玻璃试管中,待测。
5)准确度和精密度的检测
以重复测定某一浓度样品的检测结果变异系数(CV%)作为精密度评价指标。以回收率作为准确度评价指标。变异系数 CV% 计算公式为:CV% =SD/ X ×100% ;其中 SD 为标准偏差,X 为测定数据的平均值。回收率计算公式为:回收率(%)= 实际测定值/理论值×100%。其中理论值为模拟样品的添加浓度。
采用上述待测液的制备方法,对玉米样品进行玉米赤霉烯酮阳性添加,玉米赤霉烯酮分别添加0.35μg/kg、0.45μg/kg、0.55μg/kg三个浓度水平的样品,每个添加水平做4个平行,选取PBSS作为空白对照1,再选取未添加的玉米样品做空白对照2,利用实施例1中的荧光强度检测仪,参照实施例10中1)的试验步骤进行添加回收测定。样品的平均回收率及精密度结果见表14。
实验结果表明:平均回收率在90.2~91.4之间。变异系数均小于10%,说明方法精密度和准确度好,检测效果好。
实施例11玉米中添加七种有毒物质的平均回收率检测
用粉碎机粉碎待测玉米,粒度小于2mm。称取5g试样(精确到0.01 g)一次加入0.1μg/kg的三聚氰胺标准品、0.3μg/kg伏马毒素B1标准品、0.3μg/kgT-2毒素标准品、0.4μg/kg黄曲霉毒素B1标准品、0.4μg/kg赭曲霉毒素A标准品、0.4μg/kg呕吐毒素标准品、04μg/kg玉米赤霉烯酮标准品,置于具塞塑料离心管中,加人PBS溶液25 mL,超声振荡15 min后4000r/min离心10 min。取上层17. 5 mL PBS溶液于干净的容器,通过微纤维滤纸过滤,将滤液收集于干净的容器(提取液A)。向下层固体样品中加人17. 5 mL甲醇,超声振荡15 min后4000 r/min离心10 min,取上层溶液10 mL,用90 mL PBSS溶液稀释后通过微纤维滤纸过滤,将滤液收集于干净的容器(提取液B)。
将免疫亲和柱连接于10mL玻璃针筒下,准确移取50mL提取液B过免疫亲和柱,以每秒1~2滴的流速全部通过亲和柱,直至空气流经亲和柱;将20mLPBS溶液以每秒1~2滴的流速通过亲和柱,直至空气流经亲和柱;准确移取5mLA以每秒1~2滴的流速全部通过亲和柱,直至空气流经亲和柱;将20mL超纯水以每秒1~2滴的流速淋洗柱子,直至空气流经亲和柱;弃去全部流出液。将1.5mL甲醇以每秒1滴的流速洗脱亲和柱,将洗脱液收集于玻璃试管中,当甲醇大部分过柱后,不要完全过柱,停止加压,静止5min,再将1.5mL甲醇以每秒1滴的流速洗脱亲和柱,将全部洗脱液收集于同一玻璃试管中,待测。
采用实施例2和实施例3的方法,制备各有毒物质的多克隆抗体偶联物、并在八孔板上制备各自单抗基底。选取未添加的玉米样品做空白对照,利用实施例1中的荧光强度检测仪,在370nm激发波长下用荧光强度检测仪检测相应的发射峰强度。经计算得到平均回收率如表15所示。从表15中可以看出7种有毒物质的平均回收率,均在实施例4~10检测的平均回收率范围内,因此,利用实施例1中的荧光强度检测仪同时检测7种有毒物质时,各检测物彼此并不干扰,准确度好。
实施例12玉米中七种有毒物质的检测
用粉碎机粉碎待测玉米,粒度小于2m。称取5g试样,参照实施例11的提取方法提取,将全部洗脱液收集于同一玻璃试管中,待测。
采用实施例2和实施例3的方法,制备各有毒物质的多克隆抗体偶联物、并在八孔板上制备各自单抗基底。选取PBS缓冲液做空白对照,采用实施例1中的荧光强度检测仪,在370nm激发波长下用荧光强度检测仪检测相应的发射峰强度。测定的玉米中有毒物质的含量如表16所示。
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