CN106390112A - 一种重组鸡新城疫、禽流感、传染性支气管炎三联灭活疫苗的制备方法 - Google Patents
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Abstract
本发明提供了一种重组鸡新城疫、禽流感、传染性支气管炎三联灭活疫苗的制备方法,该技术方案通过对鸡新城疫病毒LaSota株的基因改造而实现。以重组NDV弱毒株rLaSota株为载体,首先将鸡传染性支气管炎病毒(IBV)S1基因插入F‑HN之间,经利用反向遗传技术构建表达S1蛋白的重组新城疫病毒rLaSota/S1,结果表明,rLaSota可作为活载体稳定表达S1蛋白。而后构建表达HA基因的重组新城疫病毒rLaSota/S1‑HA,即在重组新城疫病毒rLaSota/S1的P‑M之间插入HA基因。对其进行免疫原性评估。结果表明通过常规灭活疫苗工艺制备出的重组鸡新城疫、禽流感、传染性支气管炎三联灭活疫苗其新城疫、禽流感和传染性支气管炎均有较强的保护作用。
Description
技术领域
本发明涉及疫苗技术领域,同时涉及基因工程技术,具体涉及一种重组鸡新城疫、禽流感、传染性支气管炎三联灭活疫苗的制备方法。
背景技术
禽流感病毒(Avian Influenza Virus,AIV)属于正黏病毒科中的A型流感病毒属,基因组由8个单股负链的RNA片段组成,片段1~8由大到小依次命名为PB2、PB1、PA、HA、NP、NA、M和NS基因,根据其表面抗原血凝素(HA)和神经氨酸酶(NA)的不同划分亚型,迄今已发现16种HA和9种NA亚型,该病毒感染禽类从轻度上呼吸道疾病、产蛋量降低,直至急性全身致死性疾病,对公共卫生也造成了威胁。
IBV属冠状病毒科冠状病毒属,基因组全长大小约为27.4kb~27.7kb,为不分节段的单股正链RNA。编码4种结构蛋白;其中,纤突蛋白(S)位于病毒粒子表层囊膜上,是构成IBV表面纤突的主要成分,能够诱导机体产生保护性抗体及血凝抑制抗体,并能够与细胞受体结合并引起病毒和细胞膜的融合。
新城疫病毒(Newcastle Disease Virus,NDV)为副粘病毒科、腮腺炎病毒属、禽副粘病毒1型病毒,为单股负链不分节段的RNA病毒,基因组长约15kb,其结构为3′-NP-P-M-F-HN-L-5′。NDV的反向遗传操作系统是Peeters等在1999年建立的,该技术是通过在体外构建RNA病毒的感染性分子克隆,将病毒基因组RNA逆转录成cDNA,在DNA分子水平上对其进行各种体外人工操作,由病毒基因组cDNA和各种辅助蛋白来组装新的RNA病毒。该操作系统的核心是构建基因组全长感染性cDNA克隆,可通过中间过程人为加入DNA环节,在DNA水平上对RNA病毒基因组进行各种体外人工改造,如基因突变、基因插入、基因敲除、基因置换等,为新型疫苗的研制和开发提供了新的思路。现有技术中AIV、IBV、NDV三联疫苗多为三种抗原的混合苗,需要分别制备三种抗原,这一方面加大了制备难度,同时,由于三种抗原均属于全病毒抗原,因此免疫效果容易相互影响。
发明内容
本发明旨在针对现有技术的技术缺陷,提供一种重组鸡新城疫、禽流感、传染性支气管炎三联灭活疫苗的制备方法,以解决现有技术中缺乏一种上述疫苗的技术问题。
本发明要解决的另一技术问题是现有技术中上述三联疫苗的制备过程中需要分别制备三种抗原。
本发明要解决的再一技术问题是现有技术中上述三联疫苗的滴度较低。
为实现以上技术目的,本发明采用以下技术方案:
一种重组鸡新城疫、禽流感、传染性支气管炎三联灭活疫苗的制备方法,包括以下步骤:将鸡传染性支气管炎病毒S1基因插入至新城疫病毒基因组的F-HN之间,得到重组新城疫病毒rLaSota/S1,而后将禽流感病毒HA基因插入至重组新城疫病毒rLaSota/S1基因组的P-M之间,即得到重组新城疫病毒rLaSota/S1-HA;利用所述重组新城疫病毒rLaSota/S1-HA表达抗原,而后制备疫苗。
作为优选,所述rLaSota/S1是通过以下方法制备的:
1)将新城疫病毒的NP、P、L三个基因通过RT-PCR进行扩增,而后将三者分别克隆到表达质粒载体pTM1,分别得到重组质粒pTM-NP、pTM-P、pTM-L;
2)通过特异性引物使TOPO TA Cloning载体线性化,利用IBV-M41株为模板,通过特异性引物扩增S1基因,得到rLaSota/S1重组亚克隆;而后将rLaSota/S1亚克隆线性化后连接到LaSota全长cDNA质粒中,将其转化到Stbl2感受态细胞,30℃培养24小时再通过DNA核苷酸序列分析鉴定筛选出阳性克隆,再将阳性克隆株纯化,即得到重组质粒pLaSota/S1;
3)在细胞板上以每孔106个的加入量铺入HEp-2细胞,预先用MVA/T7A感染;通过转染试剂,将pTM-NP、pTM-P、pTM-L和pLaSota/S1质粒共转染到HEp-2细胞上,转染后6小时后去掉转染培养基,并加入新鲜的5%FBS的DMEM培养基;72小时,通过将转染细胞反复冻融3次收获重组病毒rLaSota/S1。
作为优选,所述rLaSota/S1-HA是通过以下方法制备的:
A)将新城疫病毒的NP、P、L三个基因通过RT-PCR进行扩增,而后将三者分别克隆到表达质粒载体pTM1,分别得到重组质粒pTM-NP、pTM-P、pTM-L;
B)通过特异性引物使TOPO TA Cloning载体线性化,利用禽流感病毒为模板,通过特异性引物扩增S1基因,得到rLaSota/HA重组亚克隆;而后将rLaSota/HA重组亚克隆线性化后连接到rLaSota/S1的全长cDNA质粒中,将其转化到Stbl2感受态细胞,30℃培养24小时再通过DNA核苷酸序列分析鉴定筛选出阳性克隆,再将阳性克隆株纯化,命名为pLaSota/S1-HA,即得到重组质粒pLaSota/S1-HA;
C)在细胞板上以每孔106个的加入量铺入HEp-2细胞,预先用MVA/T7A感染;通过转染试剂,将pTM-NP、pTM-P、pTM-L和pLaSota/S1-HA质粒共转染到HEp-2细胞上,转染后6小时后去掉转染培养基,并加入新鲜的5%FBS的DMEM培养基;72小时,通过将转染细胞反复冻融3次收获重组病毒rLaSota/S1-HA。
作为优选,所述表达抗原包括以下步骤:将重组新城疫病毒rLaSota/S1-HA株以1:8000倍稀释,尿囊腔接种10日龄SPF鸡胚,每胚0.1mL,置相对湿度60~65%,温度33~35℃条件下孵育,收集120~144h死亡胚的尿囊液,即得到抗原溶液。
作为优选,所述抗原溶液中EID50≥108.7/0.1ml。
作为优选,所述制备疫苗包括以下步骤:抗原溶液灭活后作为水相,与疫苗油相以1:3的比例混合,乳化,即得到所述重组鸡新城疫、禽流感、传染性支气管炎三联灭活疫苗。
作为优选,所述抗原溶液灭活包括以下步骤:按0.2%(v/v)的终浓度为加入甲醛,混合后于2~8℃条件下下灭活24小时,期间每6小时搅拌1次,而后于37℃保持2小时。
本发明提供了一种重组鸡新城疫、禽流感、传染性支气管炎三联灭活疫苗的制备方法,该技术方案通过对鸡新城疫病毒LaSota株的基因改造而实现。以重组NDV弱毒株rLaSota株为载体,首先将鸡传染性支气管炎病毒(IBV)S1基因插入F-HN之间,经利用反向遗传技术构建表达S1蛋白的重组新城疫病毒rLaSota/S1,结果表明,rLaSota可作为活载体稳定表达S1蛋白。而后构建表达HA基因的重组新城疫病毒rLaSota/S1-HA,即在重组新城疫病毒rLaSota/S1的P-M之间插入HA基因。对其进行免疫原性评估。结果表明通过常规灭活疫苗工艺制备出的重组鸡新城疫、禽流感、传染性支气管炎三联灭活疫苗其新城疫、禽流感和传染性支气管炎均有较强的保护作用。
该构建重组疫苗策略可增强重组子的表达,最大程度减少其位于序列后部蛋白表达损失量。该重组疫苗具有载体病毒繁殖滴度高,易于生产;免疫一次可有效预防三种动物疫病;注射简单;填补了活载体疫苗类基因工程疫苗的空白,具有广泛的应用前景。
具体实施方式
以下将对本发明的具体实施方式进行详细描述。为了避免过多不必要的细节,在以下实施例中对属于公知的结构或功能将不进行详细描述。除有定义外,以下实施例中所用的技术和科学术语具有与本发明所属领域技术人员普遍理解的相同含义。
实施例1(重组鸡新城疫病毒的构建)
1、辅助性质粒NP、P、L基因的构建
将NP、P、L三个基因通过RT-PCR进行扩增,然后分别将三个基因克隆到表达质粒载体pTM1,所构建的辅助质粒经DNA序列分析鉴定,将阳性质粒命名为pTM-NP、pTM-P、pTM-L。
2、表达S1蛋白的重组新城疫病毒的构建
通过一对特异性引物pM-s和pM-r使和TOPO TA Cloning载体线性化,利用IBV-M41株为模板,用一对特异性引物S1-F和S1-R扩增S1基因,,得到rLaSota/S1重组亚克隆。最后通过In-fusion PCR Cloning Kit将rLaSota/S1亚克隆线性化后连接到LaSota全长cDNA质粒中,将其转化到Stbl2感受态细胞,30℃培养24小时再通过DNA核苷酸序列分析鉴定筛选出阳性克隆,再将阳性克隆株用QIAprep Spin Miniprep Kit纯化,命名为pLaSota/S1。
3、重组rLaSota/S1病毒的拯救
铺约1*106个HEp-2细胞至每孔细胞板中,预先用MVA/T7A感染。通过转染试剂,按说明书将pTM-NP、pTM-P、pTM-L和pLaSota/S1质粒共转染到HEp-2细胞上,转染后6小时,去掉转染培养基,并加入新鲜的5%FBS的DMEM培养基。72小时,通过将转染细胞反复冻融3次收获重组病毒,将重组病毒命名为rLaSota/S1,在10日龄SPF胚上增殖三代后保存在-80℃冰箱中。
4、S1蛋白表达鉴定及病毒生物学特性检测
首先通过RT-PCR方法用一对特异性引物检查插入片段的大小,同时送测序进行序列分析。然后利用红细胞凝集试验、半数鸡胚感染量试验、鸡胚平均死亡时间及脑内致病指数试验和生长曲线试验,对rLaSota/S1重组病毒的滴度及生物学特性进行分析鉴定,结果如表1所示。其结果表明,该重组病毒的鸡胚平均死亡时间有所增加和脑内致病指数为0.1,以上两项指标表明其病毒已被致弱,但对鸡胚仍有较强的感染能力。
表1 rLaSota/S1重组病毒的滴度及致病作用检测结果
MDT | ICPI | EID50 | HA | |
LaSota | 96h | 0.15 | 109EID50/0.1ml | 29 |
rLaSota/S1 | 120h | 0.1 | 108.7EID50/0.1ml | 29 |
5、表达HA蛋白的重组新城疫病毒的构建
此处插入的HA基因序列来自禽流感病毒H9亚型。通过一对特异性引物pNP-s和pNP-r使和TOPO TA Cloning载体线性化,用一对特异性引物HA1和HA2扩增HA基因,得到rLaSota/HA重组亚克隆。最后通过In-fusion PCR Cloning Kit将rLaSota/HA亚克隆线性化后连接到rLaSota/S1的全长cDNA质粒中,将其转化到Stbl2感受态细胞,30℃培养24小时再通过DNA核苷酸序列分析鉴定筛选出阳性克隆,再将阳性克隆株用QIAprep SpinMiniprep Kit纯化,命名为pLaSota/S1-HA。
6、重组rLaSota/S1-HA病毒的拯救
铺约1*106个HEp-2细胞至每孔细胞板中,预先用MVA/T7A感染。通过转染试剂,按说明书将pTM-NP、pTM-P、pTM-L和pLaSota/S1-HA质粒共转染到HEp-2细胞上,转染后6小时,去掉转染培养基,并加入新鲜的5%FBS的DMEM培养基。72小时,通过将转染细胞反复冻融3次收获重组病毒,将重组病毒命名为rLaSota/S1-HA,在10日龄SPF胚上增殖三代后保存在-80℃冰箱中。
7、S1蛋白表达鉴定及病毒生物学特性检测
首先通过RT-PCR方法用一对特异性引物检查插入片段的大小,同时送测序进行序列分析。然后利用半数鸡胚感染量试验、鸡胚平均死亡时间及脑内致病指数试验和生长曲线试验,对rLaSota/S1-HA重组病毒的滴度及生物学特性进行分析鉴定,结果如表2所示。其结果表明,该重组病毒的鸡胚平均死亡时间有所增加和脑内致病指数为0,以上两项指标表明其病毒已被致弱,但对鸡胚仍有较强的感染能力。
表2 rLaSota/S1-HA重组病毒的滴度及致病作用检测结果
MDT | ICPI | EID50 | |
LaSota | 96h | 0.15 | 109EID50/0.1ml |
rLaSota/S1 | 120h | 0.1 | 108.7EID50/0.1ml |
rLaSota/S1-HA | 120 | 0 | 108.5EID50/0.1ml |
实施例2(重组新城疫病毒的繁殖及三联灭活疫苗的制备)
1、病毒繁殖
鸡胚的选用来自饲养管理良好的健康鸡群所产的鸡蛋,每批鸡胚要经过严格筛选。外检共4项:白壳、大小、破损及脏胚,内检共9项:去除沙壳、偏气室、游气室、倒置胚、无精蛋、终止胚、弱胚、污染胚、裂缝胚。检验合格的鸡胚可以作为制苗材料。将重组新城疫病毒rLaSota/S1-HA株,以1:8000倍稀释,尿囊腔接种10日龄SPF鸡胚,每胚0.1mL,置相对湿度60%~65%,温度33~35℃条件下孵育,不必翻蛋,收集120-144h死亡胚的尿囊液,气室向上直立,4℃冷胚24h,收获将冷却的鸡胚取出,用碘酊消毒气室部位,以无菌剥除气室部位囊膜壳,在收获胚液前,应逐个检查鸡胚,如胎儿腐败、胚液浑浊及有任何污染可疑者弃去不用,收获鸡胚尿囊液于灭菌容器中,测得EID50可达到108.7/0.1ml。
检测:对收获的病毒样品进行无菌检验、红细胞凝集试验和病毒含量测定,应无菌生长,HA效价≥9lg2,每0.1ml病毒含量应≥108.5EID50。对检验合格的样品注明名称、收获日期、代次等。收获的胚液灭活前置4℃保存。
2、灭活
灭活经浓缩检验合格后的两种病毒鸡胚尿囊液分别注入灭活罐,按0.2%的终浓度为加入甲醛(或其他灭活剂)溶液,边加边搅拌,使其充分混合,置2~8℃下灭活24小时,期间6小时搅拌1次,再取出置于37℃作用2小时。灭活完成后取样做灭活检验及无菌检验,置2~8℃下保存过夜,保存时间应不超过7日。
3、灭活检验
取灭活的病毒液接种10日龄易感鸡胚10枚,每胚0.1ml,置33~35℃培养96小时。24小时内死亡的不计数,收获鸡胚液,测定HA价,应为阴性,并盲传1代,测定HA价,如为阴性,即灭活完全。
4、二联苗的制备
取注射用白油94份,加司盘-80 6份,混合后,加硬脂酸铝2份,随加热随搅拌至透明为止,高压灭菌备用。。取吐温-80 4份装入带玻璃珠的瓶中灭菌,冷却后加入混合的灭活病毒液96份,充分振摇,至吐温-80完全溶解为止。使油相与水相的比例为3:1乳化程序为:取油相置胶体磨内,开动电机慢速搅拌,同时分别缓慢加入水相,加完后再以10000r/min搅拌2min~5min,在终止搅拌前加入1%硫柳汞溶液,使其最终浓度为0.01%以下。
5、分装、检验
将乳化好的疫苗定量分装,加盖密封,并贴上标签。
其性状呈乳白色均匀乳状液。
剂型为油包水型。
取一清洁吸管,吸取少量疫苗滴于冷水表面,呈现团状,不扩散。
吸取疫苗10ml加入离心管中,以3000r/min离心15分钟,应不出现分层现象、管底析出水相应不多于0.5ml。
黏度按现行《中国兽药典》附录进行测定,应符合规定。
装量检查按现行《中国兽药典》附录进行检验,应符合规定。
无菌检验按现行《中国兽药典》附录进行检验,应无菌生长。
实施例3(重组鸡新城疫、禽流感、传染性支气管炎三联灭活疫苗的免疫效果)
将60只21日龄SPF鸡随机分为2大组,其中A组30只为接种重组鸡新城疫、禽流感、传染性支气管炎三联灭活疫苗组,B组30只为空白对照组。免疫后14天分别肌肉注射北京株1ml(含104ELD50)、传染性支气管炎M41株攻毒剂量为104.0EID50、测AIV-HI抗体效价。攻毒组观察10天,观察其发病情况和死亡情况。采血组只测定抗体效价。具体结果如表3所示:
表3 二联疫苗免疫有效性实验结果
以上对本发明的实施例进行了详细说明,但所述内容仅为本发明的较佳实施例,并不用以限制本发明。凡在本发明的申请范围内所做的任何修改、等同替换和改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。
Claims (7)
1.一种重组鸡新城疫、禽流感、传染性支气管炎三联灭活疫苗的制备方法,其特征在于包括以下步骤:将鸡传染性支气管炎病毒S1基因插入至新城疫病毒基因组的F-HN之间,得到重组新城疫病毒rLaSota/S1,而后将禽流感病毒HA基因插入至重组新城疫病毒rLaSota/S1基因组的P-M之间,即得到重组新城疫病毒rLaSota/S1-HA;利用所述重组新城疫病毒rLaSota/S1-HA表达抗原,而后制备疫苗。
2.根据权利要求1所述的一种重组鸡新城疫、禽流感、传染性支气管炎三联灭活疫苗的制备方法,其特征在于所述rLaSota/S1是通过以下方法制备的:
1)将新城疫病毒的NP、P、L三个基因通过RT-PCR进行扩增,而后将三者分别克隆到表达质粒载体pTM1,分别得到重组质粒pTM-NP、pTM-P、pTM-L;
2)通过特异性引物使TOPO TA Cloning载体线性化,利用IBV-M41株为模板,通过特异性引物扩增S1基因,得到rLaSota/S1重组亚克隆;而后将rLaSota/S1亚克隆线性化后连接到LaSota全长cDNA质粒中,将其转化到Stbl2感受态细胞,30℃培养24小时再通过DNA核苷酸序列分析鉴定筛选出阳性克隆,再将阳性克隆株纯化,即得到重组质粒pLaSota/S1;
3)在细胞板上以每孔106个的加入量铺入HEp-2细胞,预先用MVA/T7A感染;通过转染试剂,将pTM-NP、pTM-P、pTM-L和pLaSota/S1质粒共转染到HEp-2细胞上,转染后6小时后去掉转染培养基,并加入新鲜的5%FBS的DMEM培养基;72小时,通过将转染细胞反复冻融3次收获重组病毒rLaSota/S1。
3.根据权利要求2所述的一种重组鸡新城疫、禽流感、传染性支气管炎三联灭活疫苗的制备方法,其特征在于所述rLaSota/S1-HA是通过以下方法制备的:
A)将新城疫病毒的NP、P、L三个基因通过RT-PCR进行扩增,而后将三者分别克隆到表达质粒载体pTM1,分别得到重组质粒pTM-NP、pTM-P、pTM-L;
B)通过特异性引物使TOPO TA Cloning载体线性化,利用禽流感病毒为模板,通过特异性引物扩增S1基因,得到rLaSota/HA重组亚克隆;而后将rLaSota/HA重组亚克隆线性化后连接到rLaSota/S1的全长cDNA质粒中,将其转化到Stbl2感受态细胞,30℃培养24小时再通过DNA核苷酸序列分析鉴定筛选出阳性克隆,再将阳性克隆株纯化,命名为pLaSota/S1-HA,即得到重组质粒pLaSota/S1-HA;
C)在细胞板上以每孔106个的加入量铺入HEp-2细胞,预先用MVA/T7A感染;通过转染试剂,将pTM-NP、pTM-P、pTM-L和pLaSota/S1-HA质粒共转染到HEp-2细胞上,转染后6小时后去掉转染培养基,并加入新鲜的5%FBS的DMEM培养基;72小时,通过将转染细胞反复冻融3次收获重组病毒rLaSota/S1-HA。
4.根据权利要求3所述的一种重组鸡新城疫、禽流感、传染性支气管炎三联灭活疫苗的制备方法,其特征在于所述表达抗原包括以下步骤:将重组新城疫病毒rLaSota/S1-HA株以1:8000倍稀释,尿囊腔接种10日龄SPF鸡胚,每胚0.1mL,置相对湿度60~65%,温度33~35℃条件下孵育,收集120~144h死亡胚的尿囊液,即得到抗原溶液。
5.根据权利要求4所述的一种重组鸡新城疫、禽流感、传染性支气管炎三联灭活疫苗的制备方法,其特征在于所述抗原溶液中EID50≥108.7/0.1ml。
6.根据权利要求4所述的一种重组鸡新城疫、禽流感、传染性支气管炎三联灭活疫苗的制备方法,其特征在于所述制备疫苗包括以下步骤:抗原溶液灭活后作为水相,与疫苗油相以1:3的比例混合,乳化,即得到所述重组鸡新城疫、禽流感、传染性支气管炎三联灭活疫苗。
7.根据权利要求6所述的一种重组鸡新城疫、禽流感、传染性支气管炎三联灭活疫苗的制备方法,其特征在于所述抗原溶液灭活包括以下步骤:按0.2%(v/v)的终浓度为加入甲醛,混合后于2~8℃条件下下灭活24小时,期间每6小时搅拌1次,而后于37℃保持2小时。
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Cited By (9)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN108261543A (zh) * | 2018-02-08 | 2018-07-10 | 华农(肇庆)生物产业技术研究院有限公司 | 传代细胞源nd、ib、ai三联灭活疫苗的制备方法及其应用 |
CN108546302A (zh) * | 2018-04-27 | 2018-09-18 | 中国农业科学院上海兽医研究所(中国动物卫生与流行病学中心上海分中心) | 一种复合多表位表达盒、其组成的重组病毒及应用 |
CN109180821A (zh) * | 2018-09-19 | 2019-01-11 | 天康生物股份有限公司 | 鸡新城疫病毒的融合蛋白及其制备方法、应用和疫苗 |
CN109207492A (zh) * | 2018-09-26 | 2019-01-15 | 四川大学 | 一种包含IBV多表位EpiC和NDV F基因的重组基因、重组表达质粒、重组乳酸杆菌及其应用 |
CN109320594A (zh) * | 2018-11-13 | 2019-02-12 | 四川大学 | 一种禽传染性支气管炎和新城疫的病毒样颗粒、制备方法及应用 |
CN109929815A (zh) * | 2019-03-20 | 2019-06-25 | 中国动物卫生与流行病学中心 | 人造的禽副黏病毒 |
CN111690621A (zh) * | 2020-07-02 | 2020-09-22 | 西南大学 | 一种含有ires-s1-n基因的重组病毒及其制备方法和应用 |
CN112852758A (zh) * | 2021-02-07 | 2021-05-28 | 中国农业科学院哈尔滨兽医研究所(中国动物卫生与流行病学中心哈尔滨分中心) | 一种表达鸡传染性支气管炎病毒s蛋白的重组新城疫病毒及其制备方法与应用 |
CN115725518A (zh) * | 2022-10-07 | 2023-03-03 | 东北农业大学 | 编码鸡传染性支气管炎s1的新城疫病毒在生物佐剂二联疫苗中的应用 |
Citations (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101376027A (zh) * | 2008-09-24 | 2009-03-04 | 中国农业科学院哈尔滨兽医研究所 | 表达禽流感病毒H9亚型HA蛋白的重组新城疫病毒LaSota弱毒疫苗株 |
CN103146751A (zh) * | 2013-02-04 | 2013-06-12 | 扬州大学 | 新城疫病毒株rLX/H9HA及其构建方法和应用 |
CN103468651A (zh) * | 2013-10-08 | 2013-12-25 | 扬州大学 | 表达传染性支气管炎病毒S1蛋白的重组新城疫疫苗株rAI4-S1及其构建方法 |
CN104922665A (zh) * | 2015-05-22 | 2015-09-23 | 杨凌绿方生物工程有限公司 | 一种鸡新城疫、传染性支气管炎和h9亚型禽流感三联灭活疫苗 |
CN105969741A (zh) * | 2016-06-15 | 2016-09-28 | 湖北省农业科学院畜牧兽医研究所 | 共表达h9亚型禽流感病毒ha和鸡白介素6蛋白的重组新城疫耐热疫苗株及制备方法 |
-
2016
- 2016-08-31 CN CN201610777584.2A patent/CN106390112A/zh active Pending
Patent Citations (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101376027A (zh) * | 2008-09-24 | 2009-03-04 | 中国农业科学院哈尔滨兽医研究所 | 表达禽流感病毒H9亚型HA蛋白的重组新城疫病毒LaSota弱毒疫苗株 |
CN103146751A (zh) * | 2013-02-04 | 2013-06-12 | 扬州大学 | 新城疫病毒株rLX/H9HA及其构建方法和应用 |
CN103468651A (zh) * | 2013-10-08 | 2013-12-25 | 扬州大学 | 表达传染性支气管炎病毒S1蛋白的重组新城疫疫苗株rAI4-S1及其构建方法 |
CN104922665A (zh) * | 2015-05-22 | 2015-09-23 | 杨凌绿方生物工程有限公司 | 一种鸡新城疫、传染性支气管炎和h9亚型禽流感三联灭活疫苗 |
CN105969741A (zh) * | 2016-06-15 | 2016-09-28 | 湖北省农业科学院畜牧兽医研究所 | 共表达h9亚型禽流感病毒ha和鸡白介素6蛋白的重组新城疫耐热疫苗株及制备方法 |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
林初文等: "基于反向遗传学操作技术新城疫病毒载体的研究进展", 《安徽农业科学》 * |
Cited By (16)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN108261543A (zh) * | 2018-02-08 | 2018-07-10 | 华农(肇庆)生物产业技术研究院有限公司 | 传代细胞源nd、ib、ai三联灭活疫苗的制备方法及其应用 |
CN108261543B (zh) * | 2018-02-08 | 2019-03-08 | 华农(肇庆)生物产业技术研究院有限公司 | 传代细胞源nd、ib、ai三联灭活疫苗的制备方法及其应用 |
CN108546302A (zh) * | 2018-04-27 | 2018-09-18 | 中国农业科学院上海兽医研究所(中国动物卫生与流行病学中心上海分中心) | 一种复合多表位表达盒、其组成的重组病毒及应用 |
US11305007B2 (en) | 2018-04-27 | 2022-04-19 | Shanghai Veterinary Research Institute, Chinese Academy Of Agricultural Sciences (National Center For Animai Health Shanghai) | Composite multi-epitope expression cassette, a recombinant virus composed thereof and application thereof |
WO2019205753A1 (en) * | 2018-04-27 | 2019-10-31 | Shanghai Veterinary Research Institute, Chinese Academy Of Agricultural Sciences (National Center For Animal Health, Shanghai) | A composite multi-epitope expression cassette, a recombinant virus composed thereof and application thereof |
CN109180821B (zh) * | 2018-09-19 | 2021-10-15 | 天康制药(苏州)有限公司 | 鸡新城疫病毒的融合蛋白及其制备方法、应用和疫苗 |
CN109180821A (zh) * | 2018-09-19 | 2019-01-11 | 天康生物股份有限公司 | 鸡新城疫病毒的融合蛋白及其制备方法、应用和疫苗 |
CN109207492A (zh) * | 2018-09-26 | 2019-01-15 | 四川大学 | 一种包含IBV多表位EpiC和NDV F基因的重组基因、重组表达质粒、重组乳酸杆菌及其应用 |
CN109207492B (zh) * | 2018-09-26 | 2021-12-28 | 四川大学 | 一种包含IBV多表位EpiC和NDV F基因的重组基因、重组表达质粒、重组乳酸杆菌及其应用 |
CN109320594A (zh) * | 2018-11-13 | 2019-02-12 | 四川大学 | 一种禽传染性支气管炎和新城疫的病毒样颗粒、制备方法及应用 |
CN109320594B (zh) * | 2018-11-13 | 2021-09-28 | 四川大学 | 一种禽传染性支气管炎和新城疫的病毒样颗粒、制备方法及应用 |
CN109929815A (zh) * | 2019-03-20 | 2019-06-25 | 中国动物卫生与流行病学中心 | 人造的禽副黏病毒 |
CN111690621A (zh) * | 2020-07-02 | 2020-09-22 | 西南大学 | 一种含有ires-s1-n基因的重组病毒及其制备方法和应用 |
CN112852758A (zh) * | 2021-02-07 | 2021-05-28 | 中国农业科学院哈尔滨兽医研究所(中国动物卫生与流行病学中心哈尔滨分中心) | 一种表达鸡传染性支气管炎病毒s蛋白的重组新城疫病毒及其制备方法与应用 |
CN112852758B (zh) * | 2021-02-07 | 2022-03-11 | 中国农业科学院哈尔滨兽医研究所(中国动物卫生与流行病学中心哈尔滨分中心) | 一种表达鸡传染性支气管炎病毒s蛋白的重组新城疫病毒及其制备方法与应用 |
CN115725518A (zh) * | 2022-10-07 | 2023-03-03 | 东北农业大学 | 编码鸡传染性支气管炎s1的新城疫病毒在生物佐剂二联疫苗中的应用 |
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