CN105247054A - 毒素基因及其使用方法 - Google Patents

Abstract

在此提供了用于赋予细菌、植物、植物细胞、组织以及种子杀有害生物活性的组合物和方法。提供了包括针对毒素多肽的编码序列的组合物。这些编码序列可以用在DNA构建体或表达盒中，以便用于在植物和细菌中转化和表达。组合物还包括转化的细菌、植物、植物细胞、组织、以及种子。具体地说，提供了分离的毒素核酸分子。另外，涵盖了与这些多核苷酸相应的氨基酸序列、以及与这些氨基酸序列特异性结合的抗体。具体地说，本发明提供了分离的核酸分子，这些核酸分子包含编码SEQ？ID？NO：21-74中所示的氨基酸序列的核苷酸序列、或在SEQ？ID？NO：1-20中列出的核苷酸序列、以及它们的变体和片段。

Description

毒素基因及其使用方法

相关申请的交叉引用

本专利申请要求于2013年3月7日提交的美国临时申请序列号61/774,110和各自于2013年3月8日提交的美国临时申请序列号61/774,627、61/774,629、61/774,635、61/774,638、61/774,642、61/774,645、61/774,647、61/774,650、61/774,655、以及61/774,659的权益，将其内容通过引用以其全文结合在此。

对以电子方式提交的序列表的引用

所述序列表的官方副本经由EFS-Web作为ASCII格式序列表以电子方式提交，文件名为“APA13-6008US01_SEQLIST.txt”，创建于2014年3月5日，并且具有411千字节大小，并且与本说明书同时提交。包含在这一ASCII格式文件中的序列表是本说明书的一部分并且通过引用以其全部内容结合在此。

发明领域

本发明涉及分子生物学领域。提供了编码杀有害生物蛋白的新颖的基因。这些蛋白和编码它们的核酸序列在制备杀有害生物配制品中以及在生产转基因抗有害生物植物中是有用的。

发明背素

苏云金芽孢杆菌是形成革兰氏阳性孢子的土壤细菌，其特征在于它具有产生结晶内含物的能力，这些结晶内含物对某些目和物种的昆虫是具有特异毒性的，但是对植物以及其他非靶向的生物是无害的。因此，包括苏云金芽孢杆菌菌株或它们的杀昆虫蛋白的组合物可用作环境上可接受的杀昆虫剂以用于控制农业昆虫有害生物或者各种人或动物疾病的昆虫媒介。

来自苏云金芽孢杆菌的晶体(Cry)蛋白(δ-内毒素)具有主要针对鳞翅目的、半翅目的、双翅目的、以及鞘翅目的幼虫的有效的杀昆虫活性。这些蛋白还已经显示针对膜翅目、同翅目、虱目、食毛目、以及蜱螨亚纲有害生物目(Acaripestorder)、连同其他无脊椎动物目(如线虫动物门、扁形动物门、以及原生动物门肉鞭毛虫亚门)的活性(费特逊(Feitelson)(1993)苏云金芽孢杆菌家族树(TheBacillusThuringiensisfamilytree)，先进的工程杀有害生物剂(AdvancedEngineeredPesticides)，马塞尔穧德克尔格式(MarcelDekker,Inc.)，纽约，纽约州)。这些蛋白最初主要基于它们的杀昆虫活性而分类为CryI至CryV。主要类别是鳞翅目特异性的(I)、鳞翅目和双翅目特异性的(II)、鞘翅目特异性的(III)、双翅目特异性的(IV)以及线虫特异性的(V)和(VI)。这些蛋白进一步分类成亚家族；在每个家族内更高度相关的蛋白被指定了分组字母例如Cry1A、Cry1B、Cry1C等等。在每个分组内甚至更加密切相关的蛋白被给予诸如Cry1C1、Cry1C2等的名称。

基于氨基酸序列同源性而不是昆虫靶标特异性描述了Cry基因的命名法(克里克莫尔(Crickmore)等人(1998)微生物学与分子生物学评论(Microbiol.Mol.Biol.Rev.)62：807-813)。在此分类中，每种毒素被指定了独特的名称，其中包括第一级(primaryrank)(阿拉伯数字)、第二级(secondaryrank)(大写字母)、第三级(tertiaryrank)(小写字母)、以及第四级(quaternaryrank)(另一个阿拉伯数字)。在第一级中，罗马数字已被换成阿拉伯数字。带有小于45％的序列一致性的蛋白具有不同的第一级，并且对于第二和第三级的标准对应地是78％和95％。

晶体蛋白不展示杀昆虫活性，直至其被摄取并溶解在昆虫中肠之中。被摄取的原毒素在昆虫消化道中被蛋白酶水解成活性毒性分子。(霍弗特和怀特利(Whiteley)(1989)生物学评论(Microbiol.Rev.)53：242-255)。这种毒素与靶标幼虫的中肠中的顶端刷状缘受体结合并插入顶端膜中，产生离子通道或孔，从而导致幼虫死亡。

δ-内毒素通常具有五个保守的序列结构域和三个保守的结构性结构域(参见，例如戴马格德(deMaagd)等人(2001)遗传学趋势(TrendsGenetics)17：193-199)。第一个保守的结构性结构域由7个α螺旋组成并且参与膜插入和孔形成。结构域II由排列成希腊钥匙构型的三个β片层组成并且结构域III由“果冻卷”结构中的两个反向平行的β片层组成(戴马格德(deMaagd)等人，2001，同上)。结构域II和III参与受体识别和结合，并且因此被认为是毒素特异性的决定簇。

除了δ-内毒素之外，存在若干其他已知类别的杀有害生物蛋白毒素。这些VIP1/VIP2毒素(参见例如美国专利5,770,696)是二元杀有害生物毒素，它们通过如下机制对昆虫表现强活性，该机制被认为涉及受体介导的胞吞随后细胞毒化，类似于其他二元(“A/B”)毒素的作用方式。A/B毒素，例如VIP、C2、CDT、CST，或炭疽芽孢杆菌水肿和致命毒素，最初通过“B”组分(作为单体)的特异的受体介导的结合与靶标细胞相互作用。然后这些单体形成同七聚物(homoheptamer)。然后该“B”七聚物-受体复合物充当对接平台，随后该平台约束并允许酶的一种或多种“A”组分通过受体介导的胞吞而易位到细胞溶质中。一旦到细胞的细胞溶质内部，“A”组分通过例如G-肌动蛋白的ADP-核糖基化或增加环状AMP(cAMP)的细胞内水平而抑制正常细胞功能。参见巴斯(Barth)等人(2004)微生物学与分子生物学评论(MicrobiolMolBiolRev)68：373-402。

大量使用基于苏云金芽孢杆菌的杀昆虫剂已经引起菱形斑蛾——小菜蛾的田间种群的抗性(费亥(Ferré)和范里(VanRie)(2002)昆虫学年评(Annu.Rev.Entomol.)47：501-533)。最常见的抗性机制是该毒素与其一种或多种特异性中肠受体的结合的减少。这还可以赋予针对共享相同受体的其他毒素的交叉抗性(费亥(Ferré)和范里(VanRie)(2002))。

由于昆虫可能带来破坏、以及通过控制昆虫有害生物在产量方面的改进，对于发现新形式的杀有害生物毒素存在着不断的需要。

发明概述

在此提供了用于赋予细菌、植物、植物细胞、组织以及种子杀有害生物活性的组合物和方法。组合物包括针对杀有害生物的和杀昆虫的多肽的核酸分子编码序列、包括那些核酸分子的载体、以及包括这些载体的宿主细胞。组合物还包括这些杀有害生物多肽序列以及针对那些多肽的抗体。这些核苷酸序列可以用在DNA构建体或表达盒中，以用于在多种生物(包括微生物和植物)中进行转化和表达。这些核苷酸或氨基酸序列可以是合成序列，这些合成序列已经被设计为用于在生物中表达，该生物包括但不局限于：微生物或植物。组合物还包括含有本发明的核苷酸序列的细菌、植物、植物细胞、组织、以及种子。

具体地说，提供了编码杀有害生物蛋白的分离的或重组的核酸分子。另外，涵盖了与这些杀有害生物蛋白相应的氨基酸序列。具体地，本发明提供了分离或重组的核酸分子，该核酸分子包括编码SEQIDNO：21-74中所示的氨基酸序列的核苷酸序列、或在SEQIDNO：1-20中列出的核苷酸序列、以及它们的生物活性变体和片段。还涵盖了与本发明的核苷酸序列互补的核苷酸序列、或与本发明的序列或其互补物杂交的核苷酸序列。另外还提供了包括本发明的核苷酸序列或者编码本发明的氨基酸序列的核苷酸序列以及它们的生物活性变体和片段的载体、宿主细胞、植物以及种子。

提供了用于产生本发明的多肽的方法，以及用于使用这些多肽来控制或杀死鳞翅目、半翅目、鞘翅目、线虫、或双翅目有害生物的方法。还包括用于检测在样品中的本发明的核酸和多肽的方法和试剂盒。

本发明的组合物和方法用于产生具有增强的有害生物抗性或耐受性的生物。这些生物以及包括这些生物的组合物对于农业目的是所希望的。本发明的组合物还用于产生具有杀有害生物活性的改变的或改进的蛋白、或检测在产物或生物中的杀有害生物蛋白或核酸的存在。

详细说明

本发明描绘了用于调节生物(特别是植物或植物细胞)中的有害生物抗性或耐受性的组合物和方法。“抗性”是指该有害生物(例如，昆虫)一旦摄取或以其他方式接触本发明的多肽类时就被杀死。“耐受性”是指有害生物的运动、摄食、繁殖、或其他功能的损害或降低。这些方法涉及用编码本发明的杀有害生物蛋白的核苷酸序列来转化生物。具体地说，本发明的核苷酸序列用于制备具有杀有害生物活性的植物和微生物。因此，提供了转化的细菌、植物、植物细胞、植物组织以及种子。组合物是杆菌或其他物种的杀有害生物核酸和蛋白。这些序列用于随后转化到感兴趣的生物中的表达载体的构建，作为用于其他同源(或部分同源的)基因的分离的探针，以及用于通过本领域中已知的方法(如，结构域交换或DNA改组)来产生改变的杀有害生物蛋白，例如内毒素的Cry1、Cry2以及Cry9家族成员。这些蛋白用于控制或杀死鳞翅目、半翅目、鞘翅目、双翅目、以及线虫有害生物种群、以及用于生产具有杀有害生物活性的组合物。

“杀有害生物毒素”或“杀有害生物蛋白”是指毒素，该毒素具有针对一种或多种有害生物的毒性，包括但不局限于：鳞翅目、双翅目、以及鞘翅目、或线虫动物门成员、或者与这种蛋白具有同源性的蛋白。已经从生物中分离出杀有害生物蛋白，这些生物包括例如，芽孢杆菌属物种、双酶梭菌、以及日本甲虫类芽孢杆菌(Paenibacilluspopilliae)。杀有害生物蛋白包括从在此披露的全长核苷酸序列中推导出的氨基酸序列、以及比这些全长序列更短的氨基酸序列(或者由于使用了可替代的下游起始位点、或者由于产生较短的具有杀有害生物活性的蛋白的加工过程)。加工可以在表达该蛋白的生物内发生，或在该有害生物摄取该蛋白之后发生。

杀有害生物蛋白类涵盖了δ-内毒素。δ-内毒素包括被标识为cry1至cry72、cyt1和cyt2、以及Cyt样毒素的蛋白。目前存在着超过250种己知的δ-内毒素种类，它们具有宽范围的特异性和毒性。关于扩展性列表，参见克里克莫尔(Crickmore)等人(1998)，微生物学与分子生物学评论(Microbiol.Mol.Biol.Rev.)62：807-813，并且对于定期更新，参见克里克莫尔(Crickmore)等人(2003)“苏云金芽孢杆菌毒素命名法(Bacillusthuringiensistoxinnomenclature)”，在www.biols.susx.ac.uk/Home/Neil_Crickmore/Bt/index处。

因此，在此提供了新颖的分离或重组的核苷酸序列，这些序列赋予了杀有害生物活性。这些核苷酸序列编码与已知的δ-内毒素或二元毒素具有同源性的多肽。还提供了杀有害生物蛋白的氨基酸序列。由这种基因的翻译而产生的蛋白允许细胞控制或杀死摄取了该蛋白的有害生物。

核酸分子及其变体和片段

本发明的一个方面涉及分离的或重组的核酸分子，这些核酸分子包括编码杀有害生物蛋白和多肽或它们的生物活性部分的核苷酸序列；以及足以用作杂交探针来鉴定编码具有序列同源性的区域的蛋白的核酸分子的核酸分子。在此还涵盖了能够在如在此的其他部分所定义的严格条件下与本发明的核苷酸序列杂交的核苷酸序列。如本文所使用的，术语“核酸分子”旨在包括DNA分子(例如，重组DNA、cDNA或基因组DNA)和RNA分子(例如，mRNA)以及使用核苷酸类似物而产生的DNA或RNA的类似物。该核酸分子可以是单链的或双链的，但优选地是双链DNA。术语“重组”包括多核苷酸或多肽，该多核苷酸或多肽已相对于天然多核苷酸或多肽被操纵，使得该多核苷酸或多肽不同(例如，在化学组成或结构上)于自然界中存在的那样。在另一个实施例中，“重组”多核苷酸不含天然存在于衍生该多核苷酸的生物体的基因组DNA中的内部序列(即内含子)。这种多核苷酸的典型实例是所谓的互补DNA(cDNA)。

分离的或重组的核酸(或DNA)被用在此处是指如下的核酸(或DNA)，该核酸(或DNA)不再存在于它的自然环境中(例如，在体外或在重组细菌或植物宿主细胞中)。在一些实施例中，分离的或重组的核酸是不含有在衍生出该核酸的生物的基因组DNA中天然地位于该核酸侧翼的序列(即，位于该核酸的5'和3'末端的序列)(优选编码蛋白的序列)。出于本发明的目的，“分离的”当用于指核酸分子时不包括分离的染色体。例如，在不同的实施例中，编码分离的δ内毒素的核酸分子可包括小于约5kb、4kb、3kb、2kb、1kb、0.5kb、或0.1kb的核苷酸序列，这些核苷酸序列在衍生出该核酸的细胞的基因组DNA中天然地位于该核酸分子侧翼。在不同实施例中，基本上不含细胞材料的δ-内毒素蛋白包括具有低于约30％、20％、10％或5％(按干重计)的非δ-内毒素蛋白(在此也称为“污染性蛋白”)的蛋白制剂。

编码本发明的蛋白的核苷酸序列包括SEQIDNO：1-20中列出的序列及其变体、片段和互补物。“互补物”是指核苷酸序列，该核苷酸序列与给定的核苷酸序列足够地互补，这样使得它可以与该给定的核苷酸序列杂交以便由此形成稳定的双链体。对于由这些核苷酸序列所编码的杀有害生物蛋白的相应氨基酸序列在SEQIDNO：21-74中列出。

本发明还涵盖了以下核酸分子，这些核酸分子是这些编码杀有害生物蛋白的核苷酸序列的片段。“片段”是指编码杀有害生物蛋白的核苷酸序列的部分。核苷酸序列的片段可以编码杀有害生物蛋白的生物活性部分，或者它是使用以下披露的方法可以用作杂交探针或PCR引物的片段。作为编码杀有害生物蛋白的核苷酸序列的片段的核酸分子包括至少约50、100、200、300、400、500、600、700、800、900、1000、1100、1200、1300、1350、1400个连续核苷酸，或达到在此所披露的全长的编码杀有害生物蛋白的核苷酸序列中存在的核苷酸的数目，这取决于所预期的用途。“相邻的”核苷酸旨在指彼此紧邻的核苷酸残基。本发明的核苷酸序列的片段将编码保留杀有害生物蛋白的生物活性、并且因此保留杀有害生物活性的蛋白片段。因此，还涵盖了在此披露的多肽的生物活性片段。“保留活性”是指片段将具有杀有害生物蛋白的至少约30％、至少约50％、至少约70％、80％、90％、95％或更高的杀有害生物活性。在一个实施例中，杀有害生物活性是杀鞘翅目活性。在另一个实施例中，杀有害生物活性是杀鳞翅目活性。在另一个实施例中，杀有害生物活性是杀线虫活性。在另一个实施例中，杀有害生物活性是杀双翅目活性。在另一个实施例中，杀有害生物活性是杀半翅目活性。用于测量杀有害生物活性的方法在本领域是熟知的。参见例如，恰普拉(Czapla)和朗(Lang)(1990)经济昆虫学杂志(J.Econ.Entomol.)83：2480-2485；安德鲁斯(Andrews)等人(1988)生物化学杂志(Biochem.J.)252：199-206；马罗内(Marrone)等人(1985)经济昆虫学杂志(J.ofEconomicEntomology)78：290-293；以及美国专利号5,743,477，将它们全部通过引用以其全文结合在此。

编码杀有害生物蛋白的核苷酸序列的片段(该序列编码本发明的蛋白的生物活性部分)将编码至少约15、25、30、50、75、100、125、150、175、200、250、300、350、400、450、500、550、600、650、700、750、800、850、900、950、1000、1050、1100、1150、1200个相邻氨基酸，或高达存在于本发明的全长杀有害生物蛋白中的氨基酸的全部数量。在一些实施例中，片段是蛋白酶切片段。例如，蛋白酶切片段可以相对于SEQIDNO：21-74具有至少约100个氨基酸、约120个、约130个、约140个、约150个、或约160个氨基酸的N末端或C末端截短。在一些实施例中，在此所涵盖的这些片段是由例如通过蛋白酶解或通过在编码序列中插入终止密码子来除去C末端结晶结构域而产生。参见，例如，在SEQIDNO：25、26、39-45、49-51、58、63-64、66、68、以及72-74中列出的截短氨基酸序列。应当理解的是，该截短部位可以随着由SEQIDNO：25、26、39-45、49-51、58、63-64、66、68、或72-74的末端表示的截短部位(相比于相应全长序列)的任一侧上的1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、或更多个氨基酸变化。

本发明的优选杀有害生物蛋白由与SEQIDNO：1-20的核苷酸序列足够一致的核苷酸序列编码，或者这些杀有害生物蛋白与SEQIDNO：21-74中所列的氨基酸序列足够一致。“足够地一致的”是指氨基酸或核苷酸的序列，使用在本文中所说明的比对程序之一使用标准的参数，与参比序列相比，该氨基酸或核苷酸的序列具有至少约60％或65％的序列一致性，约70％或75％的序列一致性，约80％或85％的序列一致性，约90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％、或99％或更高的序列一致性。本领域的普通技术人员将会认识到，可以对这些值进行适当地调整以便通过考虑密码子简并性、氨基酸相似性、阅读框定位、等等来确定由两个核苷酸序列编码的蛋白的相应一致性。

为了确定两个氨基酸序列或两个核酸的一致性百分比，出于最佳比较目的而比对这些序列。这两个序列之间的一致性百分比是由这些序列共有的相同位置的数目的函数(即，一致性百分比＝相同位置的数目/位置(例如，重叠位置)的总数目x100)。在一个实施例中，这两个序列是相同长度的。在另一个实施例中，一致性百分比是贯穿参比序列的整体来计算的(即，在此所披露的如SEQIDNO：1-74中任一项的序列)。在两个序列之间的一致性百分比可以使用与以下说明的那些相似的技术来确定，其中允许或不允许空位。在计算一致性百分比中，对典型地准确的匹配进行计数。空位(即，在其中残基存在于一个序列中但不存在于另一个序列中的比对中的位置)被认为是具有非一致性残基的位置。

两个序列之间的一致性百分比的确定可以通过使用数学算法来完成。用于比较两个序列的数学算法的非限制性实例是卡尔林(Karlin)和阿尔丘尔(Altschul)(1990)美国国家科学院院刊(Proc.Natl.Acad.Sci.USA)87：2264的算法，该算法在卡林和阿特休尔(1993)美国国家科学院院刊90：5873-5877中进行了修改。这样一种算法被结合到阿尔丘尔(Altschul)等人(1990)分子生物学杂志(J.Mol.Biol.)215：403的BLASTN和BLASTX程序中。BLAST核苷酸搜索可以用BLASTN程序(得分＝100、字长＝12)来进行，以获得与本发明的杀有害生物样核酸分子同源的核苷酸序列。BLAST蛋白搜索可以用BLASTX程序(得分＝50、字长＝3)来进行，以获得与本发明的杀有害生物蛋白分子同源的氨基酸序列。为了获得用于比较目的的空位比对，可以使用如阿尔丘尔等人(1997)核酸研究(NucleicAcidsRes.)25：3389中所描述的缺口BLAST(在BLAST2.0中)。可替代地，可以使用PSI-Blast进行迭代搜索，该迭代搜索检测分子之间的远近关系。参见阿尔丘尔等人(1997)同上。当利用BLAST、空位BLAST和PSI-Blast程序时，可以使用对应的程序(例如，BLASTX和BLASTN)的默认参数。还可以通过检查，手动进行比对。

用于序列比较的数学算法的另一个非限制实例是ClustalW算法(希金斯(Higgins)等人(1994)核酸研究(NucleicAcidsRes.)22：4673-4680))。ClustalW比较了序列并且比对了氨基酸或DNA序列整体，并且因此可以提供有关整个氨基酸序列的序列保守性的数据。ClustalW算法用于几个可商购的DNA/氨基酸分析软件包，如VectorNTIProgramSuite的ALIGNX模块(英杰公司(InvitrogenCorporation)，卡尔斯巴德(Carlsbad)，加利福尼亚(CA))。用ClustalW进行氨基酸序列比对之后，可以估算出氨基酸一致性百分数。适用于ClustalW比对分析的软件程序的非限制性实例是GENEDOC^TM。GENEDOC^TM(卡尔尼古拉斯公司(KarlNicholas))允许在多个蛋白之间评估氨基酸(或DNA)相似性和一致性。用于比较序列的数学算法的另一个非限制性实例是迈尔斯(Myers)和米勒(Miller)(1988)CABIOS4：11-17的算法。这种算法被结合到ALIGN程序(版本2.0)中，该程序是GCG威斯康星遗传学软件包(WisconsinGeneticsSoftwarePackage)(版本10)(可商购自阿塞勒德公司(Accelrys,Inc.)，斯克兰顿路9685号(9685ScrantonRd.)，圣地亚哥(SanDiego)，加利福尼亚州，美国)的一部分。当利用ALIGN程序来比较氨基酸序列时，可以使用PAM120权重残基表、空位长度罚分12、以及空位罚分4。

除非另外说明，GAP版本10(它使用尼德尔曼(Needleman)和翁施(Wunsch)(1970)分子生物学杂志(J.Mol.Biol.)48(3)：443-453的算法)将使用以下参数用于确定序列一致性或相似性：对于核苷酸序列的一致性百分比和相似性百分比，使用GAP权重50和长度权重3以及nwsgapdna.cmp评分矩阵；对于氨基酸序列的一致性百分比和相似性百分比，使用GAP权重8和长度权重2以及BLOSUM62评分程序。还可以使用等效程序。“等效程序”是指以下任何序列比较程序，该程序针对所研究的任何两个序列、当与由GAP版本10所产生的相应的比对相比时产生了比对，该比对具有相同的核苷酸残基匹配以及相同的序列一致性百分比。

本发明还涵盖了变体核酸分子。编码杀有害生物蛋白的核苷酸序列的“变体”包括编码在本文中所披露的杀有害生物蛋白、但由于遗传密码的简并而保守性地不同的那些序列，连同如以上所讨论的足够一致的那些序列。天然存在的等位基因变体可以使用所熟知的分子生物学技术来鉴定，例如像以下所概括的聚合酶链式反应(PCR)以及杂交技术。变体核苷酸序列还包括合成地衍生的核苷酸序列，这些核苷酸序列已经例如通过使用定点诱变而产生但它们仍编码在本发明中所披露的杀有害生物蛋白，如以下所讨论的。本发明所涵盖的变体蛋白是有生物活性的，即它们继续具有所希望的天然蛋白的生物活性，即杀有害生物活性。“保留活性”是指该片段将具有该天然蛋白的至少约30％、至少约50％、至少约70％、或至少约80％的杀有害生物活性。用于测量杀有害生物活性的方法在本领域是熟知的。参见例如，恰普拉(Czapla)和朗(Lang)(1990)经济昆虫学杂志(J.Econ.Entomol.)83：2480-2485；安德鲁斯(Andrews)等人(1988)生物化学杂志(Biochem.J.)252：199-206；马罗内(Marrone)等人(1985)经济昆虫学杂志(J.ofEconomicEntomology)78：290-293；以及美国专利号5,743,477，将它们全部通过引用以其全文结合在此。

熟练的技术人员将进一步意识到，可以通过突变本发明的核苷酸序列来引入变化，由此导致在这些编码的杀有害生物蛋白的氨基酸序列中的变化，而不改变这些蛋白的生物活性。因此，可以通过将一个或多个核苷酸置换、添加、或缺失引入到在此披露的相应核苷酸序列中而产生分离的核酸分子变体，使得将一个或多个氨基酸置换、添加、或缺失引入到编码的蛋白中。可以通过标准的技术(如定点诱变和PCR介导的诱变)来引入突变。这样的变体核苷酸序列也由本发明所涵盖。

例如，可以在一个或多个、预测的、非必需氨基酸残基处做出保守性氨基酸置换。“非必需”氨基酸残基是以下残基，该残基可以从杀有害生物蛋白的野生型序列中进行改变而不改变生物活性，而“必需”氨基酸残基是生物活性所要求的。“保守的氨基酸置换”是其中氨基酸残基被具有相似侧链的氨基酸残基替换的置换。在本领域中已经定义了具有类似侧链的氨基酸残基的家族。这些家族包括具有以下的氨基酸：碱性侧链(例如赖氨酸、精氨酸、组氨酸)，酸性侧链(例如天冬氨酸、谷氨酸)，不带电极性侧链(例如甘氨酸、天冬酰胺、谷氨酰胺、丝氨酸、苏氨酸、酪氨酸、半胱氨酸)，非极性侧链(例如丙氨酸、缬氨酸、亮氨酸、异亮氨酸、脯氨酸、苯丙氨酸、甲硫氨酸、色氨酸)，β-支链的侧链(例如苏氨酸、缬氨酸、异亮氨酸)以及芳香族侧链(例如酪氨酸、苯丙氨酸、色氨酸、组氨酸)。

δ-内毒素通常具有五个保守的序列结构域和三个保守的结构性结构域(参见，例如戴马格德(deMaagd)等人(2001)遗传学趋势(TrendsGenetics)17：193-199)。第一个保守的结构性结构域由7个α螺旋组成并且参与膜插入和孔形成。结构域II由排列成希腊钥匙构型的三个β片层组成并且结构域III由“果冻卷”结构中的两个反向平行的β片层组成(戴马格德(deMaagd)等人，2001，同上)。结构域II和III参与受体识别和结合，并且因此被认为是毒素特异性的决定簇。

氨基酸置换可以在保留功能的非保守性区域中做出。通常，此类置换并非针对保守的氨基酸残基、或针对在保守基序内的氨基酸残基而做出，其中此类残基是蛋白活性所必需的。保守的并且对于蛋白活性可能是必需的残基的实例包括例如以下残基，这些残基在与本发明的序列相似或相关的毒素的比对中所包括的所有蛋白之间是相同(例如，在同源蛋白的比对中是相同的残基)。保守的但可能允许保守性氨基酸置换、并且仍保留活性的残基的实例包括例如以下残基，这些残基在与本发明的序列相似或相关的毒素的比对中所包括的所有蛋白之间仅具有保守性置换(例如，在比对同源蛋白中所包括的所有蛋白之间仅具有保守性置换的残基)。然而，本领域的普通技术人员应当理解，功能性变体在保守的残基中可以具有少量的保守性或非保守性改变。

可替代地，可以通过沿着该编码序列的全部或部分随机地引入突变(如通过饱和诱变)来制备变体核苷酸序列，并且可以针对赋予杀有害生物活性的能力来筛选得到的突变体以鉴定保留活性的突变体。在诱变之后，可以重组表达编码的蛋白，并且可以使用标准的测定技术来测定蛋白的活性。

使用方法如PCR、杂交等可以鉴定相应的杀有害生物序列，此类序列与本发明的序列具有实质上一致性(例如，贯穿参比序列的整体，至少约70％、至少约75％、80％、85％、90％、95％或更高序列一致性)并且具有或赋予了杀有害生物活性。参见，例如萨姆布鲁克(Sambrook)和拉塞尔(Russell)(2001)分子克隆：实验室手册(MolecularCloning:ALaboratoryManual.)(冷泉港实验室出版社(ColdSpringHarborLaboratoryPress)，冷泉港(ColdSpringHarbor)，纽约)以及英尼斯(Innis)等人(1990)PCR方案：方法和应用指导(PCRProtocols:AGuidetoMethodsandApplications)(学术出版社(AcademicPress)，纽约)。

在杂交方法中，该杀有害生物核苷酸序列的全部或部分可以用于筛选cDNA或基因组文库。用于构建此类cDNA和基因组文库的方法在本领域内通常是已知的，并且披露于萨姆布鲁克和拉塞尔，2001，同上。所谓的杂交探针可以是基因组DNA片段、cDNA片段、RNA片段或其他寡核苷酸，并且可以用可检测基团(如³²P)或任何其他可检测标记物(如其他放射性同位素、荧光化合物、酶或酶辅因子)进行标记。可以基于在此披露的已知的编码杀有害生物蛋白的核苷酸序列通过标记合成寡核苷酸来制备用于杂交的探针。可以另外地使用简并引物，这些引物是基于在该核苷酸序列或编码的氨基酸序列中的保守性核苷酸或氨基酸残基而设计的。这种探针典型地包括以下核苷酸序列的区域，这些核苷酸序列区域在严格条件下与本发明的编码杀有害生物蛋白的核苷酸序列或它的片段或变体的至少约12个、至少约25个、至少约50、75、100、125、150、175、或200个连续核苷酸进行杂交。用于制备用于杂交的探针的方法通常是本领域已知的，并且披露于萨姆布鲁克和拉塞尔，2001(同上)中，该文献通过引用结合在此。

例如，在此披露的完整的杀有害生物序列、或它的一个或多个部分可以用作探针，该探针能够与相应的杀有害生物蛋白样序列以及信使RNA特异性地杂交。为了实现在不同的条件下的特异性杂交，这样的探针包括以下序列，这些序列是独特的并且长度优选为至少约10个核苷酸、或长度为至少约20个核苷酸。这样的探针可以用于通过PCR从选择的生物或样品中扩增对应的杀有害生物序列。这种技术可以用于从所希望的生物中分离另外的编码序列，或用作诊断性测定以便确定在生物中的编码序列的存在。杂交技术包括杂交筛选平板接种的DNA文库(噬斑或菌落；参见，例如萨姆布鲁克等人(1989)分子克隆：实验室手册(第二版，冷泉港实验室出版社，冷泉港，纽约))。

因此，本发明涵盖了用于杂交的探针以及能够与本发明的核苷酸序列的全部或部分(例如，至少约300个核苷酸、至少约400个、至少约500、1000、1200、1500、2000、2500、3000、3500个核苷酸、或者达到在此披露的核苷酸序列的全长)杂交的核苷酸序列。这样的序列的杂交可以在严格条件下进行。“严格条件”或“严格杂交条件”是指以下条件，在这些条件下与其他序列相比探针将与它的靶标序列杂交达到可检测地更大的程度(例如，超过背景至少2倍)。严格条件是序列依赖性的并且在不同的情形下将会不同。通过控制杂交和/或洗涤条件的严格性，可以鉴定出与该探针100％互补的靶标序列(同源探测)。可替代地，可以调整严格条件以允许序列中的一些错配，这样使得检测到更低程度的相似性(异源探测)。通常，探针的长度为小于约1000个核苷酸，优选地长度小于500个核苷酸。

典型地，严格条件将是以下条件，在这些条件下该盐浓度在pH7.0-8.3下是小于约1.5MNa离子，典型地大约0.01至1.0MNa离子浓度(或其他盐类)，并且温度对于短探针(例如，10至50个核苷酸)为至少约30℃，而对于长探针(例如，超过50个核苷酸)为至少约60℃。还可以通过加入去稳定剂(如甲酰胺)实现严格条件。示例的低严格条件包括在37℃下用30％-35％甲酰胺、1MNaCl、1％SDS(十二烷基硫酸纳)的缓冲溶液进行杂交，并且在50℃至55℃下在1X至2XSSC(20XSSC＝3.0MNaCl/0.3M柠檬酸三钠)中进行洗涤。示例的中严格条件包括在37℃下在40％-45％甲酰胺、1.0MNaCl、1％SDS中进行杂交，并且在55℃至60℃下在0.5X至1XSSC中进行洗涤。示例的高严格条件包括在37℃下在50％甲酰胺、1MNaCl、1％SDS中进行杂交，并且在60℃至65℃下在0.1XSSC中进行洗涤。任选地，洗涤缓冲液可以包括大约0.1％至大约1％的SDS。杂交的持续时间通常是小于约24小时，通常为约4至约12小时。

特异性典型地取决于杂交后洗涤的功能，关键因素是最终洗涤溶液的离子强度以及温度。对于DNA-DNA杂合体，可以根据迈因科思(Meinkoth)和瓦尔(Wahl)(1984)分析生物化学(Anal.Biochem.)138：267-284的方程估计T_m：T_m＝81.5℃+16.6(logM)+0.41(％GC)-0.61(％form)-500/L；其中M是一价阳离子的摩尔浓度，％GC是DNA中鸟苷和胞嘧啶核苷酸的百分比，％form是杂交溶液中甲酰胺的百分比，并且L是杂合体的碱基对长度。T_m是以下温度，在该温度下互补的靶标序列的50％与完全匹配的探针进行杂交(在限定的离子强度和pH下)。对于每1％的错配，T_m减少大约1℃；因此，可以调整T_m、杂交、和/或洗涤条件，以便与具有所希望的一致性的序列进行杂交。例如，如果寻找具有>90％一致性的序列，则T_m可以减少10℃。总体上，严格条件被选择为在限定的离子强度和pH下比针对该特定序列及其互补物的热解链点(T_m)低大约5℃。然而，极端严格条件可以利用在低于该热解链点(T_m)1℃、2℃、3℃或4℃下的杂交和/或洗涤；中等严格条件可以利用在低于该热解链点(T_m)6℃、7℃、8℃、9℃、或10℃下的杂交和/或洗涤；低严格条件可以利用在低于该热解链点(T_m)11℃、12℃、13℃、14℃、15℃或20℃下的杂交和/或洗涤。使用该方程、杂交和洗涤组成以及所希望的Tm，本领域普通技术人员应理解，杂交的和/或洗涤溶液的严格性的变化固有地得到了描述。如果所希望的错误匹配程度导致小于45℃(水性溶液)或32℃(甲酰胺溶液)的T_m，则优选增加SSC浓度，这样使得可以使用更高的温度。对核酸杂交的广泛指导见于以下文献：泰森(Tijssen)(1993)生物化学和分子生物学中的实验室技术-使用核酸探针杂交(LaboratoryTechniquesinBiochemistryandMolecularBiology-HybridizationwithNucleicAcidProbes)，第I部分，第2章(爱思唯尔(Elsevier)，纽约)；以及奥苏贝尔(Ausubel)等人，编著(1995)现代分子生物学方法(CurrentProtocolsinMolecularBiology)，第2章(格林出版和威利科学公司(GreenePublishingandWiley-Interscience)，纽约)。参见萨姆布鲁克等人(1989)分子克隆：实验室手册(第2版，冷泉港实验室出版社，冷泉港，纽约)。

分离的蛋白及其变体和片段

杀有害生物蛋白也涵盖于本发明之内。“杀有害生物蛋白”是指具有SEQIDNO：21-74中列出的氨基酸序列的蛋白。还提供了它的片段、生物活性部分以及变体，并且它们可以用于实践本发明的方法。“重组蛋白”或“重组多肽”是用于指如下的蛋白，该蛋白不再存在于它的自然环境中并且已相对于天然蛋白被操纵，使得该重组蛋白或重组多肽不同(例如，在化学组成或结构上)于自然界中存在的那样。

“片段”或“生物学活性部分”包括以下多肽片段，这些多肽片段包括与在SEQIDNO：21-74中列出的氨基酸序列足够地一致的氨基酸序列的多肽片段，并且它们展示出杀有害生物活性。杀有害生物蛋白的生物活性部分可以是以下多肽，该多肽的长度例如为10、25、50、100、150、200、250、300、350、400、450、500、550、600、650、700、750、800、850、900、950、1000、1050、1100、1150、1200、或更多个氨基酸。可以通过重组技术制备这样的生物活性部分，并且对它们的杀有害生物活性进行评估。用于测量杀有害生物活性的方法在本领域是熟知的。参见例如，恰普拉(Czapla)和朗(Lang)(1990)经济昆虫学杂志(J.Econ.Entomol.)83：2480-2485；安德鲁斯(Andrews)等人(1988)生物化学杂志(Biochem.J.)252：199-206；马罗内(Marrone)等人(1985)经济昆虫学杂志(J.ofEconomicEntomology)78：290-293；以及美国专利号5,743,477，将它们全部通过引用以其全文结合在此。如本文中使用的，片段包括SEQIDNO：21-74的至少8个连续的氨基酸。然而，本发明涵盖了其他片段，如在长度上大于约10、20、30、50、100、150、200、250、300、350、400、450、500、550、600、650、700、750、800、850、900、950、1000、1050、1100、1150、1200、或更多个氨基酸的蛋白中的任何片段。

“变体”是指具有以下氨基酸序列的蛋白或多肽，该氨基酸序列与SEQIDNO：21-74的任一项的氨基酸序列具有至少约60％、65％，约70％、75％，约80％、85％，约90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％或99％一致性。变体还包括由与SEQIDNO:1-20的核酸分子或其互补物在严格条件下杂交的核酸分子编码的多肽。变体包括由于诱变而在氨基酸序列方面不同的多肽。由本发明所涵盖的变体蛋白是生物活性的，即它们继续具有所希望的天然蛋白的生物活性，即保留了杀有害生物活性。在一些实施例中，这些变体相对于天然蛋白具有改进的活性。用于测量杀有害生物活性的方法在本领域是熟知的。参见例如，恰普拉(Czapla)和朗(Lang)(1990)经济昆虫学杂志(J.Econ.Entomol.)83：2480-2485；安德鲁斯(Andrews)等人(1988)生物化学杂志(Biochem.J.)252：199-206；马罗内(Marrone)等人(1985)经济昆虫学杂志(J.ofEconomicEntomology)78：290-293；以及美国专利号5,743,477，将它们全部通过引用以其全文结合在此。

细菌基因(如本发明的axmi基因)在开放阅读框的起始附近常常具有多个甲硫氨酸起始密码子。经常，在这些起始密码子中的一个或多个处的翻译起始将导致功能蛋白的产生。这些起始密码子可以包括ATG密码子。然而，细菌(如，芽孢杆菌属)还将密码子GTG识别为起始密码子，并且在GTG密码子处起始翻译的蛋白在第一个氨基酸上包含甲硫氨酸。在少数情况下，细菌系统中的翻译可以在TTG密码子处启动，尽管在这个事件下TTG编码甲硫氨酸。此外，常常不首先确定这些密码子中的哪一些在细菌中自然地使用。因此，应当理解，使用这些可替代的甲硫氨酸密码子之一也可能导致杀有害生物蛋白的产生。这些杀有害生物蛋白涵盖于本发明之中，并且可以在本发明的这些方法中使用。应当理解的是当在植物中表达时有必要将替代起始密码子改变为ATG以用于正确的翻译。

在本发明的不同实施例中，杀有害生物蛋白包括从在此披露的全长核苷酸序列中推导出的氨基酸序列、以及由于使用替代的下游起始位点而比这些全长序列更短的氨基酸序列。因此，本发明的核苷酸序列和/或包括本发明的核苷酸序列的载体、宿主细胞以及植物(以及制备和使用本发明的核苷酸序列的方法)可以包括编码与表1中提及的氨基酸序列相应的氨基酸序列的核苷酸序列。

还涵盖了针对本发明的多肽、或它们的变体或片段的抗体。用于产生抗体的方法在本领域是熟知的(参见，例如哈洛(Harlow)和拉内(Lane)(1988)抗体：实验室手册(Antibodies:ALaboratoryManual)，冷泉港实验室，冷泉港，纽约；美国专利号4,196,265)。

因此，本发明一方面涉及与本发明的蛋白或肽分子中的一种或多种以及它们的同源物、融合物或片段特异性结合的抗体、单链抗原结合分子、或其他蛋白。在特别优选的实施例中，该抗体与具有SEQIDNO：21-74中列出的氨基酸序列的蛋白或其片段特异性地结合。在另一个实施例中，该抗体与包含选自SEQIDNO：21-74中列出的氨基酸序列的氨基酸序列的融合蛋白或其片段特异性地结合。

本发明的抗体可以用于定量地或定性地检测本发明的蛋白或肽分子、或者检测这些蛋白的翻译后修饰。如在此所使用的，如果抗体或肽与本发明的蛋白或肽分子的结合不被非相关分子的存在竞争性地抑制，则将这种结合称为“特异性地结合”。

本发明的抗体可以被包含在试剂盒中，该试剂盒用于检测本发明的蛋白或肽分子。本发明进一步包括检测本发明的蛋白或肽分子(特别是由SEQIDNO：21-74中列出的氨基酸序列编码的蛋白，包括能够特异性结合到本发明的抗体的变体或片段)的方法，该方法包括使样品与本发明的抗体接触，并且确定该样品是否含有本发明的蛋白或肽分子。用于利用抗体来检测感兴趣的蛋白或肽的方法是本领域中已知的。

改变或改进的变体

应当认识到，可以通过不同的方法来改变杀有害生物蛋白的DNA序列，并且这些改变可以导致编码以下蛋白的DNA序列，这些蛋白具有不同于由本发明的杀有害生物蛋白编码的氨基酸序列的那些。这种蛋白可以按照不同的方式进行改变，包括SEQIDNO：21-74的一个或多个氨基酸的氨基酸置换、缺失、截短、以及插入，包括达到约2、约3、约4、约5、约6、约7、约8、约9、约10、约15、约20、约25、约30、约35、约40、约45、约50、约55、约60、约65、约70、约75、约80、约85、约90、约100、约105、约110、约115、约120、约125、约130、约135、约140、约145、约150、约155、或更多个氨基酸置换、缺失或插入。用于此类操作的方法在本领域内通常是己知的。例如，通过在DNA中的突变可以制备杀有害生物蛋白的氨基酸序列变体。这还可以通过几种诱变形式之一和/或在定向进化中来完成。在某些方面，在该氨基酸序列中所编码的改变将基本上不影响该蛋白的功能。这样的变体将具有所希望的杀有害生物活性。然而，应当理解，可以通过使用这样的技术改进杀有害生物蛋白对本发明的这些组合物所赋予的杀有害生物活性的能力。例如，可以在以下宿主细胞中表达杀有害生物蛋白，这些宿主细胞在DNA复制过程中显示出高比率的碱基错掺，如XL-1Red(Stratagene公司，拉荷亚(LaJolla)，加利福尼亚州)。在这样的菌株中繁殖之后，可以分离出DNA(例如通过制备质粒DNA，或通过由PCR进行扩增并且将得到的PCR片段克隆到载体中)，在非诱变菌株中培养这些杀有害生物蛋白突变体，并且鉴定具有杀有害生物活性的经突变的基因，例如通过进行一项对杀有害生物活性进行测试的测定。通常，在摄食测定中混合并使用了这种蛋白。参见，例如马罗内(Marrone)等人(1985)经济昆虫学杂志(J.ofEconomicEntomology)78：290-293。这样的测定可以包括使植物与一种或多种有害生物接触并且确定该植物存活和/或造成这些有害生物死亡的能力。导致毒性增加的突变的实例见于史涅夫(Schnepf)等人(1998)微生物学与分子生物学评论(Microbiol.Mol.Biol.Rev.)62：775-806。

可替代地，可以在氨基或羧基的末端处对多种蛋白的蛋白序列进行改变，而基本上不影响活性。这可以包括通过现代分子方法所引入的插入、缺失、或改变，这些方法如PCR，包括PCR扩增，这些PCR扩增借助于将编码氨基酸的序列包括到在PCR扩增中所使用的寡核苷酸之中而改变或延长了该编码蛋白的序列。可替代地，所加入的蛋白序列可以包括完整的编码蛋白的序列，如在本领域内通常用于产生蛋白融合物的那些序列。这样的融合蛋白常常用于(1)增加感兴趣的蛋白的表达；(2)引入结合结构域、酶活性、或表位以促进蛋白纯化、蛋白检测、或本领域已知的其他实验用途；或(3)将蛋白的分泌或翻译靶向亚细胞器，如革兰氏阴性菌的壁膜间隙，或真核细胞的内质网，后者常常导致蛋白的糖基化。

本发明的变体核苷酸和氨基酸序列还涵盖了由诱变和致重组操作程序(如DNA改组)所衍生的序列。使用这样的操作，可以将一个或多个不同的杀有害生物蛋白编码区用于创造出具有所希望的性质的新杀有害生物蛋白。这样，由一群相关的序列多核苷酸产生重组多核苷酸文库，这些多核苷酸包含具有基本序列一致性并且能够在体外或体内同源重组的序列区。例如，使用这种方法，可以将编码感兴趣的结构域的序列基序在本发明的杀有害生物蛋白基因与其他已知的杀有害生物蛋白基因之间进行改组，以获得编码蛋白的新基因，该蛋白具有改进的感兴趣的性质，例如增加的杀昆虫活性。用于这样的DNA改组的策略在本领域内是己知的。参见例如施特默尔(Stemmer)(1994)美国国家科学院院刊91：10747-10751；施特默尔(1994)自然(Nature)370：389-391；卡莫瑞(Crameri)等人(1997)自然生物技术(NatureBiotech.)15：436-438；摩尔(Moore)等人(1997)分子生物学杂志272：336-347；张(Zhang)等人(1997)美国国家科学院院刊94：4504-4509；卡莫瑞等人(1998)自然391：288-291；以及美国专利号5,605,793和5,837,458。

结构域交换或改组是针对产生改变的杀有害生物蛋白的另一种机制。可在杀有害生物蛋白之间交换结构域，从而导致具有改进的杀有害生物活性或靶标谱的杂合或嵌合毒素。用于产生重组蛋白和测试它们的杀有害生物活性的方法在本领域是熟知的(参见，例如，纳莫夫(Naimov)等人(2001)应用与环境微生物学(Appl.Environ.Microbiol.)67：5328-5330；戴马格德(deMaagd)等人(1996)应用与环境微生物学62：1537-1543；格(Ge)等人(1991)生物化学杂志(J.Biol.Chem.)266：17954-17958；史涅夫等人(1990)生物化学杂志265：20923-20930；兰格(Rang)等人(1999)应用与环境微生物学65：2918-2925)。

在又另一个实施例中，使用以下中的一项或多项可获得变体核苷酸和/或氨基酸序列：易错PCR、寡核苷酸定向诱变、组装PCR、有性PCR诱变、体内诱变、盒式诱变、递归整体诱变、指数整体诱变、位点特异性诱变、基因重组装、基因位点饱和诱变、置换诱变、合成连接重组装(SLR)、重组、递归序列重组、磷酸酯修饰的DNA诱变、含有尿嘧啶的模板诱变、缺口双链体诱变、点错配修复诱变、修复缺陷宿主菌株诱变、化学诱变、辐射所致诱变、缺失诱变、限制选择诱变、限制纯化诱变、人工基因合成、整体诱变、嵌合核酸多聚体建立等。

载体

本发明的杀有害生物序列可以被提供在用于在感兴趣的植物中表达的表达盒中。“植物表达盒”是指DNA构建体，该构建体能够导致蛋白在植物细胞中从开放阅读框中的表达。典型地，这些构建体包括启动子和编码序列。经常，此类构建体还将包含3'非翻译区。此类构建体可以包含“信号序列”或“前导序列”，以促进该肽的共翻译成或翻译后运输至某些细胞内结构，如叶绿体(或其他质体)、内质网、或高尔基体。

“信号序列”是指如下序列，已知或怀疑该序列导致穿过细胞膜的共翻译或翻译后肽运输。在真核生物中，这典型地涉及分泌到高尔基体内，其中具有某些产生的糖基化。细菌的杀昆虫毒素经常被合成为原毒素，它们是在靶标有害生物的肠中被蛋白水解激活(常(Chang)(1987)酶学方法(MethodsEnzymol.)153：507-516)。在本发明的一些实施例中，信号序列位于天然序列中，或可以衍生自本发明的序列。“前导序列”是指当被翻译时导致足以触发肽链的共翻译运输至亚细胞器的氨基酸序列的任何序列。因此，这包括通过进入内质网内、进入液泡、质体(包括叶绿体、线粒体)等中来对运输和/或糖基化进行靶向的前导序列。

“植物转化载体”是指DNA分子，该分子对于有效转化植物细胞而言是所必需的。这种分子可以由一个或多个植物表达盒组成，或可以被组织进入超过一个的“载体”DNA分子中。例如，二元载体是植物转化载体，它们利用两个非连续DNA载体来编码用于植物细胞转化的所有需求的顺式和反式作用功能(海伦斯(Hellens)和姆林内克斯(Mullineaux)(2000)植物科学趋势(TrendsinPlantScience)5：446-451)。“载体”是指用于在不同的宿主细胞之间进行转移的核酸构建体。“表达载体”是指载体，该载体具有将异源的DNA序列或片段结合、整合到外源细胞中并且在其中表达该异源DNA序列或片段的能力。该盒将包括与本发明的序列可操作地连接的5'和/或3'调节序列。“可操作地连接”是指在启动子与第二序列之间的功能性连接，其中该启动子序列引发并介导了对应于该第二序列的DNA序列的转录。一般来说，可操作地连接是指所连接的核酸序列是连续的，并且当需要接合两个蛋白编码区时，是连续的并且处于同一读码框中。在一些实施例中，核苷酸序列被可操作地连接至能够指导所述核苷酸序列在宿主细胞(如微生物宿主细胞或植物宿主细胞)中的表达的异源启动子。该盒可以另外地包括至少一种有待共转化到生物中的另外的基因。可替代地，可以在多个表达盒上提供这种或这些另外的基因。

在不同实施例中，本发明的核苷酸序列被可操作地连接至启动子，例如植物启动子。“启动子”是指核酸序列，该核酸序列发挥作用以指导下游编码序列的转录。该启动子连同其他转录和翻译的调节性核酸序列(也被称为“控制序列”)是感兴趣的DNA序列的表达所必需的。

这种表达盒配备有多个限制位点，这些限制位点用于插入该杀有害生物序列以便处于这些调节区的转录调节之下。

该表达盒将以5'-3'转录方向包括转录和翻译起始区(即，启动子)、本发明的DNA序列以及在植物中发挥作用的翻译和转录终止区(即，终止区)。该启动子对于该植物宿主和/或本发明的DNA序列而言可以是天然的或类似的、或外源的或异源的。另外地，该启动子可以是天然序列或可替代地是合成序列。在该启动子对于该植物宿主而言是“天然的”或“同源的”时，它是指该启动子是在该启动子所引入的天然植物中被发现的。在启动子对于本发明的DNA序列而言是“外源的”或“异源的”时，它是指该启动子对于可操作地连接的本发的明DNA序列而言不是天然的或自然发生的启动子。

该终止区对于转录起始区而言可以是天然的，对于可操作地连接的感兴趣的DNA序列而言可以是天然的，对于该植物宿主而言可以是天然的，或可以衍生自另一种来源(即，对于该启动子、该感兴趣的DNA序列、该植物宿主、或它们的任何组合而言是外源的或异源的)。方便的终止区可以获自根瘤土壤杆菌(A.tumefaciens)的Ti质粒，如章鱼碱合成酶和胭脂碱合成酶的终止区。还参见，乔瑞诺(Guerineau)等人(1991)分子遗传学与普通遗传学(Mol.Gen.Genet.)262：141-144；普劳德富特(Proudfoot)(1991)细胞(Cell)64：671-674；桑斯法冈(Sanfacon)等人(1991)基因与发育(GenesDev.)5：141-149；摩根(Mogen)等人(1990)植物细胞(PlantCell)2：1261-1272；芒罗(Munroe)等人(1990)基因(Gene)91：151-158；巴拉斯(Ballas)等人(1989)核酸研究(NucleicAcidsRes.)17：7891-7903；以及乔希(Joshi)等人(1987)核酸研究15：9627-9639)。

在适当情况下，可以针对在转化的宿主细胞中的增加的表达来优化这种或这些基因。即，可以使用宿主细胞偏爱的密码子来合成这些基因以用于改进的表达，或者能以宿主偏爱的密码子使用频率使用密码子来合成这些基因。通常，该基因的GC含量会增加。参见，例如，坎贝尔(Campbell)和哥瑞(Gowri)(1990)植物生理学(PlantPhysiol.)92：1-11，它讨论了宿主偏爱的密码子使用。在本领域中用于合成植物偏好基因的多种方法是可获得的。参见例如美国专利号5,380,831和5,436,391、美国专利公开号20090137409、以及莫里(Murray)等人(1989)核酸研究17：477-498，它们通过引用结合在此。

在一个实施例中，将杀有害生物蛋白靶向叶绿体而用于表达。按照这种方式，在该杀有害生物蛋白未直接被插到该叶绿体中时，该表达盒将另外地包括编码转运肽的核酸以便将该杀有害生物蛋白导向该叶绿体。这些转运肽在本领域是已知的。参见例如，冯·海耶(VonHeijne)等人(1991)植物分子生物学导报(PlantMol.Biol.Rep.)9：104-126；克里克(Clark)等人(1989)生物化学杂志264：17544-17550；岱拉-乔帕(Della-Cioppa)等人(1987)植物生理学84：965-968；罗默(Romer)等人(1993)生物化学和生物物理研究通讯(Biochem.Biophys.Res.Commun.)196：1414-1421；以及沙阿(Shah)等人(1986)科学(Science)233：478-481。

可以针对在叶绿体中的表达来优化被靶向该叶绿体的杀有害生物基因，以便考虑在该植物细胞核与这种细胞器之间在密码子使用方面的差异。按照这种方式，可以使用叶绿体偏爱的密码子来合成感兴趣的核酸。参见，例如，美国专利号5,380,831，该专利通过引用结合在此。

植物转化

本发明的方法涉及将核苷酸构建体引入到植物中。“引入”是指按照以下方式将该核苷酸构建体给予该植物，使得该构建体获得了接近该植物的细胞的内部的途径。本发明的方法不需要使用将核苷酸构建体引入植物中的具体方法，只需要该核苷酸构建体获得接近该植物的至少一个细胞的内部的途径。用于将核苷酸构建体引入到植物中的方法是本领域已知的，这些方法包括但不限于：稳定转化法、瞬时转化法、以及病毒介导法。

“植物”是指整个植物、植物器官(例如，叶子、茎、根、等)、种子、植物细胞、繁殖体、胚芽以及以上的子代。植物细胞可以是分化的或未分化的(例如，愈伤组织、悬浮培养细胞、原生质体、叶细胞、根细胞、韧皮部细胞、花粉)。

“转基因植物”或“经转化的植物”或“稳定转化的”植物或细胞或组织是指已经将外源的核酸序列或DNA片段结合或整合到该植物细胞中的植物。这些核酸序列包括外源的、或不存在于该未转化的植物细胞中的那些序列、以及可以是内源的、或存在于该未转化的植物细胞中的那些序列。“异源的”大体上是指以下核酸序列，这些核酸序列对于它们所在的细胞或天然基因组的一部分而言不是内源的，并且已经通过感染、转染、显微注射、电穿孔、微粒轰击、或类似方法加到该细胞中。

本发明的转基因植物表达了在此披露的新颖的毒素序列中的一种或多种。在一些实施例中，本发明的蛋白或核苷酸序列在植物中与编码向此类植物赋予有用的农艺特性的蛋白或RNA的其他基因有利地组合。在编码为转化的植物赋予有用的农艺特性的蛋白或RNA的基因之中，可以提及编码赋予对一种或多种除草剂的耐受性的蛋白、以及赋予对某些昆虫的耐受性的其他蛋白、赋予对某些疾病的耐受性的那些蛋白的DNA序列，编码提供线虫或昆虫控制等的RNA的DNA。此类基因特别描述在公开的PCT专利申请WO91/02071和WO95/06128以及美国专利7,923,602和美国专利申请公开号20100166723，将它们各自通过引用以其全文结合在此。

在编码为转化的植物细胞和植物赋予对某些除草剂的耐受性的蛋白的DNA序列中，可以提及赋予对草铵膦除草剂的耐受性的bar或PAT基因或天蓝色链霉菌基因(描述于WO2009/152359中)、编码赋予对以EPSPS作为靶标的除草剂的耐受性的合适的EPSPS(如草甘膦及其盐)的基因(US4,535,060、US4,769,061、US5,094,945、US4,940,835、US5,188,642、US4,971,908、US5,145,783、US5,310,667、US5,312,910、US5,627,061、US5,633,435)、编码草甘膦-正-乙酰转移酶的基因(例如US8,222,489、US8,088,972、US8,044,261、US8,021,857、US8,008,547、US7,999,152、US7,998,703、US7,863,503、US7,714,188、US7,709,702、US7,666,644、US7,666,643、US7,531,339、US7,527,955、以及US7,405,074)、编码草甘膦氧化还原酶的基因(例如US5,463,175)、或编码HPPD抑制剂耐受蛋白的基因(例如，该HPPD抑制剂耐受基因描述于WO2004/055191、WO199638567、US6791014、WO2011/068567、WO2011/076345、WO2011/085221、WO2011/094205、WO2011/068567、WO2011/094199、WO2011/094205、WO2011/145015、WO2012056401、以及PCT/US2013/59598中)。

在编码合适的EPSPS(其赋予对以EPSPS为靶标的除草剂的耐受性)的DNA序列中，更特别地提及如下基因，该基因编码植物EPSPS，特别是玉米EPSPS，特别是包括两个突变(特别是氨基酸位置102处突变和氨基酸位置106处突变)的玉米EPSPS的基因(WO2004/074443)，并且描述于专利申请US6566587，在下文命名为双突变型玉米EPSPS或2mEPSPS，或如下基因，该基因编码从土壤杆菌属分离的EPSPS并且通过US专利5,633,435的序列ID号2和序列ID号3描述，也称为CP4。

在编码合适的EPSPS(其赋予对以EPSPS为靶标的除草剂的耐受性)的DNA序列中，更特别地提及如下基因，该基因编码来自球形节杆菌的EPSPSGRG23，以及还有突变体GRG23ACE1、GRG23ACE2、或GRG23ACE3，特别是描述于WO2008/100353中的GRG23的突变体或变体，例如WO2008/100353中的SEQIDNo.29的GRG23(ace3)R173K。

在编码EPSPS的DNA序列，并且更特别地编码上述基因的情况下，编码这些酶的序列有利地在编码过渡肽(特别是描述于US专利5,510,471或5,633,448中的“优化转运肽”)的序列前面。

可以与本发明的核酸序列组合的示例性的除草剂耐受性性状进一步包括至少一种ALS(乙酰乳酸合酶)抑制剂(WO2007/024782)；突变的拟南芥属ALS/AHAS基因(美国专利6,855,533)；编码通过新陈代谢赋予对2,4-D(2,4-二氯苯氧乙酸)的耐受性的2,4-D-单加氧酶的基因(美国专利6,153,401)；以及编码通过新陈代谢赋予对麦草畏(3,6-二氯-2-甲氧基苯甲酸)的耐受性的麦草畏单加氧酶的基因(US2008/0119361和US2008/0120739)。

在不同的实施例中，本发明的核酸与一个或多个除草剂耐受基因叠加，该一个或多个除草剂耐受基因包括一个或多个HPPD抑制剂除草剂耐受基因、和/或耐草甘膦和/或草铵膦的一个或多个基因。

在编码涉及对昆虫的耐受性的特性的蛋白的DNA序列中，更特别地提及在文献中广泛描述并且本领域的普通技术人员熟知的Bt蛋白。也将提及从细菌如发光杆菌属提取的蛋白(WO97/17432&WO98/08932)。

在编码赋予对昆虫的耐受性的新颖特性的感兴趣的蛋白的此类DNA序列中，更特别地提及在文献中广泛描述并且本领域的普通技术人员熟知的BtCry或VIP蛋白。这些包括衍生自Cry1F蛋白的Cry1F蛋白或杂交体(例如，US6,326,169；US6,281,016；US6,218,188中所描述的杂合Cry1A-Cry1F蛋白或其毒性片段)，Cry1A-型蛋白或其毒性片段(优选衍生自Cry1Ac蛋白的Cry1Ac蛋白或杂交体)(例如，US5,880,275中所描述的杂合Cry1Ab-Cry1Ac蛋白)或如EP451878中所描述的Cry1Ab或Bt2蛋白或其杀昆虫片段，如WO2002/057664中所描述的Cry2Ae、Cry2Af或Cry2Ag蛋白或其毒性片段，WO2007/140256中所描述的Cry1A.105蛋白(SEQIDNo.7)或其毒性片段，NCBI登录号ABG20428的VIP3Aa19蛋白，NCBI登录号ABG20429的VIP3Aa20蛋白(SEQIDNo.2，于WO2007/142840中)，COT202或COT203棉花事件中产生的VIP3A蛋白(分别地为WO2005/054479和WO2005/054480)，如WO2001/47952中所描述的Cry蛋白，VIP3Aa蛋白或其毒性片段(如描述于埃斯特鲁奇(Estruch)等人(1996)，美国科学院院刊28；93(11)：5389-94和US6,291,156)，来自致病杆菌属(如WO98/50427中描述的)、沙雷氏菌属(特别上来自嗜虫沙雷氏菌)或发光杆菌属物种菌株的杀昆虫蛋白，例如来自发光杆菌属的Tc-蛋白(如描述于WO98/08932中)(例如沃特菲尔德(Waterfield)等人，2001，应用与环境微生物学(ApplEnvironMicrobiol.)67(11)：5017-24；法伦许-康斯坦特(Ffrench-Constant)和鲍恩(Bowen)，2000，细胞与分子生命科学(CellMolLifeSci.)；57(5)：828-33)。在此还包括了与上述序列中任一个在一些个(1-10个，优选1-5个)氨基酸上不同的这些蛋白中的任一个的任何变体或突变体，特别是它们的毒性片段的序列，或它们被稠合至转运肽，如质体转运肽、或另一种蛋白或肽。

在不同的实施例中，本发明的核酸可以在植物中与赋予所希望性状的一个或多个基因组合，这些性状如除草剂耐受性、昆虫耐受性、耐旱性、线虫控制、水分利用效率、氮利用效率、改进的营养价值、抗病性、改进的光合作用、改进的纤维质量、胁迫耐受性、改进的繁殖等。

在相同物种的植物中可与本发明的基因组合的特别有用的转基因事件(例如，通过杂交或通过重新转化植物，该植物含有以本发明的嵌合基因进行的另一个转基因事件)包括事件531/PV-GHBK04(棉花，昆虫控制，描述于WO2002/040677中)，事件1143-14A(棉花，昆虫控制，未保藏，描述于WO2006/128569中)；事件1143-51B(棉花，昆虫控制，未保藏，描述于WO2006/128570中)；事件1445(棉花，除草剂耐受，未保藏，描述于US-A2002-120964或WO2002/034946事件17053(水稻，除草剂耐受，保藏号为PTA-9843，描述于WO2010/117737中)；事件17314(水稻，除草剂耐受，保藏号为PTA-9844，描述于WO2010/117735中)；事件281-24-236(棉花，昆虫控制-除草剂耐受，保藏号为PTA-6233，描述于WO2005/103266或US-A2005-216969中)；事件3006-210-23(棉花，昆虫控制-除草剂耐受，保藏号为PTA-6233，描述于US-A2007-143876或WO2005/103266中)；事件3272(玉米，质量性状，保藏号为PTA-9972，描述于WO2006/098952或US-A2006-230473中)；事件33391(小麦，除草剂耐受，保藏号为PTA-2347，描述于WO2002/027004中)，事件40416(玉米，昆虫控制-除草剂耐受，保藏号为ATCCPTA-11508，描述于WO11/075593中)；事件43A47(玉米，昆虫控制-除草剂耐受，保藏号为ATCCPTA-11509，描述于WO2011/075595中)；事件5307(玉米，昆虫控制，保藏号为ATCCPTA-9561，描述于WO2010/077816中)；事件ASR-368(翦股颖，除草剂耐受，保藏号为ATCCPTA-4816，描述于US-A2006-162007或WO2004/053062中)；事件B16(玉米，除草剂耐受，未保藏，描述于US-A2003-126634中)；事件BPS-CV127-9(大豆，除草剂耐受，保藏号为NCIMBNo.41603，描述于WO2010/080829中)；事件BLR1(油菜，恢复雄性不育，保藏号为NCIMB41193，描述于WO2005/074671中)，事件CE43-67B(棉花，昆虫控制，保藏号为DSMACC2724，描述于US-A2009-217423或WO2006/128573中)；事件CE44-69D(棉花，昆虫控制，未保藏，描述于US-A2010-0024077中)；事件CE44-69D(棉花，昆虫控制，未保藏，描述于WO2006/128571中)；事件CE46-02A(棉花，昆虫控制，未保藏，描述于WO2006/128572中)；事件COT102(棉花，昆虫控制，未保藏，描述于US-A2006-130175或WO2004/039986中)；事件COT202(棉花，昆虫控制，未保藏，描述于US-A2007-067868或WO2005/054479中)；事件COT203(棉花，昆虫控制，未保藏，描述于WO2005/054480中)；事件DAS21606-3/1606(大豆，除草剂耐受，保藏号为PTA-11028，描述于WO2012/033794中)，事件DAS40278(玉米，除草剂耐受，保藏号为ATCCPTA-10244，描述于WO2011/022469中)；事件DAS-44406-6/pDAB8264.44.06.1(大豆，除草剂耐受，保藏号为PTA-11336，描述于WO2012/075426中)，事件DAS-14536-7/pDAB8291.45.36.2(大豆，除草剂耐受，保藏号为PTA-11335，描述于WO2012/075429中)，事件DAS-59122-7(玉米，昆虫控制-除草剂耐受，保藏号为ATCCPTA11384，描述于US-A2006-070139中)；事件DAS-59132(玉米，昆虫控制-除草剂耐受，未保藏，描述于WO2009/100188中)；事件DAS68416(大豆，除草剂耐受，保藏号为ATCCPTA-10442，描述于WO2011/066384或WO2011/066360中)；事件DP-098140-6(玉米，除草剂耐受，保藏号为ATCCPTA-8296，描述于US-A2009-137395或WO08/112019中)；事件DP-305423-1(大豆，质量性状，未保藏，描述于US-A2008-312082或WO2008/054747中)；事件DP-32138-1(玉米，杂交系统，保藏号为ATCCPTA-9158，描述于US-A2009-0210970或WO2009/103049中)；事件DP-356043-5(大豆，除草剂耐受，保藏号为ATCCPTA-8287，描述于US-A2010-0184079或WO2008/002872中)；事件EE-1(茄子，昆虫控制，未保藏，描述于WO07/091277中)；事件FI117(玉米，除草剂耐受，保藏号为ATCC209031，描述于US-A2006-059581或WO98/044140中)；事件FG72(大豆，除草剂耐受，保藏号为PTA-11041，描述于WO2011/063413中)，事件GA21(玉米，除草剂耐受，保藏号为ATCC209033，描述于US-A2005-086719或WO98/044140中)；事件GG25(玉米，除草剂耐受，保藏号为ATCC209032，描述于US-A2005-188434或WO98/044140中)；事件GHB119(棉花，昆虫控制-除草剂耐受，保藏号为ATCCPTA-8398，描述于WO2008/151780中)；事件GHB614(棉花，除草剂耐受，保藏号为ATCCPTA-6878，描述于US-A2010-050282或WO2007/017186中)；事件GJ11(玉米，除草剂耐受，保藏号为ATCC209030，描述于US-A2005-188434或WO98/044140中)；事件GMRZ13(甜菜，抗病毒，保藏号为NCIMB-41601，描述于WO2010/076212中)；事件H7-1(甜菜，除草剂耐受，保藏号为NCIMB41158或NCIMB41159，描述于US-A2004-172669或WO2004/074492中)；事件JOPLIN1(小麦，疾病耐受，未保藏，描述于US-A2008-064032中)；事件LL27(大豆，除草剂耐受，保藏号为NCIMB41658，描述于WO2006/108674或US-A2008-320616中)；事件LL55(大豆，除草剂耐受，保藏号为NCIMB41660，描述于WO2006/108675或US-A2008-196127中)；事件LL棉花25(棉花，除草剂耐受，保藏号为ATCCPTA-3343，描述于WO2003/013224或US-A2003-097687中)；事件LLRICE06(水稻，除草剂耐受，保藏号为ATCC203353，描述于US6,468,747或WO2000/026345中)；事件LLRice62(水稻，除草剂耐受，保藏号为ATCC203352，描述于WO2000/026345)，事件LLRICE601(水稻，除草剂耐受，保藏号为ATCCPTA-2600，描述于US-A2008-2289060或WO2000/026356中)；事件LY038(玉米，质量性状，保藏号为ATCCPTA-5623，描述于US-A2007-028322或WO2005/061720中)；事件MIR162(玉米，昆虫控制，保藏号为PTA-8166，描述于US-A2009-300784或WO2007/142840中)；事件MIR604(玉米，昆虫控制，未保藏，描述于US-A2008-167456或WO2005/103301中)；事件MON15985(棉花，昆虫控制，保藏号为ATCCPTA-2516，描述于US-A2004-250317或WO2002/100163中)；事件MON810(玉米，昆虫控制，未保藏，描述于US-A2002-102582中)；事件MON863(玉米，昆虫控制，保藏号为ATCCPTA-2605，描述于WO2004/011601或US-A2006-095986中)；事件MON87427(玉米，传粉控制，保藏号为ATCCPTA-7899，描述于WO2011/062904中)；事件MON87460(玉米，胁迫耐受，保藏号为ATCCPTA-8910，描述于WO2009/111263或US-A2011-0138504中)；事件MON87701(大豆，昆虫控制，保藏号为ATCCPTA-8194，描述于US-A2009-130071或WO2009/064652中)；事件MON87705(大豆，质量性状-除草剂耐受，保藏号为ATCCPTA-9241，描述于US-A2010-0080887或WO2010/037016中)；事件MON87708(大豆，除草剂耐受，保藏号为ATCCPTA-9670，描述于WO2011/034704中)；事件MON87712(大豆，产量，保藏号为PTA-10296，描述于WO2012/051199中)，事件MON87754(大豆，质量性状，保藏号为ATCCPTA-9385，描述于WO2010/024976中)；事件MON87769(大豆，质量性状，保藏号为ATCCPTA-8911，描述于US-A2011-0067141或WO2009/102873中)；事件MON88017(玉米，昆虫控制-除草剂耐受，保藏号为ATCCPTA-5582，描述于US-A2008-028482或WO2005/059103中)；事件MON88913(棉花，除草剂耐受，保藏号为ATCCPTA-4854，描述于WO2004/072235或US-A2006-059590中)；事件MON88302(油菜，除草剂耐受，保藏号为PTA-10955，描述于WO2011/153186中)，事件MON88701(棉花，除草剂耐受，保藏号为PTA-11754，描述于WO2012/134808中)，事件MON89034(玉米，昆虫控制，保藏号为ATCCPTA-7455，描述于WO07/140256或US-A2008-260932中)；事件MON89788(大豆，除草剂耐受，保藏号为ATCCPTA-6708，描述于US-A2006-282915或WO2006/130436中)；事件MS11(油菜，传粉控制-除草剂耐受，保藏号为ATCCPTA-850或PTA-2485，描述于WO2001/031042中)；事件MS8(油菜，传粉控制-除草剂耐受，保藏号为ATCCPTA-730，描述于WO2001/041558或US-A2003-188347中)；事件NK603(玉米，除草剂耐受，保藏号为ATCCPTA-2478，描述于US-A2007-292854中)；事件PE-7(水稻，昆虫控制，未保藏，描述于WO2008/114282中)；事件RF3(油菜，传粉控制-除草剂耐受，保藏号为ATCCPTA-730，描述于WO2001/041558或US-A2003-188347中)；事件RT73(油菜，除草剂耐受，未保藏，描述于WO2002/036831或US-A2008-070260中)；事件SYHT0H2/SYN-000H2-5(大豆，除草剂耐受，保藏号为PTA-11226，描述于WO2012/082548中)，事件T227-1(甜菜，除草剂耐受，未保藏，描述于WO2002/44407或US-A2009-265817中)；事件T25(玉米，除草剂耐受，未保藏，描述于US-A2001-029014或WO2001/051654中)；事件T304-40(棉花，昆虫控制-除草剂耐受，保藏号为ATCCPTA-8171，描述于US-A2010-077501或WO2008/122406中)；事件T342-142(棉花，昆虫控制，未保藏，描述于WO2006/128568中)；事件TC1507(玉米，昆虫控制-除草剂耐受，未保藏，描述于US-A2005-039226或WO2004/099447中)；事件VIP1034(玉米，昆虫控制-除草剂耐受，保藏号为ATCCPTA-3925.，描述于WO2003/052073中)，事件32316(玉米，昆虫控制-除草剂耐受，保藏号为PTA-11507，描述于WO2011/084632中)，事件4114(玉米，昆虫控制-除草剂耐受，保藏号为PTA-11506，描述于WO2011/084621中)，事件EE-GM3/FG72(大豆，除草剂耐受，ATCC登录号PTA-11041)，任选地与事件EE-GM1/LL27或事件EE-GM2/LL55(WO2011/063413A2)叠加，事件DAS-68416-4(大豆，除草剂耐受，ATCC登录号PTA-10442，WO2011/066360A1)，事件DAS-68416-4(大豆，除草剂耐受，ATCC登录号PTA-10442，WO2011/066384A1)，事件DP-040416-8(玉米，昆虫控制，ATCC登录号PTA-11508，WO2011/075593A1)，事件DP-043A47-3(玉米，昆虫控制，ATCC登录号PTA-11509，WO2011/075595A1)，事件DP-004114-3(玉米，昆虫控制，ATCC登录号PTA-11506，WO2011/084621Al)，事件DP-032316-8(玉米，昆虫控制，ATCC登录号PTA-11507，WO2011/084632A1)，事件MON-88302-9(油菜，除草剂耐受，ATCC登录号PTA-10955，WO2011/153186A1)，事件DAS-21606-3(大豆，除草剂耐受，ATCC登录号PTA-11028，WO2012/033794A2)，事件MON-87712-4(大豆，质量性状，ATCC登录号PTA-10296，WO2012/051199A2)，事件DAS-44406-6(大豆，叠加除草剂耐受，ATCC登录号PTA-11336，WO2012/075426A1)，事件DAS-14536-7(大豆，叠加除草剂耐受，ATCC登录号PTA-11335，WO2012/075429A1)，事件SYN-000H2-5(大豆，除草剂耐受，ATCC登录号PTA-11226，WO2012/082548A2)，事件DP-061061-7(油菜，除草剂耐受，无可获得的保藏号，WO2012071039A1)，事件DP-073496-4(油菜，除草剂耐受，无可获得的保藏号，US2012131692)，事件8264.44.06.1(大豆，叠加除草剂耐受，登录号PTA-11336，WO2012075426A2)，事件8291.45.36.2(大豆，叠加除草剂耐受，登录号PTA-11335，WO2012075429A2)，事件SYHT0H2(大豆，ATCC登录号PTA-11226，WO2012/082548A2)，事件MON88701(棉花，ATCC登录号PTA-11754，WO2012/134808A1)，事件KK179-2(苜蓿，ATCC登录号PTA-11833，WO2013/003558A1)，事件pDAB8264.42.32.1(大豆，叠加除草剂耐受，ATCC登录号PTA-11993，WO2013/010094A1)，事件MZDT09Y(玉米，ATCC登录号PTA-13025，WO2013/012775A1)。

通过在本领域内已知的几种技术之一可以实现植物细胞的转化。可以对本发明的杀有害生物基因进行修饰以便在植物细胞中获得或增强表达。典型地，表达这种蛋白的构建体将包含驱动该基因的转录的启动子，连同允许转录终止和多腺苷酸化的3'非翻译区。这样的构建体的组织在本领域内是熟知的。在一些情况下，可能有用的是将该基因工程化使得所得到的肽被分泌、或者以其他方式靶向在植物细胞中。例如，该基因可以被工程化以包括信号肽来促进该肽转移到内质网。还可以优选使该植物表达盒工程化以包括内含子，使得该内含子的mRNA加工是表达所需要的。

典型地，这种“植物类表达盒”将被插入“植物转化载体”中。这种植物转化载体可以包括对于实现植物转化所需要的一个或多个DNA载体。例如，利用包括超过一个连续DNA区段的植物转化载体在本领域内是常见的实践。在本领域内，这些载体经常被称为“二元载体”。二元载体以及具有辅助质粒的载体被最通常地用于土壤杆菌介导的转化，其中对于实现有效转化所需要的DNA区段的大小以及复杂度是相当大的，并且将多种功能分到分离的DNA分子上是有利的。二元载体典型地包含质粒载体，该质粒载体包含对于T-DNA转移所要求的顺式作用序列(如左边界和右边界)、经工程化处理以便能够在植物细胞中表达的选择标记物、以及“感兴趣的基因”(经工程化处理以便能够在植物细胞中表达的基因，对于它而言转基因植物的产生是所希望的)。在这种质粒载体上还存在着细菌复制所需要的序列。这些顺式作用序列以如下方式进行排列以便允许有效转移到植物细胞中并在其中进行表达。例如，该选择标记基因以及该杀有害生物基因位于该左边界与右边界之间。通常第二质粒载体包含反式作用因子，这些反式作用因子介导T-DNA从土壤杆菌属到植物细胞的转化。这种质粒经常包含这些毒性功能(Vir基因)，这些毒性功能允许由土壤杆菌感染植物细胞，并且通过在边界序列上的切割以及vir-介导的DNA转移来转移DNA，如在本领域中所理解(海伦斯(Hellens)和马利诺(Mullineaux)(2000)植物科学趋势(TrendsinPlantScience)5：446-451)。几种类型的土壤杆菌属菌株(例如，LBA4404、GV3101、EHA101、EHA105、等)可以用于植物转化。该第二质粒载体是通过其他方法(如微粒轰击、显微注射、电穿孔、聚乙二醇、等)转化这些植物所不需要的。

通常，植物转化法类涉及将异源DNA转移到靶标植物细胞(例如，未成熟或成熟的胚、悬浮培养物、未分化的愈伤组织、原生质体，等等)中，之后跟随应用最大阈值水平的合适选择(取决于这种选择标记基因)，以便从一群未转化的细胞团中回收这些转化的植物细胞。典型地将外植体转移到新鲜供应的相同培养基中并将其常规培养。随后，在被置于补充有最大阈值水平的选择试剂的再生培养基上之后，这些转化的细胞分化成芽。然后，将这些芽转移到选择性生根培养基中用于回收已生根的芽或小植株。随后，转基因小植株生长成成熟植物并产生能育种子(例如，日江井(Hiei)等人(1994)植物杂志(ThePlantJournal)6：271-282；石田(Ishida)等人(1996)自然生物技术(NatureBiotechnology)14：745-750)。典型地将外植体转移到新鲜供应的相同培养基中并将其常规培养。用于产生转基因植物的技术和方法的一般说明可见于艾尔丝(Ayres)和帕克(Park)(1994)植物科学的关键性评论(CriticalReviewsinPlantScience)13：219-239以及柏木妮(Bommineni)和裘哈尔(Jauhar)(1997)Maydica42：107-120。因为这种转化的材料包括多个细胞；转化的和未转化的细胞二者都存在于受试的靶标愈伤组织或细胞组织或组群的任何部分中。杀死未转化的细胞并允许转化的细胞进行增殖的能力导致了转化的植物培养物。经常，去除未转化的细胞的能力是快速回收转化的植物细胞以及成功产生转基因植物的限制。

转化方案以及用于将核苷酸序列引入到植物中的方案可依据靶向用于转化的植物或植物细胞的类型(即，单子叶或双子叶)而变化。转基因植物的产生可以通过几种方法之一来进行，包括但不限于：显微注射、电穿孔、直接基因转移、通过土壤杆菌将异源DNA引入植物细胞中(土壤杆菌-介导的转化)、用粘附于粒子上的异源外源DNA来轰击植物细胞、射弹粒子加速(ballisticparticleacceleration)、气溶胶束转化(aerosolbeamtransformation)(美国公开申请号20010026941；美国专利号4,945,050；国际公开号WO91/00915；美国公开申请号2002015066)、Lec1转化、以及用于转移DNA的不同的其他非粒子直接介导法。

用于叶绿体转化的方法在本领域内是己知的。参见，例如，什瓦布(Svab)等人(1990)美国国家科学院院刊87：8526-8530；什瓦布和马利加(Maliga)(1993)美国国家科学院院刊90：913-917；什瓦布和马利加(1993)欧洲分子生物学杂志(EMBOJ.)12：601-606。该方法依靠将含有选择标记的DNA的粒子枪递送到质体基因组中并且通过同源重组将该DNA靶向该质体基因组中。另外，质体转化可以通过核编码的以及质体指导的RNA聚合酶的组织偏爱的表达、通过沉默的携带质体的转基因的反式激活来完成。这样一种系统已经被报道于麦克布赖德(McBride)等人(1994)美国国家科学院院刊91：7301-7305。

在将异源外源DNA整合到植物细胞中之后，然后在该培养基中应用最大阈值水平的合适选择以杀死这些未转化的细胞，并且通过定期转移到新鲜培养基中来分离和增殖这些从这种选择处理中存活的假定转化的细胞。通过连续传代和使用合适的选择进行攻击，鉴定并增殖了这些用该质粒载体转化的细胞。然后，可以使用分子和生物化学的方法来证实整合到该转基因植物的基因组中的感兴趣的异源基因的存在。

已转化的细胞可以根据常规方法长成植物。参见，例如，麦考密克(McCormick)等人(1986)植物细胞报告(PlantCellReports)5：81-84。然后，可以使这些植物生长，并且用相同的转化的品系或不同的品系进行授粉，并且鉴定出这种得到的具有所希望的表型特征的组成型表达的杂合体。可以使两代或更多代生长以确保所希望的表型特征的表达被稳定地维持并遗传，然后收获种子以确保已经获得了所希望的表型特征的表达。按照这种方式，本发明提供了经转化的种子(也被称为“转基因种子”)，该种子具有本发明的核苷酸构建体，例如被稳定地结合到它们的基因组中的本发明的表达盒。

植物转化的评估

在将异源外源DNA引入到植物细胞中之后，通过不同的方法来证实异源基因在植物基因组中的转化或整合，这些方法例如对与该整合的基因相关联的核酸、蛋白以及代谢产物的分析。

PCR分析是在移植到土壤中之前的早期阶段筛选转化的细胞、组织或芽中所结合基因的存在的快速方法(萨姆布鲁克和拉塞尔(2001)分子克隆：实验室手册，冷泉港实验室出版社，冷泉港，纽约)。PCR是使用对感兴趣的基因或土壤杆菌载体背景等特异的寡核苷酸引物类来进行。

可以通过基因组DNA的DNA印迹分析来证实植物类转化(萨姆布鲁克和拉塞尔，2001，同上)。一般而言，从该转化体中提取了总DNA，用合适的限制酶进行消化，在琼脂糖凝胶中进行分级，并且转移至硝酸纤维素或尼龙膜上。然后，根据标准的技术，用例如放射性标记³²P的靶标DNA片段来探测该膜或“印迹”以证实引入的基因整合到该植物基因组中(萨姆布鲁克和拉塞尔，2001，同上)。

在RNA印迹分析中，从该转化体的特定组织中分离RNA，在甲醛琼脂糖凝胶中进行分级，并且根据在本领域内是常规的标准操作来印迹到尼龙滤膜上(萨姆布鲁克和拉塞尔，2001，同上)。然后，通过在本领域内已知的方法、通过将该滤膜与衍生自杀有害生物基因的放射性探针进行杂交来测试由该杀有害生物基因所编码的RNA的表达(萨姆布鲁克和拉塞尔，2001，同上)。

使用与存在于杀有害生物蛋白上的一种或多种表位结合的抗体，可以对转基因植物进行蛋白印迹、生物化学测定、以及类似测定，以便通过标准操作来证实由该杀有害生物基因所编码的蛋白的存在(萨姆布鲁克和拉塞尔，2001，同上)。

植物中的杀有害生物活性

在本发明的另一方面，可以产生表达具有杀有害生物活性的杀有害生物蛋白的转基因植物。以上通过实例来说明的方法可用于产生转基因植物，但产生这些转基因植物细胞的方式对于本发明而言不是至关重要的。可以依据实验者的判断来使用在本领域已知或描述的方法，如土壤杆菌介导的转化、生物射弹转化以及非粒子介导法。可以通过在本领域内所说明的普通方法来分离表达杀有害生物蛋白的植物，这些方法例如通过愈伤组织的转化、转化的愈伤组织的选择、以及从此类转基因愈伤组织中再生出能育的植物类。在此类方法中，可以使用任何基因作为选择标记，只要它在植物细胞中的表达赋予了鉴定或选择转化的细胞的能力。

已经开发了多种与植物细胞一起使用的标记物，如对于氯霉素、氨基糖甙G418、潮霉素、以及类似物的抗性。编码参与叶绿体代谢的产物的其他基因也可以用作选择标记。例如，提供对于植物除草剂(如草甘磷、溴苯腈、或咪唑琳酮)的抗性的基因可以具有特别的用途。这样的基因已经被报道(斯托克(Stalker)等人(1985)生物化学杂志263：6310-6314(溴苯腈抗性腈水解酶基因)；以及萨塔西瓦姆(Sathasivan)等人(1990)核酸研究18：2188(AHAS咪唑啉酮抗性基因)。另外，在此披露的这些基因作为评估细菌细胞或植物细胞的转化的标记是有用的。用于检测在植物、植物器官(例如，叶子、茎、根、等)、种子、植物细胞、繁殖体、胚或它们的子代中转基因的存在的方法是本领域内所熟知的。在一个实施例中，通过测试杀有害生物活性来检测转基因的存在。

可以针对杀有害生物活性来测试表达杀有害生物蛋白的能育植物，并且选择显示出最佳活性的植物以用于进一步的育种。在本领域内对有害生物活性进行测定的方法是可供使用的。通常，在摄食测定中混合并使用了这种蛋白。参见，例如马罗内(Marrone)等人(1985)经济昆虫学杂志(J.ofEconomicEntomology)78：290-293。

本发明可以用于转化任何植物种类，包括但不限于单子叶植物和双子叶植物。感兴趣的植物的实例包括但不限于：玉米(corn)(玉米(maize))、高梁、小麦、向日葵、番茄、十字花科植物、胡椒、马铃薯、棉花、水稻、大豆、甜菜、甘蔗、烟草、大麦、以及油菜、芸苔属植物、苜蓿、黑麦、粟、红花、花生、甘薯、木薯、咖啡、椰子、菠萝、柑桔属的树、可可、茶、香蕉、鳄梨、无花果、番石榴、芒果、橄榄、番木瓜、腰果、澳洲坚果、杏仁、燕麦、蔬菜、观赏性植物、以及针叶树。

蔬菜包括但不限于：番茄、莴苣、青豆、利马豆、豌豆，以及甜瓜属(genusCurcumis)的成员，如黄瓜、网纹甜瓜、以及甜瓜。观赏性植物包括但不限于：杜鹃花属、绣球属、木槿属、蔷薇属、郁金香、水仙属、碧冬茄属、康乃馨、一品红、以及菊花。优选地，本发明的植物是作物(例如玉米、高粱、小麦、向日葵、番茄、十字花科植物、胡椒、马铃薯、棉花、稻、大豆、甜菜、甘蔗、烟草、大麦、油菜籽油菜等)。

在有害生物控制方面的用途

在有害生物控制或工程化处理其他生物中用于采用多种菌株作为杀有害生物剂的总体方法在本领域内是已知的，这些菌株包括本发明的核苷酸序列或它的变体。参见，例如，美国专利号5,039,523和EP0480762A2。

包含本发明的核苷酸序列或其变体的芽孢杆菌菌株、或已经被遗传改变而包含本发明的杀有害生物基因和蛋白的微生物可以用于保护农业作物以及产品免受有害生物的侵害。在本发明的一个方面，用以下试剂来处理产生毒素(杀有害生物剂)的生物的完整的(即，未裂解的)细胞，当这些细胞被施用到一种或多种靶标有害生物的环境中时这些试剂延长了在该细胞中产生的毒素的活性。

可替代地，通过将杀有害生物基因引入到细胞宿主中来产生该杀有害生物剂。该杀有害生物基因的表达直接或间接地导致了该杀有害生物剂的细胞内产生和维持。在本发明的一个方面，然后在以下条件下对这些细胞进行处理，当该细胞被施用到一种或多种靶标有害生物的环境时这些条件延长了在该细胞中产生的毒素的活性。得到的产物保留该毒素的毒性。然后，可以按照常规技术来配制这些天然胶囊化的杀有害生物剂，以用于施用到寄宿着靶标有害生物的环境(例如，土壤、水、以及植物的叶)。参见，例如EPA0192319以及其中所引用的文献。可替代地，可配制表达本发明的基因的这些细胞，例如以便允许得到的材料作为杀有害生物剂的施用。

本发明的活性成分通常以组合物的形式进行施用，并且可以同时或相继地与其他化合物一起施用到有待处理的作物区域或植物中。这些化合物可以是肥料、除草剂、冷冻保护剂(cryoprotectants)、表面活性剂、洗涤剂、杀有害生物肥皂(pesticidalsoap)、休眠喷洒油(dormantoil)、聚合物、和/或定时释放或生物可降解载体配制品，这些配制品允许在单次施用该制剂之后对靶标区域进行长期给药。它们还可以是选择性除草剂、化学杀昆虫剂、杀病毒剂、杀微生物剂、杀变形虫剂、杀有害生物剂、杀真菌剂、杀细菌剂、杀线虫剂、杀软体动物剂或这些配制品中的几种的混合物，如果希望的话，与其他农业上可接受的载体、表面活性剂或在配制品领域内通常采用的促进施用的佐剂一起。合适的载体和佐剂可以是固体或液体，并且相应于在配制技术中常常采用的物质，例如天然的或再生的矿物质、溶剂、分散剂、湿润剂、增粘剂、粘合剂或肥料。同样地，可将这些配制品制备成可食用的“诱饵”或塑造成有害生物“陷阱”以允许由靶标有害生物来摄食或摄取该杀有害生物配制品。

施用本发明的活性成分或本发明的农业化学组合物(该组合物包括由本发明的细菌菌株所产生的这些杀有害生物蛋白中的至少一种)的方法包括叶施用、种子涂覆和土壤施用。施用次数以及施用率取决于由相应的有害生物所侵染的强度。

可以将该组合物配制成粉末、粉剂、小丸、颗粒、喷雾剂、乳液、胶体、溶液、或类似剂型，并且可以通过以下常规方法来制备该组合物，这些方法例如将包括该多肽的细菌细胞的培养物干燥、冷冻干燥、均质化、提取、过滤、离心、沉降、或浓缩。在包含至少一种这种杀有害生物多肽的所有此类组合物中，该多肽可以按照按重量计从大约1％至大约99％的浓度而存在。

可以在给定的区域内通过本发明的这些方法来杀死鳞翅目、半翅目、双翅目、或鞘翅目有害生物或减少其数目，或者可以将它们预防性地施用到环境区域内以防止被易受影响的有害生物的侵染。优选地，这种有害生物摄取、或接触杀有害生物有效量的该多肽。“杀有害生物有效量”是指该杀有害生物剂能够引起至少一种有害生物的死亡、或明显减少有害生物的生长、摄食或正常生理发育的量。这个量将取决于以下因素而变化：例如，有待控制的特定的靶标有害生物；有待处理的特定的环境、地点、植物、作物、或农业场所；环境条件；以及施用的杀有害生物有效的多肽组合物的方法、速率、浓度、稳定性、以及数量。这些制剂还可以根据气候条件、环境因素、和/或施用频率和/或有害生物侵染的严重度而变化。

可通过将该细菌细胞、晶体、和/或孢子悬浮物、或分离的蛋白组分与所希望的农业上可接受的载体配制在一起来制备所说明的杀有害生物剂组合物。在施用之前，可以用合适的手段(如冻干、冷冻干燥、干燥的，或在水性载体、介质或合适的稀释剂，如盐水或其他缓冲液中)配制这些组合物。这些经配制的组合物可以处于以下形式：粉剂或颗粒材料、或在油(植物性或矿物性)中的悬浮体、或水或油/水乳液、或作为可湿性粉末、或与适合于农业施用的任何其他载体材料相组合。适合的农业载体可以是固体或液体并且在本领域是熟知的。术语“农业上可接受的载体”覆盖了所有佐剂、惰性组分、分散剂、表面活性剂、增粘剂、粘合剂、等等，它们在杀有害生物剂配制技术中是常用的；这些对于杀有害生物剂配制领域的普通技术人员而言是熟知的。这些制剂可以与一种或多种固体或液体佐剂相混合，并且通过不同的手段进行制备，例如通过使用常规的配制技术将这种杀有害生物组合物与合适的佐剂进行均匀地混合、掺合和/或研磨。合适的制剂和施用方法说明于美国专利号6,468,523中，该文献通过引用结合在此。

“有害生物”包括但不限于：昆虫、真菌、细菌、线虫、螨、蜱、以及类似物。昆虫有害生物包括选自以下目的昆虫：鞘翅目、双翅目、膜翅目、鳞翅目、食毛目、同翅目、半翅目、直翅目、缨翅目、革翅目、等翅目、虱目、蚤目、毛翅目等，特别是鞘翅目、鳞翅目、以及双翅目。

鞘翅目包括肉食亚目(suborderAdephaga)和多食亚目(suborderPolyphaga)。肉食亚目包括步甲总科(superfamilyCaraboidea)和豉甲总科(superfamilyGyrinoidea)，而多食亚目包括牙甲总科(superfamilyHydrophi1oidea)、隐翅甲总科(superfamilyStaphylinoidea)、花萤总科(superfamilyCantharoidea)、郭公虫总科(superfamilyCleroidea)、叩头虫总科(superfamilyElateroidea)、花甲总科(superfamilyDascilloidea)、泥甲总科(superfamilyDryopoidea)、九甲总科(superfamilyByrrhoidea)、扁甲总科(superfamilyCucujoidea)、芜菁总科(superfamilyMeloidea)、花蚤总科(superfamilyMordelloidea)、拟步甲总科(superfamilyTenebrionoidea)、长蝽总科(superfamilyBostrichoidea)、金龟总科(superfamilyScarabaeoidea)、天牛总科(superfamilyCerambycoidea)、叶甲总科(superfamilyChrysomeloidea)以及象甲总科(superfamilyCurculionoidea)。步甲总科包括虎甲科(Cicindelidae)、步甲科(Carabidae)、以及龙虱科(Dytiscidae)。豉甲总科包括豉甲科(familyGyrinidae)。牙甲总科包括牙甲科(familyHydrophilidae)。隐翅甲总科包括葬甲科(familySilphidae)和隐翅甲科(familyStaphylinidae)。花萤总科包括花萤科(familyCantharidae)和萤科(familyLampyridae)。郭公虫总科包括郭公虫科(C1eridae)和皮蝽科(Dermestidae)。叩头虫总科包括叩头虫科(Elateridae)和吉丁虫科(Buprestidae)。扁甲总科包括瓢虫科(Coccinellidae)。芫菁总科包括芜菁科(Meloidae)。拟步甲总科包括拟步甲科(Tenebrionidae)。金龟总科包括黑蜕科(Passalidae)和金龟科(Scarabaeidae)。天牛总科包括天牛科(Cerambycidae)。叶甲总科包括叶甲科(Chrysomelidae)。象甲总科包括象甲科(Curculionidae)和小蝽科(Scolytidae)。

双翅目包括长角亚目(Nematocera)、短角亚目(Brachycera)、以及环裂亚目(Cyclorrhapha)。长角亚目包括大蚊科(Tipulidae)、毛蠓科(Psychodidae)、蚊科(Culicidae)、蠓科(Ceratopogonidae)、摇蚊科(Chironomidae)、蚋科(Simuliidae)、毛蚊科(Bibionidae)、以及瘿蚊科(Cecidomyiidae)。短角亚目包括水虻科(Stratiomyidae)、虻科(Tabanidae)、剑虻科(Therevidae)、食虫虻科(Asilidae)、拟食虫虻科(Mydidae)、蜂虻科(Bombyliidae)、以及长足虻科(Dolichopodidae)。环裂亚目包括无缝组(DivisionAschiza)和有缝组(DivisionSchizophora)。无缝组包括蚤蝇科(Phoridae)、蚜蝇科(Syrphidae)和眼蝇科(Conopidae)。无缝组包括无瓣类(Acalyptratae)和有瓣类(Calyptratae)。无瓣类包括斑蝇科(Otitidae)、实蝇科(Tephritidae)、潜蝇科(Agromyzidae)、以及果蝇科(Drosophilidae)。有瓣类包括虱蝇科(Hippoboscidae)、狂蝇科(Oestridae)、寄蝇科(Tachinidae)、花蝇科(Anthomyiidae)、蝇科(Muscidae)、丽蝇科(Calliphoridae)、以及麻蝇科(Sarcophagidae)。

鳞翅目包括凤蝶科(Papilionidae)、粉蝶科(Pieridae)、灰蝶科(Lycaenidae)、蛱蝶科(Nymphalidae)、斑蝶科(Danaidae)、眼蝶科(Satyridae)、弄蝶科(Hesperiidae)、天蛾科(Sphingidae)、天蚕蛾科(Saturniidae)、尺蛾科(Ceometridae)、灯蛾科(Arctiidae)、夜蛾科(Noctuidae)、毒蛾科(Lymantriidae)、透翅蛾科(Sesiidae)以及谷蛾科(Tineidae)。

线虫包括寄生性线虫，例如根结线虫、胞囊线虫、以及根腐线虫，包括异皮线虫属、根结线虫属、以及球异皮线虫属；特别是胞囊线虫的成员，包括但不限于：大豆异皮线虫(Heteroderaglycines)(大豆胞囊线虫)；甜菜异皮线虫(甜菜胞囊线虫)；燕麦异皮线虫(Heteroderaavenae)(燕麦胞囊线虫)；以及马铃薯金线虫(Globoderarostochiensis)和马铃薯白线虫(Globoderapailida)(马铃薯胞囊线虫)。根腐线虫包括短体线虫属。

半翅目有害生物(其包括指定为半翅目、同翅目、或异翅亚目的物种)包括但不限于草盲蝽属，如西方无泽盲蝽(豆荚草盲蝽)、牧草盲蝽(美国牧草盲蝽)、和绿盲蝽(伊利苏斯草盲蝽(Lyguselisus)；蚜虫，例如碧桃蚜(greenpeachaphid)(桃蚜(Myzuspersicae))、棉花蚜虫(棉蚜)、樱桃蚜虫或黑樱桃蚜虫(黑樱桃蚜(Myzuscerasi))、大豆蚜虫(大豆蚜(AphisglycinesMatsumura))；褐飞虱(稻褐飞虱)、以及稻青大叶蝉(黑尾叶蝉属)；和蝽象，例如绿色蝽象(喜绿蝽)、棕色大理石纹蝽象(茶翅蝽)、南方绿色蝽象(南方绿椿象)、稻蝽象(美洲稻蝽)、森林红蝽(红足真蝽(Pentatomarufipes))、欧洲蝽象(砂枣润蝽(Rhaphigasternebulosa))、以及盾椿象耳蝽(Troilusluridus)。

对于主要农作物的本发明的虫害包括：玉米：玉米螟(Ostrinianubilalis)、欧洲玉米螟(Europeancornborer)；小地老虎(Agrotisipsilon)、黑地老虎(blackcutworm)；谷实夜蛾(Helicoverpazea)、棉铃虫(cornearworm)；草地夜蛾(Spodopterafrugiperda)、秋夜蛾(fallarmyworm)；西南玉米秆草螟(Diatraeagrandiosella)、西南玉米螟(southwesterncornborer)；南美玉米苗斑螟(Elasmopalpuslignosellus)，小玉米秆螟(lessercornstalkborer)；小蔗秆草螟(Diatraeasaccharalis)，小蔗秆草螟(surgarcaneborer)；玉米根叶甲(Diabroticavirgifera)、西方玉米根螟(westerncornrootworm)；长角叶甲巴氏亚种(Diabroticalongicornisbarberi)、北方玉米根螟(northerncornrootworm)；黄瓜十一星叶甲食根亚种(Diabroticaundecimpunctatahowardi)，南方玉米根螟(southerncornrootworm)；梳爪叩头虫属(Melanotusspp.)、金针虫(wireworms)；北方圆头犀金龟(Cyclocephalaborealis)、北方圆头犀金龟(蛴螬)；南方圆头犀金龟(Cyclocephalaimmaculata)，南方圆头犀金龟(蛴螬)；日本弧丽金龟(Popilliajaponica)，日本金龟子；玉米铜色跳甲(Chaetocnemapulicaria)、玉米跳甲；玉米隐啄象(Sphenophorusmaidis)，玉米谷象；玉米缢管蚜(Rhopa1osiphummaidis)，玉米叶蚜虫；玉米根蚜(Anuraphismaidiradicis)，玉米根蚜虫；美洲谷长蝽(Blissusleucopterusleucopterus)，高粱长蝽；赤胫黑蝗(Melanoplusfemurrubrum)，红胫蝗虫(redleggedgrasshopper)；血黑蝗(Melanoplussanguinipes)，迁徙蝗虫；玉米种蝇(Hylemyaplatura)，种蝇；玉米斑潜蝇(Agromyzaparvicornis)，玉米斑潜蝇；玉米黄蓟马(Anaphothripsobscrurus)，草蓟马；窃蚁(Solenopsismilesta)，窃蚁；二斑叶螨(Tetranychusurticae)，二斑叶螨；高粱：斑禾草螟(Chilopartellus)，高粱螟；草地夜蛾，秋夜蛾；考斯夜蛾(Spodopteracosmioides)；南方灰翅夜蛾；谷实夜蛾，棉铃虫；南美玉米苗斑螟，小玉米秆螟；粒肽脏切夜蛾(Feltiasubterranea)，颗粒地老虎(granulatecutworm)；长毛食叶然金龟(Phyllophagacrinita)、蛴螬；伪金针虫属(Eleodesspp.)、叩头虫属(Conoderusspp.)、以及Aeolus属，蛴螬；黑角负泥虫(Oulemamelanopus)，谷类叶甲；玉米铜色跳甲，玉米跳甲；玉米隐啄象，玉米谷象；玉米缢管蚜，玉米叶蚜；美甘蔗伪毛蚜(Siphaf1ava)，黄甘蔗蚜；美洲谷长蝽，高粱长蝽；高粱瘿蚊(Contariniasorghicola)，粱痪蚊(sorghummidge)；朱砂叶螨(Tetranychuscinnabarinus)，朱砂叶螨；二斑叶蹒(Tetranychusurticae)，二斑叶蹒；小麦：一点黏虫(Pseuda1etiaunipunctata)，黏虫；草地夜蛾，秋夜蛾；南美玉米苗斑螟，小玉米秆螟；西方灰地老虎(Agrotisorthogonia)，西方地老虎；南美玉米苗斑螟，小玉米秆螟；黑角负泥虫，谷类叶甲；三叶草叶象(Hyperapunctata)，三叶草叶象；黄瓜十一星叶甲食根亚种，南方玉米根螟；俄罗斯小麦蚜虫；麦二叉蚜(Schizaphisgraminum)，麦二叉蚜；麦长管蚜(Macrosiphumavenae)，麦长管蚜；赤胫黑蝗，赤胫黑蝗；异黑蝗(Melanoplusdifferentia1is)，异黑蝗；血黑蝗，迁徙蝗虫；小麦瘿蚊(Mayetioladestructor)，小麦瘿蚊(Hessianfly)；麦红吸浆虫(Sitodiplosismosellana)，麦蛆(wheatmidge)；美洲杆蝇(Meromyzaamericana)，美洲麦秆黄潜蝇(wheatstemmaggot)；麦疫种蝇(Hylemyacoarctata)，麦种蝇(wheatbulbfly)；烟褐花蓟马(Frankliniellafusca)，烟草蓟马；麦茎蜂(Cephuscinctus)，麦茎蜂(wheatstemsawfly)；曲叶螨(Aceriatulipae)，小麦曲叶螨(wheatcurlmite)；向日葵：向日葵芽卷叶蛾(Suleimahelianthana)，向日葵芽蛾；向日葵同斑螟(Homoeosomaelectellum)，向日葵蛾；向日葵叶甲(zygogrammaexclamationis)，向日葵甲虫；胡萝卜利犀金龟(Bothyrusgibbosus)，胡萝卜甲虫；向日葵籽瘿蚊(Neolasiopteramurtfeldtiana)，向日葵籽蠓；棉花：烟芽夜蛾(Heliothisvirescens)，棉花蚜虫；谷实夜蛾，棉铃虫；甜菜夜蛾(Spodopteraexigua)，甜菜夜蛾；红铃麦蛾(Pectinophoragossypiella)，粉色棉铃虫；棉铃象(Anthonomusgrandis)，棉子象鼻虫；棉蚜(Aphisgossypii)，棉花蚜虫；棉序盲蝽(Pseudatomoscelisseriatus)，棉花跳盲蝽；温室粉虱(Trialeurodesabutilonea)，带状翅白粉虱(bandedwingedwhitefly)；美国牧草盲蝽(Lyguslineolaris)，tarnishedplantbug；赤胫黑蝗，红胫蝗虫；异黑蝗，异黑蝗；烟蓟马(Thripstabaci)，洋葱蓟马；烟褐花蓟马，烟蓟马；朱砂叶螨，朱砂叶螨；二斑叶螨，二斑叶螨；水稻：小蔗秆草螟，甘蔗螟；草地夜蛾，秋夜蛾；考斯夜蛾(Spodopteracosmioides)；南方灰翅夜蛾；谷实夜蛾，棉铃虫；葡萄鞘叶甲(Colaspisbrunnea)，葡萄鞘叶甲；稻水象(Lissorhoptrusoryzophilus)，稻水象；米象(Sitophilusoryzae)，米象；二条黑尾叶蝉(Nephotettixnigropictus)，米叶蝉；美洲谷长蝽，高粱长蝽；拟缘蝽(Acrosternumhilare)，绿蝽；二化螟(Chilusuppressalis)，亚洲稻螟；大豆：大豆夜蛾(Pseudoplusiaincludens)，大豆夜蛾(soybeanlooper)；梨豆夜蛾，黎豆夜蛾(velvetbeancaterpillar)；苜蓿绿夜蛾(Plathypenascabra)，苜蓿绿夜蛾；玉米螟，欧洲玉米螟；小地老虎，黑地老虎；甜菜夜蛾，甜菜夜蛾；考斯夜蛾(Spodopteracosmioides)；南方灰翅夜蛾；烟芽夜蛾，棉花蚜虫；谷实夜蛾，棉铃虫；墨西哥大豆瓢虫(Epilachnavarivestis)，墨西哥大豆瓢虫；桃蚜(Myzuspersicae)，桃蚜；蚕豆微叶蝉(Empoascafabae)，马铃薯叶蝉；拟缘蝽，绿蝽；赤胫黑蝗，赤胫黑蝗；异黑蝗，异黑蝗；玉米种蝇，玉米种蝇；大豆蓟马(Sericothripsvariabilis)，大豆蓟马；烟蓟马，洋洋葱蓟马；草莓叶螨(Tetranychusturkestani)，草莓叶螨；二斑叶螨，二斑叶螨；大麦：玉米螟，欧洲玉米螟；小地老虎，黑地老虎；麦二叉蚜，麦二叉蚜(greenbug)；美洲谷长蝽，高粱长蝽；拟缘蝽，绿蝽；烟草蝽(Euschistusservus)，茶色蝽；英雄美洲蝽(Euschistusheros)，新热带茶色蝽(neotropicalbrownstinkbug)；灰地种蝇(Deliaplatura)，种蝇；小麦瘿蚊，小麦瘿蚊；潜岩螨(Petrobialatens)，麦长腿蜘蛛；油籽油菜：甘蓝蚜(Brevicorynebrassicae)，卷心菜蚜；蔬菜黄条跳甲(Phyllotretacruciferae)，跳甲；蓓带夜蛾(Mamestraconfigurata)，贝莎夜蛾(Berthaarmyworm)；菜蛾(Plutellaxylostella)，小菜蛾；地种蝇属(Deliassp.)，根蛆。

用于增加植物产量的方法

提供了用于增加植物产量的方法。这些方法包括提供表达编码在此披露的杀有害生物多肽序列的多核苷酸的植物或植物细胞并且在被有害生物侵染(或者易受到该有害生物侵染)的田地中使该植物或其种子生长，所述多肽具有针对该有害生物的杀有害生物活性。在一些实施例中，该多肽具有针对鳞翅目、鞘翅目、双翅目、半翅目、或者线虫有害生物的杀有害生物活性，并且所述田地被鳞翅目、半翅目、鞘翅目、双翅目、或线虫有害生物侵染。如本文所定义的，该植物的“产量”指由该植物所产生的生物质的品质和/或数量。“生物质”是指任何经测量的植物产物。生物质产生的增加是在所测量的植物产物的产量方面的任何改进。增加植物产量具有几种商业应用。例如，增加植物叶生物质可以增加用于人或动物消费的叶菜的产量。另外，增加叶生物质可以用于增加植物衍生的药学或工业产物的生产。产量的增加可以包括与不表达该杀有害生物序列的植物相比任何统计学上显著的增加，包括但不限于：产量的至少1％的增加，至少3％的增加，至少5％的增加，至少10％的增加，至少20％的增加，至少30％、至少50％、至少70％、至少100％或更大的增加。在多种特定方法中，植物产量由于植物表达在此披露的杀有害生物蛋白而获得改进的有害生物抗性而增加。该杀有害生物蛋白的表达导致有害生物侵染或摄食的能力减小。

还可以用一种或多种化学成分来处理植物，这些化学成分包括一种或多种除草剂、杀昆虫剂、或杀真菌剂。示例性的化学成分包括：水果/蔬菜类除 草剂：莠去津、除草定、敌草隆、草甘膦、利谷隆、嗪草酮、西玛津、氟乐灵、吡氟禾草灵、草铵膦、氯吡嘧磺隆(Gowan)、百草枯、戊炔草胺、烯禾啶、氟丙嘧草酯、氯吡嘧磺隆、三嗪茚草胺(Indaziflam)；水果/蔬菜杀昆 虫剂：涕灭威、转苏云金芽孢杆菌(Bacillusthuriengiensis)、甲萘威(Carbaryl)、克百威(Carbofuran)、毒死蜱(Chlorpyrifos)、氯氰菊酯(Cypermethrin)、溴氰菊酯(Deltamethrin)、阿维菌素(Abamectin)、氟氯氰菊酯/β-氟氯氰菊酯、高氰戊菊酯、λ-氟氯氰菊酯、灭螨醌、联苯肼酯、甲氧虫酰肼、双苯氟脲、环虫酰肼、噻虫啉、呋虫胺、嘧螨酯、螺螨酯、γ-氟氯氰菊酯、螺甲螨酯、多杀菌素、氯虫酰胺、氰虫酰胺、杀铃脲、螺虫乙酯、吡虫啉、氟虫酰胺、硫双威(Thiodicarb)、氰氟虫腙、砜虫啶、丁氟螨酯、腈吡螨酯(Cyanopyrafen)、噻虫胺、噻虫嗪、乙基多杀菌素(Spinotoram)、硫双威(Thiodicarb)、氟啶虫酰胺、甲硫威、因灭汀-苯甲酸盐(Emamectin-benzoate)、茚虫威、苯线磷、吡丙醚、苯丁锡氧化物；水果/蔬菜杀真菌剂：唑嘧菌胺、嘧菌酯、苯噻菌胺酯、啶酰菌胺、克菌丹、多菌灵、百菌清、铜、氰霜唑、环氟菌胺、霜脲氰、环丙唑醇、环丙嘧啶、苯醚甲环唑、烯酰吗啉、二噻农、咪唑菌酮、环酰菌胺、氟啶胺、咯菌腈、氟吡菌胺、氟吡菌酰胺、氟嘧菌酯、氟唑菌酰胺(Fluxapyroxad)、灭菌丹、乙膦酸、异菌脲、异丙菌胺、先正达(Isopyrazam)、醚菌酯(Kresoxim-methyl)、代森锰锌、双炔酰菌胺、甲霜灵(Metalaxyl)/精甲霜灵(mefenoxam)、代森联、苯菌酮、腈菌唑、戊菌唑、吡噻菌胺、啶氧菌酯、霜霉威(Propamocarb)、丙环唑、丙森锌、丙氧喹啉、丙硫菌唑、唑菌胺酯、嘧霉胺、喹氧灵、螺环菌胺(Spiroxamine)、硫、戊唑醇、甲基硫菌灵(Thiophanate-methyl)、肟菌酯(Trifloxystrobin)；谷类除草剂：

2.4-D、酰嘧磺隆、溴草腈、唑草酮-E、绿麦隆、氯磺隆、炔草酸-P、二氯吡啶酸、麦草畏、禾草灵-M、吡氟酰草胺、精恶唑禾草灵、双氟磺草胺、氟酮磺隆-NA、氟噻草胺、氟啶嘧磺隆-M、氟草烟(Fluroxypyr)、呋草酮、草甘膦、碘甲磺隆、碘苯腈、异丙隆、MCPA、甲基二磺隆、甲磺隆、二甲戊乐灵、唑啉草酯、丙苯磺隆、苄草丹、啶磺草胺、磺酰磺隆、噻吩磺隆、三甲苯草酮、醚苯磺隆、苯磺隆、氟乐灵、三氟甲磺隆；谷类杀真菌剂：嘧菌酯、联苯吡菌胺(Bixafen)、啶酰菌胺、多菌灵、百菌清、环氟菌胺、环丙唑醇、环丙嘧啶、醚菌胺、氟环唑、苯锈啶、丁苯吗啉、氟吡菌酰胺、氟嘧菌酯、喹唑菌酮、氟唑菌酰胺(Fluxapyroxad)、先正达、醚菌酯、叶菌唑、苯菌酮、吡噻菌胺、啶氧菌酯、咪鲜胺、丙环唑、丙氧喹啉、丙硫菌唑、唑菌胺酯、喹氧灵、螺环菌胺、戊唑醇、甲基硫菌灵、肟菌酯；谷类杀昆虫剂：乐果、λ-三氟氯氰菊酯(Lambda-cyhalthrin)、溴氰菊酯、顺式氯氰菊酯、β-氟氯氰菊酯、联苯菊酯、吡虫啉、噻虫胺、噻虫嗪、噻虫啉、啶虫脒、呋虫胺(Dinetofuran)、毒死蜱(Clorphyriphos)、抗蚜威、甲硫威、砜虫啶；玉 米除草剂：莠去津、甲草胺、溴苯腈、乙草胺、麦草畏、二氯吡啶酸、(S-)二甲酚噻草胺、草铵膦、草甘膦、异噁唑草酮、(S-)异丙甲草胺、甲基磺草酮、烟嘧磺隆、氟嘧磺隆、砜嘧磺隆、磺草酮、甲酰胺磺隆、苯吡唑草酮、环磺酮(Tembotrione)、嘧啶肟草醚、酮脲磺草吩酯、氟噻草胺、吡咯磺隆(Pyroxasulfon)；玉米杀昆虫剂：克百威、毒死蜱、联苯菊酯、氟虫腈、吡虫啉、λ-氯氟氰菊酯、七氟菊酯、特丁磷、噻虫嗪、噻虫胺、螺甲螨酯、氟虫酰胺、杀铃脲、氯虫酰胺、溴氰菊酯、硫双威、β-氟氯氰菊酯、氯氰菊酯、联苯菊酯、氯芬奴隆(Lufenuron)、丁基嘧啶磷、乙虫腈、氰虫酰胺、噻虫啉、啶虫脒、呋虫胺、阿维菌素；玉米杀真菌剂：嘧菌酯、联苯吡菌胺、啶酰菌胺、环丙唑醇、醚菌胺、氟环唑、种衣酯、氟吡菌酰胺、氟嘧菌酯、氟唑菌酰胺、先正达、叶菌唑、吡噻菌胺、啶氧菌酯、丙环唑、丙硫菌唑、唑菌胺酯、戊唑醇、肟菌酯；水稻除草剂：丁草胺、敌稗、四唑嘧磺隆、苄嘧磺隆、氰氟草酯、杀草隆、四唑酰草胺、咪唑磺隆、苯噻草胺、去稗安、吡嘧磺隆、稗草畏、二氯喹啉酸、禾草丹、茚草酮、氟噻草胺、四唑酰草胺、氯吡嘧磺隆、去稗安、苯并双环酮、环酯草醚、五氟磺草胺、双草醚、稻思达、乙氧嘧磺隆、丙草胺、硝草酮、特糠酯酮(Tefuryltrione)、恶草酮、精恶唑禾草灵、吡丙醚(Pyrimisulfan)；水稻杀昆虫剂：二嗪农、仲丁威、丙硫克百威、噻嗪酮、呋虫胺、氟虫腈、吡虫啉、异丙威、噻虫啉、环虫酰肼、噻虫胺、乙虫腈、氟虫酰胺、氯虫酰胺、溴氰菊酯、啶虫脒、噻虫嗪、氰虫酰胺、多杀菌素、乙基多杀菌素、因灭汀-苯甲酸盐、氯氰菊酯、毒死蜱、醚菊酯、克百威、丙硫克百威、砜虫啶；水稻杀真菌剂：嘧菌酯、多菌灵、环丙酰菌胺、双氯氰菌胺、苯醚甲环唑、敌瘟磷、嘧菌腙、庆大霉素、己唑醇、恶霉灵、异稻瘟净(IBP)、稻瘟灵、异噻菌胺、春日霉素(Kasugamycin)、代森锰锌、苯氧菌胺、肟醚菌胺、戊菌隆、噻菌灵、丙环唑、丙森锌、咯喹酮、戊唑醇、甲基硫菌灵、噻酰菌胺、三环唑、肟菌酯、有效霉素(Validamycin)；棉花除草剂：敌草隆、伏草隆、MSMA、乙氧氟草醚、扑草净、氟乐灵、唑草酮、烯草酮、丁基吡氟禾草灵、草甘膦、哒草伏、二甲戊乐灵、嘧硫苯甲酸钠、三氟啶磺隆、得杀草、草铵膦、丙炔氟草胺、塞苯隆；棉花杀昆虫剂：乙酰甲胺磷、涕灭威、毒死蜱、氯氰菊酯、溴氰菊酯、阿维菌素、啶虫脒、因灭汀-苯甲酸盐、吡虫啉、茚虫威、λ-氯氟氰菊酯、多杀菌素、硫双威、γ-氯氟氰菊酯、螺甲螨酯、啶虫丙醚、氟啶虫酰胺、氟虫双酰胺、杀铃脲、氯虫酰胺、β-氟氯氰菊酯、螺虫乙酯、噻虫胺、噻虫嗪、噻虫啉、呋虫胺、氟虫双酰胺、氰虫酰胺、多杀菌素、乙基多杀菌素、γ氯氟氰菊酯、4-[[(6-氯吡啶-3-基))甲基](2,2-二氟乙基)氨基]呋喃-2(5H)-酮、硫双威、阿维菌素、氟啶虫酰胺、啶虫丙醚、螺甲螨酯、砜虫啶；棉花杀真菌剂：嘧菌酯、联苯吡菌胺、啶酰菌胺、多菌灵、百菌清、酮、环丙唑醇、苯醚甲环唑、醚菌胺、氟环唑、咪唑菌酮、氟啶胺、氟吡菌酰胺、氟嘧菌酯、氟唑菌酰胺、异菌脲、先正达、异噻菌胺、代森锰锌、代森锰、苯氧菌胺、吡噻菌胺、啶氧菌酯、甲基代森锌、丙硫菌唑、唑菌胺酯、五氯硝基苯、戊唑醇、氟醚唑、甲基硫菌灵、肟菌酯；大豆除草剂：甲草胺、灭草松、氟乐灵、氯嘧磺隆、氯酯磺草胺、精恶唑禾草灵、氟磺胺草醚、丁基吡氟禾草灵、草甘膦、甲氧咪草烟、灭草喹、咪草烟、(S-)异丙甲草胺、嗪草酮、二甲戊乐灵、得杀草、草铵膦；大豆杀昆虫剂：λ-氟氯氰菊酯、灭多虫、吡虫啉、噻虫胺、噻虫嗪、噻虫啉、啶虫脒、呋虫胺、氟虫酰胺、氯虫酰胺、氰虫酰胺、多杀菌素、乙基多杀菌素、因灭汀-苯甲酸盐、氟虫腈、乙虫腈、溴氰菊酯、β-氟氯氰菊酯、γ和λ氯氟氰菊酯、4-[[(6-氯吡啶-3-基))甲基](2,2-二氟乙基)氨基]呋喃-2(5H)-酮、螺虫乙酯、螺螨酯、杀铃脲、氟啶虫酰胺、硫双威、β-氟氯氰菊酯；大豆杀 真菌剂：嘧菌酯、联苯吡菌胺、啶酰菌胺、多菌灵、百菌清、酮、环丙唑醇、苯醚甲环唑、醚菌胺、氟环唑、氟啶胺、氟啶胺、氟吡菌酰胺、氟嘧菌酯、粉唑醇、氟唑菌酰胺、先正达、异菌脲、异噻菌胺、代森锰锌、代森锰、叶菌唑、苯氧菌胺、腈菌唑、吡噻菌胺、啶氧菌酯、丙环唑、甲基代森锌、丙硫菌唑、唑菌胺酯、五氯硝基苯、戊唑醇、氟醚唑、甲基硫菌灵、肟菌酯；甜菜除草剂：杀草敏、甜安宁、乙氧氟草黄、甜菜宁、野麦畏、二氯吡啶酸、丁基吡氟禾草灵、环草定、苯嗪草酮、喹草酸、噻草酮、三氟啶磺隆、得杀草、精喹禾灵；甜菜杀昆虫剂：吡虫啉、噻虫胺、噻虫嗪、噻虫啉、啶虫脒、呋虫胺、溴氰菊酯、β-氟氯氰菊酯、γ/λ氯氟氰菊酯、4-[[(6-氯吡啶-3-基))甲基](2,2-二氟乙基)氨基]呋喃-2(5H)-酮、七氟菊酯、氯虫酰胺、氰虫酰胺、氟虫腈、克百威；卡诺拉(Canola)除草剂：二氯吡啶酸、禾草灵、丁基吡氟禾草灵、草铵膦、草甘膦、吡草胺、氟乐灵、胺苯磺隆、喹草酸、精喹禾灵、烯草酮、得杀草；卡诺拉杀真菌剂：嘧菌酯、联苯吡菌胺、啶酰菌胺、多菌灵、环丙唑醇、苯醚甲环唑、醚菌胺、氟环唑、氟啶胺、氟啶胺、氟吡菌酰胺、氟嘧菌酯、氟硅唑、氟唑菌酰胺、异菌脲、先正达、甲哌鎓氯、叶菌唑、苯氧菌胺、多效唑(Paclobutrazole)、吡噻菌胺、啶氧菌酯、咪鲜胺、丙硫菌唑、唑菌胺酯、戊唑醇、甲基硫菌灵、肟菌酯、烯菌酮；卡诺拉杀昆虫剂：克百威、噻虫啉、溴氰菊酯、吡虫啉、噻虫胺、噻虫嗪、啶虫脒、呋虫胺(Dinetofuran)、β-氟氯氰菊酯、γ-和λ-氯氟氰菊酯、τ-氟胺氰菊酯(Fluvaleriate)、乙虫腈、多杀菌素、乙基多杀菌素、氟虫酰胺、氯虫酰胺、氰虫酰胺(Cyazypyr)、4-[[(6-氯吡啶-3-基)甲基](2,2-二氟乙基)氨基]呋喃-2(5H)-酮。

将本发明的基因引入到另一种植物中的方法

此处还提供了将本发明的核酸引入到另一种植物中的方法。本发明的核酸或其片段可通过轮回选择、回交、谱系育种、纯系选择、混合选择、突变育种和/或遗传标记物增强的选择被引入第二种植物中。

因此，在一个实施例中，本发明的方法包括使包括本发明的核酸的第一植物与第二植物杂交以产生F1子代植物，并选择包括本发明的核酸的F1子代植物。该方法可以进一步包括使所选择的子代植物与包括本发明的核酸的第一植物杂交以产生回交子代植物，并选择包括本发明的核酸的回交的子代植物。在本文其他地方提供了用于评估杀有害生物活性的方法。这些方法可以进一步包括继将这些步骤重复一次或多次之后产生所选择的包括本发明的核酸的第二或更高回交的子代植物。

包括针对植物所希望的表型进行选择的任何育种方法都可以用在本发明的方法中。在一些实施例中，这些F1植物可以自花授粉从而产生分离F2代。然后可以在每代(F3、F4、F5等)中选择代表了所希望的表型(例如，杀有害生物活性)的个体植物，直到这些性状纯合或固定在育种种群中。

该第二植物可以是具有所希望的性状的植物，该性状如除草剂耐受性、昆虫耐受性、耐旱性、线虫控制、水分利用效率、氮利用效率、改进的营养价值、抗病性、改进的光合作用、改进的纤维质量、胁迫耐受性、改进的繁殖等。该第二植物可以是如在本文其他处描述的原种事件。

在不同的实施例中，植物部分(整个植物、植物器官(例如，叶、茎、根等)、种子、植物细胞、繁殖体、胚等)可以从所得杂交收获并且被繁殖或收集用于下游用途(例如作为食品、饲料、生物燃料、油、面粉、粕(meal)等)。

获得植物产品的方法

本发明还涉及用于获得商品的工艺，包括收获和/或碾磨来自包括本发明的核酸的作物的籽粒，以获得该商品。包括但不限于以下项的农艺学和商业上重要的产品和/或物质的组合物旨在处于本发明的范围内：预期用作人类消费的食品或用于在旨在用于人类消费的组合物和商品中使用的动物饲料、商品、和植物产品以及副产品，特别是失活种子/籽粒产品，包括产生自此类籽粒/种子的(半-)加工产物，其中所述产物是或包括全种子或籽粒或经处理的种子或籽粒、动物饲料、玉米或大豆粕、玉米或大豆粉、玉米、玉米淀粉、大豆粕、大豆粉、薄片、大豆蛋白浓缩物、大豆蛋白分离物、组织化大豆蛋白浓缩物、化妆品、护发产品、大豆坚果黄油、纳豆、印尼豆豉(tempeh)、水解大豆蛋白、植脂奶油(whippedtopping)、起酥油、卵磷脂、可食用全大豆(原始、烘焙、或作为毛豆)、大豆酸奶、大豆干酪、豆腐、腐竹，连同烹饪的、精制的、汽蒸的、烘焙的或被煮半熟的籽粒等等，如果这些产品和物质的组合物含有可检测量的在此列出的核苷酸和/或氨基酸序列(如针对含有此类核苷酸序列的任何植物所诊断的)的话。

通过说明而不是通过限制来提供以下实例。

实验性实例

实例1.从苏云金芽孢杆菌中发现新颖杀有害生物基因

使用以下步骤从表1中列出的细菌菌株中鉴定新颖的杀有害生物基因：

·从该菌株中制备总的DNA。总的DNA含有基因组DNA和染色体外DNA两者。染色体外的DNA包括以下各项的一些或全部的混合物：不同尺寸的质粒、噬菌体染色体、其他未表征的染色体外分子。

·对该DNA进行测序。通过新一代测序方法对总的DNA进行测序。

·通过同源性和/或其他计算分析来鉴定推定的毒素基因。

·当需要时，通过几种PCR或克隆策略中的一种(例如TAIL-PCR)来对感兴趣的基因进行序列最终处理。

表1.从细菌菌株中鉴定的新颖基因

*表示自下游起始位点编码的蛋白，并且“(截短)”表明该蛋白具有C-末端截短。

实例2.表达和纯化

使用II融合DNA聚合酶与结合3'末端处的AscI接头的引物，从表1中列出的相应菌株PCR扩增编码在表2中列出的氨基酸序列中每个的基因。用AscI消化扩增的PCR产物并将其连接到pMalC4X载体中。通过测序证实克隆并且将质粒转化到Bl21感受态细胞中。将单一菌落接种到LB培养基中并在37℃下生长直到到达对数期，并且在20℃下使用0.5mMIPTG持续诱导18小时。在室温下以1:50比率用Xa因子(FactorXa)将纯化的蛋白消化过夜。根据标准方案，将纯化的蛋白提交到对选定昆虫有害生物进行的生物测定。结果在以下表2中示出。有害生物列于表3中，并且评分系统在表3之后。

表2.生物测定结果(矮化，死亡率得分)

表3.生物测定组中的昆虫

Ae	黄热病蚊子	埃及伊蚊
			BCW	黑地老虎	小地老虎
CA	棉花蚜	棉蚜
			DBM	菱形斑蛾	小菜蛾
ECB	欧洲玉米螟	玉米螟
			FAW	秋夜蛾	草地夜蛾
Hv	烟夜蛾	烟芽夜蛾
			Hz	棉铃虫	谷实夜蛾
SBA	大豆蚜虫	大豆蚜
			SBL	大豆夜蛾	大豆夜蛾
SCB	甘蔗螟虫	小蔗秆草螟
			SWCB	西南玉米螟	西南玉米秆草螟
VBC	黎豆夜蛾	梨豆夜蛾

矮化得分：

0＝无活性

1＝不均匀矮化

2＝轻度均匀矮化(75％-100％对照的尺寸)

3＝强均匀矮化(74％-26％之间对照的尺寸)

4＝严重均匀矮化(小于25％对照的尺寸)

死亡率得分：

0＝无活性

1＝高达25％死亡率

2＝高达50％死亡率

3＝高达75％死亡率

4＝大于75％死亡率

实例3.杀有害生物活性的其他测定

本发明的核苷酸序列可以针对它们产生杀有害生物蛋白的能力来进行测试。经常通过多种方式来评定杀有害生物蛋白充当针对有害生物的杀有害生物剂的能力。在本领域内熟知的方法是进行一项摄食测定。在这项摄食测定中，将这种有害生物暴露于包括有待测试的化合物的样品或对照样品。经常，这是通过将有待测试的材料、或此类材料的合适的稀释物置于该有害生物将摄取的材料(如，人工饵料)上来进行。有待测试的材料可以由液体、固体、或浆料组成。可将有待测试的材料置于表面上，并接着允许其干燥。可替代地，可将有待测试的材料与溶化的人工饵料进行混合，并且随后将它们分配到测定小室中。测定小室可以是例如杯子、皿、或微量滴定板的孔。

用于吸吮性有害生物(suckingpest)(例如，蚜虫)的测定可以涉及通过分隔物将测试材料与昆虫分开，这种分隔物理想地是可以被这种吸吮性昆虫的吸吮式口器刺穿以便允许摄取这种测试材料的部分。经常将这种测试材料与摄食刺激物(如蔗糖)相混合，以便促进该测试化合物的摄取。

其他类型的测定可以包括将这种测试材料显微注射到这种有害生物的口或肠内，以及形成转基因的植物，之后测试这种有害生物摄食该转基因植物的能力。植物测试可涉及分离被正常地消耗的植物部分，例如放在叶上的小笼，或分离在包括昆虫的笼中的整个植物。

测试有害生物的其他方法和手段在本领域是已知的，并且可见于例如罗伯森(Robertson)和普雷斯勒(Preisler)编著(1992)使用节肢动物的杀有害生物剂生物测定(Pesticidebioassayswitharthropods)，CRC，波卡拉顿(BocaRaton)，佛罗里达州(FL)。可替代地，在期刊节肢动物管理测试(ArthropodManagementTests)以及经济昆虫学杂志中、或通过与美国昆虫学学会(EntomologicalSocietyofAmerica，ESA)的会员的讨论一般性地描述了这些测定。

在一些实施例中，将编码在此披露的这些杀有害生物蛋白的毒素区域的DNA区域克隆到大肠杆菌表达载体pMAL-C4x中，位于编码麦芽糖结合蛋白(MBP)的malE基因后面。这些框内融合物导致大肠杆菌内的MBP-Axmi融合蛋白表达。

对于大肠杆菌内的表达，用多个单独的质粒转化BL21*DE3。将多个单一菌落接种到补充有羧苄青霉素和葡萄糖的LB中，并且在37℃下生长过夜。次日，用1％的过夜培养物接种新鲜的培养基并且于37℃下生长至对数生长期。随后，在20℃下用0.3mMIPTG诱导培养物。将每个细胞沉淀悬浮于20mMTris-Cl缓冲液、pH7.4+200mMNaCl+1mMDTT+蛋白酶抑制剂中并且进行超声处理。由SDS-PAGE进行的分析可以用于证实融合蛋白的表达。

随后，将总的无细胞提取物上样于连接至快速蛋白液相色谱(FPLC)的直链淀粉柱中，以亲和纯化MBP-axmi融合蛋白。用10mM麦芽糖溶液将结合的融合蛋白从树脂中洗脱出来。随后用Xa因子或胰蛋白酶切割纯化的融合蛋白，以便从Axmi蛋白中除去氨基末端MBP标签。可以通过SDS-PAGE确定蛋白的切割和溶解度

实例4.用于植物表达的基因的运载

本发明的编码区是与用于在植物中表达的适当的启动子和终止子序列相连的。这样的序列在本领域是熟知的，并且可以包括用于在单子叶植物中表达的水稻肌动蛋白启动子或玉米泛素启动子，用于在双子叶植物中表达的拟南芥属UBQ3启动子或CaMV35S启动子以及nos或PinII终止子。用于生产并证实启动子-基因-终止子构建体的技术在本领域内也是熟知的。

在本发明的一个方面，设计并产生了合成的DNA序列。这些合成序列具有相对于亲本序列有所改变的核苷酸序列，但是编码与亲本序列基本一致的蛋白。

在本发明的另一方面，设计这些合成基因的修饰变体以使得将得到的肽靶向植物细胞器，如内质网或质外体。已知导致融合蛋白靶向植物细胞器的肽序列在本领域是已知的。例如，来自白羽扇豆的酸性磷酸酶基因的N末端区域(IDGI：14276838，米勒等人(2001)植物生理学(PlantPhysiology)127：594-606)在本领域是已知导致异源蛋白的内质网靶向的。如果得到的融合蛋白在C-末端还包含内质网保留序列，该内质网保留序列包括肽N-末端-赖氨酸-天冬氨酸-谷氨酸-亮氨酸(即，“KDEL”基序，SEQIDNO：:75)，则该融合蛋白将靶向内质网。如果这种融合蛋白在C末端缺少靶向内质网的序列，则该蛋白将被靶向该内质网，但最终将被隔离在质外体中。

因此，这个基因编码融合蛋白，该融合蛋白包含来自白羽扇豆(IDGI：14276838，米勒等人，2001，同上)的酸性磷酸酶基因的N-末端三十一个氨基酸，它们与本发明的氨基酸序列的N-末端相融合，以及包括在C-末端处的KDEL(SEQIDNO：75)序列。因此，预测得到的蛋白一旦表达于植物细胞中时就被靶向到该植物的内质网。

将以上说明的植物表达盒与合适的、辅助转化的细胞和组织的选择的植物可选择标记相组合，并且将其连接到植物转化载体中。这些可以包括来自土壤杆菌介导的转化的二元载体或用于气溶胶或生物射弹转化的简单的质粒载体。

实例5.大豆转化

大豆转化是通过使用本领域中熟知的方法实现的，例如如下描述的方法：使用根瘤土壤杆菌介导的转化大豆半种子外植体，基本上使用由帕斯(Paz)等人(2006)，植物细胞报告(PlantcellRep.)25：206所述的方法。使用环磺酮作为选择标记鉴定转化体。观察到绿芽的外观，并记录为耐除草剂异噁唑草酮或环磺酮的指示物。这些耐受性转基因芽将显示可比得上与未用异噁唑草酮或环磺酮处理的野生型大豆绿芽的正常绿化，而用相同量的异噁唑草酮或环磺酮处理的野生型大豆芽将被完全漂白。这表明HPPD蛋白的存在使得对HPPD抑制剂除草剂如异噁唑草酮或环磺酮的耐受性成为可能。

耐受的绿芽被转移到生根培养基或进行嫁接。在驯化周期后，生根的小植株被转移到该温室。然后将含有该转基因的植物用HPPD抑制剂除草剂喷雾，如例如用环磺酮以100gAI/公顷的比率或用甲基磺草酮以300gAI/公顷的比率(补充有硫酸铵甲酯菜籽油)。在施用后十天，对由于施用了该除草剂而产生的症状进行评价，并且与在野生型植物上在相同条件下观察到的症状相对比。

实例6：棉花T0植物建立和选择。

棉花转化是通过使用本领域中熟知的方法进行的，尤其是在PCT专利公开WO00/71733中描述的优选方法。将再生的植物转移到温室中。在驯化周期后，将充分生长的植物用HPPD抑制剂除草剂喷雾，如例如用补充有硫酸铵和甲酯菜籽油的等于100或200gAI/公顷的环磺酮。在施用喷雾后七天，对归因于用该除草剂处理而产生的症状进行评价，并且与经受相同处理的野生型棉花植物在相同条件下观察到的症状相对比。

实例7.使用在此说明的杀有害生物蛋白基因进行的玉米细胞的转化

在授粉后8至12天收集玉米穗。将胚与穗进行分离，并且那些大小为0.8-1.5mm的胚是优选用于转化的。将胚以盾片侧向上的方式置于在适当的孵育培养基中，如DN62A5S培养基(3.98g/LN6盐；1mL/L(的1000x母液)N6维生素类；800mg/LL-天冬酰胺；100mg/L肌醇；1.4g/LL-脯氨酸；100mg/L酪蛋白氨基酸；50g/L蔗糖；1mL/L(的1mg/mL母液)2,4-D)。然而，除DN62A5S以外的培养基和盐类是适合的并且在本领域内是已知的。将胚在黑暗中于25℃下孵育过夜。然而，本质上不需要将这些胚孵育过夜。

将所得到的外植体转移至网眼方阵(30-40个/平板)，转移至渗透培养基上并保持约30-45分钟，随后转移至聚束平板(beamingplate)上(参见，例如，PCT公开号WO/0138514和美国专利号5,240,842)。

在植物细胞中将被设计为本发明基因的DNA构建体加速进入植物组织中，这是使用气溶胶束加速器、使用基本上如PCT公开号WO/0138514中所说明的条件进行的。在聚束之后，将胚在渗透培养基上孵育约30分钟，并且将其置于孵育培养基上于25℃下黑暗中过夜。为了避免不适当地破坏经聚束的外植体，它们在转移至恢复培养基之前被孵育至少24小时。然后，将胚在25℃下在黑暗中扩散到恢复培养基上，持续大约5天，随后转移至选择培养基中。将外植体在选择培养基中孵育达到8周，这取决于所利用的特定选择的性质和特征。在选择期之后，将得到的愈伤组织转移至胚成熟培养基中，直至观察到成熟的体细胞胚的形成。然后，将得到的成熟的体细胞胚置于低光照下，并且通过本领域内已知的方法来引发再生过程。允许这些得到的芽在生根培养基上生根，并且将得到的植物转移至育苗盆(nurserypot)中并繁殖成转基因植物。

材料

DN62A5S培养基

用1NKOH/1NKCl将该溶液的pH调整至pH5.8，加入高达3g/L的浓度的结冷胶(Gelrite)(西格玛公司)，并将该培养基高压灭菌。在冷却至50℃之后，加入2ml/L的5mg/ml硝酸银母液(植物技术实验室(PhytotechnologyLabs))。

实例8.通过土壤杆菌介导的转化将本发明的基因转化到植物细胞中

穗最好在授粉之后8至12天进行收集。将胚与穗进行分离，并且那些大小为0.8-1.5mm的胚是优选用于转化的。将胚以盾片侧向上的方式置于适合的孵育培养基中，并且在25℃下在黑暗中孵育过夜。然而，本质上不需要将这些胚孵育过夜。将胚与土壤杆菌属菌株进行接触，该菌株包含用于Ti质粒介导的转移的适当的载体，持续约5-10min，并且然后将其置于共培养基上持续约3天(22℃下、在黑暗中)。共培养之后，将外植体转移到恢复期培养基中，持续5-10天(25℃下、在黑暗中)。将外植体在选择培养基中孵育达到8周，这取决于所利用的特定选择的性质和特征。在选择期之后，将得到的愈伤组织转移至胚成熟培养基中，直至观察到成熟的体细胞胚的形成。然后，将得到的成熟的体细胞胚置于低光照下，并且如本领域内所已知地引发再生过程。

实例9.水稻的转化

自温室中良好受控条件下生长的供体植物收集含有正确发育阶段的胚的未成熟水稻种子。在将种子灭菌后，将未成熟的胚切除并且在固体培养基上前诱导3天。在前诱导后，将胚在包含所希望的载体的土壤杆菌悬浮液中浸没几分钟。然后将胚在包含乙酰丁香酮的固体培养基上共培养并且在黑暗中孵育4天。然后将外植体转移到含有作为选择性试剂的草铵膦的第一选择培养基中。在大约3周之后，将发展了愈伤组织的小盾片切成几个较小的片并且将其转移到相同的选择培养基中。随后大约每2周进行继代培养。在每次继代培养后，将活跃生长的愈伤组织切成较小的片并且在第二选择培养基上孵育。在若干周之后，将明确抗草铵膦的愈伤组织转移到选择再生培养基。将产生的小植株培养在半强度MS上用于完全延伸。最终将这些植株转移到土壤中并且使其在温室中生长。

在本说明书中提到的所有公开文件和专利申请对于本发明所涉及的领域的普通技术人员的技术水平而言是指示性的。所有公开物和专利申请均通过引用结合在此，其程度如同每个单独的公开物或专利申请被确切地并单独地指明通过引用而被结合。

尽管本发明在上文中出于理解清楚的目的、通过展示和实例已经相当详细地进行说明，应当清楚是可以在所附的权利要求书的范围内实行某些改变和修饰。

Claims (24)

1.重组核酸分子，该重组核酸分子包括核苷酸序列，该核苷酸序列编码具有杀有害生物活性的氨基酸序列，其中所述核苷酸序列选自下组，该组由以下各项组成：

a)在SEQIDNO：1-20的任一项中列出的核苷酸序列；

b)编码如下多肽的核苷酸序列，该多肽包括SEQIDNO：21-74中任一项的氨基酸序列；

c)编码如下多肽的核苷酸序列，该多肽包括与SEQIDNO：21-74中任一项的氨基酸序列具有至少95％序列一致性的氨基酸序列。

2.如权利要求1所述的重组核酸分子，其中所述核苷酸序列是已经被设计为用于在植物中表达的合成序列。

3.如权利要求1所述的重组核酸分子，其中所述核苷酸序列被可操作地连接至能够指导所述核苷酸序列在植物细胞中表达的启动子上。

4.表达盒，该表达盒包括如权利要求1所述的重组核酸分子。

5.如权利要求4所述的表达盒，该表达盒进一步包括编码异源多肽的核酸分子。

6.包括如权利要求1所述的重组核酸的宿主细胞。

7.如权利要求6所述的宿主细胞，该宿主细胞是细菌宿主细胞。

8.如权利要求6所述的宿主细胞，该宿主细胞是植物细胞。

9.包括如权利要求8所述的宿主细胞的转基因植物。

10.如权利要求9所述的转基因植物，其中所述植物选自下组，该组由以下各项组成：玉米、高粱、小麦、甘蓝、向日葵、番茄、十字花科植物、胡椒、马铃薯、棉花、水稻、大豆、甜菜、甘蔗、烟草、大麦、以及油菜。

11.包括如权利要求1所述的核酸分子的转基因种子。

12.具有杀有害生物活性的重组多肽，该多肽选自下组，该组由以下各项组成：

a)包括SEQIDNO：21-74中任一项的氨基酸序列的多肽；以及

b)包括与SEQIDNO：21-74中任一项的氨基酸序列具有至少95％序列一致性的氨基酸序列的多肽。

13.如权利要求12所述的多肽，该多肽进一步包括异源氨基酸序列。

14.包括如权利要求12所述的多肽的组合物。

15.如权利要求14所述的组合物，其中所述组合物选自下组，该组由以下各项组成：粉末、粉剂、小丸、颗粒、喷雾剂、乳液、胶体、以及溶液。

16.如权利要求14所述的组合物，其中所述组合物是通过将细菌细胞的培养物进行干燥、冷冻干燥、均质化、提取、过滤、离心、沉降、或浓缩而制备的。

17.如权利要求14所述的组合物，该组合物包括按重量计从约1％至约99％的所述多肽。

18.用于控制鳞翅目、半翅目、鞘翅目、线虫、或双翅目有害生物种群的方法，该方法包括使所述种群与杀有害生物有效量的如权利要求12所述的多肽接触。

19.用于杀死鳞翅目、半翅目、鞘翅目、线虫、或双翅目有害生物的方法，该方法包括使所述有害生物接触或向所述有害生物喂食杀有害生物有效量的如权利要求12所述的多肽。

20.用于生产具有杀有害生物活性的多肽的方法，该方法包括在表达编码该多肽的核酸分子的条件下培养如权利要求6所述的宿主细胞。

21.植物或植物细胞，该植物或植物细胞将DNA构建体稳定地结合到它的基因组中，该DNA构建体包括对具有杀有害生物活性的蛋白进行编码的核苷酸序列，其中所述核苷酸序列选自下组，该组由以下各项组成：

a)在SEQIDNO：1-20的任一项中列出的核苷酸序列；

b)编码如下多肽的核苷酸序列，该多肽包括SEQIDNO：21-74中任一项的氨基酸序列；以及

c)编码如下多肽的核苷酸序列，该多肽包括与SEQIDNO：21-74中任一项的氨基酸序列具有至少95％序列一致性的氨基酸序列。

22.用于保护植物免受有害生物侵害的方法，该方法包括在植物或其细胞中表达对杀有害生物多肽进行编码的核苷酸序列，其中所述核苷酸序列选自下组，该组由以下各项组成：

a)在SEQIDNO：1-20的任一项中列出的核苷酸序列；

b)编码如下多肽的核苷酸序列，该多肽包括SEQIDNO：21-74中任一项的氨基酸序列；以及

c)编码如下多肽的核苷酸序列，该多肽包括与SEQIDNO：21-74中任一项的氨基酸序列具有至少95％序列一致性的氨基酸序列。

23.如权利要求22所述的方法，其中所述植物产生杀有害生物多肽，该杀有害生物多肽具有针对鳞翅目、半翅目、鞘翅目、线虫、或双翅目有害生物的杀有害生物活性。

24.用于增加植物的产量的方法，该方法包括在田地中使将DNA构建体稳定结合到它的基因组中的植物或其种子生长，该DNA构建体包括对具有杀有害生物活性的蛋白进行编码的核苷酸序列，其中所述核苷酸序列选自下组，该组由以下各项组成：

a)在SEQIDNO：1-20的任一项中列出的核苷酸序列；

b)编码如下多肽的核苷酸序列，该多肽包括SEQIDNO：21-74中任一项的氨基酸序列；以及

c)编码如下多肽的核苷酸序列，该多肽包括与SEQIDNO：21-74中任一项的氨基酸序列具有至少95％序列一致性的氨基酸序列；

其中所述田地被有害生物侵染，所述多肽具有针对该有害生物的杀有害生物活性。