CN104758929A - 新颖的佐剂组合物 - Google Patents

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Abstract

本发明涉及新颖的佐剂组合物。本发明涉及包含三萜、固醇、免疫调节剂、聚合物及Th2刺激剂的多种组合的佐剂配制物；用于制备该佐剂组合物的方法；及该佐剂配制物在含有不同抗原的免疫原性组合物和疫苗组合物中的用途。本发明还涉及该配制物在动物治疗中的用途。

Description

新颖的佐剂组合物
本申请是申请日为2009年6月24日、申请号为200980124560.5(PCT/IB2009/052724)的发明专利申请“新颖的佐剂组合物”的分案申请。
发明背景
发明领域
本发明一般涉及用于增强对抗原的免疫应答的新颖的佐剂配制物，该新颖的佐剂配制物用于免疫原性和疫苗组合物中，但不在受试者中产生毒性或不想要的副作用。本发明还涉及所述佐剂、免疫原性组合物及疫苗组合物的制备方法和用途。
相关技术的历史和描述
细菌、病毒及寄生虫感染广泛分布于人和动物。由这些感染剂引起的疾病通常对抗微生物药学疗法具有抗性，使得无有效的治疗方法。因此，愈来愈多人使用疫苗学方法以控制传染病。完整的传染性病原体可在经化学灭活或合适的遗传工程处理后变得适用于疫苗配制物。或者，可将病原体的蛋白质亚基在重组表达系统中表达并纯化，以用于疫苗配制物中。疫苗可通过在组合物中包含合适的佐剂而变得更有效。
使用疫苗学方法以治疗动物和人的癌症的兴趣亦持续增加。用于治疗癌症的所述治疗途径涉及以包含肿瘤特异性抗原及佐剂的疫苗为癌症患者接种疫苗。然而，研发中的许多具有此性质的疫苗无一被主管机关批准。疫苗并未显示出可缩小肿瘤——此为癌症药物效力的标准度量。
术语“佐剂”一般是指增加对抗原的体液或细胞性免疫应答的任何物质。佐剂被用于达成二个目的：其减缓抗原从注射部位释出，且其刺激免疫系统。传统疫苗通常由灭活或被杀死或经修饰的活致病微生物的粗制备物组成。与这些致病微生物的培养物相关的杂质可作为增强免疫应答的佐剂。然而，以利用致病微生物或纯化的蛋白质亚基的同质制备物作为抗原而制成的疫苗所激发出的免疫力通常不够。因此，加入某些外源物质(诸如佐剂)变得必要。再者，制造合成及亚基疫苗很昂贵。加入佐剂可容许使用较小剂量的抗原来刺激类似的免疫应答，从而减少疫苗的制造成本。因此，当将药剂与佐剂组合时可显著增加某些可注射药剂的效力。
在选择佐剂时必须考虑许多因素。佐剂应该以有效方式使抗原的释出和吸收速率缓慢，且对宿主的毒性、变应原性、刺激及其它不想要的作用最小。为了使人满意，佐剂应为非杀病毒性、可生物降解、可持续产生高水平的免疫力、能刺激交叉保护作用、可与多种抗原兼容、在多种物种中有效、对宿主无毒且安全(如：无注射部位反应)。其它期望的佐剂特征为可微量给药、剂量节省、具有优良的货架稳定性、可承受干燥、可制成不含油、可作为固体或液体存在、为等张性、容易制造且其制造并不昂贵。最后，高度期望能够根据疫苗接种方案的需要而将佐剂配置成诱导体液或细胞免疫应答或二者兼有。然而，可符合上述条件的佐剂的数量有限。
佐剂的选择系取决于疫苗的需要，无论所述需要是增加抗体应答的幅度或功能、增加由细胞介导的免疫应答、诱导黏膜免疫力或降低抗原剂量。已提出大量佐剂，然而，其无一显示出理想适用于所有疫苗。第一种在文献中报导的佐剂为弗氏完全佐剂(Freund's Complete Adjuvant)(FCA)，其含有油包水乳液及分枝杆菌(mycobacterium)的提取物。不幸地，FCA的可耐受性差且可能引起无法控制的发炎。自从在超过80年前发现FCA起，人们一直努力减少不想要的佐剂副作用。
一些已作为佐剂使用的其它物质包括金属氧化物(如：氢氧化铝)、明矾、盐的无机螯合物、明胶、不同的石蜡型油、合成树脂、藻酸盐、类粘蛋白及多糖化合物、酪蛋白酸盐及从血液衍生的物质诸如纤维蛋白凝块。虽然这些物质通常可有效刺激免疫系统，但由于宿主中的不利作用(如：产生无菌脓肿、损伤、致癌性或变应原性应答)或令人不满的药学性质(例如物质从注射部位快速分散或分散控制不良，或膨胀)，因此无一令人完全满意。
合成油及石油衍生物已被用作佐剂，因其显示出在体内分散得相对缓慢，但其可能令人不满意，因其经常分裂成芳香烃，而此物质可能具致癌性。再者，这些物质中有些已被发现能够产生无菌脓肿且可能永远无法从身体完全排出。当正确选择且调制成正确浓度时，油可相对安全且无毒性。
自南美洲皂树(Quillaja saponaria)的树皮取得的皂苷已作为佐剂一段时间。见，Lacaille-Dubois,M and Wagner H.(A review of the biological andpharmacological activities of saponins。许多现今使用的兽医疫苗包含QuilA，其为来自南美洲智利皂荚树(Quillaja saponaria molina)的树皮的皂苷馏分。将Quil A进一步分馏则产生次馏分，包括QS-7、QS-17、QS-18及QS-21。(见美国专利No.5,057,540)。
使用皂苷作为佐剂有多种缺点。皂苷为可溶性，因此刺激非特异性免疫应答。然而，疫苗学的目的是刺激针对一种或多种特异性抗原的靶向应答。皂苷对胆固醇具有强亲和力。其与细胞膜中所发现的胆固醇形成复合物而使细胞溶血。其亦显示出引起注射位点坏死且难以配制成微粒构造。当用于含有经修饰的活包膜病毒的疫苗中时，皂苷可破坏病毒被膜从而将病毒抗原灭活。
为了克服Quil A的溶血及杀病毒性质，现已将其与胆固醇和磷脂组合而形成称为免疫刺激性复合物(ISCOM)或ISCOM基质(ISCOMATRIX)的特殊构造。见，Ozel M.,et al.；J.Ultrastruc.and Molec.Struc.Re 102,240-248(1989)。当与抗原组合时，ISCOM通常会诱导Th1细胞毒性T细胞应答。然而，尽管大幅减弱Quil A的溶血性质，但Quil A与胆固醇组合并不会完全消除此类性质。ISCOM的另一限制为蛋白质抗原必须具有足够大的疏水结构域来与ISCOM交互作用，从而被并入ISCOM中。高度亲水的蛋白质无法被并入ISCOM中。最后，ISCOM可在受试者内刺激不想要的自体免疫应答。
免疫调节剂已被用作佐剂，其例子包括二甲基双十八烷基溴化铵(以下称“DDA”)和拉韦定(avirdine)。DDA为亲脂性季铵化合物(胺)，其带有结合正电荷季铵分子的二个18碳烷基链及二个甲基基团，分子量为631。其作为佐剂的用途由Gall(Immunol.V.11,p.369,1966)发现。据报导，DDA可刺激强烈的经细胞介导的免疫应答，亦显示出可诱导体液免疫应答。许多论文已发表，证明DDA作为蛋白质抗原、半抗原(hapten)、肿瘤、病毒、原生动物及细菌的佐剂的效力。(见，Korsholm,K S.,et al.,Immunology,vol.121,pp.216-226,2007)。大部分研究已在实验室动物中进行，然而仅有少量在较大型的动物诸如鸡(见，Katz,D.,et al.FEMSImmunol Med Microbiol.Vol 7(4)：303-313,1993)、猪和牛中进行。DDA可在实验室动物以及较大型的动物中有效诱导延迟型超敏(DTH)反应。然而，其在水中不易溶。
聚合物亦已被用作佐剂，其例子包括二乙基-氨乙基(DEAE)-葡聚糖、聚乙二醇及聚丙烯酸(如：)。本领域中已知多糖DEAE-葡聚糖为非常强的佐剂。然而，其与令人无法接受的反应原性(reactogenicity)有关。聚合物为丙烯酸与聚链烯基醚或二乙烯乙二醇(divinyl glycol)交联的聚合物。已用于多种疫苗中，但其作为佐剂的用途并未被证实。
一些佐剂已显示刺激Th2应答，其例子包括水合N-(2-脱氧基-2-L-亮氨酰氨基-b-D-吡喃葡糖基)-N-十八烷基十二烷酰胺乙酸酯(当其为乙酸酯形式时亦已知为商标名Bay)及铝。Bay与经纯化的病毒疫苗或亚基疫苗组合可增加经病毒攻击的小鼠中抗体的生产。在其它动物物种(猪、绵羊、马)中进行的临床前试验在抗体生产方面得到相当的结果。由Bay诱导的抗体合成的增加特异性地取决于抗原而非多克隆刺激的结果。
在本发明之前并无佐剂配制物拥有理想佐剂所应有的广泛的期望的特征。寻求用于疫苗中的可克服常规佐剂的缺陷的新佐剂的努力一直在进行。特别地，高度期望下述佐剂配制物，其可在人和动物中引发针对广泛抗原的有效的经细胞介导的免疫应答及体液免疫应答，但无常规佐剂的副作用和配制困难。
发明内容
本发明涉及新颖的佐剂、免疫原性组合物和疫苗组合物。特别地，本发明涉及包含Th1刺激剂、免疫调节剂、聚合物及Th2刺激剂的佐剂配制物。本发明还涉及包含这类佐剂配制物及一或多种抗原的免疫原性组合物及疫苗组合物，以及制备该佐剂和疫苗组合物的方法。
在一个实施方案中，该佐剂组合物包含皂苷、固醇及季铵化合物的组合。在一个实施方案中，该佐剂组合物包含Quil A、胆固醇及DDA。
在另一个实施方案中，该佐剂组合物包含皂苷、固醇、季铵化合物及聚合物的组合。在一个实施方案中，该佐剂组合为Quil A、胆固醇、DDA及聚丙烯酸。
在另一个实施方案中，该佐剂组合物包含皂苷、固醇、季铵化合物、聚合物及糖脂的组合。在一个实施方案中，该佐剂组合为Quil A、胆固醇、DDA、聚丙烯酸及Bay。
在一个实施方案中，包含佐剂配制物及免疫有效量的抗原的免疫原性组合物(其中该佐剂配制物包含皂苷、固醇、季铵化合物及聚合物)通过包括下列步骤的方法制备：
a)在缓冲液中制备抗原的组合物；
b)将皂苷加入步骤a的组合物中；
c)将固醇加入步骤b的组合物中；
d)将季铵化合物加入步骤c的组合物中；
e)将聚合物加入步骤d的组合物中。
在所述方法的一个实施方案中，该皂苷为Quil A，该固醇为胆固醇，该季铵化合物为DDA且该聚合物为聚丙烯酸。
在一个实施方案中，包含佐剂配制物及免疫有效量的抗原的疫苗(其中该佐剂配制物包含皂苷、固醇、季铵化合物、聚合物及糖脂)系藉包含下列步骤的方法制备：
a)在缓冲液中制备该抗原成分的组合物；
b)将皂苷加入步骤a的组合物中；
c)将固醇加入步骤b的组合物中；
d)将季铵化合物加入步骤c的组合物中；
e)将聚合物加入步骤d的组合物中；及
f)将糖脂加入步骤e的组合物中。
在所述方法的一个实施方案中，该皂苷为Quil A，该固醇为胆固醇，该季铵化合物为DDA，该聚合物为聚丙烯酸且该糖脂为Bay
现已发现，本文中所报导的佐剂组合物具有令人惊讶且出人预料的超乎人对这类组合所预期的性质。令人惊讶地，现已发现这些佐剂组合物中的Quil A/胆固醇的杀病毒性质已被消除。其适合用作冻干的经修饰的活病毒抗原的稀释剂。本文所述的佐剂组合物可被构造成引发极有效的针对经细胞介导的免疫应答、体液免疫应答或此二者的免疫应答。此外，通过使用这些佐剂配制物可大幅避免注射部位反应。该反应原性低于包含该组合佐剂的数种个别组分的反应原性。此外，这些佐剂配制物提供长期贮存的能力。
本申请人已发现当这些新颖的佐剂组合物与横跨大范围物种的一或多种大量不同抗原组合时具有高度免疫原性。其可与一或多种病毒、细菌、寄生虫、重组蛋白质和合成的肽抗原及其组合一起使用。该新颖的疫苗佐剂组合物可用于治疗性疫苗中以治疗癌症。
因此，本发明提供佐剂、免疫原性组合物和疫苗组合物。此外，本发明提供用于制造该组合物的方法。本发明亦提供该组合物于治疗疾病的用途。本发明亦提供其用于制备下述药物的用途，所述药物用于针对疾病(特别是针对下述疾病)治疗受试者受试者。本发明亦提供其用于制备用于预防或减轻受试者中疾病的药物的用途。
本发明还提供了它们在制备下述药物中的用途，所述药物用于：针对由猫白血病病毒引起的感染治疗猫，针对禽球虫病(avian coccidiosis)治疗禽类，针对由大肠杆菌(Escherichia coli)引起的疾病治疗牛，针对由牛病毒性腹泻病毒引起的疾病治疗牛，针对由肺炎支原体(Mycoplasmahyopneumonia)引起的疾病治疗猪，针对由猫流感病毒引起的疾病治疗猫，受试者针对癌症治疗受试者，针对由犬冠状病毒(canine coronavirus)引起的疾病治疗犬，针对由牛轮状病毒(bovine rotavirus)引起的疾病治疗牛，以及针对由犬流感病毒引起的疾病治疗犬。本发明亦提供佐剂作为标记物疫苗来帮助确认已接受疫苗接种的动物的用途。本发明亦提供CpG用于增强佐剂效果的用途。
附图详述
图1展示了通过放射性免疫沉淀实验进行的凝胶电泳，其显示BVD病毒的NS2/3蛋白和E2蛋白之间的抗体图谱。经PreZent A处理的组显示对NS2/3蛋白以及E2蛋白二者的抗体应答，而经QCDC及QCDCR处理的组则显示出仅对E2蛋白有抗体应答，对NS2/3蛋白则无。
发明详述
定义
当与可测量的数值变量相关联地使用时，“约”或“大约”是指所指示的变量值及所有在所指示数值的实验误差内(如：平均值的95％置信区间内)或所指示数值的10％内(无论那一个数值较大)的变量值，除非“约”被用于表示以周计的间隔，其中“约3周”为17至25天，而约2至约4周为10至40天。
“佐剂”是指可增加对抗原的体液或细胞免疫应答的任何物质。佐剂通常被用于达成两种目的：减缓抗原从注射部位释出及刺激免疫系统。
“烷基”是指直链和支链的饱合烃部分。
“胺”是指含氮的化学化合物。胺是通过以烃基团取代氢原子而从氨衍生的一类化合物。“季胺”是指以铵为基础，带有4个烃基团的化合物。
“抗体”是指可因为对抗原的免疫应答而与特异抗原结合的免疫球蛋白分子。免疫球蛋白是由具有“恒定”及“可变”区的“轻”及“重”多肽链所组成的血清蛋白质，且根据该恒定区的组成而区分为数类(如：IgA、IgD、IgE、IgG及IgM)。
“抗原”或“免疫原”是指任何刺激免疫应答的物质。此名词包括被杀死的、灭活的、减毒的或经修饰的活细菌、病毒或寄生虫。术语抗原亦包括个别的或其任何组合的多核苷酸、多肽、重组蛋白质、合成的肽、蛋白质提取物、细胞(包括肿瘤细胞)、组织、多糖、或脂质、或其片段。术语抗原亦包括抗体，诸如抗受试者遗传型抗体或其片段，以及可模拟抗原或抗原决定簇(表位)的合成肽模拟位(mimotopes)。
“菌苗(bacterin)”是指可作为疫苗或免疫原性组合物的组分使用的一或多种被杀死的细菌的悬浮液。
“缓冲液”是指防止另一种化学物质的浓度变化的化学系统，如：质子供体及受体系统可作为防止氢离子浓度(pH)明显改变的缓冲液。另一缓冲液例子为含有弱酸及其盐(共轭碱)或弱碱及其盐(共轭酸)的混合物的溶液。
“细胞性免疫应答”或“经细胞介导的免疫应答”为一种由T-淋巴细胞或其它白细胞或此二者介导的免疫应答，其包括生产细胞因子、趋化因子及由活化的T细胞、白细胞或此二者制造的类似分子。
“胆固醇”是指化学式为C27H45OH的白色结晶型物质。其为一种被归类为脂质的环状烃醇。其不溶于水，但可溶于多种有机溶剂中。
“迟发型超敏反应(DTH)”是指暴露于被免疫系统视为外来的抗原后24至72小时时发展出的炎性应答。此类型的免疫应答主要涉及T细胞而非(由B细胞制造的)抗体。
“剂量”是指给予受试者的疫苗或免疫原性组合物。“第一剂量”或“先发疫苗(priming vaccine)”是指在第0天给予的这类组合物的剂量。“第二剂量”或“第三剂量”或“年剂量”是指在第一剂量之后给予的这类组合物的量，所述组合物可以是或不是与第一剂量相同的疫苗或免疫原性组合物。
“乳化剂”是指用于使乳液更稳定的物质。
“乳液”是指两种不相溶混的液体的组合物，其中一种液体的小滴悬浮于另一种液体的连续相中。
“酯类”是指与无机盐对应的任何一种类别的有机化合物，其系从有机酸单位与醇分子的缩合反应(其中消除一水分子)形成。
“赋形剂”是指任何非抗原的疫苗的组分。
“匀化”是指将一或多种相似或不相似的组分混合成均匀的混合物的过程。
“体液免疫应答”是指由抗体介导的免疫应答。
“疏水性”是指不溶于水、不易吸收水分或受到水的不利影响；与水不相容或对其亲和力低。
受试者受试者中的“免疫应答”是指应答抗原的体液免疫应答、细胞性免疫应答或体液及细胞性免疫应答的发生。免疫应答通常可利用本领域已知的标准免疫分析及中和分析来测定。
抗原的“免疫保护量”或“免疫有效量”或“产生免疫应答的有效量”为可在接受者体内有效诱导免疫原性应答的量。该免疫原性应答可能足以用于诊断目的或其它试验，或可能适合用于预防疾病的征兆或症状，包括由病原体引起的感染所造成的不利的健康结果或其并发症。体液免疫力或由细胞介导的免疫力或此二者均可被诱导。动物对免疫原性组合物的免疫应答可通过例如测量抗体效价、淋巴细胞增殖分析而间接评估，或在以野生型菌株攻击后通过监控征兆或症状来直接评估，而该由疫苗提供的保护性免疫力可通过测量例如受试者的临床征兆如死亡率、发病率的减少，温度数值，受试者总体生理状况及总体健康和表现来评估。免疫应答可包括，但不限于诱导细胞性和/或体液免疫力。
“免疫原性”是指激发免疫或抗原应答。因此，免疫原性组合物可为任何能诱导免疫应答的组合物。
“免疫刺激性复合物”或ISCOM是指当Quil A与胆固醇及磷脂组合时形成的特殊构造。
“免疫刺激分子”是指产生免疫应答的分子。
“脂质”是指任何不溶于水但溶于非极性有机溶剂中，触摸起来为油性，且与碳水化合物及蛋白质一起构成活细胞的主要构造物质的任何有机化合物群组，包括脂肪、油、蜡、固醇及三酸甘油脂。
“亲脂性”是指显示出对脂质的显著亲和力或在脂质中显示显著的溶解度。
“脂质体”是指由包围水性隔室的脂质双层形成的微小球形颗粒，其在医学上被用于在体内携带药物、抗原、疫苗、酶或另一物质至靶向的细胞。
“医疗剂(Medicinal agent)”是指任何用于预防、治愈或改善疾病，或预防一些生理状况或发病的药剂。
“肠胃外施用”是指将物质(诸如疫苗)通过或经由不包括消化道在内的途径引入受试者体内。肠胃外施用包括皮下、肌内、透皮、皮内、腹膜内、眼内及静脉内施用。
“药学上可接受的”是指在明智的医疗判断下适合与受试者组织接触而无不当毒性、刺激、变应原性应答等，与合理的利益对风险的比率匹配并对其预期用途有效的物质。
“反应原性”是指受试者受试者中应答佐剂、免疫原性或疫苗组合物的施用所引出的副作用。其可在施用部位发生，且通常就所发展出的症状数目来评估。这些症状可包括发炎、发红及脓肿。其亦可就发生、持续时间及严重性来评估。例如：“低度”反应将涉及仅可通过触摸而非由目视检测到的肿胀，或持续时间短。较严重的反应为，例如可目视检测或持续时间较长的反应。
“室温”是指18至25℃的温度。
“皂苷”是指一群源自植物的表面活性糖苷，其由与具有类固醇或三萜构造的疏水区结合的亲水区(通常为数个糖链)所组成。
“类固醇”是指易溶于有机溶剂而微溶于水的属于生化类别脂质的一群有机化合物之任何。类固醇包含一个四-融合环系统，此环系统具有3个融合的环己烷(六碳)环加第4个环戊烷(五碳)环。
“固醇”是指动物体内从萜类前体生物制造的化合物。其包含具有羟基(OH)基团(通常附于碳-3上)的类固醇环构造。该脂肪酸取代基的烃链的长度不同，通常为16至20个碳原子，且可为饱和或不饱和的。固醇通常在环构造中含有一或多个双键以及多种不同的附于环的取代基。固醇及其脂肪酸酯类基本上不溶于水。
“受试者”是指任何需要施用佐剂组合物的动物。其包括哺乳动物和非哺乳动物，包括灵长类、家畜、伴侣动物、实验室试验动物、圈养的野生动物、鸟(包括卵)、爬行动物和鱼。因此，该术语包括，但不限于猴子、人、猪；牛、绵羊、山羊、马、小鼠、大鼠、荷兰猪、仓鼠、兔子、猫、犬、鸡、火鸡、鸭、其它禽类、青蛙和蜥蜴。
“TCID50”是指“组织培养感染剂量”且定义为感染50％指定批次的经接种的细胞培养物时所需要的病毒稀释量。可使用多种方法来计算TCID50，包括本说明书全文中所使用的斯皮尔曼-卡伯法(Spearman-Karbermethod)。斯皮尔曼-卡伯法的描述见：B.W.Mahy&H.O.Kangro,VirologyMethods Manual,p.25-46(1996)。
“治疗有效量”是指可在接受抗原或疫苗的受试者内诱导足以预防或减轻由于病原体(诸如病毒或细菌)感染所引起的疾病的征兆或症状(包括不利的健康影响或其并发症)的免疫应答的抗原或疫苗量。可以诱导体液免疫力或细胞介导的免疫力或体液与细胞介导的免疫力二者。动物对疫苗的免疫应答可通过例如测量抗体效价、淋巴细胞增殖分析来间接评估，或在以野生型菌株攻击后通过监控征兆或症状来直接评估。由疫苗提供的保护性免疫力可通过测量例如受试者的临床征兆诸如死亡率、发病率的减少，温度数值，总体生理状况及总体健康和效能来评估。疫苗的治疗有效量可根据所使用的具体佐剂、所使用的具体抗原或受试者的状况而有不同，且可由本领域技术人员决定。
“治疗(treating)”是指预防应用了此术语的病症、病况或疾病，或预防或减轻这类病症、病况或疾病的一或多种症状。
“治疗(treatment)”是指如上述定义的“治疗(treating)”的行为。
“三萜”是指大量且多样的自六个五-碳异戊二烯(2-甲基-1,3-丁二烯)单位衍生的天然存在的有机分子，其可以上千种方法装配及修饰。其大部分为多环形构造，彼此的差异在于官能基及其基本的碳骨架。这些分子可在所有种类的活物中找到。
“疫苗”是指包含如本文定义的抗原的组合物。将疫苗施用给受试者可产生大致上针对一种或多种特定疾病的免疫应答。治疗有效的疫苗量可根据所使用的具体抗原、或受试者的状况而有不同，且可由本领域技术人员决定。
组合物的组分
三萜和CpGs
适用于佐剂组合物的三萜可来自多种来源(自植物衍生或合成的等同物)，包括，但不限于：皂树、西红柿素、人参提取物、蘑菇及构造上类似于类固醇皂苷的生物碱糖苷。因此，适合用于佐剂组合物中的三萜包括皂苷、角鲨烯及羊毛固醇。适合用于佐剂组合物中的三萜的量取决于所使用的三萜的性质。然而，其使用量通常为每剂量约1微克至约5000微克。其使用量亦可为每剂量约1微克至约4000微克、每剂量约1微克至约3000微克、每剂量约1微克至约2000微克及每剂量约1微克至约1000微克。其使用量亦可为每剂量约5微克至约750微克、每剂量约5微克至约500微克、每剂量约5微克至约200微克、每剂量约5微克至约100微克、每剂量约15微克至约100微克及每剂量约30微克至约75微克。
若使用皂苷，该佐剂组合物通常含有来自皂树树皮的免疫活性皂苷馏分。该皂苷可为，例如：Quil A或其它经纯化或部分纯化的皂苷制剂(其可商业获得)。因此，皂苷提取物可以作为混合物或经纯化的个别组分(诸如QS-7、QS-17、QS-18及QS-21)来使用。在一个实施方案中，Quil A为至少85％纯。在另一个实施方案中，Quil A为至少90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％、或99％纯。
CpG ODN为最近报告的一类药物治疗剂，其特征为在特异性碱基-序列上下文(CpG基序(motif))出现未甲基化的CG二核苷酸。(Hansel TT,Barnes PJ(eds)：New Drugs for Asthma,Allergy and COPD.Prog RespirRes.Basel,Karger,2001,vol 31,pp 229-232，该文献通过引用并入本文)。这些CpG基序不存在于真核DNA(其中CG二核苷酸受遏制，且当存在时通常系经甲基化)中，但存在于可由这些CpG赋予免疫刺激性质的细菌DNA中。这些免疫刺激性质包括诱导Th1型应答并大量释出IFN-A、IL-12及IL-18。CpG ODN(长度为18-24bp)拥有类似于细菌DNA的免疫调节性质。细胞表面蛋白质可吸收这些分子，得到不同结果。然而，通过载体诸如QCDC、QCDCR及其它本专利中所列举的组合，可显著增强该免疫调节性质及CpG的吸收。
适合用于佐剂组合物中的CpG的量系取决于所使用的CpG及预期物种的性质。然而，其使用量通常为每剂量约1微克至约20毫克。其使用量亦可为每剂量约1微克至约10毫克、每剂量约1微克至约5毫克、每剂量约1微克至约4毫克、每剂量约1微克至约3毫克、每剂量约1微克至约2毫克及每剂量约1微克至约1毫克。其使用量亦可为每剂量约5微克至约750微克、每剂量约5微克至约500微克、每剂量约5微克至约200微克、每剂量约5微克至约100微克、每剂量约10微克至约100微克、每剂量约15微克至约100微克及每剂量约30微克至约75微克。
固醇
适合用于佐剂组合物的固醇包括β-谷固醇、豆固醇、麦角固醇、麦角钙化醇及胆固醇。这些固醇为本领域公知并且可自市场上购得。例如：胆固醇公开于Merck Index,12th Ed.,p.369中。适合用于佐剂组合物中的固醇的量取决于所使用的固醇的性质。然而，其使用量通常为每剂量约1微克至约5000微克。其使用量亦可为每剂量约1微克至约4000微克、每剂量约1微克至约3000微克、每剂量约1微克至约2000微克及每剂量约1微克至约1000微克。其使用量亦可为每剂量约5微克至约750微克、每剂量约5微克至约500微克、每剂量约5微克至约200微克、每剂量约5微克至约100微克、每剂量约15微克至约100微克及每剂量约30微克至约75微克。
免疫调节剂
佐剂组合物可还包括一或多种免疫调节剂，诸如季铵化合物(如：DDA)及白介素、干扰素或其它细胞因子。这些物质可自市场购得。适合用于佐剂组合物中的免疫调节剂的量取决于所使用的免疫调节剂的性质及受试者。然而，其使用量通常为每剂量约1微克至约5000微克。其使用量亦可为每剂量约1微克至约4000微克、每剂量约1微克至约3000微克、每剂量约1微克至约2000微克及每剂量约1微克至约1000微克。其使用量亦可为每剂量约5微克至约750微克、每剂量约5微克至约500微克、每剂量约5微克至约200微克、每剂量约5微克至约100微克、每剂量约15微克至约100微克及每剂量约30微克至约75微克。在一特殊例子方面，含DDA的佐剂组合物可通过单纯将抗原溶液与新鲜制备的DDA溶液混合来制备。
聚合物
佐剂组合物可还包括一或多种聚合物，诸如，例如：DEAE葡聚糖、聚乙二醇和聚丙烯酸，以及聚甲基丙烯酸(如：)。这类物质可自市场购得。适合用于佐剂组合物中的聚合物的量取决于所使用的聚合物的性质。然而，其使用量通常为约0.0001％体积比体积(v/v)至约75％v/v。在其他实施方案中，其使用量为约0.001％v/v至约50％v/v、约0.005％v/v至约25％v/v、约0.01％v/v至约10％v/v、约0.05％v/v至约2％v/v及约0.1％v/v至约0.75％v/v。在另一个实施方案中，其使用量为约0.02％v/v至约0.4％v/v。DEAE-葡聚糖的分子大小可在50,000Da至5,000,000Da的范围内，或者，其可在500,000Da至2,000,000Da的范围内。这些物质可自市场购得或可从葡聚糖制得。
另一特殊例子为聚丙烯酸(如：聚合物)，其平均当量为76。其系从平均直径约0.2至6.0微米的初始聚合物颗粒制得。聚合物在水中可膨胀至多达其原始体积的1000倍及其原始直径的10倍，以在暴露于pH环境高于羧酸化物基团的pKa时形成凝胶。在较羧酸化物基团的pKa更高的pH下，该羧酸化物基团离子化，导致负电荷基团间的排斥，使聚合物的膨胀增加。
Th2刺激剂
佐剂组合物可还包括一或多种Th2刺激剂，诸如，例如：Bay及铝。适合用于佐剂组合物中的Th2刺激剂的量取决于所使用的Th2刺激剂的性质。然而，其使用量通常为每剂量约0.01毫克至约10毫克。在其他实施方案中，其使用量为每剂量约0.05毫克至约7.5毫克、每剂量约0.1毫克至约5毫克、每剂量约0.5毫克至约2.5毫克及每剂量约1毫克至约2毫克。一种特殊例子为Bay其为一种化学名称为“N-(2-脱氧基-2-L-亮氨酰氨基-β-D-吡喃葡糖基)-N-十八烷基十二烷酰胺乙酸酯”的糖脂。其可根据Lockhoff,0.(Angew.Chem.Int.Ed.Engl.30：1611-1620；1991)中所找到的程序合成。建议将其贮存在2-8℃的气密容器中。其化学或物理性质为轻微吸湿，不形成多形体，在温度高达50℃的空气和光下以及环境温度下pH 2-12的水性溶剂中为化学上稳定。其为在水溶液中形成胶束的两亲分子。
抗原和疾病
佐剂组合物可含有一或多种抗原。该抗原可为能在受试者中产生期望的免疫应答的多种物质的任一。虽然单独的Quil A是杀病毒的，Quil A加上胆固醇在形成螺旋形胶束时可解除Quil A的毒性(见，美国专利No.7,122,191)。现已发现，本文所述的佐剂组合物是非-杀病毒的、非溶血的或是溶膜的。因此，与这些佐剂组合物一起使用的抗原可为个别的或其任何组合的一或多种病毒(灭活、减毒及经修饰的活病毒)、细菌、寄生虫、核苷酸、多核苷酸、肽、多肽、重组蛋白质、合成的肽、蛋白质提取物、细胞(包括肿瘤细胞)、组织、多糖、碳水化合物、脂肪酸、磷壁酸(teichiocacid)、肽聚糖、脂质、或糖脂。
与本发明的佐剂一起使用的抗原亦包括核苷酸、多核苷酸、肽、多肽的免疫原性片段，其可分离自本文中所提及的生物。
不会在受试者中引起疾病的活病毒、经修饰的活病毒及减毒的病毒株已以非毒性形式被分离，或已利用本领域公知的方法(包括在合适的细胞系中进行系列传代或暴露于紫外线或化学诱变剂)减毒。灭活或被杀死的病毒株为那些已藉本领域技术人员已知的方法(包括以福尔马林、β丙内酯(BPL)、二乙烯亚胺(BEI)、灭菌辐射、加热或其它这类方法处理)灭活的毒株。
可将两种或多种抗原组合在一起以制造可保护针对由病原体引起的多种疾病来保护受试者的多价组合物。目前，疫苗的商品制造者以及终端使用者偏好多价疫苗产品。虽然常规佐剂通常受限于可与其一起有效使用的不同抗原(单价或多价)，但是本文所述的佐剂可有效用于广泛的抗原(单价以及多价)中。因此，本文所述的抗原可合并在包含本文所述的佐剂的单一组合物中。
一些可作为抗原与佐剂组合物一起使用的细菌的例子包括，但不限于：醋酸钙不动杆菌(Aceinetobacter calcoaceticus)、巴斯鲁安那醋酸杆菌(Acetobacter paseruianus)、胸膜肺炎放线杆菌(Actinobacilluspleuropneumoniae)、嗜水气单胞菌(Aeromonas hydrophila)、脂环酸杆菌(Alicyclobacillus acidocaldarius)、闪烁古球菌(Arhaeglobus fulgidus)、短小芽孢杆菌(Bacillus pumilus)、嗜热脂肪芽孢捍菌(Bacillusstearothermophillus)、枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)、热链形芽孢杆菌(Bacillus thermocatenulatus)、支气管败血性博德特氏菌(Bordetellabronchiseptica)、洋葱伯克霍尔德菌(Burkholderia cepacia)、谷伯克霍尔德菌(Burkholderia glumae)、大肠弯曲菌(Campylobacter coli)、胎儿弯曲菌(Campylobacter fetus)、空肠弯曲菌(Campylobacter jejuni)、猪肠弯曲杆菌(Campylobacter hyointestinalis)、鹦鹉热衣原体(Chlamydia psittaci)、沙眼衣原体(Chlamydia trachomatis)、衣原体属(Chlamydophila spp.)、黏性染色菌(Chromobacterium viscosum)、猪红斑丹毒丝菌(Erysipelothrixrhusiopathieae)、单核球增多性李斯特菌(Listeria monocytogenes)、犬埃立克体(Ehrlichia canis)、大肠杆菌(Escherichia coli)、流感嗜血杆菌(Haemophilus influenzae)、睡眠嗜血菌(Haemophilus somnus)、猪螺杆菌(Helicobacter suis)、细胞内劳森菌(Lawsonia intracellularis)、嗜肺军团菌(Legionella pneumophilia)、莫氏杆菌属(Moraxellsa sp.)、牛分枝杆菌(Mycobactrium bovis)、猪肺炎支原体(Mycoplasma hyopneumoniae)、丝状支原体亚种(Mycoplasma mycoides subsp.)、LC丝状菌(Mycoides LC)、产气荚膜梭菌(Clostridium perfringens)、犬牙周臭味菌(Odoribacterdenticanis)、溶血巴氏杆菌(Pasteurella(Mannheimia)haemolytica)、多杀巴氏杆菌(Pasteurella multocida)、发光光杆菌(Photorhabdus luminescens)、喉管卟啉单胞菌(Porphyromonas gulae)、牙龈卟啉单胞菌(Porphyromonasgingivalis)、唾液卟啉单胞菌(Porphyromonas salivosa)、痤疮丙酸杆菌(Propionibacterium acnes)、普通变形杆菌(Proteus vulgaris)、威斯康辛绿脓杆菌(Pseudomonas wisconsinensis)、绿脓杆菌、荧光假单胞菌C9(Pseudomonas fluorescens C9)、荧光假单胞菌SIKW1(Pseudomonasfluorescens SIKW1)、莓实假单胞菌(Pseudomonas fragi)、浅黄假单胞菌(Pseudomonas luteola)、食油假单胞菌(Pseudomonas oleovorans)、假单孢菌B11-1(Pseudomonas sp B11-1)、富养产碱菌(Alcaliges eutrophus)、不动嗜冷单胞菌(Psychrobacter immobilis)、普氏立克次体(Rickettsia prowazekii)、立克次氏立克次体(Rickettsia rickettsia)、鼠伤寒沙门氏菌(Salmonellatyphimurium)、邦哥利沙门氏菌(Salmonella bongiri)、肠沙门氏菌(Salmonella enterica)、都柏林沙门氏菌(Salmonella dublin)、鼠伤寒沙门氏菌、霍乱沙门氏菌(Salmonella choleraseuis)、纽波特沙门氏菌(Salmonellanewport)、黏质沙雷氏菌(Serratia marcescens)、钝顶螺旋藻(Spirlinaplatensis)、金黄色葡萄球菌、表皮葡萄球菌、猪葡萄球菌(Staphylococcushyicus)、白色链霉菌(Streptomyces albus)、肉桂链霉菌(Streptomycescinnamoneus)、猪链球菌(Streptococcus suis)、除角质链霉菌(Streptomycesexfoliates)、疥疮链霉菌(Streptomyces scabies)、嗜酸热硫化叶菌(Sulfolobusacidocaldarius)、集胞藻属(Syechocystis sp.)、霍乱弧菌(Vibriocholerae)、伯氏舒螺旋菌(Borrelia burgdorferi)、齿密螺旋菌(Treponemadenticola)、小密螺旋菌(Treponema minutum)、噬齿密螺旋菌(Treponemaphagedenis)、屈曲密螺旋菌(Treponema refringens)、文氏密螺旋菌(Treponema vincentii)、钯密螺旋体(Treponema palladium)及钩端螺旋体种(Leptospira species)，诸如已知的病原体犬钩端螺旋体(Leptospiracanicola)、感冒伤寒型钩端螺旋体(Leptospira grippotyposa)、哈佐钩端螺旋体(Leptospira hardjo)、博氏哈佐牛钩端螺旋体(Leptospira borgpeterseniihardjo-bovis)、博氏哈佐普拉伊特诺钩端螺旋体(Leptospira borgpeterseniihardjo-prajitno)、问号钩端螺旋体(Leptospira interrogans)、黄疸出血钩端螺旋体(Leptospira icterohaemorrhagiae)、波莫纳钩端螺旋体(Leptospirapomona)和布拉迪斯拉发钩端螺旋体(Leptospira bratislava)，及其组合。
灭活的病毒及减毒的活病毒可用于佐剂组合物中。一些可作为抗原使用的病毒例子包括，但不限于：鸟疱疹病毒、牛疱疹病毒、犬疱疹病毒、马疱疹病毒、猫病毒性鼻气管炎病毒、马立克氏病病毒(Marek's diseasevirus)、羊疱疹病毒、猪疱疹病毒、伪狂犬病病毒、鸟副黏病毒、牛呼吸道合胞体病毒、犬瘟热病毒、犬副流感病毒、犬腺病毒、犬细小病毒、牛副流感病毒3、羊副流感病毒3、牛疫病毒、边界病病毒(Border diseasevirus)、牛病毒性腹泻病毒(BVDV)、I型BVDV、II型BVDV、古典猪瘟病毒(Classical swine fever virus)、鸟白血病病毒、牛免疫缺陷病毒、牛白血病病毒、牛结核病病毒、猪感染性贫血病毒、猫免疫缺陷病毒、猫白血病病毒(FeLV)、新城疫病毒(Newcastle Disease virus)、羊进行性肺炎病毒、羊肺腺癌病毒、犬冠状病毒(CCV)、泛嗜性CCV(pantropicCCV)、犬呼吸道冠状病毒、牛冠状病毒、猫杯状病毒、猫肠冠状病毒、猫感染性腹膜炎病毒、猪流行性腹泻病毒、猪凝血性脑骨髓炎病毒、猪细小病毒、I型猪环病毒(PCV)、II型PCV、猪生殖及呼吸综合征(PRRS)病毒、传染性胃肠炎病毒、火鸡冠状病毒、牛流行热病毒、狂犬病轮状病毒、水泡性口炎病毒、慢病毒、鸟流感病毒、鼻病毒、马流感病毒、猪流感病毒、犬流感病毒、猫流感病毒、人流感病毒、东方马脑炎病毒(EEE)、委内瑞拉马脑炎病毒、西尼罗河病毒、西方马脑炎病毒、人免疫缺陷病毒、人乳头状瘤病毒、水痘带状疱疹病毒、乙型肝炎病毒、鼻病毒和麻疹病毒，及其组合。
肽抗原的例子包括支气管败血性薄德特氏菌(Bordetellabronchiseptica)p68、GnRH、IgE肽、Fel d1和癌症抗原，及其组合。其它抗原例子包括核苷酸、碳水化合物、脂质、糖脂、肽、脂肪酸和磷壁酸和肽聚糖，及其组合。
一些可作为抗原与佐剂组合物一起使用的寄生虫例子包括，但不限于无形体属(Anaplasma)、肝片吸虫(Fasciola hepatica)(肝吸虫)、球虫、艾美球虫(Eimeria)属、犬新孢子虫(Neospora caninum)、刚地弓形虫(Toxoplasma gondii)、贾第虫(Giardia)、恶丝虫(Dirofilaria)(心丝虫)、钩口线虫(Ancylostoma)(钩虫)、锥虫属(Trypanosoma spp.)、利什曼原虫属(Leishmania spp.)、毛滴虫属(Trichomonas spp.)、小球隐孢子虫(Cryptosporidium parvum)、巴贝西虫(Babesia)、血吸虫(Schistosoma)、绦虫(Taenia)、类圆线虫(Strongyloides)、蛔虫(Ascaris)、毛线虫(Trichinella)、肉孢子虫(Sarcocystis)、哈蒙德虫(Hammondia)和等孢子球虫(Isopsora)，及其组合。亦考虑的有外寄生虫，包括但不限于：蜱(ticks)，包括硬蜱属(Ixodes)、扇头蜱属(Rhipicephalus)、革蜱属(Dermacentor)、钝眼蜱属(Amblyomma)、牛蜱属(Boophilus)、琉眼蜱属(Hyalomma)和血蜱属(Haemaphysalis)，及其组合。
用于诱导免疫应答的抗原量根据所使用的抗原性质、受试者及期望的应答水平将有相当大的变化，且可由本领域技术人员决定。在含经修饰的活病毒或减毒病毒的疫苗方面，抗原的治疗有效量通常在从约102组织培养感染剂量(TCID)50(含)至约1010TCID50(含)的范围内。对许多这类病毒而言，治疗有效的剂量通常系在从约102TCID50(含)至约108TCID50(含)的范围内。在一些实施方案中，治疗有效的剂量通常系在约103TCID50(含)至约106TCID50(含)的范围内。在一些其他实施方案中，治疗有效的剂量系在约104TCID50(含)至约105TCID50(含)的范围内。
就含有灭活病毒的疫苗而言，抗原的治疗有效量通常为每剂量至少约100个相对单位，通常在每剂量约1,000至约4,500个相对单位的范围内。在其他实施方案中，抗原的治疗有效量为每剂量约250(含)至约4,000个相对单位(含)、每剂量约500(含)至约3,000个相对单位(含)、每剂量约750(含)至约2,000个相对单位(含)，或每剂量约1,000(含)至约1,500个相对单位(含)。
在含灭活的病毒的疫苗中，治疗有效量的抗原亦可按照每毫升的相对效力(RP)测量。治疗有效量通常在每毫升约0.1(含)至约50PR(含)的范围内。在其他实施方案中，抗原的治疗有效量的范围从每毫升约0.5(含)至约30PR(含)、每毫升约1(含)至约25PR(含)、每毫升约2(含)至约20PR(含)、每毫升约3(含)至约15PR(含)，或每毫升约5(含)至约10PR(含)。
在一个实施方案中，从持续受KT-FeLV-UCD-1猫白血病病毒株感染的FL74-UCD-1细胞系(ATCC编号CRL-8012)中制造FeLV抗原。疫苗中的FeLV抗原量系以每毫升的gp70病毒蛋白质量来测量。当通过每毫升的gp70病毒蛋白质量来测量时，FeLV抗原的治疗有效量通常在约100(含)至约350,000纳克/毫升(含)的范围内。在另一个实施方案中，该范围从约1,000(含)至约300,000纳克/毫升(含)，或从约2,500(含)至约250,000纳克/毫升(含)、或从约4,000(含)至约220,000纳克/毫升(含)、或从约5,000(含)至约150,000纳克/毫升(含)、或从约10,000(含)至约100,000纳克/毫升(含)。
在疫苗中施用的细菌抗原的细胞数为每剂量约1×106(含)至约5×1010(含)个菌落形成单位(CFU)。在其他实施方案中，该细胞数范围为约1×107(含)至约5×1010(含)CFU/剂量、或约1×108(含)至约5×1010(含)CFU/剂量。再还在其他实施方案中，该细胞数范围为约1×102(含)至约5×1010(含)CFU/剂量、或约1×104(含)至约5×109(含)CFU/剂量、或约1×105(含)至约5×109(含)CFU/剂量、或约1×106(含)至约5×109(含)CFU/剂量、或约1×106(含)至约5×108(含)CFU/剂量、或约1×107(含)至约5×109(含)CFU/剂量。
在疫苗中施用的寄生虫抗原的细胞数为每剂量约1×102(含)至约1×1010(含)。在其他实施方案中，该细胞数范围为约1×103(含)至约1×109(含)、或约1×104(含)至约1×108(含)、或约1×105(含)至约1×107(含)、或约1×106(含)至约1×108(含)。
本领域公知，使用常规佐剂时与经修饰的活病毒或减毒病毒相比需要显著更大量的灭活病毒来刺激可比较的血清学应答水平。然而，令人惊讶地发现，通过本文所述的佐剂组合物，大约相同量的灭活病毒和经修饰的活病毒刺激类似的血清学应答水平。此外，当与常规佐剂相比较时，使用本文所述的佐剂时，为实现相同的血清学应答水平需要更少量的经修饰的活病毒、减毒病毒及灭活病毒。这些出人意料的发现证明在制备免疫原性组合物和疫苗组合物期间保护资源并降低成本。在具有广泛用途的疫苗方面，每年需要制造数百万个剂量，因此这些节约是重要的。
赋形剂
水性佐剂提供某些优点。其通常容易配制及施用，且可诱导很少或较少的严重注射部位反应。然而，带有抗原的水性佐剂倾向从注射部位扩散，由受试者的肝脏清除并产生不想要的非特异性免疫应答。令人惊讶地发现，本文所述的水性佐剂组合物可保持在注射部位直到被生物代谢(这在很长的期间内发生)，并提供靶向的免疫应答。
当作为佐剂的组分加入时，油通常提供长且缓慢的释出谱。本发明中，油可代谢或不可代谢。油可为水包油、油包水或水包油包水乳液的形式。
适合用于本发明的油包括烷、烯、炔，其对应的酸及醇，及其醚及酯，及其混合物。油的个别化合物为轻烃化合物，即，这类组分具有6至30个碳原子。该油可合成制备或从石油产物纯化。此部分可具有直链或支链构造。其可为完全饱和或具有一个或多个双键或参键。用于本发明的一些不可代谢的油包括，例如：矿物油、石蜡油及环烷烃。
术语油亦欲包括“轻矿物油”，即：以类似方法通过蒸馏石油取得，但其比重较白矿物油稍低的油。
可代谢的油包括可代谢的、无毒的油。油可为任何可被施用佐剂的受试者的身体代谢且对受试者无毒性的植物油、鱼油、动物油或经合成制备的油。植物油的来源包括坚果、种籽及谷粒。
本发明提供的水包油乳液系由配制物组成。此配制物包含水性组分、卵磷脂、矿物油及表面活性剂。描述该配制物的组分的专利包括美国专利No.5,084,269和US 6,572,861。
典型地，本发明的油组分的存在量为1％至50％(以体积计)；或为10％至45％；或为20％至40％。
组合物的其它组分可包括药学上可接受的赋形剂，诸如载体、溶剂和稀释剂、等张剂、缓冲液、稳定剂、防腐剂、血管收缩剂、抗细菌剂、抗真菌剂等。典型的载体、溶剂和稀释剂包括水、盐水、右旋糖、乙醇、甘油、油等等。代表性的等张剂包括氯化钠、右旋糖、甘露醇、山梨糖醇、乳糖等等。有用的稳定剂包括明胶、白蛋白等等。
表面活性剂被用于协助稳定被选择作为佐剂和抗原的载体的乳液。适合用于本发明的表面活性剂包括天然的生物相容的表面活性剂和非天然的合成的表面活性剂。生物相容的表面活性剂包括磷脂化合物或磷脂的混合物。优选的磷脂为磷脂酰胆碱(卵磷脂)，诸如大豆或卵的卵磷脂。通过水洗粗制植物油，再将得到的水合胶分开并干燥，可取得作为磷脂与三酸甘油酯的混合物的卵磷脂。通过在丙酮清洗移除三酸甘油酯和植物油后，将剩余的不溶于丙酮的磷脂与甘油脂的混合物分馏，可取得精制的产物。或者，可从不同的商品来源取得卵磷脂。其它合适的磷脂包括磷脂酰甘油、磷脂酰肌醇、磷脂酰丝氨酸、磷脂酸、心磷脂及磷脂酰乙醇胺。磷脂可从天然来源分离出或以常规方式合成。
适合用于本发明的非天然的合成表面活性剂包括基于脱水山梨糖醇的非离子性表面活性剂，如：经脂肪酸取代的脱水山梨糖醇表面活性剂(可以名称或商业获得)、聚乙氧基化山梨糖醇的脂肪酸酯来自诸如蓖麻油的来源的脂肪酸的聚乙二醇酯聚乙氧基化的脂肪酸(如：可以名称SIMULSOL取得的硬脂酸)、聚乙氧基化的异辛酚/甲醛聚合物聚氧乙烯脂肪醇醚聚氧乙烯壬苯基醚聚氧乙烯异辛苯基醚
一般而言，若使用两种或更多表面活性剂时，表面活性剂或表面活性剂的组合在乳液中的存在量为以体积计0.01％至10％，优选地0.1％至6.0％，更优选地0.2％至5.0％。
本文所使用的“药学上可接受的载体”包括任何及所有溶剂、分散介质、涂覆层、佐剂、稳定剂、稀释剂、防腐剂、抗细菌剂及抗真菌剂、等张剂、吸收延迟剂等等。载体在可与组合物的其它组分兼容且对受试者无害方面必须为“可接受的”。典型地，载体应为无菌且不含病原体，并根据欲使用的施用模式选择。本领域技术人员已知包含组合物的药学上可接受的载体的优选配制物为美国(US)农业部或美国食品药物管理局或在非美国国家中的同等政府机构所发布的适用规则所核准的药物载体。因此，用于组合物的商业生产中的药学上可接受的载体为已被美国或外国的适当政府机构核准或将要核准的载体。
组合物任选地可包含作为药学载剂、赋形剂或介质发挥作用的，相容的药学上可接受(即，无菌或非毒性)的液体、半固体或固体稀释剂。稀释剂可包括水、盐水、右旋糖、乙醇、甘油等等。等张剂可包括氯化钠、右旋糖、甘露醇、山梨糖醇及乳糖及其他。稳定剂包括白蛋白及其他。
组合物亦可含有抗生素或防腐剂，包括，例如：庆大霉素、硫柳汞、或氯甲酚。本领域技术人员公知可用于选择的不同类别的抗生素或防腐剂。
组合物的制备方法
佐剂配制物的制备方法
ISCOM可通过组合皂苷、固醇及磷脂来制备。例如：ISCOM可含有以重量计5％至10％的Quil A、1％至5％的胆固醇和磷脂，以及剩余部分的蛋白质。佐剂配制物中皂苷对固醇的比例典型地为1：100(重量对重量)(w/w)至5：1(w/w)。在一些实施方案中存在过量的固醇，其中皂苷对固醇的比例为至少1：2(w/w)，或1：5(w/w)。在其他实施方案中，皂苷相对于固醇而言为过量，并使用的皂苷对固醇的比例为约5：1(w/w)。ISCOM及ISCOMATRIX可自Isconova AB(瑞典)购得。
在一些实施方案中，与DDA组合使用，其使用量为每重量份的DDA至少使用0.1重量份的在其他实施方案中，每重量份的DDA至少使用0.5重量份的还在其他实施方案中，每重量份的DDA至少使用1重量份的 与DDA组合形成复合物，藉此，DDA叔胺官能基将使聚合物上的羧酸侧基团免疫官能化。这可令特定的免疫细胞同时靶向抗原及佐剂，且在最适的时间和浓度下将抗原及佐剂共同投递至所述细胞。
本文所述的佐剂通常不需要任何特殊载体，且将调制在水性或其他药学上可接受的缓冲液中。在一些情况下，公开的实施方案的疫苗将存于合适的载剂中，诸如，例如：另外的脂质体、微球或经包囊的抗原颗粒。该抗原可包含在囊泡膜中或包含在囊泡膜外。一般而言，可溶性抗原在囊泡膜外，疏水性或经脂化的抗原包含在囊泡膜内或外。
根据施用途径、贮存需要等等，可将佐剂组合物制成多种不同的形式。例如，其可制成适合注射用的无菌水溶液或分散液形式，或利用冻干、真空干燥或喷雾干燥技术制成冻干形式。冻干的组合物可在使用前于稳定化溶液例如盐水或HEPES中重建。因此，佐剂组合物可以作为固体、半固体或液体剂型使用。
佐剂可利用本领域已知的技术制备。例如：可将皂苷与胆固醇在合适的清洁剂中混合，再通过溶剂萃取技术形成脂质体或ISCOM。亦可如美国专利案No.7,122,191中所述，将皂苷与胆固醇组合以形成螺旋形胶束。
磷酸盐缓冲盐水(PBS)可作为水性缓冲介质使用；该缓冲液的pH值可为中性或微碱性或微酸性。因此，pH值可在pH 6至8的范围内。pH值一般为约7.0至约7.3。缓冲液的强度可介于10至50mM PO4及10至150mM PO4之间。在一个例子中使用0.063％PBS。pH值可依需要利用NaOH或HCl调整。典型的浓度包括1N至10N HCl及1N至10N的NaOH。
所使用的佐剂量系取决于所使用的抗原及期望施用的抗原剂量。其亦取决于计划的物种及所需的配制物。通常，佐剂的量在常规佐剂用量的范围内。例如：在1毫升剂量中，佐剂典型地包含约1微克(含)至约1000微克(含)。类似地，在1毫升剂量中，抗生素典型地包含约1微克(含)至约60微克(含)。
可将佐剂配制物匀化或微射流匀化(microfluidizing)。对配制物进行初级混合步骤，这典型地通过将配制物通过一个或多个匀化器一次或多次来实现。任何可购得的匀化器均可用于此目的，如：Ross乳化器(Hauppauge，纽约)、Gaulin匀化器(Everett，MA)或Microfluidics(Newton，MA)。在一个实施方案中，将配制物在10,000rpm匀化3分钟。通过使用市售的微射流机(诸如自Microfluidics(Newton，麻州)取得的型号110Y；Gaulin 30CD型(Gaulin公司，Everett，MA)；及Rainnie Minilab 8.30H型(Miro Atomizer Food and Dairy公司，Hudson，威斯康星州))可实现微射流匀化。这些微射流匀化器通过在高压下将流体用力推过小孔隙来操作，从而使二种流体流在交互作用室中以高速交互作用，形成具有次微米大小的液滴的组合物。在一个实施方案中，将配制物在10,000+/-500psi下通过200微米的限制尺寸室来将其微射流匀化。
本文所述的佐剂组合物可被匀化并且微射流匀化。在一个实施方案中，将抗原加入合适的缓冲液中。搅拌溶液并将皂苷慢慢加入抗原溶液中。然后，将固醇慢慢加入抗原/皂苷溶液中，再将季铵化合物慢慢加入抗原/皂苷/固醇溶液中。将得到的组合物匀化，再微射流匀化。微射流匀化后，将聚合物加入微射流匀化组合物中。根据所使用的组分，可改变这些步骤的次序，以将组合物的制备过程最优化。
免疫原性组合物和疫苗组合物的制备方法
本文所述的佐剂组合物可用于制备免疫原性组合物和疫苗组合物。在疫苗或免疫原性组合物方面，各剂量含有治疗有效量的一种或多种抗原，此量根据受试者的年龄和一般状况、施用途径、抗原性质及其它因素而有所变化。疫苗或免疫原性组合物中的其它组分的量和浓度可经调整以修饰组合物的物理及化学性质，且可由本领域技术人员轻易测出。佐剂组合物的有利性质为其可完全根据该组合物的所需特征来构建。例如：若需要较强的Th1应答，则可增加Th1刺激剂的量。同样地，若需要较强的Th2应答，则可增加Th2刺激剂的量。亦可取得平衡的Th1/Th2应答。免疫原性组合物和疫苗组合物亦可依上述方法匀化或微射流匀化。
组合物的施用和用途
组合物的施用
根据受试者及抗原，组合物的剂量大小典型地在约1毫升(含)至约5毫升(含)的范围内。例如：在犬或猫方面典型地使用约1毫升的剂量，而在牛方面典型地使用约2至5毫升。然而，这些佐剂亦可配制成微小剂量，其中可使用约100微升的剂量。
佐剂组合物的施用途径包括肠胃道外、口、口鼻、鼻内、气管内、局部及卵内等途径。任何合适的装置均可用来施用组合物，包括注射器、滴管、无针注射装置、贴片等等。被选用的途径及装置取决于佐剂组合物、抗原及受试者，这些是本领域技术人员公知的。
组合物的用途
用于商业用途的任何疫苗佐剂制剂的要求之一是建立佐剂溶液的稳定性以供长期贮存。本文中提供了容易制造且可保持稳定至少18个月的佐剂配制物。在一个实施方案中，该配制物可保持稳定约18个月。在另一个实施方案中，该配制物可保持稳定约18至约24个月。在另一个实施方案中，该配制物可保持稳定约24个月。加速测试程序亦指出本文所述的配制物是稳定的。
本发明的佐剂组合物的一个有利特性是，其可安全且有效地施用很多种受试者。本领域中预期佐剂的组合将显示出较个别组分更强的反应原性。然而，当与其中使用任何一种或二种组分的组合物相比较时，本文所述的组合物显示出降低的反应原性，同时仍保持佐剂的效果。还令人惊讶地发现，当与其它佐剂组合物相比较时，本文所述的佐剂组合物显示出安全性改善。
本文所述的佐剂组合物可用于在受试者内产生所需的免疫应答。其在多种物种中均有效。任何需要施用佐剂组合物的动物均为合适的受试者。其包括哺乳动物及非哺乳动物，包括灵长类、家畜、伴侣动物、实验室试验动物、圈养野生动物、鸟类(包括卵)、爬行动物及鱼。因此，该术语包括，但不限于：猴子、人、猪；牛、绵羊、山羊、马、小鼠、大鼠、荷兰猪、仓鼠、兔子、猫、犬、鸡、火鸡、鸭、其它禽类、青蛙和蜥蜴。
本文所述的佐剂可用于显示受感染与已接种疫苗的动物间的血清学差异。因此，其可在标记物疫苗中使用，其中所述疫苗中的抗原可在已接种经疫苗的动物中引发与野生型病毒不同的抗体模式)。标记物疫苗通常与伴随诊断试验(其测量抗体模式中的差异并证明何种动物已接受疫苗接种，何种动物被野生型病毒感染)一起使用。这类技术可用于控制及消灭来自受试者种群的病毒。
下列实施例作为阐述性实施方案展示，但不应被用来限制本发明的范围。本领域技术人员可明白本发明的许多改变、变化、修饰及其它用途及应用。
实施例
实施例1.Quil A/胆固醇(QC)溶液
将Quil A(Superfos)溶解在水中，制备50毫克/毫升的储备溶液。将胆固醇(Fabri Chem Inc.)溶解在乙醇中，制备18毫克/毫升的储备溶液。然后，利用0.2微米滤器过滤胆固醇储备溶液。
不同配制物中Quil A和胆固醇的浓度范围可从Quil A对胆固醇低至1/1(微克/毫升)到高达1000/1000(微克/毫升)。为了制备50/50(微克/毫升)的Quil A/胆固醇储备溶液，用水将Quil A储备溶液稀释成50微克/毫升的浓度。一边搅拌此溶液，一边慢慢加入胆固醇储备溶液，使最终浓度为50微克/毫升。
实施例2.DDA(D)溶液
将二甲基双十八烷基溴化铵(DDA；Fluka Analytical)溶解在乙醇中，制备18毫克/毫升的储备溶液。利用0.2微米滤器过滤DDA储备溶液。
实施例3.Quil A/胆固醇/DDA(QCD)溶液
依实施例1制备具所需浓度的Quil A/胆固醇储备溶液。依实施例2制备DDA储备溶液并将其慢慢加入Quil A/胆固醇储备溶液中。将溶液混合以取得所需的最终浓度。依需要以NaOH或HCl调整该溶液的pH值以取得所需的最终pH(通常在约6.9至约7.5的范围内)。
实施例4.(C)溶液
将(Noveon，墨西哥)溶解在去离子水中，制备1.5％的储备溶液。在另一个实施方案中，将溶解在去离子水中，制备0.75％的储备溶液。
实施例5.DDA/(DC)溶液
依实施例2制备DDA储备溶液。依实施例4制备0.75％的储备溶液。将溶液混合以取得所需的最终浓度。
实施例6.Quil A/胆固醇/DDA/(QCDC)溶液
依实施例3制备Quil A/胆固醇/DDA储备溶液。依实施例4制备0.75％的储备溶液。将储备溶液慢慢加入QuilA/胆固醇/DDA储备溶液中，以取得所需的最终浓度。以NaOH或HCl调整该溶液的pH值以取得所需的最终pH(通常在约6.9至约7.5的范围内)。
实施例7.Bay(R)溶液
为了制备Bay储备溶液，将糖脂N-(2-脱氧基-2-L-亮氨酰氨基-β-D-吡喃葡糖基)-N-十八烷基十二烷酰胺溶解在乙醇(60％，v/v)中。然后，加入吐温20及冰醋酸。在一个实施例中，将3.49gm的N-(2-脱氧基-2-L-亮氨酰氨基-β-D-吡喃葡糖基)-N-十八烷基十二烷酰胺溶解在44.64毫升的乙醇/水(60％，v/v)中。将此溶液与1.12毫升吐温20及0.68毫升冰醋酸合并。
实施例8.Quil A/胆固醇/DDA//Bay(QCDCR)溶液
依实施例6制备Quil A/胆固醇/DDA/储备溶液。依实施例7制备Bay储备溶液。将Bay溶液慢慢加入Quil A/胆固醇/DDA溶液中，以取得所需的最终浓度。依需要，以NaOH或HCl调整该溶液的pH值以取得所需的最终pH(通常在约6.9至约7.5的范围内)。
实施例9.DEAE葡聚糖溶液(X)
将200毫克/毫升的DEAE葡聚糖溶解在水中以制备DEAE葡聚糖(X)储备溶液。可将此溶液在摄氏120度(C)高压灭菌约20分钟。
实施例10.Quil A/胆固醇/DDA/DEAE溶液(QCDX)
依实施例3制备Quil A/胆固醇/DDA储备溶液。依实施例9制备DEAE储备溶液。将溶液直接加入匀化器中以将其合并。混合时使用大于1000秒-1的剪力，利用闪蒸混合法(flash blending method)进行。混合如下进行：将水性溶液直接送入含有非极性佐剂和抗原组分的油相中并搅拌至取得均匀稳定的混合物。典型地，根据所需的颗粒大小此步骤可能为至少几分钟或更久。
实施例11.油组合物(O)
将Drakeol矿物油与吐温85及司盘85(Span85)合并，加热至约55℃，冷却后再进行无菌过滤，以制备油储备溶液。因此，此混合物包含用于基于油的载体的油相基质组分。若选择胆固醇和/或DDA作为这些组合物之一的协作免疫调节剂，则在过滤前亦将其加入此混合物中，因其可溶于油相中。
实施例12.Quil A/胆固醇/DDA/DEAE/油组合物(QCDXO)
依实施例10制备Quil A/胆固醇/DDA/DEAE储备溶液。依实施例11制备油贮存组合物。该溶液是Quil-A、DEAE葡聚糖和水的组合，以实现所述浓度下的量。将反应物在室温或更高的温度下持续搅拌数分钟或更久以混合水相，然后进行无菌过滤并贮存，以供加入油相中。将水相慢慢加入持续混合的油相中。
实施例13.免疫原性组合物或疫苗组合物的制备方法
为了制备包含抗原及一种上述佐剂的免疫原性组合物或疫苗组合物，将所需抗原加入合适的缓冲液中。然后，依上述加入所需佐剂的组分。用缓冲液使得到的溶液达到最终体积。
实施例13a.抗原、Quil A、胆固醇、DDA、
为了制备包含抗原、Quil A、胆固醇、DDA及的免疫原性组合物或疫苗组合物，将所需抗原加入合适的缓冲液中。依实施例1制备Quil A储备溶液，将其慢慢加入该抗原溶液中。依实施例1制备胆固醇储备溶液并将其慢慢加入该抗原/Quil A溶液中。依实施例2制备DDA储备溶液并将其慢慢加入该抗原/Quil A/胆固醇溶液中。将抗原/Quil A/胆固醇/DDA/溶液匀化及微射流匀化。依实施例4制备0.75％溶液。微射流匀化后，将溶液(0.05％，v/v)加入经微射流匀化的组合物中，以NaOH或HCl将pH值调整为约6.9至约7.5。
实施例13b.抗原、Quil A、胆固醇、DDA、Bay
为了制备包含抗原、Quil A、胆固醇、DDA、及Bay的免疫原性组合物或疫苗组合物，将所需抗原加入合适的缓冲液中。依实施例1制备Quil A储备溶液并将其慢慢加入该抗原溶液中。依实施例1制备胆固醇储备溶液并将其慢慢加入该抗原/Quil A溶液中。依实施例2制备DDA储备溶液并将其慢慢加入该抗原/Quil A/胆固醇溶液中。将抗原/Quil A/胆固醇/DDA/溶液匀化及微射流匀化。依实施例4制备0.75％溶液。微射流匀化后，将溶液(0.05％v/v)加入微射流匀化组合物中，以NaOH或HCl将pH值调整为约6.9至约7.5。依实施例7制备Bay储备溶液，在加入DDA后，将Bay组分加入水相中。
实施例13c.抗原、Quil A、胆固醇、DDA、DEAE葡聚糖
为了制备包含抗原、Quil A、胆固醇、DDA及DEAE葡聚糖的免疫原性组合物或疫苗组合物，将所需抗原加入合适的缓冲液中。依实施例1制备Quil A储备溶液并将其慢慢加入该抗原溶液中。将组合物匀化。依实施例1制备胆固醇储备溶液并在匀化期间将其慢慢加入抗原/Quil A溶液中。依实施例2制备DDA储备溶液并在匀化期间将其慢慢加入该抗原/Quil A/胆固醇溶液中。依实施例9制备DEAE葡聚糖溶液。在匀化期间加入DEAE葡聚糖溶液并使得到的组合物达到最终体积。
实施例13d.抗原、Quil A、胆固醇、DDA、DEAE葡聚糖、油
为了制备包含抗原、Quil A、胆固醇、DDA、DEAE葡聚糖及油的免疫原性组合物或疫苗组合物，将所需抗原加入合适的缓冲液中。依实施例1制备Quil A储备溶液并将其慢慢加入该抗原溶液中。将组合物匀化。依实施例1制备胆固醇储备溶液并在匀化期间将其慢慢加入抗原/Quil A溶液中。依实施例2制备DDA储备溶液并在匀化期间将其慢慢加入该抗原/Quil A/胆固醇溶液中。依实施例9制备DEAE葡聚糖溶液。在匀化期间，加入DEAE葡聚糖溶液。依实施例11制备油组合物。匀化期间，通过将水相加入油相中同时匀化来加入油组合物，并使得到的组合物达到最终体积。
实施例14.猫白血病病毒(FeLV)疫苗
利用随机化完全区组设计(Randomized complete block design)将动物随机分配至处理组。表1显示该研究设计。区组以生日及胎次为基础。先根据生日，再根据胎次将动物分类。使用4个区组。同一区组内随机指定动物所接受的治疗。在研究的疫苗接种阶段方面，将二个连续区组组合以形成含8只动物的组别。将各动物组随机分配至二个房间，使每个房间含有5组(10个区组)动物。在一组动物中，将动物随机分配至彼此靠近的四个笼子内，使每个笼子内包含二只接受相同治疗的动物。在研究的攻击阶段方面，将来自一个疫苗接种室的动物随机分配至一或二个攻击室。被选择为分成二个攻击室的疫苗接种室具有五个随机分配至各个攻击室的区组(2.5组；20只动物)。另一攻击室包含十个区组(5组；40只动物)。在一个攻击室内将同一区组的动物随机分配至四个彼此靠近的笼子内。
依实施例13制备用于此研究的疫苗，但使用1.5％的储备溶液。特定地，在经FeLV转化的淋巴样细胞中繁殖FeLV次群体A、B及C以制备2(Pfizer,Inc.)。将病毒抗原以化学方式灭活，与无菌佐剂组合以增强免疫应答，并以液体形式包装。制备总量为100毫升，含有猫白血病病毒及25微克Quil A/氢氧化铝的研究用兽医制品(Investigational Veterinary Product，IVP)。将总计94.5毫升的1.106×105纳克/毫升FeLV储备溶液慢慢混合15分钟。若需要，以4NHCl或18％NaOH将pH值调整为5.9至6.1。一边搅拌，一边将0.5毫升的5.0毫克/毫升Quil A溶液加入抗原溶液中。然后慢慢加入5.0毫升的100％(v/v)将组合物在4℃下搅拌至少2小时。依需要，以18％NaOH或1N HCl将pH值调整为7.0至7.3。
依用于25微克Quil A IVP的相同方式制备包含猫白血病病毒及37.5微克Quil A/氢氧化铝的IVP，但向该抗原溶液中加入7.5毫升的Quil A储备溶液。
制备总量为350毫升，含有猫白血病病毒、Quil A、胆固醇、DDA及的研究用兽医制品(IVP)。一边搅拌349.3毫升的1.106×105纳克/毫升FeLV储备溶液，一边将0.14毫升的50.0毫克/毫升Quil A溶液慢慢加入该抗原溶液中。然后，慢慢加入0.39毫升的18毫克/毫升胆固醇/乙醇溶液。将组合物在10,000rpm匀化3分钟。一边搅拌，一边将总量为0.19毫升的18.0毫克/毫升DDA/乙醇溶液加入该组合物中。将总量为5.0毫升的1.5％溶液慢慢加入145.0毫升的猫白血病病毒、QuilA、胆固醇及DDA组合物中。依需要，以18％NaOH或1N HCl将pH值调整为7.0至7.3。
表1：实验设计
a研究用兽医制品
b经混合以含有与参考疫苗(FeLV Reference Lot No.12)相当的相对效力
cSC＝皮下
dDepo-第42天(约5.0毫克/公斤)通过肌内途径
eON＝口鼻
Quil A-胆固醇＝皂苷佐剂Quil A，并入胆固醇的脂质颗粒中
DDA＝二甲基双十八烷基溴化铵
每天观察所有动物并记录观察结果。在施用第一个疫苗剂量前的第-1天及施用第二个疫苗剂量前的第20天，通过测量耳温来记录所有动物的体温。在第-2天，通过颈静脉的静脉穿刺自各动物收集血样(1.0-2.0毫升)。根据体重通过肌内途径施用镇静剂量(约5.0毫克/公斤)的(Fort Dodge Animal Health)，以将动物压力减至最少，避免在收集血液期间对动物处理者造成伤害。将血液收集在血清分离管(SST)中并进行血清分离处理。将血清贮存在-20℃或更低的温度下直到进行测试。
通过皮下途径对猫施用1.0毫升剂量的安慰剂或FeLV疫苗。在第0天进行第一次疫苗接种，在第21天进行第二次疫苗施用。在第一和第二次接种疫苗后观察所有动物的立即局部疼痛反应(刺痛反应)约1小时。将观察结果记录在文件上。在施用第一个疫苗剂量后的第1及2天及施用第二个疫苗剂量后的第22及23天，通过测量耳温来测量所有动物的体温。在第1次接种疫苗后的第1天及第2次接种疫苗后的第22和23天亦测定注射部位反应(肿胀)。第35天，通过颈静脉的静脉穿刺自各动物收集血样(1.0-2.0毫升)，进行血清分离处理并贮存在-20℃或更低的温度下直到进行测试。
第35天将动物置入个别隔离的笼子内。攻击病毒为有毒的猫白血病病毒(FeLV)，Rickard毒株，效价为约106.1TCID50/毫升。将FeLV攻击物质解冻并在施用前保持在冰上。在第37、40、42及44天通过鼻途径施用1.0毫升未经稀释的攻击物质，对动物进行攻击。在1毫升无针头的结核菌素注射器中填入攻击物质。对每一只小猫的每一鼻孔施用约0.5毫升。第42天，在施用DEPO-约5小时后进行攻击施用。在每一天攻击之后，保留攻击物质的样品以用于确认效价。
攻击后，在第64、85、106、127、134、141、148及155天，通过颈静脉的静脉穿刺自各动物收集血样(1.0-2.0毫升)。依上述施用镇静剂量的(Fort Dodge)。将血收集在血清分离管(SST)中，进行血清分离处理并贮存在-20℃或更低的温度下直到进行测试。通过ELISA(IDEXX；Westbrook，缅因州)测试血清样品中是否存在FeLVp27抗原(FeLV感染的标记物)。通过产生的颜色强度及光度分光计在405/490nm测量的光密度来评估最终结果。在有效测试方面，阳性对照组的光密度必须介于0.131与2.999之间，而阴性对照组的光密度必须低于或等于0.0039。
利用在第-2及35天收集的血清样品进行病毒分离。考虑使用来自第127至155天的血清样品来评估FeLV疫苗效力。测试来自第127天(第12周)、第134天(第13周)、第141天(第14周)、第148天(第15周)及第155天(第16周)的血清样品中是否存在FeLV p27抗原。若动物在第127天(第12周)至第155天(第16周)期间具有三个或更多个阳性FeLV p27抗原测试结果，则其被视为持续受到感染。
利用一般线性重复测量的混合模型分析温度，若总体处理和/或时间点处理效果显著，则在各时间点的处理组T01及T02、T03及T04之间进行成对处理比较。计算各时点的各组处理的最小平方平均值、95％置信区间、最小值和最大值。
计算各处理出现刺痛反应的频率分布并收集时间点数据。计算各处理出现注射部位肿胀的频率分布并收集时间点数据。针对各处理计算存在接种疫苗后全身性反应的频率分布。
在第一次和第二次疫苗接种期间任一处理组中均未观察到立即反应。在第一次和第二次疫苗接种后约1小时任一处理组中均未观察到不良反应。在第一次和第二次疫苗接种后任一处理组中均未观察到发烧(体温≥39.5℃)亦未观察到低温(体温<37℃)。在任何时间点，处理组之间的平均体温并无明显差异(p>0.08)。在第一次和第二次疫苗接种后任一处理组中均未观察到注射部位肿胀。
来自攻击后第12周至第16周的最终结果指出，接受安慰剂疫苗(T01组)的19只动物中有16只(84％)持续具有对FeLV的病毒血性质。T02组的19只动物中有13只(68％)受到保护免于FeLV毒性的攻击。与接受安慰剂疫苗接种的小猫相比较，保护水平是统计学显著的(p＝0.0004)。T03组的19只动物中有12只(63％)受到保护免于FeLV毒性的攻击。与接受安慰剂疫苗接种的小猫相比较，保护水平是统计学显著的(p＝0.0013)。T04组的20只动物中有19只(95％)受到保护免于FeLV毒性的攻击。与接受安慰剂疫苗接种的小猫相比较，保护水平是统计学显著的(p＝0.0001)。
因此，施用给T02、T03及T04组的疫苗均显示出当在分隔3周的二-剂量疗法中施用时，其在最小年龄的小猫中是安全的。此外，当在分隔3周的二-剂量疗法中施用时，施用给这些组的疫苗亦可在最小年龄的小猫中明显减轻FeLV持续性病毒血症的水平。T02、T03及T04组的小猫中所建立的FeLV持续性病毒血症存在统计学显著的减轻。此外，T04与其它疫苗组(T02、T03)之间存在统计学显著的差异。令人惊讶且出乎意料地，含有新颖的佐剂配制物的疫苗证实比常用于猫中的含有佐剂组分的疫苗更有效。
实施例15.猫白血病病毒疫苗
小猫抵达后令其适应16天。然后，将动物随机分配至一个房间内，在一个房间内的再随机分配至处理组(每一房间内每一处理组一只动物)。在研究的第-1天，通过颈静脉的静脉穿刺自每一只动物收集血样品(1.0-2.0毫升)。根据体重通过肌内途径施用镇静剂量(约5.0毫克/公斤)的(Fort Dodge Animal Health)，以将动物压力减至最少，并避免在收集血期间对动物处理者造成伤害。将血收集在血清分离管中并进行血清分离处理。每日亦观察所有动物并记录观察结果。
依实施例13制备疫苗，但使用1.5％储备溶液。在经FeLV转化的淋巴样细胞中繁殖FeLV次群体A、B及C，以制备2。将病毒抗原以化学方式灭活，与无菌佐剂组合以增强免疫应答，并以液体形式包装。依下述方式制备总量为500.0毫升，含有相对效力(RP)为2的猫白血病病毒、Quil A、胆固醇及DDA的IVP。将总计20.7毫升的FeLV储备溶液(50.0RP/毫升，其中1RP＝3,624纳克/毫升的抗原)加入478.2毫升的0.063％PBS缓冲液中。一边搅拌，一边将0.21毫升的50.0毫克/毫升Quil A溶液慢慢加入抗原溶液中。然后，慢慢加入0.58毫升的18毫克/毫升胆固醇/乙醇溶液。一边搅拌，一边将总计0.29毫升的18.0毫克/毫升DDA/乙醇溶液慢慢加入组合物中。将组合物在10,000rpm匀化3分钟。然后，将组合物在10,000(+500)psi下一次通过200微米限制尺寸室来微射流匀化。一边搅拌，一边将10.0毫升的1.5％溶液慢慢加入290.0毫升的猫白血病病毒、Quil A、胆固醇及DDA组合物中。依需要，以18％NaOH或1N HCl将pH值调整为7.0至7.3。
依用于RP为2的IVP的相同方式，使用51.7毫升的FeLV储备溶液及447.2毫升的0.063％PBS缓冲液，其余组分维持相同量，来制备含有RP为5的猫白血病病毒的IVP。
依用于RP为2的IVP的相同方式，使用93.1毫升的FeLV储备溶液、355.9毫升的0.063％PBS缓冲液、0.19毫升的Quil A溶液、0.52毫升的胆固醇溶液及0.26毫升的DDA溶液(总体积450毫升)制备含有RP为10的猫白血病病毒的IVP。然后，将8.3毫升的1.5％溶液慢慢加入241.7毫升的猫白血病病毒、Quil A、胆固醇及DDA组合物中。
依用于RP为10的IVP的相同方式，使用139.7毫升的FeLV储备溶液及309.4毫升的0.063％PBS缓冲液，其余组分维持相同量，来制备含有RP为15的猫白血病病毒的IVP。
依用于RP为2的IVP的相同方式，使用206.9毫升的FeLV储备溶液及292.0毫升的0.063％PBS缓冲液，其余组分维持相同量，来制备含有RP为20的猫白血病病毒的IVP。
为了施用0.5毫升的剂量，依下述方式制备300.0毫升的含有RP为5的猫白血病病毒、Quil A、胆固醇、DDA及的IVP。将总计21.7毫升的FeLV储备溶液(35.8RP/毫升，其中1RP＝1,864微克/毫升的抗原)加入277.7毫升的0.063％PBS缓冲液中。一边搅拌，一边将0.12毫升的50.0毫克/毫升Quil A溶液慢慢加入抗原溶液中。然后，慢慢加入0.35毫升的18毫克/毫升胆固醇/乙醇溶液。一边搅拌，一边将总计0.17毫升的18.0毫克/毫升DDA/乙醇溶液慢慢加入组合物中。将组合物在10,000rpm匀化3分钟。然后，将组合物在10,000(+500)psi下一次通过200微米限制尺寸室来微射流匀化。一边搅拌，一边将3.3毫升的1.5％溶液慢慢加入96.7毫升的猫白血病病毒、Quil A、胆固醇及DDA组合物中。依需要，以18％NaOH或1N HCl将pH值调整为7.0至7.3之间。
依用于0.5毫升剂量的相同方式并适当调整用量，来制备用于施用1.0毫升剂量的IVP，所述1.0毫升剂量包含PR为5的猫白血病病毒、QuilA、胆固醇、DDA及
制备总量为300.0毫升的包含RP为10的猫白血病病毒及的IVP。将总计62.1毫升的FeLV储备溶液(50.0RP/毫升，其中1RP＝3,624微克/毫升的抗原)加入237.9毫升的0.063％PBS缓冲液中。将组合物在10,000rpm匀化3分钟。然后，将组合物在10,000(+500)psi下一次通过200微米限制尺寸室来微射流匀化。一边搅拌，一边将3.3毫升的1.5％溶液慢慢加入96.7毫升的猫白血病病毒组合物中。依需要，以18％NaOH或1N HCl将pH值调整为7.0至7.3之间。
在研究的第0天及研究的第20天，使用22号×3/4”针及3cc注射器，通过皮下途径对小猫施用安慰剂及FeLV疫苗(表2)。对处理组T01施用1.0毫升剂量的安慰剂。对处理组T02、T04、T05、T06、T07、T08及T09施用1.0毫升剂量的FeLV疫苗。对处理组T03施用0.5毫升剂量的FeLV疫苗。使用皮内枪注射器，通过皮内途径施对处理组T10FeLV施用金丝雀痘疫苗(Merial)。
表2：实验设计
在第一次疫苗接种(研究第0天)和第二次疫苗接种(研究第20天)后观察所有动物在施用测试疫苗时的疼痛征兆，包括发出声音、抓/咬及攻击性或企图逃跑。亦将接种疫苗后的态度(正常或异常)记录在文件上。在研究第0天及研究第20天于接种疫苗后针对不良系统反应的发生观察所有动物约1小时。将观察结果记录在文件上。接触接种疫苗的部位，记录注射部位的疼痛、注射部位的发红、注射部位的肿胀及肿胀的大小。在第1次接种疫苗后的研究第2、5及9天及第2次接种疫苗后的研究第25、28和32天进行观察。将观察结果记录在文件上。
在研究第32天(攻击前)通过颈静脉的静脉穿刺自每一只动物收集血样(1.0-2.0毫升)。在研究第34、36、39及41天通过鼻途径施用1.0毫升未稀释的攻击物质，对动物进行攻击。在1毫升无针头的结核菌素注射器中填入攻击物质。对每一只小猫的每一鼻孔施用约0.5毫升。FeLV攻击物质的平均效价为106.1TCID50/毫升。在研究第61、83、106、126、133、138、146及152天通过颈静脉的静脉穿刺自每一只动物收集血样(1.0-2.0毫升)。
结果-安全性
在第一次疫苗接种(研究第0天)期间，处理组T09中有三只动物显示出立即的刺痛型反应。在第二次疫苗接种(研究第20天)期间，处理组T05中有一只动物、处理组T08中有四只动物及处理组T09中有二只动物显示出立即的刺痛型反应。
在第一次接种疫苗期间，处理组T09中有三只动物发出微小的声音。在第一次接种疫苗时呈现疼痛的动物此时亦发出微小的声音。在第二次接种疫苗期间，处理组T05中有一只动物、处理组T08中有四只动物及处理组T09中有二只动物发出微小的声音。在第二次接种疫苗时呈现疼痛的动物此时亦发出微小的声音。
在第一次接种疫苗期间，处理组T09中有三只动物显示出攻击行为/逃跑企图。在第二次接种疫苗期间，处理组T05中有一只动物、处理组T08中有四只动物及处理组T09中有二只动物显示出攻击行为/逃跑企图。
在第一次或第二次接种疫苗时无一处理组在注射部位出现抓/咬。在第一或二次接种疫苗后任一处理组均未观察到注射部位反应。任一处理组中亦未观察到不良反应。
结果-效力
在接种疫苗前，第-1天收集到的血清样品中所有动物的FeLVp27抗原测试结果均为阴性。在攻击前，第32天收集到的血清样品中所有动物的FeLVp27抗原测试结果均为阴性。
来自攻击后第12周至第16周的最终结果(表3)指出，处理组T01(安慰剂)的10只动物中有9只动物(90％)持续性具有对FeLV的病毒血性质。同一期间的结果指出处理组T02的10只动物中有6只动物(60％)受到保护免于FeLV的毒力攻击；与接受安慰剂疫苗接种的小猫相比较，此保护水平并非统计学显著的(p＝0.0573)。处理组T03的10只动物中有9只动物(90％)受到保护免于FeLV的毒力攻击；与接受安慰剂疫苗接种的小猫相比较，此保护水平是统计学显著的(p＝0.0011)。处理组T04的10只动物中有10只动物(100％)受到保护免于FeLV的毒力攻击；与接受安慰剂疫苗接种的小猫相比较，此保护水平是统计学显著的(p＝0.0001)。处理组T05的10只动物中有10只动物(100％)受到保护免于FeLV的毒力攻击；与接受安慰剂疫苗接种的小猫相比较，此保护水平是统计学显著的(p＝0.0001)。处理组T06的10只动物中有7只动物(70％)受到保护免于FeLV的毒力攻击；与接受安慰剂疫苗接种的小猫相比较，此保护水平是统计学显著的(p＝0.0198)。处理组T07的10只动物中有10只动物(100％)受到保护免于FeLV的毒力攻击；与接受安慰剂疫苗接种的小猫相比较，此保护水平是统计学显著的(p＝0.0001)。处理组T08的10只动物中有8只动物(80％)受到保护免于FeLV的毒力攻击；与接受安慰剂疫苗接种的小猫相比较，此保护水平是统计学显著的(p＝0.0055)。处理组T09的10只动物中有5只动物(50％)受到保护免于FeLV的毒力攻击；与接受安慰剂疫苗接种的小猫相比较，此保护水平并非统计学显著的(p＝0.1409)。最后，处理组T10的10只动物中有6只动物(60％)受到保护免于FeLV的毒力攻击；与接受安慰剂疫苗接种的小猫相比较，此保护水平并非统计学显著的(p＝0.0573)。
表3.保护水平的摘要
处理组 疫苗相对效力 保护水平 预防分数
T01 NA 10％
T02 4.58 60％ 55.6％
T03 4.58 90％ 88.9％
T04 26.32 100％ 100％
T05 18.58 100％ 100％
T06 11.16 70％ 66.7％
T07 4.77 100％ 100％
T08 1.64 80％ 77.8％
T09 11.12 50％ 44.4％
讨论
处理组T02、T03、T04、T06及T07中所使用的疫苗在第一次疫苗接种期间显示出令人满意的安全性图谱，因为当时并未观察到反应。处理组T05中的1只动物在第二次疫苗接种期间显示出立即反应(施用时疼痛、发出微小的声音、攻击性/企图逃跑)。此情况可能与具体动物对接种疫苗的恶化应答有关，而非与疫苗制剂的问题有关。所有疫苗显示出令人满意的疫苗接种后安全性图谱，因为并未观察到与接种疫苗相关的局部反应和不良反应。
由于以毒性FeLV攻击后可取得≥80％的保护(≥75％预防分数)，施用给处理组T03、T04、T05、T07及T08的FeLV疫苗显示出令人满意的效力。施用给T07组的疫苗提供100％的保护效果颇令人惊讶且出乎预料，因该组中的动物接受的抗原剂量分别为T04及T05组中的动物的25％和33％。本文公开及测试的佐剂的明确优点为其容许使用较小剂量的抗原，但仍可诱导出完整的保护性免疫应答。施用给处理组T02、T06及T09的疫苗显示出在以毒性FeLV攻击后效力或多或少的降低(<80％的保护；预防分数<75％)。施用处理组T02的疫苗的效力降低可能系因该组中存在低响应动物。
实施例16.针对鸡体内的艾美球虫(Eimeria)进行卵内疫苗接种
禽球虫病是一种肠疾病，其一般由艾美球虫属的原生动物引起并代表一种养禽业中遍及全球的严重问题。在进食期间食入的寄生虫定居在肠道中，在那里引起肠及下层组织的严重伤害。对养禽业所造成的经济损失非常重大，因为肉禽及蛋禽二者的饲料转化率和体重增加均下降。本领域状态的一般概括(包括使用例如重组艾美球虫蛋白质作为抗原及多种佐剂系统来针对艾美球虫进行疫苗接种)描述于下列文献中，这些文献全部通过引用并入本文：(1)H.S.Lillehoj et al.,J.Parisitol,91(3),2005,pp.666-673；(2)H.S.Lillehoj et al.,Avian Diseases,492005,112-117；and(3)R.A.Dalloul et al.,Expert Rev.Vaccines,5(1),2006,pp.143-163。本实施例设计新颖疫苗组合物在球虫病方面的用途，所述疫苗组合物使用提供优越性能的佐剂组分。
本发明的高效佐剂可与来自所有艾美球虫物种的抗原物质一起使用，包括所述抗原物质经纯化或部分纯化的蛋白质提取物，或其一种或多种重组表达的蛋白质、或任何或所有这类蛋白质的片段，因此，包括来自堆型艾美球虫(Eimeria acervulina)、阿萨塔艾美球虫(Eimeria ahsata)、牛艾美球虫(Eimeria bovis)、布氏艾美球虫(Eimeria brunetti)、费特库拉艾美球虫(Eimeria fraterculae)、巨型艾美球虫(Eimeria maxima)、火鸡艾美(Eimeriameleagridis)、和缓艾美球虫(Eimeria mitis)、毒害艾美球虫(Eimerianecatrix)、早熟艾美球虫(Eimeria praecox)、斯氏艾美球虫(Eimeriastiedae)、柔嫩艾美球虫(Eimeria tenella)及邱氏艾美球虫(Eimeria zurnii)等的抗原物质。
本发明所提供的添加佐剂的疫苗可针对在原生动物生命周期中的一或多个时间点产生的任何蛋白质或大分子而提供，所述时间点包括但不限于：卵囊(不论已形成孢子或未形成孢子)、孢子囊、子孢子(sporozoite)、裂殖体、裂殖子、雄性或雌性配子细胞。在一个优选的实施例中，在卵囊阶段中大量排入粪便中的蛋白质或这类蛋白质通过常规方式部分或完全纯化的样品是用作重组蛋白质抗原来源的优选的物质。
可作为本疫苗配制物的抗原来源的艾美球虫蛋白质的其它例子包括Karkhanis等人，Infection and Immunity,1991,pp.983-989中所描述的蛋白质，包括如其中所描述的质量约20至约30kDA的保护性抗原。其它例子包括艾美球虫23kDA 3-1E蛋白质及Etp100蛋白质(如从柔嫩艾美球虫回收的)。
本发明的高效佐剂可与来自犬神经孢子菌(Neurospora caninum)的抗原物质一起使用。
此外，本发明的高效佐剂可与任何下列原生动物病原体一起使用：小球隐孢子虫(Cryptosporidium parvum)(隐孢子虫病)、卡晏环孢子虫(Cyclospora cayetanensis)(环孢子虫病)、贝氏等孢球虫(Isospora belli)(等孢球虫病)、弓形虫(Toxoplasma gondii)(弓形虫病)、疟原虫(Plasmodium)(疟疾)和巴贝西虫属(Babesia spp)(巴贝西虫病)，以及引起这些或相关疾病的相关原生动物，通常为顶复动物亚门(Apicomplexen)。
如下评估卵内递送含有具体佐剂系统的疫苗的有效性。
材料和方法：
1.材料：
在大肠杆菌中表达重组的巨型艾美球虫蛋白质(蛋白质3-1E)，并通过亲和柱纯化。还使用全细胞巨型艾美球虫大分子的粗制剂(以清洁剂从破裂细胞溶出)作为抗原，此粗制抗原称为“EM”。在一个优选的实施例中，该佐剂如上述实施例8中所述，且根据该实施例的流程(见第41页)提供的方法制备。因此，在一个典型的实施例中，每个胚胎将接受在羊膜(即，包括羊水及羊膜腔)中注射约50至约100微升的疫苗溶液，该疫苗溶液每一毫升中包含：约50或100微克的重组3-1E蛋白质或其它蛋白质种类，或者，约50或100微克的粗细胞“EM”提取物；约20微克的Quil A；约20微克的胆固醇；约0.075％(v/v)的CARBOPOL；约10微克的DDA；及约250微克的R1005，其全部提供于例如20mM PBS中。
选择本文中使用的皂苷时，下列额外信息用于指导。所定义的术语皂苷是指自植物衍生的糖苷，而多种皂苷的生物性质已被大量研究(The PlantGlycosides,Mcllroy,R.J.,Edward Arnold and co.,London,1951)。本领域最主要用于制造疫苗的皂苷是自植物智利皂荚树、欧洲七叶树(Aesculushippocastanum)或Gyophilla struthium衍生的皂苷。已知具有佐剂活性的智利皂荚树皮的提取物是已知的，如Quil A。Quil A的纯化馏分亦已有相关描述，其保有佐剂活性，但毒性较Quil A低，例如QS21。QS21亦描述于Kensil et al.(1991.J.Immunology vol 146,431-437)中。当与本发明的其他佐剂组分混合时(如前文及下文中所述)，这类含皂苷的物质成为高度有效的物质。其它有效的配制物包括使用七叶皂苷(Escin)的配制物，七叶皂苷在默克索引(Merck index；第12版：项目3737)中被描述为存在于马栗树(horse chestnut tree)种籽中的皂苷混合物。在本发明的一个优选的实施方案中，皂苷是指美国E.M Sergeant公司所贩卖的“Quil A”。
必须进一步了解的是，皂苷提取物可作为混合物或来自这类馏分/制品的经纯化的个别组分来使用，包括来自美国Massachusetts，Antigenics公司的QS-7、QS-17、QS-18及QS-21，或由瑞典Isconova公司所提供的类似的粗制、分馏或精制的皂苷产品及其混合物。在一个实施方案中，Quil A至少85％纯。在其他实施方案中，Quil A至少90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％。97％。98％或99％纯。
2.胚胎疫苗接种：
自PA，Quakertown的Moyers Hatchery公司购买蛋。在卵内免疫化方面，将肉鸡蛋孵育18天，再用烛光选择(在胚胎发育的18天)受精卵，然后注射20mM PBS和单独的佐剂或与重组的3-1E蛋白质或“EM”制品一起配制的佐剂。注射根据制造者的指示，用“Intelliject”卵内注射器(Avitech,Hebron,MD)进行。利用Avitech(Hebron,MD)提供的17.5厘米长的18号针在每一个蛋的羊膜腔中注射100微升样品。在执行本发明时亦可使用50微升的剂量。
3.鸡：
一旦肉鸡孵化(约第21-22天)，利用一次性的运送鸡的纸板箱(Frederick Packaging,Inc.,Milwaukee,WI)将鸡运送至实验室，然后将鸡养在Petersime单位中并提供可任意取得的饲料及水。
在孵卵暖房(brooder pens)中将鸡保持在不含艾美球虫的设备中，且当其被巨型艾美球虫的活卵囊感染时，将其转移进分开地点的大吊笼中直到实验期结束。
4.寄生虫：
使用巨型艾美球虫#41的USDA BARC株(其被保持在Animal ParasiticDiseases Laboratory-BARC中并根据Lillehoj博士实验室中建立的流程繁殖)。通过漂浮在5％次氯酸钠上并以PBS清洗三次来清洁来自巨型艾美球虫(Beltsville#41)的新鲜生产的卵囊，并使用血球计数器通过锥虫蓝染色来计算存活率。
5.艾美球虫攻击感染：
在7天大的小鸡翅膀上加标签，除了未受感染的对照组外，利用接种针为所有实验组的鸡通过食道接种巨型艾美球虫，然后将小鸡置于卵囊收集笼中。
6.体重增加测定：
在第0天(未受感染)、以巨型艾美球虫感染后的第6及10天测定个体小鸡的体重。
7.粪便卵囊产量的评估
指示照顾动物者不要清洁笼子，并让他们收集落下的鸡粪。自感染后第6天开始，将收集盘置于每一笼子下5天，将粪便物质收集在大塑料罐(2升)中。将每一罐中用自来水浸泡的鸡粪与更多水(总体积为3升)一起在搅拌机中研磨，自各样品中取出二份40毫升的随机样品并贮存在冰箱中直至计数。为了计数球虫卵囊，先制作多种稀释液以决定用于计算各样品的卵囊的最适稀释倍数。使用蔗糖漂浮法(已由Lillehoj博士实验室建立)，利用McMaster计数室(counting chamber)在显微镜下对卵囊计数。每一只鸡排泄的卵囊的总数利用下式计算：总卵囊/鸡＝(卵囊计数x稀释倍数x粪便样品体积/计数室体积)/每一笼内鸡的数目。
8.样品收集：
在感染日后第6天收集血并测定血清抗体应答。自个体小鸡(N＝4-5/组)取得血样，使其在4℃凝结4小时并收集血清。利用ELISA测试血清样品的抗艾美球虫抗体。简单地说，以10微克/孔的重组球虫抗原Ea3-1E、EtMIF或EtMIC2涂覆微量滴定板过夜，以PBS-0.05％吐温清洗后以PBS-1％BSA封闭。加入血清稀释液(1：20、1：40、1：80、1：160；100微升/孔)，孵育时持续轻轻摇动，清洗后用与过氧化物酶偶合的兔抗鸡IgG(Sigma)和过氧化物酶特异性底物来检测经结合的抗体。以微量滴定板读数器(Bio-Rad,Richmond,CA)在450nm测定光密度(OD)。
在孵化时和之后6天和10天收集肠组织，利用实时RT-PCR测试细胞因子(IFN-γ、IL-2)生产，作为Th1刺激的度量。
9.cDNA合成
利用TRIzol(Invitrogen,Carlsbad,CA)自肠IEL提取总RNA。以1.0U的DNase I及1.0微升的10x反应缓冲液(Sigma)来处理5微克的RNA，在室温下孵育15分钟，加入1.0微升的终止溶液使DNase I失活，并将混合物在70℃下加热10分钟。利用StrataScript第一链合成系统(Stratagene,LaJolla,CA)，根据制造者的建议将RNA逆转录。
10.定量RT-PCR
用于鸡干扰素-γ(IFN-γ)和GAPDH对照的定量RT-PCR寡核苷酸引物列于表4中。利用等量的来自肠IEL的总RNA，使用Mx3000P系统及Brilliant SYBR Green QPCR主要混合物(Stratagene)进行扩增及检测。利用经对数(log10)稀释的标准RNA来产生标准曲线，并将个体转录本的量针对通过Q-基因程序分析的GAPDH的量进行标准化。每个分析一式三份进行。为了将同一实验中样品间的RNA水平标准化，将来自所述实验的所有样品的数值合并，以计算扩增产物的平均阈值循环(Ct)值。
表4.用于鸡IFN-γ及GAPDH的定量RT-PCR的寡核苷酸引物。
在接种巨型艾美球虫前及10thDPI(感染后的日期)收集脾以供脾细胞增殖分析。将脾置于含有其中补充了100单位/毫升青霉素及100微克/毫升链微素(Sigma,St.Louis,MO)的10毫升汉克氏平衡盐溶液(HBSS)的培养皿中。制备脾淋巴细胞的单细胞悬浮液并进行淋巴细胞增殖。简单地说，将脾细胞在补充以10％胎牛血清(FBS)(Hyclone,Logan,UT)、100单位/毫升青霉素及100微克/毫升链微素(Sigma)的IMDM培养基(Sigma)(称为10％完整IMDM介质)中调整为5×106或1×107细胞/毫升。将脾细胞(100微升/孔)在96孔平底板中，于41℃，带有5％CO2及95％空气的加湿培养箱(Forma,Marietta,OH)中孵育48小时。以2-(2-甲氧墓-4-硝基苯基)-3-(4-硝基苯基)-5-(2,4-二磺苯基)-2H-四唑鎓一钠盐(WST-8，Cell-CountingDojindo Molecular Technologies,Gaithersburg,MD)测定细胞的增殖。利用微量滴定板分光光度计(BioRad,Richmond,CA)在450nm测定光密度(OD)。
结果
结果显示出与未接种疫苗，但感染巨型艾美球虫的鸡相比较，用100微升佐剂配制物(即，100微升包含如先前定义剂量的重组3-1E蛋白质)进行疫苗接种的肉鸡额外增加45-85克体重。
通过促有丝分裂淋巴细胞增殖分析的测量，本发明的疫苗亦显示出对细胞介导的免疫力的明确效果：与Con A一起孵育48小时的1×107细胞/毫升脾淋巴细胞的增殖结果显示，来自以带有或不带有抗原的Pfizer佐剂免疫化的受巨型艾美球虫感染的鸡的脾细胞大致上显示出较高的淋巴细胞增殖水平，尤其是当使用50微克剂量时。在施用本发明的添加佐剂的疫苗组合物后，可见观察到IL-1B制造、IFN-γ制造及IL-15制造的明显增加，最特别是在脾中。总结来说，这些结果清楚指出本佐剂对细胞因子应答的影响，并支持细胞因子对增加细胞介导的免疫应答而非体液免疫应答的影响。
本发明的疫苗亦显示出对粪便卵囊输出的明确影响。未被感染的对照鸡并未排出任何卵囊。在巨型艾美球虫感染后，仅以Pfizer佐剂处理的群组中粪便卵囊输出明显减少。与那些接种单独的粗制巨型艾美球虫制剂的群组(EM组)相比较，用粗制巨型艾美球虫及佐剂进行卵内接种的鸡显示出少得多的粪便卵囊排出。
需注意，虽然经纯化的重组巨型艾美球虫蛋白质3-1E已用于执行前述实验，使用重组Ea3-1E、EaMIF及EtMIC2抗原(单独使用或与3-1E组合，或彼此组合，或作为其中任何的任何组合)亦为本发明的优选的实施方案，且一般而言，所有艾美球虫蛋白质抗原均可用于执行本发明，只要是其与本发明的佐剂混合时即可。
实施例17.在牛体内评估大肠杆菌J5株菌苗
本研究的目的之一是在牛体内评估当将大肠杆菌(J-5株)抗原在不同的新颖配制物中施用时，牛对此抗原的免疫应答。市售J5菌苗作为乳牛中肠杆菌乳腺炎(coliform mastitis)的预防性疫苗出售，其在目前的配制物中适度有效。在接种疫苗前测定动物对大肠杆菌J5抗体具有低效价(分别根据在接种疫苗前采取的血清血样进行分析)。
肉牛
利用灭活的大肠杆菌J5菌苗作为抗原来配制实验疫苗并根据上述实施例13制造。各处理组最初含有7只动物(表5)。一组处理组接受盐水(T01)，而另一组接受市售J5疫苗(T02-EnviracorTM Pfizer J-5大肠杆菌菌苗)。其它处理组接受含有表5中具体指明的佐剂的不同配制物。所有疫苗接种在研究第0和21天通过皮下注射施用。给药体积为5毫升。
表5.疫苗组-肉牛
表5中，QC为Quil A/胆固醇的缩写、D为DDA的缩写、C为Carbopol的缩写、R为R1005的缩写、X为DEAE-葡聚糖的缩写、O为油的缩写。
依上述实施例1至13制备下列储备溶液：大肠杆菌为每剂量约4-5×109个生物(此系通过光学显微镜直接计算来测定)。Quil A以50毫克/毫升溶于水中，胆固醇以17毫克/毫升溶于乙醇中，DDA以17毫克/毫升溶于乙醇中，R1005以5毫克/毫升溶于20mM磷酸盐缓冲盐水中，DEAE葡聚糖以200毫克/毫升溶于水中，TLR激动剂以20毫克/毫升溶于TE缓冲液中，而Iscomatrix以5.4毫克/毫升溶于水中。以从左至右的字母符号顺序加入个别组分(v/v)。例如：QCDC，加入适当体积的Quil A，再加入胆固醇、DDA和最后的Carbopol。当配制物中包含油时，将分开的组分混合加入，接着在5LT矿物油与司盘(Span)80和吐温80(QCDO)或司盘85和吐温85(QCDXO)的混合物中乳化。为市售的轻矿物油。
在研究第0、21及49天收集血样以供血清学测试。通过J5特异性，间接ELISA分析测定血清样品中对大肠杆菌J5的抗体效价。以绵羊抗牛抗体共轭物(Bethyl Labs)测定IgG抗体同种型。测定效价并以其几何平均值表示。
结果
本研究的血清学结果显示于表6-8中。较高的抗体效价通常与较佳的疫苗保护有关。总J5-特异性IgG效价显示于表6中。本发明的数种配制物产生较市售商品高出许多的效价，虽然这些配制物中所添加的J5抗原量类似。QCDO、QCDX及QCDXO配制物尤其有效地诱导这些牛中的良好免疫应答。
表6.IgG抗体效价
测定J5特异性IgG1抗体同种型。这些结果显示于表7中。同样地，QCDO、QCDX及QCDXO配制物尤其有效地诱导这些牛中的良好免疫应答。即使仅接种一次疫苗，这些配制物仍可产生较注射两次市售疫苗时高出许多的效价。
表7.IgG1抗体效价
IgG2抗体效价显示于表8中。此抗体同种型通常与较佳的乳中嗜中性粒细胞吞噬作用及对动物的保护作用有关。QCDO、QCDX及QCDXO配制物尤其有效地诱导这些牛中的良好免疫应答。
表8.IgG2抗体效价
乳牛
利用灭活的大肠杆菌J5菌苗作为抗原配制实验疫苗，并根据上述实施例13来制造。各处理组最初含有有7只动物(表9)。一个处理组接受盐水(T01)，而另一组接受市售J5疫苗(T02-EnviracorTM Pfizer J-5大肠杆菌菌苗)。其它处理组接受含有表9中具体指明的佐剂的不同配制物。所有疫苗接种在研究第0和21天通过皮下注射施用。给药体积为5毫升。
表9.疫苗组-乳牛
表9中，QC为Quil A/胆固醇的缩写、D为DDA的缩写、C为Carbopol的缩写、R为R1005的缩写、X为DEAE-葡聚糖的缩写、T为TLR激动剂(CpG-ODN)的缩写且O为油的缩写。制备下列储备溶液：大肠杆菌为每剂量约4-5×109个生物(通过光学显微镜直接计算来测定)。QuilA以50毫克/毫升溶于水中，胆固醇以17毫克/毫升溶于乙醇中，DDA以17毫克/毫升溶于乙醇中，R1005以5毫克/毫升溶于20mM磷酸盐缓冲盐水中，DEAE葡聚糖以200毫克/毫升溶于水中，TLR激动剂以20毫克/毫升溶于TE缓冲液中。以从左至右的字母符号顺序加入个别组分(v/v)。例如：QCDCR，加入适当体积的Quil A，再加入胆固醇、DDA，最后加入Carbopol。当配制物中包含油时，将分开的组分混合加入，再在5LT矿物油与司盘80和吐温80(TXO，QCDO)或司盘85和吐温85的混合物中乳化。
收集血
在研究第0、21及49天收集血样以供血清学测试。通过J5特异性，间接ELISA分析测定血清样品中对大肠杆菌J5的抗体效价。以绵羊抗牛抗体共轭物(Bethyl Labs)测定IgG抗体同种型。测定效价并以其几何平均值表示。
结果
研究的血清学结果显示于表10中。较高的抗体效价通常与较佳的疫苗保护作用有关。总J5特异性IgG效价显示于表10中。本发明的数种配制物产生较市售商品高出许多的效价，虽然这些配制物中所添加的J5抗原量类似。QCDO、TXO及QCDXO配制物尤其有效地诱导这些牛中的良好免疫应答。
表10.IgG抗体效价
测定J5特异性IgG1抗体同种型。这些结果显示于表10中。同样地，QCDO、TXO及QCDXO配制物尤其有效地诱导这些牛中的良好免疫应答。即使仅接种一次疫苗，这些配制物仍可产生较注射两次市售疫苗时高出许多的效价。
此抗体同种型通常与较佳的乳中嗜中性粒细胞吞噬作用及对动物的保护作用有关。QCDXO配制物于诱导这些牛中的良好免疫应答上特别有效。
实施例18.牛病毒性腹泻病毒疫苗
研究目的
本研究比较二种已杀死的1型和2型牛病毒性腹泻病毒(BVDV-1及BVDV-2或BVDV-1/2)疫苗及一种与本发明的佐剂一起配制的BVDV-1及BVDV-2提取物疫苗与一种阴性(盐水)及两种阳性对照(经修饰的活BVDV-2疫苗和目前可取得的已杀死的BVDV-1/2疫苗)在纯真(naive)的小牛中对抗以BVDV-1进行的攻击的安全性、效力及交叉保护作用。表11中展示研究设计。
本研究亦显示本发明的佐剂可用于区分以本发明的疫苗组合物进行疫苗接种的动物与天然暴露于BVDV的动物。
动物
使用对BVDV-1及BVDV-2为血清阴性的7至15个月大的任一性别的健康断奶肉牛。
表11.研究设计
QC为Quil A/胆固醇的缩写、D为DDA的缩写、C为的缩写、R为Bay的缩写。
疫苗接种
在研究第0及21天，依表11所述为动物(N＝10/组)进行疫苗接种。给予的抗原(BVDV)系每剂量5,500相对效力单位(RU)(通过ELISA分析测定)。T01组中的小牛作为对照组。对照组接受0.9％氯化纳无菌溶液。T02组至T06组接受带有表11中所示佐剂的实验性BVDV1/2疫苗。T02组仅接受一次疫苗接种(研究第0天)。其接受不含佐剂的经修饰的活病毒(MLV)BVDV-2疫苗。T03组接受含有2.5％水包油乳液及Quil A/胆固醇佐剂的已杀死的病毒BVDV-1/2疫苗。T04组接受含有Quil A/胆固醇、DDA及Carbopol的已杀死的病毒BVDV-1/2疫苗。T05组接受含有Quil A/胆固醇、DDA、Carbopol及R1005的已杀死的病毒BVDV-1/2疫苗。T06组在第0天接受含有Quil A/胆固醇、DDA及Carbopol的已杀死的病毒BVDV-1/2、高效价提取物疫苗，在第21天接受类似的低效价提取物疫苗。除第2组外，所有处理均在第0及21天通过皮内途径施用一次2毫升剂量。
QCDC+/-R包含100微克Quil A、100微克胆固醇、50微克DDA及0.075％Carbopol，其中如前述，每2毫升剂量包含1000微克的R1005。
攻击
在第42天通过鼻内途径以约4毫升(每一鼻孔约2毫升)浓度为每5毫升剂量5.4log10TCID50的非细胞病变性BVDV-1株(NY-1株；CVB,USDA,Ames,IA)攻击所有动物。
观察
在研究第0(接种疫苗前)、1、2、3、7及21天记录第一次注射部位(左颈)的注射部位观察结果。在研究第21(接种疫苗前)、22、23、24、28及35天记录第二次注射部位(左颈)的观察结果。测量所有可触知的注射部位反应(LxWxH，厘米)。在研究第-1、0(接种疫苗前)、1、2及3天记录初次接种疫苗时的直肠温度。在研究第20、21(接种疫苗前)、22、23及24天记录加强接种的温度。
采取血样
在研究第-1、20、34及49天利用血清分离管(SST)收集来自每一只可用的动物的血样。在研究第33至35天(攻击前)及36至49天利用EDTA管收集血样。在研究第34天(攻击前)及36至49天利用细胞制备管(CPT)收集血样。
结果
表12显示出在研究当天通过凝血分析测得的针对BVD病毒的几何最小二乘法平均(geometric least squares mean，GLSM)血清中和抗体效价。结果显示出随着研究的进行，本发明佐剂可使对抗BVDV-1及BVDV-2的效价增加。UDSA的可接受的效价为高于8的效价。这些数据显示出高于5,000的效价，此表示可在病毒进入可能被感染及生病的动物时制造大量能终止活病毒的抗体。
表12.血清抗体中和效价
表13呈现在研究第43-56天的白血球减少数据。研究的日白血球减少的结果证明MLV疫苗(T02)可预防通过特定病毒攻击引起的感染。白血球减少的度量是USDA核发MLV产品执照的标准。然而，对灭活的病毒而言，白血球减少并非USDA的标准，该数据暗示本发明的佐剂仅在至多20％的动物中引起白血球减少，而大部分的灭活病毒疫苗可造成100％白血球减少。这表明本发明的佐剂可与灭活的抗原一起驱动强烈的Th1应答。这在灭活的制品中很难做到且少见。
表13.以下研究日期的白血球减少症
表14呈现第41天(第二次接种疫苗后20天，攻击前)时的血清中和效价。经修饰的活病毒仅可发展出对疫苗中该确切病毒的抗体反应。这可从T02组仅显示出对抗BVDV-2的保护作用中得知。然而，T03(PreZent-A)、T04(QCDC)及T05(QCDCR)的经添加佐剂的灭活疫苗针对血清学上分岐的一组BVDV在免疫开始及整个动物研究的生命阶段中可早期产生强烈的抗体应答。这显示出这些佐剂有能力在攻击模型中提供安全性及效力，从而在同源攻击以及异源攻击中保护牛。
表14.第41天的血清中和效价
标记物活性。此处呈现的数据表明，本发明的佐剂可用于区分以本发明的疫苗组合物进行疫苗接种的动物与天然暴露于BVDV的动物。这可通过测定该病毒的构造性及非构造性基因产物之间的抗体图谱差异而得知。该标记物活性可通过放射性免疫沉淀分析的凝胶电泳证明(图1)。在以MLV疫苗进行疫苗接种的动物或天然暴露于BVDV或PreZent-A的添加佐剂的灭活疫苗的动物中，对BVDV的NS2/3及E2蛋白质的抗体应答非常明显。然而，本发明的佐剂显示仅对E2蛋白质有抗体反应，对NS2/3蛋白质则无。因此，以包含本发明的佐剂的灭活BVDV疫苗进行疫苗接种的动物可与被天然感染的动物、或经MLV疫苗接种的动物、或经PreZent-A疫苗接种的动物区分。这可被视为用于根除动物群体中这些疾病类型的有价值的标记物疫苗。
实施例19.猪体内的猪肺炎支原体
背景
猪肺炎支原体(MPS)或流行性肺炎为分布广泛的慢性疾病，其特征为咳嗽、生长迟缓及降低的喂食效率。其病原剂为猪肺炎支原体；然而，天然发生的疾病通常由细菌与支原体组合感染所造成。
MPS在所有养猪地区造成相当大的经济损失。在全世界多个不同地方进行的调查指出，那些在MPS中所见到的典型损伤可在30％-80％的屠宰重量(slaughter-weight)猪中出现。由于支原体造成的损伤可能在猪只达到屠宰重量前消除，因此实际发生率可能更高。据报导，在慢性猪肺炎中，肺炎支原体感染的流行率为25％-93％。所有年龄的猪只对MPS均易感，但该疾病最常见于生长中及长成(finishing)的猪中。目前的证据指出肺炎支原体系通过悬浮微粒(aerosol)或与来自受感染猪的呼吸道分泌物直接接触而传染。在哺乳期间从母猪传染给小猪是可能的。一旦确立感染后，MPS在受感染的畜群中年复一年地发病，随着诸如季节、通风及猪密度这类环境因素而使严重性有所不同。
研究目的
本研究目的是在以有毒的肺炎支原体肺部匀浆进行气管内攻击后，比较以本发明的新颖佐剂配制的猪肺炎支原体疫苗的效力与市售猪肺炎支原体菌苗的实验系列的效力。
动物
在研究中使用六十六(66)只约17天大，无猪肺炎支原体及PRRSV引起的疾病史，或针对相同生物进行过疫苗接种的临床上健康的杂交猪。在运送至研究地点前及抵达后2天，以在后腿通过肌内途径处理猪(依照标签指示)，以预防与压力有关的疾病(诸如猪链球菌)。根据随机化的计划将动物分配至处理组及圈栏。此研究设计显示于表15中。
表15.实验设计
QAC为Quil A/胆固醇的缩写。
研究用兽医制品(IVP)
抗原及研究用兽医制品(IVP)显示于表16中。根据实施例13，使用下表16中所示的组分浓度来制备用于处理组T02、T03及T04(除了T05外的全部)的疫苗。依表中所列的顺序加入组分。
在容器中加入盐水增效剂，开始匀化且持续至整个制备步骤。从每800升的最终配制产物中75升酦酵物的混和体积中制备灭活的猪肺炎支原体，并添加至每剂量0.09375ml的浓度。添加Quil A至表16中所列的浓度。然后，加入胆固醇/乙醇溶液。加入DDA/乙醇溶液，再加入BayR1005糖脂溶液。然后，加入Carbopol，并以盐水增量剂使溶液达到最终体积。
用于处理组T05的疫苗(Amphigen Based Vaccine配制物)为市售产品(Pfizer,Inc)。
表16.研究用兽医制品(IVP)
接种疫苗
NTX处理组中的动物并未接种疫苗或接受攻击。约3周大(第0天-右颈)及5周大(第14天-左颈)时，由对处理组不知情的合格个人用每一剂量2毫升对T01、T02、T03、T04及T05中的动物进行肌内疫苗接种。
攻击物质
在第二次接种疫苗后3周(约8周大-研究第35天)通过气管内途径攻击T01至T05中的动物。以5毫升剂量的10％猪肺炎支原体菌株11(LI36)的冷冻肺匀浆(在Friis介质中的1：50稀释液)攻击动物。
采血样
在第-1或0天(第一次接种疫苗前)、第13或14天(第二次接种疫苗前)、第34或35天(攻击前)及第63天(验尸时)，自所有猪中收集血样(在血清分离剂管中，约5至10毫升)并测试猪肺炎支原体血清学(ELISA-IDEXX)。
重量
在动物抵达时为了分组的目的、第34或35天(攻击前)，以及第62或63天(验尸前)为所有动物称重。
验尸
第63天，根据位点特异性程序为所有存活动物进行安乐死。肉眼评估肺部因猪肺炎支原体感染所造成的特征性损伤，并针对由猪肺炎支原体攻击所造成的损伤进行评分。肺损伤评分以各肺叶的肺损伤百分比来记录。各肺叶(左前叶、左中叶、左后叶、右前叶、右中叶、右后叶及附属部位)的实变百分比被评分为0-100％间的实际数字。各肺叶的百分比可用于加权式中，以计算带有损伤的肺的总百分比。在第34或35天，进行攻击前为六(6)只NTX动物验尸并计录其肺评分。
肺损伤评分
利用下式计算带有损伤的总肺的百分比：带有损伤的总肺的百分比＝100×{(0.10×左前叶)+(0.10×左中叶)+(0.25×左后叶)+(0.10×右前叶)+(0.10×右中叶)+(0.25×右后叶)+(0.10×附属部位)}。分析前对带有损伤的总肺的百分比应用反正弦平方根变换(arcsine square roottransformation)。以一般线性混合模型分析经转换的肺损伤。参数估计值的线性组合被用于测试处理效果后的事前对比(priori contrasts)中。计算带有损伤的总肺的显著(P≦0.10)百分比的回复转换最小二乘法均值(Backtransformed least squares means)、其标准差及其90％置信区间，以及最小值和最大值。
结果
如下表17的结果所示，本发明的佐剂与含有佐剂的经含油佐剂处理的T05组表现相等。典型地，小于3的肺损伤积分被认为已具有由疫苗处理提供的效力。本发明的佐剂组合全部符合此标准，在个别动物间，QCDCR在积分和范围方面表现最佳。
每组N＝12，除了T05(其中N＝11)外
实施例20.猫禽流感病毒(FAIV)
本研究通过以有毒的禽流感病毒株进行攻击来评估使用本发明佐剂的流感疫苗在猫体内的效力。
方法及结果
在接种疫苗前，分别根据在接种疫苗前采取的口咽拭子及血清血样分析来测定动物同时为流感病毒阴性及抗流感病毒抗体阴性。
利用灭活的病原性禽流感病毒及纯化的红血球凝集素(HA)配制实验疫苗。各处理组最初包含6只动物(表18)。二组处理组接受实验FAIV疫苗(T01疫苗抗原为经纯化的H5HA蛋白质；T02疫苗抗原为灭活的H5N2株)、一组处理组接受灭活的经修饰的H5N1病毒株疫苗(T03)、一组安慰剂对照组接受仅含佐剂的疫苗(T04)及一组仅接受盐水的阴性对照组(T05)。所有疫苗均系在研究第0和21天通过皮下注射施用。给药体积为1毫升。在接种疫苗后，持续观察动物直至其恢复且可坐直，以确定无不良反应。记录接种疫苗后约1小时的观察结果并记录接种疫苗后所观察到的任何其它并发症。
该佐剂组合物先前通过上文实施例QCDC描述，其每剂量使用QuilA(20微克)、胆固醇(20微克)、DDA(10微克)及Carbopol(0.05％)。抗原为灭活的全病毒或经纯化的H5HA蛋白质。
评估动物注射部位的反应及对疫苗的血清学应答。在攻击前有三只动物(二只在T02-灭活的H5N2组中，一只在T05-盐水组中)因先天性高草酸尿症被安乐死。研究第49天，以病毒株H5N1A/越南/1194/04通过气管内途径攻击所有存活猫只，以评估候选疫苗的效力。以5.0毫升含105TCID50的物质攻击动物，利用气管镜，以引入气管的小导管将所述物质恰好于分岔上方释出。攻击后，观察动物并采样5天。在动物阶段结束(研究第54天)时，将所有动物安乐死并对每一只验尸。
表18.疫苗组
在研究第-14天接种疫苗前、第0、21及49天收集血样以供血清学测试。在研究第49及54天收集血样以供病毒学试验。在研究第42天自所有存活动物采取未计划(unscheduled)的血样，以针对攻击前血清测试肾脏功能。
在研究第-14天、攻击前的研究第49天及第50至54天，自所有动物收集口咽拭子。在攻击前的研究第49天及第50至54天自所有动物收集直肠拭子。恰好在攻击前的研究第49天完成拭子收集。
在验尸期间，以无菌方式移出所有肺叶、称重并肉眼评估因FAIV感染所造成的特征损伤。使用百分比来鉴定肺实变的程度。以10％中性-缓冲的福尔马林固定左肺以供组织病理学检查。收集右肺并采样以供病毒学试验。除了肺外，亦采取肾样品及任何具肉眼病理的组织，并将其贮存在10％中性-缓冲的福尔马林中以供组织病理学检查。
通过H5N1特异性TaqMan PCR来测定血样、口咽拭子及直肠拭子、肺组织样品中的病毒效价。简单地说，利用MagnaPure LC系统，以MagnaPure LC总核酸分离试剂盒(Roche Diagnostics；荷兰Almere)分离RNA并利用实时RT-PCR分析检测A型流感病毒。以控制稀释单位(CDU)表示数据。从经系列稀释的病毒贮存液产生的标准曲线测定CDU，每个稀释液已与测试样品相同的方式进行核酸提取及TaqMan PCR扩增。
亦通过病毒分离及在Madine-Darby犬肾(MDCK)细胞上滴定来分析RT-PCR阳性口咽拭子及肺组织样品。结果表示为每毫升或每克样品中的log1050％组织培养感染剂量(log10TCID50/毫升或log10TCID50/g)。
通过病毒中和及红血球凝集抑制作用来分析血浆样品。在红血球凝集抑制(HI)分析中，将流感病毒株越南1194/04(H5N1，进化枝1)或印度尼西亚05/2005(H5N1，进化枝2)的病毒悬浮液与用霍乱滤液(自霍乱弧菌培养物取得)预先处理的血清样品的系列(2倍)稀释液一起孵育。接着，将红细胞加入稀释液中，孵育后，显示出完全抑制血细胞凝集的药剂的最大稀释倍数被定义为HI的效价。
病毒中和(VN)分析以血清的终点滴定为基础。简单地说，将固定量的病毒与血清样品的系列(2倍)稀释液混合。利用MDCK细胞作为指示细胞读取病毒中和作用，并藉红细胞凝集作用将其可视化。采取其中50％的经接种的细胞培养物显示出红细胞凝集的血清最高稀释倍数来对VN效价评分。
验尸时收集左肺，并以10％中性-缓冲的福尔马林固定以供组织病理学检查。固定后，将组织包埋在石蜡中，制作组织切片并以苏木精及伊红染色，以供组织学检查。记录所观察到的病理变化的描述及程度。
结果
在第一次及第二次接种疫苗后，5组处理组中无一动物的注射部位显示出任何疼痛或肿胀。再者，在注射部位并无皮肤异常的记录。在接种疫苗后及攻击前，通过线性混合模型分析，处理组之间的体温在0.1显著水平下并无显著差异。在第0天的第一次接种疫苗前及数天后，一只T01动物发烧(≥40℃)。接种疫苗后(第0及21天)，在个别动物中记录到高达40℃或更高的阵发性体温增加。研究期间未观察到与接种疫苗相关的异常健康。在攻击前有三只动物(二只在T02-H5N2组中，一只在T05-盐水组中)因先天性高草酸尿症被安乐死。来自所有处理组的数只动物在植入温度记录器后出现伤口并发症。自第0天至研究完成并未施用共存的处理。
与对照组T04及T05动物相比较，经接种疫苗的T01、T02及T03动物在攻击后显示出较少的临床征兆且无死亡率。T01中，一只动物在攻击后2天显示出沮丧及增加的呼吸努力。剩余的五只T01动物在攻击后无一显示出任何异常健康。T02(n＝4)及T03(n＝6)中，所有动物在攻击后保持健康。T04(n＝6)中，攻击后2天在两只动物中可见到第一个异常的临床征兆(沮丧及增加的呼吸努力)。攻击后3天，T04中的所有6只动物均可见到沮丧及增加的呼吸努力。因此，为了安乐的理由，有2只动物必须接受安乐死。攻击后4天(第53天)，一只动物被发现已死亡，剩余的3只T04动物显示出沮丧、增加的呼吸努力、第三眼睑脱出(third eyelid protrusion)及流鼻水，并且为了安乐的理由必须接受安乐死。T05(n＝5)中，攻击后1天在1只动物中可见到第一个异常的临床征兆(沮丧及增加的呼吸努力)。攻击后2天，又有2只动物开始显示出这些征兆。攻击后3天，一只动物被发现已死亡，剩余的4只动物显示出沮丧、增加的呼吸努力及第三眼睑脱出。接着，一只动物为了安乐的理由接受安乐死。攻击后4天，剩余的3只动物中有1只的呼吸努力恶化，另一只动物额外显示出流鼻水。攻击后4天(第53天)，所有剩余的3只动物为了安乐的理由而接受安乐死。
攻击后，经接种疫苗的动物(T01、T02及T03)的平均体温保持在低于40℃。在攻击后一天开始对照组动物(T04及T05)的平均温度上升至≥40.0℃。通过线性混合模型分析，处理组之间的平均体温的差异显著(p＝0.0001)。个别动物数据显示出第53天时少数的T01、T02及T03动物的体温在零星的时间点上升至40.0℃及更高。T01中有2只动物在一个时间点发烧(范围从40.0至40.1℃)。T02中有2只动物分别在一个及三个时间点发烧(范围从40.0至40.3℃)。T03中有1只动物在三个时间点发烧(范围从40.0至40.3℃)。T04及T05中所有动物在第50至51天之间至少发烧12小时。
在第一次及第二次接种疫苗前及攻击前测定对流感病毒株越南1194/04(H5N1，进化枝1)及印度尼西亚05/2005(H5N1，进化枝2)的HI抗体效价。检测下限为5。接种疫苗前，所有5组处理组中的效价低于下限5。接种疫苗后所有经接种疫苗(T01、T02及T03)的动物发展出高于5的HI抗体效价，并显示出与接种疫苗前的数值相比较效价至少增加6倍。在T01及T03中，第一次接种疫苗后，针对越南1194/04的效价范围为20至160，第二次接种疫苗后为140至960。在T02中，针对越南1194/04的效价低于T01及T03中所测得的效价，第一次接种疫苗后范围在5至30，第二次接种疫苗后为5至70。针对印度尼西亚05/2005的HI抗体效价与针对越南1194/04的效价类似。
通过H5N1特异性实时RT-PCR测试攻击前及攻击后采取的血浆样品的病毒负载。所有动物在攻击前具有病毒阴性的样品。攻击后，T01及T03动物的血浆中未检测到病毒。相反地，25％(四分之一)的T02动物、67％(六分之四)的T04动物及60％(五分之三)的T05动物在攻击后的血浆为病毒阳性。通过线性混合模型分析，处理组间的差异具显著性(p＝0.0247)。
通过实时RT-PCR及病毒滴定评估攻击后的咽喉拭子样品中的病毒排出，并通过实时RT-PCR测试直肠拭子样品中的病毒排出(shedding)。攻击后，T01动物的咽喉中未检测到病毒排出。T02中，所有4只动物(100％)在攻击后的一个时点均排出病毒。T03中，6只动物中有2只动物(33％)在攻击后排出病毒。T04中，6只动物中有3只动物(50％)在攻击后排出病毒。T05中，5只动物中有4只动物(80％)在攻击后排出病毒。攻击后5天未自T04及T05动物采取样品，因为所有动物自那时起开始死亡。然而，为了进行统计分析，在研究最后一天前已死亡或被安乐死的动物的最后测试结果在研究最后一天前进行。
具有RT-PCR阳性结果(≥1.8CDU)的咽喉样品亦用于病毒滴定分析中。病毒滴定确认所有RT-PCR阳性样品均含有感染性流感病毒(数据未显示出)。在经接种疫苗的动物(T02及T03)中，感染性病毒效价低于对照组动物(T04及T05)。在攻击后3天将T02或T03与T04比较时，及攻击后3、4和5天将T02或T03与T05比较时，这些差异显著。T02及T03动物中的效价为0.5log10TCID50。T04中观察到的效价范围为2.3至4.3log10TCID50。T05中的效价范围为1.5至3.8log10TCID50。
攻击后3或4天在所有处理组(T02除外)中检测粪便中通过直肠拭子评估的病毒排出。通过RT-PCR所检测到的病毒量在T01中为2.2至2.3log10CDU、T03中为3.2log10CDU、T04中为2.0至2.7log10CDU且T05中为2.2log10CDU。在0.1的显著水平下，各处理组间在攻击后的任一天均无显著差异。
经接种疫苗的动物(T01、T02及T03)中，肺病变较对照组动物(T04及T05)更不严重。所有经接种疫苗的动物出现温和、多病灶、亚急性支气管性间质性肺炎。对照组动物显示出中度(两只T04动物及一只T05动物)或严重(四只T04动物及四只T05动物)的亚急性支气管性间质性肺炎，除了二只对照组动物(一只T04动物及一只T05动物)显示出弥漫性分布外，所有动物均显示出多病灶分布。评估整个肺的实变程度，其以总肺组织的实变百分比表示。与肺病变的发现相符，经接种疫苗的动物(T01、T02及T03)的实变百分比明显低于对照组动物(T04及T05)。
通过病毒滴定及H5N1RT-PCR评估在动物死亡或安乐死时收集的肺组织中的病毒负载。来自经接种疫苗的动物(T01、T02及T03)的肺组织较来自对照组动物(T04及T05)的平均病毒效价明显更低。来自经接种疫苗的动物(T01、T02及T03)的肺组织的平均效价之间并无明显差异。通过RT-PCR分析可产生相同结果。
以高致病性H5N1禽流感病毒株攻击后，在接受佐剂(T04)或盐水(T05)的对照组动物中观察到的临床征兆包括发烧、死亡、病毒血症、病毒自喉咙及粪便中排出、肺的病毒性感染及肺病变(包括实变(consolidation))。
以经纯化的H5HA蛋白质(T01)为6只小猫进行疫苗接种可预防以高致病性H5N1禽流感病毒株攻击后的病毒血症、自喉咙排出病毒及死亡。再者，以经纯化的H5HA蛋白质(T01)进行疫苗接种减轻了临床征兆，包括发烧、肺中的病毒负载以及肺病变(包括实变)。
以灭活的H5N2株(T02)为4只小猫进行疫苗接种可预防以高致病性H5N1禽流感病毒株攻击后的临床征兆、自粪便排出病毒及死亡。再者，以灭活的H5N2株(T02)进行接种疫苗可减轻病毒血症、发烧、病毒自喉咙中排出、肺中的病毒负载及肺病变(包括实变)。
以灭活的H5N1株(T03)为6只小猫进行疫苗接种可预防以高致病性H5N1禽流感病毒株攻击后的临床征兆、病毒血症及死亡。再者，以灭活的H5N1株(T03)进行疫苗接种可减轻发烧、病毒自喉咙中排出、肺中的病毒负载及肺病变(包括实变)。
摘要
使用以灭活或经纯化的HA抗原与QC/DC佐剂配制的疫苗时，未观察到注射部位反应。该疫苗可在经接种疫苗的猫体内提供对临床疾病及死亡的完全保护，明显减少血液及组织中的病毒负载且明显减少病毒排出。
实施例21.癌症
背景
本研究在免疫缺陷及免疫活性(immunocompetent)的大鼠中，利用人及大鼠的肝细胞性癌细胞进行，以产生异位及常位模型。
动物
自Charles River(Wilmington MA)购买6-8周大的裸(Crl：NIH-rnu)雄鼠。将大鼠成对置于聚碳酸酯的微小隔离笼中并提供可任意取得的反渗水(reverse osmosis water)及经辐射的标准大鼠食品；所有水及床铺均经高压灭菌。每周记录体重二次；维持动物约7周，在实验结束时通过吸入CO2进行安乐死。
实验设计合并了二个阶段。阶段I中根据大鼠的体重将其随机分成二组。第1组中的大鼠未接受肿瘤细胞注射，而第2组中的大鼠接受皮下注射肿瘤细胞。在肿瘤注射后3周将第2组大鼠随机(根据肿瘤尺寸及达到速度(take-rate)-见表19)分成二组以用于阶段Ⅱ中，其中一组包括二个亚组：1)接受盐水的非肿瘤携带对照组(对照组)；2)仅以佐剂处理的肿瘤携带对照组(肿瘤组)；及3)给予疫苗剂量(相隔二周给予二次皮下注射)的肿瘤携带受试者(肿瘤处理组)。在第二次施用疫苗后14天为所有动物验尸。
疫苗
通过皮下注射施用每剂量0.2毫升的疫苗。
表19.疫苗组
QC为Quil A/胆固醇的缩写、D为DDA的缩写、C为的缩写、R为Bay的缩写、PBS为磷酸盐缓冲的盐水的缩写
疫苗制备
利用Quil-A(20微克/剂量)、胆固醇(20微克/剂量)、DDA(10微克/剂量)、Carbopol(0.05％)，加上或不加上糖脂Bay(1000微克/剂量)及抗原来制备疫苗。利用匀化器掺合组合物并依上述次序加入。
抗原制备
自American Type Culture Collection(ATCC,Manassas,VA)取得HepG2细胞(克隆HB-8065)。HepG2为一种永生细胞系，其衍生自15岁白种男性(Caucasian male)的分化良好的肝细胞癌的肝组织。在标准细胞培养条件下扩充细胞，并在基质胶(Matrigel)中制成1×107细胞/毫升的浓度以用于注射。通过皮下途径在第二次处理部位为每一只大鼠注射0.5毫升的细胞悬浮液。
测量
在整个研究过程中通过径测法每周二次测量肿瘤尺寸，其中体积(以立方厘米计)＝{[W(毫米)×W(毫米)]/2×L(毫米)}/1000。通过眼后采血收集血以供血清化学及生物标记物测量。在采血程序期间以CO2/O2为动物轻度麻醉。利用Hitachi 917自动分析仪(Roche,Indianapolis,IN)分析化学终点。最后的血样系在CO2麻醉下通过心脏穿刺采取。利用市售的ELISA分析：Alpha-Feto Protein(R&D Systems,Minneapolis MN)和Human Albumin(Bethyl Laboratories,Montgomery TX)来评估血清终点。通过吸入CO2将动物安乐死。切除肿瘤，称重并置于福尔马林中以供组织学检查。
使用学生非成对T检定(Student's unpaired T-test)来比较处理组及对照组大鼠间的多个参数。所有数值以平均值±SD表示且p<0.05被认是统计学显著的。
结果
通过减除肿瘤重量来校正体重的测量值(根据体积数据及假设1立方厘米＝1克)。以二种方式分析数据：通过处理组及通过肿瘤携带动物或非肿瘤携带动物。当比较肿瘤携带动物及非肿瘤携带动物的体重时，最终时间点时各组间具显著差异；基线处并无差异。即使可能因研究期短而在比较处理组时体重并无显著差异，相对于对照组而言，在两组肿瘤携带组中均有可感知的体重减轻的倾向，且当与接受载剂而无抗原的肿瘤携带动物相比较时，接受疫苗的动物具有朝向复原的正面倾向(表20)。再者，实验期间的体重的百分比变化与结束时的肿瘤体积(r2＝0.72)或肿瘤重量(切除的)(r2＝0.73)之间有合理的关系。
表20.一段时间后，实验组间的体重变化。阴影区指出施用疫苗的日期。
肿瘤尺寸
在四周的期间内比较对照组大鼠的肿瘤尺寸及经疫苗处理的大鼠的肿瘤尺寸。虽然经比较的各组间并未发现统计显著的差异(由于肿瘤尺寸变化较大)，但总肿瘤体积强烈倾向减小(表21)，接受疫苗的大鼠的平均切出肿瘤重量(表22)亦降低。
表21.经载剂处理组(肿瘤)与经疫苗处理组(经处理肿瘤)间的肿瘤尺寸变化。阴影区指出施用疫苗的日期。
日期 肿瘤 经处理的肿瘤
6 4.6±2.1 4.7±2.0
9 4.9±2.0 4.8±1.8
13 4.6±1.8 5.0±2.2
16 12.2±2.7 12.3±2.5
20 22.6±3.8 13.4±2.6
23 33.3±4.8 14.1±2.8
27 34.5±4.6 13.8±2.8
30 35.6±4.6 13.5±3.4
34 37.7±8.0 14.1±2.9
37 38.6±10.2 13.7±2.3
41 44.5±12.1 12.5±2.1
44 52.9±13.9 13.0±2.1
48 61.7±15.1 16.9±2.9
表22.验尸时的肿瘤重量差异。
血清分析
在研究期间内的不同时间点通过ELISA测量人α-胎儿蛋白(AFP)。将这些数据与体重及肿瘤尺寸数据一起使用以将动物任意分至处理组。来自此研究的数据及历史数据指出AFP仅能在带有肿瘤的动物中检测到。肿瘤对照组及处理组的纵向AFP数据的比较指出在第一次疫苗注射后，处理组的动物的AFP降低，且在研究结束时，处理组的动物的AFP相对于带有肿瘤的对照组动物的AFP低很多；分别是载剂处理组大鼠的4.78±3.2纳克/毫升相对于疫苗处理组大鼠的0.97±2.5纳克/毫升。此外，AFP显示出与肿瘤体积及切出的肿瘤重量二者有关。
在研究期间内的不同时间点通过ELISA测量人白蛋白(hALB)。来自此研究的数据及历史数据指出hALB仅能在肿瘤携带动物中检测到。肿瘤对照组及处理组的hALB数据的比较指出在研究结束时，处理组的大鼠的hALB相对于肿瘤携带对照组的大鼠低很多(数据未显示出)。此外，类似于AFP，hALB显示与肿瘤体积及切出的肿瘤重量二者有关(数据未显示出)。
在整个研究的不同时间点分析核心血清化学组。该组包括AST、ALT、胆固醇、碱性磷酸酶、GGT、BUN、葡萄糖、肌酸、总胆红素、总蛋白质、白蛋白、球蛋白及矿物质Ca、P、Na、K及Cl。类似于体重，以二种方式分析数据：通过处理组及通过肿瘤携带动物或非肿瘤携带动物。可观察到差异的终点仅有：AST、ALT及胆固醇。通过二种比较，在基线时点处各组间并无显著差异(数据未显示出)。当比较肿瘤携带动物与非肿瘤携带动物的化学指数时，各组间在最终时点具显著差异，肿瘤携带动物中的AST、ALT、胆固醇提高(数据未显示出)。
结论
集合我们的数据可证明，相对于接受载剂的肿瘤携带对照组，经针对HepG2肿瘤细胞系制备的疫苗处理的动物的肿瘤负担减轻。
实施例22.CpG
背景
本文所述的佐剂为一种强疫苗佐剂平台，其可通过利用佐剂作为CpG的递送系统，通过使用ORN/ODN(CpG)加强免疫应答来增强。
材料及方法
在研究中使用体重约18-20克的雌C57BI/6小鼠(n＝10/组)。在研究的第0、14及21天，将总体积50微升通过肌内途径(IM)注射入左胫骨前肌将所述小鼠免疫化。
试剂剂量
一剂该组合物以不同组合包含一或多种下列组分：
缓冲液：NaH2PO4·2H2O(229.32毫克/升)、NaCl(1168.00毫克/升)及Na2HPO4(1144.00毫克/升)，溶解于WFI中并以0.1微米滤器进行无菌过滤
卵白蛋白(OVA-抗原)：10微克
CpG ODN：10微克
胆固醇：1微克
Quil A：1微克
DDA：0.5微克
Carbopol：0.0375％
R1005：50微克
疫苗制备
将缓冲液置于具有搅拌棒的50毫升烧瓶中，并在下列全部步骤中以固定速度搅拌。按照下列顺序加入组分：抗原(OVA)；CpG ODN；QuilA；胆固醇(逐滴)；DDA(逐滴)；及Bay将组合物在室温(约25℃)下最少搅拌30分钟，同时通过以铝箔纸覆盖来避光。将溶液强行通过25G针进入注射筒以使任何大的漂浮粒子破裂，取得均匀(混浊)的悬浮液，再将其转移至无菌玻璃小瓶中以供贮存。
样品收集
收集下列样品：
血浆：在初次接种疫苗后4周(第二次加强的疫苗接种后1周)
细胞毒性T淋巴细胞(CTL)(初次接种疫苗后6周(第二次加强的疫苗接种后3周))
上清液中的细胞因子分泌物(初次接种疫苗后4周)
24-小时上清液(IL-2、IL-4、IL-10；TNF)
72-小时上清液(IFN-g)
四聚体(初次接种疫苗后4周)
制造细胞因子的T细胞(初次接种疫苗后6周)
结果作为针对每种佐剂的相对评分提供，显示出佐剂的效果。终点是以个别细胞毒性T淋巴细胞应答的总和为基础的相对标度。
结果及讨论
如表23中所示，QCDCR加OVA可产生较其子成分更强的CTL应答，然而，总体应答较低(<20％)。将QCDCR或其子成分与CpG组合可显著改良OVA-特异性CTL应答。总体QCDCR/CpG加OVA可产生最强的CTL应答，然而，此组与胆固醇/CpG加OVA(比例为25：1)之间在反应上并无显著差异。通过ELISA针对细胞因子分析来自以OVA(1毫克/毫升)刺激的脾脏细胞的培养上清液。单独的QCDCR或其子成分仅能产生非常弱的细胞因子应答。将QCDCR或其子成分与CPG组合可增加抗原特异性IL-2及IFN-g(Th1偏移型细胞因子)的分泌。QCDCR与CpG在扩大细胞性免疫应答上的效力相等。将此二者组合显示出协同效果。用CpG分析QCDCR的子成分时，与Quil A的组合可产生最佳反应，其次为包含胆固醇与CpG。
表23.相对CTL反应
组别 CTL IFN-g 四聚体 IL-2 总计
QCDCR-CpG+OVA 18 16 18 18 70
QCDC-CpG+OVA 15 18 17 16 66
Ch+CpG+CR+OVA 12 14 15 17 58
Ch+CpG+DC+OVA 8 17 13 15 53
Ch+CpG+DCR+OVA 16 9 14 13 52
C+CpG+OVA 9 13 16 11 48
DCR+CpG+OVA 13 13 12 9 47
CR+CpG+OVA 10 10 11 8 39
DC+CpG+OVA 11 11 8 6 36
CpG+OVA 14 8 9 3 34
QCDCR+OVA 7 5 7 14 33
CR+OVA 5 7 4 7 23
QCDC+OVA 3 6 2 10 21
CR+OVA 4 3 5 4 16
DCR+OVA 6 2 6 2 16
DC+OVA 2 4 3 5 14
OVA 1 1 1 1 4
QC为Quil A/胆固醇的缩写、Ch为胆固醇的缩写、D为DDA的缩写、C为的缩写、R为Bay的缩写
实施例23.犬冠状病毒(CCV)
范围
使用鼠模型，利用犬冠状病毒(CCV)及新颖的组合佐剂来评估具指定的抗原成分的佐剂效能。
动物
每一处理组中有10只CF-1小鼠，通过皮下途径对每一处理组中的每只动物施用0.2毫升。
处理组
表24中所示的测试配制物被制备成具下列指定浓度的1.0毫升表面剂量(field dose)体积。每一只小鼠仅施用0.2毫升疫苗。
表24.测试配制物
疫苗制备
本发明佐剂的疫苗制备描述于上述实施例1-13。佐剂组分的浓度提供于表24中。依表中的次序加入佐剂。
将盐水增效剂加入管中并开始匀化。加入表24中所示浓度的灭活的CCV。加入表24中所列浓度的Quil A。然后，加入在乙醇溶液中的胆固醇，并持续匀化。然后，在匀化期间加入DDA/乙醇溶液。将混合物在10,000psi微射流匀化。然后一边混合一边加入Carbopol，将pH调整为6.8至7.2。然后，一边混合一边加入Bay糖脂。最后，以盐水增效剂使组合物达到最后体积。
根据标签指示制造用于接受市售AbISCO产品(瑞典，Isconova)的处理组的疫苗。AbISCO产品基于皂树皂苷和利用高度纯化的皂苷的ISCOM技术。
分析方法：βCCV血清中和
在56℃将血清加热灭活30至40分钟。在一干净无菌的盘中，通过将120微升加入120微升稀释剂中来制备各种血清的系列稀释液(未稀释者、2、4、8…)。使用至少二份重复的孔/稀释液。若需要时，起初使用1：16的稀释倍数。通过将活CCV稀释至在120微升中含有约240个病毒颗粒的水平来制备工作攻击贮存液。然后，将120微升的各种血清稀释液与120微升的病毒溶液合并成总体积240微升。将溶液混合并保持在室温(约25℃)30至60分钟，以使其中和。然后，将120微升的各系列稀释液转移到7至12天前植入的NLFK细胞的裸的静候单层(waiting nakedmonolayers)上。4至6天后评估CPE。反滴定确认有50至316个病毒颗粒击中每一单层。
结果
表25.血清中和
处理组 血清中和效价
盐水 2
仅有抗原 64
AbISCO-100 256
AbISCO-200 23
AbISCO-300 11
Quil-A/胆固醇 315
R 512
RC 11
DRC 630
QCR 1024
QCDC 630
QCRC 724
QCDRC 1448
概述
考虑各组分的化学性质，与CCV一起配制的佐剂的组合效果可提供对疫苗佐剂而言优越的性质。
此研究的血清学结果显示于表25中。较高的血清中和抗体效价通常与疫苗所提供的较佳保护有关。数种本发明的佐剂配制物可产生较市售的添加佐剂的产品高出许多的效价，即使这些配制物添加了类似量的CCV抗原。QCDC、QCR、DRC、QCRC及QCDRC配制物尤其有效地诱导了小鼠体内的良好免疫应答。
实施例24.牛轮状病毒抗原
范围
利用牛轮状病毒及本发明的组合佐剂，使用鼠模型来评估具指定的抗原组分的佐剂性能。
动物
每一处理组中有10只CF-1小鼠，通过皮下途径给每一处理组中的每只动物施用0.2毫升。
处理组
表26中所示的测试配制物被制备成具下列指定浓度的2.0毫升表面剂量体积。每一只小鼠仅施用0.2毫升疫苗。
表26.测试配制物
疫苗制备
本发明佐剂的疫苗制备描述于上述实施例1-13。佐剂组分的浓度提供于表26中。依表中的次序加入佐剂。
将盐水增效剂加入管中并开始匀化。加入表26中所示浓度的灭活的牛轮状病毒。加入表26中所列浓度的Quil A。然后，加入胆固醇/乙醇溶液，并持续匀化。然后，在匀化期间加入DDA/乙醇溶液。将混合物在10,000psi微射流匀化。然后一边混合一边加入将pH调整为6.8至7.2。然后，一边混合一边加入Bay糖脂。最后，以盐水增效剂使组合物达到最后体积。
根据标签指示制造用于接受市售AbISCO产品(瑞典，Isconova)的处理组的疫苗。AbISCO产品基于皂树皂苷和利用高度纯化的皂苷的ISCOM技术。
结果
表27.血清中和效价
测试配制物 血清中和效价(SN)
盐水 ≤3
仅有抗原 23
AbISCO-100 16
AbISCO-200 16
AbISCO-300 14
Quil-A/胆固醇 14
QCDC 16
R 10
QCR 16
QCDCR 16
QCDC 3
QCCR 5
QCDCR 39
DRC 20
RC 3
QC为Quil A/胆固醇的缩写、D为DDA的缩写、
C为的缩写、R为Bay的缩写
考虑各组分的化学性质，与牛轮状病毒一起配制的佐剂的组合效果可提供对疫苗佐剂而言优越的性质(见表27)。
虽然佐剂配制物中有数种可提供类似水平的血清中和抗体效价，但QCDCR佐剂提供最高的水平。
实施例25.犬流感病毒
范围/研究设计
利用犬流感病毒(CIV)及新颖的组合佐剂，使用犬模型来评估具指定的抗原组分的佐剂性能。
本研究具有随机化完全区组设计(见表28)。将动物根据生日分类，形成大小为5的区组。同一区组内的动物被随机分配至处理组。在相同区组内的动物被随机分配至彼此靠近的围栏(笼子)。动物的健康良好，对市售的疫苗无超敏反应史。动物并未接受针对CIV的疫苗。
表28.研究设计
QC为Quil A/胆固醇的缩写、D为DDA的缩写、C为的缩写
表29.疫苗组合物
疫苗制备
本发明佐剂的疫苗制备描述于上述实施例1-13。佐剂组分的浓度提供于表29中。依表中的次序加入佐剂。
将盐水增效剂加入管中并开始匀化。加入表29中所示浓度的灭活的犬流感病毒。加入表29中所列浓度的Quil A。然后，加入胆固醇/乙醇溶液，并持续匀化。然后，在匀化期间加入DDA/乙醇溶液。将混合物在10,000psi微射流匀化。然后一边混合一边加入将pH调整为6.8至7.2。最后，以盐水增量剂使组合物达到最后体积。
测试
通过根据USDA的标准分析方法，利用红血球凝集抑制(HAI)分析来评估血清学。
结果/摘要
表30中呈现第42及180天的HAI Geo.平均效价的THE血清学结果。
表30.HAI效价
考虑各组分的化学性质，与流感病毒一起配制的佐剂的组合效果可提供对疫苗佐剂而言优越的性质。
较高的抗体效价通常与疫苗所提供的较佳保护有关。一般而言，铝佐剂(T02)及本发明的佐剂(T03、T04及T05)可使HAI效价升高，但在第180天，于高剂量组(T05)中由本发明的佐剂引起的应答较优越，具较高的效价。低剂量及中剂量的本发明佐剂的效价与常规的用于流感的含铝佐剂的效价相等。此外，由于本发明的佐剂提供T辅助细胞1免疫应答，而铝则无，因此预期有较长的免疫期且具有较快的记忆机制。

Claims (10)

1.疫苗组合物，其包含佐剂配制物及治疗有效量的抗原成分，其中
a)所述佐剂配制物包含Quil A或其经纯化的馏分、固醇、二甲基双十八烷基溴化铵(DDA)和聚丙烯酸聚合物；并且
b)所述抗原成分FeLV(猫白血病病毒)抗原或禽流感抗原。
2.根据权利要求1所述的疫苗组合物，其中所述Quil A或其经纯化的馏分的存在量为每剂量约1微克至约5000微克，所述固醇的存在量为每剂量约1微克至约5000微克，DDA的存在量为每剂量约1微克至约5000微克，并且所述聚合物的存在量为约0.0001％ν/ν至约75％ν/ν。
3.根据权利要求1或2所述的疫苗组合物，其中所述FeLV抗原包含由持续受KT-FeLV-UCD-1猫白血病病毒株感染的FL-74细胞系所制造的gp70。
4.根据权利要求1或2所述的疫苗组合物，其中所述FeLV抗原包含灭活的FeLV病毒。
5.根据权利要求1所述的疫苗组合物，其中所述抗原成分包含由持续受KT-FeLV-UCD-1猫白血病病毒株感染的FL-74细胞系所制造的gp70。
6.根据权利要求1或2所述的疫苗组合物，其中所述抗原是灭活的全禽流感病毒。
7.根据权利要求6所述的疫苗组合物，其中所述禽流感病毒是H5N1病毒或H5N2病毒。
8.根据权利要求1或2所述的疫苗组合物，其中所述抗原是经纯化的H5HA蛋白质。
9.针对由猫白血病病毒引起的感染来治疗猫的方法，所述方法包括对所述猫施用根据权利要求1-5中任意一项所述的疫苗组合物。
10.针对由禽流感病毒引起的感染来治疗猫的方法，所述方法包括对所述猫施用根据权利要求6所述的疫苗组合物。
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