TWI513464B - 新穎之佐劑組成物 - Google Patents

Description

新穎之佐劑組成物

本發明大抵關於用於增強對抗原之免疫反應的新穎佐劑調製劑，該新穎佐劑調製劑用於致免疫和疫苗組成物中但不會在個體體內產生毒性或不欲之副作用。本發明亦關於該佐劑、致免疫及疫苗組成物之製備方法和用途。

相關技藝之歷史和描述

細菌、病毒及寄生蟲感染廣泛分佈於人和動物。由這些感染媒介物引起之疾病通常對抗微生物藥學療法具有抗性，而使得無有效之治療方法。因此，愈來愈多人使用疫苗學方法以控制感染病。完整之傳染病病原體可在經化學去活化或合適之遺傳工程處理後被製成適用於疫苗調製劑中。或者，可將病原體之蛋白質次單位在重組表現系統中表現並經純化後用於疫苗調製劑中。疫苗可經由在組成物中包含合適之佐劑而變得更有效。

使用疫苗學方法以治療動物和人之癌症的興趣亦持續增加。此用於治療癌症之治療法涉及以包含腫瘤特異性抗原及佐劑之疫苗為癌症患者接種疫苗。然而，研發中之多種具有此性質的疫苗無一已被主管機關核准。疫苗並未顯示出可縮小腫瘤(此為癌症藥物效力之標準測量法)。

“佐劑”一詞一般係指任何可增加對抗原之體液或細胞性免疫反應的物質。佐劑係用於達成二個目的：其減緩抗原從注射部位釋出，且其刺激免疫反應。傳統疫苗通常係由去活化或被殺死或經改質的活致病微生物之粗製品組成。與這些致病微生物之培養聯結的雜質可作為增強免疫反應之佐劑。然而，以利用致病微生物或純化之蛋白質次單位的同質製品作為抗原而製成之疫苗所激發出的免疫力通常不夠。因此，加入某些外源物質(諸如佐劑)變得必要。再者，製造合成及次單位疫苗很昂貴。加入佐劑可容許使用較小劑量之抗原來刺激類似之免疫反應，從而減少疫苗之製造花費。因此，當將作用劑與佐劑組合時可顯著增加某些注射藥劑的效力。

在選擇佐劑時必須考慮許多因素。佐劑應該以有效方式使抗原之釋出和吸收相當緩慢且對宿主之毒性、致敏性、刺激及其他不欲之作用最小。為了使人滿意，佐劑應為非殺病毒性、可生物降解、可持續產生高水準之免疫力、能刺激交叉保護作用、可與多種抗原相容、可在多種物種中生效、對宿主無毒性且安全(如：無注射部位反應)。其他所欲之佐劑特徵為可微量投藥、劑量節省、具有優良之耐儲性、可承受乾燥、可製成不含油、可以固體或液體形式存在、為等張性、容易製造且製造花費並不昂貴。最後，令人高度所欲的為根據疫苗接種條件之需要而將佐劑構造成可誘導體液或細胞免疫反應或此二者。然而，可符合上述條件之佐劑的數量有限。

佐劑之選擇係取決於疫苗之需要，不論其係增加抗體反應之幅度或功能、增加由細胞傳介之免疫反應、誘導黏膜免疫力或降低抗原劑量。已提出之佐劑有多種，然而，其無一顯示出可理想適用於所有疫苗。第一種在文獻中報導之佐劑為弗氏完全佐劑(Freund's Complete Adjuvant)(FCA)，其含有油包水乳劑及分枝桿菌之萃取物。不幸地，FCA之可耐受性差且可能引起無法控制之發炎。由於FCA已被發現超過80年，減少該不欲有之佐劑副作用的努力一直持續著。

一些已作為佐劑之其他物質包括金屬氧化物(如：氫氧化鋁)、明礬、鹽類之無機螯合物、凝膠、不同之石蠟型油、合成樹脂、藻酸鹽、類黏蛋白及多醣化合物、酪蛋白酸鹽及從血液衍生之物質(諸如纖維蛋白凝塊)。雖然這些物質通常可有效刺激免疫系統，但由於其在宿主中產生不利作用(如：產生無菌膿腫、器官損害、致癌性或過敏反應)或具有令人不滿意之藥學性質(如：物質從注射部位快速分散或分散控制不良，或腫脹)，因此無一令人完全滿意。

合成油及石油衍生物已被作為佐劑，因其顯示出在體內分散得很緩慢，但其可能令人不滿意，因其經常分裂成芳香烴，而此物質可能具致癌性。再者，這些物質中有些已被發現可能產生無菌膿腫且可能永遠無法從身體完全排出。當正確選擇油且調製成正確濃度時其可相當安全且無毒性。

自南美洲皂樹(Quillaja saponaria )之樹皮取得之皂素已作為佐劑一段時間。見，Lacaille-Dubois,M and Wagner H. (A review of the biological and pharmacological activities of saponins。許多現今使用之畜禽疫苗包含Quil A，其為來自南美洲智利皂莢樹(Quillaja saponaria molina )之樹皮的皂素餾分。將Quil A進一步分餾則產生次餾分，包括QS-7、QS-17、QS-18及QS-21。(見美國專利案第5,057,540號)。

使用皂素作為佐劑有多種不利處。皂素為可溶性，因此，其刺激非特異性免疫反應。然而，疫苗學之目的係刺激針對特殊抗原之目標反應。皂素對膽固醇具強親和力。其與細胞膜中所發現之膽固醇形成複合物而使細胞溶血。其亦顯示出引起注射部位壞死且不易配製成微粒構造。當用於含有改質之活包膜病毒的疫苗中時，皂素可破壞病毒外套從而將病毒抗原去活化。

為了克服Quil A之溶血及殺病毒性質，現已將其與膽固醇和磷脂組合而形成稱為免疫刺激性複合物(ISCOM)或ISCOM基質(ISCOMATRIX)之特殊構造。見，Ozel M.,et al.；J. Ultrastruc. and Molec. Struc. Re 102,240-248(1989)。當與抗原組合時，ISCOM通常會誘導Th1細胞毒性T細胞反應。然而，雖大為減弱Quil A之溶血性質，但Quil A與膽固醇組合並不會完全排除此類性質。ISCOM之另一限制為蛋白質抗原必須具有足夠大之疏水性結構區來與ISCOM交互作用，以被併入ISCOM中。高度親水之蛋白質無法被併入ISCOM中。最後，ISCOM可刺激個體內不欲之自體免疫反應。

免疫調節劑已被作為佐劑，其實例包括二甲基雙十八烷基溴化銨(以下稱“DDA”)和拉韋定(avirdine)。DDA為親脂性季銨化合物(胺)，其帶有結合正電荷季銨分子之二個18碳烷基鏈及二個甲基團，分子量為631。其作為佐劑之用途係由Gall(Immunol. V. 11,p. 369,1966)發現。據報導，DDA可刺激強烈之經細胞傳介之免疫反應且亦顯示出可誘導體液免疫反應。許多論文已發表證明DDA作為蛋白質抗原、半抗原(hapten)、腫瘤、病毒、原蟲及細菌之佐劑的效力。(見，Korsholm,K S.,et al.,Immunology,vol. 121,pp. 216-226,2007)。大部分研究已在實驗室動物中進行，然而僅有一些係在較大型之動物(諸如雞(見，Katz,D.,et al. FEMS Immunol Med Microbiol. Vol 7(4)：303-313,1993)、豬和牛)中進行。DDA可同時在實驗室動物及較大型之動物中有效誘導延遲型過敏(DTH)反應。然而，其在水中不易溶。

聚合物亦已被作為佐劑，其實例包括二乙基-胺乙基(DEAE)-葡聚糖、聚乙二醇及聚丙烯酸(如：卡波姆(CARBOPOL))。本技藝中已知多醣DEAE-葡聚糖為非常強之佐劑。然而，其與令人無法接受之反應原性有關。卡波姆聚合物為丙烯酸與聚烯醚或二乙烯乙二醇交聯之聚合物。卡波姆已用於多種疫苗中，但其作為佐劑之用途並未被證實。

一些佐劑已證實可刺激Th2反應，其實例包括水合醋酸N-(2-去氧基-2-L-白胺醯胺基-b-D-吡喃葡糖基)-N-十八烷基十二碳醯胺(當其為醋酸酯型時亦以商標名Bay R1005稱之)及鋁。Bay R1005與純化之病毒疫苗或次單位疫苗組合可增加經病毒挑戰之小鼠中抗體之產製。在其他動物物種(豬、綿羊、馬)中進行之臨床前試驗在產製抗體方面得到相當的結果。由Bay R1005誘導之抗體合成增加係特定取決於抗原而非多株刺激之結果。

在本發明之前並無佐劑調製劑擁有理想佐劑所應有之廣泛的所欲特徵。尋求用於疫苗中之可克服習知佐劑之缺陷的新佐劑的努力一直在進行。特定言之，可引出對抗人及動物體內之廣泛抗原之有效的經細胞介導之免疫反應及體液免疫反應，但無習知佐劑之副作用和配製困難的佐劑調製劑為吾人高度所欲。

本發明關於新穎之佐劑、致免疫組成物和疫苗組成物。特定言之，本發明關於包含Th1刺激劑、免疫調節劑、聚合物及Th2刺激劑之佐劑調製劑。本發明亦關於包含這類佐劑調製劑及一或多種抗原之致免疫及疫苗組成物，以及製備該佐劑和疫苗組成物之方法。

於一較佳體系中，該佐劑組成物包含皂素、固醇及季銨化合物之組合。於一較佳體系中，該佐劑組合物包含Quil A、膽固醇及DDA。

於另一較佳體系中，該佐劑組成物包含皂素、固醇、季銨化合物及聚合物之組合。於一較佳體系中，該佐劑組合為Quil A、膽固醇、DDA及聚丙烯酸。

於另一較佳體系中，該佐劑組成物包含皂素、固醇、季銨化合物、聚合物及糖脂之組合。於一較佳體系中，該佐劑組合為Quil A、膽固醇、DDA、聚丙烯酸及Bay R1005。

於一較佳體系中，包含佐劑調製劑及免疫有效量之抗原的致免疫組成物(其中該佐劑調製劑包含皂素、固醇、季銨化合物及聚合物)係藉包含下列步驟之方法製備：

a)在緩衝劑中製備該抗原成分的組成物；

b)將皂素加入步驟a之組成物中；

c)將固醇加入步驟b之組成物中；

d)將季銨化合物加入步驟c之組成物中；

e)將聚合物加入步驟d之組成物中。

於此方法之一較佳體系中，該皂素為Quil A，該固醇為膽固醇，該季銨化合物為DDA且該聚合物為聚丙烯酸。

於一較佳體系中，包含佐劑調製劑及免疫有效量之抗原的疫苗(其中該佐劑調製劑包含皂素、固醇、季銨化合物、聚合物及糖脂)係藉包含下列步驟之方法製備：

a)在緩衝劑中製備該抗原成分的組成物；

b)將皂素加入步驟a之組成物中；

c)將固醇加入步驟b之組成物中；

d)將季銨化合物加入步驟c之組成物中；

e)將聚合物加入步驟d之組成物中；及

f)將糖脂加入步驟e之組成物中。

於此方法之一較佳體系中，該皂素為Quil A，該固醇為膽固醇，該季銨化合物為DDA，該聚合物為聚丙烯酸且該糖脂為Bay R1005。

現已發現，此文中所報導之佐劑組成物具有令人驚訝且出人預料之超乎個人對這類組合物之期待的性質。令人驚訝地，現已發現這些佐劑組成物中之Quil A/膽固醇的殺病毒性質已被排除。其適合作為用於經凍乾之改質的活病毒抗原之稀釋劑。此處所描述之佐劑組成物可構造成用來引出極有效之針對經細胞介導的免疫反應、體液免疫反應或此二者的免疫反應。此外，經由使用這些佐劑調製劑可大為避免注射部位反應。該反應原性低於數種包含該組合佐劑之個別組成分的反應原性。此外，這些佐劑調製劑提供長期貯存之能力。

本申請者已發現當這些新穎之佐劑組成物與一或多種橫跨大範圍的多種物種之不同抗原組合時將具有高度致免疫性。其可與一或多種病毒、細菌、寄生蟲、重組蛋白其和合成之肽抗原，以及彼等之組合一起使用。該新穎之疫苗佐劑組成物可用於治療性疫苗中以治療癌症。

因此，本發明提供佐劑、致免疫組成物和疫苗組成物。此外，本發明提供用於製造該組成物之方法。本發明亦提供該組成物於治療疾病之用途。本發明亦提供其於製備用於治療個體以對抗疾病(尤其是對抗下述疾病)之藥物上的用途。本發明亦提供其於製造用於預防或減輕個體之疾病的藥物上之用途。

本發明進一步提供其於製造用於下列疾病之藥物上的用途：治療貓以對抗由貓白血病毒引起之感染、治療鳥類以對抗鳥類球蟲症、治療牛以對抗由大腸桿菌引起之疾病、治療牛以對抗由牛病毒性腹瀉病毒引起之疾病、治療豬以對抗由肺炎黴漿菌引起之疾病、治療貓以對抗由貓流感病毒引起之疾病、治療個體以對抗癌症、治療犬以對抗由犬冠狀病毒引起之疾病、治療牛以對抗由牛輪狀病毒引起之疾病、以及治療犬以對抗由犬流感病毒引起之疾病。本發明亦提供佐劑作為標記疫苗以協助確認已接受疫苗接種之動物上的用途。本發明亦提供CpG於增強佐劑之效果的用途。

[發明之詳細說明]

定義

當與可測量之數值變量連結時，“約”或“近似”係指所指示之變量值及所有在所指示之數值的實驗誤差內(如：平均值之95%信賴區間內)或所指示之數值的10%內(無論那一個數值較大)的變量值，除非約字係用於指以週計之期間，其中“約3週”為17至25天，而約2至約4週為10至40天。

“佐劑”係指任何可增加對抗原之體液或細胞免疫反應的物質。佐劑通常係用於達成二種目的：減緩抗原從注射部位釋出及刺激免疫反應。

“烷基”係指直鏈型和支鏈型飽合烴部分。

“胺”係指含氮之化學化合物。胺為一群經由以烴基團取代氫原子而自氨衍生之化合物。“季胺”係指以銨為基礎，帶有4個烴基團之化合物。

“抗體”係指可因對抗原之免疫反應而與特異抗原結合之免疫球蛋白分子。免疫球蛋白為由具有“恆定”及“可變”區之“輕”及“重”多肽鏈所組成之血清蛋白質且根據該恆定區之組成而區分為數種類別(如：IgA、IgD、IgE、IgG及IgM)。

“抗原”或“免疫原”係指任何刺激免疫反應之物質。此名詞包括被殺死的、去活化的、減毒的或經改質的活細菌、病毒或寄生蟲。抗原一詞亦包括個別之多核苷酸、多肽、重組蛋白質、合成之肽、蛋白質萃取物、細胞(包括腫瘤細胞)、組織、多醣、或脂質、或其片段或彼等之任何組合。抗原一詞亦包括抗體，諸如抗個體遺傳型抗體或其片段，以及可模擬抗原或抗原決定簇(抗原決定部位)之合成肽模擬抗原決定部位(mimotopes)。

“菌苗(bacterin)”意指可作為疫苗或致免疫組成物之組成分的一或多種被殺死之細菌的懸浮液。

“緩衝劑”意指防止另一種化學物質之濃度變化的化學系統，如：質子供給者及接受者系統可作為防止氫離子濃度(pH)明顯改變之緩衝劑。另一緩衝劑實例為含有弱酸及其鹽(共軛鹼)或弱鹼及其鹽(共軛酸)之混合物的溶液。

“細胞性免疫反應”或“經細胞傳介之免疫反應”為一種由T淋巴球或其他白血球細胞或此二者傳介之免疫反應，其包括製造細胞介素、趨化激素及由活化之T細胞、白血球或此二者製造之類似分子。

“膽固醇”係指化學式為C₂₇ H₄₅ OH之白色結晶型物質。其為一種被歸類為脂質之環形烴醇。其不溶於水，但可溶於多種有機溶劑中。

“遲發性過敏反應(DTH)”係指暴露於被免疫系統視為外來物質之抗原24至72小時後發展出的發炎反應。此類型之免疫反應主要涉及T細胞而非抗體(其係由B細胞製造)。

“劑量”係指給予個體之疫苗或致免疫組成物。“第一劑量”或“先發疫苗”係指在第0天給予之這類組成物的劑量。“第二劑量”或“第三劑量”或“年劑量”係指接續在第一劑量後給予之這類組成物的量，其可為或可不為與第一劑量相同之疫苗或致免疫組成物。

“乳化劑”係指用於使乳劑更穩定之物質。

“乳劑”係指二種不相溶混之液體的組成物(其中一種液體之小滴懸浮於另一種液體之連續相中)。

“酯類”係指對應於無機鹽之任何一種類別的有機化合物，其係從有機酸單位與醇分子之縮合反應(其中排除一水分子)形成。

“賦形劑”係指任何非抗原之疫苗的組成分。

“均質化”係指將一或多種組成分(相似或相異)混合成均勻之混合物的過程。

“體液免疫反應”係指由抗體傳介之免疫反應。

“疏水性”係指不溶於水、不易吸收濕氣或受到水之不利影響；與水不相容或對其親和力低。

個體內之“免疫反應”係指發展出對抗原之體液免疫反應、細胞性免疫反應或體液及細胞性免疫反應。免疫反應通常可利用本技藝已知之標準免疫分析及中和分析來測定。

抗原之“免疫上保護量”或“免疫上有效量”或“產生免疫反應之有效量”為可在接受者體內有效誘導致免疫反應之有效量。該致免疫反應可能足以用於診斷目的或其他試驗，或可能適合用於預防疾病之徵兆或症狀，包括由病原體引起之感染所造成之不利的健康結果或其併發症。體液免疫反應或由細胞傳介之免疫或此二者均可被誘導。動物對致免疫組成物之免疫反應可經由測量抗體力價、淋巴細胞增殖分析而間接評估，或在以野生型菌株挑戰後經由監控徵兆或症狀來直接評估，而該由疫苗提供之保護性免疫力可經由測量，如：臨床徵兆，諸如死亡率、發病率減少、溫度數值、個體之總體生理狀況及總體健康和效能來評估。該免疫反應可包括，但不限於誘導細胞性及/或體液免疫。

“致免疫的”係指激發免疫或抗原反應。因此，致免疫組成物可為任何能誘導免疫反應之組成物。

“免疫刺激性複合物”或ISCOM係指當Quil A與膽固醇及磷脂組合時形成之特殊構造。

“免疫刺激分子”係指產生免疫反應之分子。

“脂質”係指任何不溶於水但溶於非極性有機溶劑中，觸摸起來為油性，且與碳水化合物及蛋白質構成活細胞之主要構造物質的任何有機化合物群組，包括脂肪、油、蠟、固醇及三酸甘油脂。

“親脂性”係指顯示出對脂質具顯著之親和力或溶於脂質中。

“脂質體”係指由包圍水性隔室之脂質雙層形成的微小球粒，其在醫學上係用於在體內攜帶藥物、抗原、疫苗、酶或其他物質到達被瞄準之細胞。

“醫療劑”係指任何用於預防、治癒或改善疾病，或預防一些生理狀況或發病的作用劑。

“非經腸胃道投服”係指將物質(諸如疫苗)通過或經由不包含消化道之途徑引入個體之體內。非經腸胃道投服包括皮下、肌肉內、透皮、皮內、腹膜內、眼內及靜脈內投服。

“藥學上可接受的”係指在明智之醫療判斷下適合與個體組織接觸而無不當毒性、刺激、過敏反應等，具合理之利益對風險比率並可有效用於其所欲用途之物質。

“反應原性”係指個體於回應投服佐劑、致免疫或疫苗組成物時所引出之副作用。其可在投服部位發生且通常係就發展出的症狀數目評估。這些症狀可包括發炎、發紅及膿腫。其亦可就發生率、期間及嚴重性評估。例如：低度”反應將涉及僅可藉由觸摸而非由目視偵測到之腫脹，或為短期間之反應。較嚴重之反應為，例如：可目視偵測或為長期間之反應。

“室溫”係指18至25℃之溫度。

“皂素”係指一群源自植物之表面活性糖苷，其係由與類固醇或三萜類構造之疏水區結合的親水區(通常為數個糖鏈)所組成。

“類固醇”係指易溶於有機溶劑而稍溶於水之屬於生化類別脂質的任何有機化合物群組。類固醇包含一個四-融合環系，此環系具有3個融合之環己烷(六碳)環加第4個環戊烷(五碳)環。

“固醇”係指動物體內藉由生物方式從萜類先質製造之化合物。其包含具有羥(OH)基團(通常附於碳-3上)之類固醇環構造。該脂肪酸取代基之烴鏈的長度不同，通常為16至20個碳原子且可為飽和或不飽和烴鏈。固醇在環構造中通常含有一或多個雙鍵以及多種不同之附於環的取代基。固醇及其脂肪酸酯類實質上不溶於水。

“個體”係指任何需要投服佐劑組成物之動物。其包括哺乳動物和非哺乳動物，包括靈長類、家畜、伴侶動物、實驗室試驗動物、獵獲之野生動物、烏類(包括卵)、爬蟲類和魚類。因此，此名詞包括，但不限於猴子、人、豬、牛、綿羊、山羊、馬、小鼠、大鼠、天竺鼠、倉鼠、兔子、貓、狗、雞、火雞、鴨、其他家禽、青蛙和蜥蜴。

“TCID₅₀ ”係指“組織培養感染劑量”且定義為感染50%之指定的經接種之細胞培養群時所需要的病毒稀釋量。可使用多種方法來計算TCID₅₀ ，包括本專利說明書全文中所使用之史丕曼-卡伯法(Spearman-Karber method)。史丕曼-卡伯法之描述見：B.w.Mahy & H.O.Kangro,Virology Methods Manual ,p. 25-46(1996)。

“治療上有效量”係指可在接受抗原或疫苗之個體內誘導能適當預防或減輕由於感染病原菌(諸如病毒或細菌)所引起之疾病的徵兆或症狀(包括不利之健康影響或其併發症)的免疫反應之抗原或疫苗量。體液免疫或由細胞傳介之免疫或體液與由細胞傳介之免疫二者均可被誘導。動物對疫苗之免疫反應可經由，如：測量抗體力價、淋巴球增殖分析來間接評估，或在以野生型菌株挑戰後經由監控徵兆或症狀來直接評估。該由疫苗提供之保護性免疫力可經由測量，如：臨床徵兆，諸如死亡率、發病率減少、溫度數值、個體之總體生理狀況及總體健康和效能來評估。疫苗之治療上有效量可根據所使用之特殊佐劑、所使用之特殊抗原或個體之狀況而有不同，且可由熟習本技藝之人士決定。

“治療(treating)”係指預防此名詞應用之病症、病況或疾病，或預防或減輕這類病症、病況或疾病之一或多種症狀。

“治療(treatment)”係指如上述定義之‘‘治療(treating)”的行為。

“三萜類”係指大量且多樣之自六個五-碳異戊二烯(2-甲基-1,3-丁二烯)單位衍生的天然有機分子，其可以上千種方法組合及修改。其大部分為多環形構造，彼此之差異在於官能基及其基本之碳骨架。這些分子可在所有存活物中找到。

“疫苗”係指包含如此處所定義之抗原的組成物。將疫苗投予個體可產生大致上係對抗一或多種特殊疾病之免疫反應。治療上有效之疫苗量可根據所使用之特殊抗原、或個體之狀況而有不同，且可由熟習本技藝之人士決定。

組成物之組成分

三萜類和CpGs

適合用於佐劑組成物之三萜類可來自多種來源(自植物衍生或合成之同等物)，包括，但不限於：皂樹、番茄素、人蔘萃取物、蘑菇及構造上類似於類固醇皂素之生物鹼糖苷。因此，適合用於佐劑組成物中之三萜類包括皂素、角鯊烯及羊毛固醇。適合用於佐劑組成物中之三萜類的量取決於所使用之三萜類的性質。然而，其使用量通常為每劑量約1微克至約5000微克。其使用量亦可為每劑量約1微克至約4000微克、每劑量約1微克至約3000微克、每劑量約1微克至約2000微克及每劑量約1微克至約1000微克。其使用量亦可為每劑量約5微克至約750微克、每劑量約5微克至約500微克、每劑量約5微克至約200微克、每劑量約5微克至約100微克、每劑量約15微克至約100微克及每劑量約30微克至約75微克。

若使用皂素，該佐劑組成物通常含有來自皂樹樹皮之免疫活性皂素餾分。該皂素可為，例如：Quil A或其他經純化或部分純化之皂素製品(其可從商品取得)。因此，皂素萃取物可以混合物或經純化之個別組成分(諸如QS-7、QS-17、QS-18及QS-21)的形式使用。於一較佳體系中，Quil A為至少85%純質。於其他較佳體系中，Quil A為至少90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、或99%純質。

CpG ODN為最近報告之一類藥物治療劑，其特徵為在特殊之鹼基-序列部分(CpG再現單位(motif))出現未甲基化之CG二核苷酸。(Hansel TT,Barnes PJ(eds)：New Drugs for Asthma,Allergy and COPD. Prog Respir Res. Basel,Karger,2001,vol 31,pp 229-232，該文獻併入本文作為參考)。這些CpG再現單位不存在於真核DNA(其中CG二核苷酸受遏制，且當存在時通常係經甲基化)中，但存在於其可賦予免疫刺激性質之細菌DNA中。這些免疫刺激性質包括誘導Th1型反應並大量釋出IFN-A、IL-12及IL-18。CpG ODN(長度為18-24bp)擁有類似於細菌DNA之免疫調節性質。該細胞表面蛋白質可提取這些分子而具有不同結果。然而，藉由載體，諸如QCDC、QCDCR及其他本專利中所列舉之組合可顯著增強該免疫調節性質及CpG之提取。

適合用於佐劑組成物中之CpG的量係取決於所使用之CpG及所欲物種的性質。然而，其使用量通常為每劑量約1微克至約20毫克。其使用量亦可為每劑量約1微克至約10毫克、每劑量約1微克至約5毫克、每劑量約1微克至約4毫克、每劑量約1微克至約3毫克、每劑量約1微克至約2毫克及每劑量約1微克至約1毫克。其使用量亦可為每劑量約5微克至約750微克、每劑量約5微克至約500微克、每劑量約5微克至約200微克、每劑量約5微克至約100微克、每劑量約10微克至約100微克、每劑量約15微克至約100微克及每劑量約30微克至約75微克。

固醇類

適合用於佐劑組成物之固醇包括β-谷固醇、豆固醇、麥角固醇、鈣化醇及膽固醇。這些固醇為本技藝所熟知且可自市場上購得。例如：膽固醇揭示於Merck Index,12th Ed.,p. 369中。適合用於佐劑組成物中之固醇的量取決於所使用之固醇的性質。然而，其使用量通常為每劑量約1微克至約5000微克。其使用量亦可為每劑量約1微克至約4000微克、每劑量約1微克至約3000微克、每劑量約1微克至約2000微克及每劑量約1微克至約1000微克。其使用量亦可為每劑量約5微克至約750微克、每劑量約5微克至約500微克、每劑量約5微克至約200微克、每劑量約5微克至約100微克、每劑量約15微克至約100微克及每劑量約30微克至約75微克。

免疫調節劑

佐劑組成物可進一步包括一或多種免疫調節劑，諸如季銨化合物(如：DDA)及介白素、干擾素或其他細胞活素。這些物質可自市場購得。適合用於佐劑組成物中之免疫調節劑的量係取決於所使用之免疫調節劑的性質及個體。然而，其使用量通常為每劑量約1微克至約5000微克。其使用量亦可為每劑量約1微克至約4000微克、每劑量約1微克至約3000微克、每劑量約1微克至約2000微克及每劑量約1微克至約1000微克。其使用量亦可為每劑量約5微克至約750微克、每劑量約5微克至約500微克、每劑量約5微克至約200微克、每劑量約5微克至約100微克、每劑量約15微克至約100微克及每劑量約30微克至約75微克。在一特殊實例方面，含DDA之佐劑組成物可經由單純將抗原溶液與新鮮製備之DDA溶液混合來製備。

聚合物

佐劑組成物可進一步包括一或多種聚合物，諸如，例如：DEAE葡聚醣、聚乙二醇和聚丙烯酸，以及聚甲基丙烯酸(如：卡波姆)。這類物質可自市場購得。適合用於佐劑組成物中之聚合物的量取決於所使用之聚合物的性質。然而，其使用量通常為約0.0001%體積/體積(v/v)至約75%v/v。於其他較佳體系中，其使用量為約0.001% v/v至約50%v/v、約0.005% v/v至約25%v/v、約0.01% v/v至約10%v/v、約0.05% v/v至約2%v/v及約0.1% v/v至約0.75%v/v。於另一較佳體系中，其使用量為約0.02%v/v至約0.4%v/v。DEAE-葡聚醣之分子大小可在50,000Da至5,000,000Da之範圍內，或者，其可在500,000Da至2,000,000Da之範圍內。這些物質可自市場購得或可從葡聚醣製得。

另一特殊實例為聚丙烯酸(如：卡波姆聚合物)，其平均當量為76。其係從平均直徑約0.2至6.0微米之初始聚合物顆粒製得。卡波姆聚合物在水中至多可膨脹成其原始體積之1000倍及其原始直徑之10倍，以在暴露於pH環境高於羧酸化物基團之pKa時形成凝膠。在較羧酸化物基團之pKa為高的pH下，該羧酸化物基團離子化，而造成二個負電荷基團間之排斥，此使聚合物之膨脹增加。

Th2刺激劑

佐劑組成物可進一步包括.一或多種Th2刺激劑，諸如，例如：Bay R1005及鋁。適合用於佐劑組成物中之Th2刺激劑的量取決於所使用之Th2刺激劑的性質。然而，其使用量通常為每劑量約0.01毫克至約10毫克。於另外較佳體系中，其使用量為每劑量約0.05毫克至約7.5毫克、每劑量約0.1毫克至約5毫克、每劑量約0.5毫克至約2.5毫克及每劑量約1毫克至約2毫克。一種特殊實例為Bay R1005，此係一種化學名稱為“醋酸N-(2-去氧基-2-L-白胺醯胺基-β-D-吡喃葡糖基)-N-十八烷基十二碳醯胺”之糖脂。其可根據Lockhoff,0.(Angew .Chem .Int .Ed .Engl . 30:1611-1620；1991)中所找到之程序合成。其係經建議貯存在2-8℃之密封罐中。其化學或物理性質為稍微吸濕，不會形成多形體，在溫度至高50℃之空氣和光下，以及周圍溫度之pH 2-12的水性溶劑中為化學上穩定。其為在水溶液中形成膠質粒子的兩性分子。

抗原和疾病

佐劑組成物可含有一或多種抗原。該抗原可為能在個體中產生所欲之免疫反應的多種物質的任一者。雖然單獨之Quil A為殺病毒性，Quil A加上膽固醇在形成螺旋形膠質粒子時可解除Quil A之毒性(見，美國專利第7,122,191號)。現已發現，此處所描述之佐劑組成物為非-殺病毒性、非溶血性或溶膜性。因此，與這些佐劑組成物一起使用之抗原可為個別之一或多種病毒(去活化、減毒及改質之活病毒)、細菌、寄生蟲、核苷酸、多核苷酸、肽、多肽、重組蛋白質、合成之肽、蛋白質萃取物、細胞(包括腫瘤細胞)、組織、多醣、碳水化合物、脂肪酸、磷壁酸質(teichioc acid)、肽聚糖、脂質、或糖脂或彼等之任何組合。

與本發明之佐劑一起使用之抗原亦包括核苷酸、多核苷酸、肽、多肽之致免疫片段，其可從此文中所提及之有機體中分離出。

不會在個體中引起疾病之存活病毒、經改質之存活病毒及減毒之病毒株已以非毒性形式分離出或已利用本技藝所熟知之方法(包括在合適之細胞株中進行系列傳代或暴露於紫外線或化學致突變劑)減毒。去活化或被殺死之病毒株為那些已藉本技藝之技術熟習人士已知的方法(包括以福馬林、β丙內酯(BPL)、二乙烯亞胺(BEI)、滅菌放射線、加熱或其他這類方法處理)去活化者。

可將二或多種抗原組合在一起以製造可保護個體對抗由病原體引起之多種疾病的多價組成物。目前，疫苗之商品製造者以及終端使用者較偏好多價疫苗產品。雖然習知佐劑通常受限於可與其一起有效使用之不同抗原(單價或多價)，此處所描述之佐劑可有效用於廣泛之抗原(單價及多價二者)中。因此，此處所描述之抗原可合併在包含此處所描述之佐劑的單一組成物中。

一些可作為抗原與佐劑組成物一起使用之細菌的實例包括，但不限於：醋酸鈣不動桿菌(Aceinetobacter calcoaceticus )、巴斯魯安那醋酸桿菌(Acetobacter paseruianus )、胸膜肺炎放線桿菌(Actinobacillus pleuropneumoniae )、嗜水氣單胞菌(Aeromonas hydrophila )、脂環酸桿菌(Alicyclobacillus acidocaldarius )、閃爍古球菌(Arhaeglobus fulgidus )、短小芽孢桿菌(Bacillus pumilus )、嗜熱脂肪芽孢捍菌(Bacillus stearothermophillus )、枯草芽孢桿菌(Bacillus subtilis )、熱鏈形芽孢桿菌(Bacillus thermocatenulatus )、支氣管敗血波氏桿菌(Bordetella bronchiseptica )、洋蔥伯克霍爾德菌(Burkholderia cepacia )、穀伯克霍爾德菌(Burkholderia glumae )、大腸彎曲菌(Campylobacter coli )、胎兒彎曲菌(Campylobacter fetus )、空腸彎曲菌(Campylobacter jejuni )、豬腸彎曲桿菌(Campylobacter hyointestinalis )、鸚鵡熱衣原體(Chlamydia psittaci )、沙眼衣原體(Chlamydia trachomatis )、衣原體屬(Chlamydophila spp. )、黏性染色菌(Chromobacterium viscosum) 、豬紅斑丹毒絲菌(Erysipelothrix rhusiopathieae )、單核球增多性李斯特菌(Listeria monocytogenes )、犬埃立克體(Ehrlichia canis )、大腸桿菌(Escherichia coli )、流感嗜血桿菌(Haemophilus influenzae )、睡眠嗜血菌(Haemophilus somnus )、豬螺桿菌(Helicobacter suis )、細胞內勞森菌(Lawsonia intracellularis )、嗜肺軍團菌(Legionella pneumophilia )、莫氏桿菌屬(Moraxellsa sp. )、牛分枝桿菌(Mycobactrium bovis )、豬肺炎黴漿菌(Mycoplasma hyopneumoniae )、絲狀黴漿菌亞種(Mycoplasma mycoides subsp. )、LC絲狀菌(Mycoides LC )、產氣莢膜梭菌(Clostridium perfringens )、犬牙周臭味菌(Odoribacter denticanis )、溶血巴氏桿菌(Pasteurella (Mannheimia )haemolytica )、多殺巴氏桿菌(Pasteurella multocida )、發光光桿菌(Photorhabdus luminescens )、喉管卟啉單胞菌(Porphyromonas gulae )、牙齦卟啉單胞菌(Porphyromonas gingivalis )、唾液卟啉單胞菌(Porphyromonas salivosa )、痤瘡丙酸桿菌(Propionibacterium acnes )、普通變形桿菌(Proteus vulgaris )、威斯康辛綠膿桿菌(Pseudomonas wisconsinensis )、綠膿桿菌、螢光假單胞菌C9(Pseudomonas fluorescens C9 )、螢光假單胞菌SIKW1(Pseudomonas fluorescens SIKW1 )、莓實假單胞菌(Pseudomonas fragi )、淺黃假單胞菌(Pseudomonas luteola )、食油假單胞菌(Pseudomonas oleovorans )、假單孢菌B11-1(Pseudomonas sp B11-1 )、富養產鹼菌(Alcaliges eutrophus )、不動嗜冷單胞菌(Psychrobacter immobilis )、普氏立克次體(Rickettsia prowazekii )、立克次氏立克次體(Rickettsia rickettsia )、鼠傷寒沙門氏菌(Salmonella typhimurium )、邦哥利沙門氏菌(Salmonella bongiri )、腸沙門氏菌(Salmonella enterica )、都柏林沙門氏菌(Salmonella dublin )、鼠傷寒沙門氏菌、霍亂沙門氏菌(Salmonella choleraseuis )、紐波特沙門氏菌(Salmonella newport )、黏質沙雷氏菌(Serratia marcescens )、鈍頂螺旋藻(Spirlina platensis )、金黃色葡萄球菌、表皮葡萄球菌、豬葡萄球菌(Staphylococcus hyicus )、白色鏈黴菌(Streptomyces albus )、肉桂鏈黴菌(Streptomyces cinnamoneus )、豬鏈球菌(Streptococcus suis )、除角質鏈黴菌(Streptomyces exfoliates )、疥瘡鏈黴菌(Streptomyces scabies )、嗜酸熱硫化葉菌(Sulfolobus acidocaldarius )、集胞藻屬(Syechocystis sp. )、霍亂弧菌、伯氏舒螺旋菌(Borrelia burgdorferi )、齒密螺旋菌(Treponema denticola )、小密螺旋菌(Treponema minutum )、噬齒密螺旋菌(Treponema phagedenis )、屈曲密螺旋菌(Treponema refringens )、文氏密螺旋菌(Treponema vincentii )、鈀密螺旋體(Treponema palladium )及鉤端螺旋體種(Leptospira species )，諸如已知之病原體犬鉤端螺旋體(Leptospira canicola )、感冒傷寒型鉤端螺旋體(Leptospira grippotyposa )、哈佐鉤端螺旋體(Leptospira hardjo )、博氏哈佐牛鉤端螺旋體(Leptospira borgpetersenii hardjo-bovis )、博氏哈佐普拉伊特諾鉤端螺旋體(Leptospira borgpetersenii hardjo-prajitno )、問號鉤端螺旋體(Leptospira interrogans )、黃疸出血鉤端螺旋體(Leptospira icterohaemorrhagiae )、波莫納鉤端螺旋體(Leptospira pomona )和布拉迪斯拉發鉤端螺旋體(Leptospira bratislava )，以及彼等之組合。

去活化之病毒及減毒之活病毒可用於佐劑組成物中。一些可作為抗原之病毒實例包括，但不限於：烏疱疹病毒、牛疱疹病毒、犬疱疹病毒、馬疱疹病毒、貓病毒性鼻氣管炎病毒、馬立克氏病病毒、綿羊皰疹病毒、豬皰疹病毒、偽狂犬病病毒、鳥副黏病毒、牛呼吸道融合細胞病毒、犬瘟熱病毒、犬副流感病毒、犬腺病毒、犬細小病毒、牛副流感病毒3、綿羊副流感病毒3、牛瘟病毒、邊界病病毒、牛病毒性腹瀉病毒(BVDV)、第Ⅰ型BVDV、第Ⅱ型BVDV、古典豬瘟病毒、鳥白血病病毒、牛免疫缺乏病毒、牛白血病病毒、牛結核病病毒、豬感染性貧血病毒、貓免疫缺乏病毒、貓白血病病毒(FeLV)、新城疫病毒、綿羊進行性肺炎病毒、綿羊肺腺癌病毒、犬冠狀病毒(CCV)、泛熱帶CCV、犬呼吸道冠狀病毒、牛冠狀病毒、貓杯狀病毒、貓腸冠狀病毒、貓感染性腹膜炎病毒、豬流行性腹瀉病毒、豬凝血性腦骨髓炎病毒、豬細小病毒、第I型豬環病毒(PCV)、第Ⅱ型PCV、豬生殖及呼吸症候群(PRRS)病毒、傳染性胃腸炎病毒、火雞冠狀病毒、牛流行熱病毒、狂犬病輪狀病毒、水泡性口炎病毒、慢病毒、鳥流感病毒、鼻病毒、馬流感病毒、豬流感病毒、犬流感病毒、貓流感病毒、人流感病毒、東方馬腦炎病毒(EEE)、委內瑞拉馬腦炎病毒、西尼羅河病毒、西方馬腦炎病毒、人免疫缺乏病毒、人乳頭狀瘤病毒、水痘帶狀皰疹病毒、B型肝炎病毒、鼻病毒和麻疹病毒、以及彼等之組合。

肽抗原之實例包括支氣管敗血波氏桿菌p68、GnRH、IgE肽、Fel d1和癌症抗原，以及彼等之組合。其他抗原實例包括核苷酸、碳水化合物、脂質、糖脂、肽、脂肪酸、磷壁酸質和肽聚糖，以及彼等之組合。

一些可作為抗原與佐劑組成物一起使用的寄生蟲實例包括，但不限於邊蟲(Anaplasma)、肝片吸蟲(Fasciola hepatica)(肝吸蟲)、球蟲、艾美耳(Eimeria)屬、犬新孢子蟲(Neospora caninum)、弓漿蟲、賈第蟲(Giardia)、犬惡絲蟲(Dirofilaria)(心絲蟲)、鉤蟲(Ancylostoma)(鉤蟲)、弓漿蟲屬、利甚曼蟲屬、滴蟲屬、隱孢子蟲、巴貝斯蟲、血吸蟲、絛蟲、線蟲、蛔蟲、旋毛蟲、住肉孢子蟲、哈蒙德蟲(Hammondia)和等孢子球蟲(Isopsora)，以及彼等之組合。亦考慮使用的有外寄生蟲，包括，但不限於：蜱，包括硬蜱屬(Ixodes)、扇頭蜱屬(Rhipicephalus)、安氏革蜱屬(Dermacentor)、花蜱屬(Amblyomma)、牛蜱屬(Boophilus)、眼蜱屬(Hyalomma)、血蜱屬(Haemaphysalis)，以及彼等之組合。

用於誘導免疫反應之抗原量根據所使用之抗原性質、個體及所需之反應程度將有相當大之變化且可由熟習本技藝之人士測定。在含經改質之活病毒或減毒病毒之疫苗方面，抗原之治療上有效量通常係在約10² 組織培養感染劑量(TCID)₅₀ 至約10¹⁰ TCID₅₀ (含)之範圍內。對許多這類病毒而言，治療上有效之劑量通常係在約10² TCID₅₀ 至約10⁸ TCID₅₀ (含)之範圍內。於一些較佳體系中，治療上有效之劑量通常係在約10³ TCID₅₀ 至約10⁶ TCID₅₀ (含)之範圍內。於一些其他較佳體系中，治療上有效之劑量係在約10⁴ TCID₅₀ 至約10⁵ TCID₅₀ (含)之範圍內。

就含有去活化之病毒而言，抗原之治療上有效量通常為每劑量至少約100個相對單位，通常係在每劑量約1,000至約4,500個相對單位之範圍內。於其他較佳體系中，抗原之治療上有效量為每劑量約250至約4,000個相對單位(含)、每劑量約500至約3,000個相對單位(含)、每劑量約750至約2,000個相對單位(含)，或每劑量約1,000至約1,500個相對單位(含)。

含去活化之病毒的疫苗中之治療上有效量的抗原亦可以每毫升之相對效力(RP)測量。治療上有效量通常係在每毫升約0.1至約50PR(含)之範圍內。於其他較佳體系中，抗原之治療上有效量為每毫升約0.5至約30PR(含)、每毫升約1至約25PR(含)、每毫升約2至約20PR(含)、每毫升約3至約15PR(含)，或每毫升約5至約10PR(含)。

於一較佳體系中，從持續受KT-FeLV-UCD-1貓白血病病毒株感染之FL74-UCD-1細胞株(ATCC編號CRL-8012)中製造FeLV抗原。疫苗中之FeLV抗原量係以每毫升之gp70病毒蛋白質量來測量。當藉由每毫升之gp70病毒蛋白質量來測量時，FeLV抗原之治療上有效量通常係在約100至約350,000奈克/毫升(含)之範圍內。於另一較佳體系中，該範圍係從約1,000至約300,000奈克/毫升(含)。或係從約2,500至約250,000奈克/毫升(含)、或從約4,000至約220,000奈克/毫升(含)、或從約5,000至約150,000奈克/毫升(含)、或從約10,000至約100,000奈克/毫升(含)。

在疫苗中投予之細菌抗原的細胞數為每劑量約1×10⁶ 至約5×10¹⁰ 菌落形成單位(CFU)(含)。於其他較佳體系中，該細胞數為約1×10⁷ 至約5×10¹⁰ CFU/劑量(含)、或約1×10⁸ 至約5×10¹⁰ CFU/劑量(含)。再於另一較佳體系中，該細胞數為約1×10² 至約5×10¹⁰ CFU/劑量(含)、或約1×10⁴ 至約5×10⁹ CFU/劑量(含)、或約1×10⁵ 至約5×10⁹ CFU/劑量(含)、或約1×10⁶ 至約5×10⁹ CFU/劑量(含)、或約1×10⁶ 至約5×10⁸ CFU/劑量(含)、或約1×10⁷ 至約5×10⁹ CFU/劑量(含)。

在疫苗中投予之寄生蟲抗原的細胞數為每劑量約1×10² 至約1×10¹⁰ (含)。於其他較佳體系中，該細胞數為約1×10³ 至約1×10⁹ (含)、或約1×10⁴ 至約1×10⁸ (含)、或約1×10⁵ 至約1×10⁷ (含)、或約1×10⁶ 至約1×10⁸ (含)。

本技藝中熟知使用習知佐劑時需要使用實質上較多量之去活化病毒來刺激出與使用較少量之經改質的活病毒或減毒病毒時相當的血清反應。然而，令人驚訝地，現在發現藉由此處所描述之佐劑組成物可刺激出與約相同量之去活化病毒和經改質之活病毒類似程度之血清反應。此外，當與習知佐劑相比較時，使用此處所描述之佐劑時，欲取得相同程度之血清反應所需的經改質活病毒、減毒病毒及去活化之病毒量較少。這些出人意料之發現證明可在製備致免疫組成物和疫苗組成物期間保留來源及降低花費。在具有廣泛用途之疫苗方面，每年需要製造數百萬個劑量，因此這些節約是重要的。

賦形劑

水性佐劑提供某些優點。其大致上容易配製及投服且可誘導很少或較少之嚴重注射部位反應。然而，帶有抗原的水性佐劑傾向從注射部位擴散，由個體之肝臟清除並產生不欲之非特異性免疫反應。令人驚訝地，現已發現此處所描述之水性佐劑組成物可保持在注射部位直到被生物代謝(此係在很長之期間內發生)，並提供經瞄準之免疫反應。

當以佐劑之組成分型式加入時，油通常提供長且緩慢之釋出變化形廓。本發明中，該油為可代謝或不可代謝者。該油可為水包油、油包水或水包油包水乳劑。

適合用於本發明之油包括烷、烯、炔及其對應之酸及醇類，和彼等之醚及酯類，以及彼等之混合物。該油之個別化合物為輕烴化合物，即，這類組成分具有6至30個碳原子。該油可經合成製備或從石油產物純化。此部分可具有直鏈或支鏈構造。其可為完全飽和或具有一或多個雙鍵或參鍵。可用於本發明之一些不可代謝的油類包括，例如：礦物油、石蠟油及環烷烴。

油一詞亦欲包括“輕礦物油”，即：以類似方法經由蒸餾石油取得，但其比重較白礦物油稍低之油。

可代謝之油類包括可代謝、非毒性油類。該油可為任何可被投服佐劑之個體的身體代謝且對個體無毒性之蔬菜油、魚油、動物油或經合成製備之油。蔬菜油之來源包括乾果類、種籽及穀粒。

本發明提供之水包油乳劑係由愛菲金(AMPHIGEN)調製劑所組成。此調製劑包含水性組成分、卵磷脂、礦物油及界面活性劑。描述該調製劑之組成分的專利包括美國專利第5,084,269和6,572,861號。

通常，本發明之油組成分的存在量為1%至50%(以體積計)；或為10%至45%；或為20%至40%。

該組成物之其他組成分可包括藥學上可接受之賦形劑，諸如載體、溶劑和稀釋劑、等張劑、緩衝劑、安定劑、防腐劑、血管收縮劑、抗細菌劑、抗真菌劑等。典型之載體、溶劑和稀釋劑包括水、生理食鹽水、右旋糖、乙醇、甘油等。代表性之等張劑包括氯化鈉、右旋糖、甘露醇、山梨醇、乳糖等。有用的安定劑包括明膠、白蛋白等。

界面活性劑係用於協助穩定經選擇作為佐劑和抗原之載體的乳劑。適合用於本發明之界面活性劑包括天然之生物相容的界面活性劑和非天然之合成的界面活性劑。生物上相容的界面活性劑包括磷脂化合物或磷脂之混合物。較佳之磷脂為磷脂醯膽鹼(卵磷脂)，諸如大豆或卵之卵磷脂。經由水洗粗製蔬菜油，再將所產生之水合膠分開及乾燥可取得為磷脂與三酸甘油酯之混合物型式的卵磷脂。經由丙酮清洗移除三酸甘油酯和蔬菜油後，將剩餘之丙酮不溶性磷脂與甘油脂的混合物分餾可取得精製之產物。或者，可從不同之商品來源取得卵磷脂。其他合適之磷脂包括磷脂醯甘油、磷脂醯肌醇、磷脂醯絲胺酸、磷脂酸、心磷脂及磷脂醯乙醇胺。該磷脂可從天然來源分離出或以傳統方式合成。

適合用於本發明之非天然的合成界面活性劑包括以山梨醇酐為底質之非離子性界面活性劑，如：經脂肪酸取代之山梨醇酐界面活性劑(市售產品之商品名為SPAN或ARLACEL)、聚乙氧基化山梨醇之脂肪酸酯類(TWEEN)、來自諸如蓖麻油之來源的脂肪酸之聚乙二醇酯類(EMULFOR)、聚乙氧基化之脂肪酸(如：可自商品名為SIMULSOL M-53之產品取得的硬脂酸)、聚乙氧基化之異辛酚/甲醛聚合物(TYLOXAPOL)、聚氧乙烯脂肪醇醚類(BRIJ)、聚氧乙烯壬苯基醚類(TRITONN)、聚氧乙烯異辛苯基醚類(TRITONX)。

一般而言，若使用二或多種界面活性劑時，界面活性劑或界面活性劑之組合在乳劑中之存在量為0.01%至10%(以體積計)，宜為0.1%至6.0%，更宜為為0.2%至5.0%。

此處所使用之“藥學上可接受之載體”包括任何及所有溶劑、分散介質、塗覆層、佐劑、安定劑、稀釋劑、防腐劑、抗細菌劑及抗真菌劑、等張劑、吸收延遲劑等。該“載體”在可與組成物之其他組成分相容且對個體無害方面必須為“可接受的”。通常，該載體為無菌且不含病原體，且係根據欲使用之投服模式選擇。熟習本技藝之人士熟知包含該組成物之藥學上可接受之載體的較佳調製劑為那些美國(US)農業部或美國食品藥物管理局或在非美國國家中之同等政府機構所發佈之適用規則所核准之載體。因此，用於該組成物之商品中的藥學上可接受之載體為已被美國或外國之適當政府機構核准或將核准者。

該組成物可選擇性地包含作為藥學載劑、賦形劑或介質之相容的藥學上可接受(即，無菌或非毒性)之液體、半固體或固體稀釋劑。稀釋劑可包括水、生理食鹽水、右旋糖、乙醇、甘油等。等張劑可包括氯化鈉、右旋糖、甘露醇、山梨醇及乳糖等。安定劑包括白蛋白等。

該組成物亦可含有抗生素或防腐劑，包括，例如：正大黴素、硫柳汞、或氯化甲酚。熟習本技藝之人士熟知可選擇之不同類別的抗生素或防腐劑。

組成物之製備方法

佐劑調製劑之製備方法

ISCOM可藉由組合皂素、固醇及磷脂來製備。例如：ISCOM可含有5%至10%(以重量計)之Quil A、1%至5%之膽固醇和磷脂，以及剩餘部分之蛋白質。佐劑調製劑中之皂素對固醇的比例通常為1：100(重量對重量)(w/w)至5：1(w/w)。於一些較佳體系中係存在過量之固醇，其中該皂素對固醇之比例為至少1：2(w/w)，或1：5(w/w)。於其他較佳體系中，該皂素相對於固醇而言為過量，且所使用之皂素對固醇之比例為約5：1(w/w)。ISCOM及ISCOMATRIX可自Isconova AB(瑞典)購得。

於一些較佳體系中，卡波姆係與DDA一起使用，其使用量為每重量份之DDA至少使用0.1重量份之卡波姆。於其他較佳體系中，每重量份之DDA至少使用0.5重量份之卡波姆。再於其他較佳體系中，每重量份之DDA至少使用1重量份之卡波姆。卡波姆與DDA組合可形成複合物，藉此，DDA三級胺官能基將使聚合物上之羧酸側基團免疫官能化。此可令特定之免疫細胞同時瞄準抗原及佐劑，且在理想之時間和濃度下將抗原及佐劑共同投遞至該等細胞。

此處所描述之佐劑通常不需要任何特殊載體且將調製在水性或藥學上可接受之緩衝劑中。於某些情況中，所揭示之較佳體系的疫苗將存於合適之載劑中，諸如，例如：另外之脂質體、微球或經包囊之抗原粒。該抗原可包含在囊泡膜中或包含在囊泡膜外。一般而言，可溶性抗原係在囊泡膜外，疏水性或脂化之抗原係包含在囊泡膜內或外。

根據投服途徑、貯存需要等可將佐劑組成物製成多種不同之形式。例如：其可製成適合注射用之無菌水溶液或分散液形式，或利用凍乾、真空乾燥或噴霧乾燥技術製成凍乾形式。凍乾之組成物可在使用前於安定化溶液中重構成，如：生理食鹽水或HEPES。因此，佐劑組成物可以固體、半固體或液體劑型使用。

佐劑可利用本技藝已知之技術製備。例如：可將皂素與膽固醇在合適之清潔劑中混合，再藉由溶劑萃取技術形成脂質體或ISCOM。亦可將皂素與膽固醇組合以形成如美國專利案第7,122,191號中所描述之螺旋形微膠粒。

磷酸鹽緩衝液(PBS)可作為水性緩衝介質；該緩衝劑之pH值可為中性或微鹼性或微酸性。因此，pH值可在pH6至8之範圍內。pH值一般為約7.0至約7.3。緩衝劑之強度可介於10至50mM PO₄ 及10至150mM PO₄ 。於一實例中係使用0.063% PBS。pH值可依需要利用NaOH或HCl調整。典型之濃度包括1N至10N HCl及1N至10N之NaOH。

所使用之佐劑量係取決於所使用之抗原及欲施用之抗原劑量。其亦取決於所欲物種及所需之調製劑。通常，佐劑之量係在傳統之佐劑用量的範圍內。例如：在1毫升劑量中，佐劑通常包含約1微克至約1000微克(含)。類似地，在1毫升劑量中，抗生素通常包含約1微克至約60微克(含)。

可將佐劑調製劑均質化或微射流均質化。將調製劑進行初級混和步驟，此通常係將調製劑通過一或多個均化器一或多次。任何可購得之均化器均可用於此目的中，如：Ross乳化器(Hauppauge，紐約)、Gaulin均化器(Everett，麻州)或Microfluidics(Newton，麻州)。於一較佳體系中，將調製劑在10,000rpm均化3分鐘。藉由使用市售之微射流機(諸如自Microfluidics(Newton，麻州)取得之型號110Y；Gaulin 30CD型(Gaulin公司，Everett，麻州)；及Rainnie Minilab 8.30H型(Miro Atomizer Food and Dairy公司，Hudson，威斯康辛州))可達到微射流均質化。這些微射流均質機之運作係在高壓下將流體用力推過小孔隙，從而使二種流體流於交互作用室中以高速交互作用，來形成具有次微米大之液滴的組成物。於一較佳體系中係將調製劑在10,000+/-500psi下通過200微米之限制尺寸室來將其微射流均質化。

此處所描述之佐劑組成物可同時均質化及微射流均質化。於一較佳體系中係將抗原加入合適之緩衝劑中。攪拌溶液並將皂素慢慢加入抗原溶液中。然後，將固醇慢慢加入抗原/皂素溶液中，再將季銨化合物慢慢加入抗原/皂素/固醇溶液中。將所產生之組成物均質化，再微射流均質化。微射流均質化後，將聚合物加入微射流均質化組成物中。根據所使用之組成分可改變這些步驟之次序，以將組成物之製備過程最優化。

致免疫組成物和疫苗組成物之製備方法

此處所描述之佐劑組成物可用於製備致免疫組成物和疫苗組成物。在疫苗或致免疫組成物方面，各劑量含有治療上有效量之抗原，此量根據個體之年齡和一般狀況、投服途徑、抗原性質及其他因素而有所變化。疫苗或致免疫組成物中之其他組成分的量和濃度可經調整以修改組成物之物理及化學性質，且可由熟習本技藝之人士輕易測出。佐劑組成物之有利性質為其可完全根據該組成物之所需特徵來構建。例如：若需要較強之Th1反應則可增加Th1刺激劑之量。同樣地，若需要較強之Th2反應則可增加Th2刺激劑之量。亦可取得平衡之Th1/Th2反應。致免疫組成物和疫苗組成物亦可依上述方法均質化或微射流均質化。

組成物之投服和用途

組成物之投服

根據個體及抗原，組成物之劑量大小通常係在約1毫升至約5毫升(含)之範圍內。例如：在犬或貓方面通常係使用約1毫升之劑量，而在牛方面通常係使用約2至5毫升。然而，這些佐劑亦可配製成微小劑量，其中可使用約100微升之劑量。

佐劑組成物之投服途徑包括腸胃道外、口、口鼻、鼻內、氣管內、局部及卵等途徑。任何合適之裝置均可用來投服組成物，包括注射筒、滴管、無針注射裝置、貼布等。選擇使用之途徑及裝置係取決於該佐劑組成物、抗原及個體，這些為熟習本技藝之人士所熟知者。

組成物之用途

製備任何商業用途之疫苗佐劑的需要條件之一為建立佐劑溶液的穩定性以供長期貯存。本文中提供容易製造且可保持穩定至少18個月之佐劑調製劑。於一較佳體系中，該調製劑可保持穩定約18個月。於另一較佳體系中，該調製劑可保持穩定約18至約24個月。於另一較佳體系中，該調製劑可保持穩定約24個月。加速試驗程序亦指出此處所描述之調製劑穩定。

本佐劑組成物之有利特性為其可安全且有效地投予很多種個體。本技藝中預期佐劑之組合將顯示出較個別組成分更強之反應原性。然而，當與其中係使用任何一或二種組成分的組成物相比較時，此處所描述之組成物顯示出降低之反應原性，而仍保持佐劑之效果。令人驚訝地，現亦發現當與其他佐劑組成物相比較時，此處所描述之佐劑組成物顯示出安全性改善。

此處所描述之佐劑組成物可用於在個體內產生所需之免疫反應。其在多種物種中均有效。任何需要投服佐劑組成物之動物均為合適之個體。其包括哺乳動物及非哺乳動物，包括靈長類、家畜、伴侶動物、實驗室試驗動物、圈養野生動物、鳥類(包括卵)、爬蟲類及魚。因此，此名詞包括，但不限於：猴子、人、豬；牛、綿羊、山羊、馬、小鼠、大鼠、天竺鼠、倉鼠、兔子、貓、狗、雞、火雞、鴨、其他家禽、青蛙和蜥蜴。

此處所描述之佐劑可用於顯示受感染與經接種疫苗之動物間的血清區別。因此，其可用於標記疫苗(其中在該疫苗中之抗原可在接種經疫苗之動物中引出與野生型病毒不同之抗體樣式)中。標記疫苗通常係與伴隨診斷試驗(其測量抗體樣式中之差異並證明何種動物係接受疫苗接種，何種動物係被野生型病毒感染)一起使用。這類技術可用於控制及消滅來自個體族群之病毒。

下列實例係作為例證之較佳體系，但不應被用來限制本發明之範圍。熟習本技藝之人士可清楚明白本發明之許多改變、變化、修改及其他用途及應用。

實例1. Quil A/膽固醇(QC)溶液

將Quil A(Superfos)溶解在水中，製備50毫克/毫升之儲備溶液。將膽固醇(Fabri化學公司)溶解在乙醇中，製備18毫克/毫升之儲備溶液。然後，利用0.2微米過濾器過濾膽固醇儲備溶液。

不同調製劑中之Quil A和膽固醇的濃度可從Quil A對膽固醇1/1(微克/毫升)至1000/1000(微克/毫升)。為了製備50/50(微克/毫升)之Quil A/膽固醇儲備溶液，以水將Quil A儲備溶液之濃度稀釋成50微克/毫升。一邊攪拌此溶液，一邊將膽固醇儲備溶液慢慢加入其中，使最終濃度為50微克/毫升。

實例2. DDA(D)溶液

將二甲基雙十八烷基溴化銨(DDA；Fluka Analytical)溶解在乙醇中，製備18毫克/毫升之儲備溶液。利用0.2微米過濾器過濾DDA儲備溶液。

實例3. Quil A/膽固醇/DDA(QCD)溶液

依實例1製備具所需濃度之Quil A/膽固醇儲備溶液。依實例2製備DDA儲備溶液並將其慢慢加入Quil A/膽固醇儲備溶液中。將溶液加以混合以取得所需之最終濃度。依需要以NaOH或HCl調整該溶液之pH值以取得所需之最終pH(通常係在約6.9至約7.5之範圍內)。

實例4.卡波姆(C)溶液

將卡波姆(Noveon，墨西哥)溶解在去離子水中，製備1.5%之儲備溶液。於另一較佳體系中，將卡波姆溶解在去離子水中，製備0.75%之儲備溶液。

實例5. DDA/卡波姆(DC)溶液

依實例2製備DDA儲備溶液。依實例4製備0.75%卡波姆儲備溶液。將溶液加以混合以取得所需之最終濃度。

實例6. Quil A/膽固醇/DDA/卡波姆(QCDC)溶液

依實例3製備Quil A/膽固醇/DDA儲備溶液。依實例4製備0.75%卡波姆儲備溶液。將卡波姆儲備溶液慢慢加入Quil A/膽固醇/DDA儲備溶液中，以取得所需之最終濃度。以NaOH或HCl調整該溶液之pH值以取得所需之最終pH(通常係在約6.9至約7.5之範圍內)。

實例7. Bay R1005(R)溶液

為了製備Bay R1005儲備溶液，將糖脂N-(2-去氧基-2-L-白胺醯胺基-β-D-吡喃葡糖基)-N-十八烷基十二碳醯胺溶解在乙醇(60%，體積/體積)中。然後，加入吐溫20及冰醋酸。於一實例中，將3.49gm的N-(2-去氧基-2-L-白胺醯胺基-β-D-吡喃葡糖基)-N-十八烷基十二碳醯胺溶解在44.64毫升之乙醇/水(60%，體積/體積)中。將此溶液與1.12毫升吐溫20及0.68毫升冰醋酸合併。

實例8. Quil A/膽固醇/DDA/卡波姆/Bay R1005(QCDCR)溶液

依實例6製備Quil A/膽固醇/DDA/卡波姆儲備溶液。依實例7製備Bay R1005儲備溶液。將Bay R1005溶液慢慢加入Quil A/膽固醇/DDA/卡波姆溶液中，以取得所需之最終濃度。依需要，以NaOH或HCl調整該溶液之pH值以取得所需之最終pH(通常係在約6.9至約7.5之範圍內)。

實例9. DEAE葡聚醣溶液(X)

將200毫克/毫升之DEAE葡聚醣溶解在水中以製備DEAE葡聚醣(X)儲備溶液。可將此溶液在攝氏120度(C)高壓滅菌約20分鐘。

實例10. Quil A/膽固醇/DDA/DEAE溶液(QCDX)

依實例3製備Quil A/膽固醇/DDA儲備溶液。依實例9製備DEAE儲備溶液。將溶液直接加入均化器中以將其合併。混合時係使用大於1000秒^-1 之剪力，利用閃蒸混合法進行。混合時係將水性溶液直接送入含有非極性佐劑和抗原組成分之油相中並攪拌至取得均勻穩定之混合物。通常，根據所需之顆粒大小此步驟可能為至少幾分鐘或更久。

實例11.油組成物(O)

將Drakeol礦物油與吐溫85及斯潘85(Span85)合併，加熱至約55℃，冷卻後再進行無菌過濾，以製備油儲備溶液。因此，此混合物包含用於以油為底質之載體的油相基質組成分。若選擇膽固醇及/或DDA作為這些組成物之一的共同免疫調節劑，則在過濾前亦將其加入此混合物中，因其可溶於油相中。

實例12. Quil A/膽固醇/DDA/DEAE溶液(QCDXO)

依實例10製備Quil A/膽固醇/DDA/DEAE儲備溶液。依實例11製備油貯存組成物。該溶液為取得該濃度之Quil A、DEAE葡聚醣和水量之組合。將反應物在室溫或更高之溫度下持續攪拌數分鐘或更久以混合水相，然後，進行無菌過濾並貯存之，以供加入油相中。將水相慢慢加入持續混合之油相中。

實例13.致免疫組成物或疫苗組成物之製備方法

為了製備包含抗原及一種上述佐劑之致免疫組成物或疫苗組成物，將所需抗原加入合適之緩衝劑中。然後，依上述加入所需佐劑之組成分。加入緩衝劑使所產生之溶液成為最終體積。

實例13a.抗原、Quil A、膽固醇、DDA、卡波姆

為了製備包含抗原、Quil A、膽固醇、DDA及卡波姆之致免疫組成物或疫苗組成物，將所需抗原加入合適之緩衝劑中。依實例1製備Quil A儲備溶液，將其慢慢加入該抗原溶液中。依實例1製備膽固醇儲備溶液並將其慢慢加入該抗原/Quil A溶液中。依實例2製備DDA儲備溶液並將其慢慢加入該抗原/Quil A/膽固醇溶液中。將抗原/Quil A/膽固醇/DDA/溶液均質化及微射流均質化。依實例4製備0.75%卡波姆溶液。微射流均質化後，將卡波姆溶液(0.05%，體積/體積)加入微射流均質化組成物中，以NaOH或HCl將pH值調整為約6.9至約7.5。

實例13b.抗原、Quil A、膽固醇、DDA、卡波姆、Bay R1005

為了製備包含抗原、Quil A、膽固醇、DDA、卡波姆及Bay R1005之致免疫組成物或疫苗組成物，將所需抗原加入合適之緩衝劑中。依實例1製備Quil A儲備溶液並將其慢慢加入該抗原溶液中。依實例1製備膽固醇儲備溶液並將其慢慢加入該抗原/Quil A溶液中。依實例2製備DDA儲備溶液並將其慢慢加入該抗原/Quil A/膽固醇溶液中。將抗原/Quil A/膽固醇/DDA/溶液均質化及微射流均質化。依實例4製備0.75%卡波姆溶液。微射流均質化後，將卡波姆溶液(0.05%體積/體積)加入微射流均質化組成物中，以NaOH或HCl將pH值調整為約6.9至約7.5。依實例7製備Bay R1005儲備溶液，在加入DDA後，將Bay R1005組成分加入水相中。

實例13c.抗原、Quil A、膽固醇、DDA、DEAE葡聚醣

為了製備包含抗原、Quil A、膽固醇、DDA及DEAE葡聚醣之致免疫組成物或疫苗組成物，將所需抗原加入合適之緩衝劑中。依實例1製備Quil A儲備溶液並將其慢慢加入該抗原溶液中。將組成物均質化。依實例1製備膽固醇儲備溶液並在均質化期間將其慢慢加入抗原/Quil A溶液中。依實例2製備DDA儲備溶液並在均質化期間將其慢慢加入該抗原/Quil A/膽固醇溶液中。依實例9製備DEAE葡聚醣溶液。在均質化期間加入DEAE葡聚醣溶液並使所產生之組成物達到最終體積。

實例13d.抗原、Quil A、膽固醇、DDA、DEAE葡聚醣、油

為了製備包含抗原、Quil A、膽固醇、DDA及DEAE葡聚醣及油之致免疫組成物或疫苗組成物，將所需抗原加入合適之緩衝劑中。依實例1製備Quil A儲備溶液並將其慢慢加入該抗原溶液中。將組成物均質化。依實例1製備膽固醇儲備溶液並在均質化期間將其慢慢加入抗原/Quil A溶液中。依實例2製備DDA儲備溶液並在均質化期間將其慢慢加入該抗原/Quil A/膽固醇溶液中。依實例9製備DEAE葡聚醣溶液。在均質化期間，加入DEAE葡聚醣溶液。依實例11製備油組成物。均質化期間，將水相加入油相中並一邊將其均質化以加入油組成物，使所產生之組成物達到最終體積。

實例14.貓白血病病毒(FeLV)疫苗

利用隨機完全區集設計(Randomized complete block design)將動物隨機分配至治療組。表1顯示該研究設計。該區集係根據生日及胎次。先根據生日，再根據胎次將動物分類。使用4個區集。同一區集內隨機指定動物所接受之治療。在研究之疫苗接種相方面，將二個連續區集組合以形成含8隻動物之組別。將各動物組隨機分配至二個房間，使各房間含有5組(10個區集)動物。在一組動物中，將動物隨機分配至彼此靠近之四個籠子內，使各籠子內包含二隻接受相同治療之動物。在研究之挑戰相方面，將來自一個疫苗接種室之動物隨機分配至一或二個挑戰室。選擇分成二個挑戰室之疫苗接種室具有五個隨機分配至各挑戰室的區集(2.5組；20隻動物)。另一挑戰室包含十個區集(5組；40隻動物)。在一個挑戰室內將同一區集之動物隨機分配至四個彼此靠近之籠子內。

依實例13製備用於此研究之疫苗，但使用1.5%之卡波姆儲備溶液。具體而言，在經FeLV轉形之淋巴樣細胞中繁殖FeLV次群體A、B及C以製備LEUKOCELL2(輝瑞公司)。將病毒抗原以化學方式去活化，與無菌佐劑組合以增強免疫反應，並以液體形式包裝。製備總量為100毫升，含有貓白血病病毒及25微克Quil A/氫氧化鋁(ALHYDROGEL)之研究用獸藥產品(IVP)。將全部94.5毫升之1.106×10⁵ 奈克/毫升FeLV儲備溶液慢慢混合15分鐘。若需要，以4N HCl或18% NaOH將pH值調整為5.9至6.1。一邊攪拌，一邊將0.5毫升之5.0毫克/毫升Quil A溶液加入抗原溶液中。然後，將5.0毫升之100%(體積/體積)ALHYDROGEL慢慢加入其中。將組成物在4℃下攪拌至少2小時。依需要，以18% NaOH或1N HCl將pH值調整為7.0至7.3。

依用於25微克Quil A IVP之相同方式製備包含貓白血病病毒及37.5微克Quil A/氫氧化鋁(ALHYDROGEL)之IVP，但將7.5毫升之Quil A儲備溶液加入該抗原溶液中。

製備總量為350毫升，含有貓白血病病毒、Quil A、膽固醇、DDA及卡波姆之研究用獸藥產品(IVP)。一邊攪拌349.3毫升之1.106×10⁵ 奈克/毫升FeLV儲備溶液，一邊將0.14毫升之50.0毫克/毫升Quil A溶液慢慢加入該抗原溶液中。然後，慢慢加入0.39毫升之18毫克/毫升膽固醇/乙醇溶液。將組成物在10,000rpm均質化3分鐘。一邊攪拌，一邊將總量為0.19毫升之18.0毫克/毫升DDA/乙醇溶液加入該組成物中。將總量為5.0毫升之1.5%卡波姆溶液慢慢加入145.0毫升之貓白血病病毒、Quil A、膽固醇及DDA組成物中。依需要，以18% NaOH或1N HCl將pH值調整為7.0至7.3。

每天觀察所有動物並記錄觀察結果。在投服第一個疫苗劑量前之第-1天及投服第二個疫苗劑量前之第20天經由測量耳溫來記錄所有動物之體溫。在第-2天，經由頸靜脈之靜脈穿刺自各動物收集血液樣本(1.0-2.0毫升)。根據體重經由肌肉內途徑投服TELAZOL(Fort Dodge Animal Health)之鎮靜劑量(約5.0毫克/公斤)，以將動物壓力減至最少，避免在收集血液期間對動物處理者造成傷害。將血液收集在血清分離管(SST)中並進行血清分離處理。將血清貯存在-20℃或更低之溫度下直到進行測試。

經由皮下途徑對貓投予1.0毫升劑量之安慰劑或FeLV疫苗。在第0天進行第一次疫苗接種，在第21天進行第二次疫苗投服。在第一和第二次接種疫苗後觀察所有動物之立即局部疼痛反應(刺痛反應)約1小時。將觀察結果記錄在文件上。在投服第一個疫苗劑量後之第1及2天及投服第二個疫苗劑量後之第22及23天經由測量耳溫來測量所有動物之體溫。在第1次接種疫苗後之第1天及第2次接種疫苗後之第22和23天亦測定注射部位反應(腫脹)。第35天，經由頸靜脈之靜脈穿刺自各動物收集血液樣本(1.0-2.0毫升)，進行血清分離處理並貯存在-20℃或更低之溫度下直到進行測試。

第35天將動物置入個別隔離之籠子內。挑戰病毒為病毒性貓白血病病毒(FeLV)，立克(Rickard)株，滴定力價為約10⁶¹ TCID₅₀ /毫升。將FeLV挑戰物質解凍並在投服前保持在冰上。在第37、40、42及44天經由鼻途徑投服1.0毫升未經稀釋之挑戰物質。在1毫升無針頭之結核菌素注射器中填入挑戰物質。對每一隻小貓的每一鼻孔投予約0.5毫升。第42天，在投服DEPO-MEDROL約5小時後進行挑戰投藥。在每一天挑戰之後保留挑戰物質之樣本以用於確認滴定。

挑戰後，在第64、85、106、127、134、141、148及155天，經由頸靜脈之靜脈穿刺自各動物收集血液樣本(1.0-2.0毫升)。依上述投服TELAZOL(Fort Dodge)之鎮靜劑量。將血液收集在血清分離管(SST)中，進行血清分離處理並貯存在-20℃或更低之溫度下直到進行測試。藉由ELISA(IDEXX；Westbrook，緬因州)測試血清樣本中是否存有FeLVp27抗原(FeLV感染之標記)。藉由發展出之顏色強度及光度分光計在405/490nm測量的光學密度來評估最終結果。在有效試驗方面，陽性對照組之光學密度必須介於0.131與2.999之間，而陰性對照組之光學密度必須低於或等於0.0039。

利用在第-2及35天收集之血清樣本進行病毒分離。考慮使用來自第127至155天之血清樣本來評估FeLV疫苗效力。測試來自第127天(第12週)、第134天(第13週)、第141天(第14週)、第148天(第15週)及第155天(第16週)之血清樣本中是否存有FeLV p27抗原。若動物在第127天(第12週)至第155天(第16週)期間具有三或多個陽性FeLV p27抗原測試結果，則其被視為持續受到感染。

利用一般線性重複測量的混合模型分析溫度，若總體治療及/或時間點治療效果顯著則進行各時間點之治療組T01及T02、T03及T04間的成對治療比較。計算各時點之各組治療的最小平方平均值、95%信賴區間、最小值和最大值。

計算各治療組出現刺痛反應之頻率分佈並收集各時間點數據。計算各治療組出現注射部位腫脹之頻率分佈並收集各時間點數據。計算各治療組出現接種疫苗後之系統性反應的頻率分佈。

在第一次和第二次疫苗接種期間任一治療組均未觀察到立即反應。在第一次和第二次疫苗接種後約1小時任一治療組均未觀察到不良反應。在第一次和第二次疫苗接種後任一治療組均未觀察到發燒(體溫≧39.5℃)亦未觀察到低溫(體溫<37℃)。在任何時點，治療組間之平均體溫並無明顯差異(p>0.08)。在第一次和第二次疫苗接種後任一治療組均未觀察到注射部位腫脹。

來自第12週至第16週之挑戰後最終結果指出接受安慰劑疫苗接種(T01組)之19隻動物中有16隻(84%)持續排出FeLV病毒血。T02組之19隻動物中有13隻(68%)受到保護免於FeLV毒性之挑戰。與接受安慰劑疫苗接種之小貓相比較，其保護水準為統計上有意義(p=0.0004)。T03組之19隻動物中有12隻(63%)受到保護免於FeLV毒性之挑戰。與接受安慰劑疫苗接種之小貓相比較，其保護水準為統計上有意義(p=0.0013)。T04組之20隻動物中有19隻(95%)受到保護免於FeLV毒性之挑戰。與接受安慰劑疫苗接種之小貓相比較，其保護水準為統計上有意義(p=0.0001)。

因此，投予T02、T03及T04組之疫苗均顯示出當在分隔3週之二-劑量療法中投予該疫苗時，其在最小年齡之小貓中仍安全。此外，當在分隔3週之二-劑量療法中投藥時，投予這些群組之疫苗亦可明顯減輕最小年齡之小貓中的FeLV持續性病毒血症之程度。T02、T03及T04組之小貓中所建立的FeLV持續性病毒血症為統計上有意義之減輕。此外，T04與其他疫苗組(T02、T03)間的差異為統計上有意義。令人驚訝且出乎意料地，含有該新穎之佐劑調製劑的疫苗證明較那些常用於貓中之含有佐劑組成分的疫苗更有效。

實例15.貓白血病病毒疫苗

小貓抵達後令其適應16天。然後，將動物隨機分配至一個房間內，在一個房間內之小貓再隨機分配至治療組(每一房間內每一治療組一隻動物)。在研究第-1天，經由頸靜脈之靜脈穿剌自每一隻動物收集血液樣本(1.0-2.0毫升)。根據體重經由肌肉內途徑投服TELAZOL(Fort Dodge Animal Health)之鎮靜劑量(約5.0毫克/公斤)，以將動物壓力減至最少，以避免在收集血液期間對動物處理者造成傷害。將血液收集在血清分離管中並進行血清分離處理。每日亦觀察所有動物並記錄觀察結果。

依實例13製備疫苗，但使用1.5%卡波姆儲備溶液。在經FeLV轉形之淋巴樣細胞中繁殖FeLV次群體A、B及C以製備LEUKOCELL2。將病毒抗原以化學方式去活化，與無菌佐劑組合以增強免疫反應，並以液體形式包裝。依下述方式製備總量為500.0毫升，含有相對效力(RP)為2之貓白血病病毒、Quil A、膽固醇及DDA之IVP。將全部為20.7毫升之FeLV儲備溶液(50.0RP/毫升，其中1RP=3,624奈克/毫升之抗原)加入478.2毫升之0.063%PBS緩衝劑中。一邊攪拌，一邊將0.21毫升之50.0毫克/毫升Quil A溶液慢慢加入抗原溶液中。然後，將0.58毫升之18毫克/毫升膽固醇/乙醇溶液慢慢加入其中。一邊攪拌，一邊將全部為0.29毫升之18.0毫克/毫升DDA/乙醇溶液慢慢加入組成物中。將組成物在10,000rpm均質化3分鐘。然後，將組成物在10,000(+500)psi下一次通過200微米限制尺寸室來微射流均質化。一邊攪拌，一邊將10.0毫升之1.5%卡波姆溶液慢慢加入290.0毫升之貓白血病病毒、Quil A、膽固醇及DDA組成物中。依需要，以18%NaOH或1N HCl將pH值調整為7.0至7.3。

依用於RP為2之IVP的相同方式，使用51.7毫升之FeLV儲備溶液及447.2毫升之0.063%PBS緩衝劑，其餘組成分維持相同量來製備含有RP為5之貓白血病病毒的IVP。

依用於RP為2之IVP的相同方式，使用93.1毫升之FeLV儲備溶液、355.9毫升之0.063%PBS緩衝劑、0.19毫升之Quil A溶液、0.52毫升之膽固醇溶液及0.26毫升之DDA溶液(全部體積450毫升)製備含有RP為10之貓白血病病毒的IVP。然後，將8.3毫升之1.5%卡波姆溶液慢慢加入241.7毫升之貓白血病病毒、Quil A、膽固醇及DDA組成物中。

依用於RP為10之IVP的相同方式，使用139.7毫升之FeLV儲備溶液及309.4毫升之0.063%PBS緩衝劑，其餘組成分維時相同量來製備含有RP為15之貓白血病病毒的IVP。

依用於RP為2之IVP的相同方式，使用206.9毫升之FeLV儲備溶液及292.0毫升之0.063%PBS緩衝劑，其餘組成分維時相同量來製備含有RP為20之貓白血病病毒的IVP。

為了投服0.5毫升之劑量，依下述方式製備300.0毫升之含有RP為5之貓白血病病毒、Quil A、膽固醇、DDA及卡波姆的IVP。將全部為21.7毫升之FeL V儲備溶液(35.8RP/毫升，其中1RP=1,864微克/毫升之抗原)加入277.7毫升之0.063% PBS緩衝劑中。一邊攪拌，一邊將0.12毫升之50.0毫克/毫升Quil A溶液慢慢加入抗原溶液中。然後，將0.35毫升之18毫克/毫升膽固醇/乙醇溶液慢慢加入其中。一邊攪拌，一邊將全部為0.17毫升之18.0毫克/毫升DDA/乙醇溶液慢慢加入組成物中。將組成物在10,000rpm均質化3分鐘。然後，將組成物在10,000(+500)psi下一次通過200微米限制尺寸室來微射流均質化。一邊攪拌，一邊將3.3毫升之1.5%卡波姆溶液慢慢加入96.7毫升之貓白血病病毒、Quil A、膽固醇及DDA組成物中。依需要，以18%NaOH或1N HCl將pH值調整為7.0至7.3。

依用於0.5毫升劑量之相同方式並適當調整用量來製備用於投服包含下列組成分之1.0毫升劑量的IVP：PR為5之貓白血病病毒、Quil A、膽固醇、DDA及卡波姆。

製備總量為300.0毫升之包含RP為10的貓白血病病毒及卡波姆的IVP。將全部為62.1毫升之FeL V儲備溶液(50.0RP/毫升，其中1RP=3,624微克/毫升之抗原)加入237.9毫升之0.063% PBS緩衝劑中。將組成物在10,000rpm均質化3分鐘。然後，將組成物在10,000(+500)psi下一次通過200微米限制尺寸室來微射流均質化。一邊攪拌，一邊將3.3毫升之1.5%卡波姆溶液慢慢加入96.7毫升之貓白血病病毒組成物中。依需要，以18%NaOH或1N HCl將pH值調整為7.0至7.3。

在研究之第0天及研究之第20天，使用22號×3/4”針及3cc注射針簡經由皮下途徑對小貓投予安慰劑及FeLV疫苗(表2)。投予治療組T01為1.0毫升劑量之安慰劑。投予治療組T02、T04、T05、T06、T07、T08及T09為1.0毫升劑量之FeLV疫苗。投予治療組T03為0.5毫升劑量之FeLV疫苗。使用皮內槍注射器，經由皮內途徑投予治療組T10FeLV金絲雀痘疫苗(Merial)。

在第一次疫苗接種(研究第0天)和第二次疫苗接種(研究第20天)後觀察所有動物投服測試疫苗時之疼痛徵兆，包括發出聲音、抓/咬及侵略性或企圖逃跑。亦將接種疫苗後之態度(正常或異常)記錄在文件上。在研究第0天及研究第20天於接種疫苗後觀察所有動物發展不良之系統反應約1小時。將觀察記錄在文件上。接觸接種疫苗之部位，記錄注射部位之疼痛、注射部位之發紅、注射部位之腫脹及腫脹之大小。在第1次接種疫苗後之研究第2、5及9天及第2次接種疫苗後之研究第25、28和32天進行觀察。將觀察記錄在文件上。

在研究第32天(挑戰前)經由頸靜脈之靜脈穿刺自每一隻動物收集血液樣本(1.0-2.0毫升)。在研究第34、36、39及41天經由鼻途徑投予1.0毫升未稀釋之挑戰物質為動物進行挑戰試驗。在1毫升無針頭之結核菌素注射器中填入挑戰物質。對每一隻小貓的每一鼻孔投予約0.5毫升。FeLV挑戰物質之平均力價為10^6.1 TCID₅₀ /毫升。在研究第61、83、106、126、133、138、146及152天經由頸靜脈之靜脈穿刺自每一隻動物收集血液樣本(1.0-2.0毫升)。

結果-安全性

在第一次疫苗接種(研究第0天)期間，治療組T09中有三隻動物顯示出立即之刺痛型反應。在第二次疫苗接種(研究第20天)期間，治療組T05中有一隻動物、治療組T08中有四隻動物及治療組T09中有二隻動物顯示出立即之刺痛型反應。

在第一次接種疫苗期間，治療組T09中有三隻動物發出微小的聲音。在第一次接種疫苗期間時呈現疼痛之動物那時亦發出微小的聲音。在第二次接種疫苗期間，治療組T05中有一隻動物、治療組T08中有四隻動物及治療組T09中有二隻動物發出微小的聲音。在第二次接種疫苗時呈現疼痛之動物那時亦發出微小的聲音。

在第一次接種疫苗期間，治療組T09中有三隻動物顯示出侵略行為/逃跑企圖。在第二次接種疫苗期間，治療組T05中有一隻動物、治療組T08中有四隻動物及治療組T09中有二隻動物顯示出侵略行為/逃跑企圖。

在第一次或第二次接種疫苗時治療組中無一動物之注射部位出現抓/咬。在第一或二次接種疫苗後任一治療組均未觀察到注射部位反應。任一治療組中亦未觀察到不良反應。

結果-效力

在接種疫苗前，第-1天收集到之血清樣本中所有動物之FeLVp27抗原測試結果均為陰性。在挑戰前，第32天收集到之血清樣本中所有動物之FeLVp27抗原測試結果均為陰性。

來自第12週至第16週之挑戰後最終結果(表3)指出治療組T01(安慰劑)之10隻動物中有9隻動物(90%)對FeLV具持續病毒血性質。同一期間之結果指出治療組T02之10隻動物中有6隻動物(60%)受到保護免於FeLV之毒力挑戰；與接受安慰劑疫苗接種之小貓相比較，此保護水準並非統計上有意義(p=0.0573)。治療組T03之10隻動物中有9隻動物(90%)受到保護免於FeLV之毒力挑戰；與接受安慰劑疫苗接種之小貓相比較，此保護水準為統計上有意義(p=0.0011)。治療組T04之10隻動物中有10隻動物(100%)受到保護免於FeLV之毒力挑戰；與接受安慰劑疫苗接種之小貓相比較，此保護水準為統計上有意義(p=0.0001)。治療組T05之10隻動物中有10隻動物(100%)受到保護免於FeLV之毒力挑戰；與接受安慰劑疫苗接種之小貓相比較，此保護水準為統計上有意義(p=0.0001)。治療組T06之10隻動物中有7隻動物(70%)受到保護免於FeLV之毒力挑戰；與接受安慰劑疫苗接種之小貓相比較，此保護水準為統計上有意義(p=0.0198)。治療組T07之10隻動物中有10隻動物(100%)受到保護免於FeLV之毒力挑戰；與接受安慰劑疫苗接種之小貓相比較，此保護水準為統計上有意義(p=0.0001)。治療組T08之10隻動物中有8隻動物(80%)受到保護免於FeLV之毒力挑戰；與接受安慰劑疫苗接種之小貓相比較，此保護水準為統計上有意義(p=0.0055)。治療組T09之10隻動物中有5隻動物(50%)受到保護免於FeLV之毒力挑戰；與接受安慰劑疫苗接種之小貓相比較，此保護水準並非統計上有意義(p=0.1409)。最後，治療組T10之10隻動物中有6隻動物(60%)受到保護免於FeLV之毒力挑戰；與接受安慰劑疫苗接種之小貓相比較，此保護水準並非統計上有意義(p=0.0573)。

討論

治療組T02、T03、T04、T06及T07中所使用之疫苗在第一次疫苗接種期間顯示出令人滿意之安全性變化形廓，因為當時並未觀察到反應。治療組T05中之1隻動物在第二次疫苗接種期間顯示出立即反應(投服時疼痛、發出小聲的聲音、侵略性/企圖逃跑)。此情況可能與特定動物對接種疫苗之反應惡化有關而非與疫苗配製問題有關。所有疫苗在疫苗接種後顯示出令人滿意之安全性變化形廓，因為並未觀察到與接種疫苗相關之局部反應和不良反應。

由於以病毒性FeLV挑戰後可取得≧80%保護效果(≧75%保護部分)，投予治療組T03、T04、T05、T07及T08之FeLV疫苗顯示出令人滿意之效力。投予T07組之提供100%保護效果的疫苗頗令人驚訝且出乎預料，因該組中之動物接受之抗原劑量分別為T04及T05組中之動物的25%和33%。此處所揭示及測試之佐劑的明確利益為其容許使用較小劑量之抗原，但仍可誘導出完整之保護性免疫反應。投予治療組T02、T06及T09之疫苗顯示出在以病毒性FeLV挑戰後效力有些降低(<80%保護效果；保護部分<75%)。投予治療組T02之疫苗的效力降低可能係因該組中存在低回應動物。

實例16.卵內疫苗接種來對抗雞體內之艾美球蟲(Eimeria)

鳥球蟲症為一種腸症，其一般係由艾美球蟲屬之原蟲引起並代表一種養雞業中遍及全球的嚴重問題。在進食期間食入之寄生蟲定居在腸道中，其引起小腸及下層組織之嚴重傷害。對養雞業所造成之經濟損失非常重大，因為肉雞及蛋雞二者之飼料轉化率和體重增加均下降。本技藝狀態之一般摘要(包括使用，例如：重組艾美球蟲蛋白質作為抗原及多種佐劑系統來進行對抗艾美球蟲之疫苗接種)描述於下列文獻中，這些文獻全部藉引用方式合併於本文：(1)H.S. Lillehoj et al.,J .Parisitol ,91(3),2005,pp. 666-673；(2)H.S. Lillehoj et al.,Avian Diseases ,49 2005,112-117；and(3)R. A. Dalloul et al.,ExpertRev. Vaccines,5(1),2006,pp. 143-163。本實例針對新穎疫苗組成物之用途，該疫苗組成物係使用可在球蟲症方面提供優越效益之佐劑組成分。

本發明之高效佐劑可與來自所有艾美球蟲屬之抗原物質一起使用，這些抗原物質包括艾美球蟲屬之純化或部分純化之蛋白質萃取物，或其一或多種重組表現之蛋白質、或任何或所有這類蛋白質之片段，因此，包括來自堆型艾美球蟲(Eimeria acervulina )、阿薩塔艾美球蟲(Eimeria ahsata )、牛艾美球蟲(Eimeria bovis )、布氏艾美球蟲(Eimeria brunetti )、費特庫拉艾美球蟲(Eimeria fraterculae )、巨型艾美球蟲(Eimeria maxima )、火雞艾美(Eimeria meleagridis )、和緩艾美球蟲(Eimeria mitis )、毒害艾美球蟲(Eimeria necatrix )、早熟艾美球蟲(Eimeria praecox )、斯氏艾美球蟲(Eimeria stiedae )、柔嫩艾美球蟲(Eimeria tenella )及邱氏艾美球蟲(Eimeria zurnii )等之抗原物質。

本發明所提供之添加佐劑的疫苗可針對在原蟲生命週期中之一或多個點產生的任何蛋白質或巨分子，包括，但不限於：卵囊(不論是芽孢化或未芽孢化者)、孢子囊、孢子體、裂殖體、裂殖子、雄性或雌性配子細胞。於一較佳實例中，在卵囊階段中大量排入糞便中之蛋白質或這類蛋白質之經由習知方式純化的部分或完全純化樣本為作為重組蛋白質抗原來源之較佳物質。

可作為本疫苗調製劑之抗原來源的艾美球蟲蛋白質之其他實例包括Karkhanis等人，Infection and Immunity ,1991,pp.983-989中所描述者，包括如其中所描述之質量約20至約30kDA的保護性抗原。其他實例包括艾美球蟲23kDA 3-1E蛋白質及Etp100蛋白質(如：從柔嫩艾美球蟲回收者)。

本發明之高效佐劑可與來自犬神經孢子菌(Neurospora caninum )之抗原物質一起使用。

此外，本發明之高效佐劑可與任何下列原生動物病原體一起使用：小隱孢子蟲(Cryptosporidium parvum )(隱孢子蟲病)、卡晏環孢子蟲(Cyclospora cayetanensis )(環孢子蟲病)、貝氏等孢球蟲(Isospora belli )(等孢球蟲症)、弓形蟲(Toxoplasma gondii )(弓形蟲症)、瘧原蟲(Plasmodium )(瘧疾)和巴貝斯蟲(Babesia spp )屬(巴貝斯蟲病)，以及引起這些或相關疾病之相關原生動物，大部分之頂複動物亞門(Apicomplexen )群。

依下述評估卵內投遞含有特殊佐劑系統之疫苗的有效性。

材料和方法：

1.材料：

令重組巨形艾美球蟲蛋白質(為蛋白質3-1E)在大腸桿菌中表現並藉親和性管柱純化之。亦使用全細胞巨大艾美球蟲大分子之粗製品(以清潔劑從破裂細胞溶出)，此粗抗原稱為“EM”。於一較佳實例中，該佐劑為如上述實例8中所描述者且係根據實例實驗步驟(見第41頁)之方法製備。因此，於一典型之實例中，各胚胎將接受在羊膜(即，包括羊水及羊膜腔)中注射約50至約100微升之疫苗溶液，該疫苗溶液每一毫升中包含：約50或100微克之重組3-1E蛋白質或其他蛋白質物種，或者，約50或100微克之粗細胞“EM”萃取物；約20微克之Quil A；約20微克之膽固醇；約0.075%(體積/體積)之卡波姆；約10微克之DDA；及約250微克之R1005，其全部提供於，例如：20mM PBS中。

選擇用於此處之皂素時，下列額外資訊係用於指導。所定義之皂素一詞係指自植物衍生之糖苷，而多種皂素之生物性質已被大量研究(The Plant Glycosides,Mcllroy,R. J.,Edward Arnoldandco.,London,1951)。本技藝最常用於製造疫苗之皂素為那些自植物智利皂莢樹、歐洲七葉樹或Gyophilla struthium 衍生者。已知具有佐劑活性之智利皂莢樹皮的萃取物為已知之皂素，如：Quil A。Quil A之純化餾分亦已有相關描述，其保有佐劑活性，但毒性較Quil A低，例如：QS21。QS21亦描述於Kensil et al.(1991.J. Immunology vol 146,431-437)中。當與本發明之其向佐劑成分混合時(如前文及下文中之描述)，這類含皂素之物質成為高度有效之物質。其他有效之調製劑包括那些使用七葉皂苷(Escin)者，七葉皂苷在默克藥典(第12版：項目3737)中之描述，為馬栗七葉樹之種籽中所產生之皂素混合物。於本發明之佳體系中，皂素係指美國E.M Sergeant公司所販售之“Quil A”。

必須進一步了解的是，皂素萃取物可以混合物或來自這類分餾物/產品之純化的個別組成分之型式使用，包括來自美國麻州Antigenics公司之QS-7、QS-17、QS-18及QS-21或類似之粗、分餾的或精製的皂素產品，及瑞典Isconova公司所提供之彼等的混合物。於一較佳體系中，該Quil A為至少85%純質。於其他較佳體系中，該Quil A為至少90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%。97%。98%或99%純質。

2.胚胎疫苗接種：

自賓州Quakertown之Moyers Hatchery公司購買蛋。在卵內免疫化方面，將肉雞雞蛋培育18天，再用燭光選擇(在胚胎發育之18天)受精卵，然後注射20mM PBS和單獨之佐劑或與重組3-1E蛋白質或“EM”製品一起配製的佐劑。注射係根據製造者之指示，在“Intelliject”卵內注射器(馬利蘭州Hebron市，艾維泰克(Avitech)公司)上進行。利用艾維泰克公司(馬利蘭州Hebron市)提供之17.5公分長的18號針在每一個蛋之羊膜腔中注射100微升樣本入。在執行本發明時亦可使用50微升之劑量。

3.雞：

一旦肉雞孵化(約第21-22天)，利用可拋式運送雞之紙板箱(威斯康辛州，Milwaukee，Frederick包裝公司)將雞運送至電驗室，然後將雞養在Petersime單位中並提供可任意取得之飼料及水。

將雞保持在不含艾美球蟲之設備的孵卵暖房中，且當其被活巨大艾美球蟲之卵囊感染時，將其轉移入在分開地點之大吊籠中直到實驗期結束。

4.寄生蟲：

使用巨大艾美球蟲#41之USDA BARC株(其被保持在動物寄生蟲疾病實驗室-BARC中並根據Lillehoj博士實驗室中建立之程序繁殖)。經由將來自巨大艾美球蟲(Beltsville #41)株之卵囊漂浮在5%次氯酸鈉上，以PBS清洗三次來清潔之並藉由錐蟲藍染色，使用血球計數器來計算存活率。

5.艾美球蟲挑戰感染：

在7天大之小雞翅膀上加標籤，除了未受感染之對照組外，利用接種針為所有實驗組之雞經由食道接種巨大艾美球蟲，然後將小雞置於卵囊收集籠中。

6.體重增加測定：

在第0天(未受感染)、以巨大艾美球蟲感染後之第6及10天測定個別小雞之體重。

7.糞便卵囊產量之估計

指示照顧動物者不要清潔籠子並收集雞糞。自感染後第6天開始將收集盤置於每一籠子下5天，將糞便物質收集在大塑膠罐(2升)中。將每一罐中與自來水一起浸泡之雞糞與更多水(總體積為3升)一起在攪和器中研磨，自各樣本中取出二份40毫升之隨機樣本並貯存在冷藏庫中直至計算時。為了計算球蟲卵囊，先製作多種不同之稀釋液以決定用於計算各樣本之卵囊的理想稀釋倍數。使用蔗糖漂浮法(已由Lillehoj博士實驗室建立程序)，利用McMaster計算盤在顯微鏡下計算卵囊。每一隻雞排泄之卵囊的總數係利用下列公式計算：全部卵囊/雞=(卵囊計數x稀釋因子x糞便樣本體積/計算盤體積)/每一籠子內之雞的數目。

8.樣本收集：

在感染日後第6天收集血液並測定血清抗體反應。自個別小雞(N=4-5/組)取得血液樣本，使其在4℃凝結4小時並收集血清。利用ELISA測試血清樣本之抗艾美球蟲抗體。簡單地說，以10微克/槽之重組球蟲抗原Ea3-1E、EtMIF或EtMIC2塗覆微量滴定盤一整夜，以PBS-0.05%吐溫清洗後以PBS-1%BSA封閉之。加入血清稀釋液(1：20、1：40、1：80、1：160；100微升/槽)，培育之並一邊持續輕輕搖動，清洗後以與過氧化酶偶合之兔子抗雞IgG(Sigma)和過氧化酶特異性受質偵測經結合之抗體。以微量盤讀計(加州里奇蒙市，Bio-Rad)在450nm測定光學密度(OD)。

在孵化時及6和10天後收集腸組織，利用即時RT-PCR測試細胞活素(IFN-γ、IL-2)之產量以測量Th1刺激效果。

9.cDNA合成作用

利用TRIzol(加州卡爾斯巴市，因維特金(Invitrogen)公司)自腸IEL萃取總RNA。以1.0U之脫氧核酸酶I及1.0微升之10x反應緩衝劑(史格馬(Sigma))來處理5微克之RNA，在室溫下培育15分鐘，在去活化之脫氧核酸酶I中加入1.0微升之終止溶液並將混合物在70℃下加熱10分鐘。利用StrataScript第一股合成系統(加州拉荷亞市史崔塔金(Stratagene)公司)，根據製造者之建議將RNA逆轉錄。

10.定量RT-PCR

用於雞干擾素-γ(IFN-γ)之定量性RT-PCR寡核苷酸引子及GAPDH對照組列於表4中。利用等量之來自腸IEL的總RNA，使用Mx3000P系統及Brilliant SYBR Green QPCR主要混合物(史崔塔金公司)進行增數及偵測。利用經對數(log₁₀ )稀釋之標準RNA來產生標準曲線，並將個別轉錄子之量對藉由Q-基因程式分析之GAPDH的量標準化。每一分析重複三份。為了將同一實驗中之樣本間的RNA量標準化，將來自實驗中之所有樣本的數值累積以計算增數產物的平均閾限循環(C_t )值。

在接種巨大艾美球蟲前及10^th DPI(感染後之日期)收集脾臟以供脾臟細胞增殖分析。將脾臟置於含有10毫升漢克氏平衡鹽溶液(HBSS)(其中係補充100單位/毫升青黴素及100微克/毫升鏈微素(密蘇里卅聖路易市史格馬公司))的培養皿中。製備脾臟淋巴細胞之單細胞懸浮液並進行淋巴細胞增殖。簡單地說，將脾臟細胞在補充以10%胎牛血清(FBS)(猶他卅洛根市海克隆(Hyclone)公司)、100單位/毫升青黴素及100微克/毫升鏈微素(史格馬公司)的IMDM介質(史格馬公司)(此溶液稱為10%完整IMDM介質)中調整為5×10⁶ 或1×10⁷ 細胞/毫升。將脾臟細胞(100微升/槽)在96槽平底盤中，於41℃，帶有5%CO₂ 及95%空氣之加濕保溫箱(俄亥俄卅馬利塔市福馬(Forma)公司)中培育48小時。以2-(2-甲氧墓-4-硝苯基)-3-(4-硝苯基)-5-(2,4-二硫苯基)-2H-四唑鎓一鈉鹽(WST-8，細胞計算套組-8，馬利蘭卅蓋兹堡市Dojindo分子技術)測定細胞之增殖。利用微量盤分光光度計(加州里奇蒙市，BioRad)在450nm測定光學密度(OD)。

結果

結果顯示出與未接種疫苗，但感染巨大艾美球蟲之雞相比較，接種100微升佐劑調製劑(即，100微升包含如先前定義劑量之重組3-1E蛋白質)疫苗之肉雞額外增加45-85克體重。

藉由促有絲分裂淋巴細胞增殖分析之測量，本發明之疫苗亦顯示出對由細胞傳介之免疫力的明確效果：與ConA一起培育48小時之1×10⁷ 細胞/毫升脾臟淋巴細胞之增殖結果顯示出來自以帶有或不帶有抗原之輝瑞佐劑免疫化之受巨大艾美球蟲感染的雞之脾臟細胞大致上顯示出較高之淋巴細胞增殖量，尤其是當使用50微克劑量時。在投服本發明之添加佐劑的疫苗組成物後可見到IL-1B之製造、IFN-γ之製造及IL-15之製造明顯增加，尤其是在脾臟中。總結來說，這些結果清楚指出本佐劑對細胞活素反應之效果並支持細胞活素對增加由細胞傳介之免疫反應，而非體液免疫反應的效果。

本發明之疫苗亦顯示出對糞便卵囊輸出之明確效果。未被感染之雞並未排出任何卵囊。在巨大艾美球蟲感染後，僅以輝瑞佐劑治療之群組的糞便卵囊輸出明顯減少。與那些接種單獨之粗巨大艾美球蟲製品的群組(EM組)相比較，在卵中以粗巨大艾美球蟲及佐劑進行接種之雞顯示出糞便卵囊排出減少非常多。

需注意，雖然純化之重組巨大艾美球蟲蛋白質3-1E已用於執行前述實驗，使用重組Ea3-1E、EaMIF及EtMIC2抗原(單獨使用或與3-1E組合，或彼此組合，或彼等之任何組合)亦為本發明之較佳體系，且一般而言，所有艾美球蟲蛋白質抗原均可用於執行本發明，只要是其與本發明之佐劑混合時。

實例17.在牛體內評估大腸桿菌J5株菌苗

本研究之目的係在牛體內評估當將大腸桿菌(J-5株)抗原在不同之新穎調製劑中投予時，牛對此抗原的免疫反應。J5菌苗商品係以用於乳牛之腸桿菌乳腺炎的預防性疫苗形式販售，其在目前之調製劑中適度有效。在接種疫苗前測定動物對大腸桿菌J5具低力價的抗體(分別根據在接種疫苗前進行之血清血液樣本分析)。

肉牛

利用去活化之大腸桿菌J5株作為抗原來配製實驗疫苗並根據上述實例13製造。各治療組最初含有7隻動物(表5)。一組治療組接受生理食鹽水(T01)，而另一組接受J5疫苗商品(T02-Enviracor^TM 輝瑞J-5大腸桿菌菌苗)。其他治療組接受含有表5中具體指明之佐劑的不同調製劑。所有疫苗接種係在研究第0和21天經由皮下注射投服。給藥體積為5毫升。

表5中，QC為Quil A/膽固醇之縮寫、D為DDA之縮寫、C為卡波姆之縮寫、R為R1005之縮寫、X為DEAE-葡聚醣之縮寫、O為油之縮寫。

依上述實例1至13製備下列各項之儲備溶液：大腸桿菌為每劑量約4-5×10⁹ 有機體(此係藉由光學顯微鏡直接計算來測定)。Quil A係以50毫克/毫升溶於水中，膽固醇係以17毫克/毫升溶於乙醇中，DDA係以17毫克/毫升溶於乙醇中，R1005係以5毫克/毫升溶於20mM磷酸鹽緩衝劑中，DEAE葡聚醣係以200毫克/毫升溶於水中，TLR激動劑係以20毫克/毫升溶於TE緩衝劑中，而Iscomatrix係以5.4毫克/毫升溶於水中。以從左至右之字母符號順序加入個別組成分(體積/體積)。例如：QCDC，加入適當體積之Quil A，再加入膽固醇、DDA和最後之卡波姆。當調製劑中包含油時，將分開之組成分加入混合接著在Drakeol5LT礦物油與斯潘(Span)80和吐溫80(QCDO)或斯潘85和吐溫85(QCDXO)之混合物中乳化。Drakeol為市售之輕礦物油。

在研究第0、21及49天收集血液樣本以供血清學試驗。藉由J5特異性，間接ELISA分析測定血清樣本中對大腸桿菌J5之抗體力價。以綿羊抗牛抗體共軛物(Bethyl實驗室)測定IgG抗體同型。測定力價並以其幾何平均值表示。

結果

本研究之血清學結果顯示於表6-8中。較高之抗體力價通常與較佳之疫苗保護有關。總J5-特異性IgG力價顯示於表6中。本發明之數種調製劑產生較市售商品高出許多之力價，雖然這些調製劑中所添加之J5抗原量類似。QCDO、QCDX及QCDXO調製劑於誘導這些牛中之良好免疫反應上特別有效。

測定J5特異性IgG1抗體同型。這些結果顯示於表7中。同樣地，QCDO、QCDX及QCDXO調製劑於誘導這些牛中之良好免疫反應上特別有效。即使僅接種一次疫苗，這些調製劑仍可產生較注射二次市售疫苗時高出許多之力價。

IgG2抗體力價顯示於表8中。此抗體同種型通常與乳汁中嗜中性球較佳之吞噬作用及對動物之保護作用有關。QCDO、QCDX及QCDXO調製劑於誘導這些牛中之良好免疫反應上特別有效。

乳牛

利用去活化之大腸桿菌J5菌苗作為抗原並根據上述實例13來配製實驗疫苗。各治療組最初含有有7隻動物(表9)。一治療組接受生理食鹽水(T01)而另一組接受J5疫苗商品(T02-Enviracor^TM 輝瑞J-5大腸桿菌菌苗)。其他治療組接受含有表9中具體指明之佐劑的不同調製劑。所有疫苗接種係在研究第0和21天經由皮下注射投服。給藥體積為5毫升。

表9中，QC為Quil A/膽固醇之縮寫、D為DDA之縮寫、C為卡波姆之縮寫、R為R1005之縮寫、X為DEAE-葡聚醣之縮寫、T為TLR激動劑(CpG-ODN)之縮寫且O為油之縮寫。製備下列各項之儲備溶液：大腸桿菌為每劑量約4-5×10⁹ 有機體(此係藉由光學顯微鏡直接計算來測定)。Quil A係以50毫克/毫升溶於水中，膽固醇係以17毫克/毫升溶於乙醇中，DDA係以17毫克/毫升溶於乙醇中，R1005係以5毫克/毫升溶於20mM磷酸鹽緩衝劑中，DEAE葡聚醣係以200毫克/毫升溶於水中，TLR激動劑係以20毫克/毫升溶於TE緩衝劑中。以從左至右之字母符號順序加入個別組成分(體積/體積)。例如：QCDCR，加入適當體積之Quil A，再加入膽固醇、DDA和最後之卡波姆。當調製劑中包含油時，將分開之組成分加入混合再在Drakeol5 LT礦物油與斯潘80和吐溫80(TXO，QCDO)或斯潘85和吐溫85之混合物中乳化。

血液之收集

在研究第0、21及49天收集血液樣本以供血清學試驗。藉由J5特異性，間接ELISA分析測定血清樣本中對大腸桿菌J5之抗體力價。以綿羊抗牛抗體共軛物(Bethyl實驗室)測定IgG抗體同型。測定力價並以其幾何平均值表示。

結果

研究之血清學結果顯示於表10中。較高之抗體力價通常與較佳之疫苗保護作用有關。總J5特異性IgG抗體力價顯示於表10中。本發明之數種調製劑產生較市售商品高出許多之力價，雖然這些調製劑中所添加之J5抗原量類似。QCDO、TXO及QCDXO調製劑於誘導這些牛中之良好免疫反應上特別有效。

測定J5特異性IgGl抗體同型。這些結果顯示於表10中。同樣地，QCDO、TXO及QCDXO調製劑於誘導這些牛中之良好免疫反應上特別有效。即使僅接種一次疫苗，這些調製劑仍可產生較注射二次市售疫苗時高出許多之力價。

此抗體同型通常與乳汁中嗜中性球較佳之吞噬作用及對動物之保護作用有關。QCDXO調製劑於誘導這些牛中之良好免疫反應上特別有效。

實例18.牛病毒性腹瀉病毒疫苗

研究目的

本研究比較二種已死之第1型和第2型牛病毒性腹瀉病毒(BVDV-1及BVDV-2或BVDV-1/2)疫苗及一種與本發明之佐劑一起配製之BVDV-1及BVDV-2萃取物疫苗與一種陰性(生理食鹽水)及二種陽性對照組(經改質之活BVDV-2疫苗和目前可取得之已死的BVDV-1/2疫苗)在純真(naive)之小牛中對抗以BVDV-1進行之挑戰的安全性、效力及交叉保護作用。表11中呈現研究設計。

本研究亦顯示本發明之佐劑可用於區分以本發明之疫苗組成物進行疫苗接種之動物與天然暴露於BVDV之動物。

動物

使用對BVDV-1及BVDV-2為血清陰性之7至15個月大的任一性別之健康斷奶肉牛。

疫苗接種

在研究第0及21天，依表11之描述為動物(N=10/組)進行疫苗接種。給予之抗原(BVDV)係每劑量5,500相對效力單位(RU)(此係藉由ELISA分析測定)。T01組中之小牛作為對照組。其係接受0.9%氯化納無菌溶液。T02組至T06組接受帶有表11中所示之佐劑的實驗性BVDV1/2疫苗。T02組僅接受一次疫苗接種(研究第0天)。其接受不含佐劑之經改質的活病毒(MLV)BVDV-2疫苗。T03組接受含有2.5%水包油乳劑(愛菲金)及Quil A/膽固醇佐劑(PreZent A)之已死的病毒BVDV-1/2疫苗。T04組接受含有Quil A/膽固醇、DDA及卡波姆之已死的病毒BVDV-1/2疫苗。T05組接受含有Quil A/膽固醇、DDA、卡波姆及R1005之已死的病毒BVDV-1/2疫苗。T06組在第0天接受含有Quil A/膽固醇、DDA及卡波姆之已死的病毒BVDV-1/2、高力價萃取物疫苗，在第21天接受類似之低力價萃取物疫苗。除第2組外，所有治療均係在第0及21天經由皮內途徑投服一次2毫升劑量。

QCDC+/-R包含100微克Quil A、100微克膽固醇、50微克DDA及0.075%卡波姆，其中如前述，每2毫升劑量包含1000微克之R1005。

挑戰

在第42天經由鼻內途徑以約4毫升(每一鼻孔約2毫升)之非細胞病變性BVDV-1株(NY-1株；CVB、USDA、Ames、IA)挑戰動物，其濃度為每5毫升劑量5.4log¹⁰ TCID₅₀ 。

觀察

在研究第0(接種疫苗前)、1、2、3、7及21天記錄第一次注射部位(左頸)之注射部位觀察結果。在研究第21(接種疫苗前)、22、23、24、28及35天記錄第二次注射部位(左頸)之觀察結果。測量所有可觸知之注射部位反應(LxWxH，公分)。在研究第-1、0(接種疫苗前)、1、2及3天記錄初次接種疫苗時之肛溫。在研究第20、21(接種疫苗前)、22、23及24天記錄加強接種之溫度。

血液採樣

在研究第-1、20、34及49天利用血清分離管(SST)收集來自每一隻可用之動物的血液樣本。在研究第33至35天(挑戰前)及36至49天利用EDTA管收集血液樣本。在研究第34天(挑戰前)及36至49天利用細胞製備管(CPT)收集血液樣本。

結果

表12顯示出在研究之日子中藉由血液凝集分析測得之對抗BVD病毒的幾何最小平方平均(GLSM)血清中和抗體力價。結果顯示出隨著研究之進行，本發明佐劑可使對抗BVDV-1及BVDV-2之力價增加。UDSA之可接受的力價為高於8之力價。這些數據顯示出高於5,000之力價，此表示可在病毒進入可能被感染及生病之動物時製造大量能終止活病毒之抗體。

表13呈現在研究第43-56天之白血球減少數據。研究之日白血球減少之結果證明MLV疫苗(T02)可預防藉由特殊病毒挑戰引起之感染。測量白血球減少為USDA核發MLV產品執照之標準。然而，對去活化之病毒而言，白血球減少並非USDA之標準，該數據暗示本發明之佐劑僅在至多20%之動物中引起白血球減少，而大部分之去活化病毒疫苗可造成100%白血球減少。此點指出本發明之佐劑可與去活化之抗原驅動強烈的Th1反應。此在去活化之產物中很難做到且少見。

表14呈現第41天(第二次接種疫苗後20天，挑戰前)時之血清中和力價。經改質之活病毒僅可發展出對疫苗中該確切病毒之抗體反應。此可從T02組顯示出僅有對抗BVDV-2之保護作用中得知。然而，T03(PreZent-A)、T04(QCDC)及T05(QCDCR)之經添加佐劑的去活化疫苗在免疫開端及整個動物研究的生命階段中可早期產生針對血清學上分岐之BVDV小組成員的強抗體反應。此顯示出這些佐劑有能力在挑戰模型(不僅同源挑戰亦包括異源挑戰)中提供保護牛之安全性及效力。

標記活性.此處呈現的為顯示出本發明之佐劑可用於區分以本發明之疫苗組成物接種疫苗之動物與天然暴露於BVDV之動物的數據。此可經由測定該病毒之構造性及非構造性基因產物間的抗體變化形廓差異而得知。該標記活性可藉由放射免疫沈澱分析之凝膠泳行證明(第1圖)。在以MLV疫苗進行疫苗接種之動物或天然暴露於BVDV或PreZent-A之添加佐劑的去活化疫苗之動物，對BVDV之NS2/3及E2蛋白質之抗體反應很明顯。然而，本發明之佐劑顯示出僅對E2蛋白質有抗體反應，對NS2/3蛋白質則無。因此，以包含本發明之佐劑的去活化BVDV疫苗進行疫苗接種之動物可與被天然感染之動物、或經接種MLV疫苗之動物、或經接種PreZent-A疫苗之動物區分。此可被視為用於根除動物群體中這些疾病類型之有價值的標記疫苗。

實例19.豬體內之豬肺炎黴漿菌

背景

豬肺炎黴漿菌(MPS)或流行性肺炎為分佈廣泛之慢性疾病，其特徵為咳嗽、生長遲緩及降低之餵食效率。該病原劑為豬肺炎黴漿菌；然而，天然發生之疾病通常係由細菌與黴漿菌組合感染所造成。

MPS在所有養豬地區造成相當大之經濟損失。在全世界多個不同地方進行之調查指出那些在MPS中所見到之典型器官損害可在30%-80%之屠宰重量豬隻中出現。由於黴漿菌器官損害可能在豬隻達到屠宰重量前消除，因此實際發生率可能更高。據報導，在慢性豬肺炎中，肺炎黴漿菌感染之盛行率為25%-93%。所有年齡之豬隻對MPS均有感受性，但該疾病最常見於生長中及肥育之豬隻中。目前的證據指出肺炎黴漿菌係經由懸浮微粒傳染或與來自受感染豬隻之呼吸道分泌物直接接觸而傳染。在哺乳期間從母豬傳染給豬隻是可能的。一旦確立感染後，MPS將在受感染之畜群中年復一年的發病，隨著諸如季節、通風及豬之密度這類環境因子而使嚴重性有所不同。

研究目的

本研究目的係為了比較以病毒性肺炎黴漿菌肺部均質物進行氣管內挑戰後，以本發明之新穎佐劑配製之豬肺炎黴漿菌疫苗的效力與市售豬肺炎黴漿菌菌苗之實驗系列的效力。

動物

在研究中使用六十六(66)隻約17天大，無豬肺炎黴漿菌及PRRSV引起之疾病病史，或接種對抗相同有機體之疫苗的臨床上健康的雜交豬。在運送至研究地點前及抵達後2天，以Naxcel在後腿經由肌肉內途徑治療豬(依照標示指示)，以預防與壓力有關之疾病(諸如豬鏈球菌)。將動物隨機分配至治療組及圈欄。此研究設計顯示於表15中。

研究用獸藥產品(IVP)

抗原及研究用獸藥產品(IVP)顯示於表16中。根據實例13，使用下列表16中所示之組成分濃度來製備用於治療組T02、T03及T04(除了T05外之全部)之疫苗。依表中所列之順序加入組成分。

在容器中加入生理食鹽水增效劑，開始均質化且持續至整個製備步驟。從每800升之最終配製產物的75升醱酵物的混和體積中製備去活化之豬肺炎黴漿菌，並添加為每劑量0.09375之濃度。添加Quil A為列於表16中之濃度。然後，加入膽固醇/乙醇溶液。加入DDA/乙醇溶液，再加入Bay R1005糖脂溶液。然後，加入卡波姆，並以生理食鹽水增量劑使溶液達到最終體積。

用於治療組T05之疫苗(以愛菲金為底質之疫苗調製劑)為市售產品Respisure(輝瑞公司)。

接種疫苗

NTX治療組中之動物並未接種疫苗或接受挑戰。約3週大(第0天-右頸)及5週大(第14天-左頸)時，由不知治療組之合格個人經由肌肉內途徑投予T01、T02、T03、T04及T05中之動物每一劑量2毫升。

挑戰物質

在第二次接種疫苗後3週(約8週大-研究第35天)經由氣管內途徑挑戰T01至T05中之動物。以5毫升劑量之10%豬肺炎黴漿菌菌株11(LI36)的冷凍肺部均質液(在Friis介質中之1：50稀釋液)挑戰動物。

血液採樣

在第-1或0天(第一次接種疫苗前)、第13或14天(第二次接種疫苗前)、第34或35天(挑戰前)及第63天(驗屍時)，自所有豬隻收集血液樣本(在血清分離劑管中，約5至10毫升)並測試豬肺炎黴漿菌血清學(ELISA-IDEXX)。

重量

在動物抵達時、第34或35天(挑戰前)，以及第62或63天(驗屍前)為所有動物稱重量，以供分組用。

驗屍

第63天，根據位點特異性程序為所有存活動物進行安樂死。以肉眼評估肺部因豬肺炎黴漿菌感染所造成之特徵器官損害，並評定由豬肺炎黴漿菌挑戰所造成之器官損害的積分。肺部器官損害積分係以各肺葉之肺部器官損害百分比來記錄。記錄各肺葉(左前葉、左中葉、左後葉、右前葉、右中葉、右後葉及附屬部位)之實變百分比的積分(為0-100%間之實際數字)。各肺葉之百分比可用於加權式中以計算帶有器官損害之肺部的全部百分比。在第34或35天，進行挑戰前為六(6)隻NTX動物驗屍並計錄彼等之肺部積分。

肺部器官損害積分

利用下式計算帶有器官損害之全部肺的百分比：帶有器官損害之全部肺的百分比=100×{(0.10×左前葉)+(0.10×左中葉)+(0.25×左後葉)+(0.10×右前葉)+(0.10×右中葉)+(0.25×右後葉)+(0.10×附屬部位)}。分析前帶有器官損害之全部肺的百分比係應用反正弦平方根變換。以一般線性混合模型分析轉變之肺部器官損害。參數估計值之線性組合係用於測試治療效果後之事前對比(priori contrasts)中。計算帶有器官損害之全部肺的顯著(P≦0.10)百分比的回復轉變最小平方平均值、其標準差和其90%信賴區間，以及最小值和最大值。

結果

如下列表17之結果所指，本發明之佐劑的效能與含有佐劑愛菲金之添加油的佐劑治療組T05相等。通常，小於3之肺部器官損害積分被認為已具有由疫苗治療提供之效力。本發明之佐劑組合全部符合此標準，在個別動物間，QCDCR在積分和範圍方面效能最佳。

實例20.貓禽流感病毒(FAIV)

本研究經由以病毒性禽流感病毒株進行挑戰來評估使用本發明佐劑之流感疫苗在貓體內之效力。

方法及結果

在接種疫苗前，分別根據接種疫苗前採取之口咽拭子及血清血液樣本分析來決定動物同時為流感病毒陰性及抗流感病毒抗體陰性。

利用去活化之病原性禽流感病毒及純化之紅血球凝集素(HA)配製實驗疫苗。各治療組最初包含6隻動物(表18)。二組治療組接受實驗FAIV疫苗(T01疫苗抗原為純化之H5 HA蛋白質；T02疫苗抗原為去活化之H5N2株)、一組治療組接受去活化之改質的H5N1病毒株疫苗(T03)、一組安慰劑對照組接受僅含佐劑之疫苗(T04)及一組僅接受生理食鹽水之陰性對照組(T05)。所有疫苗均係在研究第0和21天經由皮下注射投服。給藥體積為1毫升。在接種疫苗後，時常觀察動物直至其恢復且可坐直，以確定無不良反應。記錄接種疫苗後約1小時之觀察結果並記錄接種疫苗後所觀察到之任何其他併發症。

該佐劑組成物先前藉由實例QCDC描述於上，其係每劑量使用Quil A(20微克)、膽固醇(20微克)、DDA(10微克)及卡波姆(0.05%)。抗原為去活化之全病毒或純化之H5 HA蛋白質。

評估動物注射部位之反應及對疫苗之血清學反應。在挑戰前有三隻動物(二隻在T02-去活化之H5N2組中，一隻在T05-生理食鹽水組中)因先天性高草酸尿症被安樂死。研究第49天，以病毒株H5N1 A/越南/1194/04經由氣管內途徑挑戰所有存活貓隻，以評估候選疫苗之效力。以5.0毫升含10⁵ TCID₅₀ 之物質挑戰動物，此物質係利用氣管鏡，以小導管引入氣管中就在分支上方被釋出。挑戰後，觀察動物並採樣5天。在動物相結束(研究第54天)時，將所有動物安樂死並對每一隻驗屍。

在研究第-14天接種疫苗前、第0、21及49天收集血液樣本以供血清學試驗。在研究第49及54天收集血液樣本以供病毒學試驗。在研究第42天自所有存活動物採取未計劃之血液採樣以在挑戰前血清上測試腎臟功能。

在研究第-14天、挑戰前之研究第49天及第50至54天自所有動物收集口咽拭子。在挑戰前之研究第49天及第50至54天自所有動物收集直腸拭子。就在挑戰前之研究第49天完成拭子收集。

在驗屍期間，以無菌方式移出所有肺葉、稱重並以肉眼評估因FAIV感染所造成之特徵器官損害。使用百分比來鑑定肺部實變之程度。以10%中性-緩衝之福馬林固定左肺以供組織病理學檢查。收集右肺並採樣以供病毒學試驗。除了肺外，亦採取腎臟樣本及任何具肉眼病理之組織並將其貯存在10%中性-緩衝之福馬林中以供組織病理學檢查。

藉由H5N1特異性TaqMan PCR來測定血液樣本、口咽拭子及直腸拭子、肺組織樣本中之病毒力價。簡單地說，利用MagnaPure LC系統，以MagnaPure LC總核酸分離套組(羅氏診斷；荷蘭Almere)分離RNA並利用即時RT-PCR分析偵測A型流感病毒。以控制稀釋單位(CDU)表示數據。自病毒貯存液產生之標準曲線測定CDU，該貯存液係經系列稀釋後將各稀釋液依測試樣本之相同方式進行核酸萃取及TaqMan PCR增數。

亦藉由病毒分離及在馬汀-達比(Madine-Darby)犬腎(MDCK)細胞上滴定來分析RT-PCR陽性口咽拭子及肺組織樣本。結果係以每一毫升或克之樣本中的log₁₀ 50%組織培養感染劑量(log₁₀ TCID₅₀ /毫升或log₁₀ TCID₅₀ /g)表示。

藉由病毒中和及紅血球凝集抑制作用來分析血漿樣本。在紅血球凝集抑制(HI)分析中，將流感病毒株越南1194/04(H5N1，分系群1)或印尼05/2005(H5N1，分系群2)之病毒懸浮液與以霍亂濾液(自霍亂弧菌培養取得)預先處理之血清樣本的系列(2倍)稀釋液一起培育。接著，將紅血球加入稀釋液中，培育後，顯示出完全抑制血球凝集之作用劑的最大稀釋倍數即定義為HI之力價。

病毒中和(VN)分析係根據血清之終點滴定。簡單地說，將固定量之病毒與血清樣本之系列(2倍)稀釋液混合。利用MDCK細胞作為指示細胞讀取病毒中和作用並藉紅血球凝集作用來將其可視化。將其中有50%之經接種的細胞培養顯示出紅血球凝集的血清最高稀釋倍數作為VN力價的積分。

驗屍時收集左肺，並以10%中性-緩衝的福馬林固定之以供組織病理學檢查。固定後，將組織包埋在石蠟中，製作組織切片並以蘇木紫及伊紅染色(Haematoxylin-Eosin stain)，以供組織學檢查。記錄所觀察到之病理變化的描述及程度。

結果

在第一次及第二次接種疫苗後，5組治療組中無一動物之注射部位顯示出任何疼痛或腫脹。再者，在注射部位並無皮膚異常之記錄。在接種疫苗後及挑戰前，藉由線性混合模型分析，治療組間之體溫在0.1顯著水準下並無顯著差異。在第0天之第一次接種疫苗前及數天後，一隻T01動物發燒(≧40℃)。接種疫苗後(第0及21天)，記錄個別動物體溫達40℃或更高之陣發性體溫增加。研究期間未觀察到與接種疫苗相關之異常健康。在挑戰前有三隻動物(二隻在T02-H5N2組中，一隻在T05-生理食鹽水組中)因先天性高草酸尿症被安樂死。來自所有治療組之數隻動物在植入溫度記錄器後出現傷口併發症。自第0天至研究完成並未同時投服治療。

與對照組T04及T05動物相比較，經接種疫苗之T01、T02及T03動物在挑戰後顯示出較少之臨床徵兆且無死亡率。T01中，一隻動物在挑戰2天後顯示出沮喪及增加呼吸運作。剩餘之五隻T01動物在挑戰後無一顯示出任何異常健康。T02(n=4)及T03(n=6)中，所有動物在挑戰後保持健康。T04(n=6)中，挑戰後2天在二隻動物中可見到第一個異常之臨床徵兆(沮喪及增加呼吸運作)。挑戰後3天，T04中之所有6隻動物均可見到沮喪及增加呼吸運作。因此，為了安樂之理由，有2隻動物必須接受安樂死。挑戰後4天(第53天)，一隻動物被發現已死亡，剩餘之3隻T04動物顯示出沮喪、增加呼吸運作、第三眼瞼脫出及流鼻水，並且為了安樂之理由必須接受安樂死。T05(n=5)中，挑戰後1天在1隻動物中可見到第一個異常之臨床徵兆(沮喪及增加呼吸運作)。挑戰後2天，增加2隻動物開始顯示出那些徵兆。挑戰後3天，一隻動物被發現已死亡，剩餘之4隻動物顯示出沮喪、增加呼吸運作及第三眼瞼脫出。接著，一隻動物為了安樂之理由必須接受安樂死。挑戰後4天，剩餘之3隻動物中有1隻之呼吸運作惡化，另一隻動物額外顯示出流鼻水。挑戰後4天(第53天)，所有剩餘之3隻動物為了安樂之理由而接受安樂死。

挑戰後，經接種疫苗之動物(T01、T02及T03)的平均體溫保持在低於40℃。在挑戰後一天開始對照組動物(T04及T05)之平均溫度上升至≧40.0℃。藉由線性混合模型分析，治療組間之平均體溫的差異顯著(p=0.0001)。個別動物數據顯示出第53天時少數之T01、T02及T03動物的體溫在零星之時間點上升至40.0℃及更高。T01中有2隻動物在一個時間點發燒(範圍係從40.0至40.1℃)。T02中有2隻動物分別在一個及三個時間點發燒(範圍係從40.0至40.3℃)。T03中有1隻動物在三個時間點發燒(範圍係從40.0至40.3℃)。T04及T05中所有動物在第50至51天之間至少發燒12小時。

在第一次及第二次接種疫苗前及挑戰前測定抗流感病毒株越南1194/04(H5N1，分系群1)及印尼05/2005(H5N1，分系群2)之HI抗體力價。偵測下限為5。接種疫苗前，所有5組治療組中之力價係低於下限5。與接種疫苗前之數值相比較，接種疫苗後所有經接種疫苗(T01、T02及T03)之動物發展出高於5之HI抗體力價並顯示出力價至少增加6倍。在T01及T03中，第一次接種疫苗後，抗越南1194/04之力價為20至160，第二次接種疫苗後為140至960。在T02中，第一次接種疫苗後，抗越南1194/04之力價係低於T01及T03中所測得之力價，範圍在5至30，第二次接種疫苗後為5至70。抗印尼05/2005之HI抗體力價與抗越南1194/04之力價類似。

藉由H5N1特異性即時RT-PCR測試挑戰前及後採取之血漿樣本的病毒負載。所有動物在挑戰前之樣本為病毒陰性。挑戰後，T01及T03動物之血漿中未偵測到病毒。相反地，25%(四分之一)的T02動物、67%(六分之四)的T04動物及60%(五分之三)的T05動物在挑戰後之血漿為病毒陽性。藉由線性混合模型分析，治療組間之差異具顯著性(p=0.0247)。

藉由即時RT-PCR及病毒滴定評估挑戰後之咽喉拭子樣本中的病毒排出，並藉由即時RT-PCR測試直腸拭子樣本中的病毒排出。挑戰後，T01動物之咽喉中未偵測到病毒排出。T02中，所有4隻動物(100%)在挑戰後之一個時點均排出病毒。T03中，6隻動物中有2隻動物(33%)在挑戰後排出病毒。T04中，6隻動物中有3隻動物(50%)在挑戰後排出病毒。T05中，5隻動物中有4隻動物(80%)在挑戰後排出病毒。挑戰後5天未自T04及T05動物採取樣本，因為所有動物自那時起開始死亡。然而，為了進行統計分析，在研究最後一天前已死亡或被安樂死之動物的最後測試結果前推至研究最後一天。

具有RT-PCR陽性結果(≧1.8CDU)之咽喉樣本亦用於病毒滴定分析中。病毒滴定確認所有RT-PCR陽性樣本均含有感染性流感病毒(數據未顯示出)。在經接種疫苗之動物(T02及T03)中，感染性病毒力價低於對照組動物(T04及T05)。在挑戰後3天比較T02與T04或T03與T04時，及挑戰後4和5天比較T02與T05或T03與T05時，這些差異顯著。T02及T03動物中之力價為0.5log₁₀ TCID₅₀ 。T04中之力價為2.3至4.3 log₁₀ TCID₅₀ 。T05中之力價為1.5至3.8 log₁₀ TCID₅₀ 。

挑戰後3或4天在所有治療組(T02除外)中偵測糞便中藉由直腸拭子來評估之病毒排出。藉由RT-PCR所偵測到的病毒量在T01中為2.2至2.3 log₁₀ CDU、T03中為3.2 log₁₀ CDU、T04中為2.0至2.7 log₁₀ CDU且T05中為2.2 log₁₀ CDU。在0.1之顯著水準下，各治療組間在挑戰後之任一天均無顯著差異。

經接種疫苗之動物(T01、T02及T03)的肺病變較對照組動物(T04及T05)不嚴重。所有經接種疫苗之動物出現溫和、多病竈、亞急性支氣管性間質性肺炎。對照組動物顯示出中度(二隻T04動物及一隻T05動物)或嚴重(四隻T04動物及四隻T05動物)之亞急性支氣管性間質性肺炎，除了二隻對照組動物(一隻T04動物及一隻T05動物)顯示出瀰漫性分佈外，所有動物均顯示出多病竈分佈。評估整個肺之實變程度，其係以全部肺組織之實變百分比表示。與肺病變之發現相符，經接種疫苗之動物(T01、T02及T03)的實變百分比明顯低於對照組動物(T04及T05)。

藉由病毒滴定及H5N1 RT-PCR評估動物死亡或安樂死時收集之肺組織中的病毒負載。來自經接種疫苗之動物(T01、T02及T03)的肺組織較來自對照組動物(T04及T05)的平均病毒力價明顯為低。來自經接種疫苗之動物(T01、T02及T03)的肺組織的平均力價間並無明顯差異。藉由RT-PCR分析可產生相同結果。

以高致病性H5N1禽流感病毒株挑戰後可在接受佐劑(T04)或生理食鹽水(T05)之對照組動物中觀察到的臨床徵兆包括發燒、死亡、病毒血症、病毒自喉嚨及糞便中排出、肺之病毒性感染及肺病變(包括實變)。

以純化之H5 HA蛋白質(T01)為6隻小貓進行疫苗接種可預防以高致病性H5N1禽流感病毒株挑戰後之病毒血症、自喉嚨排出病毒及死亡。再者，以純化之H5 HA蛋白質(T01)進行疫苗接種可減輕臨床徵兆，包括發燒、肺中之病毒負載染及肺病變(包括實變)。

以去活化之H5N2株(T02)為4隻小貓進行疫苗接種可預防以高致病性H5N1禽流感病毒株挑戰後之臨床徵兆、自糞便排出病毒及死亡。再者，以去活化之H5N2株(T02)進行接種疫苗可減輕病毒血症、發燒、病毒自喉嚨中排出、肺中之病毒負載及肺病變(包括實變)。

以去活化之H5N1株(T03)為6隻小貓進行疫苗接種可預防以高致病性H5N1禽流感病毒株挑戰後之臨床徵兆、病毒血症及死亡。再者，以去活化之H5N1株(T03)進行疫苗接種可減輕發燒、病毒自喉嚨中排出、肺中之病毒負載及肺病變(包括實變)。

摘要

使用以去活化或純化之HA抗原與QC/DC佐劑配製之疫苗時未觀察到注射部位反應。該疫苗可在經接種疫苗之貓體內提供臨床疾病及死亡之完整保護，明顯減少血液及組織中之病毒負載且明顯減少病毒排出。

實例21.癌症

背景

本研究係在免疫缺乏及免疫適格(immunocompetent)之大鼠中，利用人及大鼠之肝細胞性癌細胞進行以產生異位及常位模型。

動物

自查爾斯河(Charles River)(麻州威明頓市)購買6-8週大之裸(Crl：NIH-rnu)雄鼠。將大鼠成對置於聚碳酸酯之微小隔離飼育籠中並提供可任意取得之逆滲透水及經放射照射之標準大鼠食品；所有水及床鋪均經高壓滅菌。每週記錄體重二次；維持動物約7週，在實驗結束時藉由吸入CO₂ 進行安樂死。

實驗設計合併二種階段。階段Ⅰ中根據大鼠之體重將其任意分成二組。第1組中之大鼠未接受腫瘤細胞注射，而第2組中之大鼠接受皮下注射腫瘤細胞。在腫瘤注射後3週將第2組大鼠任意(根據腫瘤尺寸及達到速度-見表19)分成二組以用於階段Ⅱ中，其中一組包括二個次群：1)接受生理食鹽水之非腫瘤攜帶對照組(對照組)；2)僅以佐劑治療之腫瘤攜帶對照組(腫瘤組)；及3)給予疫苗劑量(相隔二週給予二次皮下注射)之腫瘤攜帶個體(腫瘤治療組)。在第二次投服疫苗後14天為所有動物驗屍。

疫苗

經由皮下注射投服每劑量0.2毫升之疫苗。

疫苗製品

利用Quil-A(20微克/劑量)、膽固醇(20微克/劑量)、DDA(10微克/劑量)、卡波姆(0.05%)，加上或不加上糖脂Bay R1005(1000微克/劑量)及抗原來製備疫苗。利用均化器攪拌組成物並依上述次序加入。

抗原製備方法

自美國模式菌種收集中心(ATCC，維吉尼亞州Manassas市)取得HepG2細胞(選殖系HB-8065)。HepG2為一種永生細胞株，其係自15歲大白種男性之分化良好的肝細胞癌的肝組織衍生。在標準細胞培養條件下據充細胞並在基質膠(Matrigel)中製成1×10⁷ 細胞/毫升之濃度以用於注射。經由皮下途徑在第二次治療部位為每一隻大鼠注射0.5毫升之細胞懸浮液。

測量

在整個研究過程中藉由徑測法每週二次測量腫瘤尺寸，其中體積(以立方公分計)={[W(毫米)×W(毫米)]/2×L(毫米)}/1000。藉眼後採血收集血液以供血清化學及生物標記之測量。在採血程序期間以CO₂ /O₂ 為動物輕度麻醉。利用日立917自動分析儀(印第安那州印第那波里市羅氏公司)分析化學終點。最後之血液樣本係在CO₂ 麻醉下藉由心臟穿刺採取。利用市售之ELISA分析評估血清終點：α-胎蛋白(R&D系統，明尼蘇達州明尼亞波里市)及人類白蛋白(Bethyl實驗室，田納西州Montgomery)。經由吸入CO₂ 將動物安樂死。切除腫瘤，稱重並置於福馬林中以供組織學檢查。

使用學生非成對T檢定(Student's unpaired T-test)來比較治療組及對照組大鼠間之不同參數。所有數值係以平均值±SD表示且p<0.05被認為統計上有意義。

結果

經由減除腫瘤重量來校正體重之測量值(根據體積數據及假設1立方公分=1克)。二種方式分析數據：藉治療組及藉腫瘤攜帶動物或非腫瘤攜帶動物。當比較腫瘤攜帶動物及非腫瘤攜帶動物之體重時，最終時間點時各組間具顯著差異；基線處並無差異。即使可能因研究期短而在比較治療組時體重並無顯著差異，相對於對照組而言，在二組腫瘤攜帶組中均有可察知之體重減輕的傾向，且當與接受載劑而無抗原之腫瘤攜帶動物相比較時，接受疫苗之動物具有朝向復原之正面傾向(表20)。再者，實驗期間之體重的百分比變化與結束時之腫瘤體積(γ² =0.72)或腫瘤重量(切除的)(γ³ =0.73)間有合理的關係。

腫瘤尺寸

在四週之期間內比較對照組大鼠之腫瘤尺寸及經疫苗治療之大鼠的腫瘤尺寸。雖然經比較之各組間並未發現統計上的顯著差異(由於腫瘤尺寸變化大)，但全部腫瘤體積強烈傾向減小(表21)，接受疫苗之大鼠的平均切出腫瘤重量(表22)亦降低。

血清分析

在研究期間內之不同時間點藉由ELISA測量人α-胎兒蛋白(AFP)。將這些數據與體重及腫瘤尺寸數據一起使用以將動物任意分至治療組。來自此研究之數據及歷史數據指出AFP僅能在帶有腫瘤之動物中偵測到。腫瘤對照組及治療組之縱向AFP數據的比較指出在第一次疫苗注射後，治療組之動物的AFP降低，且在研究結束時，治療組之動物的AFP相對於帶有腫瘤之對照組動物的AFP低很多；分別是載劑治療組大鼠之4.78±3.2奈克/毫升相對於疫苗治療組大鼠之0.97±2.5奈克/毫升。此外，AFP顯示出與腫瘤體積及切出之腫瘤重量二者有關。

在研究期間內之不同時間點藉由ELISA測量人白蛋白(hALB)。來自此研究之數據及歷史數據指出hALB僅能在腫瘤攜帶動物中偵測到。腫瘤對照組及治療組之hALB數據的比較指出在研究結束時，治療組之大鼠的hALB相對於腫瘤攜帶對照組之大鼠低很多(數據未顯示出)。此外，類似於AFP，hALB顯示出明與腫瘤體積及切出之腫瘤重量二者有關(數據未顯示出)。

在整個研究之不同時間點分析核心血清化學組。該組包括AST、ALT、膽固醇、鹼性磷酸酶、GGT、BUN、葡萄糖、肌酸、總膽紅素、總蛋白質、白蛋白、球蛋白及礦物質Ca、P、Na、K及Cl。類似於體重，以二種方式分析數據：藉治療組及藉由腫瘤攜帶動物或非腫瘤攜帶動物。可觀察到差異之終點僅有：AST、ALT及膽固醇。藉由二種比較，在基線時點處各組間並無顯著差異(數據未顯示出)。當比較腫瘤攜帶動物與非腫瘤攜帶動物之化學指數時，各組間在最終時點具顯著差異，腫瘤攜帶動物中的AST、ALT、膽固醇提高(數據未顯示出)。

結論

集合我們的數據可證明相對於接受載劑之腫瘤攜帶對照組，以疫苗(其為對抗HepG2腫瘤細胞株之疫苗)治療之動物的腫瘤負擔減輕。

實例22. CpG

背景

此處所描述之佐劑為一種強疫苗佐劑平臺，其可利用佐劑作為CpG之遞送系統而經由使用ORN/ODN(CpG)加強免疫反應來增強。

材料及方法

在研究中使用體重約18-20克之雌C57BI/6小鼠(n=10/組)。在研究第0、14及21天將總體積50微升經由肌肉內途徑(IM)注射入左脛前肌將其免疫化。

試劑劑量

該組成物之劑量包含在不同組合中之一或多種下列組成分：

緩衝劑：NaH₂ PO₄ ‧2H₂ O(229.32毫克/升)、NaCl(1168.00毫克/升)及Na₂ HPO₄ (1144.00毫克/升)，溶解於WFI中並以0.1微米過濾器進行無菌過濾

卵白蛋白(OVA-抗原)：10微克

CpG ODN：10微克

膽固醇：1微克

Quil A：1微克

DDA：0.5微克

卡波姆：0.0375%

R1005：50微克

疫苗製備方法

將緩衝劑置於具有攪拌棒之50毫升培養盒中，並在下列全部步驟中以固定速度攪拌。以下列順序加入組成分：抗原(OVA)；CpG ODN；Quil A；膽固醇(一滴滴)；DDA(一滴滴)；卡波姆；及Bay R1005。將組成物在室溫(約25℃)下最少攪拌30分鐘，一邊藉由以鋁箔紙覆蓋來避光。將溶液強行通過25G針進入注射筒以使任何漂浮粒子破裂，以取得均勻(混濁)之懸浮液，再將其轉移至無菌玻璃小瓶中以供貯存。

樣本收集

收集下列樣本：

血漿：在初次接種疫苗後4週(第二次加強之疫苗接種後1週)

細胞毒性T淋巴球(CTL)(初次接種疫苗後6週(第二次加強之疫苗接種後3週))

上清液中之細胞活素分泌物(初次接種疫苗後4週)

24-小時上清液(IL-2、IL-4、IL-10；TNF)

72-小時上清液(IFN-g)

四聚體(初次接種疫苗後4週)

製造細胞活素之T細胞(初次接種疫苗後6週)

結果係以各顯示出佐劑效果之佐劑的相對積分之形式提供。終點為以個別細胞毒性T淋巴球反應的總和為基礎之相對尺規。

結果及討論

如表23中所呈現者，QCDCR加OVA可產生較其子成分強之CTL反應，然而，總體反應低(<20%)。將QCDCR或其子成分與CpG組合可顯著改良OVA-特異性CTL反應。全部QCDCR/CpG加OVA可產生最強之CTL反應，然而，此組與膽固醇/CpG加OVA(為25：1之比例)間在反應上並無顯著差異。藉由ELISA分析來自以OVA(1毫克/毫升)刺激之脾臟細胞的培養上清液之細胞活素。單獨之QCDCR或其子成分僅能產生非常弱之細胞活素反應。將QCDCR或其子成分與CpG組合可增加抗原特異性IL-2及IFN-g(Th1偏移型細胞活素)之分泌。QCDCR與CpG在擴大細胞性免疫反應上的效力相等。將此二者組合顯示出具協同效果。當分析QCDCR之子成分與CpG時，與Quil A之組合可產生最佳反應，其次為包含膽固醇與CpG。

實例23.犬冠狀病毒(CCV)

範圍

使用老鼠模型，利用犬冠狀病毒(CCV)及新穎之組合佐劑來評估具指定之抗原成分的佐劑效能。

動物

每一治療組中有10隻CF-1小鼠，經由皮下途徑投予每一治療組中之每隻動物0.2毫升。

治療組

表24中所示之測試調製劑係製備成具下列指定濃度之1.0毫升場域劑量體積。每一隻小鼠僅投服0.2毫升疫苗。

疫苗之製備方法

本發明佐劑之疫苗的製備方法描述於上述實例1-13。該佐劑組成分之濃度提供於表24中。依表中之次序加入佐劑。

將生理食鹽水增效劑加入容器中並開始均化。加入表24中所示濃度之去活化的CCV。加入表24中所列濃度之Quil A。然後，加入在乙醇溶液中之膽固醇，並持續均質化。然後，在均質化期間加入DDA/乙醇溶液。將混合物在10,000psi微射流均質化。再一邊混合，一邊加入卡波姆，將pH調整為6.8至7.2。然後，一邊混合，一邊加入Bay R1005糖脂。最後，以生理食鹽水增效劑使組成物達到最後體績。

用於接受市售AbISCO產品(瑞典，Isconova)之治療組的疫苗係根據標籤指示製造。AbISCO產品係利用高度純化之皂素並根據天然皂角苷及ISCOM技術。

分析方法：βCCV血清中和

在56℃將血清加熱去活化30至40分鐘。在一乾淨無菌的盤中，經由將120微升之各血清加入120微升稀釋劑中來製備系列稀釋液(未稀釋者、2、4、8...)。使用至少二份複製之槽/稀釋液。若需要時，先使用1：16之稀釋倍數。將活CCV稀釋成在120微升中含有約240個病毒顆粒的濃度以製備工作挑戰貯存液。然後，將120微升之各血清稀釋液與120微升之病毒溶液合併成總體積240微升。將溶液混合並保持在室溫(約25℃)30至60分鐘，以使其中和。然後，將120微升之各系列稀釋液轉移到7至12天前植入之靜候的裸出NLFK細胞單層。4至6天後評估CPE。反滴定可確認有50至316個病毒顆粒攻擊每一單層。

結果

摘要

考慮各組成分之化學性質，與CCV一起配製之佐劑的組合效果可提供用於疫苗佐劑之優越性質。

此研究之血清學結果顯示於表25中。較高之血清中和抗體力價通常係與疫苗所提供之較佳保護有關。數種本發明之佐劑調製劑可產生較市售之添加佐劑的產物高出許多的力價，即使這些調製劑具有類似量之添加的CCV抗原。該QCDC、QCR、DRC、QCRC及QCDRC調製劑在誘導小鼠體內之良好免疫反應上特別有效。

實例24.牛輪狀病毒抗原

範圍

利用牛輪狀病毒抗原及本發明之組合佐劑，使用老鼠模型來評估具指定之抗原組成分的佐劑效能。

動物

每一治療組中有10隻CF-1小鼠，經由皮下途徑投服給每一治療組中之每隻動物0.2毫升。

治療組

表26中所示之測試調製劑係製備成具下列指定濃度之2.0毫升場域劑量體積。每一隻小鼠僅投服0.2毫升疫苗。

疫苗之製備方法

本發明佐劑之疫苗的製備方法描述於上述實例1-13。該佐劑組成分之濃度提供於表26中。依表中之次序加入佐劑。

將生理食鹽水增效劑加入容器中並開始均質化。加入表26中所示濃度之去活化的牛輪狀病毒。加入表26中所列濃度之Quil A。然後，加入膽固醇/乙醇溶液，並持續均質化。然後，在均質化期間加入DDA/乙醇溶液。將混合物在10,000psi微射流均質化。再一邊混合，一邊加入卡波姆，將pH調整為6.8至7.2。然後，一邊混合，一邊加入Bay R1005糖脂。最後，以生理食鹽水增效劑使組成物達到最後體續。

用於接受市售AbISCO產品(瑞典，Isconova)之治療組的疫苗係根據標籤指示製造。AbISCO產品係利用高度純化之皂素並根據天然皂角苷及ISCOM技術。

結果

考慮各組成分之化學性質，與牛輪狀病毒一起配製之佐劑的組合效果可提供用於疫苗佐劑之優越性質(見表27)。

雖然該佐劑調製劑中有數種可提供類似程度之血清中和抗體力價，但QCDCR佐劑提供最高之水準。

實例25.犬流感病毒

範圍/研究設計

利用犬流感病毒(CIV)及新穎之組合佐劑，使用犬模型來評估具指定之抗原組成分的佐劑效能。

本研究具有隨機完全區集設計(見表28)。將動物根據生日分類以形成大小為5之區集。同一區集內的動物被隨機指定治療法。在相同區集內之動物被隨機分配至彼此靠近之圍欄(籠子)。動物之健康良好，對市售之疫苗無過敏病史。動物並未接受對抗CIV之疫苗。

疫苗之製備方法

本發明佐劑之疫苗的製備方法描述於上述實例1-13。該佐劑組成分之濃度提供於表29中。依表中之次序加入佐劑。

將生理食鹽水增效劑加入容器中並開始均質化。加入表29中所示濃度之去活化的犬流感病毒。加入表29中所列濃度之Quil A。然後，加入膽固醇/乙醇溶液，並一邊持續均質化。然後，在均質化期間加入DDA/乙醇溶液。將混合物在10,000psi微射流均質化。再一邊混合，一邊加入卡波姆，將pH調整為6.8至7.2。最後，以生理食鹽水增量劑使組成物達到最後體績。

測試

藉由根據USDA之標準分析方法，利用紅血球凝集抑制(HAI)分析來評估血清學。

結果/摘要

表30中呈現第42及180天之HAI Geo.平均力價的THE血清學結果。

考慮各組成分之化學性質，與流感病毒一起配製之佐劑的組合效果可提供用於疫苗佐劑之優越性質。

較高之抗體力價通常與疫苗所提供之較佳保護有關。一般而言，鋁佐劑(T02)及本發明之佐劑(T03、T04及T05)可使HAI力價升高，但在第180天，於高劑量組(T05)中由本發明之佐劑引起的反應較優越，具較高之力價。低劑量及中劑量之本發明佐劑的力價與習知之用於流感病毒的含鋁佐劑的力價相等。此外，由於本發明之佐劑可提供輔助性T細胞1免疫反應，而鋁則無，因此預期有較長之免疫期且具有較快之召回機制。

第1圖描述藉由放射免疫沈澱分析之凝膠泳行，其顯示BVD病毒之NS2/3蛋白質及E2蛋白質間的抗體變化形廓差異。經PreZent A治療組顯示對NS2/3蛋白質及E2蛋白質二者之抗體反應，而經QCDC及QCDCR治療組則顯示出僅對E2蛋白質有抗體反應，對NS2/3蛋白質則無。

Claims (21)

1. 一種致免疫組成物，其包含佐劑調製劑及免疫上有效量之抗原成分，其中該佐劑調製劑包含每劑量1微克至1,000微克之Quil A或其純化之餾分、每劑量1微克至1,000微克之膽固醇、每劑量1微克至1,000微克之二甲基雙十八烷基溴化銨(DDA)、含量為0.0001%體積對體積(v/v)至75% v/v之聚丙烯酸及每劑量1微克至20毫克之CpG。
2. 如申請專利範圍第1項之致免疫組成物，其另包含每劑量0.01毫克至10毫克之醋酸N-(2-去氧基-2-L-白胺醯胺基-β-D-吡喃葡糖基)-N-十八烷基十二碳醯胺。
3. 如申請專利範圍第1項之致免疫組成物，其另包含含量為1至50% v/v之油。
4. 如申請專利範圍第1至3項中任一項之致免疫組成物，其中該抗原成分選自：(1)含量為100ng/ml至350,000ng/ml之去活化之貓白血病病毒(FeLV)、貓流感病毒(FIV)、第1型牛病毒性腹瀉病毒(BVDV-1)、BVDV-2、犬冠狀病毒(CCV)、牛輪狀病毒或狗流感病毒(CIV)、(2)含量為1×10⁶ 至5×10¹⁰ 菌落形成單位(CFU)之豬肺炎黴漿菌(Mycoplasma hyopneumonia )、(3)每劑量4×10⁹ 至5×10⁹ 個細胞之大腸桿菌及(4)每劑量10⁵ 至10¹⁰ 個細胞之HepG2細胞。
5. 如申請專利範圍第4項之致免疫組成物，其中該去活化之FeLV另包含由持續受KT-FeLV-UCD-1病毒株感 染之FL-74細胞株所製造之gp70。
6. 如申請專利範圍第1至3項中任一項之致免疫組成物，其係疫苗。
7. 一種如申請專利範圍第1至3項中任一項之致免疫組成物於製備用於治療貓以對抗由FeLV引起之感染的藥物之用途。
8. 一種如申請專利範圍第1至3項中任一項之致免疫組成物於製備用於治療貓以對抗由FIV引起之感染的藥物之用途。
9. 一種如申請專利範圍第1至3項中任一項之致免疫組成物於製備用於治療牛以對抗由大腸桿菌引起之感染的藥物之用途。
10. 一種如申請專利範圍第1至3項中任一項之致免疫組成物於製備用於治療牛以對抗由BVDV-1或BVDV-2引起之感染的藥物之用途。
11. 如申請專利範圍第10項之用途，其另包含測量得自該牛之樣本的E2蛋白質及NS2/3蛋白質之含量，其中缺乏該NS2/3蛋白質表示該牛係經該致免疫組成物接種。
12. 一種如申請專利範圍第1至3項中任一項之致免疫組成物於製備用於治療豬以對抗由豬肺炎黴漿菌引起之感染的藥物之用途。
13. 一種如申請專利範圍第1至3項中任一項之致免疫組成物於製備用於治療人或動物之肝細胞癌的藥物之用 途。
14. 一種如申請專利範圍第1至3項中任一項之致免疫組成物於製備用於治療狗以對抗由CCV引起之感染的藥物之用途。
15. 一種如申請專利範圍第1至3項中任一項之致免疫組成物於製備用於治療牛以對抗由牛輪狀病毒引起之感染的藥物之用途。
16. 一種如申請專利範圍第1至3項中任一項之致免疫組成物於製備用於治療狗以對抗由CIV引起之感染的藥物之用途。
17. 一種用於卵胚胎內投予之鳥類球蟲症疫苗，其包含：(a)佐劑調製劑，其包含每劑量1微克至1,000微克之Quil A或其純化之餾分、每劑量1微克至1,000微克之膽固醇、每劑量1微克至1,000微克之二甲基雙十八烷基溴化銨(DDA)、含量為0.0001%體積對體積(v/v)至75% v/v之聚丙烯酸及每劑量1微克至20毫克之CpG；及(b)艾美球蟲(Eimeria)抗原。
18. 如申請專利範圍第17項之鳥類球蟲症疫苗，其另包含每劑量0.01毫克至10毫克之醋酸N-(2-去氧基-2-L-白胺醯胺基-β-D-吡喃葡糖基)-N-十八烷基十二碳醯胺。
19. 如申請專利範圍第17項之鳥類球蟲症疫苗，其中該艾美球蟲抗原係每劑量50微克至100微克之23kDA 3-1E蛋白質或Etp100蛋白質。
20. 一種製備如申請專利範圍第1項之致免疫組成物之方法，其包含下述步驟：(a)在緩衝劑中製備包含該抗原成分的組成物並將含量為1微克至20毫克之CpG加入該組成物中；(b)將含量為1微克至1,000微克之Quil A或其純化之餾分加入步驟(a)之組成物中；(c)將含量為1微克至1,000微克之膽固醇加入步驟(b)之組成物中；(d)將含量為1微克至1,000微克之二甲基雙十八烷基溴化銨(DDA)加入步驟(c)之組成物中；及(e)將含量為0.0001%體積對體積(v/v)至75% v/v之聚丙烯酸加入步驟(d)之組成物中。
21. 如申請專利範圍第20項之方法，其另包含步驟(f)：將含量為0.01毫克至10毫克之醋酸N-(2-去氧基-2-L-白胺醯胺基-β-D-吡喃葡糖基)-N-十八烷基十二碳醯胺加入步驟(e)之組成物中。