CN103756964B - 一种高效扩增cd3-cd56+的自然杀伤细胞培养系统的方法 - Google Patents
一种高效扩增cd3-cd56+的自然杀伤细胞培养系统的方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN103756964B CN103756964B CN201310755088.3A CN201310755088A CN103756964B CN 103756964 B CN103756964 B CN 103756964B CN 201310755088 A CN201310755088 A CN 201310755088A CN 103756964 B CN103756964 B CN 103756964B
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- cell
- natural killer
- monoclonal antibody
- peripheral blood
- amplification
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
本发明涉及一种高效扩增CD3-CD56+的自然杀伤细胞培养系统的构建方法,经抗HER2单抗包被、NK细胞的活化和NK细胞的扩增,培养14天后即得CD3-CD56+的自然杀伤细胞培养系统。本发明构建方法采用的抗HER2单抗在1998年已被美国FDA认证的可用于临床的药物,IL-2、IL-15和IL-21均为临床用药,原料来源广泛,成本低廉,方法简单,易于操作,扩增效率高,易于推广。
Description
技术领域
本发明属于免疫学与分子生物学技术领域,涉及生物制品的扩增方法,尤其是一种高效扩增CD3-CD56+的自然杀伤细胞培养系统的方法。
背景技术
NK细胞1975年被发现,在形态上属于大颗粒淋巴细胞,来源于骨髓,占外周血淋巴细胞总数的5%-10%。它具有广谱抗肿瘤细胞作用,特别是对淋巴细胞瘤和白血病细胞作用更为明显,是抗肿瘤免疫的第一道防线,针对NK敏感靶细胞(如K562细胞)的杀伤效应,该杀伤功能不受靶细胞是否表达MHC的影响;NK细胞还是连接天然免疫和获得性免疫的重要环节。在DC激发CTL反应的过程中,NK细胞能发挥类似TH细胞的辅助功能(MailliardRB,etal.J.Immunol,2003,171:2366)。近期的研究表明,NK细胞和树突状细胞(DC)相互作用,能够提高DC激发CD4+TH1反应及CTL反应的能力(AdamC,etal.Blood,2005,106:338)。甚至NK细胞还有直接激活T细胞的能力。
由于NK细胞在免疫应答中的独特作用,其在肿瘤细胞治疗中应用越来越受到重视。然而,NK细胞在体内的数量越少,如何获得足够数量的NK细胞成为制约其临床应用的瓶颈,而且目前的方法扩增的NK对实体瘤的杀伤作用仍非常有限。另外,研究发现在肿瘤患者体内NK细胞数量增多其功能反而下降,NK细胞最多的人往往正是易患癌症的人,这说明肿瘤患者体内的NK细胞可能存在缺陷。因此,如何提高NK细胞的数量及增强其功能成为困扰医疗界的难题。
HER2蛋白是一种由原癌基因Her2/neu编码的具有酪氨酸激酶(tyrosinekinase,TPK)活性的跨膜糖蛋白,由胞外区、跨膜区及胞内区构成,分子量185kDa,是表皮生长因子受体(epidermalgrowthfactorreceptor,EGFR)家族成员之一。HER2在调节肿瘤细胞生长、分化及存活起着重要作用,HER2的过表达是由原癌基因扩增或转录异常,或基因突变激活所致。所以在人类肿瘤中,特别是许多恶性肿瘤中存在HER2不同程度的过表达。HER2主要通过多种途径促进细胞的增殖、分化以及抑制凋亡HER2还可通过促进Fnl4(fibroblastgrowthfactorinducible14)的表达和增强肿瘤细胞对乙醇的敏感性等途径增强肿瘤细胞的浸润作用。Willis等发现在乳腺癌中HER2可促进Fnl4的表达,Ma等¨3l贝U发现在体外实验中过表达的HER2可使肿瘤细胞对乙醇的敏感性增强.随着肿瘤细胞中HER2相关的分子研究的深入,作用于新靶点的肿瘤治疗药物逐渐被研发,即出现了如抗HER2抗体、肽预苗、DNA预苗、HER2信号转导抑制剂等。靶向HER2相关分子的药物也取得一定抑制肿瘤的效果。
我们采用的抗HER2单抗是一种重组DNA衍生的人源化单克隆抗体,选择性地作用于人表皮生长因子受体-2(HER2)的细胞外部位。此抗体属IgGl型,含人的框架区,及能与HER-2结合的鼠抗-p185HER2抗体的互补决定区。人源化的抗HER2抗体是由悬养于无菌培养基中的哺乳动物细胞(中国仓鼠卵巢细胞CHO)产生的,用亲合色谱法和离子交换法纯化,包括特殊的病毒灭活的去除程序。
HER2过表达细胞对于肿瘤坏死因子a(TNF-a)的细胞毒作用常有抗性,抗HER2单抗处理细胞后,使其对TNF-a的敏感性增强。HER2过度表达的肿瘤患者较无过度表达的无病生存期短。HER2的过度表达可通过以下方法诊断:对肿瘤组织块以免疫组化为基础的评价法,组织或血浆样品的ELISA法或荧光原位杂交(FISH)。因此抗HER2单抗在体外及动物实验中均显示可抑制HER2过度表达的肿瘤细胞的增殖。另外,抗HER2单抗是抗体依赖的细胞介导的细胞毒反应(ADCC)的潜在介质。在体外研究中,抗HER2单抗介导的ADCC被证明在HER2过度表达的癌细胞中比HER2非过度表达的癌细胞中更优先产生。抗HER2单抗可以刺激机体产生针对肿瘤的特异性免疫反应诱导免疫记忆,打破免疫耐受从而有效的减少肿瘤复发、转移,提高患者的生存期提供了可能。
最近的研究表明,共刺激分子抗HER2单抗在NK细胞增殖及功能调解中发挥了极其重要的作用。抗HER2单抗与IL-2、IL-15、IL-21协同刺激细胞,并表达在NK细胞的表面参与NK细胞的功能调节,能够促进细胞增殖和IFN-r的分泌,这种激活的CD3-CD56+NK细胞通过和CTL的相互作用增强CTL的杀伤活性。抗HER2单抗协同IL-2、IL-15、IL-21细胞刺激因子激活NK细胞的途径有助于解决NK细胞在肿瘤生物治疗中的临床应用的难题。
通过检索,发现如下几篇与本发明专利申请相关的专利公开文献:
1、NK细胞的扩增(CN102428173A),提供在封闭的细胞培养系统中将NK细胞和NK样T细胞大规模扩增并同时激活的方法,其中该扩增的细胞表现为细胞毒性增强
2、一种体外扩增NK细胞的方法(CN102994449A),具体涉及一种体外大量扩增NK细胞的方法,a.将外周血单个核细胞接种在CD3McAb和CD226McAb预包被的培养瓶中共培养,b.加入IL-2和IL-18共培养72小时以刺激扩增NK细胞,c.将NK细胞与经致死处理的K562细胞和含有IL-2和IL-18的无血清培养基转入细胞培养袋中共培养,d.收获NK细胞,本发明将CD3McAb和CD226McAb两种抗体同时包被,促进细胞因子合成和ADCC作用,显著提高了NK细胞的杀伤毒性,仅仅通过IL-2和IL-18两种细胞因子就实现了对NK细胞的激活和扩增,即保证了NK细胞的扩增倍数和细胞毒性,又降低了细胞培养的成本。
3、一种体外培养条件下扩增人NK细胞的方法(CN101684456),以人外周血单个核细胞(PBMC)为原始培养材料,与采用基因工程的方法构建的刺激NK细胞生长的工程细胞一起共同培养。构建的刺激NK细胞生长的工程细胞是把具有促进NK细胞生长的几种细胞因子(IL-2、IL-12、IL-15、IL-18、4-1BB)表达在K562细胞的表面。该工程细胞经过γ射线照射灭活后与PBMC在体外进行共培养,结果这种刺激方法比目前通用的单纯向培养液中加入可溶性的细胞因子的扩增效果要强几百倍;经过3周的培养,PBMC中的非NK细胞基本上死亡消失,NK细胞大量增殖,NK细胞的纯度达到了96%以上,NK细胞总数扩增了1500倍以上。
4、A-NK细胞分离培养方法(CN1706938),用苯丙氨酸甲酯(PME)去除单核巨噬细胞而不改变淋巴细胞的表型和细胞毒性;在A-NK细胞培养方法的改进中,无血清培养基可替代含血清的完全培养基,二者所得培养物的数目和功能相当,发展无血清培养基用于A-NK细胞的临床生物治疗,即不减少A-NK细胞的数量和活性,又能增加其临床应用的安全性;IL-4可联合IL-2对A-NK细胞的生长有较强的刺激或成熟作用;IL-2和IL-12联合应用可提高活化免疫细胞的杀伤活性。
通过对比,本发明专利申请与上述专利公开文献存在本质的不同。
发明内容
本发明的目的在于克服现有技术的不足之处,提供一种利用抗HER2单抗协同IL-2、IL-15和IL-21激活NK细胞的途径,构造简单,易于操作,扩增效率高,对白血病K562细胞的杀伤明显提高,对NK细胞应用于临床免疫治疗具有重要意义的高效扩增CD3-CD56+的自然杀伤细胞培养系统的构建方法。
为了实现上述目的,本发明所采用的的技术方案如下:
一种高效扩增CD3-CD56+的自然杀伤细胞培养系统的构建方法,步骤如下:
⑴抗HER2单抗包被
用PBS稀释抗HER2单抗,包被T75培养瓶,抗HER2单抗的浓度为10-50ug/cm2,置4℃冰箱过夜,吸弃培养瓶中的稀释液待用;
⑵自体血清的制备
采外周血经Ficoll分离,获得正常血浆,56℃灭活、离心后得到血清,置4℃冰箱储存待用;
⑶NK细胞的活化
采外周血经Ficoll分离获得外周血单个核细胞,用无血清培养基AIM-V调整外周血单个核细胞的浓度至少1×106个/ml,然后加入AIM-V20ml,AIM-V中内含细胞因子IL-2500-1000u/ml、IL-1510-20ng/ml和IL-215-10ng/ml,再加入体积百分数5-10%的血清,记为第0天;
⑷NK细胞的扩增
培养的第3、5、7天补充无血清培养基AIM-V,依次加入40ml、140ml、400ml,并同时添加细胞因子IL-2500-1000u/ml、IL-1510-20ng/ml和IL-215-10ng/ml和5-10%(体积百分数)血清,进行扩增培养,培养14天后,即得CD3-CD56+的自然杀伤细胞。
而且,所述步骤⑴中抗HER2单抗为重组DNA衍生的人源化单克隆抗体。
而且,所述重组DNA衍生的人源化单克隆抗体是由悬养于无菌培养基中的哺乳动物细胞产生,经亲合色谱法、离子交换法纯化和病毒灭活的去除程序获得的。
而且,所述哺乳动物细胞为中国仓鼠卵巢细胞。
而且,所述步骤⑴中抗HER2单抗的浓度为30ug/cm2。
而且,所述步骤⑵中外周血为人的外周血。
而且,所述步骤⑶中外周血为人的外周血。
而且,所述步骤⑵和⑶中细胞因子IL-2、IL15和IL-21的添加量为IL-21000u/ml、IL-1520ng/ml和IL-2110ng/ml。
而且,所述步骤⑶或⑷中血清为人自体血清。
而且,所述步骤⑵中血清为人自体血清。
本发明的优点和积极效果是:
1、本发明构建方法采用的抗HER2单抗在1998年已被美国FDA认证的可用于临床的药物,IL-2、IL-15和IL-21均为临床用药,原料来源广泛,成本低廉,方法简单,易于操作,扩增效率高,易于推广。
2、本发明构建方法所扩增得到的NK细胞与其他已知的细胞因子或细胞因子组合扩增效果相比,具有更高的扩增效率;该构建方法所扩增得到的NK细胞与其他已知的细胞因子或细胞因子组合扩增的NK细胞相比,在相同的细胞浓度下,本发明扩增的NK细胞对K562细胞的杀伤效率提高一倍以上,该系统可用于进行肿瘤病人的生物治疗。
3、本发明扩增方法培养的PBMC(外周血单个核细胞)不仅细胞数量有明显提高,流式细胞仪检测结果证明,CD3-CD56+的NK细胞的百分比明显上升;加抗HER2单抗包被组对K562细胞的杀伤能力比未加抗HER2单抗包被组和同型单抗IgG1包被组有明显的提高,因此抗HER2单抗一种重要的NK细胞调节因子,可以促进NK细胞的增殖、活化、杀伤及分泌等功能;该方法获得的NK细胞活性好(86.6%杀伤率)、纯度高(85.4%),且该方法简便实用,有望成为探索NK细胞过继免疫治疗的一重要平台。
附图说明
图1为本发明采用3种不同组分培养的人外周血PBMC增殖分析图;
其中,1为Anti-Her2mAb+IL-2+IL-15+IL-21组;2为IgG1mAb+IL-2+IL-15+IL-21组;3为IL-2+IL-15+IL-21组;
图2采用3组不同组分培养的人外周血PBMC14天后CD3-CD56+NK细胞免疫表型测定的分析图;
其中,1为Anti-Her2mAb+IL-2+IL-15+IL-21组;2为IgG1mAb+IL-2+IL-15+IL-21组;3为IL-2+IL-15+IL-21组;
图3采用四唑盐(MTT)方法测定NK细胞对K562细胞的杀伤活性分析图;
其中,1为Anti-Her2mAb+IL-2+IL-15+IL-21组;2为IgG1mAb+IL-2+IL-15+IL-21组;3为IL-2+IL-15+IL-21组。
具体实施方式
下面结合实施例,对本发明进一步说明;下述实施例是说明性的,不是限定性的,不能以下述实施例来限定本发明的保护范围。
本发明中所使用的方法,如无特殊说明,均为本领域的常规方法;本发明中所使用的试剂,如无特殊说明,均为本领域的常规试剂。
本发明采用抗HER2单抗及IL-15、IL-2和IL-21组成NK细胞扩增系统的构建方法。
本发明中“抗HER2”单抗是抗HER2单抗是一种重组DNA衍生的人源化单克隆抗体。
根据本发明的优选实施方案,采用商品化抗HER2单抗、IL-2、IL-15、IL-21、培养板、培养瓶,血清为自体的,本实验采健康志愿者为正常人自体血清。
用无菌PBS稀释包被抗HER2单抗,用处理过的培养瓶培养PBMC,扩增并富集NK细胞。
为了鉴定本发明的扩增系统扩增的NK细胞的生物学功能,本发明进行了扩增NK细胞对人白血病K562细胞进行体外杀伤实验。
本发明中所使用的PBS和无血清培养基AIM-V均购于GIBCO公司。
本发明中构建方法可以通过从个体中获得的外周血单个核细胞制备得到自然杀伤细胞培养系统,当需要使用时,再将该自然杀伤细胞培养系统应用到相应的个体中。
实施例1
一种高效扩增CD3-CD56+的自然杀伤细胞培养系统的构建方法,步骤如下:
(1)抗HER2单抗包被培养瓶
用PBS稀释抗HER2单抗,包被T75培养瓶,抗HER2单抗的浓度为10-50ug/cm2,置4℃冰箱过夜,吸弃培养瓶中的稀释液待用;
(2)自体血清的制备
采健康志愿者外周血经Ficoll分离,获得正常人血浆,56℃灭活、离心后得到血清,置4℃冰箱储存待用;
(3)NK细胞的活化
采健康志愿者外周血经Ficoll分离获得外周血单个核细胞,用无血清培养基AIM-V调整外周血单个核细胞的浓度至少1×106个/ml,然后加入AIM-V20ml内含细胞因子IL-2500-1000U/ml、IL-1510-20ng/ml和IL-215-10ng/ml,5-10%(体积百分数)自体血清,记为第0天;
(4)NK细胞的扩增及富集
培养的第3、5、7天补充AIM-V依次为40ml、140ml、400ml,此时总体积为600ml左右,并添加细胞因子IL-2500-1000u/ml、IL-1510-20ng/ml和IL-215-10ng/ml和5-10%(体积百分数)自体血清,进行细胞扩增培养,在培养14天后可收获CD3-CD56+的自然杀伤细胞。
实施例2
一种高效扩增CD3-CD56+的自然杀伤细胞培养系统的构建方法,步骤如下:
⑴抗HER2单抗包被
用PBS稀释抗HER2单抗,包被T75培养瓶,抗HER2单抗的浓度为10-50ug/cm2,置4℃冰箱过夜,吸弃培养瓶中的稀释液待用;
⑵自体血清的制备
采健康志愿者外周血经Ficoll分离,获得正常人血浆,56℃灭活、离心后得到血清,置4℃冰箱储存待用;
⑶NK细胞的活化
采健康志愿者外周血经Ficoll分离获得外周血单个核细胞,用无血清培养基AIM-V调整外周血单个核细胞的浓度至至少1×106个/ml,然后加入AIM-V20ml内含细胞因子IL-2500-1000u/ml、IL-1510-20ng/ml和IL-215-10ng/ml,再加入5-10%(体积百分数)自体血清,记为第0天;
⑷NK细胞的扩增
培养的第3、5、7天补充无血清培养基AIM-V依次加入40ml、140ml、400ml此时总体积为600ml并同时添加细胞因子IL-2500-1000u/ml、IL-1510-20ng/ml和IL-215-10ng/ml和5-10%(体积百分数)自体血清,进行扩增培养,在培养14天后即得CD3-CD56+的自然杀伤细胞。
本发明相关的检测结果:
一、采用3种不同组分培养的人外周血PBMC增殖分析检测
抗HER2单抗预包瓶,PBMC采用无血清培养基AIM-V调整至浓度为1×106个/ml,然后加入培养瓶中,同时加入IL-2500-1000U/ml,IL-1510-20ng/ml和IL-215-10ng/ml。同时设以下几组对照组:预包瓶同型对照小鼠IgG1并同时加入IL-2500-1000U/ml,IL-1510-20ng/ml和IL-215-10ng/ml组、不包被培养瓶只加IL-2500-1000U/ml,IL-1510-20ng/ml和IL-215-10ng/ml组,每7天计数观察细胞形态。
分析结果见图1,从图1中可以看出,同型单抗IgG1包被组,、细胞因子刺激组细胞这两组增殖相差无几,而用抗HER2单抗包被组细胞增殖数明显高于其他两组,说明经过抗HER2单抗包被后,可特异性的刺激NK细胞增殖,回输患者体内以达到治疗肿瘤目的。
二、采用3组不同组分培养的人外周血PBMC14天后CD3-CD56+NK细胞免疫表型测定的分析检测
利用CD3、CD56单克隆抗体,取每管细胞总数为5×106个加入不同组分的抗体充分混匀,4℃放置30min,PBS洗涤2次,1500rpm,离心5min,流式细胞仪检测各实验组的细胞免疫表型。
分析结果见图2,从图2中可以看出,同型单抗IgG1包被组CD56+阳性率为28.1%,细胞因子刺激组CD56+阳性率为30%,而用抗HER2单抗包被组CD56+阳性率可达到85.4%,通过此实验表明抗HER2单抗是一种NK细胞重要的刺激因子。
三、本发明构建方法制备得到的NK细胞对肿瘤细胞的杀伤实验:
采用四唑盐(MTT)方法测定NK细胞对K562细胞的杀伤活性分析图
将培养至第14天的NK细胞作为效应细胞,进行体外杀伤实验,调整K562细胞浓度为5×103个/ml,每孔100μl,加入96孔培养板中,放置在37℃,5%CO2培养箱中,放置2h,按效应细胞与靶细胞的比例为20:1、10:1、5:1加入培养板中,同时另设单独靶细胞(靶细胞+培养液)和单独效应细胞(效应细胞+培养液)为阴性对照组,每组做6个复孔。放置在37℃,5%CO2培养箱中作用48h后,加入MTT(5g/L),20μl/孔,继续放置在培养箱中培养4h,2000rpm/min,离心5min,翻板弃上清,加入DMSO150μl/孔,震荡,待沉淀溶解,放入酶标仪中,492nm测光密度(OD)值,按如下公式计算杀伤活性。杀伤活性={1-[(实验组OD值-单独效应细胞组OD值)/单独靶细胞组OD值]}×100%。
分析结果见图3,从图3中可以看出,同型单抗IgG1包被组在效靶比10:1、5:1杀伤活性分别为32%、12.1%,细胞因子刺激组在效靶比10:1、5:1杀伤活性分别为29.3%、12%,而抗HER2单抗包被组在效靶比10:1、5:1杀伤活性分别为86.6%、82.3%,实验结果证明在培养过程中加入抗HER2单抗不仅能使NK细胞增殖,并使NK细胞的纯度得到提高(85.4%),NK细胞杀伤活性也可大幅提高,NK细胞表面能够稳定表达TNF,与肿瘤细胞表面的TNF-R1结合,通过Fas-FasL途径选择性的细胞毒作用,特异性的抑制肿瘤细胞凋亡,而不诱导正常细胞凋亡。这最重要的生物学特点。
NK细胞在抗病毒、抗肿瘤上扮演着重要的角色,因其作用不需初次免疫活化,因而在过继免疫治疗上有其独特的应用前景。由于不能获得数量大、纯度高的人NK细胞,使NK细胞在免疫治疗中的应用受到了限制。采用体外扩增的方法获得足够数量和较高纯度的人NK细胞,是近年来研究NK细胞功能特别是探讨过继免疫治疗的一个重要基础平台。目前国内外学者在扩增的方法上进行了各种的探索,如采用磁珠分选的方法先从人PBMC中分离NK细胞,获得的NK细胞在体外培养条件下,用可溶性IL-2、IL-12、IL-15等细胞因子共同刺激,能使NK细胞得到扩增。采用照射致死的K562细胞或HFWT细胞与PBMC共培养,也能使PBMC中的NK细胞得到一定的扩增。在数量上,上述这些扩增方法操作步骤复杂并且容易导致细胞污染,获得的NK细胞似乎还不能满足过继免疫治疗的需要,仅仅靠可溶性细胞因子的刺激还很难使NK细胞得到大量的扩增。所以我们用抗HER2单抗包被培养瓶,可以使NK细胞在体外大量扩增,实验结果表明,本发明培养的PBMC(外周血单个核细胞)不仅细胞数量有明显提高,流式细胞仪检测结果证明,CD3-CD56+的NK细胞的百分率明显上升;我们同时做了加抗HER2单抗包被组、同型单抗IgG1包被组和细胞因子刺激组的杀伤活性实验,在相同效靶比下,加抗HER2单抗包被组对K562细胞的杀伤能力比同型单抗IgG1包被组和细胞因子刺激组有明显的提高,由此我们认为抗HER2单抗一种重要的NK细胞调节因子,可以促进NK细胞的增殖、活化、杀伤及分泌等功能。
本发明的扩增方法获得NK细胞活性好(86.6%杀伤率)、纯度高(85.4%),且方法简便实用,有望成为探索NK细胞过继免疫治疗的一重要平台。
Claims (8)
1.一种高效扩增CD3-CD56+的自然杀伤细胞培养系统的构建方法,其特征在于:步骤如下:
⑴抗HER2单抗包被
用PBS稀释抗HER2单抗,包被T75培养瓶,抗HER2单抗的浓度为10-50ug/cm2,置4℃冰箱过夜,吸弃培养瓶中的稀释液待用;
⑵自体血清的制备
采外周血经Ficoll分离,获得正常血浆,56℃灭活、离心后得到血清,置4℃冰箱储存待用;
⑶NK细胞的活化
采外周血经Ficoll分离获得外周血单个核细胞,用无血清培养基AIM-V调整外周血单个核细胞的浓度至少1×106个/ml,然后加入AIM-V20ml,AIM-V中内含细胞因子IL-2500-1000u/ml、IL-1510-20ng/ml和IL-215-10ng/ml,再加入体积百分数5-10%的血清,记为第0天;
⑷NK细胞的扩增
培养的第3、5、7天补充无血清培养基AIM-V,依次加入40ml、140ml、400ml,并同时添加细胞因子IL-2500-1000u/ml、IL-1510-20ng/ml和IL-215-10ng/ml和体积百分数5-10%的血清,进行扩增培养,培养14天后,即得CD3-CD56+的自然杀伤细胞;
所述步骤⑴中抗HER2单抗为重组DNA衍生的人源化单克隆抗体;
所述重组DNA衍生的人源化单克隆抗体是由悬养于无菌培养基中的哺乳动物细胞产生,经亲合色谱法、离子交换法纯化和病毒灭活的去除程序获得的。
2.根据权利要求1所述的高效扩增CD3-CD56+的自然杀伤细胞培养系统的构建方法,其特征在于:所述哺乳动物细胞为中国仓鼠卵巢细胞。
3.根据权利要求1所述的高效扩增CD3-CD56+的自然杀伤细胞培养系统的构建方法,其特征在于:所述步骤⑴中抗HER2单抗的浓度为30ug/cm2。
4.根据权利要求1所述的高效扩增CD3-CD56+的自然杀伤细胞培养系统的构建方法,其特征在于:所述步骤⑵中外周血为人的外周血。
5.根据权利要求4所述的高效扩增CD3-CD56+的自然杀伤细胞培养系统的构建方法,其特征在于:所述步骤⑶中外周血为人的外周血。
6.根据权利要求1所述的高效扩增CD3-CD56+的自然杀伤细胞培养系统的构建方法,其特征在于:所述步骤⑵和⑶中细胞因子IL-2、IL15和IL-21的添加量为IL-21000u/ml、IL-1520ng/ml和IL-2110ng/ml。
7.根据权利要求1所述的高效扩增CD3-CD56+的自然杀伤细胞培养系统的构建方法,其特征在于:所述步骤⑶或⑷中血清为人自体血清。
8.根据权利要求1所述的高效扩增CD3-CD56+的自然杀伤细胞培养系统的构建方法,其特征在于:所述步骤⑵中血清为人自体血清。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201310755088.3A CN103756964B (zh) | 2013-12-30 | 2013-12-30 | 一种高效扩增cd3-cd56+的自然杀伤细胞培养系统的方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201310755088.3A CN103756964B (zh) | 2013-12-30 | 2013-12-30 | 一种高效扩增cd3-cd56+的自然杀伤细胞培养系统的方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN103756964A CN103756964A (zh) | 2014-04-30 |
CN103756964B true CN103756964B (zh) | 2016-02-24 |
Family
ID=50524287
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201310755088.3A Active CN103756964B (zh) | 2013-12-30 | 2013-12-30 | 一种高效扩增cd3-cd56+的自然杀伤细胞培养系统的方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN103756964B (zh) |
Families Citing this family (25)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP3838288A1 (en) | 2014-06-11 | 2021-06-23 | polybiocept GmbH | Expansion of lymphocytes with a cytokine composition for active cellular immunotherapy |
CN104789527B (zh) * | 2015-05-15 | 2018-05-29 | 江苏杰晟生物科技有限公司 | 一种自体自然杀伤细胞鸡尾酒式培养的制备方法及其试剂盒产品 |
CN105861434A (zh) * | 2016-05-04 | 2016-08-17 | 深圳瑞祥元科技有限公司 | 自体nk细胞及其培养方法和应用 |
CN106011061A (zh) * | 2016-08-04 | 2016-10-12 | 广东省第二人民医院 | 一种自然杀伤细胞的体外大规模扩增方法 |
CN107779434A (zh) * | 2016-08-30 | 2018-03-09 | 天津市康婷生物工程有限公司 | 高效扩增人外周血nk细胞的实验方法 |
CN106554942A (zh) * | 2016-11-18 | 2017-04-05 | 吉林省拓华生物科技有限公司 | 一种高效的临床级cd56+群免疫细胞的制备方法 |
CN107022525A (zh) * | 2017-04-28 | 2017-08-08 | 中卫华医(北京)医院管理有限公司 | 用于肿瘤治疗的nk细胞培养方法 |
CN107557335A (zh) * | 2017-08-08 | 2018-01-09 | 安徽惠恩生物科技股份有限公司 | 一种针对小细胞肺癌的Car‑NK细胞的制备方法 |
CN107354133B (zh) * | 2017-08-31 | 2021-04-23 | 银丰生物工程集团有限公司 | 磁珠偶联多种刺激蛋白的体外扩增nk细胞的方法及应用 |
CN113061577A (zh) * | 2017-09-05 | 2021-07-02 | 四川新生命干细胞科技股份有限公司 | 一种高纯度nk细胞的分离培养方法 |
CN107460167B (zh) * | 2017-09-21 | 2020-12-15 | 山东省齐鲁细胞治疗工程技术有限公司 | 一种无滋养细胞的nk细胞的扩增方法 |
CN107460168B (zh) * | 2017-10-09 | 2018-05-29 | 天津长和生物技术有限公司 | 自然杀伤细胞培养基质及自然杀伤细胞的扩增培养方法 |
CN107446888B (zh) * | 2017-10-09 | 2018-11-09 | 天津长和生物技术有限公司 | Nk细胞培养基、培养方法及二者的应用 |
CN107475196B (zh) * | 2017-10-09 | 2018-07-20 | 天津长和生物技术有限公司 | 自然杀伤细胞培养基质及自然杀伤细胞的扩增培养方法 |
CN108103020A (zh) * | 2018-02-01 | 2018-06-01 | 上海莱馥生命科学技术有限公司 | 一种高效扩增自然杀伤细胞的制备方法 |
CN108642012B (zh) * | 2018-07-03 | 2019-11-05 | 广东龙帆生物科技有限公司 | 一种外周血来源nk细胞高效扩增的方法 |
CN109294985B (zh) | 2018-10-25 | 2022-02-18 | 江苏普瑞康生物医药科技有限公司 | 一种用于nk细胞体外扩增的培养基体系及nk细胞体外扩增的方法 |
CN109762785B (zh) * | 2018-12-10 | 2022-06-24 | 苏州近岸蛋白质科技股份有限公司 | 一种高效应用于人nk细胞非滋养层体外培养的方法 |
CN109627342B (zh) * | 2018-12-10 | 2022-12-06 | 苏州近岸蛋白质科技股份有限公司 | 应用于nk细胞培养的蛋白质、培养基配方组合及制备方法 |
CN109810944A (zh) * | 2019-01-24 | 2019-05-28 | 安徽瑞达健康产业有限公司 | 一种体外稳定扩增高纯度、高细胞毒活性nk细胞的方法 |
CN110643573A (zh) * | 2019-10-23 | 2020-01-03 | 武汉济源高科技有限公司 | 一种链式nk细胞的培养方法 |
CN111548994B (zh) * | 2020-04-24 | 2021-05-25 | 广东华夏健康生命科学有限公司 | 一种细胞培养基及其培养nk细胞的方法 |
CN111944754B (zh) * | 2020-08-26 | 2024-04-19 | 沈阳细胞治疗工程技术研发中心有限公司 | 一种自然杀伤细胞的培养方法 |
CN112300992B (zh) * | 2020-10-27 | 2023-05-23 | 杜德(江门)生物科技有限公司 | 一种nk细胞培养液及多级激活nk细胞的培养方法 |
CN112877288B (zh) * | 2021-03-05 | 2021-11-02 | 广州达博生物制品有限公司 | 一种nk细胞培养体系及应用 |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101314764A (zh) * | 2008-06-24 | 2008-12-03 | 蚌埠医学院 | 一种体外扩增自然杀伤细胞的方法 |
-
2013
- 2013-12-30 CN CN201310755088.3A patent/CN103756964B/zh active Active
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101314764A (zh) * | 2008-06-24 | 2008-12-03 | 蚌埠医学院 | 一种体外扩增自然杀伤细胞的方法 |
Non-Patent Citations (3)
Title |
---|
Interleukin-2 enhances the natural killer cell response to Herceptin-coated Her2/neu-positive breast cancer cells;W.E.Carson,et al;《Eur.J.Immumol》;20011231;第31卷;第3016页摘要,第3020页2.7 * |
Interleukin-21 Enhances NK Cell Activation in Response to Antibody-Coated Targets;Julie M.Roda,et al;《The Journal of Immunology》;20061231;第177卷;第120页摘要 * |
Selective Expansion and Partial Activation of Human NK Cells and NK Receptor-Positive T Cells by IL-2 and IL-15;Jean Dunne,et al;《The Journal of Immunology》;20011231;第167卷;第3129页摘要 * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN103756964A (zh) | 2014-04-30 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN103756964B (zh) | 一种高效扩增cd3-cd56+的自然杀伤细胞培养系统的方法 | |
US10815303B2 (en) | Fusion protein for restoring the functions of failing immune cells and application thereof | |
EP2794859B1 (en) | Method for producing natural killer cells, natural killer cells produced thereby, and composition for treating cancers and infectious diseases containing the same | |
Rochman et al. | The role of thymic stromal lymphopoietin in CD8+ T cell homeostasis | |
CN105567634A (zh) | 一种用于nk细胞体外扩增的培养基及nk细胞体外扩增的方法 | |
CN108473958A (zh) | 非造血组织驻留γδT细胞的扩增及这些细胞的用途 | |
CN104357390A (zh) | 同时高效扩增cd3+cd56+cik细胞和cd3-cd56+nk细胞的方法 | |
KR101298012B1 (ko) | 암세포로의 표적지향을 위한 자연살해 세포를 포함하는 림프구의 제조방법 및 이를 포함하는 약학 조성물 | |
JP2017524031A (ja) | ガンマデルタt細胞およびその使用 | |
CN102597223A (zh) | 生产天然杀伤细胞的方法 | |
CN106591363A (zh) | 一种通用型异体car‑t细胞制备方法及应用 | |
CN103484429A (zh) | 一种nk细胞的制备方法 | |
CN105087488A (zh) | 一种肿瘤抗原诱导的dc-cik细胞的制备方法及应用 | |
CN115466726B (zh) | 一种nk细胞的高效基因转导方案 | |
CN103525763A (zh) | 一种高效cik细胞的培养方法 | |
Sudarsanam et al. | Influence of culture conditions on ex vivo expansion of T lymphocytes and their function for therapy: Current insights and open questions | |
KR102232321B1 (ko) | 자연살해세포의 제조방법 | |
CN106834354A (zh) | 一种修饰的增强型靶向免疫细胞群的制备方法和用途 | |
CN102199218A (zh) | 一种抗Her2抗体-白细胞介素2融合蛋白及其用途 | |
JP2010220479A (ja) | Nk細胞の培養方法及びnk細胞の利用 | |
CN104894072A (zh) | 一种自体自然杀伤细胞增殖的制备方法及其应用 | |
CN1699558A (zh) | 使用生物反应器对造血干细胞来源的细胞因子诱导的杀伤细胞的大规模培养技术 | |
JP4953403B2 (ja) | がん免疫療法用細胞の製造方法 | |
CN105505871B (zh) | 一种有效扩增cik且提高其特异性杀瘤能力的方法 | |
CN105861434A (zh) | 自体nk细胞及其培养方法和应用 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant |