CN103167883B - 肌强直性营养障碍蛋白激酶(dmpk)表达的调节 - Google Patents

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Abstract

本文中提供了用于减少动物中的DMPK mRNA和蛋白质的表达的方法、化合物和组合物。本文中还提供了用于优先减少动物中的CUGexp DMPK RNA、减少动物中的肌强直或减少动物中的剪接病变的方法、化合物和组合物。此类方法、化合物和组合物对于治疗、预防、延迟或改善1型肌强直性营养不良或其症状是有用的。

Description

肌强直性营养障碍蛋白激酶(DMPK)表达的调节
序列表
本申请将同电子格式的序列表一起提交。序列以2011年7月19日创建的标题为BIOL0134USL2SEQ.txt的文件提供，其大小约为216Mb。将序列表的电子格式中的信息通过引用整体并入本文。
领域
本文中提供了用于减少动物中的DMPKmRNA和蛋白质的表达的方法、化合物和组合物。同样地，本文中提供了用于优先减少动物中的CUGexpDMPKRNA，减少动物中的肌强直或减少动物中的剪接病变的包括DMPK抑制剂的方法、化合物和组合物。此类方法、化合物和组合物用于例如治疗、预防或改善动物中的I型肌强直性营养不良(DM1)。
背景
肌强直性营养不良1型(DM1)是成人的肌营养不良症的最常见形式，据估计频率为1/7,500(HarperPS.,MyotonicDystrophy.London：W.B.SaundersCompany；2001)。DM1是由DMPK1的非编码CTG重复的扩大引起的常染色体显性障碍。DMPK1为编码胞质丝氨酸/苏氨酸激酶(BrookJD等人，Cell,1992,68(4):799-808)。该激酶的生理功能和底物还未完全确定。扩大的CTG重复位于DMPK1的3′非翻译区(UTR)。该空谈导致RNA显性(RNAdominance)，其中包含扩大的CUG重复的RNA(CUGexp)诱导细胞功能障碍的过程(OsborneRJ和ThorntonCA.,HumanMolecularGenetics.,2006,15(2)：R162-R169)。
DMPK基因通常在3′非翻译区具有个5-37CTG重复。在肌强直性营养不良I型中，该数目显著扩大，在例如50至大于3,500的范围内(Harper,肌强直性营养不良(Saunders,London,ed.3,2001)；Annu.Rev.Neurosci.29：259,2006；EMBOJ.19：4439,2000；CurrOpinNeurol.20：572,2007)。
CUGexp片段与RNA结合蛋白包括盲肌样(MBNL)蛋白(剪接因子)相互作用，并且引起突变的转录物保留在细胞核聚集点(nuclearfoci)。该RNA的毒性源自RNA结合蛋白的隔离和信号转导途径的激活。动物模型的研究已显示如果减少CUGexpRNA的毒性，则可逆转DM1的表型(WheelerTM等人，Science.,2009,325(5938):336-339；MuldersSA等人，ProcNatlAcadSciUSA.,2009,106(33):13915-13920)。
在DM1中，骨骼肌是受到最严重影响的组织，但疾病也对心脏和平滑肌、眼睛水晶体(ocularlen)和脑具有重大影响。颅、远肢(distallimb)和膈肌也优先受到影响。手灵巧度较早受损，这引起数十年的严重失能。死亡年龄中位数为55岁，通常死于呼吸衰竭(deDie-SmuldersCE等人，Brain.,1998,121(Pt8)：1557-1563)。
反义技术正新兴为调节某些基因产物的表达的有效工具，并且从而可证明在许多关于DMPK1的调节的治疗、诊断和研究应用中具有独特用途。已显示靶向CAG重复的完全经修饰的寡核苷酸的肌内注射在小鼠中阻断CUGexp-MBNLl复合物的形成，分散CUGexp转录物的细胞核聚集点，增强核质转运(nucleocytoplasmictransport)和CUGexp转录物的释放，将MBNL蛋白释放至核质，标准化MBNL-依赖性外显子的选择性剪接，和消除表达CUGexp的转基因小鼠的肌强直(WheelerTM等人，Science.,2009,525(5938):336-339；WO2008/036406)。
目前，不存在可改变DM1的过程的治疗。因此疾病负担是明显的。因此，本文中的目的是提供用于治疗DM1的化合物、组合物和方法。
概述
本文中提供了用于抑制DMPK表达和治疗、预防、延迟或改善DMPK相关疾病和/或其症状的方法、化合物和组合物。在某些实施方案中，该化合物和组合物抑制突变的DMPK或CUGexpDMPK。
某些实施方案提供了减少动物中的DMPK表达的方法，包括给动物施用包含本文中进一步描述的靶向DMPK的经修饰的寡核苷酸的化合物。
某些实施方案提供了优先减少CUGexpDMPK、减少肌强直或减少动物中的剪接病变的方法，包括给动物施用包含本文中进一步描述的靶向CUGexpDMPK的经修饰的寡核苷酸的化合物。由于它们在细胞核中的更长的停留时间，CUGexpDMPK转录物据信对于通过细胞核核糖核酸酶的反义敲低特别敏感，并且该敏感性据认为允许相关组织（例如肌肉）中的CUGexpDMPK转录的有效反义抑制，尽管存在对反义寡核苷酸的组织吸收的生物分布屏障。不通过细胞核核糖核酸酶引发裂解的反义机制例如WheelerTM等人，Science.,2009,325(5938):336-339和WO2008/036406中描述的CAG-重复ASO，不提供相同的治疗有利方面。
某些实施方案提供治疗患有1型肌强直性营养不良的动物中的方法。在某些实施方案中，该方法包括给动物施用治疗有效量的包含本文中进一步描述的靶向DMPK的经修饰的寡核苷酸的化合物。在某些实施方案中，该方法包括鉴定患有1型肌强直性营养不良的动物。
某些实施方案提供了治疗、预防、延迟或改善与DM1的发展相关的病症和结果，其包括肌肉僵硬(musclestiffness)、肌强直、远端肢体无力（disablingdistalweakness）、面部肌肉和颚肌无力(weaknessinfaceandjawmuscles)、吞咽困难、举抬无力(上睑下垂)、颈肌无力(weaknessofneckmuscles)、手臂和腿部肌肉无力(weaknessinarmandlegmuscles)、持久性肌肉疼痛(persistentmusclepain)、嗜睡症(hypersomnia)、肌萎缩、咽下困难(dysphagia)、呼吸功能不全(respiratoryinsufficiency)、心律不齐(irregularheartbeat)、心肌损伤(heartmuscledamage)、情感淡漠(apathy)、胰岛素抗药性(insulinresistance)和白内障的方法。某些实施方案提供了治疗、预防、延迟或改善儿童的与DM1的发展相关的病症和结果(括发育迟滞、学习问题、语言和言语问题以及人格发展问题)方法。
某些实施方案提供了施用通过直接裂解病原性转录抵消RNA显性的反义寡核苷酸的方法。
在某些实施方案中，DMPK具有GenBank登录号NM_001081560.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：1)。在某些实施方案中，DMPK具有GenBank登录号NT_011109.15所示的从核苷酸18540696至18555106截断的序列(本文中合为SEQIDNO：2)。在某些实施方案中，DMPK具有GenBank登录号NT_039413.7所示的从核苷酸16666001至16681000截断的序列(本文中合为SEQIDNO：3)。在某些实施方案中，DMPK具有GenBank登录号NM_032418.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：4)。在某些实施方案中，DMPK具有GenBank登录号AI007148.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：5)。在某些实施方案中，DMPK具有GenBank登录号AI304033.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：6)。在某些实施方案中，DMPK具有如GenBank登录号BC024150.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：7)。在某些实施方案中，DMPK具有GenBank登录号BC056615.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：8)。在某些实施方案中，DMPK具有GenBank登录号BC075715.1所示的序列(在本文中合为SEQIDNO：793)。在某些实施方案中，DMPK具有GenBank登录号BU519245.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：794)。在某些实施方案中，DMPK具有GenBank登录号CB247909.1中所示的序列(本文中合为SEQIDNO：795)。在某些实施方案中，DMPK具有GenBank登录号CX208906.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：796)。在某些实施方案中，DMPK具有GenBank登录号CX732022.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：797)。在某些实施方案中，DMPK具有GenBank登录号S60315.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：798)。在某些实施方案中，DMPK具有GenBank登录号S60316.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：799)。在某些实施方案中，DMPK具有GenBank登录号NM001081562.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：800)。在某些实施方案中，DMPK具有GenBank登录号NM_001100.3所示的序列(本文中合为SEQIDNO：801)。
详细描述
应理解，上述一般描述和下列详细描述仅仅是示例性的和说明性的并且不限制本发明，如所描述的。在本文中，除非另外声明，否则单数的使用包括复数。在本文中，除非另外声明，否则”或”的用途意指”和/或”。此外，术语”包括”以及其它形式例如”包含”和”含有”的用途不是限制性的。同样地，除非另外声明，否则术语例如“成分”或”组分”包括包含一个单位的成分和组分以及包含超过一个亚单位的成分和组分。
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定义
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除非另外指出，否则下列术语具有下列含义：
“2′-O-甲氧基乙基”(也为2′-MOE和2′-O(CH2)2-OCH3)称为呋喃酰基环的2′位置的O-甲氧基-乙基修饰。经2′-O-甲氧基乙基修饰的糖为经修饰的糖。
“2′-O-甲氧基乙基核苷酸”意指包含经2′-O-甲氧基乙基修饰的糖部分的核苷酸。
“5-甲基胞嘧啶”意利用连接于位置5的的甲基经修饰的的胞嘧啶。5-甲基胞嘧啶为经修饰的核碱基。
“约”意指值的±7%。例如，如果说到“化合物影响DMPK的抑制的至少70%”，则其意指DMPK水平被抑制的程度在63%与77%之间的范围内。
“活性药物试剂”意指当给个体施用时提供治疗益处的药物组合物中的物质。例如，在某些实施方案中，靶向DMPK的反义寡核苷酸为活性药物试剂。
“活性靶区域”或“靶区域”意指一种或多种活性反义化合物被靶向的区域。“活性反义化合物”意指降低靶核酸水平或蛋白质水平的反义化合物。
“伴随施用的”是指两种试剂以其中两者的药理学作用在患者同时表现的任何方式进行的共施用。伴随施用剂量不需要将两种试剂以单一药物组合物、以相同剂量形式或通过相同施用途径进行施用。两种试剂的作用本身不一定同时表现。作用只需重叠一段时间而不必共同延伸。
“施用”意指给动物提供试剂，且包括但不限于通过医学专业人员施用和自已施用。
“试剂”意指当给动物施用时可提供治疗益处的活性物质。“第一试剂”意指本发明的治疗性化合物。例如，第一试剂可以是靶向DMPK的反义寡核苷酸。“第二试剂”意指本发明的第二治疗性化合物(例如，靶向DMPK的第二反义寡核苷酸)和/或非DMPK治疗性化合物。
“改善”是指相关疾病、病症或病状的至少一个指征、体征或症状的减轻。指征的严重度可通过主观或客观测量来测定，这对于本领域技术人员来说是已知的。
“动物”是指人或非人动物，包括但不限于小鼠、大鼠、兔、狗、猫、猪和非人灵长类动物（包括但不限于猴和黑猩猩）。
“反义活性”意指可归因于反义化合物与其靶核酸的杂交的任何可检测或可测量的活性。在某些实施方案中，反义活性为靶核酸或由这样的靶核酸编码的蛋白质的量或表达的减少。
“反义化合物”意指能够经历通过氢键合与靶核酸杂交的寡聚化合物。反义化合物的实例包括单链和双链化合物，例如反义寡核苷酸、siRNA、shRNA、snoRNA、miRNA和附属物（satellite）重复。
“反义抑制”意指在与靶核酸化合物互补的反义化合物存在的情况下靶核酸水平或靶蛋白质水平与在所述反义化合物不存在的情况下的靶核酸水平或靶蛋白质水平相比较的降低。
“反义寡核苷酸”意指具有允许与靶核酸的相应区域或片段杂交的核碱基序列的单链寡核苷酸。
“二环糖”意指通过两个非成对碳环原子的桥连修饰的呋喃基环。二环糖是经修饰的糖。
“二环核酸”或“BNA”是指其中核苷或核苷酸的呋喃糖部分包括连接呋喃糖环上的两个碳原子从而形成二环环系统的桥的核苷或核苷酸。
“帽状结构”或“端帽部分”意指经化学修饰的，其已被整合在反义化合物的任一端。
“化学上不同的区域”是指以一定方式在化学上与相同反义化合物的另一个区域不同的反义化合物的区域。例如，具有2′-O-甲氧基乙基核苷酸的区域在化学上与具有不具有经2′-O-甲氧基乙基修饰的核苷酸的区域不同。
“嵌合反义化合物”意指具有至少两个化学上不同的区域的反义化合物。
“共施用”是指两种或更多种试剂对个体的施用。两种或更多种试剂可存在于单一药物组合物中，或可存在于单独的药物组合物。两种或更多种试剂的每一种可通过相同或不同的施用途径来施用。共施用包括平行或相继施用。
“互补性”意指第一核酸与第二核酸的核碱基之间配对的能力。
“连续核碱基”意指彼此直接毗连的核碱基。
“CUGexpDMPK”意指包含扩大的CUG重复(CUGexp)的突变的DMPKRNA。野生型DMPK基因在3′非翻译区中具有5-37个CTG重复。在“CUGexpDMPK”(例如在肌强直性营养不良I型患者)中，该数目显著扩大，在（例如）50至超过3,500个的范围内(Harper,肌强直性营养不良(Saunders,London,ed.3,2001)；Annu.Rev.Neurosci.29：259,2006；EMBOJ.19：4439,2000；CurrOpinNeurol.20：572,2007)。
“稀释剂”意指组合物中缺乏药理学活性但为制药上必需或期望的成分。例如，注射组合物中的稀释剂可以为液体例如盐溶液。
“DMPK”意指DMPK的任何核酸或蛋白质。DMPK可以为突变的DMPK，包括CUGexpDMPK核酸。
“DMPK表达”意指从编码DMPK的基因转录的mRNA的水平或从mRNA翻译的蛋白质的水平。DMPK表达可由本领域已知的方法（例如Northern或Western印迹法）来测定。
“DMPK核酸”意指任何编码DMPK的核酸。例如，在某些实施方案中，DMPK核酸包括编码DMPK的DNA序列、从编码DMPK的DNA(包括包含内含子和外显子的基因组DNA)转录的RNA序列以及编码DMPK的mRNA或mRNA前体序列。“DMPKmRNA”意指编码DMPK蛋白的mRNA。
“剂量”意指单次施用或指定的时期中提供的药物试剂的指定量。在某些实施方案中，可以以一次、两次或更多次推注(boluses)、片剂或注射施用剂量。例如，在其中期望皮下施用的某些实施方案中，期望的剂量需要不易被单次注射容纳的体积，因此，可使用两次或更多次注射来实现期望的剂量。在某些实施方案中，通过在长期过程中或连续地输注药物。剂量可表示为每小时、每天、每周或每月的药物试剂的量。
“有效量”或“治疗有效量”意指足以在需要试剂的个体中实现期望的生理结果的活性药物试剂的量。取决于待治疗的个体的健康和身体状况，待治疗的个体的分类群，组合物的制剂，个体医学状况的评估以及其它相关因素，有效量在个体间可变化。
“完全互补”或“100%互补”意指第一核苷酸的核碱基序列的每一个核碱基在第二核酸的第二核碱基序列中具有互补核碱基。在某些实施方案中，第一核酸为反义化合物并且靶核酸为第二核酸。
“空隙聚物(gapmer)”意指其中具有多个支持RNA酶H裂解的核苷酸的内部区位于具有一个或多个核苷的外侧区之间的嵌合反义化合物，其中包含内部区的核苷在化学上与包含外侧区的核苷不同。内部区可称为“空隙区段(gapsegment)”,且外侧区可称为“翼区段”。
“增宽的空隙(Gap-widened)”意指具有位于具有1至6个核苷的5′与3′翼区段之间并且与其紧邻的12个或更多个连续2′-脱氧核糖核苷的空隙区段的嵌合反义化合物。
“杂交”意指互补核酸分子的退火。在某些实施方案中，互补核酸分子包括反义化合物和靶核酸。
“鉴定患有1型肌强直性营养不良的动物”意指鉴定已被诊断患有1型肌强直性营养不良、病症或病状的动物或鉴定易于发生1型肌强直性营养不良、病症或病状的动物。例如，具有家族史的个体可易于患1型肌强直性营养不良、病症或病状。这样的鉴定可利用任何方法(包括评估个体的医疗史以及标准临床测试或评估)来实现。
“紧邻”意指紧密相邻的成分之间不存在间插成分。
“个体”意指被选择来进行治疗或医治的人或非人动物。
“核苷间连接”是指核苷间的化学键。
“连接的核苷”意指通过核苷间连接键合或连接在一起的相邻核苷。
“错配”或“非互补核碱基”是指当第一核酸的核碱基不能与第二或靶核酸的对应核碱基配对时的情况。
“经修饰的核苷间连接”是指天然存在的核苷间键(即磷酸二酯核苷间键)的替代和来自其的任何改变。
“经修饰的核碱基”是指除腺嘌呤、胞嘧啶、鸟嘌呤、胸苷或尿嘧啶的任何核碱基。“未经修饰的核碱基”意指嘌呤碱腺嘌呤(A)和鸟嘌呤(G)和嘧啶碱基胸腺嘧啶(T)、胞嘧啶(C)和尿嘧啶(U)。
“经修饰的核苷酸”意指独立地具有经修饰的糖部分、经修饰的核苷之间的连接或经修饰的核碱基的核苷酸。“经修饰的核苷”意指独立地具有经修饰的糖部分或经修饰的核碱基的核苷。
“经修饰的寡核苷酸”意指包含至少一个经修饰的核苷酸的寡核苷酸。
“经修饰的糖”是指天然糖的替代或来自天然糖的改变。
“基序(Motif)”意指反义化合物的化学上不同的区域的模式。
“肌强直”意指在随意收缩或电刺激后肌肉的异常缓慢松弛。
“细胞核核糖核酸酶”意指在细胞核中发现的核糖核酸酶。细胞核核糖核酸酶包括但不限于RNA酶H（包括RNA酶H1和RN酶H2）、双链RNA酶drosha和其它双链RNA酶。
“天然存在的核苷间连接”意指3′至5′的磷酸二酯键。
“天然糖部分”意指在DNA(2′-H)或RNA(2′-OH)中发现的糖。
“核酸”是指由单体核苷酸组成的分子。核酸包括核糖核酸(RNA)、脱氧核糖核酸(DNA)、单链核酸、双链核酸、小干扰核糖核酸(siRNA)和微RNA(miRNA)。核酸还可在单个分子中包含此类成分的组合。
“核碱基”意指能够与另一个核酸的碱基配对的杂环部分。
“核碱基序列”意指不依赖于任何糖、连接或核碱基修饰的连续核碱基的顺序。
“核苷”意指连接于糖的核碱基。
“核苷模拟物”包括用于替换寡聚化合物的一个或多个位置上的糖或糖及碱基以及不一定连接的那些结构，例如具有吗啉代、环己烯基、环己基、四氢吡喃基、二环或三环糖模拟物例如非呋喃糖单位的核苷模拟物。
“核苷酸”意指具有共价连接于核苷的糖部分的磷酸基的核苷。
“核苷酸模拟物”包括用于替换寡聚化合物的一个或多个位置上的核苷和连接的那些结构，例如肽核酸或吗啉代(通过-N(H)-C(=O)-O-或其它非-磷酸二酯键连接的吗啉代)。
“寡聚化合物”或“寡聚物”意指能够与核酸分子的至少一个区域杂交的连接的单体亚单位的聚合物。
“寡核苷酸”意指连接的核苷的聚合物，所述每一个核苷可彼此独立地被修饰或未被修饰。
“胃肠外施用”意指通过注射或输注进行的施用。胃肠外施用包括皮下施用、静脉内施用、肌内施用、动脉内施用、腹膜内施用或颅内施用（例如鞘内或脑室内施用）。施用可以是连续的或长期的，或短暂的或间断性的。
“肽”意指通过酰胺键连接至少两个氨基酸形成的分子。肽指多肽或蛋白质。
“药物组合物”意指适用于给个体施用的物质的混合物。例如，药物组合物可包含一种或多种活性剂和无菌水溶液。
“药学上可接受的盐”意指反义化合物的生理和药学上可接受的盐，即保持亲代寡核苷酸的期望的生物活性并且不赋予其不期望的毒理效应的盐。
“硫代磷酸酯连接”意指核苷之间的连接，其中通过用硫原子替代非桥键氧原子中的一个修饰的磷酸二酯键。硫代磷酸酯连接是经修饰的核苷间连接。
“部分”意指核酸的确定数量的连续(即连接的)核碱基。在某些实施方案中，部分为靶核酸的确定数量的连续核碱基。在某些实施方案中，部分为反义化合物的确定数量的连续核碱基。
“优先地减少CUGexpDMPKRNA”是指相对于来自正常DMPK等位基因的RNA转录物，来自CUGexpDMPK等位基因的RNA转录物的优先减少。
“预防”是指延迟或预先阻止疾病、病症或病状的发作或发展从数分钟至无限期的一段时间。预防还意指降低发生疾病、病症或病状的风险。
“前体药物”意指以无活性形式制备的治疗剂，其在体内或其细胞内通过内源酶或其它化学药品或条件的作用被转化成活性形式。
“副作用”意指可归因于治疗的除期望的效应外的生理反应。在某些实施方案中，副作用包括注射部位反应、肝功能测试异常、肾功能异常、肝毒性、肾毒性、中枢神经系统异常、肌病和全身乏力。例如，血清中氨基转移酶水平升高可表示肝毒性或肝功能异常。例如，胆红素增大可表示肝毒性或肝功能异常。
“单链寡核苷酸”意指不与互补链杂交的寡核苷酸。
“可特异性杂交的”意指这样的反义化合物，所述反义化合物在反义寡核苷酸与靶核酸之间具有足够程度的互补性以诱导期望的作用，同时在其中期望特异性结合的条件下，即在体内测定和治疗性治疗的情况下在生理条件下显示对非靶核酸具有最小的作用或无作用。
“剪接病变”意指导致特定组织中改变的剪接产物的表达的一种或多种RNA的选择性剪接。
“皮下施用”意指就在皮肤下面的施用。
“糖替代物”与略微更广的术语“核苷模拟物”交叠，但意欲表示仅替代糖单位(呋喃糖环)。本文中提供的四氢呋喃环举例说明了其中呋喃糖基已被四氢呋喃糖环系统替代的糖替代物的实例。
“靶向”或“被靶向的”意指将与靶核酸特异性杂交并且诱导期望的作用的反义化合物的设计和选择的方法。
“靶核酸”、“靶RNA”和“靶RNA转录物”全都指能够被反义化合物靶向的核酸。
“靶区段”意指反义化合物所靶向的靶核酸的核苷酸的序列。“5′靶位点”是指靶区段的5′最末端核苷酸。“3′靶位点”是指靶区段的3′最末端核苷酸。
“治疗有效量”意指给个体提供治疗益处的试剂的量。
“治疗”是指施用药物组合物以实现疾病的、病症或病状的改变或改善。
“1型肌强直性营养不良”或“DM1”意指由DMPK的非编码CTG重复的扩大引起的常染色体显性病症。该突变导致RNA显性，其中包含扩大的CUG重复(CUGexp)的RNA的表达诱导细胞功能障碍的过程。CUGexp片段与RNA结合蛋白相作用并且引起突变的转录保留在细胞核聚集点。该RNA的毒性源于RNA结合蛋白的隔离和信号转导途径的激活。
“未经修饰的核苷酸”意指由天然存在的核碱基、糖部分和核苷间连接组成的核苷酸。在某些实施方案中，未经修饰的核苷酸为RNA核苷酸(即β-D-核糖核苷)或DNA核苷酸(即β-D-脱氧核糖核苷)。
某些实施方案
某些实施方案提供了用于抑制DMPK表达的方法、化合物和组合物。
某些实施方案提供了减少动物中的DMPK表达的方法，包括给动物施用包含靶向DMPK的经修饰的寡核苷酸的化合物。
某些实施方案提供了优先减少动物中的CUGexpDMPKRNA、减少动物中的肌强直或减少动物中的剪接病变的方法，包括给动物施用包含靶向DMPK的经修饰的寡核苷酸的化合物，其中经修饰的寡核苷酸优先减少动物中的CUGexpDMPKRNA、减少动物中的肌强直或减少动物中的剪接病变。
某些实施方案提供了施用反义寡核苷酸以通过直接裂解病原性转录物来抵消RNA显性的方法。
某些实施方案提供了减少Serca1的剪接病变的方法。在某些实施方案中，本文中提供的方法导致外显子22包含(inclusion)。在某些实施方案中，校正剪接(correctivesplicing)在胫骨前肌、腓肠肌和四头肌中发生。
某些实施方案提供了减少了m-肌联蛋白的剪接病变的方法。在某些实施方案中，本文中提供的方法导致外显子5包含。在某些实施方案中，校正剪接在胫骨前肌、腓肠肌和四头肌中发生。
某些实施方案提供了减少Clcnl的剪接病变的方法。在某些实施方案中，本文中提供的方法导致外显子7a包含。在某些实施方案中，校正剪接在胫骨前肌、腓肠肌和四头肌中发生。
某些实施方案提供了减少Zasp的剪接病变的方法。在某些实施方案中，本文中提供的方法导致外显子11包含。在某些实施方案中，校正剪接在胫骨前肌、腓肠肌和四头肌中发生。
某些实施方案提供了用于治疗患有1型肌强直性营养不良的动物的方法，包括：a)鉴定患有1肌强直性营养不良的所述动物，和b)给所述动物施用治疗有效量的包含靶向DMPK的经修饰的寡核苷酸的化合物。在某些实施方案中，给动物施用的化合物的治疗有效量优先减少动物中的CUGexpDMPKRNA、减少动物中的肌强直或减少动物中的剪接病变。
某些实施方案提供了实现CUGexpDMPKRNA的优先减少的方法，包括给怀疑患有1型肌强直性营养不良或具有CUGexpDMPKRNA的受试者施用与所述CUGexpDMPKRNA的非重复区域互补的经修饰的反义寡核苷酸。当与所述CUGexpDMPKRNA结合时，经修饰的反义寡核苷酸实现CUGexpDMPKRNA的优先减少。
某些实施方案提供了实现CUGexpDMPKRNA的优先减少的方法，包括选择患有1型肌强直性营养不良或具有CUGexpDMPKRNA的受试者以及给所述受试者施用与所述CUGexpDMPKRNA的非重复区域互补的经修饰的反义寡核苷酸。当结合CUGexpDMPKRNA时，经修饰的反义寡核苷酸激活核糖核酸或细胞核核糖核酸酶，从而实现CUGexpDMPKRNA在细胞核中的优先减少。
某些实施方案提供了实现CUGexpDMPKRNA的优先减少的方法，包括选择患有1型肌强直性营养不良或具有突变的或CUGexpDMPKRNA的受试者以及给所述受试者全身性施用与所述CUGexpDMPKRNA的非重复区域互补的经修饰的反义寡核苷酸。当结合突变的或CUGexpDMPKRNA时，经修饰的反义寡核苷酸实现突变的或CUGexpDMPKRNA的优先减少。
某些实施方案提供了减少有此需要的受试者的肌强直的方法。方法包括给受试者施用与DMPKRNA的非重复区域互补的经修饰的反义寡核苷酸，其中当结合DMPKRNA时，经修饰的反义寡核苷酸激活核糖核酸酶或细胞核糖核酸酶，从而减少肌强直。在某些实施方案中，受试者患有或怀疑患有1型肌强直性营养不良或具有突变的DMPKRNA或CUGexpDMPKRNA。在某些实施方案中，DMPKRNA被保留在细胞核中。
某些实施方案提供了减少有此需要的受试者的剪接病变的方法。方法包括给受试者施用与DMPKRNA的非重复区域互补的经修饰的反义寡核苷酸，其中当结合DMPKRNA时，经修饰的反义寡核苷酸激活核糖核酸酶或细胞核糖核酸酶，从而减少剪接病变。在某些实施方案中，受试者患有或怀疑患有1型肌强直性营养不良或具有保留在细胞核中的CUGexpDMPKRNA。在某些实施方案中，DMPKRNA被保留在细胞核中。在某些实施方案中，剪接病变为MBNL依赖性剪接病变。
在某些实施方案中，该方法的经修饰的反义寡核苷酸是嵌合的。在某些实施方案中，该方法的经修饰的反义寡核苷酸为空隙聚物。
在本文中提供的方法的某些实施方案中，施用是皮下施用。在某些实施方案中，施用是静脉内施用。
在某些实施方案中，方法的经修饰的反义寡核苷酸靶向DMPKRNA的非重复区域内的非编码序列。在某些实施方案中，寡核苷酸靶向突变的DMPKRNA的编码区、内含子、5′UTR或3′UTR。
在本文中提供的方法的某些实施方案中，细胞核核糖核酸酶为RNA酶H1。
在该方法的某些实施方案中，减少肌肉组织的DMPKRNA。在某些实施方案中，突变的DMPKRNACUGexpDMPKRNA优先被减少。
在某些实施方案中，DMPK具有GenBank登录号NM_001081560.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：1)。在某些实施方案中，DMPK具有GenBank登录号NT_011109.15所示的从核苷
酸18540696至18555106截断的序列(本文中合为SEQIDNO：2)。在某些实施方案中，DMPK具有GenBank登录号NT039413.7所示的从核苷酸16666001至16681000截断的序列(本文中合为SEQIDNO：3)。在某些实施方案中，DMPK具有GenBank登录号NM032418.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：4)。在某些实施方案中，DMPK具有GenBank登录号AI007148.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：5)。在某些实施方案中，DMPK具有GenBank登录号AI304033.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：6)。在某些实施方案中，DMPK具有GenBank登录号BC024150.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：7)。在某些实施方案中，DMPK具有GenBank登录号BC056615.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：8)。在某些实施方案中，DMPK具有GenBank登录号BC075715.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：793)。在某些实施方案中，DMPK具有GenBank登录号BU519245.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：794)。在某些实施方案中，DMPK具有GenBank登录号CB247909.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：795)。在某些实施方案中，DMPK具有GenBank登录号CX208906.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：796)。在某些实施方案中，DMPK具有GenBank登录号CX732022.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：797)。在某些实施方案中，DMPK具有GenBank登录号S60315.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：798)。在某些实施方案中，DMPK具有GenBank登录号S60316.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：799)。在某些实施方案中，DMPK具有GenBank登录号NM_001081562.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：800)。在某些实施方案中，DMPK具有GenBank登录号NM_001100.3所示的序列(本文中合为SEQIDNO：801)。
在某些实施方案中，经修饰的寡核苷酸具有包含SEQIDNO：12-156、160-770和774-792的任一个中引用的核碱基序列的至少8个连续核碱基的核碱基序列。在某些实施方案中，经修饰的寡核苷酸具有包含SEQIDNO：12-156、160-770和774-792的任一个中引用的核碱基序列的至少9、至少10或至少11个连续核碱基的核碱基序列。
在某些实施方案中，经修饰的寡核苷酸具有包含SEQIDNO：12-156、160-770和774-792的任一个中引用的核碱基序列的至少12个连续核碱基的核碱基序列。在某些实施方案中，经修饰的寡核苷酸具有包含SEQIDNO：12-156、160-770和774-792的任一个中引用的核碱基序列的至少13个、至少14个连续核碱基的核碱基序列。
在某些实施方案中，经修饰的寡核苷酸具有包含SEQIDNO：12-156、160-770和774-792的任一个中引用的核碱基序列的至少15个连续核碱基的核碱基序列。在某些实施方案中，经修饰的寡核苷酸具有包含SEQIDNO：12-156、160-770和774-792的任一个中引用的核碱基序列的至少16个或至少17个连续核碱基的核碱基序列。
在某些实施方案中，经修饰的寡核苷酸具有包含SEQIDNO：12-156、160-770和774-792的任一个中引用的核碱基序列的至少18个连续核碱基的核碱基序列。在某些实施方案中，经修饰的寡核苷酸具有包含SEQIDNO：12-156、160-770和774-792的任一个中引用的核碱基序列的至少19个连续核碱基的核碱基序列。
在某些实施方案中，本文中提供的经修饰的寡核苷酸被靶向SEQIDNO：1的下列区域的任一个：1178-1206、2159-2182、2174-2196、2426-2447、2450-2518、2679-2704和2697-2725。
在某些实施方案中，本文中提供的经修饰的寡核苷酸被靶向SEQIDNO1的下列区域的任一个：178-223、232-253、279-299、366-399、519-541、923-975、1073-1105、1171-1196、1215-1246、1263-1324、1706-1734、1743-1763、1932-1979、1981-2003、2077-2108和2152-2173。
在某些实施方案中，本文中提供的经修饰的寡核苷酸被靶向SEQIDNO2的下列区域的任一个：1251-1303、1305-1326、1352-1372、3762-3795、4170-4192、5800-5852、6124-6149、6168-6199、6216-6277、11979-12007、12016-12036、12993-13042、13044-13066、13140-13171和3215-13236。
在某些实施方案中，动物为人。
在某些实施方案中，本发明的化合物或组合物被指定为第一试剂并且本发明的方法还包括第二试剂。在某些实施方案中，共施用第一试剂和第二试剂；在某些实施方案中，相继地或伴随地共施用第一试剂和第二试剂。
在某些实施方案中，施用包括胃肠外施用。
在某些实施方案中，化合物为单链经修饰的寡核苷酸。在某些实施方案中，经修饰的寡核苷酸的核碱基序列与SEQIDNO：1-8和793-801的任一个具有至少95%的互补性，如在所述经修饰的寡核苷酸的整体上所测量的。在某些实施方案中，经修饰的寡核苷酸的核碱基序列与SEQIDNO：1-8和793-801的任一个具有100%的互补性，如在所述经修饰的寡核苷酸的整体上测量的。
在某些实施方案中，所述经修饰的寡核苷酸的至少一个核苷间连接为经修饰的核苷间连接。在某些实施方案中，每一个核苷间连接为硫代磷酸酯核苷间连接。
在某些实施方案中，所述经修饰的寡核苷酸的至少一个核苷包含经修饰的糖。在某些实施方案中，至少一个经修饰的糖为二环糖。在某些实施方案中，至少一个经修饰的糖包含2′-O-甲氧基乙基或4′-(CH2)n-O-2′桥，其中n为1或2。
在某些实施方案中，所述经修饰的寡核苷酸的至少一个核苷包含经修饰的核碱基。在某些实施方案中，经修饰的核碱基为5-甲基胞嘧啶。
在某些实施方案中，经修饰的寡核苷酸包含：a)由连接的脱氧核苷组成的空隙区段；b)由连接的核苷组成的5′翼区段；和c)由连接的核苷组成的3′翼区段。空隙区段位于5′翼区段与3′翼区段之间并且每一个翼区段的每一个核苷包含经修饰的糖。
在某些实施方案中，经修饰的寡核苷酸包含：a)由连接的脱氧核苷组成的空隙区段；b)由5个连接的核苷组成的5′翼区段；和c)由5个连接的核苷组成的3′翼区段。空隙区段位于5′翼区段与3′翼区段之间，每一个翼区段的每一个核苷包含2′-O-甲氧基乙基糖，所述经修饰的寡核苷酸的每一个核苷间连接为硫代磷酸酯连接，并且所述经修饰的寡核苷酸的每一个胞嘧啶为5′-甲基胞嘧啶。
在某些实施方案中，经修饰的寡核苷酸由20个连接的核苷组成。
某些实施方案提供了优先减少动物中的CUGexpDMPKRNA、减少动物中的肌强直或减少动物中的剪接病变的方法，包括给动物施用包含具有由10个连接的脱氧核苷组成的空隙区段、由5个连接的核苷组成的5′翼区段和由5个连接的核苷组成的3′翼区段的经修饰的寡核苷酸的化合物。空隙区段位于5′翼区段与3′翼区段之间，每一个翼区段的每一个核碱基包含2’-O-甲氧基乙基糖，所述经修饰的寡核苷酸的每一个核苷间连接为硫代磷酸酯连接，所述经修饰的寡核苷酸中的每一个胞嘧啶为5′-甲基胞嘧啶。
某些实施方案提供了本文中描述的任何化合物在药剂的制造中的用途，所述药剂用于本文中描述的任何治疗法。例如，某些实施方案提供了本文中描述的化合物用于制造用于治疗、改善或或预防1型肌强直性营养不良的药剂的用途。某些实施方案提供了本文中描述的化合物用于制造用于抑制DMPK的表达以及治疗、预防、延迟或改善DMPK相关疾病和/或其症状的药剂的用途。某些实施方案提供了本文中描述的化合物用于制造用于减少动物中的DMPK表达的药剂的用途。某些实施方案提供了本文中描述的化合物用于制造用于优先减少动物中的CUGexpDMPK、减少动物中的肌强直或减少动物中的剪接病变的药剂的用途。某些实施方案提供了本文中描述的化合物用于制造用于治疗患有1肌强直性营养不良的动物的药剂的用途。某些实施方案提供了本文中描述的化合物用于制造药剂的用途，所述药剂用于治疗、预防、延迟或改善与DM1的发展相关的病症和结果包括肌肉僵硬、肌强直、远端肢体无力、面部肌肉和颚肌无力、吞咽困难、举抬无力(上睑下垂)、颈肌无力、手臂和腿部肌肉无力、持久性肌肉疼痛、嗜睡症、肌萎缩、咽下困难、呼吸功能不全、心律不齐、心肌损伤、情感淡漠、胰岛素抗药性和白内障。某些实施方案提供了本文中描述的化合物用于制造用于通过直接裂解病原性转录物来抵消RNA显性的药剂的用途。
某些实施方案提供了用于治疗、预防或改善本文中描述的1型肌强直性营养不良的试剂盒，其中试剂包括：a)本文中描述的化合物；和任选地b)本文中描述的另外的试剂或疗法。该试剂盒还可包括使用试剂盒治疗、预防或改善I型肌强直性营养不良的说明书或标签。
某些实施方案提供了用于本文中描述的任何治疗法的本文中描述的任何化合物或组合物。例如，某些实施方案提供了本文中描述的用于抑制DMPK的表达以及治疗、预防、延迟或改善DMPK相关疾病和/或其症状的化合物或组合物。某些实施方案提供了本文中描述的用于减少动物中的DMPK表达的化合物或组合物。某些实施方案提供了本文中描述的用于优先减少动物中的CUGexpDMPK、减少动物中的肌强直或减少动物中的剪接病变的化合物或组合物。某些实施方案提供了本文中描述的用于治疗患有1型肌强直性营养不良的动物中的化合物或组合物。某些实施方案提供了本文中描述的用于治疗、预防、延迟或改善与DM1的发展相关的症状和结果的化合物或组合物，所述症状或结果包括肌肉僵硬、肌强直、远端肢体无力、面部肌肉和颚肌无力、吞咽困难、举抬无力(上睑下垂)、颈肌无力、手臂和腿部肌肉无力、持久性肌肉疼痛、嗜睡症、肌萎缩、咽下困难、呼吸功能不全、心律不齐、心肌损伤、情感淡漠、胰岛素抗药性和白内障。。某些实施方案提供了本文中描述的用于通过指导病原性转录物的裂解来抵消RNA显性的化合物或组合物。某些实施方案提供了由12至30个连接的核苷组成的经修饰的寡核苷酸，其具有包含SEQIDNO：12-156、160-770和774-792的核碱基序列的任一个的至少12个连续核碱基的核碱基序列。
还提供了可用于本文中描述的方法的其它化合物。
例如，某些实施方案提供了包含由10至80、12至50、12至30、15至30、18至24、19至22或20个连接的核苷组成的经修饰的寡核苷酸的化合物，所述经修饰的寡核苷酸具有包含SEQIDNO：41、44、76、109、153、320、321、322、325、329、335和657的核碱基序列的任一个的至少8、至少9、至少10、至少11、至少12、至少13、至少14、至少15、至少16、至少17、至少18或至少19个连续核碱基的核碱基序列。
某些实施方案提供了包含由10至80、12至50、12至30、15至30、18至24、19至22或20个连接的核苷的经修饰的寡核苷酸的化合物，所述经修饰的寡核苷酸具有包含SEQIDNO：15、73、77、79、83、85、130、602、648、655、674和680的核碱基序列的任一个的至少8、至少9、至少10、至少11、至少12、至少13、至少14、至少15、至少16、至少17、至少18或至少19个连续核碱基的核碱基序列。
某些实施方案包含由10至80、12至50、12至30、15至30、18至24、19至22或20个连接的核苷组成的经修饰的寡核苷酸的化合物，所述经修饰的寡核苷酸具有包含与等长度的SEQIDNO：1的664-683、773-792、926-945、927-946、928-947、931-950、935-954、941-960、2089-2108、2163-2182、2490-2509、2499-2518、2676-2695、2685-2704、2676-2695、2688-2707、2697-2716、2764-2783和2770-2789的核碱基的部分互补的至少8、至少9、至少10、至少11、至少12、至少13、至少14、至少15、至少16、至少17、至少18或至少19或更多个连续核碱基的部分的核碱基序列，其中核碱基序列与SEQIDNO：1互补。
某些实施方案提供了包含由10至80、12至50、12至30、15至30、18至24、19至22或20个连接的核苷组成的经修饰的寡核苷酸的化合物，所述经修饰的寡核苷酸具有包含与等长度的SEQIDNO：2的812-831、3629-3648、4447-4466、4613-4632、5803-5822、5804-5823、5805-5824、5808-5827、5818-5837、6794-6813、12463-12482、13152-13171和13553-13572的核碱基的部分互补的至少8、至少9、至少10、至少11、至少12、至少13、至少14、至少15、至少16、至少17、至少18或至少19或更多个连续核碱基的部分的核碱基序列，其中核碱基序列与SEQIDNO：2互补。
在某些实施方案中，经修饰的寡核苷酸为单链寡核苷酸。
在某些实施方案中，经修饰的寡核苷酸的核碱基序列与SEQIDNO：1-8和793-801的任一个具有至少70%、至少75%、至少80%、至少85%、至少90%、至少95%或100%的互补性。
在某些实施方案中，至少一个核苷间连接为经修饰的核苷间连接。
在某些实施方案中，每一个核苷间连接为硫代磷酸酯核苷间连接。
在某些实施方案中，至少一个核苷包含经修饰的糖。
在某些实施方案中，至少一个经修饰的糖为二环糖。
在某些实施方案中，至少一个经修饰的糖包含2′-O-甲氧基乙基。
在某些实施方案中，至少一个核苷包含经修饰的核苷。
在某些实施方案中，经修饰的核碱基为5-甲基胞嘧啶。
在某些实施方案中，经修饰的寡核苷酸包含：
由连接的脱氧核苷组成的空隙区段；
由连接的核苷组成的5′翼区段；和
由连接的核苷组成的3′翼区段；
其中空隙区段位于5′翼区段与3′翼区段之间，并且其中每一个翼区段的每一个核苷包含经修饰的糖。
在某些实施方案中，经修饰的寡核苷酸包含：
由10个连接的脱氧核苷组成的空隙区段；
由5个连接的核苷组成的5′翼区段；
和由5个连接的核苷组成的3′翼区段；
其中空隙区段位于5′翼区段与3′翼区段之间，其中每一个翼区段的每一个核苷包含2′-O-甲氧基乙基糖；并且其中每一个核苷间连接为硫代磷酸酯连接。
在某些实施方案中，经修饰的寡核苷酸由14个连接的核苷组成。
在某些实施方案中，经修饰的寡核苷酸由16个连接的核苷组成。
在某些实施方案中，经修饰的寡核苷酸由20个连接的核苷组成。
反义化合物
寡聚化合物包括但不限于寡核苷酸、寡核苷、寡核苷酸类似物、寡核苷酸模拟物、反义化合物、反义寡核苷酸和siRNA。寡聚化合物对于靶核酸可以是“反义的”，意指能够通过氢键合与靶核酸进行杂交。
在某些实施方案中，反义化合物具有核碱基序列，当以5′至3′方向书写时，所述序列包含其靶向的靶核酸的靶区段的反向互补序列。在某些此类实施方案中，反义寡核苷酸具有核碱基序列，当以5′至3′方向书写时，所述序列包含其靶向的靶核酸的靶区段的反向互补序列。
在某些实施方案中，本文中描述的靶向DMPK的反义化合物在长度上为10至30个核苷酸。换句话说，反义化合物在一些实施方案中为10至30个连接的核碱基。在其它实施方案中，反义化合物包含由8至80、10至80、12至30、12至50、15至30、18至24、19至22或20个连接的核碱基组成的经修饰的寡核苷酸。在某些此类实施方案中，反义化合物包含由在长度上为8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63、64、65、66、67、68、69、70、71、72、73、74、75、76、77、78、79或80个或由任何两个上述值确定的范围内的连接的核碱基组成的经修饰的寡核苷酸。在某些实施方案中，具有这些长度的任一个的反义化合物包含本文中描述的示例性反义化合物的任一个的核碱基序列的至少8、至少9、至少10、至少11、至少12、至少13、至少14、至少15、至少16、至少17、至少18或至少19个连续核碱基(例如SEQIDNO：12-156、160-770和774-792的任一个中引用的核碱基序列的至少8个连续核碱基。
在某些实施方案中，反义化合物包含更短或截断的经修饰的寡核苷酸。该更短或截断的经修饰的寡核苷酸可从5′末端(5′截断)，或可选择地从3′末端(3′截断)缺失单个核苷。该缩短的或截断的寡核苷酸可从5′末端缺失两个核苷，或可选择地可从3′末端缺失两个亚单位。或者，缺失的核苷可分散在整个经修饰的寡核苷酸中，例如在从5′末端缺失一个核苷并且从3′末端缺失一个核苷的反义化合物中。
当单个额外核苷存在于延长的寡核苷酸中时，该额外核苷可位于寡核苷酸的5′或3′末端。当两个或更多个额外核苷存在时，添加的核苷可彼此相邻，例如在具有添加至寡核苷酸的5′末端(5′添加)或可选择地添加至3′末端(3′添加)的两个核苷的寡核苷酸中。或者，添加的核苷可分散在整个反义化合物中，例如在具有添加至5′末端的一个核苷和添加至3′末端的一个亚单位的寡核苷酸中。
可能增加或减少反义化合物（例如反义寡核苷酸）的长度和/或引入错配碱基而不消除活性。例如，在Woolf等人(Proc.Natl.Acad.Sci.USA89:7305-7309,1992)中，在卵母细胞注射模型中测试一系长度为13-25个核碱基的反义寡核苷酸的诱导靶RNA的裂解的能力。在反义寡核苷酸的末端附近具有8或11个错配的长度为25个核碱基的反义寡核苷酸能够指导靶mRNA的特异性裂解，虽然程度不如不包含错配的反义寡核苷酸。类似地，使用13个核碱基的反义寡核苷酸(包括1或3个错配的反义寡核苷酸)实现靶特异性裂解。
Gautschi等人(J.Natl.CancerInst.93:463-471,2001年3月)显示了与bcl-2mRNA具有100%的互补性并且与bcl-xLmRNA具有3个错配的寡核苷酸在体外和体内减少bcl-2和bcl-xL的表达的能力。此外，该寡核苷酸显示高效的体内抗肿瘤活性。
Maher和Dolnick(Nuc.Acid.Res.16:3341-3358,1988)在兔网织红细胞测定测试了一系列串联的14个核碱基的反义寡核苷酸，以及分别由两个或三个串联的反义寡核苷酸的序列组成的28和42个核碱基的反义寡核苷酸的阻止人DHFR的翻译的能力。3种14个核碱基的反义寡核苷酸的每一种单独地能够抑制翻译，虽然在比28或42个核碱基的反义寡核苷酸更适中的水平上。
反义化合物基序
在某些实施方案中，靶向DMPK核酸的反义化合物具有以赋予反义化合物性质（例如增强的抑制活性、增加的对靶核酸的结合亲合力或对由体内核酸酶产生的降解的抗性）的模式或基序排列的经化学修饰的亚单位。
嵌合反义化合物通常包含经修饰以赋予增强的对核酸酶降解的抗性、增加的细胞吸收、增强的对靶核酸的结合亲合力和/或增强的抑制活性的至少一个区域。嵌合反义化合物的第二区域可任选地用作细胞内切核酸酶RNA酶H的底物，该酶裂解RNA:DNA双链体的RNA链。
具有空隙聚物基序的反义化合物被认为是嵌合反义化合物。在空隙聚物中，具有多个支持RNA酶H裂解的核苷酸的内部区位于具有多个在化学上与内部区的核苷不同的核苷酸的外侧区之间。在具有空隙聚物基序的反义寡核苷酸的情况下，空隙区段通常用作内切核酸酶裂解的底物，同时翼区段包含经修饰的核苷。在某些实施方案中，空隙聚物的区域通过包含每一个不同区域的糖部分的类型来区别。用于区别空隙聚物的区域的糖部分的类型可在一些实施方案中包括β-D-核糖核苷、β-D-脱氧核糖核苷、2′-修饰的核苷(例如除其它以外，2′-修饰的核苷可包括2′-MOE和2′-O-CH3)和双环糖修饰的核苷(此类双环糖修饰的核苷可包含具有4′-(CH2)n-O-2′桥的修饰的核苷，其中n=l或n=2)。优选，每一个不同的区域包含一致的糖部分。翼-空隙-翼基序(wing-gap-wingmotif)经常被描述为“X-Y-Z”，其中“X”代表5′翼区域的长度，“Y”代表空隙区域的长度，而“Z”代表3′翼区域的长度。如本文中所使用的，描述为“X-Y-Z”的空隙聚物具有如此的构型以使空隙区段紧邻5′翼区段和3′翼区段的每一个。因此，在5′翼区段和空隙区段、或空隙区段与3′翼区段之间不存在间插核苷酸。本文中描述的的反义化合物的任一种可具有空隙聚物基序。在一些实施方案中，X和Z是相同的，在其它实施方案中，它们是不同的。在优选实施方案中，Y为8至15个核苷酸。X、Y或Z可为1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、25、30或更多个核苷酸的任一个。因此，空隙聚物包括但不限于例如5-10-5、4-8-4、4-12-3、4-12-4、3-14-3、2-13-5、2-16-2、1-18-1、3-10-3、2-10-2、1-10-1、2-8-2、6-8-6、5-8-5、1-8-1或2-6-2。
在某些实施方案中，为“翼聚物(wingmer)”基序的反义化合物具有翼-空隙或空隙-翼构型，即如上文中对于空隙聚物构型所描述的X-Y或Y-Z构型。因此，翼聚物构型包括但不限于例如5-10、8-4、4-12、12-4、3-14、16-2、18-1、10-3、2-10、1-10、8-2、2-13或5-13。
在某些实施方案中，靶向DMPK核酸的反义化合物具有5-10-5空隙聚物基序列。
在某些实施方案中，靶向DMPK核酸的反义化合物具有增宽的空隙(gap-widened)的基序。
在某些实施方案中，这些空隙聚物或翼聚物基序的任一种的反义化合物包含本文中描述的示例性反义化合物的任一种的核碱基序列的至少8、至少9、至少10、至少11、至少12、至少13、至少14、至少15、至少16、至少17、至少18或至少19个连续核碱基(例如，SEQIDNO：12-156、160-770和774-792的任一个中引用的核碱基序列的至少8个连续核碱基。
靶核酸、靶区域和核苷酸序列
编码DMPK的核苷酸序列包括但不限于下列序列，如GenBank登录号NM_001081560.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：1)、GenBank登录号NT_011109.15所示的从核苷酸18540696至18555106截断的序列(本文中合为SEQIDNO：2)、GenBank登录号NT_039413.7所示的从核苷酸16666001至16681000截断的序列(本文中合为SEQIDNO：3)、GenBank登录号NM_032418.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：4)、GenBank登录号AI007148.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：5)、GenBank登录号AI304033.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：6)、GenBank登录号BC024150.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：7)、GenBank登录号BC056615.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：8)、GenBank登录号BC075715.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：793)、GenBank登录号BU519245.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：794)、GenBank登录号CB247909.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：795)、GenBank登录号CX208906.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：796)、GenBank登录号CX732022.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：797)、GenBank登录号S60315.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：798)、GenBank登录号S60316.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：799)、GenBank登录号NM_001081562.1所示的序列(本文中合为SEQIDNO：800)和GenBank登录号NM_001100.3所示的序列(本文中合为SEQIDNO：801)。应理解本文中包含的实例中的每一个SEQIDNO所示的序列不依赖于对糖部分、核苷间连接或核碱基的任何修饰。这样，由SEQIDNO定义的反义化合物可独立地包含一个或多个对糖部分、核苷间连接或核碱基的修饰。由Isis号(IsisNo)描述的反义化合物表示核碱基序列和基序的组合。
在某些实施方案中，靶区域为靶核酸的结构上确定的区域。例如，靶区域可包括3′UTR、5′UTR、外显子、内含子、外显子/内含子接合处、编码区、翻译起始区、翻译终止区或其它确定的核酸区。DMPK的结构上确定的区域可通过登录号从序列数据库（例如NCBI）获得并且这样的信息通过引用并入本文。在某些实施方案中，靶区域可包括从靶区域内的一个靶区段的5′靶位点至靶区域内的另一个靶区段的3′靶位点的序列。
靶向包括反义化合物与其杂交(以便期望的作用发生)的至少一个靶区段的确定。在某些实施方案中，该期望的作用为mRNA靶核酸水平的降低。在某些实施方案中，该期望的作用为由靶核酸编码的蛋白质水平的降低或与靶核酸相关的表型改变。
靶区域可包含一个或多个靶区段。靶区域内的多个靶区段可重叠的。或者，它们可以是非重叠的。在某些实施方案中，靶区域内的靶区段被不超过约300个核苷酸分隔。在某些实施方案中，靶区域内的靶区段被靶核酸上为、约为、不超过、不超过约250、200、150、100、90、80、70、60、50、40、30、20或10个核苷酸分隔，或在由任何两个上述值确定的范围内的许多核苷酸分隔。在某些实施方案中，靶区域内的靶区段被靶核酸上不超过、或不超过约5个核苷酸分隔。在某些实施方案中，靶区段为连续的。考虑由具有为本文中所列的5′靶位点或3′靶位点中的任一个的起始核酸的范围确定的靶区域。
适当的靶区段可见于5′UTR、编码区、3′UTR、内含子、外显子或内含子/外显子接合处内。包含起始密码子或终止密码子的靶区段也是适当的靶区段。适当的靶区段可特别地不包括某些结构上确定的区域（例如起始密码子或终止密码子）。
适当的靶区段的确定可包括靶核酸的序列与整个基因组上的其它序列的比较。例如，BLAST算法可用于鉴定在不同核酸间具有相似性的区域。该比较可防止选择可以以非特异性方式与除了选择的靶核酸外的核酸(即，非靶或脱靶序列)杂交的反义化合物序列。
在活性靶区域内可存在反义化合物的活性的变化(例如，如通过靶核酸水平的百分比降低确定的)。在某些实施方案中，DMPKmRNA水平的降低表示DMPK蛋白表达的抑制。DMPK蛋白质水平的降低也表示靶mRNA表达的抑制。此外，表型改变（例如减少肌强直或减少剪接病变）可表示DMPKmRNA和/或蛋白质表达的抑制。
杂交
在一些实施方案中，杂交在本文中公开的反义化合物与DMPK核酸之间发生。杂交的最常见机制包括核酸分子的互补核碱基之间的氢键合(例如，沃尔森-克里克、Hoogsteen或反向Hoogsteen氢键合)。
杂交可在不同条件下发生。严格条件为序列依赖性的并且由待杂交的核酸的性质和组成确定。
确定序列是否可与靶核酸特异性杂交的方法在本领域是公知的(Sambrooke和Russell,MolecularCloning：ALaboratoryManual,第3版,2001)。在某些实施方案中，本文中提供的反义化合物可与DMPK核酸特异性杂交。
互补性
当反义化合物的充足数量的核碱基可与靶核酸的相应核碱基氢键合，以便期望的作用发生(例如，靶核酸（例如DMPK核酸）的反义抑制)时，反义化合物和靶核酸是彼此互补的。
反义化合物可在DMPK核酸的一个或多个区段上杂交，以便间插或相邻区段不参与杂交事件(例如，环结构、错配或发夹结构)。
在某些实施方案中，本文中提供的反义化合物或其指定的部分与DMPK核酸、其靶区域、靶区段或其指定的部分具有或具有至少70%、80%、85%、86%、87%、88%、89%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%或100%的互补性。在某些实施方案中，反义化合物与DMPK核酸、其靶区域、靶区段或指定的部分具有至少70%、至少80%、至少85%、至少86%、至少87%、至少88%、至少89%、至少90%、至少91%、至少92%、至少93%、至少94%、至少95%、至少96%、至少97%、至少98%、至少99%或100%的互补性，并且包含本文中描述的示例性反义化合物的任一个的核碱基序列的至少8、至少9、至少10、至少11、至少12、至少13、至少14、至少15、至少16、至少17、至少18或至少19个连续核碱基(例如，SEQIDNO：12-156、160-770和774-792的任一个中引用的核碱基序列的至少8个连续核碱基)。反义化合物与靶核酸的百分比互补性可使用常规方法来测定，并且在反义化合物的整体上进行测量。
例如，其中反义化合物中的20个核碱基的18个与靶区域互补并且从而可与其特异性杂交的反义化合物可代表90%的互补性。在该实例中，可将其余的非互补核碱基集簇或分散在互补核碱基中，并且彼此之间或与互补核碱基之间不必连续。这样，在长度上为18个核碱基的具有4(四)个非互补核碱基(所述非互补核碱基的侧翼连接有两个与靶核酸完全互补的区域)的反义化合物可与靶核酸具有77.8%的总体互补性，从而落在本发明的范围内。反义化合物与靶核酸的区域的百分比互补性可使用本领域已知的BLAST程序(基本局部比对搜索工具)和PowerBLAST程序(Altschul等人，J.Mol.Biol.,1990,215,403410；Zhang和Madden,GenomeRes.,1997,7,649656)来常规地测定。百分比同源性、序列同一性或或互补性可利用（例如）Gap程序(WisconsinSequenceAnalysisPackage,Version8forUnix，GeneticsComputerGroup,UniversityResearchPark,MadisonWis.)，使用缺省设置来测定，所述程序使用Smith和Waterman的算法(Adv.Appl.Math.,1981,2,482-489)。
在某些实施方案中，本文中提供的反义化合物或其指定的部分与靶核酸或其指定的部分完全互补(即，100%互补)。例如，反义化合物可与DMPK核酸、其靶区域或靶区段或靶序列完全互补。如本文中所用，“完全互补”意指反义化合物的每一个核碱基能够与靶核酸的相应核碱基精确碱基配对。例如，20个核碱基的反义化合物与400个核碱基长的靶序列完全互补，只要存在与反义化合物完全互补的靶核酸的相应的20个核碱基部分。完全互补还可用于第一和/或第二核酸的指定的部分。例如，30个核碱基的反义化合物的20个核碱基的部分可与400个核碱基长的靶序列“完全互补”。30个核碱基的寡核苷酸的20个核碱基的部分与靶序列完全互补，如果靶序列具有其中每一个核碱基与反义化合物的20个核碱基的部分互补的话。同时，全部30个核碱基的反义化合物可与靶序列互补，这取决于反义化合物的其余10个核碱基也与靶序列互补。
非互补核碱基的位置可位于反义化合物的5′末端或3′末端。或者，非互补核碱基或核碱基可位于反义化合物的内部位置。当两个或更多个非互补核碱基存在时，它们可以是连续的(即，连接的)或非连续的。在一个实施方案中，非互补核碱基位于空隙聚物反义寡核苷酸的翼区段中。
在某些实施方案中，在长度上为或达到10、12、13、14、15、16、17、18、19或20个核碱基的反义化合物相对于靶核酸（例如DMPK核酸或其指定的部分）包含不超过4个、不超过3个、不超过2个或不超过1个非互补核碱基。
在某些实施方案中，在长度上为或达至10、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29或30个核碱基的反义化合物相对于靶核酸（例如DMPK核酸或其指定的部分）包含不超过6个，不超过5个，不超过4个，不超过3个，不超过2个或不超过1个非互补核碱基。
本文中提供的反义化合物还包括与靶核酸的部分互补的反义化合物。如本文中所用，“部分”是指靶核酸的区域或区段内确定数目的连续(即连接的)核碱基。“部分”还可指反义化合物的确定数目的连续核碱基。在某些实施方案中，反义化合物与靶区段的至少8个核碱基的部分互补。在某些实施方案中，反义化合物与靶区段的至少10个核碱基的部分互补。在某些实施方案中，反义化合物与靶区段的至少15个核碱基的部分互补。还考虑与靶区段的至少8、至少9、至少10、至少11、至少12、至少13、至少14、至少15、至少16、至少17、至少18、至少19、至少20或更多个核碱基的部分或在由这些值的任何两个确定的范围内的部分互补的反义化合物。
同一性
本文中提供的反义化合物还可具有与特定核苷酸序列SEQIDNO或由特定Isis编号表示的化合物或其部分具有确定的百分比同一性。如本文中所用，如果其具有相同核碱基配对能力，则反义化合物与本文中公开的序列具有同一性。例如，包含替代公开的DNA序列中的胸苷的尿嘧啶的RNA可被认为与DNA序列具有同一性，因为尿嘧啶和胸苷都与腺嘌啶配对。还考虑本文中公开的反义化合物的缩短的和延长的形式以及相对于本文中提供的反义化合物具有非同一碱基的的化合物。非同一碱基可彼此相邻或分散在整个反义化合物中。根据相对于与其比较的序列具有同一碱基配对的碱基的数目计算反义化合物的百分比同一性。
在某些实施方案中，反义化合物或其部分与本文中公开的一个或多个示例性反义化合物或SEQIDNO或其部分具有至少70%、至少75%、至少80%、至少85%、至少90%、至少95%、至少96%、至少97%、至少98%、至少99%或100%的同一性。
修饰
核苷是碱基-糖的组合。核苷的核碱基(也称为碱基)部分通常为杂环碱基部分。核苷酸为还包括共价地连接于核苷的糖部分的磷酸基团的核苷。对于包括戊呋喃糖基糖、磷酸基团的那些核苷可连接于糖的2′、3′或5′羟基部分。寡核苷酸通过相邻核苷的彼此共价连接(以形成线性多聚寡核苷酸)形成。在寡核苷酸结构内，磷酸基团通常称为形成寡核苷酸的核苷间连接。
对反义化合物的修饰包括对核苷间连接、糖部分或核碱基的转换或改变。经修饰的反义化合物通常因期望的性质（例如增强的细胞吸收、增强的对核酸靶的亲合力、增强在核酸酶存在的情况下的稳定性或增强的抑制活性）而优于天然形式。
经化学修饰的核苷还可用于增强缩短的或截断的反义寡核苷酸对于其靶核酸的结合亲合力。因此，通常可利用具有这样经化学修饰的的核苷的更短的反义化合物来获得可比较的结果。
经修饰的核苷间连接
RNA和DNA的天然存在的核苷间连接为3′至5′磷酸二酯连接。因期望的性质（例如增强的细胞吸收、增强的对靶核酸的亲合力以及增强的在核酸酶存在的情况下的稳定性）的原因，通常优先于具有天然存在的核苷间连接的反义化合物选择具有一个或多个经修饰的（即非天然存在的）核苷间连接的反义化合物。
具有经修饰的核苷间连接的寡核苷酸包括保留磷原子的核苷间连接以及不具有磷原子的核苷间连接。代表性含磷核苷间连接包括但不限于磷酸二酯、磷酸三酯、甲基膦酸酯、氨基磷酸酯和硫代磷酸酯。制备含磷和非含磷连接的方法是公知的。
在某些实施方案中，靶向DMPK核酸的反义化合物包含一个或多个经修饰的核苷间连接。在某些实施方案中，经修饰的核苷间连接为硫代磷酸酯连接。在某些实施方案中，反义化合物的每一个核苷间连接为硫代磷酸酯核苷间连接。
经修饰的糖部分
本发明的反义化合物可任选地包含一个或多个其中糖基团已被修饰的核苷。此类糖修饰的核苷可赋予反义化合物增强的核酸酶稳定性、增强的结合亲合力或一些其它有益的生物性质。在某些实施方案中，核苷包含经化学修饰的呋喃核糖环部分。经化学修饰的呋喃核糖环的实例包括但不限于取代基团的添加(包括5′和2′取代基、形成二环核酸(BNA)的非成对环原子的桥连、S、N(R)或C(R1)(R2)(R，R1和R2各自独立地为H、C1-C12烷基或保护基团)对核糖基环的氧原子的替代及其组合。经化学修饰的糖的实例包括2′-F-5′-甲基取代的核苷(关于其它公开的5′,2′-双取代核苷，参见于8/21/08公开的PCT国际申请WO2008/101157)或S对核糖基环的氧原子的取代以及2′-位置上的其它取代(参见2005年1月16日公开的美国专利申请US2005-0130923公开)或可选择地BNA的5′-取代(参见11/22/07公开的PCT国际申请WO2007/134181，其中LNA被例如5′-甲基或5′-乙烯基取代)。
具有经修饰的糖部分的核苷实例包括但不限于包含5′-乙烯基、5′-甲基(R或S)、4′-S、2′-F、2′-OCH3、2′-OCH2CH3、2′-OCH2CH2F和2′-O(CH2)2OCH3取代基的核苷。2′位置上的取代基还可选自烯丙基、氨基、叠氮基、硫代、O-烯丙基、O-C1-C10烷基、OCF3、OCH2F、O(CH2)2SCH3、O(CH2)2-O-N(Rm)(Rn)、O-CH2-C(=O)-N(Rm)(Rn)和O-CH2-C(=O)-N(R1)-(CH2)2-N(Rm)(Rn)、其中每一个R1、Rm和Rn独立地为H或取代的或未取代的C1-C10烷基。
二环核酸(BNA)的实例包括但不限于包含4′与2′核糖基环原子之间的桥的核苷。在某些实施方案中，本文中提供的反义化合物包括一个或多个BNA核苷，其中桥包含下式中的一个：4′-(CH2)-O-2′(LNA)；4′-(CH2)-S-2′；4′-(CH2)2-O-2′(ENA)；4′-CH(CH3)-O-2′和4′-CH(CH2OCH3)-O-2′(及其类似物，参见2008年7月15日颁布的美国专利7,399,845)；4′-C(CH3)(CH3)-O-2′(及其类似物，参见公开为WO/2009/006478的PCT/US2008/068922，2009年1月8日公开)；4′-CH2-N(OCH3)-2′(及其类似物，参见公开为WO/2008/150729的PCT/US2008/064591，2008年12月11日公开)；4′-CH2-O-N(CH3)-2′(参见公开的美国专利申请US2004-0171570，2004年9月2公开)；4′-CH2-N(R)-O-2′，其中R为H、C1-C12烷基或保护基团(参见2008年9月23日颁布的美国专利7,427,672)；4′-CH2-C(H)(CH3)-2′(参见Chattopadhyaya等人，J.Org.Chem.,2009,74,118-134)；和4′-CH2-C(=CH2)-2′(及其类似物，参见公开为WO2008/154401的PCT/US2008/066154，2008年12月8日公开)。
其它二环核苷已在公开的文献中进行了报导(参见例如，Srivastava等人，J.Am.Chem.Soc,2007,129(26)8362-8379；Frieden等人，NucleicAcidsResearch,2003,21,6365-6372；Elayadi等人，Curr.OpinionInvens.Drugs,2001,2,558-561；Braasch等人，Chem.Biol.,2001,8,1-7；Orum等人，Curr.OpinionMol.Ther.,2001,3,239-243；Wahlestedt等人，Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.,2000,97,5633-5638；Singh等人，Chem.Commun.,1998,4,455-456；Koshkin等人，Tetrahedron,1998,54,3607-3630；Kumar等人，Bioorg.Med.Chem.Lett.,1998,8,2219-2222；Singh等人，J.Org.Chem.,1998,63,10035-10039；美国专利号：7,399,845；7,053,207；7,034,133；6,794,499；6,770,748；6,670,461；6,525,191；6,268,490；美国专利公开号：US2008-0039618；US2007-0287831；US2004-0171570；美国专利申请系列号：12/129,154；61/099,844；61/097,787；61/086,231；61/056,564；61/026,998；61/026,995；60/989,574；国际申请WO2007/134181；WO2005/021570；WO2004/106356；WO94/14226；和PCT国际申请号：PCT/US2008/068922；PCT/US2008/066154和PCT/US2008/064591)。前述二环核苷的每一种可经制备具有一个或多个立体化学糖构型，包括例如α-L-呋喃核糖和β-D-呋喃核糖(参见1999年3月25日公开为WO99/14226的PCT国际申请PCT/DK98/00393)。
在某些实施方案中，二环核苷包含戊呋喃糖基糖部分的4′与2′碳原子之间的桥，包括但不限于包含1个或1至4个连接的基团的桥，所述基团独立地选自-[C(Ra)(Rb)]n-、-C(Ra)=C(Rb)-、-C(Ra)=N-、-C(=NRa)-、-C(=O)-、-C(=S)-、-O-、-Si(Ra)2-、-S(=O)x-和-N(Ra)-；其中：x为0、1或2；n为1、2、3或4；每一个Ra和Rb独立地为H、保护基团、羟基、C1-C12烷基、取代的C1-C12烷基、C2-C12烯基、取代的C2-C12烯基、C2-C12炔基、取代的C2-C12炔基、C5-C20芳基、取代的C5-C20芳基、杂环基、取代的杂环基、杂芳基、取代的杂芳基、C5-C7脂环基、取代的C5-C7脂环基、卤素、OJ1、NJ1J2、SJ1、N3、COOJ1、酰基(C(=O)-H)、取代的酰基、CN、磺酰基(S(=O)2-J1)或增效砜(S(=O)-J1)；并且
每一个J1和J2独立地为H、C1-C12烷基、取代的C1-C12烷基、C2-C12烯基、取代的C2-C12烯基、C2-C12炔基、取代的C2-C12炔基、C5-C20芳基、取代的C5-C20芳基、酰基(C(=O)-H)、取代的酰基、杂环基、取代的杂环基、C1-C12氨基烷基、取代的C1-C12氨基烷基或保护基团。
在某些实施方案中，二环糖部分的桥为-[C(Ra)(Rb)]n-、-[C(Ra)(Rb)]n-O-、-C(RaRb)-N(R)-O-或-C(RaRb)-O-N(R)-。在某些实施方案中，桥为4′-CH2-2′、4′-(CH2)2-2′、4′-(CH2)3-2′、4′-CH2-O-2′、4′-(CH2)2-O-2′、4′-CH2-O-N(R)-2′和4′-CH2-N(R)-O-2-，其中每一个R独立地为H、保护基团或C1-C12烷基。
在某些实施方案中，二环核苷还通过异构构型来确定。例如，包含4′-(CH2)-O-2′桥的核苷可以α-L构型或以β-D构型存在。先前，α-L-亚甲基氧(4′-CH2-O-2′)BNA已被并入显示反义活性的反义寡核苷酸中(Frieden等人，NucleicAcidsResearch,2003,21,6365-6372)。
在某些实施方案中，二环核苷包括具有4′至2′桥的那些二环核苷，其中此类桥包括但不限于α-L-4′-(CH2)-O-2′、β-D-4′-CH2-O-2′、4′-(CH2)2-O-2′、4′-CH2-O-N(R)-2′、4′-CH2-N(R)-O-2′、4′-CH(CH3)-O-2′、4′-CH2-S-2′、4′-CH2-N(R)-2′、4′-CH2-CH(CH3)-2′和4′-(CH2)3-2′，其中R为H、保护基团或C1-C12烷基。
在某些实施方案中，二环核苷具有式：
其中：
Bx为杂环碱基部分；
-Qa-Qb-Qc-为-CH2-N(Rc)-CH2-、-C(=O)-N(Rc)-CH2-、-CH2-O-N(Rc)-、-CH2-N(Rc)-O-或-N(Rc)-O-CH2。
Rc为C1-C12烷基或氨基保护基团；和
Ta和Tb各自独立地为H、羟基保护基团、缀合物基团、反应性磷基团、磷部分或至载体介质的共价附着。
在某些实施方案中，二环核苷具有式：
其中:
Bx为杂环碱基部分；
Ta和Tb各自独立地为H、羟基保护基团、缀合物基团、反应性磷基团、磷部分或至载体介质的共价附着；
Za为C1-C6烷基、C2-C6烯基、C2-C6炔基、取代的C1-C6烷基、取代的C2-C6烯基、取代的C2-C6炔基、酰基、取代的酰基、取代的酰胺、巯基或取代的巯基。
在一个实施方案中，用独立地选自卤素、氧代、羟基、OJc、NJcJd、SJc、N3、OC(=X)Jc和NJeC(=X)NJcJd的取代基团独立地单取代或多取代每一个取代基团，其中每一个Jc、Ja和Je独立地为H、C1-C6烷基或取代的C1-C6烷基并且X为O或NJc。
在某些实施方案中，二环核苷具有下式：
其中：
Bx为杂环碱基部分；
Ta和Tb各自独立地为H、羟基保护基团、缀合物基团、反应性磷基团、磷部分或至载体介质的共价附着；
Zb为C1-C6烷基、C2-C6烯基、C2-C6炔基、取代的C1-C6烷基、取代的C2-C6烯基、取代的C2-C6炔基或取代的酰基(C(=O)-)。
在某些实施方案中，二环核苷具有式：
其中：
Bx为杂环碱基部分；
Ta和Tb各自独立地为H、羟基保护基团、缀合物基团、反应性磷基团、磷部分或至载体介质的共价附着；
Rd为C1-C6烷基、取代的C1-C6烷基、C2-C6烯基、取代的C2-C6烯基、C2-C6炔基或取代的C2-C6炔基；
每一个qa、qb、qc和qd独立地为H、卤素、C1-C6烷基、取代的C1-C6烷基、C2-C6烯基、取代的C2-C6烯基、C2-C6炔基或取代的C2-C6炔基、C1-C6烷氧基、取代的C1-C6烷氧基、酰基、取代的酰基、C1-C6氨基烷基或取代的C1-C6氨基烷基；
在某些实施方案中，二环核苷具有下式：
其中：
Bx为杂环碱基部分；
Ta和Tb各自独立地为H、羟基保护基团、缀合物基团、反应性磷基团、磷部分或至载体介质的共价附着；
qa、qb、qe和qf各自独立地为氢、卤素、C1-C12烷基、取代的C1-C12烷基、C2-C12烯基、取代的C2-C12烯基、C2-C12炔基、取代的C2-C12炔基、C2-C12烷氧基、取代的C1-C12烷氧基、OJj、SJj、SOJj、SO2Jj、NJjJk、N3、CN、C(=O)OJj、C(=O)NJjJk、C(=O)Jj、O-C(=O)NJjJk、N(H)C(=NH)NJjJk、N(H)C(=O)NJjJk或N(H)C(=S)NJjJk；
或qe和qf一起为=C(qg)(qh)；
qg和qh各自独立地为H、卤素、C1-C12烷基或取代的C1-C12烷基。
具有4′-CH2-O-2′桥的腺嘌呤、胞嘧啶、鸟嘌呤、5-甲基-胞嘧啶、胸腺嘧啶和尿嘧啶二环核苷的合成和制备以及它们的寡聚化和核酸识别性质已进行了描述(Koshkin等人，Tetrahedron,1998,54,3607-3630)。二环核苷的合成也已描述于WO98/39352和WO99/14226中。
具有4′至2′桥连基团（例如4′-CH2-O-2′和4′-CH2-S-2′）的各种二环核苷的类似物也已被制备(Kumar等人，Bioorg.Med.Chem.Lett.,1998,8,2219-2222)。包含用作核酸聚合酶的底物的二环核苷的寡聚脱氧核糖核苷酸双链体的制备也已被描述(Wengel等人，WO99/14226)。此外，2′-氨基-BNA(新型构象限制的高亲合力寡核苷酸类似物)的合成已在本领域中进行了描述(Singh等人，J.Org.Chem.,1998,63,10035-10039)。此外，已制备了2′-氨基-和2′-甲基氨基-BNA，并且先前已报导了它们的具有互补RNA与DNA链的双链体的热稳定性。
在某些实施方案中，二环核苷具有下式：
其中：
Bx为杂环碱基部分；
Ta和Tb各自独立地为H、羟基保护基团、缀合物基团、反应性磷基团、磷部分或至载体介质的共价附着；
每个qi、qj、qk和qi独立地为H、卤素、C1-C12烷基、取代的C1-C12烷基、C2-C12烯基、取代的C2-C12烯基、C2-C12炔基、取代的C2-C12炔基、C1-C12烷氧基、取代的C1-C12烷氧基、OJj、SJj、SOJj、SO2Jj、NJjJk、N3、CN、C(=O)OJj、C(=O)NJjJk、C(=O)Jj、O-C(=O)NJjJk、N(H)C(=NH)NJjJk、N(H)C(=O)NJjJk或N(H)C(=S)NJjJk；并且
qi和qj或qi和qk一起为=C(qg)(qh)，其中qg和qh各自独立地为H、卤素、C1-C12烷基或取代的C1-C12烷基。
具有4′-(CH2)3-2′桥和烯基类似物桥4′-CH=CH-CH2-2′的一个碳环二环核苷已进行了描述(Frier等人，NucleicAcidsResearch,1997,25(22),4429-4443和Albaek等人，J.Org.Chem.,2006,71,7731-7740)。碳环二环核苷的合成及制备以及它们的寡聚化和生物化学研究也已进行了描述(Srivastava等人，J.Am.Chem.Soc.2007,129(26),8362-8379)。
在某些实施方案中，二环核苷包括但不限于(A)α-L-亚甲基氧(4′-CH2-O-2′)BNA、(B)β-D-亚甲基氧(4′-CH2-O-2′)BNA、(C)乙烯基氧(4′-(CH2)2-O-2′)BNA、(D)氨基氧(4′-CH2-O-N(R)-2′)BNA、(E)氧氨基(4′-CH2-N(R)-O-2′)BNA、(F)甲基(亚甲基氧)(4′-CH(CH3)-O-2′)BNA(也称为约束(constrained)乙基或cEt)、(G)亚甲基-硫代(4′-CH2-S-2′)BNA、(H)亚甲基-氨基(4′-CH2-N(R)-2′)BNA、(I)甲基碳环(4′-CH2-CH(CH3)-2′)BNA、(J)丙烯碳环(4′-(CH2)3-2′)BNA和(K)乙烯基BNA，如下文中描述的。
其中Bx为碱基部分并且R独立地为H、保护基团、C1-C6烷基或C1-C6烷氧基。
在某些实施方案中，通过用糖替代物替代核糖基环来修饰核苷。此类修饰包括但不限于利用替代环系统(有时称为DNA类似物)（例如吗啉代环、环己烯基环或四氢吡喃基环（例如具有下式中的一个的四氢吡喃基环））对核糖基环的替代：
在某些实施方案中，选择具有下式的糖替代物：
其中：
Bx为杂环碱基部分：
T3和T4各自独立地为将四氢吡喃核苷类似物连接于寡聚化合物的核苷间连接基团或T3和T4中的一个为将四氢吡喃核苷类似物连接于寡聚化合物或寡核苷酸的核苷间连接基团，而另一个为H、羟基保护基团、连接的缀合物基团或5′或3′-末端基团；
q1、q3、q4、q5、q6和q7各自独立地为H、C1-C6烷基、取代的C2-C6烷基、C2-C6烯基、取代的C2-C6烯基、C2-C6炔基或取代的C2-C6炔基；和
R1和R2中的一个为氢，而另一个选自卤素、取代的或未取代的烷氧基、NJ1J2、SJ1、N3、OC(=X)J1、OC(=X)NJ1J2、NJ3C(=X)NJ1J2和CN，其中X为O、S或NJ1并且J1、J2和J3独立地为H或C1-C6烷基。
在某些实施方案中，q1、q2、q3、q4、q5、q6和q7各自为H。在某些实施方案中，q1、q2、q3、q4、q5、q6和q7的至少一个不为H。在某些实施方案中，q1、q2、q3、q4、q5、q6和q7的至少一个为甲基。在某些实施方案中，提供了其中R1和R2中的一个为F的THP核苷。在某些实施方案中，R1为氟代并且R2为H；R1为甲氧基并且R2为H，R1为甲氧基乙氧基并且R2为H。
此类糖替代物包括但不限于在本领域内称为己糖醇核酸(HNA)、阿卓糖醇核酸(ANA)和甘露醇核酸(MNA)的物质(参见Leumann,C.J.,Bioorg.&Med.Chem.,2002,10,841-854)。
在某些实施方案中，反义化合物包含一种或多种经修饰的环己烯基核苷，其为用六元环己烯基替代天然存在的核苷中的戊呋喃糖基糖残基的核苷。经修饰的环己烯基核苷包括但不限于本领域中描述的那些经修饰的环己烯基核苷(参见例如公开共同拥有的公开的PCT申请WO2010/036696，于2010年4月10日公开，Robeyns等人，J.Am.Chem.Soc.,2008,130(6),1979-1984；Horváth等人，TetrahedronLetters,2007,48,3621-3623；Nauwelaerts等人，J.Am.Chem.Soc.,2007,129(30),9340-9348；Gu等人，Nucleosides,Nucleotides&NucleicAcids,2005,24(5-7),993-998；Nauwelaerts等人，NucleicAcidsResearch,2005,33(8),2452-2463；Robeyns等人，ActaCrystallographica,SectionF:StructuralBiologyandCrystallizationCommunications,2005,F61(6),585-586；Gu等人，Tetrahedron,2004,60(9),2111-2123；Gu等人，Oligonucleotides,2003,13(6),479-489；Wang等人，J.Org.Chem.,2003,68,4499-4505；Verbeure等人，NucleicAcidsResearch,2001,29(24),4941-4947；Wang等人，J.Org.Chem.,2001,66,8478-82；Wang等人，Nucleosides,Nucleotides&NucleicAcids,2001,20(4-7),785-788；Wang等人，J.Am.Chem.,2000,122,8595-8602；公开的PCT申请WO06/047842；和公开的PCT申请WO01/049687；将每一篇文本通过引用整体并入本文)。某些经修饰的环己烯基核苷具有下式：
其中：
Bx为杂环碱基部分；
T3和T4各自独立地为将环己烯基核苷类似物连接于反义化合物的核苷间连接基团或T3和T4中的一个为将四氢吡喃核苷类似物连接于反义化合物的核苷间连接基团，而另一个为H、羟基保护基团、连接的缀合物基团或5′-或3′-末端基团；且q1、q2、q3、q4、q5、q6、q7、q8和q9各自独立地为H、C1-C6烷基、取代的C1-C6烷基、C2-C6烯基、取代的C2-C6烯基、C2-C6炔基、取代的C2-C6炔基或其它糖取代基。
可用于修饰用于并入反义化合物的核苷的许多其它二环和三环糖替代物环系统在本领域也是已知的(参见例如综述论文：Leumann,ChristianJ.,Bioorg.&Med.Chem.,2002,10,841-854)。此类环系统可经历各种加成取代以增强活性。
用于制备经修饰的糖的方法对于本领域技术人员是公知的。教导此类经修饰的糖的制备的一些代表性U.S.专利包括但不限于U.S.：4,981,957；5,118,800；5,319,080；5,359,044；5,393,878；5,446,137；5,466,786；5,514,785；5,519,134；5,567,811；5,576,427；5,591,722；5,597,909；5,610,300；5,627,053；5,639,873；5,646,265；5,670,633；5,700,920；5,792,847和6,600,032，以及2005年6月2号提交的并且于2005年12月22日公开为WO2005/121371的国际申请PCT/US2005/019219，将其每一个通过引用整体并入本文。
在具有经修饰的糖部分的核苷酸中，维持核碱基部分(天然的、经修饰的或其组合)以与适当的核酸靶杂交。
在某些实施方案中，靶向DMPK核酸的反义化合物包含一种或多种具有经修饰的糖部分的核苷酸。在某些实施方案中，经修饰的糖部分为2′-MOE。在某些实施方案中，2′-MOE修饰的核苷酸排列在空隙聚物基序。
经修饰的核碱基
核碱基(或碱基)修饰或置换在结构上可与天然存在或合成的未经修饰的核碱基区别开来，然而在功能上可与其互换。天然和经修饰的核碱基能够参与氢键合。此类核碱基修饰可赋予反义化合物核酸酶稳定性、结合亲合力或一些其它有益生物性质。经修饰的核碱基包括合成的和天然核碱基（例如，5-甲基胞嘧啶(5-me-C)）。某些核碱基置换（包括5-甲基胞嘧啶置换）对于增强反义化合物对于靶核酸的结合亲合力是特别有用的。例如，已显示5-甲基胞嘧啶置换使核酸双链体的稳定性增加0.6-1.2℃(Sanghvi,Y.S.,Crooke,S.T.和Lebleu,B.,eds.,AntisenseResearchandApplications,CRCPress,BocaRaton,1993,pp.276-278)。
另外的未经修饰的核碱基包括5-羟基甲基胞嘧啶、黄嘌呤、次黄嘌呤、2-氨基腺嘌呤、6-甲基以及腺嘌呤和鸟嘌呤的其它烷基衍生物、腺嘌呤和鸟嘌呤的2-丙基和其它烷基衍生物、2-硫尿嘧啶、2-硫代胸腺嘧啶和2-巯基胞嘧啶、5-卤代尿嘧啶和胞嘧啶、5-丙炔基(-C≡C-CH3)尿嘧啶和胞嘧啶以及嘧啶碱基的其它炔基衍生物、6-氮杂尿嘧啶、胞嘧啶和胸腺嘧啶、5-尿嘧啶(假尿嘧啶)、4-硫尿嘧定、8-卤代、8-氨基、8-硫代、8-硫代烷基(thioalkyl)、8-羟基和其它8-取代的腺嘌呤和鸟嘌呤、5-卤代（特别地5-溴代）、5-三氟甲基和其它5-取代的尿嘧啶和胞嘧啶、7-甲基鸟嘌呤和7-甲基腺嘌呤、2-F-腺嘌呤、2-氨基-腺嘌呤、8-氮杂鸟嘌呤和8-氮杂腺嘌呤、7-脱氮鸟嘌呤和7-脱氮腺嘌呤和3-脱氮鸟嘌呤和3-脱氮腺嘌呤。
杂环碱基部分还可包括其中用其它杂环替代嘌呤或嘧啶碱基的那些碱基部分，例如7-脱氮-腺嘌呤、7-脱氮鸟嘌呤、2-氨基吡啶和2-吡啶酮。对于增强反义化合物的结合亲合力是特别有用的核碱基包括5-取代的嘧啶、6-氮杂嘧啶和N-2、N-6和O-6取代的嘌呤，包括2氨基丙基腺嘌呤、5-丙炔基尿嘧啶和5-丙炔基胞嘧啶。
在某些实施方案中，靶向DMPK核酸的反义化合物包含一个或多个经修饰的核碱基。在某些实施方案中，靶向DMPK核酸的增宽的空隙的反义寡核苷酸包含一个或多个经修饰的核碱基。在某些实施方案中，经修饰的核碱基为5-甲基胞嘧啶。在某些实施方案中，每一个胞嘧啶为5-甲基胞嘧啶。
用于配制药物组合物的组合物和方法
可将反义寡核苷酸与药学上可接受的活性或惰性物质混合以制备药物组合物或制剂。用于配制药物组合物的组合物和方法取决于许多标准，包括但不限于施用途径、疾病的程度或待施用的剂量。
靶向DMPK核酸的反义化合物可通过将该反义化合物与适当的药学上接受的稀释剂或载体组合来用于药物组合物。药学上可接受的稀释剂包括磷酸盐缓冲盐溶液(PBS)。PBS为适用于待胃肠外递送的组合物的稀释剂。因此，在一个实施方案中，本文中描述的方法使用的是包含靶向DMPK核酸的反义化合物和药学上可接受的稀释剂的药物组合物。在某些实施方案中，药学上可接受的稀释剂为PBS。在某些实施方案中，反义化合物为反义寡核苷酸。
包含反义化合物的药物组合物包含任何药学上可接受的盐、酯或此类酯的盐或任何其它寡核苷酸，在给动物（包括人）施用后，所述寡核苷酸能够提供(直接或间接地)生物活性代谢物或其残基。因此，例如，本公开内容也被吸引至反义化合物的药学上可接受的盐、前体药物、此类前体药物的药学上可接受的盐和其它生物等同物。适当的药学上可接受的盐包括但不限于钠盐和钾盐。
前体药物可包括在反义化合物的一个或两个末端上并另外的核苷，该核苷可被体内的内源核酸酶裂解以形成活性反义化合物。
缀合的反义化合物
可将反义化合物共价地连接于一个或多个部分或缀合物，所述部分或缀合物可增强所得的反义寡核苷酸的活性、细胞分布或细胞吸收。典型的缀合基团包括胆固醇部分和脂质部分。另外的缀合基团包括碳水化合物、磷脂、生物素、吩嗪、叶酸、菲啶、蒽醌、吖啶、荧光素、罗丹明、香豆素和染料。
还可修饰反义化合物以具有一个或多个通常联接于反义化合物的一个或两个末端以增强性质（例如核酶酶稳定性）的稳定化基团。稳定化基团中包括的是帽状结构。此类末端修饰保护具有末端核酸的反义化合物免受外切核酸酶降解，并且帮助细胞内的递送和/或定位。帽可存在于5′-末端(5′-帽)或3′-末端(3′-帽)或可存在于两个末端上。帽结构在本领域是公知的，并包括（例如）反向脱氧无碱基帽。可用于在反义化合物的一个或两个末端上加帽以赋予核酸酶稳定性的其它3′和5′-稳定化基团包括2003年1月16日公开的WO03/004602中公开的那些3′和5′-稳定化基团。
细胞培养和反义化合物处理
可在体外在多种细胞类型中测试反义化合物对DMPK核酸的水平、活性或表达的作用。用于此类分析的细胞类型可从商业提供商(例如美国典型培养物保藏中心,Manassus,VA；Zen-Bio,Inc.,ResearchTrianglePark,NC；CloneticsCorporation,Walkersville,MD)获得，并使用商购可得的试剂(例如InvitrogenLifeTechnologies,Carlsbad,CA)按照提供商的说明书培养细胞。举例说明性细胞类型包括但不限于HepG2细胞、Hep3B细胞、原代肝细胞、A549细胞、GM04281成纤维细胞和LLC-MK2细胞。
反义寡核苷酸的体外测试
本文中描述的是利用反义寡核苷酸处理细胞的方法，所述方法可经适当地改进以利用其它反义化合物进行处理。
一般地，当细胞在培养中达到约60-80%的汇合时，利用反义寡核苷酸处理细胞。
通常用于将反义寡核苷酸引入培养细胞的一种试剂包括阳离子脂质转染试剂LIPOFECTIN(Invitrogen,Carlsbad,CA)。将反义寡核苷酸与OPTI-MEM1中的LIPOFECTIN(Invitrogen,Carlsbad,CA)混合以获得期望的反义寡核苷酸的终浓度和通常在2至12ug/mL/100nM反义寡核苷酸的范围内的LIPOFECTIN浓度。
用于将反义寡核苷酸引入培养的细胞的另一种试剂包括LIPOFECTAMINE2000(Invitrogen,Carlsbad,CA)。将反义寡核苷酸与OPTI-MEM1减血清培养基中的LIPOFECTAMINE2000(Invitrogen,Carlsbad,CA)混合以获得期望的反义寡核苷酸浓度和通常在2至12ug/mL/100nM反义寡核苷酸的范围内的LIPOFECTAMINE浓度。
用于将反义寡核苷酸引入培养的细胞的另一种试剂可包括Cytofectin(Invitrogen,Carlsbad,CA)。将反义寡核苷酸与OPTI-MEM1减血清培养基中的Cytofectin(Invitrogen,Carlsbad,CA)混合以获得期望的反义寡核苷酸浓度和通常在2至12ug/mL/100nM反义寡核苷酸的范围内的Cytofectin浓度。
用于将反义寡核苷酸引入培养的细胞的另一种技术包括电穿孔。
通过常规方法利用反义寡核苷酸处理细胞。通常在反义寡核苷酸处理后16-24小时收获细胞，在该时间上通过本领域已知的方法和本文中公开的方法测量靶核酸的RNA或蛋白质水平。一般地，当多次重复进行处理时，数据表示为重复处理的平均值。
所使用的反义寡核苷酸的浓度在细胞系间可变化。测定用于特定细胞系的最佳反义寡核苷酸浓度的方法在本领域是公知的。当利用LIPOFECTAMINE2000、Lipofectin或Cytofectin转染时，通常以1nM至300nM的浓度使用反义寡核苷酸。当使用电穿孔转染时，通常以更高的625至20,000nM的浓度使用反义寡核苷酸。
RNA分离
可对总细胞RNA或poly(A)+mRNA进行RNA分析。RNA分离的方法在本领域是公知的。使用本领域公知的方法，例如按照制造商推荐的方案使用TRIZOL试剂(Invitrogen,Carlsbad,CA)制备RNA。
靶水平或表达的抑制的分析
可以以本领域已知的多种方法测定DMPK核酸的水平或表达的抑制。例如，可以通过例如Northern印迹分析、竞争性聚合酶链式反应(PCR)或定量实时PCR定量靶核酸水平。可对总细胞RNA或poly(A)+mRNA进行RNA分析。RNA分离的方法在本领域是公知的。Northern印迹分析在本领域也是常规的。可按照制造商的说明书使用商购可得的ABIPRISM7600、7700或7900序列检测系统(可获自PE-AppliedBiosystems,FosterCity,CA)方便地进行定量实时PCR。
靶RNA水平的定量实时PCR分析
可按照制造商的说明书，使用ABIPRISM7600、7700或7900序列检测系统(PE-AppliedBiosystems,FosterCity,CA)通过定量实时PCR实现靶RNA水平的定量。定量实时PCR的方法在本领域是公知的。
在实时PCR之前，将分离的RNA经历逆转录酶(RT)反应，该反应产生随后用作实时PCR扩大的底物的互补DNA(cDNA)。在相同的样品孔中连续进行RT和实时PCR反应。RT和实时PCR试剂获自Invitrogen(Carlsbad,CA)。利用本领域技术人员公知的方法进行RT、实时-PCR反应。
使用其表达是恒定的基因（例如亲环素A）的表达水平来标准化或使用RIBOGREEN(Invitrogen,Inc.Carlsbad,CA)通过定量总RNA来标准化通过实时PCR获得的基因(或RNA)靶的量。亲环素A的表达可利用实时PCR(通过与靶同时地、多通路地或分开地运行)来定量。使用RIBOGREENRNA定量试剂(Invitrogen,Inc.Eugene,OR)定量总RNA。在Jones,L.J.,等人,(AnalyticalBiochemistry,1998,265,368-374)中教导了利用RIBOGREEN进行RNA定量的方法。CYTOFLUOR4000仪(PEAppliedBiosystems)用于测量RIBOGREEN荧光。
设计与DMPK核酸杂交的探针和引物。用于设计实时PCR探针和引物的方法在本领域是公知的，并且可包括软件（例如PRIMEREXPRESS软件(AppliedBiosystems,FosterCity,CA)）的使用。
蛋白质水平的分析
DMPK核酸的反义抑制可通过测量DMPK蛋白水平来评估。可以本领域公知的多种方式（例如免疫沉淀、Western印迹分析(免疫印迹)、酶联免疫吸附测定(ELISA)、定量蛋白质测定、蛋白质活性测定(例如，半胱天冬酶活性测定)、免疫组织化学、免疫细胞化学或荧光激活细胞分选术(FACS)）来评估或定量DMPK的蛋白质水平。鉴定针对靶的抗体以及从多种来源（例如抗体的MSRS目录(AerieCorporation,Birmingham,MI)）获得所述抗体，或可通过本领域公知的常规单克隆或多克隆抗体产生方法制备所述抗体。
反义化合物的体内测试
测试动物中的反义化合物（例如反义寡核苷酸）以评估它们抑制DMPK的表达和产生表型改变的能力。可在正常动物中，或在实验性疾病模型（例如肌强直性营养不良(DM1)HSALR小鼠模型中）进行测试。
HSALR小鼠模型为已建立的DM1的模型(Mankodi,A.等人Science.289：1769,2000)。小鼠具有插入在基因的3′UTR中的220CTG重复的人骨骼肌动蛋白(hACTAl)转基因。hACTAl-CUGexp转录物在骨骼肌的细胞核聚集点中积累并且导致与人DM1的肌强直相似的肌强直(Mankodi,A.等人Mol.Cell10：35,2002；Lin,X.等人，Hum.Mol.Genet.15：2087,2006)。因此，预期通过hACTAl转基因的反义抑制产生的HSALR小鼠的DM1症状的改善可预测通过DMPK转录物的反义抑制产生的人患者的相似症状的改善。
小鼠中CUGexpRNA的表达引起肌肉转录组的广泛重塑，所述重塑的大部分通过消除MBNL1得到重现。因此，预期HSALR小鼠的转录组的标准化可预测通过DMPK转录物的反义抑制产生的DM1患者的人转录组的标准化。
为了给动物施用，将反义寡核苷酸配制于药学上可接受的稀释剂（例如磷酸盐缓冲盐溶液）中。施用包括胃肠外施用途径。在利用反义寡核苷酸治疗一段时间后，从组织分离RNA，并测量DMPK核酸表达的改变。还测量DMPK蛋白水平的改变。
剪接
肌强直性营养不良(DM1)是由DMPK基因的3′非翻译区中的CTG重复扩大引起(Brook,J.D.等人，Cell.68：799,1992)。该突变导致RNA显性，其中包含扩大的CUT重复的RNA的表达(CUGexp)诱导细胞功能障碍的过程(OsborneRJ和ThorntonCA.,HumanMolecularGenetics.,2006,75(2)：R162-R169)。此类CUGexp保留在骨骼肌的细胞核聚集点中(Davis,B.M.等人Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.94:7388,1997)。CUGexp在细胞核聚集点中的积累导致poly(CUG)-结合蛋白（例如盲肌-样1(MBLN1)）的隔离(Miller,J.W.等人，EMBOJ.19：4439,2000)。MBLN1为剪接因子并且调节基因（例如Serca1、CIC-1、Titin和Zasp）的剪接。因此，CUGexp对MBLN1的隔离触发MBLN1通常控制的基因的外显子的错调(misregulate)选择性剪接(Lin,X.等人，Hum.Mol.Genet.15：2087,2006)。显示此类失调的动物（例如DM1患者和HSALR小鼠模型）中的选择性剪接的校正是治疗(包括利用反义寡核苷酸的治疗)的功效的有用指标。
某些生物标志物
小鼠模型中的DM1严重性至少部分通过CUGexp转录物在细胞核或细胞核聚集点中的积累水平来测定。DM1严重度的有用生理标志物为无意识动作电位(肌强直)的高频率运行的发展。
某些适应征
在某些实施方案中，本文中提供了治疗个体的方法，包括施用一种或多种本文中描述的药物组合物。在某些实施方案中，个体患有1型肌强直性营养不良(DM1)。
因此，本文中提供了用于改善有此需要的受试者的与1型肌强直性营养不良相关的症状的方法。在某些实施方案中，提供了用于降低与1型肌强直性营养不良相关的症状的发作率的方法。在某些实施方案中，提供了用于减小与1型肌强直性营养不良相关的症状的严重度的方法。在某些实施方案中，与DM1相关的症状包括肌肉僵硬、肌强直、远端肢体无力、面部肌肉和颚肌无力、吞咽困难、举抬无力(上睑下垂)、颈肌无力、手臂和腿部肌肉无力、持久性肌肉疼痛、嗜睡症、肌萎缩、咽下困难、呼吸功能不全、心律不齐、心肌损伤、情感淡漠、胰岛素抗药性和白内障。在儿童中，症状还可以是发育迟滞、学习问题、语言和言语问题以及人格发展问题。
在某些实施方案中，该方法包括给有此需要的个体施用治疗有效量的靶向DMPK核酸的化合物。
在某些实施方案中，靶向DMPK核酸的反义化合物的施用导致DMPK表达减少至少约15%、至少约20%、至少约25%、至少约30%、至少约35%、至少约40%、至少约45%、至少约50%、至少约55%、至少约60%、至少约65%、至少约70%、至少约75%、至少约80%、至少约85%、至少约90%、至少约95%或至少约99%或由这些值的任意两个确定的范围。
在某些实施方案中，包含靶向DMPK的反义化合物的药物组合物用于制备用于治疗患有或易患1型肌强直性营养不良的患者的药剂。
在某些实施方案中，本文中描述的方法包括施用包含经修饰的寡核苷酸的化合物，所述经修饰的寡核苷酸具有SEQIDNO：12-156、160-770和774-792中引用的序列的本文中描述的连续核碱基部分。
施用
在某些实施方案中，胃肠外施用本文中描述的化合物和组合物。
在某些实施方案中，通过输注进行胃肠外施用。输注可以是长期的或连续的或短暂的或间断性的。在某些实施方案中，输注的药物组合物利用泵来递送。在某些实施方案中，通过注射(例如，单次快速静脉注射)进行胃肠外施用。可利用注射器递送注射物。
胃肠外施用包括皮下施用、静脉内施用、肌内施用、动脉内施用、腹膜内施用或颅内施用（例如，鞘内或脑室内施用）。施用可以是连续的或长期的或短暂的或间断性的。
在某些实施方案中，该施用是皮肤、静脉内、大脑内、脑室内、鞘内或导致寡核苷酸的全身性作用(全身性施用的特征在于全身性作用，即在超过一种组织中的作用)或至CNS或至CSF的递送的另一种施用。
通过在DM1的HSALR小鼠模型中抑制α1肌动蛋白和减少肌强直测量的作用持续时间在肌肉组织包括四头肌、腓肠肌和胫骨前肌(参见下文中的实施例)中被延长。持续4周的反义寡核苷酸的皮下注射导致在终止给药后，HSALR小鼠的四头肌、腓肠肌和胫骨前肌中的α1肌动蛋白被抑制至少70%，持续至少11周(77天)。持续4周的反义寡核苷酸的皮下注射导致在终止给药后，HSALR小鼠的四头肌、腓肠肌和胫骨前肌的肌强直被消除至少11周(77周)。
在某些实施方案中，本文中描述的组合物或化合物的递送导致靶mRNA和/或靶蛋白质的至少70%的下调，持续至少77天。在某些实施方案中，本文中描述的组合物或化合物的递送导致靶mRNA和/或靶蛋白质的50%、55%、60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、95%或100%的下调，持续至少30天、至少35天、至少40天、至少45天、至少50天、至少55天、至少60天、至少65天、至少70天、至少75天、至少76天、至少77天、至少78天、至少79天、至少80天、至少85天、至少90天、至少95天、至少100天、至少105天、至少110天、至少115天、至少120天、至少1年。
在某些实施方案中，每77天一次通过注射或输注递送反义寡核苷酸。在某些实施方案中，每1个月、每2个月、每3个月、每6个月一次，每年两次或每年一次通过注射或输注递送反义寡核苷酸。
某些组合疗法
在某些实施方案中，将包含本发明的经修饰的寡核苷酸的第一试剂与一种或多种第二试剂共施用。在某些实施方案中，此类第二试剂被设计来治疗与本文中描述的第一试剂相同的1型肌强直性营养不良。在某些实施方案中，此类第二试剂被设计来治疗与本文中描述的第一试剂不同的疾病、病症或病状。在某些实施方案中，此类第二试剂被设计来治疗本文中描述的一种或多种药物组合物的不期望的副作用。在某些实施方案中，将第二试剂与第一试剂共施用以治疗第一试剂的不期望的作用。在某些实施方案中，将第二试剂与第一试剂共施用以产生组合作用。在某些实施方案中，将第二试剂与第一试剂共施用以产生协同作用。
在某些实施方案中，同时施用第一试剂与一种或多种第二试剂。在某些实施方案中，在不同的时间施用第一试剂与一种或多种第二试剂。在某些实施方案中，将第一试剂与一种或多种第二试剂一起配制于单一药物制剂中。在某些实施方案中，单独配制第一试剂与一种或多种第二试剂。
实施例
非限定性公开内容和通过引用并入
虽然已根据某些实施方案具体地描述了本文中描述的某些化合物、组合物和方法，但下列实施例仅用于举例说明本文中的化合物并且无意限定于所述实施例。本申请中引用的每一份参考资料通过引用整体并入本文。
实施例1：人骨骼肌细胞(hSKMC)的人肌强直性营养障碍蛋白激酶(DMPK)的反义抑制
在体外测试靶向人DMPK核酸的反义寡核苷酸对DMPKRNA转录物的作用。使用电穿孔，利用100nM反义寡核苷酸转染密度为20,000个细胞/孔的培养的hSKM细胞。约24小时后，从细胞分离RNA，并利用人引物探针组RTS3164(正向序列AGCCTGAGCCGGGAGATG，在本文中指定为SEQIDNO：9；反向序列GCGTAGTTGACTGGCGAAGTT，在本文中指定为SEQIDNO：10；探针序列AGGCCATCCGCACGGACAACCX，在本文中指定为SEQIDNO：11)通过定量实时PCR测量DMPKRNA转录物水平。按照总RNA含量调节DMPKRNA转录物水平，如利用所测量的。结果表示为相对于未处理的对照细胞的hDMPK的百分比抑制。
表1和2中的反义寡核苷酸为5-10-5空隙聚物，其中空隙区段包含10个2′-脱氧核苷并且每一个翼区段包含5个2′-MOE核苷。每一个空隙聚物全长上的核苷间连接为硫代磷酸酯(P=S)连接。每一个空隙聚物全长上的所有胞嘧啶残基为5-甲基胞嘧啶。“靶起始位点”表示反义寡核苷酸所靶向的5′最末端核苷。“靶终止位点”表示反义寡核苷酸所靶向的3’最末端核苷。表1中所列的所有反义寡核苷酸靶向SEQIDNO：1(GenBank登录号NM_001081560.1)。表2中所列的所有反义寡核苷酸靶向SEQIDNO：2(从核苷酸18540696至18555106截断的GenBank登录号NT011109.15的互补序列)。
几种反义寡核苷酸显示在上文中指定的条件下人DMPKmRNA水平被显著抑制。
表1:靶向SEQIDNO：1的5-10-5空隙聚物对hSKMC中的人DMPKRNA转录物的抑制
表2：靶向SEQIDNO：2的5-10-5空隙聚物对hSKMC中的人DMPKRNA转录物的抑制
也在测定中利用上述相似的条件测试来自表1和2的反义寡核苷酸，并利用人引物探针RTS3162(正向序列CGGGCCGTCCGTGTT，在本文中指定为SEQIDNO：157；反向序列CTTTGCACTTTGCGAACCAA，在本文中指定为SEQIDNO：158；探针序列CATCCTCCACGCACCCCCACCX，在本文中指定为SEQIDNO：159)测量mRNA水平。结果示于表3中。也利用靶向3′UTR附近的DMPK基因的RTS3162评估DMPKmRNA表达。将第二引物探针用于确认完整DMPK基因的表达已被抑制。
表3:使用引物探针组RTS3162测量的5-10-5空隙聚物对hSKMC中人DMPKRNA转录物的抑制
实施例2：靶向CUG重复的反义寡核苷酸的设计
设计靶向包含多个CUG重复的mRNA转录物的反义寡核苷酸。此类寡核苷酸的化学组成以及其序列示于表4中。指示糖类型的符号标示于碱基之后并且如下：b=2′-O-N-[2-(二甲基氨基)乙基]乙酰氨基核糖；d=2′-脱氧核糖；e=2′-O-甲氧基乙基核糖；f=2′-α-氟代-2′-脱氧核糖；g=2′-O-2[2-(2-甲氧基乙氧基)乙氧基]乙基核糖；h=3′-氟代-HNA；k=(S)-cEt；1=LNA(锁核酸)；n=2′-O-(N-甲基乙酰胺)核糖；o=2′-O-二甲基氨基氧乙基(DMAOE)核糖；p=PNA；r=丙基核糖；和x=氨基酸核心。杂环名称利用腺嘌呤、胞嘧啶、胸腺嘧啶和鸟嘌呤的标准符号来定义，“mC”为5-甲基胞嘧啶，且“K”为赖氨酸侧链。连接体标示于糖类型之后并且利用下列符号来表示：g=完全PNA-甘氨酸；a=氨基酸；和s=硫代酯(thioateester)。
表4:靶向CUG重复的反义寡核苷酸的设计
实施例3：人骨骼肌细胞中人DMPK的剂量依赖性反义抑制
以不同剂量测试几种在hSKMC中显示DMPK的体外抑制的反义寡核苷酸(参见实施例1)。以20,000个细胞/孔的密度涂铺细胞，使用电穿孔，利用浓度为1,250nM、2,500nM、5,000nM、10,000nM和20,000nM的每一种反义寡核苷酸转染细胞。在约16小时后，从细胞分离RNA，并如上文中所述，使用引物探针组RTS3164，通过定量实时PCR测量DMPKmRNA转录物水平。将DMPKmRNA转录物水平针对总RNA含量(如利用测量的)进行标准化。结果在表5中表示为相对于未处理的对照细胞的DMPK的抑制%。
测试的反义寡核苷酸显示在上文中指定的条件下DMPKmRNA水平的剂量依赖性抑制。
表5：利用引物探针组RTS3164测试的hSKMC中的人DMPK的剂量依赖性反义抑制
如上文中所述，也利用引物探针组RTS3162测试来自表5的反义寡核苷酸。结果示于表6中。也利用靶向3′UTR附近的DMPK基因的RTS3162来评估DMPKmRNA的表达。将第二引物探针用于确认整个DMPK基因的表达已被抑制。
表6:利用引物探针组RTS3164测试的hSKMC中的人DMPK的剂量依赖性反义抑制
实施例4：人骨骼肌细胞中人DMPK的剂量依赖性反义抑制
以不同剂量测试几种在hSKMC中显示DMPK的体外抑制的反义寡核苷酸(参见实施例3)。以20,000个细胞/孔的密度涂铺细胞，使用电穿孔，利用浓度为1,250nM、2,500nM、5,000nM、10,000nM和20,000nM的每一种反义寡核苷酸转染细胞。在约16小时后，从细胞分离RNA，并如上文中所述，使用引物探针组RTS3164，通过定量实时PCR测量DMPKmRNA转录物水平。将DMPKmRNA转录物水平针对总RNA含量进行标准化，如利用测量的。结果在表7中表示为相对于未处理的对照细胞的DMPK的抑制%。
大部分测试的反义寡核苷酸显示在上文中指定的条件下DMPKmRNA水平的剂量依赖性抑制。
表7：利用引物探针组RTS3164测试的hSKMC中的人DMPK的剂量依赖性反义抑制
实施例5：人骨骼肌细胞中人DMPK的剂量依赖性反义抑制
几种反义寡核苷酸被设计来靶向人DMPKmRNA，并且以不同的剂量在hSKMC中进行测试。几种其它反义寡核苷酸被设计来靶向人肌动蛋白mRNA并且也以不同剂量在hSKMC中进行测试。新设计的空隙聚物为2-10-2MOE或3-10-3MOE空隙聚物。2-10-2MOE空隙聚物在长度上为14个核苷并且其中空隙区段包含10个2′-脱氧核苷并且每一个翼区段包含2个2′-MOE核苷。3-10-3MOE空隙聚物在长度上为16个核苷并且其中空隙区段包含10个2′-脱氧核苷，每一个翼区段包含3个2′-MOE核苷。每一个空隙聚物全长上的核苷间连接为硫代磷酸酯(P=S)连接。每一个空隙聚物全长上的所有胞嘧啶为5-甲基胞嘧啶。“靶起始位点”表示反义寡核苷酸所靶向的5′最末端核苷。“靶终止位点”表示反义寡核苷酸所靶向的3’最末端核苷。表8中所列的反义寡核苷酸靶向人DMPK基因组序列（在本文中指定为SEQIDNO：2(GenBank登录号NT_011109.15的从核苷酸18540696至18555106截断的互补序列)）或人肌动蛋白序列，在本文中指定为SEQIDNO：801(GenBank登录号NM_001100.3)。
以20,000个细胞/孔的密度涂铺细胞，使用电穿孔，利用浓度为1,250nM、2,500nM、5,000nM、10,000nM和20,000nM的每一种反义寡核苷酸转染细胞。在约16小时后，从细胞分离RNA，如上文中所述，并使用引物探针组RTS3162，通过定量实时PCR测量DMPKmRNA转录物水平。将DMPKmRNA转录物水平针对总RNA含量(如利用测量的)进行标准化。结果在表8中表示为相对于未处理的对照细胞的DMPK的抑制%。还在相似条件下利用RTS6164测试了反义寡核苷酸。结果示于表9中。
许多测试的反义寡核苷酸显示在上文指定的条件下DMPKmRNA水平的剂量依赖性抑制。
表8:利用引物探针组RTS3162测试的hSKMC中的人DMPK和人肌动蛋白的剂量依赖性反义抑制
表9：利用引物探针组RTS3164测试的hSKMC中的人DMPK的剂量依赖性反义抑制
实施例6：在DM1成纤维细胞中的利用靶向人肌强直性营养障碍蛋白激酶(DMPK)的反义寡核苷酸进行的剂量反应研究
具有大CUG重复的DMPKmRNA的突变形式被完全转录和多腺苷酸化，但仍被捕获在细胞核中(Davis等人，1997,Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.94,7388-7393)。此类突变的保留在细胞核中的mRNA为肌强直性营养不良1(DM1)的最重要的病理学特征中的一个。研究DM1成纤维细胞中突变的DMPKmRNA的反义抑制。
DMPK基因通常在3′非翻译区中具有5-37个CTG重复。在肌强直性营养不良I型中，该数被显著扩大并且可在50至大于3,500个的范围内(Harper,MyotonicDystrophy(Saunders,London,ed.3,2001)；Annu.Rev.Neurosci.29：259,2006；EMBOJ.19：4439,2000；CurrOpinNeurol.20：572,2007)。以4,500个细胞/孔的密度涂铺DM1成纤维细胞，使用Cytofectin试剂，利用浓度为9.4nM、18.8nM、37.5nM、75.0nM、150.0nM和300.0nM的每一种反义寡核苷酸转染细胞。在约16小时后，从细胞分离RNA，如上文中所述，并使用引物探针组RTS3164通过定量实时PCR测量DMPKRNA转录物水平。将DMPKRNA转录物水平针对总RNA含量(如利用测量的)进行标准化。结果在表10中表示为相对于未处理的对照细胞的DMPK的百分比抑制。
如上文中所述，利用靶向DMPK转录物的3′末端的引物探针组RTS3162，利用相似条件进行测定。结果在表11中表示为相对于未处理的对照细胞的DMPK的百分比抑制。
测试的反义寡核苷酸显示在上文中指定的条件下DMPKmRNA水平的剂量依赖性抑制。
表10：利用RTS3164在DM1成纤维细胞中进行的DMPKmRNA的剂量依赖性反义抑制
表11：利用RTS3162在DM1成纤维细胞中进行的DMPKmRNA的剂量依赖性反义抑制
实施例7：人骨骼肌细胞(hSKMc)中人DMPK的反义抑制
在体外测试靶向人DMPK核酸的反义寡核苷酸对DMPKRNA转录物的作用。使用电穿孔，利用10,000nM反义寡核苷酸转染密度为20,000个细胞/孔的培养的hSKMc细胞。在约24小时后，从细胞分离RNA，并利用定量实时PCR测量DMPK转录物水平。根据总RNA含量调整DMPKRNA转录物水平，如利用所测量的。结果表示为相对于未处理的对照细胞的DMPK的百分比抑制。
表12和13中的反义寡核苷酸为5-10-5空隙聚物，其中空隙区段包含10个2’-脱氧核苷并且每一个翼区段包含5个2′-MOE核苷。每一个空隙聚物全长上的核苷间连接为硫代磷酸酯(P=S)连接。每一个空隙聚物全长上的所有胞嘧啶残基为5-甲基胞嘧啶。“靶起始位点”表示反义寡核苷酸在人基因组基因序列中所靶向的5′最末端核苷。“靶终止位点”表示反义寡核苷酸在人基因组序列中所靶向的3′最末端核苷。表12中所列的所有反义寡核苷酸靶向SEQIDNO：1(GenBank登录号.NM_001081560.1)。表13中所列的所有反义寡核苷酸靶向SEQIDNO：2(GenBank登录号NT_011109.15的从核苷酸18540696至18555106截断的互补序列)。
几种反义寡核苷酸显示在上文指定的条件下DMPKmRNA水平的显著抑制。
表12：靶向SEQIDNO：1的5-10-5空隙聚物对hSKMc中的人DMPKRNA转录物的抑制
表13：靶向SEQIDNO：2的5-10-5空隙聚物对hSKMc中的人DMPKRNA转录物的抑制
实施例8：小鼠原代肝细胞中鼠DMPK的反义抑制
在体外测试靶向鼠DMPK核酸的反义寡核苷酸对DMPKRNA转录物的作用。使用电穿孔，利用8,000nM反义寡核苷酸转染密度为35,000个细胞/孔的培养的小鼠原代肝细胞。约24小时后，从细胞分离RNA，并利用定量实时PCR测量DMPK转录物水平。根据总RNA含量调整DMPKRNA转录物水平，如利用所测量的。结果表示为相对于未处理的对照细胞的DMPK的百分比抑制。
表14、15和16中的反义寡核苷酸为5-10-5空隙聚物，其中空隙区段包含10个2’-脱氧核苷并且每一个翼区段包含5个2′-MOE核苷。每一个空隙聚物全长上的核苷间连接为硫代磷酸酯(P=S)连接。每一个空隙聚物全长上的所有胞嘧啶残基为5-甲基胞嘧啶。“靶起始位点”表示反义寡核苷酸在鼠基因组基因序列中所靶向的5′最末端核苷。“靶终止位点”表示反义寡核苷酸在鼠基因组序列中所靶向3′最末端核苷。表12中所列的所有反义寡核苷酸靶向SEQIDNO：3(GenBank登录号NT039413.7从核苷酸16666001至16681000截断的)。表13中所列的所有反义寡核苷酸靶向SEQIDNO：4(GenBank登录号NM_032418.1)。表14的反义寡核苷酸靶向SEQIDNO：5(GenBank登录号AI007148.1)、SEQIDNO：6(GenBank登录号AI304033.1)、SEQIDNO：7(GenBank登录号BC024150.1)、SEQIDNO：8(GenBank登录号BC056615.1)、SEQIDNO：793(GenBank登录号BC075715.1)、SEQIDNO：794(GenBank登录号BU519245.1)、SEQIDNO：795(GenBank登录号CB247909.1)、SEQIDNO：796(GenBank登录号CX208906.1)、SEQIDNO：797(GenBank登录号CX732022.1)、SEQIDNO：798(GenBank登录号S60315.1)或SEQIDNO：799(GenBank登录号S60316.1)。此外，靶向SEQIDNO：800(GenBank登录号NM_001081562.1)的人反义寡核苷酸ISIS451421也包括在该测定中并且列于表14中。
表14、15和16的鼠寡核苷酸还可与人基因序列交叉反应。“错配”表示鼠寡核苷酸籍以与人基因序列错配的核碱基的数目。鼠寡核苷酸与人序列之间的互补性越大，鼠寡核苷酸越可能与人序列交叉反应。将表14、15和16中的鼠寡核苷酸与SEQIDNO：800(GenBank登录号NM_001081562.1)相比较。“人靶起始位点”表示空隙聚物在人基因组基因序列中所靶向的5′最末端核苷。“人靶终止位点”表示空隙聚物在人基因组序列中所靶向的3′最末端核苷。
几种测试的反义寡核苷酸显示在上文指定的条件下DMPKmRNA水平的显著抑制。某些测试的反义寡核苷酸与人基因序列交叉反应。
表14:靶向SEQIDNO：800的5-10-5空隙聚物对小鼠原代肝细胞中鼠DMPKRNA转录物的抑制
表15：靶向SEQIDNO：800的5-10-5空隙聚物对小鼠原代肝细胞中鼠DMPKRNA转录物的抑制
表16：靶向SEQIDNO：5-8和793-799的5-10-5空隙聚物对小鼠原代肝细胞中鼠DMPKRNA转录物的抑制
实施例9：小鼠原代肝细胞中鼠DMPK的剂量依赖性反义抑制
以不同剂量测试在小鼠原代肝细胞中显示DMPK的体外抑制的几种反义寡核苷酸(参见实施例8)。以35,000个细胞/孔的密度涂铺细胞，并利用浓度为1,000nM、2,000nM、4,000nM、8,000nM和16,000nM的每一种反义寡核苷酸，使用电穿孔转染细胞。约16小时后，从细胞分离RNA，并使用引物探针组RTS3181(正向序列GACATATGCCAAGATTGTGCACTAC,在本文中指定为SEQIDNO：771；反向序列CACGAATGAGGTCCTGAGCTT,在本文中指定为SEQIDNO：772；探针序列AACACTTGTCGCTGCCGCTGGCX,在本文中指定为SEQIDNO：773)通过定量实时PCR测量DMPK转录物水平。按照总RNA含量调节DMPK转录物水平，如利用所测量的。结果在表17中表示为相对于未处理的对照细胞的DMPK的百分比抑制。
大部分测试的反义寡核苷酸显示在上文中指定的条件下DMPKmRNA水平的剂量依赖性抑制。
表17:小鼠原代肝细胞中鼠DMPK的剂量依赖性反义抑制。
实施例10：HepG2细胞中人α1骨骼肌动蛋白的反义抑制
在体外测试靶向人α1骨骼肌动蛋白核酸(当插入小鼠模型时能够引起DM1的症状的可具有扩大的CTG重复的基因)的反义寡核苷酸对α1肌动蛋白RNA转录物的作用。使用电穿孔，利用10,000nM反义寡核苷酸转染密度为20,000个细胞/孔的培养的HepG2细胞。在约24小时后，从细胞分离RNA，通过定量实时PCR测量α1肌动蛋白RNA转录物水平。根据总RNA含量调整αl肌动蛋白RNA转录物水平，如利用测量的。结果表示为相对于未处理的对照细胞的α1肌动蛋白的百分比抑制。
表18中的反义寡核苷酸为5-10-5空隙聚物，其中空隙区段包含10个2’-脱氧核苷并且每一个翼区段包含5个2′-MOE核苷。每一个空隙聚物全长上的核苷间连接为硫代磷酸酯(P=S)连接。每一个空隙聚物全长上的所有胞嘧啶残基为5-甲基胞嘧啶。“靶起始位点”表示反义寡核苷酸所靶向的5′最末端核苷。“靶终止位点”表示反义寡核苷酸所靶向的3’最末端核苷。表18中所列的所有反义寡核苷酸靶向SEQIDNO：801(GenBank登录号NM_001100.3)。
测试的反义寡核苷酸序列显示在上文指定的条件下α1肌动蛋白mRNA水平的剂量依赖性抑制。
表18：靶向SEQIDNO：801的5-10-5空隙聚物对HepG2细胞中人α1肌动蛋白mRNA转录物的抑制
施例11：HepG2细胞中人α1肌动蛋白的剂量依赖性反义抑制
以不同剂量测试几种在HepG2细胞中显示α1肌动蛋白的体外抑制的反义寡核苷酸(参见实施例8)。以20,000个细胞/孔的密度涂铺细胞，使用电穿孔，利用浓度为625nM、1,250nM、2,500nM、5,000nM、10,000nM和20,000nM的每一种反义寡核苷酸转染细胞。在约16小时后，从细胞分离RNA，并使用引物探针组RTS3154(正向序列CCACCGCAAATGCTTCTAGAC，在本文中指定为SEQIDNO：785；反向序列CCCCCCCATTGAGAAGATTC,在本文中指定为SEQIDNO：786；探针序列CTCCACCTCCAGCACGCGACTTCTX,在本文中指定为SEQIDNO：787)通过定量实时PCR测量α1肌动蛋白RNA转录物水平。将α1肌动蛋白RNA转录物水平针对总RNA含量进行标准化，如利用测量的。结果在表19中表示为相对于未处理的对照细胞的α1肌动蛋白的百分比抑制。
几种反义寡核苷酸显示在上文中指定的条件下α1肌动蛋白mRNA水平的剂量依赖性抑制。
表19：HepG2细胞中人α1肌动蛋白的剂量依赖性反义抑制
实施例12：在转基因小鼠中肌内施用的人α1肌动蛋白的体内反义抑制
为了测试反义抑制对于肌强直性营养不良的治疗的作用，需要适当的小鼠模型。HSALR小鼠模型是已建立的DM1的模型(Mankodi,A.等人Science.289：1769,2000)。小鼠具有在基因的3′UTR中具有220个CTG重复的人骨骼肌动蛋白(hACTAl)转基因。hACTAl-CUGexp转录物在骨骼肌的细胞核聚集点中积累，并且导致与人DM1中的肌强直相似的肌强直(Mankodi,A.等人Mol.Cell10：35,2002；Lin,X.等人Hum.Mol.Genet.15：2087,2006)。因此，预期通过hACTAl转基因的反义抑制产生的HSALR小鼠的DM1症状的改善可预测通过DMPK转录物的反义抑制产生的人患者的相似症状的改善。
通过将在人骨骼肌动蛋白的3′UTR中具有250个CUG重复的转基因插入FVB/N小鼠产生HSA(人骨骼肌动蛋白)LR(长重复)DM1小鼠。转基因在小鼠中表达为CUG重复RNA，所述RNA保留在细胞核中，形成核内包函体(nuclearinclusion)或聚集点，与在患有肌强直性营养不良(DM1)的患者的人组织样品中看到的相似。
评估在体外显示统计上显著的剂量依赖性抑制(参见实施例11)的ISIS190403和ISIS445238在体内减少人α1肌动蛋白RNA转录物的能力。
处理
将HSALR小鼠维持在12-小时光/暗周期并且随意喂食正常普瑞纳小鼠食物(Purinamousechow)。在开始实验之前，使动物在研究设施中适应至少7天。在PBS中制备反义寡核苷酸(ASO)，并通过将其通过0.2微米过虑器过滤来进行灭菌。将寡核苷酸溶解于0.9%PBS中以用于注射。
将小鼠分成两个处理组。两个组接受剂量为0.8nM的ISIS190403或ISIS445238至一侧上的胫骨前肌内的直接肌内注射。每一只小鼠的对侧胫骨前肌接受单次剂量的PBS的肌内注射。将PBS注射的肌肉用作对照。
α1肌动蛋白RNA的抑制
在最后一次给药后24小时，处死动物，并从两侧的胫骨前肌分离样品。分离RNA以用于α1肌动蛋白的实时PCR分析，并将其针对18sRNA进行标准化。如表20中所示，利用反义寡核苷酸的处理减少人α1肌动蛋白RNA转录物表达。结果表示为相对于PBS对照的α1肌动蛋白转录物的百分比抑制。
结果显示利用ISIS190403和ISIS445238的处理导致小鼠中α1肌动蛋白RNA水平的抑制。
表20：HSALR小鼠中人肌动蛋白RNA转录物的百分比抑制
ISIS编号 抑制%
190403 38
445238 40
实施例13：在转基因小鼠中肌内施用的人α1肌动蛋白的剂量依赖性反义抑制
在体内评估在体外显示统计上显著的剂量依赖性抑制(参见实施例11)的ISIS445236减少人α1肌动蛋白RNA转录物的能力。
处理
将HSALR小鼠维持在12-小时光/暗周期并且随意喂食正常普瑞纳小鼠食物(Purinamousechow)。在开始实验之前，使动物在研究设施中适应至少7天。在PBS中制备反义寡核苷酸(ASO)，并通过将其通过0.2微米过虑器过滤来进行灭菌。将寡核苷酸溶解于0.9%PBS中以用于注射。
将小鼠分成三个处理组。所述组接受剂量为0.2nM、0.4nM或0.8nM的ISIS445236至一侧上的胫骨前肌内的直接肌内注射。每一只小鼠的对侧胫骨前肌接受单次剂量的PBS的肌内注射。将PBS注射的肌肉用作对照。
α1肌动蛋白RNA的抑制
在最后一次给药后24小时，处死动物，并从两侧的胫骨前肌分离样品。分离RNA以用于α1肌动蛋白的实时PCR分析，将其针对18sRNA进行标准化。如表21中所示，利用ISIS445236的处理在所有剂量上减少人α1肌动蛋白RNA转录物表达。结果表示为相对于PBS对照的α1肌动蛋白转录物的百分比抑制。
结果显示利用ISIS445236的处理在上文中指定的条件下导致α1肌动蛋白mRNA水平的显著抑制。
表21：HSALR小鼠中ISIS445236对人α1肌动蛋白RNA转录物的百分比抑制
剂量(nM) 抑制%
0.2 70
0.4 54
0.8 78
利用肌电描记术进行的肌强直的评估
肌强直是指归因于肌纤维的延迟的放松的重复动作电位。在具有肌强直性营养不良的患者中以及在HSALR小鼠中观察到该现象。当将EMG针插入肌强直的肌肉时，电活动性被延长直到当插入活动通常应当停止后数秒。肌强直性放电的频率在50至100个脉冲/秒的范围内。
通过肌电描记术测量肌强直，并以下列方式将其分级：0级表示通过任何针插入没有引发肌强直(0%)；1级表示通过低于50%的针插入引发的肌强直；2级表示通过超过50%的针插入引发的肌强直；以及3级表示通过100%的针插入引发的肌强直。
在进行肌电描记术之前，通过腹膜内注射100mg/kg氯胺酮、10mg/kg赛拉嗪和3mg/kg乙酰丙嗪的混合物来麻醉小鼠。如先前所述(Kanadia等人，2003,Science,302：1978-1980)，通过对每一块肌肉使用30规同心针状电极和最少10次针插入对左右四头肌、左右腓肠肌、左右胫骨前肌和腰椎旁肌进行肌电描记术。数据在表22中显示为在每一组的4只小鼠中观察到的平均肌强直等级，并且显示了利用ISIS445236处理的小鼠的肌强直的显著减少。
表22：反义寡核苷酸处理的HSALR小鼠的不同肌肉中肌强直的平均减少
选择性剪接的校正
在DM1/HSALR小鼠模型中，扩大的CUGRNA在细胞核中的积累导致多(CUG)-结合蛋白例如盲肌-样1(MBLN1)的隔离(Miller,J.W.等人EMBOJ.19：4439,2000)。控制Serca1基因的选择性剪接的剪接因子MBNL1被隔离在扩大的CUG聚集点中。这触发了该基因的选择性剪接的失调。为了评估人α1肌动蛋白的反义抑制对此类选择性剪接的作用，按照制造商的说明书，使用RNeasyLipidTissueMini试剂盒(Qiagen)从胫骨前肌、腓肠肌和四头肌纯化总RNA。使用用于cDNA合成和PCR扩增的基因特异性引物，利用SuperscriptIIIOne-StepRT-PCR系统和PlatinumTaq聚合酶(Invitrogen)进行RT-PCR。用于Serca-1的正向和反向引物已描述于Bennett和Swayze(Annu.Rev.Pharmacol.2010；50：259-93)中。在琼脂糖凝胶上分离PCR产物，用SybrGreenI核酸凝胶染色剂(Invitrogen)染色，然后使用FujifilmLAS-3000智能暗盒进行成像。
PBS对照中Serca1剪接的PCR产物显示作为MBLNl的失调的结果的外显子22排斥。利用ISIS445236的处理导致外显子22包含和胫骨前肌、腓肠肌和四头肌中的Serca1基因的选择性剪接的标准化。
因此，α1肌动蛋白的反义抑制校正了Serca1剪接失调，这表示利用反义寡核苷酸的处理减少了CUGexp在细胞核聚集点中的积累。CUGexp在细胞核聚集点中的积累减少校正了MBLNl隔离，从而允许正常剪接发生。
实施例14：在转基因小鼠中皮下施用的人α1肌动蛋白的体内反义抑制
评估ISIS190403、ISIS445236和ISIS445238在体内减少人α1肌动蛋白RNA转录物的能力。
处理
将HSALR小鼠维持在12-小时光/暗周期并且随意喂食正常普瑞纳小鼠食物(Purinamousechow)。在开始实验之前，使动物在研究设施中适应至少7天。在PBS中制备反义寡核苷酸(ASO)，并通过将其通过0.2微米过虑器过滤来进行灭菌。将寡核苷酸溶解于0.9%PBS中以用于注射。
将小鼠分成四个处理组。每周2次以25mg/kg的剂量给前三个组皮下注射ISIS190403、ISIS445236或ISIS445238，进行4周。每周2次给第四组皮下注射PBS，进行4周。将PBS注射组用作与寡核苷酸处理的组相比较的对照组。
α1肌动蛋白RNA的抑制
在最后一次给药后24小时，处死动物，并分离来自四头肌(左和右)、腓肠肌(左和右)和胫骨前肌(左和右)的组织。分离RNA以用于α1肌动蛋白的实时PCR分析，并将其针对18sRNA进行标准化。如表23中所示，利用反义寡核苷酸的处理在所有剂量上减少人α1肌动蛋白RNA转录物表达。结果表示为相对于对照的α1肌动蛋白转录物的百分比抑制。
ISIS445236和ISIS445238都显示在上文中指定的条件下α1肌动蛋白mRNA水平的显著抑制。
表23：HSALR小鼠中人α1肌动蛋白RNA转录物的百分比抑制
肌肉类型 ISIS190403 ISIS445236 ISIS445238
四头肌 16 83 72
腓肠肌 0 85 73
胫骨前肌 2 81 71
肌肉中α1肌动蛋白的荧光原位杂交
将冷冻的肌肉组织切片于新鲜的3%的PBS溶液中的多聚甲醛中固定15-20分钟，随后用PBS将其冲洗2次达5分钟。利用0.5%TritonX-100透化细胞核，随后利用正常山羊血清封闭组织，进行30分钟。用利用德克萨斯红(IntegratedDNATechnologies)5′标记的靶向α1肌动蛋白的2′-O-甲基RNA温育切片。利用DAPI对切片进行复染色以标记细胞核。安装切片，并利用标准荧光显微镜进行观察。利用Metavue软件采集图像，利用Autoquant软件实现重叠合法(deconvolution)。
来自利用ISIS445236和ISIS445238处理的小鼠的所有肌肉组织切片都在核糖核聚集点(ribonuclearfoci)上显示减少的的α1肌动蛋白信号的荧光强度，这表明人α1肌动蛋白mRNA的反义抑制和细胞核聚集体中RNA的减少。
利用肌电描记术进行的肌强直的评估
肌强直是指归因于肌纤维的延迟的放松的重复动作电位。在患有肌强直性营养不良的患者中以及在HSALR小鼠中观察到该现象。当将EMG针插入肌强直的肌肉时，电活动性被延长达到当插入活动通常应当停止后数秒。肌强直性放电的频率在50至100个脉冲/秒的范围内。
通过肌电描记术测量肌强直，并以下列方式将其分级：0级表示通过任何针插入没有引发肌强直(0%)；1级表示通过低于50%的针插入引发的肌强直；2级表示通过超过50%的针插入引发的肌强直；以及3级表示通过100%的针插入引发的肌强直。
在进行肌电描记术之前，通过腹膜内注射100mg/kg氯胺酮、10mg/kg赛拉嗪和3mg/kg乙酰丙嗪或250mg/kg2,2,2-三溴乙醇的混合物来麻醉小鼠。如先前所述(Kanadia等人，2003,Science,302：1978-1980)，通过对每一块肌肉使用30规同心针状电极和最少10次针插入对左右四头肌、左右腓肠肌、左右胫骨前肌以及腰椎旁肌进行肌电描记术。数据在表24中显示为在每一组的4只小鼠中观察到的平均肌强直等级，并且显示了用ISIS445236和ISIS445238处理的小鼠的肌强直的显著减少。
表24：反义寡核苷酸处理的HSALR小鼠的不同肌肉中肌强直的平均减少
选择性剪接的校正
控制Serca1剪接、m-Titin剪接、CIC-1氯离子通道基因(Clcnl)剪接和Zasp剪接的剪接因子MBNL1被隔离在扩大的CUG聚集点中。MBNL1的隔离触发了这些基因的每一个基因的失调剪接。为了评估人α1肌动蛋白的反义抑制对剪接的作用，按照实施例13中所述，从胫骨前肌、腓肠肌和四头肌纯化总RNA并进行RT-PCR。用于Serca-1、m-Titin、Clcnl和ZASP的正向和反向引物已描述于Bennett和Swayze，Annu.Rev.Pharmacol.2010；50：259-93中。
在PBS处理的HSALR小鼠中，Serca1剪接失调，如通过外显子22排斥所证明的。用ISIS445236和ISIS445238的每一种的处理导致外显子22包含以及胫骨前肌、腓肠肌和四头肌的Serca1基因的选择性剪接的正常化。
在PBS处理的HSALR小鼠中，m-Titin剪接失调，如通过外显子5包含所证明的。用ISIS445236和ISIS445238的每一种的处理导致外显子5的跳跃以及胫骨前肌、腓肠肌和四头肌的m-Titin基因的选择性剪接的正常化。
在PBS处理的HSALR小鼠中，Clcnl剪接失调，如通过外显子7a包含所证明的。用ISIS445236和ISIS445238的每一种的处理导致外显子7a的跳跃以及胫骨前肌、腓肠肌和四头肌的Clcnl基因的选择性剪接的正常化。
在PBS处理的HSALR小鼠中，Zasp剪接失调，如通过外显子11例入所证明的。用ISIS445236和ISIS445238的每一种的处理导致外显子11的跳跃以及胫骨前肌、腓肠肌和四头肌的Zasp基因的选择性剪接的正常化。
因此，α1肌动蛋白的反义抑制校正Serca1、m-Titin、Clcnl和Zasp剪接失调，这表示用反义寡核苷酸的处理减少了CUGexp在细胞核聚集点中的积累。CUGexp在细胞核聚集点中的积累减少校正了MBLNl隔离，从而允许正常剪接发生。
实施例15：转基因小鼠中人α1肌动蛋白的体内反义抑制
进一步在HSALR小鼠中评估人α1肌动蛋白RNA转录物通过ISIS445236和ISIS445238对肌强直的反义抑制。
处理
将小鼠分成三个处理组。每周2次以25mg/kg的剂量给前二个组皮下注射ISIS445236或ISIS445238，进行2周。每周2次给第三组第三组皮下注射PBS，进行2周。将PBS注射组用作与寡核苷酸处理的组相比较的对照组。
α1肌动蛋白RNA的抑制
在最后一次给药后24小时，处死动物，并分离来自四头肌、腓肠肌和胫骨前肌的组织。分离RNA以用于α1肌动蛋白的实时PCR分析，并将其针对18sRNA进行标准化。如表25中所示，利用反义寡核苷酸的处理减少人α1肌动蛋白RNA转录物表达。结果表示为相对于PBS对照的α1肌动蛋白转录物的百分比抑制。
ISIS445236和ISIS445238都显示在上文中指定的条件下α1肌动蛋白mRNA水平的显著抑制。
表25：HSALR小鼠中人α1肌动蛋白RNA转录物的百分比抑制
肌肉类型 ISIS445236 ISIS445238
四头肌 61 64
腓肠肌 68 37
胫骨前肌 68 41
利用肌电描记术进行的肌强直的评估
如先前所述(Kanadia等人，2003,Science,302：1978-1980)，通过对每一块肌肉使用30规同心针状电极和最少10次针插入对左右四头肌、左右腓肠肌、左右胫骨前肌以及腰椎旁肌进行肌电描记术。数据在表26中显示为在每一组的4只小鼠中观察到的平均肌强直等级，并且显示了利用ISIS445236和ISIS445238处理的小鼠的肌强直的显著减少。
表26：反义寡核苷酸-处理的HSALR小鼠的不同肌肉中肌强直的平均减少
选择性剪接的校正
为了评估ISIS190401对Serca1的选择性剪接的作用，在与实施例13中描述的方法相似的方法中分析从胫骨前肌、腓肠肌和四头肌纯化的总RNA。
在PBS处理的HSALR小鼠中，Serca1剪接失调，如通过外显子22排斥所证明的。利用ISIS445236和ISIS445238的每一种的处理导致胫骨前肌和四头肌中Serca1基因的外显子22的几乎完全包含和选择性剪接的正常化。
因此，α1肌动蛋白的反义抑制校正了Serca1剪接失调，这表示利用反义寡核苷酸的处理减少了CUGexp在细胞核聚集点中的积累。CUGexp在细胞核聚集点中的积累减少校正了MBLNl隔离，从而允许正常剪接发生。
实施例16：转基因小鼠中人α1肌动蛋白的剂量依赖性反义抑制
在HSALR小鼠中评估人α1肌动蛋白RNA转录物通过ISIS445236和ISIS445238对对肌强直的反义抑制。
处理
每周2次以2.5mg/kg、8.5mg/kg或25.0mg/kg的剂量给HSALR小鼠皮下注射ISIS445236或ISIS445238，进行4周。每周2次给对照组皮下注射PBS，进行4周。将PBS注射的组用作与寡核苷酸处理的组相比较的对照组。
α1肌动蛋白RNA的抑制
在最后一次给药后24小时，处死动物，并分离来自四头肌（Quad）、腓肠肌（Gastroc）和胫骨前肌（TA）的组织。分离RNA以用于α1肌动蛋白的实时PCR分析，并将其针对18sRNA进行标准化。如表27中所示，利用反义寡核苷酸的处理减少人α1肌动蛋白RNA转录物表达。结果表示为相对于PBS对照的α1肌动蛋白转录物的百分比抑制。
两种反义寡核苷酸都显示在上文中指定的条件下四头肌、腓肠肌和胫骨前肌中的α1肌动蛋白mRNA水平的剂量依赖性抑制。
表27：HSALR小鼠中人α1肌动蛋白RNA转录物的剂量依赖性抑制
利用肌电描记术进行的肌强直的评估
如先前所述(Kanadia等人，2003,Science,302：1978-1980)，通过对每一块肌肉使用30规同心针状电极和最少10次针插入对左右四头肌(Quad)、左右腓肠肌(Gastroc)、左右胫骨前肌(TA)以及腰椎旁肌进行肌电描记术。数据在表28中显示为在每一组的4只小鼠中观察到的平均肌强直等级，并且显示了利用ISIS445236和ISIS445238处理的小鼠中肌强直的显著的剂量依赖性减少。
表28：反义寡核苷酸处理的HSALR小鼠的不同肌肉中肌强直的平均减少
选择性剪接的校正
为了评估ISIS190401对Serca1的选择性剪接的作用，在与实施例13中描述的方法相似的方法中分析从胫骨前肌、腓肠肌和四头肌纯化的总RNA。
在PBS处理的HSALR小鼠中，作为MBLN1失调的结果，Serca1剪接失调，如通过外显子22排斥所证明的。每周2次以8.5mg/kg或25.0mg/kg的剂量(或17.0mg/kg/周和50.0mg/kg/周)用ISIS445236或ISIS445238进行处理导致所有三种肌肉类型的Serca1基因的外显子22的选择性剪接的完全包含和正常化。
因此，α1肌动蛋白的反义抑制校正了Serca1剪接失调，这表示利用反义寡核苷酸的处理减少了CUGexp在细胞核聚集点中的积累。CUGexp在细胞核聚集点中的积累减少校正了MBLNl隔离，从而允许正常剪接发生。
实施例17：靶向HAS编码区的寡核苷酸对转基因小鼠的人α1肌动蛋白的体内反义抑制
评估在HSALR小鼠中人α1肌动蛋白RNA转录物通过ISIS190401(5′-GCGGTCAGCGATCCCAGGGT-3′(SEQIDNO：788)，SEQIDNO：1的靶起始位点1028)对肌强直的反义抑制。
处理
每周2次以25mg/kg的剂量给HSALR小鼠皮下注射ISIS190401，进行4周。每周2次给对照组皮下注射PBS，进行2周。将PBS注射组用作与寡核苷酸处理的组相比较的对照组。
α1肌动蛋白RNA的抑制
在最后一次给药后24小时，处死动物，并分离来自四头肌、腓肠肌和胫骨前肌的组织。分离RNA以用于α1肌动蛋白的实时PCR分析，并将其针对18sRNA进行标准化。如表29中所示，利用反义寡核苷酸的处理减少人α1肌动蛋白RNA转录物表达。结果表示为相对于PBS对照的α1肌动蛋白转录物的百分比抑制。
用ISIS190401的处理在上文中指定的条件下导致四头肌、腓肠肌和胫骨前肌中的α1肌动蛋白mRNA水平的显著抑制。
表29：HSALR小鼠中人α1肌动蛋白RNA转录物的反义抑制
利用肌电描记术进行的肌强直的评估
如先前所述(Kanadia等人，2003,Science,302：1978-1980)，通过对每一块肌肉使用30规同心针状电极和最少10次针插入对左右四头肌、左右腓肠肌、左右胫骨前肌以及腰椎旁肌进行肌电描记术。数据在表30中显示为在每一组的4只小鼠中观察到的平均肌强直等级，并且显示了利用ISIS190401处理的小鼠的肌强直的显著减少。
表30：反义寡核苷酸处理的HSALR小鼠的不同肌肉中肌强直的平均减少
选择性剪接的校正
为了评估ISIS190401对Serca1的选择性剪接的作用，在与实施例13中描述的方法相似的方法中分析从胫骨前肌、腓肠肌和四头肌纯化的总RNA。
在PBS处理的HSALR小鼠中，作为MBLN1失调的结果，Serca1剪接失调，如通过外显子22排斥所证明的。利用ISIS190401的处理导致全部三种肌肉类型的Serca1基因的外显子22的完全包含和选择性剪接的正常化。
因此，α1肌动蛋白的反义抑制校正了Serca1剪接失调，这表示利用反义寡核苷酸的处理减少了CUGexp在细胞核聚集点中的积累。CUGexp在细胞核聚集点中的积累减少校正了MBLNl隔离，从而允许正常剪接发生。
实施例18：在转基因小鼠中靶向人α1肌动蛋白的寡核苷酸的反义抑制的作用的持续时间
评估在HSALR小鼠中人α1肌动蛋白RNA转录物通过ISIS445236的反义抑制的持续时间。
处理
每周2次以25mg/kg的剂量给HSALR小鼠皮下注射ISIS445236，进行4周。每周2次给对照组皮下注射PBS，进行2周。将PBS注射的组用作与寡核苷酸处理的组相比较的对照组。在最后一次剂量施用后6周分析小鼠。
α1肌动蛋白RNA的抑制
在最后一次给药后6周，处死动物，并分离来自四头肌、腓肠肌和胫骨前肌的组织。分离RNA以用于α1肌动蛋白的实时PCR分析，并将其针对18sRNA进行标准化。如表31中所示，利用ISIS445236的处理减少人α1肌动蛋白RNA转录物表达，并且该作用持续至少6周。结果表示为相对于PBS对照的α1肌动蛋白转录物的百分比抑制。
利用ISIS445236的处理在上文中指定的条件下导致四头肌、腓肠肌和胫骨前肌中的α1肌动蛋白mRNA水平的显著抑制。
表31：HSALR小鼠中人α1肌动蛋白RNA转录物的反义抑制
肌肉类型 百分比
抑制
四头肌 88
腓肠肌 76
胫骨前肌 67
利用肌电描记术进行的肌强直的评估
如先前所述(Kanadia等人，2003,Science,302:1978-1980)，通过对每一块肌肉使用30规同心针状电极和最少10次针插入对左右四头肌、左右腓肠肌、左右胫骨前肌以及腰椎旁肌进行肌电描记术。数据在表32中显示为在每一组的4只小鼠中观察到的平均肌强直等级，并且显示了利用ISIS445236处理的小鼠的肌强直的显著减少。因此，ISIS445236对α1肌动蛋白的反义抑制的作用持续至少6周。
表32：反义寡核苷酸处理的HSALR小鼠的不同肌肉中肌强直的平均减少
实施例19：在转基因小鼠中通过肌内施用的具有CUG重复的mRNA的反义抑制的体内作用
评估在HSALR小鼠中包含多个CUG重复的mRNA转录物对肌强直的反义抑制的作用。测定3种靶向CUG重复并且具有不同长度的反义寡核苷酸在抑制小鼠中的肌强直的效率。ISIS444745(AGCAGCAGCAGCAGCAGCAGCAGCA(SEQIDNO：789)为长度为25个核苷酸并且具有硫代磷酸酯主链的均一2′-O-甲氧基乙基寡核苷酸。ISIS444746(AGCAGCAGCAGCAGCAGCAG(SEQIDNO：790)为长度为20个核苷酸并且具有硫代磷酸酯主链的均一2′-O-甲氧基乙基寡核苷酸。ISIS444749(GCAGCAGCAGCAGCA(SEQIDNO：791)为长度为15个核苷酸并且具有硫代磷酸酯主链的均一2′-O-甲氧基乙基寡核苷酸。ISIS445236被包括在测定中作为阳性对照。
处理
将HSALR小鼠分成三个处理组。所述组接受剂量为0.4nM的ISIS444745、ISIS444746或ISIS444749至胫骨前肌内的直接肌内注射。每一只小鼠的对侧胫骨前肌接受单次剂量的PBS的肌内注射。将PBS注射的肌肉用作对照。
α1肌动蛋白RNA的抑制
在最后一次给药后24小时，处死动物，并从胫骨前肌(左和右)分离样品。分离RNA以用于α1肌动蛋白的实时PCR分析，并将其针对18sRNA进行标准化。如表33中所示，仅利用ISIS444745的处理减少人α1肌动蛋白RNA转录物表达。结果表示为相对于PBS对照的α1肌动蛋白转录物的百分比抑制。
表33：HSALR小鼠中人α1肌动蛋白RNA转录物的百分比抑制
实施例20：在转基因小鼠中通过肌内施用的具有CUG重复的mRNA的剂量依赖性抑制
进一步评估ISIS444745和ISIS444746体内减少人α1肌动蛋白mRNA的能力。
处理
将HSALR小鼠维持在12-小时光/暗周期并且随意喂食正常普瑞纳小鼠食物。在开始实验之前，使动物在研究设施中适应至少7天。在PBS中制备反义寡核苷酸(ASO)，并通过将其通过0.2微米过虑器过滤来进行灭菌。将寡核苷酸溶解于0.9%PBS中以用于注射。
将小鼠分成六个处理组。其中三个组接受剂量为0.2nM、0.5nM或1.0nM的ISIS444745至一侧上的胫骨前肌内的直接肌内注射。另外三个组接受剂量为0.2nM、0.5nM或1.0nM的ISIS444746至一侧上的胫骨前肌内的直接肌内注射。每一只小鼠的对侧胫骨前肌接受单次剂量的PBS的肌内注射。将PBS注射的肌肉用作相应的利用ISIS寡核苷酸处理的肌肉的对照。
利用肌电描记术进行的肌强直的评估
如先前所述(Kanadia等人，2003,Science,302：1978-1980)，通过对每一块肌肉使用30规同心针状电极和最少10次针插入对左右四头肌、左右腓肠肌、左右胫骨前肌以及腰椎旁肌进行肌电描记术。数据在表34中显示为在每一组的4只小鼠中观察到的平均肌强直等级，并且显示了利用ISIS444745或ISIS444746处理的小鼠的肌强直的显著减少。ISIS444745和444746对α1肌动蛋白的反义抑制的作用持续至少6周。
表34：反义寡核苷酸处理的HSALR小鼠的肌肉中肌强直的剂量依赖性减少
0.2nM 0.5nM 1.0nM
PBS 3.0 3.0 2.33
ISIS44745 1.67 1.00 0.33
PBS 2.50 2.00 3.00
ISIS44746 200 000 100
实施例21：在转基因小鼠中通过肌内施用的具有CUG重复的mRNA的反义抑制的体内作用
评估HSALR小鼠包含多个CUG重复的mRNA转录物对肌强直的反义抑制的作用。ISIS445236被包括在测定中作为阳性对照。
处理
将HSALR小鼠分成五个处理组。每周2次以25mg/kg的剂量给前三组皮下注射ISIS444745、ISIS444746或ISIS444749，进行4周。每周2次给第四组皮下注射PBS，进行4周。每周2次以25mg/kg的剂量给第五组皮下注射ISIS445236，进行4周。将PBS注射的组用作与寡核苷酸处理的组相比较的对照组。
利用肌电描记术进行的肌强直的评估
如先前所述(Kanadia等人，2003,Science,302：1978-1980)，通过对每一块肌肉使用30规同心针状电极和最少10次针插入对左右四头肌、左右腓肠肌、左右胫骨前肌以及腰椎旁肌进行肌电描记术。数据在表35中显示为在每一组的4只小鼠中观察到的平均肌强直等级。
利用ISIS445236的处理导致肌强直减少。利用ISIS444745和ISIS444746的处理也在一些测试的组织中导致肌强直减少。
表35：反义寡核苷酸处理的HSALR小鼠的不同肌肉中肌强直的平均减少
实施例22：在转基因小鼠中通过皮下施用的长CUG重复mRNA(HSALR小鼠)和短CUG重复(HSASR小鼠)的剂量依赖性抑制
评估包含长CUG重复(HSALR小鼠)和短CUG重复(HSASR小鼠)的mRNA的剂量依赖性抑制。HSA-短重复(HSASR)小鼠表达除5个而非250个CUG重复被插入3′UTR外与HSALR小鼠相同的转基因。HSASR小鼠不具有肌强直、剪接改变或任何其它可观察的肌强直表型。将ISIS445236用于本测定。
处理
将HSALR小鼠分成四个处理组。每周2次以2.5mg/kg、8.5mg/kg或25.0mg/kg的剂量给前三组皮下注射ISIS445236，进行4周。每周2次给第四组皮下注射PBS，进行4周。将PBS注射的组用作与寡核苷酸处理的组相比较的对照组。将HSASR小鼠也分成四组并且进行类似处理。
α1肌动蛋白RNA的抑制
在最后一次给药后24小时，处死动物，并分离来自四头肌(左和右)、腓肠肌(左和右)和胫骨前肌(左和右)的组织，分离RNA以用于α1肌动蛋白的实时PCR分析，并将其针对18sRNA进行标准化。结果示于表36和37中并且表示为相对于对照的α1肌动蛋白转录物的百分比抑制。将HSALR小鼠的肌肉中保留在细胞核中的长重复的更大抑制与HSASR小鼠的肌肉中非细胞核保留的短重复相比较。
表36：HSALR小鼠中人α1肌动蛋白RNA转录物的百分比抑制
表37：HSASR小鼠中人α1肌动蛋白RNA转录物的百分比抑制
实施例23：转基因小鼠中人DMPK的体内反义抑制
LC15小鼠品系A为包含完整人DMPK3′UTR的转基因小鼠(由Wheeler等人，UniversityofRochester开发)。小鼠为与FVB背景回交的小鼠的第二代。转基因在小鼠中表达为CUG重复RNA，其被保留在细胞核中，形成与在患有肌强直性营养不良(DM1)的患者的人组织样品中看到的相似的核内包函体或聚集点。在DMPK转基因中存在350-400个CUG重复。此类小鼠显示DM1的早期体征并且在其肌肉组织中未显示任何肌强直。
在体内评估在体外显示统计上显著的剂量依赖性抑制(参见实施例5)的ISIS445569、ISIS444404、ISIS444436和ISIS473810的减少人DMPKRNA转录物的能力。
处理
将LC15品系A小鼠维持在12-小时光/暗周期并且随意喂食正常普瑞纳小鼠食物。在开始实验之前，使动物在研究设施中适应至少7天。在PBS中制备反义寡核苷酸(ASO)，并通过将其通过0.2微米过虑器过滤来进行灭菌。将寡核苷酸溶解于0.9%PBS中以用于注射。
将小鼠分成五个处理组。每周2次以25mg/kg的剂量给前三个组皮下注射ISIS445569、ISIS444404或ISIS444436，进行4周。每周2次以12.5mg/kg的剂量给第四组皮下注射ISIS473810，进行4周。每周2次给第五组皮下注射PBS，进行4周。将PBS注射的组用作与寡核苷酸处理的组相比较的对照组。
DMPKRNA的抑制
在最后一次给药后24小时，处死动物，并分离来自四头肌的组织。分离RNA以用于DMPK的实时PCR分析，并将其针对18sRNA进行标准化。如表38中所示，利用反义寡核苷酸的处理减少人DMPKRNA转录物表达。结果表示为相对于PBS对照的DMPK转录物的百分比抑制。
表38：LC15小鼠中人DMPKRNA转录物的反义抑制
ISIS编号 mg/kg/周 抑制%
444404 50 20
444404 50 55
444436 50 41
473810 25 56
利用肌电描记术进行的肌强直的评估
如先前所述(Kanadia等人，2003,Science,302:1978-1980)，通过对每一块肌肉使用30规同心针状电极和最少10次针插入对左右四头肌、左右腓肠肌、左右胫骨前肌以及腰椎旁肌进行肌电描记术。由于LC15小鼠不具有肌强直，因此对照组和处理组在测试的任何肌肉中都未显示任何肌强直。
实施例24：转基因小鼠中人DMPK的体内反义抑制
LC15小鼠品系D为包含完整人DMPK3′UTR的转基因小鼠(由Wheeler等人，UniversityofRochester开发)。小鼠为与FVB背景回交的小鼠的第三代。转基因在小鼠中表达为CUG重复RNA，其被保留在细胞核中，形成与在患有肌强直性营养不良(DM1)的患者的人组织样品中看到的相似的核内包函体或聚集点。在DMPK转基因中存在350-400个CUG重复。此类小鼠显示DM1的早期体征并且在其肌肉组织中未显示任何肌强直。
在体内进一步评估ISIS445569、ISIS444404、ISIS444436和ISIS473810的减少人DMPKRNA转录物的能力。
处理
将LC15品系D小鼠维持在12-小时光/暗周期并且随意喂食正常普瑞纳小鼠食物。在开始实验之前，使动物在研究设施中适应至少7天。在PBS中制备反义寡核苷酸(ASO)，并通过将其通过0.2微米过虑器过滤来进行灭菌。将寡核苷酸溶解于0.9%PBS中以用于注射。
将小鼠分成六个处理组。每周2次以25.00mg/kg的剂量给前三个组皮下注射ISIS445569、ISIS444404或ISIS444436，进行4周。每周2次以12.5mg/kg的剂量给第四组皮下注射ISIS473810，进行4周。每周2次以6.25mg/kg的剂量给第五组皮下注射ISIS473810，进行4周。每周2次给第六组皮下注射PBS，进行4周。将PBS注射的组用作与寡核苷酸处理的组相比较的对照组。
DMPKRNA的抑制
在最后一次给药后24小时，处死动物，并分离来自四头肌的组织。分离RNA以用于DMPK的实时PCR分析，并将其针对18sRNA进行标准化。如表39中所示，利用反义寡核苷酸的处理减少人DMPKRNA转录物表达。结果表示为相对于PBS对照的DMPK转录物的百分比抑制。
结果显示利用反义寡核苷酸的处理导致小鼠中DMPKmRNA的抑制。
表39：LC15小鼠中人DMPKRNA转录物的反义抑制
ISIS编号 mg/kg/周 抑制%
444404 50.00 24
444404 50.00 30
444436 50.00 17
473810 25.00 7
473810 1250 18
利用肌电描记术进行的肌强直的评估
如先前所述(Kanadia等人，2003,Science,302:1978-1980)，通过对每一块肌肉使用30规同心针状电极和最少10次针插入对左右四头肌、左右腓肠肌、左右胫骨前肌以及腰椎旁肌进行肌电描记术。由于LC15小鼠不具有肌强直，因此对照组和处理组在测试的任何肌肉中都未显示任何肌强直。
实施例25：SXL转基因小鼠模型中人DMPK的体内反义抑制
通过使用靶向hDMPK的ASO444401和299471，在SXL小鼠中测量比目鱼肌中的靶敲低。SXL小鼠为完整DMPK基因和启动子的转基因并且在DMPK基因的3′UTR中包含1000个CUG重复序列。每周2次以50mg/kg的剂量给小鼠给药，进行4周(n=3小鼠/组，除对于盐水注射的对照n=2外)。Taqman测定的结果显示利用ISISI444401或ISIS299471的处理显著降低mut-hDMPKmRNA水平但对内源小鼠DmpkmRNA水平具有可忽略的作用。
因此，ISIS444401和ISIS299471选择性靶向人DMPKmRNA转录物。
实施例26：在转基因小鼠中靶向人α1肌动蛋白的寡核苷酸的反义抑制的作用的持续时间
评估ISIS190401在HSALR小鼠中对人α1肌动蛋白RNA转录物的反义抑制的作用的持续时间
处理
每周2次以25mg/kg的剂量给HSALR小鼠皮下注射ISIS190401，进行4周。每周2次给对照组皮下注射PBS，进行4周。将PBS注射的组用作与寡核苷酸处理的组相比较的对照组。在施用最后一个剂量后15周分析小鼠。
α1肌动蛋白RNA的抑制
在最后一次给药后15周，处死动物，并分离来自四头肌、腓肠肌和胫骨前肌的组织，分离RNA以用于α1肌动蛋白的实时PCR分析，并将其针对18sRNA进行标准化。如表40中所示，利用ISIS190401的处理减少人α1肌动蛋白RNA转录物表达，并且该作用持续至少15周。结果表示为相对于PBS对照的α1肌动蛋白转录物的百分比抑制。
利用ISIS190401的处理导致在上文中指定的条件下α1肌动蛋白mRNA水平的显著抑制。
表40：HSALR小鼠中人肌动蛋白RNA转录物的反义抑制
肌肉类型 抑制%
四头肌 74
腓肠肌 81
胫骨前肌 75
利用肌电描记术进行的肌强直的评估
如先前所述(Kanadia等人，2003,Science,302:1978-1980)，通过对每一块肌肉使用30规同心针状电极和最少10次针插入对左右四头肌、左右腓肠肌、左右胫骨前肌以及腰椎旁肌进行肌电描记术。数据在表41中显示为在每一组的4只小鼠中观察到的平均肌强直等级，并且显示了利用ISIS190401处理的小鼠中肌强直的显著减少。因此，ISIS190401对α肌动蛋白的反义抑制的作用持续至少15周。
表41：反义寡核苷酸处理的HSALR小鼠的不同肌肉中肌强直的平均减少
选择性剪接的校正
为了评估ISIS190401对Serca1的选择性剪接的作用，在与实施例13中描述的方法相似的方法中分析从胫骨前肌、腓肠肌和四头肌纯化的总RNA。
在PBS处理的HSALR小鼠中，Serca1剪接失调，如通过外显子22排斥所证明的。利用ISIS190401的处理导致全部三种肌肉类型的Serca1基因的外显子22的完全包含和选择性剪接的正常化，该作用即使在15周后仍然得到保持。
因此，α1肌动蛋白的反义抑制校正了Serca1剪接失调，这表示利用反义寡核苷酸的处理减少了CUGexp在细胞核聚集点中的积累。CUGexp在细胞核聚集点中的积累减少校正了MBLNl隔离，从而允许正常剪接发生。
实施例27：人肌动蛋白的反义抑制的转录组作用的微阵列分析
具有扩大的CUG重复的肌动蛋白mRNA的表达引起肌肉转录组的广泛重塑。为了评估ISIS190401和ISIS445236的总体转录组作用，将微阵列分析用于HSALR小鼠。
处理
每周2次以25mg/kg的剂量给HSALR小鼠皮下注射ISIS190401或ISIS445236，进行4周。每周2次给对照组皮下注射PBS，进行4周。将PBS注射的组用作与寡核苷酸处理的组相比较的对照组。
利用微阵列进行的转录组分析
从野生型或HSALR小鼠的四头肌分离RNA。使用AgilentBioanalyzer(RNA完整性指数>7.5)验证RNA完整性。按照制造商的建议，使用MouseRef-8v2.0ExpressionBeadChip试剂盒(Illumina,SanDiego)将RNA加工成互补RNA(cRNA)，并且使其在微珠上杂交。使用BeadStudio软件(Illumina)定量图象数据。将信号强度进行分位数标准化。在标准化之前，使用行特异性偏移(Row-specificoffset)以避免任何值小于2。来自所有具有6或更多个核苷酸的CUG、UGC或GCU重复的探针组的数据被禁用(suppress)以消除杂交混合物中的扩大的重复(源自mRNA中CUG重复的cRNA中的CGA重复)可与探针中的重复序列交叉杂交的概率。为了消除其表达在阵列上不易定量的基因，在所有样品中禁用显示小于0.1的检测概率的P值的探针。通过平均表达水平的倍数变化和t检验概括组间比较，并且对其进行排序。软件包R(Butler等人，Diabetes.2002；51：1028-34)用于对野生型、ISIS寡核苷酸处理的和PBS处理的微阵列样品进行主成分分析(Levin等人，AntisenseDrugTechnology：Principles,Strategies,andApplications,S.T.Crooke,Ed.(CRCPress,BocaRaton,2008),第183-215页；Geary等人，DrugMetab.Dispos.2003；31：1419-28)。主成分允许在三维内捕获每一个样品的大部分表达变化。将每一个样品的前3个主成分作图。
未处理的野生型和HSALR小鼠的主成分分析显示HSALR与野生型小鼠在相隔较远的簇中分离。相反地，反义寡核苷酸处理的HSALR小鼠与野生型小鼠更紧密地聚簇，这显示了转录组标准化的总体趋势。HSALR转基因小鼠与野生型小鼠的比较鉴定了其表达水平改变超过2倍(P<0.0001)的93种转录物，如下面表42中显示的。此类转录物的失调的程度下降或将其针对反义寡核苷酸进行标准化(88%的失调的转录物响应ISIS445236,P<0.05，对于ISIS445236对PBS对照，然而90%响应ISIS190401)。
为了考虑具有脱靶敲低的转录物，鉴定了所有其表达在反义寡核苷酸处理的HSALR小鼠中下降的转录物(被寡核苷酸降低至1/2以下，P<0.0001,n=41个转录物)。被此类标准下调的所有转录物在HSALR小鼠中显示上调。唯一例外，胶原6α2可以因脱靶裂解产生，因为其被具有无重叠序列的两个反义寡核苷酸下调。
这些结果表明利用反义寡核苷酸的处理(进行4周)导致肌肉转录组的总体提高而无任何脱靶作用的证据。
表42：HSA转基因小鼠与野生型小鼠的比较鉴定了93个转录物

Claims (53)

1.一种化合物，其包含经修饰的寡核苷酸，所述经修饰的寡核苷酸由14至20个连接的核苷组成，其中所述经修饰的寡核苷酸的核碱基序列与SEQIDNO：1具有100％的互补性，并且所述核碱基序列具有包含SEQIDNO：85中引用的序列的至少14个连续核碱基。
2.根据权利要求1所述的化合物，其具有包含SEQIDNO：85中引用的序列的至少15个连续核碱基的核碱基序列。
3.根据权利要求1所述的化合物，其具有包含SEQIDNO：85中引用的序列的至少16个连续核碱基的核碱基序列。
4.根据权利要求1所述的化合物，其具有包含SEQIDNO：85中引用的序列的至少17个连续核碱基的核碱基序列。
5.根据权利要求1所述的化合物，其具有包含SEQIDNO：85中引用的序列的至少18个连续核碱基的核碱基序列。
6.根据权利要求1所述的化合物，其包含SEQIDNOs：83-85和726-727中引用的任意一个序列的核碱基序列，或者由上述核碱基序列组成。
7.根据权利要求1所述的化合物，其由SEQIDNO：85中引用的核碱基序列组成。
8.根据权利要求1-7中任一项所述的化合物，其中所述经修饰的寡核苷酸为单链寡核苷酸。
9.根据权利要求1所述的化合物，其中至少一个核苷间连接为经修饰的核苷间连接。
10.根据权利要求9所述的化合物，其中每一个核苷间连接为硫代磷酸酯核苷间连接。
11.根据权利要求1所述的化合物，其中至少一个核苷包含经修饰的糖。
12.根据权利要求11所述的化合物，其中至少一个经修饰的糖为二环糖。
13.根据权利要求11所述的化合物，其中至少一个经修饰的糖包含2’-O-甲氧基乙基。
14.根据权利要求1所述的化合物，其中至少一个核苷包含经修饰的核碱基。
15.根据权利要求14所述的化合物，其中所述经修饰的核碱基为5-甲基胞嘧啶。
16.根据权利要求1所述的化合物，其中经修饰的寡核苷酸包含：
由连接的脱氧核苷组成的空隙区段；
由连接的核苷组成的5′翼区段；
由连接的核苷组成的3′翼区段；
其中所述空隙区段位于5′翼区段与3′翼区段之间并且其中每一个翼区段的每一个核苷包含经修饰的糖。
17.根据权利要求16所述的化合物，其具有包含SEQIDNO：85中引用的序列的至少15个连续核碱基的核碱基序列。
18.根据权利要求16所述的化合物，其具有包含SEQIDNO：85中引用的序列的至少16个连续核碱基的核碱基序列。
19.根据权利要求16所述的化合物，其具有包含SEQIDNO：85中引用的序列的至少17个连续核碱基的核碱基序列。
20.根据权利要求16所述的化合物，其具有包含SEQIDNO：85中引用的序列的至少18个连续核碱基的核碱基序列。
21.根据权利要求1所述的化合物，其中所述经修饰的寡核苷酸由20个连接的核苷组成并且包含：
由10个连接的脱氧核苷组成的空隙区段；
由5个连接的核苷组成的5′翼区段；
由5个连接的核苷组成的3′翼区段；
其中所述空隙区段位于5′翼区段与3′翼区段之间，其中每一个翼区段的每一个核苷包含2′-O-甲氧基乙基糖；并且其中每一个核苷间连接为硫代磷酸酯连接。
22.根据权利要求1所述的化合物，其中经修饰的寡核苷酸由20个连接的核苷组成。
23.根据权利要求21所述的化合物，其中所述化合物的所述核碱基序列由SEQIDNO：85组成。
24.根据权利要求1所述的化合物，其中所述化合物是缀合的反义化合物。
25.一种组合物，其包含根据权利要求1-24中任一项所述的化合物或其盐和药学上可接受的载体或稀释剂。
26.根据权利要求1-24中任一项所述的化合物在制备一种用于治疗、预防或改善动物中DMPK相关疾病或其症状的药物中的用途，所述治疗、预防或改善动物中DMPK相关疾病或其症状包括施用所述药物。
27.根据权利要求1-24中任一项所述的化合物在制备一种治疗、预防或改善动物中1型肌强直性营养不良的药物中的用途，所述治疗、预防或改善动物中1型肌强直性营养不良包括施用所述药物。
28.根据权利要求1-24中任一项所述的化合物在制备一种用于在患有1型肌强直性营养不良或具有CUGexpDMPKRNA的动物中实现CUGexpDMPKRNA的优先减少的药物中的用途，
其中当与所述CUGexpDMPKRNA结合时，所述修饰的寡核苷酸激活核糖核酸酶，从而实现所述CUGexpDMPKRNA的优先减少。
29.根据权利要求1-24中任一项所述的化合物在制备一种用于在患有1型肌强直性营养不良或具有CUGexpDMPKRNA的动物中实现CUGexpDMPKRNA的优先减少的药物中的用途，
其中当与所述CUGexpDMPKRNA结合时，所述修饰的寡核苷酸实现所述CUGexpDMPKRNA的优先减少。
30.根据权利要求1-24中任一项所述的化合物在制备一种用于在怀疑患有1型肌强直性营养不良或具有CUGexpDMPKRNA的动物中实现CUGexpDMPKRNA的优先减少的药物中的用途，
其中当与所述CUGexpDMPKRNA结合时，所述修饰的寡核苷酸实现所述CUGexpDMPKRNA的优先减少。
31.根据权利要求1-24中任一项所述的化合物在制备一种减少怀疑患有1型肌强直性营养不良或具有保留在细胞核中的CUGexpDMPKRNA的动物的肌强直的药物中的用途，
其中当结合所述DMPKRNA时，所述修饰的寡核苷酸激活核糖核酸酶，从而减少肌强直。
32.根据权利要求1-24中任一项所述的化合物在制备一种减少怀疑患有1型肌强直性营养不良或具有保留在细胞核中的CUGexpDMPKRNA的动物的剪接病变的药物中的用途，
其中当结合所述突变的DMPKRNA时，所述修饰的寡核苷酸激活核糖核酸酶，从而减少剪接病变。
33.根据权利要求32所述的用途，其中所述剪接病变为MBNL依赖性剪接病变。
34.根据权利要求32所述的用途，其中所述寡核苷酸为空隙聚物，并且所述空隙聚物寡核苷酸靶向所述突变的DMPKRNA的非重复区域内的非编码序列。
35.根据权利要求32所述的用途，其中所述寡核苷酸为空隙聚物，并且所述空隙聚物寡核苷酸靶向所述突变的DMPKRNA的编码区、内含子、5′UTR或3′UTR。
36.根据权利要求28-30中任一项所述的用途，其中所述优先减少存在于肌肉组织中。
37.根据权利要求1-24中任一项所述的化合物在制备一种用于减少动物中的DMPK表达的药物中的用途，其中DMPK的表达在所述动物中的减少。
38.根据权利要求1-24中任一项所述的化合物在制备一种用于优先减少动物中的CUGexpDMPKRNA，减少动物中的肌强直或减少动物中的剪接病变的药物中的用途，所述化合物减少三十四肽重复结构域39B的表达，并且其中所述CUGexpDMPKRNA的减少优先减少动物中的CUGexpDMPKRNA、减少动物中的肌强直或减少动物中的剪接病变。
39.根据权利要求1-24中任一项所述的化合物在制备一种用于导致Sercal外显子22包含来减少有此需要的动物中的Sercal的剪接病变的药物中的用途。
40.根据权利要求1-24中任一项所述的化合物在制备一种用于导致m-Titin外显子5包含来减少有此需要的动物中的m-Titin的剪接病变的药物中的用途。
41.根据权利要求1-24中任一项所述的化合物在制备一种用于导致Clcnl外显子7a包含来减少有此需要的动物中的Clcnl的剪接病变的药物中的用途。
42.根据权利要求1-24中任一项所述的化合物在制备一种用于导致Zasp外显子11包含来减少有此需要的动物中的剪接病变的药物中的用途。
43.根据权利要求26-32和37-42中任一项所述的用途，其中所述经修饰的寡核苷酸减少CUGexpDMPK。
44.根据权利要求43所述的用途，其中所述经修饰的寡核苷酸优先减少CUGexpDMPK。
45.根据权利要求44所述的用途，其中CUGexp的优先减少存在于肌肉组织中。
46.根据权利要求1-24中任一项所述的化合物或根据权利要求25所述的组合物在制备一种用于减少动物中的肌强直的药物中的用途。
47.根据权利要求1-24中任一项所述的化合物或根据权利要求25所述的组合物在制备一种用于减少动物中的MBLN依赖性剪接病变的药物中的用途。
48.根据权利要求47所述的用途，其中Sercal、m-Titin、Clcnl和Zasp中的任一个的剪接被校正。
49.根据权利要求26-32、37-42和46-47中任一项所述的用途，其中所述药物用于全身性施用。
50.根据权利要求26-32、37-42和46-47中任一项所述的用途，其中所述药物用于胃肠外施用。
51.根据权利要求49所述的用途，其中所述全身性施用为皮下施用、静脉内施用、脑室内施用和鞘内施用的任一种。
52.根据权利要求26-32、37-42和46-47中任一项所述的用途，其中所述药物不是用于肌内施用。
53.根据权利要求26-32、37-42和46-47中任一项所述的用途，其中所述动物为人。
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