CN102697809A - 一种体外抗小鹅瘟转移因子的制备方法 - Google Patents
一种体外抗小鹅瘟转移因子的制备方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN102697809A CN102697809A CN2012101363041A CN201210136304A CN102697809A CN 102697809 A CN102697809 A CN 102697809A CN 2012101363041 A CN2012101363041 A CN 2012101363041A CN 201210136304 A CN201210136304 A CN 201210136304A CN 102697809 A CN102697809 A CN 102697809A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- virus
- gosling plague
- lymphocyte
- monolayer
- preparation
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Classifications
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
- Y02A50/00—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
- Y02A50/30—Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change
Landscapes
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
本发明公开一种体外抗小鹅瘟病毒转移因子的制备方法，利用体外淋巴细胞培养方式，经过小鹅瘟病毒的诱导制备抗小鹅瘟转移因子。本发明是以鹅脾脏或外周血液为基础原料，制备单层淋巴细胞，经植物血凝素和小鹅瘟病毒诱导培养单层淋巴细胞，从而促进体外产生大量抗小鹅瘟病毒特异转移因子。该转移因子能够有效的抑制抗小鹅瘟病毒,使正常的机体免受抗小鹅瘟疾病的感染，起到根本的预防作用,提高机体的免疫力。本发明方法具有简单、易操作等特点。
Description
技术领域
本发明涉及一种体外抗小鹅瘟转移因子的制备方法，属于免疫学领域。
背景技术
小鹅瘟是由小鹅瘟病毒（GPV）引起的雏鹅和雏番鸭一种急性或亚急性的败血症，小肠发生急性卡他性或纤维素坏死性炎症，主要侵害4-20日龄雏鹅，传染快、发病率与死亡率都高，给养殖业带来重大损失。本病是1956年由我国方定一在扬州发现，1965年来，欧洲很多国家报道有本病的存在。
转移因子（TF，Transfer Factor）又称传输因子，可以作为细胞免疫促进剂，是T淋巴细胞释放的一种能够转移致敏信息的低分子量多肽-核苷酸复合物，这种物质将供体的某种特定的细胞免疫功能特异地转移给受体正常的淋巴细胞，参与机体的免疫反应，提高受体的细胞免疫功能；同时促进B淋巴细胞分泌作用，能够诱导免疫细胞释放干扰素和白介素，从而增强受体的抵抗力，这种转移因子分子量小、无毒、活性强、无抗原性、不起过敏反应等优点，对于治疗动物病毒性疾病、细胞免疫减弱或缺陷病以及恶性肿瘤、真菌性疾病时，可以起辅助治疗作用。
目前已经有一些抗小鹅瘟的药品和制剂，但由于现有的药品制剂针对性不强，疗效有限，而且治疗性的制剂多是在发病之后才应用的，不能起到根本的治疗作用。
目前已报道的转移因子的提取方法大多关于非特异性转移因子的制备方法。
发明内容
本发明的目的是提供一种体外抗小鹅瘟转移因子的制备方法。
本发明所采用的技术方案如下：一种体外抗小鹅瘟转移因子的制备方法，以鸡脾脏或
外周血液为基础原料，制备单层淋巴细胞，经植物血凝素（Phytohemagglutinin，PHA）和鸭肝炎病毒诱导培养单层淋巴细胞，从而促进体外产生大量抗小鹅瘟病毒特异转移因子，具体步骤如下：
1）淋巴细胞的制备：首先选择健康鸡，在无菌的条件下采取鸡脾脏或抗凝血，制成单层淋巴细胞；
2）淋巴细胞的培养：单层淋巴细胞进行传代培养，以单层形式传代，备用；
3）病毒的接种：将小鹅瘟病毒接种于12-14日龄鹅胚的绒尿腔中，37℃培养72-120h增殖病毒，将尿囊液收集，然后经过超声波破碎处理后离心，留沉淀，根据病毒的粒子大小利用密度梯度高速离心，得到较为纯病毒；
4）经过植物血凝素和小鹅瘟病毒诱导培养单层淋巴细胞，即得抗小鹅瘟病毒转移因子。
步骤1）所述鸡脾细胞制备过程中胰酶浓度要求0.2-0.25%，pH为7.2-7.5，用量为组织体积量的6-8倍。
步骤4）所述促进鸡脾脏细胞或血淋巴细胞分化增殖的植物凝血素使用浓度为60-180mg/L。
本发明是关于小鹅瘟病毒特异性转移因子的制备方法，小鹅瘟病毒不仅感染雏鹅，同样感染雏番鸭，制备生产出相应的转移因子对于预防本疾病的发生提供保障。本发明采用的体外制备方法，这样减少了生物个体因素的影响，这样在临床使用时减少了对机体不必要应激反应，同时起到应有的效应。本发明的制备方法简单、易操作、生产成本低等特点。
具体实施方式
结合具体实施例对本发明的内容作进一步的说明。
实施例1
一种体外抗小鹅瘟病毒转移因子的制备方法，本实施例是以鸡外周血液为基础原料，制备单层淋巴细胞，经植物血凝素和小鹅瘟病毒诱导培养单层淋巴细胞，从而促进体外产生大量抗小鹅瘟病毒特异转移因子，具体步骤如下：
1.抗凝血的采集：选择健康无传染病鸡，采血部位消毒，用50mL的无菌注射器，心脏采集抗凝血，加入浓度为1mg/mL的肝素钠5mL；
2.淋巴细胞分离：抗凝血与淋巴细胞分离液（购北京普利生物试剂有限公司，按使用说明操作）按1：1的比例加入消毒后的离心管中，淋巴细胞分离液加到离心管的底部，3000r/min离心15min，收集中间的白色层，然后用pH7.0的Hanks液反复清洗淋巴细胞3次，5000r/min，离心10min，收集沉淀，用含30%的犊牛血清DMEM（购买Invitrogen Corporation，按使用说明操作） 80mL充分混匀，然后分装于100mL的细胞培养瓶中，置于5% CO2，37℃恒温箱中培养，经3天的培养，淋巴细胞贴壁生长形成单层；
3.淋巴细胞的培养：单层淋巴细胞进行传代培养，首先将长成单层淋巴细胞层用0.2%的胰酶37℃短时间消化，吹打分散，加入Hanks液终止，再洗2遍，取1/3加入到干净培养瓶，5% CO2，37℃恒温培养，每天观察一次，长成单层为止；
4.病毒的接种：将小鹅瘟病毒接种于12日龄鹅胚的绒尿腔中，37℃培养72h增殖病毒，将尿囊液收集，然后经过超声波破碎处理后离心，留沉淀，根据病毒的粒子大小利用密度梯度高速离心，得到较为纯病毒；
5.诱导培养：当单层淋巴细胞长成后，更换成维持液（含5%犊牛血清DMEM），同时加入浓度为60mg/L的植物血凝素，小鹅瘟病毒（浓度为640血凝单位/mL）进行诱导培养，经过2天的诱导培养，然后将细胞瓶经过微振荡，将培养液移置于离心管中离心，收集上清液；
6.转移因子的制备：上清液利用超声波细胞破碎仪（工作状态：破碎3s停3s，300W，10 min）破碎后，离心取上清，经0.22um滤膜过滤，滤液经过截留分子量为6000道尔顿的中空纤维膜超滤，利用正向压力超滤，收集滤液再次过滤除菌，分装，即为抗小鹅瘟病毒转移因子。
实施例2
一种体外抗小鹅瘟病毒转移因子的制备方法，本实施例是以鸡外周血液为基础原料，制备单层淋巴细胞，经植物血凝素和小鹅瘟病毒诱导培养单层淋巴细胞，从而促进体外产生大量抗小鹅瘟病毒特异转移因子，具体步骤如下：
1.抗凝血的采集：选择健康无传染病鸡，采血部位消毒，用50mL的无菌注射器，心脏采集抗凝血，加入浓度为1mg/mL的肝素钠5mL；
2.淋巴细胞分离：抗凝血与淋巴细胞分离液（购北京普利生物试剂有限公司，按使用说明操作）按1：1的比例加入消毒后的离心管中，淋巴细胞分离液加到离心管的底部，2500r/min离心20min，收集中间的白色层，然后用pH7.2的Hanks液反复清洗淋巴细胞4次，4000r/min，离心10min，收集沉淀，用含30%的犊牛血清DMEM（购买Invitrogen Corporation，按使用说明操作） 80mL充分混匀，然后分装于100mL的细胞培养瓶中，置于5% CO2，37℃转瓶机中培养，经4天的培养，淋巴细胞贴壁生长形成单层；
3.淋巴细胞的培养：单层淋巴细胞进行传代培养，首先将长成单层淋巴细胞层用0.2%的胰酶37℃短时间消化2 min，吹打分散，加入Hanks液终止，再洗3遍，取1/3加入到干净培养瓶，5% CO2，37℃恒温培养，每天观察一次，长成单层为止；
4.病毒的接种：将小鹅瘟病毒接种于13日龄鹅胚的绒尿腔中，37℃培养96h增殖病毒，将尿囊液收集，然后经过超声波破碎处理后离心，留沉淀，根据病毒的粒子大小利用密度梯度高速离心，得到较为纯病毒；
5.诱导培养：当单层淋巴细胞长成后，更换成维持液（含5%犊牛血清DMEM），同时加入浓度为100mg/L的植物血凝素，小鹅瘟病毒（浓度为1280血凝单位/mL）进行诱导培养，经过4天的诱导培养，然后将细胞瓶经过微振荡，将培养液移置于离心管中离心，收集上清液；
6.转移因子的制备：上清液利用超声波细胞破碎仪（工作状态：破碎3s停3s，300W，10 min）破碎后，离心取上清，经0.22um滤膜过滤，滤液经过截留分子量为6000道尔顿的中空纤维膜超滤，利用正向压力超滤，收集滤液再次过滤除菌，分装，即为抗小鹅瘟病毒转移因子。
实施例3
一种体外制备抗小鹅瘟病毒转移因子的方法，主要包括鸡脾脏制备单层淋巴细胞、添加植物血凝素和病毒诱导等步骤，具体操作如下：
1.脾脏的采集：选取健康无传染病的鸡，在无菌条件下摘取脾脏，然后用灭菌生理盐水冲洗表面的血液及内脏表面液体，用精酒消毒表面，剔除脏器表面脂肪组织和筋膜，用无菌眼科剪和眼科镊从脾脏内部取部分组织，置于30mL的烧杯中，然后将其剪碎成直径小于0.1cm的块，再用pH 7.2的Hanks液清洗3次碎组织中的血液及杂质，尽可能保证组织干净；
2.脾细胞制备：上述碎组织中加入6倍量的pH为7.2、浓度0.2%的胰酶液，放入37℃的水浴锅中消化20min ，每5min摇动一次，以便组织充分消化，直到组织变成透明，周边发毛为止，说明消化完全，可以取出烧杯，吸取胰液，加入预热维持液pH 7.2的Hanks液，用吸管吹打100次充分使组织分散，然后经过滤留取滤液；
3.淋巴细胞的培养：采用血球计数板进行计数，取滤液10uL，稀释100倍，然后显微镜下观察，与血细胞计数规则一样，确定稀释倍数；将用DMEM（购买Invitrogen Corporation，按使用说明操作）液稀释后的滤液分装于细胞培养瓶中，培养条件：5% CO2、37℃恒温箱上培养，每天观察两次，在显微镜下观察是否形成单层细胞，确定传代培养；
4.病毒的接种：将小鹅瘟病毒接种于14日龄鹅胚的绒尿腔中，37℃培养120h增殖病毒，将尿囊液收集，然后经过超声波破碎处理后离心，留沉淀，根据病毒的粒子大小利用密度梯度高速离心，得到较为纯病毒；
5.诱导培养：传代培养成单层淋巴细胞后，更换营养液为维持液，同时加入浓度为140mg/L植物血凝素和小鹅瘟病毒（浓度为1280血凝单位/mL），进行2天的诱导培养；
6.转移因子的制备：利用超声波细胞破碎仪（工作状态：破碎3s停3s，300W，10 min）破碎后，离心取上清，过滤，再经过截留分子量为6000道尔顿的中空纤维膜超滤，利用正向压力超滤，收集滤液再次过滤除菌，分装，即为抗小鹅瘟病毒转移因子。
实施例4
一种体外制备抗小鹅瘟病毒转移因子的方法，主要包括鸡脾脏制备单层淋巴细胞、添加植物血凝素和病毒诱导等步骤，具体操作如下：
1.脾脏的采集：选取健康无传染病的鸡，在无菌条件下摘取脾脏，然后用灭菌生理盐水冲洗表面的血液及内脏表面液体，用精酒消毒表面，剔除脏器表面脂肪组织和筋膜，用无菌眼科剪和眼科镊从脾脏内部取部分组织，置于30mL的烧杯中，然后将其剪碎成直径小于0.1cm的块，再用pH为7.0的Hanks液清洗3次碎组织中的血液及杂质，尽可能保证组织干净；
2.脾细胞制备：上述碎组织中加入8倍量的pH为7.6、浓度0.25%的胰酶液，放入37℃的水浴锅中消化30min ，每5 min摇动一次，以便组织充分消化，直到组织变成透明，周边发毛为止，说明消化完全，可以取出烧杯，吸取胰液，加入预热的维持液pH为7.0的Hanks液，用吸管吹打60次充分使组织分散，然后经过滤留取滤液；
3.淋巴细胞的培养：采用血球计数板进行计数，取滤液10uL，稀释100倍，然后显微镜下观察，与血细胞计数规则一样，确定稀释倍数；将用DMEM（购买Invitrogen Corporation，按使用说明操作）液稀释后的滤液分装于细胞培养瓶或转瓶中，培养条件：5% CO2、37℃恒温箱上培养，每天观察两次，在显微镜下观察是否形成单层细胞，确定传代培养；
4.病毒的接种：将小鹅瘟病毒接种于13日龄鹅胚的绒尿腔中，37℃培养100h增殖病毒，将尿囊液收集，然后经过超声波破碎处理后离心，留沉淀，根据病毒的粒子大小利用密度梯度高速离心，得到较为纯病毒；
5.诱导培养：传代培养成单层淋巴细胞后，更换营养液为维持液，同时加入浓度为180mg/L植物血凝素和小鹅瘟病毒（浓度为1280血凝单位/mL），进行1天的诱导培养；
6.转移因子的制备：利用超声波细胞破碎仪（工作状态：破碎3s停3s， 400W，10 min）破碎后，离心取上清，过滤，再经过截留分子量为6000道尔顿的中空纤维膜超滤，利用正向压力超滤，收集滤液再次过滤除菌，分装，即为抗小鹅瘟病毒转移因子。
实验例1：动物保护试验
取300只12日龄健康雏鹅，随机分成对照、试验、空白三组，每组100只，在新环境中适应三天，自由采食，攻毒剂量为1.0??108CFU/只，攻毒后第三天试验组开始接种抗小鹅瘟转移因子，每只肌注0.2ml/只，每天一次，对照组注射生理盐，空白全程生理盐水，观察临床症状和死亡率作为指标反应本品的临床应用效果。结果显示：对照组发病率100%和死亡率100%，空白组没有变化，试验组发病率30%，而死亡率2%。
实验例2：动物安全试验
取健康小白鼠150只，随机分成空白、注射组、口服三组，每组50只，空白口服和注射蒸馏水2 ml/只，注射组注射本品5 ml/只，口服组灌服本品5 ml/只，观察小白鼠的变化。结果显示三组都无异常变化。说明本品安全，无不良反应。
实验例3：皮肤刺激性试验
取30只小白兔，分成对照、皮下注射、皮内注射2组，采用脱毛剂对家兔脊柱两侧被毛脱去，保证皮肤的完整性，然后注射本品1 ml/只，对照组注射生理盐水，分成单次给药、多次给药观察皮肤的变化。结果显示，注射生理盐水的10只中，有6只发生红肿，一天消肿，试验组中各有4只发生，12小时内全部消肿。
实验例4：本实验例采用各种常规方法对发明的抗小鹅瘟转移因子的检测：
1、多肽含量的测定：用Folin-酚法或分光光度法测定多肽，以鹅外周血液为基础原料多肽含量0.51g/L，以鸭脾脏为原料制备的转移因子多肽含量0.40g/L。
2、蛋白质的测定：采用20%磺基水杨酸方法，提取液没有发生浑浊和沉淀现象，呈阴性，不含蛋白质。
3、无菌检测：根据《中华人民共和国兽药典2011版》进行检测，没有细菌生长。
4、核糖含量测定：利用分光光度法测定，以鸭外周血液为基础原料核糖含量0.39g/L，以鸭脾脏为原料制备的转移因子核糖含量0.47g/L。
5、外观及pH值测定：黄色澄明液体，酸度值为7.0-7.3之值。
通过以上实验例，我们可以得到本发明所提取的抗小鹅瘟转移因子是安全高效的抑制小鹅瘟病毒，提取得到的天然纯生物活性物质对禽类有预防疾病发生的作用，提高机体的免疫力。本品的体外制备方法是可行的，这种发明方法不仅操作简便，减小工作强度，应在临床上广泛推广。
Claims (3)
1.一种体外抗小鹅瘟病毒转移因子的制备方法，其特征在于：以鸡脾脏或外周血液为基
础原料，制备单层淋巴细胞，经植物血凝素和抗小鹅瘟病毒诱导培养单层淋巴细胞，从而促进体外产生大量抗小鹅瘟病毒特异转移因子，具体步骤如下：
1）淋巴细胞的制备：首先选择健康鸡，在无菌的条件下采取鸡脾脏或抗凝血，制成单层淋巴细胞；
2）淋巴细胞的培养：单层淋巴细胞进行传代培养，以单层形式传代，备用；
3）病毒的接种：将小鹅瘟病毒接种于12-14日龄鹅胚的绒尿腔中，37℃培养72-120h增殖病毒，将尿囊液收集，然后经过超声波破碎处理后离心，留沉淀，根据病毒的粒子大小利用密度梯度高速离心，得到较为纯病毒；
4）经过植物血凝素和小鹅瘟病毒诱导培养单层淋巴细胞，即得抗小鹅瘟病毒转移因子。
2.根据权利要求1中所述的一种体外抗小鹅瘟病毒转移因子的制备方法，其特征是：步骤1）所述鸡脾细胞制备过程中胰酶浓度要求0.2-0.25%，pH为7.2-7.5，用量为组织体积量的6-8倍。
3.根据权利要求1中所述的一种体外抗小鹅瘟病毒转移因子的制备方法，其特征是：步骤4）所述促进鸡脾脏细胞或血淋巴细胞分化增殖的植物凝血素使用浓度为60-180mg/L。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CN2012101363041A CN102697809A (zh) | 2012-05-04 | 2012-05-04 | 一种体外抗小鹅瘟转移因子的制备方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CN2012101363041A CN102697809A (zh) | 2012-05-04 | 2012-05-04 | 一种体外抗小鹅瘟转移因子的制备方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CN102697809A true CN102697809A (zh) | 2012-10-03 |
Family
ID=46891056
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CN2012101363041A Pending CN102697809A (zh) | 2012-05-04 | 2012-05-04 | 一种体外抗小鹅瘟转移因子的制备方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CN (1) | CN102697809A (zh) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN114853870A (zh) * | 2022-04-29 | 2022-08-05 | 商丘美兰生物工程有限公司 | 一种羊外周血淋巴细胞转移因子溶液的制备方法及注射液 |
Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN101757027A (zh) * | 2008-10-21 | 2010-06-30 | 天津生机集团股份有限公司 | 一种体外制备抗鸡传染性支气管炎病毒特异性转移因子的制备方法 |
| CN101972473A (zh) * | 2010-10-22 | 2011-02-16 | 扬州威克生物工程有限公司 | 小鹅瘟活疫苗的制备方法及其制备的活疫苗 |
-
2012
- 2012-05-04 CN CN2012101363041A patent/CN102697809A/zh active Pending
Patent Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN101757027A (zh) * | 2008-10-21 | 2010-06-30 | 天津生机集团股份有限公司 | 一种体外制备抗鸡传染性支气管炎病毒特异性转移因子的制备方法 |
| CN101972473A (zh) * | 2010-10-22 | 2011-02-16 | 扬州威克生物工程有限公司 | 小鹅瘟活疫苗的制备方法及其制备的活疫苗 |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN114853870A (zh) * | 2022-04-29 | 2022-08-05 | 商丘美兰生物工程有限公司 | 一种羊外周血淋巴细胞转移因子溶液的制备方法及注射液 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| CN106109496B (zh) | 人脐带间充质干细胞提取物冻干粉及制备方法 | |
| CN103585626B (zh) | 一种鸡新城疫、法氏囊病二联复合灭活疫苗的制备方法 | |
| CN103495166B (zh) | 一种猪繁殖与呼吸综合征复合活疫苗的制备方法 | |
| CN102732482B (zh) | 骨髓来源的巨噬细胞的体外诱导培养方法 | |
| CN108330108A (zh) | 鸭腺病毒3型灭活疫苗ch-gd-12-2014株 | |
| CN101057864A (zh) | 抗流感病毒转移因子的制备工艺 | |
| CN101475626A (zh) | 一种从猪脾脏中提取转移因子的方法 | |
| CN102805864A (zh) | 鸡新城疫和h9n2亚型禽流感二联灭活疫苗及其制备方法 | |
| CN101757027A (zh) | 一种体外制备抗鸡传染性支气管炎病毒特异性转移因子的制备方法 | |
| CN109207436A (zh) | 一株i群4型禽腺病毒毒株及其应用 | |
| CN104352521B (zh) | 制备小牛脾提取物的方法及在抗肿瘤和免疫调节中的应用 | |
| CN102697808B (zh) | 一种体外抗鸭病毒性肝炎转移因子的制备方法 | |
| CN103436555A (zh) | 携带miR-122脂肪间充质干细胞的构建方法及其应用 | |
| CN101684140A (zh) | 抗禽流感病毒、新城疫病毒、鸡法氏囊病毒特异性转移因子与抗菌肽的制备方法 | |
| CN102228685A (zh) | 中国大鲵虹彩病毒细胞灭活疫苗的制备及其使用方法 | |
| CN100586454C (zh) | 一种禽用中药组合物及其制备方法和应用 | |
| CN102697809A (zh) | 一种体外抗小鹅瘟转移因子的制备方法 | |
| CN101293913A (zh) | 一种抗鸡传染性支气管炎病毒转移因子的制备方法 | |
| CN101759765A (zh) | 一种体外制备抗鸡法氏囊病毒特异性转移因子的制备方法 | |
| CN104873971A (zh) | 一种猪瘟脾淋源活疫苗用稀释液 | |
| CN104873978A (zh) | 一种猪瘟脾淋源活疫苗用冻干保护剂 | |
| CN101412987A (zh) | 体外骨髓间充质干细胞扩增方法 | |
| CN102697811A (zh) | 一种抗小鹅瘟病毒转移因子的制备方法 | |
| CN108409857A (zh) | 虹鳟抗传染性造血器官坏死病卵黄抗体的制备及其应用 | |
| CN104523751A (zh) | 一种体外制备抗小反刍兽疫病毒转移因子的方法 |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| C06 | Publication | ||
| PB01 | Publication | ||
| C10 | Entry into substantive examination | ||
| SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
| C12 | Rejection of a patent application after its publication | ||
| RJ01 | Rejection of invention patent application after publication |
Application publication date: 20121003 |