CN102424825A - 榛子叶片和花芽总rna提取方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种从植物组织中提取总RNA的方法。本发明所提供的方法包括如下步骤:1)将植物组织与PVP和维生素C混合后,再加入液氮研磨成粉末;所述植物组织、所述PVP和所述维生素C的配比为0.2g∶0.01g∶0.01g;2)将步骤1)得到的粉末加入到55-65℃的提取液中,55-65℃保温10min,得到样品混合液;3)对步骤2)得到的样品混合液进行RNA的抽提和RNA的沉淀,得到总RNA;所述抽提为用氯仿/异戊醇进行的抽提。所述提取液含有3%的CTAB、100mM的Tris-c1(pH8.0)、25mM的EDTA(pH8.0)、2M的NaCl、5%的β-巯基乙醇、3%的PVP、0.05%的三盐酸亚精胺等。实验证明,本发明所提供的方法能够从植物组织,如榛子的幼叶、雄花芽或成熟叶片中提取得到高质量的总RNA。
Description
技术领域
本发明涉及一种从植物组织中提取总RNA的方法,特别涉及一种从富含多糖、多酚、蛋白质等次生代谢产物的植物组织中提取总RNA的方法。
背景技术
榛属于榛科(Corylaceae)榛属(Corylus L)树种,是珍贵的木本粮油资源,榛仁含脂肪、蛋白质、碳水化合物、还含有维生素C、E和多种矿物质,榛子的果壳可以作为制造活性碳的原料。树皮和果苞含单宁,可制栲胶,榛子树叶、树皮和果仁中发现有抗癌物紫杉醇,具有很高的经济价值(张宇和,柳鎏,等.中国果树志[M].北京:中国林业出版社.2005:1-248.聂洪超,孙万河,等.杂交榛子生产上存在的问题及发展建议[J].北方果树.2010,(6):46-47.)。
近年来,随着分子生物学的日益普及,国内外也逐渐开始利用分子生物学手段SSR(魏鑫,魏永祥,王颖,等.平欧杂种榛ISSR反应体系的优化与验证[J].北方园艺.2010,(4):125-128.Kahraman Gürcan,Shawn A.Mehlenbacher.Development ofmicrosatellite marker loci for European hazelnut(Corylus avellana L.)from ISSRfragments[J].Mol Breeding.2010,(26):551-559.)、RAPD(Shawn A.Mehlenbacher,Rebecca N.Brown,Eduardo R.Nouhra,Tufan Gükirmak,Nahla V.Bassil,ThomasL.Kubisiak.A genetic linkage map for hazelnut(Corylus avellana L.)based on RAPD andSSR markers[J].Genome.2006,(49):122-133.)、RT-PCR以及免疫组织定位(D.Rigola,M.E.Pè,M.Sari-Gorla.A cDNA clone from hazelnut(Corylus avellana L.)encoding a lowmolecular weight heat shock protein expressed in the reproductive structures[J].Sex PlantReprod.1998,(11):29-30.)等技术对榛子的物种遗传多样性、亲缘关系、基因克隆、蛋白定位等进行研究。而从榛子中提取高质量的总RNA是进行这些研究的基础和关键。
榛子叶片以及花芽富含多糖、多酚、蛋白质等次生代谢产物,多糖的很多理化性质与RNA相似,很难将其分开,而多酚易被氧化成褐色的醌类物质,会使RNA降解,RNase和多酚氧化酶都属于蛋白质,要获得完整的、高质量的总RNA就必须能够去除蛋白,次生代谢产物则易与RNA结合,阻碍RNA的分离。因此,去除多糖、蛋白和次生代谢物质、抑制多酚的氧化是榛子总RNA提取成败的关键。
发明内容
本发明的目的是提供一种从植物组织中提取总RNA的方法,该方法特别适用于从富含多糖、多酚、蛋白质等次生代谢产物的植物组织榛子中提取总RNA。
本发明所提供的从植物组织中提取总RNA的方法称为改良CTAB法,包括如下步骤:
1)将植物组织样品与聚乙烯吡咯烷酮和维生素C混合后,再加入液氮研磨成粉末;所述植物组织样品、所述聚乙烯吡咯烷酮和所述维生素C的配比为0.2g∶0.01g∶0.01g;
2)将步骤1)得到的粉末加入到55-65℃的提取液中,55-65℃水浴10min,得到样品混合液;
所述提取液的溶剂为水(DEPC与水体积比为1∶1000的DEPC水),溶质为十六烷基三甲基溴化铵、Tris-Cl、乙二胺四乙酸、三盐酸亚精胺、聚乙烯咯烷酮(简写PVP,分子式(C6H9NO)n);Solarbio公司的,商品目录号是P8290,分子量:40000;纯度:>99%)、氯化钠、β-巯基乙醇;所述十六烷基三甲基溴化铵在所述提取液中的含量为每100ml所述提取液中含有3g所述十六烷基三甲基溴化铵,所述Tris-Cl的终浓度为100mM(pH8.0),所述乙二胺四乙酸的终浓度为25mM(pH8.0),所述三盐酸亚精胺在所述提取液中的含量为每100ml所述提取液中含有0.05g所述三盐酸亚精胺,所述聚乙烯吡咯烷酮在所述提取液中的含量为每100ml所述提取液中含有3g所述聚乙烯吡咯烷酮,所述氯化钠的终浓度为2M,所述β-巯基乙醇的终浓度为体积百分含量5%。由于β-巯基乙醇易降解,在配制所述提取液时,β-巯基乙醇在所述提取液使用之前(水浴之后加入样品之前加到提取液中)加入。
3)对步骤2)得到的样品混合液进行RNA的抽提和RNA的沉淀,得到总RNA;所述抽提为用氯仿/异戊醇进行的抽提;所述氯仿/异戊醇是由氯仿与异戊醇按照24∶1的体积比混合得到的混合物。
在本发明的实施例中,所述植物样品具体为按照如下方法得到的样品:将新鲜的的植物组织置于液氮中速冻后-80℃保存(抑制内源RNase的活性),得到所述植物组织样品。
所述氯仿/异戊醇在抽提体系中体积百分含量可为50%。步骤3)中所述RNA的沉淀包括用LiCl对所述RNA进行沉淀的步骤;所述LiCl在沉淀体系中的终浓度为2M。步骤3)中所述RNA的沉淀还包括用无水乙醇对所述RNA进行沉淀的步骤。
在本发明的实施例中,所述RNA的抽提和所述RNA的沉淀具体包括如下步骤:
a)向所述样品混合液中加入等体积的所述氯仿/异戊醇,混匀,于4℃12000r/min离心10min,回收上清液;
b)向步骤a)得到的上清液中加入等体积的所述氯仿/异戊醇,混匀,于4℃,12000r/min离心10min,回收上清液;
c)向步骤b)得到的上清液中加入LiCl,使其终浓度为2M,混匀后于4℃放置过夜,于4℃12000r/min离心30min,得到RNA沉淀;
d)将步骤c)所得的RNA沉淀用75%乙醇清洗,得到总RNA的粗提物;
e)将步骤d)得到的总RNA的粗提物用SSTE缓冲液溶解,加入等体积的所述氯仿/异戊醇,混匀,于4℃,12000r/min离心10min,回收上清液;所述SSTE缓冲液的溶剂为水(DEPC与水体积比为1∶1000的DEPC水),溶质为NaCl、十二烷基磺酸钠、Tris-Cl和EDTA;所述NaCl的终浓度为0.5M,所述十二烷基磺酸钠在所述SSTE缓冲液中的含量为每100ml所述SSTE缓冲液中含有0.5g所述十二烷基磺酸钠,所述Tris-Cl的终浓度为10mM(pH8.0),所述EDTA的终浓度为1mM(pH8.0)。
f)向步骤e)得到的上清液中加入2倍体积预冷的无水乙醇,混匀,于-20℃放置2h,于4℃12000r/min离心30min,得到RNA沉淀;
g)将步骤f)得到的RNA沉淀用75%乙醇洗两次,再用无水乙醇洗一次,自然干燥,溶于100μl DEPC水,得到所述总RNA。
本发明的另一个目的是提供一种从植物组织中提取总RNA的提取液。
本发明所提供的提取液的溶剂为水(DEPC与水体积比为1∶1000的DEPC水),溶质为十六烷基三甲基溴化铵、Tris-Cl、乙二胺四乙酸、三盐酸亚精胺、聚乙烯吡咯烷酮、氯化钠、β-巯基乙醇;所述十六烷基三甲基溴化铵在所述提取液中的含量为每100ml所述提取液中含有3g所述十六烷基三甲基溴化铵,所述Tris-Cl的终浓度为100mM(pH8.0),所述乙二胺四乙酸的终浓度为25mM(pH8.0),所述三盐酸亚精胺在所述提取液中的含量为每100ml所述提取液中含有0.05g所述三盐酸亚精胺,所述聚乙烯吡咯烷酮在所述提取液中的含量为每100ml所述提取液中含有3g所述聚乙烯吡咯烷酮,所述氯化钠的终浓度为2M,所述β-巯基乙醇的终浓度为体积百分含量5%。由于β-巯基乙醇易降解,在配制所述提取液时,β-巯基乙醇在所述提取液使用之前加入。
所述植物组织可为富含多糖、多酚、蛋白质等次生代谢产物的植物组织。在本发明的实施例中,所述植物组织具体为榛子组织,如榛子的幼叶、雄花芽或成熟叶片。
本发明所提供的改良CTAB法,提取液中3%(w/v)的CTAB可以使蛋白质变性凝聚,进一步用氯仿抽提去除蛋白质;提取液中β-巯基乙醇、PVP的浓度分别加大至5%(v/v)、3%(w/v),还加入了0.05%(w/v)三盐酸亚精胺,这抑制了酚类的氧化,并去除未氧化的酚类化合物;提取液中用了高浓度的NaCl,沉淀步骤使用了高浓度的LiCl将部分多糖留在上清液中,通过氯仿抽提可以除去一些多糖。这些试剂增强了榛子植物组织的裂解能力,提供了还原条件,使RNase活性抑制和变性的物质强力抑制了多酚的氧化,在一定程度上去除蛋白、多糖的效果显然非常好,此法提到的总RNA产量也比较高。
实验证明,与CTAB法和改良SDS法相比,本发明所提供的改良CTAB法更适合榛子总RNA的提取,所获得的榛子叶片和雄花芽总RNA完整性更好,检查得出纯度和产量更高以及蛋白、多糖和酚类物质去除也更加彻底。所获得的总RNA能够满足后续试验的需求,是一种比较理想的榛子幼叶和雄花芽总RNA提取方法,随着榛子叶片不断成熟,各种水解酶大量积累,多酚和多糖的含量也随之增加,因此榛子成熟叶片总RNA的提取难度更大,成熟叶片的效果较嫩叶和雄花芽稍差一些,但提取效果仍明显优于CTAB法和改良SDS法。
附图说明
图1为榛子幼叶总RNA样品的电泳结果。其中,A为改良CTAB法提取结果(泳道1-3为3个重复);B为CTAB法提取结果(泳道1-2为2个重复);C为改良SDS法提取结果(泳道1-2为2个重复)。
图2为榛子雄花芽总RNA样品的电泳结果。其中,A为改良CTAB法提取结果(泳道1-3为3个重复);B为CTAB法提取结果;C为改良SDS法提取结果(泳道1-2为2个重复)。
图3为榛子成熟叶片总RNA样品的电泳结果。其中,A为改良CTAB法提取结果(泳道1-2;B为CTAB法提取结果(泳道3-5为3个重复);C为改良SDS法提取结果(泳道1-2为2个重复)。
具体实施方式
下述实施例中所使用的实验方法如无特殊说明,均为常规方法。
下述实施例中所用的材料、试剂等,如无特殊说明,均可从商业途径得到。
溶液的配制:
(1)DEPC水:1000ml超纯水中加入1000μl焦碳酸二乙酯(DEPC),摇匀,通风橱中过夜,第二天早上摇匀,121℃湿热灭菌1h,摇匀,冷却后备用,以下用到的所有溶液都需要用0.1%(v/v)DEPC水配制。
(2)1M Tris-Cl(pH=8.0)500ml:称60.5g Tris-Cl溶于约400ml DEPC水中,浓盐酸调节pH至8.0,定容至500ml。
(3)0.5M EDTA(pH=8.0)500ml:称取93.05g Na2EDTA·2H2O和10gNaOH,溶于350ml DEPC水,溶解后,用5M的NaOH(DEPC水溶液)调节pH至8.0,定容至500ml。
(4)5M NaCl:146g NaCl溶于500ml DEPC水中。
(5)10%SDS 500ml:50gSDS,溶解于500ml DEPC水中。
(6)10M LiCl 200ml:84.8g无水氯化锂溶于200ml DEPC水中。
(7)改良CTAB的提取液:终浓度为3%(w/v)的十六烷基三甲基溴化铵(CTAB)、终浓度为100mM Tris-Cl(pH8.0)、终浓度为25mM的乙二胺四乙酸(EDTA)(pH8.0)、终浓度为2M的NaCl、终浓度为3%(w/v)的聚乙烯吡咯烷酮(PVP)(Solarbio公司,商品目录号是P8290,分子量:40000;纯度:>99%)、终浓度为0.05%(w/v)的三盐酸亚精胺、终浓度为5%(体积百分含量)的β-巯基乙醇(易降解,使用时现加)。
(8)SSTE缓冲液:终浓度为0.5M的NaCl、终浓度为0.5%(w/v)的十二烷基磺酸钠(SDS)、终浓度为10mM的Tris-Cl(pH=8.0)、终浓度为1mM的EDTA(pH=8.0)。
(9)10×RNA上样缓冲液(10×loading buffer):终浓度为60%(体积百分含量)的甘油、终浓度为0.25%(w/v)的溴酚蓝、终浓度为10mM的EDTA(pH=8.0)、终浓度为100mM的Tris-Cl(pH=8.0),使用时用DEPC处理水稀释成1×loading buffer。
(10)10×TBE:称取108g Tris,7.44g Na2EDTA·2H2O,55g硼酸,溶于800ml的DEPC水中,搅匀;用NaOH调节pH8.3,DEPC处理水定容至1L,室温保存。使用时稀释成1×TBE。
塑料制品和玻璃器皿的灭菌处理:塑料制品和玻璃器皿都121℃,高压灭菌60min,最好使用进口的枪头及离心管;电泳槽、制胶槽以及梳子用0.5M EDTA和5M NaOH(0.5M EDTA 500ul、5M NaOH 5ml、DEPC水定容至250ml)浸泡2小时,75%乙醇冲洗,晾干备用;用75%的乙醇拭擦移液枪内部和外部。
24×1.5/2ml离心管使用离心机型号:Sorval Primo-R台式高速冷冻离心机;6×50ml离心管使用离心机型号:德国heraeus Bifuge Stratos全能台式高速离心机。
实施例1、从榛子幼叶提取总RNA样品及其鉴定
一、榛子幼叶总RNA样品的提取
试验地设在位于北京市西郊鹜峰林场实验基地。2010年春季3月底,采集平欧杂交榛达维(育种代号84-254)(张宇和,柳鎏,等.中国果树志板栗榛子卷[M].北京:中国林业出版社.2005:1-248.)带芽枝条带回室内得到水培幼叶。
下面将详述如何利用改良CTAB法从榛子幼叶提取较高质量的总RNA样品,具体操作步骤如下:
1)采样:2010年3月底采集榛子(平欧杂交榛达维,育种代号84-254)带芽枝条室内水培,一周后采集水培抽出的幼叶,将其经液氮速冻后立即置于-80℃冰箱中保存(液氮速冻的目的是抑制内源RNase的活性),得到样品1;
2)向50ml无菌离心管中加入10ml改良CTAB提取液,于65℃水浴锅中预热约10min;
3)取约0.2g步骤1)制备的样品1,置于预冷的研钵中,加入少量聚乙烯吡咯烷酮(PVP)和维生素C(PVP和维生素C各0.01g),用液氮充分研磨成粉,得到样品2;
4)迅速将步骤3)研好的粉末(样品2)倒入步骤2)预热的改良CTAB提取液中,65℃水浴10min,期间振荡1次,使其混匀,得到样品混合液3;
5)向步骤4)得到的样品混合液3中加入等体积的氯仿异戊醇(氯仿/异戊醇体积比为24∶1),混匀,于4℃12000r/min离心10min,回收上清液;
6)向步骤5)得到的上清液中加入等体积氯仿与异戊醇的体积比为24∶1的氯仿/异戊醇,混匀,于4℃12000r/min离心10min,回收上清液;
7)向步骤6)得到的上清液中加入1/4体积的10M的LiCl,混匀后于4℃放置过夜,于4℃12000r/min离心30min,得到RNA沉淀;
8)将步骤7)所得的RNA沉淀用预冷的75%乙醇清洗,得到总RNA的粗提物;
9)将步骤8)得到的总RNA的粗提物用SSTE缓冲液(如果用的是1.2ml的离心管,加500ul即可;一般是加所用离心管的2/5体积即可)溶解,加入等体积的氯仿与异戊醇的体积比为24∶1的氯仿/异戊醇混匀,于4℃12000r/min离心10min,回收上清液;
10)向步骤9)得到的上清液中加入2倍体积预冷的无水乙醇,混匀,于-20℃放置2h,于4℃12000r/min离心30min,得到RNA沉淀;
11)将步骤10)得到的RNA沉淀用预冷的75%乙醇洗两次,再用预冷的无水乙醇洗一次,自然干燥5min(时间不宜太长,否则RNA不易溶解),溶于100μl DEPC水,混匀,于-80℃保存备用(可长期保存于2倍无水乙醇中),总RNA样品不易降解。
同时以CTAB法和改良SDS法作为对照。其中,所述CTAB法所用提取液配方为:终浓度为2%(w/v)的CTAB;终浓度为100mM的Tris-Cl;终浓度为25mM的EDTA;终浓度为2%(w/v)的PVP;终浓度为0.05%(w/v)的三盐酸亚精胺;终浓度为2%(v/v)的β-巯基乙醇。具体的提取步骤如下:(1)1.5ml无菌离心管中加入600μl提取液于65℃水浴锅中预热15min;(2)预冷研钵中放入0.1g植物材料,加少量聚乙烯吡咯烷酮(PVP)和维生素C(PVP和维生素C各0.01g),用液氮将0.1g叶片研磨成细末;(3)迅粉速将研后的细末装到预热的提取液中,65℃水浴10min;(4)加等量体积的氯仿异戊醇(24∶1),振荡10min;(5)4℃,12000r/min离心15min;(6)取上清,加等量的氯仿异戊醇重复抽提,4℃,12000r/min离心10min;(7)收集上清液,加1/4体积10M的LiCl,混匀,4℃过夜;(8)4℃,12000r/min离心30min;(9)弃上清,DEPC水溶解沉淀,加入等体积氯仿异戊醇抽提;(10)4℃,12000r/min离心15min;(11)收集上清,加2倍体积无水乙醇于-20℃或冰上中放置2h,沉淀总RNA;(12)4℃12000r/min离心30min;(13)弃上清75%乙醇洗2次,无水乙醇冲洗一遍,超净台自然干燥15min;(14)加入50μl无RNAse的水溶解沉淀,-80℃保存备用。
改良SDS法提取液的配方为:终浓度为50mM的Tris-HCl(pH8.0),终浓度为0.2M的NaCl;终浓度为25mM的EDTA;终浓度为4%(W/V)的SDS;终浓度为3%(W/V)的PVP;终浓度为15%(v/v)的乙醇;终浓度为5%(v/v)的β-巯基乙醇。具体的提取步骤如下:(1)取0.1g叶片于研钵中,加少量聚乙烯吡咯烷酮(PVP)和维生素C(PVP和维生素C各0.01g),加入液氮研磨成粉末状;(2)转入加有1ml 65℃预热的提取液中;(3)加入1ml酚∶氯仿∶异戊醇(25∶24∶1),涡旋振荡混匀;(4)4℃12000r/min离心15min;(5)取上清,加入等体积的氯仿∶异戊醇(24∶1),充分混匀;(6)4℃12000r/min离心15min;(7)取上清,加入1/4体积10M的氯化锂,-20℃放置2-3h或4℃过夜;(8)4℃12000r/min离心30min;(9)用75%乙醇清洗,DEPC水溶解沉淀,加入等体积氯仿异戊醇(24∶1)抽提;(10)4℃12000r/min离心15min;(11)收集上清,加1/10体积3M NaAc和2.5倍体积的无水乙醇,-20℃放置2-3h;(12)4℃12000r/min离心30min,弃上清,75%乙醇洗沉淀2次;(13)于通风橱中干燥后溶于50μl无RNAse的水中,-80℃保存备用。
二、榛子幼叶总RNA样品的鉴定
利用1%琼脂糖凝胶电泳检测总RNA提取好坏,主要依据28SrRNA与18SrRNA电泳谱带的特征。如果带型清晰且亮,28SrRNA亮度高于18SrRNA,且约是18SrRNA的2倍,则表明所提取到的总RNA量大、质量高、未降解。利用分光光度计检测所提取的总RNA样品的浓度和纯度,若OD260/280在1.8-2.0之间,说明所提的总RNA较纯,无其他杂质的污染。
1、榛子幼叶总RNA完整性的检测
取1μl上述步骤一提取的总RNA样品,进行1%琼脂糖凝胶1×TBE电泳检测。由图1所示,本发明所提供的改良CTAB法提取的榛子幼叶总RNA样品,点样孔干净,条带清晰,无拖尾,所提到的RNA较完整,且28SrRNA亮度是18SrRNA的2倍,说明提取过程中没有降解现象发生,而且在电泳检测中看不到蛋白质和多糖污染,所提的RNA纯净。而CTAB法提取的榛子幼叶总RNA,条带也比较清晰,28SrRNA亮度与18SrRNA相当,说明28SrRNA降解明显,条带有拖尾现象,DNA污染严重,有蛋白质、多糖等杂质污染,产量也较少;改良SDS法提取的榛子幼叶总RNA,不完整,28SrRNA降解明显,条带有拖尾,DNA、蛋白质、多糖等杂质污染严重。
2、榛子幼叶总RNA浓度和纯度的检测
上述步骤1以1%琼脂糖凝胶1×TBE电泳检测榛子幼叶总RNA完整性,其结果表明改良CTAB法提取榛子幼叶总RNA样品的效果比较好。以下为利用分光光度计检测上述步骤一改良CTAB法和改良SDS法各自提取的榛子幼叶总RNA样品的OD值,进一步比较这两种方法提取的产率和质量。
结果如表1所示,改良CTAB法和改良SDS法所提取的幼叶的OD260/280分别为2.04和1.80,在1.8-2.0之间,说明这两种方法方法所提取的RNA纯度较高,DNA、蛋白质和多糖污染少。但是,在RNA产率上看,改良CTAB法(每克榛子幼叶提取241.57μg总RNA)远比改良SDS法(每克榛子幼叶提取111.8μg总RNA)高。
本实施例的结果表明,综合上述三种方法,改良CTAB法、CTAB法和改良SDS法都能从榛子幼叶中提取到总RNA,相比较而言,改良CTAB法所提的总RNA较完整,条带清晰,得到了较高质量的RNA;同时改良CTAB法所提取的总RNA样品的产率也较高(每克榛子幼叶提取241.57μg总RNA),这说明本发明所提供的改良CTAB法适合于榛子幼叶总RNA的提取。
实施例2、从榛子雄花芽提取总RNA样品及其鉴定
一、榛子雄花芽总RNA样品的提取
试验地设在位于北京市西郊鹜峰林场实验基地。2010年8月,采集平欧杂交榛达维(育种代号84-254)(张宇和,柳鎏,等.中国果树志板栗榛子卷[M].北京:中国林业出版社.2005:1-248.)雄花芽。
下面将详述如何利用改良CTAB法从榛子雄花芽提取较高质量的总RNA样品,具体操作步骤如下:
1)采样:2010年7月初采集榛子(平欧杂交榛达维,育种代号84-254)雄花芽,将其经液氮速冻后立即置于-80℃冰箱中保存(抑制内源RNase的活性),得到样品1;
2)向50ml无菌离心管中加入10ml改良CTAB提取液,于65℃水浴锅中预热约10min;
3)取约0.2g步骤1)制备的样品1,置于预冷的研钵中,加入少量聚乙烯吡咯烷酮(PVP)和维生素C(PVP和维生素C各0.01g),用液氮充分研磨成粉,得到样品2;
4)迅速将步骤3)研好的粉末(样品2)倒入步骤2)预热的改良CTAB提取液中,65℃水浴10min,期间振荡1次,使其混匀,得到样品混合液3;
5)向步骤4)得到的样品混合液3中加入等体积的氯仿与异戊醇的体积比为24∶1的氯仿/异戊醇,混匀,于4℃12000r/min离心10min,回收上清液;
6)向步骤5)得到的上清液中加入等体积氯仿与异戊醇的体积比为24∶1的氯仿/异戊醇,混匀,于4℃12000r/min离心10min,回收上清液;
7)向步骤6)得到的上清液中加入1/4体积的10M的LiCl,混匀后于4℃放置过夜,于4℃12000r/min离心30min,得到RNA沉淀;
8)将步骤7)所得的RNA沉淀用预冷的75%乙醇清洗,得到总RNA的粗提物;
9)将步骤8)得到的总RNA的粗提物用SSTE缓冲液(如果用的是1.2ml的离心管,加500ul即可;一般是加所用离心管的2/5体积即可)溶解,加入等体积的氯仿与异戊醇(氯仿/异戊醇体积比为24∶1),混匀,于4℃12000r/min离心10min,回收上清液;
10)向步骤9)得到的上清液中加入2倍体积预冷的无水乙醇,混匀,于-20℃放置2h,于4℃12000r/min离心30min,得到RNA沉淀;
11)将步骤10)得到的RNA沉淀用预冷的75%乙醇洗两次,再用预冷的无水乙醇洗一次,自然干燥5min(时间不宜太长,否则RNA不易溶解),溶于100μl DEPC水,混匀,于-80℃保存备用(可长期保存于2倍无水乙醇中),总RNA样品不易降解。
同时以CTAB法和改良SDS法作为对照(具体方法同实施例1)。
二、榛子雄花芽总RNA样品的鉴定
利用1%琼脂糖凝胶电泳检测总RNA提取好坏,主要依据28SrRNA与18SrRNA电泳谱带的特征。如果带型清晰且亮,28SrRNA亮度高于18SrRNA,且约是18SrRNA的2倍,则表明所提取到的总RNA量大、质量高、未降解。利用分光光度计检测所提取的总RNA样品的浓度和纯度,若OD260/280在1.8-2.0之间,说明所提的总RNA较纯,无其他杂质的污染。
1、榛子雄花芽总RNA完整性的检测
取1μl上述步骤一提取的总RNA样品,进行1%琼脂糖凝胶1×TBE电泳检测。由图2所示,本发明所提供的改良CTAB法提取的榛子雄花芽总RNA样品,点样孔干净,条带清晰,无拖尾,所提到的RNA较完整,且28SrRNA亮度是18SrRNA的2倍,说明提取过程中没有降解现象发生,而且在电泳检测中看不到蛋白质和多糖污染,所提的RNA纯净;CTAB法提取的榛子雄花芽总RNA,条带也比较清晰,但是28SrRNA亮度与18SrRNA相当,说明28SrRNA降解明显,条带有拖尾现象,DNA污染严重,有蛋白质、多糖等杂质污染,产量也较少;改良SDS法提取的榛子雄花芽总RNA,不完整,28SrRNA降解明显,条带有拖尾,DNA、蛋白质、多糖等杂质污染严重。
2、榛子雄花芽总RNA浓度和纯度的检测
上述步骤1以1%琼脂糖凝胶1×TBE电泳检测榛子雄花芽总RNA完整性,其结果表明改良CTAB法提取榛子雄花芽总RNA样品的效果相对比较好。以下为利用分光光度计检测上述步骤一改良CTAB法和改良SDS法各自提取的榛子雄花芽总RNA样品的OD值,进一步比较这两种方法提取的产率和质量。
结果如表1所示,改良CTAB法和改良SDS法所提取的雄花芽的OD260/280分别为2.01和1.08,这说明,相比改良SDS法,改良CTAB法所提取的RNA纯度较高,DNA、蛋白质和多糖污染少。同时,在RNA产率上看,改良CTAB法(每克榛子雄花芽提取199.53μg总RNA)远比改良SDS法(每克榛子雄花芽提取60.01μg总RNA)高。
本实施例的结果表明,综合上述三种方法,改良CTAB法、CTAB法和改良SDS法都能从榛子雄花芽中提取到总RNA,相比较而言,改良CTAB法所提的总RNA较完整,条带清晰,得到了较高质量的RNA;同时改良CTAB法所提取的总RNA样品的产率也较高(每克榛子雄花芽提取199.53μg总RNA),这说明本发明所提供的改良CTAB法适合于榛子雄花芽总RNA的提取。
实施例3、从榛子成熟叶片提取总RNA样品及其鉴定
一、榛子成熟叶片总RNA样品的提取
试验地设在位于北京市西郊鹜峰林场实验基地。2010年8月,采集平欧杂交榛达维(育种代号84-254)(张宇和,柳鎏,等.中国果树志板栗榛子卷[M].北京:中国林业出版社.2005:1-248.)的成熟叶片。
下面将详述如何利用改良CTAB法从榛子成熟叶片提取较高质量的总RNA样品,具体操作步骤如下:
1)采样:采集榛子(平欧杂交榛达维,育种代号84-254)的成熟叶片,将其经液氮速冻后立即置于-80℃冰箱中保存(抑制内源RNase的活性),得到样品1;
2)向50ml无菌离心管中加入10ml改良CTAB提取液,于65℃水浴锅中预热约10min;
3)取约0.2g步骤1)制备的样品1,置于预冷的研钵中,加入少量聚乙聚烯吡咯烷酮(PVP)和维生素C(PVP和维生素C各0.01g),用液氮充分研磨成粉,得到样品2;
4)迅速将步骤3)研好的粉末(样品2)倒入步骤2)预热的改良CTAB提取液中,65℃水浴10min,期间振荡1次,使其混匀,得到样品混合液3;
5)向步骤4)得到的样品混合液3中加入等体积的氯仿与异戊醇的体积比为24∶1的氯仿/异戊醇,混匀,于4℃12000r/min离心10min,回收上清液;
6)向步骤5)得到的上清液中加入等体积氯仿异戊醇(氯仿/异戊醇的体积比为24∶1),混匀,于4℃12000r/min离心10min,回收上清液;
7)向步骤6)得到的上清液中加入1/4体积的10M的LiCl,混匀后于4℃放置过夜,于4℃12000r/min离心30min,得到RNA沉淀;
8)将步骤7)所得的RNA沉淀用预冷的75%乙醇清洗,得到总RNA的粗提物;
9)将步骤8)得到的总RNA的粗提物用SSTE缓冲液(如果用的是1.2ml的离心管,加500ul即可;一般是加所用离心管的2/5体积即可)溶解,加入等体积的氯仿与异戊醇的体积比为24∶1的氯仿/异戊醇混匀,于4℃12000r/min离心10min,回收上清液;
10)向步骤9)得到的上清液中加入2倍体积预冷的无水乙醇,混匀,于-20℃放置2h,于4℃12000r/min离心30min,得到RNA沉淀;
11)将步骤10)得到的RNA沉淀用预冷的75%乙醇洗两次,再用预冷的无水乙醇洗一次,自然干燥5min(时间不宜太长,否则RNA不易溶解),溶于100μl DEPC水,混匀,于-80℃保存备用(可长期保存于2倍无水乙醇中),获得较纯的总RNA样品。
同时以CTAB法和改良SDS法作为对照(具体方法同实施例1)。
二、榛子成熟叶片总RNA样品的鉴定
利用1%琼脂糖凝胶电泳检测总RNA提取好坏,主要依据28SrRNA与18SrRNA电泳谱带的特征。如果带型清晰且亮,28SrRNA亮度高于18SrRNA,且约是18SrRNA的2倍,则表明所提取到的总RNA量大、质量高、未降解。利用分光光度计检测所提取的总RNA样品的浓度和纯度,若OD260/280在1.8-2.0之间,说明所提的总RNA较纯,无其他杂质的污染。
1、榛子成熟叶片总RNA完整性的检测
取1μl上述步骤一提取的总RNA样品,进行1%琼脂糖凝胶1×TBE电泳检测。由图3所示,本发明所提供的改良CTAB法提取的榛子成熟叶片总RNA样品,点样孔干净,条带清晰,无拖尾,所提到的RNA较完整,且28SrRNA亮度是18SrRNA的2倍,说明提取过程中没有降解现象发生,而且在电泳检测中看不到蛋白质和多糖污染,所提的RNA纯净。而CTAB法提取的榛子成熟叶片总RNA,条带也比较清晰,28SrRNA亮度与18SrRNA相当,说明28SrRNA降解明显,条带有拖尾现象,DNA污染严重,有蛋白质、多糖等杂质污染,产量也较少;改良SDS法提取的榛子成熟叶片总RNA,不完整,28SrRNA降解明显,条带有拖尾,DNA、蛋白质、多糖等杂质污染严重。
2、榛子成熟叶片总RNA浓度和纯度的检测
上述步骤1以1%琼脂糖凝胶1×TBE电泳检测榛子成熟叶片总RNA完整性,其结果表明改良CTAB法提取榛子成熟叶片总RNA样品的效果比较好。以下为利用分光光度计(紫外/可见分光光度计)检测上述步骤一改良CTAB法和改良SDS法各自提取的榛子成熟叶片总RNA样品的OD值,进一步比较这两种方法提取的产率和质量。
结果如表1所示,改良CTAB法和改良SDS法所提取的成熟叶片的OD260/280分别为2.02和1.68,这说明改良CTAB法所提取的RNA纯度较高,DNA、蛋白质和多糖污染少。同时,在RNA产率上看,改良CTAB法(每克榛子成熟叶片提取116.005μg总RNA)远比改良SDS法(每克榛子成熟叶片提取94.525μg总RNA)高。
本实施例的结果表明,综合上述三种方法,改良CTAB法、CTAB法和改良SDS法都能从榛子成熟叶片中提取到总RNA,相比较而言,改良CTAB法所提的总RNA较完整,条带清晰,得到了较高质量的RNA;同时改良CTAB法所提取的总RNA样品的产率也较高(每克榛子成熟叶片提取116.005μg总RNA),这说明本发明所提供的改良CTAB法适合于榛子成熟叶片总RNA的提取。
表1两种提取方法提取榛子总RNA紫外吸收结果
Claims (8)
1.从植物组织中提取总RNA的方法,包括如下步骤:
1)将植物组织与聚乙烯吡咯烷酮和维生素C混合后,再加入液氮研磨成粉末;所述植物组织、所述聚乙烯吡咯烷酮和所述维生素C的配比为0.2g∶0.01g∶0.01g;
2)将步骤1)得到的粉末加入到55-65℃的权利要求6所述提取液中,55-65℃保温10min,得到样品混合液;
3)对步骤2)得到的样品混合液进行RNA的抽提和RNA的沉淀,得到总RNA;所述抽提为用氯仿/异戊醇进行的抽提;所述氯仿/异戊醇是由氯仿与异戊醇按照24∶1的体积比混合得到的混合物。
2.根据权利要求1所述的方法,其特征在于:所述氯仿/异戊醇在抽提体系中体积百分含量为50%。
3.根据权利要求1所述的方法,其特征在于:步骤3)中所述RNA的沉淀包括用LiCl对所述RNA进行沉淀的步骤;所述LiCl在沉淀体系中的终浓度为2M。
4.根据权利要求1或3所述的方法,其特征在于:步骤3)中所述RNA的沉淀还包括用无水乙醇对所述RNA进行沉淀的步骤。
5.根据权利要求1-4中任一所述的方法,其特征在于:所述RNA的抽提和所述RNA的沉淀包括如下步骤:
a)向所述样品混合液中加入等体积的所述氯仿/异戊醇,混匀,于4℃12000r/min离心10min,回收上清液;
b)向步骤a)得到的上清液中加入等体积的所述氯仿/异戊醇,混匀,于4℃,12000r/min离心10min,回收上清液;
c)向步骤b)得到的上清液中加入LiCl,使其终浓度为2M,混匀后于4℃放置过夜,于4℃12000r/min离心30min,得到RNA沉淀;
d)将步骤c)所得的RNA沉淀用75%乙醇清洗,得到总RNA的粗提物;
e)将步骤d)得到的总RNA的粗提物用SSTE缓冲液溶解,加入等体积的所述氯仿/异戊醇,混匀,于4℃,12000r/min离心10min,回收上清液;
f)向步骤e)得到的上清液中加入2倍体积预冷的无水乙醇,混匀,于-20℃放置2h,于4℃,12000r/min离心30min,得到RNA沉淀;
g)将步骤f)得到的RNA沉淀用75%乙醇洗两次,再用无水乙醇洗一次,自然干燥,溶于100μl DEPC水,得到所述总RNA。
6.从植物组织中提取总RNA的提取液,其特征在于:所述提取液的溶剂为水,溶质为十六烷基三甲基溴化铵、Tris-Cl、乙二胺四乙酸、三盐酸亚精胺、聚乙烯吡咯烷酮、氯化钠、β-巯基乙醇;所述十六烷基三甲基溴化铵在所述提取液中的含量为每100ml所述提取液中含有3g所述十六烷基三甲基溴化铵,所述Tris-Cl的终浓度为100mM,所述乙二胺四乙酸的终浓度为25mM,所述三盐酸亚精胺在所述提取液中的含量为每100ml所述提取液中含有0.05g所述三盐酸亚精胺,所述聚乙烯吡咯烷酮在所述提取液中的含量为每100ml所述提取液中含有3g所述聚乙烯吡咯烷酮,所述氯化钠的终浓度为2M,所述β-巯基乙醇的终浓度为体积百分含量5%。
7.根据权利要求1-5中任一所述的方法,或权利要求6所述提取液,其特征在于:所述植物组织为榛子组织。
8.根据权利要求7所述方法或所述提取液,其特征在于:所述植物组织为榛子的幼叶、雄花芽或成熟叶片。
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