发明内容
本发明的目的之一是提供CYP2C9和VKORC1基因SNP检测液相芯片。该液相芯片可用于检测CYP2C9基因四种常见基因型CYP2C9*2、CYP2C9*3、CYP2C9*5和CYP2C9*6的野生型和突变型,以及VKORC1基因的正常基因型和G-1639A、C1173T和G3730A等位基因的变异。
一种CYP2C9和VKORC1基因SNP检测液相芯片,包括有:
(1)针对每种型别的SNP位点分别设计的野生型和突变型ASPE引物对,每种ASPE引物对由5’端的tag序列和3’端的针对目的基因SNP位点的特异性引物序列组成,所述特异性引物序列分别选自:针对CYP2C9基因的SEQ ID NO.15及SEQID NO.16、SEQ ID NO.17及SEQ ID NO.18、SEQ ID NO.19及SEQ ID NO.20、和SEQ ID NO.21及SEQ ID NO.22中的一对或多对;和/或针对VKORC1基因的SEQID NO.23及SEQ ID NO.24、SEQ ID NO.25及SEQ ID NO.26、和SEQ ID NO.27及SEQ ID NO.28中的一对或多对;所述tag序列选自SEQ ID NO.1~SEQ ID NO.14中的序列;
(2)分别包被有特异的anti-tag序列的微球,所述anti-tag序列能相应地与(1)中所选tag序列互补配对,所述anti-tag序列选自SEQ ID NO.29~SEQ ID NO.42中的序列;
(3)用于扩增具有CYP2C9*2、CYP2C9*3、CYP2C9*5和CYP2C9*6一个或多个SNP位点的CYP2C9基因目标序列的引物,和/或用于扩增具有G-1639A、C1173T和G3730A一个或多个SNP位点的VKORC1基因目标序列的引物。
优选地,所述野生型及突变型ASPE引物对选自:针对CYP2C9*2SNP位点的由SEQ ID NO.1和SEQ ID NO.15组成的序列及由SEQ ID NO.2和SEQ IDNO.16组成的序列;针对CYP2C9*3 SNP位点的由SEQ ID NO.3和SEQ ID NO.17组成的序列及由SEQ ID NO.4和SEQ ID NO.18组成的序列;针对CYP2C9*5 SNP位点的由SEQ ID NO.5和SEQ ID NO.19组成的序列及由SEQ ID NO.6和SEQ IDNO.20组成的序列;和针对CYP2C9*6SNP位点的由SEQ ID NO.7和SEQ IDNO.21组成的序列及由SEQ ID NO.8和SEQ ID NO.22组成的序列中的一对或一对以上;和/或针对VKORC1基因的G-1639A SNP位点的由SEQ ID NO.9和SEQID NO.23组成的序列及由SEQ ID NO.10和SEQ ID NO.24组成的序列;针对VKORC1基因的C1173T SNP位点的由SEQ ID NO.11和SEQ ID NO.25组成的序列及由SEQ ID NO.12和SEQ ID NO.26组成的序列;和针对VKORC1基因的G3730A SNP位点的由SEQ ID NO.13和SEQ ID NO.27组成的序列及由SEQ IDNO.14和SEQ ID NO.28组成的序列中的一对或一对以上。
优选地,所述用于扩增的引物包括:针对CYP2C9*2SNP位点的SEQ IDNO.43和SEQ ID NO.44,针对CYP2C9*6SNP位点的SEQ ID NO.45和SEQ IDNO.46,和针对CYP2C9*3/CYP2C9*5SNP位点的SEQ ID NO.47和SEQ ID NO.48中的一对或一对以上;和/或针对VKORC1基因的G-1639ASNP位点的SEQ IDNO.49和SEQ ID NO.50,针对VKORC1基因的C1173T SNP位点的SEQ ID NO.51和SEQ ID NO.52;和针对VKORC1基因的G3730A SNP位点的SEQ ID NO.53和SEQ ID NO.54中的序列一对或一对以上。
优选地,(2)中所述anti-tag序列与微球连接中间还设有间隔臂序列,所述间隔臂更优选为5-10T。
本发明的另一目的是提供CYP2C9和VKORC1基因SNP检测的特异性引物序列,该引物序列特异性强,能准确区分各种基因型,并且多位点同步检测不存在交叉反应率。
所述用于CYP2C9、VKORC1基因SNP检测的特异性引物序列,包括:针对CYP2C9*2SNP位点的野生型和突变型的SEQ ID NO.15及SEQ ID NO.16;针对CYP2C9*3SNP位点的野生型和突变型的SEQ ID NO.17及SEQ ID NO.18;针对CYP2C9*5SNP位点的野生型和突变型的SEQ ID NO.19及SEQ ID NO.20;和/或针对CYP2C9*6SNP位点的野生型和突变型的SEQ IDNO.21及SEQ IDNO.22;和/或针对VKORC1基因G-1639ASNP位点的野生型和突变型的SEQ ID NO.23及SEQ ID NO.24;针对VKORC1基因C1173T SNP位点的野生型和突变型的SEQ IDNO.25及SEQ ID NO.26;针对VKORC1基因G3730A SNP位点的野生型和突变型的SEQ ID NO.27及SEQ ID NO.28。
本发明的另一目的是提供使用上述液相芯片对CYP2C9和VKORC1基因SNP进行检测的方法。
一种使用上述液相芯片对CYP2C9和VKORC1基因SNP检测的方法,主要包括以下步骤:
(一)PCR扩增待测样品DNA;
(二)PCR反应产物用ExoSAP-IT试剂盒进行酶切处理;
(三)用所述ASPE引物进行引物延伸反应,在反应过程中掺入生物素标记的dCTP,从而使反应后的产物带上多个的生物素标记;
(四)将对应ASPE引物的包被有特异的anti-tag序列的微球与上述延伸反应后的产物进行杂交反应;
(五)杂交反应后的产物与链霉亲和素-藻红蛋白进行反应;
(六)通过荧光检测仪检测。
本发明的主要优点在于:
1.本发明所提供的检测方法与测序法的吻合率高达100%。所制备的CYP2C9和VKORC1基因SNP检测液相芯片具有非常好的信号-噪声比,并且所设计的探针以及anti-tag序列之间基本上不存在交叉反应,tag标签序列、anti-tag标签序列的选取以及tag标签序列与具体ASPE引物的结合,能够避免交叉反应,实现多个SNP位点的并行检测。
2.本发明设计的ASPE型特异性引物具有非常好的特异性,能准确区分各种型别的基因型。
3.本发明的检测方法步骤简单,七种SNPs检测可通过一步多重PCR即可完成六个具有SNP位点的目标序列的扩增,避免了反复多次PCR等复杂操作过程中存在的诸多不确定因素,因而可大大提高检测准确率,体现了精确的同时定性、定量分析特征。
4.本发明所提供的检测方法所需要的时间远远低于常用的测序技术,特别符合临床需要。
5.本发明不仅克服了传统固相芯片敏感性不高,检测结果的可重复性差的缺陷,同时对现有的液相芯片技术进行改进,使得所制备微球能适用于不同的检测项目,具有很强的拓展性。检测的荧光信号值大大提高,从而使得检测的灵敏度进一步得到提高,信噪比增强,检测结果更加准确可靠。
具体实施方式
实施例1 CYP2C9和VKORC1基因SNP检测液相芯片,主要包括有:
一、ASPE引物
针对CYP2C9的四种常见SNP位点和VKORC1基因的三种常见SNP位点分别设计特异性引物序列。ASPE引物由“Tag+特异性引物序列”组成。ASPE引物序列如下表所示:
表1 ASPE引物序列(Tag+特异性引物序列)
每条ASPE引物包括两个部分,5’端为针对相应微球上anti-tag序列的特异性tag序列,3’端为突变型或野生型特异的引物片段(如上述表1所示)。所有ASPE引物由上海生工生物工程技术服务有限公司合成。合成后的每条引物分别用10mmol/L Tris Buffer配制成100pmol/mL的贮存液。
二、anti-tag序列包被的微球
根据所设计的ASPE特异性引物片段,选择tag序列,最大限度地减少各微球的anti-tag序列之间以及tag与ASPE特异性引物片段可能形成的二级结构,选择的十四种微球编号与微球上相应的anti-tag序列如表2所示:
表2 微球编号与微球上相应的anti-tag序列
选择的十四种微球购自美国Luminex公司,将anti-tag序列包被与微球上。anti-tag序列与微球之间连接有5-10个T的间隔臂序,即在每个anti-tag序列前加上一段5-10个T的间隔臂序列,anti-tag序列由上海生工生物工程技术服务有限公司合成。将合成的anti-tag序列用灭菌ddH2O配成100nmol/ml的贮存液。所述间隔臂为用于将anti-tag与微球表面间隔开来或是将anti-tag置于亲水性环境中的序列。通过在anti-tag序列与微球之间设置适当长度的间隔臂序列,可减少空间位阻,提高杂交反应的效率以及杂交反应的特异性。常见的间隔臂序列包括多聚dT,即poly(dT),寡聚四聚乙二醇以及(CH2)n间隔臂(n≥3),如(CH2)12、(CH2)18等。另外,如果存在poly(dA)干扰,还可以用poly(TTG)作为间隔臂。本发明间隔臂优选为5-10个T,微球包被的过程如下:
分别取5×106个上述编号的羧基化的微球(购自Luminex公司)悬浮于50ul0.1mol/L的MES溶液中(pH4.5),加入10ul合成的anti-tag分子(100nmol/ml)。配制10ng/ml的EDC(N-(3-Dimethylaminopropyl-N-ethylcarbodiimide)(购自PierceChemical公司)工作液。往微球悬液中加入2.5ul的EDC工作液,恒温孵育30分钟,再加入2.5ul的EDC工作液,再恒温孵育30分钟。反应结束后,用0.02%的Tween-20洗涤一次,再用0.1%的SDS液洗涤一次。将洗涤后的包被有anti-tag序列的微球重悬于100ul的Tris-EDTA溶液[10mmol/L Tris(pH8.0),1mmol/L EDTA中,2-8℃避光保存。
三、扩增出具有突变位点的目标序列的引物
CYP2C9基因的四种常见的SNP位点为CYP2C9*2、CYP2C9*3、CYP2C9*5和CYP2C9*6,VKORC1基因的三种常见的SNP位点为G-1639A、C1173T和G3730A。它们的多态性位点在不同的外显子上。CYP2C9*2为C430T突变,发生在外显子3;CYP2C9*3为A1075C突变,CYP2C9*5为C1080G突变,都发生在外显子7;CYP2C9*6为818delA,发生在外显子5。而VKORC1基因G-1639A发生在启动子;C1173T发生在内含子1;G3730A发生在3’UTR。利用Primer5.0设计六对引物(见表3),分别扩增出六条具有SNP位点的目标序列。
表3 扩增出具有SNP位点的目标序列的引物
所有引物由上海生工生物工程技术服务有限公司合成。合成后的每条引物分别用10mmol/L Tris Buffer配制成100pmol/mL的贮存液。
实施例2 运用CYP2C9和VKORC1基因SNP检测液相芯片对临床样本的检测所述各种溶液的配方如下:
50mM的MES缓冲液(pH5.0)配方(250ml):
试剂 |
来源 |
终浓度 |
每250ml的用量 |
MES(2[N-Morpholino]ethanesulfonic acid) |
Sigma M-2933 |
0.05M |
2.44g |
5MNaOH |
Fisher SS256-500 |
--- |
5滴 |
2×Tm杂交缓冲液
试剂 |
来源 |
终浓度 |
每250ml的用量 |
1MTris-HCl,pH8.0 |
SigmaT3038 |
0.2M |
50ml |
5MNaCl |
Sigma S5150 |
0.4M |
20ml |
Triton X-100 |
Sigma T8787 |
0.16% |
0.4ml |
过滤后贮存于4℃。
ExoSAP-IT试剂盒购自美国USB公司。
生物素标记的dCTP购自上海生工生物工程技术服务有限公司。
一、样本的DNA提取:
参照AxyPrep全血基因组小量提取试剂盒说明,得到待检测的DNA。
二、待测样品的PCR扩增
利用Primer5.0设计六对引物,多重PCR一步扩增出CYP2C9的外显子3、外显子5和外显子7,以及VKORC1的启动子、内含子1和3’UTR共六条具有突变位点的目标序列,产物大小分别为306bp、430bp、399bp、560bp、128bp和138bp。引物序列(SEQ NO.43-54)见上述表3所示。
首先配制多重PCR引物工作液:分别各取SEQ NO.43-54的引物贮存液100ul于1.5ml微量离心管中,混合均匀即为多重PCR引物工作液。多重PCR反应体系如下:
10×缓冲液(含Mg2+) 5ul
dNTP(各2.5mmol/L) 4ul
Taq酶(5U/ul) 0.5ul
多重PCR引物工作液(各8.3pmol/mL) 12ul
模板DNA(10ng/ul) 1ul
ddH2O 27.5ul
共 50ul
PCR扩增程序为:95℃3min;94℃20s,56℃30s,72℃30s,30个循环;72℃10min;4℃保存备用。
三、PCR产物的酶切处理
参照ExoSAP-IT试剂盒说明,详细步骤如下:
1.取7.5ul PCR反应后的产物,加入3ul ExoSAP-IT酶;
2.37℃孵育15min。80℃孵育15min,使多余的酶灭活。酶切处理后的产物直接用于后续的ASPE引物延伸反应。
四、位点特异的引物延伸反应(ASPE)
利用上述设计的位点特异性引物进行引物延伸反应,在反应过程中掺入生物素标记的dCTP,从而使反应后的产物带上多个的生物素标记。
首先配制混合的ASPE引物工作液:分别各取C430T-w、C430T-m、A1075C-w、A1075C-m、C1080G-w、C1080G-m、818delA-w、818delA-m、G-1639A-w、G-1639A-m、C1173T-w、C1173T-m、G3730A-w、G3730A-m相应的ASPE引物贮存液10ul于1.5ml微量离心管中,加入10mmol/L Tris Buffer补至200ul,混合均匀即为ASPE混合引物工作液。ASPE反应的体系如下:
10×缓冲液 2ul
MgCl2(50mmol/L) 0.5ul
Biotin-dCTP(400umol/L) 0.25ul
dATP、dGTP、dTTP混合液(各100umol/L) 1ul
Tsp酶(5U/ul) 0.25ul
混合的ASPE引物工作液(各500nmol/L) 1ul
酶切处理的PCR扩增产物 5ul
ddH2O 10ul
共 20ul
PCR程序为:96℃2min;94℃30s,58℃1min,72℃2min,30个循环;4℃保存备用。
五、杂交反应
1.根据设计的ASPE引物,选择相应的最优的十四种微球(微球浓度均为2.5×105个/ml)。每种微球分别带有不同颜色编码,同时每种微球表面分别连接有一段24bp的特异性的寡核苷酸序列(anti-tag),这些anti-tag序列能分别与对应的ASPE引物5’端的tag序列特异结合;本实施例每组样品检测中都分别选择微球号为35、16、33、18、56、62、45、48、85、47、21、58、75、86共十四种微球;
2.分别取1ul每种编号的微球于1.5ml的微量离心管中;
3.微球于≥10000g离心1-2min;
4.弃去上清,微球重悬于100ul的2×Tm杂交缓冲液中,涡旋混匀;
5.取25ul上述微球悬液于96孔滤板相应的孔中,对照孔加25ul的ddH2O;
6.取5-25ul的ASPE反应液于相应的孔中,用ddH2O补足至50ul;
7.用锡箔纸包住96孔板以避光,95℃60s,37℃15min孵育杂交;
8.杂交后的微球于≥3000g离心2-5min;
9.去上清,将微球重悬于75ul的1×Tm杂交缓冲液中;
10.微球于≥3000g离心2-5min;
11将微球重悬于75ul的1×Tm杂交缓冲液中,加入15ul浓度为10ug/ml的链酶亲和素-藻红蛋白(SA-PE);
12.37℃孵育15min,于Luminex仪器上检测。
六、结果检测与数据分析
反应后产物通过Luminex系列分析仪器检测。以聚苯乙烯微球作为反应的载体,以荧光检测仪作为检测平台,对核酸分子进行高通量的多指标并行检测。在微球的制造过程中,掺入不同比例的红光及红外光染色剂,从而形成多至100种不同颜色编码的微球。不同的微球共价结合了针对不同待检测物的核酸分子作为探针分子,报告分子以生物素标记,并用高灵敏的荧光染料染色。这些微球与待测物、报告分子、荧光标记物就形成完整的微球检测体系用于Luminex系统的读取。Luminex阅读系统分别激发红色激光和绿色激光用于微球体系的检测,检测结果如表4、表5和表6所示。
对荧光值(MFI)和数据处理有以下要求:
1.每个位点需至少有一个等位基因MFI大于300而且大于10×PCR阴性对照MFI;
2.NET MFI=样品MFI-PCR阴性对照MFI(NET MFI小于0的以0表示);
3.满足以上两个条件的数据,按下列公式计算突变比值:
突变比值=突变型NET MFI÷(突变型NET MFI+野生型NET MFI)
4.根据经验对每个检测位点的突变比值确定阈值(cut-off值),以划分野生型纯合子、杂合子和突变型纯合子。
使用本方法检测20份样本的CYP2C9和VKORC1基因多态性,实验数据符合上述要求,因此可计算得它们的突变比值。阈值(cut-off值)的设置如下:突变比值范围在0%-20%视为野生型纯合子;30%-70%视为杂合子;80%-100%视为变异型纯合子。以测序法检测与液相芯片结果作对照,计算本发明所提供的分型方法检测结果的吻合率。本方法检测20份样本的CYP2C9和VKORC1基因型检测结果与测序结果吻合率达到100%。可见本发明所提供的CYP2C9和VKORC1基因SNP检测液相芯片能够准确地检测出CYP2C9和VKORC1基因的SNP类型,且结果稳定可靠。
表4 样本检测结果(MFI)
序号NO. |
C430T-w |
C430T-m |
A1075C-w |
A1075C-m |
C1080G-w |
C1080G-m |
818de1A-w |
818de1A-m |
G-1639A-w |
G-1639A-m |
C1173T-w |
C1173T-m |
G3730A-w |
G3730A-m |
阴性对照 |
16 |
5 |
0 |
3 |
14 |
2 |
1 |
12 |
10 |
14 |
19 |
0 |
18 |
8 |
1 |
2528 |
12 |
2181 |
12 |
2097 |
19 |
2062 |
22 |
2097 |
48 |
2679 |
33 |
2138 |
21 |
2 |
3119 |
15 |
2374 |
45 |
2283 |
43 |
1945 |
17 |
2397 |
34 |
2186 |
32 |
2577 |
13 |
3 |
2836 |
46 |
2274 |
47 |
2629 |
33 |
1783 |
38 |
2363 |
12 |
2412 |
44 |
2117 |
44 |
4 |
2852 |
26 |
2709 |
40 |
2255 |
28 |
1891 |
34 |
2742 |
23 |
2073 |
12 |
2437 |
33 |
5 |
3083 |
33 |
2161 |
17 |
2159 |
30 |
1877 |
38 |
2311 |
43 |
2856 |
25 |
2262 |
46 |
6 |
3439 |
27 |
2537 |
37 |
2395 |
46 |
2172 |
46 |
2214 |
17 |
2999 |
35 |
2851 |
44 |
7 |
2569 |
23 |
2865 |
36 |
2968 |
23 |
2264 |
25 |
2464 |
15 |
2840 |
34 |
2541 |
45 |
8 |
2828 |
39 |
2882 |
45 |
2377 |
48 |
2108 |
31 |
603 |
585 |
643 |
652 |
598 |
565 |
9 |
2907 |
20 |
2933 |
15 |
2653 |
43 |
2370 |
14 |
562 |
607 |
2089 |
24 |
2939 |
32 |
10 |
2533 |
40 |
2173 |
25 |
2842 |
22 |
2295 |
47 |
2139 |
47 |
2836 |
27 |
2326 |
44 |
11 |
3469 |
49 |
2907 |
25 |
2586 |
45 |
1570 |
46 |
2054 |
35 |
2673 |
23 |
2896 |
31 |
12 |
2845 |
22 |
2008 |
29 |
2303 |
26 |
1707 |
48 |
672 |
602 |
2901 |
18 |
648 |
643 |
13 |
3208 |
44 |
2527 |
41 |
2911 |
19 |
1869 |
18 |
2068 |
31 |
2485 |
26 |
2366 |
49 |
14 |
2951 |
10 |
2612 |
46 |
2498 |
27 |
2374 |
22 |
2554 |
23 |
2682 |
13 |
2349 |
19 |
15 |
3297 |
12 |
2768 |
22 |
2452 |
28 |
2160 |
18 |
2527 |
20 |
2286 |
22 |
2405 |
14 |
16 |
3157 |
30 |
2181 |
47 |
2089 |
38 |
1935 |
20 |
2515 |
28 |
2022 |
45 |
2652 |
47 |
17 |
3332 |
46 |
570 |
551 |
2762 |
30 |
1817 |
37 |
2482 |
30 |
2786 |
16 |
2264 |
36 |
18 |
3142 |
46 |
2298 |
37 |
2460 |
27 |
2387 |
20 |
2627 |
49 |
2634 |
20 |
2175 |
34 |
19 |
3271 |
32 |
2910 |
14 |
2817 |
39 |
1530 |
19 |
2518 |
29 |
2720 |
40 |
2976 |
32 |
20 |
3153 |
43 |
2264 |
26 |
2738 |
38 |
2187 |
31 |
634 |
586 |
2917 |
39 |
2721 |
26 |
表5样本CYP2C9和VKORC1突变比值
表6 样本CYP2C9和VKORC1突变类型分析结果
实施例3 不同的ASPE引物的液相芯片对CYP2C9、VKORC1基因SNP位点的检测
一、液相芯片制备的设计(Tag序列及Anti-Tag序列的选择)
以CYP2C9基因CYP2C9*3(A1075C)位点突变、VKORC1基因C1173T位点突变的检测液相芯片为例,分别针对A1075C、C1173T的野生型和突变型设计ASPE引物3’端的特异性引物,而ASPE引物5’端的Tag序列则选自SEQ IDNO.1-SEQ ID NO.14中的12条,相应的,包被于微球上的与对应tag序列互补配对的anti-tag序列选择SEQ ID NO.29-SEQ ID NO.42。具体设计如下表(表7)所示。ASPE引物的合成、Anti-tag序列包被微球、扩增引物、检测方法等如实施例1和实施例2所述。
表7 液相芯片制备的设计
二、样品检测
采用上述设计制备的液相芯片,按实施例2所述检测过程和方法对血清样品21-40进行检测,检测结果如下:
表8 样本检测结果(CYP2C9)与基因多态性分析
表9 样本检测结果(VKORC1)与基因多态性分析
其它针对不同的SNP位点的液相芯片,ASPE引物运用不同的Tag序列,其结果依然稳定可靠,具体数据省略。
以上是针对本发明的可行实施例的具体说明,但该实施例并非用以限制本发明的专利范围,凡未脱离本发明技艺精神所为的等效实施或变更,均应包含于本发明的专利范围中。
序列表
<110>广州益善生物技术有限公司
<120>一种CYP2C9和VKORC1基因SNP检测特异性引物、液相芯片及方法
<160>54
<170>PatentIn version 3.1
<210>1
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>1
tcatttcaca attcaattac tcaa 24
<210>2
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>2
aatcaatctt cattcaaatc atca 24
<210>3
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>3
ctttaatcct ttatcacttt atca 24
<210>4
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>4
ctttctacat tattcacaac atta 24
<210>5
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>5
aaacaaactt cacatctcaa taat 24
<210>6
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>6
ctatcttcat atttcactat aaac 24
<210>7
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>7
aatctacaaa tccaataatc tcat 24
<210>8
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>8
tcaatcataa tctcataatc caat 24
<210>9
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>9
tcaatcatct ttatacttca caat 24
<210>10
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>10
cttctcatta acttacttca taat 24
<210>11
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>11
tacactttct ttctttcttt cttt 24
<210>12
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>12
ctactataca tcttactata cttt 24
<210>13
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>13
tcaaaatctc aaatactcaa atca 24
<210>14
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>14
aatccttttt actcaattca atca 24
<210>15
<211>19
<212>DNA
<213>人工序列
<400>15
aagaggagca ttgaggacc 19
<210>16
<211>19
<212>DNA
<213>人工序列
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aagaggagca ttgaggact 19
<210>17
<211>18
<212>DNA
<213>人工序列
<400>17
ggtggggaga aggtcaat 18
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<211>18
<212>DNA
<213>人工序列
<400>18
ggtggggaga aggtcaag 18
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<211>19
<212>DNA
<213>人工序列
<400>19
ggtccagaga tacattgac 19
<210>20
<211>19
<212>DNA
<213>人工序列
<400>20
ggtccagaga tacattgag 19
<210>21
<211>22
<212>DNA
<213>人工序列
<400>21
gcttttgttt acattttacc tt 22
<210>22
<211>22
<212>DNA
<213>人工序列
<400>22
gcttttgttt acattttacc tc 22
<210>23
<211>20
<212>DNA
<213>人工序列
<400>23
tgaaaaacaa ccattggccg 20
<210>24
<211>20
<212>DNA
<213>人工序列
<400>24
tgaaaaacaa ccattggcca 20
<210>25
<211>18
<212>DNA
<213>人工序列
<400>25
gccaggagat catcgacc 18
<210>26
<211>18
<212>DNA
<213>人工序列
<400>26
gccaggagat catcgact 18
<210>27
<211>20
<212>DNA
<213>人工序列
<400>27
tttggtccat tgtcatgtgc 20
<210>28
<211>20
<212>DNA
<213>人工序列
<400>28
tttggtccat tgtcatgtgt 20
<210>29
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>29
ttgagtaatt gaattgtgaa atga 24
<210>30
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>30
tgatgatttg aatgaagatt gatt 24
<210>31
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>31
tgataaagtg ataaaggatt aaag 24
<210>32
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>32
taatgttgtg aataatgtag aaag 24
<210>33
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>33
attattgaga tgtgaagttt gttt 24
<210>34
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>34
gtttatagtg aaatatgaag atag 24
<210>35
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>35
atgagattat tggatttgta gatt 24
<210>36
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>36
attggattat gagattatga ttga 24
<210>37
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>37
attgtgaagt ataaagatga ttga 24
<210>38
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>38
attatgaagt aagttaatga gaag 24
<210>39
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>39
aaagaaagaa agaaagaaag tgta 24
<210>40
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>40
aaagtatagt aagatgtata gtag 24
<210>41
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>41
tgatttgagt atttgagatt ttga 24
<210>42
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<400>42
tgattgaatt gagtaaaaag gatt 24
<210>43
<211>21
<212>DNA
<213>人工序列
<400>43
ggatggaaaa cagagactta c 21
<210>44
<211>21
<212>DNA
<213>人工序列
<400>44
aaggtcagtg atatggagta g 21
<210>45
<211>21
<212>DNA
<213>人工序列
<400>45
agaattgatc ctctggtcag a 21
<210>46
<211>21
<212>DNA
<213>人工序列
<400>46
cacaaattca caagcagtca c 21
<210>47
<211>21
<212>DNA
<213>人工序列
<400>47
ccatcctctc tttaagtttg c 21
<210>48
<211>21
<212>DNA
<213>人工序列
<400>48
actatgaatt tggggacttc g 21
<210>49
<211>21
<212>DNA
<213>人工序列
<400>49
attcacaagt tccagggatt c 21
<210>50
<211>20
<212>DNA
<213>人工序列
<400>50
accaagacgc tagacccaat 20
<210>51
<211>19
<212>DNA
<213>人工序列
<400>51
ggccctagat gtggggctt 19
<210>52
<211>18
<212>DNA
<213>人工序列
<400>52
gctttggaga ccagccca 18
<210>53
<211>19
<212>DNA
<213>人工序列
<400>53
ggccctagat gtggggctt 19
<210>54
<211>18
<212>DNA
<213>人工序列
<400>54
gctttggaga ccagccca 18