CN101724702A - 一种用于转基因玉米检测的标准分子对照物及其制备方法 - Google Patents
一种用于转基因玉米检测的标准分子对照物及其制备方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN101724702A CN101724702A CN200910245031A CN200910245031A CN101724702A CN 101724702 A CN101724702 A CN 101724702A CN 200910245031 A CN200910245031 A CN 200910245031A CN 200910245031 A CN200910245031 A CN 200910245031A CN 101724702 A CN101724702 A CN 101724702A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- mai
- primer
- 30sec
- product
- zssiib
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Images
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
本发明公开了一种转基因作物检测中必要的标准分子对照物及其制备方法。设计特异性引物制备含有玉米内源基因ZssIIB特异片段及转基因玉米品系Mon810、Mon863、BT11、BT176中外源基因特异片段标准分子对照物质。本发明将4种转基因玉米品系的外源基因特异性片段连在一起，在检测过程中无需提取多种阳性基因组DNA作为阳性对照。将该标准分子导入大肠杆菌，易保藏、传代。如有新的转基因材料出现，可在原标准分子的基础上加入新的外源片段，满足日益增多的转基因作物材料的检测需要。
Description
技术领域
本发明属于分子生物学技术领域，涉及转基因作物检测中必须的对照物质标准分子及其制备方法，具体说是一种制备转基因玉米中外源基因特异性片段标准分子对照物的方法。
背景材料
转基因产品越来越进入人们的生活。2006年全世界转基因作物种植面积为10200万公顷，与2005年转基因作物9000万公顷相比增长了13％，从1996年到2006年十年间转基因作物总的种植面积增加了60倍。目前，世界各国已进行田间试验的转基因作物超过5000种，批准商品化的转基因作物有160多种，包括玉米、大豆、油菜、番茄、马铃薯、甜椒、西葫芦、木瓜、甜菜、香石竹、矮牵牛、亚麻、烟草、西瓜、菊苣等。我国转基因生物研究始于20世纪80年代初期，主要是转基因抗虫棉。近年来，政府不断加大对生物技术研究的支持力度，积极促进农业生物技术的研究与产业化开发。
转基因作物安全性主要集中在转基因作物释放的环境安全性和由转基因作物生产出的食品的安全性上。包括对人和动物健康的风险、对生态环境与农业的风险、对非目标生物的风险。针对第一种风险，1993年，联合国经济发展与合作组织(OECO)提出了食品安全性评估的“实质等同性”原则。如果转基因作物生产的产品与传统产品具有实质等同性，则可以认为是安全的。
最早提出对转基因食品进行标识管理的是欧盟，1998年，欧盟在世界上签署第一个法案，要求对转基因产品进行标签说明；1999年，要求出口到欧盟的非转基因产品不得含有1％的转基因产品污染；2002年，欧盟将标识的最低限量降低到0.9％。日本、澳大利亚、新西兰对转基因成分的最低含量做了不同规定，域值从1-5％不等。
我国于2001年5月9日公布并实施《农业转基因生物安全管理条例》，于2002年1月5日公布了农业转基因生物安全评价、标识和进口安全管理三个配套管理办法，确定了第一批实施标识管理的农业转基因生物目录，并于2002年3月20日起正式实施。
转基因作物检测方法主要基于核酸水平的PCR检测和基于蛋白质水平的检测。核酸水平检测分为定性和定量检测，蛋白质水平检测包括酶联免疫吸附法(ELISA)和免疫试纸条法等。目前最常用的检测方法是定性PCR检测。通过对样品中可能含有的外源基因进行扩增，再利用琼脂糖凝胶电泳进行鉴定。如果电泳结果含有特异条带，说明样品中含有转基因成分；反之则没有。
在进行定性PCR检测时，应设置阴性对照、阳性对照和空白对照，以确保检测过程的有效性和检测结果的可靠性。阴性对照是指用非转基因作物中提取的DNA作为PCR反应体系的模板；阳性对照是指用特定的转基因作物中提取的DNA作为PCR反应体系的模板；空白对照指用无菌重蒸水作为PCR反应体系的模板。由于转基因作物存在生物安全性的问题，所以有些转基因作物的阳性样品是很难得到的。为了满足检验检疫工作需要，欧盟委员会直属的联合研究中心(JRC)下属的两个研究所——健康及消费者保护研究所(IHCP)和标准物质及计量研究所(IRMM)在联合研制转基因产品检测标准物质，目前只制备出几种转基因作物标准样品，包括转基因大豆Round Ready Soybean、转基因玉米bt11，bt176，mon810，event 1507、转基因棉花event 281-24-236x 3006-210-23和转基因甜菜event H7-1，含量分别为0％、0.1％、0.5％、1％、2％和5％。而全世界已有近百种商品化转基因品种，现有的标准物质与快速增长的转基因作物相比，根本无法满足检测的需要。综上所述，种类少、不易获得是转基因阳性材料存在的重要问题，严重影响着转基因检测工作的进行。
由于各种限制，国内的检验检疫机构很难获得阳性样品，而且国际上有证标准物质的价格也一直居高不下，这些都成为了实际检侧工作中很重要的制约因素。为了解决这个问题，国内各科研单位也做了大量研究工作，但是都不能避开转基因生物的基因漂移的问题。目前，以质粒作为阳性对照在国际转基因检测中的得到公认。例如在英国FAPAS分析实验室能力验证测试中心组织的国际能力验证(转基因检测)中，网站的提交信息选项中明确表示质粒可以作为阳性材料使用。在国际期刊上发表的文章中，很多阳性对照也使用质粒。
发明内容
本发明通过PCR方法扩增得到转基因作物外源基因的特异性片段，经重叠PCR将外源基因的特异性片段拼接在一起，经过克隆、建立文库，那么就可以将插入这些特异性片段的质粒作为检测过程中的阳性对照。这样就为解决阳性样品缺乏问题提供一条有效途径，有效地保障检测工作的进行。而且，以建立文库的方式获得阳性材料，容易保存、扩繁。
本发明一个目的在于提供一种用于转基因玉米检测的标准分子对照物。
本发明另一个目的在于提供一套用于制备转基因玉米标准分子对照物引物。
本发明再一个目的在于提供一种筛选制备标准分子特异性引物的方法。
本发明还一个目的在于提供一种用于制备转基因玉米标准分子对照物的方法。即设计特异性引物制备转基因玉米Mon810、Mon863、BT11、BT176中外源基因特异性片段标准分子对照物。为实现上述目的本发明提供如下的技术方案：
一种转基因玉米标准分子对照物，包括转基因品系MON810、MON863、BT11、BT176转化事件特异性序列及内源基因zSSIIb特异片段，其先后顺序为zSSIIb+MON810+MON863+BT11+BT176。
本发明所述转基因玉米标准分子对照物，其中zSSIIb+Mon810+Mon863+BT11+BT176标准分子的特异性引物序列如下：
| 引物名称 | 引物序列(5’-3’) | 长度bp | Tm℃ | GC％ |
| Mai Zss-o1： | CGGTGGATGCTAAGGCTGATG | 21 | 58.9 | 57.1 |
| Mai Zss-o2： | CACACTTGAAAGGGCCAGG | 19 | 58.5 | 57.9 |
| Mai 810-o3 | GCCCTTTCAAGTGTGCCCA | 19 | 61.4 | 57.9 |
| Mai 810-o4 | TGAGTGCGCAAGCAAATTCGG | 21 | 62.7 | 52.4 |
| 引物名称 | 引物序列(5’-3’) | 长度bp | Tm℃ | GC％ |
| Mai 863-o5 | TTGCTTGCGCACTCAAAGACC | 21 | 63.1 | 52.4 |
| Mai 863-o6 | GGTTCCGCTACCATCTTTGGG | 21 | 62.7 | 54.5 |
| Mai 11-o7 | AAAGATGGTAGCGGAACCCC | 20 | 60.6 | 55 |
| Mai 11-o8 | CGTGCTTTGCAAGAAATGGTC | 21 | 60.8 | 47.6 |
| Mai 176-o9 | CCATTTCTTGTGAAGCACGGTC | 22 | 62 | 50 |
| Mai 176-o10 | TCGACTTTATAGGAAGGGAGAGG | 23 | 59.1 | 47.8 |
本发明设计用于制备转基因玉米对照物质标准分子引物的方法：以将zSSIIb及转化事件特异性序列特异性引物为基础，在zSSIIb基因反向引物的5’端加上转化事件特异性正向引物的反向互补序列；
在转化事件反向引物的5’端加上zSSIIb基因反向引物的反向互补序列；
在引物设计软件primer primer5.0中调节引物Tm值在55-60之间。
本发明所述的转化事件特异性引物序列指的是农业部发布的转基因作物检测标准中的引物序列情况，详细内容见附件1。
本发明进一步公开了用于制备转基因玉米标准分子对照物的PCR反应条件，其特征在于：
第一轮反应：以非转基因玉米及转基因玉米品系MON810、MON863、BT11、BT176基因组DNA为模板，用检测标准中引物序列扩增；反应体系为：总体积为50μL，其中2倍pfU mix缓冲液25μL，上下游引物(10mM)各0.5μL，模板(50ng/μL)1μL，用ddH2O补足至50μL。
反应程序为：95℃，3min；30个循环(94℃，30sec；60-55℃，30sec；72℃，1min)；72℃，5min；4℃短期保存。产物记为PPzssIIb-1、PPM810-1、PPM863-1、PPB11-1、PPB176-1。
第二轮反应：以第一轮PCR扩增产物PPzssIIb-1、PPM810-1、PPM863-1、PPB11-1、PPB176-1为模板，以权力说明书2中对应引物，进行PCR扩增；反应体系为：总体积为50μL，其中2倍pfU mix缓冲液25μL，上下游引物(10mM)各0.5μL，用ddH2O补足至50μL。
反应程序为：95℃，3min；30个循环(94℃，30sec；60-55℃，30sec；72℃，1min)；72℃，5min；4℃短期保存。产物记为PPzssIIb-2、PPM810-2、PPM863-2、PPB11-2、PPB176-2。
第三轮反应，分两步进行扩增：
第一步：取第二轮反应产物各5μL，2倍pfU mix缓冲液7.5μL，用ddH20补足至25μL。其中PPM810-2与PPM863-2相连接，PPB11-2与PPB176-2相连接。
反应程序：95℃，3min；10个循环(94℃，30sec；68℃，30sec；72℃，1min)；72℃，5min；4℃短期保存。产物记为Mega810+863和Mega11+176；
第二步：分别以第一步反应产物Mega810+863和Mega11+176为模板，引物分别为Mai 810-o3和Mai 863-o6各1μL，Mai 11-o7和Mai 176-o10各1μL；加2倍pfU mix缓冲液12.5μL，用ddH2O补足至50μL。
反应程序：95℃，3min；20个循环(94℃，30sec；50℃，30sec；72℃，1min)；72℃，5min；4℃短期保存。产物记为PPM810+M863、PPB11+B176。
第四轮反应，分两步进行扩增：
第一步：取第三轮反应产物PPM810+M863、PPB11+B176各5μL，2倍pfU mix缓冲液7.5μL，用ddH2O补足至25μL。
反应程序：95℃，3min；10个循环(94℃，30sec；68℃，30sec；72℃，2min)；72℃，5min；4℃短期保存。产物记为Mega810+863+11+176；
第二步：分别以第一步反应产物，引物为Mai 810-o3和Mai 176-o10各1μL；加2倍pfU mix缓冲液12.5μL，用ddH2O补足至50μL。
反应程序：95℃，3min；20个循环(94℃，30sec；50℃，30sec；72℃，2min)；72℃，5min；4℃短期保存。产物记为PPM810+M863+B11+B176。
第五轮反应，分两步进行扩增：
第一步：取第二轮反应产物PPzssIIb-2及第四轮产物PPM810+M863+B11+B176各5μL，2倍pfU mix缓冲液7.5μL，用ddH2O补足至25μL。
反应程序：95℃，3min；10个循环(94℃，30sec；68℃，30sec；72℃，2min)；72℃，5min；4℃短期保存。产物记为MegazssIIb+810+863+11+176；
第二步：以第一步反应产物为模板，引物为Mai Zss-o1和Mai 176-o10各1μL；加2倍pfU mix缓冲液12.5μL，用ddH2O补足至50μL。
反应程序：95℃，3min；20个循环(94℃，30sec；50℃，30sec；72℃，2min)；72℃，5min；4℃短期保存。产物记为PPzssIIb+M810+M863+B11+B176。
第六轮反应：以第五轮产物为模板1μL，用引物Mai Zss-o1和Mai 176-010扩增；反应体系为：总体积为50μL，其中2倍Taq mix缓冲液25μL，上下游引物(10mM)各1μL，用ddH2O补足至50μL。
反应程序为：95℃，3min；30个循环(94℃，30sec；60-55℃，30sec；72℃，1min)；72℃，5min；4℃短期保存。产物记为TPzssIIb+M810+M863+B11+B176。回收纯化第六轮产物，连接于T-easy载体，导入大肠杆菌JM109即可。为了能更加清楚的说明本发明的测定方法，下面对本发明的试验方法做以详细的说明。
1、原理
本方法采用两步PCR扩增法将转基因玉米中特异片段逐步连接起来，获得含有zSSIIb+MON810+MON863+BT11+BT176的转基因玉米检测中需要的标准分子对照物质。将该标准分子通过常规的方法采用T-easy载体导入大肠杆菌JM109中，即可长期保存使用。
2、引物设计
本引物设计依据农业部转基因玉米检测标准中涉及的zSSIIb、MON810、MON863、BT11、BT176等引物序列，以将zSSIIb及转化事件MON810特异性引物为基础，在zSSIIb基因反向引物的5’端加上MON810正向引物的反向互补序列；
在转化事件MON810反向引物的5’端加上zSSIIb基因反向引物的反向互补序列；
在引物设计软件primer primer5.0中调节引物Tm值在55-60之间。用上述方法设计出一套用于制备zSSIIb+MON810+MON863+BT11+BT176标准分子的引物。
表1引物序列表如下：
| 引物名称 | 引物序列(5’-3’) | 长度bp | Tm | GC％ |
| Mai Zss-o1： | CGGTGGATGCTAAGGCTGATG | 21 | 58.9 | 57.1 |
| Mai Zss-o2： | CACACTTGAAAGGGCCAGG | 19 | 58.5 | 57.9 |
| Mai 810-o3 | GCCCTTTCAAGTGTGCCCA | 19 | 61.4 | 57.9 |
| Mai 810-o4 | TGAGTGCGCAAGCAAATTCGG | 21 | 62.7 | 52.4 |
| Mai 863-o5 | TTGCTTGCGCACTCAAAGACC | 21 | 63.1 | 52.4 |
| Mai 863-o6 | GGTTCCGCTACCATCTTTGGG | 21 | 62.7 | 54.5 |
| Mai 11-o7 | AAAGATGGTAGCGGAACCCC | 20 | 60.6 | 55 |
| Mai 11-o8 | CGTGCTTTGCAAGAAATGGTC | 21 | 60.8 | 47.6 |
| Mai 176-o9 | CCATTTCTTGTGAAGCACGGTC | 22 | 62 | 50 |
| Mai 176-o10 | TCGACTTTATAGGAAGGGAGAGG | 23 | 59.1 | 47.8 |
3、制备方法
第一轮反应：以非转基因玉米及转基因玉米品系MON810、MON863、BT11、BT176基因组DNA为模板，用检测标准中引物序列扩增；反应体系为：总体积为50μL，其中2倍pfU mix缓冲液25μL，上下游引物(10mM)各0.5μL，模板(50ng/μL)1μL，用ddH2O补足至50μL。
反应程序为：95℃，3min；30个循环(94℃，30sec；60-55℃，30sec；72℃，1min)；72℃，5min；4℃短期保存。产物记为PPzssIIb-1、PPM810-1、PPM863-1、PPB11-1、PPB176-1。
第二轮反应：以第一轮PCR扩增产物PPzssIIb-1、PPM810-1、PPM863-1、PPB11-1、PPB176-1为模板，以权力说明书2中对应引物，进行PCR扩增；反应体系为：总体积为50μL，其中2倍pfU mix缓冲液25μL，上下游引物(10mM)各0.5μL，用ddH2O补足至50μL。
反应程序为：95℃，3min；30个循环(94℃，30sec；60-55℃，30sec；72℃，1min)；72℃，5min；4℃短期保存。产物记为PPzssIIb-2、PPM810-2、PPM863-2、PPB11-2、PPB176-2。
第三轮反应，分两步进行扩增：
第一步：取第二轮反应产物各5μL，2倍pfU mix缓冲液7.5μL，用ddH20补足至25μL。其中PPM810-2与PPM863-2相连接，PPB11-2与PPB176-2相连接。
反应程序：95℃，3min；10个循环(94℃，30sec；68℃，30sec；72℃，1min)；72℃，5min；4℃短期保存。产物记为Mega810+863和Mega11+176；
第二步：分别以第一步反应产物Mega810+863和Mega11+176为模板，引物分别为Mai 810-o3和Mai 863-o6各1μL，Mai 11-o7和Mai 176-o10各1μL；加2倍pfU mix缓冲液12.5μL，用ddH2O补足至50μL。
反应程序：95℃，3min；20个循环(94℃，30sec；50℃，30sec；72℃，1min)；72℃，5min；4℃短期保存。产物记为PPM810+M863、PPB11+B176。
第四轮反应，分两步进行扩增：
第一步：取第三轮反应产物PPM810+M863、PPB11+B176各5μL，2倍pfU mix缓冲液7.5μL，用ddH20补足至25μL。
反应程序：95℃，3min；10个循环(94℃，30sec；68℃，30sec；72℃，2min)；72℃，5min；4℃短期保存。产物记为Mega810+863+11+176；
第二步：分别以第一步反应产物，引物为Mai 810-o3和Mai 176-o10各1μL；加2倍pfU mix缓冲液12.5μL，用ddH20补足至50μL。
反应程序：95℃，3min；20个循环(94℃，30sec；50℃，30sec；72℃，2min)；72℃，5min；4℃短期保存。产物记为PPM810+M863+B11+B176。
第五轮反应，分两步进行扩增：
第一步：取第二轮反应产物PPzssIIb-2及第四轮产物PPM810+M863+B11+B176各5μL，2倍pfU mix缓冲液7.5μL，用ddH20补足至25μL。
反应程序：95℃，3min；10个循环(94℃，30sec；68℃，30sec；72℃，2min)；72℃，5min；4℃短期保存。产物记为MegazssIIb+810+863+11+176；
第二步：以第一步反应产物为模板，引物为Mai Zss-o1和Mai 176-o10各1μL；加2倍pfU mix缓冲液12.5μL，用ddH2O补足至50μL。
反应程序：95℃，3min；20个循环(94℃，30sec；50℃，30sec；72℃，2min)；72℃，5min；4℃短期保存。产物记为PPzssIIb+M810+M863+B11+B176。
第六轮反应：以第五轮产物为模板1μL，用引物Mai Zss-o1和Mai 176-o10扩增；产物记为TPzssIIb+M810+M863+B11+B176。
回收纯化第六轮产物，连接于T-easy载体，导入大肠杆菌JM109即可。其方法参见：
http://www.promega.com.cn/techserv/ctbs/pGEM-T.pdf。
本发明公开的有效制备转基因作物检测标准分子对照物zSSIIb+MON810+MON863+BT11+BT176方法所具有的特点在于：
(1)方便检测需要：将4种转基因玉米品系的外源基因特异性片段连在一起，在检测过程中无需提取多种阳性基因组DNA作为阳性对照。
(2)易传代：将该标准分子导入大肠杆菌，易保藏、传代。
(3)易加入新的外源片段：如有新的转基因材料出现，可在原标准分子的基础上加入新的外源片段，满足日益增多的转基因作物材料的检测需要。
(4)降低生物安全等级，风险可控：标准分子只含有检测标准中需要的特异片段，不能表达，且大肠杆菌易灭活。
附图说明：
图1为PCR产物用2％琼脂糖凝胶电泳，100V电压，30min图。图中M为DL2000 DNAMarker；
其中1-6为zSSIIb引物扩增结果：1为空白对照，2为阴性对照，3为转基因玉米基因组DNA阳性对照，4为标准分子阳性对照，5为样品重复1，6为样品重复2；
7-12为BT11引物扩增结果：7为空白对照，8为阴性对照，9为转基因玉米基因组DNA阳性对照，10为标准分子阳性对照，11为样品重复1，12为样品重复2；
13-18为BT176引物扩增结果：13为空白对照，14为阴性对照，15为转基因玉米基因组DNA阳性对照，16为标准分子阳性对照，17为样品重复1，18为样品重复2；
19-24为MON810引物扩增结果：19为空白对照，20为阴性对照，21为转基因玉米基因组DNA阳性对照，22为标准分子阳性对照，23为样品重复1，24为样品重复2；
25-30为MON863引物扩增结果：25为空白对照，26为阴性对照，27为转基因玉米基因组DNA阳性对照，28为标准分子阳性对照，29为样品重复1，30为样品重复2.
结果显示：样品中含有转基因玉米品系MON863成分，不含有BT11、BT176、MON810成分；同时验证了本专利制备的标准分子阳性对照物能有效地代替转基因玉米基因组DNA阳性对照。
具体实施方式：
为了更充分的解释本发明的实施，提供转基因玉米标准分子对照物的制备实施实例。这些实施实例仅仅是解释、而不是限制本发明的范围。其中试验中所采用的原料及试剂均有市售。
实施例1：
MON810+MON863标准分子制备过程
材料：转基因玉米品系MON810和MON863基因组DNA(50ng/μL)；试剂：pfU mix缓冲液(2倍)；Taq mix缓冲液(2倍)；引物(10mM，见表)；T-easy载体；大肠杆菌JM109；
仪器：PCR仪；电泳仪；水浴锅；培养箱
| 引物名称 | 引物序列(5’-3’) |
| Mai 810-o3 | GCCCTTTCAAGTGTGCCCA |
| Mai 810-o4 | TGAGTGCGCAAGCAAATTCGG |
| Mai 863-o5 | TTGCTTGCGCACTCAAAGACC |
| Mai 863-o6 | GGTTCCGCTACCATCTTTGGG |
方法：
第一轮反应：以转基因玉米品系MON810、MON863基因组DNA为模板，用检测标准中引物序列扩增；反应体系为：总体积为50μL，其中2倍pfU mix缓冲液25μL，上下游引物(10mM)各0.5μL，模板(50ng/μL)1μL，用ddH2O补足至50μL。
反应程序为：95℃，3min；30个循环(94℃，30sec；60-55℃，30sec；72℃，1min)；72℃，5min；4℃短期保存。产物记为PPM810-1、PPM863-1。
第二轮反应：以第一轮PCR扩增产物PPM810-1、PPM863-1为模板，以上表中对应引物，进行PCR扩增；反应体系为：总体积为50μL，其中2倍pfU mix缓冲液25μL，上下游引物(10mM)各0.5μL，用ddH2O补足至50μL。
反应程序为：95℃，3min；30个循环(94℃，30sec；60-55℃，30sec；72℃，1min)；72℃，5min；4℃短期保存。产物记为PPM810-2、PPM863-2。
第三轮反应，分两步进行扩增：
第一步：取第二轮反应产物各5μL，2倍pfU mix缓冲液7.5μL，用ddH2O补足至25μL。
反应程序：95℃，3min；10个循环(94℃，30sec；68℃，30sec；72℃，1min)；72℃，5min；4℃短期保存。产物记为Mega810+863；
第二步：以第一步反应产物Mega810+863为模板，引物分别为Mai 810-o3和Mai 863-o6各1μL；加2倍pfU mix缓冲液12.5μL，用ddH2O补足至50μL。
反应程序：95℃，3min；20个循环(94℃，30sec；50℃，30sec；72℃，1min)；72℃，5min；4℃短期保存。产物记为PPM810+M863。
第四轮反应：以第三轮产物为模板1μL，用Mai 810-o3和Mai 863-o6各1μL扩增；反应体系为：总体积为50μL，其中2倍Taq mix缓冲液25μL，用ddH2O补足至50μL。
反应程序为：95℃，3min；30个循环(94℃，30sec；60-55℃，30sec；72℃，1min)；72℃，5min；4℃短期保存。产物记为TPM810+M863。回收纯化第四轮产物，连接于T-easy载体，导入大肠杆菌JM109即可。
实施例2：
Bt11+bt176标准分子制备过程
材料：转基因玉米品系Bt11和Bt176基因组DNA(50ng/μL)；试剂：pfU mix缓冲液(2倍)；Taq mix缓冲液(2倍)；引物(10mM，见表)；T-easy载体；大肠杆菌JM109；
仪器：PCR仪；电泳仪；水浴锅；培养箱
| 引物名称 | 引物序列(5’-3’) |
| Mai 11-o7 | AAAGATGGTAGCGGAACCCC |
| Mai 11-o8 | CGTGCTTTGCAAGAAATGGTC |
| Mai 176-o9 | CCATTTCTTGTGAAGCACGGTC |
| Mai 176-o10 | TCGACTTTATAGGAAGGGAGAGG |
方法：
第一轮反应：以转基因玉米品系BT11、BT176基因组DNA为模板，用检测标准中引物序列扩增；反应体系为：总体积为50μL，其中2倍pfU mix缓冲液25μL，上下游引物(10mM)各0.5μL，模板(50ng/μL)1μL，用ddH2O补足至50μL。
反应程序为：95℃，3min；30个循环(94℃，30sec；60-55℃，30sec；72℃，1min)；72℃，5min；4℃短期保存。产物记为PPB11-1、PPB176-1。
第二轮反应：以第一轮PCR扩增产物PPB11-1、PPB176-1为模板，以上表中对应引物，进行PCR扩增；反应体系为：总体积为50μL，其中2倍pfU mix缓冲液25μL，上下游引物(10mM)各0.5μL，用ddH2O补足至50μL。
反应程序为：95℃，3min；30个循环(94℃，30sec；60-55℃，30sec；72℃，1min)；72℃，5min；4℃短期保存。产物记为PPB11-2、PPB176-2。
第三轮反应，分两步进行扩增：
第一步：取第二轮反应产物各5μL，2倍pfU mix缓冲液7.5μL，用ddH2O补足至25μL。
反应程序：95℃，3min；10个循环(94℃，30sec；68℃，30sec；72℃，1min)；72℃，5min；4℃短期保存。产物记为Mega11+176；
第二步：以第一步反应产物Mega11+176为模板，引物分别为Mai 11-o7和Mai 176-o10各1μL；加2倍pfU mix缓冲液12.5μL，用ddH2O补足至50μL。
反应程序：95℃，3min；20个循环(94℃，30sec；50℃，30sec；72℃，1min)；72℃，5min；4℃短期保存。产物记为PPB11+B176。
第四轮反应：以第三轮产物为模板1μL，用Mai 11-o7和Mai 176-o10各1μL扩增；反应体系为：总体积为50μL，其中2倍Taq mix缓冲液25μL，用ddH2O补足至50μL。
反应程序为：95℃，3min；30个循环(94℃，30sec；60-55℃，30sec；72℃，1min)；72℃，5min；4℃短期保存。产物记为TPB11+B176。回收纯化第四轮产物，连接于T-easy载体，导入大肠杆菌JM109即可。
实施例3：
ZssIIb+MON810+MON863标准分子制备过程
材料：非转基因玉米基因组DNA(50ng/μL)，PCR产物PPM810+M863；
试剂：pfU mix缓冲液(2倍)；Taq mix缓冲液(2倍)；引物(10mM，见表)；T-easy载体；大肠杆菌JM109；
仪器：PCR仪；电泳仪；水浴锅；培养箱
| 引物名称 | 引物序列(5’-3’) |
| Mai Zss-o1： | CGGTGGATGCTAAGGCTGATG |
| Mai Zss-o2： | CACACTTGAAAGGGCCAGG |
| Mai 810-o3 | GCCCTTTCAAGTGTGCCCA |
| 引物名称 | 引物序列(5’-3’) |
| Mai 863-o6 | GGTTCCGCTACCATCTTTGGG |
方法：
第一轮反应：以非转基因玉米基因组DNA为模板，用检测标准中引物序列扩增；反应体系为：总体积为50μL，其中2倍pfU mix缓冲液25μL，上下游引物(10mM)各0.5μL，模板(50ng/μL)1μL，用ddH2O补足至50μL。
反应程序为：95℃，3min；30个循环(94℃，30sec；60-55℃，30sec；72℃，30sec)；72℃，5min；4℃短期保存。产物记为PPzssIIb-1。
第二轮反应：以第一轮PCR扩增产物PP2ssIIb-1为模板，以o1-o6对应引物，进行PCR扩增；反应体系为：总体积为50μL，其中2倍pfU mix缓冲液25μL，上下游引物(10mM)各0.5μL，用ddH2O补足至50μL。
反应程序为：95℃，3min；30个循环(94℃，30sec；60-55℃，30sec；72℃，30sec)；72℃，5min；4℃短期保存。产物记为PPzssIIb-2。
第三轮反应，分两步进行扩增：
第一步：取第二轮反应产物及PPM810+M863各5μL，2倍pfU mix缓冲液7.5μL，用ddH2O补足至25μL。
反应程序：95℃，3min；10个循环(94℃，30sec；68℃，30sec；72℃，2min)；72℃，5min；4℃短期保存。产物记为MegaZssiib+810+863；
第二步：分别以第一步反应产物为模板，引物分别为Mai Zss-o和Mai 863-o6各1μL；加2倍pfU mix缓冲液12.5μL，用ddH2O补足至50μL。
反应程序：95℃，3min；20个循环(94℃，30sec；50℃，30sec；72℃，2min)；72℃，5min；4℃短期保存。产物记为PPZssiib+810+863。
第四轮反应：以第三轮产物1μL为模板，用引物Mai Zss-o1和Mai 176-o8扩增；反应体系为：总体积为50μL，其中2倍Taq mix缓冲液25μL，上下游引物(10mM)各1μL，用ddH2O补足至50μL。
反应程序为：95℃，3min；30个循环(94℃，30sec；60-55℃，30sec；72℃，2min)；72℃，5min；4℃短期保存。产物记为TPzssIIb+M810+M863。回收纯化第六轮产物，连接于T-easy载体，导入大肠杆菌JM109即可。
实施例4对照比较：
材料：转基因玉米品系MON810、MON863、Bt11和Bt176基因组DNA(50ng/μL)，本发明制备的转基因玉米标准分子对照物，待测样品基因组DNA(50ng/μL)；
试剂：Taq mix缓冲液(2倍)；引物(10mM，见表)；
仪器：PCR仪；电泳仪；水浴锅；培养箱
方法：
1转基因玉米标准分子对照物DNA快速提取：无菌条件下，挑去已导入zSSIIb+Mon810+Mon863+BT11+BT176标准分子的JM109大肠杆菌一环，与100μL PCR小管中，100℃煮沸8min。冰上2min备用。
2PCR扩增检测样品中是否含有转基因玉米MON810、MON863、BT11、BT176：
设置空白对照、阴性对照、转基因玉米基因组DNA阳性对照、标准分子阳性对照、样品重复1、样品重复2。使用检测标准中品系特异性引物依次对样品中的内源基因zSSIIb及外源基因MON810、MON863、BT11、BT176进行PCR检测。
反应体系为：总体积为50μL，其中2倍Taq mix缓冲液25μL，上下游引物(10mM)各1μL，DNA模板1μL，空白对照用水代替，用ddH2O补足至50μL。
反应程序为：95℃，3min；35个循环(94℃，30sec；50℃，30sec；72℃，1min)；72℃，5min；4℃短期保存。PCR产物用2％琼脂糖凝胶电泳，100V电压，30min。结果见下图1。其中1-6为zSSIIb引物扩增结果：1为空白对照，2为阴性对照，3为转基因玉米基因组DNA阳性对照，4为标准分子阳性对照，5为样品重复1，6为样品重复2；
7-12为BT11引物扩增结果：7为空白对照，8为阴性对照，9为转基因玉米基因组DNA阳性对照，10为标准分子阳性对照，11为样品重复1，12为样品重复2；
13-18为BT176引物扩增结果：13为空白对照，14为阴性对照，15为转基因玉米基因组DNA阳性对照，16为标准分子阳性对照，17为样品重复1，18为样品重复2；
19-24为MON810引物扩增结果：19为空白对照，20为阴性对照，21为转基因玉米基因组DNA阳性对照，22为标准分子阳性对照，23为样品重复1，24为样品重复2；
25-30为MON863引物扩增结果：25为空白对照，26为阴性对照，27为转基因玉米基因组DNA阳性对照，28为标准分子阳性对照，29为样品重复1，30为样品重复2.
结果显示：样品中含有转基因玉米品系MON863成分，不含有BT11、BT176、MON810成分；同时验证了本专利制备的标准分子阳性对照物能有效地代替转基因玉米基因组DNA阳性对照。
附件1：转基因玉米检测标准中转化事件特异性引物序列表：
| 引物名称 | 序列(5’-3’) |
| zSSIIb-F | CGGTGGATGCTAAGGCTGATG |
| zSSIIb-R | AAAGGGCCAGGTTCATTATCCTC |
| MON810-F | CAAGTGTGCCCACCACAGC |
| MON810-R | GCAAGCAAATTCGGAAATGAA |
| MON863-F | GCACTCAAAGACCTGGCGAATGA |
| MON863-R | CCATCTTTGGGACCACTGTCG |
| Bt11-F | GCGGAACCCCTATTTGTTTA |
| 引物名称 | 序列(5’-3’) |
| Bt11-R | CAAGAAATGGTCTCCACCAAA |
| Bt176-F | AAGCACGGTCAACTTCCGTAC |
| Bt176-R | TCGACTTTATAGGAAGGGAGAGG |
附件2：PCR产物回收后连接T-easy载体及导入JM109大肠杆菌方法，参见：
http://www.promega.com.cn/techserv/ctbs/pGEM-T.pdf。
序列表
<110>天津市农业科学院中心实验室
<120>一种牛羊源成分的快速检测方法
<160>10
<210>1
<211>21bp
<212>DNA
<213>人工序列
<400>1
cggtggatgc taaggctgat g 21
<210>2
<211>19bp
<212>DNA
<213>人工序列
<400>2
cacacttgaa agggccagg 19
<210>3
<211>19bp
<212>DNA
<213>人工序列
<400>3
gccctttcaa gtgtgccca 19
<210>4
<211>21bp
<212>DNA
<213>人工序列
<400>4
tgagtgcgca agcaaattcg g 21
<210>5
<211>21bp
<212>DNA
<213>人工序列
<400>5
ttgcttgcgc actcaaagac c 21
<210>6
<211>21bp
<212>DNA
<213>人工序列
<400>6
ggttccgcta ccatctttgg g 21
<210>7
<211>20bp
<212>DNA
<213>人工序列
<400>7
aaagatggta gcggaacccc 20
<210>8
<211>21bp
<212>DNA
<213>人工序列
<400>8
cgtgctttgc aagaaatggt c 21
<210>9
<211>22bp
<212>DNA
<213>人工序列
<400>9
ccatttcttg tgaagcacgg tc 22
<210>10
<211>23bp
<212>DNA
<213>人工序列
<400>10
tcgactttat aggaagggag agg 23
Claims (4)
1.一种用于转基因玉米检测的标准分子对照物，包括转基因品系MON810、MON863、BT11、BT176转化事件特异性序列及内源基因zSSIIb特异片段，其先后顺序为zSSIIb+MON810+MON863+BT11+BT176。
2.如权利要求1所述转基因玉米标准分子对照物，其中zSSIIb+Mon810+Mon863+BT11+BT176标准分子的引物序列如下：
3.一种用于筛选权利要求2所述引物的方法：其特征在于：
以将zSSIIb及转化事件特异性序列特异性引物为基础，在zSSIIb基因反向引物的5’端加上转化事件特异性正向引物的反向互补序列；在转化事件反向引物的5’端加上zSSIIb基因反向引物的反向互补序列；以连接处为中心，删减两端序列，使引物长度在18-28bp之间，Tm值在55-60之间℃。
4.一种用于制备权利要求1所述转基因玉米标准分子对照物的PCR反应方法，其特征在于：
第一轮反应：以非转基因玉米及转基因玉米品系MON810、MON863、BT11、BT176基因组DNA为模板，用检测标准中引物序列扩增；反应体系为：总体积为50μL，其中2倍pfU mix缓冲液25μL，上下游引物(10mM)各0.5μL，模板(50ng/μL)1μL，用ddH2O补足至50μL；
反应程序为：95℃，3min；30个循环(94℃，30sec；60-55℃，30sec；72℃，1min)；72℃，5min；4℃短期保存；产物记为PPzssIIb-1、PPM810-1、PPM863-1、PPB11-1、PPB176-1；
第二轮反应：以第一轮PCR扩增产物PPzssIIb-1、PPM810-1、PPM863-1、PPB11-1、PPB176-1为模板，以o1-o10中对应引物，进行PCR扩增；反应体系为：总体积为50μL，其中2倍pfU mix缓冲液25μL，上下游引物(10mM)各0.5μL，用ddH2O补足至50μL；
反应程序为：95℃，3min；30个循环(94℃，30sec；60-55℃，30sec；72℃，1min)；72℃，5min；4℃短期保存；产物记为PPzssIIb-2、PPM810-2、PPM863-2、PPB11-2、PPB176-2；
第三轮反应，分两步进行扩增：
第一步：取第二轮反应产物各5μL，2倍pfU mix缓冲液7.5μL，用ddH2O补足至25μL；其中PPM810-2与PPM863-2相连接，PPB11-2与PPB176-2相连接；
反应程序：95℃，3min；10个循环(94℃，30sec；68℃，30sec；72℃，1min)；72℃，5min；4℃短期保存；产物记为Mega810+863和Mega11+176；
第二步：分别以第一步反应产物Mega810+863和Mega11+176为模板，引物分别为Mai 810-o3和Mai 863-o6各1μL，Mai 11-o7和Mai 176-o10各1μL；加2倍pfU mix缓冲液12.5μL，用ddH2O补足至50μL；
反应程序：95℃，3min；20个循环(94℃，30sec；50℃，30sec；72℃，1min)；72℃，5min；4℃短期保存；产物记为PPM810+M863、PPB11+B176；
第四轮反应，分两步进行扩增：
第一步：取第三轮反应产物PPM810+M863、PPB11+B176各5μL，2倍pfU mix缓冲液7.5μL，用ddH2O补足至25μL；
反应程序：95℃，3min；10个循环(94℃，30sec；68℃，30sec；72℃，2min)；72℃，5min；4℃短期保存；产物记为Mega810+863+11+176；
第二步：分别以第一步反应产物，引物为Mai 810-o3和Mai 176-o10各1μL；加2倍pfU mix缓冲液12.5μL，用ddH2O补足至50μL；
反应程序：95℃，3min；20个循环(94℃，30sec；50℃，30sec；72℃，2min)；72℃，5min；4℃短期保存。产物记为PPM810+M863+B11+B176；
第五轮反应，分两步进行扩增：
第一步：取第二轮反应产物PPzssIIb-2及第四轮产物PPM810+M863+B11+B176各5μL，2倍pfU mix缓冲液7.5μL，用ddH2O补足至25μL；
反应程序：95℃，3min；10个循环(94℃，30sec；68℃，30sec；72℃，2min)；72℃，5min；4℃短期保存；产物记为MegazssIIb+810+863+11+176；
第二步：以第一步反应产物为模板，引物为Mai Zss-o1和Mai 176-o10各1μL；加2倍pfU mix缓冲液12.5μL，用ddH2O补足至50μL；
反应程序：95℃，3min；20个循环(94℃，30sec；50℃，30sec；72℃，2min)；72℃，5min；4℃短期保存；产物记为PPzssIIb+M810+M863+B11+B176；
第六轮反应：以第五轮产物为模板1μL，用引物Mai Zss-o1和Mai 176-o10扩增；反应体系为：总体积为50μL，其中2倍Taq mix缓冲液25μL，上下游引物(10mM)各1μL，用ddH2O补足至50μL；
反应程序为：95℃，3min；30个循环(94℃，30sec；60-55℃，30sec；72℃，1min)；72℃，5min；4℃短期保存；产物记为TPzssIIb+M810+M863+B11+B176；回收纯化第六轮产物，连接于T-easy载体，导入大肠杆菌JM109即可长期保存使用。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CN2009102450312A CN101724702B (zh) | 2009-12-23 | 2009-12-23 | 一种用于转基因玉米检测的标准分子对照物及其制备方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CN2009102450312A CN101724702B (zh) | 2009-12-23 | 2009-12-23 | 一种用于转基因玉米检测的标准分子对照物及其制备方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CN101724702A true CN101724702A (zh) | 2010-06-09 |
| CN101724702B CN101724702B (zh) | 2012-04-11 |
Family
ID=42446247
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CN2009102450312A Expired - Fee Related CN101724702B (zh) | 2009-12-23 | 2009-12-23 | 一种用于转基因玉米检测的标准分子对照物及其制备方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CN (1) | CN101724702B (zh) |
Cited By (10)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN102409081A (zh) * | 2010-09-20 | 2012-04-11 | 中国农业科学院饲料研究所 | 一种用于转基因大豆和转基因棉花检测用标准质粒分子及其构建方法 |
| CN102409082A (zh) * | 2010-09-20 | 2012-04-11 | 中国农业科学院饲料研究所 | 一种用于转基因大豆检测的五基因标准质粒分子及其构建 |
| CN102409080A (zh) * | 2010-09-20 | 2012-04-11 | 中国农业科学院饲料研究所 | 一种用于转基因大豆检测的两基因标准质粒分子及其构建 |
| CN102559854A (zh) * | 2010-12-20 | 2012-07-11 | 中国农业科学院饲料研究所 | 一种用于转基因大豆、玉米和棉花检测的标准质粒分子及其构建 |
| CN102676674A (zh) * | 2012-05-10 | 2012-09-19 | 海康生物科技（北京）有限公司 | 一种转基因玉米检测用质粒标准分子及其制备方法 |
| CN106244674A (zh) * | 2016-06-07 | 2016-12-21 | 谱尼测试集团深圳有限公司 | 一种用于转基因小麦检测的标准质粒分子及其构建方法 |
| CN110551842A (zh) * | 2019-09-04 | 2019-12-10 | 中国农业科学院油料作物研究所 | 基于插入位点基因组序列建立的鉴定玉米转化体mir604基因型的方法 |
| CN111826387A (zh) * | 2020-07-07 | 2020-10-27 | 黑龙江省农业科学院农产品质量安全研究所 | 一种转基因玉米品系鉴定阳性质粒分子 |
| CN112126709A (zh) * | 2020-10-31 | 2020-12-25 | 浙江经贸职业技术学院 | 利用四重实时荧光pcr检测玉米转基因成分的方法 |
| CN115029421A (zh) * | 2022-08-10 | 2022-09-09 | 中国农业科学院农业质量标准与检测技术研究所 | 一种转基因植物核酸标准物质及形貌模拟方法 |
-
2009
- 2009-12-23 CN CN2009102450312A patent/CN101724702B/zh not_active Expired - Fee Related
Cited By (14)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN102409082B (zh) * | 2010-09-20 | 2015-05-20 | 中国农业科学院饲料研究所 | 一种用于转基因大豆检测的五基因标准质粒分子及其构建 |
| CN102409082A (zh) * | 2010-09-20 | 2012-04-11 | 中国农业科学院饲料研究所 | 一种用于转基因大豆检测的五基因标准质粒分子及其构建 |
| CN102409080A (zh) * | 2010-09-20 | 2012-04-11 | 中国农业科学院饲料研究所 | 一种用于转基因大豆检测的两基因标准质粒分子及其构建 |
| CN102409081A (zh) * | 2010-09-20 | 2012-04-11 | 中国农业科学院饲料研究所 | 一种用于转基因大豆和转基因棉花检测用标准质粒分子及其构建方法 |
| CN102409081B (zh) * | 2010-09-20 | 2015-08-26 | 中国农业科学院饲料研究所 | 一种用于转基因大豆和转基因棉花检测用标准质粒分子及其构建方法 |
| CN102559854A (zh) * | 2010-12-20 | 2012-07-11 | 中国农业科学院饲料研究所 | 一种用于转基因大豆、玉米和棉花检测的标准质粒分子及其构建 |
| CN102559854B (zh) * | 2010-12-20 | 2015-05-20 | 中国农业科学院饲料研究所 | 一种用于转基因大豆、玉米和棉花检测的标准质粒分子及其构建 |
| CN102676674A (zh) * | 2012-05-10 | 2012-09-19 | 海康生物科技（北京）有限公司 | 一种转基因玉米检测用质粒标准分子及其制备方法 |
| CN106244674A (zh) * | 2016-06-07 | 2016-12-21 | 谱尼测试集团深圳有限公司 | 一种用于转基因小麦检测的标准质粒分子及其构建方法 |
| CN110551842A (zh) * | 2019-09-04 | 2019-12-10 | 中国农业科学院油料作物研究所 | 基于插入位点基因组序列建立的鉴定玉米转化体mir604基因型的方法 |
| CN111826387A (zh) * | 2020-07-07 | 2020-10-27 | 黑龙江省农业科学院农产品质量安全研究所 | 一种转基因玉米品系鉴定阳性质粒分子 |
| CN112126709A (zh) * | 2020-10-31 | 2020-12-25 | 浙江经贸职业技术学院 | 利用四重实时荧光pcr检测玉米转基因成分的方法 |
| CN115029421A (zh) * | 2022-08-10 | 2022-09-09 | 中国农业科学院农业质量标准与检测技术研究所 | 一种转基因植物核酸标准物质及形貌模拟方法 |
| CN115029421B (zh) * | 2022-08-10 | 2022-11-08 | 中国农业科学院农业质量标准与检测技术研究所 | 一种转基因植物核酸标准物质及形貌模拟方法 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| CN101724702B (zh) | 2012-04-11 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| CN101724702B (zh) | 一种用于转基因玉米检测的标准分子对照物及其制备方法 | |
| CN102634593B (zh) | 转基因玉米event98140及其衍生品种的lamp检测引物组、检测试剂盒及检测方法 | |
| CN102206632A (zh) | 转基因玉米mon88017转化事件外源插入载体旁侧基因及其应用 | |
| CN101956011B (zh) | 一种快速鉴定棉花中转基因成分的检测方法及其应用 | |
| CN101225435A (zh) | 一种快速检测转基因大豆的方法 | |
| CN102586470B (zh) | 玉米弯孢叶斑病菌pcr检测试剂盒及检测方法 | |
| CN102115754A (zh) | 一种水稻磷酸盐转运蛋白基因ORYsa;Pht1;4的应用 | |
| CN104032017B (zh) | 用于检测转G2-aroA基因耐除草剂玉米G1105E-823C的引物对 | |
| CN103525810B (zh) | 转植酸酶基因玉米外源基因插入位点旁侧序列及检测方法 | |
| CN104031982A (zh) | 转基因水稻科丰2号品系特异性实时荧光定量pcr检测引物、检测方法和试剂盒 | |
| CN102634592B (zh) | 转基因玉米bt176及其衍生品种的lamp检测引物组、试剂盒及检测方法 | |
| CN102912027A (zh) | 用于鉴定小麦春化基因vrn-1的引物对组及其应用 | |
| CN104017881B (zh) | 检测转G2-aroA基因耐除草剂玉米G1105E-823C的引物对 | |
| CN102634590B (zh) | 转基因大豆a5547-127及其衍生品种的lamp检测引物组、检测试剂盒及检测方法 | |
| CN101358236B (zh) | 一种快速检测转基因玉米品系Mon810的方法 | |
| CN104830857A (zh) | 转基因玉米mon88017品系特异定量pcr精准检测的引物和探针及方法 | |
| CN102912026A (zh) | 用于鉴定或辅助鉴定小麦春化基因vrn-1的pcr体系 | |
| CN104131106B (zh) | 转基因玉米98140结构特异定量pcr精准检测的引物和探针及方法 | |
| CN102586242A (zh) | 转基因大豆bps-cv127-9转化事件外源插入载体旁侧基因及其应用 | |
| CN103451184A (zh) | 麦二叉蚜特异性ss-coi引物、含有该引物的试剂盒及其检测方法 | |
| CN102925570A (zh) | 用于鉴定小麦春化基因vrn-a1的pcr体系 | |
| CN102876800A (zh) | 转植酸酶基因玉米或饲料中植酸酶基因的定量检测方法 | |
| CN103060459A (zh) | 检测转基因水稻品系科丰8号的引物和探针、试剂盒和方法 | |
| CN103834737B (zh) | 转基因水稻科丰2号品系特异性pcr检测引物及定性检测方法和试剂盒 | |
| CN102559873B (zh) | 针对亚细亚镰刀菌的分子检测方法及其应用 |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| C06 | Publication | ||
| PB01 | Publication | ||
| C10 | Entry into substantive examination | ||
| SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
| C14 | Grant of patent or utility model | ||
| GR01 | Patent grant | ||
| C17 | Cessation of patent right | ||
| CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |
Granted publication date: 20120411 Termination date: 20131223 |