CN101687773B - 取代的2-[2-(苯基)乙氨基]烷酰胺衍生物及其作为钠和/或钙通道调节剂的应用 - Google Patents

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Abstract

式(I)的取代的2-[2-(苯基)乙氨基]烷酰胺衍生物及其药学上可接受的盐其中X，Y，Z，R，R1，R2，R3，R′3 R4，R5，R6，R7具有本说明书中定义的含义，包含它们作为活性组分的药物组合物及其作为用于预防，缓解和治愈广泛病理情况的钠和/或钙通道调节剂的应用，所述的病理情况包括，但不限于神经病学，认知，精神病学，炎性，泌尿生殖和胃肠疾病，其中上述机理已被描述为扮演病理角色。

Description

取代的2-[2-(苯基)乙氨基]烷酰胺衍生物及其作为钠和/或钙通道调节剂的应用
本发明涉及取代的2-[2-(苯基)乙氨基]烷酰胺衍生物，其药学上可接受的盐，包含它们的药物组合物及其作为钠和/或钙通道调节剂的应用。 
作为本发明目的的衍生物具有作为钠和/或钙通道调节剂的活性且由此用于预防、缓解和治愈广泛的病理情况，所述的病理情况包括，但不限于神经病学的，认知，精神病，炎性，泌尿生殖和胃肠疾病，其中上述机理已被描述为扮演病理角色。 
本发明的化合物基本上不具有单胺氧化酶(MAO)抑制作用，尤其是在预防、缓解和/或治愈所述疾病中为治疗有效的剂量。 
发明背景 
化学背景 
GB 586,645专利中描述了下述通式的氨基酸衍生物的合成： 
它特别描述了具有刺激子宫平滑肌特性的N-羟基烷基酰胺类的合成。 
专利申请WO 90/14334中描述了下述通式的单-取代的N-苯基烷基 α-氨基羧酰胺衍生物，其用作抗癫痫药，抗帕金森病药，神经保护剂，抗抑郁药，解痉药和/或安眠剂： 
其中 
R为(C1-C8)烷基，(C3-C8)环烷基，呋喃基，噻吩基，吡啶基或苯基环，其任选被1-4个独立地选自卤素，(C1-C6)烷基，(C1-C6)烷氧基和三氟甲基的取代基取代；A为-(CH2)m-，-(CH2)p-X-(CH2)q-基团，其中m为1-4的整数，p和q之一为0且另一个为0或1-4的整数，X为-O-，-S-或-NR4-，其中R4为氢或(C1-C4)烷基；n为0或1；各R1和R2独立地为氢或(C1-C4)烷基；R3为氢，任选被羟基取代的(C1-C4)烷基或任选如上所述被取代的苯基；R3′为氢或R3和R3′共同构成(C3-C6)环烷基环；R5和R6各自独立地为氢或(C1-C6)烷基，条件是当R为(C1-C8)烷基时，A为-(CH2)p-X-(CH2)q-基团，其中p和q均为0，X为-O-，-S-或-NR4-，其中R4为氢或C1-C4烷基。 
我们的专利申请中合成的衍生物无一在WO 90/14334中被披露和制备。 
在其它专利申请中，请求保护属于WO 90/14334中通式选择的化合物在具有其它活性的组合物中的应用，特别地： 
WO 99/35125用作止痛药的α-氨基酰胺衍生物 
WO 03/020273包含加巴喷丁或其类似物和α-氨基酰胺和其类似物的药物组合物及其止痛应用 
WO 04/062655用作抗偏头痛药的α-氨基酰胺衍生物 
WO 05/018627用作抗炎药的α-氨基酰胺衍生物 
WO 05/070405用于治疗下泌尿道疾病的α-氨基酰胺衍生物 
WO 05/102300用于治疗多动腿综合征和附带病症的α-氨基酰胺衍生物 
WO 06/027052(卤素苄氧基)苄氨基-丙酰胺类在制备作为钠和/或钙通道选择性调节剂有效的药物中的应用 
EP Appl.N°06012352.8用于治疗认知障碍的α-氨基酰胺衍生物。 
在专利申请WO 98/35957中描述了下式的酰胺衍生物： 
并且请求保护它们在减肥和进食障碍中的应用。 
实际上我们的专利申请中合成的化合物中无一在WO 98/35957中被合成或具体列举。 
-在WO 2004/087125中描述了下式的化合物： 
请求保护钠通道的阻断机理和许多药理学活性，特别是抗痛和抗膀胱功能失调活性。 
必须强调的是当X2为亚烷基时，它不能为-CH2-CH2-，而仅为-CH2-，由此本申请中的2-[2-(苯基)乙氨基]烷酰胺衍生物中无一属于上述报导的通式范围。 
-Eleonora Ghidini等在Bioorganic & Medicinal Chemistry2006，14，3263-3274中描述了下式的化合物： 
已经测试了这些化合物的抗惊厥活性。 
本专利申请中披露和合成的化合物中无一属于上述通式的范围。 
-2006年11月29日提交的悬而未决的申请PCT/EP2006/011443(WO 2007/071311)涉及下式的2-苯基乙氨基衍生物： 
本申请中请求保护的化合物中无一属于PCT/EP 2006/011443(WO2007/071311)范围内。 
生物学背景 
钠通道在神经元网络中扮演重要角色，在细胞和细胞网络各处迅速传递电脉冲，由此协调从运动到认知的高级过程。这些通道是大型跨膜蛋白质，它们能够在不同的状态之间切换，使钠离子能够选择性地渗透。就这种过程而言，需要动作电位使膜去极化，因此这些通道是电压-门控的。过去几年中，已经对钠通道有更好的了解，并开发了与它们相互作用的药物。 
电压-门控钠通道最初基于它们对河豚毒素的敏感性加以分类，从低的纳摩尔级(河豚毒素敏感性，TTXs)到高的微摩尔级(河豚毒素耐受 性，TTXr)。迄今，已经鉴定了9种不同的钠通道α亚单位，分为Nav1.1至Nav1.9。 
Nav1.1至Nav1.4、Nav1.6和Nav1.7是TTXs，而Nav1.5、Nav1.8和Nav1.9是TTXr，具有不同程度的敏感性。Nav1.1至Nav1.3和Nav1.6主要在CNS中被表达，而Nav1.4和Nav1.5主要在肌肉中被表达(分别为骨骼肌和心脏)，且Nav1.7，Nav1.8和Nav1.9主要在小DRG感觉神经元中被表达。 
已经清楚，一些具有未知作用机理的药物实际上通过调节钠通道电导发挥作用，包括局部麻醉剂、I类抗心律失常剂和抗惊厥剂。已经发现了神经元钠通道阻断剂在治疗癫痫(苯妥英和卡马西平)、双相性精神障碍(拉莫三嗪)、预防神经变性和减少神经病性疼痛中的应用。各种使神经元兴奋性稳定的抗癫痫药在神经病性疼痛中是有效的(例如卡马西平)。 
另外，在若干炎性疼痛模型中已经观察到钠通道表达或活性的增加，提示了钠通道在炎性疼痛中的角色。 
钙通道是跨膜性多亚单位蛋白质，控制钙离子从细胞外液进入细胞。通常，钙通道是电压依赖性的，被称为电压门控性钙通道(VGCC)。VGCC见于哺乳动物神经系统各处，它们调节对于细胞存活和功能而言是重要的细胞内钙离子水平。细胞内钙离子浓度与动物体内的许多生命过程有关，例如神经递质释放，肌肉收缩，起搏点活动和激素分泌。动物中所有“可兴奋的”细胞、例如中枢神经系统(CNS)的神经元、外周神经细胞和肌肉细胞、包括骨骼肌、心肌和静脉与动脉平滑肌的那些，都具有电压依赖性钙通道。 
钙通道是一个大型家族，具有很多在遗传、生理学和药理学上不同的亚型。基于从个别神经元记录的钙电流的生物物理性质，已经描述了两种超家族：高电压活化(HVA)和低电压活化(LVA)钙通道。被称为L-型、P-型、Q-型、N-型、R-型的钙电流是HVA，而被称为T-型的是LVA。通过分子鉴定已经鉴定、克隆和表达了十种不同的钙亚型，分为三个家族：Cav1家族(Cav1.1，1.2，1.3，1.4)在功能上涉及L- 型Ca电流；Cav2家族(Cav2.1，2.2，2.3)在功能上涉及P/Q、N、R-型电流；且Cav3家族(Cav3.1，3.2，3.3)在功能上涉及T-型电流 
据信钙通道与某些疾病状态有关联。一些可用于治疗哺乳动物、包括人的各种心血管疾病的化合物被认为通过调节存在于心脏和/或血管平滑肌中的电压依赖性钙通道的功能来发挥它们的有益效果。具有钙通道活性的化合物也已被推断用于治疗疼痛。特别是负责神经递质释放调节的N-型钙通道(Cav2.2)被认为在伤害感受传递中扮演突出的角色，这不仅由于它们的组织分布，也来自若干药理研究的结果。在损伤的神经病性疼痛模型中发现N-型钙通道在同侧背侧角中被增量调节了(Cizkova D.，Marsala J.，Lukacova N.，Marsala M.，JergovaS.，Orendacova J.，Yaksh T.L.Exp.Brain Res.(2002)147：456-463)。Specific N-type calcium channel blockers were shownto be effective in reducing pain responses in neuropathic painmodels(Mattews E.A.，Dickenson A.H.Pain(2001)92：235-246)、II期福尔马林试验(Diaz A.，Dickenson A.H.Pain(1997)69：93-100)和由膝关节炎症诱发的痛觉过敏(Nebe J.，Vanegas H.，Schaible H.G.Exp.Brain Res.(1998)120：61-69)中显示有效降低疼痛反应。缺乏N-型钙通道的突变小鼠被发现降低了对持续性疼痛反应，表现为II期福尔马林试验期间的疼痛反应降低(Kim C.，Jun K.，Lee T.，Kim S.S.，Mcenery M.W.，Chin H.，Kim H.L，Park J.M.，Kim D.K.，Jung S.J.，Kim J.，Shin H.S.Mol.Cell Neurosci.(2001)18：235-245；Hatakeyama S.，Wakamori M，Ino M.，Miyamoto N.，TakahashiE.，Yoshinaga T.，Sawada K.，Imoto K.，Tanaka I.，Yoshizawa T.，Nishizawa Y.，Mori Y.，Nidome T.，Shoji S.Neuroreport(2001)12：2423-2427)，以及降低了神经病性疼痛反应，表现为脊神经结扎模型中的机械性异常疼痛和热性痛觉过敏降低。有趣的是，这些小鼠也显示比野生型更低的焦虑水平(Saegusa H.，Kurihara T.，Zong S.，Kazuno A.，Matsuda Y.Nonaka T.，Han W.，Toriyama H.，TanabeT.，EMBO J.(2001)20：2349-2356)。N-型钙通道在疼痛中的牵连性 已经在临床上得到齐考诺肽的进一步验证，这是一种从海洋小螺Conus Magnus毒液衍生的肽。这种肽在治疗应用上的限制在于它只能对人类鞘内进行给药(Bowersox S.S.和Luther R.Toxicon，(1998)36：1651-1658)。 
所有这些发现都表明，具有钠和/或钙通道阻断作用的化合物在预防、减轻和治愈广泛的病状中具有很高的治疗潜力，包括神经病学的、精神病学的、泌尿生殖和胃肠疾病，其中上述机理已被描述为扮演病理学角色。 
有很多文章和专利描述过治疗或调节多种障碍的钠通道和/或钙通道调节剂或拮抗剂，例如它们用作局部麻醉剂、抗躁狂抗抑郁剂、治疗单极性抑郁、尿失禁、腹泻、炎症、癫痫、神经变性病症、神经细胞死亡、神经病性疼痛、偏头痛、急性痛觉过敏与炎症、肾疾病、变态反应、哮喘、支气管痉挛、痛经、食管痉挛、青光眼、尿道障碍、胃肠运动障碍的药物。 
这类描述钠和/或钙通道阻断剂及其应用的文章和专利/专利申请的不完全列表包括如下所示的参考文献： 
C.Alzheimer在Adv.Exp.Med.Biol.2002，513，161-181中描述了作为神经保护物质靶标的钠和钙通道。 
Vanegas e Schaible(Pain 2000，85，9-18)讨论了钙通道拮抗剂对于疼痛、痛觉过敏和异常疼痛的脊髓机理的效应。 
WO 03/057219涉及用作治疗或调节中枢神经系统障碍，例如神经病性疼痛，炎性疼痛，与炎症相关的疼痛或癫痫的钠通道阻断剂。 
WO99/14199中披露了取代的1，2，3，4，5，6-六氢-2，6-亚甲基-3-苯并吖辛因-10-oles作为用于治疗几种疾病的有效钠通道阻断剂，所述的疾病例如中风，神经变性疾患，阿尔茨海默病，帕金森病海心血管疾患。 
WO01/74779中披露了新的氨基吡啶钠通道阻断剂及其作为抗惊厥药，局部麻醉剂，抗心律失常药在治疗或预防神经变性疾患，例如肌萎缩侧索硬化(ALS)，治疗或预防急性或慢性痛和治疗或预防糖尿病神 经病变中的应用。 
WO04/087125中披露了作为用于治疗慢性和急性痛，耳鸣，肠紊乱，膀胱功能障碍和脱髓鞘疾病的哺乳动物钠通道抑制剂的氨基酸衍生物。 
美国专利US5,051,403涉及降低与局部缺血、例如中风有关的神经元损伤的方法，给予结合性/抑制性ω-芋螺毒素肽，其中该肽是以选择性地特异性抑制神经元组织中电压-门控钙通道电流为特征的。 
美国专利US5,587,454涉及产生痛觉缺失的组合物和方法，特别是在疼痛和神经病性疼痛的治疗中。 
美国专利US5,863,952涉及治疗缺血性中风的钙通道拮抗剂。 
美国专利US6,011,035涉及钙通道阻断剂，可用于治疗例如中风和疼痛等病症。 
美国专利US6,117,841涉及钙通道阻断剂和它们在中风、脑缺血、疼痛、头部创伤或癫痫治疗中的应用。 
美国专利US6,362,174涉及治疗治疗中风、脑缺血、疼痛、癫痫和头部创伤的N-型钙通道阻断剂。 
美国专利US6,420,383和美国专利US6,472,530涉及新颖的钙通道阻断剂，可用于治疗和预防许多障碍，例如高血压、变态反应、哮喘、支气管痉挛、痛经、食管痉挛、青光眼、早产、尿道障碍、胃肠运动障碍和心血管疾患。 
美国专利US6,458,781涉及阻断钙通道的化合物和它们治疗中风、脑缺血、疼痛、头部创伤或癫痫的应用化合物。 
美国专利US6,521,647涉及钙通道阻断剂在动物肾疾病治疗中的应用，尤其慢性肾衰竭。 
WO 97/10210涉及三环杂环衍生物和它们在疗法中的应用，特别是作为钙通道拮抗剂，例如用于治疗局部缺血，特别是缺血性休克。 
WO 03/018561涉及作为N-型钙通道拮抗剂的喹啉化合物和使用这类化合物治疗或预防疼痛或伤害感受的方法。 
单胺氧化酶(MAO)是存在于神经元与非神经元细胞的外部线粒体 膜中的酶。MAO存在两种同工型：MAO-A和MAO-B。MAO酶负责内源性与外来性胺的氧化性脱氨基作用，并具有不同的底物优先性、抑制剂特异性和组织分布。5-羟色胺，去甲肾上腺素和肾上腺素是MAO-A优先的底物，氯吉兰是选择性MAO-A抑制剂；而MAO-B优选β-苯基乙基胺作为底物，几乎选择性地被司来吉兰所抑制。多巴胺、酪胺和色胺都被MAO-A和MAO-B所氧化，特别是在人脑中，多巴胺被MAO-B脱氨基达80％ 
MAO的抑制允许内源性与外源性底物蓄积下来，由此当几乎完全被抑制时(＞90％)，可以改变规律性单胺递质的动力学。MAO调节大多数重要神经递质的脑中浓度，例如去甲肾上腺素、5-羟色胺和多巴胺，它们涉及情绪、焦虑和运动。因而，MAO被认为与各种精神和神经病学障碍有密切联系，例如抑郁、焦虑和帕金森氏病(PD)。 
MAO-A抑制剂主要在精神病学中被用于治疗重症、顽固性与非典型性抑郁，因为它们能够增加降低的5-羟色胺和去甲肾上腺素脑中水平。最近，MAO-A抑制剂已经用于治疗患有焦虑症的患者，例如社交恐怖、恐慌症、创伤后应激障碍和强迫观念与行为障碍。 
MAO-B抑制剂主要在神经病学中被用于治疗PD。 
最近也有证据和兴趣在于MAO-B在其他病理条件中的角色，例如阿尔茨海默氏病(AD)。迄今尚未报道过MAO-B在辅助递质代谢中的牵连性的证据，例如胆囊收缩素、P物质、促生长素抑制素和神经降压素，它们牵涉疼痛感觉的调节。为此，MAO-B抑制剂在疼痛综合征中的应用不存在科学原理。 
在临床实践期间已经报道过采用MAO抑制剂的不良药物反应。第一代非选择性和不可逆性MAO抑制剂、例如反苯环丙酰胺(tranylcypromide)和苯乙肼具有严重的副作用，包括肝毒性、体位性低血压和最重要的高血压危象，其发生在摄入含有酪胺的食物之后(Cooper AJ.-Tyramine and irreversible monoamine oxidaseinhibitors in clinical practice.-Br J Psych Suppl 1989：38-45)。 
在使用这些非选择性和不可逆性MAO抑制剂时，必须遵守严格的 限酪胺饮食。在反苯环丙胺疗法停止后4周和苯乙肼疗法停止后11周以上，对于酪胺的增压敏感性才会正常。 
司来吉兰是一种不可逆性MAO-B抑制剂，尤其在与左旋多巴联合使用时能够导致PD患者的厌食/恶心、口干、运动障碍和体位性低血压，后者是最成问题的(Volz H.P.和Gleiter C.H.-Monoamineoxidase inhibitors.A perspective on their use in the elderly.-Drugs Aging 13(1998)，pp.341-355)。 
在单一疗法中，接受司来吉兰的患者比接受安慰剂的患者更经常发生厌食/恶心、骨骼肌损伤和心律失常。除了这些副作用以外，注意到血清AST和ALT水平升高的速率也增加了。 
最频繁报道的吗氯贝胺的副作用是睡眠紊乱、焦虑增加、不安静和头痛，这是一种选择性和可逆性MAO-A抑制剂。 
选择性5-羟色胺再摄取抑制剂(SSRIs)与吗氯贝胺的组合在顽固性抑郁的情况下具有良好的功效，但是关于由这种组合导致的毒副作用引发了争论，例如血清素源性综合征(Baumann P.-Pharmacokinetic-pharmacodynamic relationship of the selectiveserotonin reuptake inhibitors.Clin Pharmacokinet 31(1996)，pp 444-469)。由于心律失常和肝酶水平增加，应当定期检查心电图和实验室数值。 
伴随衰老而发生的很多类型生理变化影响MAO抑制剂的药效学和药动学。事实上，老年人的药动学变量明显不同于更年轻的患者。包括吸收、分布、代谢和排泄在内的这些变量不得不加以考虑，以避免或者最小化某些不良效应和药物-药物相互作用。老年患者一般比年轻患者更敏感于副作用，包括不良的药物反应。高血压危象可能在老年人中比在年轻患者中更频繁发生，因为老年人的心血管系统已经老化。 
拟交感神经药与MAO抑制剂组合的使用也可以升高血压。另外，与安慰剂相比，苯乙肼与显著更高发的下列副作用有关：嗜睡、震颤、运动障碍、腹泻、排尿困难、体位效应和不良的皮肤病学效应。有趣的是在老年人中，据报道在用吗氯贝胺治疗期间头痛的频率高于年轻 患者(Volz H.P.和Gleiter C.H.-Monoamine oxidase inhibitors.Aperspective on their use in the elderly.Drugs Aging 13(1998)，pp.341-355)。 
MAO抑制剂(优选MAO-A，但并不是无选择的MAO-A/MAO-B)有时是用于抑郁的处方用药。由于潜在的自杀风险，由过量服用引起的不良药物反应和毒性是在选择抗抑郁剂时考虑的重要因素。另外，在使用高剂量的MAO抑制剂时，不良的心血管效应似乎明显增加；因为在如此高的剂量下丧失MAO选择性，酪胺能够诱发潜在危险的高血压反应。急性过量服用MAO抑制剂导致激动、幻觉、高热、反射亢进和惊厥。异常血压也是中毒的迹象，以致可能需要灌胃和维持心肺功能。过量服用传统的非选择性和不可逆性MAO抑制剂是相当危险的，有时是致命的(Yamada和Richelson，1996.Pharmacology ofantidepressants in the elderly.In：David JR，Snyder L.，editors.Handbook of pharmacology of aging.Boca Raton：CRC Press 1996)。 
在治疗其中钠和钙通道机理扮演病理角色的病变中，MAO酶抑制没有益处。此外，MAO抑制副作用可能带来至少两种类型的消极性限制： 
1)饮食：进食酪胺含量高的食物可以导致严重的、甚至危及生命的系统血压增加(所谓的“奶酪效应”)。 
2)药理：作为例子经常用药物组合治疗疼痛，例如类阿片衍生物和三环抗抑郁剂。这类与MAO抑制剂的组合是危险的，因为这可能导致5-羟色胺能综合征(激动、震颤、幻觉、高热和心律失常)。 
因而，消除或者显著减少有钠和/或钙通道调节剂活性的药物的MAO抑制活性可用于预防、减轻和治愈其中所述机理扮演病理角色的广泛病状，包括神经病学、精神病学的、炎性、泌尿生殖和胃肠疾病，这是相对于具有相似功效以及上述副作用的化合物而言的一项意外的和实质性治疗改进。 
考虑这些关于MAO抑制剂的发现、特别是缺乏任何关于MAO-B在病理性病变中的角色的证据，象疼痛、偏头痛、炎性、泌尿生殖和胃 肠疾病，可以想象MAO-B抑制作用不应当是用于上述病变的化合物的必要特征，避免在慢性和/或长期治疗期间的任何可能的副作用。 
上述问题的一种有利解决方案将在于提供如下药物，它们是“有选择性的钠和/或钙通道调节剂活性”或者可用于“选择性治疗”其中钠和/或钙通道机理扮演病理角色的病变、障碍或疾病。用这种措辞表示如下药物，在对有此需要的患者给予有效治疗其中上述机理扮演病理角色的上述病变的量时，不表现任何MAO抑制活性或者表现显著降低的MAO抑制活性，从而避免由内源性与外源性单胺递质蓄积引起的副作用。 
本发明的主要目标是作为具有钠和/或钙通道调节剂活性的2-[2-(苯基)乙氨基]烷酰胺衍生物在制备药物的应用，其中上述机理扮演病理角色的病状，其为神经病学、认知、精神病学的、炎性、泌尿生殖和胃肠疾病，所述的药物基本上没有任何MAO抑制活性或者具有显著降低的MAO抑制活性，因此减少了不希望的副作用的可能性。因此，本发明的主要目的在于提供2-[2-(苯基)乙氨基]烷酰胺衍生物作为治疗上述病理情况的药物的应用，其特征在于该药物基本上没有任何MAO抑制活性或者提供了显著降低的MAO抑制活性，且由此具有降低的不希望的副作用的可能性。所述的应用提供了预防，减轻和/或治愈上述病症，特别是对因MAO抑制活性导致的不希望的副作用，例如上文所述的那些特别敏感的患者的改进的选择性来源。 
本发明的另一个方面在于提供治疗因压力门通钠和/或钙通道功能障碍导致的紊乱造成的病症侵害的患者的方法，包括对所述的患者给予有效量的2-[2-(苯基)乙氨基]烷酰胺衍生物。 
上述神经性障碍包括慢性和急性类型的疼痛，特别是神经病性和炎性痛，头痛，痉挛；神经变性病症，例如阿尔茨海默病，帕金森病，癫痫，多动腿综合征，中风和脑缺血；认识病，例如轻度认知缺损(MCI)和精神病，包括抑郁症，双相性精神障碍(bipolar disorder)，躁狂，精神分裂症，精神病，焦虑和成瘾。上述炎性病症包括侵害所有身体系统的炎症过程，例如骨骼肌系统的炎症过程，关节病，侵害皮 肤和相关组织的病症；呼吸系统病症和免疫和内分泌系统病症。上述所有病理情况的更具体解释在下文中给出。 
本发明的描述 
本申请的目的为一类新的2-[2-(苯基)乙氨基]烷酰胺衍生物，它们作为钠和/或钙通道调节剂具有高度活性并且基本上没有任何MAO抑制活性或具有显著降低的MAO抑制活性，且由此在预防、减轻和治愈广泛病状中具有潜在地减少了的副作用，所述病症包括但不限于神经病学的、认知、精神病学的、炎性、泌尿生殖和胃肠疾病，其中上述机理已被描述为扮演病理角色。 
在本说明书和权利要求书中，措辞“钠和/或钙通道调节剂”表示能够以电压依赖性方式阻断钠和/或钙电流的化合物。 
因此，本发明的目的在于式(I)的化合物 
其中： 
X为-O-，-S-或-SO2-； 
Y为氢，OH或O(C1-C4)烷基； 
Z为＝O或＝S； 
R为(C3-C10)烷基；ω-三氟(C3-C10)烷基； 
R1和R2独立地为氢，羟基，(C1-C8)烷氧基，(C1-C8)烷硫基，卤素，三氟甲基或2，2，2-三氟乙基；或R1和R2之一位于R-X-的邻位上，并且与同一R-X-共同表示 基团，其中R0为(C2-C9)烷基； 
R3和R′3独立地为氢或(C1-C4)烷基； 
R4和R5独立地为氢，(C1-C4)烷基；或R4为氢且R5为选自 -CH2-OH，-CH2-O-(C1-C6)烷基，-CH(CH3)-OH，-(CH2)2-S-CH3，苄基和4-羟基苄基的基团；或R4和R5与相邻碳原子共同构成(C3-C6)环烷基残基； 
R6和R7独立地为氢或(C1-C6)烷基；或与相邻氮原子共同构成5-6元单环饱和杂环，其任选包含一个额外的选自-O-，-S-和-NR8-的杂原子，其中R8为氢或(C1-C6)烷基； 
条件是当X为-S-或-SO2-时，Y不为OH或O(C1-C4)烷基； 
如果可能，为分离形式的单一旋光异构体或其任意比例的混合物及其药学上可接受的盐。 
尽管本申请中具体描述的某些化合物属于WO 90/14334的通式范围，但是它们中无一被该申请具体描述。本申请式(I)定义的化合物中无一在WO 90/14334中被具体描述或提及。事实上，仅极少2-(2-苯基-乙氨基)烷酰胺衍生物在所述在先对比文件中鉴定，然而，它们在苯基部分的4-位上带有苄氧基，苄氨基或苄基取代基。 
另外，本申请式(I)的下列选择类型的化合物不属于WO 90/14334的通式范围： 
a)化合物，其中X为-SO2-； 
b)化合物，其中Y为OH或O(C1-C4)烷基； 
c)化合物，其中Z为＝S； 
d)化合物，其中R为(C9-C10)烷基或ω-三氟(C3-C10)烷基； 
e)化合物，其中R1和/或R2不为氢； 
f)化合物，其中R3和R′3均不为氢 
g)化合物，其中R4和R5均不为氢，并且在与相邻碳原子结合时也不构成(C3-C6)环烷基残基； 
h)化合物，其中R6和R7与相邻氮原子共同构成单环5-6元饱和杂环，其任选包含一个额外的选自-O-，-S-和-NR8-的杂原子，其中R8为氢或(C1-C6)烷基。 
本说明书和权利要求书中所用的术语“烷基”，如果不在另外的部分中有具体说明，那么认定为直链或支链烷基；所述基团或部分的 实例包括：甲基，乙基，丙基，异丙基，丁基，异丁基，戊基，异戊基，己基，庚基，辛基，壬基，癸基及其异构体。 
本说明书和权利要求书中所用的术语“烷氧基”认定直链或支链烷氧基；所述基团的实例包括：甲氧基，乙氧基，丙氧基，异丙氧基，丁氧基，异丁氧基，叔-丁氧基，戊氧基，异戊氧基，己氧基，异己氧基，庚氧基，辛氧基及其异构体。 
术语“(C3-C6)环烷基”认定为环脂族环；所述环的实例包括：环丙基，环丁基，环戊基和环己基。 
术语“卤素”表示卤原子基团，例如氟，氯，溴和碘。 
任选包含一个选自-O-，-S-或-NR8-(其中R8为氢或(C1-C6)烷基)的额外的杂原子的单环5或6元饱和杂环的实例，例如为吡咯烷，吡唑烷，咪唑烷，噁唑烷，异噁唑烷，哌啶，哌嗪，N-甲基哌嗪，吗啉和硫代吗啉。 
当本发明的化合物包含一个或多个不对称碳原子且由此它们可以作为旋光异构体或其混合物存在时，本发明在其范围内包括分离形式及其任意比例的混合物形式的所述化合物的所有可能的单一旋光异构体(例如对映体，非对映异构体)，包括外消旋混合物。 
式(I)的化合物的药学上可接受的盐的实例为与有机酸和无机酸形成的盐，所述的无机酸和有机酸例如为盐酸，氢溴酸，氢碘酸，硝酸，硫酸，磷酸，乙酸，丙酸，酒石酸，富马酸，柠檬酸，苯甲酸，琥珀酸、肉桂酸，扁桃酸，水杨酸，乙醇酸，乳酸，草酸，苹果酸，马来酸，丙二酸，富马酸，酒石酸，对-甲苯磺酸，甲磺酸，戊二酸和其它例如可以在P.Heinrich Stahl，Camille G.Wermuth“Handbookof pharmaceutical salts：properties，selection and use”，WILEY-VCH，2002中找到的酸. 
式(I)的化合物作为钠和/或钙通道调节剂具有活性且由此用于预防，减轻和治愈广泛的病理状况，包括但不限于神经学的、认知、精神病学的、炎性、泌尿生殖和胃肠疾病，其中上述机理已被描述为扮演病理角色。 
式(I)的优选化合物为化合物，其中： 
X为-O-，-S-； 
Y为氢，OH或O(C1-C3)烷基； 
Z为＝O或＝S； 
R为(C4-C7)烷基或ω-三氟(C4-C6)烷基； 
R1和R2独立地为氢，(C1-C4)烷氧基，卤素，三氟甲基或2，2，2-三氟乙基；或R1和R2之一位于R-X-邻位上，并且与同一R-X-共同表示 基团，其中R0为(C2-C5)烷基； 
R3和R′3独立地为氢或(C1-C3)烷基； 
R4和R5独立地为氢或(C1-C4)烷基；或R4为氢且R5为选自-CH2-CH、-CH2-O-(C1-C3)烷基、-(CH2)2-S-CH3、苄基和4-羟基苄基的基团； 
R6和R7独立地为氢或(C1-C4)烷基；或与相邻的氮原子共同构成5-6元单环饱和杂环，任选包含一个额外的选自-O-和-NR8-的杂原子，其中R8为氢或(C1-C3)烷基； 
条件是当X为-S-时，Y不为OH或O(C1-C4)烷基； 
如果可能，为分离形式的单一旋光异构体或其任意比例的混合物及其药学上可接受的盐。 
式(I)的更优选的化合物为化合物，其中： 
X为-O-，-S-； 
Y为氢或O(C1-C3)烷基； 
Z为＝O或＝S； 
R为(C4-C7)烷基或ω-三氟(C4-C6)烷基； 
R1和R2独立地为氢，(C1-C3)烷氧基，氟，氯，三氟甲基或2，2，2-三氟乙基；或R1和R2之一位于R-X-邻位上并且与同一R-X-共同表示 基团，其中R0为(C3-C4)烷基； 
R3和R′3独立地为氢或(C1-C3)烷基； 
R4和R5独立地为氢或(C1-C4)烷基；或R4为氢且R5为选自-CH2-OH，-CH2-O-(C1-C3)烷基，苄基和4-羟基苄基的基团； 
R6和R7独立地为氢或(C1-C3)烷基；或与相邻氮原子共同构成5-6元单环饱和杂环，任选包含一个额外的选自-O-和-NR8-的杂原子，其中R8为氢或(C1-C3)烷基； 
条件是当X为-S-时，Y不为O(C1-C4)烷基； 
如果可能，为分离形式的单一旋光异构体或其任意比例的混合物及其药学上可接受的盐。 
甚至更优选式(I)的化合物为那些化合物，其中： 
X为-O-； 
Y为氢； 
Z为＝O； 
R为(C4-C6)烷基； 
R1和R2独立地为氢或卤素，优选氟； 
R3，R′3，R4和R5为氢； 
R6和R7独立地为氢或(C1-C3)烷基； 
如果可能，为分离形式的单一旋光异构体或其任意比例的混合物及其药学上可接受的盐； 
最优选本发明式(I)的化合物选自： 
2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-乙酰胺 
2-[2-(3-戊氧基苯基)-乙氨基]-乙酰胺 
2-[2-(3-己氧基苯基)-乙氨基]-乙酰胺 
2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N-甲基乙酰胺 
2-[2-(3-戊氧基苯基)-乙氨基]-N-甲基乙酰胺 
2-[2-(3-己氧基苯基)-乙氨基]-N-甲基乙酰胺 
2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺 
2-[2-(3-丁硫基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺 
2-[2-(3-丁基磺酰基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺 
2-[2-(3-丁氧基苯基)-(N′-羟基)乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺 
2-[2-(3-丁氧基苯基)-(N′-甲氧基)乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺 
2-[2-(3-丁氧基苯基)-(N′-丙氧基)乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺 
2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基-硫代乙酰胺 
2-[2-(3-丁氧基苯基)-2-甲基丙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺 
2-{2-[3-(4，4，4-三氟丁氧基)苯基]-乙氨基}-N，N-二甲基乙酰胺 
2-[2-(3-丁硫基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺 
2-[2-(3-丁氧基-2-氯苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺 
2-[2-(3-丁氧基-2-氟苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺 
2-[2-(3-丁氧基-4-甲氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺 
2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二乙基乙酰胺 
2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二丙基乙酰胺 
2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二丁基乙酰胺 
2-[2-(3-戊氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺 
2-[2-(3-己氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺 
2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-1-吡咯烷-1-基-乙-1-酮 
2-[2-(3-戊氧基苯基)-乙氨基]-1-吡咯烷-1-基-乙-1-酮 
2-[2-(3-己氧基苯基)-乙氨基]-1-吡咯烷-1-基-乙-1-酮 
2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基丙酰胺 
2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-3-羟基-N，N-二甲基丙酰胺 
2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-3-甲氧基-N，N-二甲基丙酰胺 
2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-3-丙氧基-N，N-二甲基丙酰胺 
2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-2，N，N-三甲基丙酰胺 
2-[2-(3-戊氧基苯基)-乙氨基]-2，N，N-三甲基丙酰胺 
2-[2-(3-己氧基苯基)-乙氨基]-2，N，N-三甲基丙酰胺 
(S)-2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-丙酰胺 
(S)-2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N-甲基丙酰胺 
(S)-2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基丙酰胺 
(R)-2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-丙酰胺 
(R)-2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N-甲基丙酰胺 
(R)-2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基丙酰胺 
2-[2-(3-丁氧基-2-三氟甲基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺 
2-[2-(3-丁氧基-4-三氟甲基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺 
2-[2-(3-丁氧基-5-三氟甲基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺 
如果可能，为分离形式的单一旋光异构体或其任意比例的混合物及其药学上可接受的盐，优选其与盐酸或甲磺酸形成的盐。 
按照更详细描述在实验部分中的常规操作制备本发明的化合物。 
特别地，按照如下方案I中所示的合成方法制备为本发明目的的式(I)的大部分化合物，其中X为-O-且Y为氢： 
方案I 
其中： 
R，R1，R2，R3，R′3，R4，R5，R6和R7具有与上述式(I)中定义的相同的含义，Ph表示苯基，boc为叔-丁氧羰基且EWG表示“吸电子基团”，例如，卤素或甲磺酰氧基或甲苯磺酰氧基或三氟甲磺酸酯基。Lawessons试剂为2，4-双(4-甲氧基苯基)-1，3，2，4-二硫杂二磷杂环丁烷-2，4-二硫化物(The Merck Index，13th Ed.，5408，966页)。 
按照本发明的一个优选的实施方案，在有碱存在下进行与R-EWG的烷基化反应，且更优选所述的碱选自K2CO3，三乙胺和二异丙基乙胺。 
用于制备式(I)的化合物的可替代方法，其中R，R1，R2，R3，R′3， R4，R5，R6和R7具有与式(I)中相同的含义，X为O且Y为氢，在于使下式的醛 
R4，R5，R6和R7具有与式(I)中相同的含义，X为O且Y为氢，在于使下式的醛 
与下式的α-氨基烷酰胺进行还原烷基化： 
还原剂可以选自NaBH4，NaBH3CN和氰基硼氢化(聚苯乙烯基甲基)-三甲基铵。 
所得式(I)的2-[2-(苯基)乙氨基]烷酰胺化合物，其中Z为＝O，可以通过如方案I中所示用boc2O保护-NH-基团，使N-boc保护的衍生物与Lawesson试剂反应且最终用HCl脱保护被转化成相应的化合物，其中Z为＝S。 
作为这些方法的另一种可替代选择，使式的胺 
通过与下式的链烷酸酯反应烷基化： 
该反应在有碱(例如三乙胺)存在下进行，并且使所得下式的链烷酸酯衍生物 
与式HNR6R7的胺任选在有酰胺化催化剂(例如三甲基铝)存在下反应而得到式(I)的化合物，其中Y为氢。 
式(I)的化合物，其中R5为氢，任选可以被转化成相应的式(I)的化合物，其中R5为(C1-C4)烷基，-CH2OH，-CH2-O-(C1-C6)烷基，-CH(CH3)-OH，-(CH2)2-S-CH3，苄基或4-羟基苄基，通过下列步骤进行：用式EWGR5的烷基化试剂使上述式(I)化合物的N-保护的衍生物进行C-烷基化过程，其中EWG具有与上述相同的含义并且R5表示上述所列基团之一。在这种情况中，当式(I)的最终化合物为需要的，其中基团R5包含羟基部分时，通常使用试剂EWGR5，其中相应的羟基部分例如通过乙酰化被保护。 
然后从所得C-烷基化化合物中除去所有保护基。 
如果需要，当获得游离碱形式的式(I)的化合物时，可以通过常规操作将其转化成其盐(例如用盐酸)。 
按照如下方案II中所示的合成方法制备式(I)的化合物，其中X为S或SO2且Y为氢： 
方案II 
其中 
R，R1，R2，R3，R′3，R4，R5，R6和R7具有与式(I)中定义的相同的含义，boc为叔-丁氧羰基且EWG具有与上述相同的含义，“oxone”表示过氧化一硫酸钾且Lawessons试剂为2，4-双(4-甲氧基苯基)-1，3，2，4-二硫杂二磷杂环丁烷-2，4-二硫化物。 
按照如下方案III中所示的合成方法制备式(I)的化合物，其中X为-O-且Y为OH或O(C1-C4)烷基： 
方案III 
其中 
R，R1，R2，R3，R′3，R4，R5，R6和R7具有与式(I)中定义的相同的含义，Ph表示苯基且EWG具有与上述相同的含义。Dress-Martin periodinane参见：Dess，D.B.；Martin，J.C.J.Am.Chem.Soc.，1991，113，7277。 
方案I，II和III中使用的中间体为商购的或由商购化合物按照众所周知的方法制备。 
按照制备本发明化合物进行的反应评价任选保护的有用性和对合适的保护基的选择和被保护的官能基属于本领域技术人员的公知常识范围。 
任选的保护基的除去按照常规技术进行。 
就一般涉及的保护基在有机化学中的应用而言参见Theodora W.Greene和Peter G.M.Wuts “Protective groups in organicsynthesis”，John Wiley & Sons，Inc.，II Ed.，1991。 
式(I)的化合物的盐的制备按照公知方法进行。 
为了制备式(I)的化合物的单一旋光异构体，可以通过空间受控的合成或通过使用具有适当手性的试剂或按照常规操作从其对映异构体混合物中分离所需的异构体获得所述的化合物。 
药理学 
本发明化合物可以用于制备具有钠和/或钙通道调节剂活性的药物，用于由电压门控钠和/或钙通道功能障碍导致的障碍。 
这类化合物是钠和/或钙通道的电压-依赖性阻断剂，即使在低微摩尔范围内也有效力，这得到钠和/或钙流入的阻断(荧光测定法)和电流的电压-依赖性阻断(膜片箝技术)的证明。 
将本发明有代表性的化合物的活性与已知来自WO 90/14334的化合物的活性进行比较，所述来自WO 90/14334的化合物已经在临床上被研发用于治疗应用，例如“ralfinamide”(S)-(+)-2-[4-(2-氟苄氧基)-苄氨基]-丙酰胺和/或“safinamide”(S)-(+)-2-[4-(3-氟苄氧基)-苄氨基]-丙酰胺。 
Safinamide(NW-1015，FCE-26743A，PNU-151774E)为钠通道阻断 剂，钙通道调节剂，单胺氧化酶B(MAO-B)抑制剂，谷氨酸盐释放抑制剂和多巴胺代谢调节剂。 
Safinamide用于治疗CNS障碍，特别是癫痫，帕金森病，阿尔茨海默病，多动腿综合征(WO 90/14334，WO 04/089353，WO 05/102300)和认知障碍(EP Appl.N°06/012352.8)。 
Ralfinamide(NW-1029，FCE-26742A，PNU-0154339E)为钠和钙通道抑制剂和NMDA受体调节剂用于治疗通性疾患，包括急性和慢性类型的神经病性和炎性痛，偏头痛，抑郁症，心血管、炎性、泌尿生殖、代谢和胃肠道病症(WO 99/35125，WO 03/020273，WO 04/062655，WO05/018627，WO 05/070405，WO 06/02705)。 
通过基于荧光的钠流入测定法分别在ND7/23细胞系中(表1)和通过在大鼠皮质神经元中的电生理膜片钳技术(表3)和在ND7/23细胞系(表4)中测定2-[2-(苯基)乙氨基]烷酰胺衍生物的钠通道调节活性。 
通过基于荧光的钙流入测定法(表2)在AtT20细胞系中测定2-[2-(苯基)乙氨基]烷酰胺衍生物的钙通道调节活性。 
使用放射性酶测定法(表5)测定上述化合物在大鼠脑线粒体中的MAO-B活性。 
在小鼠“福尔马林试验”中(表6)并且在大鼠“神经病性疼痛的脊神经结扎模型(SNL)”(图1)中评价上述化合物的体内止痛活性。使用大鼠“完全弗氏佐剂模型(CFA)”测定抗炎性疼痛活性。 
使用小鼠“乙酸-诱发的内脏痛”模型测定抗内脏痛活性(图2)。 
使用小鼠“最大电休克试验”测定抗惊厥活性(表7和表8)。 
使用“苯丙胺和氯氮卓诱发的小鼠运动过多”模型(图3)和“反常睡眠紊乱”大鼠模型测定抗躁狂活性。 
使用“Morris水迷宫试验”评价抗遗忘活性，其中用东莨菪碱在大鼠中并且在大鼠“新目标认知试验”中诱发健忘症。 
为了研究化合物的抗抑郁症活性，使用小鼠“尾部悬挂试验”模型。 
使用小鼠和大鼠“精神分裂症中的认知缺损试验”和“惊恐前冲 动抑制(PPI)”评价抗精神分裂症活性(图4)。 
使用大鼠“可卡因-诱发的行为敏感试验”评价化合物的抗成瘾活性。 
将“大鼠的乙酸急性膀胱刺激”和“大鼠的环磷酰胺中等膀胱刺激”用作泌尿疾病的模型。 
使用大鼠“偏头痛试验”测定抗偏头痛活性。 
在电生理膜片钳研究中，这类物质也表现“使用与频率-依赖性”，也就是当存在失活状态通道的大量蓄积时在高频刺激期间的阻断的强化，例如在神经元病理条件中。在功能上，使用-依赖性阻断导致神经元活动在高频放电下的抑制，在正常放电速率下的阻断能力降低，提示了本发明化合物可能选择性地抑制钠和/或钙通道的异常活动，不影响生理活动，从而限制CNS抑制效应(W.A.Catterall，TrendsPharmacol.Sci.(1987)8：57-65)。 
本发明有代表性的化合物之一为2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺盐酸盐(NW-3509)，发现他在几乎所有体外和体内模型中均具有非常活性。 
本发明的化合物在以0.1-100mg/kg在本文如下描述的不同动物模型中口服，腹膜内或静脉内给药时具有活性。 
鉴于上述作用机理，本发明化合物可用于预防或治疗神经病性疼痛。神经病性疼痛综合征包括但不限于：糖尿病性神经病；坐骨神经痛；非特异性下背部疼痛；多发性硬化疼痛；纤维肌痛；HIV-相关性神经病；神经痛，例如疱疹后神经痛与三叉神经痛、Morton氏神经痛、灼痛；和由物理创伤、截肢、幻肢、癌症、中毒或慢性炎性病症导致的疼痛；中枢性疼痛，例如见于丘脑综合征，疼痛的混合中枢与外周形式，例如复合局部疼痛综合征(CRPS)，也称反射交感神经营养不良。 
本发明化合物也可用于治疗慢性疼痛。慢性疼痛包括但不限于由炎症或炎性-相关病症、骨关节炎、类风湿性关节炎、急性损伤或创伤导致的慢性疼痛、上背部疼痛或下背部疼痛(由全身、局部或原发性脊柱疾病所致，例如神经根病)、骨疼痛(由骨关节炎、骨质疏松、骨代 谢或未知原因引起)、骨盆疼痛、与脊髓损伤有关的疼痛、心胸疼痛、非心胸疼痛、中枢性中风后疼痛、肌筋膜疼痛、镰状细胞疼痛、癌症疼痛、法布里氏病、AIDS疼痛、老年病性疼痛或者由头痛、颞下颌关节综合征、痛风、纤维化或胸出口综合征导致的疼痛，特别是类风湿性关节炎和骨关节炎。 
本发明化合物也可用于治疗急性疼痛(由急性损伤、疾病、运动医学损伤、腕管综合征、灼伤、肌与骨骼扭伤与劳损、肌腱劳损、颈臂疼痛综合征、消化不良、胃溃疡、十二指肠溃疡、痛经、子宫内膜异位或手术(例如开心或旁路手术)导致、手术后疼痛、肾结石疼痛、胆囊疼痛、胆结石疼痛、分娩疼痛或牙痛。 
本发明化合物也可用于治疗头痛、偏头痛、紧张型头痛、转化性偏头痛或进化性头痛、簇性头痛，以及继发性头痛症，例如从感染、代谢障碍或其他全身疾病衍生，和其他急性头痛、发作性偏头痛等，由上述原发性与继发性头痛的恶化所致。 
本发明化合物也可用于治疗神经病症，例如癫痫，包括单纯性部分癫痫发作、复合性部分癫痫发作、继发性泛化性癫痫发作，进一步包括失神性癫痫发作、肌痉挛性癫痫发作、阵挛性癫痫发作、紧张性癫痫发作、紧张性阵挛性癫痫发作和弛缓性癫痫发作。本发明化合物也可用于治疗各种起源的神经变性障碍，包括阿尔茨海默病，帕金森病其他痴呆病症，例如利维小体、额-颞性痴呆和τ蛋白病；肌萎缩侧索硬化和其他帕金森综合征；其他脊髓小脑变性和Charcot-Marie-Toot神经病，外伤性脑损伤，中风和脑缺血。 
本发明化合物也可用于治疗认知障碍和精神病学障碍。认知障碍的实例为轻度认知缺损(MCI)和与孤独症，诵读困难，注意力缺陷多动症，精神分裂症，强迫症，精神病，双相性精神障碍，抑郁症，图雷特综合征和儿童、青少年和成人中的学习障碍相关的那些，与年龄相关的记忆缺陷，与年龄相关的认知下降，阿尔茨海默病，帕金森病，唐氏综合征，外伤性脑损伤，亨廷顿舞蹈病，进行性核上麻痹(PSP)，HIV，中风，血管疾病，皮克病或克-雅病，多发性硬化(MS)和其它白 质病症和药物-诱发的认知恶化。精神病学障碍包括但不限于重症抑郁、情感淡漠、心境恶劣、躁狂、双相性精神障碍(例如I型双相性精神障碍、II型双相性精神障碍)、循环性精神障碍、快速循环、极端循环、躁狂、轻症躁狂、精神分裂症、精神分裂症样精神障碍、分裂情感性精神障碍、人格障碍、伴有或没有多动行为的注意力障碍、妄想症、短暂性精神病、分享性精神病、由一般医学病症引起的精神病、物质-诱发的精神病或者没有其它指定的精神病，焦虑症，例如泛化性焦虑症，恐慌症、创伤后紧张症、冲动控制障碍、恐怖症、分离状态，尤其在吸烟、药物成瘾和酒精中毒。特别是双相性精神障碍、精神分裂症、精神病、焦虑和成瘾。 
本发明化合物抑制影响所有机体系统的炎性过程。因此可用于治疗肌肉-骨骼系统的炎性过程，下面是所有靶障碍实例的列表而非全部：关节炎症，例如强直性脊椎炎、宫颈关节炎、纤维肌痛、痛风、青少年类风湿性关节炎、腰骶关节炎、骨关节炎、骨质疏松、牛皮癣性关节炎、风湿病；影响皮肤和相关组织的障碍：湿疹、牛皮癣、皮炎和炎性病症，例如晒伤；呼吸系统的障碍：哮喘、变应性鼻炎和呼吸窘迫综合征，其中牵涉有炎症的肺障碍，例如哮喘和支气管炎；慢性阻塞性肺疾病；免疫和内分泌系统的障碍：结节性关节周炎、甲状腺炎、再生障碍性贫血、硬化病、重症肌无力、多发性硬化和其他脱髓鞘障碍、脑脊髓炎、肉样瘤病、肾炎综合征、贝切特综合征、多肌炎、齿龈炎。 
本发明化合物也可用于治疗胃肠(GI)道障碍，例如炎性肠障碍，包括但不限于溃疡性结肠炎、克罗恩氏病、回肠炎、直肠炎、腹腔疾病、肠病、微观或胶原性结肠炎、嗜曙红细胞性胃肠炎、或者直肠结肠切除术后和回肠吻合术后导致的盲肠炎，和肠易激综合征，包括任何与腹部疼痛和/或腹部不适有关的障碍，例如幽门痉挛、神经性不消化、痉挛性结肠、痉挛性结肠炎、痉挛性肠、小肠神经机能病、功能性结肠炎、粘液性结肠炎、轻泻性结肠炎和功能性消化不良；也用于治疗萎缩性胃炎、变形性胃炎、溃疡性结肠炎、消化性溃疡、胃热 (pyresis)和其他GI道损伤，例如幽门螺杆菌、胃食管反流疾病、胃轻瘫，例如糖尿病性胃轻瘫；和其他功能性肠障碍，例如非溃疡性消化不良(NUD)；呕吐、腹泻和内脏炎症。 
发明化合物也可用于治疗生殖-泌尿道的障碍，例如活动过度性膀胱、前列腺炎(慢性细菌性和慢性非细菌性前列腺炎)、前列腺痛、间质性膀胱炎、尿失禁与良性前列腺增生、子宫附件炎、骨盆炎症、前庭大腺炎和阴道炎。特别是活动过度性膀胱和尿失禁。 
将被领会的是，本发明化合物可以有利地与一种或以上其他治疗剂结合使用。适合于附属疗法的药物实例包括5-羟色胺受体调节剂，包括5HT1B/1D激动剂，例如曲坦类(例如舒马普坦或那拉曲坦)；腺苷A1激动剂；腺苷A2拮抗剂；嘌呤能P2X拮抗剂；EP配体；NMDA调节剂，例如甘氨酸拮抗剂；AMPA调节剂；P物质拮抗剂(例如NK1拮抗剂)；大麻素；烟碱受体激动剂；α-1或2肾上腺素能激动剂；对乙酰氨基酚或非那西汀；5-脂氧合酶抑制剂；白三烯受体拮抗剂；DMARD(例如甲氨蝶呤)；加巴喷丁、普瑞巴林和相关化合物；L-多巴和/或多巴胺激动剂；儿茶酚-O-甲基转移酶抑制剂；三环抗抑郁剂(例如阿米替林)；神经元稳定性抗癫痫药；单胺能摄取抑制剂(例如文拉法辛)；基质金属蛋白酶抑制剂；一氧化氮合成酶(NOS)抑制剂，例如iNOS或nNOS抑制剂；自由基清除剂；α-突触核蛋白聚集抑制剂；胆碱酯酶抑制剂、胆固醇降低剂；α-分泌酶调节剂；β-分泌酶调节剂；β-淀粉样蛋白聚集抑制剂；肿瘤坏死因子α释放或作用抑制剂；抗体疗法，例如单克隆抗体疗法；抗病毒剂，例如核苷抑制剂(例如拉米夫定)或免疫系统调节剂(例如干扰素)；阿片类止痛剂，例如吗啡；类香草醛受体激动剂和拮抗剂；止痛剂，例如环加氧酶-1和/或环加氧酶-2抑制剂；局部麻醉剂，例如利多卡因和衍生物；兴奋剂，包括咖啡因；H2-拮抗剂(例如雷尼替丁)；质子泵抑制剂(例如奥美拉唑)；抗酸剂(例如铝或镁的氢氧化物)；抗胃肠气胀药(例如semethicone)；减充血剂(例如苯福林、苯丙醇胺、伪麻黄碱、羟甲唑啉、肾上腺素、萘唑啉、赛洛唑啉、丙己君或左脱氧麻黄碱)；镇咳剂(例如可待因、氢可酮、 carmiphen、喷托维林或右美沙芬)；利尿剂；或镇静性或非镇静性抗组胺剂；抗精神病药，包括典型和非典型抗精神病药物(例如氟哌啶醇，利培酮，氯氮平)；抗抑郁药，例如选择性5-羟色胺再摄取抑制剂，5-羟色胺和去甲肾上腺素再摄取抑制剂，MAO抑制剂和三环抗抑郁药；情绪稳定剂(例如锂，拉莫三嗪，丙戊酸盐)；抗焦虑药(例如苯二氮卓类，丁螺环酮，β肾上腺素能受体拮抗剂)；吗啡或吗啡衍生物；其他钙或钠通道阻断剂。 
可以理解的是，本发明涵盖式(I)化合物或其药学上可接受的盐与一种或多种治疗剂组合的应用， 
本发明化合物可用于人和兽医药物。可以理解的是，本文所用的术语“治疗”无论是否具体定义，包括病理病变的预防、减轻和治愈，确切而言，它们包括既定症状的治疗和预防性治疗。治疗性或预防性用在上述病变中的本发明化合物将被优选地用作药物组合物中的活性成分。 
因此，本发明的进一步目标是药物组合物，含有治疗有效量的本发明化合物或其盐，混合有药学上可接受的载体。 
因此，措辞“治疗有效的”在表示本发明化合物的“量”或“剂量”时，表示任何所述化合物足以用于既定症状治疗和上述病理病变的预防性治疗的“量”或“剂量”。 
本发明的药物组合物客体可以在多种即时与改性释放的剂型中给药，例如口服方式，剂型为片剂、锭剂、胶囊剂、糖衣或膜衣片剂、液体溶液、乳液或悬浮液；直肠方式，剂型为栓剂；非肠道方式，例如肌内和/或储库制剂；静脉内注射或输注；局部和透皮方式，剂型为贴剂和凝胶和霜剂。 
适合于制备这类组合物的药学上可接受的、治疗惰性的有机和/或无机载体材料例如包括水、明胶、阿拉伯胶、乳糖、淀粉、纤维素、硬脂酸镁、滑石粉、植物油、环糊精、聚亚烷基二醇等。 
包含如上定义的式(I)苯基乙基氨基衍生物的组合物可以被灭菌，并且可以含有其他熟知的组分，例如防腐剂、稳定剂、湿润或乳化剂， 例如石蜡油、二缩甘露醇单油酸酯、调节渗透压的盐、缓冲剂等。 
例如，除了活性成分以外，固体口服剂型还可以含有稀释剂，例如乳糖、葡萄糖、蔗糖、纤维素、玉米淀粉或马铃薯淀粉；润滑剂，例如二氧化硅、滑石粉、硬脂酸、镁或钙的硬脂酸盐，和/或聚乙二醇；粘合剂，例如淀粉、阿拉伯胶、明胶、甲基纤维素、羧甲基纤维素或聚乙烯吡咯烷酮；崩解剂，例如淀粉、藻酸、藻酸盐或淀粉乙醇酸钠；泡腾混合物；染料；甜味剂；湿润剂，例如卵磷脂、聚山梨醇酯、月桂基硫酸盐；和一般用在药物制剂中的无毒的与无药理活性的物质。所述药物制剂可以按已知方式制备，例如借助混合、造粒、压片、糖包衣或膜包衣过程。 
本发明的药物组合物目标的制备可以按照普通技术进行。 
口服制剂包含持续释放制剂，这可以按常规方式制备，例如向片剂和颗粒剂涂以肠溶衣。 
口服给药用液体分散体例如可以是糖浆、乳液和悬浮液。 
糖浆可以含有作为载体的例如蔗糖或蔗糖与甘油和/或甘露糖醇和/或山梨醇。 
悬浮液和乳液可以含有作为载体的例如天然树胶、琼脂、藻酸钠、果胶、甲基纤维素、羧甲基纤维素或聚乙烯醇。除了活性化合物以外，肌内注射用悬浮液或溶液还可以含有药学上可接受的载体，例如无菌水、橄榄油、油酸乙酯、二醇类，例如丙二醇，和如果需要的话适量盐酸利多卡因。静脉内注射或输注溶液可以含有作为载体的例如无菌水，或者优选地它们可以是无菌、水性、等渗盐水溶液的形式。 
除了活性成分以外，栓剂还可以含有药学上可接受的载体，例如可可脂、聚乙二醇、聚氧乙烯脱水山梨醇脂肪酸酯表面活性剂或卵磷脂。 
包含如上定义的式I苯基乙基氨基衍生物的组合物将在每剂量单元中、例如胶囊剂、片剂、干粉注射剂、茶匙、栓剂等，含有0.1mg至约500mg的一种或多种活性成分，最优选1至10mg。 
所要给予的最佳治疗有效剂量可以由本领域技术人员来决定，并 且基本上将因制剂浓度、给药的方式和所治疗的病症或障碍的进展而异。另外，与特定受治疗者有关的因素、包括受治疗者的年龄、体重、饮食和给药时间，也将需要调节剂量至适当的治疗有效水平。 
可以理解的是，尽管结合其优选的实施方式描述了发明，不过本领域技术人员知晓能够实现其他实施方式，而不背离发明的精神。 
实验部分 
利用Varian Gemini 200MHz光谱计，在CDCl3或DMSO-d6溶液中测定1H-NMR光谱。化学位移用CDCl3或DMSO-d6定义为δ，以D2O为内标。 
利用与UV检测器(220nm)偶联的X-Terra RP18柱(5μm，4.6x50mm)和Finnigan Aqa质谱计(电喷射，阳性电离模式)，在Gilson仪器中测定HPLC/MS分析。用于分析的条件：流速：1.2ml/min；柱温：50℃；A/B洗脱梯度(洗脱剂A：0.1％甲酸水溶液，洗脱剂B：0.1％甲酸乙腈溶液)：0至8.0分钟为5-95％B，8.0至9.5分钟为95％B。 
为了更好地阐述发明，现在给出下列实施例。 
实施例1 
2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺盐酸盐 
按照方案I合成该化合物。 
步骤1：2-(3-羟基苯基)-(叔-丁氧羰基)乙胺 
方法A 
向2-(3-苄氧基苯基)-乙胺盐酸盐(12.6g，47.7mmol)在H2O(120ml)和1M NaOH(95ml)中的混悬液中滴加boc2O(15.6g，71.5mmol)在THF(120ml)中的溶液并且在室温下搅拌该混合物。16小时后，在减压下除去有机溶剂并且用CH2Cl2(2×100ml)萃取该混合物。用Na2SO4 干燥收集的有机相，过滤该溶液并且在减压下蒸发溶剂而得到粗油，将其不经进一步纯化使用。 
1H NMR(300MHz，CDCl3)：δ7.47-7.28(m，5H)，7.22(m，1H)，6.87-6.77(m，3H)，5.05(s，2H)，4.52(bs，1H)，3.38(dt，J＝6.5Hz，J＝6.5Hz，2H)，2.77(t，J＝7.1Hz，2H)，1.44(s，9H)。ESI+MS：对C20H25NO3的计算值：327.43；测定值：328.1(MH+)。 
在35psi下和Parr仪中将步骤1中获得的2-(3-苄氧基苯基)-(叔-丁氧羰基)乙胺和在MeOH(240ml)中的10％Pd/C(1.3g)氢化16小时。通过用C盐(Celite)垫过滤除去催化剂并且在减压下蒸发溶剂。将粗油不经进一步纯化使用。 
1H NMR(300MHz，CDCl3)：δ7.19(dd，J＝7.8Hz，J＝7.8Hz，1H)，6.82-6.66(m，3H)，4.56(b s，1H)，3.39(dt，J＝7.0Hz，J＝6.3Hz，2H)，2.76(t，J＝7.0Hz，2H)，1.46(s，9H)。ESI+MS：对C13H19NO3的计算值：237.30；测定值：238.2(MH+)。 
方法B 
将33％HBr在乙酸中的溶液(150ml)冷却至0℃并且逐步加入3-甲氧基苯乙胺(10.0g，66.0mmol)。将该混合物加热至80℃并且搅拌16小时。在减压下蒸发溶剂并且将残余物溶于水(160ml)。加入4M NaOH(15ml)，随后加入2M NaOH(130ml)。滴加boc2O(15.8g，72.6mmol)在THF(160ml)中的溶液并且将该混合物在室温下搅拌16小时。分离所得混合物上部的有机层并且用CH2Cl2(3×100ml)萃取水层。用Na2SO4干燥合并的有机溶液，过滤并且在减压下蒸发溶剂。得到粗的标题化合物(16.8g)，为棕色树胶，将其不经进一步纯化用于随后的步骤。 
ESI+MS：对C13H19NO3的计算值：237.3；测定值：182.1(MH+-叔-丁基，主要碎片)。 
步骤2：2-(3-丁氧基苯基)-(叔-丁氧羰基)乙胺 
向步骤1中获得的2-(3-羟基苯基)-(叔-丁氧羰基)乙胺在丙酮中的溶液(240ml)中加入K2CO3(19.8g)和1-溴丁烷(15ml)。将该混悬液回流3天并且在减压下蒸发溶剂。将残余物溶于H2O(200ml)并且用CH2Cl2(2×200ml)萃取。在减压下除去溶剂并且通过快速色谱法纯化残余物(石油醚/EtOAc 85∶15)而得到1(11.3g，3步内81％)标题化合物，为无色的油。 
1H NMR(300MHz，CDCl3)：δ7.22(dd，J＝7.6Hz，J＝7.6Hz，1H)，6.81-6.72(m，3H)，4.55(bs，1H)，3.97(t，J＝6.3Hz，2H)，3.39(dt，J＝6.5Hz，J＝6.5Hz，2H)，2.78(t，J＝7.1Hz，2H)，1.78(m，2H)，1.51(m，2H)，1.45(s，9H)，0.99(t，J＝7.3Hz，3H)。 
ESI+MS：对C17H27NO3的计算值：293.41；测定值：294.1(MH+)。 
步骤3：2-[2-(3-丁氧基苯基)-(叔-丁氧羰基)乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺 
向在0℃下冷却的NaH(60％，2.0g，51mmol)在干DMF(125ml)中的混悬液中滴加2-(3-丁氧基苯基)-(叔-丁氧羰基)乙胺(7.5g，25.5mmol)在干DMF(125ml)中的溶液。在室温下1小时后，加入2-氯-N，N-二甲基乙酰胺(5.2ml，51mmol)并且将该混合物在室温下搅拌16小时。加入H2O(10ml)并且在减压下蒸发溶剂。将残余物溶于H2O(150ml)并且用CH2Cl2(2×150ml)萃取。用Na2SO4干燥收集的有机相，过滤并且蒸发。通过快速色谱法纯化粗产物(石油醚/EtOAc 4∶6)而得到标题化合物(7.2g，75％)，为淡黄色油状物。 
1H NMR(300MHz，DMSO-d6)：δ7.1(m，1H)，6.79-6.71(m，3H)，3.97(t，J＝6.0Hz，2H)，3.96(s，2H)，3.40(dd，J＝8.7Hz，J＝7.2Hz，2H)，2.88(s，6H)，2.76(dd，J＝7.9Hz，J＝6.4Hz，2H)，1.76(m，2H)，1.46(m，2H)，1.37(s，9H)，0.95(t，J＝7.3Hz，3H)。 
ESI+MS：对C21H34N2O4的计算值：378.52；测定值：379.0(MH+)。 
步骤4：2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺盐酸盐 
将2-[2-(3-丁氧基苯基)-(叔-丁氧羰基)乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺(9.6g，25.3mmol)在HCl/Et2O(127ml)中的溶液在室温下搅拌16小时。在减压下蒸发溶剂，将残余物与Et2O/iPr2O 50/50的混合物一起研磨，过滤并且用Et2O/iPr2O洗涤而得到标题化合物，为白色固体(1，71g，产率95％)。 
1H NMR(300MHz，CDCl3)：δ9.63(br.s.，1H)，7.23(dd，1H)，6.83-6.91(m，2H)，6.80(ddd，1H)，3.96(s，2H)，3.96(t，2H)，3.32-3.44(m，2H)，3.22-3.32(m，2H)，2.97(s，6H)，1.70-1.83(m，2H)，1.41-1.58(m，2H)，0.99(t，3H)。 
ESI+MS：对C16H26N2O2的计算值：278.40；测定值：279.3(MH+)。 
类似地，以适当的中间体开始制备下列化合物： 
2-{2-[3-(4，4，4-三氟丁氧基)苯基]-乙氨基}-N，N-二甲基乙酰胺盐酸盐 
1H NMR(300MHz，DMSO-d6)：δ9.00(br.s.，2H)，7.17-7.32(m，1H)，6.78-6.94(m，3H)，4.04(br.s.，2H)，3.91-4.20(m，2H)，3.08-3.22(m，2H)，2.93-3.00(m，2H)，2.94(s，3H)，2.90(s，3H)，2.30-2.48(m，2H)，1.78-2.05(m，2H)。 
ESI+MS：对C16H23F3N2O2(游离碱)的计算值：332.27；测定值：333.25(MH+)。 
2-[2-(3-戊氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺盐酸盐 
1H NMR(300MHz，DMSO-d6)：δ9.03(brs，2H)，7.14-7.29(m，1H)，6.70-6.88(m，3H)，4.03(s，2H)，3.95(t，2H)，3.06- 3.21(m，2H)，2.94(s，3H)，2.90(s，3H)，2.81-3.02(m，2H)，1.62-1.80(m，2H)，1.23-1.48(m，4H)，0.90(t，3H)。 
ESI+MS：对C17H28N2O2(游离碱)的计算值：292.42；测定值：293.25(MH+)。 
2-[2-(3-己氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺盐酸盐 
1H NMR(300MHz，DMSO-d6)：δ9.01(brs，2H)，7.23(dd，1H)，6.65-6.93(m，3H)，4.03(s，2H)，3.95(t，2H)，3.05-3.24(m，2H)，2.94(s，3H)，2.91-3.01(m，2H)，2.90(s，3H)，1.57-1.84(m，2H)，1.35-1.51(m，2H)，1.22-1.36(m，4H)，0.70-1.01(m，3H)。 
ESI+MS：对C18H30N2O2(游离碱)的计算值：306.45；测定值：307.32(MH+)。 
2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二丙基乙酰胺盐酸盐 
1H NMR(300MHz，DMSO-d6)：δ8.88(br.s.，2H)，7.15-7.30(m，1H)，6.68-6.88(m，3H)，4.02(s，2H)，3.96(t，2H)，3.23-3.28(m，2H)，3.09-3.22(m，4H)，2.87-2.98(m，2H)，1.62-1.75(m，2H)，1.35-1.62(m，6H)，0.94(t，3H)，0.85(dt，6H)。 
ESI+MS：对C20H34N2O2(游离碱)的计算值：334.50；测定值：335.34(MH+)。 
2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二丁基乙酰胺盐酸盐 
1H NMR(300MHz，DMSO-d6+TFA)：δ8.85(br.s.，2H)，7.19-7.28(m，1H)，6.62-6.88(m，3H)，4.01(t，2H)，3.96(t，2H)，3.30(t，2H)，3.06-3.24(m，4H)，2.85-3.00(m，2H)，1.61-1.82(m，2H)，1.40-1.55(m，6H)，1.20-1.38(m，4H)，0.94(t，6H)，0.89(t，3H)。ESI+MS：对C20H38N2O2(游离碱)的计算 值：362.55；测定值：363.35(MH+)。 
2-[2-(3-戊氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二丙基乙酰胺盐酸盐 
1H NMR(300MHz，DMSO-d6+Na2CO3)：δ7.50(br.s.，1H)7.07-7.24(m，1H)6.62-6.83(m，3H)3.93(t，2H)3.06-3.22(m，5H)2.58-2.81(m，5H)1.62-1.78(m，2H)1.28-1.56(m，8H)0.68-0.99(m，9H)。 
ESI+MS：对C21H36N2O2(游离碱)的计算值：348.53；测定值：349.28(MH+)。 
2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-乙酰胺盐酸盐 
1H NMR(300MHz，DMSO-d6)：δ8.96(brs，2H)，7.87(brs，1H)，7.54(brs，1H)，7.23(dd，1H)，6.58-6.83(m，3H)，3.96(t，2H)，3.70(s，2H)，3.04-3.18(m，2H)，2.82-3.01(m，2H)，1.57-1.80(m，2H)，1.32-1.54(m，2H)，0.81-1.04(m，3H)。 
ESI+MS：对C14H22N2O2的计算值：250.34；测定值：251.1(MH+)。 
2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N-甲基乙酰胺盐酸盐 
1H NMR(300MHz，DMSO-d6)：δ8.99(brs，2H)，8.39(q，1H)，7.08-7.37(m，1H)，6.65-6.95(m，3H)，3.96(t，2H)，3.70(s，2H)，3.04-3.25(m，2H)，2.79-3.04(m，2H)，2.67(d，3H)，1.57-1.82(m，2H)，1.44(sxt，2H)，0.94(t，3H)。 
BSI+MS：对C15H24N2O2的计算值：264.37；测定值：265.2(MH+)。1H 
2-[2-(3-异丙氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺盐酸盐 
1H NMR(300MHz，DMSO-d6)：δ9.04(brs，2H)，7.12-7.32(m，1H)，6.70-6.81(m，3H)，4.60(spt，1H)，4.03(s，2H)，3.04-3.21(m，2H)，2.94(s，3H)，2.91-3.01(m，2H)，2.90(s，3H)，1.26(d，6H)。 
ESI+MS：对C15H24N2O2的计算值：264.37；测定值：265.2(MH+)。 
2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二乙基乙酰胺盐酸盐 
1H NMR(300MHz，DMSO-d6)：δ8.89 8.98(brs，2H)，7.24(dd，1H)，6.72-6.88(m，3H)，4.03(s，2H)，3.96(t，2H)，3.34(q，2H)，3.26(q，2H)，3.08-3.21(m，2H)，2.86-3.03(m，2H)，1.59-1.78(m，2H)，1.33-1.54(m，2H)，1.13(t，3H)，1.07(t，3H)，0.94(t，3H)。 
ESI+MS：对C18H30N2O2的计算值：306.45；测定值：307.2(MH+)。 
2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-1-吡咯烷-1-基-乙酮 
1H NMR(300MHz，DMSO-d6)：δ8.94(s，2H)，7.14-7.33(m，1H)，6.64-6.93(m，3H)，4.00(t，2H)，3.88(s，2H)，3.33-3.45(m，4H)，3.19-3.29(m，2H)，2.96-3.05(m，2H)，1.78-2.00(m，4H)，1.65-1.78(m，2H)，1.37-1.56(m，2H)，0.96(t，3H)。 
ESI+MS：对C18H28N2O2的计算值：304.44；测定值：305.2(MH+)。 
2-[2-(3-丁氧基-4-氟苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺盐酸盐 
1H NMR(300MHz，DMSO-d6)：δ8.91(brs，2H)7.15(dd，1H)7.05(dd，1H)6.79(ddd，1H)3.97-4.12(m，4H)3.09-3.21(m，2H)2.94(s，3H)2.92-2.99(m，2H)2.90(s，3H)1.65-1.82(m，2H)1.36-1.54(m，2H)0.87-1.01(m，3H)。 
ESI+MS：对C16H25FN2O2(游离碱)的计算值：296.38；测定值：297.22(MH+)。 
2-[2-(3-丁氧基-4-甲氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺盐酸盐 
1H NMR(300MHz，DMSO-d6)：δ8.97(brs，2H)，6.90(d，1H)， 6.84(d，1H)，6.74(dd，1H)，4.02(br s，2H)，3.94(t，2H)，3.73(s，3H)，3.04-3.22(m，2H)，2.94(s，3H)，2.90(s，3H)，2.84-2.92(m，2H)，1.57-1.84(m，2H)，1.44(sxt，2H)，0.94(t，3H)。 
ESI+MS：对C17H28N2O3(游离碱)的计算值：308.42；测定值：309.21(MH+)。 
实施例2 
2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-2，N，N-三甲基丙酰胺盐酸盐 
步骤1：2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-2-甲基丙酸乙酯 
向2-(3-丁氧基苯基)-乙胺盐酸盐(0.27g，1.42mmol；按照实施例1步骤4中所述的标准操作获自实施例1步骤2的化合物)在乙腈(8ml)中的溶液中加入2-溴-2-甲基丙酸乙酯(0.27ml，1.85mmol)和三乙胺(0.52ml，3.70mmol)。将该溶液在100℃下在微波照射中加热3h。将该混合物冷却至室温并且使其分配在水与CH2Cl2之间。分离有机层，用盐水洗涤，用Na2SO4干燥，过滤并且在减压下蒸发溶剂。通过快速色谱法纯化残余物(二氧化硅，CH2Cl2∶MeOH从100∶0到95∶5)而得到标题化合物(0.17g，39％产率)，为无色的油。 
ESI+MS：对C18H29NO3的计算值：307.44；测定值：308.2(MH+)。 
步骤2：2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-2，N，N-三甲基丙酰胺盐酸盐 
向甲苯(3ml)的THF(0.6ml，1.1mmol)中的2M二甲胺溶液中加入在己烷中的2M三甲基铝(1.4ml，2.77mmol)并且将该混合物在室温下搅拌15分钟。加入在干甲苯(8ml)中的2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-2-甲基-丙酸乙酯(0.17g，0.55mmol)并且将该溶液加热至90℃并且搅拌24h。将该混合物冷却至室温并且在减压下除去溶剂。使残余物分配在水与乙醚之间。分离有机层，用盐水洗涤，用Na2SO4 干燥，过滤并且在减压下蒸发溶剂。通过快速色谱法纯化残余物(第一次纯化：二氧化硅，CH2Cl2∶MeOH从100∶0至97∶3；第二次纯化：二氧化硅，EtOAc)而得到标题化合物，将其溶于HCl/Et2O并且搅拌20分钟。过滤所得盐酸盐，用iPr2O洗涤并且在40℃下和真空中干燥。得到纯的标题化合物(18.5mg，20％产率)，为白色固体。 
1H NMR(300MHz，CDCl3)：δ9.39(bs，2H)，7.24(t，1H)，6.71-6.97(m，3H)，3.97(t，2H)，3.13-3.36(m，4H)，3.09(s，6H)，1.90(s，6H)，1.69-1.86(m，2H)，1.51(sxt，2H)，0.99(t，3H)。 
ESI+MS：对C18H30N2O2的计算值：306.45；测定值：307.32(MH+)。 
实施例3 
2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基丙酰胺盐酸盐 
步骤1：2-[2-(3-丁氧基苯基)-(叔-丁氧羰基)乙氨基]-N，N-二甲基丙酰胺 
将2-[2-(3-丁氧基苯基)-(叔-丁氧羰基)乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺(0.410g，1.1mmol；按照实施例1步骤3制备)在干THF(5ml)中的溶液冷却至-78℃并且滴加在THF中的1M LiHMDS(六甲基二硅氮化锂(lithium hexamethyl disilazide))(1.43ml，1.4mmol)。将该混合物搅拌30min，然后滴加甲基碘(0.187g，1.3mmol)在干THF(1ml)中的溶液。将该混合物搅拌2小时，允许中断冷却浴。在减压下蒸发溶剂并且将残余物溶于EtOAc(15ml)并且用水(2×15ml)洗涤。用Na2SO4干燥有机相，过滤并且在减压下蒸发溶剂。通过快速色谱法纯化残余物(二氧化硅，石油醚∶EtOAc从8∶2至6∶4)而得到标题化合物(0.22g，52％产率)，为无色的油。 
ESI+MS：对C22H36N2O4的计算值：392.54；测定值：393.3(MH+)。 
步骤2：2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基丙酰胺盐酸 盐 
按照实施例1步骤4中所述的标准操作由2-[2-(3-丁氧基苯基)-(叔-丁氧羰基)乙氨基]-N，N-二甲基-丙酰胺制备标题化合物。白色固体(47％产率)。 
1H NMR(300MHz，DMSO-d6)：δ9.16(brs，1H)，8.82(brs，1H)，7.14-7.31(m，1H)，6.64-6.93(m，3H)，4.39(q，1H)，3.96(t，2H)，3.08-3.22(m，1H)，3.00(s，3H)，2.96-3.06(m，1H)，2.87-2.96(m，2H)，2.90(s，3H)，1.59-1.82(m，2H)，1.37-1.53(m，2H)，1.38(d，3H)，0.94(t，3H)。 
ESI+MS：对C17H28N2O2(游离碱)的计算值：292.42；测定值：293.25(MH+)。 
实施例4 
2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-3-羟基-N，N-二甲基丙酰胺盐酸盐 
步骤1：2-[2-(3-丁氧基苯基)-(叔-丁氧羰基)乙氨基]-3-乙酰氧基-N，N-二甲基-丙酰胺 
按照施例3步骤1由[2-[2-(3-丁氧基苯基)-(叔-丁氧羰基)乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺和乙酸溴甲酯制备标题化合物。无色的油(38％产率)。 
ESI+MS：对C24H38N2O6(游离碱)的计算值：450.58；测定值：451.2(MH+)。 
步骤2：2-[2-(3-丁氧基苯基)-(叔-丁氧羰基)乙氨基]-3-羟基-N，N-二甲基-丙酰胺 
将2-[2-(3-丁氧基苯基)-(叔-丁氧羰基)乙氨基]-3-乙酰氧基-N，N-二甲基丙酰胺(0.19g，0.42mmol)溶于3％NH4OH/MeOH(15ml)并且在室温下搅拌5小时。在减压下蒸发溶剂并且通过快速色谱法纯 化残余物(二氧化硅，石油醚∶EtOAc从7∶3到3∶7)而得到标题化合物(0.13g，66％产率)，为无色的油。 
ESI+MS：对C22H36N2O5的计算值：408.54；测定值：409.2(MH+)。 
步骤3：2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-3-羟基-N，N-二甲基丙酰胺盐酸盐 
按照施例1步骤4由2-[2-(3-丁氧基苯基)-(叔-丁氧羰基)乙氨基]-3-乙酰氧基-N，N-二甲基丙酰胺制备标题化合物。作为白色固体获得(76％产率)。 
1H NMR(300MHz，DMSO-d6)：δ8.46-9.44(m，2H)7.10-7.33(m，1H)6.65-6.92(m，3H)5.54(t，1H)4.44(t，1H)3.95(t，2H)3.65-3.88(m，2H)3.11-3.22(m，1H)3.03-3.09(m，1H)3.02(s，3H)2.91-2.99(m，2H)2.90(s，3H)1.61-1.79(m，2H)1.35-1.53(m，2H)0.86-1.00(m，3H)。 
ESI+MS：对C17H28N2O3(游离碱)的计算值：308.42；测定值：309.21(MH+)。 
实施例5 
2-[2-(3-丁氧基-4-甲基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺盐酸盐 
步骤1：(3-羟基-4-甲基苯基)-乙腈 
向冷却至-78℃的3-甲氧基-4-甲基苯基乙腈(2.0g，12.4mmol)在干CH2Cl2(50ml)中的溶液中滴加在CH2Cl2中的BBr3 1M(27ml，27mmol)。将该混合物搅拌过夜，允许切断冷却浴。将该混合物在搅拌下缓慢倾入冰/水。当冰熔化时，用EtOAc萃取水相并且用Na2SO4干燥有机相，过滤并且在减压下蒸发溶剂。将粗的标题化合物(1.7g，93％产率)不经进一步纯化用于下一步。 
步骤2：(3-丁氧基-4-甲基苯基)-乙腈 
向(3-羟基-4-甲基苯基)-乙腈(1.7g，11.5mmol)在丙酮(100ml)中的溶液中加入K2CO3(7.9g，57.5mmol)和1-溴丁烷(6.1ml，57.5mmol)。将该混悬液回流24小时并且在减压下蒸发溶剂。将残余物溶于CH2Cl2并且用水和盐水洗涤。用Na2SO4干燥有机层，过滤并且在减压下蒸发溶剂。通过快速色谱法纯化粗产物(石油醚∶EtOAc 9.5∶0.5)而得到标题化合物(1.43g，61％产率)，为无色的油。 
ESI+MS：对C13H17NO的计算值：203.29；测定值：204.1(MH+)。 
步骤3：N-[2-(3-丁氧基-4-甲基苯基)-乙基]-氨基甲酸叔-丁酯 
向3-(3-丁氧基-4-甲基苯基)-乙腈(0.94g，5.0mmol)在甲醇(38ml)中的溶液中加入氯化镍六水合物(0.12g，0.5mmol)和boc2O(2.18g，10.0mmol)。将该溶液冷却至0℃并且在30分钟内逐步加入硼氢化钠(1.32g，35.0mmol)。将该混合物搅拌过夜，允许中断冷却浴。通过添加二亚乙基三胺(0.54ml，5mmol)使反应停止并且搅拌30分钟。在减压下除去溶剂并且将残余物再溶于EtOAc，用水洗涤，用Na2SO4干燥，过滤并且在减压下蒸发溶剂。通过快速色谱法纯化粗产物(二氧化硅，石油醚∶EtOAc 90∶10)而得到标题化合物。无色的油(80％产率)。 
步骤4：2-[2-(3-丁氧基-4-甲基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺盐酸盐 
按照实施例1步骤3和4中所述的标准操作由[2-(3-丁氧基-4-甲基苯基)-乙基]-氨基甲酸叔-丁酯制备标题化合物。作为白色固体获得。 
1H NMR(300MHz，DMSO-d6)：δ8.93(brs，2H)，7.08(dd，1H)，6.79(d，1H)，6.69(dd，1H)，4.03(s，2H)，3.97(t，2H)，3.08-3.19(m，2H)，2.93(s，3H)，2.91-2.97(m，2H)，2.90(s，3H)，2.11(s，3H)，1.65-1.79(m，2H)，1.39-1.54(m，2H)， 0.95(t，3H)。 
ESI+MS：对C17H28N2O2(游离碱)的计算值：292.42；测定值：293.25(MH+)。 
类似地，以(2，6-二氟-3-甲氧基苯基)-乙腈开始制备下列化合物： 
2-[2-(3-丁氧基-2，6-二氟苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺盐酸盐 
1H NMR(300MHz，DMSO-d6)：δ9.16(brs，2H)，7.07-7.18(m，1H)，6.96-7.07(m，1H)，4.07(s，2H)，4.02(t，2H)，3.08(s，4H)，2.93(s，3H)，2.90(s，3H)，1.63-1.76(m，2H)，1.36-1.51(m，2H)，0.93(t，3H)。 
ESI+MS：对C16H24F2N2O2(游离碱)的计算值：314.37；测定值：315.20(MH+)。 
实施例6 
2-[2-(3-丁氧基苯基)-2-甲基丙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺盐酸盐 
步骤1：2-(3-甲氧基苯基)-2-甲基丙腈 
向冷却至0℃的(3-甲氧基苯基)-乙腈(8.0g，0.054mol)在DMF(25ml)中的溶液中加入NaH(1.3g，0.054mol)。将该反应体系搅拌30min并且加入MeI(3.3mL，0.054mol)。将该反应体系在室温下搅拌1小时。在该期间后，再次将该反应混合物冷却至0℃，加入NaH(1.3g，0.054mol)，随后在30分钟后加入MeI(3.3ml，0.054mol)。将该反应体系在室温下搅拌过夜。蒸发DMF并且用盐水稀释粗产物且用Et2O萃取。用水洗涤有机相，用Na2SO4干燥，在减压下蒸发溶剂并且通过快速色谱法纯化残余物(石油醚∶AcOEt 95∶5)而得到标题化合物(4g，42％产率)，为无色的油。ESI+MS：对C11H13NO的计算 值：175.23；测定值：176.1(MH+)。 
步骤2：2-[2-(3-丁氧基苯基)-2-甲基丙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺盐酸盐 
按照实施例5中所述的操作由2-(3-甲氧基苯基)-2-甲基丙腈制备标题化合物。 
1H NMR(300MHz，DMSO-d6)：δ8.44(br.s.，2H)，7.28(t，1H)，6.90-7.04(m，2H)，6.77-6.90(m，1H)，3.99(t，2H)，3.88(s，2H)，3.16(s，2H)，2.88(s，6H)，1.64-1.78(m，2H)，1.42-1.55(m，2H)，1.36-1.42(m，6H)，0.90-1.04(m，3H)。 
ESI+MS：对C18H30N2O2(游离碱)的计算值：306.45；测定值：307.26(MH+)。 
实施例7 
2-[2-(3-丁硫基苯基(butylthiophenyl))-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺盐酸盐 
步骤1：(3-丁硫基苯基)-乙腈 
向(3-碘苯基)-乙腈(2.0g，8.2mmol)和乙酸S-丁酯(2.4ml，24.6mmol)在正丁醇(5ml)中的溶液中加入CuI(0.156g，0.8mmol)，乙二醇(0.96ml，1.7mmol)和K2CO3(2.4g，17.3mmol)并且将该混合物在微波照射下加热至110℃1小时。用AcOEt稀释该反应混合物并且用C盐垫过滤。用水和盐水洗涤有机相，用Na2SO4干燥并且在减压下蒸发溶剂。通过快速色谱法纯化粗产物(石油醚∶AcOEt从10∶0到9∶1)而得到纯的标题化合物，为淡黄色油状物(1.0g，64％产率)，不经进一步纯化用于下一步。 
ESI+MS：对C12H15NS的计算值：205.32，质量不可检测。 
步骤2：2-[2-(3-丁硫基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺盐酸盐 
按照实施例5中所述的操作由(3-丁硫基苯基)-乙腈制备标题化合。 
1H NMR(300MHz，DMSO-d6)：δ9.08(br.s.，2H)，7.23-7.36(m，1H)，7.15-7.23(m，2H)，6.95-7.11(m，1H)，4.03(s，2H)，3.08-3.21(m，2H)，2.92-3.02(m，4H)，2.94(s，3H)，2.90(s，3H)，1.49-1.67(m，2H)，1.30-1.49(m，2H)，0.89(t，3H)。 
ESI+MS：对C16H26N2OS(游离碱)的计算值：294.46；测定值：295.20(MH+)。 
实施例8 
2-[2-(3-丁基磺酰基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺盐酸盐 
步骤1：2-[2-(3-丁基磺酰基苯基)-(叔-丁氧羰基)乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺 
在5分钟内向2-[2-(3-丁硫基苯基)-(叔-丁氧羰基)乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺盐酸盐(0.25g，0.62mmol；通过按照实施例1步骤1第一部分中所述的操作与boc2O反应由实施例7步骤2的化合物制备)在乙腈(20ml)/水(10ml)中的溶液中逐步加入oxone(0.92g，1.5mmol)和NaHCO3(0.2g，2.3mmol)的混合物。将该混合物在室温下搅拌2小时。使该混合物分配在水与CH2Cl2之间，用水和盐水洗涤有机层，用Na2SO4干燥并且在减压下蒸发溶剂。通过快速色谱法纯化粗产物(石油醚∶AcOEt 3∶7)而得到纯的标题化合物，为无色的油(0.20g，75％产率)。 
ESI+MS：对C21H34N2O5S的计算值：426.58；测定值：427.1(MH+)。 
步骤2：2-[2-(3-丁基磺酰基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺盐酸盐 
按照实施例1步骤4中所述的标准操作由2-[2-(3-丁基磺酰基苯基)-(叔-丁氧羰基)乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺制备标题化合物。 
1H NMR(300MHz，DMSO-d6+TFA)：δ8.84-9.10(m，2H)，7.74-7.86(m，2H)，7.57-7.71(m，2H)，4.06(t，2H)，3.03-3.34(m，6H)，2.95(s，3H)，2.91(s，3H)，1.45-1.63(m，2H)，1.24-1.42(m，2H)，0.84(s，3H)。 
ESI+MS：对C16H26N2OS(游离碱)的计算值：294.46；测定值：295.20(MH+)。 
实施例9 
2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基硫代乙酰胺盐酸盐 
步骤1：2-[2-(3-丁氧基苯基)-(叔-丁氧羰基)乙氨基]-N，N-二甲基硫代乙酰胺 
向2-[2-(3-丁氧基苯基)-(叔-丁氧羰基)乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺(0.38g，1.0mmol)在干甲苯(20ml)中的溶液中一锅加入Lawesson试剂(0.58g，1.2mmol)并且将该混合物加热至回流并且搅拌2小时。在减压下蒸发溶剂并且通过快速色谱法纯化残余物(石油醚∶AcOEt从9∶1到8∶2)而得到纯的标题化合物，为无色的油(0.11g，28％产率)。 
ESI+MS：对C21H34N2O3S的计算值：394.58；测定值：395.1(MH+)。 
步骤2：2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基硫代乙酰胺盐酸盐 
按照实施例1步骤4中所述的标准操作由2-[2-(3-丁氧基苯基)-(叔-丁氧羰基)乙氨基]-N，N-二甲基硫代乙酰胺制备标题化合物。作为白色固体获得。 
1H NMR(300MHz，DMSO-d6)：δ8.88(s，2H)，7.16-7.34(m，1H)，6.73-6.88(m，3H)，4.17(s，2H)，3.96(dd，2H)，3.43(s，3H)，3.31(s，3H)，3.16-3.26(m，2H)，2.92-3.04(m，2H)，1.62-1.76(m，2H)，1.36-1.50(m，2H)，0.94(t，3H)。 
ESI+MS：对C16H26N2OS(游离碱)的计算值：294.46；测定值：295.22(MH+)。 
实施例10 
2-[2-(3-丁氧基苯基)]-(N′-甲氧基)乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺 
步骤1：2-(3-丁氧基苯基)-乙醛 
向2-(3-丁氧基苯基)-乙醇(3.00g，15.4mmol；由按照实施例1步骤2中所述的操作从2-(3-羟基苯基)-乙醇制备)在CH2Cl2(100ml)中的溶液中加入Dess-Martin periodinane试剂(8.5g，20.1mmol)并且将该反应体系保持在室温下过夜。将该溶液倾入包含Na2S2O3(35g)的NaHCO3饱和溶液，并且将该混合物搅拌30min。分离有机层，用Na2SO4干燥，过滤并且在减压下蒸发。 
将包含标题化合物的残余物(2.9g，99％产率)不经进一步纯化用于下一步。 
步骤2：2-(3-丁氧基苯基)-(N-甲氧基)乙胺 
在0℃下和搅拌中向2-(3-丁氧基苯基)-乙醛(2.00g，10.4mmol)和O-甲氧基胺盐酸盐(1.12g，13.4mmol)在水(13ml)中的混悬液中滴加Na2CO3(0.66g，6.2mmol)在水(20ml)中的溶液。将该反应体系保持在室温下过夜且然后用乙醚萃取。用Na2SO4干燥有机层，过滤并且在减压下蒸发。 
将包含所需肟中间体的残余物(2.24g，10.2mmol)溶于甲醇(60ml)并且加入乙酸(8.8ml，153.0mmol)。将该溶液冷却至0℃并且逐步加入NaCNBH3。将该反应混合物在室温下搅拌过夜，然后在减压下除去溶剂并且使残余物分配在5％NaHCO3溶液与乙酸乙酯之间。用Na2SO4干燥有机相，过滤并且在真空中浓缩至干。通过柱色谱法纯化粗残余物(石油醚∶乙酸乙酯9∶1)而得到0.88g(38％产率)标题化合物。 
步骤3：2-[2-(3-丁氧基苯基)]-(N′-甲氧基)乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺 
将如步骤2中所述获得的2-(3-丁氧基苯基)-(N-甲氧基)乙胺(0.5g，2.25mmol)溶于乙腈(15ml)并且加入乙基二异丙基胺(1.95ml，11.25mmol)，随后加入2-氯-N，N-二甲基乙酰胺(1.15ml，11.25mmol)。将该溶液在130℃下和微波照射中加热6小时。将该混合物冷却至室温，在减压下除去溶剂并且使残余物分配在5％NaHCO3与乙酸乙酯之间。用Na2SO4干燥有机相，过滤并且在真空中浓缩至干。通过柱色谱法纯化粗残余物(石油醚∶乙酸乙酯1∶1)而得到0.25g(36％产率)标题化合物。 
1H NMR(300MHz，DMSO-d6+TFA)：7.17(t，1H)，6.61-6.89(m，3H)，3.94(t，2H)，3.56(s，2H)，3.47(s，3H)，2.98(s，3H)，2.89-2.97(m，2H)，2.80(s，3H)，2.72-2.86(m，2H)，1.58-1.77(m，2H)，1.34-1.53(m，2H)，0.93(t，3H)。 
ESI+MS：对C17H28N2O3(游离碱)的计算值：308.42；测定值：309.18(MH+)。 
实施例11：TTXs-钠通道流入测定法 
ND7/23大鼠脊根神经节-衍生细胞系内源性地表达TTXs钠通道的混合种群。这些细胞缺乏TTXr钠通道，正如所示不存在它们各自的转录物。 
使ND7/23细胞生长在含有10％FBS和1mM丙酮酸钠的DMEM中。将细胞按50,000细胞/孔接种在96孔聚-L-赖氨酸-涂覆的平板上，进一步温育18-24h，备用。 
使用Membrane Potential Kit Assay(Molecular Devices)进行测定，它基于带负电的荧光染剂，能够监测由通道开放引起钠流入所导致的膜电位变化。 
将细胞与染料加载在25℃下温育30分钟，然后单独加入或者在TTX(作为参照标准)或供试化合物存在下加入100nM毒素Anemonia sulcata(用作通道开放反应的强化剂)，进一步温育15分钟。 
在钠通道开放剂藜芦定(100μM)的自动注射之前和之后(40-45sec)，利用Victor平板读数器(Perkin Elmer)测量荧光(激发：530nm，发射：565nm波长)。 
从5种浓度计算抑制曲线，各为一式三份，并利用线性回归分析确定IC50。 
本发明化合物抑制TTXs钠通道，具有药理学上显著的IC50值。 
使用本发明全部类型中有代表性的某些化合物获得与标准品ralfinamide和safinamide比较的所得结果报导在表1中。 
表1 
  化合物   Na+流入  IC50μM
  2-[2-(3-己氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲  基乙酰胺盐酸盐   0.5
  2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二丙  基乙酰胺盐酸盐   0.5
  2-[2-(3-戊氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲  基乙酰胺盐酸盐   0.5
  2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二乙  基乙酰胺盐酸盐   0.6
  2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-2，N，N-三  甲基丙酰胺盐酸盐   0.7
  2-[2-(3-戊氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二丙  基乙酰胺盐酸盐   1.1
  2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲  基丙酰胺盐酸盐   1.1
  2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二丁  基乙酰胺盐酸盐   1.2
  2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲  基硫代乙酰胺盐酸盐   1.2
  2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲  基乙酰胺盐酸盐   1.5
  2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-1-吡咯烷  -1-基-乙酮盐酸盐   2.1
  2-[2-(3-丁氧基-2，6-二氟苯基)-乙氨  基]-N，N-二甲基乙酰胺盐酸盐   2.6
  (S)-(+)-2-[4-(2-氟苄氧基)-苄氨基]-丙  酰胺(ralfinamide)*   9.5
  (S)-(+)-2-[4-(3-氟苄氧基)-苄氨基]-丙  酰胺(safinamide)*   7.4
*为与甲磺酸形成的盐 
实施例12：钙通道流入测定法 
AtT20/D16v-F2小鼠垂体肿瘤细胞系优先表达L-型钙通道。 
使AtT20细胞生长在含有10％FBS、4mM谷氨酰胺的DMEM中。将细胞按200,000细胞/孔接种在96孔聚-L-赖氨酸-涂覆的平板上，进一步温育18-24小时，备用。 
使用Ca++ Kit Assay(Molecular Devices)进行测定，它基于荧光钙指示剂，并且能够检测取决于去极化条件的钙流入。 
将细胞与钙染料加载在37℃下温育30分钟，然后单独加入或者在尼非地平(作为参照标准)或供试化合物存在下加入ω-芋螺毒素(1μM)，进一步温育15分钟。 
在100mM KCl去极化溶液的自动注射之前和之后(30-40秒)，利用Victor平板读数器(Perkin Elmer)测量荧光(激发：485nm-发射：535nm波长)。 
从5种浓度计算抑制曲线，各为一式三份，并利用线性回归分析确定IC50。 
某些化合物是全部本发明化合物种类的代表，比较它们与ralfinamide和safinamide的所得结果，报告在表2中。 
表2 
  化合物   Ca++流入  IC50μM
  2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二丙基  乙酰胺盐酸盐   1.1
  2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二丁基  乙酰胺盐酸盐   1.8
  2-[2-(3-己氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基  乙酰胺盐酸盐   4.0
  2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二乙基  乙酰胺盐酸盐   6.7
  2-[2-(3-戊氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二丙基  乙酰胺盐酸盐   6.9
  2-[2-(3-丁硫基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基  乙酰胺盐酸盐   7.2
  2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基  硫代乙酰胺盐酸盐   7.6
  2-[2-(3-戊氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基  乙酰胺盐酸盐   8.3
  2-{2-[3-(4，4，4-三氟丁氧基)苯基]-乙氨  基}-N，N-二甲基乙酰胺盐酸盐   9.3
  (S)-(+)-2-[4-(2-氟苄氧基)-苄氨基]-丙酰  胺(ralfinamide)*   26.0
  (S)-(+)-2-[4-(3-氟苄氧基)-苄氨基]-丙酰  胺(safinamide)*   33.0
*为与甲磺酸形成的盐 
实施例13：大鼠皮质神经元Na+钠电流阻断的膜片钳评价 
细胞制备和培养 
在与遵从国家(D.L.n.116，G.U.，suppl.40，Feb.18，1992)和国际法律和政策(EEC Council directive 86/609，OJL358.1，Dec.121987；Guide for the Care and Use of Laboratory Animals，U.S. National Research Council，1996)的公共指导原则一致的情况下进行涉及动物及其护理的操作。 
由胚胎Wistar大鼠(E17-E19)制备皮质神经元。麻醉并且处死妊娠17-19日的雌性大鼠。取出胎儿(n＝4-5)并且放入冰冷的Hank′s溶液(Hank′s溶液(Life tech.14170-088)+30％葡萄糖+Pen-Strep100x(Life Tech.15140-122)100U-100μg/ml和Hepes-NaOH 5mM)。取出子宫和胎盘，将胎儿断头并且将头放入冰冷的Hank′s溶液。 
使用拨钉钳取下头部皮肤，从背部侧面至眼部切开头皮并且使用弯曲的拨钉钳取出脑。 
将脑切成两半，使用拨钉钳取下外部结缔组织膜，并且保持脑倒置朝下，使用弯曲拔钉钳取出小脑、脑干和间脑，试图尽可能将皮质内部清洁。 
使用剪刀将每一皮质切成较小部分，使用5ml移液管将各片转入15ml离心管并且用Hank′s溶液洗涤两次。 
取出溶液，但留下1-2ml并且首先用5ml移液管然后用热抛光Pasteur移液管(分别为中等和小开口)分离组织。 
在机械分离后，加入5ml完全DMEM(Dulbecco改进的Eagle培养基)(Gibco 41966-029)+FBS(Hyclone)10％+谷氨酰胺(Life Tech.25030-024)2mM+Pen-Strep 100U-100μg/ml并且以1000rpm将细胞混悬液离心5min。除去上清液并且加入5ml完全Neurobasal培养基(NB培养基(Life tech.21103-049)+B27(Life tech.17504-044)2％+2mM谷氨酰胺+Pen-Strep 100U-100μg/ml)。 
计数细胞并且用Neurobasal培养基稀释至400000个细胞/聚-D-赖氨酸5μg/ml处理的培养皿的浓度。 
从铺板后第6天开始到第11天使用皮质神经元并且每周一次改变Neurobasal培养基。 
全细胞膜片钳记录 
使用标准全细胞膜片钳法对皮质神经元进行实验(Hamill等， PFUGHERS ARCH.，1981 AUG，391(12)，85-100)。记录膜电流并且使用Axon Axopatch 200B放大器在5kHz下滤过，且使用Axon Digidata 1322A(Axon Instruments，CA，USA)进行数据数字化。使用Axon pClamp8软件在线控制方案实施和数据采集。测定和参比电极为AgCl-Ag电极。Sutter Instrument P-87Puller(CA，USA)用于由Harward硼硅玻璃试管拉出具有2-3MΩ电阻的膜片钳移液管。应用溶液转换器Biologic RSC-200连续使用胞外溶液流过细胞。 
电压方案和数据分析 
为了测试化合物对皮质神经元中钠电流的效应，在-90mV下固定细胞，然后将两步方案用于测定阻滞的电压依赖性。通过从2000ms的-110mV预处理电势(静止条件)和～-50mV电势(半最大稳态条件)30ms阶跃脉冲至-10mV(测试脉冲)来活化钠电流。将在指定药物浓度下静止和去极化电流的增强阻滞计算为对照外浴溶液中的峰值Na+电流与使用测试物质的峰值电流之差除以对照峰值。 
通过绘制静止和去极化条件下增强阻滞与药物浓度之间关系的图获得药物浓度-抑制曲线。按照对数方程使剂量-响应曲线与增强阻滞数据拟合：y＝A2+(A1-A2)/[1+(x/IC50)p]。A1和A2为0和相当于0的1的固定值和100％电流抑制率，x为药物浓度，IC50为导致50％电流抑制的药物浓度且p为相应的坡度因子。 
根据方程1/Kdep＝h/Kr+(1-h)/Ki计算对失活状态的药物表观亲和力(Ki)，其中Kr为药物对静止/关闭状态的亲和力；Kdep为去极化条件下的IC50，h和(1-h)分别为静止和去极化电势下存在的通道分数。 
溶液和药物 
对照浴溶液包含(mM)：NaCl 60，胆碱Cl 60，CaCl2 1.3，MgCl22，KCl 2，CdCl2 0.4，NiCl2 0.3，TEACl 20，Hepes 10，葡萄糖10。 
内部移液管溶液由如下成分组成(mM)：CsF 65，CsCl 65，NaCl 10， CaCl2 1.3，MgCl2 2，Hepes 10，EGTA 10，MgATP1。 
将化合物溶于DMSO作为储备溶液(20mM)。将它们稀释至在外溶液中的终浓度。 
结果 
本发明的化合物能够阻断大鼠皮质神经元中的Na+电流。将使用本发明化学类型中有代表性的化合物2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺盐酸盐(NW-3509)与我们的标准品safinamide和ralfinamide比较获得的结果报导在表3中。 
表3 
  化合物   IC50  静止(Kr)  (μM)   IC50  去极化  (μM)   Ki
  2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二  甲基乙酰胺盐酸盐   25   0.8   0.4
  (S)-(+)-2-[4-(3-氟苄氧基)-苄氨基]-  丙酰胺(safinamide)*   ＞100(180)   7.0   3.6
  (S)-(+)-2-[4-(2-氟苄氧基)-苄氨基]-  丙酰胺(ralfinamide)*   ＞100(213)   9.0   4.7
*为与甲磺酸形成的盐 
表示为在μM浓度下的IC50值的数据以及对失活状态的亲和力(Ki)证实本发明化合物极为有效并且为电压依赖的钠通道阻断剂。 
实施例14：ND7/23细胞系中Na+电流阻断的膜片钳评价 
细胞系维持 
ND7/23(来自SIGMA的ECACC No 92090903)为来源于融合了小鼠 神经母细胞瘤N18Tg2的新生大鼠DRG的杂交细胞系(Wood等，Pro.Biol.Sci.，1990 Sept.，241(1302)，187-194)。ND7/23细胞表现出感觉神经元样特性并且表达河豚毒素-敏感性(TTX-s)，但不表达河豚毒素-抗性(TTX-r)电流(Zhou等；J.Pharmacol.Exp.Ther.，2003Aug.，306(2)，498-504；John等，Neuropharmacology，2004Mar.46(3)425-438)。TTX-r电流缺乏与这些细胞中不存在TTX-r通道转录物一致。 
负责TTX-S电导的通道的分子鉴定为未知的，但推断能够因钠通道的混合的群体活性产生。 
通常细胞维持在含有10％FBS，4mM谷氨酰胺，1mM丙酮酸钠的DMEM中。在膜片钳实验前的那天分离细胞并且以100,000个细胞/聚赖氨酸包被的35mm培养皿中接种。 
全细胞膜片钳记录 
使用如上所述部分中所述的标准全细胞膜片钳法对ND7/23细胞进行实验(Hamill等，PFUGHERS ARCH.，1981 Aug.391(12)，85-100)。 
电压方案和数据分析 
为了测试化合物对ND7/23细胞中钠电流的效应，将保持膜电势维持在-90mV，然后将两步方案用于测定阻滞的电压依赖性。通过从2000ms的-110mV预处理电势(静止条件)和～-70mV电势(半最大稳态条件)30ms阶跃脉冲至0mV(测试脉冲)来活化钠电流。 
将在指定药物浓度下静止和去极化电流的增强阻滞计算为对照外浴溶液中的峰值Na+电流与使用测试物质的峰值电流之差除以对照峰值。 
通过绘制静止和去极化条件下增强阻滞与药物浓度之间关系的图获得药物浓度-抑制曲线。按照对数方程：y＝A2+(A1-A2)/[1+(x/IC50)p]使剂量-响应曲线与增强阻滞数据拟合。A1和A2为0和相当于0的1的固定值和100％电流抑制率，x为药物浓度，IC50为导致50％电流抑制的药物浓度且p为相应的坡度因子。 
根据方程1/Kdep＝h/Kr+(1-h)/Ki计算对失活状态的药物表观亲 和力(Ki)，其中Kr为药物对静止/关闭状态的亲和力；Kdep为去极化条件下的IC50，h和(1-h)分别为静止和去极化电势下存在的通道分数。 
溶液和药物 
对照浴溶液包含(mM)：NaCl 80，HCl胆碱40，CaCl2 1.3，MgCl22，KCl 2，CdCl2 0.4，NiCl2 0.3，TEACl 20，Hepes 10，葡萄糖10。 
内部移液管溶液由如下成分组成(mM)：CsF 65，CsCl 65，NaCl 10，CaCl2 1.3，MgCl2 2，Hepes 10，EGTA 10，MgATP 1。 
将化合物溶于DMSO作为储备溶液(20mM)。将它们稀释至在外溶液中的终浓度。 
结果 
本发明的化合物能够阻断ND7/23细胞中的Na+电流。将使用本发明化学类型中有代表性的化合物2-[2-(3-戊氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺盐酸盐NW-3525和2-[2-(3-丁氧基-2-氟苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺与我们的标准ralfinamide比较获得的结果报导在表4中。 
表4 
  化合物   IC50 静止(Kr)(μM)   IC50 去极化(μM)   Ki
  2-[2-(3-戊氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二  甲基乙酰胺盐酸盐   2.9   0.7   0.5
  2-[2-(3-丁氧基-2-氟苯基)-乙氨  基]-N，N-二甲基乙酰胺   13   1.7   1
  (S)-(+)-2-[4-(2-氟苄氧基)-苄氨基]-  丙酰胺(ralfinamide)*   149.0   15.0   8.3
*为与甲磺酸形成的盐 
表示为在μM浓度下的IC50值的数据以及对失活状态的亲和力(Ki)证实本发明两个化合物极为有效并且为电压依赖的钠通道阻断剂。 
实施例15：体外MAO-B酶活性测定法 
膜制备物(粗线粒体级分)
在轻微麻醉下处死雄性Wistar大鼠(Harlan，Italy-175-200g)，迅速取出脑，在8体积冰冷的0.32M蔗糖缓冲液中匀化，所述缓冲液含有0.1M EDTA，pH7.4。将粗的匀化产物在2220rpm下离心10分钟，回收上清液。将沉淀再次匀化和离心。汇集两份上清液，于+4℃下在9250rpm下离心10分钟。将沉淀重新悬浮在新鲜的缓冲液中，在11250rpm下离心10分钟，温度+4℃。将所得沉淀贮存在-80℃下。 
体外酶活性测定
利用放射性酶测定法，应用对MAO-B具有特异性的底物14C-苯基乙胺(PEA)评估酶活性。 
将线粒体沉淀(500μg蛋白质)重新悬浮于0.1M磷酸盐缓冲液(pH 7.4)中。将200μl混悬液加入到50μl供试化合物溶液或缓冲液中，在37℃下温育30min(预温育)，然后加入底物(50μl)。在37℃下进行温育，时间为10分钟(14C-PEA，0.5μM)。 
加入0.2ml高氯酸终止反应。离心后，将脱氨基的代谢产物用3ml甲苯萃取，借助液体闪烁光谱法测量包含作为MAO-B活性结果形成的中性和/或酸性代谢物的放射性有机相，效率为90％。 
将MAO-B活性表示为nmoles转化的底物/mg蛋白质/min。 
本发明全部化学类型中有代表性的化合物在相关浓度下未表现出MAO-B抑制作用，正如表5中作为IC50值报导的(化合物能够将MAO-B酶活性抑制50％的浓度)。 
当IC50值在亚-微摩尔范围中时，例如我们的标准品safinamide 和ralfinamide，实际上认为MAO-B显著抑制。 
表5 
  化合物   MAO-B  IC50μM
  2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N-甲基乙酰胺   110
  2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺盐酸盐   231
  2-[2-(3-丁氧基-2，6-二氟苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺盐酸盐   ＞300
  2-[2-(3-丁氧基-4-甲氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺   ＞300
  2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基丙酰胺盐酸盐   ＞300
  (S)-(+)-2-[4-(3-氟苄氧基)-苄氨基]-丙酰胺(safinamide)*   0.1
  (S)-(+)-2-[4-(2-氟苄氧基)-苄氨基]-丙酰胺(ralfinamide)*   0.2
*为与甲磺酸形成的盐 
实施例16：福尔马林试验 
按照来自Rosland等的改进的方案(Rosland J.H.，Tjolsen A.，Maehle B.，Hole K.Pain(1990)42：235-242)，经皮下(s.c.)将20μl 2.7％福尔马林溶液注入小鼠左后爪跖面并且即刻放入澄明的PVC观察室(23×12×13cm)。通过对注射爪的累积舔爪次数进行计数对疼痛行为进行定量。在福尔马林注射后早期(0-5min)和晚期(20-40min)过程中取测量值(Tjolsen A.，Berge O.G.，Hunskaar S.，RoslandJ.H.，Hole K.Pain(1992)51：5-17)。 
在以10ml/kg体重的体积进行福尔马林注射前5-45分钟通过p.o.或s.c.对10只小鼠的足给予每次剂量的供试化合物。对照组用载体处理。 
可以发现通过口服和皮下给予的本发明化合物在本实验模型中具有活性。 
以0.6-20mg/kg p.o.和s.c.给予的一种化合物(即本发明全部类型化合物中有代表性的化合物)所获得的表示为ED50值的结果报导 在表6中，其证实该化合物具有良好的止痛活性。 
表6 
  化合物   ED50(mg/kg)   p.o.
  2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-  二甲基乙酰胺盐酸盐   14.9
  (S)-(+)-2-[4-(2-氟苄氧基)-苄氨  基]-丙酰胺(ralfinamide)*   29.3
  (S)-(+)-2-[4-(3-氟苄氧基)-苄氨  基]-丙酰胺(safinamide)*   69.4
*为与甲磺酸形成的盐 
实施例17：神经性疼痛的脊神经结扎模型 
在脊神经结扎模型(SNL)中测试对神经性疼痛的效果(Kim S.H.和Chung J.M.(Pain(1992)50：355-363)。 
动物：使用称重为175-200g的成年雄性Wistar大鼠。使所有动物以8/10的组寄居在温度(22±0.5℃)和相对湿度(60-70％)受控室内，给予12小时光照/黑暗周期(光照在6a.m.-6p.m.)并且允许自由饮水和取啮齿动物标准膳食。 
药物：在测定基础异常性疼痛阈值后，将溶于蒸馏水的供试化合物以在2ml/kg体积中的0.5-100mg/kg的剂量通过口服给予。对照组大鼠用载体处理。 
脊神经结扎：按照Kim S.H.和Chung J.M.所述的改进方法制作神经病变(Pain(1992)50：355-363)。简言之，用硫喷妥钠35mg/kgi.p.(如果需要加上额外剂量)麻醉动物并且在暴露从L4到S2的背侧脊椎后，用4-0号丝缝线紧固结扎暴露的L5和L6脊神经，并且封闭切口。允许大鼠在手术后测试前恢复约5-14天。 
机械性异常性疼痛：按照Chaplan等的方法测定机械性异常性疼痛阈值(Chaplan S.R.，Bach F.W.，Pogrel J.W.，Chung J.M.和Yaksh T.L.J.Neurosc.Method.(1994)53：55-63)。将大鼠放 入各自24×10×15cm的塑料盒的网状金属底部上并且允许它们在测试前适应约30min分钟。测定对使用具有对数递增硬度0.41-15g(4-150mN)的8个标刻度的von Frey丝(Stoelting，Wood Dale，IL)探测的反应的大鼠后爪的爪撤回阈值。将每种丝垂直施加在大鼠结扎爪的足面上。使用15g的最大截止值。通过依次增加和减少刺激强度(“上-下”法)测定撤回阈值，通过使用Dixon非参数检验来分析并且表示为平均撤回阈值(Dixon W.J.Am.Stat.Assoc.(1965)60：967-978)。在p.o.处理前(给药前)和之后的15，30，60，90，120，180，240，300，360和420min时测定假拟手术和手术动物中机械性异常性疼痛阈值。还在两种处理方案中测定了24小时阈值。在9a.m.-6p.m.之间进行试验。观察者不了解实验和处理条件。 
热痛觉过敏：使用足底试验评价热痛觉过敏(Ugo Basile，Varese，Italy)。将大鼠放入树脂玻璃盒的澄明玻璃板上。在大鼠仍然相对稳定的情况下，玻璃底部下的的辐射热源定向于后爪跖面，并且测定撤回潜伏期。在评价热痛觉过敏前，调整辐射热的强度以便产生来自具有自动设定在30秒的截止值的首次用于实验的大鼠约20秒的基线潜伏期，以避免组织损害。 
发现口服给药的本发明有代表性的化合物在本实验模型中具有活性。 
(图1：在SNL大鼠热痛觉过敏中口服给予的2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺盐酸盐(NW-3509)的效果。ED50＝10.58mg/kg(6.7-16.6)。数值代表每组10只动物的平均值±SEM)。 
实施例18：慢性炎性疼痛的完全Freund氏佐剂模型 
向左后爪跖肌内注射100μl完全Freund氏佐剂(CFA，Sigma)，在大鼠(200g重)中诱发单关节炎，所述佐剂在石蜡油与乳化剂二缩甘露醇单油酸酯的混合物中含有加热灭活的和干燥的结核分枝杆菌(Mycobacterium tubercolosis)。首次用于实验的大鼠组用作对照组。CFA注射产生局部化的水肿和炎症区域，开始于注射后几个小时，伴 有机械性撤回阈值的进行性降低。 
在试验之前允许每只动物历经8-9天形成关节炎。 
机械性异常疼痛：按照Chaplan等的方法测定机械性异常疼痛阈值(Chaplan S.R.，Bach F.W.，Pogrel J.W.，Chung J.M.和YakshT.L.J.Neurosc.Method.(1994)53：55-63)。将大鼠置于底部为金属网的单个塑料盒24×10×15cm中，在试验之前允许适应约30分钟。测定作为对向爪子施用8次校准的von Frey毛发(Stoelting，WoodDale，IL)的反应的大鼠后爪的撤回阈值，其硬度增量的对数值为0.41-15g(4-150mN)。垂直于结扎大鼠足面施加每根毛发。使用15g最大截止值。通过依次增加和减小刺激强度(“上-下”法)测定撤回阈值，通过Dixon非参数检验来分析并且表示为平均撤回阈值(Dixon W.J.Am.Stat.Assoc.(1965)60：967-978)。在p.o.治疗前(给药前)和之后15，30，60，90，120，180，240，300，360和420min测定模拟和手术动物中的机械性异常疼痛阈值。还在两个治疗方案中测定了24小时阈值。本试验在9a.m.-6p.m.进行。观察人员不了解实验和治疗条件。 
发现口服给予的本发明有代表性的化合物在本实验模型中具有活性。 
实施例19：乙酸-诱发的小鼠内脏痛模型 
内脏痛仍然为最常见形式的寻求医疗处理的疼痛之一。尽管可以将内脏痛概括为躯体痛的变化形式，但是它在神经学机理和传递途径方面不同。内脏痛的特征在于涉及痛觉过敏并且还在于它并不总是与组织损伤有关。 
乙酸诱发的内脏痛模型广泛应用于产生腹部收缩的实验研究(Korster R等.Fed.Pro.(1959)18：412；Friese N等，LifeSci.(1997)60：625-634)。该模型由腹膜内(i.p.)注射诱发称作‘扭体’的综合征的刺激物组成，所述称作的‘扭体’的综合征由腹部收缩，扭动和躯干转动，后背弓形和后肢伸展组成。 
动物和操作：使用称重为25-33g的雄性CD1小鼠。允许每个处理组30min习惯于各自聚丙烯透明盒内的实验室环境。通过对在i.p.注射0.6％乙酸(10ml/kg体重)后扭体10min的次数计数对内脏痛进行评分。评价乙酸给药后的扭体次数。对完全身体拉长(完全扭体)或具有明显腹部收缩的部分拉长(部分扭体)进行计数。在乙酸注射前5min通过口服对单独各组的10只小鼠各自给予载体(10ml/kg)或不同剂量的溶于所述载体的供试化合物(10ml/kg)。将数据表示为10min观察期过程中的平均扭体次数。 
发现口服给予的本发明有代表性的化合物在本实验模型中具有减少乙酸诱发的扭体次数的活性。 
(图2：口服给予20mg/Kg p.o.的2-[2-(3-丁氧基苯基)乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺盐酸盐(NW-3509)在乙酸诱发的内脏痛试验中的效果。***p＜0.01与载体相比的t-检验。数值代表n＝10只动物/组的平均值±SEM。***p＜0.01 Dunnet检验)。 
实施例20：小鼠最大电击试验(MES) 
在啮齿动物模型中筛选抗癫痫药时普遍采用最大电击试验(MES)。 
动物和仪器：使用体重25g的雄性CD1小鼠。遵循White等所述工艺(White H.S.，Woodhead J.H.，Franklin M.R.，Swinyard E.A.，和Wolf H.H.Antiepileptic Drugs(1995)4th ed：99-110，RavenPress，Ltd.，New York)。利用Ugo Basile电惊厥生成器(Model ECTUNIT 7801)递送足以在至少97％对照动物中产生后肢强直性伸展反应的电刺激。在小鼠中通过夹式电极耳内递送刺激(0.7s的40mA电击，脉冲列为80Hz，脉冲持续时间为0.4ms)。检查在MES诱导之前5-120分钟腹膜内(i.p.)、皮下(s.c.)、静脉内(i.v.)或口服给予的化合物的急性效果，与载体对照组比较。每组研究十只小鼠。癫痫发作的后肢强直性伸展组分的完全抑制被视为抗惊厥活性的证据。 
在0.1-100mg/kg的剂量下p.o或i.v.内给予本发明化合物。 
将表示为使用本发明全部类型中有代表性的某些化合物获得的 ED50值报导在表7和表8中，表明这些化合物具有作为抗惊厥药的活性。 
表7 
  化合物   ％保护  10mg/kg p.o.   ED50  (mg/kg p.o.)
  2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二  甲基乙酰胺盐酸盐   100   4.3
  2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N-甲基  乙酰胺盐酸盐   30   12.1
  2-[2-(3-丁氧基-2，6-二氟苯基)-乙氨  基]-N，N-二甲基乙酰胺盐酸盐   100   2.0
  2-[2-(3-戊氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二  甲基乙酰胺盐酸盐   100   2.8
  2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二  甲基丙酰胺盐酸盐   60   6.5
  2-[2-(3-己氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二  甲基乙酰胺盐酸盐   100   4.6
表8 
  化合物   MES ED50  mg/kg i.v.
  2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-  二甲基乙酰胺盐酸盐   0.2
  (S)-(+)-2-[4-(2-氟苄氧基)-苄氨  基]-丙酰胺(ralfinamide)*   2.7
  (S)-(+)-2-[4-(3-氟苄氧基)-苄氨  基]-丙酰胺(safinamide)*   4.0
*为与甲磺酸形成的盐。 
实施例21：苯丙胺和氯氮卓-诱导的小鼠运动过多 
在这种模型中，将小鼠用d-苯丙胺加抗焦虑剂量的苯并二氮杂卓类氯氮卓处理(Rushton R，Steinberg H.Combined effects ofchlordiazepoxide and d-amphetamine on activity of rats in anunfamiliar environment.Nature 1966；211：1312-3；.R.Arban，G.Maraia，K.Brackenborough，L.Winyard，A.Wilson，P.Gerrard，C.Large，.Evaluation of the effects of lamotrigine，valproateand carbamazepine in a rodent model of mania Behavioural BrainResearch，158：123-132)。该模型已被要求模拟双相性精神障碍中的一些躁狂方面。重要的是，由d-苯丙胺与氯氮卓混合物诱导的活动过多能够被在先给药的既定情感稳定剂锂以及其他情感稳定药(例如丙戊酸镁和卡马西平)所预防。因此，这种模型作为双相性精神障碍的模型可以呈现和预测有效性，并代表了确定供试化合物是否能够成为有潜力的情感稳定药候选的有价值的工具。 
向雄性Albino Swiss小鼠(25-32g)以体积为10ml/kg给予苯丙胺(AMP)(2.5mg/kg)加盐酸氯氮卓(CDZ)(3mg/kg/ip)。利用Opto-M3System(Columbus Instruments)记录运动活动，这是一种多通道活动监测器。Opto-M3系统具有10个红外发射器和各自数量的接收器(光束间距(beam spacing)0.5”)，与PC计算机连接，并计算移动活动和总计数。因而，该系统区分向前运动(移动)与刻板样运动(总计数)。将小鼠用供试化合物(0.5-20mg/kg)预处理，10min后用AMP(2.5mg/kg)或者AMP连同CDZ(3mg/kg)处理。连续30min后，将小鼠再次用相同剂量的供试化合物处理，分别置于运动活动笼中。评价30min的运动活动(移动和总活动计数)。每组由8-10只小鼠组成。 
统计学分析：借助方差分析(ANOVA)评价数据，酌情再分别利用Dunnett氏检验与对照组进行个别比较。 
结果表明苯丙胺和苯丙胺-氯氮卓(CDZ)给药诱导显著的运动活动增加。 
口服给予的本发明有代表性的化合物在减少苯丙胺和苯丙胺-氯氮卓诱导的活动过度的本实验模型中具有活性。 
(图3：移动超过30min。 
a)氯氮卓(3.0mg/Kg ip)；b)2-[2-(3-丁氧基苯基)乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺盐酸盐(NW-3509)(20.0mg/Kg po)；c)苯丙胺(2.5mg/kgi.p.)。 
单独的苯丙胺和苯丙胺+氯氮卓混合物显著增加了运动行为**p＜0.001与载体比较的Dunnet′s检验。 
2-[2-(3-丁氧基苯基)乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺盐酸盐(NW-3509)减少了由单独的苯丙胺和苯丙胺与氯氮卓混合物诱导的活动过度，以统计学显著性方式##p＜0.001与苯丙胺或苯丙胺+氯氮卓比较的Dunnet′s检验。数据表示n＝10只小鼠/组的平均值±SEM)。 
实施例22：Morris水迷宫试验(东莨菪碱在大鼠中诱发的健忘症) 
检测抗健忘症活性的方法遵循Morris所述的方法(Learn.Motiv.，12，239-260，1981)。Morris迷宫由充满了水并且维持在26-28℃下的具有距离边界18cm并且始终处于水面下1.5cm相同位置的逃逸平台(直径＝15cm)的环形水槽(直径＝150cm)组成。通过添加无毒性着色剂(例如奶粉)使水变不透明，使得平台不可见。 
在4个连续天内给予动物4个训练期(第1天到第4天)。每个训练期由在Morris迷宫中的4次试验组成，每次间隔1分钟。就每次试验而言，将动物放入迷宫内相等分布在迷宫周围的4个起点之一上并且允许找到逃逸平台。将动物放置在逃逸平台上60秒，此后放回其寄居的笼中。如果动物在120秒内未发现平台，那么实验者从水中将其取出并且将其放置在平台上60秒，此后将其放回到寄居的笼中。在4次试验过程中，动物以每只动物随机确定的次序开始从各自的起点迷失一次。 
视频跟踪记录试验并且使用视频跟踪系统(Panlab：SMART)分析动物行为。取的主要测量值是每次试验时的逃逸潜伏期。额外的测量值为游泳速度和游行的距离。 
东莨菪碱-处理的动物(0.5mg/kg i.p.，在每一期限前30分钟给 予)表现出如无法减小从试验到试验和从期限到期限的逃逸潜伏期所示的在该任务中的健忘症。在第5天时进行探头试验。从迷宫中取出平台并且使动物在迷宫中自由游泳60秒。所取的主要测量值为花费在目标四分体(即预先包含平台的)上的时间，将其与花费在其它四分体上的时间和随机预测的值(即25％的探头试验期限)比较。每组研究12只东莨菪碱-处理的大鼠。本实验还包括接受盐水而非东莨菪碱的正常对照组。以3种剂量评价供试物质，p.o.给予5-60分钟，此后进行每一训练期限和探头试验，即东莨菪碱前30分钟，并且与载体对照组比较。本实验由此包括5组。 
通过比较处理组与东莨菪碱对照组，使用未配对斯氏t检验分析数据。 
发现口服给予的本发明有代表性的化合物在本实验模型中具有活性。 
实施例23：认知模型-新物体识别试验 
物体识别试验由样品试验和试验间间隔(ITI)分开的选择试验组成。在样品试验时，提供两个相同的物体。在选择试验时，用新物体替代样品试验中提供的物体之一(称作熟悉物体)。在ITI为1小时或1小时以下时，大鼠能够辨别熟悉物体与新物体，但24小时ITI时不能(Deschaux O等，1997，Neurosci.Lett.222，159-162；Ennaceur A等，1989.，Behav.Brain Res.33，197-207；Puma C，Bizot JC，1998，Neurosci.Lett.248，183-186)。因此，使用1小时ITI的物体识别任务能够检测药物的遗忘效应，且是否这种遗忘效应被另一种药物减轻。使用24小时ITI的物体识别试验能够检测药物诱发的记忆力增强。已经进行了大量研究以便评价药物的记忆效果。例如，过去的研究证实烟碱改善了24-小时ITI条件中的记忆力并且减轻了1-小时ITI条件中东莨菪碱诱发的健忘症。 
方法：如Bizot JC等，2005 Prog Neuropsychopharmacol BiolPsychiatry.29：928-935中所述进行物体识别任务。 
受试者：使用首次用于实验的8周龄雄性Wistar大鼠 
仪器：物体识别任务的仪器为灰色不透明树脂玻璃构成的开放盒子(40cm L，40cm W，40cm H)。辨别的物体(3.5cm L，6cm H)在颜色和形状上不同。它们为白色门按钮圆形和灰色门按钮星形。显然，它们对大鼠而言不具有天然的显著性差别并且它们始终与强化无关。为了排除遗留在物体上的气味痕量的可能性和由此大鼠对在嗅觉线索上的识别能力的依赖性，用澄清水洗涤物体和盒子的底部并且在每次试验之间进行干燥。将电视摄像机固定在盒子上方的天花板上以便监测动物活动。 
实验在2天(东莨菪碱诱发的健忘症)或3天(自然忘记)内进行。本试验由15-min习惯试验(第1天)，3-min样品试验(第2天)和3-min选择试验(第2或第3天)组成。 
东莨菪碱诱发的健忘症实验。本实验对随机再分成不同组(n＝12/组)的大鼠进行，它们接受： 
-对照组：本试验前30min 1次腹膜内(IP)注射盐水(样品试验)，本试验前15min 1次经口(PO)注射盐水。 
-东莨菪碱组：本试验前30min 1次IP注射东莨菪碱(0.1mg/kg)，本试验前15min 1次PO注射盐水(样品试验) 
-东莨菪碱+烟碱组：本试验前30min 1次IP注射东莨菪碱(0.1mg/kg)和本试验前20min 1次IP注射烟碱(0.4mg/kg)(样品试验) 
-东莨菪碱+有代表性的供试化合物组：本试验前30min 1次IP注射东莨菪碱(0.1mg/kg)(样品试验)和本试验前15min 1次PO注射不同剂量的供试化合物(样品试验)。 
在第1天允许大鼠探查仪器15min(习惯试验)。在第2天将大鼠放入在盒子的两个角落上提供两个相同物体的仪器3min(样品试验)。1hr后，将大鼠放入带有两个物体的仪器；用新的物体替代样品试验中提供的物体之一(称作熟悉物体)(选择试验)。 
自然忘记实验：本实验对随机再分成不同组(n＝12/组)的大鼠进行，它们接受： 
-对照组：本试验前20min 1次腹膜内(IP)注射盐水和本试验前15min 1次经口(PO)注射盐水。 
-烟碱组：本试验前20min 1次I P注射烟碱(0.2mg/kg)和本试验前15min 1次PO注射盐水。 
-有代表性的供试化合物组：本试验前20min 1次IP注射盐水和本试验前15min 1次PO注射不同剂量的供试化合物。 
在第1天允许大鼠探查仪器15min(习惯试验)。在第2天将大鼠放入在盒子的两个角落上提供两个相同物体的仪器3min(样品试验)。24小时后(第3天)，将大鼠放入带有两个物体的仪器；用新的物体替代样品试验中提供的物体之一(称作熟悉物体)。 
数据：基础测量值为大鼠在样品试验和选择试验过程中探查物体所花费的时间。物体识别任务指数包括下列参数： 
-样品试验中的总探查时间。 
-选择试验中的总探查时间。 
-选择试验中的新物体与熟悉物体之间探查时间之差(N-F)。 
-辨别指数，其为100×(N-F)除以选择试验中的总探查时间。 
用ANOVA和斯氏t检验分析数据。 
发现口服给予的本发明有代表性的化合物在本实验模型中具有减轻东莨菪碱在1-小时试验间间隔(1hr ITI)的物体识别任务中诱发的健忘症中和改善自然忘记情况中的记忆力、即在具有24小时试验间间隔(24hr ITI)的物体识别任务中具有活性。 
实施例24：抑郁试验：小鼠的尾部悬挂试验 
尾部悬挂试验为所谓的“行为绝望”模型之一并且应用于筛选抗抑郁药。它们基于常见的现象：接触在激动与稳定之间的不相容厌恶情况选择的正常动物。激动的原因正在研究，其为高度耗能的，而稳定的目的在于节能。抗抑郁药处理后的动物甚至在绝望的情况下也更为抗争，并且它们几乎不会花费时间稳定。可以借助于这些模型研究神经官能性抑郁症的某些方面。 
本方法检测抗抑郁药和抗焦虑药活性并且遵循Stéru等所述(Psychopharmacology，85，367-370，1985)。尾部悬挂的啮齿动物快速变不动。抗抑郁药减少了稳定期限，而安定剂增加了稳定期限。使用Stéru等(Prog.Neuropsychopharmacol.Exp.Psychiatry， 11，659-671，1987)研发的计算机化装置(Itematic-TST)在6分钟过程中自动记录动物行为。同时研究6只小鼠。记录两种参数： 
-稳定期限：本参数与用于″行为绝望″试验的参数类似(Arch.Int.Pharmacodyn.Ther.，229，327-336，1977)。 
-运动能力：本参数基于动物消耗的能量，不依赖于活动期限。 
每组研究10只小鼠。不进行盲性试验，但由Itematic-TST产生的随机化方案确保了每只动物在仪器中的位置和时间方面的处理的均匀分布。评价3种剂量下的供试物质，试验前5-60分钟p.o.给予并且与载体对照组比较。在相同实验条件下给予的丙咪嗪(128mg/kgp.o.)和地西泮(8mg/kg p.o.)用作参比物。 
本实验由此包括6组。通过使用未配对斯氏t检验比较处理组与载体对照组分析数据。 
发现口服给予的本发明有代表性的化合物在本实验模型中具有活性。 
实施例25：精神分裂症方法中的认知缺损 
认知缺损经常与精神分裂症有关，其已被认知是该障碍的核心要素，影响患者的恢复和重新融入社会。 
最近关注的焦点在于精神分裂症中认知功能障碍的药理模型，它基于谷氨酸盐NMDA受体拮抗剂的效应，所述受体拮抗剂例如苯环利定(PCP)和氯胺酮(Javitt等，Am.J.Psychiatry，1991 Oct.，148(10)，1301-1308)，它们在进行复杂任务的小鼠中削弱注意力，增加“冲动性”和“强迫性”持续动作(Greco等，Psycopharmacology(Berl)，2005 Apr.，179(1)68-76)。 
材料和方法 
动物：使用雄性DBA/2N小鼠(Charles River，Italy)。小鼠在实验开始时体重25-30g，在控温条件(21℃)和12小时光照12小时黑暗 循环(光照7:00am-7:00pm)下喂养。可以随意进食(Rieper，Italy)。动物在每天试验结束时有两小时的饮水时间。 
五选项系列反应时间任务仪器：试验仪器由四个21.6x17.8x12.7cm箱组成(Med Associates Inc.USA)，如前面所述Greco等，Psychopharmacology(Berl)，2005 Apr.，179(1)，68-76]。由SmartCtrlTM Package 8 In/16 Out(MedAssociates Inc.USA)控制刺激和反应记录，附带MED-PC for Windows界面(Med AssociatesInc.USA)。5-CSRT任务的运行程序是根据客户定制的。 
行为操作：习惯于液体增强剂和向小孔中伸鼻子：对小鼠操作一周，记录它们的体重。然后通过允许它们在傍晚饮水2h直至它们的体重已经稳定来禁止饮水(8天)。然后在后面的两天里，使小鼠在它们的笼子中习惯于在手术操作中后来使用的增强剂(10％蔗糖溶液)。在后面的两天里，使小鼠习惯于手术盒子。在此阶段，将一小碗10％蔗糖溶液放置在盒子接受孔下方。首先，小鼠不得不学习每5秒钟在接受孔的小杯中有液体奖赏。在此阶段记录头部进入次数。在下一阶段，训练小鼠向有照明的小孔中伸鼻子。在向水接受器中伸鼻子之后立即打开小孔之一后方的LED。在光照小孔中伸鼻子抵消光刺激，滴液器在接受孔中提供0.01mL的液体奖赏。其他四个小孔之一中的任何反应都没有结果，没有记录。以随机顺序在全部五个小孔中呈递光刺激。在一个30min期间中已经完成至少50次获得奖赏的伸鼻子试验的小鼠转向5-CSRT任务。 
五选项系列反应时间任务：该时期的开始以开灯照明和0.01mL液体奖赏为标志。在接受孔中伸鼻子开始第一次试验。固定的延迟(试验间间隔，ITI)后，小孔之一后方的LED短时间打开。在完整的时期期间在每个小孔中呈递相同次数的LED刺激，呈递的顺序由计算机随机安排。在开灯的同时，以及随后短时间内(有限的保持)，在照明小孔中的反应(正确反应)导致液体奖赏。在无照明小孔中的反应(不正确反应)或者在有限的保持内没能反应(忽略)导致照明光短时间关闭(暂停时间(time out))。在照明光关闭的同时在小孔中的反应重新开始暂 停时间。在液体奖赏的递送之后或者在暂停时间结束时，小鼠开始下一试验，鼻子伸入接受孔。在正确反应后，或者在暂停时间结束后鼻子伸入接受孔之前在小孔中所进行的反应(持续反应)，导致暂停时间阶段。在ITT(先行反应)期间在小孔中的反应也导致暂停时间期间。先行反应之后，鼻子伸入接受孔重新开始当前的试验。每天的试验期由100次试验或者30min试验组成，无论是否更快地完成，然后关闭全部光源，进一步的反应没有效应。在试验安排的前一时期，刺激和有限的保持各自持续1min，依赖于个体的表现，逐渐减少至1sec。刺激持续时间以如下顺序减少：60、30、10、5、2.5、2、1.5和1秒(基线)。ITI和暂停时间在第一时期都持续2秒，ITI在随后的时期升至5秒；暂停时间没有变化。在全部训练和实验阶段，每只小鼠每天有一个5-CSRT任务期间。 
药物和处置安排：将供试化合物溶于水，腹膜内(IP)给药，剂量为10mg/kg。处置后5分钟，向小鼠注射载体(盐水)或PCP(1.5mg/kg)，10min后它们开始试验期间。在每次实验中，按照拉丁方设计给予供试化合物与载体或PCP的各种组合。在药物试验日之间留出至少48h。在这些中间日期期间，试验小鼠的5-CSRT任务，以重新建立基线表现和检查任何残留的药物效应。 
统计学分析：选择用于分析的主要依赖性变量为：(a)正确反应的百分比(总正确反应/总正确+总不正确反应x100)；(b)忽略的百分比(总忽略/总正确反应+总不正确反应+总忽略x100)；(c)在ITI期间小孔中先行反应的次数；(d)在正确反应后小孔中持续反应的次数。按照ANOVA模型，按照下式转化正确反应和忽略的百分比：2arcsin(SQRT(％X/100))，以标准化分布(Winer，1971)。 
利用因子药物(供试化合物)和PCP，在主体2×2 ANOVA内独立地分析供试化合物(n＝12)对PCP诱导的5-CSRT任务缺陷的效应。随后，利用post-hoc Tukey-Kramer检验比较处理组平均值。在MicroVAX3500计算机(Digital，USA)上运行统计软件(SAS Institute Inc.，USA)。 
PCP对DBA/2N小鼠的注意力表现导致突出的效应，表现为先行和持续反应增加。本发明有代表性的化合物以10mg/kg i.p.给药，能够逆转PCP-诱导的先行 
实施例26：小鼠和大鼠中惊恐的前冲动抑制 
前冲动抑制(PPI)为跨种现象(即它存在于小鼠与人范围的哺乳动物)，而它在精神分裂症患者中相对不存在。无关听觉刺激中过滤出的能力下降为特征，认为该特征促成了这些情况中的某些表现，包括注意力不集中，注意涣散和认知短缺。PPI操作应用于评价受试者“门控”或过滤环境信息的能力。在感觉运动门控听觉(惊恐模型)中，弱听觉刺激(前置脉冲)减少了二次更强烈刺激(脉冲)产生的反射性畏缩反应(惊恐)。药物，如地佐环平(MK-801)或苯丙胺破坏PPI并且代表精神分裂症的动物模型。抗精神病药能够预防PPI缺乏。本试验对筛选潜在的抗精神病药非常有用。 
类似地，小鼠的某些品系，例如DBA/J展示出可以用抗精神病药物逆转的PPI的自发性损害并且还可以用作精神分裂症动物模型。 
大鼠中的PPI：使用Wistar或Sprague-Dawley大鼠(称重为200-300g)或3周龄DBA/2J小鼠。惊恐仪器(San Diego Instruments，CA)由12个塑料透明笼子组成，它们各自放置在隔音的柜子中，其安装了与记录平台垂直运动的传感器连接的可移动的平台底部。通过悬挂在笼子上方并且连接发声器的扬声器传递的听觉刺激引起惊恐反应。使用PC计算机在距听觉刺激启动200ms记录窗测定的过程中记录因惊恐反应引起的平台运动产生的短暂力，数字化并且储存在计算机中以便进一步评价。在整个记录窗(200ms)过程中测定惊恐反应的振幅并且取振幅的平均值用于进一步评价。将对照组和处理组放入各自的测试笼子。习惯5min后(背景白色噪声，65dB)，以随机的次序使用两种类型的听觉刺激：在刺激前将单独的听觉刺激[120dB，40ms，(P)]或被前置脉冲操控的刺激[75dB，20ms(PP)]施加100ms。在每次实验期限过程中以20s的刺激间期提供每种类型的20次试验。对 每一单独动物分别求两种类型试验的振幅的平均值(单独的刺激或被前置脉冲操控的刺激)。使用下列公式计算PPI百分比：100-[(前置脉冲的平均惊恐振幅+脉冲试验/单独脉冲试验的平均惊恐振幅)x100]，即100-(PP/P)x100。计算的％PPI较高值表示前置脉冲抑制了对脉冲刺激的反应，而较低值表示前置脉冲的较弱抑制。在试验前5min ip给予的MK-801(0.2mg/kg)或在试验前10min sc给予的苯丙胺(2.5mg/kg)诱导感觉运动门控缺乏。发现口服给予的本发明有代表性的化合物在本实验模型中具有活性，逆转了MK-801(图4)或苯丙胺诱导的PPI缺乏。 
DBA小鼠中的PPI：使用雄性3周龄DBA/2J和C57BL/6J小鼠。 
如Bortolato等在Psychopharmacology，2007，Oct；194(3)：361-9中所述对听觉惊恐反应和PPI进行检测。 
在每次实验中，指定小鼠接受本发明的化合物或载体并且使用受试者之间的设计在PPI期限中测试。 
使用下列公式计算PPI百分比：100-[(前置脉冲的平均惊恐振幅+脉冲试验/单独脉冲试验的平均惊恐振幅)x100]，即100-(PP/P)x100。将听觉惊恐反应的振幅计算为对所有单独的脉冲试验的反应平均值，从而排除了提供的5次单独的脉冲试验中第一次或最后一次的阻滞。 
发现口服给予的本发明有代表性的化合物在本实验模型中具有减少BDA/2J小鼠PPI缺乏的活性。 
(图4：2-[2-(3-丁氧基苯基)乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺盐酸盐(NW-3509)在大鼠MK-801 PPI破坏中的效果。将数据表示为n＝10只动物的平均值+SEM。p＜0.01表示载体与MK-801之间统计学上的显著性差异。*p＜0.05**p＜0.01表示载体+MK-801处理的动物和使用2-[2-(3-丁氧基苯基)乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺盐酸盐(NW-3509)处理的动物之间具有统计学上的显著性差异。 
Dunnet检验后为变异分析) 
实施例27：大鼠的反常睡眠紊乱 
已经使用大量典型临床观察结果和心理学报告验证了睡眠与神经病现象之间的精神病理学和神经生物学相关性。精神分裂症患者表现出严重的失眠症与大量睡眠体系结构的结构改变，例如REM入睡前的等待时间和期间减少和SWS(慢波睡眠)时间减少。大量研究已经证实睡眠剥夺延长事实上有利于大量暂时性的心理紊乱，包括言词结构受损，分裂的思维，人格解体和从最小的紊乱和异常体觉到复杂的听觉和幻觉的知觉改变。一般而言，这些紊乱无法与神经病现象区分，但通常在恢复性睡眠延长后消除。几项研究记录了在强迫性睡眠剥夺期后，大鼠表现出有限时间的奇异的一组行为改变，例如刻板行为和活动过度。另外，大鼠睡眠剥夺强化了惊恐反应并且破坏了PPI，这种效应为时间依赖性的并且可通过抗精神病药物逆转(Gessa，GL等(1995)European Neuropsychopharmacology 5，89-93)。这类现象通常被解释为与精神病相关，因为它们一般由拟精神病剂在大鼠中产生。大鼠睡眠剥夺模型可以被视为躁狂模型。 
动物：使用Sprague-Dawley大鼠(称重200-300g)。 
方法：在大鼠中诱发反常睡眠紊乱(SD)的操作基于平台法(从Jouvet等(1964)。Journal of Physiology(Paris)，56，381中的改进)。将大鼠保持在充满水的深槽内的小的树脂玻璃平台上(7cm直径)。每个平台周围环绕距表面下达1cm的水。使食物颗粒和水瓶位于槽上部的栅格上。在整个SD研究过程中，将槽内部的试验室和水的温度维持在23±1℃。将对照组大鼠放入其寄居笼子或相当于用于SD的那些的水槽上的实验室，但平台直径为12cm，允许它们达到REM睡眠，但不落入水中。在SD期结束时(72hr)，即刻使大鼠离开水干燥并且放入惊恐室(用于PPI测定)或活动笼子(活动过度)以便进行行为测试。在整个SD期过程中每日改变槽中的水。将对照组大鼠维持在与睡眠剥夺大鼠相同的室内其SD的持续期间。在PPI或行为测试前给予供试化合物。 
数据分析：对每只动物而言，使用两种方式或三种方式方差分析 (ANOVA)来分析该期限第二期中的第一次和第二次平分期限的平均值惊恐振幅(阻滞，6次各自单独的脉冲试验)，其中预处理(如果存在)和处理作为受试者之间的因素且阻滞作为反复的措施。使用下列公式计算PPI百分比：100-[(前置脉冲的平均惊恐振幅+脉冲试验/单独脉冲试验的平均惊恐振幅)x100]，即100-(PP/P)x100并且使用多因素ANOVAs分析(使用对每次实验而言特定的设计和如下所述的比较)，其中预处理与处理的注射的不同组合作为受试者之间的因素并且试验类型作为反复措施。使用Tukey检验进行Post hoc分析。使用一种方式或两种方式方差分析(ANOVA)来分析运动行为数据，如果合适，可以使用反复措施，随后进行作为post-hoc检验的Tukey检验。 
发现口服或腹膜内或皮下给予的本发明有代表性的化合物在本实验模型中具有减少PPI缺乏和被睡眠剥夺诱发的活动过度的活性。 
实施例28：可卡因-诱导的行为敏化试验 
药物成瘾是以强迫性药物寻找和摄入为特征的病理行为。这些行为改变的一种动物模型是长时间的运动活动增加，由反复向啮齿动物给予精神刺激药所诱导(Robinson T.E.and Berridge K.C.Brain Res.Brain Res.Rev.(1993)18，247-91)，被称为药物-诱导的行为敏化。在可卡因诱导的大鼠行为敏化模型中评价供试化合物的效应。 
运动活动仪器：使用雄性Wistar大鼠，到达时体重200-250g。在十六只相同的金属丝悬挂笼中测量运动活动，尺寸为36cm(L)x25cm(W)x20cm(H)。每笼含有两套红外发射器-检测器光电池，位于格栅底部上方长轴1cm、前方8cm和笼子后部。由白噪音生成器提供背景噪音。在笼子内的运动产生光电池中断，由I BM兼容计算机自动记录之。 
敏化操作和处置：在实验之前，使动物习惯于运动活动箱达连续2-3天。大鼠接受5天的i.p.注射可卡因(15mg/kg)或盐水和供试化合物(0.1-100mg/kg)或其载体，记录3h的运动活动。最后一次可卡因或盐水注射后十天(第15天)，在没有供试化合物的存在下用15mg/kg 可卡因攻击动物，再次监测3h的运动活动。 
用可卡因处置的第五天，用载体i.p.预处理的动物显示运动反应增加(比第一天高20％，p＜0.05)。最后一次注射可卡因或盐水后十天，在没有供试化合物的存在下用15mg/kg可卡因攻击动物，再次监测3h的运动活动。预先用可卡因处置并且没有接受供试化合物的大鼠被预期显示对可卡因的运动活动反应增加(比第一天高30％，p＜0.05)。如果在5天可卡因处置期间用供试化合物预处理的大鼠没有显示运动活动增加，那么该供试化合物被认为具有预防精神刺激药成瘾的效应(Koob G.F.，Sanna P.P.，Bloom F.E.Neuron(1998)21：467-476；Robinson T.E.，Berridge K.C.Brain Res Brain Res Rev(1993)18：247-291)。 
统计学分析：利用双道ANOVA分析数据(3小时内光束中断的总数)，反复测量一种因子，包括四个实验组(也就是盐水/载体、盐水/供试化合物、可卡因/载体和可卡因/供试化合物)和两个时间点(第1天和第5天)，继之以单纯效应分析。利用第二种反复测量一种因子的双道ANOVA对比第1天和攻击当天，继之以Newman-Keuls post hoc检验。 
发现口服给予的本发明有代表性的化合物在本实验模型中具有活性。 
实施例29：乙酸对大鼠的急性膀胱刺激 
使用成年麻醉雌性Sprague Dawley大鼠(170-200g)进行实验。通过膀胱穹顶向膀胱内经由中线腹部切口插入导管(PE-50)，然后测量膀胱内压力，以监测连续输注0.15％乙酸期间的膀胱活动。乙酸的连续膀胱内输注在麻醉大鼠中刺激膀胱，减少收缩间间隔(ICI)。在向用本发明化合物处理过的大鼠膀胱内输注乙酸之前和之后，测量ICIs、最大收缩压力和诱导反射性膀胱收缩的压力阈值。 
发现腹膜内或静脉内给予有代表性的本发明化合物在本实验模型中具有活性。 
实施例30：环磷酰胺(CYP)对大鼠的中等膀胱刺激 
使用成年清醒和麻醉雌性Sprague Dawley大鼠(170-200g)进行实验。由CYP诱发化学性膀胱炎，CYP被代谢为丙烯醛，是一种在尿中消除的刺激物。在实验前一天给予CYP(150mg/kg/i.p.)。用CYP预处理导致膀胱刺激和非常频繁的排泄，排泄之间的ICI为约150-200秒。 
腹膜内或静脉内给予有代表性的本发明化合物增加用于这种实验模型中的清醒和麻醉大鼠的ICI。 
实施例31：大鼠偏头痛试验 
动物和手术：将雄性Wistar大鼠(250-350g)用戊巴比妥钠的盐水溶液麻醉(50mg/kg i.p.)。 
向气管和左股动脉插套管，分别用于人工换气(55冲程(stroke)/min)和测量平均血压(MBP)。向股静脉插套管，用于供试活性剂的静脉内给药。 
通过自动控释加热垫，维持体温在37-38℃。将动物置于趋实体框架中，在头皮中进行纵向切开。在颅骨中钻孔，向三叉神经节的左眼分支(背侧至前囟3.8mm，中线侧面2.5mm，硬脑膜表面下方9.5mm)插入不锈钢双极性电极(Plastic One MS 306)，用牙科胶粘剂固定。借助简单的电刺激确认电极放置正确，这导致由三叉神经纤维活化引起的颌运动。除去脑后，在每次实验结束时肉眼检查电极在纤维内的正确位置。 
在电极的同侧钻第二个孔(嘴侧至前囟1.5mm，矢状缝侧面1.5mm)，固定激光多普勒流量计的探针(尖端直径0.8mm)，使其尖端指向中脑动脉(MCA)的分支，借助PeriFlux 4001激光多普勒系统在线记录脑血流(CBF)变化。 
由于肌肉运动，在三叉神经节的电刺激期间读取的激光多普勒人 
为现象被神经肌肉阻断剂泮库溴铵的一次性i.v.推注(0.6mg/kgi.v.)所阻止。 
利用戊巴比妥钠和泮库铵输注(分别为12.5mg/kg/h+2.4mg/kg/h)维持全部实验期间的麻醉和神经肌肉阻断。 
实验方案：在手术结束时，暂停三十分钟，目的是使所测量的参数稳定。 
电刺激增加了静止CBF，矩形脉冲为0.5ms长，1-10Hz，0.5-1mA，时间30s。两次平均化的预药物刺激后，给予载体或药物。 
静脉内给予的本发明有代表性的化合物降低由三叉神经刺激诱导的血流增加。 

Claims (30)

1.式(I)的化合物
其中：
X为-O-，-S-或-SO2-；
Y为氢或O(C1-C4)烷基；
Z为＝O或＝S；
R为(C4-C7)烷基或ω-三氟(C4-C6)烷基；
R1和R2独立地为氢，(C1-C4)烷氧基或卤素；
R3和R′3独立地为氢或(C1-C4)烷基；
R4和R5独立地为氢，(C1-C4)烷基；或R4为氢且R5为基团-CH2-OH；
R6和R7独立地为氢或(C1-C6)烷基；或与相邻的氮原子共同构成5-6元单环饱和杂环，其任选包含一个额外的杂原子，所述5-6元单环饱和杂环选自吡咯烷、哌啶、吗啉和哌嗪，其中哌嗪中的额外的杂原子是基团-NR8-，其中R8是氢或(C1-C3)烷基；
条件是当X为-S-或-SO2-时，Y不为O(C1-C4)烷基；
如果可能，为分离形式的单一旋光异构体或其任意比例的混合物及其药学上可接受的盐。
2.权利要求1的化合物，其中：
X为-O-或-S-；
Y为氢或O(C1-C3)烷基；
Z为＝O或＝S；
R为(C4-C7)烷基或ω-三氟(C4-C6)烷基；
R1和R2独立地为氢，(C1-C4)烷氧基或卤素；
R3和R′3独立地为氢或(C1-C3)烷基；
R4和R5独立地为氢或(C1-C3)烷基；或R4为氢且R5为基团-CH2-OH；
R6和R7独立地为氢或(C1-C4)烷基；或与相邻的氮原子共同构成5-6元单环饱和杂环，其任选包含一个额外的杂原子，所述5-6元单环饱和杂环选自吡咯烷、哌啶、吗啉和哌嗪，其中哌嗪中的额外的杂原子是基团-NR8-，其中R8为氢或(C1-C3)烷基；
条件是当X为-S-时，Y不为O(C1-C3)烷基；
如果可能，为分离形式的单一旋光异构体或其任意比例的混合物及其药学上可接受的盐。
3.权利要求1的化合物，其中：
X为-O-或-S-；
Y为氢或甲氧基；
Z为＝O或＝S；
R为(C4-C6)烷基或ω-三氟丁基；
R1和R2独立地为氢，甲氧基或氟；
R3和R′3独立地为氢或甲基；
R4和R5独立地为氢或甲基；或R4为氢且R5为基团-CH2-OH；
R6和R7独立地为氢或(C1-C4)烷基；或与相邻的氮原子共同构成5-6元单环饱和杂环，选自吡咯烷和哌啶；
条件是当X为-S-时，Y不为甲氧基；
如果可能，为分离形式的单一旋光异构体或其任意比例的混合物及其药学上可接受的盐。
4.权利要求1的化合物，其中：
X为-O-；
Y为氢；
Z为＝O；
R为(C4-C6)烷基；
R1和R2独立地为氢或氟；
R3，R′3，R4和R5为氢；
R6和R7独立地为氢或(C1-C3)烷基；
如果可能，为分离形式的单一旋光异构体或其任意比例的混合物及其药学上可接受的盐。
5.权利要求1的化合物，其选自：
2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺
2-{2-[3-(4，4，4-三氟丁氧基)苯基]-乙氨基}-N，N-二甲基乙酰胺
2-[2-(3-戊氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺
2-[2-(3-己氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺
2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二丙基乙酰胺
2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二丁基乙酰胺
2-[2-(3-戊氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二丙基乙酰胺
2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-乙酰胺
2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N-甲基乙酰胺
2-[2-(3-异丙氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺
2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二乙基乙酰胺
2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-1-吡咯烷-1-基-乙酮
2-[2-(3-丁氧基-4-氟苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺
2-[2-(3-丁氧基-4-甲氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺
2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-2，N，N-三甲基丙酰胺
2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基丙酰胺
2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-3-羟基-N，N-二甲基丙酰胺
2-[2-(3-丁氧基-2，6-二氟苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺
2-[2-(3-丁氧基苯基)-2-甲基丙基氨基]-N，N-二甲基乙酰胺
2-[2-(3-丁基硫代苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺
2-[2-(3-丁基磺酰基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺
2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基硫代乙酰胺
2-[2-(3-丁氧基苯基)-(N′-甲氧基)乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺
如果可能，为分离形式的单一旋光异构体或其任意比例的混合物及其药学上可接受的盐。
6.权利要求5的化合物，其选自2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺，2-[2-(3-丁氧基-2，6-二氟苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺，2-[2-(3-戊氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺，2-[2-(3-己氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺，2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N-甲基乙酰胺，2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基丙酰胺，2-[2-(3-丁氧基-4-甲氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺，2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-1-吡咯烷-1-基-乙-1-酮，2-[2-(3-丁氧基苯基)-2-甲基丙基氨基]-N，N-二甲基乙酰胺，2-[2-(3-丁氧基苯基)-(N’-甲氧基)乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺和2-[2-(3-丁氧基-4-氟苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺，
及其药学上可接受的盐。
7.权利要求6的化合物，其中所述药学可接受的盐是与盐酸或甲磺酸的盐。
8.权利要求6的化合物，其为2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺或其与盐酸或甲磺酸的药学上可接受的盐。
9.权利要求1的化合物，其中：
X为-SO2-；或
Y为O(C1-C4)烷基；或
Z为＝S；或
R为ω-三氟(C4-C6)烷基；或
R1和/或R2不为氢；或
R3和R′3都不为氢；或
R4和R5都不为氢；或
R6和R7与相邻的氮原子共同构成单环5-6元饱和杂环，任选包含一个额外的杂原子，所述单环5-6元饱和杂环选自吡咯烷、哌啶、吗啉和哌嗪，其中哌嗪中的额外的杂原子是基团-NR8-，所述R8为氢或(C1-C3)烷基，
前提是当X是-S-或SO2-，则Y不是O(C1-C4)烷基，
如果可能，为分离形式的单一旋光异构体或其任意比例的混合物及其药学上可接受的盐。
10.权利要求1～9中任一项的化合物在制备作为具有治疗其中钠和/或钙通道机制起病理作用的病理情况的起钠和/或钙通道调节剂的活性的药物的用途，所述的病理情况为神经性，认知，精神病，炎性，泌尿生殖或胃肠疾病。
11.权利要求10中的用途，其中所述的病理情况为选自疼痛和偏头痛的神经障碍。
12.权利要求11中的用途，其中所述的疼痛为神经性疼痛综合征或炎性痛综合征。
13.权利要求11中的用途，其中疼痛为急性或慢性疼痛。
14.权利要求10中的用途，其中所述的病理情况为选自阿尔茨海默病，帕金森病，癫痫症，多动腿综合征，中风或脑缺血的神经障碍。
15.权利要求10中的用途，其中所述的炎性疾病为侵害所有身体系统的炎症过程。
16.权利要求15中的用途，其中所述侵害所有身体系统的炎性过程为关节炎症，侵害皮肤和相关组织的病症，呼吸系统病症或免疫和内分泌系统病症。
17.权利要求10中的用途，其中所述的病理情况为认知病。
18.权利要求17中的用途，其中所述的认知病为轻度认知缺损。
19.权利要求10中的用途，其中所述的病理情况为精神病，选自抑郁症，双相性精神障碍，躁狂，精神分裂症，焦虑和成瘾。
20.权利要求10中的用途，其中所述的病理情况为泌尿生殖疾病。
21.权利要求10中的用途，其中所述的病理情况为胃肠疾病。
22.权利要求10的用途，其中所述化合物与一种或多种其它治疗剂结合使用。
23.权利要求17-19中任一项的用途，其中，化合物与一种以上其它治疗剂结合，其它治疗剂选自抗精神病药。
24.权利要求23的用途，其中所述化合物与一种以上其它治疗剂结合，所述化合物是2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺或其药学上可接受的盐，所述抗精神病药选自氟哌啶醇、利培酮和氯氮平。
25.权利要求24的用途，其中所述化合物与一种以上其它治疗剂结合，所述化合物是2-[2-(3-丁氧基苯基)-乙氨基]-N，N-二甲基乙酰胺的盐酸盐或甲磺酸盐，所述抗精神病药是氟哌啶醇或利培酮。
26.权利要求16的用途，其中所述病理情况是免疫系统病症。
27.权利要求26的用途，其中所述免疫系统病症为多发性硬化病或其它脱髓鞘病症。
28.权利要求1-9中任一项的化合物在制备治疗病理情况的作为钠和/或钙通道调节剂具有活性的药物中的用途，其中所述钠和/或钙通道机制起病理作用，所述的病理情况为神经病学，认知，精神病学，炎性，泌尿生殖或胃肠疾病，所述的药物基本上没有任何MAO抑制活性或具有显著降低的MAO抑制活性。
29.权利要求28的用途，其中所述药物用于治疗对由于MAO抑制活性导致的不希望的副作用尤其敏感的患者的病症。
30.药物组合物，其包含权利要求1-9中任一项的化合物作为活性组分与药学上可接受的治疗惰性有机或无机载体物质。
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