CN100381559C - 一种组成型毕赤酵母菌株及其构建方法 - Google Patents

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Abstract

本发明公开了一种表达D-氨基酸氧化酶的组成型毕赤酵母重组菌株,该菌株转化有重组质粒pMMZY03,该重组质粒以三磷酸甘油醛脱氢酶基因为启动子,并含有D-氨基酸氧化酶基因,组氨醇脱氢酶基因和卡那霉素抗性基因。本发明还公开了所述表达D-氨基酸氧化酶的组成型毕赤酵母重组菌株的构建方法。与现有已知的D-氨基酸氧化酶生产菌株相比较,本发明的菌株具有生产时间缩短的优势,且避免了发酵过程中甲醇诱导的难控制因素。

Description

一种组成型毕赤酵母菌株及其构建方法
技术领域
本发明涉及基因工程菌和微生物发酵领域,具体地说,是关于一种表达D-氨基酸氧化酶的组成型毕赤酵母菌株及其构建方法。
背景技术
D-氨基酸氧化酶(D-Amino Acid Oxidase,DAO,EC 1.4.3.3)是一种以黄素腺嘌呤二核苷酸(FAD)为辅基的典型黄素蛋白酶类,它催化D型氨基酸氧化脱氨反应,生成相应的酮酸和氨,并伴随着一分子氧还原,而释放出过氧化氢。在两步酶法生产7-氨基酸头孢烷酸(7-ACA)工艺中,DAO用于转化头孢菌素C(CPC)的第一步反应。
巴斯德毕赤酵母已经成为一种主要的真核微生物表达系统(Cregg JM.,Vedvick TS.,Raschke WC.Bio/Technology.11:905-910,1993)。毕赤酵母可以高密度发酵,毕赤酵母表达系统中整合质粒常用的启动子是醇氧化酶启动子(Alcohol oxidasel promoter,PAOX1)和三磷酸甘油醛脱氢酶启动子(Glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase,PGAP)。
甲醇诱导型毕赤酵母菌能够表达三角酵母来源的DAO(Yu J,Yang S,Yuan ZY.J.Mol.Catal B-Enzym.18:291-297,2002),但是,诱导型毕赤酵母菌在发酵过程中需要添加甲醇诱导,且诱导过程的条件控制比较复杂,此外,发酵时间相对也比较长,酶活力达到最高点通常需要40小时左右。
发明内容
本发明的目的就在于克服现有表达D-氨基酸氧化酶(DAO)的甲醇诱导型毕赤酵母菌的上述缺点和不足,从而提供一种表达DAO的组成型毕赤酵母基因工程菌株。
本发明的另一个目的在于提供一种上述表达DAO的组成型毕赤酵母表达菌株的构建方法。
本发明的表达DAO的组成型毕赤酵母表达菌株转化有重组质粒pMMZY03,该重组质粒以三磷酸甘油醛脱氢酶基因为启动子,并含有D-氨基酸氧化酶基因、组氨醇脱氢酶基因和卡那霉素基因。
本发明的组成型毕赤酵母重组菌株的构建方法包括以下步骤:
A、酶切质粒质粒pPIC3.5k,回收含有卡那霉素基因和组氨醇脱氢酶基因的片段;酶切质粒pGAPZA,回收含有三磷酸甘油醛脱氢酶基因的片段;连接酶连接上述两片段得到重组质粒pPICGAP;
B、重组质粒pPICGAP酶切线性化后与带有组氨酸纯化标签的DAO基因(HDAO)片段用T4连接酶相连接,得到重组质粒pMMZY03;
C、将重组质粒pMMZY03电击转化入毕赤酵母宿主菌中,构建成表达D-氨基酸氧化酶的组成型毕赤酵母重组菌株。
与现有技术中已知的DAO生产菌株相比,本发明的带组氨酸纯化标签的重组DAO的表达菌株达到相同发酵单位所需的发酵时间大为缩短(约为1/3),并且不需要甲醇诱导。因此在生产中具有非常明显的优势,例如时间短、能耗低、发酵过程控制相对简单等。
新构建的整合载体启动子是三磷酸甘油醛脱氢酶基因。与商品化的相同类型载体相比较,载体中含有组氨醇脱氢酶基因(HIS4),同时避免了高价格抗生素Zeocin使用。
附图说明
图1为在组成型毕赤酵母中表达重组三角酵母DAO的整合质粒pMMZY03的构建流程图。
具体实施方式
以下结合实施例对本发明作进一步说明。应理解,以下实施例仅用于说明本发明而不用于限定本发明的范围。
以下实施例中,DNA片段连接、质粒的制备,化学转化导入宿主菌,克隆均参照《分子克隆》(Sambrook,J.,Fritsch,E.P.,Maniatis,T.(2001)“Molecular Cloning:A LaboratoryManual 3rd ed,”Cold Spring Harbor Laboratory Press,Cold Spring Harbor,NY)。
本发明所构建的表达DAO的组成型巴斯德毕赤酵母菌株MMZY03已于2005年8月9日提交中国典型培养物保藏中心(CCTCC)保藏,保藏号为CCTCC M 205088。
实施例1、质粒构建
1、材料:
质粒pPIC3.5k:Invitrogen公司产品,大小为9.0kb,含有卡那霉素抗性基因,氨苄青霉素抗性基因,组氨醇脱氢酶基因,启动子是醇氧化酶基因,并具有多个限制性酶切位点。
质粒pGAPZA:Invitrogen公司产品,大小为2.9kb,含有Zeocin抗性基因,启动子是三磷酸甘油醛脱氢酶基因,并具有多个限制性酶切位点。
质粒pLHB-3:按照Liu HB等(Liu HB.,Jiang WH.,Yang YL.Cloning,Sequencing andExpression of D-amino acid oxidase gene.Chinese Journal of Biotechnology 15:337-342,1999)的方法构建,大小为6.4kb,含有带组氨酸纯化标签的DAO基因(HDAO),卡那霉素抗性基因,启动子是T7 lac。
2、方法:
如图1所示,质粒pPIC3.5k用EcoR I单酶切,再用Bgl II部分酶切,割胶回收大小约8.0kb的基因片段,该片段含有卡那霉素基因和组氨醇脱氢酶基因;质粒pGAPZA用EcoR I和Bgl II双酶切后胶回收约0.5kb的基因片段,该片段含有三磷酸甘油醛脱氢酶基因;T4连接酶连接上述两片段得到重组质粒pPICGAP,该重组质粒启动子是三磷酸甘油醛脱氢酶基因,含有组氨醇脱氢酶基因和卡那霉素抗性基因。
质粒pPICGAP用EcoR I线性化后再用Klenow补平,胶回收得到约8.5kb大小的片段;质粒pLHB-3用Nco I和Hind III双酶切后再用Klenow补平,得到约1.2kb的HDAO基因片段;T4连接酶连接两个基因片段,得到重组质粒pMMZY03,该重组质粒启动子是三磷酸甘油醛脱氢酶基因,含有重组D-氨基酸氧化酶基因,组氨醇脱氢酶基因和卡那霉素抗性基因。
实施例2、质粒扩增
质粒pMMZY03采用常规的化学转化法《参考分子克隆》转化至至大肠杆菌宿主菌DH5α(Takara),挑取单个转化子接种到LB液体培养基(1%蛋白胨,0.5%酵母膏,1%氯化钠)中,在37℃培养扩增pMMZY03质粒。
实施例3、质粒转化
参考《分子克隆》,采用碱裂解法从实施例2的大肠杆菌抽提扩增的质粒pMMZY03,抽提的质粒选用BspE I单酶切线性化,乙醇沉淀回收线性化质粒约10μg,与毕赤酵母宿主菌GS115(his-mut+)感受态细胞80μl混合后转入电转化杯中,冰浴中放置5min,同时准备一份不添加线性化质粒pMMZY03的感受态细胞作为阴性对照。采用Bio-Rad电转化仪器,电转化参数设置是1.5KV、25μF、200Ω,电击时间4.6ms,电击转化后立即加入1ml冰浴的山梨醇。电击转化产物涂在MD平板(1.34%YNB,4×10-5%生物素,1%葡萄糖,2%琼脂糖)上,放置28℃培养,2-3天后MD平板上长出转化子。
实施例4、转化子筛选
从MD平板上挑取10个转化子接种至YPD培养基(2%蛋白胨,1%酵母膏,2%葡萄糖)中,培养温度为30℃,摇床转速为280rpm,培养至24h时取样测定DAO活力。
一个酶活力单位(U)的DAO定义:37℃,pH8.5条件下,每分钟氧化脱氨生成1μmol酮酸所需的酶量。
采用比色法测定DAO活力(Nilsson.K.,Mosbach.K.,Appl.Biochem.Biotechnol.,6:293-308,1981),具体如下:
待测样品中加入用0.1mol/L、pH8.0的焦磷酸钠缓冲液配制的50mmol/L DL-甲硫氨酸溶液,在37℃浴中振荡反应30min,加入10%的三氯乙酸终止反应。将终止液稀释10倍后加入0.2%的2,4-二硝基苯肼饱和溶液,混匀静置10min。加入3mol/L的NaOH溶液,混匀后静置15min,离心后测定A550值。
按照上述方法测定10个转化子在24h的DAO活力,结果如下表1所示:
表1、DAO活力测定
  菌株编号   时间(hr)   DAO活力(U/L)   菌株编号   时间(hr)   DAO活力(U/L)
  GAP-1   24   1875   GAP-6   24   1570
  GAP-2   24   1640   GAP-7   24   1302
  GAP-3   24   1520   GAP-8   24   872
  GAP-4   24   2011   GAP-9   24   1102
  GAP-5   24   950   GAP-10   24   1320
通过上述测定DAO活力的方法筛选出DAO表达最高的重组菌株,命名为MMZY03。该菌株并已于2005年8月9日提交中国典型培养物保减中心(CCTCC)保藏,保藏号为CCTCC M 205088。
实施例5、表达DAO活力的比转
以本发明的组成型重组毕赤酵母菌株MMZY03与诱导型重组毕赤酵母菌株在同等条件下进行表达DAO活力的比较,发酵采用YPD培养基(同实施例4),接种量为5%,发酵温度为30℃,溶氧维持在30%左右,发酵过程中用氨水调节pH6.0,从接种时刻算起,每隔1小时取样测定DAO活力,结果如表2所示:
表2、表达DAO活力比较
  5   8   10   13   15   18   20   25   30   35   40   45   50
  组成型 1000 2100 3200 6321 6120 5800 5100 5450 5050 4987 4782 3864 3298
  诱导型 0 0 0 0 0 0 0 0 3450 5832 7350 6212 6008
由以上表2的结果可见,本发明的组成型重组毕赤酵母菌株MMZY03(组成型)从接种时间起约13h时发酵单位达到最高,约为6321U/L,相比之下,现有技术中使用的诱导型重组毕赤酵母中DAO发酵单位达到最高需要约40h,所用时间约为本发明的菌株的3倍。可见以本发明的组成型毕赤酵母重组菌株表达D-氨基酸氧化酶,不但可以避免发酵过程中甲醇诱导的难控制因素,而且酶活力达到最高点仅需约13h左右,约为现有甲醇诱导型菌株的1/3,从而大大缩短了发酵时间,减少了能耗,进而降低了生产成本。

Claims (9)

1.一种表达D-氨基酸氧化酶的组成型毕赤酵母(P.pastoris)重组菌株,其特征在于,所述菌株转化有重组质粒pMMZY03,该重组质粒以三磷酸甘油醛脱氢酶基因为启动子,并含有D-氨基酸氧化酶基因、组氨醇脱氢酶基因和卡那霉素基因。
2.如权利要求1所述的组成型毕赤酵母重组菌株,其特征在于,所述重组质粒pMMZY03还具有组氨酸标签。
3.如权利要求1所述的组成型毕赤酵母重组菌株,其特征在于,所述菌株的保藏号CCTCC M 205088。
4.一种组成型毕赤酵母重组菌株的构建方法,其特征在于包括以下步骤:
A、酶切质粒pPIC3.5k,回收含有卡那霉素基因和组氨醇脱氢酶基因的片段;酶切质粒pGAPZA,回收含有三磷酸甘油醛脱氢酶基因的片段;连接酶连接上述两片段得到重组质粒pPICGAP;
B、重组质粒pPICGAP酶切线性化后用连接酶与带有组氨酸纯化标签的D-氨基酸氧化酶基因片段相连接,得到重组质粒pMMZY03;
C、将重组质粒pMMZY03电击转化入毕赤酵母宿主菌中,构建成表达D-氨基酸氧化酶的组成型毕赤酵母重组菌株。
5.如权利要求4所述的方法,其特征在于,步骤A和B中所使用的连接酶为T4连接酶。
6.如权利要求4所述的方法,其特征在于,步骤B中所述线性化的重组质粒pPICGAP以及带有组氨酸纯化标签的D-氨基酸氧化酶基因片段在用连接酶连接前先以Klenow补平。
7.如权利要求4所述的方法,其特征在于,在将重组质粒pMMZY03电击转化入毕赤酵母宿主菌前还包括将重组质粒pMMZY03导入大肠杆菌进行扩增的步骤。
8.一种重组质粒,其特征在于,所述重组质粒以三磷酸甘油醛脱氢酶基因为启动子,并含有D-氨基酸氧化酶基因、组氨醇脱氢酶基因和卡那霉素基因。
9.如权利要求8所述的重组质粒,其特征在于,所述重组质粒带有组氨酸标签。
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