WO2021038892A1 - ヒト脂肪肝モデル細胞 - Google Patents

ヒト脂肪肝モデル細胞 Download PDF

Info

Publication number
WO2021038892A1
WO2021038892A1 PCT/JP2019/042317 JP2019042317W WO2021038892A1 WO 2021038892 A1 WO2021038892 A1 WO 2021038892A1 JP 2019042317 W JP2019042317 W JP 2019042317W WO 2021038892 A1 WO2021038892 A1 WO 2021038892A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
cells
human
fatty liver
medium
dmso
Prior art date
Application number
PCT/JP2019/042317
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
雅和 加国
真生 高橋
恵司 畠
さやか 戸松
玲 佐々木
結 梅川
Original Assignee
株式会社フェニックスバイオ
秋田県
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 株式会社フェニックスバイオ, 秋田県 filed Critical 株式会社フェニックスバイオ
Priority to US16/620,412 priority Critical patent/US20220177833A1/en
Priority to CA3065031A priority patent/CA3065031C/en
Priority to CN201980002972.5A priority patent/CN112714789A/zh
Priority to EP19813218.5A priority patent/EP4039797A4/en
Publication of WO2021038892A1 publication Critical patent/WO2021038892A1/ja

Links

Images

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602—Vertebrate cells
    • C12N5/067—Hepatocytes
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/5005—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells
    • G01N33/5008—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics
    • G01N33/5044—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics involving specific cell types
    • G01N33/5067—Liver cells
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/0018—Culture media for cell or tissue culture
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/02—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving viable microorganisms
    • C12Q1/04—Determining presence or kind of microorganism; Use of selective media for testing antibiotics or bacteriocides; Compositions containing a chemical indicator therefor
    • C12Q1/06—Quantitative determination
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/5005—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells
    • G01N33/5008—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics
    • G01N33/5014—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics for testing toxicity
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01K—ANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
    • A01K2207/00—Modified animals
    • A01K2207/12—Animals modified by administration of exogenous cells
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01K—ANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
    • A01K2207/00—Modified animals
    • A01K2207/15—Humanized animals
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01K—ANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
    • A01K2217/00—Genetically modified animals
    • A01K2217/15—Animals comprising multiple alterations of the genome, by transgenesis or homologous recombination, e.g. obtained by cross-breeding
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00—Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/30—Organic components
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00—Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/60—Buffer, e.g. pH regulation, osmotic pressure
    • C12N2500/62—DMSO
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2503/00—Use of cells in diagnostics
    • C12N2503/02—Drug screening
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2800/00—Detection or diagnosis of diseases
    • G01N2800/08—Hepato-biliairy disorders other than hepatitis
    • G01N2800/085—Liver diseases, e.g. portal hypertension, fibrosis, cirrhosis, bilirubin

Definitions

  • the present invention relates to human fatty liver model cells and a method for producing the same.
  • Fatty liver is a general term for diseases in which lipids such as triglycerides accumulate excessively in hepatocytes and cause liver damage.
  • lipids such as triglycerides accumulate excessively in hepatocytes and cause liver damage.
  • accumulation of lipid droplets is observed in more than 1/3 of the hepatocytes that make up the hepatic lobule.
  • the frequency of fatty liver tends to increase year by year due to changes in eating habits and lifestyle.
  • non-alcoholic steatohepatopathy Non-Alcoholic Fatty Liver Disease: NAFLD
  • fatty liver is non-alcoholic.
  • NASH non-alcoholic steatohepatitis
  • liver cirrhosis liver cirrhosis
  • liver cancer liver cancer
  • a non-human animal model showing the symptoms of fatty liver has been created for the purpose of studying the onset mechanism of fatty liver and its prevention and treatment.
  • a non-human animal model showing symptoms of fatty liver is prepared by transplanting human hepatocytes into a non-human animal with hepatic disorder immunodeficiency.
  • symptoms of fatty liver such as large fat droplets and fattening of the liver are observed.
  • non-human animal models require a great deal of time, labor, and cost for production, breeding, and management, and may have problems such as individual differences, reproducibility problems, and ethical usage restrictions. Therefore, in order to efficiently study the onset mechanism of fatty liver and its prevention and treatment, an in vitro evaluation system for human fatty liver, that is, human fatty liver model cells is eagerly desired.
  • the present inventors have found that when human hepatocytes derived from fatty liver are cultured in vitro, the cells cause disappearance of lipid droplets and the like, and the symptoms of fatty liver cannot be maintained. More specifically, human hepatocytes in which fatty liver symptoms such as accumulation of lipid droplets are observed are separated and collected from fatty liver extracted from a non-human animal model showing the above-mentioned fatty liver symptoms. Was cultured in vitro, and it was found that the cells lost fat droplets and could not maintain the symptom of fatty liver.
  • the present invention provides a new method capable of maintaining fatty liver symptoms such as accumulation of fatty droplets in fatty liver-derived human hepatocytes, and provides a new human fatty liver model cell.
  • the purpose is to provide.
  • human liver cells derived from fatty liver are cultured in a medium containing dimethylsulfoxide to accumulate lipid droplets and secrete / accumulate lipids.
  • the expression of fatty liver-related genes was observed, and it was found that human fatty liver model cells that maintain the symptoms of fatty liver can be obtained.
  • a method for producing human fatty liver model cells A step of culturing human hepatocytes derived from fatty liver in a medium containing dimethyl sulfoxide, Including methods.
  • the method of [1] wherein human hepatocytes derived from fatty liver are recovered from a chimeric non-human animal having human hepatocytes.
  • VLDL very low density lipoprotein
  • LDL low density lipoprotein
  • a screening method for substances effective for human fatty liver The step of administering the test substance to the cells according to any one of claims 4 to 7, and A method comprising the step of comparing the degree of fatty liver symptoms between cells to which the test substance has been administered and cells to which the test substance has not been administered.
  • a method for evaluating the toxicity of a test substance to human fatty liver The step of administering the test substance to the cells according to any one of claims 4 to 7, and A method comprising a step of comparing the viability of cells and the degree of fatty liver symptoms between cells to which a test substance has been administered and cells to which the test substance has not been administered, and evaluating the effect of the test substance on human fatty liver.
  • fatty liver model cells in which accumulation of lipid droplets, secretion / accumulation of lipids, expression of fatty liver-related genes, etc. are observed, and a method for producing the same.
  • FIG. 1 shows a photograph of PXB-cells cultured in medium B (DMSO (+)) or medium C (DMSO ( ⁇ )) for 5 days.
  • PXB-cells cultured in medium B (DMSO (+)) left
  • PXB-cells cultured in medium C DMSO (-)
  • FIG. 2 shows the measurement results of the total triglyceride content of lipoprotein in the culture supernatant of PXB-cells cultured in medium B (DMSO (+)) or medium C (DMSO (-)) for 5 days. Shown. The results are shown as relative values with the content in the culture supernatant of PXB-cells cultured in medium B (DMSO (+)) as "100".
  • FIG. 1 shows a photograph of PXB-cells cultured in medium B (DMSO (+)) or medium C (DMSO ( ⁇ )) for 5 days.
  • FIG. 2 shows the measurement results of the total triglyceride content of lipoprotein in the culture supernatant of
  • FIG. 3 shows total cholesterol of lipoproteins in culture supernatants of PXB-cells, HepG2 cells, and HuH7 cells cultured in medium B (DMSO (+)) for 5, 9, 12, and 14 days (left). ) And total triglyceride (triglyceride) (right) content measurement results are shown.
  • FIG. 4 shows PXB-cells cultured in medium B (DMSO (+)) for 5, 9, 12 and 14 days, and lipoproteins (4 subtypes) in the culture supernatants of HepG2 cells and HuH7 cells. The results of analysis of cholesterol (left) and triglyceride (triglyceride) (right) contents of (group) are shown.
  • FIG. 5 shows intracellular total cholesterol (left) and triglyceride in cells of PXB-cells, HepG2 cells, and HuH7 cells cultured in medium B (DMSO (+)) for 5, 9, 12, and 14 days.
  • the measurement result of the triglyceride (triglyceride) (right) content is shown.
  • FIG. 6 shows the measurement results of the expression levels of fatty liver-related genes (FASN, SREBF1, G6PC) in PXB-cells cultured in medium B (DMSO (+)) for 3 days and 6 days. The results are shown as relative values with the expression level of each gene of PXB-cells cultured in medium B (DMSO (+)) for 3 days as "1".
  • FIG. 1 shows intracellular total cholesterol (left) and triglyceride in cells of PXB-cells, HepG2 cells, and HuH7 cells cultured in medium B (DMSO (+)) for 5, 9, 12, and 14 days.
  • FIG. 7 shows the total cholesterol content in the culture supernatant and cells of PXB-cells cultured for 2 days in medium B (DMSO (+)) supplemented with Junsai extract (5 ⁇ g / mL, 50 ⁇ g / mL, 500 ⁇ g / mL). And the measurement result of the total triglyceride (triglyceride) content and the human albumin content in the culture supernatant are shown. The results are shown as relative values with the contents of total cholesterol, triglyceride and human albumin in the control as "100".
  • FIG. 8 shows the total cholesterol content and triglyceride in the culture supernatant and cells of PXB-cells cultured for 2 days in medium B (DMSO (+)) supplemented with simvastatin (0.1 ⁇ M, 1 ⁇ M, or 10 ⁇ M).
  • DMSO (+) medium B
  • simvastatin 0.1 ⁇ M, 1 ⁇ M, or 10 ⁇ M.
  • the measurement results of the fat (triglyceride) content and the human albumin content in the culture supernatant are shown.
  • the results are shown as relative values with the contents of total cholesterol, triglyceride and human albumin in the control as "100".
  • the present invention relates to a method for producing human fatty liver model cell, which comprises a step of culturing human hepatocyte derived from fatty liver in a medium containing dimethylsulfoxide.
  • Human hepatocytes derived from fatty liver are human hepatocytes recovered from fatty liver tissue, or those that have been frozen and then thawed. Can be used.
  • the fatty liver tissue is a fatty liver tissue derived from a human patient having fatty liver, and a non-human animal model obtained by transplanting human hepatocytes into a non-human animal with hepatic disorder immunodeficiency (hereinafter referred to as "chimeric non-human animal”).
  • Fatty liver tissue or the like derived from (described) can be used.
  • the "fatty liver-derived human hepatocyte” is a human hepatocyte recovered from a chimeric non-human animal from the viewpoint of mass production and stable supply.
  • Human hepatocytes recovered from chimeric non-human animals Human hepatocytes recovered from fatty liver tissue derived from chimeric non-human animals available in the present invention can be prepared by the following method.
  • the “chimeric non-human animal” means a non-human animal in which some or all of the hepatocytes in the liver are replaced with human hepatocytes.
  • the "non-human animal” is preferably a mammal, more preferably a rodent.
  • rodents include mice and rats such as rats, guinea pigs, squirrels, and hamsters, and mice and rats such as rats, which are widely used as experimental animals, are particularly preferable.
  • Chimeric non-human animals having human hepatocytes are transplanted with human hepatocytes into non-human animals with hepatic disorder immunodeficiency according to a conventionally known method (Japanese Patent Laid-Open No. 2002-45087, WO2008 / 001614, WO2013 / 145331). Can be obtained by
  • Liver disorder immunodeficiency non-human animal is an immunodeficiency that does not show rejection of cells derived from heterologous animals and liver derived from non-human animal. Means an animal whose cells are impaired. Since the liver cells derived from non-human animals are damaged, the transplanted human hepatocytes are likely to proliferate, and the transplanted human hepatocytes maintain the liver function.
  • Liver disorder immunodeficiency non-human animals can be produced by subjecting the same individual to a liver disorder induction treatment and an immunodeficiency induction treatment.
  • the "liver disorder-inducing treatment” includes administration of a liver-damage-inducing substance (for example, carbon tetrachloride, yellow phosphorus, D-galactosamine, 2-acetylaminofluorene, pyrorosin alkaloid, etc.) and surgical treatment (for example, for liver. Partial excision, etc.).
  • a liver-damage-inducing substance for example, carbon tetrachloride, yellow phosphorus, D-galactosamine, 2-acetylaminofluorene, pyrorosin alkaloid, etc.
  • surgical treatment for example, for liver. Partial excision, etc.
  • Examples of the “immunodeficiency-inducing treatment” include administration of an immunosuppressant and removal of the thymus.
  • a non-human animal with hepatic disorder immunodeficiency can also be produced by subjecting an animal with genetic immunodeficiency to a hepatic disorder-inducing treatment.
  • Genetically immunodeficient animals include animals with severe combined immunodeficiency (SCID) showing T cell system deficiency, animals that have lost T cell function due to genetic thymic defects, and RAG2 genes. Knockout animals and the like can be used. Specifically, it is obtained by transplanting the bone marrow of SCID mouse into SCID mouse, NUDE mouse, RAG2 knockout mouse, IL2Rgg / Rag2 knockout mouse, NOD mouse, NOG mouse, nude mouse, nude rat, and X-ray irradiated nude rat. Immunodeficient rats (Japanese Patent Laid-Open No. 2007-228962, Transplantation, 60 (7): 740-7, 1995) and the like can be used.
  • a non-human animal with hepatic disorder immunodeficiency can also be produced by subjecting an animal having a genetic hepatic disorder to an immunodeficiency-inducing treatment.
  • an animal having a hepatic disorder genetically a transgenic animal into which a hepatocyte-specifically expressed protein enhancer and / or a hepatic disorder-inducing protein gene linked under the control of a promoter can be used can be used. it can.
  • the "hepatocyte-specifically expressed protein” include serum albumin, cholinesterase, Hagemann factor and the like, and enhancers and / or promoters that regulate the expression of these genes can be used.
  • liver disorder-inducing protein examples include urokinase plasminogen activator (uPA) and tissue plasminogen activator (tPA).
  • uPA urokinase plasminogen activator
  • tPA tissue plasminogen activator
  • hepatocyte-specific hepatic disorder-inducing protein is expressed under the enhancer and / or promoter of the hepatocyte-specifically expressed protein, so that hepatic disorder is induced.
  • an animal with a genetic liver disorder can also be produced by knocking out a gene responsible for liver function.
  • the "gene responsible for liver function” include a fumalyl acetoacetate hydrase gene and the like.
  • a non-human animal with hepatic disorder immunodeficiency can also be produced by mating an animal with genetic immunodeficiency and an animal having the same kind of genetic hepatic disorder.
  • non-human animals with hepatic disorder immunodeficiency can use the above-mentioned immunity by using gene targeting, genome editing technology such as CRISPR-Cas9, zinc finger nuclease (ZFN), and TALE nuclease (TALEN), and gene recombination technology.
  • Fertilized eggs, pluripotent stem cells derived from non-human animals or non-human animals that are genetically immunodeficient and / or genetically have liver damage as the genetic factors that cause dysfunction and / or the above-mentioned liver damage. It can be prepared by introducing into (for example, embryonic stem cells (ES cells), induced pluripotent stem cells (iPS cells), etc.) (Wang, H. et al., Cell, 153, 910-918, (2013)). Yang, H. et al., Cell, 154, 1370-1379, (2013)).
  • ES cells embryonic stem cells
  • iPS cells induced pluripotent stem cells
  • the "liver disorder immunodeficiency non-human animal” may have a gene that defines the trait of immunodeficiency and a gene that defines the trait of liver damage in a homozygous manner, or a heterozygous type. You may have it at.
  • the hepatic disorder immunodeficiency non-human animal of the present invention is represented by a genotype such as uPA (+/-) / SCID (+ / +), uPA (+ / +) / SCID (+ / +).
  • Hepatic disorder immunodeficiency mice can be preferably used.
  • the “human hepatocytes” transplanted into non-human animals with hepatic disorder immunodeficiency may be human-derived hepatocytes, for example, from human hepatocytes.
  • Human hepatocytes isolated according to a conventional method such as collagenase perfusion method can be used.
  • the human liver tissue may be a liver tissue derived from a healthy person or a liver tissue derived from a patient suffering from a disease such as fatty liver or liver cancer, but is preferably a liver tissue derived from a healthy person. is there.
  • the age of humans from which hepatocytes are isolated is not particularly limited, but it is preferably isolated from the liver tissue of children aged 14 years or younger. By using hepatocytes of children under 14 years of age, a high replacement rate by human hepatocytes can be achieved after transplantation. It is also possible to freeze and store the isolated hepatocytes and then thaw them for use.
  • the human hepatocyte may be a proliferative human hepatocyte having an active proliferative ability in vivo.
  • the "proliferative human hepatocyte” means a human hepatocyte that forms a colony as a population of a single cell type under culture conditions (in vitro) and proliferates so as to increase the colony.
  • the proliferation is sometimes referred to as "clonal proliferation" in that the colony-constituting cells are a single species. Moreover, such cells are cells whose cell number can be further increased by subculture.
  • proliferative human hepatocytes examples include small human hepatocytes (Japanese Patent Office No. 08-112092; Japanese Patent No. 32667666; US Pat. No. 6,004,810, Japanese Patent Office No. 10-179148: Japanese Patent Office. No. 3211941, JP-A-7-274951; Japanese Patent No. 3157984, JP-A-9-313172; Japanese Patent No. 3014322).
  • the isolated human hepatocytes may be used as they are, or may be further purified and used. Purification of hepatocytes can be performed according to a conventional method, and can be performed by means such as centrifugation, an eltriator, FACS, or a monoclonal antibody that specifically recognizes hepatocytes that proliferate while forming colonies. it can. Known monoclonal antibodies (WO2008 / 001614) that specifically recognize human hepatocytes and proliferative human hepatocytes can be used.
  • human hepatocytes are human hepatocytes isolated from hepatocytes of chimeric non-human animals having human hepatocytes according to a conventional method such as collagenase perfusion method, or those that have been frozen and stored and then thawed.
  • Human hepatocytes derived from pluripotent stem cells for example, embryonic stem cells (ES cells), artificial pluripotent stem cells (iPS cells), etc.
  • hepatocytes such as Clip cells
  • in vitro Proliferated human hepatocytes cryopreserved hepatocytes
  • hepatocytes immortalized by introduction of a telomerase gene, etc. and a mixture of these hepatocytes and nonparenchymal cells can also be used.
  • Transplantation of human hepatocytes into a non-human animal with hepatic disorder immunodeficiency can be performed by transplanting into the liver via the spleen of the non-human animal. Alternatively, it can be transplanted directly from the portal vein.
  • the number of human hepatocytes to be transplanted can be about 1 to 2 million, preferably about 200,000 to 1 million.
  • Hepatic disorder Immunodeficiency The sex of non-human animals is not particularly limited.
  • the age of non-human animals with hepatic disorder immunodeficiency used for transplantation is not particularly limited, but if human hepatocytes are transplanted at a young age, human hepatocytes can proliferate more actively as the animal grows. Therefore, those about 0 to 40 days after birth, preferably about 8 to 40 days after birth can be used.
  • Animals after transplantation can be bred by the conventional method. For example, by breeding for about 40 to 200 days after transplantation, a chimeric non-human animal in which some or all of the hepatocytes in the non-human animal is replaced with human hepatocytes can be obtained. In the liver of the chimeric non-human animal thus obtained, symptoms of fatty liver such as large fat droplets and fattening of the liver are observed (WO2008 / 001614).
  • Recovery of human hepatocytes from chimeric non-human animals can be performed according to a conventional method such as collagenase perfusion method.
  • the recovery of human hepatocytes is preferably performed using a chimeric non-human animal in which the recovered hepatocytes contain a high rate of human hepatocytes, for example, a chimeric non-human having one or more of the following characteristics. It can be done using animals. (I) 60% or more, preferably 70% or more, more preferably 80% or more, still more preferably 90% or more, still more preferably 95% or more, particularly preferably 99% or more of human hepatocytes in the liver.
  • the amount of human albumin in blood is 0.1 mg / mL or more, preferably 0.5 mg / mL or more, more preferably 1 mg / mL or more, still more preferably 5 mg / mL or more, still more preferably 10 mg / mL or more. is there; (Iii) 12 to 21 weeks, preferably 13 to 20 weeks, more preferably 14 to 19 weeks have passed since the transplantation of human hepatocytes.
  • the recovered human hepatocytes may be used as they are, but human hepatocytes may be purified and used by using a monoclonal antibody that specifically recognizes human hepatocytes or non-human animal hepatocytes.
  • a monoclonal antibody that specifically recognizes human hepatocytes or non-human animal hepatocytes.
  • FACS flow cytometer
  • MACS magnetic cell separator
  • human hepatocytes can be purified and recovered by recovering the cells that did not bind to the antibody using FACS or MACS. ..
  • the recovered human hepatocytes may be further recovered after transplantation (passage transplantation) into a new non-human animal with hepatic disorder immunodeficiency as described above.
  • Subculture can be performed once or multiple times (eg, 2-4 times).
  • human hepatocytes derived from fatty liver can be cultured using a medium generally used for culturing animal cells.
  • a medium generally used for culturing animal cells include, but are not limited to, Dulbecco's Modified Eagle's Medium (DMEM), Williams Medium E, and the like.
  • DMEM Dulbecco's Modified Eagle's Medium
  • fetal bovine serum, insulin, epidermal growth factor, dexamethasone, buffer, antibiotics, pH regulator, proline, ascorbic acid, nicotinamide and the like can be added to the medium as appropriate.
  • DMSO dimethyl sulfoxide
  • DMSO can be added to the medium in an amount (final concentration) of 1 to 4% by weight, preferably 1 to 2% by weight, for example, 2% by weight.
  • Human hepatocytes derived from fatty liver are placed in a medium at 0.21 to 21.3 ⁇ 10 5 cells / cm 2 , preferably 1.07 to 3.2 ⁇ 10 5 cells / cm 2 , for example, 2.13. Seed at an amount of ⁇ 10 5 cells / cm 2. When fewer cells than 0.21, it may not be possible to obtain a sufficient amount of cells as human fatty liver model cells, whereas, 21.3 when ⁇ 10 5 cells is greater than the growth decreased cell, the lipid It may cause a decrease in secretion and / or accumulation amount.
  • Culturing of human hepatocytes derived from fatty liver may be carried out for a period sufficient for the cells to secrete and / or accumulate lipids, for example, longer than 3 days, preferably 4 days or more, still more preferably 5 days.
  • the above can be done.
  • the upper limit of the culture period is not particularly limited, but can be, for example, 17 days or less, preferably 13 days or less.
  • the medium can be changed as appropriate during the culture period.
  • human hepatocytes that secrete and / or accumulate lipids can be used as human fatty liver model cells.
  • the present invention also relates to human fatty liver model cells, which secrete and / or accumulate as much lipid as hepatocytes in human fatty liver. It is a human-derived cultured hepatocyte.
  • the human fatty liver model cell of the present invention contains many lipid droplets and has a high lipoprotein content and / or secretory amount.
  • "encapsulating many fatty droplets” means that in the above-mentioned culture of human hepatocytes derived from fatty liver, it is longer than 3 days, preferably 4 days or more, in the same medium except that DMSO is not added. More preferably, it is 2 times or more, 3 times or more, 4 times or more, or 5 times or more, preferably 6 times or more, more preferably 7 times or more, as compared with human hepatocytes derived from fatty liver cultured for 5 days or more. It means that it contains 8 times or more, more preferably 9 times or more of fat droplets.
  • the amount of intracellular lipid droplets can be quantified by staining intracellular lipid droplets using a conventionally known method such as Oil Red O staining, and then extracting the pigment with an organic solvent.
  • “Lipoprotein” is a complex particle for transporting lipids such as cholesterol and neutral fat from the absorption / synthesis site to the use site, and is generally a hydrophilic phospholipid on the outside of the particle. It has a structure in which free cholesterol and apolipoprotein are arranged, and hydrophobic cholesterol and neutral lipid are arranged inside the particles.
  • “High lipoprotein content and / or secretion” is longer than 3 days in the same medium, preferably 4 in the above-mentioned culture of fatty liver-derived human hepatocytes, except that DMSO is not added. 5 times or more, preferably 6 times or more, as compared with the amount of lipoprotein (more preferably triglyceride) contained in human hepatocytes derived from fatty liver cultured for 1 day or more, more preferably 5 days or more. This means that the culture supernatant contains an amount of lipoprotein of 7 times or more, more preferably 8 times or more, still more preferably 9 times or more. The amount of lipoprotein in cells or culture supernatant can be measured by a conventionally known method as described later.
  • the human fatty liver model cells of the present invention can also be characterized by the content of the lipoprotein subclass in the cells or culture supernatant.
  • Lipoproteins can be classified into several subclasses according to differences in properties such as particle size, hydration density, and degree of electrophoresis.
  • lipoprotein is treated according to a conventionally known method (WO2007 / 052789), based on the following particle size, chilomicron (CM), very low density lipoprotein (VLDL), and low density lipoprotein. It can be broadly classified into four types: low density lipoprotein (LDL) and high density lipoprotein (HDL).
  • CM can be divided into 2 additional subclasses
  • VLDL can be divided into 5 additional subclasses
  • LDL can be divided into 6 additional subclasses
  • HDL can be divided into 7 additional subclasses, for a total of 20 subclasses. You can also do it.
  • Each subclass of lipoprotein in the cell or culture supernatant is a conventionally known method using gel filtration liquid chromatography (WO2007 / 052789; JP-A-9-15225; Arterioscler Tromb Vasc Biol. 2005; 25: 1). -8; LipoSEARCH (registered trademark) (Skylight Biotech Co., Ltd.)) can be used for fractionation and quantification.
  • VLDL has the highest content among lipoproteins.
  • VLDL shows a higher content than LDL, for example, 2 times or more, 3 times or more, 4 times or more, 5 times or more, 6 times or more, It contains 7 times or more, 8 times or more, 9 times or more, 10 times or more, or 15 times or more.
  • VLDL cholesterol shows a higher content than LDL cholesterol, for example, 2 times or more, 3 times or more, 4 times or more. It contains 5 times or more, 6 times or more, 7 times or more, 8 times or more, 9 times or more, 10 times or more, or 15 times or more, and VLDL triglyceride is LDL triglyceride (triglyceride).
  • VLDL shows a higher content than HDL, for example, 5 times or more, 10 times or more, 15 times or more, 20 times or more, 25 times.
  • the amounts of 30 times or more, 40 times or more, 50 times or more, 60 times or more, 70 times or more, 80 times or more, or 90 times or more are included.
  • VLDL cholesterol shows a higher content than HDL cholesterol, for example, 5 times or more, 10 times or more, 15 times or more. , 20 times or more, 25 times or more, 30 times or more, 40 times or more, 50 times or more, 60 times or more, 70 times or more, 80 times or more, or 90 times or more, and contains VLDL triglyceride (triglyceride).
  • VLDL triglyceride triglyceride
  • Indicates a higher content than HDL neutral fat (triglyceride) for example, 5 times or more, 10 times or more, 15 times or more, 20 times or more, 25 times or more, 30 times or more, 40 times or more, 50 times. The amount of 60 times or more, 70 times or more, 80 times or more, or 90 times or more is included.
  • LDL shows a higher content than HDL, for example, 2.5 times or more, 3 times or more, 4 times or more, 5 times or more, It includes 6 times or more, 7 times or more, 8 times or more, 9 times or more, or 10 times or more.
  • cholesterol of LDL shows a higher content than cholesterol of HDL, for example, 2.5 times or more, 3 times or more, 4 It contains more than twice, more than five times, more than six times, more than seven times, more than eight times, more than nine times, or more than ten times, and LDL triglyceride is HDL triglyceride. Higher content, for example, 2.5 times or more, 3 times or more, 4 times or more, 5 times or more, 6 times or more, 7 times or more, 8 times or more, 9 times or more, or 10 times or more. Is included.
  • the human fatty liver model cell of the present invention can also be characterized by the expression level of the fatty liver-related gene in the cell.
  • the "fatty liver-related gene” means a gene whose expression level is increased in hepatocytes of fatty liver as compared with hepatocytes of healthy liver.
  • adipose liver-related genes include a gene encoding fatty acid synthase (gene name: FASN), a gene encoding SREBP-1 (gene name: SREBF1), and a gene encoding glucose-6-phosphatase (G6PC).
  • the "high" expression level of a fatty liver-related gene is the above-mentioned human liver derived from fatty liver cultured in a medium containing no DMSO or cultured in a medium containing DMSO for 3 days or less. It means that the expression level of fatty liver-related genes in cells is high, for example, 2 times or more, preferably 3 times or more, and more preferably 3.5 times or more.
  • the expression level of fatty liver-related genes can be quantified by a conventionally known method, preferably by microarray analysis.
  • the human fatty liver model cell of the present invention can be produced by the above-mentioned method for producing a human fatty liver model cell.
  • the human fatty liver model cells of the present invention are preferably cultured in a medium containing DMSO.
  • human fatty liver model cells of the present invention show the highest content of VLDL among lipoproteins, they are more similar to human fatty liver hepatocytes than known hepatocytes (HepG2, HuH7, etc.). Can be used as.
  • the human fatty liver model cell of the present invention can be used as a model of human fatty liver. Its use is not particularly limited, but it can be used, for example, as a screening method for substances effective for human fatty liver. Screening can be performed by administering the test substance to the culture of the human fatty liver model cells of the present invention and comparing the degree of fatty liver symptoms between the cells to which the test substance has been administered and the cells to which the test substance has not been administered. it can. "Cells to which the test substance has been administered and cells to which the test substance has not been administered" may be the same culture before and after administration of the test substance, or they may be treated in the same manner except for the presence or absence of administration of the test substance. It may be a culture.
  • “Fatty liver symptoms” include accumulation of fatty droplets, secretion / accumulation of lipids, expression of fatty liver-related genes, iron deposition, apoptosis, expression of proteins that cause oxidative stress, ballooning for balloons, and small mallory. Examples include, but are not limited to these. If these symptoms are alleviated or ameliorated in the cells to which the test substance is administered, it can be determined that the test substance is an effective substance for human fatty liver, and it is used for the treatment or improvement of human fatty liver. be able to. In addition, since a substance effective for treating or ameliorating a disease is usually effective for the disease, it is determined that a substance effective for treating or ameliorating human fatty liver is also effective for preventing human fatty liver. be able to.
  • the "substance effective for human fatty liver” means a substance effective for prevention, treatment or improvement of human fatty liver.
  • the test substance include, but are not limited to, low molecular weight compounds, amino acids, nucleic acids, lipids, sugars, extracts of natural products, and the like.
  • the human fatty liver model cell of the present invention can be used as a method for evaluating the toxicity of a test substance to human fatty liver. Toxicity was evaluated by administering the test substance to the culture of the human fatty liver model cells of the present invention, and determining the cell viability and the degree of fatty liver symptoms between the cells to which the test substance was administered and the cells to which the test substance was not administered. This can be done by comparing and assessing the effect of the test substance on human fatty liver. In the cells to which the test substance has been administered, if the cell viability decreases or the fatty liver symptoms worsen, it can be determined that the test substance is toxic to human fatty liver.
  • the decrease in cell viability may be determined by counting the number of cultured cells before and after administration of the test substance, but it is determined by using the human albumin content secreted in the culture supernatant as an index. You may. When the human albumin content in the culture supernatant is decreased after the administration of the test substance as compared with before the administration, it is suggested that the cell viability is decreased. In this case, the test substance (or its dose of the test substance) can be determined to be toxic to human fatty liver. As "cells to which the test substance has been administered and cells to which the test substance has not been administered", “fatty liver symptoms", and "test substance”, the above-mentioned substances can be used.
  • Test method 1 Preparation of human hepatocytes derived from fatty liver (preparation of chimeric mouse (PXB mouse) having human hepatocytes)
  • the PXB mouse was produced according to a conventionally known method (Japanese Patent Laid-Open No. 2002-45087). That is, a genetically impaired mouse in which an albumin enhancer synthesized in the liver and a urokinase plauminogen activator (uPA) gene (DNA-uPA) linked to a promoter are introduced into all cells, and an immunodeficient mouse (SCID). Mice) were crossed to prepare immunodeficient liver-damaged mice (DNA-uPA (+/-) / SCID mice).
  • DNA-uPA (+/-) / SCID mice immunodeficient liver-damaged mice
  • a 3-week-old cDNA-uPA (+/-) / SCID mouse was anesthetized, the skin around the spleen and the rectus abdominis muscle were incised with scissors, and the tip of the spleen was pinched and fixed at a position where cells could be easily injected. Then, using a glass syringe filled with a human hepatocyte suspension, a needle was pierced from the tip of the spleen and cells were injected. After that, the spleen was returned to the mouse body, the skin and peritoneum were sewn with a plastic surgery force needle, the incision was closed, and it was confirmed that the transplanted mouse had no abnormal breathing, and the mice were bred in a breeding cage.
  • PXB mice aged 17 to 22 weeks, weighing 15 to 20 g, and having a serum human albumin amount of 10 mg / mL or more (human hepatocyte replacement rate of 95% or more converted from human albumin amount) were selected. , Used in the following experiments.
  • the recovered hepatocytes (PXB-cells) were centrifuged, the supernatant was removed, and then 40 mL of Medium A was added to the obtained precipitate and mixed gently. This operation was repeated twice to remove impurities, lipids and the like suspended in the supernatant. To isolate the cell mass, it was passed through a cell strainer and collected in a tube. The number of cells was measured by the trypan blue pigment exclusion method using a hemocytometer, and the cell density, total number of cells, and survival rate were determined from the counted values.
  • the dilution ratio of the target seeding density was calculated and diluted with medium A. Gently pour 500 ⁇ L of the diluted cell suspension into each well of the culture plate, allow it to stand for about 20 minutes until the cells lightly adhere to the bottom surface, and then gently transfer to an incubator (37 ° C., 5% CO 2 ) for culturing. did.
  • hepatocytes HepG2 cells, HuH7 cells
  • medium A 500 ⁇ L of medium A
  • an incubator 37 ° C., 5% CO 2
  • culture supernatants were analyzed for lipoproteins, and the following cells were analyzed for lipoproteins.
  • the medium used for the culture was removed, 500 ⁇ L of medium D for analysis was added, and the mixture was gently transferred to an incubator (37 ° C., 5% CO 2 ) and cultured for 2 days. Then, the culture supernatant is collected, and the lipoprotein contained in the culture supernatant (80 ⁇ L) is fractionated into four subgroups, CM, VLDL, LDL, and HDL by gel filtration HPLC. Cholesterol and triglyceride (triglyceride) contained in each fraction were quantified by an online enzymatic reaction. The concentration analysis was performed using Skylight Biotech's original computer program.
  • Diacolor Liquid TG-S (manufactured by Toyo Spinning Co., Ltd.) was used, and the standard serum of cholesterol and triglyceride concentration in CM, VLDL, LDL, and HDL was manufactured by Kyowa Hakko Kirin Co., Ltd. It was used.
  • the cells were exfoliated with a pipette, transferred to a centrifuge tube and centrifuged at 10,000 rpm for 10 minutes, then 7.5 ⁇ L of the supernatant was transferred to a 96-well microplate, 68 ⁇ L of TG enzyme solution (1) was added, and 37 The temperature was kept at ° C. for 10 minutes to completely remove free glycerol. Then, 25 ⁇ L of the TG enzyme solution (2) was added, and the temperature was kept at 37 ° C. for 10 minutes.
  • the absorbance of the obtained reaction product was measured at 550 nm, and the triglyceride content was calculated using HDL-C180A as a standard (the triglyceride concentration of HDL-C180A was 52.26 mg / dL).
  • the measurement of intracellular cholesterol was performed using Cholesterol (registered trademark) CHO (Sekisui Medical Co., Ltd.) according to the manufacturer's instructions. That is, after washing the cells with PBS, the cells were completely drained (stored at ⁇ 80 ° C. until measurement), 200 ⁇ L of CHO enzyme solution (1) was added to each cell Well, and the cells were kept warm at 37 ° C. for 10 minutes.
  • Cholesterol registered trademark
  • CHO Sakisui Medical Co., Ltd.
  • the cells were exfoliated with a pipette, transferred to a centrifuge tube and centrifuged at 10,000 rpm for 10 minutes, then 15 ⁇ L of the supernatant was transferred to a 96-well microplate, 68 ⁇ L of CHO enzyme solution (1) was added, and the temperature was 37 ° C. It was kept warm for 10 minutes. Then, 25 ⁇ L of the CHO enzyme solution (2) was added, and the temperature was kept at 37 ° C. for 10 minutes. The absorbance of the obtained reaction product was measured at 550 nm, and the cholesterol content was calculated using HDL-C180A as a standard (the triglyceride concentration of HDL-C180A was 152.67 mg / dL).
  • RNA of PXB-cells cultured in Medium B for 3 or 6 days was extracted using TRIzol® + Direct zol (Thermo Fisher Scientific) according to the manufacturer's instructions.
  • microarray analysis was performed according to the manufacturer's instructions, and the fatty liver-related genes FASN, SREBF1, The expression levels of G6PC, CYP7A1, CETP, GCK, and PCK1 were analyzed.
  • Perfusate, medium Perfusate A, perfusate B, perfusate C, medium A, medium B, medium C, and medium D have the following compositions.
  • FIG. 1 shows PXB-cells cultured in medium B (DMSO (+)) or medium C (DMSO (-)) for 5 days.
  • PXB-cells Fig. 1, left
  • medium B DMSO (+)
  • more approximately twice as much
  • DMSO medium C
  • Fat droplets shown in white
  • FIG. 2 shows lipoproteins (including CM, VLDL, LDL, and HDL) in the culture supernatant collected after culturing in medium B (DMSO (+)) or medium C (DMSO (-)) for 5 days.
  • the measurement result of the total neutral fat (triglyceride) content of is shown.
  • the results are shown as relative values with the content in the culture supernatant of PXB-cells cultured in medium B (DMSO (+)) as "100".
  • PXB-cells cultured in medium B (DMSO (+)) secrete higher triglycerides (triglycerides) in lipoproteins than when cultured in medium C (DMSO (-)).
  • DMSO (+) medium B
  • DMSO (+) secrete higher triglycerides (triglycerides) in lipoproteins than when cultured in medium C (DMSO (-)).
  • PXB-cells can maintain high lipid accumulation and secretion by culturing in a medium containing DMSO.
  • FIG. 3 shows PXB-cells cultured in medium B (DMSO (+)) for 5, 9, 12, and 14 days. The analysis result of the lipoprotein in each culture supernatant of known hepatocytes (HepG2 cells, HuH7 cells) is shown.
  • FIG. 4 shows the results of analysis of four subgroups of lipoproteins contained in the culture supernatant.
  • PXB-cells cultured in medium B DMSO (+)
  • VLDL was most abundant in both cholesterol and triglyceride (triglyceride) regardless of the culture period.
  • lipoproteins containing CM, VLDL, LDL, HDL
  • Ratio weight ratio
  • FIG. 5 shows PXB-cells cultured in medium B (DMSO (+)) for 5, 9, 12, and 14 days, and known liver. The analysis result of the lipoprotein in each cell of the cell (HepG2 cell, HuH7 cell) is shown.
  • the total cholesterol content was the lowest after culturing for 5 days, and their contents increased slightly after culturing for 9, 12, and 14 days.
  • the content of total triglyceride (triglyceride) was the highest after culturing for 5 days, and the content was maintained, although the content decreased slightly after culturing for 9, 12, and 14 days.
  • PXB-cells can maintain the accumulation and secretion of lipids (cholesterol and triglyceride) for at least 2 weeks by culturing in medium B (DMSO (+)). ..
  • medium B medium B
  • the highest accumulation of triglyceride (triglyceride) and secretion of cholesterol and triglyceride (triglyceride) were confirmed in the 6-day culture.
  • the secreted lipoprotein contained the most VLDL.
  • Such properties are not observed in conventionally known hepatocytes (HuH7 cells, HepG2 cells), and PXB-cells cultured in medium B (DMSO (+)) have characteristics different from those conventionally known hepatocytes. It was confirmed to have.
  • FIG. 6 shows the results of analysis of the expression levels of fatty liver-related genes (FASN, SREBF1, G6PC) in PXB-cells cultured in medium B (DMSO (+)) for 3 days and 6 days. Is shown. The results are shown as relative values with the expression level of each gene on the third day of culture as "1". For each gene, an increase in the expression level was observed from the 3rd day of the culture to the 6th day of the culture. Further, although not shown in FIG. 6, the expression levels of CYP7A1, CETP, GCK, and PCK1 were similarly increased from the 3rd day of the culture to the 6th day of the culture.
  • PXB-cells cultured in medium B can maintain the accumulation and secretion of lipids, and are accompanied by the expression of fatty liver-related genes. Therefore, human fatty liver It was confirmed that it can be used as a model cell.
  • Test method Preparation of cells PXB-cells was diluted with medium A. Gently pour 500 ⁇ L of the diluted cell suspension into each well of the culture plate, allow it to stand for about 20 minutes until the cells lightly adhere to the bottom surface, and then gently transfer to an incubator (37 ° C., 5% CO 2 ) for culturing. did. The day after sowing, medium A was removed, 500 ⁇ L of medium B (DMSO (+)) was added, and the mixture was gently transferred to an incubator (37 ° C., 5% CO 2 ) and cultured for 5 days. In addition, cells administered with a therapeutic agent for hyperlipidemia were cultured for 12 days. After completion of the culture, it was used in the following screening test.
  • a watershield extract (Oriza Yuka Co., Ltd.) known as a lipid metabolism improving agent (Patent No. 5344494) was used.
  • simvastatin Flujifilm Wako Pure Chemical Industries, Ltd.
  • fenofibrate sigma-aldrich
  • lomitapide Tokyo Kasei
  • Each test substance was suspended in ethanol, added to a PXB-cells culture in a predetermined amount , gently transferred to an incubator (37 ° C., 5% CO 2 ), and cultured for 2 days.
  • the total cholesterol and triglyceride (triglyceride) in the culture supernatant and in the cells are subjected to the methods described in "Analysis of lipoprotein in culture supernatant" and "Analysis of lipoprotein in cells”. ) was measured respectively.
  • To the control only the same amount of ethanol used to suspend the test substance was added.
  • -Albumin measurement 200 ⁇ L of the culture supernatant after the completion of the culture was collected, and the human albumin content in the culture supernatant was measured using an automatic analyzer JCA-BM6050 (JEOL Ltd.) by the immunoturbidimetric method.
  • simvastatin was added in an amount of 0.1 ⁇ M, 1 ⁇ M, or 10 ⁇ M, respectively, and the lipoprotein content in each culture supernatant and cell of PXB-cells cultured for 2 days, and in each culture supernatant.
  • the analysis result of human albumin content is shown.
  • fenofibrate was added in an amount of 5 ⁇ M, 50 ⁇ M, or 500 ⁇ M, respectively, and the lipoprotein content in each culture supernatant and cell of PXB-cells cultured for 2 days, and the human in each culture supernatant.
  • the analysis result of the albumin content is shown.
  • lomitapide was added in an amount of 1 ⁇ M, 10 ⁇ M, or 100 ⁇ M, respectively, and the lipoprotein content in each culture supernatant and cell of PXB-cells cultured for 2 days, and human albumin in each culture supernatant. The analysis result of the content is shown.

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

本発明は、脂肪肝の肝組織の症状を呈するヒト脂肪肝モデル細胞を提供することを目的とするものであり、脂肪肝由来のヒト肝細胞を、ジメチルスルホキシドを含む培地中にて培養することによって作製される、ヒト脂肪肝モデル細胞に関する。

Description

ヒト脂肪肝モデル細胞
　本発明は、ヒト脂肪肝モデル細胞及びその製造方法に関する。
　脂肪肝は、肝細胞内に中性脂肪等の脂質が過剰に蓄積して、肝障害を生じる疾患の総称である。脂肪肝では肝小葉を構成する肝細胞の１／３以上に脂肪滴の蓄積が認められる。食生活や生活習慣の変化により、脂肪肝の頻度は年々増加する傾向にある。以前は、脂肪肝は放置しておいてもかまわないと考えられていたが、近年では、非アルコール性脂肪性肝障害（Ｎｏｎ－Ａｌｃｏｈｏｌｉｃ　Ｆａｔｔｙ　Ｌｉｖｅｒ　Ｄｉｓｅａｓｅ：ＮＡＦＬＤ）が注目され、脂肪肝から非アルコール性脂肪肝炎（ｎｏｎ－ａｌｃｏｈｏｌｉｃ　ｓｔｅａｔｏｈｅｐａｔｉｔｉｓ：ＮＡＳＨ）、肝硬変、肝臓がんへと移行する例もあることが明らかにされている。このため脂肪肝を適切に治療することが必要とされており、その病理に関する機能的な解明や、有効な治療薬の開発が試みられている。
　脂肪肝の発症メカニズムやその予防及び治療の研究のために、脂肪肝の症状を示す非ヒト動物モデルが作製されている。例えば、特許文献１には、肝障害免疫不全非ヒト動物にヒト肝細胞を移植することによって、脂肪肝の症状を示す非ヒト動物モデルが作製されている。この非ヒト動物モデルでは大型の脂肪滴や肝臓の脂肪化等、脂肪肝の症状が観察される。
ＷＯ２００８／００１６１４
　一方、非ヒト動物モデルは、作製や飼育・管理に多大な時間と労力、ならびに費用がかかる上、個体差や再現性の問題、倫理面での使用制限等の課題を有する場合がある。そのため、脂肪肝の発症メカニズムやその予防及び治療の研究を効率的に行うために、ヒト脂肪肝のｉｎ　ｖｉｔｒｏの評価系、すなわちヒト脂肪肝モデル細胞が切望されている。
　本発明者らは、脂肪肝由来のヒト肝細胞をｉｎ　ｖｉｔｒｏにて培養したところ、当該細胞は脂肪滴の消失等を生じ、脂肪肝の症状を維持することができないことを見出した。より具体的には、上述の脂肪肝の症状を示す非ヒト動物モデルより摘出された脂肪肝より、脂肪滴の蓄積等、脂肪肝の症状が観察されるヒト肝細胞を分離、回収し、これをｉｎ　ｖｉｔｒｏにて培養したところ、当該細胞は脂肪滴の消失等を生じ、脂肪肝の症状を維持することができないことを見出した。
　そこで、本発明は、脂肪肝由来のヒト肝細胞において、脂肪滴の蓄積をはじめとする脂肪肝の症状を維持することを可能とする新たな手法を提供し、新たなヒト脂肪肝モデル細胞を提供することを目的とする。
　本発明者らは上記課題を解決すべく、鋭意検討した結果、脂肪肝由来のヒト肝細胞を、ジメチルスルホキシドを含む培地中にて培養することによって、脂肪滴の蓄積、脂質の分泌・蓄積、脂肪肝関連遺伝子の発現等が観察され、脂肪肝の症状を維持するヒト脂肪肝モデル細胞が得られることを見出した。
　本発明はこれらの知見に基づくものであり、以下の特徴を有する。
［１］　ヒト脂肪肝モデル細胞の製造方法であって、
　脂肪肝由来のヒト肝細胞を、ジメチルスルホキシドを含む培地中にて培養する工程、
を含む、方法。
［２］　脂肪肝由来のヒト肝細胞が、ヒト肝細胞を有するキメラ非ヒト動物より回収されたものである、［１］の方法。
［３］　培養を３日間よりも長く行う、［１］又は［２］の方法。
［４］　脂質を分泌及び／又は蓄積する、ヒト脂肪肝モデル細胞。
［５］　超低密度リポタンパク質（ＶＬＤＬ）及び低密度リポタンパク質（ＬＤＬ）を含むリポタンパク質を含有し、ＶＬＤＬをＬＤＬよりも多く含むことを特徴とする、［４］の細胞。
［６］　脂肪肝関連遺伝子の増大した発現を有する、［４］の細胞。
［７］　脂肪肝関連遺伝子が、ＦＡＳＮ、ＳＲＥＢＦ１、及びＧ６ＰＣからなる群から選択される一以上の遺伝子である、［６］の細胞。
［８］　ヒト脂肪肝に有効な物質のスクリーニング方法であって、
　請求項４～７のいずれか１項に記載の細胞に被検物質を投与する工程、ならびに、
　被験物質を投与した細胞と投与されていない細胞との間で脂肪肝症状の程度を比較する工程、を含む方法。
［９］　被検物質のヒト脂肪肝に対する毒性を評価する方法であって、
　請求項４～７のいずれか１項に記載の細胞に被検物質を投与する工程、ならびに、
　被験物質を投与した細胞と投与されていない細胞との間で細胞の生存率や脂肪肝症状の程度を比較して、該被検物質のヒト脂肪肝に対する影響を評価する工程、を含む方法。
　本明細書は本願の優先権の基礎である日本国特許出願２０１９－１５３３２３号の明細書および／または図面に記載される内容を包含する。
　本明細書で引用した全ての刊行物、特許および特許出願をそのまま参考として本明細書にとり入れるものとする。
　本発明によれば、脂肪滴の蓄積、脂質の分泌・蓄積、脂肪肝関連遺伝子の発現等が観察されるヒト脂肪肝モデル細胞、ならびにその製造方法を提供することができる。
図１は、培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））又は培地Ｃ（ＤＭＳＯ（－））で５日間培養したＰＸＢ－ｃｅｌｌｓの写真図を示す。培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））で培養したＰＸＢ－ｃｅｌｌｓ（左）；培地Ｃ（ＤＭＳＯ（－））で培養したＰＸＢ－ｃｅｌｌｓ（右）。 図２は、培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））又は培地Ｃ（ＤＭＳＯ（－））で５日間培養したＰＸＢ－ｃｅｌｌｓの培養上清中のリポタンパク質の総中性脂肪（トリグリセリド）含量の測定結果を示す。結果は、培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））で培養したＰＸＢ－ｃｅｌｌｓの培養上清中の当該含有量を「１００」とする相対値にて示す。 図３は、培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））で５日間、９日間、１２日間、及び１４日間培養したＰＸＢ－ｃｅｌｌｓ、ならびにＨｅｐＧ２細胞、及びＨｕＨ７細胞の培養上清におけるリポタンパク質の総コレステロール（左）及び総中性脂肪（トリグリセリド）（右）含量の測定結果を示す。 図４は、培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））で５日間、９日間、１２日間、及び１４日間培養したＰＸＢ－ｃｅｌｌｓ、ならびにＨｅｐＧ２細胞、及びＨｕＨ７細胞の培養上清におけるリポタンパク質（４種のサブグループ）のコレステロール（左）および中性脂肪（トリグリセリド）（右）含量について解析した結果を示す。 図５は、培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））で５日間、９日間、１２日間、及び１４日間培養したＰＸＢ－ｃｅｌｌｓ、ならびにＨｅｐＧ２細胞、及びＨｕＨ７細胞の細胞内における総コレステロール（左）及び総中性脂肪（トリグリセリド）（右）含量の測定結果を示す。 図６は、培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））で３日間、及び６日間培養したＰＸＢ－ｃｅｌｌｓにおける脂肪肝関連遺伝子（ＦＡＳＮ、ＳＲＥＢＦ１、Ｇ６ＰＣ）の発現量の測定結果を示す。結果は、培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））で３日間培養したＰＸＢ－ｃｅｌｌｓの各遺伝子の発現量を「１」とする相対値にて示す。 図７は、ジュンサイエキス（５μｇ／ｍＬ、５０μｇ／ｍＬ、５００μｇ／ｍＬ）を添加した培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））で２日間培養したＰＸＢ－ｃｅｌｌｓの培養上清中及び細胞中の総コレステロール含量及び総中性脂肪（トリグリセリド）含量、ならびに培養上清中のヒトアルブミン含量の測定結果を示す。結果は、対照における総コレステロール、総中性脂肪（トリグリセリド）及びヒトアルブミンの含量を「１００」とする相対値にて示す。 図８は、シンバスタチン（０．１μＭ、１μＭ、又は１０μＭ）を添加した培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））で２日間培養したＰＸＢ－ｃｅｌｌｓの培養上清中及び細胞中の総コレステロール含量及び総中性脂肪（トリグリセリド）含量、ならびに培養上清中のヒトアルブミン含量の測定結果を示す。結果は、対照における総コレステロール、総中性脂肪（トリグリセリド）及びヒトアルブミンの含量を「１００」とする相対値にて示す。 図９は、フェノフィブラート（５μＭ、５０μＭ、又は５００μＭ）を添加した培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））で２日間培養したＰＸＢ－ｃｅｌｌｓの培養上清中及び細胞中の総コレステロール含量及び総中性脂肪（トリグリセリド）含量、ならびに培養上清中のヒトアルブミン含量の測定結果を示す。結果は、対照における総コレステロール、総中性脂肪（トリグリセリド）及びヒトアルブミンの含量を「１００」とする相対値にて示す。 図１０は、ロミタピド（１μＭ、１０μＭ、又は１００μＭ）を添加した培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））で２日間培養したＰＸＢ－ｃｅｌｌｓの培養上清中及び細胞中の総コレステロール含量及び総中性脂肪（トリグリセリド）含量、ならびに培養上清中のヒトアルブミン含量の測定結果を示す。結果は、対照における総コレステロール、総中性脂肪（トリグリセリド）及びヒトアルブミンの含量を「１００」とする相対値にて示す。
１．ヒト脂肪肝モデル細胞の製造方法
　本発明は、脂肪肝由来のヒト肝細胞を、ジメチルスルホキシドを含む培地中にて培養する工程を含むヒト脂肪肝モデル細胞の製造方法に関する。
［１－１］脂肪肝由来のヒト肝細胞
　本発明において「脂肪肝由来のヒト肝細胞」とは、脂肪肝組織より回収されたヒト肝細胞、あるいは、それを一旦冷凍保存した後解凍したものを用いることができる。脂肪肝組織は、脂肪肝を有するヒト患者に由来する脂肪肝組織、肝障害免疫不全非ヒト動物にヒト肝細胞を移植して得られた非ヒト動物モデル（以下、「キメラ非ヒト動物」と記載する）に由来する脂肪肝組織等を用いることができる。
　脂肪肝組織からのヒト肝細胞の回収は、従来公知の手法、すなわち、コラゲナーゼ灌流法や、遠心分離、エルトリエーター、ＦＡＣＳ（ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ　ａｃｔｉｖａｔｅｄ　ｃｅｌｌ　ｓｏｒｔｅｒ）、ヒト肝細胞を特異的に認識するモノクローナル抗体等の手段を用いて行うことができる。好ましくは、本発明において「脂肪肝由来のヒト肝細胞」とは、大量生産可能であり、安定して供給することができるという観点から、キメラ非ヒト動物より回収されたヒト肝細胞である。
［１－２］キメラ非ヒト動物より回収されたヒト肝細胞
　本発明において利用可能なキメラ非ヒト動物に由来する脂肪肝組織より回収されたヒト肝細胞は以下の手法により調製することができる。
・１－２－１　キメラ非ヒト動物
　本発明において「キメラ非ヒト動物」とは、肝臓における肝細胞の一部又は全部が、ヒト肝細胞に置換されている非ヒト動物を意味する。
　「非ヒト動物」は、哺乳動物であることが好ましく、げっ歯類であることがより好ましい。げっ歯類動物としては、マウス、ラットのようなネズミ、モルモット、リス、ハムスターなどが挙げられるが、実験動物として汎用されているマウス、ラットのようなネズミが特に好ましい。
　ヒト肝細胞を有するキメラ非ヒト動物は、従来公知の手法（特開２００２－４５０８７号公報、ＷＯ２００８／００１６１４、ＷＯ２０１３／１４５３３１）に準じて、肝障害免疫不全非ヒト動物にヒト肝細胞を移植することにより得ることができる。
・１－２－２　肝障害免疫不全非ヒト動物
　「肝障害免疫不全非ヒト動物」とは、異種動物由来の細胞に対して拒絶反応を示さない免疫不全であるとともに、非ヒト動物由来の肝臓の細胞が障害を受けている動物を意味する。非ヒト動物由来の肝臓の細胞が障害を受けていることにより、移植されたヒト肝細胞は増殖がしやすく、また、移植されたヒト肝細胞により肝機能が維持される。
　肝障害免疫不全非ヒト動物は、同一個体に、肝障害誘発処理、ならびに、免疫不全誘発処理を施すことにより作製することができる。「肝障害誘発処理」としては、肝障害誘発物質（例えば、四塩化炭素、黄リン、Ｄ－ガラクトサミン、２－アセチルアミノフルオレン、ピロロジンアルカロイド等）の投与や、外科的処理（例えば、肝臓の部分切除等）が挙げられる。「免疫不全誘発処理」としては、免疫抑制剤の投与や胸腺の摘出等が挙げられる。
　あるいは、肝障害免疫不全非ヒト動物は、遺伝的に免疫不全症の動物に、肝障害誘発処理を施すことによっても作製することができる。遺伝的に免疫不全症の動物としては、Ｔ細胞系不全を示す重症複合免疫不全症（ＳＣＩＤ：ｓｅｖｅｒｅ　ｃｏｍｂｉｎｅｄ　ｉｍｍｕｎｏｄｅｆｉｃｉｅｎｃｙ）の動物、遺伝的な胸腺の欠損によりＴ細胞機能を失った動物、ＲＡＧ２遺伝子のノックアウト動物等を利用することができる。具体的には、ＳＣＩＤマウス、ＮＵＤＥマウス、ＲＡＧ２ノックアウトマウス、ＩＬ２Ｒｇｃ／Ｒａｇ２ノックアウトマウス、ＮＯＤマウス、ＮＯＧマウス、ヌードマウス、ヌードラット、Ｘ線照射したヌードラットにＳＣＩＤマウスの骨髄を移植して得られる免疫不全ラット（特開２００７－２２８９６２号公報、Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ，６０（７）：７４０－７，１９９５）等を使用することができる。
　あるいは、肝障害免疫不全非ヒト動物は、遺伝的に肝障害を有する動物に免疫不全誘発処理を施すことによっても作製することができる。遺伝的に肝障害を有する動物としては、肝細胞特異的に発現するタンパク質のエンハンサー、及び／又はプロモーターの支配下に連結された肝障害誘発タンパク質遺伝子が導入されたトランスジェニック動物を利用することができる。「肝細胞特異的に発現するタンパク質」としては、血清アルブミン、コリンエステラーゼ、ハーゲマン因子等が挙げられ、これら遺伝子の発現を調節するエンハンサー、及び／又はプロモーターを利用することができる。「肝障害誘発タンパク質」としては、ウロキナーゼプラスミノーゲンアクチベーター（ｕＰＡ）、ティッシュープラスミノーゲンアクチベーター（ｔＰＡ）等が挙げられる。このようなトランスジェニック動物においては、肝細胞特異的に発現するタンパク質のエンハンサー、及び／又はプロモーターの下、肝細胞特異的に肝障害誘発タンパク質が発現されるため、肝障害が誘導される。あるいは、遺伝的に肝障害を有する動物は、肝機能を担う遺伝子をノックアウトすることによっても作製することができる。「肝機能を担う遺伝子」としては、例えばフマリルアセト酢酸ヒドラーゼ遺伝子等が挙げられる。
　あるいは、肝障害免疫不全非ヒト動物は、遺伝的に免疫不全症の動物と、それと同種の遺伝的に肝障害を有する動物とを交配させることによっても作製することができる。
　あるいは、肝障害免疫不全非ヒト動物は、ジーンターゲティングや、ＣＲＩＳＰＲ－Ｃａｓ９、ジンクフィンガーヌクレアーゼ（ＺＦＮ）、ＴＡＬＥヌクレアーゼ（ＴＡＬＥＮ）をはじめとするゲノム編集技術や遺伝子組換え技術を利用して、上記免疫不全及び／又は上記肝障害を生じる遺伝的要因を、非ヒト動物、あるいは遺伝的に免疫不全症である及び／又は遺伝的に肝障害を有する非ヒト動物に由来する受精卵、多能性幹細胞（例えば、胚性幹細胞（ＥＳ細胞）や人工多能性幹細胞（ｉＰＳ細胞）等）に導入することによって作製することができる（Ｗａｎｇ，Ｈ．ら、Ｃｅｌｌ，１５３，９１０－９１８，（２０１３）； Ｙａｎｇ，Ｈ．ら、Ｃｅｌｌ，１５４，１３７０－１３７９，（２０１３））。
　本発明において「肝障害免疫不全非ヒト動物」は、免疫不全の形質を規定する遺伝子及び肝障害の形質を規定する遺伝子を、それぞれをホモ接合型で有していてもよいし、ヘテロ接合型で有していてもよい。例えば、本発明の肝障害免疫不全非ヒト動物としては、ｕＰＡ（＋／－）／ＳＣＩＤ（＋／＋）、ｕＰＡ（＋／＋）／ＳＣＩＤ（＋／＋）などの遺伝子型で表される肝障害免疫不全マウスを好適に利用することができる。
・１－２－３　移植されるヒト肝細胞
　本発明において肝障害免疫不全非ヒト動物に移植される「ヒト肝細胞」は、ヒト由来の肝細胞であればよく、例えば、ヒト肝組織から、コラゲナーゼ灌流法等の常法にしたがって単離されたヒト肝細胞を利用することができる。ヒト肝組織は健常人由来の肝組織であってもよいし、脂肪肝や肝臓がん等の疾患に罹患した患者由来の肝組織であってもよいが、好ましくは健常人由来の肝組織である。肝細胞を単離するヒトの年齢は特に制限されないが、１４歳以下の小児の肝組織より単離するのが好ましい。１４歳以下の小児の肝細胞を使用することにより、移植後、ヒト肝細胞による高置換率を達成することができる。また、単離した肝細胞を一旦冷凍保存した後解凍して用いることもできる。
　また、ヒト肝細胞は、ｉｎ　ｖｉｖｏで活発な増殖能を有する増殖性ヒト肝細胞であってもよい。「増殖性ヒト肝細胞」とは、培養条件下（ｉｎ　ｖｉｔｒｏ）において、単一細胞種の集団としてのコロニーを形成し、そのコロニーを増大させるように増殖するヒト肝細胞を意味する。その増殖は、コロニー構成細胞が単一種であるという点において「クローン性増殖」という場合もある。さらに、このような細胞は、継代培養によって細胞数をさらに増加することができる細胞である。
　増殖性ヒト肝細胞としては、ヒト小型肝細胞が挙げられる（特開平０８－１１２０９２号公報；日本特許第３２６６７６６号；米国特許第６，００４，８１０号、特開平１０－１７９１４８号公報：日本特許第３２１１９４１号、特開平７－２７４９５１公報；日本特許第３１５７９８４号、特開平９－３１３１７２号公報；日本特許第３０１４３２２号）。
　単離したヒト肝細胞は、そのまま用いてもよいし、さらに精製して用いてもよい。肝細胞の精製は常法にしたがって行うことができ、例えば、遠心分離、エルトリエーター、ＦＡＣＳ、コロニーを形成しながら増殖する肝細胞を特異的に認識するモノクローナル抗体等の手段を用いて行うことができる。ヒト肝細胞や増殖性ヒト肝細胞を特異的に認識するモノクローナル抗体は公知のもの（ＷＯ２００８／００１６１４）を利用することができる。
　あるいは、ヒト肝細胞は、ヒト肝細胞を有するキメラ非ヒト動物の肝組織から同様に、コラゲナーゼ灌流法等の常法にしたがって単離されたヒト肝細胞やそれを一旦冷凍保存した後解凍したもの、多能性幹細胞（例えば、胚性幹細胞（ＥＳ細胞）や人工多能性幹細胞（ｉＰＳ細胞）等）より誘導して得られたヒト肝細胞、Ｃｌｉｐ細胞のような肝前駆細胞、ｉｎ　ｖｉｔｒｏで増殖させたヒト肝細胞、凍結保存肝細胞、テロメラーゼ遺伝子等の導入により不死化させた肝細胞、これらの肝細胞と非実質細胞を混合させたもの等も利用することができる。
・１－２－４　ヒト肝細胞の移植
　肝障害免疫不全非ヒト動物へのヒト肝細胞の移植は、当該非ヒト動物の脾臓を経由して肝臓へ移植することにより行うことができる。あるいは、直接門脈から移植することもできる。移植するヒト肝細胞の数は、１～２００万個程度、好ましくは２０万～１００万個程度とすることができる。肝障害免疫不全非ヒト動物の性別は特に限定されない。また、移植に用いる肝障害免疫不全非ヒト動物の日齢は、特に限定されないが、低週齢のときにヒト肝細胞を移植すると、動物の成長とともにヒト肝細胞がより活発に増殖し得ることから、生後０～４０日程度、好ましくは生後８～４０日程度のものを使用することができる。
　移植後の動物は、常法により、飼育することができる。例えば、移植後４０～２００日間程度飼育することにより、非ヒト動物における肝細胞の一部又は全部がヒト肝細胞で置換されたキメラ非ヒト動物を得ることができる。このようにして得られたキメラ非ヒト動物の肝臓には、大型の脂肪滴や肝臓の脂肪化等、脂肪肝の症状が観察される（ＷＯ２００８／００１６１４）。
・１－２－５　ヒト肝細胞の回収
　キメラ非ヒト動物からのヒト肝細胞の回収は、コラゲナーゼ灌流法等の常法にしたがって行うことができる。ヒト肝細胞の回収は、回収される肝細胞中にヒト肝細胞が高率で含まれるキメラ非ヒト動物を用いて行うことが好ましくは、例えば、以下の一又は複数の特徴を有するキメラ非ヒト動物を用いて行うことができる。
（ｉ）肝臓における肝細胞の６０％以上、好ましくは７０％以上、より好ましくは８０％以上、さらに好ましくは９０％以上、よりさらに好ましくは９５％以上、特に好ましくは９９％以上がヒト肝細胞に置換されている；
（ｉｉ）血中ヒトアルブミン量が０．１ｍｇ／ｍＬ以上、好ましくは０．５ｍｇ／ｍＬ以上、より好ましくは１ｍｇ／ｍＬ以上、さらに好ましくは５ｍｇ／ｍＬ以上、よりさらに好ましくは１０ｍｇ／ｍＬ以上である；
（ｉｉｉ）ヒト肝細胞の移植後、１２週～２１週、好ましくは１３週～２０週、より好ましくは１４週～１９週、経過している。
　回収したヒト肝細胞はそのまま用いてもよいが、ヒト肝細胞又は非ヒト動物の肝細胞を特異的に認識するモノクローナル抗体を用いて、ヒト肝細胞を精製して用いてもよい。分離した肝細胞をヒト肝細胞特異的モノクローナル抗体と反応させる場合は、当該抗体と結合した細胞をフローサイトメーター（ＦＡＣＳ）や磁気細胞分離装置（ＭＡＣＳ）で回収することによって、また、分離した肝細胞を非ヒト動物の肝細胞特異的モノクローナル抗体と反応させる場合は、該抗体と結合しなかった細胞をＦＡＣＳやＭＡＣＳを用いて回収することによって、ヒト肝細胞を精製して回収することができる。
　回収したヒト肝細胞はさらに、新たな肝障害免疫不全非ヒト動物へと上述のとおり移植した（継代移植）後に、同様に回収してもよい。継代移植は１回又は複数回（例えば、２～４回）行うことができる。
［１－３］脂肪肝由来のヒト肝細胞の培養
　本発明において、脂肪肝由来のヒト肝細胞の培養は、動物細胞の培養に一般的に用いられる培地を使用して行うことができる。このような培地としては、例えば、ダルベッコ改変イーグル培地（ＤＭＥＭ）、ウイリアムス培地Ｅ等が挙げられるが、これらに限定はされない。好ましくは、ＤＭＥＭを利用することができる。培地には必要に応じてさらに、ウシ胎児血清、インスリン、上皮成長因子、デキサメタゾン、緩衝剤、抗生物質、ｐＨ調整剤、プロリン、アスコルビン酸、ニコチンアミド等を適宜添加することができる。
　培地には、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）を添加する。ＤＭＳＯは培地中に１～４重量％、好ましくは１～２重量％、例えば２重量％の量（終濃度）となるように添加することができる。培地にＤＭＳＯを添加することによって、脂肪肝由来のヒト肝細胞における脂質の吸収及び／又は分泌機能を高め、脂質の蓄積を維持することができる。
　脂肪肝由来のヒト肝細胞は培地に、０．２１～２１．３×１０5細胞個／ｃｍ2、好ましくは１．０７～３．２×１０5細胞個／ｃｍ2、例えば、２．１３×１０5細胞個／ｃｍ2の量で播種する。０．２１より細胞が少ないと、ヒト脂肪肝モデル細胞として十分な量の細胞を得ることができない場合があり、一方、２１．３×１０5より細胞が多いと、細胞の生育低下、脂質の分泌及び／又は蓄積量の低下、等を生じる場合がある。
　脂肪肝由来のヒト肝細胞の培養は、細胞が脂質を分泌及び／又は蓄積するのに十分な期間行われればよく、例えば、３日間よりも長く、好ましくは４日以上、さらに好ましくは５日以上行うことができる。培養期間の上限は特に限定されないが、例えば、１７日以下、好ましくは１３日以下とすることができる。培養期間における培地の交換は適宜行うことができる。
　培養の終了後、脂質を分泌及び／又は蓄積するヒト肝細胞は、ヒト脂肪肝モデル細胞として利用することができる。
２．ヒト脂肪肝モデル細胞
［２－１］脂肪滴とリポタンパク質分泌量
　本発明はまた、ヒト脂肪肝モデル細胞に関するものであり、ヒト脂肪肝における肝細胞と同様に多くの脂質を分泌及び／又は蓄積する、ヒト由来の培養肝細胞である。
　本発明のヒト脂肪肝モデル細胞は多くの脂肪滴を内包し、高いリポタンパク質の含有量及び／又は分泌量を有する。ここで「多くの脂肪滴を内包」とは、上述の脂肪肝由来のヒト肝細胞の培養において、ＤＭＳＯを添加しないこと以外は同じ培地中にて３日間よりも長く、好ましくは４日以上、さらに好ましくは５日以上培養された脂肪肝由来のヒト肝細胞と比べて、２倍以上、３倍以上、４倍以上、もしくは５倍以上、好ましくは６倍以上、より好ましくは７倍以上、さらに好ましくは８倍以上、よりさらに好ましくは９倍以上の脂肪滴を内包することを意味する。細胞中の脂肪滴の量は、オイルレッドＯ染色等の従来公知の手法を用いて細胞内の脂肪滴を染色した後、さらに有機溶媒を用いてその色素を抽出することにより定量することができる。「リポタンパク質」とは、コレステロールや中性脂肪等の脂質を、吸収・合成部位から使用部へと運搬するための複合体粒子であり、一般的に、粒子の外側に親水性のリン脂質、遊離コレステロール、アポリポタンパク質が配置され、粒子の内側には疎水性のコレステロールや中性脂肪が配置された構造を有する。「高いリポタンパク質の含有量及び／又は分泌量」とは、上述の脂肪肝由来のヒト肝細胞の培養において、ＤＭＳＯを添加しないこと以外は同じ培地中にて３日間よりも長く、好ましくは４日以上、さらに好ましくは５日以上培養された脂肪肝由来のヒト肝細胞又はその培養上清中に含まれるリポタンパク質（より好ましくはトリグリセリド）量と比べて、５倍以上、好ましくは６倍以上、より好ましくは７倍以上、さらに好ましくは８倍以上、よりさらに好ましくは９倍以上の量のリポタンパク質が培養上清中に含まれることを意味する。細胞又は培養上清中のリポタンパク質の量は、後述するような従来公知の手法により測定することができる。
［２－２］リポタンパク質のサブクラスの含有量
　本発明のヒト脂肪肝モデル細胞はまた、細胞又は培養上清中のリポタンパク質のサブクラスの含有量によっても特徴付けることができる。
　リポタンパク質はその粒子の大きさ、水和密度、電気泳動度等の性質の違いによりいくつかのサブクラスに分類することができる。本発明においてはリポタンパク質を、従来公知の手法（ＷＯ２００７／０５２７８９）に準じて、下記粒子サイズに基づいて、カイロミクロン（ＣＭ）、超低比重リポタンパク質（Ｖｅｒｙ　Ｌｏｗ　Ｄｅｎｓｉｔｙ　Ｌｉｐｏｐｒｏｔｅｉｎ；ＶＬＤＬ）、低比重リポタンパク質（Ｌｏｗ　Ｄｅｎｓｉｔｙ　Ｌｉｐｏｐｒｏｔｅｉｎ；ＬＤＬ）、高比重リポタンパク質（Ｈｉｇｈ　Ｄｅｎｓｉｔｙ　Ｌｉｐｏｐｒｏｔｅｉｎ；ＨＤＬ）の４つに大きく分類することができる。本手法によれば、ＣＭは２つのさらなるサブクラスに、ＶＬＤＬは５つのさらなるサブクラスに、ＬＤＬは６つのさらなるサブクラスに、ＨＤＬは７つのさらなるサブクラスに分けることができ、合計２０個のサブクラスに分類することもできる。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　細胞又は培養上清中のリポタンパク質の各サブクラスは、ゲル濾過液体クロマトグラフィー法を利用した従来公知の手法（ＷＯ２００７／０５２７８９；特開平９－１５２２５号公報；Ａｒｔｅｒｉｏｓｃｌｅｒ　Ｔｈｒｏｍｂ　Ｖａｓｃ　Ｂｉｏｌ．２００５；２５：１－８；ＬｉｐｏＳＥＡＲＣＨ（登録商標）（株式会社スカイライト・バイオテック））により分画して定量することができる。
　本発明のヒト脂肪肝モデル細胞の細胞又は培養上清においては、リポタンパク質のうちＶＬＤＬが最も高い含有量を示す。
　本発明のヒト脂肪肝モデル細胞の細胞又は培養上清においては、ＶＬＤＬはＬＤＬよりも高い含有量を示し、例えば、２倍以上、３倍以上、４倍以上、５倍以上、６倍以上、７倍以上、８倍以上、９倍以上、１０倍以上、又は１５倍以上の量が含まれる。
　より詳細には、本発明のヒト脂肪肝モデル細胞の細胞又は培養上清においては、ＶＬＤＬのコレステロールはＬＤＬのコレステロールよりも高い含有量を示し、例えば、２倍以上、３倍以上、４倍以上、５倍以上、６倍以上、７倍以上、８倍以上、９倍以上、１０倍以上、又は１５倍以上の量が含まれ、ＶＬＤＬの中性脂肪（トリグリセリド）はＬＤＬの中性脂肪（トリグリセリド）よりも高い含有量を示し、例えば、２倍以上、３倍以上、４倍以上、５倍以上、６倍以上、７倍以上、８倍以上、９倍以上、１０倍以上、又は１５倍以上の量が含まれる。
　さらに、本発明のヒト脂肪肝モデル細胞の細胞又は培養上清においては、ＶＬＤＬはＨＤＬよりも高い含有量を示し、例えば、５倍以上、１０倍以上、１５倍以上、２０倍以上、２５倍以上、３０倍以上、４０倍以上、５０倍以上、６０倍以上、７０倍以上、８０倍以上、又は９０倍以上の量が含まれる。
　より詳細には、本発明のヒト脂肪肝モデル細胞の細胞又は培養上清においては、ＶＬＤＬのコレステロールはＨＤＬのコレステロールよりも高い含有量を示し、例えば、５倍以上、１０倍以上、１５倍以上、２０倍以上、２５倍以上、３０倍以上、４０倍以上、５０倍以上、６０倍以上、７０倍以上、８０倍以上、又は９０倍以上の量が含まれ、ＶＬＤＬの中性脂肪（トリグリセリド）はＨＤＬの中性脂肪（トリグリセリド）よりも高い含有量を示し、例えば、５倍以上、１０倍以上、１５倍以上、２０倍以上、２５倍以上、３０倍以上、４０倍以上、５０倍以上、６０倍以上、７０倍以上、８０倍以上、又は９０倍以上の量が含まれる。
　さらに、本発明のヒト脂肪肝モデル細胞の細胞又は培養上清においては、ＬＤＬはＨＤＬよりも高い含有量を示し、例えば、２．５倍以上、３倍以上、４倍以上、５倍以上、６倍以上、７倍以上、８倍以上、９倍以上、又は１０倍以上の量が含まれる。
　より詳細には、本発明のヒト脂肪肝モデル細胞の細胞又は培養上清においては、ＬＤＬのコレステロールはＨＤＬのコレステロールよりも高い含有量を示し、例えば、２．５倍以上、３倍以上、４倍以上、５倍以上、６倍以上、７倍以上、８倍以上、９倍以上、又は１０倍以上の量が含まれ、ＬＤＬの中性脂肪（トリグリセリド）はＨＤＬの中性脂肪（トリグリセリド）よりも高い含有量を示し、例えば、２．５倍以上、３倍以上、４倍以上、５倍以上、６倍以上、７倍以上、８倍以上、９倍以上、又は１０倍以上の量が含まれる。
［２－３］脂肪肝関連遺伝子の発現量
　本発明のヒト脂肪肝モデル細胞はまた、細胞における脂肪肝関連遺伝子の発現量によっても特徴付けることができる。
　本発明において「脂肪肝関連遺伝子」とは、健康な肝臓の肝細胞と比べて脂肪肝の肝細胞において発現量の増大が認められる遺伝子を意味する。このような脂肪肝関連遺伝子としては、脂肪酸合成酵素をコードする遺伝子（遺伝子名：ＦＡＳＮ）、ＳＲＥＢＰ－１をコードする遺伝子（遺伝子名：ＳＲＥＢＦ１）、グルコース－６－ホスファターゼをコードする遺伝子（Ｇ６ＰＣ）、コレステロール７α－ヒドロキシラーゼをコードする遺伝子（ＣＹＰ７Ａ１）、コレステリルエステル転送タンパク質をコードする遺伝子（ＣＥＴＰ）、グルコキナーゼをコードする遺伝子（ＧＣＫ）、ホスホエノールピルビン酸カルボキシキナーゼ１をコードする遺伝子（ＰＣＫ１）等が挙げられる。ここで、脂肪肝関連遺伝子の「高い」発現量とは、ＤＭＳＯ非含有の培地中にて培養された、又はＤＭＳＯ含有の培地中にて３日以下培養された上述の脂肪肝由来のヒト肝細胞における脂肪肝関連遺伝子の発現量と比べて高いこと、例えば、２倍以上、好ましくは３倍以上、より好ましくは３．５倍以上高いことを意味する。
　脂肪肝関連遺伝子の発現量は、従来公知の手法により定量することが可能であり、好ましくはマイクロアレイ解析により行うことができる。
［２－４］その他
　本発明のヒト脂肪肝モデル細胞は、上述のヒト脂肪肝モデル細胞の製造方法により製造することができる。
　本発明のヒト脂肪肝モデル細胞は、ＤＭＳＯを含む培地中にて培養することが好ましい。
　本発明のヒト脂肪肝モデル細胞は、リポタンパク質のうちＶＬＤＬが最も高い含有量を示すことから、既知肝細胞（ＨｅｐＧ２、ＨｕＨ７等）と比較して、よりヒト脂肪肝の肝細胞に類似したモデルとして用いることができる。
　本発明のヒト脂肪肝モデル細胞は、ヒト脂肪肝のモデルとして用いることができる。その用途は特に限定されないが、例えば、ヒト脂肪肝に有効な物質のスクリーニング方法に利用することができる。スクリーニングは、本発明のヒト脂肪肝モデル細胞の培養物に被験物質を投与し、被験物質を投与した細胞と投与されていない細胞との間で脂肪肝症状の程度を比較することによって行うことができる。「被験物質を投与した細胞と投与されていない細胞」は、被験物質投与前後の同一の培養物であってもよいし、被験物質投与の有無が異なるだけでその他は同様に操作された別々の培養物であってもよい。「脂肪肝症状」としては、脂肪滴の蓄積、脂質の分泌・蓄積、脂肪肝関連遺伝子の発現、鉄の沈着、アポトーシス、酸化ストレスをもたらすタンパク質の発現、風船用腫大（Ｂａｌｌｏｏｎｉｎｇ）、マロリー小体等が挙げられるが、これらに限定はされない。被験物質を投与した細胞において、これらの症状が緩和又は改善されていれば、当該被験物質はヒト脂肪肝に有効な物質であると判定することができ、ヒト脂肪肝の治療又は改善に利用することができる。また、疾患の治療又は改善に有効な物質は、通常、その疾患にも有効であるため、ヒト脂肪肝の治療又は改善に有効な物質は、ヒト脂肪肝の予防にも有効であると判定することができる。すなわち、「ヒト脂肪肝に有効な物質」とは、ヒト脂肪肝の予防、治療又は改善に有効な物質を意味する。被験物質としては、低分子化合物、アミノ酸、核酸、脂質、糖類、天然物の抽出物等が挙げられるが、これらに限定はされない。
　また、本発明のヒト脂肪肝モデル細胞は、被検物質のヒト脂肪肝に対する毒性を評価する方法に利用することができる。毒性の評価は、本発明のヒト脂肪肝モデル細胞の培養物に被験物質を投与し、被験物質を投与した細胞と投与されていない細胞との間で細胞の生存率や脂肪肝症状の程度を比較し、当該被検物質のヒト脂肪肝に対する影響を評価することによって行うことができる。被験物質を投与した細胞において、細胞の生存率が低下する場合や、脂肪肝症状が悪化する場合には、当該被験物質はヒト脂肪肝に対し毒性を有すると判定することができる。「細胞の生存率が低下する」ことは、被験物質の投与前後における培養細胞の細胞数を計数することによって求めてもよいが、培養上清中に分泌されたヒトアルブミン含量を指標にして判断してもよい。被験物質を投与する前と比べて、投与した後において、培養上清中のヒトアルブミン含量が低下している場合には、細胞の生存率が低下していることが示唆される。この場合、当該被験物質は（もしくは当該被験物質のその用量は）、ヒト脂肪肝に対し毒性を有すると判定することができる。「被験物質を投与した細胞と投与されていない細胞」、「脂肪肝症状」、「被験物質」は、上述のものを利用することができる。
　以下、実施例を挙げて、本発明をさらに詳細に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
Ｉ．試験方法
１．脂肪肝由来のヒト肝細胞の調製
（ヒト肝細胞を有するキメラマウス（ＰＸＢマウス）の作製）
　ＰＸＢマウスは従来公知の手法（特開２００２－４５０８７号公報）に準じて作製した。すなわち、肝臓で合成されるアルブミンのエンハンサー、及びプロモーターに連結したウロキナーゼプラウミノーゲンアクチベーター（ｕＰＡ）遺伝子（ｃＤＮＡ－ｕＰＡ）が
全細胞に導入された遺伝的肝障害マウスと、免疫不全マウス（ＳＣＩＤマウス）とを交配させて免疫不全肝障害マウス（ｃＤＮＡ－ｕＰＡ（＋／－）／ＳＣＩＤマウス）を作製した。
　３週齢のｃＤＮＡ－ｕＰＡ（＋／－）／ＳＣＩＤマウスに麻酔をかけ、脾臓辺りの皮膚ならびに腹直筋をハサミで切開し、脾臓の先端をつまんで細胞を注入しやすい位置に固定した。次いで、ヒト肝細胞懸濁液を充填したガラスシリンジを用いて、脾臓の先端から針を刺し、細胞を注入した。その後、脾臓をマウスの体内へ戻し、皮膚および腹膜を形成外科用強弯針で縫い、切開部分を閉じ、移植対象マウスの呼吸に異常がないことを確認し、飼育ケージ内で飼育した。
　１７週齢～２２週齢、体重１５～２０ｇであり、かつ血清中のヒトアルブミン量が１０ｍｇ／ｍＬ以上（ヒトアルブミン量から換算したヒト肝細胞置換率９５％以上）であるＰＸＢマウスを選抜し、以下の実験に用いた。
（細胞分離）
　麻酔下のＰＸＢマウスを解剖台に載せ、医療用テープで固定後に開腹した。留置針を門脈に挿し、灌流液Ａを送流し、脱血した。灌流液Ｂを送流し肝組織中のコラーゲンを溶解し、腸管や胃を傷つけないよう肝臓を切り出し、灌流液Ｃ中で肝臓を揺らして肝細胞をほぐし、遊離した。未消化組織片を除去するために、セルストレイナーに通過させ、肝細胞をチューブに回収した。
（細胞調整）
　回収した肝細胞（ＰＸＢ－ｃｅｌｌｓ）を遠心分離し、上清を取り除いた後、得られた沈殿に、培地Ａを４０ｍＬ加え静かに混合した。この操作を２回繰り返し、上清中に浮遊した不純物や脂質等を除去した。細胞塊を単離するために、セルストレイナーに通過させ、チューブに回収した。細胞数の計測は、トリパンブルー色素排除法で血球計算盤を使用して行い、計数した値より、細胞密度、総細胞数、及び生存率を求めた。
（播種）
　細胞懸濁液の細胞密度から、目的とする播種密度の希釈倍率を算出し、培地Ａにて希釈した。希釈した細胞懸濁液５００μＬを培養プレートの各Ｗｅｌｌに静かに注ぎ、細胞が底面に軽く接着するまで約２０分間静置した後、インキュベーター（３７℃，５％ＣＯ2）へ静かに移し、培養した。
　２．ＤＭＳＯ含有培地中で培養した培養上清中のリポタンパク質の解析
　播種の翌日培地Ａを除去して、５００μＬの培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））または培地Ｃ（ＤＭＳＯ（－））を添加し、インキュベーター（３７℃，５％ＣＯ2）へ静かに移し、５日間培養した。培養終了後、顕微鏡カメラを用いて細胞像を撮影後に培養上清を回収し、下記培養上清中のリポタンパク質の解析を行った。
　３．ＤＭＳＯ含有培地中で５～１４日間培養した培養上清中のリポタンパク質の解析
・ＤＭＳＯ含有培地中で５日間培養
　播種の翌日培地Ａを除去して、５００μＬの培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））を添加し、インキュベーター（３７℃，５％ＣＯ2）へ静かに移し、培養した。培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））を用いた培養開始から１日目及び２日目に、培地を新しい培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））に交換した。
　培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））を用いた５日間の培養終了後、下記培養上清中のリポタンパク質の解析を行った。
・ＤＭＳＯ含有培地中で９日間培養
　播種の翌日培地Ａを除去して、５００μＬの培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））を添加し、インキュベーター（３７℃，５％ＣＯ2）へ静かに移し、培養した。培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））を用いた培養開始から５日目、７日目、及び８日目に、培地を新しい培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））に交換した。
　培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））を用いた９日間の培養終了後、下記培養上清中のリポタンパク質の解析を行った。
・ＤＭＳＯ含有培地中で１２日間培養
　播種の翌日培地Ａを除去して、５００μＬの培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））を添加し、インキュベーター（３７℃，５％ＣＯ2）へ静かに移し、培養した。培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））を用いた培養開始から５日目、７日目、及び８日目に、培地を新しい培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））に交換した。
　培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））を用いた１２日間の培養終了後、下記培養上清中のリポタンパク質の解析を行った。
・ＤＭＳＯ含有培地中で１４日間培養
　播種の翌日培地Ａを除去して、５００μＬの培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））を添加し、インキュベーター（３７℃，５％ＣＯ2）へ静かに移し、培養した。培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））を用いた培養開始から５日目、７日目、８日目、及び１２日目に、培地を新しい培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））に交換した。
　培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））を用いた１４日間の培養終了後、下記培養上清中のリポタンパク質の解析を行った。
４．ＤＭＳＯ含有培地中で５～１４日間培養した細胞中のリポタンパク質の解析
・ＤＭＳＯ含有培地中で５日間培養
　播種の翌日培地Ａを除去して、５００μＬの培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））を添加し、インキュベーター（３７℃，５％ＣＯ2）へ静かに移し、培養した。培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））を用いた培養開始から１日目及び２日目に、培地を新しい培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））に交換した。
　培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））を用いた５日間の培養終了後、細胞内のコレステロール及びトリグリセリド量について、下記細胞中のリポタンパク質の解析を行った。
・ＤＭＳＯ含有培地中で９日間培養
　播種の翌日培地Ａを除去して、５００μＬの培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））を添加し、インキュベーター（３７℃，５％ＣＯ2）へ静かに移し、培養した。培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））を用いた培養開始から５日目、７日目、及び８日目に、培地を新しい培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））に交換した。
　培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））を用いた９日間の培養終了後、細胞内のコレステロール及びトリグリセリド量について、下記細胞中のリポタンパク質の解析を行った。
・ＤＭＳＯ含有培地中で１２日間培養
　播種の翌日培地Ａを除去して、５００μＬの培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））を添加し、インキュベーター（３７℃，５％ＣＯ2）へ静かに移し、培養した。培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））を用いた培養開始から５日目、７日目、及び８日目に、培地を新しい培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））に交換した。
　培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））を用いた１２日間の培養終了後、細胞内のコレステロール及びトリグリセリド量について、下記細胞中のリポタンパク質の解析を行った。
・ＤＭＳＯ含有培地中で１４日間培養
　播種の翌日培地Ａを除去して、５００μＬの培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））を添加し、インキュベーター（３７℃，５％ＣＯ2）へ静かに移し、培養した。培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））を用いた培養開始から５日目、７日目、８日目、及び１２日目に、培地を新しい培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））に交換した。
　培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））を用いた１４日間の培養終了後、細胞内のコレステロール及びトリグリセリド量について、下記細胞中のリポタンパク質の解析を行った。
・既知肝細胞の培養
　既知肝細胞（ＨｅｐＧ２細胞、ＨｕＨ７細胞）を５００μＬの培地Ａに播種し、インキュベーター（３７℃，５％ＣＯ2）へ静かに移し、７日間培養した。培養終了後、下記培養上清中のリポタンパク質の解析、ならびに、下記細胞中のリポタンパク質の解析を行った。
５．解析方法
（培養上清中のリポタンパク質の解析）
　ＰＸＢ－ｃｅｌｌｓ、ＨｅｐＧ２、及びＨｕＨ７の培養上清中に含まれるリポタンパク質の解析には、株式会社スカイライト・バイオテック社のＬｉｐｏＳＥＡＲＣＨ（登録商標）法を用いた。
　上記培養終了後、培養に用いられた培地を除去して、５００μＬの解析用の培地Ｄを添加し、インキュベーター（３７℃，５％ＣＯ2）へ静かに移し、２日間培養した。その後、培養上清を回収し、培養上清（８０μＬ）に含まれるリポタンパク質を、ゲル濾過ＨＰＬＣにより４種のサブグループである、ＣＭ、ＶＬＤＬ、ＬＤＬ、及びＨＤＬの画分に分画後、それぞれの画分に含まれるコレステロール及び中性脂肪（トリグリセリド）をオンライン酵素反応にて定量した。濃度解析にはスカイライト・バイオテック社独自のコンピュータープログラムを用いて解析を行った。なお、酵素反応については、Ｄｉａｃｏｌｏｒ　Ｌｉｑｕｉｄ　ＴＧ－Ｓ（東洋紡績製）を用い、ＣＭ、ＶＬＤＬ、ＬＤＬ、及びＨＤＬ中のコレステロール及び中性脂肪（トリグリセリド）濃度の標準血清は、協和発酵キリン株式会社製を使用した。
（細胞中のリポタンパク質の解析）
・細胞中トリグリセリド測定
　細胞中のトリグリセリドの測定は、コレステスト（登録商標）ＴＧ（積水メディカル株式会社）を製造元の指示書に従って用いて行った。すなわち、細胞をＰＢＳで洗浄後、完全に水を切り（測定までは－８０℃保存）、細胞Ｗｅｌｌ毎に２００μＬのＴＧ酵素液（１）を添加し、３７℃、１０分間保温し、反応させた（フリーのグリセロールを除去）。次いで、ピペットで細胞を剥離させ、遠心チューブに移し１０，０００ｒｐｍ×１０分間遠心分離した後、上清７．５μＬを９６穴マイクロプレートに移し、６８μＬのＴＧ酵素液（１）を添加し、３７℃、１０分間保温し、完全にフリーのグリセロールを除去した。次いで、２５μＬのＴＧ酵素液（２）を添加し、３７℃、１０分間保温した。得られた反応物について、５５０ｎｍにて吸光度を測定し、ＨＤＬ－Ｃ１８０Ａを標準としてトリグリセリド含量を算出（ＨＤＬ－Ｃ１８０Ａのトリグリセリド濃度は、５２．２６ｍｇ／ｄＬ）した。
・細胞中コレステロール測定
　細胞中のコレステロールの測定は、コレステスト（登録商標）ＣＨＯ（積水メディカル株式会社）を製造元の指示書に従って用いて行った。すなわち、細胞をＰＢＳで洗浄後、完全に水を切り（測定までは－８０℃保存）、細胞Ｗｅｌｌ毎に２００μＬのＣＨＯ酵素液（１）を添加し、３７℃、１０分間保温した。次いで、ピペットで細胞を剥離させ、遠心チューブに移し１０，０００ｒｐｍ×１０分間遠心分離した後、上清１５μＬを９６穴マイクロプレートに移し、６８μＬのＣＨＯ酵素液（１）を添加し、３７℃、１０分間保温した。次いで、２５μＬのＣＨＯ酵素液（２）を添加し、３７℃、１０分間保温した。得られた反応物について、５５０ｎｍにて吸光度を測定し、ＨＤＬ－Ｃ１８０Ａを標準としてコレステロール含量を算出（ＨＤＬ－Ｃ１８０Ａのトリグリセリド濃度は、１５２．６７ｍｇ／ｄＬ）した。
６．遺伝子発現量の解析
　培地Ｂで３日間又は６日間培養したＰＸＢ－ｃｅｌｌｓの総ＲＮＡを、ＴＲＩｚｏｌ（登録商標）＋Ｄｉｒｅｃｔ　ｚｏｌ（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）を、製造元の指示書に従って用いて抽出した。
　抽出した総ＲＮＡサンプルの品質をバイオアナライザ（アジレント・テクノロジー株式会社）で評価した後、マイクロアレイ解析（アジレント・テクノロジー株式会社）を製造元の指示書に従って実施し、脂肪肝関連遺伝子であるＦＡＳＮ、ＳＲＥＢＦ１、Ｇ６ＰＣ、ＣＹＰ７Ａ１、ＣＥＴＰ、ＧＣＫ、及びＰＣＫ１の発現量を解析した。
７．灌流液、培地
　灌流液Ａ、灌流液Ｂ、灌流液Ｃ、培地Ａ、培地Ｂ、培地Ｃ、及び培地Ｄは以下の組成のものを用いた。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
ＩＩ．結果
１．ＤＭＳＯ含有培地中で培養した培養上清中のリポタンパク質の解析結果
　図１は、培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））又は培地Ｃ（ＤＭＳＯ（－））で５日間培養したＰＸＢ－ｃｅｌｌｓを示す。培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））で培養したＰＸＢ－ｃｅｌｌｓ（図１、左）においては、培地Ｃ（ＤＭＳＯ（－））で培養した場合（図１、右）と比べて多くの（およそ２倍）脂肪滴（白色で示される）が観察された。
　また、図２に、培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））又は培地Ｃ（ＤＭＳＯ（－））で５日間の培養後に回収した培養上清中のリポタンパク質（ＣＭ、ＶＬＤＬ、ＬＤＬ、及びＨＤＬを含む）の総中性脂肪（トリグリセリド）含量の測定結果を示す。結果は、培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））で培養したＰＸＢ－ｃｅｌｌｓの培養上清中の当該含有量を「１００」とする相対値にて示す。培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））で培養したＰＸＢ－ｃｅｌｌｓでは、培地Ｃ（ＤＭＳＯ（－））で培養した場合と比べて高い（およそ９倍）リポタンパク質中の総中性脂肪（トリグリセリド）の分泌が認められた。
　これらの結果より、ＰＸＢ－ｃｅｌｌｓを、ＤＭＳＯ含有の培地中で培養することにより、脂質の蓄積及び分泌を高く維持できることが確認された。
２．ＤＭＳＯ含有培地中で５～１４日間培養した培養上清中のリポタンパク質の解析結果
　図３に、培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））で５、９、１２、及び１４日間培養したＰＸＢ－ｃｅｌｌｓ、ならびに既知肝細胞（ＨｅｐＧ２細胞、ＨｕＨ７細胞）の各培養上清中のリポタンパク質の解析結果を示す。
　ＰＸＢ－ｃｅｌｌｓにおいては、培養上清における総コレステロール及び総中性脂肪（トリグリセリド）の含量は共に、５日間培養した後に最も高い値が認められ、９日間、１２日間、及び１４日間の培養後においては、それらの含量は共に若干低下するものの、維持されていた。
　一方、ＨｅｐＧ２細胞の培養上清における総コレステロール及び総中性脂肪（トリグリセリド）の含量は共に、ＰＸＢ－ｃｅｌｌｓのそれらと比べて顕著に低いことが確認された。また、ＨｕＨ７細胞の培養上清における総コレステロール含量は、１２日間、及び１４日間培養後のＰＸＢ－ｃｅｌｌｓのそれと匹敵するものであったが、総中性脂肪（トリグリセリド）の含量は、ＰＸＢ－ｃｅｌｌｓのそれと比べて顕著に低いことが確認された。
　さらに、培養上清中に含まれるリポタンパク質の４種のサブグループについて解析した結果を図４に示す。培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））で培養したＰＸＢ－ｃｅｌｌｓにおいては培養期間に関わらず、コレステロール及び中性脂肪（トリグリセリド）のいずれにおいても、ＶＬＤＬが最も多く存在することが確認された。以下に、培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））で５日間、９日間、１２日間、及び１４日間培養したＰＸＢ－ｃｅｌｌｓの培養上清中のリポタンパク質の解析結果（ＣＭ、ＶＬＤＬ、ＬＤＬ、ＨＤＬの含有比（重量比））を示す。
・５日間培養
（コレステロール）
ＣＭ：ＶＬＤＬ：ＬＤＬ：ＨＤＬ＝３：８６：８：３
（中性脂肪（トリグリセリド））
ＣＭ：ＶＬＤＬ：ＬＤＬ：ＨＤＬ＝３：９１：５：１
・９日間培養
（コレステロール）
ＣＭ：ＶＬＤＬ：ＬＤＬ：ＨＤＬ＝４：８２：９：２
（中性脂肪（トリグリセリド））
ＣＭ：ＶＬＤＬ：ＬＤＬ：ＨＤＬ＝３：９０：６：１
・１２日間培養
（コレステロール）
ＣＭ：ＶＬＤＬ：ＬＤＬ：ＨＤＬ＝２：８０：９：３
（中性脂肪（トリグリセリド））
ＣＭ：ＶＬＤＬ：ＬＤＬ：ＨＤＬ＝３：９０：６：１
・１４日間培養
（コレステロール）
ＣＭ：ＶＬＤＬ：ＬＤＬ：ＨＤＬ＝１：７９：１４：６
（中性脂肪（トリグリセリド））
ＣＭ：ＶＬＤＬ：ＬＤＬ：ＨＤＬ＝２：９１：６：１
　一方、ＨｕＨ７細胞においては、コレステロール及び中性脂肪（トリグリセリド）のいずれについても、培養上清中にはＬＤＬが最も多く、同条件で培養したＨｅｐＧ２細胞においては、コレステロール及び中性脂肪（トリグリセリド）のいずれについても、培養上清中にはＨＤＬが最も多く存在した。
　また、ＰＸＢ－ｃｅｌｌｓで観察されたＶＬＤＬのピークは、ＨｅｐＧ２細胞及びＨｕＨ７細胞の培養上清中においては観察されず、培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））で培養したＰＸＢ－ｃｅｌｌｓにおいて特異的に分泌されていることが確認された。
３．ＤＭＳＯ含有培地中で５～１４日間培養した細胞中のリポタンパク質の解析結果
　図５に、培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））で５、９、１２、及び１４日間培養したＰＸＢ－ｃｅｌｌｓ、ならびに既知肝細胞（ＨｅｐＧ２細胞、ＨｕＨ７細胞）の各細胞中のリポタンパク質の解析結果を示す。
　ＰＸＢ－ｃｅｌｌｓにおいては、総コレステロールの含量は５日間培養した後に最も低い値が認められ、９日間、１２日間、及び１４日間の培養後にそれらの含量は共に若干増加した。総中性脂肪（トリグリセリド）の含量は、５日間培養した後に最も高い値が認められ、９日間、１２日間、及び１４日間の培養後にそれらの含量は共に若干低下するものの、維持されていた。
　一方、ＨｅｐＧ２細胞の総コレステロール及び総中性脂肪（トリグリセリド）の含量は共に、ＰＸＢ－ｃｅｌｌｓのそれらと比べて顕著に低いことが確認された。また、ＨｕＨ７細胞の総中性脂肪（トリグリセリド）含量は、９日間、１２日間、及び１４日間の培養後のＰＸＢ－ｃｅｌｌｓに匹敵することが確認されたが、５日間培養した後のＰＸＢ－ｃｅｌｌｓのそれと比べて顕著に低いことが確認された。総コレステロールについては、全期間のＰＸＢ－ｃｅｌｌｓに匹敵することが確認された。
　これらの結果より、培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））で培養することによってＰＸＢ－ｃｅｌｌｓは少なくとも２週間近くにわたって脂質（コレステロール及び中性脂肪（トリグリセリド））の蓄積、及び分泌を維持できることが確認された。特に、６日間の培養において最も高い中性脂肪（トリグリセリド））の蓄積、及びコレステロール及び中性脂肪（トリグリセリド）の分泌が確認された。さらに分泌されたリポタンパク質は、ＶＬＤＬを最も多く含むものであることが確認された。このような性質は、従来既知の肝細胞（ＨｕＨ７細胞、ＨｅｐＧ２細胞）においては認められず、培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））で培養されたＰＸＢ－ｃｅｌｌｓが従来既知の肝細胞とは異なる特性を有することが確認された。
４．脂肪肝関連遺伝子の発現量
　図６に、培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））で３日間、及び６日間培養したＰＸＢ－ｃｅｌｌｓにおける脂肪肝関連遺伝子（ＦＡＳＮ、ＳＲＥＢＦ１、Ｇ６ＰＣ）の発現量を解析した結果を示す。結果は、培養３日目の各遺伝子の発現量を「１」とする相対値にて示す。いずれの遺伝子についても、培養３日目より培養６日間において発現量の上昇が認められた。また、図６には示さないが、ＣＹＰ７Ａ１、ＣＥＴＰ、ＧＣＫ、及びＰＣＫ１についても同様に、培養３日目より培養６日間において発現量の上昇が認められた。
　以上の結果より、培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））で培養されたＰＸＢ－ｃｅｌｌｓは、脂質の蓄積、分泌を維持することができ、また、脂肪肝関連遺伝子の発現も伴うことから、ヒト脂肪肝モデル細胞として利用し得ることが確認された。
ＩＩＩ．ヒト脂肪肝の予防、治療又は改善に有効な物質のスクリーニング
１．試験方法
・細胞の調製
　ＰＸＢ－ｃｅｌｌｓを、培地Ａにて希釈した。希釈した細胞懸濁液５００μＬを培養プレートの各Ｗｅｌｌに静かに注ぎ、細胞が底面に軽く接着するまで約２０分間静置した後、インキュベーター（３７℃，５％ＣＯ2）へ静かに移し、培養した。播種の翌日培地Ａを除去して、５００μＬの培地Ｂ（ＤＭＳＯ（＋））を添加し、インキュベーター（３７℃，５％ＣＯ2）へ静かに移し、５日間培養した。また、高脂血症治療薬投与の細胞は、１２日間培養した。培養終了後、下記スクリーニング試験に用いた。
・スクリーニング試験
　被験物質として、脂質代謝改善剤として知られる（特許第５３４４４９４号公報）ジュンサイエキス（オリザ油化株式会社）を用いた。また、高脂血症治療薬であるシンバスタチン（富士フィルム和光純薬）、フェノフィブラート（ｓｉｇｍａ－ａｌｄｒｉｃｈ）及びロミタピド（東京化成）も被験物質として用いた。
　各被験物質をエタノールに懸濁し、所定の量となるようにＰＸＢ－ｃｅｌｌｓ培養物に添加し、インキュベーター（３７℃，５％ＣＯ2）へ静かに移し、２日間培養した。培養終了後、上記「培養上清中のリポタンパク質の解析」及び「細胞中のリポタンパク質の解析」に記載の手法にて、培養上清中及び細胞中の総コレステロール及び総中性脂肪（トリグリセリド）をそれぞれ測定した。
　対照には、被験物質の懸濁に用いたのと同量のエタノールのみを添加した。
・アルブミン測定
　培養終了後の培養上清２００μＬを採取し、免疫比濁法により自動分析装置ＪＣＡ－ＢＭ６０５０（日本電子）を用いて、培養上清中のヒトアルブミン含量を測定した。
２．結果
　図７に、ジュンサイエキスを５μｇ／ｍＬ、５０μｇ／ｍＬ、又は５００μｇ／ｍＬの量でそれぞれ添加して、２日間培養したＰＸＢ－ｃｅｌｌｓの各培養上清中及び細胞中のリポタンパク質含量、ならびに各培養上清中のヒトアルブミン含量の解析結果を示す。
　ジュンサイエキスを添加した場合、いずれの添加量においても、培養上清中及び細胞中の総コレステロール含量に大きな減少は認められなかった。一方、総中性脂肪（トリグリセリド）含量は、培養上清中については大きな減少は認められなかったが、細胞中は、ジュンサイエキスの添加量依存的に減少した。
　また、培養上清中のヒトアルブミン含量は、いずれの添加量においても大きな減少は認められず、毒性は確認されなかった。
図８に、シンバスタチンを０．１μＭ、１μＭ、又は１０μＭの量でそれぞれ添加して、２日間培養したＰＸＢ－ｃｅｌｌｓの各培養上清中及び細胞中のリポタンパク質含量、ならびに各培養上清中のヒトアルブミン含量の解析結果を示す。
　シンバスタチンを添加した場合、いずれの添加量においても、培養上清中及び細胞中の総中性脂肪（トリグリセリド）含量に大きな減少は認められなかった。一方、総コレステロール含量は、細胞中については大きな減少は認められなかったが、培養上清中は、シンバスタチンの添加量依存的に減少した。
　また、培養上清中のヒトアルブミン含量は、いずれの添加量においても大きな減少は認められず、毒性は確認されなかった。
　図９に、フェノフィブラートを５μＭ、５０μＭ、又は５００μＭの量でそれぞれ添加して、２日間培養したＰＸＢ－ｃｅｌｌｓの各培養上清中及び細胞中のリポタンパク質含量、ならびに各培養上清中のヒトアルブミン含量の解析結果を示す。
　フェノフィブラートを添加した場合、いずれの添加量においても、細胞中の総コレステロール含量及び総中性脂肪（トリグリセリド）含量に大きな減少は認められなかった。一方、培養上清中の総コレステロール含量及び総中性脂肪（トリグリセリド）含量は、フェノフィブラートの添加量依存的に減少した。
　また、培養上清中のヒトアルブミン含量は、フェノフィブラートの添加量依存的に減少が認められ、高用量のフェノフィブラートにより毒性が示されることが示唆された。
　図１０に、ロミタピドを１μＭ、１０μＭ、又は１００μＭの量でそれぞれ添加して、２日間培養したＰＸＢ－ｃｅｌｌｓの各培養上清中及び細胞中のリポタンパク質含量、ならびに各培養上清中のヒトアルブミン含量の解析結果を示す。
　ロミタピドを添加した場合、いずれの添加量においても、細胞中の総コレステロール含量及び総中性脂肪（トリグリセリド）含量に大きな減少は認められなかった。一方、培養上清中の総コレステロール含量及び総中性脂肪（トリグリセリド）含量は、ロミタピドの添加により大きく減少した。
　また、培養上清中のヒトアルブミン含量は、ロミタピドの添加量依存的に減少が認められ、高用量のロミタピドにより毒性が示されることが示唆された。
　これらの結果より、ＰＸＢ－ｃｅｌｌｓによれば、培養上清中及び／又は細胞中の総コレステロール含量及び総中性脂肪含量の減少を指標にして、脂質代謝改善剤や高脂血症治療薬等をはじめとする、ヒト脂肪肝の予防、治療又は改善に有効な物質のスクリーニングできることが確認された。また、ＰＸＢ－ｃｅｌｌｓによれば、培養上清中のヒトアルブミン含量の減少を指標にして、ヒト脂肪肝に対する毒性を示し得る物質を評価・確認できることが確認された。

 

Claims (9)

  1. 　ヒト脂肪肝モデル細胞の製造方法であって、
    　脂肪肝由来のヒト肝細胞を、ジメチルスルホキシドを含む培地中にて培養する工程、
    を含む、方法。
  2. 　脂肪肝由来のヒト肝細胞が、ヒト肝細胞を有するキメラ非ヒト動物より回収されたものである、請求項１に記載の方法。
  3. 　培養を３日間よりも長く行う、請求項１又は２に記載の方法。
  4. 　脂質を分泌及び／又は蓄積する、ヒト脂肪肝モデル細胞。
  5. 　超低密度リポタンパク質（ＶＬＤＬ）及び低密度リポタンパク質（ＬＤＬ）を含むリポタンパク質を含有し、ＶＬＤＬをＬＤＬよりも多く含むことを特徴とする、請求項４に記載の細胞。
  6. 　脂肪肝関連遺伝子の増大した発現を有する、請求項４に記載の細胞。
  7. 　脂肪肝関連遺伝子が、ＦＡＳＮ、ＳＲＥＢＦ１、及びＧ６ＰＣからなる群から選択される一以上の遺伝子である、請求項６に記載の細胞。
  8. 　ヒト脂肪肝に有効な物質のスクリーニング方法であって、
    　請求項４～７のいずれか１項に記載の細胞に被検物質を投与する工程、ならびに、
    　被験物質を投与した細胞と投与されていない細胞との間で脂肪肝症状の程度を比較する工程、を含む方法。
  9. 　被検物質のヒト脂肪肝に対する毒性を評価する方法であって、
    　請求項４～７のいずれか１項に記載の細胞に被検物質を投与する工程、ならびに、
    　被験物質を投与した細胞と投与されていない細胞との間で細胞の生存率や脂肪肝症状の程度を比較して、該被検物質のヒト脂肪肝に対する影響を評価する工程、を含む方法。
PCT/JP2019/042317 2019-08-26 2019-10-29 ヒト脂肪肝モデル細胞 WO2021038892A1 (ja)

Priority Applications (4)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US16/620,412 US20220177833A1 (en) 2019-08-26 2019-10-29 Human fatty-liver model cells
CA3065031A CA3065031C (en) 2019-08-26 2019-10-29 Human fatty-liver model cells
CN201980002972.5A CN112714789A (zh) 2019-08-26 2019-10-29 人脂肪肝模型细胞
EP19813218.5A EP4039797A4 (en) 2019-08-26 2019-10-29 HUMAN LIVER GRAS MODEL CELLS

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2019153323A JP7039045B2 (ja) 2019-08-26 2019-08-26 ヒト脂肪肝モデル細胞
JP2019-153323 2019-08-26

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2021038892A1 true WO2021038892A1 (ja) 2021-03-04

Family

ID=74674136

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/JP2019/042317 WO2021038892A1 (ja) 2019-08-26 2019-10-29 ヒト脂肪肝モデル細胞

Country Status (6)

Country Link
US (1) US20220177833A1 (ja)
EP (1) EP4039797A4 (ja)
JP (1) JP7039045B2 (ja)
CN (1) CN112714789A (ja)
CA (1) CA3065031C (ja)
WO (1) WO2021038892A1 (ja)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2022181660A1 (ja) * 2021-02-26 2022-09-01 株式会社フェニックスバイオ スクリーニング方法に使用するためのヒト脂肪肝モデル細胞
WO2023238877A1 (ja) * 2022-06-08 2023-12-14 株式会社フェニックスバイオ インスリン抵抗性疾患モデル細胞

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CA3234502A1 (en) * 2021-10-04 2023-04-13 Phoenixbio Co., Ltd. Cholesterol-free high-density lipoprotein particles

Citations (16)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS644322B2 (ja) 1980-05-24 1989-01-25 Fuiritsupusu Furuuiranpenfuaburiken Nv
US5344494A (en) 1993-01-21 1994-09-06 Smith & Nephew Richards, Inc. Method for cleaning porous and roughened surfaces on medical implants
JPH07274951A (ja) 1994-04-11 1995-10-24 Res Dev Corp Of Japan 初代培養肝細胞の継代培養系
JPH08112092A (ja) 1994-08-23 1996-05-07 Res Dev Corp Of Japan クローン性増殖能を有する肝実質細胞とその取得 方法、並びにその継代培養方法
JPH0915225A (ja) 1995-04-28 1997-01-17 Tosoh Corp 血清リポタンパク質の分析方法
JPH09313172A (ja) 1996-05-28 1997-12-09 Kagaku Gijutsu Shinko Jigyodan 小型肝細胞の培養方法
JPH10179148A (ja) 1996-12-26 1998-07-07 Kagaku Gijutsu Shinko Jigyodan ヒト小型肝細胞の取得方法と、この細胞の初代培養 および継代培養方法
US6004810A (en) 1994-04-11 1999-12-21 Research Development Corporation Of Japan Liver parenchymal cells having clonal growth ability, method for obtaining same, method for subculturing same, and subculturing system of primary hepatocytes
JP2002045087A (ja) 2000-05-19 2002-02-12 Japan Science & Technology Corp キメラ動物
WO2007052789A1 (ja) 2005-11-04 2007-05-10 Skylight Biotech Inc. 大血管障害を判別するためのリポタンパク質の分析方法
JP2007228962A (ja) 2006-01-31 2007-09-13 Hiroshima Industrial Promotion Organization ヒト肝細胞キメララットの作製方法
WO2008001614A1 (fr) 2006-06-29 2008-01-03 Hiroshima Industrial Promotion Organization Modèle animalier de stéatohépatite non alcoolique et modèle animalier de stéatose hépatique
WO2009139419A1 (ja) * 2008-05-14 2009-11-19 公立大学法人横浜市立大学 ヒト肝幹細胞、その調製方法、分化誘導方法及び利用方法
WO2013145331A1 (ja) 2012-03-27 2013-10-03 株式会社トランスジェニック ヒト化マウス
WO2018085622A1 (en) * 2016-11-04 2018-05-11 Children's Hospital Medical Center Liver organoid disease models and methods of making and using same
JP2019153323A (ja) 2012-01-19 2019-09-12 グーグル エルエルシー 検索結果へのアクセスを改良するシステム、方法及び記憶媒体

Family Cites Families (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AU2002324307A1 (en) * 2001-07-31 2003-02-17 Yeda Research And Development Co. Ltd. Methods of sensitizing hepatocyte cell cultures to hepatitis infection, beads coated with hbv or hcv polypeptides and methods of using such beads to model viral infection or deliver substances into hepatocytes
CN102037563B (zh) 2008-05-13 2013-06-05 富士电机株式会社 半导体器件及其制造方法
JP5976380B2 (ja) * 2012-04-27 2016-08-23 公益財団法人東京都医学総合研究所 ウロキナーゼ型プラスミノーゲンアクチベータートランスジェニックマウス
EP2890779B1 (en) * 2012-08-31 2017-10-04 The Governors of the University of Alberta Methods for producing cells having a phenotype of primary human hepatocytes and compositions
US9709554B2 (en) * 2013-01-31 2017-07-18 Rutgers, The State University Of New Jersey In vitro model of macrosteatotic (fatty) liver
US20180172668A1 (en) * 2015-06-23 2018-06-21 Colorado State University Research Foundation Engineered model of fibrotic diseases
WO2017083727A1 (en) * 2015-11-11 2017-05-18 Colorado State University Research Foundation Compositions and methods for increasing hepatocyte functional lifetime in vitro
CR20190520A (es) * 2017-05-22 2020-01-21 Hoffmann La Roche Composiciones y compuestos terapéuticos y métodos para utilizarlos
JP7233039B2 (ja) * 2017-11-01 2023-03-06 株式会社フェニックスバイオ ヒト非アルコール性脂肪性肝炎モデル
CN109337863A (zh) * 2018-10-25 2019-02-15 南京鼓楼医院 一种预测化合物对脂肪性肝病毒性的体外模型构建方法

Patent Citations (19)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS644322B2 (ja) 1980-05-24 1989-01-25 Fuiritsupusu Furuuiranpenfuaburiken Nv
US5344494A (en) 1993-01-21 1994-09-06 Smith & Nephew Richards, Inc. Method for cleaning porous and roughened surfaces on medical implants
US6004810A (en) 1994-04-11 1999-12-21 Research Development Corporation Of Japan Liver parenchymal cells having clonal growth ability, method for obtaining same, method for subculturing same, and subculturing system of primary hepatocytes
JPH07274951A (ja) 1994-04-11 1995-10-24 Res Dev Corp Of Japan 初代培養肝細胞の継代培養系
JP3157984B2 (ja) 1994-04-11 2001-04-23 科学技術振興事業団 初代培養肝細胞の継代培養系
JPH08112092A (ja) 1994-08-23 1996-05-07 Res Dev Corp Of Japan クローン性増殖能を有する肝実質細胞とその取得 方法、並びにその継代培養方法
JP3266766B2 (ja) 1994-08-23 2002-03-18 科学技術振興事業団 ローン性増殖能を有する肝実質細胞とその取得方法、並びにその継代培養方法
JPH0915225A (ja) 1995-04-28 1997-01-17 Tosoh Corp 血清リポタンパク質の分析方法
JPH09313172A (ja) 1996-05-28 1997-12-09 Kagaku Gijutsu Shinko Jigyodan 小型肝細胞の培養方法
JPH10179148A (ja) 1996-12-26 1998-07-07 Kagaku Gijutsu Shinko Jigyodan ヒト小型肝細胞の取得方法と、この細胞の初代培養 および継代培養方法
JP3211941B2 (ja) 1996-12-26 2001-09-25 科学技術振興事業団 ヒト小型肝細胞の取得方法と、この細胞の初代培養および継代培養方法
JP2002045087A (ja) 2000-05-19 2002-02-12 Japan Science & Technology Corp キメラ動物
WO2007052789A1 (ja) 2005-11-04 2007-05-10 Skylight Biotech Inc. 大血管障害を判別するためのリポタンパク質の分析方法
JP2007228962A (ja) 2006-01-31 2007-09-13 Hiroshima Industrial Promotion Organization ヒト肝細胞キメララットの作製方法
WO2008001614A1 (fr) 2006-06-29 2008-01-03 Hiroshima Industrial Promotion Organization Modèle animalier de stéatohépatite non alcoolique et modèle animalier de stéatose hépatique
WO2009139419A1 (ja) * 2008-05-14 2009-11-19 公立大学法人横浜市立大学 ヒト肝幹細胞、その調製方法、分化誘導方法及び利用方法
JP2019153323A (ja) 2012-01-19 2019-09-12 グーグル エルエルシー 検索結果へのアクセスを改良するシステム、方法及び記憶媒体
WO2013145331A1 (ja) 2012-03-27 2013-10-03 株式会社トランスジェニック ヒト化マウス
WO2018085622A1 (en) * 2016-11-04 2018-05-11 Children's Hospital Medical Center Liver organoid disease models and methods of making and using same

Non-Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
AO, R. ET AL.: "Altered microRNA-9 Expression Level is Directly Correlated with Pathogenesis of Nonalcoholic Fatty Liver Disease by Targeting Onecut2 and SIRT1", MEDICAL SCIENCE MONITOR, vol. 22, 19 October 2016 (2016-10-19), pages 3804 - 3819, XP055795477, DOI: 10.12659/MSM.897207 *
ARTERIOSCLER THROMB VASC BIOL., vol. 25, 2005, pages 1 - 8
See also references of EP4039797A4
TRANSPLANTATION, vol. 60, no. 7, 1995, pages 740 - 7
YANG, H. ET AL., CELL, vol. 154, 2013, pages 1370 - 1379

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2022181660A1 (ja) * 2021-02-26 2022-09-01 株式会社フェニックスバイオ スクリーニング方法に使用するためのヒト脂肪肝モデル細胞
WO2023238877A1 (ja) * 2022-06-08 2023-12-14 株式会社フェニックスバイオ インスリン抵抗性疾患モデル細胞

Also Published As

Publication number Publication date
CA3065031C (en) 2024-01-02
CN112714789A (zh) 2021-04-27
CA3065031A1 (en) 2021-02-26
EP4039797A4 (en) 2023-08-30
US20220177833A1 (en) 2022-06-09
JP7039045B2 (ja) 2022-03-22
EP4039797A1 (en) 2022-08-10
JP2021029174A (ja) 2021-03-01

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP7263455B2 (ja) 機能性ミトコンドリアで富化された哺乳動物細胞
JP7039045B2 (ja) ヒト脂肪肝モデル細胞
CN102329788B (zh) 细胞转核诱导体细胞成多能二倍体干细胞的方法
JP5172670B2 (ja) 非アルコール性脂肪性肝炎モデル動物及び脂肪肝モデル動物
CN101827933B (zh) 治疗肾功能衰竭的选择性细胞疗法
CN104546912B (zh) 用于治疗胰功能异常的方法
CN104105493A (zh) 哺乳动物胎儿肺细胞以及其治疗用途
CN109234278B (zh) 构建ApoC2基因敲除仓鼠模型的试剂盒和方法
WO2015170694A1 (ja) 高尿酸血症モデル
Li et al. Directed differentiation of granular cells from crayfish hematopoietic tissue cells
CN110229784A (zh) 一种去除死肝细胞的分离液及利用其去除死肝细胞的方法
Jestin et al. Mitochondrial disease disrupts hepatic allostasis and lowers the threshold for immune-mediated liver toxicity
JP7449626B2 (ja) スクリーニング方法に使用するためのヒト脂肪肝モデル細胞
WO2023098273A1 (zh) 一种筛选抑制肠道脂肪酸摄取及防治脂肪肝的药物靶点及其应用
US9737567B2 (en) Methods for enhancing hematopoietic stem/progenitor cell engraftment
US20240108590A1 (en) Maintenance of programmed chronic liver injury of fah gene-deficient animals and application thereof in preparation of heterologous liver models
Zheng et al. Novel organic selenium source hydroxy-selenomethionine counteracts the blood-milk barrier disruption and inflammatory response of mice under heat stress
CN103619342B (zh) 用于治疗肥胖症和/或代谢综合征的方法
CA3234502A1 (en) Cholesterol-free high-density lipoprotein particles
CN108300737A (zh) 一种表型高度一致的恶性淋巴瘤模型的建立方法及其用途
JP2017222581A (ja) 肝臓組織再生用組成物
EP3777528A1 (en) Non-human vertebrate transplanted with human hepatocytes and method for producing same
KR102174851B1 (ko) Cep41 유전자 결손 제프라피쉬 모델, 이의 용도 및 이를 이용한 치료제 스크리닝 방법
JP4321936B2 (ja) 不死化血管周皮細胞株
KR102513507B1 (ko) 장기 섬유증의 예방 또는 치료제

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 19813218

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2019813218

Country of ref document: EP

Effective date: 20220328