WO2021006335A1 - 結合組織体及びその製造方法 - Google Patents

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tissue
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connective
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中山 泰秀
佐藤 康史
武 寺澤
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バイオチューブ株式会社
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Definitions

  • the present invention relates to a connective tissue composed of a biological tissue and a method for producing the same.
  • a connective tissue-forming substrate having two tissue-forming surfaces facing each other is arranged in a living body or the like, and the tissue-forming space between the two surfaces is encapsulated by an encapsulation reaction. It is disclosed that connective tissue is formed by the produced collagen and the like.
  • the connective tissue-forming base material comprises a tubular base material and a core material inserted inside the tubular base material, and a tubular connective tissue body is formed in the tissue-forming space between them.
  • Tubular connective tissue is expected to be used for artificial blood vessels and the like.
  • a film-like connective tissue is formed by using a connective tissue-forming base material having two plate-like base materials facing each other.
  • an artificial valve having a plurality of leaflets is formed, assuming use for a heart valve or the like.
  • the connective tissue formed by the method disclosed in Patent Document 1 has insufficient strength on the surface, and is used, for example, in non-Patent Document 1 for tissues in a living body such as an artificial blood vessel and an artificial valve. It has been reported that blood permeates the inside of connective tissue, which makes it easier for thrombi to form. Therefore, treatment such as coating the surface with an antithrombotic substance is required.
  • the formed connective tissue is used for tissues in the body such as artificial esophagus, artificial lymphatic vessel, artificial diaphragm, artificial ureter, artificial urethra, etc. that come into contact with liquid components in the body such as body fluid, digestive juice, and excretion fluid, water content
  • liquid components in the body such as body fluid, digestive juice, and excretion fluid, water content
  • the tissue swells and becomes vulnerable when it soaks into the tissue.
  • the thick connective tissue had insufficient overall strength and could not function as a tissue such as a motor organ such as an artificial tendon or an artificial ligament.
  • an artificial structure such as a stent is included inside the tissue, there is a problem that the tissue shape becomes unstable such as displacement in the tissue.
  • the present invention has been made in view of the above problems, and the strength on the surface of the connective tissue obtained by the encapsulation reaction is increased, for example, an artificial blood vessel, an artificial valve, an artificial esophagus, an artificial ligament, and an artificial one. Even if it is used for tissues in the body such as artificial tendons and artificial ligaments by increasing the overall strength of the diaphragm, artificial urinary tract, artificial urinary tract, or connective tissue, blood and body fluid permeate into the connective tissue and blood clots form. The task is to prevent it from being formed or swelling.
  • the artificial structure to be included in the tissue is stabilized and used for, for example, an artificial trachea, a stent graft, a covered stent, etc.
  • the artificial structure to be included can be prevented from being displaced inside the tissue. Make it an issue.
  • a connective tissue in which the surface layer constituting any surface of the connective tissue includes a dense surface layer in which a tissue is formed more densely than a portion other than the surface layer.
  • connective tissue according to any one of the above [1] to [7], wherein the connective tissue is formed by an encapsulation reaction.
  • a method for producing a connective tissue composed of a biological tissue containing collagen A step of arranging a connective tissue-forming substrate having a tissue-forming surface and at least a part of the tissue-forming surface made of a polymer material in a living body.
  • a tissue-forming substrate having a tissue-forming surface that separates an environment in which a biological tissue material exists and a space for forming a connective tissue, and the space is communicated with the environment.
  • the tissue-forming base material having holes for allowing connective tissue to penetrate into the body is placed in the environment in a living body other than the human body, and air is removed from the space in which the tissue-forming base material is placed to form the tissue.
  • the connective tissue consists of a living tissue containing collagen and is used for tissues in the living body.
  • the entire surface layer constituting the surface of the connective tissue in contact with the tissue-forming surface is a dense surface layer in which the tissue is formed more densely than the portion other than the surface layer.
  • a connective tissue in which the ratio of the microstructure density of the surface layer to the microstructure density of a portion other than the surface layer calculated along the thickness direction of the dense surface layer is 1.1 or more.
  • a method for producing connective tissue which is composed of a living body-derived tissue containing collagen and is used for a living tissue.
  • a connective tissue for regenerative medicine A surface layer with a first bio-derived fibrous collagen and With a non-surface layer portion with a second fibrous collagen of biological origin, The first fibrous collagen in the surface layer has a first microscopic structure and a first density.
  • the second fibrous collagen in the non-surface layer portion has a second microstructure different from the first microstructure and a second microstructure smaller than the first microstructure.
  • Have and The surface layer and the non-surface layer portion are the difference between the first density of the first fibrous collagen and the second density of the second fibrous collagen, and the first.
  • the surface layer and the non-surface layer portion differ from each other in the difference between the first density and the second density, and the first microstructure and the second microscopic structure.
  • the connective tissue according to [13] which forms a layer boundary only due to a difference from the structure.
  • the first microscopic structure and the first density give the surface layer a first difficulty in blood penetration.
  • the second microscopic structure and the second density give the non-surface layer portion a second difficulty in blood penetration.
  • a connective tissue that can improve the strength and prevent blood from seeping inside and forming a thrombus even when used for tissues in a living body such as an artificial blood vessel and an artificial valve. To do.
  • the dissimilar member when a dissimilar member such as an artificial structure is included in the connective tissue, the dissimilar member can be stabilized and prevented from being displaced internally.
  • a schematic cross-sectional view showing one embodiment of connective tissue is shown.
  • a schematic cross-sectional view showing one embodiment of connective tissue is shown.
  • a schematic cross-sectional view showing one embodiment of connective tissue is shown.
  • a schematic cross-sectional view showing one embodiment of connective tissue is shown.
  • the perspective view which shows one Embodiment of the connective tissue formation base material is shown.
  • the perspective view which shows one Embodiment of the connective tissue formation base material is shown.
  • the perspective view which shows one Embodiment of the connective tissue formation base material is shown.
  • the perspective view which shows one Embodiment of the connective tissue formation base material is shown.
  • the perspective view which shows one Embodiment of a core material is shown.
  • the perspective view which shows one Embodiment of the connective tissue formation base material is shown.
  • the perspective view which shows one Embodiment of the connective tissue formation base material is shown.
  • the perspective view which shows one Embodiment of the connective tissue formation base material is shown.
  • the perspective view which shows one Embodiment of connective tissue is shown. It is a photograph which magnified the cross section of the connective tissue of Example 1. It is a photograph taken by enlarging after dyeing the cross section of the connective tissue of Example 1. It is a photograph taken after dyeing the cross section of the connective tissue of Example 1, and is the enlarged view of the part near the inner peripheral surface of the connective tissue.
  • Example 1 It is a photograph taken after dyeing the cross section of the connective tissue of Example 1, and is the enlarged view of the central part in the thickness direction of the connective tissue. It is a photograph which magnified the inner peripheral surface of the connective tissue which constitutes the surface of the dense surface layer of Example 1. It is a photograph which magnified the inside of the dense surface layer of the connective tissue of Example 1. It is a photograph which enlarged and photographed the part other than the dense surface layer of the connective tissue of Example 1. The luminance distribution data after the homogenization treatment of Example 1 is shown. In Example 1, connective tissue when immersed in whole dog blood is shown. It is a photograph which shows that Example 1 has a wall dissociation structure.
  • the connective tissue of the present invention contains collagen and is composed of a living tissue.
  • the connective tissue of the present invention is usually formed by an encapsulation reaction.
  • a foreign substance a connective tissue-forming base material described later
  • the biological tissue material such as fibroblasts is accumulated around the foreign substance. It is a reaction that causes collagen to be produced so as to wrap foreign substances.
  • the connective tissue contains collagen produced by the encapsulation reaction as the main component.
  • the connective tissue may also contain other biological tissue materials such as fibroblasts. Further, in the connective tissue, collagen partially or wholly constitutes fibrous collagen.
  • the "living tissue material” is a substance necessary for forming a desired biological tissue, for example, fibroblasts, smooth muscle cells, endothelial cells, stem cells, ES cells, and the like. Examples thereof include animal cells such as iPS cells, various proteins (collagen, elastin), saccharides such as hyaluronic acid, and various physiologically active substances existing in the living body such as cell growth factors and cytokines.
  • This "biological tissue material” includes those derived from mammals such as humans, dogs, cows, pigs, goats, and sheep, birds, fish, and other animals, or artificial materials equivalent thereto. Among these, the biological tissue material is preferably derived from mammals. Further, the “biological tissue” means a tissue formed from the above-mentioned biological tissue material.
  • the connective tissue of the present invention includes a dense surface layer in which the surface layer constituting any surface of the connective tissue is formed more densely than the portion other than the surface layer.
  • the dense tissue means that the collagen is dense in the connective tissue.
  • the dense surface layer which is denser than the portion other than the surface layer, may be provided on at least a part of the surface of the connective tissue.
  • the surface of the connective tissue composed of the dense surface layer (for example, the inner peripheral surface in the tubular structure described later) has high strength.
  • the surface becomes smooth and has high strength with high density, which makes it difficult for blood to permeate and makes it difficult for blood clots to form.
  • the resulting connective tissue is free of blood clots.
  • surface layer is not limited to the layers constituting the outer surface (outer surface) of the connective tissue, and even inside the connective tissue, dissimilar members existing inside the connective tissue, etc. It also includes layers that make up the interface with other members. Further, when the cavity is provided inside, the boundary surface with the cavity is also included in the surface layer.
  • a dense surface layer at the boundary surface with the dissimilar members.
  • a dense surface layer may be provided on the boundary surface with the hollow portion (for example, the inner peripheral surface in the tubular structure).
  • the connective tissue of the present invention preferably has a dense surface layer and a portion other than the surface layer, which is sparser than the dense surface layer, along the thickness direction thereof.
  • the connective tissue of the present invention may have dense surface layers on both surfaces along the thickness direction, and may have a portion sparser than the dense surface layer between the two dense surface layers.
  • the thickness direction is, for example, a direction corresponding to the radial direction in a tubular structure. Both surfaces on which the dense surface layer is formed may be the outer surface of the connective tissue, or both may be the interface surface with either the cavity or a dissimilar material, or one of them. May be the outer surface and the other may be the interface.
  • Whether or not the surface layer of the connective tissue has a dense surface layer is determined by slicing the connective tissue into thin sections and masson's trichrome staining, and illuminating the stained connective tissue with constant illuminance. It can be confirmed by the brightness value in the image obtained by irradiating with.
  • the connective tissue When the connective tissue is stained with Masson's trichrome, collagen is stained blue, but the part where the tissue is dense is deeply stained. Therefore, in the section-shaped connective tissue irradiated with illumination of a constant illuminance, the brightness value of the dense tissue portion is relatively low as compared with other regions, and the brightness value is relatively low. Can be recognized as a highly precise part.
  • the connective tissue of the present invention is photographed by Masson's trichrome staining, the brightness value of the highly dense surface layer is lower than that of other parts other than the surface layer in the photographed image. Thereby, it can be confirmed that the surface layer is dense.
  • the density of the surface layer of the connective tissue can be calculated by utilizing the fact that the brightness value of the dense tissue is low in the Masson's trichrome stained image.
  • the density obtained from the Masson's trichrome-stained image can be defined by the tissue density representing the density of the tissue itself (that is, collagen).
  • Connective tissue is generally sliced thinly and observed in cross section to show capillary structure and voids (ie, tissue-free areas), but the tissue density can be determined by image processing. This is the density calculated by removing the voids.
  • the connective tissue may be sliced into thin sections along the thickness direction, and the cut cross section stained with Masson's trichrome may be observed to calculate the tissue density of the surface layer.
  • tissue density ratio the ratio of the microstructure density of the surface layer to the microstructure density of the portion other than the surface layer (hereinafter, also referred to as “tissue density ratio”) is calculated along the thickness direction of the connective tissue. Therefore, the degree of denseness of the surface layer of the connective tissue can also be determined.
  • the surface layer of the present invention has a higher density than the portion other than the surface layer. Therefore, the microstructure density ratio of the surface layer may be larger than 1, but is preferably 1.1 or more, more preferably 1.2 or more.
  • the upper limit of the tissue density ratio is not particularly limited, but is 3, for example, 2.5 in reality.
  • the tissue density ratio is 1.1 or more
  • collagen, particularly fibrous collagen is densely present in the surface layer, so that the strength is increased. Therefore, it can be beneficially used in the living body. In addition, it becomes difficult for blood to soak into the blood, which makes it difficult for blood clots to form.
  • the microstructure density ratio of the surface layer on both surfaces may be within the above range, but the microstructure density ratio of the surface layer on one surface may be within the above range.
  • the dense surface layer of the present invention has a wall dissociation structure because the microstructure density is higher than that of other portions as described above.
  • the wall dissociation structure refers to a structure in which, for example, when the end portion of the dense surface layer is pinched and peeled off with tweezers, the portion other than the dense surface layer can be peeled off in a layered manner.
  • the dense surface layer has a lower water content when immersed in water than the other parts.
  • the weights of the dense surface layer separated by peeling and the other layers are both B (g), and the weight of the dense surface layer or the other portion obtained by vacuum-drying each at 25 ° C. for 12 hours.
  • the water content of the dense surface layer represented by (BA) / A ⁇ 100 is preferably less than 60%, more preferably less than 55%.
  • the water content of the other parts measured in the same manner is preferably 60% or more, more preferably 70% or more.
  • the tissue is dense, so that blood penetration can be prevented and problems such as the formation of thrombi are less likely to occur.
  • the connective tissue of the present invention has fibrous collagen as described above, but the fibrous collagen is flat and smooth on the surface composed of the dense surface layer (for example, the inner peripheral surface of the tubular structure). Is preferable. It is presumed that the dense surface layer has flat and fibrous collagen smoothly arranged on the surface thereof and the tissue becomes dense, so that blood does not easily permeate into the connective tissue.
  • the dense surface layer has flat and fibrous collagen smoothly arranged on the surface thereof and the tissue becomes dense, so that blood does not easily permeate into the connective tissue.
  • fibrous collagen is present in both the dense surface layer and the sparse portion other than the dense surface layer in the portion other than the surface composed of the dense surface layer of the connective tissue (for example, the inner peripheral surface of the tubular structure).
  • Fibrous collagen is arranged in a mesh so as to intersect. More specifically, the bundles of fibrous collagen are oriented along one direction to form a layer, and the bundles of fibrous collagen are oriented along another direction so as to intersect the bundles of collagen in that layer. It is preferable that the layers are oriented to form another layer, and these layers are laminated in a mesh pattern to form a laminated structure. Moreover, it is preferable that a plurality of the laminated structures are stacked.
  • the bundle of fibrous collagen in the portion other than the surface composed of the dense surface layer of the connective tissue is thick in the dense surface layer, and the dense surface in the portion other than the dense surface layer. It is preferable to have a structure thinner than the layer.
  • the connective tissue of the present invention has a network structure, which makes it easy to apply to regenerative medicine for artificially reviving lost tissues and organs of the human body.
  • the bundles of fibrous collagen are oriented in one direction, it is sufficient that the fibrous collagens are arranged so as to flow in substantially one direction, and all the fibrous collagens need to be strictly parallel to each other. There is no.
  • the connective tissue of the present invention may have any shape, for example, a tubular shape, a sheet shape, a rod shape, a spherical shape, or the like. If the connective tissue is tubular, it can be used, for example, in an artificial blood vessel. In the case of a sheet, it can be used as a membranous tissue such as artificial pericardium, hard membrane, skin, valve membrane, cornea, diaphragm, or abdominal wall, or as a blood vessel, esophagus, trachea, digestive tract, lymphatic vessel, or urethra. It can be used as a supplementary and repairing material for tubular and bag-shaped tissues such as the ureter and bladder. Further, when it is rod-shaped, it can be used as a muscular tissue such as a tendon or a ligament.
  • connective tissue may be formed into any shape according to each organ other than the tubular shape and the sheet shape, and may be formed into a shape corresponding to an artificial valve, for example.
  • An artificial valve generally has a tube portion and a plurality of leaflets bulging radially inward from the tube portion.
  • the connective tissue has a tube portion (tubular structure)
  • a dense surface layer is formed on at least one of both surfaces (that is, the outer peripheral surface and the inner peripheral surface).
  • the connective tissue 30 having a tubular structure has a dense surface layer 32 formed at least on its inner peripheral surface 30B.
  • the dense surface layer 32 is formed on both the inner peripheral surface 30B and the outer peripheral surface 30A.
  • the connective tissue 30 having a cyclic structure preferably has one hollow portion 35 inside as shown in FIGS. 1 and 2, but has a plurality of hollow portions 35 as shown in FIG. It may be provided. Even when a plurality of hollow portions 35 are provided, as shown in FIG. 3, it is preferable that the dense surface layer 32 is formed on the inner peripheral surface 30B of the pipe portion constituting the outer peripheral surface of the hollow portion 35, and the inner peripheral surface is preferably formed. It is also preferable that the dense surface layer 32 is formed on both the 30B and the outer peripheral surface 30A.
  • a dissimilar member 37 such as a metal or a polymer may be embedded inside the connective tissue 30.
  • the dense surface layer 32 is formed on the inner peripheral surface 30B of the pipe portion forming the outer periphery of the hollow portion 35, as shown in FIG. It is also preferable that the dense surface layer 32 is formed on both the inner peripheral surface 30B and the outer peripheral surface 30A.
  • the surface layer around the dissimilar member 37 is also preferably formed as a dense surface layer 32.
  • the dissimilar member 37 Since the peripheral portion forming the boundary with the dissimilar member 37 becomes the dense surface layer 32, the dissimilar member 37 is strongly fixed in the tissue while maintaining a certain degree of mobility inside the flexible tissue. Therefore, it is possible to stabilize the dissimilar member 37 and prevent it from being displaced internally.
  • the connective tissue 30 in which the stent is embedded can be used for a tubular implant, can follow a large deformation without damaging the whole tissue, and can contract and expand.
  • Examples of the dissimilar member 37 include linear, ring-shaped, and spiral-shaped structures in addition to the stent that can be expanded and deformed. Further, as the dissimilar member 37, a metal having biocompatibility, a polymer material, a bio-derived material, or the like may be used. Examples of the metal include stainless steel, titanium, cobalt chrome alloy, nickel titanium alloy, magnesium alloy and the like. These metals can be suitably used for, for example, stents. Examples of the polymer material include resins such as nylon resin, PEEK resin, silicone resin, acrylic resin, fluororesin, urethane resin, ethylene resin, styrene resin, and propylene tree species. These polymeric materials may be coated on the surface of the metal. Examples of biological materials include inorganic materials such as hydroxyapatite and organic materials mainly composed of cell components such as cartilage.
  • a connective tissue having a tubular structure When a connective tissue having a tubular structure is used for an artificial blood vessel or an artificial valve as described above, blood flows inside the connective tissue, but when a dense surface layer is formed on the inner peripheral surface, blood flows inside the connective tissue. However, the dense surface layer makes it difficult for connective tissue to permeate, making it difficult for blood clots to form in artificial blood vessels, artificial valves, and the like.
  • the connective tissue of the present invention can be produced by utilizing an encapsulation reaction using a connective tissue-forming substrate. Specifically, it can be produced subcutaneously in a living body by a production method including the following steps.
  • Step 1 A connective tissue-forming substrate having a tissue-forming surface and at least a part of the tissue-forming surface is made of a polymer material is placed in a living body.
  • Step 2 Forming a connective tissue in a living body
  • Step 3 Percutaneously and transluminally remove air from the space where the base material is placed
  • Step 3 Connective tissue is formed on the connective tissue formation
  • Step 4 Bond with connective tissue formed
  • Step 5 Step of removing the connective tissue-forming base material from the living body
  • Step 5 Step of peeling the connective tissue from the connective tissue-forming base material (connective tissue-forming base material)
  • the connective tissue-forming base material has a tissue-forming surface for forming a connective tissue on its surface.
  • the tissue-forming surface is preferably configured to partition a space (tissue-forming space) according to the shape of the connective tissue.
  • the connective tissue-forming substrate may have at least a pair of tissue-forming surfaces facing each other, and a connective tissue may be formed by an encapsulation reaction in the tissue-forming space between the pair of tissue-forming surfaces.
  • the connective tissue-forming substrate has strength that does not cause significant deformation in an environment where a biotissue material is present, such as in vivo, has chemical stability, and is resistant to loads such as sterilization. Moreover, it may be composed of a material having no or little eluate that irritates the living body.
  • the connective tissue forming base material is composed of a polymer material, a metal material, and the like.
  • the polymer material include materials used as members of indwelling medical devices such as nylon resin, PEEK resin, silicone resin, acrylic resin, fluororesin, urethane resin, ethylene resin, styrene resin, and propylene tree species.
  • Preferred specific examples of the metal material include materials used as members of indwelling medical devices such as stainless steel, titanium, cobalt chrome alloys, nickel titanium alloys, and magnesium alloys.
  • the structure-forming surface is at least partially a polymer material such as resin, preferably an in-vivo contact type such as nylon resin, PEEK resin, silicone resin, acrylic resin, fluororesin, urethane resin, ethylene resin, styrene resin, and propylene tree species. It is composed of materials used as members of medical equipment. In these resins, the biological tissue material is likely to be densely accumulated on the surface thereof, and a dense surface layer is easily formed. Therefore, when the bonded structure-forming base material has a pair of structure-forming surfaces facing each other, it is preferable that one structure-forming surface is made of a polymer material such as a resin, and nylon resin, PEEK resin, silicone resin, etc.
  • the other structure forming surface is made of a metal material.
  • the entire member having the structure-forming surface may be made of the polymer material or the metal material, but only the structure-forming surface is made of the polymer material or the metal material. It may be configured.
  • the structure-forming surface may be made of the polymer material by coating the surface of the metal member with the polymer material.
  • the shape of the connective tissue-forming base material may be designed according to the connective tissue to be produced.
  • the connective tissue-forming base material As shown in FIG. 6, the connective tissue-forming base material As the 10th, a cover member 11 made of a tubular body and a core material 12 inserted inside the cover member 11 may be used.
  • the inner peripheral surface of the cover member 11 constitutes one structure forming surface 11A
  • the outer peripheral surface of the core material 12 constitutes the other structure forming surface 12A.
  • the tissue-forming surfaces 11A and 12A form a tissue-forming space 13 between them.
  • the cover member 11 is provided with a hole 17 for communicating the tissue forming space 13 with the outside of the base material. A plurality of holes 17 are usually provided in the cover member 11.
  • lids 14 and 15 for closing both ends of the tissue forming space 13 are provided on both end faces of the cover member 11.
  • the lids 14 and 15 have an annular shape, and locking portions 14A and 15A are provided on the outer periphery thereof.
  • a plurality of locking portions 14A and 15A are provided on the lids 14 and 15.
  • Each locking portion 14A has a groove 14C into which the end portion of the cover member 11 is fitted.
  • a groove (not shown) is similarly provided in each locking portion 15A.
  • the end portions of the core material 12 are fitted into the annular interior, and the end portions of the cover member 11 are fitted into the grooves of the locking portions 14A and 15A. Are connected and fixed.
  • the hole 17 is not particularly limited, and may be, for example, a circle, an ellipse, or a slit.
  • the hole diameter of the circle or the ellipse may be set to 1 mm or more and 10 mm or less from the viewpoint that the connective tissue and the biological tissue material can be easily penetrated.
  • the hole 17 is preferably a slit as shown in FIG.
  • the slit may have a slit width of 1 mm or more, and for example, a slit width of 10 mm or less, which allows connective tissue and biological tissue materials to easily penetrate.
  • the slit length is usually preferably larger than twice the slit width, preferably smaller than five times, and more preferably smaller than three times.
  • the area ratio of the slit to the structure forming surface 11A of the cover member 11 is 2/3 or less.
  • the area ratio of the slits it becomes easy to improve the surface condition of the surface of the connective tissue formed on the tissue forming surface 11A.
  • the area ratio of the slit to the tissue-forming surface 11A of the cover member 11 is preferably 1/10 or more so that the connective tissue and the biological tissue material can enter the tissue-forming space 13 through the slit.
  • the area ratio of the holes to the structure forming surface 11A of the cover member 11 is preferably 1/10 or more, and 2/3 or less. It is preferable to do so.
  • the slits may be arranged so that their longitudinal directions are parallel to the central axis of the base material, but the slits are arranged so that their longitudinal directions are inclined with respect to the central axis of the base material. You may. Further, it is preferable that a plurality of slits are arranged along each of the circumferential direction and the length direction.
  • the outer peripheral surface of the core material 12 is preferably composed of a polymer material such as the above-mentioned resin, particularly nylon resin, PEEK resin, silicone resin, or acrylic resin. This facilitates the formation of a dense surface layer on the inner peripheral surface of the tubular connective tissue in the present invention.
  • the core material 12 may include, for example, a center material 12B and a cover tube 12C that covers the outer peripheral surface of the center material 12B, and the cover tube 12C may be made of the above-mentioned polymer material.
  • the cover member 11 is made of a metal material, and the structure forming surface 11A (that is, the inner peripheral surface) thereof is made of a metal material.
  • the metal material is less likely to accumulate the biological tissue material on the surface thereof, whereby the holes 17 of the cover member 11 are prevented from being closed by the biological tissue material at an early stage. Therefore, the biological tissue material is accumulated in the tissue formation space 13 for a long period of time.
  • the cover member 11 may be formed of the above-mentioned polymer material. By forming with a polymer material, a dense surface layer can be formed on both the outer peripheral surface and the inner peripheral surface of the tubular connective tissue as shown in FIG. 2 above.
  • the connective tissue-forming substrate is not limited to a linear shape, can have various shapes, and may have a curved shape, for example, as shown in FIGS. 7 and 8. It may be a connective tissue-forming base material 40 having two or more cyclically wound connective tissue-forming base materials.
  • the connective tissue forming base material 40 includes a cover member 41 as shown in FIG. 7 or FIG.
  • the cover member 41 has two or more annular rings that are spirally wound.
  • the cover member 41 is composed of, for example, an upper member 41A and a lower member 41B which are vertically divided, and when they are butted against each other, a tubular structure is formed.
  • the upper member 41A and the lower member 41B are provided with connecting members 43A and 43B, respectively, and are fixed to each other by connecting the connecting members 43A and 43B, respectively.
  • the cover member 40 is provided with a plurality of holes 47, and a plurality of holes 47 are arranged along the circumferential direction and the length direction.
  • the hole 47 may be a rectangle as shown in FIG. 7, a circular hole as shown in FIG. 8, or a hole having another shape.
  • a core material 42 is arranged inside the cover member 40 (see FIG. 9).
  • the core material 42 has two or more annular rings that are spirally wound according to the shape of the cover member 41.
  • Both ends 42E and 42E of the core material 41 have a larger width and height than the other portions, and have, for example, a spherical shape.
  • both ends 42E and 42E can be fitted into the recesses, and the core material 42 can be fixed to the cover member 41.
  • both ends of the core material 42 are not limited to such a configuration.
  • a tissue forming space is formed between the inner peripheral surface of the cover member 41 and the outer peripheral surface of the core material 42.
  • the materials of the inner peripheral surface of the cover member 41 and the outer peripheral surface of the core material 42 are as described above.
  • the connective tissue forming base material 40 shown in FIGS. 7 to 9 is used, the connective tissue is formed in the tissue formation space as described above.
  • the connective tissue forming base material 40 is suitable for forming a connective tissue for artificial blood vessels, for example, because the connective tissue can be formed into a long tubular structure by having two or more rings.
  • FIG. 10 shows a specific example of the connective tissue forming base material 50 provided with two or more core materials.
  • the connective tissue forming base material 50 includes a cover member 51 made of a tubular body and a plurality of core members 52 inserted inside the cover member 51, and the plurality of core members 52 are attached to the lids 54 and 55. It is good.
  • the lid bodies 54 and 55 are provided with a plurality of locking portions 54A and 55A as described above. For example, the end portion of the cover member 51 is fitted into the groove of the locking portions 54A and 55A to fit the cover member.
  • the 51 and the core material 52 are connected and fixed.
  • each core material 52 has a rod shape, and the thickness thereof is, for example, 0.2 to 3 mm, preferably 0.5 to 2.5 mm. Further, in the internal space of the cover member 51, the maximum cross-sectional area occupied by the core material 52 is, for example, about 20 to 60%. The maximum cross-sectional area is the cross-sectional area of the portion having the maximum area in the cross section perpendicular to the axis of the connective tissue forming base material 40.
  • the cover member is provided with a plurality of circular holes 57, but the configuration of the holes 57 is not limited, and as described above, any hole may be used, or a slit or the like may be used. Further, in FIG. 10, the circular holes 57 have a staggered arrangement, but the arrangement is not limited and may be any arrangement.
  • the dissimilar members when the dissimilar members are embedded inside the connective tissue, the dissimilar members may be arranged in the tissue formation space.
  • dissimilar members 37 may be arranged in the structure forming space 13 between the core material 12 and the cover member 11. ..
  • the dissimilar member 37 does not come into close contact with the core member 12 and the cover member 11.
  • the biological tissue enters between the dissimilar member 37 and the core material 12 or the cover member 11, and as shown in FIG. 5, the connective tissue 30 has an inner peripheral surface 30B.
  • the dense surface layer 32 is likely to be formed over the entire outer peripheral surface 30A.
  • the dissimilar member 37 forms a part of the connective tissue forming base material, and its surface may be a structure forming surface.
  • the connective tissue-forming base material does not need to include a cover member and a core material, and for example, the cover member may be omitted.
  • FIG. 12 shows an example of the connective tissue forming base material 60 in which the cover member is omitted. Even if the cover member is omitted, the surface of the core material 62 becomes a tissue forming surface, and a connective tissue is formed on the surface of the core material 62 by an encapsulation reaction. Further, even in the connective tissue forming base material 60 in which the cover member is omitted, as shown in FIG. 12, dissimilar members 37 may be arranged on the outer peripheral surface of the core material 62, and the dissimilar members 37 may be arranged.
  • FIGS. 11 and 12 show an example in which the dissimilar member 37 is a stent.
  • the stent may be attached to the outer peripheral surface of the core material 62, for example, by expanding the diameter.
  • the dissimilar member 37 is not limited to the stent, and other materials may be used.
  • the connective tissue-forming base material may be a base material having two plate-shaped members facing each other.
  • the surfaces of the two plate-shaped members facing each other may be used as the tissue-forming surface, and the biological tissue material may be accumulated in the tissue-forming space between the pair of tissue-forming surfaces to form a connective tissue.
  • any of the pair of tissue-forming surfaces is made of a polymer material such as resin, particularly nylon resin, PEEK resin, silicone resin, or acrylic resin.
  • resin particularly nylon resin, PEEK resin, silicone resin, or acrylic resin.
  • a hole such as a slit may be formed in either of the two plate-shaped members.
  • the structure-forming surface of one plate-shaped member is made of the above-mentioned polymer material and holes are formed in the other plate-shaped member, and the plate-shaped member having holes formed the structure-forming surface is made of a metal material. It is more preferable to configure by.
  • the connective tissue forming base material includes a core material and a cover member into which the core material is inserted, and the outer peripheral surface of the core material and the cover member.
  • the inner peripheral surface may be used as a tissue forming surface, and the tissue forming space may be partitioned between the pair of tissue forming surfaces.
  • the tissue formation space may be partitioned so as to have a shape corresponding to the artificial valve or the artificial valve precursor that can be made into an artificial valve by appropriate processing.
  • the tissue formation space may be partitioned according to the shape of the artificial valve or the artificial valve precursor including the tube portion and a plurality of leaflets bulging radially inward from the tube portion.
  • the outer peripheral surface of the core material is made of a polymer material such as resin, particularly nylon resin, PEEK resin, silicone resin, or acrylic resin. This facilitates the formation of a dense surface layer on the inner peripheral surface of the artificial valve.
  • the cover member is preferably provided with a hole such as a slit, and the inner peripheral surface thereof is preferably made of a metal material.
  • Step 1 the connective tissue-forming substrate is placed in vivo.
  • living organisms include humans and other non-human mammals such as dogs, cows, pigs, goats, rabbits, and sheep, birds, fish, and other animals. Of these, mammals are preferred.
  • the in vivo where the connective tissue-forming substrate is placed is, for example, subcutaneously or intraperitoneally.
  • the connective tissue-forming base material As a method of arranging the connective tissue-forming base material in the living body, a minimum incision is performed, an insertion port is formed on the surface of the living body, and the connective tissue-forming base material is embedded in the animal from the insertion port. You should do it. After implantation, the wound is sutured.
  • the embedding site of the connective tissue-forming base material for example, intraperitoneal having a volume for receiving the connective tissue-forming base material, or subcutaneously such as a limb, shoulder or back, and abdomen is preferable.
  • the dermis layer in the case of subcutaneous, it is preferable to implant it between the lower side of the dermis layer and the upper side of the fat layer or the muscular layer, and more specifically, the lower side of the dermis layer in the living body. Place in a subcutaneous pocket prepared with sufficient hemostasis between the fat layer or the upper side of the muscular layer.
  • the subcutaneous pocket has a larger space than the connective tissue-forming substrate to be placed.
  • an insertion port is formed on the surface of the living body, the inside of the living body is peeled off from this insertion port, and a pocket is created under the skin.
  • the connective tissue-forming base material is arranged in the living body.
  • the insertion slot is closed by suturing.
  • the connective tissue-forming base material can be more easily placed in the living body while suppressing subcutaneous bleeding.
  • an insertion port 18 is formed on the surface of the living body, and the tip portion of the guide rod 19 having a convex curved tip is inserted into the living body from the insertion port 18 (FIG. 13).
  • the insertion tube 20 is inserted into the living body from the insertion port 18 by sliding the outside of the guide rod 19 (states (b) and (c) in FIG. 13). After inserting the insertion tube 20, the guide rod 19 may be pulled out.
  • the connective tissue forming base material 10 is inserted into the insertion tube 20 (state (d) in FIG.
  • the connective tissue-forming base material 10 is arranged in the living body.
  • the insertion port 18 is closed by suturing or the like (state (f) in FIG. 13).
  • the subcutaneous pocket secures a larger space than the base material. Since the guide rod has an outer diameter larger than the outer diameter of the base material, a wide peeling surface is formed, the biological reaction is more stimulated, and joint work with repair healing of the peeling surface occurs, and the base material The formation of tissue inside is promoted, and a dense collagen layer is formed especially on the substrate contact surface.
  • Step 2 After the step 1 is completed, next, air is evacuated from the space 22 in which the connective tissue forming base material 10 in the living body is arranged.
  • the method of bleeding air is not particularly limited as long as it is bleeded transdermally and transluminally from the outside of the living body.
  • the tip of the syringe may be inserted into the space 22 from outside the living body to bleed the air.
  • the degree of vacuum is preferably in the range of 0.1 to 0.5 atm. Even if it is simply pressed from above the skin, the base material and the subcutaneous tissue adhere to each other and the skin cells approach the surface of the base material. However, by further vacuuming the inside of the base material, the skin cells become the base material. It is attracted to the inside and the formation of the tissue inside the base material is promoted, and a dense collagen layer is formed particularly on the contact surface of the base material.
  • Step 3 After the air is evacuated, the connective tissue-forming base material 10 is left in the living body for a predetermined period of time.
  • the period of standing varies depending on the type of the living body, but it may be left for a long period of time as long as it is 20 days or more when the tissue is formed, and there is almost no change in the shape of the formed tissue. For example, 20 to 90 days, preferably 30 to 60 days.
  • a connective tissue is formed in the tissue formation space of the connective tissue forming base material 10.
  • the tissue in the living body is brought into close contact with the outer peripheral surface of the connective tissue forming base material 10. Therefore, the connective tissue and the biological tissue material are easily accumulated in the tissue formation space, and at least a part of the tissue formation surface is composed of the polymer material, and the tissue is composed of the polymer material. Connective tissue and biotissue material are densely accumulated on the tissue-forming surface. Therefore, in the present production method, the above-mentioned dense surface layer is formed on the structure-forming surface made of the polymer material.
  • the connective tissue formed on the tissue-forming surface composed of the polymer material tends to have flat collagen smoothly arranged on the outermost surface thereof. Further, in the portion other than the outermost surface of the dense surface layer, and further inside, the connective tissue is appropriately accumulated, and it becomes easy to arrange the fibrous collagen in a mesh pattern so as to intersect, and the above-mentioned laminated structure is formed. It becomes easy to form a stacked structure.
  • Step 4 the connective tissue-forming base material on which the connective tissue was formed in step 3 is taken out from the living body. Specifically, it is preferable to form an outlet on the surface of the living body where the connective tissue-forming base material embedded in the living body is located, and to take out the connective tissue-forming base material through the outlet.
  • the connective tissue forming base material has an adhered portion composed of a screw portion (for example, a male screw) (not shown)
  • the adherent portion is screwed to a screw portion (for example, a female screw) provided at the tip of the base material take-out tool. It is preferable to attach the connective tissue-forming base material to the tip of the base material take-out tool and take out the connective tissue-forming base material from the living body.
  • the connective tissue-forming base material may be taken out from the living body by sandwiching and fixing the end portion of the connective tissue-forming base material with forceps or the like. (Step 5) Then, if necessary, the connective tissue-forming base material is destroyed, and then the connective tissue formed in the tissue-forming space is peeled off from the tissue-forming surface and taken out to obtain a connective tissue.
  • the connective tissue forming base material includes the cover member 11 provided with the holes 17 formed by slits and the core material 12, as shown in FIG. 6, the connective tissue is as shown in FIG. It becomes a tubular connective tissue 30. Further, a plurality of ridges 31 are provided on the outer peripheral surface 30A of the connective tissue 30 corresponding to the slits, and a dense surface layer is formed on the inner peripheral surface 30B of the connective tissue 30.
  • the obtained connective tissue is xenografted, it is preferable to perform an immune source removal treatment such as decellularization treatment, dehydration treatment, and fixation treatment in order to prevent rejection after transplantation.
  • an immune source removal treatment such as decellularization treatment, dehydration treatment, and fixation treatment.
  • connective tissue in vivo
  • connective tissue is not limited to the method for producing in vivo.
  • connective tissue may be produced in the same or similar environment as in vivo.
  • the connective tissue-forming base material may be appropriately arranged in an environment where the biological tissue material exists, and the connective tissue may be formed in the tissue-forming space in the same manner as described above.
  • a part of the structure forming surface that partitions the structure forming space is made of a polymer material.
  • a living tissue or the like is brought into close contact with the outer peripheral surface of the connective tissue forming base material so that a dense surface layer can be easily formed on the tissue forming surface made of a polymer material.
  • the connective tissue was immersed in 4% paraformaldehyde / phosphate buffer for 24 hours. 2) The connective tissue was taken out and immersed in 70% ethanol. 3) The connective tissue was immersed in 99.5% ethanol for 30 minutes and taken out 5 times.
  • the connective tissue was immersed in 100% ethanol for 30 minutes.
  • the operation of immersing the connective tissue in xylene for 30 minutes and taking it out was performed twice.
  • the operation of immersing the connective tissue in paraffin dissolved at 60 ° C. for 30 minutes and taking it out was performed four times.
  • a block was prepared by putting a block in a mold for embedding, pouring paraffin into it, and solidifying it.
  • the paraffin-embedded block was sliced to a thickness of 3 ⁇ m to prepare a section. Connective tissue was sliced along the thickness direction.
  • the sections were deparaffinized.
  • the deparaffinization treatment was carried out by immersing the sections in xylene twice, in 100% ethanol twice, in 70% ethanol once, and in distilled water once for 10 minutes each.
  • Masson's trichrome staining treatment was performed according to the following procedures 1) to 21). 1) The sections were immersed in a mordant solution (manufactured by Muto Chemical Co., Ltd., product number "40061") for 30 minutes.
  • the sections were removed from the mixed solution and washed with running water. 5) The sections were washed by shaking them up and down about 5 times in 1% alcohol hydrochloride for about several seconds.
  • the 1% hydrochloric acid alcohol is obtained by diluting hydrochloric acid with 70% ethanol so as to have a concentration of 1%.
  • Image analysis processing was performed on each image according to the following procedures 1) to 8), and the microstructure density ratio was calculated. 1) The blue part (collagen part) was extracted by the H filter in the HSV space.
  • the brightness value was calculated by grayscale conversion (256 gradations).
  • a histogram based on the brightness value in Example 1 described later is shown as a brightness histogram.
  • Histogram equalization processing was performed by the histogram equalization function, and the luminance values were distributed while being emphasized to obtain a normalized intensity histogram (see FIG. 22). Further, the brightness value was inverted, and the portion having the highest brightness (that is, the portion having the lightest dyeing) was set to 0, and the portion having the lowest brightness (that is, the portion having the darkest dyeing) was set to 1.
  • Luminance data on an arbitrary straight line L (see FIG. 16) along the thickness direction of the connective tissue was acquired.
  • Filtered by a 30-point moving average zero phase filter was acquired.
  • the overall average value of the acquired luminance data was obtained, and the overall average value was used as the threshold value. Then, it is determined whether or not the luminance data on the straight line L (that is, the luminance data on the end of the straight line L) on one surface of the combined structure is equal to or greater than the threshold value, and if the data is equal to or greater than the threshold value, the end of the straight line L is obtained. Moving from the portion to the other end side, the data portion above the threshold value was designated as the “threshold value or higher portion”, and the “threshold value or higher portion” was designated as the “surface layer”.
  • the data portion where the data is below the threshold value and below the threshold value is defined as the "sub-threshold value portion", and the "sub-threshold value portion” is the "part other than the surface layer”. And said.
  • the data on the straight line L that is, the luminance data on the end of the straight line L
  • the data portion below the threshold value was designated as the “subthreshold portion”
  • the “subthreshold portion” was designated as the "surface layer”.
  • the data portion of the “threshold value or higher” is defined as the “threshold value or higher portion”
  • the “threshold value or higher portion” is the “part other than the surface layer”.
  • tissue density ratio was calculated in the same manner for the surface layer on one surface of the connective tissue, and the average value of the tissue density ratios obtained from the 30 images was calculated on one surface. It is defined as the "tissue density ratio" of the surface layer in.
  • the connective tissue-forming base material 10 provided with the tubular cover member 11 and the core material 12 shown in FIG. 6 was prepared.
  • the core material 12 includes a center material 12B made of a stainless steel pipe having an acrylic rod embedded therein, and a cover tube 12C made of a silicone resin.
  • the core material 12 had an outer diameter of 16 mm.
  • the cover member 11 had an outer diameter of 19 mm and an inner diameter of 18 mm, and had four 1.5 ⁇ 15 mm slits formed in the axial direction and 11 in the circumferential direction, and was made of stainless steel. Therefore, the structure-forming surface made of the core material 12 was made of silicone resin, and the structure-forming surface made of the cover member 11 was made of stainless steel.
  • a connective tissue forming base material 10 on which a connective tissue is formed is formed from the living body.
  • the connective tissue was extracted from the connective tissue-forming base material 10 to obtain a tubular connective tissue 30 as shown in FIG.
  • the inner peripheral surface of the connective tissue 30 before being removed from the connective tissue-forming base material 10 contacts or faces the structure-forming surface (silicone resin) of the core material 12 of the connective tissue-forming base material 10.
  • the outer peripheral surface of the connective tissue 30 before being removed from the connective tissue-forming base material 10 contacts or faces the structure-forming surface (stainless steel) of the cover member 11 of the connective tissue-forming base material 10.
  • FIG. 15 shows a photograph of the obtained connective tissue 30 cut and the cut surface observed with an electron microscope.
  • the upper side is the inner peripheral surface side.
  • a section of the obtained connective tissue 30 prepared according to the above method, and photographs of the cut surface of the section stained with Masson's trichrome observed under a microscope are shown in FIGS. 16 to 18.
  • FIG. 17 is an enlarged view of the portion near the inner peripheral surface of the connective tissue 30.
  • FIG. 18 is an enlarged view of the central portion of the connective tissue 30 in the thickness direction.
  • FIGS. 16 and 17 it can be understood that on the inner peripheral surface side of the tubular connective tissue, there are few voids and the connective tissue is dense, forming a dense surface layer.
  • the portion other than the dense surface layer (for example, the central portion in the thickness direction) has many voids, and the density inside the connective tissue is higher than that of the surface layer. It can be understood that it will be lower.
  • the density of the surface layer on one surface was measured according to the method described in the specification. As a result, as shown in Table 1 below, the microstructure density was 1.56. The microstructure density of the surface layer on the other surface (outer peripheral surface) was 1.48.
  • FIG. 19 shows a photograph of the inner peripheral surface of the connective tissue observed with an electron microscope. Further, the inner peripheral surface of the connective tissue is peeled off in layers, and a photograph of the surface state of the dense surface layer other than the inner peripheral surface observed with an electron microscope is shown in FIG. 20, and the state other than the dense surface layer is further peeled off with an electron microscope. The photograph observed in FIG. 21 is shown in FIG.
  • the surface of the dense surface layer is covered with collagen in a flat and smooth manner, and the collagen is not oriented in one direction but is randomly oriented.
  • the fibrous collagen is bundled in a bundle and oriented in substantially one direction in the portion other than the surface of the dense surface layer.
  • the fibrous collagen that is bundled and oriented in one direction is provided in a multi-layered manner.
  • the granular dots are arranged in a row in the horizontal direction in the photograph of FIG. 15, the layer formed from the bundle of fibrous collagen oriented in one direction is different from the fibrous collagen.
  • the layers are orthogonal to the fibrous collagen, and that the fibrous collagen is arranged in a mesh pattern. This reticulated arrangement continued to the inside and was also seen inside the connective tissue with low density as shown in FIG.
  • the density of collagen is high in the dense surface layer and the collagen fibers become thicker, while as shown in FIG. 21, the bundle of fibrous collagen is formed in the portion other than the dense surface layer. It was thinner than the bundle of collagen in the dense surface layer.
  • Example 1 The connective tissue obtained in Example 1 was immersed in whole blood of a dog, taken out after 1, 3 and 5 minutes, washed with physiological saline, and then photographed and observed. As shown in FIG. 23. As such, there was almost no blood coagulation and no thrombus was formed.
  • the dense surface layer of the connective tissue obtained in Example 1 was peeled off, the portion other than the surface of the dense surface layer was exposed, immersed in whole dog blood, and taken out after 1, 3 and 5 minutes. After washing with physiological saline, a photograph was taken and observed. As shown in FIG. 23, thrombus adhered to a part of the surface in 1 minute, and thrombus formation occurred on the entire surface in 5 minutes. As shown in FIG. 24, the dense surface layer could be easily peeled off in layers with tweezers and had a wall dissociation structure.
  • the dense surface layer was peeled off and the weight (B (g)) was measured. This was vacuum dried at 25 ° C. for 12 hours and the weight (A (g)) was measured.
  • the water content ((BA) / A ⁇ 100) of the dense surface layer was obtained from the weight change, it was 56% on average.
  • the water content was similarly determined in the portion other than the dense surface layer, the average was 73%. It was shown that the dense surface layer is less likely to absorb water than the other parts.
  • a connective tissue forming base material 50 including a tubular cover member 51 and four core members 52 shown in FIG. 10 was prepared.
  • the core material 52 was a stainless steel round bar coated with a silicone resin tube, the inner diameter of the silicone resin tube was 1 mm, the outer diameter was 2 mm, and the outer diameter of the stainless steel round bar was 1 mm.
  • the cover member 51 has an outer diameter of 10 mm and an inner diameter of 8 mm, and is evenly arranged in a staggered pattern so that a 1.5 mm round hole has an opening ratio of about 20% (the area ratio of the slit to the tissue forming surface of the cover member). It was formed and made of stainless steel.
  • the four core members 52 were arranged so as to be substantially even inside the cover member 51. Therefore, the structure-forming surface made of the core material was made of silicone resin, and the structure-forming surface made of the cover member was made of stainless steel.
  • the density of the surface layer on the periphery (inner peripheral surface) and the outer peripheral surface of the hollow portion inside the connective tissue 30 was measured. As a result, the density around the inner cavity was 1.4, and the density on the outer peripheral surface was 1.2.
  • a connective tissue forming base material 60 having a stent mounted as a dissimilar member 37 on the outer periphery of the columnar core material 62 was prepared.
  • the core material 62 was a round bar made of nylon resin and had an outer diameter of 15 mm.
  • the stent was made of a balloon-expandable cobalt chrome alloy expanded to an inner diameter of 16 mm. Therefore, the structure-forming surface made of the core material 62 was a nylon resin, and the structure-forming surface made of a dissimilar member 37 was a cobalt chrome alloy.
  • the density of the surface layer on one surface (inner peripheral surface) of the connective tissue 30 and the surface layer around the inner stent was measured.
  • the tissue density of the inner peripheral surface of the connective tissue 30 was 1.2
  • the tissue density of the surface layer around the stent was 1.1.
  • a connective tissue-forming base material 10 having a tubular cover member 11 and a core material 12 as shown in FIG. 11 is prepared, and a stent as a dissimilar member 37 is placed in a gap between the cover member 11 and the core material 12.
  • the core material 12 includes a center material 12B made of PEEK resin and a cover tube 12C made of silicone resin.
  • the core material 12 had an outer diameter of 20 mm.
  • the cover member 11 had an outer diameter of 25 mm and an inner diameter of 23 mm, had a slit of 2 mm ⁇ 20 mm formed therein, and was made of stainless steel.
  • the stent was made of nickel titanium alloy and had an inner diameter of 22 mm. Therefore, the tissue-forming surface composed of the core material was PEEK resin, the tissue-forming surface composed of the cover member was stainless steel, and the tissue-forming surface composed of the stent was nickel titanium.
  • the density of the surface layer on one surface (inner peripheral surface) of the connective tissue 30, the surface layer on the other surface (outer peripheral surface), and the surface layer around the inner stent is determined. It was measured. As a result, the tissue density of the inner peripheral surface of the connective tissue 30 is 1.3, the tissue density of the outer peripheral surface of the connective tissue 30 is 1.2, and the tissue density of the surface layer around the stent is 1.1. It became.
  • Comparative Example 1 It was carried out in the same manner as in Example 1 except that the work of extracting air from the living body with a syringe was not performed.
  • Comparative Example 1 As shown in FIG. 25, a blood coagulation mass (upper part on the left side) was formed, connective tissue was not sufficiently formed, and a dense surface layer was not formed. As shown in, liquid agglomerates were formed red in a part of the white collagen surface layer. In addition, the strength was insufficient and the surface had cracks (central portion in FIG. 26).
  • the surface on the inner peripheral surface side of Comparative Example 1 was immersed in whole dog blood, taken out after 1, 3 and 5 minutes, washed with physiological saline, and then photographed and observed. As shown, a thrombus was formed on the entire surface in 1 minute.
  • air extraction is advantageous for promoting contact between the tissue-forming surface of the connective tissue-forming substrate 10 in the living body and living cells or improving the contactability.
  • the bleeding of air is advantageous for accelerating the encapsulation reaction with respect to the connective tissue-forming substrate 10 in the living body, and is advantageous for, for example, accelerating the initiation of the encapsulation reaction.
  • the formation of the connective tissue 30 by the encapsulation reaction is started from the tissue forming surface of the connective tissue forming base material 10 in the living body.
  • the formation rate (growth rate) of the connective tissue 30 in the initial period of the period (step 3) in which the formation or growth of the connective tissue 30 proceeds is determined by the tissue formation base material 10 in the connective tissue 30. It is a factor that affects the density (and microstructure) of the surface layer including the surface that contacts or faces the tissue-forming surface.
  • the polymer material (or combination of the polymer material and the metal material) exemplified in the present disclosure has a connective tissue formation rate (growth rate) in the initial period of the period in which the formation or growth of the connective tissue proceeds (step 3). ) Is advantageous for intentionally or controlally reducing.
  • Adopting the polymer material (or combination of the polymer material and the metal material) exemplified in the present disclosure as the structure-forming surface of the connective tissue-forming base material 10 was adjusted relatively high to the connective tissue 30. It is advantageous to have a dense surface layer having a dense surface. As the formation of connective tissue progresses, the formation rate of connective tissue may be less affected by the material of the tissue forming surface.
  • the material selection of one or more tissue-forming surfaces contributes to making the dense surface layer relatively dense in the connective tissue while making the parts other than the dense surface layer relatively sparse, and also with the dense surface layer. It also contributes to making the microscopic structure different from the parts other than the dense surface layer.
  • the difference in density between the dense surface layer and the non-dense surface layer, and the continuous change in microscopic structure between the dense surface layer and the non-dense surface layer can be observed operatively as the wall dissociation structure described above, eg microscopically as a clear or blurred layer boundary.
  • the connective tissue 30 other than the surface layer, which is sparser than the dense surface layer may be referred to as a non-surface layer portion, a main body portion, or a base portion of the connective tissue.
  • the collagen that forms the dense surface layer of the connective tissue 30 may be referred to as the first fibrous collagen
  • the collagen that forms the non-surface layer portion of the connective tissue 30 may be referred to as the second fibrous collagen.
  • the structure and density of the first fibrous collagen in the dense surface layer of the connective tissue 30 may be referred to as the first microstructure and the first density, respectively.
  • the second fibrous collagen structure and density of the non-surface layer portion of the connective tissue 30 may be referred to as the second microstructure and the second density, respectively.
  • the structure and density of the first fibrous collagen give the dense surface layer a difficulty in permeating the first blood, and the structure and density of the second fibrous collagen give the non-surface layer portion a second. It gives difficulty in blood penetration, and the first difficulty in blood penetration of the dense surface layer is higher than the difficulty of second blood penetration in the non-surface layer portion.
  • the wall dissociation structure of the present disclosure is sometimes referred to as a biologically-derived peelable boundary formed by the first fibrous collagen of the surface layer and the fibrous collagen of the non-surface layer portion 2.
  • the connective tissue 30 of the present disclosure may be referred to as an implantable product comprising bio-derived collagen.
  • the connective tissue 30 of the present disclosure may be the artificial organ for regenerative medicine itself or a part thereof.

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Abstract

コラーゲンを含む生体由来組織からなる本開示の一態様に従う結合組織体(30)は、前記結合組織体(30)の表面に、その内側よりも緻密に形成される緻密表面層(32)を備える。

Description

結合組織体及びその製造方法
 本発明は、生体由来組織からなる結合組織体、及びその製造方法に関する。
 生体が備える自己防衛機能として、生体の皮下に異物が入ると、皮下に存在する繊維芽細胞が周囲に集積して異物を包み込むようにコラーゲンが産出される。この現象は、一般的にカプセル化反応と呼ばれている。近年、失われた組織や器官を人工的に蘇らせる再生医療が活発に研究されており、カプセル化反応を再生医療に利用することが検討されている。
 例えば、特許文献1には、互いに対向する二面の組織形成面を備える結合組織体形成基材を生体内などに配置させることで、その二面の間の組織形成空間に、カプセル化反応により産出されたコラーゲンなどによって、結合組織体が形成されることが開示されている。
 より詳細には、結合組織体形成基材が、筒状基材と、筒状基材の内部に挿入された芯材とを備え、その間の組織形成空間に、管状の結合組織体が形成することが示される。管状の結合組織体は、人工血管などに使用されることが想定されている。また、互いに対向する2枚の板状基材を備える結合組織形成基材が用いられることで、膜状の結合組織体が形成されることも示される。さらには、心臓弁などへの使用が想定されて、複数の弁葉を有する人工弁が形成されることも示されている。
国際公開第2016/076416号
Journal of Biomedical Materials Research Part B 2011:99B:420-430.
 しかしながら、特許文献1に開示される方法により形成された結合組織体は、表面における強度が不十分であり、例えば、非特許文献1において、人工血管、人工弁などの生体内の組織に使用すると、結合組織体の内部に血液が染み込むことで血栓が形成されやすくなるなどの問題が報告されている。そのため表面に抗血栓性物質をコーティングするなどの処理が必要となる。
 また、形成された結合組織体を体液や消化液、排出液など体内の液体成分と接する人工食道、人工リンパ管、人工横隔膜、人工尿管、人工尿道などの生体内の組織に使用すると、水分が組織内に染み込むことで組織が膨化し、脆弱になるなどの問題がある。さらに、厚い結合組織体は、全体の強度が不十分であり、人工腱や人工靭帯など運動器官などの組織として機能させることはできなかった。組織体の内部にステントなどの人工構造体を内包させる場合に組織の中でズレるなど組織形状が不安定になるなどの問題がある。
 本発明は、以上の問題点に鑑みてなされものであり、カプセル化反応により得られる結合組織体の表面における強度を高めて、例えば、人工血管、人工弁、さらに人工食道、人工リンパ管、人工横隔膜、人工尿管、人工尿道、あるいは結合組織体の全体の強度を高めて人工腱や人工靭帯などの生体内の組織に使用しても、結合組織体の内部に血液や体液が染み込み血栓が形成されることや膨化することを防止することを課題とする。さらに、組織体に内包させる人工構造体を安定化させて、例えば、人工気管、ステントグラフト、カバードステントなどに使用しても、内包させる人工構造体が組織体の内部でズレることを防止することも課題とする。
 本発明者は、鋭意検討の結果、結合組織体の表面に、組織が緻密となった緻密表面層を形成することで上記課題を解決できることを見出し、以下の本発明を完成させた。
 [1]コラーゲンを含む生体由来組織からなる結合組織体であって、
 結合組織体のいずれかの表面を構成する表面層が、該表面層以外の部分よりも、組織が緻密に形成される緻密表面層を備える結合組織体。
 [2]前記コラーゲンが繊維状コラーゲンを含む上記[1]に記載の結合組織体。
 [3]前記繊維状コラーゲンが前記緻密表面層の表面において扁平状で平滑である上記[2]に記載の結合組織体。
 [4]前記繊維状コラーゲンが、前記緻密表面層の表面以外の部分において交差するよう網目状に配置される上記[2]又は[3]に記載の結合組織体。
 [5]厚さ方向に沿って算出した、前記表面層以外の部分の組織緻密度に対する、前記表面層の組織緻密度の比が1.1以上である上記[1]~[4]のいずれか1項に記載の結合組織体。
 [6]内部に異種部材が埋められる上記[1]~[5]のいずれか1項に記載の結合組織体。
 [7]前記異種部材の周囲に前記緻密表面層が形成される上記[6]に記載の結合組織体。
 [8]前記結合組織体がカプセル化反応により形成される上記[1]~[7]のいずれか1項に記載の結合組織体。
 [9]コラーゲンを含む生体由来組織からなる結合組織体の製造方法であって、
 組織形成面を有し、かつ前記組織形成面の少なくとも一部が高分子材料から構成される結合組織体形成基材を、生体内に配置する工程と、
 生体内の前記結合組織体形成基材が配置された空間から、生体外より経皮的かつ経管的に空気を抜く工程と、
 前記組織形成面上に、結合組織体を形成させる工程と、
 前記結合組織体が形成された結合組織体形成基材を、生体内から取り出す工程と、
 前記結合組織体を前記結合組織体形成基材から剥離させる工程と、
 を備える結合組織体の製造方法。
 [10]生体組織材料が存在する環境と結合組織体を形成するための空間とを区切る組織形成面を備えた組織体形成基材であって、前記空間と前記環境とを連通させて前記空間に結合組織を侵入させる孔を備えた前記組織体形成基材を人体以外の生体内の前記環境に配置し、前記組織体形成基材が配置された空間から前記生体外より空気を抜いて形成される結合組織体であって、
 前記組織形成面は、高分子材料または金属材料から構成され、
 前記結合組織体は、コラーゲンを含む生体由来組織からなり、生体内の組織に使用され、
 前記結合組織体のなかで前記組織形成面と接する表面を構成する表面層の全体が、該表面層以外の部分よりも、組織が緻密に形成される緻密表面層であり、
 前記緻密表面層について、厚さ方向に沿って算出した、前記表面層以外の部分の組織緻密度に対する、前記表面層の組織緻密度の比が1.1以上である、結合組織体。
 [11]コラーゲンを含む生体由来組織からなり、生体内の組織に使用される結合組織体の製造方法であって、
 組織形成面を有し、かつ前記組織形成面の少なくとも一部が高分子材料から構成される結合組織体形成基材を、人体以外の生体内に配置する工程と、
 前記生体内の前記結合組織体形成基材が配置された空間から、前記生体外より経皮的かつ経管的に空気を抜く工程と、
 前記組織形成面上に、結合組織体を形成させる工程と、
 前記結合組織体が形成された結合組織体形成基材を、前記生体内から取り出す工程と、
 前記結合組織体を前記結合組織体形成基材から剥離させる工程と、を備える結合組織体の製造方法。
 [12]前記結合組織体がカプセル化反応により形成される[11]に記載の結合組織体の製造方法。
 [13]再生医療用の結合組織体であって、
 生体由来の第1の繊維状コラーゲンを備える表面層と、
 生体由来の第2の繊維状コラーゲンを備える非表面層部分とを備え、
 前記表面層の前記第1の繊維状コラーゲンは、第1の微視的構造と第1の緻密度とを有しており、
 前記非表面層部分の前記第2の繊維状コラーゲンは、前記第1の微視的構造とは異なる第2の微視的構造と、前記第1の緻密度よりも小さい第2の緻密度とを有しており、
 前記表面層と前記非表面層部分とは、前記第1の繊維状コラーゲンの前記第1の緻密度と前記第2の繊維状コラーゲンの前記第2の緻密度との違い、及び、前記第1の繊維状コラーゲンの前記第1の微視的構造と前記第2の繊維状コラーゲンの前記第2の微視的構造との違いに由来する壁乖離構造を形成する、結合組織体。
 [14]前記表面層と前記非表面層部分とは、前記第1の緻密度と前記第2の緻密度との違い、及び、前記第1の微視的構造と前記第2の微視的構造との違いのみによる層境界を形成する、[13]に記載の結合組織体。
 [15]前記第1の微視的構造及び前記第1の緻密度は、前記表面層に、第1の血液染み込みにくさを与え、
 前記第2の微視的構造及び前記第2の緻密度は、前記非表面層部分に、第2の血液染み込みにくさを与え、
 前記表面層の前記第1の血液染み込みにくさは、前記非表面層部分の前記第2の血液染み込みにくさよりも高い、[13]に記載の結合組織体。
 本発明によれば、強度を向上させて、例えば、人工血管、人工弁などの生体内の組織に使用しても、内部に血液が染み込み血栓が形成されることを防止できる結合組織体を提供する。
 また、結合組織体に人工構造体などの異種部材が内包される場合には、異種部材を安定化させて、内部でズレることを防止できる。
結合組織体の一実施形態を示す模式的な断面図を示す。 結合組織体の一実施形態を示す模式的な断面図を示す。 結合組織体の一実施形態を示す模式的な断面図を示す。 結合組織体の一実施形態を示す模式的な断面図を示す。 結合組織体の一実施形態を示す模式的な断面図を示す。 結合組織体形成基材の一実施形態を示す斜視図を示す。 結合組織体形成基材の一実施形態を示す斜視図を示す。 結合組織体形成基材の一実施形態を示す斜視図を示す。 芯材の一実施形態を示す斜視図を示す。 結合組織体形成基材の一実施形態を示す斜視図を示す。 結合組織体形成基材の一実施形態を示す斜視図を示す。 結合組織体形成基材の一実施形態を示す斜視図を示す。 結合組織体形成基材を生体内に配置する工程の一実施形態を示す斜視図である。 結合組織体の一実施形態を示す斜視図を示す。 実施例1の結合組織体の断面を拡大して撮影した写真である。 実施例1の結合組織体の断面を染色したうえで、拡大して撮影した写真である。 実施例1の結合組織体の断面を染色したうえで撮影した写真であり、結合組織体の内周面付近の部分を拡大したものである。 実施例1の結合組織体の断面を染色したうえで撮影した写真であり、結合組織体の厚さ方向の中央部分を拡大したものである。 実施例1の緻密表面層の表面を構成する結合組織体の内周面を拡大して撮影した写真である。 実施例1の結合組織体の緻密表面層の内部を拡大して撮影した写真である。 実施例1の結合組織体の緻密表面層以外の部分を拡大して撮影した写真である。 実施例1の均一化処理後の輝度分布データを示す。 実施例1において、犬の全血に浸漬させた際の結合組織体を示す。 実施例1が壁乖離構造を有することを示す写真である。 比較例1の結合組織体の断面を染色したうえで、拡大して撮影した写真である。 比較例1における結合組織体を示す。 比較例1において、犬の全血に浸漬させた際の結合組織体を示す。
  [結合組織体]
 本発明の結合組織体はコラーゲンを含み、生体由来組織よりなるものである。本発明の結合組織体は、通常、カプセル化反応により形成される。カプセル化反応は、生体の皮下など、生体組織材料が存在する環境下に異物(後述する結合組織体形成基材)を配置させることで、線維芽細胞などの生体組織材料を異物の周囲に集積させて異物を包み込むようにコラーゲンを産出させる反応である。
 結合組織体は、カプセル化反応で産出されたコラーゲンを主成分として含有する。また、結合組織体は、線維芽細胞などのその他の生体組織材料を含んでいてもよい。さらに、結合組織体において、コラーゲンは、一部又は全部が繊維状コラーゲンを構成している。
 なお、本明細書において「生体組織材料」とは、所望の生体由来組織を形成するうえで必要な物質のことであり、例えば、線維芽細胞、平滑筋細胞、内皮細胞、幹細胞、ES細胞、iPS細胞等の動物細胞、各種たんぱく質類(コラーゲン、エラスチン)、ヒアルロン酸等の糖類、その他、細胞成長因子、サイトカイン等の生体内に存在する各種の生理活性物質が挙げられる。この「生体組織材料」には、ヒト、イヌ、ウシ、ブタ、ヤギ、ヒツジ等の哺乳類動物、鳥類、魚類、その他の動物に由来するもの、又はこれと同等の人工材料が含まれる。生体組織材料は、これらの中では、哺乳類動物由来が好ましい。また、「生体由来組織」とは上記生体組織材料より形成された組織を意味する。
 本発明の結合組織体は、結合組織体のいずれかの表面を構成する表面層が、該表面層以外の部分よりも、組織が緻密に形成される緻密表面層を備える。組織が緻密となっているとは、結合組織体においてコラーゲンが緻密になっていることを意味する。表面層以外の部分よりも緻密となっている緻密表面層は、結合組織体の表面の少なくとも一部に設けられればよい。緻密表面層によって構成される結合組織体の表面(例えば、後述する管状構造では内周面)は、高い強度を有する。また、緻密性の高い平滑で高い強度を有する面となり、それにより、血液が染み込みにくくなり、血栓ができにくくなる。さらに、得られた結合組織体には、血液凝固塊などもない。
 なお、用語「表面層」とは、結合組織体の外側の表面(外表面)を構成する層に限られず、結合組織体の内部であっても、結合組織体の内部に存在する異種部材などの他の部材との境界面を構成する層も包含する。また、内部に空洞を有する場合には、その空洞との境界面も表面層に包含される。
 すなわち、後述するように、内部に異種部材が埋め込まれる場合、異種部材との境界面に緻密表面層があってもよい。さらに、内部に中空部を有する場合には、その中空部との境界面(例えば、管状構造では内周面)に緻密表面層があってもよい。
 本発明の結合組織体は、好ましくは、その厚さ方向に沿って、緻密表面層と、緻密表面層よりも疎である表面層以外の部分を有することが好ましい。緻密表面層と相対的に疎である部分を有することで厚さを増して取り扱いが容易となり、さらに組織全体の曲げなどに追従しやすい柔軟性を高めることができる。また、本発明の結合組織体は、厚さ方向に沿って、両表面に緻密表面層を有し、その2つの緻密表面層の間に、緻密表面層よりも疎である部分を有することも好ましい。なお、厚さ方向とは、例えば管状構造ではその径方向に一致する方向である。なお、緻密表面層が形成される両表面は、いずれもが結合組織体の外表面であってもよいし、いずれもが空洞及び異種材料のいずれかとの境界面であってもよいし、一方が外表面で他方が上記境界面であってもよい。
 結合組織体の表面層が、緻密表面層を有するか否かは、結合組織体を、薄厚の切片状にスライスしマッソン・トリクローム染色し、その染色された結合組織体に一定の照度で照明を照射させて得た画像における輝度値により確認できる。
 結合組織体は、マッソン・トリクローム染色されると、コラーゲンは青色に染色されるが、組織が密になっている部分が濃染色される。そのため、一定の照度の照明で照射された切片状の結合組織体では、組織が密となった部分が、他の領域に比べて輝度値が相対的に低くなり、輝度値が相対的に低くなる領域を緻密性の高い部分と認識できる。
 すなわち、本発明の結合組織体を、マッソン・トリクローム染色をして撮影すると、その撮影画像では、緻密性の高い表面層の輝度値が、表面層以外の他の部分よりも低くなるので、それにより、緻密表面層を有すると確認できる。
 本発明では、マッソン・トリクローム染色画像において、緻密となる組織の輝度値が低くなることを利用し、結合組織体の表面層の緻密度も算出できる。
 ここで、マッソン・トリクローム染色画像により求められる緻密度は、組織そのもの(すなわち、コラーゲン)の緻密度を表す組織緻密度で定義できる。結合組織体は、一般的に、薄厚状にスライスしてその断面を観察すると、毛細血管構造や空隙(すなわち、組織がない部分)が見られるが、組織緻密度は、画像処理によりそのような空隙部分を除く処理をして算出した緻密度である。
 本発明では、結合組織体を、厚さ方向に沿って薄厚の切片状にスライスしマッソン・トリクローム染色した切断断面を観察して、表面層の組織緻密度を算出するとよい。具体的には、結合組織体の厚さ方向に沿って、表面層以外の部分の組織緻密度に対する、表面層の組織緻密度の比(以下、「組織緻密度比」ともいう)を算出することで、結合組織体の表面層の緻密さの程度も求めることができる。
 ここで、本発明の表面層は、その表面層以外の部分よりも、緻密度が高くなる。したがって、表面層の組織緻密度比は、1より大きくなればよいが、好ましくは1.1以上、より好ましくは1.2以上である。組織緻密度比の上限は、特に限定されないが、例えば3、現実的には2.5である。
 本発明では、組織緻密度比が1.1以上となると、表面層においてコラーゲン、特に繊維状コラーゲンが密に存在することになるので、強度が高くなる。そのため、生体内において有益に使用できるようになる。また、血液が染み込みにくくなり、それにより、血栓ができにくくなる。
 なお、本発明では、両表面における表面層の組織緻密度比が、上記範囲内であってもよいが、一方の表面における表面層の組織緻密度比が、上記範囲内であってもよい。
 本発明の緻密表面層は、上記のように組織緻密度が他の部分よりも高くなることで、壁乖離構造を有する。なお、壁乖離構造とは、例えばピンセットで緻密表面層の端部をつまんで剥がすと、緻密表面層以外の部分に対して、層状に剥離が可能である構造を言う。
 緻密表面層は、それ以外の部分と比べて、水に浸漬させたときの含水率が低くなる。具体的には、剥離によって分離させた緻密表面層とそれ以外の層の重量を共にB(g)、12時間、25℃でそれぞれを真空乾燥させた緻密表面層あるいはそれ以外の部分の重量をA(g)としたときに、(B-A)/A×100で表される緻密表面層の含水率は、好ましくは60%未満、さらに好ましくは55%未満となる。一方で、それ以外の部分を同様に測定した含水率は、好ましくは60%以上、さらに好ましくは70%以上となる。緻密表面層は、含水率が低いことからも明らかなように組織が密であるため、血液の染み込みが防止でき、血栓が形成されるなどの不具合が生じにくくなる。含水率は、緻密表面層、及びそれ以外の部分それぞれの任意の複数箇所(例えば、10点)の含水率を求めて平均値を算出するとよい。
 本発明の結合組織体は、上記したように繊維状コラーゲンを有するが、繊維状コラーゲンは、上記緻密表面層により構成される表面(例えば管状構造の内周面)において扁平状で平滑であることが好ましい。緻密表面層は、その表面に扁平状で繊維状コラーゲンが平滑に配置され、かつ組織が緻密になることで、血液が結合組織体に染み込みにくくなると推定される。
 一方で、繊維状コラーゲンは、結合組織体の緻密表面層により構成される表面(例えば管状構造の内周面)以外の部分においては、緻密表面層並びに緻密表面層以外の疎な部分の両方において、繊維状コラーゲンが交差するよう網目状に配置される。より具体的には、繊維状コラーゲンの束が一方向に沿って配向して層を形成すると共に、その層のコラーゲンの束と交差するように繊維状コラーゲンの束が別の一方向に沿って配向して別の層を形成し、これら層が網目状に積層されて積層構造を形成するとよい。また、その積層構造は、複数積み重なっているとよい。
 また、結合組織体の緻密表面層により構成される表面(例えば管状構造の内周面)以外の部分の繊維状コラーゲンの束は、緻密表面層では太く、緻密表面層以外の部分では、緻密表面層よりも細い構造を有するとよい。
 本発明の結合組織体は、ヒトコラーゲンと同様に、網目状構造を有することで、人体の失われた組織や器官を人工的に蘇らせる再生医療に適用しやすくなる。
 ここで、繊維状コラーゲンの束が一方向に沿って配向するとは、繊維状コラーゲンが概ね一方向に沿って流れるように並んでいればよく、全ての繊維状コラーゲンが厳密に互いに平行である必要はない。
 本発明の結合組織体は、いかなる形状でもよく、例えば、管状であってもよいし、シート状や棒状、球状などであってもよい。結合組織体は、管状である場合には、例えば、人工血管に使用することが可能である。また、シート状である場合には、人工の心膜、硬膜、皮膚、弁膜、角膜、横隔膜、腹壁などの膜状の組織体として、あるいは血管、食道、気管、消化管、リンパ管、尿道、尿管、膀胱などの管状や袋状の組織体の補填修復材として使用することが可能である。さらに、棒状である場合には、腱や靭帯などの筋状の組織体として使用することができる。
 また、結合組織体は、管状、シート状以外にも、各器官に合わせてあらゆる形状に成形されてもよく、例えば、人工弁に対応した形状に成形されてもよい。人工弁は、一般的に、管部と管部から径方向内向きに膨出した複数の弁葉を有する。
 結合組織体は、管部(管状構造)を有する場合、その両表面(すなわち、外周面と内周面)の少なくともいずれか一方に緻密表面層が形成されるとよい。ただし、図1、2に示すように、管状構造を有する結合組織体30は、少なくともその内周面30Bに緻密表面層32が形成されることが好ましい。また、図2に示すように、内周面30B及び外周面30Aの両方に緻密表面層32が形成される態様も好ましい。
 さらに、環状構造を有する結合組織体30は、図1、2に示すように,その内部に1つの中空部35が設けられることが好ましいが、図3に示すように、複数の中空部35が設けられてもよい。複数の中空部35が設けられる場合も、図3に示すように、その中空部35の外周を構成する管部の内周面30Bに緻密表面層32が形成されることが好ましく、内周面30Bと外周面30Aの両方に緻密表面層32が形成される態様も好ましい。柔軟な組織の内部に強度の高い円筒状の組織が埋め込まれることで、例えば腱や靭帯などの棒状移植体に使用できる。
 また、図4に示すように、結合組織体30の内部に金属や高分子などの異種部材37が埋められていてもよい。異種部材37が埋められる場合も、図4に示すように、その中空部35の外周を構成する管部の内周面30Bに緻密表面層32が形成されることが好ましく、図5に示すように内周面30Bと外周面30Aの両方に緻密表面層32が形成される態様も好ましい。図4、図5に示すように、異種部材37が埋められた結合組織体30においては異種部材37の周囲における表面層も、緻密表面層32として形成されることが好ましい。異種部材37との境界をなす周囲部分が緻密表面層32となることで、異種部材37が柔軟な組織の内部である程度の可動性を保ちながら強く組織内で固定される。従って、異種部材37を安定化させて、内部でズレることを防止できる。
 異種部材37としてはステントを使用することが好ましい。ステントが埋められた結合組織体30は、管状移植体に使用でき、全体組織を破損させることなく大きな変形に追従でき、収縮、拡張することができる。
 異種部材37としては、拡張変形できるステント以外にも、直線状やリング状、スパイラル状の構造体などが挙げられる。
 また、異種部材37としては、生体適合性を有する金属、高分子材料、あるいは生体由来材料などを使用すればよい。金属としては、ステンレス鋼、チタン、コバルトクローム合金、ニッケルチタン合金、マグネシウム合金などが挙げられる。これら金属は、例えばステントに好適に使用できる。高分子材料としては、ナイロン樹脂、PEEK樹脂、シリコーン樹脂、アクリル樹脂、フッ素樹脂、ウレタン樹脂、エチレン樹脂、スチレン樹脂、プロピレン樹種などの樹脂が挙げられる。これらの高分子材料は金属の表面にコーティングされていてもよい。また、生体由来材料としては、ハイドロキシアパタイトなどの無機材料や軟骨など主として細胞成分からなる有機材料などが挙げられる。
 上記したように管状構造を有する結合組織体を人工血管、人工弁に使用する場合、その内側に血液が流されるが、内周面に緻密表面層が形成されると、その内側に流される血液が、緻密表面層によって結合組織体に染み込みにくくなり、人工血管、人工弁などに血栓ができにくくなる。
 また、結合組織体が、シート状である場合には、そのシート状の結合組織体の一方の表面に緻密表面層が形成されるとよいが、両表面に緻密表面層が形成されてもよい。
  [結合組織体の製造方法]
 本発明の結合組織体は、結合組織体形成基材を用いてカプセル化反応を利用して製造することができる。具体的には、生体の皮下においては、以下の工程を備える製造方法によって製造可能である。
 工程1:組織形成面を有し、かつ組織形成面の少なくとも一部が高分子材料から構成される結合組織体形成基材を、生体内に配置する工程
 工程2:生体内の結合組織体形成基材が配置された空間から、生体外より経皮的かつ経管的に空気を抜く工程
 工程3:組織形成面上に結合組織体を形成させる工程
 工程4:結合組織体が形成された結合組織体形成基材を、生体内から取り出す工程
 工程5:結合組織体を結合組織体形成基材から剥離させる工程
  (結合組織体形成基材)
 まず、上記製造方法で使用する結合組織体形成基材について説明する。
 結合組織体形成基材は、その表面に結合組織体を形成させるための組織形成面を有する。組織形成面は、好ましくは、結合組織体の形状に応じた空間(組織形成空間)を区画するよう構成される。例えば、結合組織体形成基材は、少なくとも互いに対向する一対の組織形成面を有し、その一対の組織形成面の間の組織形成空間に、カプセル化反応により結合組織体を形成させるとよい。
 結合組織体形成基材は、生体内などの生体組織材料の存在する環境下において大きく変形することが無い強度を有しており、化学的安定性があり、滅菌などの負荷に耐性があり、かつ生体を刺激する溶出物が無いまたは少ない材料で構成すればよい。
 結合組織体形成基材は、具体的には、高分子材料、金属材料などで構成される。高分子材料の好ましい具体例として、ナイロン樹脂、PEEK樹脂、シリコーン樹脂、アクリル樹脂、フッ素樹脂、ウレタン樹脂、エチレン樹脂、スチレン樹脂、プロピレン樹種など体内留置型の医療機器の部材として使用される材料が挙げられる。金属材料の好ましい具体例としてはステンレス鋼、チタン、コバルトクローム合金、ニッケルチタン合金、マグネシウム合金など体内留置型の医療機器の部材として使用される材料が挙げられる。
 また、組織形成面は、少なくとも一部が樹脂などの高分子材料、好ましくはナイロン樹脂、PEEK樹脂、シリコーン樹脂、アクリル樹脂、フッ素樹脂、ウレタン樹脂、エチレン樹脂、スチレン樹脂、プロピレン樹種など体内接触型の医療機器の部材として使用される材料で構成される。これら樹脂は、その表面に生体組織材料が密に集積されやすく、緻密表面層を形成しやすくなる。したがって、結合組織体形成基材が互いに対向する一対の組織形成面を有する場合、一方の組織形成面が樹脂などの高分子材料で構成されることが好ましく、ナイロン樹脂、PEEK樹脂、シリコーン樹脂、アクリル樹脂、フッ素樹脂、ウレタン樹脂、エチレン樹脂、スチレン樹脂、プロピレン樹種など体内留置型の医療機器の部材として使用される材料で構成されることがより好ましい。また、他方の組織形成面が、金属材料で構成されることが好ましい。
 組織形成面を上記高分子材料又は金属材料で構成する場合、組織形成面を有する部材全体を高分子材料又は金属材料で構成してもよいが、組織形成面のみを高分子材料又は金属材料で構成してもよい。例えば、金属部材の表面に、高分子材料を被膜することで、組織形成面を高分子材料で構成してもよい。
 結合組織体形成基材の形状は、作製する結合組織体に応じて設計すればよく、例えば、管状の結合組織体を製造する場合には、図6に示すように、結合組織体形成基材10は、筒体からなるカバー部材11と、カバー部材11の内部に挿入される芯材12とを備えるものを使用すればよい。
 図6に示す結合組織体形成基材10においては、カバー部材11の内周面が一方の組織形成面11Aを構成し、芯材12の外周面が他方の組織形成面12Aを構成する。組織形成面11A,12Aは、これらの間に組織形成空間13を形成する。カバー部材11には、組織形成空間13と基材の外部とを連通させる孔17が設けられる。孔17は、通常、カバー部材11に複数設けられる。
 カバー部材11の両端面には、組織形成空間13の両端部それぞれを塞ぐ蓋体14、15が設けられる。蓋体14、15は、円環状であり、かつ外周に係止部14A、15Aが設けられる。各蓋体14,15において係止部14A、15Aは複数設けられる。各係止部14Aは、カバー部材11の端部が嵌め込まれる溝14Cを有する。各係止部15Aにも同様に溝(図示しない)が設けられる。蓋体14、15は、芯材12の端部が環状内部に嵌め込まれ、かつ係止部14A、15Aの溝にカバー部材11の端部が嵌め込まれることで、カバー部材11と芯材12とを連結して固定させる。
 孔17は、特に限定されず、例えば円、楕円であってもよいし、スリットであってもよい。孔17が円や楕円である場合、結合組織及び生体組織材料を容易に侵入させることのできる観点から、円や楕円の孔径は1mm以上に設定するとよく、また、10mm以下に設定するとよい。
 孔17は、図6に示すようにスリットであることが好ましい。孔17をスリットにすることで、孔17が結合組織によって閉塞させることなく、組織形成空間13に結合組織を容易に侵入させることができる。スリットは、結合組織及び生体組織材料を容易に侵入させることのできる1mm以上のスリット幅を有するとよく、例えば10mm以下のスリット幅を有するとよい。また、スリットは、通常、スリット長さがスリット幅の2倍よりも大きいことが好ましく、5倍よりも小さいことが好ましく、3倍よりも小さいことがより好ましい。
 また、カバー部材11の組織形成面11Aに対するスリットの面積比を2/3以下に設定するとよい。スリットの面積比を小さくすることで、組織形成面11A上に形成される結合組織体表面の表面状態を良好にしやすくなる。また、スリットを介して、結合組織及び生体組織材料が組織形成空間13に侵入できるように、カバー部材11の組織形成面11Aに対するスリットの面積比は、1/10以上であることが好ましい。また、孔が円又は楕円などのスリット以外の場合にも同様に、カバー部材11の組織形成面11Aに対する孔の面積比は、1/10以上とすることが好ましく、また、2/3以下とすることが好ましい。
 また、スリットは、図6に示すように、その長手方向が基材中心軸と平行となるように配置されてもよいが、その長手方向が基材中心軸に対して傾斜するように配置されてもよい。また、スリットは、周方向及び長さ方向それぞれに沿って複数個並べられるとよい。
 芯材12の外周面は、上記した樹脂などの高分子材料、特にナイロン樹脂、PEEK樹脂、シリコーン樹脂、アクリル樹脂で構成されることが好ましい。これにより、本発明においては、管状の結合組織体の内周面に緻密表面層を形成しやすくなる。芯材12は、例えば、中心材12Bと、中心材12Bの外周面に被せられたカバーチューブ12Cとを備え、カバーチューブ12Cが上記した高分子材料で構成されるとよい。
 一方で、カバー部材11は、金属材料で構成し、その組織形成面11A(すなわち、内周面)を金属材料で構成することが好ましい。金属材料は、上記した高分子材料に比べて、その表面に生体組織材料が集積しにくく、それにより、カバー部材11の孔17が生体組織材料によって早期に閉塞されることが防止される。そのため、長期間にわたって組織形成空間13に生体組織材料が集積される。ただし、カバー部材11は、上記した高分子材料によって形成してもよい。高分子材料で形成することで、上記した図2に示すように管状の結合組織体の外周面及び内周面の両方に緻密表面層を形成できる。
 結合組織体形成基材は、直線的な形状に限定されず、様々な形状を有することが可能であり、曲線的な形状を有してもよく、例えば、図7、8に示すように、らせん状に巻かれた2重以上の環状を有する結合組織体形成基材40であってもよい。
 結合組織体形成基材40は、図7又は図8に示すとおりカバー部材41を備える。カバー部材41は、らせん状に巻かれた2重以上の環状を有する。カバー部材41は、例えば、上下に分割される上側部材41A及び下側部材41Bにより構成され、それらが突き合わされることで管状構造となる。上側部材41A及び下側部材41Bは、それぞれ連結部材43A,43Bが設けられ、その連結部材43A,43Bが連結されることで互いに固定される。カバー部材40には、複数の孔47が設けられ、孔47が、周方向及び長さ方向に沿って複数個並べられるとよい。孔47は図7に示すように矩形でもよいし、図8に示すように円形の孔であってもよいし、他の形状の孔であってもよい。
 カバー部材40の内部には、芯材42が配置される(図9参照)。芯材42は、図9に示すように、カバー部材41の形状に対応して、らせん状に巻かれた2重以上の環状を有する。芯材41の両端42E,42Eは、他の部分よりも幅及び高さが大きく、例えば球状を有している。このような形状を有することで、例えばカバー部材41の両端に凹部が設けられることで、両端42E,42Eを凹部に嵌合させて、芯材42をカバー部材41に対して固定できる。ただし、芯材42の両端は、このような構成に限定されない。
 結合組織体形成基材40において、カバー部材41の内周面と、芯材42の外周面の間に、組織形成空間が形成される。カバー部材41の内周面と、芯材42の外周面の材質は上記したとおりである。
 図7~9に示す結合組織体形成基材40を使用する場合も、上記したとおり組織形成空間に結合組織体が形成される。結合組織体形成基材40は、2重以上の環状を有することで、結合組織体を長い管状構造にできるので、例えば人工血管用の結合組織体を形成するのに適している。
 さらに芯材は、1つである必要はなく、2つ以上が設けられてもよい。芯材が2つ以上設けられる結合組織体形成基材50の具体例を図10に示す。結合組織体形成基材50は、筒体からなるカバー部材51と、カバー部材51の内部に挿入される複数の芯材52とを備え、複数の芯材52が蓋体54、55に取り付けられるとよい。また、蓋体54、55には上記で説明したとおり複数の係止部54A、55Aが設けられ、例えば係止部54A、55Aの溝にカバー部材51の端部が嵌め込まれることで、カバー部材51と芯材52とを連結して固定させる。
 芯材52が複数設けられる場合、各芯材52は、棒状であり、その太さは例えば0.2~3mmであり、好ましくは0.5~2.5mmである。また、カバー部材51の内部空間において、芯材52が占有する最大断面積は、例えば20~60%程度である。なお、最大断面積とは、結合組織体形成基材40の軸に対して垂直の断面において、最大面積となる部分の断面積である。
 カバー部材には、図10では、複数の円形の孔57が設けられるが、孔57の構成は限定されず、上記で説明したとおりいかなる孔であってもよく、スリットなどであってもよい。また、図10において円形の孔57は、千鳥状配置となるが、配置は限定されずいかなる配列でもよい。
 また、結合組織体の内部に異種部材を埋設する場合には、組織形成空間に異種部材を配置すればよい。例えば、図11に示すように、芯材12とカバー部材11とを有する結合組織形成基材には、芯材12とカバー部材11の間の組織形成空間13に異種部材37を配置すればよい。ただし、異種部材37は、芯材12及びカバー部材11に密着しないようにするとよい。芯材12及びカバー部材11に密着させないことで、異種部材37と芯材12又はカバー部材11の間に生体由来組織が入り込み、図5に示すように、結合組織体30では、内周面30B、及び外周面30Aの全体にわたって、緻密表面層32が形成されやすくなる。また、異種部材37は、結合組織体形成基材の一部をなすものであり、その表面が組織形成面となるとよい。
 また、管状の結合組織体を形成する場合には、結合組織体形成基材は、カバー部材と、芯材とを備える必要はなく、例えばカバー部材が省略されてもよい。カバー部材が省略された結合組織体形成基材60の一例を図12に示す。カバー部材が省略されても、芯材62の表面が組織形成面となり、その芯材62表面上にカプセル化反応により、結合組織体が形成される。また、カバー部材が省略された結合組織体形成基材60においても、図12に示すように、芯材62の外周面上には、異種部材37を配置してもよく、異種部材37は、上記のとおり、芯材62の外周面に密着させないことが好ましい。図12に示すように、異種部材37が組織形成空間13に配置され、カバー部材が設けられない場合には、例えば図4に示す結合組織体30が得られる。
 図11、12は、異種部材37がステントである例を示す。ステントは例えば拡径することで芯材62の外周面に取り付けるとよい。異種部材37はもちろんステントに限定されず他の材料を使用してもよい。
 シート状の結合組織体を作製する場合には、結合組織体形成基材は、互いに対向する2枚の板状部材を備える基材を使用すればよい。この場合、2枚の板状部材の互いに対向する面を組織形成面とし、一対の組織形成面の間の組織形成空間に生体組織材料を集積させて、結合組織体を形成すればよい。
 このとき、一対の組織形成面のいずれかを、樹脂などの高分子材料、特にナイロン樹脂、PEEK樹脂、シリコーン樹脂、又はアクリル樹脂で構成することが好ましい。これら高分子材料で構成することで、その組織形成面上に緻密表面層を形成しやすくなる。また、2枚の板状部材のいずれかにスリットなどの孔を形成すればよい。さらに、一方の板状部材の組織形成面を上記高分子材料で構成するとともに、他方の板状部材に孔を形成することが好ましく、孔を形成した板状部材は、組織形成面を金属材料により構成することがより好ましい。
 さらに、例えば、人工弁などを作製する場合には、結合組織体形成基材は、芯材と、芯材が内部に挿入されるカバー部材とを備え、芯材の外周面と、カバー部材の内周面とを組織形成面として、その一対の組織形成面の間に組織形成空間を区画すればよい。組織形成空間は、人工弁、又は適宜加工することで人工弁とすることが可能な人工弁前駆体に応じた形状となるように区画されていればよい。例えば、組織形成空間は、管部と管部から径方向内向きに膨出した複数の弁葉を含む人工弁又は人工弁前駆体の形状に応じて区画されていればよい。
 このときも、芯材の外周面が、樹脂などの高分子材料、特にナイロン樹脂、PEEK樹脂、シリコーン樹脂、アクリル樹脂で構成されることが好ましい。これにより人工弁の内周面に、緻密表面層を形成しやすくなる。また、カバー部材には、スリットなどの孔が設けられるとよく、その内周面が好ましくは金属材料で構成される。
 次に、上記した結合組織体の製造方法の各工程について説明する。
  (工程1)
 工程1では、結合組織体形成基材を生体内に配置させる。生体としては、ヒト、或いは、イヌ、ウシ、ブタ、ヤギ、ウサギ、ヒツジなどのヒト以外の他の哺乳類動物、鳥類、魚類、その他の動物が挙げられる。これらの中では、哺乳類動物が好ましい。結合組織体形成基材が配置される生体内は、例えば皮下又は腹腔内などである。
 結合組織体形成基材を生体内に配置させる方法としては、最小限の切開術を行い、生体表面に挿入口を形成して、その挿入口より結合組織体形成基材を動物内に埋入するとよい。埋入後は傷口を縫合する。結合組織体形成基材の埋入部位としては例えば、結合組織体形成基材を受け入れる容積を有する腹腔内、あるいは四肢部、肩部又は背部、腹部などの皮下が好ましい。具体的には、皮下の場合には、真皮層の下側と、脂肪層あるいは筋層の上側の間に埋入させるとよく、より具体的には、生体内の真皮層の下側と、脂肪層あるいは筋層の上側との間に止血を十分に施して作製した皮下ポケット内に配置する。
 また、埋入には低侵襲な方法で行い、また、十分な麻酔下で最小限の切開術で行うことが好ましい。出血は最小限に抑えることが好ましく、出血を起こした場合には十分な止血が必要である。皮下ポケットは配置させる結合組織体形成基材より大きなスペースを確保することが望ましい。基材より大きな皮下の剥離面を形成させることで、生体反応がより刺激を受けて、剥離面の修復治癒との共同作業が起こり、基材の内部での組織の形成が促進される。
 具体的には、まず、生体の表面に挿入口を形成して、この挿入口から生体内を剥離し、皮下にポケットを作製する。挿入口から生体内組織形成基材を挿入することで、生体内に結合組織形成基材が配置される。挿入口は縫合などにより閉じる。
 また、ガイド棒を用いると、より簡便に皮下出血を抑えながら生体内に結合組織形成基材を配置することができる。図13に示すように、まず、生体の表面に挿入口18を形成して、この挿入口18から生体内に、先端を凸曲面状に形成したガイド棒19の先端部分を挿入する(図13の(a)状態)。次いで、ガイド棒19の外側をスライドさせるようにして、挿入口18から生体内に挿入管20を挿入する(図13の(b)状態、(c)状態)。挿入管20を挿入した後、ガイド棒19は引き抜くとよい。その後、挿入管20の内部に結合組織体形成基材10を挿入して(図13の(d)状態)、押し込み棒21で押し込んだ後(図13の(e)状態)、挿入口18から挿入管20を引き抜くことにより、生体内に結合組織体形成基材10が配置される。挿入管20を引き抜いた後、挿入口18は縫合などにより閉じる(図13の(f)状態)。この場合も、皮下ポケットは基材より大きなスペースを確保することは望ましい。ガイド棒は基材の外径よりもさらに大きな外径を有することで、広い剥離面が形成され、生体反応がより刺激を受けて、剥離面の修復治癒との共同作業が起こり、基材の内部での組織の形成が促進され、特に基材接触面において緻密コラーゲン層が形成される。
  (工程2)
 工程1が終了した後、次に、生体内の結合組織体形成基材10が配置された空間22から空気を抜く。空気の抜く方法は、生体外より経皮的かつ経管的に抜く限り特に限定されないが、例えば、生体外からシリンジの先端を空間22まで差し込んで、空気を抜くとよい。真空度は0.1から0.5atmの範囲であることが望ましい。単に皮膚の上から押し付けても基材と皮下組織が密着して皮膚の細胞が基材表面に近づくだけであるが、基材の内部をさらに真空にすることで、皮膚の細胞が基材の内部に吸い寄せられ、基材内部での組織の形成が促進され、特に基材接触面において緻密コラーゲン層が形成される。
  (工程3)
 工程2において、空気を抜いた後、結合組織体形成基材10が生体内に配置された状態で、所定期間放置する。放置する期間は、生体の種類に応じて異なるが、組織形成される20日以上であれば長期間放置しても良く、形成される組織の形状に変化はほとんど無い。例えば20~90日、好ましくは30~60日である。所定期間放置することで、結合組織体形成基材10の組織形成空間に結合組織体が形成される。
 本製造方法においては、工程2において空間22の空気を抜くことで、生体内の組織が結合組織体形成基材10の外周面に密着される。そのため、結合組織及び生体組織材料が組織形成空間に集積しやすくなり、また、組織形成面の少なくとも一部が高分子材料で構成されることも相俟って、その高分子材料によって構成された組織形成面の上に、結合組織及び生体組織材料が密に集積する。したがって、本製造方法では、高分子材料によって構成された組織形成面の上に上記した緻密表面層が形成される。
 また、高分子材料によって構成された組織形成面の上に形成された結合組織体は、その最表面において扁平状コラーゲンが平滑に配置されやすくなる。さらには、その緻密表面層の最表面以外の部分、及びそのさらに内側では、結合組織が適度に集積して、繊維状コラーゲンが交差するように網目状に配置されやすくなり、上記した積層構造が積み重なった構造を形成しやすくなる。
  (工程4)
 工程4では、工程3にて結合組織体が形成された結合組織体形成基材を、生体から取り出す。具体的には、生体表面のうち、生体内に埋入した結合組織体形成基材が位置する部位に取出口を形成し、その取出口を介して結合組織体形成基材を取り出すとよい。
 例えば、結合組織体形成基材が図示しないねじ部(例えば雄ねじ)からなる被着部を有する場合、基材取出具の先端に設けられたねじ部(例えば雌ねじ)に、被着部を螺着させることで、基材取出具の先端に結合組織体形成基材を取り付けて、結合組織体形成基材を生体内から取り出すとよい。
 あるいは、結合組織体形成基材の端部を鉗子などで挟み固定することで、結合組織体形成基材を生体内から取り出すことでもよい。
  (工程5)
 その後、必要であれば結合組織体形成基材を破壊したうえで、組織形成空間に形成された結合組織体を組織形成面から剥離して取り出すことにより、結合組織体が得られる。ここで、結合組織体形成基材が図6に示すように、スリットからなる孔17が設けられたカバー部材11と、芯材12とを備える場合、結合組織体は図14に示すように、管状の結合組織体30となる。また、結合組織体30の外周面30Aには、スリットに対応して複数の突条31が設けられるとともに、結合組織体30の内周面30Bには緻密表面層が形成される。
 なお、得られた結合組織体を異種移植する場合には、移植後の拒絶反応を防ぐため、脱細胞処理、脱水処理、固定処理などの免疫源除去処理を施すのが好ましい。
 なお、上記で説明した製造方法は、一例であり上記方法には限定されない。例えば、結合組織体形成基材を生体内に配置させる方法を、図面を参照して具体的に説明したが、その具体例に限定されるわけではない。
 また、上記では、結合組織体を生体内で製造する方法を示したが、結合組織体は、生体内で製造する方法に限定されない。例えば、生体内と同一又は近似する環境下において結合組織体を製造してもよい。
 この場合、結合組織体形成基材を、生体組織材料の存在する環境下に適宜配置して、上記と同様に組織形成空間に結合組織体を形成すればよい。ただし、組織形成空間を区画する組織形成面の一部を高分子材料で構成する。また、生体組織などを結合組織体形成基材の外周面に密着させたりして、高分子材料で構成される組織形成面上に緻密表面層を形成しやすくするとよい。
 本発明を実施例によりさらに詳細に説明するが、本発明はこれらの例によってなんら限定されるものではない。なお、以下の説明において特に断りがない限り、「%」は「質量%」を意味する。
 以下、表面層の緻密度の測定方法を具体的に説明する。
  [緻密度の測定]
 (切片作製)
 各実施例、比較例で得られた結合組織体を以下の1)~7)の手順でパラフィン包埋ブロックを作製した。
 1)結合組織体を4%パラホルムアルデヒド・リン酸緩衝液に24時間浸漬させた。
 2)結合組織体を取り出し、70%エタノールに浸漬させた。
 3)結合組織体を99.5%エタノールに30分浸漬して取り出す操作を5回行った。
 4)結合組織体を100%エタノールに30分浸漬した。
 5)結合組織体をキシレンに30分間浸漬して取り出す操作を2回行った。
 6)結合組織体を60℃で溶解したパラフィンに30分浸漬して取り出す操作を4回行った。
 7)包埋用の型にブロックを入れ、パラフィンを流し込み、固化させることでブロックを作製した。
 パラフィン包埋ブロックを厚さ3μmにスライスし、切片を作製した。結合組織体は、厚さ方向に沿ってスライスした。次に、切片の脱パラフィン処理を行った。脱パラフィン処理は、キシレンに2回、100%エタノールに2回、70%エタノールに1回、蒸留水に1回の順に、切片を各10分ずつ浸漬させて行った。
 (マッソン・トリクローム染色)
 次に、以下の1)~21)の手順でマッソン・トリクローム染色処理を行った。
 1)切片を媒染液(武藤化学株式会社製、品番「40061」)に30分浸漬した。
 2)切片を媒染剤から取り出して流水で洗浄した。
 3)切片を鉄ヘマトキシリン溶液(ワイゲルト鉄ヘマトキシリン液1(武藤化学株式会社製、品番「40341」))とワイゲルト鉄ヘマトキシリン溶液2(武藤化学株式会社製、品番「40351」)の等量混合溶液に10分浸漬した。
 4)切片を混合溶液から取り出して流水で洗浄した。
 5)切片を1%塩酸アルコール中で数秒程度上下に5回程度振盪させることで洗浄した。なお、1%塩酸アルコールは、塩酸を1%の濃度になるように70%エタノールで希釈したものである。
 6)色出しのため、切片を10分間流水で洗浄した。
 7)第二媒染剤(武藤化学株式会社製、品番「81411」)に30秒浸漬した。
 8)切片を第二媒染剤から取り出し1分間流水で洗浄した。
 9)1%酢酸水中で数秒程度上下に5回程度振盪させた。
 10)0.75%オレンジG(武藤化学株式会社製、品番「40231」)に1分間浸漬した。
 11)切片をオレンジGから取り出し、1%酢酸水中で数秒程度上下に5回程度振盪させて洗浄した。
 12)マッソン染色液B(武藤化学株式会社製、品番「40251」)に20分浸漬した。
 13)1%酢酸水中で数秒程度上下に5回程度振盪させて洗浄した。
 14)2.5%リンタングステン酸液(武藤化学株式会社製、品番「40181」)に30分浸漬した。
 15)リンタングステン酸液から取り出した後、1%酢酸水中で数秒程度上下に5回程度振盪させて洗浄した。
 16)アニリン青液(武藤化学株式会社製、品番「40201」)に30分浸漬した。
 17)アニリン青液から取り出した後、1%酢酸中で数秒程度上下に5回程度振盪させて洗浄した。
 18)100%エタノール中で数秒程度上下に10回程度振盪させて洗浄した。
 19)切片を脱水するため、100%エタノールに5分間浸漬した。
 20)切片をキシレンに5分間浸漬した後、キシレンから取り出した。この操作は3回繰り返した。
 21)切片に封入剤(Entellan(R) new Millipore、1.07961.0100、メルク社製)を滴下し、カバーガラスをのせて、封入剤がガラス上に固化することで封入した。
 (画像観察)
 上記のように封入剤で封止した切片に、顕微鏡(ニコン社製、商品名「ECLIPSE E1000」)付属の透過ケーラー照明にて、500lxの照度で照射し、観察倍率10倍で観察し、30枚の画像を撮影した。
 各画像に対しては、次の1)~8)の手順で画像解析処理を行い、組織緻密度比を算出した。
 1)HSV空間のHフィルタによって、青色部(コラーゲン部)を抽出した。
 2)グレースケール変換で輝度値を算出した(256階調)。図22には、後述する実施例1における、輝度値によるヒストグラムが輝度ヒストグラムとして示される。
 3)ヒストグラム均一化関数により、ヒストグラム均一化処理を行い、輝度値を強調処理しながら分布させ、正規化強度ヒストグラム(図22参照)を得た。また、輝度値を反転処理して、輝度が最も高い部分(すなわち、染色が最も薄い部分)を0、輝度が最も低い部分(すなわち、染色が最も濃い部分)を1とした。
 4)結合組織体の厚さ方向に沿う任意の直線L(図16参照)上の輝度データを取得した。
 5)30点移動平均ゼロ位相フィルタにてフィルタリングした。
 6)取得した輝度データの全体平均値を求め、その全体平均値を閾値とした。そして、結合組織体の一方の表面における直線L上の輝度データ(すなわち、直線Lの端部上の輝度データ)が閾値以上か否かを求め、閾値以上のデータならば、その直線Lの端部から他方の端部側に移動していき、閾値以上のデータ部分を「閾値以上部分」とし、その「閾値以上部分」を「表面層」とした。その後、同様に他方の端部側に移動していき、データが閾値未満となり、かつその閾値未満のデータ部分を「閾値未満部分」とし、その「閾値未満部分」を「表面層以外の部分」とした。
 また、結合組織体の一方の表面における直線L上の輝度データ(すなわち、直線Lの端部上の輝度データ)が閾値未満ならば、その直線Lの端部から他方の端部側に移動していき、閾値未満のデータ部分を「閾値未満部分」とし、その「閾値未満部分」を「表面層」とした。その後、同様に他方の端部側に移動していき、データが閾値以上となり、その「閾値以上」のデータ部分を「閾値以上部分」とし、その「閾値以上部分」を「表面層以外の部分」とした。
 7)次に、直線Lにおいて、「表面層」と認定された部分における輝度データの平均値(Y1)と、「表面層以外の部分」と認定された部分における輝度データの平均値(Y2)を求め、Y1/Y2を、一方の表面における表面層の組織緻密度比とした。
 8)残りの29枚の画像についても、結合組織体の一方の表面における表面層について同様に組織緻密度比を算出し、30枚の画像で求めた組織緻密度比の平均値を一方の表面における表面層の「組織緻密度比」とする。
 さらに、必要に応じて、他方の表面における表面層についても、同様に組織緻密度比を算出してもよい。
  [実施例1]
 まず、図6に示す、筒状のカバー部材11と、芯材12とを備える結合組織体形成基材10を用意した。芯材12は、内部にアクリル棒が埋められたステンレス鋼管からなる中心材12Bと、シリコーン樹脂からなるカバーチューブ12Cを備えるものであった。芯材12は、外径が16mmであった。カバー部材11は、外径19mm、内径18mmであり、1.5×15mmのスリットが、軸方向に4個、周方向に11個形成されており、ステンレス鋼製であった。したがって、芯材12により構成される組織形成面がシリコーン樹脂、カバー部材11により構成される組織形成面がステンレス鋼であった。
 次に、麻酔下で生後12ヶ月、体重8.5kgのビーグル犬の背部皮膚に切開術を行い、生体表面に挿入口を形成し、挿入口から皮下組織をハサミなどで切開剥離し、結合組織体形成基材10が収まる程度の大きさの皮下ポケットを作成した。挿入口から、結合組織体形成基材10を手で押し込み、結合組織体形成基材10を埋入し、埋入後、挿入口を縫合した。その後、皮膚から基材上にシリンジの針を差し込み、結合組織体形成基材10が埋入された周囲から空気を抜き取った。
 次いで、ビーグル犬を通常の飼育環境下で60日間飼育した後、再び切開術を行い、生体表面に取出口を設けて、生体内から、結合組織体が形成された結合組織体形成基材10を取り出した。その後、結合組織体形成基材10から結合組織体を抜き取ることで、図14に示すような筒状の結合組織体30を得た。結合組織体形成基材10から抜き取る前の結合組織体30の内周面は、結合組織体形成基材10の芯材12の組織形成面(シリコーン樹脂)に接触または対面する。結合組織体形成基材10から抜き取る前の結合組織体30の外周面は、結合組織体形成基材10のカバー部材11の組織形成面(ステンレス鋼)に接触または対面する。
 得られた結合組織体30を切断して切断面を電子顕微鏡で観察した写真を図15に示す。図15においては、上方が内周面側である。また、得られた結合組織体30を上記方法に従って、切片を作製して、マッソン・トリクローム染色した切片の切断面を顕微鏡で観察した写真を図16~18に示す。図17は、結合組織体30の内周面付近の部分を拡大したものである。図18は、結合組織体30の厚さ方向の中央部分を拡大したものである。
 図16、17に示すように、筒状の結合組織体の内周面側においては、空隙が少なく結合組織が密となり、緻密表面層を形成していることが理解できる。
 それに対して、図16、18に示すように、緻密表面層以外の部分(例えば、厚さ方向における中央部分)は空隙が多くなり、結合組織体の内部では、表面層に比べて緻密度が低くなることが理解できる。
 また、明細書記載の方法にしたがって、一方の表面(内周面)における表面層の緻密度を測定した。その結果は、以下の表1に示すとおり、組織緻密度が1.56となった。他方の表面(外周面)における表面層の組織緻密度は1.48であった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
 また、結合組織体の内周面を電子顕微鏡で観察した写真を図19に示す。さらに、結合組織体の内周面を層状に剥がして、内周面以外の緻密表面層の表面状態を電子顕微鏡で観察した写真を図20に、さらに剥がして緻密表面層以外の状態を電子顕微鏡で観察した写真を図21に示す。
 図19に示すように、緻密表面層の表面は、コラーゲンが扁平状に平滑に覆っており、また、コラーゲンが一方向に配向せずにランダムに配向していることが理解できる。一方で、緻密表面層の表面以外の部分は、図20に示すように、繊維状コラーゲンが束状に纏まって概ね一方向に配向していることが理解できる。また、図15、20の写真から明らかなように、束状に纏まって一方向に配向する繊維状コラーゲンが、多層状に設けられていることが理解できる。さらに、図15の写真では粒状の点が横方向に連なるように配置されることから明らかなように、一方向に配向する繊維状コラーゲンの束から形成された層は、繊維状コラーゲンが別の層の繊維状コラーゲンに対して、直交していることが理解でき、繊維状コラーゲンが網目状に配置されることが理解できる。この網目状の配置は、内部まで続き、図21に示すように緻密度が低い結合組織体の内部でも見られた。
 さらに、図20に示すように、緻密表面層ではコラーゲンの密度が高く、コラーゲンの繊維が太くなる一方で、図21に示すように、緻密表面層以外の部分では、繊維状コラーゲンの束は、緻密表面層におけるコラーゲンの束よりも細くなっていた。
 実施例1で得られた結合組織体を犬の全血に浸漬させ、1、3、5分後に取り出して生理食塩水で洗浄を行った後に写真撮影をして観察したところ、図23に示すように、いずれも血液凝固はほぼなく、血栓が形成されなかった。
 一方で、実施例1で得られた結合組織体の緻密表面層を剥離させ、緻密表面層の表面以外の部分を露出させ、犬の全血に浸漬させ、1、3、5分後に取り出して生理食塩水で洗浄を行った後に写真撮影をして観察したところ、図23に示すように、1分で表面の一部で血栓が付着し、5分で全面に血栓形成が起こった。なお、緻密表面層は、図24に示すように、ピンセットで容易に層状に剥離でき、壁乖離構造を有していた。
 さらに、緻密表面層を剥離させて重量(B(g))を測定した。これを、12時間、25℃で真空乾燥させて重量(A(g))を測定した。重量変化から、緻密表面層の含水率((B-A)/A×100)を求めると、平均56%であった。一方、緻密表面層以外の部分で同様に含水率を求めると、平均73%であった。緻密表面層はそれ以外の部分に比べて水分を吸収し難いことを示した。
  [実施例2]
 図10に示す、筒状のカバー部材51と、4本の芯材52とを備える結合組織体形成基材50を用意した。芯材52は、シリコーン樹脂チューブで皮膜したステンレス鋼の丸棒であり、シリコーン樹脂チューブの内径は1mm、外径は2mmであり、ステンレス鋼丸棒の外径は1mmであった。カバー部材51は、外径10mm、内径8mmであり、1.5mmの丸孔が約20%の開口率(カバー部材の組織形成面に対するスリットの面積比)になるように千鳥状配置で均等に形成されており、ステンレス鋼製であった。4本の芯材52はカバー部材51の内部にほぼ均等になるように配置させた。したがって、芯材により構成される組織形成面がシリコーン樹脂、カバー部材により構成される組織形成面がステンレス鋼であった。
 次に、麻酔下で生後3ヶ月、体重40kgの家畜ブタの腹部皮膚に切開術を行い、生体表面に挿入口を形成し、挿入口から皮下組織をハサミなどで切開剥離し、結合組織体形成基材50が収まる程度の大きさの皮下ポケットを作成した。挿入口から、結合組織体形成基材50を手で押し込み、結合組織体形成基材50を埋入し、埋入後、挿入口を縫合した。その後、皮膚から基材上にシリンジの針を差し込み、結合組織体形成基材50が埋入された周囲から空気を抜き取った。
 次いで、ブタを通常の飼育環境下で60日間飼育した後、再び切開術を行い、生体表面に取出口を設けて、生体内から、結合組織体が形成された結合組織体形成基材50を取り出した。その後、結合組織体形成基材50から結合組織体を抜き取ることで、図3の断面構造を示す、内部に円柱状の空洞孔(中空部)を有する円柱状の結合組織体30を得た。
 また、明細書記載の方法にしたがって、結合組織体30の内部の中空部の周囲(内周面)ならびに外周面における表面層の緻密度を測定した。その結果は、内部の空洞の周囲の緻密度は1.4となり、外周面の緻密度は1.2となった。
  [実施例3]
 図12に示すように、円柱状の芯材62の外周に異種部材37としてステントを装着させた結合組織体形成基材60を用意した。芯材62は、ナイロン樹脂の丸棒であり、外径は15mmであった。ステントは内径16mmに拡張させたバルーン拡張型のコバルトクローム合金製であった。したがって、芯材62により構成される組織形成面がナイロン樹脂、異種部材37により構成される組織形成面がコバルトクローム合金であった。
 次に、麻酔下で生後10ヶ月、体重35kgのヤギの背部皮膚に切開術を行い、生体表面に挿入口を形成し、挿入口から皮下組織をハサミなどで切開剥離し、結合組織体形成基材が収まる程度の大きさの皮下ポケットを作成した。挿入口から、結合組織体形成基材を手で押し込み、結合組織体形成基材を埋入し、埋入後、挿入口を縫合した。その後、皮膚から基材上にシリンジの針を差し込み、結合組織体形成基材10が埋入された周囲から空気を抜き取った。
 次いで、ヤギを通常の飼育環境下で30日間飼育した後、再び切開術を行い、生体表面に取出口を設けて、生体内から、結合組織体が形成された結合組織体形成基材を取り出した。その後、結合組織体形成基材から結合組織体を抜き取ることで、図4の断面構造を示す、内部に円柱状の空洞孔(中空部)を有する円柱状の結合組織体30を得た。
 また、明細書記載の方法にしたがって、結合組織体30の一方の表面(内周面)における表面層ならびに内部のステント周囲における表面層の緻密度を測定した。その結果は、結合組織体30の内周面の組織緻密度が1.2、ステント周囲の表面層の組織緻密度が1.1となった。
  [実施例4]
 図11に示す、筒状のカバー部材11と、芯材12とを備える結合組織体形成基材10を用意し、カバー部材11と芯材12との間の隙間に異種部材37としてのステントを配置した。芯材12は、PEEK樹脂からなる中心材12Bと、シリコーン樹脂からなるカバーチューブ12Cを備えるものであった。芯材12は、外径が20mmであった。カバー部材11は、外径25mm、内径23mmであり、2mm×20mmのスリットが形成されており、ステンレス鋼製であった。ステントはニッケルチタン合金製であり、内径は22mmであった。したがって、芯材により構成される組織形成面がPEEK樹脂、カバー部材により構成される組織形成面がステンレス鋼であり、ステントにより構成される組織形成面がニッケルチタンであった。
 次に、麻酔下で生後12ヶ月、体重43kgのヤギの背部皮膚に切開術を行い、生体表面に挿入口を形成し、挿入口から皮下組織をハサミなどで切開剥離し、結合組織体形成基材10が収まる程度の大きさの皮下ポケットを作成した。挿入口から、結合組織体形成基材10を手で押し込み、結合組織体形成基材10を埋入し、埋入後、挿入口を縫合した。その後、皮膚から基材上にシリンジの針を差し込み、結合組織体形成基材10が埋入された周囲から空気を抜き取った。
 次いで、ビーグル犬を通常の飼育環境下で60日間飼育した後、再び切開術を行い、生体表面に取出口を設けて、生体内から、結合組織体が形成された結合組織体形成基材10を取り出した。その後、結合組織体形成基材10から結合組織体を抜き取ることで、図5に示すような断面構造を有する筒状の結合組織体30を得た。
 また、明細書記載の方法にしたがって、結合組織体30の一方の表面(内周面)における表面層、他方の表面(外周面)における表面層、ならびに内部のステント周囲における表面層の緻密度を測定した。その結果は、結合組織体30の内周面の組織緻密度が1.3、結合組織体30の外周面の組織緻密度が1.2、ステント周囲の表面層の組織緻密度が1.1となった。
  [比較例1]
 生体内からシリンジにより空気を抜き取る作業を行わない以外は、実施例1と同様に実施した。比較例1では、図25に示すように、血液凝固塊(左側の上方部分)が形成されており、結合組織体の形成が不十分であり、緻密表面層も形成されておらず、図26に示すように、液凝集塊が白いコラーゲン表面層の一部で赤く形成された。また、強度が不足し、表面に亀裂(図26の中央部分)を有していた。比較例1の内周面側の表面を、犬の全血に浸漬させ、1、3、5分後に取り出して生理食塩水で洗浄を行った後に写真撮影をして観察したところ、図27に示すように、1分で全面に血栓が形成された。
 ・本開示において、空気の抜き取り(工程2)は、生体内の結合組織体形成基材10の組織形成面と生体細胞との接触の促進または接触性の向上に有利である。空気の抜き取りは、生体内の結合組織体形成基材10に対するカプセル化反応を促進させるのに有利であり、例えば、カプセル化反応の開始を促進させるのに有利である。生体内の結合組織体形成基材10の組織形成面からカプセル化反応による結合組織体30の形成が開始される。
 ・本開示において、結合組織体30の形成または成長が進行する期間(工程3)の初期期間における結合組織体30の形成速度(成長速度)は、結合組織体30において組織体形成基材10の組織形成面に接触または対面する表面を含む表面層の緻密度(及び微視的構造)に影響する一要因である。本開示において例示した高分子材料(または高分子材料と金属材料との組み合わせ)は、結合組織体の形成または成長が進行する期間(工程3)の初期期間における結合組織体の形成速度(成長速度)を意図的にまたは制御的に低下させるのに有利である。本開示において例示した高分子材料(または高分子材料と金属材料との組み合わせ)を結合組織体形成基材10の組織形成面に採用することは、結合組織体30に、比較的高く調整された緻密度を有する緻密表面層を持たせるのに有利である。なお、結合組織体の形成が進行するのに伴い、結合組織体の形成速度は組織形成面の材料によって影響を受けにくくなることがある。一つまたは複数の組織形成面の材料選択は、結合組織体において緻密表面層を比較的密にしつつ、緻密表面層以外の部分を比較的疎にするのに貢献し、また、緻密表面層と緻密表面層以外の部分との微視的構造を異ならせるのにも貢献する。いくつかの例では、緻密表面層と緻密表面層以外の部分との間の緻密度の違い、及び緻密表面層と緻密表面層以外の部分との間の微視的構造の連続的な変化であり得る微視的構造の違いは、上述した壁乖離構造として作用的に観測でき、例えば鮮明なまたはぼやけた層境界として顕微鏡的に視認できる。
 ・結合組織体30のうち緻密表面層よりも疎である表面層以外の部分は、結合組織体の非表面層部分、本体部分、またはベース部分と呼称することがある。結合組織体30の緻密表面層を形成するコラーゲンを第1の繊維状コラーゲンと呼称し、結合組織体30の非表面層部分を形成するコラーゲンを第2の繊維状コラーゲンと呼称することがある。結合組織体30の緻密表面層の第1の繊維状コラーゲンの構造及び緻密度を、第1の微視的構造及び第1の緻密度とそれぞれ呼称することがある。結合組織体30の非表面層部分の第2の繊維状コラーゲン構造及び緻密度を、第2の微視的構造及び第2の緻密度とそれぞれ呼称することがある。第1の繊維状コラーゲンの構造及び緻密度は、緻密表面層に、第1の血液染み込みにくさを与え、第2の繊維状コラーゲンの構造及び緻密度は、非表面層部分に、第2の血液染み込みにくさを与え、緻密表面層が有する第1の血液染み込みにくさは、非表面層部分が有する第2の血液染み込みにくさよりも高い。本開示の壁乖離構造は、表面層の第1の繊維状コラーゲンと非表面層部分2の繊維状コラーゲンとによって形成される生体由来ピーラブル境界と呼称することがある。本開示の結合組織体30は、生体由来コラーゲンを備えるインプランタプル製品と呼称することがある。本開示の結合組織体30は、再生医療用人工臓器自体またはその一部であってよい。
 10 結合組織体形成基材
 11 カバー部材
 12 芯材
 11A,12A 組織形成面
 13 組織形成空間
 14、15 蓋体
 17 孔
 30 結合組織体
 30A 外周面
 30B 内周面
 32 緻密表面層
 35 中空部
 37 異種部材

Claims (15)

  1.  コラーゲンを含む生体由来組織からなる結合組織体であって、
     結合組織体のいずれかの表面を構成する表面層が、該表面層以外の部分よりも、組織が緻密に形成される緻密表面層を備える結合組織体。
  2.  前記コラーゲンが繊維状コラーゲンを含む請求項1に記載の結合組織体。
  3.  前記繊維状コラーゲンが前記緻密表面層の表面において扁平状で平滑である請求項2に記載の結合組織体。
  4.  前記繊維状コラーゲンが、前記緻密表面層の表面以外の部分において交差するよう網目状に配置される請求項2又は3に記載の結合組織体。
  5.  厚さ方向に沿って算出した、前記表面層以外の部分の組織緻密度に対する、前記表面層の組織緻密度の比が1.1以上である請求項1~4のいずれか1項に記載の結合組織体。
  6.  内部に異種部材が埋められる請求項1~5のいずれか1項に記載の結合組織体。
  7.  前記異種部材の周囲に前記緻密表面層が形成される請求項6に記載の結合組織体。
  8.  前記結合組織体がカプセル化反応により形成される請求項1~7のいずれか1項に記載の結合組織体。
  9.  コラーゲンを含む生体由来組織からなる結合組織体の製造方法であって、
     組織形成面を有し、かつ前記組織形成面の少なくとも一部が高分子材料から構成される結合組織体形成基材を、生体内に配置する工程と、
     生体内の前記結合組織体形成基材が配置された空間から、生体外より経皮的かつ経管的に空気を抜く工程と、
     前記組織形成面上に、結合組織体を形成させる工程と、
     前記結合組織体が形成された結合組織体形成基材を、生体内から取り出す工程と、
     前記結合組織体を前記結合組織体形成基材から剥離させる工程と、
     を備える結合組織体の製造方法。
  10.  生体組織材料が存在する環境と結合組織体を形成するための空間とを区切る組織形成面を備えた組織体形成基材であって、前記空間と前記環境とを連通させて前記空間に結合組織を侵入させる孔を備えた前記組織体形成基材を人体以外の生体内の前記環境に配置し、前記組織体形成基材が配置された空間から前記生体外より空気を抜いて形成される結合組織体であって、
     前記組織形成面は、高分子材料または金属材料から構成され、
     前記結合組織体は、コラーゲンを含む生体由来組織からなり、生体内の組織に使用され、
     前記結合組織体のなかで前記組織形成面と接する表面を構成する表面層の全体が、該表面層以外の部分よりも、組織が緻密に形成される緻密表面層であり、
     前記緻密表面層について、厚さ方向に沿って算出した、前記表面層以外の部分の組織緻密度に対する、前記表面層の組織緻密度の比が1.1以上である
     結合組織体。
  11.  コラーゲンを含む生体由来組織からなり、生体内の組織に使用される結合組織体の製造方法であって、
     組織形成面を有し、かつ前記組織形成面の少なくとも一部が高分子材料から構成される結合組織体形成基材を、人体以外の生体内に配置する工程と、
     前記生体内の前記結合組織体形成基材が配置された空間から、前記生体外より経皮的かつ経管的に空気を抜く工程と、
     前記組織形成面上に、結合組織体を形成させる工程と、
     前記結合組織体が形成された結合組織体形成基材を、前記生体内から取り出す工程と、
     前記結合組織体を前記結合組織体形成基材から剥離させる工程と、
     を備える結合組織体の製造方法。
  12.  前記結合組織体がカプセル化反応により形成される請求項11に記載の結合組織体の製造方法。
  13.  再生医療用の結合組織体であって、
     生体由来の第1の繊維状コラーゲンを備える表面層と、
     生体由来の第2の繊維状コラーゲンを備える非表面層部分とを備え、
     前記表面層の前記第1の繊維状コラーゲンは、第1の微視的構造と第1の緻密度とを有しており、
     前記非表面層部分の前記第2の繊維状コラーゲンは、前記第1の微視的構造とは異なる第2の微視的構造と、前記第1の緻密度よりも小さい第2の緻密度とを有しており、
     前記表面層と前記非表面層部分とは、前記第1の繊維状コラーゲンの前記第1の緻密度と前記第2の繊維状コラーゲンの前記第2の緻密度との違い、及び、前記第1の繊維状コラーゲンの前記第1の微視的構造と前記第2の繊維状コラーゲンの前記第2の微視的構造との違いに由来する壁乖離構造を形成する、
    結合組織体。
  14.  前記表面層と前記非表面層部分とは、
     前記第1の緻密度と前記第2の緻密度との違い、及び、前記第1の微視的構造と前記第2の微視的構造との違いのみによる層境界を形成する、
    請求項13に記載の結合組織体。
  15.  前記第1の微視的構造及び前記第1の緻密度は、前記表面層に、第1の血液染み込みにくさを与え、
     前記第2の微視的構造及び前記第2の緻密度は、前記非表面層部分に、第2の血液染み込みにくさを与え、
     前記表面層の前記第1の血液染み込みにくさは、前記非表面層部分の前記第2の血液染み込みにくさよりも高い、請求項13に記載の結合組織体。
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