WO2020189721A1 - 細胞および組織内脂質滴の蛍光イメージング試薬 - Google Patents
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Definitions
- the present invention relates to a fluorescence imaging reagent for lipid droplets in cells and tissues.
- Lipid droplets are spherical organelles in which neutral lipids such as triacylglycerol and cholesterol ester are surrounded by a single-layer phospholipid membrane. It is abundant mainly in adipocytes, but is universally present in all cells. Until now, lipid droplets have been mainly responsible for the storage of triglycerides, but recent studies have revealed that they are involved in the regulation of intracellular lipid metabolism. In addition, research on the mechanism of formation, growth, and decomposition of lipid droplets is progressing, such as reports on lipid droplets and autophagy. On the other hand, excessive accumulation of fat in tissues (individuals) leads to tissue dysfunction and causes the onset of diabetes and arteriosclerosis.
- neutral lipids such as triacylglycerol and cholesterol ester
- NASH non-alcoholic steatohepatitis
- the fluorescence imaging method is a method for easily imaging cells and tissues in a living state, and is widely used in biological and medical research.
- Figure 1 shows the lipid droplet fluorescence imaging reagents currently on the market.
- BODIPY493 / 503 and Nile Red are used by many researchers.
- BODIPY493 / 503 shows green fluorescence near 500 nm and has high lipid droplet selectivity.
- problems such as low photostability, low lipid droplet retention, and small leakage of excitation light due to a small Stokes shift (energy difference between absorption maximum wavelength and fluorescence maximum wavelength).
- Patent Document 1 reports an oil droplet dyeing agent using a condensed thiophene compound, but since the peak of excitation light is widely present in this compound from blue to green, imaging overlaps and multiple colors are obtained. Imaging is difficult.
- LipiDye and Lipi series were developed. Although these reagents can selectively image intracellular lipid droplets, there is no knowledge about lipid droplet imaging in living tissues.
- fluorescent reagents for lipid droplet imaging are limited to cultured cells.
- MNs-NB which is a non-commercial compound, also has many problems in practical use. Therefore, it is an object of the present invention to provide a fluorescent reagent capable of highly sensitive imaging of lipid droplets from the cultured cell level to the individual level. It is considered that such fluorescent reagents can greatly contribute to the development of diagnostic agents and therapeutic agents for diseases caused by excessive accumulation of fat.
- the present inventors have developed a reagent having a coumarin skeleton, and by using this reagent, it is possible to selectively perform fluorescence imaging of lipid droplets in cells and tissues.
- the heading, the present invention was completed. That is, the gist of the present invention relates to the following.
- a reagent for detecting lipid droplets which comprises a compound represented by the following general formula (I).
- n indicates an integer from 0 to 5
- X is selected from the group consisting of sulfur atoms, oxygen atoms and groups represented by NR, R is a hydrogen atom or a group represented by-(CH 2 ) y CH 3 and y indicates an integer from 0 to 5.
- n indicates an integer from 0 to 5
- X' is selected from the group consisting of oxygen atoms and groups represented by NR', R'is the group represented by-(CH 2 ) y CH 3 and y indicates an integer from 0 to 5.
- FIG. 1 shows a structural formula of a commercially available lipid droplet fluorescence imaging reagent.
- FIG. 2 shows the structural formula of the Nile Blue derivative (MNs-NB).
- FIG. 3 shows the structural formula of the compound according to one aspect of the present invention synthesized in Examples.
- FIG. 4 shows the absorption / fluorescence spectrum of the compound (PC6S) of the present invention.
- FIG. 5 shows the absorption / fluorescence spectra of the compounds (PC6O, PC6NH, PC6NMe) according to one aspect of the present invention.
- FIG. 6 shows a fluorescence imaging image (drawing substitute photograph) obtained by adding PC6S and a commercially available lipid droplet imaging reagent to HeLa cells.
- FIG. 1 shows a structural formula of a commercially available lipid droplet fluorescence imaging reagent.
- FIG. 2 shows the structural formula of the Nile Blue derivative (MNs-NB).
- FIG. 3 shows the structural formula of the compound according to one
- FIG. 7 shows the evaluation results of intracellular photostability of PC6S and a commercially available lipid droplet imaging reagent.
- FIG. 8 shows the evaluation results (drawing substitute photograph) of the intracellular retention of PC6S and a commercially available lipid droplet imaging reagent.
- FIG. 9 shows an intensity image and a lifespan image (drawing substitute photograph) of the surface of the mouse liver to which PC6S was administered.
- FIG. 10 shows a fluorescence intensity imaging image (drawing substitute photograph) of adipose tissue and lipid droplets in a mouse to which PC6S was administered.
- m represents an integer from 0 to 5. From a synthetic point of view, m is preferably an integer between 0 and 2. From the viewpoint of solubility, m is preferably an integer of 1 to 2, and more preferably m is 1.
- n represents an integer from 0 to 5. From a synthetic point of view, n is preferably an integer between 0 and 2. From the viewpoint of solubility, m is preferably an integer of 1 to 2, and more preferably n is 1.
- X is chosen from the group consisting of sulfur atoms, oxygen atoms and groups represented by NR, R is a hydrogen atom or a group represented by ⁇ (CH 2 ) y CH 3 , and y is 0. Indicates an integer of ⁇ 5. From a synthetic point of view, y is preferably an integer of 0 to 2, and more preferably y is 0.
- the fluorescence photophysical properties of the compound represented by the general formula (I), such as absorption / fluorescence maximum wavelength, fluorescence quantum yield ( ⁇ f ), and fluorescence lifetime ( ⁇ f ), are measured by a known measurement method. be able to.
- the absorption / fluorescence maximum wavelength and the fluorescence yield can be measured as a sample in which the compound represented by the general formula (I) is dissolved in a solvent or the like using an emission quantum yield measuring device or the like.
- the fluorescence lifetime ( ⁇ f ) of the compound in each solvent can be measured using a fluorescence lifetime measuring device.
- the fluorescence quantum yield ( ⁇ f ) can be changed depending on the structure of the compound, the type of solvent, and the like, and is not particularly limited, but is, for example, 0.5 or more, 0.7 or more, or 0.8 or more.
- the fluorescence lifetime ( ⁇ f ) can be changed depending on the structure of the compound, the type of solvent, etc., and is not particularly limited, but is, for example, 2.0 ns (nanoseconds) or more, 2.5 ns or more, 3.0 ns or more, or 3.5 ns or more. ..
- the maximum excitation wavelength of the compound represented by the general formula (I) in the solvent can be changed depending on the structure of the compound, the type of solvent, etc., and is not particularly limited, but is, for example, 430 nm to 510 nm. Further, the maximum fluorescence wavelength in the solvent can be appropriately set, and is, for example, 480 nm to 650 nm.
- the reagent for detecting lipid droplets of the present invention contains a compound having the above structure. With this structure, it has excellent photophysical properties in fluorescence (fluorescence quantum yield, fluorescence lifetime, Stokes shift, etc.). In particular, since it has the above-mentioned excellent photophysical properties in various solvents, it is useful as a reagent for detecting lipid droplets not only in cells but also in living individuals. In addition, the above structure has excellent lipid droplet selectivity and intracellular retention. Therefore, it can be used as a reagent for detecting highly specific lipid droplets.
- the reagent for detecting lipid droplets of the present invention may be composed only of the compound represented by the general formula (I), and the reagent for detecting solvents, additives and lipid droplets may be used as long as the effects of the present invention are not impaired. It may further contain a compound other than the compound of the present invention used as.
- One aspect of the present invention includes a step of administering a reagent for detecting a lipid droplet of the present invention to a biological sample or a living individual (excluding humans), a method for detecting a lipid droplet (hereinafter, "the lipid droplet of the present invention”). (Detection method).
- Another aspect of the present invention relates to a method for detecting lipid droplets, in which a solution containing the reagent for detecting lipid droplets and a lysis aid of the present invention is administered to a biological sample or an individual (excluding humans).
- the compound represented by the general formula (I) used as a reagent for detecting lipid droplets may exhibit poor water solubility.
- a solution prepared by dissolving the compound represented by the general formula (I) in an organic solvent in which the compound represented by the general formula (I) is dissolved and mixing it with an aqueous solution containing a solubilizing agent is used as a living body. It can be administered to a sample or a living individual (excluding humans).
- the lysis aid is not limited as long as it can impart water solubility to the compound represented by the general formula (I) and has biocompatibility, and is biocompatible with, for example, albumin, gelatin, casein and the like. Sex proteins are preferred.
- the dissolution aid can be used alone or in admixture of two or more.
- the solubilizing agent can be used in an aqueous solution in an amount of, for example, 1 to 30% by mass, preferably 5 to 20% by mass, and more preferably 7.5 to 10% by mass.
- the compound represented by the general formula (I) can be appropriately adjusted, but in a solution prepared by mixing an organic solvent in which the compound represented by the general formula (I) is dissolved and an aqueous solution containing a solubilizing agent. In addition, for example, it can be used at 0.01 to 50 mM, preferably 0.1 to 5 mM, and more preferably 0.5 to 1 mM.
- the method for detecting lipid droplets of the present invention can further include a step of detecting the reagent for detecting lipid droplets of the present invention. The detection of the reagent for detecting lipid droplets can be performed based on a known method for detecting a fluorescent reagent.
- the reagent for detecting lipid droplets of the present invention can be used, for example, as a reagent for detecting lipid droplets in a biological sample.
- the biological sample is, but is not limited to, for example, cells or isolated tissue.
- the reagent for detecting lipid droplets of the present invention can be applied and detected in a living body, and is used as a detection reagent for detecting lipid droplets in cells, tissues, etc. in a living individual. be able to.
- the amount of the reagent for detecting lipid droplets of the present invention added to cells can be appropriately changed depending on the cells used, the ratio of lipid droplets, etc., and for example, the final concentration is 0.01 to 100 ⁇ M, preferably 0.1 to 10 ⁇ M. Can be added to cells with.
- the solvent is not limited, and for example, an organic solvent such as n-hexane, dibutyl ether, ethyl acetate, acetonitrile, or dimethyl sulfoxide. Etc. can be used.
- the cell to which the reagent for detecting lipid droplets of the present invention is added is not particularly limited as long as it contains or is expected to contain lipid droplets, and examples thereof include 3T3-L1 cells and isolated adipocytes. Be done.
- cells that do not contain lipid droplets or cells in which lipid droplets are artificially formed in cells having a low content of lipid droplets may be used.
- cells that do not contain lipid droplets or cells that have a low content of lipid droplets include HeLa cells, UEET-12 cells, NIH3T3 cells, and the like.
- Examples of the method for forming lipid droplets include a method for inducing lipid droplets by adding oleic acid to cells or the like.
- the lipid droplet detection reagent of the present invention can specifically detect lipid droplets in tissues, lipid droplets in living organisms (living organisms), and adipose tissue. Therefore, it is useful as a reagent for detecting lipid droplets in tissues, lipid droplets in vivo, and adipose tissue.
- the detection of lipid droplets present in the tissue can be performed, for example, as follows.
- the reagent for detecting lipid droplets of the present invention is added to tissues containing or expected to contain lipid droplets. Then, by observing the fluorescence signal of the reagent for detecting lipid droplets of the present invention with a fluorescence microscope or the like, the lipid droplets contained in the tissue can be detected.
- the amount of the reagent for detecting lipid droplets of the present invention added to the tissue can be appropriately changed depending on the tissue used, the proportion of lipid droplets, etc., and for example, the final concentration is 0.01 to 100 ⁇ M, preferably 0.1 to 10 ⁇ M.
- the solvent is not limited, but is, for example, an organic solvent such as n-hexane, dibutyl ether, ethyl acetate, acetonitrile, or dimethyl sulfoxide. Etc. can be used.
- it can be administered in combination with a biocompatible liquid.
- tissue detected by the lipid droplet detection reagent of the present invention is not limited, and is accumulated in, for example, subcutaneous fat, visceral fat, and ectopic fat (for example, muscle, liver, heart, pancreas, kidney, and other organs. Fat) and the like.
- the detection of lipid droplets existing in a living body can be performed, for example, as follows.
- the reagent for detecting lipid droplets of the present invention is administered to a living individual. After that, by observing the fluorescence signal of the reagent for detecting lipid droplets of the present invention using a biological imaging method or the like using a confocal microscope or the like, the living individual is not immobilized and is in vivo. Adipose tissue can be detected.
- Examples of the administration form of the reagent for detecting lipid droplets of the present invention include intravenous administration, subcutaneous administration, and intramuscular administration.
- a solution prepared by mixing an organic solvent containing a reagent for detecting lipid droplets of the present invention and an aqueous solution containing a solubilizing agent can be added to an individual living body.
- the individual organism to be administered is not particularly limited, and examples thereof include vertebrates and invertebrates including mammals (mouse, human, pig, dog, rabbit, human, etc.).
- the compound represented by the following general formula (I)' is a novel compound synthesized by the present invention. That is, one aspect of the present invention relates to a compound represented by the following general formula (I)'(hereinafter, may be referred to as "compound of the present invention”).
- the compound represented by the general formula (I)' is a compound having the following structure.
- ⁇ 7- (diethylamino) naphthalene-2-ol (1)> A mixture of 2,7-dihydroxynaphthalene (3.0 g, 18.7 mmol), sodium metabisulfite (7.11 g, 37.4 mmol), diethylamine (9.7 mL, 93.5 mmol), and water (7 mL) was prepared using a seal tube. The mixture was stirred at 140 ° C. for 6 hours. After air cooling, it was added to dichloromethane in the reaction solution and washed with water several times. The organic layer was dried over anhydrous sodium sulfate and concentrated.
- the precipitated solid is filtered, and the filtrate is produced using an automatic flash purification device (Isolera Spektra, Biotage) (silica gel column, developing solvent: n-hexane: ethyl acetate (1: 1, v / v), compound PC6O. (Yield: 138 mg, 72%).
- ⁇ Measurement method> Measurement of absorption maximum wavelength, fluorescence maximum wavelength and fluorescence quantum yield
- an emission quantum yield measuring device C9920-01; manufactured by Hamamatsu Photonics
- the absorption maximum wavelength ( ⁇ abs / nm), fluorescence maximum wavelength ( ⁇ flu / nm) and fluorescence quantum yield ( ⁇ ) of the above compounds in each solvent. f ) was measured.
- the absorption spectrum was measured using an ultraviolet-visible spectrophotometer (Ubest-550; manufactured by JASCO Corporation), and the fluorescence emission spectrum was measured using a fluorescence spectrophotometer (F-7000; manufactured by Hitachi).
- the fluorescence lifetime ( ⁇ f ) of the above compound in each solvent was measured using a small fluorescence lifetime measuring device (Quntaurus-Tau; manufactured by Hamamatsu Photonics).
- Example 1 The compound of the present invention synthesized in the above production example (Fig. 3, PC6S, PC6O, PC6NH, PC6NMe) has an 8-diethylaminobenzocoumarin skeleton.
- Figure 4 shows the absorption and fluorescence spectra of PC6S in each solvent.
- Table 1 shows the photophysical parameters. The absorption maximum wavelength is observed at 455 to 504 nm, and the fluorescence maximum wavelength is observed at 498 to 642 nm, and each maximum wavelength shows a long wavelength shift as the polarity of the solvent increases.
- the fluorescence quantum yield is 0.8 or higher in all solvents.
- Figure 5 shows the absorption / fluorescence spectra of PC6O, PC6NH, and PC6NMe in dibutyl ether and acetonitrile, and Table 2 shows the photophysical parameters.
- Example 2 For lipid droplet imaging in cultured cells, a performance comparison experiment was conducted between PC6S and commercially available lipid droplet fluorescence imaging reagents (LipiDye, Nile Red, BODIPY493 / 503, Lipi Green). The items were luminescence intensity, lipid droplet selectivity, photostability, and retention.
- each fluorescent reagent was added to HeLa cells cultured for 48 hours in the presence of 400 ⁇ M oleic acid to a final concentration of 100 nM, cultured for 30 minutes, washed, and then inverted fluorescence microscope (IX71; manufactured by Olympus). Fluorescence imaging image observed using (objective lens: 100 times oil immersion, excitation wavelength: 450-500 nm, observation wavelength: 515-565 nm, LipiDye excitation wavelength: 400-440 nm, observation wavelength:> 475 nm) Is shown.
- the HeLa cells supplemented with PC6S, LipiDye, and NileRed have higher fluorescence intensities than the HeLa cells supplemented with BODIPY493 / 503 and LipiGreen.
- PC6S and LipiDye can clearly image lipid droplets in HeLa cells, fluorescent signals are also observed from organelles other than lipid droplets in Nile Red. This indicates that Nile Red has low lipid drop selectivity, which is consistent with previous reports.
- LipiDye is a reagent that exhibits green fluorescence, but it is not possible to use a filter for a general-purpose green fluorescent reagent (notes are described in the reagent HP). In LipiDye, it is necessary to use an excitation wavelength near 405 nm, and there is concern about phototoxicity to cells during long-term observation.
- Photostability and retention are important factors in long-term measurements such as tracking the formation, fusion, and degradation processes of lipid droplets.
- Each fluorescent reagent is added to 3T3-L1 cells (adipocytes) to a final concentration of 100 nM, cultured for 30 minutes, washed, and then the excitation light required for imaging (450-500 nm, LipiDye has an excitation wavelength: 400- The light stability was evaluated by irradiating with 440 nm). Immediately after irradiation was set to 0 seconds, imaging images were acquired every 20 seconds, and the intensity of the images was analyzed.
- Figure 7 shows a plot of the fluorescence intensity ratio with respect to the irradiation time (I t / I 0). It was revealed that PC6S has the highest photostability compared with commercially available reagents.
- each fluorescent reagent was added to 3T3-L1 cells (adipocytes) to a final concentration of 100 nM (Lipi-Green is 500 nM), and after culturing for 30 minutes. And imaging images were taken 24 hours after washing the reagents.
- Figure 8 shows a fluorescence imaging image. While PC6S, Lipi-Green, and LipiDye can perform lipid droplet imaging even after 24 hours, BODIPY493 / 503 and Nile Red have a marked decrease in fluorescence intensity. Therefore, it was shown that PC6S, Lipi-Green, and LipiDye have high intracellular retention.
- Example 3 Fluorescence imaging of lipid droplets and adipose tissue in living tissues using PC6S is shown.
- PC6S has extremely low solubility in water (saline), so it is difficult to dissolve it directly.
- saline water
- DMSO dimethyl sulfoxide
- PC6S precipitates and cannot be administered to mice. Therefore, when a 5 mM stock solution was added to a physiological saline solution containing 10% bovine serum albumin (10% by volume), the precipitation of PC6S could be suppressed.
- MNs-NB a stock solution of DMSO is directly administered to mice.
- DMSO may cause shock death in mice, and the administration method in the present invention is considered to be a safer method.
- 100 to 200 ⁇ L (50 to 100 nmol) of a 500 ⁇ M solution was administered to the tail vein of anesthetized mice, and a fluorescence imaging experiment using a confocal laser scanning microscope (excitation wavelength: 488 nm, observation wavelength:: 510-560 nm) was performed.
- a microscope FLIM: fluorescence lifetime imaging microscope
- Scen-Tau-150-DX Becker & Hickl
- fatty liver model mice have a large amount of lipid droplets accumulated in the liver as compared with normal mice.
- mice C57BL / 6J
- mice were fed an ultra-high-fat choline-deficient methionine-reduced diet for 2 or 10 weeks to prepare fatty liver model mice.
- FIG. 9 shows a fluorescence intensity imaging image and a fluorescence lifetime imaging image obtained by administering 100 nmol of PC6S to a normal mouse and a fatty liver model mouse.
- small lipid droplets can be confirmed in hepatocytes.
- large lipid droplets were imaged over the entire liver surface, indicating that lipids were accumulated in the liver.
- mice fed the fat diet for 10 weeks in addition to the fluorescence from the lipid droplets, strong fluorescence was observed from the structure having a shape different from that of the lipid droplets. It is considered that this is autofluorescence caused by macrophage-derived cells infiltrating with liver fibrosis. Intensity imaging cannot clearly image lipid droplets, but longevity imaging can distinguish between autofluorescence (blue) and PC6S fluorescence (orange).
- FIG. 10 shows fluorescence imaging images of subcutaneous adipose tissue, abdominal adipose tissue, skeletal muscle, myocardium, pericardiac adipose tissue, and kidney obtained by administering PC6S to 50 nmol mice (BALB / cAJcl). Imaging images of myocardium and pericardial adipose tissue were taken after the mice were euthanized and removed. Fluorescence derived from PC6S is observed from the place where lipids are accumulated. Especially in the kidney, small lipid droplets distributed in renal tubular cells can be imaged, and it can be used as a tool for studying the relationship between lifestyle-related diseases such as diabetes and renal dysfunction in the future. Be expected.
- Non-laparotomy imaging of lipid droplets in living tissue and adipose tissue using PC6S is shown.
- Nude mice were fed a high-fat diet for 2 weeks to prepare fatty liver model mice.
- PC6S 50 nmol was administered from the tail vein of anesthetized nude mice. The image was taken with a simple in vivo imaging device (Discovery (registered trademark); INDEC BioSystem) (nude mouse is on his back). Excitation wavelength: 450-490 nm, observation wavelength: 520 nm or more.
- FIG. 11 shows a non-laparotomy imaging image of a nude mouse.
- the fluorescence imaging reagent of the present invention can be applied to and detected on a non-immobilized biological sample and a living body, but can also be used on an immobilized sample.
- HeLa cells cultured for 48 hours in the presence of 400 ⁇ M oleic acid were fixed in 4% paraformaldehyde / phosphate buffer for 20 minutes, PC6S was added to a final concentration of 100 nM, cultured for 30 minutes, and then washed. Similar to Example 2, fluorescence imaging images were acquired using an inverted fluorescence microscope. As a result, fluorescence of PC6S was also detected in the immobilized HeLa cells.
- the fluorescent imaging reagent developed by the present invention is a new reagent capable of imaging intracellular lipid droplets and adipose tissue and lipid droplets in a living individual.
- the present invention can be used for fluorescence imaging of lipid droplets of a biological sample or a living individual.
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Abstract
培養細胞レベルから個体レベルにおける脂質滴を高感度にイメージングできる蛍光試薬を提供することを課題とする。下記一般式(I)で表される化合物を含む、脂質滴の検出用試薬を提供する。（式中、ｍは、０～５の整数を示し、ｎは、０～５の整数を示し、Ｘは、硫黄原子、酸素原子およびＮＲで示される基からなる群から選ばれ、Ｒは、水素原子または―（ＣＨ２）ｙＣＨ３で示される基であり、ｙは０～５のの整数を示す。）
Description
本発明は、細胞および組織内脂質滴の蛍光イメージング試薬に関する。
脂質滴（脂肪滴）は、トリアシルグリセロールやコレステロールエステルなどの中性脂質が、単層のりん脂質膜で取り囲まれた球状の細胞内小器官である。主に脂肪細胞内で多く見られるが、どの細胞でも普遍的に存在している。これまで脂質滴は、中性脂質の貯蔵が主な役割とされてきたが、近年の研究において、細胞内の脂質代謝制御に関与していることが明らかとなった。また、脂質滴とオートファジーに関する研究が報告されるなど、脂質滴の形成・成長・分解の機構に関する研究が進展しつつある。一方、組織（個体）における脂肪の過剰な蓄積は、組織の機能不全に繋がり、糖尿病や動脈硬化などの発症を引き起こす。また、近年、肝炎の1種である非アルコール性脂肪肝炎（NASH）の発症が急増している。NASHを放置すると、肝硬変や肝がんへと進行する危険性がある。よって、細胞および組織内における脂質滴の形成・成長・分解の機構を解明することは、細胞生物学だけでなく、上記疾患の診断・治療において重要である。そのため、生きた細胞や組織内の脂質滴を高感度にリアルタイムイメージングするための分子プローブの開発が必要とされている。
蛍光イメージング法は、細胞や組織を生きた状態で簡便にイメージングする方法であり、生物・医学研究において汎用的に用いられている。学術レベルにおいて、脂質滴をイメージングする蛍光試薬は数多く報告されているが、実用化されている試薬は数種類に限られる。図1に現在市販されている脂質滴蛍光イメージング試薬を示す。BODIPY493/503、Nile Redは、多くの研究者が使用している。BODIPY493/503は、500 nm付近に緑色蛍光を示し、脂質滴選択性も高い。しかしながら、光安定性が高くない、脂質滴滞留性が低い、ストークスシフト（吸収極大波長と蛍光極大波長のエネルギー差）が小さいことに由来する励起光の漏れなどの問題点がある。また、Nile redは、脂質滴以外の細胞内小器官にも多く分布するため、脂質滴選択性が低い。さらに、周辺の微環境に依存して吸収および蛍光スペクトルが大きく変化するため、他の蛍光試薬との多重染色が困難である。また、特許文献１には、縮環チオフェン化合物を用いた油滴染色剤が報告されているが、同化合物は励起光のピークが青色から緑色まで広く存在しているため、イメージングが重なり多色イメージングが困難である。これらの問題を解決するために、LipiDye、Lipi series（Lipi-Blue，Lipi-Green，Lipi-Red）が開発された。これらの試薬は、細胞内脂質滴を選択的にイメージングすることは可能であるが、生きた組織内の脂質滴イメージングについては知見がない。
生きた組織内の脂質滴イメージングに関しては、ニトロベンゼン類を置換したNile Blue誘導体（MNs-NB，図2）が特許文献２として報告されている。MNs-NBは、極性溶媒中ではニトロベンゼンユニットとNile blue間において光誘起電子移動反応が起こる。一方、低極性溶媒では、光誘起電子移動反応が起こりにくくなり赤色蛍光を示す。MNs-NBは、組織内の脂質滴イメージングが可能な試薬ではあるが、蛍光量子収率が小さい（0.21：クロロホルム中）、ストークスシフトが小さいなどの問題点がある。
上述のとおり、現在市販されている脂質滴イメージングのための蛍光試薬は、培養細胞に限定されている。また、非市販化合物であるMNs-NBも実用化については多くの問題点が残る。したがって、本発明は、培養細胞レベルから個体レベルにおける脂質滴を高感度にイメージングできる蛍光試薬を提供することを課題とする。このような蛍光試薬により、脂肪の過剰蓄積に由来する疾患の診断薬や治療薬の開発に大きく貢献できると考えられる。
本発明者らは、上記課題を解決すべく鋭意検討を行った結果、クマリン骨格を有する試薬を開発し、同試薬を用いることで、細胞および組織内の脂質滴を選択的に蛍光イメージングできることを見出し、本発明を完成した。
すなわち、本発明の要旨は以下に関する。
すなわち、本発明の要旨は以下に関する。
［１］
下記一般式(I)で表される化合物を含む、脂質滴の検出用試薬。
下記一般式(I)で表される化合物を含む、脂質滴の検出用試薬。
（式中、
mは、0～5の整数を示し、
nは、0～5の整数を示し、
Xは、硫黄原子、酸素原子およびNRで示される基からなる群から選ばれ、
Rは、水素原子または－(CH2)yCH3で示される基であり、
yは、0～5の整数を示す。）
mは、0～5の整数を示し、
nは、0～5の整数を示し、
Xは、硫黄原子、酸素原子およびNRで示される基からなる群から選ばれ、
Rは、水素原子または－(CH2)yCH3で示される基であり、
yは、0～5の整数を示す。）
［２］
mおよびnが1である、［１］に記載の検出用試薬。
［３］
yが0である、［１］または［２］に記載の検出用試薬。
［４］
生体試料における脂質滴を検出するための、［１］～［３］のいずれかに記載の検出用試薬。
［５］
生体試料が、細胞または組織である、［４］に記載の検出用試薬。
［６］
生体個体における脂質滴を検出するための、［１］～［３］のいずれかに記載の検出用試薬。
［７］
［１］～［６］のいずれかに記載の検出用試薬を、生体試料または生体個体（ヒトを除く）に投与する工程、
を含む、脂質滴の検出方法。
［８］
検出用試薬および溶解補助剤を含む溶液を、生体試料または生体個体（ヒトを除く）に投与する、［７］に記載の脂質滴の検出方法。
［９］
溶解補助剤が、アルブミンである、［８］に記載の脂質滴の検出方法。
［１０］
下記一般式(I)’で表される化合物。
mおよびnが1である、［１］に記載の検出用試薬。
［３］
yが0である、［１］または［２］に記載の検出用試薬。
［４］
生体試料における脂質滴を検出するための、［１］～［３］のいずれかに記載の検出用試薬。
［５］
生体試料が、細胞または組織である、［４］に記載の検出用試薬。
［６］
生体個体における脂質滴を検出するための、［１］～［３］のいずれかに記載の検出用試薬。
［７］
［１］～［６］のいずれかに記載の検出用試薬を、生体試料または生体個体（ヒトを除く）に投与する工程、
を含む、脂質滴の検出方法。
［８］
検出用試薬および溶解補助剤を含む溶液を、生体試料または生体個体（ヒトを除く）に投与する、［７］に記載の脂質滴の検出方法。
［９］
溶解補助剤が、アルブミンである、［８］に記載の脂質滴の検出方法。
［１０］
下記一般式(I)’で表される化合物。
（式中、
mは、0～5の整数を示し、
nは、0～5の整数を示し、
X’は、酸素原子およびNR’で示される基からなる群から選ばれ、
R’は、－(CH2)yCH3で示される基であり、
yは、0～5の整数を示す。）
mは、0～5の整数を示し、
nは、0～5の整数を示し、
X’は、酸素原子およびNR’で示される基からなる群から選ばれ、
R’は、－(CH2)yCH3で示される基であり、
yは、0～5の整数を示す。）
［１１］
mおよびnが1である、［１０］に記載の化合物。
［１２］
yが0である、［１０］または［１１］に記載の化合物。
mおよびnが1である、［１０］に記載の化合物。
［１２］
yが0である、［１０］または［１１］に記載の化合物。
本発明によれば、細胞および組織内の脂質滴を選択的に蛍光イメージングできる試薬を提供することができる。
以下、本発明について説明する。
＜脂質滴の検出用試薬＞
本発明の一態様は、下記一般式(I)で表される化合物を含む、脂質滴の検出用試薬（以下、「本発明の脂質滴の検出用試薬」ということがある。）に関する。ここで、脂質滴とは、例えば細胞内に含まれる、脂質を含む球形の液滴を意味する。
一般式(I)で表される化合物は、以下の構造を有する化合物である。
＜脂質滴の検出用試薬＞
本発明の一態様は、下記一般式(I)で表される化合物を含む、脂質滴の検出用試薬（以下、「本発明の脂質滴の検出用試薬」ということがある。）に関する。ここで、脂質滴とは、例えば細胞内に含まれる、脂質を含む球形の液滴を意味する。
一般式(I)で表される化合物は、以下の構造を有する化合物である。
一般式(I)において、mは0～5の整数を示す。合成上の観点から、好ましくはmは0～2の整数である。また、溶解性の観点から、好ましくはmは1～2の整数であり、より好ましくはmは1である。
一般式(I)において、nは0～5の整数を示す。合成上の観点から、好ましくはnは0～2の整数である。また、溶解性の観点から、好ましくはmは1～2の整数であり、より好ましくはnは1である。
一般式(I)において、Xは硫黄原子、酸素原子およびNRで示される基からなる群から選ばれ、Rは水素原子または－(CH2)yCH3で示される基であり、yは0～5の整数を示す。合成上の観点から、好ましくはyは0～2の整数であり、より好ましくはyは0である。
一般式(I)において、nは0～5の整数を示す。合成上の観点から、好ましくはnは0～2の整数である。また、溶解性の観点から、好ましくはmは1～2の整数であり、より好ましくはnは1である。
一般式(I)において、Xは硫黄原子、酸素原子およびNRで示される基からなる群から選ばれ、Rは水素原子または－(CH2)yCH3で示される基であり、yは0～5の整数を示す。合成上の観点から、好ましくはyは0～2の整数であり、より好ましくはyは0である。
上記一般式(I)で表される化合物の具体例として、下記に列挙される化合物が挙げられるが、本発明はこれに限定されるものではない。
一般式(I)で表される化合物の蛍光の光物理特性、例えば、吸収・蛍光極大波長、蛍光量子収率（Φf）および蛍光寿命（τf）等は、公知の測定方法によって測定することができる。例えば、吸収・蛍光極大波長、蛍光収率は、発光量子収率測定装置等を用い、一般式(I)で表される化合物を溶媒等に溶解させた試料として測定することができる。蛍光寿命は、蛍光寿命測定装置を用いて、各溶媒中における上記化合物の蛍光寿命（τｆ）を測定することができる。
蛍光量子収率（Φf）は、化合物の構造、溶媒の種類等により変更可能であり、特に限定されないが、例えば、0.5以上、0.7以上、または0.8以上である。
蛍光寿命（τｆ）は、化合物の構造、溶媒の種類等により変更可能であり、特に限定されないが、例えば、2.0 ns（ナノ秒）以上、2.5 ns以上、3.0 ns以上または3.5 ns以上である。
蛍光量子収率（Φf）は、化合物の構造、溶媒の種類等により変更可能であり、特に限定されないが、例えば、0.5以上、0.7以上、または0.8以上である。
蛍光寿命（τｆ）は、化合物の構造、溶媒の種類等により変更可能であり、特に限定されないが、例えば、2.0 ns（ナノ秒）以上、2.5 ns以上、3.0 ns以上または3.5 ns以上である。
一般式(I)で表される化合物における溶媒中での最大励起波長は、化合物の構造、溶媒の種類等により変更可能であり、特に限定されないが、例えば、430 nm～510 nmである。また、溶媒中での最大蛍光波長も適宜設定され得るが、例えば、480 nm～650 nmである。
≪化合物の製造方法≫
一般式(I)で表される化合物は、後記実施例の記載および公知の有機合成方法に基づいて製造することができる。
一般式(I)で表される化合物は、後記実施例の記載および公知の有機合成方法に基づいて製造することができる。
≪試薬≫
本発明の脂質滴の検出用試薬は、上記構造を有する化合物を含む。この構造であることで、蛍光における優れた光物理特性（蛍光量子収率、蛍光寿命およびストークスシフト等）を有する。特に、各種溶媒において上記のような優れた光物理特性を有することから、細胞だけでなく、生きた個体における脂質滴の検出用試薬として有用である。また、上記構造とすることで、優れた脂質滴選択性および細胞内滞留性を有する。このため、特異性の高い脂質滴の検出用試薬として使用可能である。
本発明の脂質滴の検出用試薬は、上記構造を有する化合物を含む。この構造であることで、蛍光における優れた光物理特性（蛍光量子収率、蛍光寿命およびストークスシフト等）を有する。特に、各種溶媒において上記のような優れた光物理特性を有することから、細胞だけでなく、生きた個体における脂質滴の検出用試薬として有用である。また、上記構造とすることで、優れた脂質滴選択性および細胞内滞留性を有する。このため、特異性の高い脂質滴の検出用試薬として使用可能である。
本発明の脂質滴の検出用試薬は、一般式(I)で表される化合物のみから構成されていてもよく、本発明の効果を妨げない限り、溶媒、添加物および脂質滴の検出用試薬として用いられる本発明の化合物以外の化合物をさらに含んでもよい。
＜脂質滴の検出方法＞
本発明の一態様は、本発明の脂質滴の検出用試薬を、生体試料または生体個体（ヒトを除く）に投与する工程、を含む、脂質滴の検出方法（以下、「本発明の脂質滴の検出方法」ということがある。）に関する。
また、本発明の別の一態様は、本発明の脂質滴の検出用試薬および溶解補助剤を含む溶液を、生体試料または生体個体（ヒトを除く）に投与する、脂質滴の検出方法に関する。脂質滴の検出用試薬として用いる一般式(I)で表される化合物は、難水溶性を示す場合がある。この場合、一般式(I)で表される化合物を、一般式(I)で表される化合物が溶解する有機溶媒に溶解させ、溶解補助剤を含む水溶液と混合して調製した溶液を、生体試料または生体個体（ヒトを除く）に投与することができる。溶解補助剤は、一般式(I)で表される化合物に水溶性を付与することができ、生体適合性を有するものであれば、限定されず、例えば、アルブミン、ゼラチン、カゼイン等の生体適合性タンパク質が好ましい。溶解補助剤は、1種又は2種以上を混合して用いることができる。溶解補助剤は、水溶液中に、例えば1～30質量%、好ましくは5～20質量%、より好ましくは7.5～10質量%で用いることができる。一般式(I)で表される化合物は、適宜調整可能であるが、一般式(I)で表される化合物が溶解する有機溶媒と、溶解補助剤を含む水溶液と混合して調製した溶液中に、例えば0.01～50 mM、好ましくは0.1～5 mM、より好ましくは0.5～1 mMで用いることができる。
本発明の脂質滴の検出方法は、さらに、本発明の脂質滴の検出用試薬を検出する工程を含むことができる。脂質滴の検出用試薬の検出は、公知の蛍光試薬の検出方法に基づき、行うことができる。
本発明の一態様は、本発明の脂質滴の検出用試薬を、生体試料または生体個体（ヒトを除く）に投与する工程、を含む、脂質滴の検出方法（以下、「本発明の脂質滴の検出方法」ということがある。）に関する。
また、本発明の別の一態様は、本発明の脂質滴の検出用試薬および溶解補助剤を含む溶液を、生体試料または生体個体（ヒトを除く）に投与する、脂質滴の検出方法に関する。脂質滴の検出用試薬として用いる一般式(I)で表される化合物は、難水溶性を示す場合がある。この場合、一般式(I)で表される化合物を、一般式(I)で表される化合物が溶解する有機溶媒に溶解させ、溶解補助剤を含む水溶液と混合して調製した溶液を、生体試料または生体個体（ヒトを除く）に投与することができる。溶解補助剤は、一般式(I)で表される化合物に水溶性を付与することができ、生体適合性を有するものであれば、限定されず、例えば、アルブミン、ゼラチン、カゼイン等の生体適合性タンパク質が好ましい。溶解補助剤は、1種又は2種以上を混合して用いることができる。溶解補助剤は、水溶液中に、例えば1～30質量%、好ましくは5～20質量%、より好ましくは7.5～10質量%で用いることができる。一般式(I)で表される化合物は、適宜調整可能であるが、一般式(I)で表される化合物が溶解する有機溶媒と、溶解補助剤を含む水溶液と混合して調製した溶液中に、例えば0.01～50 mM、好ましくは0.1～5 mM、より好ましくは0.5～1 mMで用いることができる。
本発明の脂質滴の検出方法は、さらに、本発明の脂質滴の検出用試薬を検出する工程を含むことができる。脂質滴の検出用試薬の検出は、公知の蛍光試薬の検出方法に基づき、行うことができる。
本発明の脂質滴の検出用試薬は、例えば、生体試料における脂質滴を検出するための検出用試薬として使用することができる。生体試料は、限定されないが、例えば、細胞または単離された組織等である。また、本発明の脂質滴の検出用試薬は、生体に対しても適用、検出することが可能であり、生体個体中の細胞、組織等における脂質滴を検出するための検出用試薬として使用することができる。
本発明の脂質滴の検出用試薬は、細胞内に存在する脂質滴を特異的に検出することができる。したがって、細胞における脂質滴の検出用試薬として有用である。
細胞内に存在する脂質滴の検出は、例えば、以下のようにして行うことができる。
本発明の脂質滴の検出用試薬を、脂質滴を含むまたは含むことが予想される細胞に添加する。
その後、本発明の脂質滴の検出用試薬の蛍光シグナルを、蛍光顕微鏡等により観測することにより、細胞内に含まれる脂質滴を検出することができる。
細胞への本発明の脂質滴の検出用試薬の添加量は、使用する細胞や脂質滴の割合等によって適宜変更可能であるが、例えば、0.01～100 μM、好ましくは0.1～10 μMの終濃度で細胞に添加することができる。
本発明の脂質滴の検出用試薬を溶媒に溶解させてから細胞に添加する場合、溶媒としては、限定されないが、例えば、n-ヘキサン、ジブチルエーテル、酢酸エチル、アセトニトリル、ジメチルスルホキシド等の有機溶媒等を用いることができる。
本発明の脂質滴の検出用試薬を添加する細胞としては、脂質滴を含むまたは含むことが予想される細胞であれば特に制限はなく、例えば、3T3－L1細胞、単離脂肪細胞等が挙げられる。また、脂質滴を含まない細胞または脂質滴の含有量が少ない細胞中に人為的に脂質滴を形成させた細胞を用いてもよい。脂質滴を含まない細胞または脂質滴の含有量が少ない細胞としては、例えば、HeLa細胞、UEET-12細胞、NIH3T3細胞等が挙げられる。脂質滴を形成させる方法としては、例えば、オレイン酸を細胞に添加する方法等により脂質滴を誘導する方法が挙げられる。
細胞内に存在する脂質滴の検出は、例えば、以下のようにして行うことができる。
本発明の脂質滴の検出用試薬を、脂質滴を含むまたは含むことが予想される細胞に添加する。
その後、本発明の脂質滴の検出用試薬の蛍光シグナルを、蛍光顕微鏡等により観測することにより、細胞内に含まれる脂質滴を検出することができる。
細胞への本発明の脂質滴の検出用試薬の添加量は、使用する細胞や脂質滴の割合等によって適宜変更可能であるが、例えば、0.01～100 μM、好ましくは0.1～10 μMの終濃度で細胞に添加することができる。
本発明の脂質滴の検出用試薬を溶媒に溶解させてから細胞に添加する場合、溶媒としては、限定されないが、例えば、n-ヘキサン、ジブチルエーテル、酢酸エチル、アセトニトリル、ジメチルスルホキシド等の有機溶媒等を用いることができる。
本発明の脂質滴の検出用試薬を添加する細胞としては、脂質滴を含むまたは含むことが予想される細胞であれば特に制限はなく、例えば、3T3－L1細胞、単離脂肪細胞等が挙げられる。また、脂質滴を含まない細胞または脂質滴の含有量が少ない細胞中に人為的に脂質滴を形成させた細胞を用いてもよい。脂質滴を含まない細胞または脂質滴の含有量が少ない細胞としては、例えば、HeLa細胞、UEET-12細胞、NIH3T3細胞等が挙げられる。脂質滴を形成させる方法としては、例えば、オレイン酸を細胞に添加する方法等により脂質滴を誘導する方法が挙げられる。
本発明の脂質滴の検出用試薬は、組織における脂質滴や生体個体（生きている生物個体）における脂質滴および脂肪組織も特異的に検出することができる。したがって、組織における脂質滴および生体内の脂質滴および脂肪組織の検出用試薬として有用である。
組織内に存在する脂質滴の検出は、例えば、以下のようにして行うことができる。
本発明の脂質滴の検出用試薬を、脂質滴を含むまたは含むことが予想される組織に添加する。
その後、本発明の脂質滴の検出用試薬の蛍光シグナルを、蛍光顕微鏡等により観測することにより、組織内に含まれる脂質滴を検出することができる。
組織への本発明の脂質滴の検出用試薬の添加量は、使用する組織や脂質滴の割合等によって適宜変更可能であるが、例えば、0.01～100 μM、好ましくは0.1～10 μMの終濃度で組織に添加することができる。
本発明の脂質滴の検出用試薬を溶媒に溶解させてから組織に添加する場合、溶媒としては、限定されないが、例えば、n-ヘキサン、ジブチルエーテル、酢酸エチル、アセトニトリル、ジメチルスルホキシド等の有機溶媒等を用いることができる。さらに、生体適合性の液体と組み合わせて投与することもできる。また、上記のとおり、本発明の脂質滴の検出用試薬を含む有機溶媒と、溶解補助剤を含む水溶液と混合して調製した溶液を、組織に添加することもできる。
本発明の脂質滴の検出用試薬によって検出される組織としては、限定されないが、例えば、皮下脂肪、内臓脂肪、異所性脂肪（例えば、筋肉、肝臓、心臓、膵臓、腎臓などの臓器に蓄積する脂肪）等が挙げられる。
組織内に存在する脂質滴の検出は、例えば、以下のようにして行うことができる。
本発明の脂質滴の検出用試薬を、脂質滴を含むまたは含むことが予想される組織に添加する。
その後、本発明の脂質滴の検出用試薬の蛍光シグナルを、蛍光顕微鏡等により観測することにより、組織内に含まれる脂質滴を検出することができる。
組織への本発明の脂質滴の検出用試薬の添加量は、使用する組織や脂質滴の割合等によって適宜変更可能であるが、例えば、0.01～100 μM、好ましくは0.1～10 μMの終濃度で組織に添加することができる。
本発明の脂質滴の検出用試薬を溶媒に溶解させてから組織に添加する場合、溶媒としては、限定されないが、例えば、n-ヘキサン、ジブチルエーテル、酢酸エチル、アセトニトリル、ジメチルスルホキシド等の有機溶媒等を用いることができる。さらに、生体適合性の液体と組み合わせて投与することもできる。また、上記のとおり、本発明の脂質滴の検出用試薬を含む有機溶媒と、溶解補助剤を含む水溶液と混合して調製した溶液を、組織に添加することもできる。
本発明の脂質滴の検出用試薬によって検出される組織としては、限定されないが、例えば、皮下脂肪、内臓脂肪、異所性脂肪（例えば、筋肉、肝臓、心臓、膵臓、腎臓などの臓器に蓄積する脂肪）等が挙げられる。
生体個体内に存在する脂質滴の検出は、例えば、以下のようにして行うことができる。
本発明の脂質滴の検出用試薬を、生体個体に投与する。
その後、本発明の脂質滴の検出用試薬の蛍光シグナルを、共焦点顕微鏡等を用いた生体イメージング手法等を用いて観測することにより、生体個体を固定化することなく生きた状態で、生体内の脂肪組織を検出することができる。
本発明の脂質滴の検出用試薬の投与形態としては、例えば、静脈内投与、皮下投与、筋肉内投与が挙げられる。
また、本発明の脂質滴の検出用試薬の投与量は、投与対象、投与形態等によっても異なるが、例えば、0.01～1.0 μmol/kg体重、好ましくは0.1～0.5 μmol/kg体重の範囲で投与することができる。
本発明の脂質滴の検出用試薬を溶媒に溶解させてから生体個体に投与する場合、溶媒としては、限定されないが、例えば、n-ヘキサン、ジブチルエーテル、酢酸エチル、アセトニトリル、ジメチルスルホキシド等の有機溶媒を用いることができる。さらに、生体適合性の液体と組み合わせて投与することもできる。また、上記のとおり、本発明の脂質滴の検出用試薬を含む有機溶媒と、溶解補助剤を含む水溶液と混合して調製した溶液を、生体個体に添加することもできる。
投与対象となる生物個体としては、特に限定されず、例えば、哺乳動物（マウス、ヒト、ブタ、イヌ、ウサギ、ヒト等）を含む脊椎動物や無脊椎動物が挙げられる。
本発明の脂質滴の検出用試薬を、生体個体に投与する。
その後、本発明の脂質滴の検出用試薬の蛍光シグナルを、共焦点顕微鏡等を用いた生体イメージング手法等を用いて観測することにより、生体個体を固定化することなく生きた状態で、生体内の脂肪組織を検出することができる。
本発明の脂質滴の検出用試薬の投与形態としては、例えば、静脈内投与、皮下投与、筋肉内投与が挙げられる。
また、本発明の脂質滴の検出用試薬の投与量は、投与対象、投与形態等によっても異なるが、例えば、0.01～1.0 μmol/kg体重、好ましくは0.1～0.5 μmol/kg体重の範囲で投与することができる。
本発明の脂質滴の検出用試薬を溶媒に溶解させてから生体個体に投与する場合、溶媒としては、限定されないが、例えば、n-ヘキサン、ジブチルエーテル、酢酸エチル、アセトニトリル、ジメチルスルホキシド等の有機溶媒を用いることができる。さらに、生体適合性の液体と組み合わせて投与することもできる。また、上記のとおり、本発明の脂質滴の検出用試薬を含む有機溶媒と、溶解補助剤を含む水溶液と混合して調製した溶液を、生体個体に添加することもできる。
投与対象となる生物個体としては、特に限定されず、例えば、哺乳動物（マウス、ヒト、ブタ、イヌ、ウサギ、ヒト等）を含む脊椎動物や無脊椎動物が挙げられる。
＜本発明の化合物＞
下記一般式(I)’で表される化合物は、本発明により合成された新規化合物である。すなわち、本発明の一態様は、下記一般式(I)’で表される化合物（以下、「本発明の化合物」ということがある。）に関する。
一般式(I)’で表される化合物は、以下の構造を有する化合物である。
下記一般式(I)’で表される化合物は、本発明により合成された新規化合物である。すなわち、本発明の一態様は、下記一般式(I)’で表される化合物（以下、「本発明の化合物」ということがある。）に関する。
一般式(I)’で表される化合物は、以下の構造を有する化合物である。
一般式(I)’において、mは0～5の整数を示す。合成上の観点から、好ましくはmは0～2の整数である。また、溶解性の観点から、好ましくはmは1～2の整数であり、より好ましくはmは1である。
一般式(I)’において、nは0～5の整数を示す。合成上の観点から、好ましくはnは0～2の整数である。また、溶解性の観点から、好ましくはmは1～2の整数であり、より好ましくはnは1である。
一般式(I)’において、X’は酸素原子およびNR’で示される基からなる群から選ばれ、R’は－(CH2)yCH3で示される基であり、yは0～5の整数を示す。合成上の観点から、好ましくはyは0～2の整数であり、より好ましくはyは0である。
一般式(I)’において、nは0～5の整数を示す。合成上の観点から、好ましくはnは0～2の整数である。また、溶解性の観点から、好ましくはmは1～2の整数であり、より好ましくはnは1である。
一般式(I)’において、X’は酸素原子およびNR’で示される基からなる群から選ばれ、R’は－(CH2)yCH3で示される基であり、yは0～5の整数を示す。合成上の観点から、好ましくはyは0～2の整数であり、より好ましくはyは0である。
以下、実施例によって本発明を具体的に説明するが、これらは本発明の例示であり、本発明の範囲はこれらに限定されるものではない。
＜合成例＞
化合物PC6S、PC6O、PC6NH、PC6NMeを以下のとおり、合成した。
スキーム1にPC6S、PC6O、PC6NH、PC6NMeの合成経路を示す。
化合物PC6S、PC6O、PC6NH、PC6NMeを以下のとおり、合成した。
スキーム1にPC6S、PC6O、PC6NH、PC6NMeの合成経路を示す。
＜7-(ジエチルアミノ)ナフタレン-2-オール（1）＞
2, 7-ジヒドロキシナフタレン（3.0 g，18.7 mmol）、二亜硫酸ナトリウム（7.11 g，37.4 mmol）、ジエチルアミン（9.7 mL，93.5 mmol）、水（7 mL）の混合液を、シールチューブを用いて、140℃、6時間撹拌した。空冷後、反応溶液にジクロロメタンに加え、水で数回洗浄した。有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥させ、濃縮した。得られた粗生成物をフラッシュ自動精製装置（Isolera Spektra，Biotage）を用いて生成し（シリカゲルカラム、展開溶媒：n-ヘキサン：酢酸エチル（4：1，v/v）、化合物1を得た（収量：1.26 g，31 %）。
2, 7-ジヒドロキシナフタレン（3.0 g，18.7 mmol）、二亜硫酸ナトリウム（7.11 g，37.4 mmol）、ジエチルアミン（9.7 mL，93.5 mmol）、水（7 mL）の混合液を、シールチューブを用いて、140℃、6時間撹拌した。空冷後、反応溶液にジクロロメタンに加え、水で数回洗浄した。有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥させ、濃縮した。得られた粗生成物をフラッシュ自動精製装置（Isolera Spektra，Biotage）を用いて生成し（シリカゲルカラム、展開溶媒：n-ヘキサン：酢酸エチル（4：1，v/v）、化合物1を得た（収量：1.26 g，31 %）。
1H NMR (400 MHz, CDCl3, TMS): δ 7.59-7.53(2H, q), 6.94-6.90(2H, m), 6.76-6.73(1H, d), 6.69(1H, s), 4.78(1H, br), 3.46-3.41(4H, q), 1.22-1.18(6H, t)
＜7-(メトキシメトキシアミノ)ナフタレン-2-イル]ジエチルアミン（2）＞
化合物1（0.86 g，4 mmol）を脱水DMFに溶解させ、氷浴を用いて-15℃とし、水素化ナトリウム（250 mg，10.4 mmol）を加え、水素の発生が治まるまで撹拌した。この溶液にクロロメチルメチルエーテル（0.38 mL，5.0 mmol）を加え室温で6時間撹拌した。反応溶液を水に注ぎ、酢酸エチルで抽出した。有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥させ、濃縮した。得られた粗生成物をフラッシュ自動精製装置（Isolera Spektra，Biotage）を用いて生成し（シリカゲルカラム、展開溶媒：n-ヘキサン：酢酸エチル（9：1，v/v）、化合物2を得た（収量：0.91 g，88 %）。
化合物1（0.86 g，4 mmol）を脱水DMFに溶解させ、氷浴を用いて-15℃とし、水素化ナトリウム（250 mg，10.4 mmol）を加え、水素の発生が治まるまで撹拌した。この溶液にクロロメチルメチルエーテル（0.38 mL，5.0 mmol）を加え室温で6時間撹拌した。反応溶液を水に注ぎ、酢酸エチルで抽出した。有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥させ、濃縮した。得られた粗生成物をフラッシュ自動精製装置（Isolera Spektra，Biotage）を用いて生成し（シリカゲルカラム、展開溶媒：n-ヘキサン：酢酸エチル（9：1，v/v）、化合物2を得た（収量：0.91 g，88 %）。
1H NMR (400 MHz, CDCl3, TMS): δ 7.60-7.55(2H, q), 7.17(1H, s), 6.96-6.93(1H, d), 6.89-6.86(1H, s), 6.78(1H, s), 5.27(2H, s), 3.46-3.41(4H, q), 1.22-1.18(6H, t)
＜6-ジエチルアミノ-3-(メトキシメトキシ)ナフタレン-2-カルボアルデヒド（3）＞
化合物2（2.80 g，10.8 mmol）を脱水ジエチルエーテルに溶解させ、-20℃でt-ブチルリチウム（1.9 mol/Lペンタン溶液、8.5 mL，16.2 mmol）を30分間かけて加え、2時間撹拌した。この溶液に脱水DMF（25 mL，320 mmol）を加え、-20℃で1時間撹拌後、4N HCl（10 mL）を加え、-20℃で30分間撹拌した。反応溶液に酢酸エチルに加え、有機層を0.5N HCl、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液、食塩水で数回洗浄した。有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥させ、濃縮した。得られた粗生成物をフラッシュ自動精製装置（Isolera Spektra，Biotage）を用いて生成し（シリカゲルカラム、展開溶媒：n-ヘキサン：酢酸エチル（9：1，v/v）、化合物3を得た（収量：2.45 g，79 %）。
化合物2（2.80 g，10.8 mmol）を脱水ジエチルエーテルに溶解させ、-20℃でt-ブチルリチウム（1.9 mol/Lペンタン溶液、8.5 mL，16.2 mmol）を30分間かけて加え、2時間撹拌した。この溶液に脱水DMF（25 mL，320 mmol）を加え、-20℃で1時間撹拌後、4N HCl（10 mL）を加え、-20℃で30分間撹拌した。反応溶液に酢酸エチルに加え、有機層を0.5N HCl、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液、食塩水で数回洗浄した。有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥させ、濃縮した。得られた粗生成物をフラッシュ自動精製装置（Isolera Spektra，Biotage）を用いて生成し（シリカゲルカラム、展開溶媒：n-ヘキサン：酢酸エチル（9：1，v/v）、化合物3を得た（収量：2.45 g，79 %）。
1H NMR (400 MHz, CDCl3, TMS): δ10.43(1H, s), 8.19(1H, s), 7.69-7.66(1H, d), 7.15(1H, s), 6.95-6.93(1H, d), 6.69(1H, s), 5.36(2H, s), 3.55(3H, s), 3.49-3.44(4H, q), 1.24-1.21(6H, t)
＜6-ジエチルアミノ-3-(ヒドロキシ)ナフタレン-2-カルボアルデヒド（4）＞
化合物3（1.59 g，5.5 mmol）を2-プロパノール：5N HCl（70 mL：35 mL）に溶解させ、60℃で4時間撹拌した。反応溶液から2-プロパノールを減圧留去し、酢酸エチルを加え、有機層を水で数回洗浄した。有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥させ、濃縮した。得られた粗生成物をフラッシュ自動精製装置（Isolera Spektra，Biotage）を用いて生成し（シリカゲルカラム、展開溶媒：n-ヘキサン：酢酸エチル（4：1，v/v），化合物4を得た（収量：1.31 g，98 %）。
化合物3（1.59 g，5.5 mmol）を2-プロパノール：5N HCl（70 mL：35 mL）に溶解させ、60℃で4時間撹拌した。反応溶液から2-プロパノールを減圧留去し、酢酸エチルを加え、有機層を水で数回洗浄した。有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥させ、濃縮した。得られた粗生成物をフラッシュ自動精製装置（Isolera Spektra，Biotage）を用いて生成し（シリカゲルカラム、展開溶媒：n-ヘキサン：酢酸エチル（4：1，v/v），化合物4を得た（収量：1.31 g，98 %）。
1H NMR (400 MHz, CDCl3, TMS): δ10.53(1H, s), 9.85(1H, s), 7.85(1H,s), 7.66-7.63 (1H, d), 6.93-6.90(1H, d), 6.90(1H, s), 6.60(1H, s), 3.51-3.45(4H, q), 1.28-1.22 (6H, t)
＜3-(benzo[d]thiazol-2-yl)-8-(diethylamino)-2H-benzo[g]chromen-2-one (PC6S)＞
化合物4（120 mg，0.49 mmol）、2-(2-ベンゾチアゾリル)酢酸エチル（122 mg，0.55 mmol）を無水エタノールに溶解させ、ピペリジン5滴程度を加え、60℃で4時間撹拌した。析出した固体をろ過し、ろ過物をフラッシュ自動精製装置（Isolera Spektra，Biotage）を用いて生成し（シリカゲルカラム、展開溶媒：n-ヘキサン：酢酸エチル（1：1，v/v）、化合物PC6Sを得た（収量：157 mg，80 %）。
化合物4（120 mg，0.49 mmol）、2-(2-ベンゾチアゾリル)酢酸エチル（122 mg，0.55 mmol）を無水エタノールに溶解させ、ピペリジン5滴程度を加え、60℃で4時間撹拌した。析出した固体をろ過し、ろ過物をフラッシュ自動精製装置（Isolera Spektra，Biotage）を用いて生成し（シリカゲルカラム、展開溶媒：n-ヘキサン：酢酸エチル（1：1，v/v）、化合物PC6Sを得た（収量：157 mg，80 %）。
1H NMR (400 MHz, CDCl3, TMS): δ9.08(1H, s), 8.08-8.06(1H, d), 7.99(1H, s), 7.97-7.95(1H, d), 7.79-7.77(1H, d), 7.53-7.49(1H, t), 7.44(1H, s), 7.41-7.38(1H, t), 7.11-7.08(1H, d), 6.79(1H, s), 3.55-3.49(4H, q), 1.29-1.25(6H, t).
ESI-MS (m/z) of PC6S: calcd for C24H21N2O2S [M+H]+: 401.12, found: 401.2
ESI-MS (m/z) of PC6S: calcd for C24H21N2O2S [M+H]+: 401.12, found: 401.2
＜3-(benzo[d]oxazol-2-yl)-8-(diethylamino)-2H-benzo[g]chromen-2-one (PC6O)＞
化合物4（122 mg，0.50 mmol）、2-(2-ベンゾオキサゾリル)酢酸エチル（120 mg，0.59 mmol）を無水エタノールに溶解させ、ピペリジン5滴程度を加え、60℃で4時間撹拌した。析出した固体をろ過し、ろ過物をフラッシュ自動精製装置（Isolera Spektra，Biotage）を用いて生成し（シリカゲルカラム、展開溶媒：n-ヘキサン：酢酸エチル（1：1，v/v）、化合物PC6Oを得た（収量：138 mg，72 %）。
化合物4（122 mg，0.50 mmol）、2-(2-ベンゾオキサゾリル)酢酸エチル（120 mg，0.59 mmol）を無水エタノールに溶解させ、ピペリジン5滴程度を加え、60℃で4時間撹拌した。析出した固体をろ過し、ろ過物をフラッシュ自動精製装置（Isolera Spektra，Biotage）を用いて生成し（シリカゲルカラム、展開溶媒：n-ヘキサン：酢酸エチル（1：1，v/v）、化合物PC6Oを得た（収量：138 mg，72 %）。
1H NMR (400 MHz, CDCl3, TMS): δ8.79(1H, s), 7.93(1H, s), 7.86-7.84(1H, t), 7.77-7.75(1H, d), 7.63-7.61(1H, t), 7.40(1H, s), 7.38-7.36(1H, t), 7.11-7.08(1H, d), 6.78(1H, s), 3.55-3.50(4H, q), 1.29-1.25(6H, t).
ESI-MS (m/z) of PC6O calcd for C24H21N2O3[M+H]+: 385.15, found: 385.2
ESI-MS (m/z) of PC6O calcd for C24H21N2O3[M+H]+: 385.15, found: 385.2
＜3-(1H-benzo[d]imidazol-2-yl)-8-(diethylamino)-2H-benzo[g]chromen-2-one (PC6NH)＞
化合物4（80 mg，0.36 mmol）、2-(2-ベンゾイミダゾリル)酢酸エチル（100 mg，0.49 mmol）を無水エタノールに溶解させ、ピペリジン5滴程度を加え、60℃で4時間撹拌した。析出した固体をろ過し、ろ過物をフラッシュ自動精製装置（Isolera Spektra，Biotage）を用いて生成し（シリカゲルカラム、展開溶媒：クロロホルム：メタノール（97：3，v/v）、化合物PC6NHを得た（収量：64 mg，46 %）。
化合物4（80 mg，0.36 mmol）、2-(2-ベンゾイミダゾリル)酢酸エチル（100 mg，0.49 mmol）を無水エタノールに溶解させ、ピペリジン5滴程度を加え、60℃で4時間撹拌した。析出した固体をろ過し、ろ過物をフラッシュ自動精製装置（Isolera Spektra，Biotage）を用いて生成し（シリカゲルカラム、展開溶媒：クロロホルム：メタノール（97：3，v/v）、化合物PC6NHを得た（収量：64 mg，46 %）。
1H NMR (400 MHz, CDCl3, TMS): δ11.31(1H, s), 9.11(1H, s), 7.95(1H, s), 7.80-7.77(1H, t), 7.55-7.51(1H, m), 7.44(1H, s), 7.30-7.29(1H, t), 7.12-7.09(1H, d), 6.79(1H, s), 3.55-3.49(4H, q), 1.29-1.25(6H, t).
ESI-MS (m/z) of PC6NH calcd for C24H22N3O2[M+H]+: 384.16, found: 384.1
ESI-MS (m/z) of PC6NH calcd for C24H22N3O2[M+H]+: 384.16, found: 384.1
＜8-(diethylamino)-3-(1-methyl-1H-benzo[d]imidazol-2-yl)-2H-benzo[g]chromen-2-one (PC6NMe)＞
化合物4（80 mg，0.36 mmol）、2-(1-メチル-2-ベンゾイミダゾリル)酢酸エチル（100 mg，0.46 mmol）を無水エタノールに溶解させ、ピペリジン5滴程度を加え、60℃で4時間撹拌した。析出した固体をろ過し、ろ過物をフラッシュ自動精製装置（Isolera Spektra，Biotage）を用いて生成し（シリカゲルカラム、展開溶媒：クロロホルム：メタノール（97：3，v/v）、化合物PC6NMeを得た（収量：40 mg，28 %）。
化合物4（80 mg，0.36 mmol）、2-(1-メチル-2-ベンゾイミダゾリル)酢酸エチル（100 mg，0.46 mmol）を無水エタノールに溶解させ、ピペリジン5滴程度を加え、60℃で4時間撹拌した。析出した固体をろ過し、ろ過物をフラッシュ自動精製装置（Isolera Spektra，Biotage）を用いて生成し（シリカゲルカラム、展開溶媒：クロロホルム：メタノール（97：3，v/v）、化合物PC6NMeを得た（収量：40 mg，28 %）。
1H NMR (400 MHz, CDCl3, TMS): δ8.37(1H, s), 7.88(1H, s), 7.81-7.80(1H, d), 7.77-7.72(1H, m), 7.44(1H, s), 7.43-7.41(1H, d), 7.34-7.29(2H, m), 7.11-7.08(1H, d), 6.80(1H, s), 3.85(3H, s), 3.54-3.49(4H, q), 1.29-1.25(6H, t).
ESI-MS (m/z) of PC6NMe calcd for C25H24N3O2[M+H]+: 398.18, found: 398.1
ESI-MS (m/z) of PC6NMe calcd for C25H24N3O2[M+H]+: 398.18, found: 398.1
＜3-(benzo[d]thiazol-2-yl)-8-(dimethylamino)-2H-benzo[g]chromen-2-one＞
上記スキーム1に基づき、表題の化合物を合成した。
上記スキーム1に基づき、表題の化合物を合成した。
1H NMR (400 MHz, CDCl3, TMS): δ9.08(1H, s), 8.08-8.06(1H, d), 7.99(1H, s), 7.97-7.95(1H, d), 7.79-7.77(1H, d), 7.53-7.49(1H, t), 7.44(1H, s), 7.41-7.38(1H, t), 7.11-7.08(1H, d), 6.79(1H, s), 3.55-3.49(6H, t).
＜測定方法＞
（吸収極大波長、蛍光極大波長および蛍光量子収率の測定）
発光量子収率測定装置（C9920-01；浜松ホトニクス製）を用いて、各溶媒中における上記化合物の吸収極大波長（λabs/nm）、蛍光極大波長（λflu/nm）および蛍光量子収率（Φf）を測定した。
吸収スペクトルについては、紫外可視分光光度計（Ubest-550；日本分光製）を用いて測定し、蛍光発光スペクトルについては、蛍光分光光度計（F-7000；日立製）を用いて測定した。
（吸収極大波長、蛍光極大波長および蛍光量子収率の測定）
発光量子収率測定装置（C9920-01；浜松ホトニクス製）を用いて、各溶媒中における上記化合物の吸収極大波長（λabs/nm）、蛍光極大波長（λflu/nm）および蛍光量子収率（Φf）を測定した。
吸収スペクトルについては、紫外可視分光光度計（Ubest-550；日本分光製）を用いて測定し、蛍光発光スペクトルについては、蛍光分光光度計（F-7000；日立製）を用いて測定した。
（蛍光寿命の測定）
小型蛍光寿命測定装置（Quntaurus-Tau；浜松ホトニクス製）を用いて、各溶媒中における上記化合物の蛍光寿命（τf）を測定した。
小型蛍光寿命測定装置（Quntaurus-Tau；浜松ホトニクス製）を用いて、各溶媒中における上記化合物の蛍光寿命（τf）を測定した。
蛍光収率、すなわち蛍光量子収率（Φf）とは、物質が吸収した光子のうち、蛍光として放出される光子の割合を表す。このため、蛍光収率が高いほど発光効率が良く、発光強度が強いことを示す。また、蛍光寿命（τf）の値は分子固有の値を有する。
（光安定性および滞留性の測定）
蛍光顕微鏡（IX71；オリンパス製）を用いて、細胞の蛍光イメージング画像を経時的に取得し、光安定性（It/I0）および滞留性を測定した。
蛍光顕微鏡（IX71；オリンパス製）を用いて、細胞の蛍光イメージング画像を経時的に取得し、光安定性（It/I0）および滞留性を測定した。
＜実施例１＞
上記製造例で合成した本発明の化合物（図3、PC6S，PC6O，PC6NH，PC6NMe）は、8-ジエチルアミノベンゾクマリン骨格を有する。これらの化合物について、光物理特性を測定した。
図4にPC6Sの各溶媒中における吸収・蛍光スペクトルを示す。また、表1に光物理パラメータを示す。吸収極大波長は455～504 nm、蛍光極大波長は498～642 nmに観測され、それぞれの極大波長は、溶媒の極性の増加に伴い長波長シフトを示す。蛍光量子収率は、すべての溶媒中において0.8以上を有する。
上記製造例で合成した本発明の化合物（図3、PC6S，PC6O，PC6NH，PC6NMe）は、8-ジエチルアミノベンゾクマリン骨格を有する。これらの化合物について、光物理特性を測定した。
図4にPC6Sの各溶媒中における吸収・蛍光スペクトルを示す。また、表1に光物理パラメータを示す。吸収極大波長は455～504 nm、蛍光極大波長は498～642 nmに観測され、それぞれの極大波長は、溶媒の極性の増加に伴い長波長シフトを示す。蛍光量子収率は、すべての溶媒中において0.8以上を有する。
図5にPC6O、PC6NH、PC6NMeのジブチルエーテルおよびアセトニトリル中における吸収・蛍光スペクトル、また、表2に光物理パラメータを示す。
＜実施例２＞
培養細胞内の脂質滴イメージングについて、PC6Sと市販の脂質滴蛍光イメージング試薬（LipiDye、Nile Red、BODIPY493/503、Lipi Green）との性能比較実験を行った。項目は、発光強度、脂質滴選択性、光安定性、滞留性とした。
培養細胞内の脂質滴イメージングについて、PC6Sと市販の脂質滴蛍光イメージング試薬（LipiDye、Nile Red、BODIPY493/503、Lipi Green）との性能比較実験を行った。項目は、発光強度、脂質滴選択性、光安定性、滞留性とした。
図6に400 μMオレイン酸存在下で48時間培養したHeLa細胞に、各蛍光試薬を最終濃度100 nMになるように添加し、30分間培養し洗浄後に、倒立型蛍光顕微鏡（IX71；オリンパス製）を用いて観察した蛍光イメージング画像（対物レンズ：100倍油浸、励起波長：450 - 500 nm、観測波長：515 - 565 nm、LipiDyeは励起波長：400 - 440 nm、観測波長：> 475 nm）を示す。PC6S、LipiDye、Nile Redを添加したHeLa細胞の方が、BODIPY493/503、Lipi Greenを添加したHeLa細胞よりも蛍光強度が大きいことがわかる。また、PC6S、LipiDyeではHeLa細胞内の脂質滴が明瞭にイメージングできているのに対して、Nile Redでは脂質滴以外のオルガネラからも蛍光シグナルが観測されている。これは、Nile Redの脂質滴選択性が低いことを示しており、過去の報告と一致している。また、LipiDyeは、緑色蛍光を示す試薬であるが、汎用的な緑色蛍光試薬用のフィルターを使用することができない（試薬HPには注意がきが記載されている）。LipiDyeでは、405nm付近の励起波長を使用する必要があり、長時間観察においては、細胞に対する光毒性が懸念される。
光安定性および滞留性は、脂質滴の形成・融合・分解過程を追跡するような長時間測定において重要なファクターである。3T3-L1細胞（脂肪細胞）に各蛍光試薬を最終濃度100 nMになるように添加し、30分間培養し洗浄後に、イメージングに必要な励起光（450 - 500 nm、LipiDyeは励起波長：400 - 440 nm）を照射し光安定性の評価を行った。照射直後を0秒とし、20秒ごとにイメージング画像を取得し、画像の強度を解析した。図7に照射時間に対する蛍光強度比（It/I0）のプロットを示す。市販の試薬と比較して、PC6Sの光安定性が最も高いことが明らかとなった。
各試薬の細胞内の滞留性を評価するために、3T3-L1細胞（脂肪細胞）に各蛍光試薬を最終濃度100 nM（Lipi-Greenは500 nM）になるように添加し、30分培養後および試薬を洗浄してから24時間後にイメージング画像を取得した。図8に蛍光イメージング画像を示す。PC6S、Lipi-Green、LipiDyeは、24時間後においても脂質滴イメージングが可能であるのに対して、BODIPY493/503、Nile Redは蛍光強度が顕著に減少している。よって、PC6S、Lipi-Green、LipiDyeは細胞内滞留性が高いことが示された。
以上の結果を表3にまとめる。表3よりPC6Sが市販の脂質滴蛍光イメージング試薬よりも優れた特性を有することが明らかとなった。
＜実施例３＞
PC6Sを用いた生体組織内脂質滴および脂肪組織の蛍光イメージングについて示す。PC6Sは水（生理食塩水）への溶解が著しく低いため、直接溶解させることが困難である。また、ジメチルスルホキシド（DMSO）に溶解させた5 mMストック溶液を、生理食塩水に添加した場合（体積比で10％）、PC6Sが析出するため、マウスへ投与できない。そこで、10％ウシ血清アルブミンを含んだ生理食塩水に5 mMストック溶液を添加したところ（体積比で10％）、PC6Sの析出が抑制できた。MNs-NBの投与では、DMSOのストック溶液を直接マウスへ投与している。DMSOの投与はマウスをショック死させることがあり、本発明での投与法の方が、安全性の高い方法と考えられる。ここでは、麻酔下にあるマウスの尾静脈に、500μMの溶液を100～200 μL（50から100 nmol）投与して共焦点レーザー顕微鏡を用いて蛍光イメージング実験（励起波長：488 nm、観測波長：510 - 560 nm）を行った。本実験では、蛍光強度画像に加えて蛍光寿命画像を取得できる顕微鏡（FLIM：fluorescence lifetime imaging microscope）（Simple-Tau-150-DX；Becker & Hickl）を用いた。動物実験は、群馬大学の動物実験安全管理規定に即して実施した。
PC6Sを用いた生体組織内脂質滴および脂肪組織の蛍光イメージングについて示す。PC6Sは水（生理食塩水）への溶解が著しく低いため、直接溶解させることが困難である。また、ジメチルスルホキシド（DMSO）に溶解させた5 mMストック溶液を、生理食塩水に添加した場合（体積比で10％）、PC6Sが析出するため、マウスへ投与できない。そこで、10％ウシ血清アルブミンを含んだ生理食塩水に5 mMストック溶液を添加したところ（体積比で10％）、PC6Sの析出が抑制できた。MNs-NBの投与では、DMSOのストック溶液を直接マウスへ投与している。DMSOの投与はマウスをショック死させることがあり、本発明での投与法の方が、安全性の高い方法と考えられる。ここでは、麻酔下にあるマウスの尾静脈に、500μMの溶液を100～200 μL（50から100 nmol）投与して共焦点レーザー顕微鏡を用いて蛍光イメージング実験（励起波長：488 nm、観測波長：510 - 560 nm）を行った。本実験では、蛍光強度画像に加えて蛍光寿命画像を取得できる顕微鏡（FLIM：fluorescence lifetime imaging microscope）（Simple-Tau-150-DX；Becker & Hickl）を用いた。動物実験は、群馬大学の動物実験安全管理規定に即して実施した。
脂肪肝モデルマウスは、通常マウスに比べて肝臓内に多量の脂質滴が蓄積していることが知られている。ここでは、マウス（C57BL/6J）に超高脂肪コリン欠乏メチオニン減量飼料を2週間、または10週間与えて脂肪肝モデルマウスを作製した。図9に通常マウスと脂肪肝モデルマウスに、PC6Sを100 nmol投与して得られた蛍光強度イメージング画像および蛍光寿命イメージング画像を示す。通常飼料を与えたマウスでは、肝細胞内に小さな脂質滴が確認できる。一方、脂肪肝モデルマウス（2週間）では、肝臓表面全体にわたり、大きな脂質滴がイメージングされており、肝臓内に脂質が蓄積していることがわかる。さらに、10週間脂肪飼料を与えたマウスでは、脂質滴からの蛍光に加えて、脂質滴とは形状が異なる構造体から強い蛍光が観測された。これは、肝臓の線維化に伴いマクロファージ由来の細胞が浸潤し、それらに起因する自家蛍光であると考えられる。強度イメージングでは、脂質滴を鮮明にイメージングできないが、寿命イメージングでは、自家蛍光（青）とPC6Sの蛍光（オレンジ）を区別してイメージングすることが可能である。
個体内は様々な脂肪組織および脂質滴が存在する。PC6Sを用いてこれらのイメージングを行った。図10に、PC6Sを50 nmolマウス（BALB/cAJcl）に投与して得られた皮下脂肪組織、腹部脂肪組織、骨格筋、心筋、心臓周囲脂肪組織、腎臓の蛍光イメージング画像を示す。心筋、心臓周囲脂肪組織のイメージング画像は、マウスを安楽死させて摘出してから撮影した。脂質が蓄積している箇所からPC6Sに由来する蛍光が観察されている。特に腎臓においては、尿細管細胞内に分布している小さな脂質滴がイメージングできており、今後、糖尿病などの生活習慣病と腎臓の機能障害における脂質の関係について研究するためのツールとして使用できることが期待される。
＜実施例４＞
PC6Sを用いた生体組織内脂質滴および脂肪組織の非開腹イメージングについて示す。ヌードマウスに2週間高脂肪飼料を与えて脂肪肝モデルマウスを作製した。麻酔下にあるヌードマウスの尾静脈からPC6S（50 nmol）を投与した。簡易型in vivoイメージング装置（Discovery(登録商標); INDEC BioSystem）で撮影（ヌードマウスは仰向け）した。励起波長：450-490 nm、観測波長：520 nm以上とした。図11に、ヌードマウスの非開腹イメージング画像を示す。肝臓周辺（点線丸で囲った部分）からPC6Sに由来する蛍光が観察されている。
肝臓から蛍光が観測されていることを確認するために、開腹して撮影を行った。図12に、ヌードマウスの開腹イメージング画像を示す。肝臓に、PC6Sに由来する蛍光が観察されている。本発明の蛍光イメージング試薬は、非開腹でも使用可能であることが示された。
PC6Sを用いた生体組織内脂質滴および脂肪組織の非開腹イメージングについて示す。ヌードマウスに2週間高脂肪飼料を与えて脂肪肝モデルマウスを作製した。麻酔下にあるヌードマウスの尾静脈からPC6S（50 nmol）を投与した。簡易型in vivoイメージング装置（Discovery(登録商標); INDEC BioSystem）で撮影（ヌードマウスは仰向け）した。励起波長：450-490 nm、観測波長：520 nm以上とした。図11に、ヌードマウスの非開腹イメージング画像を示す。肝臓周辺（点線丸で囲った部分）からPC6Sに由来する蛍光が観察されている。
肝臓から蛍光が観測されていることを確認するために、開腹して撮影を行った。図12に、ヌードマウスの開腹イメージング画像を示す。肝臓に、PC6Sに由来する蛍光が観察されている。本発明の蛍光イメージング試薬は、非開腹でも使用可能であることが示された。
さらに、本発明の蛍光イメージング試薬は、固定化されていない生体試料や、生体に対して適用、検出することが可能であるが、固定化された試料にも使用することができる。400 μMオレイン酸存在下で48時間培養したHeLa細胞を4%パラホルムアルデヒド・リン酸緩衝液で20分間固定し、PC6Sを最終濃度100 nMになるように添加し、30分間培養し洗浄後に、実施例２と同様に、倒立型蛍光顕微鏡を用いて蛍光イメージング画像を取得した。その結果、固定化されたHeLa細胞でもPC6Sの蛍光が検出された。
また、PC6Sと、Hoechst 33342、Mito tracker redの併用により、多色イメージングが可能であった。
また、HeLa細胞を、PC6Sを最終濃度100 nMとして添加した培地で30分培養した後、細胞内に取り込まれていないPC6Sを除去し、実施例２と同様に、倒立型蛍光顕微鏡を用いて蛍光イメージング画像（0時間）を取得した。400 μMオレイン酸存在下で24時間培養し、4, 8, 12, 24時間後に蛍光イメージング画像を取得した。その結果、徐々に脂質滴が形成されていく様子が経時的にイメージングできた。
また、96区画プレートにHeLa細胞を播種し、ガラス面に接着後、PC6Sを培地に添加（最終濃度0.1, 0.5, 1, 10, 20, 40, 50 μM）し、24時間培養した。洗浄後、細胞増殖・細胞毒性測定用キットCCK-8により細胞毒性を評価した。試薬添加から2時間後、吸光度を測定したところ、いずれの濃度においても顕著な細胞毒性は認められなかった。
また、PC6Sと、Hoechst 33342、Mito tracker redの併用により、多色イメージングが可能であった。
また、HeLa細胞を、PC6Sを最終濃度100 nMとして添加した培地で30分培養した後、細胞内に取り込まれていないPC6Sを除去し、実施例２と同様に、倒立型蛍光顕微鏡を用いて蛍光イメージング画像（0時間）を取得した。400 μMオレイン酸存在下で24時間培養し、4, 8, 12, 24時間後に蛍光イメージング画像を取得した。その結果、徐々に脂質滴が形成されていく様子が経時的にイメージングできた。
また、96区画プレートにHeLa細胞を播種し、ガラス面に接着後、PC6Sを培地に添加（最終濃度0.1, 0.5, 1, 10, 20, 40, 50 μM）し、24時間培養した。洗浄後、細胞増殖・細胞毒性測定用キットCCK-8により細胞毒性を評価した。試薬添加から2時間後、吸光度を測定したところ、いずれの濃度においても顕著な細胞毒性は認められなかった。
以上の結果より、本発明によって開発された蛍光イメージング試薬は、細胞内脂質滴および生きた個体内の脂肪組織や脂質滴のイメージングが可能な新しい試薬である。
本発明は、生体試料や生体個体の脂質滴の蛍光イメージングに利用できる。
Claims (12)
- 下記一般式(I)で表される化合物を含む、脂質滴の検出用試薬。
mは、0～5の整数を示し、
nは、0～5の整数を示し、
Xは、硫黄原子、酸素原子およびNRで示される基からなる群から選ばれ、
Rは、水素原子または－(CH2)yCH3で示される基であり、
yは、0～5の整数を示す。） - mおよびnが1である、請求項１に記載の検出用試薬。
- yが0である、請求項１または２に記載の検出用試薬。
- 生体試料における脂質滴を検出するための、請求項１～３のいずれか一項に記載の検出用試薬。
- 生体試料が、細胞または組織である、請求項４に記載の検出用試薬。
- 生体個体における脂質滴を検出するための、請求項１～３のいずれか一項に記載の検出用試薬。
- 請求項１～６のいずれか一項に記載の検出用試薬を、生体試料または生体個体（ヒトを除く）に投与する工程、
を含む、脂質滴の検出方法。 - 検出用試薬および溶解補助剤を含む溶液を、生体試料または生体個体（ヒトを除く）に投与する、請求項７に記載の脂質滴の検出方法。
- 溶解補助剤が、アルブミンである、請求項８に記載の脂質滴の検出方法。
- 下記一般式(I)’で表される化合物。
（式中、
mは、0～5の整数を示し、
nは、0～5の整数を示し、
X’は、酸素原子およびNR’で示される基からなる群から選ばれ、
R’は、－(CH2)yCH3で示される基であり、
yは、0～5の整数を示す。） - mおよびnが1である、請求項１０に記載の化合物。
- yが0である、請求項１０または１１に記載の化合物。
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