WO2020075691A1 - ロイシンリッチα２グリコプロテインの免疫測定方法及び測定試薬 - Google Patents

ロイシンリッチα２グリコプロテインの免疫測定方法及び測定試薬 Download PDF

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茂雄 高山
仲　哲治
聡 世良田
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積水メディカル株式会社
国立研究開発法人医薬基盤・健康・栄養研究所
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Definitions

  • the present invention relates to an immunoassay method and an immunoassay reagent for leucine-rich ⁇ 2 glycoprotein.
  • it relates to an immunoassay method and an immunoassay reagent that use insoluble carrier particles carrying a substance having a specific affinity for leucine-rich ⁇ 2 glycoprotein.
  • LRG Leucine-rich ⁇ 2 glycoprotein
  • Non-Patent Document 1 Leucine-rich ⁇ 2 glycoprotein
  • LRG is one of serum proteins, is a glycoprotein of about 50 kDa, and is reported to be secreted from neutrophils (Non-Patent Document 1). 1). Further, it is disclosed that LRG is useful as a biomarker for testing autoimmune diseases such as Behcet's disease (Patent Document 1).
  • the concentration of the measurement target that is suitable for measurement by the ELISA method is in the range of pg / mL to ng / mL, and therefore the measurement target substance is present in a biological sample at a relatively high concentration of ⁇ g / mL.
  • pretreatment for diluting to the extent that the ability of the measuring reagent can be exerted was necessary.
  • the dilution means that if the maximum concentration of human serum that can occur during ulcerative colitis is 100 ⁇ g / mL, 1000 times dilution is necessary.
  • An object of the present invention is to provide a measuring method and a measuring reagent that can measure LRG in a biological sample simply and in a short time.
  • the present inventors have conducted extensive studies to solve the above problems, and contacted the sample with the insoluble carrier particles carrying the first anti-LRG monoclonal antibody and the insoluble carrier particles carrying the second anti-LRG monoclonal antibody. It was found that, in the immunological assay method, specifically the immunoaggregation method, by devising the reagent composition, LRG in a biological sample can be easily measured in a short time without requiring pretreatment such as dilution. And completed the present invention. That is, the present invention has the following configurations.
  • a method for immunologically measuring leucine-rich ⁇ 2 glycoprotein (LRG) in a biological sample comprising: The said measuring method including the process of making the said sample contact the insoluble carrier particle which carries the at least 1st anti- LRG monoclonal antibody, and the insoluble carrier particle which carries the 2nd anti- LRG monoclonal antibody in a liquid phase.
  • the insoluble carrier particles are latex particles having a critical aggregation concentration of 65 mM to 270 mM.
  • the insoluble carrier particle carrying the first anti-LRG monoclonal antibody and the insoluble carrier particle carrying the second anti-LRG monoclonal antibody have the same average particle diameter as in any one of ⁇ 1> to ⁇ 3>.
  • the insoluble carrier particles carrying the first anti-LRG monoclonal antibody and the insoluble carrier particles carrying the second anti-LRG monoclonal antibody are contained in the liquid phase in the same amount in ⁇ 1> to ⁇ 4>.
  • ⁇ 6> The measurement method according to any one of ⁇ 1> to ⁇ 5>, wherein the biological sample is serum.
  • the step of contacting the biological sample with the insoluble carrier particles carrying the first anti-LRG monoclonal antibody and the insoluble carrier particles carrying the second anti-LRG monoclonal antibody is as follows.
  • the salt concentration in the liquid phase of the above (1) is 700 to 900 mM, ⁇ 8> Measuring method.
  • ⁇ 10> The measurement method according to any one of ⁇ 1> to ⁇ 9>, further including a step of optically measuring the degree of aggregation of the complex of insoluble carrier particles carrying LRG and an anti-LRG monoclonal antibody.
  • a reagent for measuring LRG in a blood sample by an immunoassay which comprises insoluble carrier particles carrying at least a first anti-LRG monoclonal antibody and an insoluble carrier particle carrying a second anti-LRG monoclonal antibody. Said reagent comprising carrier particles.
  • the insoluble carrier particles are latex particles having an average particle size of 100 nm to 340 nm.
  • ⁇ 14> The measurement reagent according to ⁇ 12> or ⁇ 13>, wherein the insoluble carrier particles are latex particles having a critical aggregation concentration of 65 mM to 270 mM.
  • the insoluble carrier particle carrying the first anti-LRG monoclonal antibody and the insoluble carrier particle carrying the second anti-LRG monoclonal antibody have the same average particle diameter as in any one of ⁇ 12> to ⁇ 14>.
  • ⁇ 16> The insoluble carrier particle carrying the first anti-LRG monoclonal antibody and the insoluble carrier particle carrying the second anti-LRG monoclonal antibody are included in equal amounts, according to any one of ⁇ 12> to ⁇ 15>. Measuring reagent.
  • ⁇ 17> The measurement reagent according to any one of ⁇ 12> to ⁇ 16>, wherein the biological sample is serum.
  • the immunoaggregation method is a method based on the homogeneous method.
  • a reagent kit for measuring LRG in a blood sample by an immunoagglutination method which comprises: (1) First reagent containing buffer solution (2) Second reagent ⁇ 20> Insoluble carrier containing insoluble carrier particles carrying first anti-LRG monoclonal antibody and insoluble carrier particles carrying second anti-LRG monoclonal antibody
  • the reagent kit according to ⁇ 19>, wherein the particles are latex particles having an average particle size of 100 nm to 340 nm.
  • the average particle size of the insoluble carrier particles carrying the first anti-LRG monoclonal antibody and the insoluble carrier particles carrying the second anti-LRG monoclonal antibody is the same, ⁇ 19> to ⁇ 21>.
  • Reagent kit. ⁇ 23> The second reagent of the above (2) contains equal amounts of insoluble carrier particles carrying the first anti-LRG monoclonal antibody and insoluble carrier particles carrying the second anti-LRG monoclonal antibody ⁇ 19> to ⁇ 22>
  • a method for measuring LRG in a biological sample and a reagent for measurement which are simpler and can obtain results in a short time.
  • the immunoaggregation method is one of immunoassay methods for measuring an antigen or an antibody by using insoluble carrier particles on which a specific affinity substance such as an antigen or an antibody is immobilized, and is widely used in the field of clinical examination. in use. Latex or the like is mainly used as the insoluble carrier particles, and this case is particularly referred to as latex immunoaggregation method (LTIA).
  • LTIA latex immunoaggregation method
  • LRG As a method for measuring LRG by LTIA, latex particles having a monoclonal antibody against LRG immobilized thereon are reacted with LRG that is an antigen to form a sandwich-type immune complex, and the latex particles associated with the formation of the immune complex are formed.
  • the method of measuring LRG from the degree of aggregation of the antigen and the latex particles having the antigen immobilized thereon and the LRG in the sample are allowed to compete with each other to inhibit the formation of an immune complex between the latex particle and the antibody,
  • the method for measuring LRG can be broadly classified based on the degree of inhibition of aggregation of the latex particles due to formation inhibition.
  • sample The sample in the present invention is not particularly limited as long as it is a biological sample, but is typically a blood sample, and examples thereof include whole blood, serum and plasma.
  • the plasma also includes heparin plasma, EDTA plasma and the like.
  • the substance to be measured in the present invention is leucine-rich ⁇ 2 glycoprotein (LRG).
  • a test substance can be measured by observing the degree of aggregation that has occurred optically or electrochemically.
  • the optical observation method include a method of measuring scattered light intensity, absorbance, or transmitted light intensity with an optical instrument (endpoint method, rate method, etc.).
  • the measured values such as the absorbance obtained by measuring the sample are compared with the measured values such as the absorbance obtained by measuring the standard substance (the sample having a known concentration of LRG), and the LRG contained in the sample Calculate the concentration (quantitative value).
  • the measurement of the absorbance of the transmitted light or the scattered light or the like may be one-wavelength measurement or two-wavelength measurement (difference or ratio between two wavelengths).
  • the measurement wavelength is generally selected from 500 nm to 800 nm.
  • the LRG in the sample of the present invention may be measured by a manual method or by using a device such as a measuring device.
  • the measuring device may be a general-purpose automatic analyzer or a dedicated measuring device (dedicated machine).
  • it is preferable to carry out this measurement by a method including a plurality of operation steps such as a two-step method (two-reagent method).
  • the monoclonal antibody of the present invention can be obtained by a method well known to those skilled in the art. That is, it can be easily produced by dissolving human LRG as an antigen in a solvent such as phosphate buffered saline and administering this solution to an animal to immunize it. Immunization may be performed using an emulsion after adding an appropriate adjuvant to the solution as needed.
  • the adjuvant commonly used adjuvants such as water-in-oil emulsion, water-in-oil-in-water emulsion, oil-in-water emulsion, liposome, and aluminum hydroxide gel, as well as proteins and peptide substances derived from biological components are used. Good.
  • Freund's incomplete adjuvant or Freund's complete adjuvant can be preferably used.
  • the route, dose, and timing of administration of the adjuvant are not particularly limited, but it is desirable to select appropriately so that the desired immune response can be enhanced in the animal immunized with the antigen.
  • the type of animal used for immunization is not particularly limited, but mammals are preferable, and for example, mice, rats, cows, rabbits, goats, sheep, etc. can be used, and more preferably mice can be used.
  • Immunization of animals may be carried out according to a general method, for example, by immunizing a mixture of an antigen solution, preferably an adjuvant, subcutaneously, intracutaneously, intravenously or intraperitoneally with an animal. . Since the immune response generally differs depending on the type and strain of the animal to be immunized, it is desirable to appropriately set the immunization schedule depending on the animal to be used.
  • the antigen administration is preferably repeated several times after the first immunization.
  • the following operation is continuously performed, but the method is not limited thereto.
  • the method for producing the monoclonal antibody itself see, for example, Antibodies, A Laboratory Manual (Cold Spring Harbor Laboratory Press, (1988)). It can be performed according to the method described in.
  • spleen cells or lymph node cells that are antibody-producing cells are extracted from the immunized animal and fused with myeloma cells having high proliferative capacity to produce hybridomas. It is preferable to use cells having a high antibody-producing ability (quality / quantity) for cell fusion, and it is preferable that the myeloma cells are compatible with the animal from which the antibody-producing cells to be fused are derived.
  • Cell fusion can be performed according to a method known in the art, and for example, a polyethylene glycol method, a method using Sendai virus, a method using electric current, or the like can be adopted.
  • the resulting hybridoma can be grown according to a known method, and the desired hybridoma can be selected while confirming the properties of the antibody produced.
  • Hybridomas can be cloned by known methods such as limiting dilution method and soft agar method.
  • hybridomas that produce the first and second monoclonal antibodies can also be performed efficiently at the selection stage in consideration of the conditions under which the antibody produced is actually used for measurement. For example, it can be obtained by selecting a hybridoma that produces an antibody that reacts with human LRG by the ELISA method, the RIA method, the Biacore method, or the like. Specifically, first, a monoclonal antibody in the culture supernatant is reacted with solid-phased human LRG, and then a labeled anti-IgG antibody is reacted to obtain a high reactivity with human LRG by an antigen-immobilized ELISA method. A hybridoma producing a monoclonal antibody having the same is selected.
  • the method of large-scale culture is not particularly limited, for example, a method of culturing a hybridoma in an appropriate medium to produce a monoclonal antibody in the medium, or by injecting the hybridoma into the abdominal cavity of a mammal to proliferate, and in ascites fluid. Examples thereof include a method for producing an antibody. Purification of the monoclonal antibody can be carried out by appropriately combining, for example, anion exchange chromatography, affinity chromatography, ammonium sulfate fractionation method, PEG fractionation method, ethanol fractionation method and the like.
  • the antibody of the present invention in addition to the whole antibody molecule, it is also possible to use a functional fragment of an antibody having an antigen-antibody reaction activity, in addition to those obtained through the immunization step in animals as described above, It is also possible to use those obtained by using gene recombination technology and chimeric antibodies.
  • the functional fragment of the antibody include F (ab ′) 2 and Fab ′. These functional fragments are obtained by using the antibody obtained as described above as a proteolytic enzyme (eg, pepsin or papain). It can be produced by treating with.
  • the insoluble carrier particles used in the present invention may be any insoluble carrier particles that can carry an anti-LRG monoclonal antibody and can measure LRG in a sample, and examples thereof include latex particles, magnetic particles, and metal particles. However, among these, latex particles are preferable.
  • the average particle size and the critical aggregation concentration of the insoluble carrier particles are appropriately selected in consideration of the concentration of LRG in the sample, the detection sensitivity of the measuring instrument, and the like.
  • the average particle size of the insoluble carrier particles is preferably 100 nm to 340 nm, more preferably 150 nm to 260 nm.
  • the critical aggregation concentration of the insoluble carrier particles is preferably 65 mM to 270 mM, more preferably 150 mM to 270 mM.
  • Latex particles which are a preferred example of the insoluble carrier particles used in the present invention are not particularly limited as long as they are latex particles generally used as an immunological measurement reagent. Latex particles can be obtained by polymerizing or copolymerizing various monomers.
  • the monomer is, for example, a phenyl group-containing polymerizable monomer such as styrene, ⁇ -methylstyrene, o-methylstyrene, p-methylstyrene, p-chlorostyrene, 4-vinylbenzoic acid, divinylbenzene or vinyltoluene.
  • Polymerizable monomer having phenyl group and sulfonate such as polymer, styrene sulfonate, divinylbenzene sulfonate, o-methyl styrene sulfonate, p-methyl styrene sulfonate, 1-vinylnaphthalene, Polymerizable unsaturated aromatics such as polymerizable monomers having a naphthyl group such as 2-vinylnaphthalene, ⁇ -naphthyl (meth) acrylate, ⁇ -naphthyl (meth) acrylate, eg (meth) acrylic acid, Polymerizable unsaturated carboxylic acids such as itaconic acid, maleic acid and fumaric acid, such as methyl (meth) acrylate, (meth (A) ethyl acrylate, n-butyl (meth) acrylate, 2-hydroxyethyl (
  • the average particle size of latex particles can be analyzed by laser diffraction / scattering method (LS method), Coulter principle, dynamic light scattering photon correlation method, electron microscope and the like.
  • LS method laser diffraction / scattering method
  • Coulter principle Coulter principle
  • dynamic light scattering photon correlation method electron microscope and the like.
  • the average particle size of the latex particles is preferably 100 nm to 340 nm, more preferably 150 nm to 260 nm. If it is less than 100 nm, the sensitivity in the low to medium concentration range is lowered, making accurate measurement difficult, and if it exceeds 340 nm, the sensitivity in the low concentration side is increased, but a so-called hook phenomenon occurs on the high concentration side, which is higher than the actual concentration. This is because the phenomenon that a low value appears appears.
  • the critical agglutination concentration of latex particles is the maximum concentration of salt that latex does not agglomerate, and the salt is added stepwise to latex particles to which antibody is not sensitized, and the salt concentration that completely self-aggregates is obtained. It means a salt concentration that is one step lower than the concentration. For example, every 10 mM of sodium phosphate aqueous solution (pH 7.4) is prepared in the range of 10 to 400 mM, and latex particles are added to each concentration of sodium phosphate aqueous solution at a final concentration of 1% (W / V). And stir.
  • the concentration of one-step thin sodium phosphate aqueous solution at which the latex is completely self-aggregating is defined as the critical aggregating concentration (maximum non-aggregating concentration).
  • the critical agglutination concentration of the latex particles is preferably selected appropriately from 65 mM to 270 mM, more preferably from 150 mM to 270 mM. When it is less than 65 mM, it is difficult to keep the dispersion of latex particles, and when it is 270 mM or more, an immune reaction is hard to occur and the latex particles do not aggregate.
  • the critical aggregation concentration of latex particles can be adjusted by appropriately changing the weight ratio of raw materials.
  • styrene latex is prepared by adding a predetermined amount of a polymerizable monomer having a phenyl group such as styrene and a predetermined amount of a polymerizable monomer having a phenyl group such as sodium styrenesulfonate and a sulfonate to an aqueous medium. It can be obtained by copolymerization in the medium. In this case, the critical coagulation concentration can be adjusted by changing the mixing ratio of styrene and sodium styrenesulfonate.
  • the latex particles to be used can be selected as appropriate in material and particle size in order to obtain desired performance such as sensitivity improvement, and those having different material and particle size can be used in combination. Further, the concentration of the latex particles at the time of measuring the agglutination reaction in the present invention is not particularly limited and can be appropriately set according to the desired sensitivity and performance.
  • insoluble carrier particles carrying anti-LRG monoclonal antibody The antibody against LRG can be immobilized and supported on insoluble carrier particles such as latex particles by a known method such as a physical adsorption (hydrophobic bond) method, a chemical bonding method or a combination thereof.
  • a latex will be described below as a typical example of the insoluble carrier particles.
  • the physical adsorption method according to a known method, an antibody against LRG and latex particles are mixed and brought into contact with each other in a solution such as a buffer solution, or an antibody against LRG dissolved in a buffer solution or the like is used as a carrier. It can be performed by bringing them into contact with each other.
  • At least two kinds of antibodies against the specific substance carried by the latex particles are required to form a sandwich. That is, two or more monoclonal antibodies having different recognition sites are used as the anti-LRG monoclonal antibody.
  • the first monoclonal antibody and the second monoclonal antibody need to be supported on different insoluble carrier particles.
  • the concentrations of the insoluble carrier particles carrying the first anti-LRG monoclonal antibody and the insoluble carrier particles carrying the second anti-LRG monoclonal antibody should be appropriately set according to the desired sensitivity and performance as described above. However, it is preferable that the same amount is contained in the reaction liquid phase.
  • the average particle diameter of the insoluble carrier particles carrying the first anti-LRG monoclonal antibody and the insoluble carrier particles carrying the second anti-LRG monoclonal antibody is preferably 100 nm to 340 nm, respectively, as described above.
  • the average particle diameters of both are preferably the same, and more preferably the same.
  • the same degree means that one average particle diameter is included in a range of 80 to 120% of the other average particle diameter, and the same degree means that one average particle diameter is 90 to 110 of the other average particle diameter. It is included in the range of%.
  • bovine serum albumin BSA
  • casein gelatin
  • ovalbumin a salt thereof, etc.
  • the protein may be subjected to a blocking treatment (masking treatment) by a known method such as contacting with and coating the protein, surfactant or skim milk powder.
  • the contacting of the sample containing LRG with the latex particles carrying the anti-LRG monoclonal antibody in the liquid phase typically includes the following (1) to (4).
  • the assay reagent of the present invention is a reagent for assaying LRG in a blood sample by an immunoagglutination method, and comprises at least an insoluble carrier particle carrying a first anti-LRG monoclonal antibody and a second anti-LRG monoclonal antibody. It contains insoluble carrier particles to be carried. Typically, it is composed of two or more constituent reagents, at least one constituent reagent comprises latex particles carrying anti-LRG monoclonal antibodies and another constituent comprises a buffer.
  • the measuring reagent of the present invention is a liquid reagent.
  • the reagent for measurement of the present invention is preferably a two-reagent type consisting of a first reagent and a second reagent.
  • the two-reagent type first reagent contains a buffer for diluting a biological sample containing LRG
  • the second reagent contains latex particles carrying a first anti-LRG monoclonal antibody and a second anti-LRG.
  • This is a test solution containing latex particles carrying a monoclonal antibody.
  • the measuring reagent of the present invention is a three-reagent type consisting of a first reagent, a second reagent and a third reagent
  • the first reagent contains a buffer solution and the second reagent is the first reagent.
  • the reagent solution containing the latex particles carrying the anti-LRG monoclonal antibody, and the third reagent are the reagent solutions containing the latex particles carrying the second anti-LRG monoclonal antibody.
  • the buffer solution contained in the measuring reagent of the present invention may be one that is generally used, for example, tris-hydrochloric acid, boric acid, phosphoric acid, acetic acid, citric acid, succinic acid, phthalic acid, glutaric acid, maleic acid.
  • examples thereof include acids, glycine and salts thereof, and good buffer solutions such as MES, Bis-Tris, ADA, PIPES, ACES, MOPSO, BES, MOPS, TES and HEPES.
  • the concentration of the buffer solution component may be within a concentration range in which spontaneous aggregation of insoluble carrier particles in the reagent does not occur and a desired immune reaction is performed, and may be 100 mM or more in the reaction solution, preferably 200 mM or more. , More preferably 300 mM or more, even more preferably 400 mM or more.
  • the measuring reagent of the present invention preferably further contains a salt.
  • the type of salt is preferably an inorganic salt, and examples of the inorganic salt include sodium chloride and calcium chloride.
  • the salt concentration may be in a concentration range in which spontaneous aggregation of the insoluble carrier particles in the reagent does not occur and a desired immune reaction is performed, and the lower limit of the concentration may be 100 mM or more in the reaction solution, preferably It is 300 mM or more, more preferably 500 mM or more, and even more preferably 700 mM or more.
  • the upper limit of the concentration is preferably 2000 mM or less in the reaction solution, more preferably 1500 mM or less, even more preferably 1000 mM or less, and most preferably 900 mM or less.
  • the concentration range in the reaction solution is preferably 100 to 1500 mM, more preferably 300 to 1000 mM, even more preferably 500 to 1000 mM, and most preferably 700 to 900 mM.
  • the measurable range (measuring range) of the measuring reagent of the present invention may be about 10 to 80 ⁇ g / mL, preferably 5.0 to 100 ⁇ g / mL in order to measure LRG as a diagnostic marker.
  • the reagent kit of the present invention is characterized by containing at least the following elements (1) and (2).
  • Second reagent containing insoluble carrier particles carrying at least first anti-LRG monoclonal antibody and insoluble carrier particles carrying second anti-LRG monoclonal antibody can contain (3) a standard antigen or LRG as a control.
  • a sample pretreatment reagent for pretreating the sample may be included.
  • the sample pretreatment reagent may be contained in the first reagent containing the buffer solution of (1), or may be contained as a reagent composition different from (1) and (2).
  • it can further include instructions for use, a sample collection tool (collection pipette, syringe, cotton swab, filtration filter, etc.), sample diluent, sample extract.
  • the homogeneous method refers to a measuring method for specifically detecting a reaction proceeding in a mixed solution (reaction solution) of a sample and a reagent solution without performing B / F (binding / non-binding) separation, This is a measuring method called as contrasted with the heterogeneous measuring method in which the excess component not involved in the measuring reaction is completely washed and removed by the B / F separation operation, and then the main reaction is allowed to proceed to detect.
  • the immunoaggregation method is a method based on the homogeneous method in the present invention means that in the following typical steps (1) to (3), (1) A step of contacting a sample with a buffer solution in a liquid phase (2) After the step (1), a step of adding insoluble carrier particles carrying an anti-LRG monoclonal antibody to the liquid phase (3) (2) The step (3) of measuring the agglutination reaction between the LRG and the insoluble carrier particles after the step of) is performed in the middle of the step of (2) or after the step of (2), a washing / separation step is performed. Without measuring the LRG and the insoluble carrier particles.
  • the reagent of the present invention may contain a polymer such as polyethylene glycol, polyvinylpyrrolidone, or a phospholipid polymer as a component that enhances aggregation formation of insoluble carrier particles. Further, as a component for controlling the formation of aggregates, one or a combination of generally used components such as proteins, amino acids, saccharides, metal salts, surfactants, reducing substances and chaotropic substances may be contained. .
  • Second reagent (2-1) Prescription example 1 The following two types of anti-LRG monoclonal antibody-sensitized latex particle solutions were mixed in equal amounts, and the absorbance at a wavelength of 570 nm was 4.5 Abs. With 10 mM HEPES buffer (pH 7.2). It was diluted so as to obtain the second reagent.
  • (Iii) Physical Properties of Latex Particles (a) Method for Measuring Particle Size of Latex Particles The latex particle size was analyzed by a laser diffraction / scattering particle size distribution analyzer LS13320 (manufactured by Beckman Coulter, Inc.). (B) Method for measuring the critical agglutination concentration of latex particles Prepare an aqueous sodium phosphate solution (pH 7.4) in the range of 10 to 400 mM for each 10 mM, and add a final concentration of latex particles of 1% to the aqueous sodium phosphate solution of each concentration. An amount of (W / V) was added and the mixture was stirred.
  • Test sample Purified LRG (manufactured by Bio Vendor Laboratory medicine) was added to physiological saline so that the concentration was 0, 5.0, 10.0, 23.0, 50.0, 100.0 ⁇ g / mL.
  • the first reagent and the second reagent of each formulation example were combined, and a sample containing each known concentration of LRG was measured using a Hitachi 7180 type automatic analyzer. Specifically, 150 ⁇ L of the first reagent was added to 2.5 ⁇ L of the sample, and the mixture was kept warm at 37 ° C. for 5 minutes, and then 50 ⁇ L of the second reagent was added and stirred. The change in absorbance due to the formation of aggregates was measured at a main wavelength of 570 nm and a sub wavelength of 800 nm for 5 minutes thereafter, and the change in absorbance was measured. A calibration curve was created from each measured absorbance value, and R 2 (coefficient of determination) was determined.
  • the average particle size of the latex particles is 100 nm to 340 nm, accurate measurement is possible in the concentration range covering the LRG concentration distribution in human serum, and even if it is 150 nm to 260 nm, it is highly accurate. It was found that accurate measurement is possible. Further, if the critical agglutination concentration is 65 mM to 270 mM, accurate measurement is possible within the concentration range covering the LRG concentration distribution in human serum, and if it is 150 mM to 270 mM, the measurement with higher accuracy is possible. It turns out that is possible.
  • Test Example 2 In order to examine whether a sample close to an actual sample can be measured, purified LRG was added to pooled serum to prepare an LRG simulated sample having a known concentration, and the concentration of LRG was measured. 1. Reagents The reagents of Prescription Examples 2 to 6 of Test Example 1 were used.
  • Test sample (1) Pooled serum was used as panel sample L. (2) Purified LRG was added to pooled serum at 28.2 ⁇ g / mL to prepare a panel sample M. (3) Purified LRG was added to pool serum at 63.1 ⁇ g / mL to prepare panel sample H.
  • Test method and measurement conditions are the same as in Test Example 1.
  • concentration of each panel sample was obtained from the calibration curve obtained in Test Example 1, and the relative ratio (%) to the known concentration was calculated.
  • Table 1 shows the measurement results and consideration results. According to this result, it was found that the reagents of Prescription Examples 2 to 6 can accurately measure even a simulated sample close to an actual sample. In particular, Formulation Examples 3 to 5 had extremely high accuracy with a relative ratio of 99% to a known concentration. From the above, it was found that accurate measurement is possible if the average particle size of the latex particles is 100 nm to 340 nm, and even if it is 150 nm to 260 nm, measurement with a higher degree of accuracy is possible. It was Further, it was found that the critical agglutination concentration of the latex can be accurately measured if it is 65 mM to 270 mM, and even higher if it is 150 mM to 270 mM.
  • Test Example 3 It was confirmed that LRG can be measured as a marker by the measuring method of the present invention using healthy subject samples and patient samples. 1. Reagent The reagent of Prescription Example 5 of Test Example 1 was used.
  • Test sample Serum sample of healthy subjects 7 samples purchased from PROMEDDEX (2) Serum sample of patients with ulcerative colitis (mild (remission period)) 13 samples purchased from Bioreclamtion (3) Ulcerative colitis Serum samples from patients (severe (active)) 5 samples purchased from Bioreclamtion and Proteogenex
  • the measuring reagent of the present invention can serve as a diagnostic agent.
  • a biological sample containing LRG is brought into contact with an insoluble carrier particle carrying an anti-LRG monoclonal antibody in a liquid phase, and the degree of aggregation is measured. It was possible to provide a measuring method and a measuring reagent for LRG in the obtained biological sample. Since the measuring method and the measuring reagent of the present invention can be applied to a general-purpose automatic analyzer, it has become possible to measure LRG simultaneously more easily and in large quantities. Therefore, LRG can be easily and quickly quantified as a biomarker, and the activity of diseases such as inflammatory bowel disease can be easily evaluated.

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Abstract

本発明の目的は、生体試料中のＬＲＧを簡便かつ短時間で測定できる測定方法及び測定用試薬を提供することにある。　本発明者らは、上記課題を解決すべく鋭意検討し、生体試料を、液相中で、 当該試料と、第一の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子及び第二の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子とを接触させる免疫凝集測定法により、簡便かつ短時間で、生体試料中のＬＲＧを測定できる、という知見を見出して本発明を完成させた。

Description

ロイシンリッチα２グリコプロテインの免疫測定方法及び測定試薬
　本発明は、ロイシンリッチα２グリコプロテインの免疫測定方法及び免疫測定試薬に関する。特に、ロイシンリッチα２グリコプロテインに対する特異的親和性物質を担持させた不溶性担体粒子を用いる免疫測定方法及び免疫測定試薬に関する。
　ロイシンリッチα２グリコプロテイン（以下、単にＬＲＧということがある）は、血清タンパク質の１つで、約５０ｋＤａの糖タンパク質であり、好中球から分泌されることなどが報告されている（非特許文献１）。　
　また、ＬＲＧが、ベーチェット病などの自己免疫疾患の検査用のバイオマーカーとして有用であることが開示されている（特許文献１）。
　特許文献１には、ＬＲＧの検出や定量測定は、プロテオーム解析や免疫学的手法により行われていたことや、免疫学的手法としては、抗ＬＲＧモノクローナル抗体を用いたＥＬＩＳＡ法、ウエスタンブロッティング法などが記載されている。
　前記ＥＬＩＳＡ法の測定試薬としては、例えばＨｕｍａｎ　ＬＲＧ　Ａｓｓａｙ　Ｋｉ－ＩＢＬ（ＩＢＬ社）が市販されている。このヒトＬＲＧを測定するＥＬＩＳＡ試薬は、ＬＲＧに結合する抗体とＬＲＧとを抗原抗体反応させ免疫複合体を形成させたのち、免疫複合体中の標識の量を測定することにより、試料中のＬＲＧ濃度を定量することが可能である。
　一般的にＥＬＩＳＡ法での測定に適する測定対象物の濃度は、ｐｇ／ｍＬ～ｎｇ／ｍＬの範囲であるため、生体試料中に、測定対象物質がμｇ／ｍＬ単位の比較的高濃度で存在する場合には、測定試薬の能力を発揮できる程度まで希釈する前処理が必要であった。
　また、高倍希釈による誤差を防ぐために複数段階に分けて希釈する必要があり、工程が煩雑になるという問題があった。具体的には前述の市販試薬であれば、試料中のＬＲＧ濃度として、１．５６～１００ｎｇ／ｍＬの定範囲に入るように希釈する必要があった。当該希釈は、例えば潰瘍性大腸炎の際に起こりうるヒト血清中の濃度の最高値が１００μｇ／ｍＬであれば、１０００倍もの希釈が必要であることを意味している。
　また、これまでのＬＲＧ測定ＥＬＩＳＡ試薬においては、測定対象試料と固相抗体を長時間反応させる必要があった。例えば前述の市販キットでは、固相抗体と試料を接触させる一次反応に一晩を要し、これまで試料中のＬＲＧを短時間で測定できる試薬は存在しなかった。
特開2010-286279号公報
J Leukoc Biol.2002,72(3),478-85,2002
　本発明の目的は、生体試料中のＬＲＧを簡便かつ、短時間で測定できる測定方法及び測定用試薬を提供することにある。
　本発明者らは、上記課題を解決すべく鋭意検討し、当該試料と、第一の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子及び第二の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子とを接触させる免疫学的測定法、具体的には免疫凝集法において、試薬組成を工夫することにより、希釈等の前処理を必要とせず、簡便かつ短時間で、生体試料中のＬＲＧを測定できることを見出して本発明を完成させた。
　すなわち、本発明は以下の構成を有する。
＜１＞生体由来試料中のロイシンリッチα２グリコプロテイン（ＬＲＧ）の免疫学的測定方法であって、
液相中で、当該試料と、少なくとも第一の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子及び第二の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子とを接触させる工程を含む、前記測定方法。
＜２＞不溶性担体粒子が、平均粒子径が１００ｎｍ～３４０ｎｍのラテックス粒子である＜１＞に記載の測定方法。
＜３＞不溶性担体粒子が、臨界凝集濃度が６５ｍＭ～２７０ｍＭのラテックス粒子である＜１＞又は＜２＞に記載の測定方法。
＜４＞第一の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子と第二の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子の平均粒子径が同一である＜１＞～＜３＞のいずれかに記載の測定方法。
＜５＞第一の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子及び第二の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子が前記液相中に等量含まれている＜１＞～＜４＞のいずれかに記載の測定方法。
＜６＞生体由来試料が血清である、＜１＞～＜５＞のいずれかに記載の測定方法。
＜７＞免疫凝集法が、ホモジーニアス法にもとづく方法である＜１＞～＜６＞のいずれかに記載の測定方法。
＜８＞前記液相中で、生体由来試料と、第一の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子及び第二の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子とを接触させる工程が、次の工程である＜１＞～＜７＞のいずれかに記載の測定方法。
（１）液相中で、当該試料と緩衝液を含む第一試薬とを接触させる工程
（２）工程（１）の後に、第一の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子及び第二の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子を含む第二試薬を液相中に添加する工程
＜９＞前記（１）の液相中の塩濃度が、７００～９００ｍＭである＜８＞に記載の測定方法。
＜１０＞さらに、ＬＲＧと抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持した不溶性担体粒子の複合体の凝集度合いを光学的に測定する工程を含む＜１＞～＜９＞のいずれかに記載の測定方法。
＜１１＞光学的に測定する工程が、散乱光強度、吸光度又は透過光強度を光学機器で測定する工程である＜１０＞に記載の測定方法。
＜１２＞血液試料中のＬＲＧを免疫学的測定法により測定するための試薬であって、少なくとも第一の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子及び第二の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子を含む前記試薬。
＜１３＞不溶性担体粒子が、平均粒子径が１００ｎｍ～３４０ｎｍのラテックス粒子である＜１２＞に記載の測定試薬。
＜１４＞不溶性担体粒子が、臨界凝集濃度が６５ｍＭ～２７０ｍＭのラテックス粒子である＜１２＞又は＜１３＞に記載の測定試薬。
＜１５＞第一の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子と第二の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子の平均粒子径が同一である＜１２＞～＜１４＞のいずれかに記載の測定試薬。
＜１６＞第一の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子及び第二の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子が等量含まれている＜１２＞～＜１５＞のいずれかに記載の測定試薬。
＜１７＞生体由来試料が血清である、＜１２＞～＜１６＞のいずれかに記載の測定試薬。
＜１８＞免疫凝集法が、ホモジーニアス法にもとづく方法である＜１２＞～＜１７＞のいずれかに記載の測定試薬。
＜１９＞血液試料中のＬＲＧを免疫凝集法により測定するための試薬キットであって、以下を含む前記試薬キット。
（１）緩衝液を含む第一試薬
（２）第一の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子及び第二の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子を含む第二試薬
＜２０＞不溶性担体粒子が、平均粒子径が１００ｎｍ～３４０ｎｍのラテックス粒子である＜１９＞に記載の試薬キット。
＜２１＞不溶性担体粒子が、臨界凝集濃度が６５ｍＭ～２７０ｍＭのラテックス粒子である＜１９＞又は＜２０＞に記載の試薬キット。
＜２２＞第一の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子と第二の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子の平均粒子径が同一である＜１９＞～＜２１＞のいずれかに記載の試薬キット。
＜２３＞前記（２）の第二試薬が第一の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子及び第二の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子を等量含む＜１９＞～＜２２＞のいずれかに記載の試薬キット。
＜２４＞前記（１）の第一試薬が、反応液相中の塩濃度が７００～９００ｍＭとなるように塩を含む＜１９＞～＜２３＞のいずれかに記載の試薬キット。
＜２５＞さらに、以下を含む＜１９＞～＜２４＞のいずれかに記載の試薬キット。
（３）標準抗原及び／又はコントロールとしてのＬＲＧ
　本発明によれば、より簡便かつ、短時間で結果が得られる生体試料中のＬＲＧの測定方法及び測定用試薬が提供される。
処方例１の第一試薬と第二試薬を組み合わせ、自動分析装置を用いて、各既知濃度のＬＲＧを含む試料を測定した結果を示すグラフである。 処方例２の第一試薬と第二試薬を組み合わせ、自動分析装置を用いて、各既知濃度のＬＲＧを含む試料を測定した結果を示すグラフである。 処方例３の第一試薬と第二試薬を組み合わせ、自動分析装置を用いて、各既知濃度のＬＲＧを含む試料を測定した結果を示すグラフである。 処方例４の第一試薬と第二試薬を組み合わせ、自動分析装置を用いて、各既知濃度のＬＲＧを含む試料を測定した結果を示すグラフである。 処方例５の第一試薬と第二試薬を組み合わせ、自動分析装置を用いて、各既知濃度のＬＲＧを含む試料を測定した結果を示すグラフである。 処方例６の第一試薬と第二試薬を組み合わせ、自動分析装置を用いて、各既知濃度のＬＲＧを含む試料を測定した結果を示すグラフである。 健常者検体及び患者検体を用いてに本発明の測定方法により血清中のＬＲＧ濃度を測定した結果を示すグラフである。
（免疫凝集法）
　免疫凝集法は、抗原あるいは抗体等の測定対象に対する特異的親和性物質を固定化した不溶性担体粒子を用いて、抗原や抗体を測定する免疫測定法の１種であり、臨床検査の分野で広く使用されている。不溶性担体粒子としてはラテックスなどが主に用いられ、その場合を特に、ラテックス免疫凝集法（ＬＴＩＡ）という。
　ＬＴＩＡによりＬＲＧを測定する方法としては、ＬＲＧに対するモノクローナル抗体を固定化したラテックス粒子と、抗原であるＬＲＧとを反応させ、サンドイッチ型の免疫複合体を形成させ、免疫複合体形成に伴う当該ラテックス粒子の凝集の程度からＬＲＧを測定する方法と、抗原を固定化したラテックス粒子と試料中のＬＲＧとを競合させて、当該ラテックス粒子と抗体との免疫複合体の形成を阻害し、免疫複合体の形成阻害に伴う当該ラテックス粒子の凝集阻害の程度からＬＲＧを測定する方法に大別することができる。
（試料）
　本発明における試料は、生体試料であれば特に限定はされないが、典型的には血液試料であり、例えば全血、血清、血漿が挙げられる。血漿としてはヘパリン血漿、ＥＤＴＡ血漿なども含まれる。
（測定対象物質）
  本発明における測定対象物質は、ロイシンリッチα２グリコプロテイン（ＬＲＧ）である。
（測定方法）
　ＬＴＩＡに代表される免疫凝集の測定方法としては、生じた凝集の程度を光学的あるいは電気化学的に観察することにより被検物質を測定できる。光学的に観察する方法としては、散乱光強度、吸光度、又は透過光強度を光学機器で測定する方法（エンドポイント法、レート法等）が挙げられる。試料を測定して得た吸光度等の測定値を、標準物質（ＬＲＧの濃度が既知の試料）を測定して得た吸光度等の測定値と比較して、試料中に含まれていたＬＲＧの濃度（定量値）を算出する。なお、透過光又は散乱光などの吸光度等の測定は、１波長測定であっても、又は２波長測定（２つの波長による差又は比）であってもよい。測定波長は、５００ｎｍから８００ｎｍの中から選ばれるのが一般的である。
  本発明の試料中のＬＲＧの測定は、用手法により行ってもよいし、又は測定装置等の装置を用いて行ってもよい。測定装置は、汎用自動分析装置であっても、専用の測定装置（専用機）であってもよい。 また、この測定は、２ステップ法（２試薬法）等の複数の操作ステップにより行う方法によって実施することが好ましい。
（抗ＬＲＧモノクローナル抗体）
　本発明のモノクローナル抗体は、当業者に周知の方法によって取得することができる。すなわち、抗原としてヒトＬＲＧをリン酸緩衝生理食塩水などの溶媒に溶解し、この溶液を動物に投与して免疫することによりに容易に製造できる。必要に応じて前記溶液に適宜のアジュバントを添加した後、エマルジョンを用いて免疫を行ってもよい。アジュバントとしては、油中水型乳剤、水中油中水型乳剤、水中油型乳剤、リポソーム、水酸化アルミニウムゲルなどの汎用されるアジュバントのほか、生体成分由来のタンパク質やペプチド性物質などを用いてもよい。例えば、フロイントの不完全アジュバント又はフロイントの完全アジュバントなどを好適に用いることができる。アジュバントの投与経路、投与量、投与時期は特に限定されないが、抗原を免疫する動物において所望の免疫応答を増強できるように適宜選択することが望ましい。
　免疫に用いる動物の種類も特に限定されないが、哺乳動物が好ましく、例えばマウス、ラット、ウシ、ウサギ、ヤギ、ヒツジなどを用いることができ、より好ましくはマウスを用いることができる。動物の免疫は、一般的な手法に従って行えばよく、例えば、抗原の溶液、好ましくはアジュバントとの混合物を動物の皮下、皮内、静脈、又は腹腔内に注射することにより免疫を行うことができる。免疫応答は、一般的に免疫される動物の種類及び系統によって異なるので、免疫スケジュールは使用される動物に応じて適宜設定することが望ましい。抗原投与は最初の免疫後に何回か繰り返し行うことが好ましい。
　モノクローナル抗体を得る場合、引き続き以下の操作が行われるが、それに限定されることはなく、モノクローナル抗体それ自体の製造方法については、例えば、Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ，Ａ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　Ｍａｎｕａｌ（Ｃｏｌｄ　Ｓｐｒｉｎｇ　Ｈａｒｂｏｒ　ＬａｂｏｒａｔｏｒｙＰｒｅｓｓ，（１９８８））に記載の方法に準じて行うことができる。
　最終免疫後、免疫した動物から抗体産生細胞である脾臓細胞あるいはリンパ節細胞を摘出し、高い増殖能を有するミエローマ細胞と細胞融合させることによりハイブリドーマを作製することができる。細胞融合には抗体産生能（質・量）が高い細胞を用いることが好ましく、またミエローマ細胞は、融合する抗体産生細胞の由来する動物と適合性があることが好ましい。細胞融合は、当該分野で公知の方法に従って行うことができるが、例えば、ポリエチレングリコール法、センダイウイルスを用いた方法、電流を利用する方法などを採用することができる。得られたハイブリドーマは、公知の方法に従って増殖させることができ、産生される抗体の性質を確認しつつ所望のハイブリドーマを選択することができる。ハイブリドーマのクローニングは、例えば限界希釈法や軟寒天法などの公知の方法により行うことが可能である。
　第一及び第二のモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマの選択について説明する。ハイブリドーマの選択は、産生される抗体が実際の測定に用いられる条件を考慮し、選択の段階で効率的に行うこともできる。例えば、ＥＬＩＳＡ法、ＲＩＡ法、Ｂｉａｃｏｒｅ法等により、ヒトＬＲＧに反応する抗体を産生するハイブリドーマを選択することにより得られる。具体的には、まず、培養上清中のモノクローナル抗体を、固相化したヒトＬＲＧと反応させ、次いで標識抗ＩｇＧ抗体を反応させる抗原固相化ＥＬＩＳＡ法により、ヒトＬＲＧに対し高い反応性を有するモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを選択する。
　このようにして選別されたハイブリドーマを大量培養することにより、所望の特性を有するモノクローナル抗体を製造することができる。大量培養の方法は特に限定されないが、例えば、ハイブリドーマを適宜の培地中で培養してモノクローナル抗体を培地中に産生させる方法や、哺乳動物の腹腔内にハイブリドーマを注射して増殖させ、腹水中に抗体を産生させる方法などを挙げることができる。モノクローナル抗体の精製は、例えば陰イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、硫安分画法、ＰＥＧ分画法、エタノール分画法などを適宜組み合わせて行うことができる。
　本発明の抗体としては、抗体分子全体のほかに抗原抗体反応活性を有する抗体の機能性断片を使用することも可能であり、前記のように動物への免疫工程を経て得られたもののほか、遺伝子組み換え技術を使用して得られるものや、キメラ抗体を用いることも可能である。抗体の機能性断片としては、例えば、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆａｂ’などが挙げられ、これらの機能性断片は前記のようにして得られる抗体をタンパク質分解酵素（例えば、ペプシンやパパインなど）で処理することにより製造できる。
（不溶性担体粒子）
　本発明に用いる不溶性担体粒子としては、抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持でき、試料中のＬＲＧの測定ができるような不溶性担体粒子であればよく、例えば、ラテックス粒子、磁性粒子、金属粒子等が挙げられるが、このうちでもラテックス粒子が好ましい。
　不溶性担体粒子の平均粒子径及び臨界凝集濃度は、ＬＲＧの試料中での濃度あるいは測定機器の検出感度などを考慮し、適宜選択される。
　不溶性担体粒子の平均粒子径は、好ましくは１００ｎｍ～３４０ｎｍ、より好ましくは１５０ｎｍ～２６０ｎｍである。
　また、不溶性担体粒子の臨界凝集濃度は、好ましくは６５ｍＭ～２７０ｍＭ、より好ましくは１５０ｍＭ～２７０ｍＭのものが適宜選択される。
（ラテックス粒子）
　本発明に用いる不溶性担体粒子の好ましい例であるラテックス粒子としては、免疫学的測定試薬として一般的に用いられているラテックス粒子であれば特に制限されない。ラテックス粒子は、種々のモノマーを重合又は共重合させることによって得ることができる。ここにモノマーとしては、例えば、スチレン、α－メチルスチレン,ｏ－メチルスチレン、ｐ－メチルスチレン、ｐ－クロロスチレン、４－ビニル安息香酸、ジビニルベンゼン、ビニルトルエン等のフェニル基を有する重合性単量体、スチレンスルホン酸塩、ジビニルベンゼンスルホン酸塩、ｏ－メチルスチレンスルホン酸塩、ｐ－メチルスチレンスルホン酸塩等のフェニル基及びスルホン酸塩を有する重合性単量体、１－ビニルナフタレン、２－ビニルナフタレン、（メタ）アクリル酸α－ナフチル、（メタ）アクリル酸β－ナフチル等のナフチル基を有する重合性単量体などの重合性不飽和芳香族類、例えば（メタ）アクリル酸、イタコン酸、マレイン酸、フマール酸等の重合性不飽和カルボン酸類、例えば（メタ）アクリル酸メチル、（メタ）アクリル酸エチル、（メタ）アクリル酸－ｎ－ブチル、（メタ）アクリル酸－２－ヒドロキシエチル、（メタ）アクリル酸グリシジル、エチレングリコール－ジ－（メタ）アクリル酸エステル、（メタ）アクリル酸トリブロモフェニル等の重合性不飽和カルボン酸エステル類、（メタ）アクリロニトリル、（メタ）アクロレイン、（メタ）アクリルアミド、Ｎ－メチロール－（メタ）アクリルアミド、メチレンビス（メタ）アクリルアミド、ブタジエン、イソプレン、酢酸ビニル、ビニルピリジン、Ｎ－ビニルピロリドン、塩化ビニル、塩化ビニリデン、臭化ビニル等の不飽和カルボン酸アミド類、重合性不飽和ニトリル類、ハロゲン化ビニル類、共役ジエン類等を挙げることができる。これらのモノマーは、要求される表面特性、比重等によって適宜選択され、１種を単独で又は２種以上を混合して使用することができる。
　ラテックス粒子の平均粒子径は、レーザー回析・散乱法（ＬＳ法）、コールター原理、動的光散乱光子相関法、電子顕微鏡などで解析することができる。
　ラテックス粒子の平均粒子径は、好ましくは１００ｎｍ～３４０ｎｍ、より好ましくは１５０ｎｍ～２６０ｎｍのものが適宜選択される。１００ｎｍ未満では、低濃度から中濃度域の感度が低下し正確な測定がしづらく、また、３４０ｎｍを超えると低濃度側の感度は上がるものの高濃度側ではいわゆるフック現象が起きてしまい実濃度より低い値が出るという現象が起きるからである。
　ラテックス粒子の臨界凝集濃度とは、ラテックスが凝集しない塩の最大濃度のことであり、抗体が感作されていないラテックス粒子に段階的に塩を加え、完全に自己凝集する塩濃度を求め、その濃度の１段階薄い塩濃度をいう。例えば、リン酸ナトリウム水溶液（ｐＨ７．４）１０ｍＭごと、１０～４００ｍＭの範囲で準備し、各濃度のリン酸ナトリウム水溶液に、ラテックス粒子を最終濃度１％（Ｗ／Ｖ）になる量を投入して攪拌する。１分間経過後に目視確認してラテックスが自己凝集しているか否か確認し、完全に自己凝集する濃度の１段階薄いリン酸ナトリウム水溶液濃度を臨界凝集濃度（最大非凝集濃度）とする。
　ラテックス粒子の臨界凝集濃度（リン酸ナトリウム水溶液濃度）は、好ましくは６５ｍＭ～２７０ｍＭ、より好ましくは１５０ｍＭ～２７０ｍＭのものが適宜選択される。６５ｍＭ未満では、ラテックス粒子の分散を保つことが難しく、２７０ｍＭ以上では、免疫反応が起こりづらく、凝集しない。
　ラテックス粒子の臨界凝集濃度は、原料の重量比を適宜変更することにより調整することができる。例えば、スチレンラテックスは、スチレンなどのフェニル基を有する重合性単量体の所定量と所定量のスチレンスルホン酸ナトリウムなどのフェニル基とスルホン酸塩とを有する重合性単量体とを、水系媒体中で共重合させることにより得られるが、この場合のスチレンとスチレンスルホン酸ナトリウムの混合比を変更することで臨界凝集濃度を調製することができる。
　使用されるラテックス粒子は、感度向上等の所望の性能を得るため、材質や粒子径を適宜選択することができ、材質や粒子径が異なるものを組み合わせて使用することもできる。
　 また、本発明における凝集反応測定時のラテックス粒子の濃度は特に制限がなく、所望の感度や性能に応じて適宜設定することができる。　
（抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持した不溶性担体粒子）
　ＬＲＧに対する抗体は、物理的吸着（疎水結合）法、化学的結合法又はこれらの併用等の公知の方法によりラテックス粒子などの不溶性担体粒子に固定化して担持させることができる。以下、不溶性担体粒子の代表例としてラテックスを例に説明する。
　物理的吸着法による場合は、公知の方法に従い、ＬＲＧに対する抗体と、ラテックス粒子とを、緩衝液等の溶液中で混合し接触させたり、又は緩衝液等に溶解したＬＲＧに対する抗体を、担体に接触させること等により行うことができる。
　また、化学的結合法により行う場合は、日本臨床病理学会編「臨床病理臨時増刊特集第５３号  臨床検査のためのイムノアッセイ－技術と応用－」，臨床病理刊行会，１９８３年発行；日本生化学会編「新生化学実験講座１  タンパク質IV」，東京化学同人，１９９１年発行等に記載の公知の方法に従い、ＬＲＧに対する特異的結合物質と、担体とを、グルタルアルデヒド、カルボジイミド、イミドエステル又はマレイミド等の二価性の架橋試薬と混合、接触させ、ＬＲＧに対する特異的結合物質と、担体の、それぞれのアミノ基、カルボキシル基、チオール基、アルデヒド基又は水酸基等と前記の二価性の架橋試薬とを反応させること等により行うことができる。
　ラテックス粒子が担持する特定物質に対する抗体は、サンドイッチを形成するために少なくとも２種類であることを要する。すなわち、抗ＬＲＧモノクローナル抗体としては、認識部位の異なる２以上のモノクローナル抗体を用いる。
　また、第一のモノクローナル抗体と第二のモノクローナル抗体は、それぞれ別の不溶性担体粒子に担持されていることを要する。
　本発明において、第一の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子及び第二の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子の濃度は、前述のとおり所望の感度や性能に応じて適宜設定することができるが、反応液相中において等量含まれていることが好ましい。
　また、本発明において、第一の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子と第二の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子の平均粒子径は前述のとおりそれぞれ１００ｎｍ～３４０ｎｍであることが好ましく、両平均粒子径は同程度であることが好ましく、同一であることがよりいっそう好ましい。同程度とは一方の平均粒子径が他方の平均粒子径の８０～１２０％の範囲に含まれることをいい、同一であるとは、一方の平均粒子径が他方の平均粒子径の９０～１１０％の範囲に含まれることをいう。
  なお、ラテックス粒子の自然凝集や、非特異的反応等を抑制するために処理を行う必要があれば、ラテックス粒子の表面に、ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）、カゼイン、ゼラチン、卵白アルブミン若しくはその塩などのタンパク質、界面活性剤又は脱脂粉乳等を接触させ被覆させること等の公知の方法により処理して、担体のブロッキング処理（マスキング処理）を行ってもよい。
（接触）
　液相中で、ＬＲＧを含む試料と、抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持するラテックス粒子とを接触させるとは、典型的には、以下の（１）～（４）が挙げられる。
（１）当該試料と緩衝液を混合した後、この混合液に第一の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持するラテックス粒子と第二の抗ＬＲＧモノクローナル抗体とを混合する態様、
（２）当該試料、緩衝液、並びに、第一の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持するラテックス粒子と第二の抗ＬＲＧモノクローナル抗体抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持するラテックス粒子、を同時に混合する態様、
（３）当該試料と緩衝液を混合した後、第一の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持するラテックス粒子を混合し、次に、第二の抗ＬＲＧモノクローナル抗体抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持するラテックス粒子を混合する態様
（４）（１）～（３）において当該試料を最後に添加して混合する態様
（測定用試薬）
　本発明の測定用試薬は、血液試料中のＬＲＧを免疫凝集法により測定するための試薬であって、少なくとも第一の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子及び第二の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子を含む。典型的には、２つ以上の構成試薬により構成され、少なくとも１つの構成試薬は抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持するラテックス粒子を含み、別の構成試薬は緩衝液を含む。また、本発明の測定用試薬は、液状の試薬である。
　本発明の測定用試薬は、このうちでも第一試薬と第二試薬とからなる２試薬型が好ましい。例えば、２試薬型の第一試薬は、ＬＲＧを含む生体由来試料を希釈するための緩衝液を含み、第二試薬は、第一の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持するラテックス粒子及び第二の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持するラテックス粒子を含む試液である。
　また、本発明の測定用試薬が、第一試薬、第二試薬と第３試薬からなる３試薬型である場合、例えば、第一試薬は、緩衝液等を含み、第二試薬は、第一の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持するラテックス粒子を含む試液、第３試薬は、第二の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持するラテックス粒子を含む試液である。
　本発明の測定試薬に含まれる緩衝液としては、一般的に使用されるものであればよく、例えばトリス塩酸、ホウ酸、リン酸、酢酸、クエン酸、コハク酸、フタル酸、グルタル酸、マレイン酸、グリシン及びそれらの塩などや、ＭＥＳ、Ｂｉｓ－Ｔｒｉｓ、ＡＤＡ、ＰＩＰＥＳ、ＡＣＥＳ、ＭＯＰＳＯ、ＢＥＳ、ＭＯＰＳ、ＴＥＳ、ＨＥＰＥＳ等のグット緩衝液などが挙げられる。
　緩衝液成分の濃度は、試薬中の不溶性担体粒子の自然凝集が起こらず、かつ、所望の免疫反応が行われる濃度範囲であればよく、反応溶液中において１００ｍＭ以上あればよく、好ましくは２００ｍＭ以上、さらに好ましくは３００ｍＭ以上、よりいっそう好ましくは４００ｍＭ以上である。
　本発明の測定試薬は、さらに塩を含むことが望ましい。塩の種類としては、無機塩が望ましく、無機塩としては塩化ナトリウム、塩化カルシウム等を挙げることができる。
　塩濃度は、試薬中の不溶性担体粒子の自然凝集が起こらず、かつ、所望の免疫反応が行われる濃度範囲であればよく、濃度の下限は、反応液中において１００ｍＭ以上あればよく、好ましくは３００ｍＭ以上、さらに好ましくは５００ｍＭ以上、よりいっそう好ましくは７００ｍＭ以上である。また、濃度の上限としては、反応液中において２０００ｍＭ以下が好ましく、さらに好ましくは１５００ｍＭ以下、よりいっそう好ましくは１０００ｍＭ以下、もっとも好ましくは９００ｍＭ以下である。
　また、濃度の範囲は、反応液中において、好ましくは１００～１５００ｍＭであり、さらに好ましくは３００～１０００ｍＭであり、よりいっそう好ましくは５００～１０００ｍＭであり、もっとも好ましくは７００～９００ｍＭである。
　本発明の測定試薬の測定可能な範囲（測定レンジ）は、ＬＲＧを診断用マーカーとして測定するためには、１０～８０μｇ／ｍＬ程度あればよく、望ましくは５．０～１００μｇ／ｍＬである。
(試薬キット)
　本発明の試薬キットは、少なくとも下記（１）および（２）の要素を含むことを特徴とする。
（１）緩衝液を含む第一試薬
（２）少なくとも第一の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子及び第二の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子を含む第二試薬
　また、本発明の試薬キットには、上記測定試薬のほかに、（３）標準抗原又はコントロールとしてのＬＲＧを含むことができる。
　また、試料を前処理するための試料前処理試薬が含まれていてもよい。試料前処理試薬は（１）の緩衝液を含む第一試薬に含ませておくこともできるし、（１）、（２）とは別の試薬構成として含むこともできる。
　またさらに、使用説明書、試料採取用具（採取ピペット、シリンジ、綿棒、ろ過フィルターなど）、試料希釈液、試料抽出液を含むことができる。
（ホモジーニアス法）
  本発明においてホモジーニアス法とは、試料と試薬液の混和溶液（反応液）中で進行する反応をＢ／Ｆ（結合／非結合）分離を行うことなく特異的に検出する測定法を指し、Ｂ／Ｆ分離操作によって測定反応に関与しなかった余剰成分を完全に洗浄・除去した後、主反応を進行させて検出するヘテロジーニアス測定法と対比して呼称される測定法のことをいう。したがって、本発明でいう「免疫凝集法が、ホモジーニアス法にもとづく方法である」とは、典型的な下記（１）～（３）の工程において、
（１）液相中で、試料と緩衝液とを接触させる工程
（２）（１）工程の後に、抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子を液相中に添加する工程
（３）（２）の工程の後に、ＬＲＧと当該不溶性担体粒子の凝集反応を測定する工程
（３）の工程は、「（２）の工程の途中、あるいは（２）の工程の後に、洗浄・分離工程を経ることなく当該ＬＲＧと当該不溶性担体粒子の凝集反応を測定する工程」であることを意味する。
（その他の試薬成分）
　本発明の試薬は、不溶性担体粒子の凝集形成を増強する成分としてポリエチレングリコール、ポリビニルピロリドン、リン脂質ポリマーなどの高分子を含んでもよい。また、凝集の形成をコントロールする成分として、タンパク質、アミノ酸、糖類、金属塩類、界面活性剤類、還元性物質やカオトロピック物質など汎用される成分を１種類、または複数の成分を組み合わせて含んでもよい。
　以下、実施例により本発明を詳細に説明するが、本発明はこれらに限定して解釈されるものではない。
〔試験例１〕
　ＬＲＧ濃度測定における不溶性担体粒子の粒子径を変更し、濃度依存的な吸光度変化がみられるかどうか、また、検量線の作成が可能かどうかを調べた。
１．試薬
（１）第一試薬
　以下に示す成分を含み、ｐＨを６．５～７．５に調整した。
・ＨＥＰＥＳ
・１Ｍ　ＮａＣｌ　
・１．０％　ＢＳＡ
・０．０５％　Ｐｒｏｃｌｉｎ９５０
（２）第二試薬
（２－１）処方例１
　下記の２種類の抗ＬＲＧモノクローナル抗体感作ラテックス粒子溶液を等量混合し、１０ｍＭ　ＨＥＰＥＳ緩衝液（ｐＨ７．２）で波長５７０ｎｍの吸光度が４．５Ａｂｓ．となるように希釈して第二試薬とした。
（ｉ）第一の抗ＬＲＧモノクローナル抗体（Ｋａｎ１０）感作ラテックス粒子溶液
　平均粒子径３４３ｎｍ、臨界凝集濃度６０ｍＭの１％ポリスチレンラテックス溶液（２０ｍＭグリシン緩衝液）に、等量の５０ｍＭグリシン緩衝液で０．７１ｍｇ／ｍＬに希釈した抗ＬＲＧモノクローナル抗体（Ｋａｎ１０）溶液を添加して４℃２時間攪拌した。その後、等量の合成ポリマー（ＢｌｏｃｋｍａｓｔｅｒＣＥ２１０　ＪＳＲ社製）を添加して４℃、１時間攪拌した。その後、精製水に溶解させた１０％ＢＳＡ液を１／１０量添加して４℃、１時間攪拌し、抗ＬＲＧモノクローナル抗体（Ｋａｎ１０）感作ラテックス溶液を作製した。
（ｉｉ）第二の抗ＬＲＧモノクローナル抗体感作ラテックス粒子溶液
　平均粒子径３４３ｎｍ、臨界凝集濃度６０ｍＭのポリスチレンラテックスを用いて上記（ｉ）と同じ方法により抗ＬＲＧモノクローナル抗体（Ｋａｎ１１）感作ラテックス粒子溶液を作製した。
（iii）ラテックス粒子の物理的性質
（ａ）ラテックス粒子の粒子径の測定方法
　レーザー回析・散乱法粒度分布装置ＬＳ１３３２０（ベックマンコールター社製）でラテックス粒子径を解析した。
（ｂ）ラテックス粒子の臨界凝集濃度の測定方法
　リン酸ナトリウム水溶液（ｐＨ７．４）を１０～４００ｍＭの範囲で１０ｍＭごとに準備し、各濃度のリン酸ナトリウム水溶液に、ラテックス粒子を最終濃度１％（Ｗ／Ｖ）になる量を投入して攪拌した。次に、１分間経過後にラテックスが自己凝集しているか否かを目視で確認し、完全に自己凝集する濃度の１段階薄いリン酸ナトリウム水溶液濃度を臨界凝集濃度とした。
（２－２）処方例２～６
　処方例１のラテックス粒子を以下のように変更した以外は同様に行った。
　処方例２：平均粒子径３０５ｎｍ、臨界凝集濃度７０ｍＭ
　処方例３：平均粒子径２５１ｎｍ、臨界凝集濃度２６０ｍＭ
　処方例４：平均粒子径２０７ｎｍ、臨界凝集濃度１８０ｍＭ
　処方例５：平均粒子径１９４ｎｍ、臨界凝集濃度２３０ｍＭ
　処方例６：平均粒子径１２１ｎｍ、臨界凝集濃度２１０ｍＭ
２．被検試料
　生理食塩水に精製ＬＲＧ（Bio Vendor Laboratory medicine社製）を０、５．０、１０．０、２３．０，５０．０，１００．０μｇ／ｍＬとなるように添加した。
３．測定方法
　各処方例の第一試薬と第二試薬を組み合わせ、日立７１８０形自動分析装置を用いて、各既知濃度のＬＲＧを含む試料を測定した。具体的には、試料２．５μＬに第一試薬１５０μＬを加えて３７℃で５分間保温した後、第二試薬５０μＬを加えて攪拌した。凝集形成に伴う吸光度変化を、その後５分間にわたり、主波長５７０ｎｍ、副波長８００ｎｍで測定し、その吸光度変化量を測定した。各吸光度測定値から検量線を作成し、Ｒ２（決定係数）を求めた。 
４．測定条件
　日立７１８０形自動分析装置のパラメータ条件を以下に示す。
（１）液量　　　　検体―第一試薬―第二試薬；２．５μＬ－１５０μＬ－５０μＬ
（２）分析法　　　２ポイントエンド法（測光ポイント１９－３４）
（３）測定波長　　主波長５７０ｎｍ／副波長８００ｎｍ
（４）キャリブレーション　　スプライン
５．測定結果及び考察
　結果を図１～図６に示す。
　本結果によれば、処方例１は高濃度のＬＲＧ濃度（１００μｇ／ｍｌ）ではフック現象がみられたが、低～中濃度では、濃度依存的に吸光度が上昇した。また、処方例２～６は、低濃度～高濃度で濃度依存的に吸光度が上昇し、Ｒ２も０．９９以上であった。このうちでも特に処方例３，４，５はＲ２が極めて良好で０．９９６以上であった。
　以上より、ラテックス粒子の平均粒子径は、１００ｎｍ～３４０ｎｍであればヒト血清中のＬＲＧ濃度分布を網羅する濃度範囲で正確な測定が可能であり、そのうちでも１５０ｎｍ～２６０ｎｍであればより高度な正確性をもった測定が可能であることがわかった。
　また、臨界凝集濃度は６５ｍＭ～２７０ｍＭであればヒト血清中のＬＲＧ濃度分布を網羅する濃度範囲で正確な測定が可能であり、そのうちでも１５０ｍＭ～２７０ｍＭであればより高度な正確性をもった測定が可能であることがわかった。
〔試験例２〕
　実検体に近い検体の測定ができるかどうかを調べるために、プール血清に精製ＬＲＧを添加して既知濃度のＬＲＧ模擬検体を調製し、ＬＲＧの濃度測定を行った。
１．試薬
　試験例１の処方例２～６の試薬を用いた。
２．被検試料
（１）プール血清をパネル検体Ｌとした。
（２）プール血清に精製ＬＲＧを２８．２μｇ／ｍＬとなるように添加し、パネル検体Ｍとした。
（３）プール血清に精製ＬＲＧを６３．１μｇ／ｍＬとなるように添加し、パネル検体Ｈとした。
３．測定方法および測定条件
　試験方法及び測定条件は試験例１に同じである。試験例１で求めた検量線で各パネル検体の濃度を求め、また、既知濃度との相対比（％）を算出した。
４．測定結果及び考察
　結果を表１に示す。
　本結果によれば、処方例２～６の試薬で実検体に近い模擬検体でも正確な測定ができることがわかった。特に、処方例３～５は既知濃度に対する相対比が９９％という極めて高い正確性を有していた。
　以上より、ラテックス粒子の平均粒子径は１００ｎｍ～３４０ｎｍ、であれば正確な測定が可能であり、そのうちでも１５０ｎｍ～２６０ｎｍ、であればより高度な正確性をもった測定が可能であることがわかった。
　また、ラテックスの臨界凝集濃度は、６５ｍＭ～２７０ｍＭであれば正確な測定が可能であり、そのうちでも１５０ｍＭ～２７０ｍＭであればより高度な正確性をもった測定が可能であることがわかった
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
〔試験例３〕
　健常者検体及び患者検体を用いて本発明の測定方法によってマーカーとしてＬＲＧの測定ができることを確認した。
１．試薬
　試験例１の処方例５の試薬を用いた。
２．被検試料
（１）健常者の血清検体
　PROMEDDEX社より購入した７検体
（２）潰瘍性大腸炎患者（軽度（寛解期））の血清検体
　Bioreclamtion社より購入した１３検体
（３）潰瘍性大腸炎患者（重度（活動期））の血清検体
　Bioreclamtion社及びProteogenex社より購入した５検体
３．測定方法および測定条件
　試験例１に同じである。
４．測定結果および考察
　結果を図７に示す。
　本結果によれば、健常者、軽度及び重度の潰瘍性大腸炎患者の検体中のＬＲＧの測定が可能であり、これらの状態を区別可能なマーカーとしての測定ができることがわかった。
　したがって、本発明測定試薬は診断薬としての役割を果たすことができる。
　本発明によれば、液相中で、ＬＲＧを含む生体試料と、抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子を接触させ、凝集度合いを測定することにより、簡便で、かつ、短時間で結果が得られる生体試料中のＬＲＧの測定方法及び測定試薬を提供することができた。本発明の測定方法及び測定試薬は、汎用の自動分析装置にも適用することができるため、ＬＲＧをより簡単かつ大量に同時測定することが可能となった。
　したがって、ＬＲＧをバイオマーカーとして簡単かつ短時間で定量することができ、炎症性腸疾患などの疾患活動性の評価を容易に行うことができるようになった。
 

Claims (25)

  1. 生体由来試料中のロイシンリッチα２グリコプロテイン（ＬＲＧ）の免疫学的測定方法であって、
    液相中で、当該試料と、少なくとも第一の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子及び第二の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子とを接触させる工程を含む、前記測定方法。
  2. 不溶性担体粒子が、平均粒子径が１００ｎｍ～３４０ｎｍのラテックス粒子である請求項１に記載の測定方法。
  3. 不溶性担体粒子が、臨界凝集濃度が６５ｍＭ～２７０ｍＭのラテックス粒子である請求項１又は２に記載の測定方法。
  4. 第一の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子と第二の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子の平均粒子径が同一である請求項１～３のいずれかに記載の測定方法。
  5. 第一の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子及び第二の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子が前記液相中に等量含まれている請求項１～４のいずれかに記載の測定方法。
  6. 生体由来試料が血清である、請求項１～５のいずれかに記載の測定方法。
  7. 免疫凝集法が、ホモジーニアス法にもとづく方法である請求項１～６のいずれかに記載の測定方法。
  8. 前記液相中で、生体由来試料と、第一の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子及び第二の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子とを接触させる工程が、次の工程である請求項１～７のいずれかに記載の測定方法。
    （１）液相中で、当該試料と緩衝液を含む第一試薬とを接触させる工程
    （２）工程（１）の後に、第一の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子及び第二の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子を含む第二試薬を液相中に添加する工程
  9. 前記（１）の液相中の塩濃度が、７００～９００ｍＭである請求項８に記載の測定方法。
  10. さらに、ＬＲＧと抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持した不溶性担体粒子の複合体の凝集度合いを光学的に測定する工程を含む請求項１～９のいずれかに記載の測定方法。
  11. 光学的に測定する工程が、散乱光強度、吸光度又は透過光強度を光学機器で測定する工程である請求項１０に記載の測定方法。
  12. 血液試料中のＬＲＧを免疫学的測定法により測定するための試薬であって、少なくとも第一の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子及び第二の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子を含む前記試薬。
  13. 不溶性担体粒子が、平均粒子径が１００ｎｍ～３４０ｎｍのラテックス粒子である請求項１２に記載の測定試薬。
  14. 不溶性担体粒子が、臨界凝集濃度が６５ｍＭ～２７０ｍＭのラテックス粒子である請求項１２又は１３に記載の測定試薬。
  15. 第一の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子と第二の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子の平均粒子径が同一である請求項１２～１４のいずれかに記載の測定試薬。
  16. 第一の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子及び第二の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子が等量含まれている請求項１２～１５のいずれかに記載の測定試薬。
  17. 生体由来試料が血清である、請求項１２～１６のいずれかに記載の測定試薬。
  18. 免疫凝集法が、ホモジーニアス法にもとづく方法である請求項１２～１７のいずれかに記載の測定試薬。
  19. 血液試料中のＬＲＧを免疫凝集法により測定するための試薬キットであって、以下を含む前記試薬キット。
    （１）緩衝液を含む第一試薬
    （２）第一の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子及び第二の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子を含む第二試薬
  20. 不溶性担体粒子が、平均粒子径が１００ｎｍ～３４０ｎｍのラテックス粒子である請求項１９に記載の試薬キット。
  21. 不溶性担体粒子が、臨界凝集濃度が６５ｍＭ～２７０ｍＭのラテックス粒子である請求項１９又は２０に記載の試薬キット。
  22. 第一の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子と第二の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子の平均粒子径が同一である請求項１９～２１のいずれかに記載の試薬キット。
  23. 前記（２）の第二試薬が第一の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子及び第二の抗ＬＲＧモノクローナル抗体を担持する不溶性担体粒子を等量含む請求項１９～２２のいずれかに記載の試薬キット。
  24. 前記（１）の第一試薬が、反応液相中の塩濃度が７００～９００ｍＭとなるように塩を含む請求項１９～２３のいずれかに記載の試薬キット。
  25. さらに、以下を含む請求項１９～２４のいずれかに記載の試薬キット。
    （３）標準抗原及び／又はコントロールとしてのＬＲＧ
     
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