WO2012046730A1 - ヘルパーt細胞の活性化方法 - Google Patents

ヘルパーt細胞の活性化方法 Download PDF

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治夫 杉山
真司 十河
佐藤 政芳
竜生 北本
義博 後藤
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国立大学法人大阪大学
大塚製薬株式会社
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    • C12N2501/2302Interleukin-2 (IL-2)
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    • C12N2501/23Interleukins [IL]
    • C12N2501/2307Interleukin-7 (IL-7)

Definitions

  • the present invention relates to a method for activating helper T cells, comprising the step of activating helper T cells by adding WT1 peptide to antigen-presenting cells, wherein the WT1 peptide comprises HLA-DRB1 * 0101 molecule, HLA -DRB1 * 0401 molecule, HLA-DRB1 * 0403 molecule, HLA-DRB1 * 0406 molecule, HLA-DRB1 * 0803 molecule, HLA-DRB1 * 0901 molecule, HLA-DRB1 * 1101 molecule, HLA-DRB3 * 0202 molecule, HLA- DRB4 * 0101 molecule, HLA-DRB1 * 1501 molecule, HLA-DRB1 * 0405 molecule, HLA-DRB1 * 1502 molecule, HLA-DPB1 * 0501 molecule, HLA-DPB1 * 0901 molecule, HLA-DPB1 * 0201 molecule or HLA-DPB1 * Methods having the ability to bind to any MHC
  • WT1 gene (Wilms' tumor 1 gene) has been identified as a causative gene of Wilms tumor, which is a renal cancer of children, and encodes a transcription factor having a zinc finger structure (Non-patent Documents 1 and 2). Subsequent studies have shown that it functions as an oncogene in hematopoietic tumors and solid tumors (Non-Patent Documents 3 to 6).
  • CTLs cytotoxic T cells
  • helper T cells are induced and activated by recognizing complexes of MHC class II molecules of antigen-presenting cells and antigenic peptides. Activated helper T cells assist B cell proliferation, differentiation, and maturation by producing cytokines such as IL-2, IL-4, IL-5, IL-6, or interferon. Such helper T cells have a function of activating the immune system by promoting the proliferation and activation of B cells and T cells. Therefore, helper T cells are mediated through MHC class II-binding antigen peptides in cancer immunotherapy. It is suggested that it is useful to enhance the function of cells and enhance the effect of cancer vaccine (Non-patent Document 9).
  • WT1 peptide a specific peptide having a part of an amino acid sequence encoding a WT1 protein (hereinafter, also referred to as WT1 peptide in this specification) can bind to a plurality of MHC class II molecules and activate a helper T cell. It was shown that helper peptides exist (Patent Documents 5 and 6). However, it has been extremely difficult to verify whether this WT1 peptide has an effect on other MHC class II molecules because there are many types of MHC class II molecules.
  • the problem to be solved by the present invention is to apply a specific WT1 peptide to a wide range of MHC class II molecule-positive subjects to activate helper T cells, to activate cytotoxic T cells, It is intended to provide a cytotoxic T cell activation inducer, a pharmaceutical composition for treating / preventing cancer, and the like.
  • a peptide having the amino acid sequence: Lys Arg Tyr Phe Lys Leu Ser His Leu Gln Met His Ser Arg Lys His is HLA-DRB1 * 0101 molecule, HLA- DRB1 * 0401 molecule, HLA-DRB1 * 0403 molecule, HLA-DRB1 * 0406 molecule, HLA-DRB1 * 0803 molecule, HLA-DRB1 * 0901 molecule, HLA-DRB1 * 1101 molecule, HLA-DRB3 * 0202 molecule, HLA-DRB4 * 0101 molecule, HLA-DRB1 * 1501 molecule, HLA-DRB1 * 0405 molecule, HLA-DRB1 * 1502 molecule, HLA-DPB1 * 0501 molecule, HLA-DPB1 * 0901 molecule, HLA-D It has been found that it binds to PB1 * 0201 molecule, HLA-DP
  • the present invention (1) A method for activating helper T cells, comprising the step of activating helper T cells by adding WT1 peptide to antigen-presenting cells, wherein the WT1 peptide comprises HLA-DRB1 * 0101 molecule, HLA- DRB1 * 0401 molecule, HLA-DRB1 * 0403 molecule, HLA-DRB1 * 0406 molecule, HLA-DRB1 * 0803 molecule, HLA-DRB1 * 0901 molecule, HLA-DRB1 * 1101 molecule, HLA-DRB3 * 0202 molecule, HLA-DRB4 * A method that has the ability to bind to an MHC class II molecule of any of the 0101 molecule, HLA-DPB1 * 0201 molecule or HLA-DPB1 * 0301 molecule; (2) WT1 peptide is HLA-DRB1 * 0101 molecule, HLA-DRB1 * 0401 molecule, HLA-DRB1 * 0403 molecule, HLA-DRB
  • the WT1 peptide is a peptide comprising the amino acid sequence: Lys Arg Tyr Phe Lys Leu Ser His Leu Gln Met His Ser Arg Lys His (SEQ ID NO: 2), a variant or modification thereof, (1) to (1) 4) the method according to any one of (6)
  • a composition comprising a WT1 peptide for activating a helper T cell by adding a WT1 peptide to an antigen-presenting cell, wherein the WT1 peptide comprises an HLA-DRB1 * 0101 molecule, an HLA-DRB1 * 0401 molecule, HLA-DRB1 * 0403 molecule, HLA-DRB1 * 0406 molecule, HLA-DRB1 * 0803 molecule, HLA-DRB1 * 0901 molecule, HLA-DRB1 * 1101 molecule, HLA-DRB3 * 0202 molecule, HLA-DRB4 * 0101
  • a composition having the ability to bind to an MHC class
  • the composition according to any one of (8), (10) The WT1 peptide is a peptide comprising the amino acid sequence: Lys Arg Tyr Phe Lys Leu Ser His Leu Gln Met His Ser Arg Lys His (SEQ ID NO: 2), a variant or modification thereof, (6) to (6) 9)
  • the composition according to any one of (11) An antigen-presenting cell in which a complex of an antigen peptide containing a WT1 peptide and an MHC class II molecule is presented, wherein the MHC class II molecule is an HLA-DRB1 * 0101 molecule or an HLA-DRB1 * 0401 molecule HLA-DRB1 * 0403 molecule, HLA-DRB1 * 0406 molecule, HLA-DRB1 * 0803 molecule, HLA-DRB1 * 0901 molecule, HLA-DRB1 * 1101 molecule, HLA-DRB3 * 0202 molecule, HLA-DRB4 * 0101 molecule, An antigen presenting
  • FIG. 1 shows PBMCs derived from various donors pulsed with WT1-332, T cells derived from PBMCs derived from provider 1 (HLA-DRB1 * 0406/1201, DRB3 * 0101, DRB4 * 0103 positive) The results of measuring the amount of IFN- ⁇ after co-culture are shown.
  • the vertical axis represents the amount of IFN- ⁇ (pg / mL) in the supernatant after culturing.
  • the horizontal axis shows the types of HLA-DRB1, 3 and 4 molecules that are positive in various donors.
  • FIG. 2 shows PBMCs derived from donors (HLA-DRB1 * 0901/1101, DRB3 * 0202, DRB4 * 0103 positive) derived from PBMCs pulsed with WT1-332 and T cells derived from PBMCs.
  • the results of measuring the amount of IFN- ⁇ after co-culture are shown.
  • the vertical axis represents the amount of IFN- ⁇ (pg / mL) in the supernatant after culturing.
  • the horizontal axis shows the types of HLA-DRB1, 3 and 4 molecules that are positive in various donors.
  • FIG. 3 shows co-culture of T cells derived from PBMC derived from provider 3 (HLA-DRB1 * 0401/0405, DRB4 * 0102/0103 positive) with PBMCs derived from various donors pulsed with WT1-332 Then, the results of measuring the amount of IFN- ⁇ are shown.
  • the vertical axis represents the amount of IFN- ⁇ (pg / mL) in the supernatant after culturing.
  • the horizontal axis shows the types of HLA-DRB1 and 4 molecules that are positive in various positive donors.
  • FIG. 4 shows PBMCs derived from various donors pulsed with WT1-332, T cells derived from PBMCs derived from provider 4 (HLA-DRB1 * 0901/1101, DRB3 * 0202, DRB4 * 0103 positive) The results of measuring the amount of IFN- ⁇ after co-culture are shown.
  • the vertical axis represents the amount of IFN- ⁇ (pg / mL) in the supernatant after culturing.
  • the horizontal axis shows the types of HLA-DRB1, 3 and 4 molecules that show positive in various positive donors.
  • HLA-class II monomer proteins (DRB1 * 0101, DRB1 * 0405, DRB1 * 1501, DRB1 * 1502, DRB1 * 0803, DRB1 * 0901 and DRB4 * 0101) and various peptides were specifically associated.
  • the vertical axis indicates the retention time mobility (minutes).
  • the horizontal axis indicates the type of HLA-class II monomer protein.
  • the bar graph indicates the type of peptide added (from the left, negative control ( ⁇ ), positive control ( ⁇ ), WT 1-332 (hatched square)).
  • FIG. 6 shows T cells derived from PBMC derived from healthy blood donors (a total of 42 persons having at least one HLA-DRB1 * 1501, 1502, 0405, HLA-DPB1 * 0501, 0901). Shows that the WT1-332-specific Th1 ratio (CD4 positive / intracellular IFN- ⁇ positive cell ratio) increases significantly over time.
  • the vertical axis represents the ratio (%) of the number of CD4 positive / intracellular IFN- ⁇ positive cells in the living cells, and the horizontal axis represents the culture days (days).
  • represents the ratio in the sample induced by addition of WT1-332 (WT1-332 induction group), and ⁇ represents the ratio in the sample induced by addition of solvent (control) (solvent induction group).
  • FIG. 7 shows T cells derived from PBMCs derived from healthy blood donors (total 42 people having at least one HLA-DRB1 * 1501, 1502, 0405, HLA-DPB1 * 0501, 0901) Shows that the number of CTL cells specific to WT1 -332 (the ratio of CD8 positive / IFN- ⁇ positive cells) increases significantly over time.
  • the vertical axis represents the ratio (%) of the number of CD8 positive / intracellular IFN- ⁇ positive cells in the living cells
  • the horizontal axis represents the number of days of culture (days).
  • FIG. 8 shows HLA-DR restriction of 17 specimens (providers 21 to 37) in which WT1-332 specific Th1 was induced in FIGS.
  • WT1-332-specific IFN- ⁇ production was observed, and the IFN- ⁇ production was determined by anti-HLA-DR antibody.
  • WT1-332-specific IFN- ⁇ production was determined by anti-HLA-DR antibody.
  • the vertical axis represents the provider number (providers 21 to 37), and the horizontal axis represents the IFN- ⁇ production (pg / mL).
  • indicates the amount of IFN- ⁇ production after WT1-332 stimulation
  • hatched ⁇ indicates the amount of IFN- ⁇ production after WT1-332 + anti-HLA-DR antibody stimulation
  • indicates that after solvent (control) stimulation
  • FIG. 9 shows T cells on day 14 after induction of WT1-332 addition in 17 samples (providers 21 to 37) in which HLA-DR-restricted WT1-332-specific Th1 was induced in FIGS.
  • FIG. 10 shows T cells 14 days after induction of WT1-332 addition in each of 17 samples (providers 21 to 37) in which HLA-DR-restricted WT1-332-specific Th1 was induced in FIGS.
  • FIG. 11 shows the HLA-DP restriction of 9 samples (providers 38 to 46) in which WT1-332-specific Th1 was induced in FIGS.
  • T cells on the 14th day after induction of addition of WT1-332 were stimulated with WT1-332, WT1-332-specific IFN- ⁇ production was observed, and the IFN- ⁇ production was determined by anti-HLA-DR antibody.
  • WT1-332-specific IFN- ⁇ production was observed, and the IFN- ⁇ production was determined by anti-HLA-DR antibody.
  • anti-HLA-DQ antibody was added and cultured, it was not suppressed.
  • T cells induced by WT1-332 are HLA-DP restricted.
  • the vertical axis represents the provider number (providers 38 to 46), and the horizontal axis represents the IFN- ⁇ production (pg / mL).
  • indicates the amount of IFN- ⁇ produced after WT1-332 stimulation
  • hatched ⁇ indicates the amount of IFN- ⁇ produced after stimulation with WT1 -332 + anti-HLA-DR antibody
  • vertical line (dashed line) ⁇ indicates WT1 -332+ IFN- ⁇ production after stimulation with anti-HLA-DQ antibody is shown
  • shows IFN- ⁇ production after solvent (control) stimulation.
  • FIG. 12 shows T cells on day 14 after induction of WT1-332 addition in each of nine samples (providers 38 to 46) in which HLA-DP-restricted WT1-332-specific Th1 was induced in FIGS.
  • FIG. 13 shows the results of T cells 14 days after induction of WT1-332 addition in each of 9 samples (providers 38 to 46) in which HLA-DP-restricted WT1-332-specific Th1 was induced in FIGS.
  • the ratio of WT1-332-specific CTL cells increases.
  • the vertical axis represents the donor number (providers 38 to 46), and the horizontal axis represents the ratio (%) of the number of CD8 positive / intracellular IFN- ⁇ positive cells in the living cells.
  • indicates the ratio after WT1-332 stimulation, and ⁇ indicates the ratio after solvent (control) stimulation.
  • the present invention provides a method for activating a helper T cell or cytotoxic T cell, comprising adding a WT1 peptide to an antigen-presenting cell and activating the helper T cell or cytotoxic T cell.
  • a method is provided wherein the WT1 peptide is capable of binding to an MHC class II molecule.
  • the step of activating cytotoxic T cells may be performed through a step of activating helper T cells.
  • the WT1 peptide used in the present invention includes HLA-DRB1 * 0101 molecule, HLA-DRB1 * 0401 molecule, HLA-DRB1 * 0403 molecule, HLA-DRB1 * 0406 molecule, HLA-DRB1 * 0803 molecule, HLA-DRB1 * 0901 molecule, HLA-DRB1 * 1101 molecule, HLA-DRB3 * 0202 molecule, HLA-DRB4 * 0101 molecule, HLA-DRB1 * 1501 molecule, HLA-DRB1 * 0405 molecule, HLA-DRB1 * 1502 molecule, HLA-DPB1 * 0501 It has the ability to bind to any MHC class II molecule of the molecule, HLA-DPB1 * 0901 molecule, HLA-DPB1 * 0201 molecule or HLA-DPB1 * 0301 molecule.
  • the WT1 peptide used in the present invention may also have the ability to bind to at least two or more of the MHC class II molecules. Further, the WT1 peptide used in the present invention may have the ability to bind to any MHC class II molecule among, for example, HLA-DR molecule, HLA-DQ and HLA-DP molecule.
  • the WT1 peptide may be a peptide having a part of the amino acid sequence of the human WT1 protein represented by SEQ ID NO: 1.
  • the amino acid sequence and length are not specifically limited, However, When a peptide is too long, it will become easy to receive the effect
  • the length of the peptide of the present invention is preferably 10 to 25 amino acids, more preferably 15 to 21 amino acids, still more preferably 16 to 20 amino acids, for example, 16 amino acids, 17 amino acids, 18 amino acids, or 19 amino acids.
  • Specific examples of the peptides of the present invention include the amino acid sequence: Lys Arg Tyr Phe Lys Leu Ser His His Leu Gln Met His Ser Arg Lys His (SEQ ID NO: 2).
  • the WT1 peptide used in the present invention includes a variant of the above peptide.
  • a variant of the above peptide for example, in the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2, several variants, for example, 1 to 9, preferably 1 to 5, 1 to 4, 1 to 3, more preferably 1 to Two, more preferably one amino acid may comprise a peptide selected from the group consisting of peptides having an amino acid sequence substituted, deleted or added.
  • Amino acid substitution in the peptide may be performed with any kind of amino acid at any position, and conservative amino acid substitution is preferred. Examples of conservative amino acid substitutions include Glu residues as Asp residues, Phe residues as Tyr residues, Leu residues as Ile residues, Ala residues as Ser residues, and His residues.
  • a preferred specific example of the peptide of the present invention is that having SEQ ID NO: 2, but any of the peptides described above is HLA-DRB1 * 0101 molecule, HLA-DRB1 * 0401 molecule, HLA-DRB1 * 0403 Molecule, HLA-DRB1 * 0406 molecule, HLA-DRB1 * 0803 molecule, HLA-DRB1 * 0901 molecule, HLA-DRB1 * 1101 molecule, HLA-DRB3 * 0202 molecule, HLA-DRB4 * 0101 molecule, HLA-DRB1 * 1501 molecule , HLA-DRB1 * 0405 molecule, HLA-DRB1 * 1502 molecule, HLA-DPB1 * 0501 molecule, HLA-DPB1 * 0901 molecule, either
  • the peptide of the present invention may also be a modified form of the above amino acid sequence.
  • An amino acid residue in the amino acid sequence can be modified by a known method.
  • Such a modified product may be, for example, a functional group in the side chain of an amino acid residue subjected to esterification, alkylation, halogenation, phosphorylation, or the like.
  • various substances can be bound to the N-terminus and / or C-terminus of the peptide containing the amino acid sequence.
  • amino acids, peptides, analogs thereof and the like may be bound.
  • a histidine tag may be added, and it may be a fusion protein together with a protein such as thioredoxin.
  • a detectable label may be attached to the WT1 peptide.
  • these substances are bound to the peptide of the present invention, these substances are treated with, for example, an in vivo enzyme or a process such as intracellular processing, and finally a peptide having the above amino acid sequence is generated.
  • the effect of inducing helper T cells and / or cytotoxic T cells can be obtained by being presented on the cell surface as a complex with MHC class II molecules.
  • These substances may regulate the solubility of the peptide of the present invention, may improve the stability such as protease resistance, and are specific for a given tissue / organ, for example.
  • the peptide of the present invention may be delivered, or it may have an action of enhancing the uptake efficiency of antigen-presenting cells.
  • These substances may also be those that increase the ability to induce CTL, for example, helper peptides other than the peptides of the present invention.
  • the WT1 peptide used in the present invention can be synthesized using a method usually used in the art or a modification thereof. Such synthetic methods include, for example, Peptide Synthesis, Interscience, New York, 1966; The Proteins, Vol 2, Academic Press Inc., New York, 1976; Peptide Synthesis, Maruzen Co., Ltd., 1975; Maruzen Co., Ltd., 1985; Drug Development, Vol. 14, Peptide Synthesis, Hirokawa Shoten, 1991, etc.
  • the peptide used in the present invention can also be produced using genetic engineering techniques based on the nucleotide sequence information encoding the peptide. Such genetic engineering techniques are well known to those skilled in the art. These techniques can be carried out according to the methods described in the literature (Molecular Cloning, T. Maniatis et al., CSH Laboratory (1983), DNA Cloning, DM DM Glover, IRL PRESS (1985)).
  • the present invention also relates to a polynucleotide sequence encoding the WT1 peptide described above.
  • the polynucleotide sequence encoding the WT1 peptide may be a DNA sequence or an RNA sequence. In the present invention, these polynucleotide sequences may be used instead of using the WT1 peptide. These polynucleotide sequences may be used by being incorporated into an appropriate vector. Examples of the vector include plasmids, phage vectors, virus vectors, and the like.
  • the vector may appropriately have factors such as a promoter capable of inducing expression, a gene encoding a signal sequence, a marker gene for selection, and a terminator. Methods for introducing these genes into cells and living organisms, expression methods, and the like are known to those skilled in the art.
  • the antigen-presenting cell used in the present invention is a cell capable of presenting an antigen peptide containing the WT1 peptide together with an MHC class II molecule to a helper T cell.
  • an MHC class II molecule for example, dendritic cells, peripheral blood mononuclear cells, etc. means. Therefore, the subject from which the antigen-presenting cell used in the present invention is derived is the same molecule as the MHC class II molecule to which the added WT1 peptide can bind (eg, HLA-DRB1 * 0101 molecule, HLA-DRB1 * 0401).
  • the addition of the WT1 peptide to the antigen-presenting cell can be performed directly by adding the WT1 peptide, or by adding a polynucleotide encoding the WT1 peptide or an expression vector containing the polynucleotide encoding the WT1 peptide, Alternatively, it may be performed indirectly by adding cells containing the expression vector. These additions can be performed by methods known in the art.
  • the polynucleotide encoding the WT1 peptide, the expression vector containing the polynucleotide encoding the WT1 peptide, and the cell containing the expression vector can be obtained by techniques well known to those skilled in the art.
  • the polynucleotide used in the present invention can be determined based on the amino acid sequence of the WT1 peptide (for example, the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2).
  • the polynucleotide can be produced by, for example, a DNA or RNA synthesis method, a PCR method, or the like.
  • the type of expression vector containing the above-mentioned polynucleotide, the sequence contained in addition to the above-mentioned polynucleotide sequence, etc. can be appropriately selected according to the type, purpose, etc. of the host into which the expression vector is introduced, plasmid, phage vector, virus vector Etc.
  • a cell containing the expression vector can be produced, for example, by transforming a host cell.
  • host cells include E. coli, yeast, insect cells, animal cells and the like.
  • a method for introduction into a host cell a usual method such as a calcium phosphate method, a DEAE-dextran method, an electroporation method, or a lipid for gene introduction can be used.
  • helper T cells recognize TCR / CD3 complexes on the surface of T cells through antigen-presenting cell surface MHC class II molecules, and integrin on the surface of antigen-presenting cells is an integrin ligand on the surface of antigen-presenting cells. It is activated by being stimulated with.
  • the activation of the helper T cell in this specification includes not only the activation of the helper T cell but also the induction and proliferation of the helper T cell.
  • the helper T cells activated in the present invention may be undifferentiated T cells (for example, naive T cells). Activated helper T cells have a function of activating the immune system by promoting induction, proliferation, and activation of B cells and cytotoxic T cells.
  • helper T cells activated in vitro using the method of the present invention can also be used for the treatment or prevention of cancer or the like, or as an adjuvant for these.
  • Activation of helper T cells can be evaluated by measuring production and secretion amount of cytokines such as interferon (for example, interferon ⁇ ) and interleukin.
  • the present invention provides a composition for activating helper T cells or cytotoxic T cells by adding WT1 peptide to antigen-presenting cells.
  • the activation of cytotoxic T cells may be performed through the activation of helper T cells.
  • the active ingredient contained in the composition of the present invention include a WT1 peptide, a polynucleotide encoding the WT1 peptide, a vector containing the polynucleotide, and a cell containing the vector, and the antigen containing the WT1 peptide as an antigen peptide. Any molecule may be used as long as it can be presented on the surface of the presenting cell. These factors can be obtained by methods well known to those skilled in the art as described above.
  • the WT1 peptide used in the present invention includes HLA-DRB1 * 0101 molecule, HLA-DRB1 * 0401 molecule, HLA-DRB1 * 0403 molecule, HLA-DRB1 * 0406 molecule, HLA-DRB1 * 0803 molecule, HLA- DRB1 * 0901 molecule, HLA-DRB1 * 1101 molecule, HLA-DRB3 * 0202 molecule, HLA-DRB4 * 0101 molecule, HLA-DRB1 * 1501 molecule, HLA-DRB1 * 0405 molecule, HLA-DRB1 * 1502 molecule, HLA-DPB1 * Having the ability to bind to either 0501 molecule, HLA-DPB1 * 0901 molecule, HLA-DPB1 * 0201 molecule or HLA-DPB1 * 0301 molecule.
  • the WT1 peptide used in the present invention may have the ability to bind to at least two or more MHC class II molecules among the MHC class II molecules.
  • the WT1 peptide used in the present invention may have the ability to bind to any MHC class II molecule among HLA-DR molecules, HLA-DQ, and HLA-DP molecules.
  • composition of the present invention comprises HLA-DRB1 * 0101 molecule, HLA-DRB1 * 0401 molecule, HLA-DRB1 * 0403 molecule, HLA-DRB1 * 0406 molecule, HLA-DRB1 * 0803 molecule, HLA-DRB1 * 0901 molecule, HLA- DRB1 * 1101 molecule, HLA-DRB3 * 0202 molecule, HLA-DRB4 * 0101 molecule, HLA-DRB1 * 1501 molecule, HLA-DRB1 * 0405 molecule, HLA-DRB1 * 1502 molecule, HLA-DPB1 * 0501 molecule, HLA-DPB1 * 0901 molecule, HLA-DPB1 * 0201 molecule or is administered to a subject having any one or more of the MHC class II molecules of HLA-DPB1 * 0301 molecule, helper T cells in the subject and / Other immune system is activated by the cytotoxic T cells are activated.
  • the WT1 gene is also used in various cancers and tumors, for example, hematopoietic tumors such as leukemia, myelodysplastic syndrome, multiple myeloma, malignant lymphoma, stomach cancer, colon cancer, lung cancer, breast cancer, germ cell cancer, liver cancer, skin Since it is highly expressed in solid cancers such as cancer, bladder cancer, prostate cancer, uterine cancer, cervical cancer and ovarian cancer, the composition of the present invention can also be used as an adjuvant for the treatment or prevention of cancer. Alternatively, helper T cells, cytotoxic T cells and the like activated using the composition of the present invention can be used, for example, as an adjuvant for the treatment of the cancer.
  • helper T cells, cytotoxic T cells and the like activated using the composition of the present invention can be used, for example, as an adjuvant for the treatment of the cancer.
  • the composition of the present invention contains, for example, a carrier, an excipient, or an additive in addition to the WT1 peptide, the polynucleotide encoding the WT1 peptide, a vector containing the polynucleotide, or a cell containing the vector. May be.
  • the WT1 peptide or the like contained in the composition of the present invention includes a known MHC class I-restricted WT1 peptide because it activates helper T cells and / or cytotoxic T cells in a WT1 peptide-specific manner, Or you may apply with these.
  • the application method of the composition of the present invention can be appropriately selected according to conditions such as the degree of activation of desired helper T cells and / or cytotoxic T cells, the state of antigen-presenting cells, and the like.
  • Examples of the application method include intradermal administration, subcutaneous administration, intramuscular administration, intravenous administration, nasal administration, oral administration, and the like, or addition to an antigen-presenting cell culture medium.
  • the amount of the WT1 peptide and the like contained in the composition of the present invention, the form of the composition, the number of times of application, etc. are the degree of activation of the desired helper T cells and / or cytotoxic T cells, the state of antigen-presenting cells, etc. It can select suitably according to conditions.
  • the present invention provides a method for treating or preventing cancer in a subject comprising the step of activating helper T cells or cytotoxic T cells by adding a WT1 peptide to antigen-presenting cells,
  • the WT1 peptide is HLA-DRB1 * 0101 molecule, HLA-DRB1 * 0401 molecule, HLA-DRB1 * 0403 molecule, HLA-DRB1 * 0406 molecule, HLA-DRB1 * 0803 molecule, HLA-DRB1 * 0901 molecule, HLA-DRB1 * 1101 molecule, HLA-DRB3 * 0202 molecule, HLA-DRB4 * 0101 molecule, HLA-DRB1 * 1501 molecule, HLA-DRB1 * 0405 molecule, HLA-DRB1 * 1502 molecule, HLA-DPB1 * 0501 molecule, HLA-DPB1 * 0901 Molecule, H Methods are provided that have the ability to bind to MHC class II molecules of either
  • the method of the present invention is a method for activating a helper T cell and / or cytotoxic T cell to activate a subject's immune system to treat or prevent cancer in the subject.
  • the step of activating cytotoxic T cells may be performed through a step of activating helper T cells.
  • the addition of the WT1 peptide to the antigen-presenting cell can be performed directly by adding the WT1 peptide, by adding a polynucleotide encoding the WT1 peptide or a polynucleotide encoding the WT1 peptide, or the expression vector May be carried out indirectly by the addition of cells containing.
  • the polynucleotide encoding the WT1 peptide, the expression vector containing the polynucleotide encoding the WT1 peptide, and the cell containing the expression vector can be obtained by methods well known to those skilled in the art as described above.
  • HLA-DRB1 * 0101 molecule HLA-DRB1 * 0401 molecule, HLA-DRB1 * 0403 molecule, HLA-DRB1 * 0406 molecule, HLA-DRB1 * 0803 molecule, HLA-DRB1 * 0901 Molecule, HLA-DRB1 * 1101 molecule, HLA-DRB3 * 0202 molecule, HLA-DRB4 * 0101 molecule, HLA-DRB1 * 1501 molecule, HLA-DRB1 * 0405 molecule, HLA-DRB1 * 1502 molecule, HLA-DPB1 * 0501 molecule , HLA-DPB1 * 0901 molecule, HLA-DPB1 * 0201 molecule, or HLA-DPB1 * 0301 molecule are MHC class II molecule-positive subjects.
  • the cancer to which the present invention can be applied may be any, for example, hematopoietic tumors such as leukemia, myelodysplastic syndrome, multiple myeloma, malignant lymphoma, stomach cancer, colon cancer, lung cancer, breast cancer, germ cell Examples include solid cancers such as cancer, liver cancer, skin cancer, bladder cancer, prostate cancer, uterine cancer, cervical cancer, and ovarian cancer.
  • the method of the present invention may be used in combination with a method for treating or preventing cancer using a MHC class I molecule-restricted WT1 peptide or a pharmaceutical composition therefor.
  • the present invention provides the use of a WT1 peptide, a polynucleotide encoding the WT1 peptide, a vector containing the polynucleotide, or a cell containing the vector for producing the above composition. Furthermore, the present invention provides a WT1 peptide, a polynucleotide encoding the WT1 peptide, a vector containing the polynucleotide, or a cell containing the vector, which is used for activating helper T cells or cytotoxic T cells. .
  • the present invention provides the WT1 peptide, a polynucleotide encoding the WT1 peptide for activating helper T cells and / or cytotoxic T cells by adding a WT1 peptide to an antigen-presenting cell,
  • a vector comprising a polynucleotide, a kit comprising a cell comprising the vector, wherein the WT1 peptide comprises HLA-DRB1 * 0101 molecule, HLA-DRB1 * 0401 molecule, HLA-DRB1 * 0403 molecule, HLA-DRB1 * 0406 molecule, HLA-DRB1 * 0803 molecule, HLA-DRB1 * 0901 molecule, HLA-DRB1 * 1101 molecule, HLA-DRB3 * 0202 molecule, HLA-DRB4 * 0101 molecule, HLA-DRB1 * 1501 molecule, HLA-DRB1 * 0405 molecule, It has the ability to bind to any MHC class II
  • the kit is used in the method for activating the helper T cell or cytotoxic T cell.
  • the kit of the present invention may contain, for example, a means for obtaining antigen-presenting cells, a means for evaluating the activity of helper T cells and / or cytotoxic T cells, and the like.
  • an instruction manual is attached to the kit. Helper T cells or cytotoxic T cells can be efficiently activated using the kit of the present invention.
  • the present invention provides an antigen-presenting cell in which a complex of an antigen peptide containing a WT1 peptide and an MHC class II molecule is presented.
  • the MHC class II molecule is HLA-DRB1 * 0101 molecule, HLA-DRB1 * 0401 molecule, HLA-DRB1 * 0403 molecule, HLA-DRB1 * 0406 molecule, HLA-DRB1 * 0803 molecule, HLA-DRB1 * 0901 Molecule, HLA-DRB1 * 1101 molecule, HLA-DRB3 * 0202 molecule, HLA-DRB4 * 0101 molecule, HLA-DRB1 * 1501 molecule, HLA-DRB1 * 0405 molecule, HLA-DRB1 * 1502 molecule, HLA-DPB1 * 0501 molecule , HLA-DPB1 * 0901 molecule may be any of the HLA-DPB1 * 0201 molecule or HLA-DPB1 * 0301 molecule
  • the antigen-presenting cells of the present invention may be prepared using techniques known among those skilled in the art. For example, a cell having antigen-presenting ability is isolated from a cancer patient, and the isolated cell is pulsed with the WT1 peptide (for example, a peptide having the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2) or a polynucleotide encoding the WT1 peptide. Alternatively, an expression vector containing the polynucleotide may be introduced into a cell, and a complex of an antigen peptide containing a WT1 peptide and a MHC class II molecule may be presented on the cell surface (Cancer Immunol. Immunoother) 46:82, 1998, J.
  • WT1 peptide for example, a peptide having the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2
  • an expression vector containing the polynucleotide may be introduced into a cell, and a complex of an antigen peptide containing a WT1 peptide
  • the cell having an antigen presenting ability is not limited as long as it expresses an MHC class II molecule capable of presenting a WT1 peptide on the cell surface, but peripheral blood mononuclear having a high antigen presenting ability. Spheres or dendritic cells are preferred.
  • the presence of the antigen-presenting cell of the present invention is confirmed by an increase in cytotoxic T cell activity that is confirmed by an increase in the amount of interferon ⁇ .
  • the antigen-presenting cell of the present invention is effectively used in cell therapy (for example, dendritic cell therapy) as an active ingredient of a pharmaceutical composition.
  • the present invention provides a helper T cell that recognizes a complex of an antigenic peptide containing a WT1 peptide and an MHC class II molecule.
  • the MHC class II molecule is HLA-DRB1 * 0101 molecule, HLA-DRB1 * 0401 molecule, HLA-DRB1 * 0403 molecule, HLA-DRB1 * 0406 molecule, HLA-DRB1 * 0803 molecule, HLA-DRB1 * 0901 Molecule, HLA-DRB1 * 1101 molecule, HLA-DRB3 * 0202 molecule, HLA-DRB4 * 0101 molecule, HLA-DRB1 * 1501 molecule, HLA-DRB1 * 0405 molecule, HLA-DRB1 * 1502 molecule, HLA-DPB1 * 0501 molecule , HLA-DPB1 * 0901 molecule may be any of the HLA-DPB1 * 0201 molecule or HLA-DPB1 * 0301 molecule.
  • helper T cell of the present invention for example, an antigen peptide containing a peptide consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2, HLA-DRB1 * 0101 molecule, HLA-DRB1 * 0401 molecule, HLA-DRB1 * 0403 molecule, HLA-DRB1 * 0406 molecule, HLA-DRB1 * 0803 molecule, HLA-DRB1 * 0901 molecule, HLA-DRB1 * 1101 molecule, HLA-DRB3 * 0202 molecule, HLA-DRB4 * 0101 molecule, HLA-DRB1 * 1501 molecule, HLA-DRB1 * 0405 molecule, HLA-DRB1 * 1502 molecule, HLA-DPB1 * 0501 molecule, HLA-DPB1 * 0901 molecule, either MHC click of HLA-DPB1 * 0201 molecule or HLA-DPB1 * 0301 molecule
  • a complex of scan II molecules can be exemplified recognizing help
  • the present invention provides cytotoxic T cells that are activated by helper T cells that recognize a complex of an antigenic peptide comprising a WT1 peptide and an MHC class II molecule.
  • the cytotoxic T cell of the present invention include an antigen peptide containing a peptide consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2, HLA-DRB1 * 0101 molecule, HLA-DRB1 * 0401 molecule, HLA-DRB1 * 0403 molecule, HLA -DRB1 * 0406 molecule, HLA-DRB1 * 0803 molecule, HLA-DRB1 * 0901 molecule, HLA-DRB1 * 1101 molecule, HLA-DRB3 * 0202 molecule, HLA-DRB4 * 0101 molecule, HLA-DRB1 * 1501 molecule, HLA- DRB1 * 0405 molecule, HLA-DRB1 * 1502 molecule, HLA-DPB1 * 0501 molecule, HLA
  • the cytotoxic T cell of the present invention can be easily prepared by a person skilled in the art by a known method.
  • a patient's peripheral blood lymphocytes are isolated and in vitro with a peptide (for example, a peptide having the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2), a polynucleotide encoding the peptide, or an expression vector containing the peptide. Produced by stimulation (Journal of Experimental Medicine 1999, 190: 1669).
  • the cytotoxic T cells prepared as described above can be used as an active ingredient of a pharmaceutical composition for treating or preventing cancer or the like.
  • cytotoxic T cell-inducing activity was observed in samples derived from subjects having certain MHC class molecules by administration of WT-332. This is because, in peripheral blood mononuclear cells, there are antigen-presenting cells in which a complex of an antigen peptide consisting of WT1 peptide and a MHC class II molecule is presented, and this antigen-presenting cell presenting this complex, This indicates that there are helper T cells that specifically recognize and cytotoxic T cells induced by helper T cells.
  • the present invention provides an HLA tetramer having an antigenic peptide comprising the WT1 peptide and an MHC class II molecule.
  • the MHC class II molecules are HLA-DRB1 * 0101 molecule, HLA-DRB1 * 0401 molecule, HLA-DRB1 * 0403 molecule, HLA-DRB1 * 0406 molecule, HLA-DRB1 * 0803 molecule, HLA-DRB1 * 0901 molecule, HLA -DRB1 * 1101 molecule, HLA-DRB3 * 0202 molecule, HLA-DRB4 * 0101 molecule, HLA-DRB1 * 1501 molecule, HLA-DRB1 * 0405 molecule, HLA-DRB1 * 1502 molecule, HLA-DPB1 * 0501 molecule, or HLA It may be any of the DPB1 * 0901 molecules and may be at least two or more of the above MHC class II molecules.
  • the HLA tetramer means a tetramer obtained by biotinylating a complex (HLA monomer) in which an HLA protein is associated with a peptide and binding it to avidin.
  • HLA tetramers those containing various antigen peptides are commercially available, and the HLA tetramers of the present invention can be easily prepared (Science 279: 2103-2106 (1998), Science 274: 94-96 (1996). )).
  • the tetramer of the present invention is preferably fluorescently labeled so that the helper T cells and cytotoxic T cells of the present invention bound by known detection means such as flow cytometry and fluorescence microscope can be easily selected or detected. .
  • the HLA tetramer in the present invention is not limited to a tetramer, and a multimer such as a pentamer or a dendrimer can be used as necessary.
  • a multimer refers to a multimer obtained by combining two or more complexes (HLA monomers) in which an HLA protein is associated with a peptide using a known technique.
  • the present invention activates a helper T cell or cytotoxic T cell comprising any one of the above composition, antigen-presenting cell, helper T cell, cytotoxic T cell or tetramer as an active ingredient.
  • a pharmaceutical composition is provided.
  • the pharmaceutical composition of the present invention may contain any one or more of the above compositions, antigen-presenting cells, helper T cells, cytotoxic T cells or tetramers as an active ingredient.
  • the pharmaceutical composition of the present invention can be used for treating or preventing cancer.
  • the pharmaceutical composition of the present invention comprises various cancers and tumors that express WT1, for example, hematopoietic tumors such as leukemia, myelodysplastic syndrome, multiple myeloma, malignant lymphoma, stomach cancer, colon cancer, lung cancer, breast cancer, germ cells It can be applied to solid cancers such as cancer, liver cancer, skin cancer, bladder cancer, prostate cancer, uterine cancer, cervical cancer and ovarian cancer.
  • WT1 hematopoietic tumors
  • hematopoietic tumors such as leukemia, myelodysplastic syndrome, multiple myeloma, malignant lymphoma, stomach cancer, colon cancer, lung cancer, breast cancer, germ cells
  • solid cancers such as cancer, liver cancer, skin cancer, bladder cancer, prostate cancer, uterine cancer, cervical cancer and ovarian cancer.
  • the pharmaceutical composition of the present invention comprises HLA-DRB1 * 0101 molecule, HLA-DRB1 * 0401 molecule, HLA-DRB1 * 0403 molecule, HLA-DRB1 * 0406 molecule, HLA-DRB1 * 0803 molecule, HLA-DRB1 * 0901 Molecule, HLA-DRB1 * 1101 molecule, HLA-DRB3 * 0202 molecule, HLA-DRB4 * 0101 molecule, HLA-DRB1 * 1501 molecule, HLA-DRB1 * 0405 molecule, HLA-DRB1 * 1502 molecule, HLA-DPB1 * 0501 molecule , HLA-DPB1 * 0901 molecule, HLA-DPB1 * 0201 molecule or HLA-DPB1 * 0301 molecule can be used for administration to a subject having MHC class II molecules.
  • the pharmaceutical composition of the present invention may be used in combination with other methods for treating or preventing cancer or pharmaceutical compositions therefor.
  • the pharmaceutical composition of the present invention may contain a helper T cell or cytotoxic T cell activator, proliferator, inducer or the like, or contains a known MHC class I-restricted WT1 peptide. May be.
  • the pharmaceutical composition of the present invention may contain, for example, a carrier, an excipient and the like in addition to the active ingredient.
  • the administration method of the pharmaceutical composition of the present invention can be appropriately selected according to conditions such as the type of disease, the state of the subject, and the target site. Examples of the method include, but are not limited to, intradermal administration, subcutaneous administration, intramuscular administration, intravenous administration, nasal administration, and oral administration.
  • the amount of the active ingredient contained in the pharmaceutical composition of the present invention, the dosage form of the pharmaceutical composition, the number of administrations, and the like can be appropriately selected according to conditions such as the type of disease, the condition of the subject, and the target site.
  • the present invention treats cancer, comprising the step of administering to a subject an effective amount of any of the above compositions, antigen-presenting cells, helper T cells, cytotoxic T cells or tetramers.
  • a method for prevention wherein the subject is HLA-DRB1 * 0101 molecule, HLA-DRB1 * 0401 molecule, HLA-DRB1 * 0403 molecule, HLA-DRB1 * 0406 molecule, HLA-DRB1 * 0803 molecule, HLA- DRB1 * 0901 molecule, HLA-DRB1 * 1101 molecule, HLA-DRB3 * 0202 molecule, HLA-DRB4 * 0101 molecule, HLA-DRB1 * 1501 molecule, HLA-DRB1 * 0405 molecule, HLA-DRB1 * 1502 molecule, HLA-DPB1 * 0501 molecule, HLA-DPB1 * Methods are provided that have MHC class II molecules of either 0901 molecules, HLA-DPB1
  • Cancers that can be treated or prevented by the method of the present invention include various cancers and tumors that express WT1, for example, hematopoietic tumors such as leukemia, myelodysplastic syndrome, multiple myeloma, malignant lymphoma, stomach cancer, colon cancer, lung cancer, Solid cancers such as breast cancer, germ cell cancer, liver cancer, skin cancer, bladder cancer, prostate cancer, uterine cancer, cervical cancer and ovarian cancer.
  • the method of the present invention may be used in combination with other methods for treating or preventing cancer, for example, methods for treating or preventing cancer using a known MHC class I molecule-restricted WT1 peptide.
  • the present invention provides the use of any of the above compositions, antigen presenting cells, helper T cells, cytotoxic T cells or tetramers for producing the above pharmaceutical compositions. Furthermore, the present invention provides the above-mentioned composition, antigen-presenting cell, helper T cell, cytotoxic T cell or tetramer used to activate a helper T cell or cytotoxic T cell. The present invention further provides the above composition, antigen-presenting cell, helper T cell, cytotoxic T cell or tetramer used for the treatment or prevention of cancer.
  • the present invention relates to an antibody (hereinafter also referred to as an anti-WT1 antibody) that specifically binds to the WT1 peptide or a polynucleotide encoding the WT1 peptide.
  • the antibody of the present invention may be a polyclonal antibody or a monoclonal antibody. Specific examples include an antibody that specifically binds to a peptide having the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2. Methods for producing these antibodies are already well known, and the antibodies of the present invention can also be produced according to these conventional methods (Current protocols Molecular Biology edit. Ausubel et al. (1987) Publish. John Wiley and Sons.
  • a peptide having the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2 can be used as an immunogen to immunize a non-human animal such as a rabbit, and obtained from the serum of this animal by a conventional method.
  • a non-human animal such as a rabbit
  • a monoclonal antibody a non-human animal such as a mouse is immunized with the peptide (peptide having the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2) used in the present invention, and the obtained spleen cells and myeloma cells are immunized.
  • the anti-WT1 antibody of the present invention can also be prepared by enhancing immunological reaction using various adjuvants depending on the host. Examples of such an adjuvant include mineral gels (for example, Freund's adjuvant, aluminum hydroxide, etc.), surface active substances, human adjuvants and the like.
  • the anti-WT1 antibody of the present invention can be used for affinity chromatography, immunological diagnosis and the like.
  • the immunological diagnosis can be appropriately selected from immunoblotting, radioimmunoassay (RIA), enzyme immunoassay (ELISA), fluorescence or luminescence assay.
  • the present invention relates to HLA-DRB1 * 0101, HLA-DRB1 * 0401, HLA-DRB1 * 0403, HLA-DRB1 * 0406, HLA-DRB1 * 0803, HLA-DRB1 * 0901, HLA-DRB1 * 1101 , HLA-DRB3 * 0202, HLA-DRB4 * 0101, HLA-DRB1 * 1501 molecule, HLA-DRB1 * 0405 molecule, HLA-DRB1 * 1502 molecule, HLA-DPB1 * 0501 molecule, HLA-DPB1 * 0901 molecule, HLA- A method for determining the presence or amount of a WT1 peptide in a MHC class II molecule positive subject of either DPB1 * 0201 molecule or HLA-DPB1 * 0301 molecule comprising: (A) reacting a sample obtained from the subject with the anti-WT1 antibody; (B) examining the presence or amount of the anti-WT
  • Samples used in the step (a) include HLA-DRB1 * 0101, HLA-DRB1 * 0401, HLA-DRB1 * 0403, HLA-DRB1 * 0406, HLA-DRB1 * 0803, HLA-DRB1 * 0901, HLA-DRB1 * 1101, HLA-DRB3 * 0202, HLA-DRB4 * 0101, HLA-DRB1 * 1501 molecule, HLA-DRB1 * 0405 molecule, HLA-DRB1 * 1502 molecule, HLA-DPB1 * 0501 molecule, HLA-DPB1 * 0901 molecule, Those obtained from subjects having MHC class II molecules of either HLA-DPB1 * 0201 molecules or HLA-DPB1 * 0301 molecules can be used.
  • the sample used in the step (a) examples include body fluids such as blood and lymphocytes, and tissues.
  • Obtaining a sample, reaction with an antibody, and the like can be appropriately performed by those skilled in the art using known techniques.
  • the step (b) in the present invention includes, for example, determining the localization, site, amount, etc. of the anti-WT1 antibody, it can be used for cancer diagnosis, prognosis diagnosis and the like.
  • the anti-WT1 antibody may be labeled.
  • a known label such as a fluorescent label or a radioactive label can be used. By labeling, the presence or amount of the WT1 peptide can be determined easily and rapidly.
  • the present invention relates to a kit for determining the presence or amount of a WT1 peptide comprising the anti-WT1 antibody as an essential component.
  • the kit of the present invention may contain, for example, an anti-WT1 antibody acquisition means, an evaluation means, and the like.
  • an instruction manual is attached to the kit.
  • the present invention in still another aspect, is HLA-DRB1 * 0101, HLA-DRB1 * 0401, HLA-DRB1 * 0403, HLA-DRB1 * 0406, HLA-DRB1 * 0803, HLA-DRB1 * 0901, HLA-DRB1 * 1101, HLA-DRB3 * 0202, HLA-DRB4 * 0101, HLA-DRB1 * 1501 molecule, HLA-DRB1 * 0405 molecule, HLA-DRB1 * 1502 molecule, HLA-DPB1 * 0501 molecule, HLA-DPB1 * 0901 molecule, HLA -DPB1 * 0201 molecule or determining the presence or amount of WT1-specific helper T cells or WT1-specific cytotoxic T cells in any of the MHC class II molecules positive subjects of HLA-DPB1 * 0301 molecule A that way, (A) stimulating a sample obtained from said subject with WT1 peptide; (B) examining the presence or amount
  • the sample of the present invention may be any sample as long as it contains antigen-presenting cells.
  • the sample used in the present invention may be derived from a healthy person or a cancer patient. By using these cells derived from a healthy person, for example, it is possible to diagnose whether or not the patient is suffering from or has a predisposition to cancer. By using these cells derived from cancer patients, for example, it is possible to predict whether WT1 immunotherapy has an effect in cancer patients.
  • the obtained sample may be cultured before and after stimulation with the WT1 peptide, and the culture conditions can be appropriately determined by those skilled in the art. Stimulation of these cells with the WT1 peptide can be performed using a known technique such as electroporation, and can be performed either in vitro or in vivo. Cytokine production, helper T cells, and cytotoxic T cell responses exist, or cytokine production, helper T cells, or cytotoxic T cell responses can be determined by known methods.
  • the present invention relates to a kit for determining the presence or amount of a WT1 peptide, which contains the WT1 peptide as an essential component.
  • the kit of the present invention may contain, for example, a sample obtaining means, an evaluation means such as a cytokine, and the like.
  • an instruction manual is attached to the kit.
  • PBMC PBMC
  • WT 1-332 peptide consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2
  • IL-7 PeproTech
  • cryopreserved PBMC was thawed, pulsed with 10 ⁇ g / mL WT1-332, treated with 50 ⁇ g / mL mitomycin C (Kyowa Hakko Kirin), and transferred to a new 24-well plate at 1.0 ⁇ 10 6 to Seeding was performed at 1.6 ⁇ 10 6 cells / well.
  • the cells that had been cultured for 1 week were collected and seeded in wells seeded with antigen-presenting cells at 1.0 ⁇ 10 6 to 1.6 ⁇ 10 6 cells / well.
  • IL-7 was added to each well at 10 ng / mL and cultured at 37 ° C. and 5% CO 2 .
  • IFN- ⁇ response inhibition in anti-HLA-DR antibody
  • T cells derived from PBMCs of donors 1 to 4 were used in the absence of WT1 -332, 10 ⁇ g / mL WT1 -332, 10 ⁇ g / mL WT1 -332 and 10 ⁇ g / mL anti-HLA-DR antibody (BD) Cultured for 24 hours in the presence. After culturing, the amount of IFN- ⁇ in the supernatant was quantified by ELISA (BD). As a result, it was shown that all induced T cells recognize WT1 -332 and produce IFN- ⁇ , and that the response is HLA-DR molecule restricted.
  • IFN- ⁇ determination of restraint allele
  • T cells derived from donor 1 PBMC were co-cultured for 24 hours with antigen-presenting cells from donors 5, 6, 7, 8, 9 pulsed with 10 ⁇ g / mL WT 1-332. After the culture, the amount of IFN- ⁇ in the supernatant was quantified by ELISA. The results are shown in FIG. The donor 1-derived T cells produce IFN- ⁇ when cocultured with HLA-DR4 (DRB1 * 0403, 0406) positive antigen-presenting cells, indicating that the restricted allele is HLA-DRB1 * 0406 It was done. It was also shown that HLA-DRB1 * 0403 can present WT1-332 and stimulate T cells.
  • T cells derived from donor 2 PBMC were co-cultured with donor 10, 11, 12, 9 derived antigen-presenting cells pulsed with 10 ⁇ g / mL WT 1-332 for 24 hours. After the culture, the amount of IFN- ⁇ in the supernatant was quantified by ELISA. The results are shown in FIG. Donor 2-derived T cells produce IFN- ⁇ when co-cultured with HLA-DRB3 * 0202 positive antigen-presenting cells, indicating that the restricted allele is HLA-DRB3 * 0202.
  • T cells derived from donor 3 PBMC were co-cultured with donor 13, 14, 15, 10 derived antigen-presenting cells pulsed with 10 ⁇ g / mL WT 1-332 for 24 hours. After the culture, the amount of IFN- ⁇ in the supernatant was quantified by ELISA. The results are shown in FIG. Donor 3 derived T cells produced IFN- ⁇ when co-cultured with HLA-DR4 (DRB1 * 0401, 0405) positive antigen presenting cells. Therefore, it was shown that both HLA-DRB1 * 0401 and 0405 can present WT1-332 and stimulate T cells.
  • T cells derived from donor 4 PBMCs were co-cultured for 24 hours with donor 16, 11, 17, 18, 19, 20 derived antigen-presenting cells pulsed with 10 ⁇ g / mL WT1-332. After the culture, the amount of IFN- ⁇ in the supernatant was quantified by ELISA. The results are shown in FIG. Donor 4-derived T cells produce IFN- ⁇ when co-cultured with HLA-DRB1 * 1101-positive antigen presenting cells, indicating that the restricted allele is HLA-DRB1 * 1101.
  • HLA class II monomer proteins DRB1 * 1501, 0101, 0405, 0803, 0901, 1502, or DRB4 were used by using HPLC. * 0101) and WT 1-332 were subjected to a folding test. Briefly, a HLA class II monomer protein, a peptide (a peptide that binds to each protein (positive control), a peptide that does not bind (negative control), and WT1-332), a folding buffer are mixed to prepare a folding reaction solution, After the reaction at 37 ° C., the retention time using HPLC was analyzed. Folding with WT1-332 was evaluated using the shift in retention time due to the binding of HLA class II monomer protein and peptide. The reagents used in this test are shown in the following table. (Table 1. Reagents used in the test)
  • HLA class II monomer protein stored frozen at 80 ° C. was thawed on ice. Thawed HLA class II monomer protein was prepared in a dilution buffer so that 0.05 mg (1 ⁇ 10 ⁇ 9 mol) was contained in 83 ⁇ L.
  • PBMC Blood mononuclear cells
  • WT1-332 was added to a well inoculated with PBMC at 20 ⁇ g / mL and IL-7 (PeproTeck) at 10 ng / mL, followed by culturing at 37 ° C., 5% CO 2 for 1 week.
  • a group solvent induction group in which a solvent (10 mM acetic acid) was added to a final concentration of 10 ⁇ M instead of WT1-332 was set.
  • a part of the separated PBMC was stored frozen for antigen-presenting cells at the time of restimulation. One week later (day 7), restimulation was performed.
  • PBMCs thawed frozen PBMCs were thawed, pulsed with 20 ⁇ g / mL WT1-332 or 10 ⁇ M acetic acid solvent, treated with 50 ⁇ g / mL mitomycin C (Kyowa Hakko Kirin Co., Ltd.), and transferred to a new 24-well plate. Seeding was performed at ⁇ 10 6 to 1.6 ⁇ 10 6 cells / well. Next, the cells that had been cultured for 1 week were collected and seeded in wells seeded with antigen-presenting cells at 1.0 ⁇ 10 6 to 1.6 ⁇ 10 6 cells / well. Finally, IL-7 was added to each well at 10 ng / mL and cultured at 37 ° C. and 5% CO 2 .
  • IFN- ⁇ Intracellular cytokine staining (ICS)
  • ICS Intracellular cytokine staining
  • FIG. 7 shows that the WT1-332 specific CTL also increased over time in the WT1-332 induction group from day 7 to day 14, and the increase was also significant compared to the solvent induction group. (P ⁇ 0.0001).
  • IFN- ⁇ reaction inhibition in anti-HLA-DR antibody and anti-HLA-DQ antibody
  • T cells derived from PBMCs of donors 21-37 were treated with 20 ⁇ g / mL WT1-332 and 10 ⁇ g / mL anti-HLA-DR antibody in the presence of 10 ⁇ M solvent, 20 ⁇ g / mL WT1-332 ( L243 [G46-6], BD) was cultured for 24 hours. After culturing, the amount of IFN- ⁇ in the supernatant was quantified by ELISA (BD). The results are shown in FIG.
  • T cells derived from PBMCs of donors 38 to 46 were treated with 20 ⁇ g / mL WT1-332 and 10 ⁇ g / mL anti-HLA-DR in the presence of 20 ⁇ g / mL WT1-332 in the presence of 10 ⁇ M solvent.
  • the cells were cultured for 24 hours in the presence of antibody (L243 [G46-6], BD), 10 ⁇ g / mL anti-HLA-DQ antibody (SPVL3, BC).
  • HLA-DRB1 * 1501, 1502, 0405, HLA-DPB1 * 0501, 0901 in total, 42 in total HLA-DR
  • Table 2 shows HLA class II types (types of HLA-DRB1 and HLA-DPB1 alleles) of 17 specimens (providers 21 to 37).
  • DRB3 * 0202 is in linkage disequilibrium with DRB1 * 1101, DRB1 * 1401, and DRB1 * 1405 (DRB1 allele indicated by ⁇ in the table), and DRB4 * 0101 is DRB1 * 0403, DRB1 * 0405, DRB1 * 0901. And a linkage disequilibrium (DRB1 allele indicated by ⁇ in the table).
  • alleles shown in bold italic letters represent the new matched HLA-DRB1 allele.
  • FIG. 9 From FIG. 9, FIG. 10, and Table 2, induction of WT1-332-specific Th1 and WT1-332-specific CTL was observed in cells having these HLA-DR alleles.
  • results using the healthy blood donors (HLA-DRB1 * 1501, 1502, 0405, HLA-DPB1 * 0501, 0901 in total, total 42 persons) in FIGS.
  • Results for day 14 are shown in FIGS. 12 and 13 for each of nine specimens (providers 38-46) in which -DP-restricted and WT1-332 specific Th1 was induced.
  • Table 3 shows the HLA class II type (types of HLA-DRB1 and HLA-DPB1 alleles) of each of nine specimens (providers 38 to 46).
  • * represents a compatible HLA-DPB1 allele known so far.
  • FIG. 12 From FIG. 12, FIG. 13 and Table 3, induction of WT1-332-specific Th1 and WT1-332-specific CTL was observed in cells having these HLA-DP alleles.

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Abstract

 本発明は、WT1ペプチドを抗原提示細胞に添加して、ヘルパーT細胞を活性化させる工程を含む、ヘルパーT細胞の活性化方法であって、該WT1ペプチドが、HLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、HLA-DRB40101分子、HLA-DPB10201分子またはHLA-DPB10301分子のうちのいずれかのMHCクラスII分子に結合する能力を有するものである方法などに関するものである。

Description

ヘルパーT細胞の活性化方法
 本発明は、WT1ペプチドを抗原提示細胞に添加して、ヘルパーT細胞を活性化する工程を含む、ヘルパーT細胞の活性化方法であって、該WT1ペプチドが、HLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、HLA-DRB40101分子、HLA-DRB11501分子、HLA-DRB10405分子、HLA-DRB11502分子、HLA-DPB10501分子、HLA-DPB10901分子、HLA-DPB10201分子またはHLA-DPB10301分子のうちのいずれかのMHCクラスII分子に結合する能力を有するものである方法、そのための組成物、細胞傷害性T細胞の活性化方法、細胞傷害性T細胞(CTL)の活性化誘導剤、ならびにヘルパーT細胞および/または細胞傷害性T細胞を活性化することによる癌の治療および/または予防用医薬組成物などに関する。なお、本願は、2010年10月5日出願の日本国特許出願第2010-225806号に対して優先権を主張するものであり、参照により該日本国特許出願の内容を本願に一体化させる。
 WT1遺伝子(Wilms' tumor 1 gene)は、小児の腎癌であるウイルムス腫瘍の原因遺伝子として同定され、ジンクフィンガー構造を有する転写因子をコードする(非特許文献1および2)。その後の研究により造血器腫瘍や固形癌において癌遺伝子として働くことが示された(非特許文献3~6)。
 WT1タンパク質をコードするアミノ酸配列の一部を有するペプチドを用いて末梢血単核球をインビトロで刺激することにより、ペプチドに特異的な細胞傷害性T細胞(CTL)が誘導され、これらのCTLがWT1を内在的に発現する造血器腫瘍や固形癌の癌細胞を傷害することが示された。CTLは、前記ペプチドをMHCクラスI分子に結合した複合体の形で認識するため、かかるペプチドはMHCクラスIのサブタイプにより異なる(特許文献1~4、および非特許文献7)。
 一方、CTLが有効に誘導されるためには、癌抗原に特異的なヘルパーT細胞の存在が重要である(非特許文献8)。ヘルパーT細胞は、抗原提示細胞のMHCクラスII分子と抗原ペプチドとの複合体を認識して誘導・活性化される。活性化されたヘルパーT細胞は、IL-2、IL-4、IL-5、IL-6、またはインターフェロンなどのサイトカインを産生することにより、B細胞の増殖、分化、成熟を補助する。かかるヘルパーT細胞は、B細胞、T細胞の増殖・活性化を促進することにより免疫系を活性化する機能を有することから、癌免疫療法においてMHCクラスII結合性の抗原ペプチドを介してヘルパーT細胞の機能を増強し、癌ワクチンの効果を増強することが有用であることが示唆される(非特許文献9)。
 近年、WT1タンパク質をコードするアミノ酸配列の一部を有する特定のペプチド(以下、本明細書においてWT1ペプチドともいう)には、複数のMHCクラスII分子に結合し、ヘルパーT細胞を活性化できるpromiscuousヘルパーペプチドが存在することが示された(特許文献5および6)。しかしながら、このWT1ペプチドが他のMHCクラスII分子に対しても効果を有するかを検証することは、MHCクラスII分子の種類が多いことから極めて困難であった。
国際公開2003/106682号公報 国際公開2005/095598号公報 国際公開2007/097358号公報 国際出願PCT/JP2007/074146 国際公開2005/045027号公報 国際公開2008/105462号公報
Daniel A. Haber et al., Cell. 1990 Jun 29;61(7):1257-69 Call KM et al., Cell. 1990 Feb 9;60(3):509-20 Menke AL et al., Int Rev Cytol. 1998;181:151-212. Review Yamagami T et al., Blood. 1996 Apr 1;87(7):2878-84 Inoue K et al., Blood. 1998 Apr 15;91(8):2969-76 Tsuboi A et al., Leuk Res. 1999 May;23(5):499-505 Oka Y et al., Immunogenetics. 2000 Feb;51(2):99-107 Gao FG et al., Cancer Res. 2002 Nov 15;62(22):6438-41 Zeng G, J Immunother. 2001 May;24(3):195-204
 したがって、本発明の解決課題は、特定のWT1ペプチドを用いることにより、広範囲のMHCクラスII分子陽性対象に適用してヘルパーT細胞を活性化する方法、細胞傷害性T細胞を活性化する方法、細胞傷害性T細胞の活性化誘導剤、および癌の治療/予防用医薬組成物などを提供することである。
 本発明者らは、上記事情に鑑み鋭意研究を重ねた結果、アミノ酸配列:Lys Arg Tyr Phe Lys Leu Ser His Leu Gln Met His Ser Arg Lys Hisを有するペプチドが、HLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、HLA-DRB40101分子、HLA-DRB11501分子、HLA-DRB10405分子、HLA-DRB11502分子、HLA-DPB10501分子、HLA-DPB10901分子、HLA-DPB10201分子、HLA-DPB10301分子に結合し、ヘルパーT細胞を活性化し、および/または細胞傷害性T細胞を活性化することを見出し、本発明を完成するに至った。
 すなわち、本発明は、
 (1)WT1ペプチドを抗原提示細胞に添加して、ヘルパーT細胞を活性化させる工程を含む、ヘルパーT細胞の活性化方法であって、該WT1ペプチドが、HLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、HLA-DRB40101分子、HLA-DPB10201分子またはHLA-DPB10301分子のうちのいずれかのMHCクラスII分子に結合する能力を有するものである方法、
 (2)WT1ペプチドが、HLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、HLA-DRB40101分子、HLA-DPB10201分子およびHLA-DPB10301分子のうちの少なくとも2つのMHCクラスII分子に結合する能力を有するものである、(1)記載の方法、
 (3)WT1ペプチドが、さらに、HLA-DRB10405分子、HLA-DRB11501分子、HLA-DRB11502分子、HLA-DPB10501分子および/またはHLA-DPB10901分子に結合する能力を有するものである、(1)または(2)記載の方法、
 (4)WT1ペプチドの抗原提示細胞への添加が、WT1ペプチド、WT1ペプチドをコードするポリヌクレオチド、該ポリペプチドを含む発現ベクター、または該発現ベクターを含む細胞の添加により行われる、(1)から(3)のいずれか1つ記載の方法、
 (5)WT1ペプチドが、アミノ酸配列:Lys Arg Tyr Phe Lys Leu Ser His Leu Gln Met His Ser Arg Lys His(配列番号:2)を含むペプチド、その変異体または修飾体である、(1)~(4)のいずれか1つ記載の方法、
 (6)WT1ペプチドを抗原提示細胞に添加して、ヘルパーT細胞を活性化させるための、WT1ペプチドを含む組成物であって、該WT1ペプチドが、HLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、HLA-DRB40101分子、HLA-DPB10201分子またはHLA-DPB10301分子のうちのいずれかのMHCクラスII分子に結合する能力を有するものである組成物、
 (7)WT1ペプチドが、HLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、HLA-DRB40101分子、HLA-DPB10201分子およびHLA-DPB10301分子のうちの少なくとも2つのMHCクラスII分子に結合する能力を有するものである、(6)記載の組成物、
 (8)WT1ペプチドが、さらに、HLA-DRB10405分子、HLA-DRB11501分子、HLA-DRB11502分子、HLA-DPB10501分子および/またはHLA-DPB10901分子に結合する能力を有するものである、(6)または(7)記載の組成物、
 (9)WT1ペプチドの抗原提示細胞への添加が、WT1ペプチド、WT1ペプチドをコードするポリヌクレオチド、該ポリヌクレオチドを含む発現ベクター、または該発現ベクターを含む細胞の添加により行われる、(6)~(8)のいずれか1つ記載の組成物、
 (10)WT1ペプチドが、アミノ酸配列:Lys Arg Tyr Phe Lys Leu Ser His Leu Gln Met His Ser Arg Lys His(配列番号:2)を含むペプチド、その変異体または修飾体である、(6)~(9)のいずれか1つ記載の組成物、
 (11)WT1ペプチドを含む抗原ペプチドとMHCクラスII分子との複合体が提示されている抗原提示細胞であって、前記MHCクラスII分子が、HLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、HLA-DRB40101分子、HLA-DPB10201分子またはHLA-DPB10301分子のうちのいずれかのMHCクラスII分子である、抗原提示細胞、
 (12)WT1ペプチドを含む抗原ペプチドとMHCクラスII分子との複合体を認識するヘルパーT細胞であって、前記MHCクラスII分子が、HLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、HLA-DRB40101分子、HLA-DPB10201分子またはHLA-DPB10301分子のうちのいずれかのMHCクラスII分子である、ヘルパーT細胞、
 (13)(11)記載のヘルパーT細胞により活性化される、細胞傷害性T細胞、
 (14)(6)~(10)のいずれか1つ記載の組成物、(11)記載の抗原提示細胞、(12)記載のヘルパーT細胞、または(13)記載の細胞傷害性T細胞のいずれかを有効成分として含む、癌を治療または予防するための医薬組成物、
 (15)WT1ペプチド、WT1ペプチドをコードするポリヌクレオチド、該ポリヌクレオチドを含む発現ベクター、または該発現ベクターを含む細胞のいずれかを有効成分として含む、細胞傷害性T細胞を活性化させるための医薬組成物であって、HLA-DPB10501分子、HLA-DPB10901分子、HLA-DPB10201分子、HLA-DPB10301分子、HLA-DRB11501分子、HLA-DRB11502分子、HLA-DRB10405分子、HLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、またはHLA-DRB40101分子のうちのいずれかのMHCクラスII分子を有する対象に投与するための医薬組成物、
 (16)WT1ペプチドに特異的に結合する抗体であって、該WT1ペプチドが、HLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、HLA-DRB40101分子、HLA-DPB10201分子またはHLA-DPB10301分子のうちのいずれかのMHCクラスII分子に結合する能力を有するものである抗体、
 (17)HLA-DRB10101、HLA-DRB10401、HLA-DRB10403、HLA-DRB10406、HLA-DRB10803、HLA-DRB10901、HLA-DRB11101、HLA-DRB30202、HLA-DRB40101、HLA-DPB10201分子またはHLA-DPB10301分子のうちのいずれかのMHCクラスII分子陽性対象におけるWT1特異的ヘルパーT細胞の存在または量を決定する方法であって、
(a)前記対象から取得した試料をWT1ペプチドを用いて刺激し、
(b)サイトカインまたはヘルパーT細胞の存在または量を調べる、
工程を含み、サイトカインまたはヘルパーT細胞の存在または量の増大がWT1特異的ヘルパーT細胞の存在または量を示すものである方法、
を提供する。
 本発明によれば、WT1ペプチドを用いることにより、HLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、HLA-DRB40101分子、HLA-DRB11501分子、HLA-DRB10405分子、HLA-DRB11502分子、HLA-DPB10501分子、HLA-DPB10901分子、HLA-DPB10201分子またはHLA-DPB10301分子のいずれかのMHCクラスII分子を有する広範囲の対象に適用してヘルパーT細胞を活性化させる方法、そのための組成物、細胞傷害性T細胞を活性化させる方法、そのための組成物、細胞傷害性T細胞の活性化誘導剤、ならびにヘルパーT細胞および細胞傷害性T細胞を活性化することによる癌の治療および/または予防用医薬組成物などが得られるので、かかるMHCクラスII分子を有する対象におけるインビボおよびインビトロでのヘルパーT細胞および細胞傷害性T細胞の活性化、さらには癌の治療および予防などが可能となる。
図1は、提供者1(HLA-DRB10406/1201、DRB30101、DRB40103陽性)に由来するPBMCより誘導されたT細胞を、WT1-332でパルスした各種提供者由来のPBMCと共培養した後に、IFN-γ量を測定した結果を示す。図中、縦軸は、培養後の上澄み液におけるIFN-γ量(pg/mL)を示す。横軸は、各種提供者において陽性を示すHLA-DRB1、3および4分子の種類を示す。 図2は、提供者2(HLA-DRB10901/1101、DRB30202、DRB40103陽性)に由来するPBMCより誘導されたT細胞を、WT1-332でパルスした各種提供者由来のPBMCと共培養した後に、IFN-γ量を測定した結果を示す。図中、縦軸は、培養後の上澄み液におけるIFN-γ量(pg/mL)を示す。横軸は、各種提供者において陽性を示すHLA-DRB1、3および4分子の種類を示す。 図3は、提供者3(HLA-DRB10401/0405、DRB40102/0103陽性)に由来するPBMCより誘導されたT細胞を、WT1-332でパルスした各種提供者由来のPBMCと共培養した後に、IFN-γ量を測定した結果を示す。図中、縦軸は、培養後の上澄み液におけるIFN-γ量(pg/mL)を示す。横軸は、各種陽性の提供者において陽性を示すHLA-DRB1および4分子の種類を示す。 図4は、提供者4(HLA-DRB10901/1101、DRB30202、DRB40103陽性)に由来するPBMCより誘導されたT細胞を、WT1-332でパルスした各種提供者由来のPBMCと共培養した後に、IFN-γ量を測定した結果を示す。図中、縦軸は、培養後の上澄み液におけるIFN-γ量(pg/mL)を示す。横軸は、各種陽性の提供者において陽性を示すHLA-DRB1、3および4分子の種類を示す。 図5は、HLA-クラスIIモノマータンパク質(DRB10101、DRB10405、DRB11501、DRB11502、DRB10803、DRB10901及びDRB40101)と各種ペプチドが特異的に会合したことを示す。図中、縦軸は、保持時間の移動度(分)を示す。横軸は、HLA-クラスIIモノマータンパク質の種類を示す。また、棒グラフは添加したペプチドの種類(左から、ネガティブコントロール(□)、ポジティブコントロール(■)、WT1-332(斜線□))を示す。 図6は、健常人の血液提供者(HLA-DRB11501、1502、0405、HLA-DPB10501、0901を少なくとも1つ以上有する、計延べ42人)に由来するPBMCより誘導されたT細胞をWT1-332で刺激した場合、WT1-332特異的なTh1比率(CD4陽性/細胞内IFN-γ陽性の細胞比率)が経時的に有意に増加することを示す。図中、縦軸は、生細胞中のCD4陽性/細胞内IFN-γ陽性の細胞数の割合(%)を表し、横軸は、培養日数(日)を表す。また、●は、WT1-332を添加誘導した試料(WT1-332誘導群)における割合を示し、○は、溶媒(コントロール)を添加誘導した試料(溶媒誘導群)における割合を示す。 図7は、健常人の血液提供者(HLA-DRB11501、1502、0405、HLA-DPB10501、0901を少なくとも1つ以上有する、計延べ42人)に由来するPBMCより誘導されたT細胞をWT1-332で刺激した場合、WT1-332特異的なCTL細胞数(CD8陽性/IFN-γ陽性の細胞比率)が経時的に有意に増加することを示す。図中、縦軸は、生細胞中のCD8陽性/細胞内IFN-γ陽性の細胞数の割合(%)を表し、横軸は、培養日数(日)を表す。また、●は、WT1-332を添加誘導した試料(WT1-332誘導群)における割合を示し、○は、溶媒(コントロール)を添加誘導した試料(溶媒誘導群)における割合を示す。 図8は、図6及び図7においてWT1-332特異的Th1が誘導された17検体(提供者21~37)のHLA-DR拘束性について示す。それぞれにおいて、WT1-332添加誘導後14日目のT細胞をWT1-332で刺激した場合、WT1-332特異的なIFN-γ産生が認められ、そのIFN-γ産生は、抗HLA-DR抗体を添加し、培養した場合に抑制された。このことは、WT1-332により誘導されたT細胞がHLA-DR拘束性であることを示す。図中、縦軸は提供者番号(提供者21~37)を示し、横軸はIFN-γ産生量(pg/mL)を表す。また、■はWT1-332刺激後のIFN-γ産生量を示し、斜線□は、WT1-332+抗HLA-DR抗体刺激後のIFN-γ産生量を示し、□は溶媒(コントロール)刺激後のIFN-γ産生量を示す。 図9は、図6及び図7においてHLA-DR拘束性WT1-332特異的Th1が誘導された17検体(提供者21~37)それぞれにおいて、WT1-332添加誘導後14日目のT細胞をWT1-332で刺激した場合、WT1-332特異的なTh1細胞(CD4陽性/細胞内IFN-γ陽性の細胞)数の割合が増加することを示す。図中、縦軸は提供者番号(提供者21~37)を示し、横軸は生細胞中のCD4陽性/細胞内IFN-γ陽性の細胞数の割合(%)を表す。また、■はWT1-332刺激後の割合を示し、□は溶媒(コントロール)刺激後の割合を示す。 図10は、図6及び図7においてHLA-DR拘束性WT1-332特異的Th1が誘導された17検体(提供者21~37)それぞれにおいて、WT1-332添加誘導後14日目のT細胞をWT1-332で刺激した場合、WT1-332特異的なCTL細胞(CD8陽性/細胞内IFN-γ陽性の細胞)数の割合が増加することを示す。図中、縦軸は提供者番号(提供者21~37)を示し、横軸は生細胞中のCD8陽性/細胞内IFN-γ陽性の細胞数の割合(%)を表す。また、■はWT1-332刺激後の割合を示し、□は溶媒(コントロール)刺激後の割合を示す。 図11は、図6及び図7においてWT1-332特異的Th1が誘導された9検体(提供者38~46)のHLA-DP拘束性について示す。それぞれにおいて、WT1-332添加誘導後14日目のT細胞をWT1-332で刺激した場合、WT1-332特異的なIFN-γ産生が認められ、そのIFN-γ産生は、抗HLA-DR抗体を添加し、培養した場合、ならびに抗HLA-DQ抗体を添加し、培養した場合のいずれにおいても抑制されなかった。このことは、WT1-332により誘導されたT細胞がHLA-DP拘束性であることを示す。図中、縦軸は提供者番号(提供者38~46)を示し、横軸はIFN-γ産生量(pg/mL)を表す。また、■はWT1-332刺激後のIFN-γ産生量を示し、斜線□はWT1-332+抗HLA-DR抗体刺激後のIFN-γ産生量を示し、縦線(破線)□はWT1-332+抗HLA-DQ抗体刺激後のIFN-γ産生量を示し、ならびに□は溶媒(コントロール)刺激後のIFN-γ産生量を示す。 図12は、図6及び図7においてHLA-DP拘束性WT1-332特異的Th1が誘導された9検体(提供者38~46)それぞれにおいて、WT1-332添加誘導後14日目のT細胞をWT1-332で刺激した場合、WT1-332特異的なTh1細胞(CD4陽性/細胞内IFN-γ陽性の細胞)数の割合が増加することを示す。図中、縦軸は提供者番号(提供者38~46)を示し、横軸は生細胞中のCD4陽性/細胞内IFN-γ陽性の細胞数の割合(%)を表す。また、■はWT1-332刺激後の割合を示し、□は溶媒(コントロール)刺激後の割合を示す。 図13は、図6及び図7においてHLA-DP拘束性WT1-332特異的Th1が誘導された9検体(提供者38~46)それぞれにおいて、WT1-332添加誘導後14日目のT細胞をWT1-332で刺激した場合、WT1-332特異的なCTL細胞(CD8陽性/細胞内IFN-γ陽性の細胞)数の割合が増加することを示す。図中、縦軸は提供者番号(提供者38~46)を示し、横軸は生細胞中のCD8陽性/細胞内IFN-γ陽性の細胞数の割合(%)を表す。また、■はWT1-332刺激後の割合を示し、□は溶媒(コントロール)刺激後の割合を示す。
 本発明は、1の態様において、WT1ペプチドを抗原提示細胞に添加して、ヘルパーT細胞または細胞傷害性T細胞を活性化する工程を含むヘルパーT細胞または細胞傷害性T細胞の活性化方法であって、前記WT1ペプチドが、MHCクラスII分子に結合する能力を有するものである方法を提供する。本発明において、細胞傷害性T細胞を活性化する工程は、ヘルパーT細胞を活性化する工程を経ることにより行われてもよい。また、本発明に用いられるWT1ペプチドは、HLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、HLA-DRB40101分子、HLA-DRB11501分子、HLA-DRB10405分子、HLA-DRB11502分子、HLA-DPB10501分子、HLA-DPB10901分子、HLA-DPB10201分子またはHLA-DPB10301分子のうちのいずれかのMHCクラスII分子に結合する能力を有するものである。本発明に用いられるWT1ペプチドはまた、上記MHCクラスII分子のうちの少なくとも2つまたはそれ以上のMHCクラスII分子に結合する能力を有するものであってもよい。また、本発明に用いられるWT1ペプチドは、例えば、HLA-DR分子、HLA-DQおよびHLA-DP分子のうちのいずれのMHCクラスII分子に結合する能力を有していてもよい。
 本発明において、WT1ペプチドは、配列番号:1に示されるヒトWT1タンパク質のアミノ酸配列の一部を有するペプチドであってもよい。本発明のペプチドは、上記特徴を有する限り、そのアミノ酸配列および長さは特に限定されないが、ペプチドが長すぎると蛋白分解酵素の作用を受けやすくなり、短すぎるとペプチド収容溝にうまく結合できない。本発明のペプチドの長さは、好ましくは10~25アミノ酸、より好ましくは15~21アミノ酸、さらに好ましくは16~20アミノ酸、例えば16アミノ酸、17アミノ酸、18アミノ酸、あるいは19アミノ酸である。本発明のペプチドの具体例は、アミノ酸配列:Lys Arg Tyr Phe Lys Leu Ser His Leu Gln Met His Ser Arg Lys His(配列番号:2)を含むものである。
 さらに、本発明に用いられるWT1ペプチドは、上記ペプチドの変異体も包含する。変異体は、例えば、配列番号:2に示すアミノ酸配列において、数個、例えば、1~9個まで、好ましくは、1~5個、1~4個、1~3個、さらに好ましくは1~2個、より好ましくは1個のアミノ酸が、置換、または欠失もしくは付加されたアミノ酸配列を有するペプチドからなる群から選択されるペプチドを含んでもよい。ペプチド中のアミノ酸の置換はいずれの位置でいずれの種類のアミノ酸との間で行われてもよく、保存的なアミノ酸置換が好ましい。保存的なアミノ酸置換の例としては、Glu残基をAsp残基に、Phe残基をTyr残基に、Leu残基をIle残基に、Ala残基をSer残基に、His残基をArg残基に置換することなどが挙げられる。アミノ酸の付加もしくは欠失は、ペプチド中のN末端およびC末端で行うことが好ましいが、配列内部において行われてもよい。本発明のペプチドの好ましい具体例は、配列番号:2を有するものであるが、上記のいずれのペプチドであっても、HLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、HLA-DRB40101分子、HLA-DRB11501分子、HLA-DRB10405分子、HLA-DRB11502分子、HLA-DPB10501分子、HLA-DPB10901分子、HLA-DPB10201分子またはHLA-DPB10301分子のうちのいずれかのMHCクラスII分子に結合する能力を有するものであって、ヘルパーT細胞または細胞傷害性T細胞(本明細書において、CTLともいう)を活性化することが条件となる。本明細書において、上記WT1ペプチドは「WT1-332」とも記載される。また、一般に、ヒトMHC分子をHLA分子ともいうので、本明細書ではMHCをHLAと同義語として使用する。
 本発明のペプチドはまた、上記アミノ酸配列の修飾体であってもよい。上記アミノ酸配列中のアミノ酸残基を公知の方法にて修飾することができる。そのような修飾体は、例えばアミノ酸残基の側鎖中の官能基にエステル化、アルキル化、ハロゲン化、リン酸化などを施したものであってもよい。また、上記アミノ酸配列を含むペプチドのN末端および/またはC末端に、種々の物質を結合させることができる。例えば、アミノ酸、ペプチド、それらのアナログ等を結合させてもよい。例えば、ヒスチジンタグを付加してもよく、チオレドキシン等の蛋白とともに融合蛋白となっていてもよい。あるいは、WT1ペプチドに検出可能な標識を結合させてもよい。本発明のペプチドにこれらの物質が結合している場合、これらの物質が例えば、生体内酵素などにより、あるいは細胞内プロセッシングなどの過程により処理され、最終的に上記アミノ酸配列からなるペプチドを生じるものであってもよく、MHCクラスII分子との複合体として細胞表面に提示されることにより、ヘルパーT細胞および/または細胞傷害性T細胞誘導効果を得ることができる。これらの物質は、本発明のペプチドの溶解性を調節するものであってもよく、耐プロテアーゼ作用等その安定性を向上させるものであってもよく、また例えば、所定の組織・器官に特異的に本発明のペプチドをデリバリーするようなものであってもよく、あるいはまた抗原提示細胞の取込み効率を増強させる作用などを有するものであってもよい。これらの物質はまた、CTL誘導能を増大させるもの、例えば、本発明のペプチド以外のヘルパーペプチドであってもよい。
 本発明に用いられるWT1ペプチドは、当該技術分野において通常用いられる方法またはそれらの変法を用いて合成することができる。かかる合成方法は、例えば、Peptide Synthesis, Interscience, New York, 1966;The Proteins, Vol 2, Academic Press Inc., New York, 1976;ペプチド合成、丸善(株),1975;ペプチド合成の基礎と実験、丸善(株),1985;医薬品の開発 続 第14巻・ペプチド合成、広川書店,1991などに記載されている。本発明に用いられるペプチドはまた、当該ペプチドをコードするヌクレオチド配列情報に基づき、遺伝子工学的手法を用いて製造することもできる。かかる遺伝子工学的手法は、当業者に周知のものである。これらの手法は、文献に記載される方法などに準じて行うことができる(Molecular Cloning, T.Maniatis et al., CSH Laboratory(1983)、DNA Cloning, DM.Glover, IRL PRESS(1985))。
 本発明は、上で説明したWT1ペプチドをコードするポリヌクレオチド配列にも関する。WT1ペプチドをコードするポリヌクレオチド配列はDNA配列であってもよく、RNA配列であってもよい。本発明において、WT1ペプチドを用いる代わりに、これらのポリヌクレオチド配列を用いてもよい。これらのポリヌクレオチド配列を適当なベクターに組み込んで使用してもよい。ベクターとしては、プラスミド、ファージベクター、ウイルスベクター等が挙げられ、例えば、pUC118、pUC119、pBR322、pCR3、pYES2、pYEUra3、pKCR、pCDM8、pGL2、pcDNA3.1、pRc/RSV、pRc/CMV、pAcSGHisNT-A、λZAPII、λgt11などが挙げられる。ベクターは、発現誘導可能なプロモーター、シグナル配列をコードする遺伝子、選択用マーカー遺伝子、ターミネーターなどの因子を適宜有していてもよい。これらの遺伝子の細胞や生体への導入方法、発現方法等は当業者に公知である。
 本発明に用いられる抗原提示細胞は、MHCクラスII分子とともに上記WT1ペプチドを含む抗原ペプチドをヘルパーT細胞に提示することができる細胞であって、例えば、樹状細胞、末梢血単核球などを意味する。それゆえ、本発明に用いられる抗原提示細胞が由来する対象は、添加するWT1ペプチドが結合することができるMHCクラスII分子と同一の分子(例えば、HLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、HLA-DRB40101分子、HLA-DRB11501分子、HLA-DRB10405分子、HLA-DRB11502分子、HLA-DPB10501分子、HLA-DPB10901分子、HLA-DPB10201分子またはHLA-DPB10301分子などのうちのいずれか1つまたはそれ以上のMHCクラスII分子)を有するものでなければならない。
 本発明において、WT1ペプチドの抗原提示細胞への添加は、WT1ペプチドを添加することにより直接的に、あるいはWT1ペプチドをコードするポリヌクレオチドもしくはWT1ペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む発現ベクターの添加により、または該発現ベクターを含む細胞の添加により間接的に行われてもよい。これらの添加は、当該技術分野で公知の方法により実施することができる。前記WT1ペプチドをコードするポリヌクレオチド、WT1ペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む発現ベクター、および該発現ベクターを含む細胞は、当業者によく知られた手法により取得することができる。具体的には、本発明に用いられるポリヌクレオチドは、上記WT1ペプチドのアミノ酸配列(例えば、配列番号:2に示すアミノ酸配列)に基づき決定できる。前記ポリヌクレオチドは、例えば、DNAまたはRNA合成方法、PCR法などにより製造することができる。また、上記ポリヌクレオチドを含む発現ベクターの種類、上記ポリヌクレオチド配列以外に含まれる配列等は、当該発現ベクターを導入する宿主の種類、目的等に応じて適宜選択でき、プラスミド、ファージベクター、ウイルスベクター等が挙げられる。発現ベクターを含む細胞は、例えば、宿主細胞を形質転換することにより、作製することができる。宿主細胞としては、大腸菌、酵母、昆虫細胞、動物細胞などが挙げられる。宿主細胞への導入方法は、通常の方法、例えば、リン酸カルシウム法、DEAE-デキストラン法、エレクトロポレーション法、遺伝子導入用リピッドを用いることができる。
 一般的に、ヘルパーT細胞は、T細胞表面のTCR・CD3複合体が抗原提示細胞表面のMHCクラスII分子を介して抗原ペプチドを認識し、T細胞表面のインテグリンが抗原提示細胞表面のインテグリンリガンドで刺激されることにより、活性化される。本明細書におけるヘルパーT細胞の活性化は、ヘルパーT細胞の活性化のみならず、ヘルパーT細胞の誘導・増殖を含むものとする。さらに、本発明において活性化されるヘルパーT細胞は、未分化なT細胞(例えば、ナイーブT細胞)などであってもよい。活性化されたヘルパーT細胞は、B細胞および細胞傷害性T細胞の誘導・増殖・活性化を促進することにより免疫系を活性化する機能を有する。それゆえ、本発明の方法を癌などの治療の補助療法として用いることもできる。また、インビトロにおいて本発明の方法を用いて活性化されたヘルパーT細胞を癌などの治療または予防、あるいはこれらのための補助剤として用いることもできる。ヘルパーT細胞の活性化は、インターフェロン(例えば、インターフェロンγなど)、インターロイキンなどのサイトカインの産生、分泌量を測定することなどにより評価することができる。
 本発明は、別の態様において、WT1ペプチドを抗原提示細胞に添加して、ヘルパーT細胞または細胞傷害性T細胞を活性化させるための組成物を提供する。本発明において、細胞傷害性T細胞の活性化は、ヘルパーT細胞の活性化を経ることにより行われるものものであってもよい。本発明の組成物に含まれる有効成分として、WT1ペプチド、WT1ペプチドをコードするポリヌクレオチド、前記ポリヌクレオチドを含むベクター、前記ベクターを含む細胞を例示することができるが、WT1ペプチドを抗原ペプチドとして抗原提示細胞表面にて提示させることができる因子であれば、いかなる分子であってもよい。これらの因子は、上述のごとく当業者によく知られた方法により得ることができる。
 本発明に用いられるWT1ペプチドは、上述のごとく、HLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、HLA-DRB40101分子、HLA-DRB11501分子、HLA-DRB10405分子、HLA-DRB11502分子、HLA-DPB10501分子、HLA-DPB10901分子、HLA-DPB10201分子またはHLA-DPB10301分子のうちのいずれかに結合する能力を有するものである。さらに、本発明に用いられるWT1ペプチドは、上記MHCクラスII分子のうちの少なくとも2つまたはそれ以上のMHCクラスII分子に結合する能力を有するものであってもよい。また、本発明に用いられるWT1ペプチドは、HLA-DR分子、HLA-DQ、HLA-DP分子のうちのいずれのMHCクラスII分子に結合する能力を有していてもよい。
 本発明の組成物がHLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、HLA-DRB40101分子、HLA-DRB11501分子、HLA-DRB10405分子、HLA-DRB11502分子、HLA-DPB10501分子、HLA-DPB10901分子、HLA-DPB10201分子またはHLA-DPB10301分子のうちのいずれか1つまたはそれ以上のMHCクラスII分子を有する対象に投与されると、対象中のヘルパーT細胞および/または細胞傷害性T細胞が活性化されることにより免疫系が活性化される。また、WT1遺伝子は、各種の癌や腫瘍、例えば、白血病、骨髄異形成症候群、多発性骨髄腫、悪性リンパ腫などの造血器腫瘍、胃癌、大腸癌、肺癌、乳癌、胚細胞癌、肝癌、皮膚癌、膀胱癌、前立腺癌、子宮癌、子宮頸癌、卵巣癌などの固形癌において高発現しているので、本発明の組成物を癌の治療または予防の補助剤として用いることもできる。あるいは、本発明の組成物を用いて活性化されたヘルパーT細胞、細胞傷害性T細胞などは、例えば、上記の癌の治療の補助剤として用いることもできる。
 本発明の組成物は、上記WT1ペプチド、WT1ペプチドをコードするポリヌクレオチド、前記ポリヌクレオチドを含むベクター、または前記ベクターを含む細胞以外に、例えば、担体、賦形剤、あるいは添加剤などを含んでいてもよい。本発明の組成物に含まれる上記WT1ペプチド等は、WT1ペプチド特異的にヘルパーT細胞および/または細胞傷害性T細胞を活性化することから、公知のMHCクラスI拘束性WT1ペプチドを含むか、あるいはこれらと共に適用されてもよい。
 本発明の組成物の適用方法は、所望のヘルパーT細胞および/または細胞傷害性T細胞の活性化程度、抗原提示細胞の状態などの条件に応じて適宜選択することができる。当該適用方法は、例えば、皮内投与、皮下投与、筋肉内投与、静脈内投与、経鼻投与、経口投与などにより対象に投与すること、あるいは抗原提示細胞培養液に添加することなどが挙げられるが、これらに限らない。本発明の組成物に含まれる上記WT1ペプチド等の量、組成物の形態、適用回数などは、所望のヘルパーT細胞および/または細胞傷害性T細胞の活性化程度、抗原提示細胞の状態などの条件に応じて適宜選択することができる。
 本発明は、さらなる別の態様において、WT1ペプチドを抗原提示細胞に添加して、ヘルパーT細胞または細胞傷害性T細胞を活性化する工程を含む、対象における癌の治療または予防方法であって、該WT1ペプチドがHLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、HLA-DRB40101分子、HLA-DRB11501分子、HLA-DRB10405分子、HLA-DRB11502分子、HLA-DPB10501分子、HLA-DPB10901分子、HLA-DPB10201分子またはHLA-DPB10301分子のうちのいずれかのMHCクラスII分子に結合する能力を有するものである方法を提供する。本発明の方法は、ヘルパーT細胞および/または細胞傷害性T細胞を活性化することにより対象の免疫系を活性化し、対象における癌を治療または予防する方法である。本発明の方法において、細胞傷害性T細胞を活性化する工程は、ヘルパーT細胞を活性化する工程を経ることにより行われるものであってもよい。WT1ペプチドの抗原提示細胞への添加は、WT1ペプチドを添加することにより直接的に、あるいはWT1ペプチドをコードするポリヌクレオチドもしくはWT1ペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む発現ベクターの添加により、または該発現ベクターを含む細胞の添加により間接的に行われてもよい。前記WT1ペプチドをコードするポリヌクレオチド、WT1ペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む発現ベクター、および該発現ベクターを含む細胞は、上述のごとく当業者によく知られた方法により取得することができる。本発明の方法を適用できる対象は、HLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、HLA-DRB40101分子、HLA-DRB11501分子、HLA-DRB10405分子、HLA-DRB11502分子、HLA-DPB10501分子、HLA-DPB10901分子、HLA-DPB10201分子またはHLA-DPB10301分子のいずれかのMHCクラスII分子陽性対象である。本発明を適用できる癌は、いずれのものであってもよく、例えば、白血病、骨髄異形成症候群、多発性骨髄腫、悪性リンパ腫などの造血器腫瘍、胃癌、大腸癌、肺癌、乳癌、胚細胞癌、肝癌、皮膚癌、膀胱癌、前立腺癌、子宮癌、子宮頸癌、卵巣癌などの固形癌を挙げることができる。また、本発明の方法は、MHCクラスI分子拘束性WT1ペプチドを用いた癌の治療または予防方法またはそのための医薬組成物と併用されてもよい。
 本発明は、なお別の態様において、上記組成物を製造するためのWT1ペプチド、WT1ペプチドをコードするポリヌクレオチド、前記ポリヌクレオチドを含むベクター、または前記ベクターを含む細胞の使用を提供する。さらに本発明は、ヘルパーT細胞または細胞傷害性T細胞を活性化させるために用いられる、WT1ペプチド、WT1ペプチドをコードするポリヌクレオチド、前記ポリヌクレオチドを含むベクター、または前記ベクターを含む細胞を提供する。
 本発明は、なおさらなる態様において、WT1ペプチドを抗原提示細胞に添加して、ヘルパーT細胞および/または細胞傷害性T細胞を活性化するための上記WT1ペプチド、WT1ペプチドをコードするポリヌクレオチド、前記ポリヌクレオチドを含むベクター、前記ベクターを含む細胞を含むキットであって、該WT1ペプチドがHLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、HLA-DRB40101分子、HLA-DRB11501分子、HLA-DRB10405分子、HLA-DRB11502分子、HLA-DPB10501分子、HLA-DPB10901分子、HLA-DPB10201分子またはHLA-DPB10301分子のいずれかのMHCクラスII分子に結合する能力を有するものであるキットに関するものである。好ましくは、該キットは上記ヘルパーT細胞または細胞傷害性T細胞の活性化方法に用いられる。本発明のキットは、WT1ペプチドの他に、例えば、抗原提示細胞の取得手段、ヘルパーT細胞および/または細胞傷害性T細胞の活性の評価手段などを含んでいてもよい。一般的には、キットには取扱説明書を添付する。本発明のキットを用いて、ヘルパーT細胞または細胞傷害性T細胞を効率的に活性化することができる。
 本発明は、別の態様において、WT1ペプチドを含む抗原ペプチドとMHCクラスII分子との複合体が提示されている抗原提示細胞を提供する。ここで、前記MHCクラスII分子は、HLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、HLA-DRB40101分子、HLA-DRB11501分子、HLA-DRB10405分子、HLA-DRB11502分子、HLA-DPB10501分子、HLA-DPB10901分子、HLA-DPB10201分子またはHLA-DPB10301分子のうちのいずれかであってもよく、さらには、上記MHCクラスII分子のうちの少なくとも2つまたはそれ以上であってもよい。本発明の抗原提示細胞は、当業者間で知られる手法を用いて調製されてもよい。例えば、癌患者から抗原提示能を有する細胞を単離し、単離した細胞に上記WT1ペプチド(例えば、配列番号:2に示すアミノ酸配列を有するペプチド)またはWT1ペプチドをコードするポリヌクレオチドでパルスするか、または前記ポリヌクレオチドを含む発現ベクターを細胞内に導入して、WT1ペプチドを含む抗原ペプチドとMHCクラスII分子との複合体を細胞表面に提示させることにより作製してもよい(Cancer Immunol.Immunother. 46:82, 1998、J.Immunol.,158: p1796,1997、Cancer Res.,59:p1184, 1999 Cancer Res.,56:p5672,1996、J.Immunol.,161: p5607,1998、J.Exp.Med., 184: p465,1996)。本明細書において、抗原提示能を有する細胞とは、WT1ペプチドを提示することができるMHCクラスII分子を細胞表面に発現する細胞であれば、限定されないが、抗原提示能が高い末梢血単核球または樹状細胞が好ましい。また、本発明の抗原提示細胞は、実施例に示されるごとく、インターフェロンγ量の増加により確認される細胞傷害性T細胞活性の上昇によりその存在が確認される。本発明の抗原提示細胞は、医薬組成物の有効成分として細胞療法(例えば、樹状細胞療法)において有効に用いられる。
 本発明は、さらなる別の態様において、WT1ペプチドを含む抗原ペプチドとMHCクラスII分子との複合体を認識するヘルパーT細胞を提供する。ここで、前記MHCクラスII分子は、HLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、HLA-DRB40101分子、HLA-DRB11501分子、HLA-DRB10405分子、HLA-DRB11502分子、HLA-DPB10501分子、HLA-DPB10901分子、HLA-DPB10201分子またはHLA-DPB10301分子のうちのいずれかであってもよく、さらには、上記MHCクラスII分子のうちの少なくとも2つまたはそれ以上であってもよい。本発明のヘルパーT細胞として、例えば、配列番号:2に示すアミノ酸配列からなるペプチドを含む抗原ペプチドとHLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、HLA-DRB40101分子、HLA-DRB11501分子、HLA-DRB10405分子、HLA-DRB11502分子、HLA-DPB10501分子、HLA-DPB10901分子、HLA-DPB10201分子またはHLA-DPB10301分子のうちのいずれかのMHCクラスII分子との複合体を認識するヘルパーT細胞を挙げることができる。本発明のヘルパーT細胞は、当該技術分野における公知の手法を用いて当業者が容易に調製・取得することができる(Iwata, M. et al., Eur. J. Immunol, 26, 2081(1996))。
 本発明は、なお別の態様において、WT1ペプチドを含む抗原ペプチドとMHCクラスII分子との複合体を認識するヘルパーT細胞により活性化される細胞傷害性T細胞を提供する。本発明の細胞傷害性T細胞として、例えば、配列番号:2に示すアミノ酸配列からなるペプチドを含む抗原ペプチドとHLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、HLA-DRB40101分子、HLA-DRB11501分子、HLA-DRB10405分子、HLA-DRB11502分子、HLA-DPB10501分子、HLA-DPB10901分子、HLA-DPB10201分子またはHLA-DPB10301分子のうちのいずれかのMHCクラスII分子との複合体を認識するヘルパーT細胞により活性化される細胞傷害性T細胞を挙げることができる。本発明の細胞傷害性T細胞は、当業者が公知の手法により容易に調製することができる。例えば、患者の末梢血リンパ球を単離し、これをペプチド(例えば、配列番号:2に記載のアミノ酸配列を有するペプチド)、前記ペプチドをコードするポリヌクレオチド、またはこれを含む発現ベクターでインビトロにて刺激することにより作製される(Journal of Experimental Medicine 1999, 190: 1669)。上記のごとく調製された細胞傷害性T細胞は、癌などの治療または予防用医薬組成物の有効成分として用いることができる。本明細書の実施例において、WT-332投与により一定のMHCクラス分子を有する対象由来の試料において、細胞傷害性T細胞の誘導活性が認められた。このことは、末梢血単核球中に、WT1ペプチドからなる抗原ペプチドとMHCクラスII分子との複合体の提示された抗原提示細胞が存在し、この複合体を提示する抗原提示細胞、これを特異的に認識するヘルパーT細胞、およびヘルパーT細胞により誘導された細胞傷害性T細胞が存在することを示すものである。
 本発明は、なおさらなる別の態様において、上記WT1ペプチドを含む抗原ペプチドとMHCクラスII分子とを有するHLAテトラマーを提供する。前記MHCクラスII分子は、HLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、HLA-DRB40101分子、HLA-DRB11501分子、HLA-DRB10405分子、HLA-DRB11502分子、HLA-DPB10501分子、またはHLA-DPB10901分子のうちのいずれかであってもよく、上記MHCクラスII分子のうちの少なくとも2つまたはそれ以上であってもよい。本明細書において、HLAテトラマーは、HLAタンパク質をペプチドと会合させた複合体(HLAモノマー)をビオチン化し、アビジンに結合させることにより4量体化したものを意味する。HLAテトラマーとして、種々の抗原ペプチドを含有するものが市販されており、本発明のHLAテトラマーを容易に作製することができる(Science 279: 2103-2106(1998)、Science 274: 94-96 (1996))。本発明のテトラマーは、フローサイトメトリー、蛍光顕微鏡等の公知の検出手段により結合した本発明のヘルパーT細胞や細胞傷害性T細胞を容易に選別または検出できるように、蛍光標識されることが好ましい。本発明におけるHLAテトラマーは、テトラマーに限定されるものではなく、必要に応じてペンタマー、デンドリマーなどのマルチマーを使用することもできる。本明細書において、マルチマーとは、HLAタンパク質をペプチドと会合させた複合体(HLAモノマー)を、公知の手法を用いて2つまたはそれ以上結合させることにより多量体化したものをいう。
 本発明は、別の態様において、上記組成物、抗原提示細胞、ヘルパーT細胞、細胞傷害性T細胞またはテトラマーのいずれかを有効成分として含む、ヘルパーT細胞または細胞傷害性T細胞を活性化させるための医薬組成物を提供する。本発明の医薬組成物は、上記組成物、抗原提示細胞、ヘルパーT細胞、細胞傷害性T細胞またはテトラマーのうちのいずれか1つまたはそれ以上を有効成分として含んでもよい。本発明の医薬組成物は、癌を治療または予防するために用いることができる。本発明の医薬組成物は、WT1を発現する各種癌および腫瘍、例えば、白血病、骨髄異形成症候群、多発性骨髄腫、悪性リンパ腫などの造血器腫瘍、胃癌、大腸癌、肺癌、乳癌、胚細胞癌、肝癌、皮膚癌、膀胱癌、前立腺癌、子宮癌、子宮頸癌、卵巣癌などの固形癌に適用することができる。また、本発明の医薬組成物は、HLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、HLA-DRB40101分子、HLA-DRB11501分子、HLA-DRB10405分子、HLA-DRB11502分子、HLA-DPB10501分子、HLA-DPB10901分子、HLA-DPB10201分子またはHLA-DPB10301分子などのMHCクラスII分子を有する対象に投与するために用いることができる。本発明の医薬組成物を、その他の癌の治療または予防方法またはそのための医薬組成物と併用してもよい。さらに、本発明の医薬組成物は、ヘルパーT細胞または細胞傷害性T細胞の活性化剤、増殖剤、誘導剤などを含んでいてもよく、あるいは公知のMHCクラスI拘束性WT1ペプチドを含んでいてもよい。
 本発明の医薬組成物は、有効成分以外に、例えば、担体、賦形剤などを含んでいてもよい。本発明の医薬組成物の投与方法は、疾患の種類、対象の状態、標的部位などの条件に応じて適宜選択することができる。当該方法は、例えば、皮内投与、皮下投与、筋肉内投与、静脈内投与、経鼻投与、経口投与などが挙げられるが、これらに限らない。本発明の医薬組成物に含まれる上記有効成分の量、医薬組成物の剤形、投与回数などは、疾患の種類、対象の状態、標的部位などの条件に応じて適宜選択することができる。
 本発明は、さらなる別の態様において、上記の組成物、抗原提示細胞、ヘルパーT細胞、細胞傷害性T細胞またはテトラマーのうちのいずれかの有効量を対象に投与する工程を含む、癌を治療または予防するための方法であって、対象が、HLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、HLA-DRB40101分子、HLA-DRB11501分子、HLA-DRB10405分子、HLA-DRB11502分子、HLA-DPB10501分子、HLA-DPB10901分子、HLA-DPB10201分子またはHLA-DPB10301分子のうちのいずれかのMHCクラスII分子を有するものである方法を提供する。本発明の方法により治療または予防できる癌は、WT1を発現する各種癌および腫瘍、例えば、白血病、骨髄異形成症候群、多発性骨髄腫、悪性リンパ腫などの造血器腫瘍、胃癌、大腸癌、肺癌、乳癌、胚細胞癌、肝癌、皮膚癌、膀胱癌、前立腺癌、子宮癌、子宮頸癌、卵巣癌などの固形癌である。本発明の方法は、その他の癌の治療または予防方法、例えば、公知のMHCクラスI分子拘束性WT1ペプチドを用いた癌の治療または予防方法と併用されてもよい。
 本発明は、なおさらなる別の態様において、上記医薬組成物を製造するための、上記の組成物、抗原提示細胞、ヘルパーT細胞、細胞傷害性T細胞またはテトラマーのいずれかの使用を提供する。さらに本発明は、ヘルパーT細胞または細胞傷害性T細胞を活性化させるために用いられる、上記の組成物、抗原提示細胞、ヘルパーT細胞、細胞傷害性T細胞またはテトラマーを提供する。さらに本発明は、癌の治療または予防に使用される、上記の組成物、抗原提示細胞、ヘルパーT細胞、細胞傷害性T細胞またはテトラマーを提供する。
 本発明は、1の態様において、上記WT1ペプチドまたは該WT1ペプチドをコードするポリヌクレオチドに特異的に結合する抗体(以下、抗WT1抗体ともいう)に関するものである。本発明の抗体は、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体のいずれであってもよい。具体的には、配列番号:2に示すアミノ酸配列を有するペプチドに特異的に結合する抗体などを挙げることができる。これらの抗体の製造方法は、すでに周知であり、本発明の抗体もこれらの常法に従って製造することができる(Current protocols in Molecular Biology edit. Ausubel et al. (1987) Publish. John Wiley and Sons. Section 11.12~11.13、Antibodies; A Laboratory Manual, Lane, H, D.ら編, Cold Spring Harber Laboratory Press 出版 New York 1989)。例えば、配列番号:2に示すアミノ酸配列を有するペプチドを免疫原として用い、家兎等の非ヒト動物を免疫し、この動物の血清から常法により得ることできる。一方、モノクローナル抗体の場合には、本発明に用いられるペプチド(配列番号:2に示すアミノ酸配列を有するペプチド)をマウス等の非ヒト動物に免疫し、得られた脾臓細胞と骨髄腫細胞とを細胞融合させて調製したハイブリドーマ細胞の中から得ることができる(Current protocols in Molecular Biology edit. Ausubel et al. (1987) Publish. John Wiley and Sons. Section 11.4~11.11)。また、本発明の抗WT1抗体の作製は、宿主に応じて種々のアジュバントを用いて免疫学的反応を高めることによって行うこともできる。かかるアジュバントとして、ミネラルゲル(例えば、フロイントアジュバント、水酸化アルミニウムなど)、表面活性物質、ヒトアジュバントなどを挙げることができる。本発明の抗WT1抗体は、アフィニティークロマトグラフィー、免疫学的診断等に用いることができる。免疫学的診断は、イムノブロット法、放射免疫測定法(RIA)、酵素免疫測定法(ELISA)、蛍光あるいは発光測定法等から適宜選択できる。
 本発明は、別の態様において、HLA-DRB10101、HLA-DRB10401、HLA-DRB10403、HLA-DRB10406、HLA-DRB10803、HLA-DRB10901、HLA-DRB11101、HLA-DRB30202、HLA-DRB40101、HLA-DRB11501分子、HLA-DRB10405分子、HLA-DRB11502分子、HLA-DPB10501分子、HLA-DPB10901分子、HLA-DPB10201分子またはHLA-DPB10301分子のうちのいずれかのMHCクラスII分子陽性対象におけるWT1ペプチドの存在または量を決定する方法であって、
(a)前記対象から取得した試料を上記抗WT1抗体と反応させ、次いで、
(b)前記試料に含まれる上記抗WT1抗体の存在または量を調べる、
工程を含む方法を提供する。前記工程(a)において用いられる試料として、HLA-DRB10101、HLA-DRB10401、HLA-DRB10403、HLA-DRB10406、HLA-DRB10803、HLA-DRB10901、HLA-DRB11101、HLA-DRB30202、HLA-DRB40101、HLA-DRB11501分子、HLA-DRB10405分子、HLA-DRB11502分子、HLA-DPB10501分子、HLA-DPB10901分子、HLA-DPB10201分子またはHLA-DPB10301分子のうちのいずれかのMHCクラスII分子を有する対象から取得されたものを用いることができる。前記工程(a)に用いられる試料は、例えば、血液、リンパ球などの体液、組織などを挙げることができる。試料の取得や抗体との反応などは、当業者であれば公知の手法を用いて適宜行うことができる。本発明における工程(b)は、例えば、上記抗WT1抗体の局在、部位、量等を決定することを含むので、癌の診断、予後診断などに用いることができる。上記抗WT1抗体は標識されていてもよい。標識としては、蛍光標識、放射性標識などの公知のものを使用することができる。標識することによりWT1ペプチドの存在または量の決定を簡便かつ迅速に行うことが可能となる。
 本発明は、さらなる別の態様において、上記抗WT1抗体を必須構成成分として含む、WT1ペプチドの存在または量を決定するためのキットに関するものである。本発明のキットは、上記抗WT1抗体の他に、例えば、抗WT1抗体の取得手段、評価手段などを含んでいてもよい。一般的には、キットには取扱説明書を添付する。本発明のキットを用いることにより、上述のWT1ペプチドの存在または量を決定する方法において簡便かつ迅速にWT1ペプチドの存在または量を決定することが可能となる。
 本発明は、なお別の態様において、HLA-DRB10101、HLA-DRB10401、HLA-DRB10403、HLA-DRB10406、HLA-DRB10803、HLA-DRB10901、HLA-DRB11101、HLA-DRB30202、HLA-DRB40101、HLA-DRB11501分子、HLA-DRB10405分子、HLA-DRB11502分子、HLA-DPB10501分子、HLA-DPB10901分子、HLA-DPB10201分子またはHLA-DPB10301分子のうちのいずれかのMHCクラスII分子陽性対象におけるWT1特異的ヘルパーT細胞またはWT1特異的細胞傷害性T細胞の存在または量を決定する方法であって、
(a)前記対象から取得した試料をWT1ペプチドを用いて刺激し、
(b)サイトカイン、ヘルパーT細胞または細胞傷害性T細胞の存在または量を調べる、
工程を含み、サイトカイン、ヘルパーT細胞または細胞傷害性T細胞の存在または量の増大がWT1特異的ヘルパーT細胞またはWT1特異的細胞傷害性T細胞の存在または量を示すものである方法を提供する。本発明の試料は、抗原提示細胞を含むものであればいかなるものであってもよく、例えば、末梢血単核球、浸潤性リンパ球、腫瘍細胞、腹水中の細胞、胸水中の細胞、脳脊髄液中の細胞、骨髄細胞、またはリンパ節細胞などを挙げることができる。本発明に用いられる試料は、健常人由来であっても、あるいは癌患者由来であってもよい。健常人由来のこれらの細胞を用いることにより、例えば、癌に罹患しているかどうか、あるいはその素因を有するかどうかを診断することなどが可能になる。癌患者由来のこれらの細胞を用いることにより、例えば、癌患者においてWT1免疫療法が効果を有するかどうかを予測することなどが可能になる。本発明の方法において、取得した試料は、WT1ペプチドによる刺激の前後に培養されていてもよく、前記培養条件は当業者が適宜決定することができる。WT1ペプチドを用いたこれらの細胞の刺激は、エレクトロポレーションなどの公知の手法を用いて行うことができ、インビトロまたはインビボのいずれにおいて行われてもよい。サイトカイン産生、ヘルパーT細胞、細胞傷害性T細胞の反応が存在するか、あるいはサイトカイン産生量、ヘルパーT細胞、または細胞傷害性T細胞の反応量は既知の方法により調べることができる。
 本発明は、なおさらなる別の態様において、上記WT1ペプチドを必須構成成分として含む、WT1ペプチドの存在または量を決定するためのキットに関するものである。本発明のキットは、上記WT1ペプチドの他に、例えば、試料の取得手段、サイトカインなどの評価手段などを含んでいてもよい。一般的には、キットには取扱説明書を添付する。本発明のキットを用いることにより、上述のWT1ペプチドの存在または量を決定する方法において簡便かつ迅速にWT1ペプチドの存在または量を決定することが可能となる。
 以下に実施例を示して本発明を具体的かつ詳細に説明するが、実施例は本発明を限定するものと解してはならない。
1.WT1-332特異的I型ヘルパーT細胞の誘導
 健常人の血液提供者(提供者1:HLA-DRB10406/1201、DRB30101、DRB40103陽性、提供者2:HLA-DRB10901/1101、DRB30202、DRB40103陽性、提供者3:HLA-DRB10401/0405、DRB40102/0103陽性、提供者4:HLA-DRB10901/1101、DRB30202、DRB40103陽性)の末梢血より末梢血単核球(PBMC)を分離した。分離したPBMC(1.5×10個)を45% RPMI-1640(SIGMA社)、45% AIM-V(invitrogen社)、10% AB型ヒト血清(MP Biomedicals社)より組成される培地へ懸濁し、1.5×10個/ウェルで24ウェルプレートへ播種した(0日目)。PBMCを播種したウェルへWT1-332(配列番号:2に示すアミノ酸配列からなるペプチド)を10μg/mL、IL-7(PeproTech社)を10ng/mLとなるように添加し、37℃、5% COで1週間培養した。また、分離したPBMCの一部を再刺激時の抗原提示細胞用に凍結保存した。
 1週間後(7日目)、再刺激を行った。まず、凍結保存しておいたPBMCを解凍し、10μg/mL WT1-332でパルスし、50μg/mL マイトマイシンC(協和発酵キリン社)で処理し、新しい24ウェルプレートへ1.0×10~1.6×10個/ウェルで播種した。次に、1週間培養していた細胞を回収し、1.0×10~1.6×10個/ウェルで抗原提示細胞を播種したウェルへ播種した。最後に、IL-7を10ng/mLとなるように各ウェルに添加し、37℃、5% COで培養した。2日後(9日目)に各ウェルの培養液を半量静かに抜き取り、代わりに40U/mL IL-2(PeproTech社)含有培地を添加して培養を続けた。その後、1日おきに20U/mL IL-2含有培地で培養液の半量交換操作を行い、14日目から21日目の間に適宜細胞を回収し、実験に使用した。
2.拘束アレル決定実験に用いる抗原提示細胞の調製
 健常人の血液提供者(提供者5:HLA-DRB10406/1201、DRB30101、DRB40103陽性、提供者6:HLA-DRB10403/1405、DRB30202、DRB40103陽性、提供者7:HLA-DRB10403/1201、DRB30101、DRB40103陽性、提供者8:HLA-DRB10101/0901、DRB40103陽性、提供者9:HLA-DRB11401/1406、DRB30202陽性、提供者10:HLA-DRB10803/0901、DRB40103陽性、提供者11:HLA-DRB11101/1502、DRB30202陽性、提供者12:HLA-DRB10405/1406、DRB30202、DRB40103陽性、提供者13:HLA-DRB10401/0405、DRB40102/0103陽性、提供者14:HLA-DRB10401/1502、DRB40102陽性、提供者15:HLA-DRB10101/0405、DRB40103陽性、提供者16:HLA-DRB10901/1501、DRB40103陽性、提供者17:HLA-DRB10405/1501、DRB40103陽性、提供者18:HLA-DRB11401/1502、DRB30202陽性、提供者19:HLA-DRB11403/1502、DRB30101陽性、提供者20:HLA-DRB10803/1302、DRB30301陽性)の末梢血よりPBMCを分離し、拘束アレル決定実験に用いる抗原提示細胞とした。それぞれのPBMCを、使用するまで-80℃にて凍結保存した。
3.IFN-γの測定(抗HLA-DR抗体における反応阻害)
 提供者1~4のPBMCより誘導されたT細胞を、WT1-332非存在下、10μg/mL WT1-332存在下、10μg/mL WT1-332および10μg/mL 抗HLA-DR抗体(BD社)存在下で24時間培養した。培養後、上清中のIFN-γ量をELISA(BD社)にて定量した。その結果、誘導されたすべてのT細胞がWT1-332を認識してIFN-γを産生すること、またその反応はHLA-DR分子拘束的であることが示された。
4.IFN-γの測定(拘束アレルの決定)
 提供者1~4のPBMCより誘導されたT細胞をそれぞれ適当なWT1-332でパルスした抗原提示細胞と反応させ、誘導されたT細胞の拘束アレルを決定した。
(4-1.提供者1由来T細胞)
 提供者1のPBMCより誘導されたT細胞を、10μg/mL WT1-332でパルスした提供者5、6、7、8、9由来抗原提示細胞と24時間共培養した。培養後、上清中のIFN-γ量をELISAにて定量した。結果を図1に示す。提供者1由来T細胞は、HLA-DR4(DRB10403、0406)陽性抗原提示細胞と共培養したときにIFN-γを産生することから、拘束アレルはHLA-DRB10406であることが示された。また、HLA-DRB10403がWT1-332を提示してT細胞を刺激できることも示された。
(4-2.提供者2由来T細胞)
 提供者2のPBMCより誘導されたT細胞を、10μg/mL WT1-332でパルスした提供者10、11、12、9由来抗原提示細胞と24時間共培養した。培養後、上清中のIFN-γ量をELISAにて定量した。結果を図2に示す。提供者2由来T細胞は、HLA-DRB30202陽性抗原提示細胞と共培養したときにIFN-γを産生することから、拘束アレルはHLA-DRB30202であることが示された。
(4-3.提供者3由来T細胞)
 提供者3のPBMCより誘導されたT細胞を、10μg/mL WT1-332でパルスした提供者13、14、15、10由来抗原提示細胞と24時間共培養した。培養後、上清中のIFN-γ量をELISAにて定量した。結果を図3に示す。提供者3由来T細胞は、HLA-DR4(DRB10401、0405)陽性抗原提示細胞と共培養したときにIFN-γを産生した。よって、HLA-DRB10401、0405共にWT1-332を提示してT細胞を刺激できることが示された。
(4-4.提供者4由来T細胞)
 提供者4のPBMCより誘導されたT細胞を、10μg/mL WT1-332でパルスした提供者16、11、17、18、19、20由来抗原提示細胞と24時間共培養した。培養後、上清中のIFN-γ量をELISAにて定量した。結果を図4に示す。提供者4由来T細胞は、HLA-DRB11101陽性抗原提示細胞と共培養したときにIFN-γを産生することから、拘束アレルはHLA-DRB11101であることが示された。
 次いで、WT1-332とMHCクラスII分子との結合能を評価するため、HPLCを用いることにより、7種類のHLAクラスIIモノマータンパク質(DRB11501、0101、0405、0803、0901、1502、またはDRB40101)とWT1-332とのフォールディング試験を行った。簡単に説明すると、HLAクラスIIモノマータンパク質、ペプチド(各タンパク質に結合するペプチド(ポジティブコントロール)、結合しないペプチド(ネガティブコントロール)、およびWT1-332)、フォールディングbufferを混ぜてフォールディング反応液を作製し、37℃で反応後、HPLCを用いた保持時間を解析した。HLAクラスIIモノマータンパク質とペプチドとの結合による保持時間の移動を利用し、WT1-332とのフォールディングを評価した。この試験に用いる試薬類を下記表に示す。
(表1.試験に用いる試薬類)
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
HLAクラスIIモノマータンパク質の調製
 -80℃に凍結保存してあるHLAクラスIIモノマータンパク質を氷上で融解した。融解したHLAクラスIIモノマータンパク質を83μL中に0.05mg(1×10-9mol)含まれるように希釈バッファーで調製した。
ペプチド溶液の調製
 各ペプチドを電子天秤で約1mg秤量し,ガラスバイアルに移し20mg/mLになるようにDMSOで溶解した。
50倍モル量のペプチド溶液量の算出
 HLAクラスIIモノマータンパク質に対し50倍モル量となるペプチド量を以下の計算式で算出した。
 必要なペプチド量:1×10-9mol×50=5×10-8mol(必要なペプチド量)
 5×10-8×(ペプチド分子量)×1000=(必要なペプチド量)(mg)
(必要なペプチド量)/[ペプチド純度/100]=(添加するペプチド量)(mg)
 [(添加するペプチド量)/20mg/mL]×1000=(添加するペプチド溶液量)(μL)
フォールディングbuffer添加量の算出
 フォールディングbufferとして、HLAクラスIIモノマータンパク質とペプチドの混合溶液の10%量を添加した。フォールディングbuffer添加量を以下の計算式で算出した。
 [83μL(HLAクラスIIモノマータンパク質量)+(50倍モル量のペプチド溶液量)]×0.1=フォールディングbuffer添加量
HPLCによるフォールディング解析
 HLAクラスIIモノマータンパク質が入ったガラスバイアルに、算出して得られたペプチド溶液、フォールディングbufferを添加し、37℃で一晩静置した。HLPC(Waters 2695 Separation Module)を起動し、Seperdex 200カラムを平衡化bufferで平衡化した。すべてのサンプルに平衡化bufferを300μL加え、よく混合し、そのうち100μLをSample injection volumeとし、保持時間を算出した。分析時間を50分とした。HLAクラスIIモノマータンパク質とペプチドがフォールディングした基準は、保持時間がコントロール(溶媒のみ)と比べ0.1分以上移動したものとした。その結果、調べた7種類のHLAクラスIIモノマータンパク質(DRB11501、0101、0405、0803、0901、1502、またはDRB40101)で保持時間の移動度が0.1分以上上昇したことから(図5)、これらのタンパク質に対してWT1-332が特異的に結合し、抗原提示できることが明らかとなった。
WT1-332特異的T細胞の誘導
 健常人の血液提供者(HLA-DRB11501、1502、0405、HLA-DPB10501、0901を少なくとも1つ以上有する、計延べ42人)の末梢血より末梢血単核球(PBMC)を分離した。分離したPBMCを1.2×10個ずつ分割し、45% RPMI-1640(SIGMA社)、45% AIM-V(invitrogen社)、10% AB型ヒト血清(MP Biomedicals社)より組成される培地へ懸濁し、1.5×10個/ウェルで24ウェルプレートへ播種した(0日目)。PBMCを播種したウェルへWT1-332を20μg/mL、IL-7(PeproTeck社)を10ng/mLとなるように添加し、37℃、5% COで1週間培養した。対照群としてWT1-332の代わりに溶媒(10mM 酢酸)を最終濃度10μMになるように添加した群(溶媒誘導群)を設定した。また、分離したPBMCの一部を再刺激時の抗原提示細胞用に凍結保存した。
 1週間後(7日目)、再刺激を行った。まず、凍結保存しておいたPBMCを解凍し、20μg/mL WT1-332または10μM酢酸溶媒でパルスし、50μg/mL マイトマイシンC(協和発酵キリン社)で処理し、新しい24ウェルプレートへ1.0×10~1.6×10個/ウェルで播種した。次に、1週間培養していた細胞を回収し、1.0×10~1.6×10個/ウェルで抗原提示細胞を播種したウェルへ播種した。最後に、IL-7を10ng/mLとなるように各ウェルに添加し、37℃、5% COで培養した。2日後(9日目」)、各ウェルの培養液を半量静かに抜き取り、代わりに40U/mL IL-2(PeproTech社)含有培地を添加して培養を続けた。その後、1日おきに20U/mL IL-2含有培地で培養液の半量交換操作を行った。
 0、7、14日目に細胞を回収し、IFN-γ測定実験に使用した。
IFN-γの測定(細胞内サイトカイン染色(ICS))
 0日目においては、調製後のPBMC、7日目及び14日目においては、WT1-332誘導群及び溶媒誘導群より回収した生細胞を96ウェルU底プレートへ播種、及びWT1-332含有培地を最終濃度20μg/mLとなるように添加して抗原再刺激を入れた。また、比較対照として溶媒含有培地を最終濃度10μMとなるように添加した。37℃、5%COで4時間培養した後、Brefeldin A(BioLegend)を添加してさらに培養を続けた。培養開始から6時間後に細胞を回収し、PE標識抗ヒトCD4抗体、FITC標識抗ヒトCD8抗体で染色した。細胞内IFN-γ染色を、BD Cytofix/Cytoperm Fixation/Permiabilization Kit(Becton Dickinson)とPerCP/Cy5.5標識抗ヒトIFN-γ抗体を用いて行った。解析はEPICS-XL MCL(Beckman Coulter)を用いた。結果を図6および7に示す。図6より、WT1-332誘導群において、7日目から14日目の間において、WT1-332特異的Th1の顕著な増加が確認され、経時的に増加することがわかった。この増加は溶媒誘導群に比して有意な増加であった(P<0.0001)。また、図7より、WT1-332特異的CTLに関しても7日目から14日目の間に、WT1-332誘導群において経時的な増加が確認され、その増加も溶媒誘導群に比して有意であった(P<0.0001)。
IFN-γの測定(抗HLA-DR抗体、抗HLA-DQ抗体における反応阻害)
 14日目において、提供者21~37のPBMCより誘導されたT細胞を、10μM 溶媒存在下、20μg/mL WT1-332存在下、20μg/mL WT1-332および10μg/mL 抗HLA-DR抗体(L243[G46-6]、BD社)存在下で24時間培養した。培養後、上清中のIFN-γ量をELISA(BD社)にて定量した。結果を図8に示す。提供者21~37の検体において、誘導されたT細胞がWT1-332を認識してIFN-γを産生すること、またその反応はHLA-DR分子拘束的であることが示された。
 また、14日目において、提供者38~46のPBMCより誘導されたT細胞を、10μM 溶媒存在下、20μg/mL WT1-332存在下、20μg/mL WT1-332および10μg/mL 抗HLA-DR抗体(L243[G46-6]、BD社)、10μg/mL 抗HLA-DQ抗体(SPVL3、BC社)存在下で24時間培養した。培養後、上清中のIFN-γ量をELISA(BD社)にて定量した。結果を図11に示す。提供者38~46の検体において、誘導されたT細胞がWT1-332を認識してIFN-γを産生し、その反応は抗HLA-DR抗体、抗HLA-DQ抗体で阻害されなかった。これらのことから、提供者38~46に由来するWT1-332誘導T細胞がHLA-DP分子拘束的であることが示された。
WT1-332特異的T細胞の誘導(新規アレルとの関係)
 図6及び7における健常人の血液提供者(HLA-DRB11501、1502、0405、HLA-DPB10501、0901を少なくとも1つ以上有する、計延べ42人)を用いた結果において、HLA-DR拘束性且つWT1-332特異的Th1が誘導された17人の検体(提供者21~37)それぞれについて、14日目の結果を図9および10に示す。また、17人の検体(提供者21~37)それぞれのHLAクラスII型(HLA-DRB1及びHLA-DPB1アレルの型)を以下の表2に示す。ここで、DRB30202はDRB11101、DRB11401及びDRB11405と連鎖不平衡にあり(表中、△で示すDRB1アレル)、DRB40101はDRB10403、DRB10405、DRB10901と連鎖不平衡にある(表中、▲で示すDRB1アレル)。表中、太字斜体の文字で示すアレルは新規適合HLA-DRB1アレルを表す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002

 図9、図10および表2より、これらのHLA-DRアレルを有する細胞においてWT1-332特異的Th1およびWT1-332特異的CTLの誘導が認められた。
 また、図6及び7における健常人の血液提供者(HLA-DRB11501、1502、0405、HLA-DPB10501、0901を少なくとも1つ以上有する、計延べ42人)を用いた結果において、HLA-DP拘束性且つWT1-332特異的Th1が誘導された9人の検体(提供者38~46)それぞれについて、14日目の結果を図12および13に示す。また、9人の検体(提供者38~46)それぞれのHLAクラスII型(HLA-DRB1及びHLA-DPB1アレルの型)を以下の表3に示す。表中、※はこれまでに知られている適合HLA-DPB1アレルを表す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003

 図12、図13および表3より、これらのHLA-DPアレルを有する細胞においてWT1-332特異的Th1およびWT1-332特異的CTLの誘導が認められた。
 本発明により、HLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、HLA-DRB40101分子、HLA-DRB11501分子、HLA-DRB10405分子、HLA-DRB11502分子、HLA-DPB10501分子、HLA-DPB10901分子、HLA-DPB10201分子またはHLA-DPB10301分子のいずれかのMHCクラスII分子に結合する能力を有するWT1ペプチドを用いて、ヘルパーT細胞および/または細胞傷害性T細胞を活性化する方法およびそのための組成物、ならびにヘルパーT細胞および/または細胞傷害性T細胞を活性化することによる癌の治療および/または予防用医薬組成物などが提供されるので、医薬品等の分野、例えば、WT1遺伝子を高発現している種々の造血器腫瘍、固形癌の予防薬または治療薬の開発、製造分野において利用可能である。

Claims (17)

  1.  WT1ペプチドを抗原提示細胞に添加して、ヘルパーT細胞を活性化させる工程を含む、ヘルパーT細胞の活性化方法であって、該WT1ペプチドが、HLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、HLA-DRB40101分子、HLA-DPB10201分子またはHLA-DPB10301分子のうちのいずれかのMHCクラスII分子に結合する能力を有するものである方法。
  2.  WT1ペプチドが、HLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、HLA-DRB40101分子、HLA-DPB10201分子およびHLA-DPB10301分子のうちの少なくとも2つのMHCクラスII分子に結合する能力を有するものである、請求項1記載の方法。
  3.  WT1ペプチドが、さらに、HLA-DRB10405分子、HLA-DRB11501分子、HLA-DRB11502分子、HLA-DPB10501分子および/またはHLA-DPB10901分子に結合する能力を有するものである、請求項1または2記載の方法。
  4.  WT1ペプチドの抗原提示細胞への添加が、WT1ペプチド、WT1ペプチドをコードするポリヌクレオチド、該ポリペプチドを含む発現ベクター、または該発現ベクターを含む細胞の添加により行われる、請求項1から3のいずれか1項記載の方法。
  5.  WT1ペプチドが、アミノ酸配列:Lys Arg Tyr Phe Lys Leu Ser His Leu Gln Met His Ser Arg Lys His(配列番号:2)を含むペプチド、その変異体または修飾体である、請求項1~4のいずれか1項記載の方法。
  6.  WT1ペプチドを抗原提示細胞に添加して、ヘルパーT細胞を活性化させるための、WT1ペプチドを含む組成物であって、該WT1ペプチドが、HLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、HLA-DRB40101分子、HLA-DPB10201分子またはHLA-DPB10301分子のうちのいずれかのMHCクラスII分子に結合する能力を有するものである組成物。
  7.  WT1ペプチドが、HLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、HLA-DRB40101分子、HLA-DPB10201分子およびHLA-DPB10301分子のうちの少なくとも2つのMHCクラスII分子に結合する能力を有するものである、請求項6記載の組成物。
  8.  WT1ペプチドが、さらに、HLA-DRB10405分子、HLA-DRB11501分子、HLA-DRB11502分子、HLA-DPB10501分子および/またはHLA-DPB10901分子に結合する能力を有するものである、請求項6または7記載の組成物。
  9.  WT1ペプチドの抗原提示細胞への添加が、WT1ペプチド、WT1ペプチドをコードするポリヌクレオチド、該ポリヌクレオチドを含む発現ベクター、または該発現ベクターを含む細胞の添加により行われる、請求項6~8のいずれか1項記載の組成物。
  10.  WT1ペプチドが、アミノ酸配列:Lys Arg Tyr Phe Lys Leu Ser His Leu Gln Met His Ser Arg Lys His(配列番号:2)を含むペプチド、その変異体または修飾体である、請求項6~9のいずれか1項記載の組成物。
  11.  WT1ペプチドを含む抗原ペプチドとMHCクラスII分子との複合体が提示されている抗原提示細胞であって、前記MHCクラスII分子が、HLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、HLA-DRB40101分子、HLA-DPB10201分子またはHLA-DPB10301分子のうちのいずれかのMHCクラスII分子である、抗原提示細胞。
  12.  WT1ペプチドを含む抗原ペプチドとMHCクラスII分子との複合体を認識するヘルパーT細胞であって、前記MHCクラスII分子が、HLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、HLA-DRB40101分子、HLA-DPB10201分子またはHLA-DPB10301分子のうちのいずれかのMHCクラスII分子である、ヘルパーT細胞。
  13.  請求項12記載のヘルパーT細胞により活性化される、細胞傷害性T細胞。
  14.  請求項6~10のいずれか1項記載の組成物、請求項11記載の抗原提示細胞、請求項12記載のヘルパーT細胞、または請求項13記載の細胞傷害性T細胞のいずれかを有効成分として含む、癌を治療または予防するための医薬組成物。
  15.  WT1ペプチド、WT1ペプチドをコードするポリヌクレオチド、該ポリヌクレオチドを含む発現ベクター、または該発現ベクターを含む細胞のいずれかを有効成分として含む、細胞傷害性T細胞を活性化させるための医薬組成物であって、HLA-DPB10501分子、HLA-DPB10901分子、HLA-DPB10201分子、HLA-DPB10301分子、HLA-DRB11501分子、HLA-DRB11502分子、HLA-DRB10405分子、HLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、またはHLA-DRB40101分子のうちのいずれかのMHCクラスII分子を有する対象に投与するための医薬組成物。
  16.  WT1ペプチドに特異的に結合する抗体であって、該WT1ペプチドが、HLA-DRB10101分子、HLA-DRB10401分子、HLA-DRB10403分子、HLA-DRB10406分子、HLA-DRB10803分子、HLA-DRB10901分子、HLA-DRB11101分子、HLA-DRB30202分子、HLA-DRB40101分子、HLA-DPB10201分子またはHLA-DPB10301分子のうちのいずれかのMHCクラスII分子に結合する能力を有するものである抗体。
  17.  HLA-DRB10101、HLA-DRB10401、HLA-DRB10403、HLA-DRB10406、HLA-DRB10803、HLA-DRB10901、HLA-DRB11101、HLA-DRB30202、HLA-DRB40101、HLA-DPB10201分子またはHLA-DPB10301分子のうちのいずれかのMHCクラスII分子陽性対象におけるWT1特異的ヘルパーT細胞の存在または量を決定する方法であって、
    (a)前記対象から取得した試料をWT1ペプチドを用いて刺激し、
    (b)サイトカインまたはヘルパーT細胞の存在または量を調べる、
    工程を含み、サイトカインまたはヘルパーT細胞の存在または量の増大がWT1特異的ヘルパーT細胞の存在または量を示すものである方法。
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