WO2011048803A1 - 硬組織再生誘導用材料 - Google Patents

硬組織再生誘導用材料 Download PDF

Info

Publication number
WO2011048803A1
WO2011048803A1 PCT/JP2010/006203 JP2010006203W WO2011048803A1 WO 2011048803 A1 WO2011048803 A1 WO 2011048803A1 JP 2010006203 W JP2010006203 W JP 2010006203W WO 2011048803 A1 WO2011048803 A1 WO 2011048803A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
gelatin
tcp
sponge
bone
prp
Prior art date
Application number
PCT/JP2010/006203
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
岡本　慎一
田畑　泰彦
Original Assignee
日東電工株式会社
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 日東電工株式会社 filed Critical 日東電工株式会社
Priority to CN201080047151.2A priority Critical patent/CN102665775A/zh
Priority to US13/502,627 priority patent/US9040070B2/en
Priority to EP10824655.4A priority patent/EP2491958A4/en
Priority to JP2011537137A priority patent/JPWO2011048803A1/ja
Publication of WO2011048803A1 publication Critical patent/WO2011048803A1/ja

Links

Images

Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/36—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
    • A61L27/3604—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix characterised by the human or animal origin of the biological material, e.g. hair, fascia, fish scales, silk, shellac, pericardium, pleura, renal tissue, amniotic membrane, parenchymal tissue, fetal tissue, muscle tissue, fat tissue, enamel
    • A61L27/3616—Blood, e.g. platelet-rich plasma
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/36—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
    • A61L27/3641—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix characterised by the site of application in the body
    • A61L27/3645—Connective tissue
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/40—Composite materials, i.e. containing one material dispersed in a matrix of the same or different material
    • A61L27/44—Composite materials, i.e. containing one material dispersed in a matrix of the same or different material having a macromolecular matrix
    • A61L27/46—Composite materials, i.e. containing one material dispersed in a matrix of the same or different material having a macromolecular matrix with phosphorus-containing inorganic fillers
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/50—Materials characterised by their function or physical properties, e.g. injectable or lubricating compositions, shape-memory materials, surface modified materials
    • A61L27/56—Porous materials, e.g. foams or sponges
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P19/00—Drugs for skeletal disorders
    • A61P19/04—Drugs for skeletal disorders for non-specific disorders of the connective tissue
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P19/00—Drugs for skeletal disorders
    • A61P19/08—Drugs for skeletal disorders for bone diseases, e.g. rachitism, Paget's disease
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L2430/00—Materials or treatment for tissue regeneration
    • A61L2430/02—Materials or treatment for tissue regeneration for reconstruction of bones; weight-bearing implants

Definitions

  • the present invention relates to a material for inducing regeneration of hard tissue such as bone and cartilage, which comprises platelet-rich plasma and gelatin ⁇ -TCP sponge.
  • autologous bone grafting has been performed in which bone is collected from its own healthy part and transplanted to the bone defect site for reconstruction of the bone defect site such as bone union at the fracture site or removal of a benign bone tumor.
  • the bone defect site such as bone union at the fracture site or removal of a benign bone tumor.
  • complications such as infection at the bone collection site, residual pain and nerve damage around the bone extraction area occur at a high rate of about 30%.
  • a large amount of autologous bone is required, so there may be a clinical problem of a defect in the autologous bone collection part.
  • Non-patent Document 1 a method has been developed in which autologous bone marrow mesenchymal stem cells are cultured and combined with an artificial bone and transplanted to a bone defect site, and a clinical application example has been reported (Non-patent Document 1).
  • the need for specialized facilities such as a clean room (cell processing center) capable of cell culture makes it virtually difficult to carry out in a city hospital, and it is also possible to obtain cancerous cells of multipotent mesenchymal cells.
  • There are various problems such as the risk and the fact that differentiation induction is not always perfect, and the versatility is low.
  • BMP-2 bone morphogenetic protein-2
  • Non-patent Documents 2 and 3 reports that inflammatory reaction was observed in the lumbar perivertebral tissue, and in cases where cervical spine fixation was performed, dyspnea due to laryngeal edema, dysphagia and abnormal swelling of the neck itself There have been reports that serious complications such as were observed (Non-patent Documents 2 and 3). As a cause of these, by administering a large amount of artificially produced growth factor, the growth factor diffuses from the administration site to the surrounding tissue, and as a result of inducing an antigen-antibody reaction, edema in soft tissues and important organs is caused. It is conceivable that a change has occurred. Furthermore, BMP-2 is expensive, and in addition to the cost of surgery, it costs several hundred thousand yen per person, which places a large financial burden on patients.
  • Platelet rich plasma (also referred to as Platelet Rich Plasma (PRP)) is platelet-rich plasma obtained by low speed centrifugation of peripheral blood to remove red blood cells.
  • PRP contains many growth factors such as platelet-derived growth factor (PDGF), transforming growth factor ⁇ (TGF- ⁇ ), fibroblast growth factor (FGF), and insulin-like growth factor (IGF) contained in platelets. It is known that these synergistic effects have effects such as promoting angiogenesis, osteogenesis, and wound healing. It has also been confirmed that an osteogenic effect is exhibited in a long bone or skull defect model by using PRP together with a suitable drug delivery system material such as gelatin hydrogel (Patent Document 1, Non-patent Document 4 and 5).
  • PDGF platelet-derived growth factor
  • TGF- ⁇ transforming growth factor ⁇
  • FGF fibroblast growth factor
  • IGF insulin-like growth factor
  • a scaffold with a three-dimensional structure to promote cell differentiation and induction is essential.
  • the object of the present invention is to provide a novel safety and practicable novel bone / cartilage and other hard tissue regeneration having a sustained release effect of platelet-rich plasma-derived growth factor and a good scaffold function of tissue regeneration. To provide various materials.
  • the inventors processed the gelatin which is excellent as a material for a growth factor drug delivery system and ⁇ -TCP granules which are bioabsorbable ceramics into a sponge shape, A gelatin- ⁇ -TCP sponge was used to prepare a material for inducing regeneration of hard tissue comprising Platelet Rich Plasma (PRP) purified from the patient's autologous blood. Then, it was verified that this material dramatically promotes bone formation using a rat spinal fixation model.
  • PRP Platelet Rich Plasma
  • the present invention has been made based on the above-mentioned findings, and provides a material for inducing hard tissue regeneration, which comprises platelet-rich plasma and gelatin ⁇ -TCP sponge.
  • Hard tissues targeted by the material of the present invention are bone / cartilage tissues and the like that require a scaffold for regeneration, and also include dental areas such as alveolar bone.
  • the material for inducing hard tissue regeneration of the present invention promotes osteogenesis and chondrogenesis.
  • the material for inducing hard tissue regeneration of the present invention also promotes angiogenesis.
  • the material for inducing regeneration of hard tissue of the present invention is suitably used for regeneration of hard tissues such as bones and cartilage requiring a scaffold since gelatin ⁇ -TCP sponge functions as a good cell scaffold for tissue regeneration.
  • the application site is not limited to hard tissues, but may be soft tissues in contact with hard tissues such as bone and cartilage.
  • soft tissues such as bone and cartilage.
  • tendon and ligament regeneration is induced by its angiogenesis promoting action. Therefore, the use for inducing regeneration of soft tissue in contact with such hard tissue is also included in the present invention.
  • the platelet-rich plasma used in the present invention is preferably derived from a subject to which the material for inducing hard tissue regeneration is applied.
  • the subject to which the material for inducing hard tissue regeneration of the present invention is applied is not limited to human but includes mammals in general.
  • the pore diameter of the gelatin ⁇ -TCP sponge used in the present invention is preferably about 10 to 500 ⁇ m, and the gelatin in the gelatin ⁇ -TCP sponge is preferably crosslinked.
  • the cross-linking is prepared by subjecting a composition containing ⁇ -TCP and gelatin to cross-linking and lyophilization, but either cross-linking or lyophilization may precede it, and the cross-linked composition may be lyophilized.
  • the freeze-dried composition may be crosslinked.
  • the PRP used in the present invention can be easily collected from the subject's own blood to which the material for inducing hard tissue regeneration is applied, there are no therapeutic ethical problems, and there are no viral infections associated with the use of blood products or It has the advantage of avoiding risks such as immune mismatches. Furthermore, the gelatin ⁇ -TCP sponge used in the present invention allows sustained release of components such as growth factors contained in PRP to promote osteogenesis, chondrogenesis, angiogenesis and a good cell scaffold for tissue regeneration. By acting as a bone, it enables remarkable bone regeneration.
  • FIG. 1 is a view schematically showing implantation between the 4 and 5 transverse processes in a rat spinal posterior lateral fixation model.
  • FIG. 2 is a sagittal reconstructed image of left and right 4, 5 lateral projections.
  • FIG. 3 is a graph showing bone mass between transverse processes.
  • FIG. 4 is a graph showing the results of a three-point bending test.
  • FIG. 5 shows a histologic image between the 4 and 5 lateral projections of the PRP sponge model. Intrachondral ossification-like changes are observed between the lateral processes.
  • FIG. 5 shows a histologic image between the 4 and 5 lateral projections of the PRP sponge model. Intrachondral ossification-like changes are observed between the lateral processes.
  • FIG. 5 shows a histologic image between the 4 and 5 lateral projections of the PRP sponge model. Intrachondral ossification-like changes are observed between the lateral processes.
  • FIG. 5 shows a
  • the present invention relates to a material for inducing hard tissue regeneration, comprising platelet-rich plasma (PRP) and gelatin beta-TCP sponge.
  • PRP platelet rich plasma
  • the “Platelet Rich Plasma (PRP)” according to the present invention is platelet-rich plasma obtained by low speed centrifugation of peripheral blood to remove erythrocytes.
  • PRP contains many growth factors such as platelet-derived growth factor (PDGF), transforming growth factor ⁇ (TGF- ⁇ ), stem cell-derived factor (SDF) -1 and insulin-like growth factor (IGF) contained in platelets.
  • PDGF platelet-derived growth factor
  • TGF- ⁇ transforming growth factor ⁇
  • SDF stem cell-derived factor
  • IGF insulin-like growth factor
  • the number of rotations and the time for efficiently removing blood cell components can be appropriately selected according to the type of centrifugal separator used. If necessary, platelets may be concentrated by removing the blood cell components and centrifuging again. Alternatively, PRP can also be prepared by a membrane-based blood separation device.
  • the PRP used in the present invention is preferably derived from the autologous blood of the subject in need of administration of the material for inducing hard tissue regeneration of the present invention.
  • platelet-rich plasma purified from allogeneic blood may be used in subjects with severe anemia or underlying diseases in which blood collection is difficult.
  • the gelatin ⁇ -TCP sponge used in the present invention is a porous spongy structure consisting of gelatin and ⁇ -TCP granules.
  • the gelatin used in the present invention is used as collagen or collagen which can be collected from any part of the body such as skin, bones and tendons of various animal species including cattle, pigs, fish etc.
  • the substance can be obtained by being denatured by various treatments such as alkaline hydrolysis, acid hydrolysis and enzymatic degradation.
  • the properties of gelatin vary depending on the material used and the processing method, but gelatin having any of the properties can be utilized as the gelatin ⁇ -TCP sponge material of the present invention.
  • isoelectric point, molecular weight, zeta potential and the like can be used as a scale indicating the properties of gelatin.
  • commercially available gelatins include Type A gelatin manufactured by Sigma and gelatin manufactured by Wako, and the zeta potential in an aqueous solution is as follows: Sigma type A gelatin: about 0 to about 5 mV Wako gelatin: about -5 to about -2mV
  • the zeta potential is a measure representing the degree of electrostatic charge of a substance (gelatin).
  • Particularly preferred gelatins used in the present invention have the following physical properties: An acidic gelatin obtained by alkaline hydrolysis treatment from collagen, The molecular weight is about 100,000 to about 200,000 daltons under non-reducing conditions of SDS-PAGE, The gelatin potential in aqueous solution is about -15 to about -20 mV.
  • acidic gelatin prepared by alkali treatment of bovine bone-derived type I collagen can be used, and it can also be obtained as a sample isoelectric point (IEP) 5.0 of Nitta Gelatin Co., Ltd.
  • the basic gelatin prepared by acid treatment can also be obtained as Sample IEP 9.0 of Nitta Gelatin Co., Ltd., but the zeta potential is largely different as follows.
  • the ⁇ -TCP (tricalcium phosphate) used in the present invention is a biodegradable ceramic which has conventionally been widely used as an artificial bone material.
  • the compressive strength of porous ⁇ -TCP is about 3 M pascal, which is weaker than that of living bone (about 7 M pascal in cancellous bone), but it can be said to be a strength sufficient for clinical use.
  • ⁇ -TCP is gradually decomposed in the living body to release calcium ions and phosphate ions, thereby realizing an environment in which osteoblasts can easily synthesize hydroxyapatite, which is a component of bone.
  • ⁇ -TCP not only serves as a carrier for a drug delivery system or as a scaffold for bone formation, but itself has a function of actively promoting osteogenesis, chondrogenesis, angiogenesis and the like.
  • ⁇ -TCP enhances the mechanical strength of the gelatin sponge obtained by mixing it with gelatin, and itself actively promotes osteogenesis, chondrogenesis, angiogenesis and the like to form a good scaffold material. It becomes.
  • the ⁇ -TCP used in the present invention may have any size, porosity, pore size and the like, and all types of ⁇ -TCP granules can be used.
  • commercially available ⁇ -TCP-100 (ground product): manufactured by Taihei Kagaku Sangyo Co., Ltd., Osferin (registered trademark): manufactured by Olympus, etc. can be used.
  • the ratio of gelatin to ⁇ -TCP in the gelatin ⁇ -TCP sponge of the present invention is 10: 1 to 1:10, preferably 5: 1 to 1: 5 by dry weight. .
  • the gelatin ⁇ -TCP sponge according to the present invention is in the form of a sponge having a large number of fine pores having an average pore size of 10 to 500 ⁇ m.
  • a structure having a large number of micropores when transplanted, surrounding cells can easily penetrate into the sponge and can play a role as a scaffold for tissue regeneration. Become. Furthermore, it becomes possible to supply sufficient nutrition and oxygen to the adhered cells, and the cells can be proliferated and differentiated normally.
  • the lower limit of the average pore diameter of the micro pores of the gelatin ⁇ -TCP sponge according to the present invention is 10 ⁇ m, and the upper limit is 500 ⁇ m. If it is less than 10 ⁇ m, cells can not enter into the inside of the support for regenerative medicine, cell adhesion is extremely poor, or adherent cells can not extend three-dimensionally, or if it exceeds 500 ⁇ m, the density of cells Is low and the tissue or organ can not be regenerated.
  • the preferred lower limit is 50 ⁇ m, and the preferred upper limit is 200 ⁇ m.
  • gelatin is cross-linked.
  • the moisture content is an index for evaluating the degree of crosslinking (crosslinking degree).
  • the moisture content is the weight percent of water in the sponge to the weight of the swollen gelatin beta-TCP sponge. The higher the water content, the lower the degree of crosslinking of the gelatin ⁇ -TCP sponge, and the more easily it is degraded. That is, the in vivo enzymatic degradability of the gelatin ⁇ -TCP sponge changes depending on the water content, and the value of the water content influences the sustained release (slow release) of PRP.
  • the gelatin ⁇ -TCP sponge of the present invention preferably has a water content of 90% to 99.8%. If the water content is less than 90%, in addition to the loss of flexibility suitable for transplantation, it takes a long time to biodegrade even if it is transplanted in vivo, and the physiologically active substance is not sustained-released and remains in the support. There are times when If it exceeds 99.8%, the support may not maintain its strength in the culture solution or buffer, or the bioactive substance may be released only for a short period of 1 to 3 days. A more preferable lower limit is 95%, and a more preferable upper limit is 98%.
  • the gelatin ⁇ -TCP sponge used in the present invention is obtained by subjecting a composition containing gelatin and ⁇ -TCP to crosslinking and lyophilization.
  • ⁇ -TCP is blended with gelatin.
  • the gelatin is then crosslinked.
  • the crosslinking method is not particularly limited, and examples thereof include vacuum thermal dehydration method, dry heat method, ⁇ -ray irradiation method, ultraviolet irradiation method, electron beam irradiation method, X-ray irradiation method, and a method using a crosslinking agent.
  • a method of using a crosslinking agent is preferable because crosslinking can be performed so as to obtain a uniform degree of crosslinking even in the case of crosslinking gelatin in a state of being once formed into a sponge shape as described later.
  • the crosslinking agent used is not particularly limited.
  • glutaraldehyde for example, water-soluble carbodiimides such as EDC, for example, propylene oxide, diepoxy compounds, hydroxyl group, carboxyl group, amino group, thiol group, imidazole group, etc. form a chemical bond Condensing agents (ethylene glycol diglycidyl ether, polyethylene glycol diglycidyl ether, polyglycerol polyglycidyl ether, glycerol polyglycidyl ether, hexamethylene diisocyanate, etc.) can be used.
  • Preferred is glutaraldehyde.
  • Crosslinking may be performed before lyophilization or after lyophilization. Specifically, for example, a gelatin aqueous solution containing .beta.-TCP is vigorously stirred and foamed by a homogenizer or the like, subjected to a crosslinking reaction, cast on a mold, frozen and then freeze-dried.
  • a sponge-like molded body is obtained, or a gelatin aqueous solution mixed with ⁇ -TCP is vigorously stirred and foamed by a homogenizer or the like, cast on a mold, frozen and then freeze-dried to form a sponge-like sponge A body is obtained, and the sponge-like molded body is crosslinked by immersion in a glutaraldehyde solution of an appropriate concentration for a certain period of time (see JP-A-2005-21147).
  • a sponge structure important as a scaffold material is formed by foaming with stirring and a lyophilization process. That is, innumerable ice crystals grown by the freezing step become pores upon lyophilization to give a porous sponge structure having desired porosity and pore diameter.
  • a thermal crosslinking treatment or the like may be performed before the treatment for the purpose of avoiding the swelling of the sponge-like structure at the initial stage of the treatment.
  • a crosslinking agent it is preferable to treat the reaction end to remove the toxicity.
  • the reaction end can be inactivated to remove toxicity by washing with a glycine aqueous solution or the like.
  • the gelatin ⁇ -TCP sponge may be formed into any shape, for example, cylindrical, prismatic, sheet, disc, sphere, particles and the like.
  • Columnar, prismatic, sheet-like or disc-like ones are usually used as the embedded pieces in many cases, or they can be finely crushed into particles.
  • spherical and particulate ones can also be administered by injection.
  • gelatin ⁇ -TCP sponge As the gelatin ⁇ -TCP sponge, a commercially available product (for example, ⁇ -TCP fortified gelatin sponge MedGel® Scaffold or MedGel® SP (Medgel)) may be used.
  • ⁇ -TCP fortified gelatin sponge MedGel® Scaffold or MedGel® SP Medgel
  • the material for inducing hard tissue regeneration of the present invention means a tissue having a hard intercellular substance including bone, cartilage and teeth.
  • the material for inducing hard tissue regeneration according to the present invention induces hard tissue regeneration by including PRP having an effect of promoting regeneration such as osteogenesis, chondrogenesis, angiogenesis and the like and gelatin ⁇ -TCP sponge excellent as a scaffold for tissue regeneration. It is used as a material. In particular, it is suitably used as a material for inducing regeneration of bone / cartilage tissue defects.
  • the material for inducing regeneration of hard tissue according to the present invention is suitably used as a material for inducing regeneration of bone / cartilage defects requiring a cell scaffold, but the application site is not limited to hard tissue, and bone -It may be soft tissue in contact with hard tissue such as cartilage. Specifically, even in the transplantation of soft tissue such as tendon and ligament in contact with bone and cartilage, regeneration of tendon and ligament is induced by PRP's angiogenesis promoting action. Therefore, the use for inducing regeneration of soft tissue in contact with such hard tissue is also included in the present invention.
  • the material for inducing regeneration of hard tissue of the present invention is widely usable in the medical and veterinary fields including orthopedics and dental areas, and the subject to which the application is applied is not limited to human but includes mammals in general.
  • the material for inducing regeneration of hard tissue of the present invention is prepared by blending PRP with the above-mentioned gelatin ⁇ -TCP sponge.
  • PRP-containing gelatin ⁇ -TCP sponge can be obtained, for example, by dropping PRP onto the above-described freeze-dried gelatin ⁇ -TCP sponge, or immersing gelatin ⁇ -TCP sponge in PRP to impregnate PRP in the sponge. You can get it.
  • This impregnation operation is usually completed in 15 minutes to 1 hour at 4-37 ° C., preferably 15-30 minutes at 4-25 ° C., during which the sponge swells with PRP and is contained in PRP.
  • PRP is immobilized in the gelatin ⁇ -TCP sponge by physical interaction by the growth factor etc.
  • the weight ratio of PRP to gelatin beta-TCP sponge (dry weight) is preferably in the range of about 1-fold to about 10000-fold. More preferably, the weight ratio of PRP to gelatin ⁇ -TCP sponge is about 2 times to about 5000 times, more preferably about 10 times to about 1000 times.
  • the gelatin ⁇ -TCP sponge may be formed into a desired shape such as a cylindrical shape, a prismatic shape, a sheet shape, a disk shape, a spherical shape, or a particle shape in accordance with the application site.
  • the dose of PRP in the material for inducing regeneration of hard tissue of the present invention can be appropriately adjusted according to the severity of the disease, the age of the subject, the weight of the subject, etc.
  • the dose is selected from the range of ⁇ 500 ml, preferably in the range of about 1 ⁇ 50 ml, which can be injected into the affected area or its surrounding area.
  • the material for inducing regeneration of hard tissue of the present invention may optionally contain other agents and pharmacologically acceptable carriers as appropriate.
  • agents and carriers include agents that promote angiogenesis and bone regeneration, osteoblasts activation or osteoclast inhibitors, scaffold carriers that promote cell proliferation and differentiation, or combinations thereof. .
  • the material for inducing hard tissue regeneration of the present invention has various effects included in PRP, since it has both the sustained release effect and the stabilizing effect of PRP. A small amount of function such as factor can be exerted for a long time. Therefore, in the locally administered site, the angiogenesis promoting function and the osteogenesis / chondrogenic function such as these growth factors are effectively exhibited.
  • the mechanism of this sustained release is based on the fact that various growth factors and the like contained in PRP are physically immobilized on gelatin ⁇ -TCP in the sponge.
  • the present inventors have attempted to control release using bioabsorbable polymer hydrogels such as growth factors, cytokines, monokines, lymphokines, and other physiologically active substances so far, and this allows physiology that can not be achieved with other materials.
  • the growth factors and the like contained in PRP are slowly released from gelatin ⁇ -TCP by the same mechanism. When immobilized on gelatin ⁇ -TCP, growth factors and the like are not released from the sponge.
  • the gelatin ⁇ -TCP sponge As the gelatin ⁇ -TCP sponge is degraded in vivo, the gelatin ⁇ -TCP molecule becomes water soluble, and along with it, the growth factors etc. immobilized on the gelatin ⁇ -TCP molecule become released. That is, the sustained release of growth factors and the like can be controlled by the degradation of gelatin ⁇ -TCP sponge.
  • the degradability of gelatin ⁇ -TCP sponge can be changed by adjusting the degree of crosslinking at the time of preparation of gelatin ⁇ -TCP sponge.
  • various growth factors and the like contained in PRP interact with gelatin ⁇ -TCP to improve their stability in the living body, for example, resistance to enzymatic degradation.
  • the gelatin ⁇ -TCP sponge disappears with the slow release of growth factors and the like, it has a feature that it does not physically inhibit the bone regeneration process by cell proliferation and differentiation.
  • blended with the material for induction of hard tissue regeneration of this invention contains various growth factors etc.
  • the inventors confirmed that the material for inducing hard tissue regeneration of the present invention has a remarkable bone regeneration effect.
  • involvement of angiogenesis has also been reported, and the tissue regeneration at the defect site is not only the effect of promoting osteogenesis and chondrogenesis but also various effects of PRP such as the effect of promoting angiogenesis. Promoted, good bone regeneration is achieved.
  • the material for inducing regeneration of hard tissue of the present invention is mainly composed of cross-linked gelatin ⁇ -TCP sponge, and is composed of a substrate having a large number of fine pores of a fixed pore size. It can be easily infiltrated and can serve as a scaffold for regeneration.
  • the PRP component is electrostatically bonded to the surface of the base material and released slowly in accordance with the decomposition of the base material, it is possible to keep the PRP component acting on cells over a long period of time, bone The formation effect can be dramatically increased.
  • the sustained release rate can be adjusted by adjusting the degree of crosslinking of the gelatin. That is, the material for inducing regeneration of hard tissue of the present invention can simultaneously play two roles of a scaffold material for regeneration and a regeneration promoter.
  • Example 1 Preparation of platelet-rich plasma (PRP) Preparation SD rats (male, 8 weeks old, 240 to 290 g, Shimizu experimental material, Kyoto), 250 ⁇ L of pentobarbital was injected intraperitoneally for general anesthesia. The chest was opened, and 5 CC blood was collected from the heart using a 21 G needle. The blood was transferred to a 15 cc centrifuge tube in which 2 cc of ACD-A solution (W / V%: citric acid 0.85, trisodium citrate 2.32, glucose 2.59) had been placed. The centrifuge tube was centrifuged at 1500 rpm for 10 minutes using a centrifuge (KN-70, manufactured by Kubota Seisakusho).
  • KN-70 manufactured by Kubota Seisakusho
  • the clear serum portion in the upper layer was aspirated using a 14 G perfusion needle and transferred to another centrifuge tube. Furthermore, it centrifuged at 3000 rotations for 10 minutes. The upper serum portion was aspirated with 200 ⁇ L remaining using a 14 G perfusion needle, and the remaining solution was agitated to obtain 200 ⁇ L of platelet-rich plasma (PRP).
  • PRP platelet-rich plasma
  • the resulting 200 ⁇ L of PRP is impregnated into a total of 20 mg of gelatin ⁇ -TCP sponge ( ⁇ -TCP reinforced gelatin sponge MedGel® Scaffold (Medgel)) cut into 2 mm cubes and left overnight at 4 ° C. did.
  • PBS Phosphate buffer saline
  • Rat spinal posterior lateral fixation model SD rats male, 8 weeks old, 240 to 290 g, Shimizu experimental material, Kyoto
  • a 40 mm longitudinal incision was made in the back midline skin.
  • a 25 mm longitudinal incision was made in the paraspinal muscle at a position of 5 mm from the middle to the left and right to expose the lateral processes of the fourth and fifth lumbar vertebrae (hereinafter referred to as 4.5 lateral processes).
  • PRP-impregnated gelatin ⁇ -TCP sponge hereinafter PRP sponge
  • PBS phosphate buffer saline
  • MedGel® Scaffold Medgel
  • 3 PRP alone
  • 4 Autologous iliac, with no grafting group, a total of 5 groups were studied.
  • PRP single model of 3 only 200 ⁇ L of PRP was dispersed between the lateral projections.
  • the autologous ilium of 4 was collected at a size of 5 ⁇ 2 ⁇ 2 mm at the iliac tip on the same side as the planned implantation site.
  • FIG. 1 schematically shows implantation between the 4 and 5 lateral processes in the rat spinal posterior lateral fixation model.
  • a three-point bending test of the lumbar spine was performed using a three-point bending tester (Tokyo Testing Machine, LSC-200 / 30-2). Place the lumbar spine on top of the jig with a width of 40 mm, and use a 5 mm diameter cylindrical jig at a speed of 10 mm / min in front of the 4th / 5 lumbar disc I applied pressure. The loads at a displacement distance of 10 mm were compared in each group. Next, tissue fixation was performed at 4 ° C. for 1 week with 4% paraformaldehyde.
  • Results Figure 2 shows the results of sagittal reconstructed images of the left and right 4, 5 lateral projections.
  • PRP sponge model and the autologous iliac model, there was a tendency of union between the left and right lateral processes.
  • PRP sponge model a marked increase in the anterior-posterior diameter was observed as compared to the autologous iliac model.
  • PBS sponge PRP alone and no placement model, there was no increase between transverse processes, and no tendency to bone union was observed.
  • FIG. 3 shows the bone mass between the left and right 4, 5 lateral projections. Significant increase in bone mass was observed in the PRP sponge model compared to the other models.
  • FIG. 4 shows the results of the three-point bending test.
  • an average strength of 59.6 times was observed compared to the other groups.
  • FIG. 5 shows a tissue image between the 4 and 5 horizontal protrusions of the PRP sponge model.
  • an image in which bone matrix and hyaline cartilage components were mixed was shown, and a phenomenon similar to endochondral ossification had occurred.
  • Safranin O staining revealed that a part of the hyaline cartilage had a red staining image, which proved to be a cartilage matrix.
  • the histology (8 weeks after surgery) between the 4 and 5 horizontal processes of the non-installation group is shown.
  • FIG. 5 although a ligament component is observed between the lateral processes, no bone and cartilage components are recognized.
  • the acid-treated gelatin was dissolved in distilled water to prepare a 3 wt% gelatin aqueous solution.
  • aqueous gelatin solution thus obtained, 1.8 g of ⁇ -TCP was added, 0.4 mL of 0.16 wt% aqueous glutaraldehyde aqueous solution was added, and the mixture was foamed by stirring with a homogenizer at 5000 rpm for 3 minutes.
  • the foamed gelatin ⁇ -TCP aqueous solution is cast in a mold of 12 cm ⁇ 12 cm, allowed to stand at 4 ° C for 12 hours for crosslinking reaction, frozen at -40 ° C and then freeze-dried to give a sponge body I got
  • the obtained sponge body was washed 3 times with a 0.1 N aqueous glycine solution for 1 hour, further washed with water, and again freeze-dried to obtain a gelatin ⁇ -TCP sponge.
  • the platelet-rich plasma used in the present invention can be purified only by centrifuging the subject's own blood to which the material for inducing hard tissue regeneration is applied, so that it can be carried out at multiple facilities without the need for special facilities or equipment. It is.
  • platelet-rich plasma derived from autologous blood is used, the possibility of occurrence of side effects is extremely low as compared with recombinant growth factor.
  • the gelatin ⁇ -TCP sponge uses only materials used in clinical practice and is highly safe for the human body, the material for inducing hard tissue regeneration of the present invention can be expected to have extremely rapid clinical application.
  • the spread of the present invention not only dramatically reduces the need for autologous bone collection that has conventionally been generally performed, but also enables early loading and early rehabilitation by the osteogenic ability promoting action. The benefits are immeasurable.

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Dermatology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Transplantation (AREA)
  • Oral & Maxillofacial Surgery (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Materials Engineering (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Composite Materials (AREA)
  • Inorganic Chemistry (AREA)
  • Vascular Medicine (AREA)
  • Dispersion Chemistry (AREA)
  • Physical Education & Sports Medicine (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Orthopedic Medicine & Surgery (AREA)
  • Rheumatology (AREA)
  • Materials For Medical Uses (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)

Abstract

本発明は、多血小板血漿とゼラチンβ-TCPスポンジを含み、血管新生、骨新生、軟骨新生等を促進することを特徴とする、硬組織再生誘導用材料に関する。

Description

硬組織再生誘導用材料
　本発明は、多血小板血漿とゼラチンβ-TCPスポンジを含む、骨・軟骨等の硬組織再生誘導用材料に関する。
　従来、骨折部の骨癒合や良性骨腫瘍切除後などの骨欠損部の再建には、自己の健常な部分から骨を採取し骨欠損部位に移植する、自家骨移植が行われている。しかし、健常な部分に侵襲を加えるため、骨採取部位の感染や疼痛の遺残、採骨部周辺の神経損傷など、合併症が約３割と高率に発生する。また、骨癒合範囲や骨欠損が大きい症例では、大量の自家骨が必要となるため、自家骨採取部の欠損が臨床上問題となる場合もある。
　こうした自家骨移植の回避又は自家骨量の不足を補うために、リン酸カルシウムやβ-tricalcium　phosphate(β-TCP)を用いた人工骨が使用されてきた。しかし、人工骨自体には骨誘導能がないため、使用できる部位が、骨再生環境の良好な、比較的小さな骨欠損に限られることや、自家骨に比べて骨形成能が劣るため、力学的な強度が得られるまでに時間を要し、術後長期にわたって荷重制限や安静を要することが大きな問題であった。このような背景から、広範囲にわたる骨癒合や骨欠損に対しても応用可能な骨誘導能を伴った骨再生技術が広く研究されている。
　近年、自己の骨髄間葉系幹細胞を培養し、人工骨と組み合わせて骨欠損部位に移植する手法が開発され、臨床応用例が報告がされている（非特許文献１）。しかし、細胞培養ができるクリーンルーム(セルプロセッシングセンター)といった専門施設が必要なため、市中病院での実施が事実上困難であること、また、多分化能を持った間葉系細胞の癌化のリスクがあること、分化誘導が必ずしも完璧でないことなど、さまざまな問題が山積しており、汎用性は低い。
　また、成長因子を用いた骨再生治療として、遺伝子組み換えにより生産されたbone　morphogenetic　protein-2　(BMP-2)が、1997年に欧米のFood　and　Drug　Administrationで椎体間固定術での使用が認可され、米国では臨床応用が行われている。しかし、近年、その有効性と安全性が疑問視されている。例えば、BMP-2を用いた腰椎椎体間固定では、固定椎体や移植骨の骨吸収が高頻度に生じ、骨癒合率が大幅に減少したとの報告がある。また、軟部組織の評価に有用なMRIで、腰椎周囲組織に炎症反応を認めたとの報告や、頚椎の固定術を行った症例で、喉頭浮腫による呼吸困難、嚥下障害及び頚部自体の異常な腫脹といった重篤な合併症を認めたとの報告がある（非特許文献２及び３）。これらの原因として、人工的に生産された成長因子を大量に投与することにより、成長因子が投与部位から周囲組織に拡散し、抗原抗体反応を誘発した結果、軟部組織及び重要臓器での浮腫性変化が生じたことが考えられる。さらに、BMP-2は高価であり、手術費用に加えて、一人あたり数十万円の費用が上乗せされるため、患者にとって金銭的負担が大きい。
　多血小板血漿（PRP（Platelet　Rich　Plasma）とも称される）は、末梢血を低速で遠心分離して赤血球を除くことにより得られる濃厚血小板血漿である。PRPには、血小板中に含まれる血小板由来成長因子（PDGF）、トランスホーミング成長因子β（TGF-β）、繊維芽細胞成長因子（FGF）、インスリン様成長因子（IGF）などの成長因子が多く含まれており、これらの相乗的作用により血管新生、骨新生、創傷治癒の促進等の効果を有することが知られている。PRPを、ゼラチンハイドロゲルなどの適切なドラッグデリバリーシステム材料と併用することで、長管骨や頭蓋骨欠損モデルにおいて骨新生作用を発揮することも確認されている（特許文献１、非特許文献４及び５）。
　しかし、広範囲にわたる骨欠損や、解剖学的に癒合していない骨折、及び脊椎骨を癒合させる脊椎固定術において、充分な骨形成を得るためには、PRPの効果だけでは不十分であり、骨芽細胞の分化・誘導を促すための３次元構造を持った足場が必要不可欠である。
特開２００５－２１１４７７号 特開２００４－１２３５７６号
Morishita　T,　et.,　Artif.　Organs,　2006 Lohn　McClellan,　et　al.,　J.　Spinal　Disord.　Tech.,　2006 Ben　B,　et　al.,　Spine,　2006 Hokugo　A,　et　al.,　Tissue　Eng.,　2005 Hokugo　A,　et　al.,　Oral　Surg.　Oral　Med.　Oral　Pathol.　Oral　Radiol.　Endod.,　2007
本発明の課題は、多血小板血漿由来成長因子の徐放効果と、組織再生の良好な足場機能を合わせ持つ、安全性及び実用性に優れた、骨・軟骨等の硬組織再生のための新規な材料を提供することにある。
　発明者らは、上記の課題を達成するために、成長因子のドラッグデリバリーシステムのための材料として優れているゼラチンと生体吸収分解性を有するセラミックスであるβ-TCP顆粒をスポンジ状に加工した、ゼラチンβ-TCPスポンジに、患者の自己血液から精製した多血小板血漿（Platelet　Rich　Plasma：PRP）を含んでなる硬組織再生誘導用材料を作製した。そして、この材料が骨形成を飛躍的に促進させることを、ラット脊椎固定モデルを用いて検証した。
　本発明は、上記の知見に基づいてなされたものであり、多血小板血漿及びゼラチンβ-TCPスポンジを含む、硬組織再生誘導用材料を提供する。
　本発明の材料の対象となる硬組織は、再生に足場を必要とする骨・軟骨組織等であり、歯槽骨等の歯科領域も含む。
　本発明の硬組織再生誘導用材料は、骨新生及び軟骨新生を促進する。また、本発明の硬組織再生誘導用材料は、血管新生も促進する。
　本発明の硬組織再生誘導用材料は、ゼラチンβ-TCPスポンジが組織再生のための良好な細胞足場として機能するため、足場を必要とする骨・軟骨等の硬組織の再生に好適に用いられる。しかしながら、その適用部位は硬組織に限定されず、骨・軟骨等の硬組織に接した軟組織であってもよい。具体的には、骨・軟骨に接した腱や靭帯等軟組織の移植手術においても、その血管新生促進作用により、腱や靭帯再生を誘導する。したがって、そのような硬組織に接した軟組織の再生を誘導するための使用もまた、本発明に含まれる。
　本発明で用いられる多血小板血漿は、硬組織再生誘導用材料の適用を受ける対象由来のものが好ましい。なお、本発明の硬組織再生誘導用材料の適用を受ける対象はヒトに限定されず、哺乳動物全般が含まれる。
　本発明で用いられるゼラチンβ-TCPスポンジの孔径は、10～500μm程度であることが好ましく、ゼラチンβ-TCPスポンジ中のゼラチンは架橋されたものであることが好ましい。前記架橋は、β-TCPとゼラチンを含む組成物に、架橋と凍結乾燥を施して作製されるが、架橋と凍結乾燥はいずれが先でもよく、架橋を施した組成物を凍結乾燥してもよいし、凍結乾燥した組成物に架橋を施してもよい。
　本発明で用いられるPRPは硬組織再生誘導用材料の適用を受ける対象自身の血液から簡単に採取することができるため、治療上の倫理的問題も全くなく、血液製剤の使用に伴うウイルス感染や免疫不適合などのリスクを回避しうるという長所を有する。さらに、本発明で用いられるゼラチンβ-TCPスポンジは、PRPに含まれる成長因子等の成分を徐放させて、骨新生、軟骨新生、血管新生を促すとともに、組織再生のための良好な細胞足場として機能することで、顕著な骨再生を可能とする。
図１は、ラット脊椎後側方固定モデルにおける4・5横突起間への移植を模式的に示した図である。 図２は、左右4・5横突起の矢状断再構成画像である。 図３は、横突起間の骨量を示すグラフである。 図４は、3点曲げ試験の結果を示すグラフである。 図５は、PRPスポンジモデルの4・5横突起間の組織像を示す。横突起間に軟骨内骨化様の変化を認める。一方、〔比較〕においては、無設置群(術後8週間)‐横突起間には靭帯成分を認めるが、骨・軟骨成分は認めない。矢印は、いずれも左：第４横突起、右：第５横突起。上図右の画像はサフラニンＯ染色象。
　本明細書は、本願の優先権の基礎である特願２００９－２４１０４１号の明細書に記載された内容を包含する。
　本発明は、多血小板血漿（PRP）とゼラチンβ-TCPスポンジを含む、硬組織再生誘導用材料に関する。
１．多血小板血漿（PRP）
　本発明に係る「多血小板血漿（Platelet　Rich　Plasma：PRP）」とは、末梢血を低速で遠心分離して赤血球を除くことにより得られる濃厚血小板血漿である。PRPには、血小板中に含まれる血小板由来成長因子（PDGF）、トランスホーミング成長因子β（TGF-β）、幹細胞由来因子（SDF）-1、インスリン様成長因子（IGF）などの成長因子が多く含まれており、これらの相乗的作用により血管新生、骨新生、軟骨新生、創傷治癒の促進等の効果を有することが知られている。
　PRP調製における遠心条件については、用いる遠心分離器の種類に応じて、血球成分を効率的に除去する回転数及び時間を適宜選択することができる。必要であれば、血球成分を除去した後、再度遠心分離することにより血小板を濃縮してもよい。あるいは、PRPは膜を用いた血液分離装置により調製することもできる。
　本発明で用いられるPRPは、本発明の硬組織再生誘導用材料の投与を必要とする対象自身の自己血由来であることが好ましい。但し、重度の貧血や採血が困難である基礎疾患を有する対象においては、他家血から精製した多血小板血漿を使用してもよい。
２．ゼラチンβ-TCPスポンジ
　本発明で使用されるゼラチンβ-TCPスポンジとは、ゼラチンとβ-TCP顆粒からなる多孔質のスポンジ状構造物のことである。
２．１　ゼラチン
　本発明で使用されるゼラチンは、牛、豚、魚類などを始めとする各種の動物種の皮膚、骨、腱などの身体のあらゆる部位から採取できるコラーゲン、あるいはコラーゲンとして用いられている物質から、アルカリ加水分解、酸加水分解、及び酵素分解等の種々の処理によって変性させて得ることができる。ゼラチンの性質は、用いる材料及び処理方法により様々であるが、そのいずれの性質をもつゼラチンも本発明のゼラチンβ-TCPスポンジ材料として利用することができる。
　ゼラチンの性質を表す尺度としては、例えば、等電点、分子量、ジータ電位などがある。例えば、市販のゼラチンとしては、シグマ社製タイプＡゼラチン、和光社製ゼラチンがあり、水溶液中のジータ電位が以下のとおりである：
　シグマ社製タイプＡゼラチン：約0～約5mV
　和光社製ゼラチン：約-5～約-2mV
ジータ電位は、物質（ゼラチン）の静電的な荷電の程度を表す尺度である。
　本発明で用いられる特に好ましいゼラチンは、以下の物性：
コラーゲンからのアルカリ加水分解処理によって得られる、酸性ゼラチンであり、
分子量が、SDS-PAGEの非還元条件下で約10～約20万ダルトンであり、
水溶液中のジータ電位が、約-15～約-20mVである
を有するゼラチンである。
　また好ましくは、ウシの骨由来のＩ型コラーゲンをアルカリ処理して調製した酸性ゼラチンを用いることができ、新田ゼラチン社の試料等電点（IEP）5.0として入手することもできる。なお、酸処理して調製した塩基性ゼラチンは同じく新田ゼラチン社の試料IEP　9.0として入手することができるが、ジータ電位は以下のように大きく相違する。
　酸性ゼラチン　（新田ゼラチン社試料IEP　5.0）：約-15～約-20mV
　塩基性ゼラチン　（新田ゼラチン社試料IEP　9.0）：約+12～約+15mV
２．２　β-TCP（β-tricalcium　phosphate）
　本発明で用いられるβ-TCP（リン酸三カルシウム）は、従来より人工骨材料として汎用されている生分解性セラミックスである。多孔性β-TCPの圧縮強度は3M　パスカル程度で、生体骨（海綿骨で７Ｍパスカル程度）よりは弱いものの、臨床使用には十分な強度といえる。さらに、β-TCPは生体内で徐々に分解してカルシウムイオンとリン酸イオンを放出し、骨芽細胞による、骨の構成成分であるハイドロキシアパタイト合成が容易な環境を実現する。つまり、β-TCPはドラッグデリバリーシステムの担体や骨形成の足場としてだけでなく、それ自体が骨新生、軟骨新生、血管新生等を積極的に促進させる機能を有する。かくして、β-TCPは、ゼラチンと混合されることで得られるゼラチンスポンジの力学強度を高めるとともに、それ自体も骨新生、軟骨新生、血管新生等を積極的に促進することで、良好な足場材料となる。本発明で用いられるβ-TCPは、そのサイズ、気孔率、孔サイズなどはどのようなものであってもよく、全ての種類のβ-TCP顆粒を用いることができる。例えば、市販のβ-TCP-100（粉砕品）：太平化学産業株式会社製、オスフェリン（登録商標）：オリンパス製等を用いることができる。
２．３　ゼラチンβ-TCPスポンジの構造
　本発明のゼラチンβ-TCPスポンジにおけるゼラチンとβ-TCPの比率は、乾燥重量で10：1～1：10、好ましくは5：1～1：5である。
　本発明に係るゼラチンβ-TCPスポンジは、平均孔径が10～500μmである多数の微細小孔を有するスポンジ状のものである。このように多数の微細小孔を有する構造であることにより、移植した場合に、周辺の細胞がスポンジ内に容易に侵入することができ、組織再生の足場材料としての役割を果たすことが可能となる。更に、接着した細胞へ充分な栄養と酸素を供給することが可能となり、細胞を正常に増殖、分化させることができる。
　本発明に係るゼラチンβ-TCPスポンジの微細小孔の平均孔径の下限は10μm、上限は500μmである。10μm未満であると、再生医療用支持体の内部に細胞が侵入できず細胞接着性が極端に劣ったり、接着した細胞が三次元的に伸展できなかったりし、500μmを超えると、細胞の密度が低くなり組織又は器官を再生できない。好ましい下限は50μm、好ましい上限は200μmである。
　本発明のゼラチンβ-TCPスポンジにおいて、ゼラチンには架橋が施されている。架橋の度合（架橋度）を評価する指標として含水率がある。含水率は、膨潤ゼラチンβ-TCPスポンジの重量に対するスポンジ中の水の重量パーセントである。含水率が大きければゼラチンβ-TCPスポンジの架橋度は低くなり、分解されやすくなる。つまり、ゼラチンβ-TCPスポンジの生体内での酵素分解性は、この含水率によって変化し、含水率の値がPRPの徐放（徐々に放出）を左右する。
　本発明のゼラチンβ-TCPスポンジは、含水率90％～99.8％であることが好ましい。含水率が90％未満であると、移植に適する柔軟性を損なうことに加え、生体内に移植しても生分解に長時間を要し、生理活性物質が徐放されず支持体内に留まってしまうことがある。99.8％を超えると、支持体が培養液やバッファー中で強度を保つことができなかったり、1～3日間という短い期間しか生理活性物質が徐放されなかったりすることがある。より好ましい下限は95％、より好ましい上限は98％である。
２．４　ゼラチンβ-TCPスポンジの作製方法
　本発明で使用されるゼラチンβ-TCPスポンジは、ゼラチンとβ-TCPを含む組成物に、架橋と凍結乾燥を施して得られる。
　具体的には、まず、ゼラチンにβ-TCPを配合する。次いで、ゼラチンに架橋を導入する。架橋方法は特に限定されず、例えば、真空熱脱水法、乾熱法、γ線照射法、紫外線照射法、電子線照射法、Ｘ線照射法、架橋剤を用いる方法等が挙げられる。なかでも、後述するようにいったんスポンジ状に成形した状態のゼラチンを架橋する場合であっても内部にまで均一の架橋度となるように架橋できることから架橋剤を用いる方法が好適である。
　用いられる架橋剤は特に限定されず、例えばグルタルアルデヒド、例えばEDC等の水溶性カルボジイミド、例えばプロピレンオキサイド、ジエポキシ化合物、水酸基、カルボキシル基、アミノ基、チオール基、イミダゾール基などの間に化学結合を作る縮合剤（エチレングリコールジグリシジルエーテル、ポリエチレングリコールジグリシジルエーテル、ポリグリセロールポリグリシジルエーテル、グリセロールポリグリシジルエーテル、ヘキサメチレンジイソシアネート等）を用いることができる。好ましいものは、グルタルアルデヒドである。
　架橋は、凍結乾燥前に行っても、凍結乾燥後に行ってもよい。具体的には、例えば、β-TCPを配合したゼラチン水溶液を、ホモジナイザー等により激しく攪拌して発泡させた後、架橋反応を行った後、型枠に流延し、凍結後更に凍結乾燥してスポンジ状の成形体を得るか、あるいはβ-TCPを配合したゼラチン水溶液を、ホモジナイザー等により激しく攪拌して発泡させた後、型枠に流延し、凍結後更に凍結乾燥してスポンジ状の成形体を得、このスポンジ状成形体を適当な濃度のグルタルアルデヒド溶液に一定時間浸漬することにより架橋を施す（特開２００５－２１１４７７号参照）。
　アミノ基と反応するような、例えば、グルタルアルデヒドによる架橋反応を停止させるには、エタノールアミン、グリシン等のアミノ基を有する低分子物質に接触させるか、あるいは、pH2.5以下の水溶液を添加すればよい。反応に用いられた架橋剤及び低分子物質を完全に除去する目的で、得られたゼラチンβ-TCPスポンジは、蒸留水、エタノール、2-プロパノール、アセトン等により洗浄し、再度凍結乾燥してもよい。
　足場材料として重要なスポンジ構造は、攪拌による発泡と、凍結乾燥工程によって形成される。すなわち、凍結工程によって成長した無数の氷の結晶が、凍結乾燥によって気孔となり、所望の気孔率と気孔径を有する多孔質スポンジ構造を与える。
　なお、グルタルアルデヒド等の架橋剤処理において、処理の初期にスポンジ状構造体が膨潤してしまうことを避ける目的で、処理前に熱架橋処理等を施しておいてもよい。また、架橋剤による架橋を行った場合には、反応末端を処理して毒性を除去することが好ましい。例えば、グルタルアルデヒド処理後には、グリシン水溶液等を用いて洗浄することにより、反応末端を失活させて毒性を除去することができる。
　ゼラチンβ-TCPスポンジはいかなる形状に成形してもよく、例えば、円柱状、角柱状、シート状、ディスク状、球状、粒子状などに成形できる。円柱状、角柱状、シート状、ディスク状のものは、通常埋込片として用いられることが多く、あるいは細かく砕いて粒子状にして用いることも可能である。また、球状、粒子状のものは注射投与も可能である。
　なお、ゼラチンβ-TCPスポンジは市販品（例えば、β-TCP強化型ゼラチンスポンジ　MedGel(登録商標)　ScaffoldあるいはMedGel(登録商標)　SP（メドジェル））を用いてもよい。
３．本発明の硬組織再生誘導用材料
　本発明にかかる「硬組織」とは、骨、軟骨、歯を含む硬い細胞間物質を持つ組織を意味する。本発明の硬組織再生誘導用材料は、骨新生や軟骨新生、血管新生等の再生促進効果をもつPRPと、組織再生の足場として優れたゼラチンβ-TCPスポンジを含むことで、硬組織再生誘導用材料として用いられる。とくに、骨・軟骨組織欠損部の再生誘導用材料として好適に用いられる。
　前述のとおり、本発明の硬組織再生誘導用材料は、細胞足場を必要とする骨・軟骨欠損部の再生誘導用材料に好適に用いられるが、その適用部位は硬組織に限定されず、骨・軟骨等の硬組織に接した軟組織であってもよい。具体的には、骨・軟骨に接した腱や靭帯等軟組織の移植手術においても、PRPの血管新生促進作用により、腱や靭帯の再生を誘導する。したがって、そのような硬組織に接した軟組織の再生を誘導するための使用もまた、本発明に含まれる。
　本発明の硬組織再生誘導用材料は、整形外科、歯科領域を含む医学・獣医学分野において広く使用可能であり、その適用を受ける対象はヒトに限定されず、哺乳動物全般が含まれる。
　本発明の硬組織再生誘導用材料は、上記したゼラチンβ-TCPスポンジにPRPを配合して調製される。PRP含有ゼラチンβ-TCPスポンジは、例えば、上記の凍結乾燥したゼラチンβ-TCPスポンジにPRPを滴下するか、あるいはゼラチンβ-TCPスポンジをPRP中に浸漬させ、スポンジ内にPRPを含浸させることにより得ることができる。この含浸操作は、通常、4～37℃で15分間～1時間、好ましくは4～25℃で15～30分間で終了し、その間にスポンジはPRPで膨潤し、PRP中に含まれるの成長因子等がスポンジ内のゼラチン分子と相互作用することによって、成長因子等がゼラチン分子と複合体を形成することで、PRPがゼラチンβ-TCPスポンジ内に物理的相互作用によって固定される。PRPとゼラチン分子との間の複合体の形成には、両者の間の静電的相互作用だけでなく、疎水結合、水素結合等の他の相互作用も大きく寄与していると考えられる。
　ゼラチンβ-TCPスポンジ（乾燥重量）に対するPRPの重量比は約１倍～約10000倍の範囲内であることが好ましい。より好ましくは、ゼラチンβ-TCPスポンジに対してPRPは約2倍～約5000倍の重量比であり、さらに好ましくは約10倍～約1000倍の重量比である。
　本発明の硬組織再生誘導用材料は、患部に直接包埋（適用）され、それぞれの用途に応じて適宜剤型を工夫することができる。すなわち、ゼラチンβ-TCPスポンジを、その適用部位に合わせて、円柱状、角柱状、シート状、ディスク状、球状、粒子状など、所望の形態に成形すればよい。
　本発明の硬組織再生誘導用材料中のPRPの用量は、疾患の重篤度、対象の年齢、体重等により適宜調製することができるが、通常ヒトの場合であれば、成人患者当たり約0.1～約500ｍｌの範囲、好ましくは、約1～約50ｍｌの範囲から投与量が選択され、これを患部又はその周辺部位に注入することができる。また１回の投与で効果が不十分であった場合は、該投与を複数回行うことも可能である。
　本発明の硬組織再生誘導用材料は、必要に応じて、適宜他の薬剤や薬理学的に許容しうる担体を含有していてもよい。そのような薬剤や担体としては、血管新生や骨再生を促進する薬剤、骨芽細胞の活性化又は破骨細胞の抑制剤、細胞の増殖分化を促す足場担体、あるいはそれらの組合せ等が挙げられる。
４．本発明の硬組織再生誘導用材料の効果
４．１　PRP徐放性効果
　本発明の硬組織再生誘導用材料は、PRPの徐放性効果と安定化効果を併せ持つため、PRPに含まれる各種成長因子等の機能を少量で長時間にわたって発揮し得る。そのため、局所投与した部位において、これらの成長因子等の血管新生促進機能及び骨新生・軟骨新生機能が効果的に発揮される。
　この徐放のメカニズムは、PRPに含まれる各種成長因子等が、スポンジ内のゼラチンβ-TCPに物理的に固定化されていることに基づく。本発明者らは、これまで、成長因子、サイトカイン、モノカイン、リンホカイン、その他の生理活性物質などの生体吸収性高分子ハイドロゲルを用いた徐放化を試み、これにより他の材料では達成できない生理活性を有した成長因子等の徐放化とその徐放期間のコントロールに成功してきた。本発明においては、PRPに含まれる成長因子等が同様のメカニズムによってゼラチンβ-TCPから徐放されると考えられる。ゼラチンβ-TCPに固定化された状態では、成長因子等はスポンジから放出されない。生体内でゼラチンβ-TCPスポンジが分解されるにつれて、ゼラチンβ-TCP分子が水可溶性となり、それに伴って、ゼラチンβ-TCP分子に固定化されている成長因子等が放出されるようになる。すなわち、ゼラチンβ-TCPスポンジの分解によって、成長因子等の徐放性を制御することができる。ゼラチンβ-TCPスポンジの分解性は、ゼラチンβ-TCPスポンジ作製時における架橋程度を調節することにより変えることができる。また、PRPに含まれる各種成長因子等がゼラチンβ-TCPと相互作用することによって、これらの生体内での安定性、例えば酵素分解抵抗性などが向上する。また、成長因子等の徐放化に伴ない、ゼラチンβ-TCPスポンジは消失するため、細胞の増殖分化による骨再生過程を物理的に阻害しないという特徴を持つ。
４．２　血管新生促進及び骨新生・軟骨新生促進効果
　本発明の硬組織再生誘導用材料に配合されるPRPは、各種成長因子等を含み、血管新生促進効果、骨新生促進効果、軟骨新生促進効果、創傷治癒促進効果、皮膚潰瘍治療効果等のさまざまな効果を有する（前掲）。
　後述する実施例に示すように、発明者らは、本発明の硬組織再生誘導用材料が顕著な骨再生作用を有することを確認した。骨形成には、血管新生の関与も報告されており、骨新生・軟骨新生促進効果のみならず、血管新生促進効果等、PRPの有する種々の効果が寄与することで、欠損部における組織再生が促進され、良好な骨再生が達成される。
４．３　足場材料としての効果
　本発明の硬組織再生誘導用材料は、架橋されたゼラチンβ-TCPスポンジを主体とし、一定の孔径の多数の微細小孔を有する基材からなることにより細胞が容易に浸入することができ、再生の足場材料としての役割を果たすことができる。また、基材の表面にはPRP成分が静電結合しており基材の分解に合わせて徐放されることから、長期間に渡って細胞に該PRP成分を作用させ続けることができ、骨形成効果を飛躍的に増大させることができる。この徐放速度は、ゼラチンの架橋度を調整することにより調節することが可能である。即ち、本発明の硬組織再生誘導用材料は、再生のための足場材料と再生促進剤の２つの役割を同時に果たし得るものである。
　以下に実施例により本発明をより詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例により限定されるものではない。
実施例
１．多血小板血漿の（PRP）調製
　SDラット(雄性、8週齢、240～290g、清水実験材料、京都)、250μLのペントバルビタールを腹腔内注射し全身麻酔を行った。開胸し、21G針を用いて心臓から5CCの採血を行った。あらかじめACD-A液(W/V%:　クエン酸0.85、クエン酸三ナトリウム2.32、グルコース2.59)を2CC入れておいた15　cc遠心チューブに、血液を移した。遠心チューブを、遠心分離機(KN-70、久保田製作所製)を用いて1500回転で10分間遠心分離した。遠心分離後、上層にある透明な血清部分を、14Gサーフロー針を用いて吸引し、別の遠心チューブに移した。さらに、3000回転で10分間遠心分離した。上層の血清部分を、14Gサーフロー針を用いて、200μL残して吸引し、残った溶液を撹拌し、多血小板血漿（PRP）200μLを得た。得られた200μLのPRPを、一片2mmの立方体に切断したゼラチンβ-TCPスポンジ（β-TCP強化型ゼラチンスポンジ　MedGel(登録商標)　Scaffold（メドジェル））計20mgに含浸させ、4℃で一晩放置した。対照として、Phosphate　buffer　saline(以下、PBS)200μLを同形同量のゼラチンβ-TCPスポンジに含浸させ、4℃で一晩放置した。
２．ラット脊椎後側方固定モデル
　SDラット(雄性、8週齢、240～290g、清水実験材料、京都)に、250μLのペントバルビタールを腹腔内注射し全身麻酔を行った。背部正中の皮膚に40mmの縦切開を加えた。正中から左右5mmの位置で、傍脊柱筋に25mmの縦切開を加え、第4及び5腰椎の横突起(以下、4・5横突起)を両側露出させた。先端が直径0.5mmのスチールバー　(オサダサクセス-40M、OS-40MV、長田電機工業社製)を用いて、横突起の背側皮質骨を、骨髄からの出血が確認できるまで掘削した。左右の4・5横突起間に以下に示すマテリアルを移植し、切開した傍脊柱筋と皮膚を3-0　ナイロン糸(社製で)縫合した。移植するマテリアルは1:　PRP含浸ゼラチンβ-TCPスポンジ(以下PRPスポンジ)、2:　PBS　(phosphate　buffer　saline)含浸ゼラチンβ-TCPスポンジ(MedGel(登録商標)　Scaffold（メドジェル）：以下、PBSスポンジ)、3:　PRP単独、4:　自家腸骨とし、何も移植しない群と合わせて、計5群で検討を行った。3のPRP単独モデルでは、200μLのPRP　のみを横突起間に散布した。4の自家腸骨は移植予定部と同側の腸骨先端を5×2×2mmの大きさで採取した。図１に、ラット脊椎後側方固定モデルにおける4・5横突起間への移植を模式的に示す。
３．骨形成の評価及び力学的強度の評価
　手術後8週間でペントバルビタールの大量投与で安楽死させ、腰椎を摘出した。μCT(マイクロフォーカス2D/3D　X線CT装置、ScanXmate-E090S40、コムスキャンテクノ社製)を用いて4・5横突起の矢状断再構成画像を作成し、横突起間の癒合の有無を評価した。また、得られた画像を元に、画像解析ソフト(FanCT　ver1.3　コムスキャンテクノ社製)を用いて横突起間のみを抽出し、骨量を計測した。その後、3点曲げ試験機(東京試験機、LSC-200/30-2)を用い腰椎の3点曲げ試験を行った。幅40mmの間隔をあけた治具の上に、腰椎を前方が上に向くように設置し、直径5mmの円柱治具を用いて、10mm/minの早さで第4/5腰椎椎間板前方に圧迫力をかけた。変位距離が10mmの時点での荷重を各群で比較した。次に、4%パラホルムアルデヒドで、1週間、4℃で組織固定を行った。0.5MEDTA(ethylenediaminetetraacetic　acid)液で、2週間、脱灰を行った後、20%スクロースに2日間浸漬させた。4・5横突起間断面の凍結組織切片(厚さ12μm)を作製し、ヘマトキシリン・エオジン染色およびサフラニンＯ染色(軟骨基質を赤染)を行った。
４．結果
　図２に、左右4・5横突起の矢状断再構成画像の結果を示す。PRPスポンジモデル及び自家腸骨モデルでは左右横突起間の癒合傾向が認められた。また、PRPスポンジモデルでは、自家腸骨モデルに比べて、著しい横突起前後径の増大が認められた。PBSスポンジ、PRP単独及び無設置モデルでは横突起間の増大はなく、骨癒合傾向は認められなかった。
　図３に、左右4・5横突起間の骨量を示す。PRPスポンジモデルでは、他のモデルに比べて著しい骨量の増大が認められた。
　図４に、3点曲げ試験の結果を示す。PRPスポンジモデルでは、他群に比べて平均59.6倍の強度が認められた。
　図５に、PRPスポンジモデルの4・5横突起間の組織像を示す。横突起間では、骨基質および硝子軟骨成分が混在した像を呈しており、軟骨内骨化に類似した現象が生じていた。サフラニンＯ染色では、硝子軟骨周辺の一部が赤染色像を呈しており、軟骨基質であることが証明された。比較として、無設置群の4・5横突起間の組織像　(術後8週間)　を示す。図５に示されるように、横突起間には靭帯成分を認めるが、骨・軟骨成分は認めない。
５．結論
　以上の結果から、PRPとゼラチンβ-TCPスポンジを組み合わせることにより、自家骨移植を上回る、極めて高い骨・軟骨形成能が達成され、癒合部位における力学的強度が著明に増強することが証明された。
参考例．ゼラチンβ-TCPスポンジの作製
　ゼラチンとしては、新田ゼラチン社製の酸処理品（酸処理ゼラチン）を用いた。また、β-TCPとしては、β-TCP-100(粉砕品)（太平化学産業株式会社）を用いたが、オスフェリンを用いてもよい。
　酸処理ゼラチンを蒸留水に溶解して3重量％のゼラチン水溶液を調製した。得られたゼラチン水溶液60mLにβ-TCP　1.8gを配合し、0.16重量％グルタルアルデヒド水溶液0.4ｍLとを加えて、ホモジナイザーで、5000rpm、3分間攪拌することにより発泡させた。発泡したゼラチンβ-TCP水溶液を12cm×12cmの型枠に流延し、4℃、12時間静置して架橋反応を行った後、－40℃にて凍結した後、凍結乾燥を行いスポンジ体を得た。
　得られたスポンジ体を、0.1Nグリシン水溶液を用いて1時間洗浄を3回行った後、更に水洗し、再度凍結乾燥してゼラチンβ-TCPスポンジを得た。
　本明細書中で引用した全ての刊行物、特許及び特許出願をそのまま参考として本明細書中にとり入れるものとする。
　本発明で用いられる多血小板血漿は硬組織再生誘導用材料の適用を受ける対象自身の血液を遠心操作するだけで精製できるため、特別な施設や機器を必要とせず、多施設での実施が可能である。また、自己血由来の多血小板血漿を用いるため、遺伝子組換え成長因子に比べて、副作用の生じる可能性は極めて低い。さらにゼラチンβ-TCPスポンジは臨床で使用されている材料のみを使用しており人体への安全性が高いため、本発明の硬組織再生誘導用材料は極めて迅速な臨床応用が期待できる。本発明の普及により、従来から一般的に行われてきた自家骨採取の必要性が劇的に減少するだけでなく、骨形成能促進作用により早期荷重や早期リハビリテーションが可能となることから、その恩恵は計り知れない。

Claims (8)

  1. 多血小板血漿及びゼラチンβ-TCPスポンジを含む、硬組織再生誘導用材料。
  2. 硬組織が骨・軟骨組織である、請求項１に記載の材料。
  3. 骨新生又は軟骨新生を促進するためのものである、請求項１又は２に記載の材料。
  4. 血管新生を促進するためのものである、請求項１又は２に記載の材料。
  5. 多血小板血漿が硬組織再生誘導用材料の適用を受ける対象由来のものである、請求項１～４のいずれか１項に記載の材料。
  6. ゼラチンβ-TCPスポンジの孔径が10～500μmである、請求項１～５のいずれか１項に記載の材料。
  7. ゼラチンβ-TCPスポンジ中のゼラチンが架橋されたものである、請求項１～６のいずれか１項に記載の材料。
  8. ゼラチンβ-TCPスポンジが、β-TCPとゼラチンを含む組成物に、架橋と凍結乾燥を施して作製されたものである、請求項１～７のいずれか１項に記載の材料。
PCT/JP2010/006203 2009-10-20 2010-10-19 硬組織再生誘導用材料 WO2011048803A1 (ja)

Priority Applications (4)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201080047151.2A CN102665775A (zh) 2009-10-20 2010-10-19 诱导硬组织再生的材料
US13/502,627 US9040070B2 (en) 2009-10-20 2010-10-19 Material for induction of hard tissue regeneration
EP10824655.4A EP2491958A4 (en) 2009-10-20 2010-10-19 MATERIAL FOR MAKING REGENERATION OF HARD FABRIC
JP2011537137A JPWO2011048803A1 (ja) 2009-10-20 2010-10-19 硬組織再生誘導用材料

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2009241041 2009-10-20
JP2009-241041 2009-10-20

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2011048803A1 true WO2011048803A1 (ja) 2011-04-28

Family

ID=43900047

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/JP2010/006203 WO2011048803A1 (ja) 2009-10-20 2010-10-19 硬組織再生誘導用材料

Country Status (6)

Country Link
US (1) US9040070B2 (ja)
EP (1) EP2491958A4 (ja)
JP (1) JPWO2011048803A1 (ja)
KR (1) KR20120092632A (ja)
CN (1) CN102665775A (ja)
WO (1) WO2011048803A1 (ja)

Cited By (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2013202213A (ja) * 2012-03-28 2013-10-07 Fujifilm Corp 硬組織再生用材料
JP2014124416A (ja) * 2012-12-27 2014-07-07 Gunze Ltd 骨再生材料キット、ペースト状骨再生材料、骨再生材料及び骨接合材
JP2018165248A (ja) * 2017-03-28 2018-10-25 国立大学法人京都工芸繊維大学 持効性／徐放性骨破壊阻止剤
WO2019151205A1 (ja) * 2018-01-30 2019-08-08 富士フイルム株式会社 フィブリン組成物、再生医療用基材、フィブリン組成物の製造方法およびキット
JP2021518203A (ja) * 2018-03-20 2021-08-02 ユニバーシティ オブ ピッツバーグ − オブ ザ コモンウェルス システム オブ ハイヤー エデュケイション 活力のある歯髄の再生
WO2023002817A1 (ja) * 2021-07-21 2023-01-26 公立大学法人公立諏訪東京理科大学 骨の治療装置及び骨の治療・診断装置
WO2023140312A1 (ja) * 2022-01-21 2023-07-27 学校法人大阪歯科大学 複合体及びその製造方法並びに骨再生用材料

Families Citing this family (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20150157663A1 (en) * 2012-01-19 2015-06-11 Snu R&Db Foundation Pharmaceutical Composition Comprising Human-Blood-Derived-Cell Mass
US20160082156A1 (en) * 2014-08-28 2016-03-24 Christopher G. WILSON Osteoinductive substrates and methods of making the same
EP3240563B1 (en) 2014-12-29 2020-12-09 Bioventus LLC Systems and methods for improved delivery of osteoinductive molecules in bone repair
CN104784756B (zh) * 2015-04-28 2017-04-19 吴志宏 一种粘附血小板的三维微支架复合多孔金属支架
WO2018049293A1 (en) * 2016-09-09 2018-03-15 University Of Pittsburgh-Of The Commonwealth System Of Higher Education Biocompatible polymer and magnesium for regeneration of articular surfaces in the temporomandibular joint
WO2018071319A1 (en) * 2016-10-13 2018-04-19 The Trustees Of Columbia University In The City Of New York Compositions and methods for the treatment of tissue defects

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2002040071A1 (fr) * 2000-11-14 2002-05-23 Osteogenesis Co., Ltd. Compositions stimulant la formation d'un os ou d'un parodonte et injections pour la formation d'un os ou d'un parodonte
JP2004123576A (ja) 2002-09-30 2004-04-22 Medgel Corp 多血小板血漿を含有する徐放性製剤
JP2005110710A (ja) * 2003-10-02 2005-04-28 Olympus Corp 骨補填材及びその製造方法
JP2005211477A (ja) 2004-01-30 2005-08-11 Gunze Ltd 再生医療用支持体

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1138574C (zh) * 2000-12-29 2004-02-18 天津大学 壳聚糖-明胶网络/磷酸钙多孔复合支架材料的制备方法
JP2005021586A (ja) * 2003-07-02 2005-01-27 Hidemi Akai 生体組織補填材とその製造方法および生体組織補填体
DE202006013761U1 (de) * 2006-09-06 2006-11-02 Curasan Ag Phasen- und sedimentationsstabile, plastisch verformbare Zubereitung mit intrinsischer Porenbildung, bspw. zum Auffüllen von Knochendefekten bzw. zur Verwendung als Knochenersatzmaterial

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2002040071A1 (fr) * 2000-11-14 2002-05-23 Osteogenesis Co., Ltd. Compositions stimulant la formation d'un os ou d'un parodonte et injections pour la formation d'un os ou d'un parodonte
JP2004123576A (ja) 2002-09-30 2004-04-22 Medgel Corp 多血小板血漿を含有する徐放性製剤
JP2005110710A (ja) * 2003-10-02 2005-04-28 Olympus Corp 骨補填材及びその製造方法
JP2005211477A (ja) 2004-01-30 2005-08-11 Gunze Ltd 再生医療用支持体

Non-Patent Citations (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
"Platelet-rich plasma accelerates bone formation in mouse fracture model", HOKKAIDO JOURNAL OF DENTAL SCIENCE, vol. 26, no. 2, 2005, pages 172 - 181, XP008156747 *
AKISHIGE HOKUGO ET AL.: "PRP(platelet-rich plasma) Ganshin Gelatin Hydrogel ni yoru Hone Saisei Sokushin", DRUG DELIVERY SYSTEM, vol. 18, no. 3, 2003, pages 256, XP008155906 *
BEN B ET AL., SPINE, 2006
BIOMATERIALS, vol. 26, 2005, pages 3578 - 3596, XP008160322 *
BIOMATERIALS, vol. 26, 2005, pages 4856 - 4965, XP008155903 *
CHIN. J. ORTHOP. TRAUMA, vol. 10, no. 12, 2008, pages 1166 - 1170, XP008160351 *
CLIN. ORAL IMPL. RES., vol. 17, 2006, pages 305 - 311, XP008160323 *
GOICHI MATSUMOTO: "BMP-2 Gan'yu Gelatin / betaTCP Sponge no Gaku Ganmenkotsu Saisei Iryo eno Oyo - Rat Kagakutotsu Hone Kessonbu no Saisei Jikken", THE ANNUAL MEETING OF THE JAPANESE SOCIETY FOR BIOMATERIALS YOKOSHU, vol. 29, 2007, pages 208, XP008168371 *
HOKUGO A ET AL., ORAL SURG. ORAL MED. ORAL PATHOL. ORAL RADIOL. ENDOD., 2007
HOKUGO A ET AL., TISSUE ENG., 2005
J. HARD TISSUE BIOLOGY 1341-7649, vol. 14, no. 2, 2005, pages 286 - 287, XP055107187 *
LOHN MCCLELLAN ET AL., J. SPINAL DISORD. TECH., 2006
MORISHITA T, ARTIF. ORGANS, 2006
See also references of EP2491958A4
THE JOURNAL OF THE JAPANESE ORTHOPAEDIC ASSOCIATION, vol. 84, no. 8, 2010, pages S1039, XP008160321 *

Cited By (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2013202213A (ja) * 2012-03-28 2013-10-07 Fujifilm Corp 硬組織再生用材料
JP2014124416A (ja) * 2012-12-27 2014-07-07 Gunze Ltd 骨再生材料キット、ペースト状骨再生材料、骨再生材料及び骨接合材
JP2018165248A (ja) * 2017-03-28 2018-10-25 国立大学法人京都工芸繊維大学 持効性／徐放性骨破壊阻止剤
WO2019151205A1 (ja) * 2018-01-30 2019-08-08 富士フイルム株式会社 フィブリン組成物、再生医療用基材、フィブリン組成物の製造方法およびキット
JPWO2019151205A1 (ja) * 2018-01-30 2021-01-14 富士フイルム株式会社 フィブリン組成物、再生医療用基材、フィブリン組成物の製造方法およびキット
JP7036839B2 (ja) 2018-01-30 2022-03-15 富士フイルム株式会社 フィブリン組成物、再生医療用基材、フィブリン組成物の製造方法およびキット
JP2021518203A (ja) * 2018-03-20 2021-08-02 ユニバーシティ オブ ピッツバーグ − オブ ザ コモンウェルス システム オブ ハイヤー エデュケイション 活力のある歯髄の再生
JP7406809B2 (ja) 2018-03-20 2023-12-28 ユニバーシティ オブ ピッツバーグ － オブ ザ コモンウェルス システム オブ ハイヤー エデュケイション 活力のある歯髄の再生
WO2023002817A1 (ja) * 2021-07-21 2023-01-26 公立大学法人公立諏訪東京理科大学 骨の治療装置及び骨の治療・診断装置
WO2023140312A1 (ja) * 2022-01-21 2023-07-27 学校法人大阪歯科大学 複合体及びその製造方法並びに骨再生用材料

Also Published As

Publication number Publication date
EP2491958A4 (en) 2014-07-16
US9040070B2 (en) 2015-05-26
US20120237586A1 (en) 2012-09-20
EP2491958A1 (en) 2012-08-29
KR20120092632A (ko) 2012-08-21
JPWO2011048803A1 (ja) 2013-03-07
CN102665775A (zh) 2012-09-12

Similar Documents

Publication Publication Date Title
WO2011048803A1 (ja) 硬組織再生誘導用材料
JP6882361B2 (ja) 細胞外マトリックス組織物質および骨原性タンパク質を含む生成物
Mohiuddin et al. Decellularized adipose tissue hydrogel promotes bone regeneration in critical-sized mouse femoral defect model
EP3530295B1 (en) Demineralized bone matrix having improved handling characteristics
JP2004520106A (ja) 骨の成長および修復のための組成物ならびに方法
KR20100028594A (ko) 천연의 성장인자가 보존되는 골 기질의 탈광물화 공정
US10960109B2 (en) Autologous bone graft substitute
US20070190101A1 (en) Flowable bone grafts
CN110665055B (zh) 丝胶蛋白/纳米羟基磷灰石组织工程骨移植物及其制备方法和应用
Cho et al. Natural sources and applications of demineralized bone matrix in the field of bone and cartilage tissue engineering
KR20180128482A (ko) 불용성 섬유 중합체를 포함하는 골임플란트
Maiti et al. Mesenchymal stem cells of different origin-seeded bioceramic construct in regeneration of bone defect in rabbit
Kim et al. Development of porous beads to provide regulated BMP-2 stimulation for varying durations: in vitro and in vivo studies for bone regeneration
US11596712B2 (en) Autologous bone graft substitute composition
Fattahian et al. Biomaterials, substitutes, and tissue engineering in bone repair: current and future concepts
Matsubara et al. Improved intervertebral bone union in ALIF rat model with porous hydroxyapatite/collagen combined with platelet-rich plasma
JPWO2005073365A1 (ja) 移植用細胞の処理方法、細胞懸濁液、移植用補綴物、および損傷部位の治療方法
US20200069837A1 (en) Matrix comprising bioactive glass
US20240148942A1 (en) Scaffold for bone regeneration and manufacturing method thereof
CN117917965A (zh) 用于治疗骨损伤的组合物和方法
Kitahara et al. rhBMP-2-loaded hydroxyapatite/beta-tricalcium phosphate microsphere/hydrogel composite promotes bone regeneration in a novel rat femoral nonunion model
Sharun et al. Exploring the applications of platelet-rich plasma in tissue engineering and regenerative medicine: evidence from goat and sheep experimental research
Karamini Biopolymer matrix enhances bone regeneration in rat critical size skull defects
Eweida Scaffold Guided Mandibular Reconstruction With Axial Vascularization Using The Arterio-Venous Loop Model
KR20050023298A (ko) 케라틴 유래의 정형외과 재료

Legal Events

Date Code Title Description
WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 201080047151.2

Country of ref document: CN

121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 10824655

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2011537137

Country of ref document: JP

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2010824655

Country of ref document: EP

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 20127012250

Country of ref document: KR

Kind code of ref document: A

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 13502627

Country of ref document: US