WO2010117011A1 - 抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体 - Google Patents

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津田　英資
剛 滝沢
麻紀子 中山
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    • C07K2319/30—Non-immunoglobulin-derived peptide or protein having an immunoglobulin constant or Fc region, or a fragment thereof, attached thereto

Definitions

  • the present invention relates to a substance useful as a therapeutic and / or preventive agent for abnormal bone metabolism and a method for treating and / or preventing abnormal bone metabolism.
  • Bone is known as a dynamic organ that reconstructs by constantly repeating formation and resorption in order to maintain its own morphological changes and blood calcium concentration.
  • bone formation by osteoblasts and bone resorption by osteoclasts are in an equilibrium relationship, and the bone mass is kept constant.
  • bone metabolism abnormalities such as osteoporosis occur (International Publication No. WO07 / 093042 and Endocrinological Review, (1992) 13, p66-80).
  • Osteoclasts are multinucleated cells derived from hematopoietic stem cells that release the chloride and hydrogen ions on the bone-adherent surface, thereby acidifying the gap between the cell-bone adhesive surface and being an acidic protease. Secretes cathepsin K and the like (American Journal of Physiology, (1991) 260, C1315-C1324). As a result, decomposition of calcium phosphate, activation of acidic protease and decomposition of bone matrix protein are caused, and bone resorption proceeds.
  • osteoclast progenitor cells differentiate into osteoclasts upon stimulation with RANKL (Receptor activator of NF- ⁇ B ligand) expressed on the cell membrane of osteoblasts / stromal cells on the bone surface.
  • RANKL Receptor activator of NF- ⁇ B ligand expressed on the cell membrane of osteoblasts / stromal cells on the bone surface.
  • mice knocked out of RANKL develop a pathological condition like marble bone disease, and it was proved that RANKL is a physiological osteoclast differentiation inducing factor (Nature, (1999) 397, p315-323).
  • bisphosphonates As pharmaceuticals for treating bone metabolic diseases and shortening the treatment period, bisphosphonates, active vitamin D 3 , calcitonin and derivatives thereof, hormones such as estradiol, SERMs (Selective estogen receptor modulators), ipriflavone, vitamin K 2 (menatetrenone), PTH and calcium preparations are used.
  • hormones such as estradiol, SERMs (Selective estogen receptor modulators), ipriflavone, vitamin K 2 (menatetrenone), PTH and calcium preparations.
  • Sialic acid-binding immunoglobulin-like lectins Sialic-acid-binding immunoglobulin-like lectins, hereinafter referred to as “Siglecs”) are a family of type I membrane proteins that recognize and bind sialic acid-containing sugar chains.
  • Siglecs are abundantly expressed on the cell membrane of immune system cells, and also recognize sialic acid present on the cell membrane of immune system cells and regulate cell-cell interactions and cell functions, and are involved in immune responses There are many Siglecs molecules that have been considered (Nature Reviews Immunology, (2007) 7, p255-266), but whose physiological functions are not clear.
  • Siglec-15 Sialic-acid binding immunoglobulin-like electin 15
  • CD33L3 CD33 molecule-like 3 Is the same.
  • This molecule has a high degree of evolutionary conservation from fish to humans and has been shown to be strongly expressed in dendritic / macrophage cells in the human spleen and lymph nodes.
  • human Siglec-15 binds to Neu5Ac ⁇ 2-6GalNAc and mouse Siglec-15 further binds to Neu5Ac ⁇ 2-3Gal ⁇ 1-4Glc (for example, Glycobiology, (2007). ) 17, p838-846).
  • An object of the present invention is to provide a gene that is specifically expressed in various bone metabolism abnormalities found in osteoporosis, rheumatoid arthritis, cancer bone metastasis, and the like, a substance that inhibits differentiation and maturation and activity of osteoclasts, and bone metabolism
  • the object is to provide an agent for the treatment and / or prevention of abnormalities.
  • the present inventors have conducted research aimed at elucidating the mechanism (mechanism) of osteoclast differentiation, maturation and activation for the purpose of searching for substances having therapeutic and / or preventive effects on abnormal bone metabolism. They found that the expression of the Siglec-15 gene increased with osteoclast differentiation and maturation. The present inventors have also found that osteoclast differentiation is suppressed by an antibody that specifically binds to Siglec-15. Furthermore, the inventors humanized the obtained rat anti-mouse Sigle-15 antibody to complete the present invention. That is, the present invention includes the following inventions.
  • the heavy chain sequence includes a variable region having CDRH1, CDRH2, CDRH3, CDRR1 is composed of an amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 44, and CDRH2 is any one of SEQ ID NO: 45 or SEQ ID NO: 97.
  • Consisting of two amino acid sequences the CDRH3 consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 46; and
  • the light chain sequence comprises a variable region having CDRL1, CDRL2, CDRL3, the CDRL1 consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 47, the CDRL2 consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 48, Consisting of the amino acid sequence shown in 49; Or the functional fragment of the antibody according to (1).
  • a heavy chain variable region sequence consisting of amino acid residues 20 to 140 of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 41 and a light chain variable consisting of amino acid residues 21 to 132 of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 43 The antibody or the functional fragment of the antibody according to (2), which comprises a region sequence.
  • a heavy chain variable region selected from the group consisting of the following amino acid sequences: a1) an amino acid sequence consisting of amino acid residues 20 to 140 of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 51; a2) an amino acid sequence consisting of amino acid residues 20 to 140 of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 53; a3) an amino acid sequence consisting of amino acid residues 20 to 140 of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 55; a4) an amino acid sequence consisting of amino acid residues 20 to 140 of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 57; a5) an amino acid sequence consisting of amino acid residues 20 to 140 of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 59; a6) an amino acid sequence consisting of amino acid residues 20 to 140 of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 99; a7) an amino acid sequence consisting of amino acid sequence consisting of amino acid residues:
  • a heavy chain sequence comprising a heavy chain variable region comprising the amino acid sequence consisting of the 20th to 140th amino acid residues of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 51 and the 21st to 133rd amino acid sequences of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 61
  • a heavy chain sequence comprising a heavy chain variable region comprising the amino acid sequence consisting of the 20th to 140th amino acid residues of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 53 and the 21st to 133rd amino acid sequences of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 63
  • a heavy chain sequence comprising a heavy chain variable region comprising the amino acid sequence consisting of the 20th to 140th amino acid residues of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 55 and the 21st to 133rd amino acid sequences of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 65
  • a heavy chain sequence comprising a heavy chain variable region consisting of an amino acid sequence consisting of amino acid sequences 20 to 140 of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 55 and 21st to 133rd of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 67
  • a heavy chain sequence comprising a heavy chain variable region comprising the amino acid sequence consisting of the 20th to 140th amino acid residues of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 57 and the 21st to 133rd amino acid sequences of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 69;
  • a heavy chain sequence comprising a heavy chain variable region consisting of an amino acid sequence consisting of 20th to 140th amino acid residues of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 59 and 21st to 133rd of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 71
  • a heavy chain sequence comprising a heavy chain variable region consisting of an amino acid sequence consisting of the 20th to 140th amino acid residues of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 99 and a 21st to 133rd amino acid sequence of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 69
  • a heavy chain sequence comprising a heavy chain variable region comprising the amino acid sequence consisting of the 20th to 140th amino acid residues of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 101 and the 21st to 133rd amino acid sequences of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 69
  • a heavy chain sequence comprising a heavy chain variable region consisting of an amino acid sequence consisting of amino acid residues 20 to 140 of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 99 and 21st to 133rd of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 103
  • a heavy chain sequence comprising a heavy chain variable region consisting of an amino acid sequence consisting of amino acid sequences 20 to 140 of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 99 and 21st to 133rd of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 105
  • the antibody or the functional fragment of the antibody according to (10) comprising a light chain sequence comprising a light chain variable region comprising an amino acid sequence comprising amino acid residues.
  • (21) including a heavy chain sequence consisting of amino acid residues 20 to 470 of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 51 and a light chain sequence consisting of amino acid residues 21 to 238 of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 61 (10) or the functional fragment of the antibody.
  • (22) a heavy chain sequence consisting of amino acid residues 20 to 470 of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 53 and a light chain sequence consisting of amino acid residues 21 to 238 of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 63 (10) or the functional fragment of the antibody.
  • (23) a heavy chain sequence consisting of amino acid residues 20 to 470 of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 55 and a light chain sequence consisting of amino acid residues 21 to 238 of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 65 (10) or the functional fragment of the antibody.
  • (24) including a heavy chain sequence consisting of amino acid residues 20 to 470 shown in the amino acid sequence of SEQ ID NO: 55 and a light chain sequence consisting of amino acid residues 21 to 237 of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 67 (10) or the functional fragment of the antibody.
  • (25) including a heavy chain sequence consisting of amino acid residues 20 to 470 of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 57 and a light chain sequence consisting of amino acid residues 21 to 238 of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 69 (10) or the functional fragment of the antibody.
  • (26) a heavy chain sequence consisting of amino acid residues 20 to 470 of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 59 and a light chain sequence consisting of amino acid residues 21 to 238 of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 71 (10) or the functional fragment of the antibody.
  • (27) including a heavy chain sequence consisting of amino acid residues 20 to 466 of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 99 and a light chain sequence consisting of amino acid residues 21 to 238 of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 69 (10) or the functional fragment of the antibody.
  • (28) including a heavy chain sequence consisting of amino acid residues 20 to 466 of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 101 and a light chain sequence consisting of amino acid residues 21 to 238 of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 69 (10) or the functional fragment of the antibody.
  • (29) including a heavy chain sequence consisting of amino acid residues 20 to 466 of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 99 and a light chain sequence consisting of amino acid residues 21 to 238 of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 103 (10) or the functional fragment of the antibody.
  • a pharmaceutical composition comprising at least one of the antibody or the functional fragment of the antibody according to (1) to (30).
  • a pharmaceutical composition for the treatment and / or prevention of abnormal bone metabolism comprising: (34) Bone metabolism abnormality is caused by osteoporosis, bone destruction associated with r
  • the pharmaceutical composition according to (34), wherein the bone metabolism abnormality is osteoporosis, bone destruction accompanying rheumatoid arthritis, or bone destruction accompanying cancer bone metastasis.
  • the pharmaceutical composition according to (35), wherein the abnormal bone metabolism is osteoporosis.
  • the osteoporosis is postmenopausal osteoporosis, senile osteoporosis, secondary osteoporosis due to the use of a therapeutic agent such as a steroid or an immunosuppressive agent, or osteoporosis associated with rheumatoid arthritis (36) Pharmaceutical composition.
  • a method for treating and / or preventing abnormal bone metabolism comprising administering at least one of the antibody or the functional fragment of the antibody according to (1) to (30).
  • (40) The method for treatment and / or prevention according to (38) or (39), wherein the bone metabolism abnormality is osteoporosis, bone destruction associated with rheumatoid arthritis, or bone destruction associated with cancer bone metastasis. .
  • (41) The treatment and / or prevention method according to (40), wherein the bone metabolism abnormality is osteoporosis.
  • the osteoporosis is postmenopausal osteoporosis, senile osteoporosis, secondary osteoporosis due to the use of a therapeutic agent such as a steroid or an immunosuppressant, or osteoporosis associated with rheumatoid arthritis (41) Treatment and / or prevention methods.
  • a polynucleotide comprising a nucleotide sequence consisting of (45) including a nucleotide sequence consisting of nucleotides 58 to 1410 of the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 40 and a nucleotide sequence consisting of nucleotides 61 to 711 of the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 42 ( 44).
  • polynucleotide according to (43), (A) a polynucleotide selected from the group consisting of the following nucleotide sequences: a1) a nucleotide sequence consisting of nucleotides 58 to 420 of the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 50; a2) a nucleotide sequence consisting of nucleotides 58 to 420 of the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 52; a3) a nucleotide sequence consisting of nucleotides 58 to 420 of the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 54; a4) a nucleotide sequence consisting of nucleotides 58 to 420 of the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 56; a5) a nucleotide sequence consisting of nucleotides 58 to 420 of the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 58; a6) a
  • a transformed host cell comprising any one of the polynucleotides according to (43) to (66).
  • a transformed host cell comprising the vector according to (67).
  • a therapeutic and / or prophylactic agent for abnormal bone metabolism which has an action mechanism of osteoclast differentiation and maturation and inhibition of bone resorption activity.
  • Rat control IgG in the figure is a negative control common to FIGS. It is the result of examining the influence on osteoclast differentiation (RANKL stimulation) of mouse bone marrow non-adherent cells by addition of rat anti-mouse Siglec-15 monoclonal antibody (# 34A1, # 39A1 or # 40A1).
  • the rabbit anti-mouse Siglec-15 polyclonal antibody No. 3 is a positive control common to FIGS.
  • Symbol ( ⁇ ) indicates # 1A1 antibody
  • symbol ( ⁇ ) indicates # 3A1 antibody
  • symbol ( ⁇ ) indicates # 8A1 antibody
  • symbol ( ⁇ ) indicates # 24A1 antibody
  • symbol ( ⁇ ) indicates # 32A1 antibody
  • Symbol (O) indicates # 34A1 antibody
  • Symbol (+) indicates # 39A1 antibody
  • Symbol (-) indicates # 40A1 antibody
  • Symbol (-) indicates # 41B1 antibody
  • Symbol ( ⁇ ) indicates # 61A1 antibody
  • Symbols ( ⁇ ) represent control IgG, respectively. It is the microscope picture which showed suppression of the giant osteoclast formation from a normal human osteoclast precursor cell by addition of a rat anti-mouse Siglec-15 monoclonal antibody by TRAP staining.
  • FIG. 2 is a graph showing an action of increasing lumbar bone density (A) and an action of reducing urinary deoxypyridinoline excretion (B) when a rat anti-mouse Siglec-15 monoclonal antibody is administered to ovariectomized rats for 4 weeks.
  • FIG. 4 shows that a rat anti-mouse Siglec-15 monoclonal antibody # 32A1 binds to the V-set domain of human Siglec-15 by competitive ELISA.
  • FIG. 3 is a diagram showing by competitive ELISA that rat # 32A1 antibody and its human chimeric antibody have almost the same affinity for mouse Siglec-15-Fc.
  • FIG. 6 shows that rat anti-mouse Siglec-15 humanized antibody 6 binds to mouse Siglec-15 protein depending on the antibody concentration by ELISA using a mouse Siglec-15-Fc-immobilized plate. It is. Figure 6 confirmed by ELISA using a human Siglec-15-Fc solid phased plate that 6 types of rat anti-mouse Siglec-15 humanized antibodies bind to human Siglec-15 protein depending on the antibody concentration. It is.
  • FIG. 3 is a view showing a nucleotide sequence and an amino acid sequence of h # 32A1-T1H.
  • FIG. 4 is a view showing a nucleotide sequence and an amino acid sequence of h # 32A1-T2H. It is the figure which showed the nucleotide sequence of h # 32A1-T3H, and the amino acid sequence. It is the figure which showed the nucleotide sequence of h # 32A1-T5H, and the amino acid sequence. It is the figure which showed the nucleotide sequence of h # 32A1-T6H, and an amino acid sequence.
  • FIG. 4 is a view showing a nucleotide sequence and an amino acid sequence of h # 32A1-T1L.
  • FIG. 3 shows the nucleotide sequence and amino acid sequence of h # 32A1-T2L.
  • FIG. 3 shows the nucleotide sequence and amino acid sequence of h # 32A1-T3L.
  • FIG. 4 shows the nucleotide sequence and amino acid sequence of h # 32A1-T4L.
  • FIG. 3 shows the nucleotide sequence and amino acid sequence of h # 32A1-T5L. It is the figure which showed the nucleotide sequence of h # 32A1-T6L, and an amino acid sequence.
  • FIG. 4 is a view showing amino acid sequences of h # 32A1-T7H, h # 32A1-T8H, and h # 32A1-T9H.
  • FIG. 4 is a view showing amino acid sequences of h # 32A1-T7H, h # 32A1-T8H, and h # 32A1-T9H.
  • FIG. 4 is a view showing amino acid sequences of h # 32A1-T10H, h # 32A1-T11H, and h # 32A1-T12H.
  • FIG. 4 is a view showing amino acid sequences of h # 32A1-T7L, h # 32A1-T8L, h # 32A1-T9L, h # 32A1-T10L, and h # 32A1-T11L.
  • FIG. 4 is a view showing amino acid sequences of h # 32A1-T12L, h # 32A1-T13L, h # 32A1-T14L, h # 32A1-T15L, and h # 32A1-T16L.
  • FIG. 4 is a view showing amino acid sequences of h # 32A1-T17L, h # 32A1-T18L, h # 32A1-T19L, h # 32A1-T20L, and h # 32A1-T21L.
  • FIG. 4 shows the amino acid sequences of h # 32A1-T22L, h # 32A1-T23L, h # 32A1-T24L, and h # 32A1-T25L.
  • 6 is a graph showing suppression of mouse osteoclast formation by addition of a rat anti-mouse Siglec-15 humanized antibody (h # 32A1-T1, h # 32A1-T2, h # 32A1-T3) in terms of TRAP enzyme activity.
  • the rat # 32A1 antibody in the figure is a positive control common to FIGS. 44 and 45.
  • 6 is a graph showing suppression of mouse osteoclast formation by addition of a rat anti-mouse Siglec-15 humanized antibody (h # 32A1-T4, h # 32A1-T5, h # 32A1-T6) in terms of TRAP enzyme activity. It is a graph showing suppression of mouse osteoclast formation by addition of a rat anti-mouse Siglec-15 humanized antibody (h # 32A1-H1-1 / L5, h # 32A1-H5 / L5) in terms of TRAP enzyme activity.
  • the rat # 32A1 antibody and # 32A1 human chimeric antibody in the figure are common positive controls in FIGS.
  • rat # 32A1 antibody and # 32A1 human chimeric antibody in the figure are common positive controls in FIGS. 48 and 49.
  • Rat anti-mouse Siglec-15 humanized antibodies (h # 32A1-H1-1 / L5, h # 32A1-H5 / L5, h # 32A1-H1-1 / L2-16, h # 32A1-H1-1 / L12- It is the graph which showed suppression of the bone resorption activity of normal human osteoclast by addition of 5). It is the thermogram which measured the thermal stability of h # 32A1-H5 / L5 antibody. It is a thermogram which measured the thermal stability of h # 32A1-H1-1 / L5 antibody.
  • FIG. 3 shows the nucleotide sequence and amino acid sequence of h # 32A1-H1-1.
  • FIG. 4 shows the nucleotide sequence and amino acid sequence of h # 32A1-H5.
  • FIG. 14 shows the nucleotide sequence and amino acid sequence of h # 32A1-L2-15.
  • FIG. 7 shows the nucleotide sequence and amino acid sequence of h # 32A1-L2-16.
  • the term “gene” includes not only DNA but also mRNA, cDNA, and cRNA.
  • polynucleotide is used in the same meaning as a nucleic acid, and includes DNA, RNA, probes, oligonucleotides, and primers.
  • polypeptide and “protein” are used without distinction.
  • RNA fraction refers to a fraction containing RNA.
  • cell includes cells in an individual animal and cultured cells.
  • Siglec-15 is used in the same meaning as Siglec-15 protein.
  • osteoclast formation is used in the same meaning as “osteoclast differentiation” or “osteoclast maturation”.
  • the “functional fragment of an antibody” means a partial fragment of an antibody having binding activity with an antigen, and Fab, F (ab ′) 2, Fv, scFv, diabody, linear antibody And multispecific antibodies formed from antibody fragments.
  • Fab ' which is a monovalent fragment of the variable region of an antibody obtained by treating F (ab') 2 under reducing conditions, is also included in the functional fragment of the antibody.
  • the molecule is not limited to these molecules as long as it has the ability to bind to an antigen.
  • These functional fragments include not only those obtained by treating full-length antibody protein molecules with appropriate enzymes, but also proteins produced in appropriate host cells using genetically engineered antibody genes. It is.
  • the “epitope” means a partial peptide or partial three-dimensional structure of Siglec-15 to which a specific anti-Siglec-15 antibody binds.
  • the epitope that is a partial peptide of Siglec-15 can be determined by a method well known to those skilled in the art, such as an immunoassay, and can be performed, for example, by the following method.
  • Various partial structures of Siglec-15 are produced. In preparing the partial structure, a known oligopeptide synthesis technique can be used.
  • epitopes can be determined by synthesizing shorter peptides and examining their reactivity with those peptides.
  • epitope that is a partial three-dimensional structure of Siglec-15 to which a specific Siglec-15 antibody binds can be determined by specifying the amino acid residue of Siglec-15 adjacent to the antibody by X-ray structural analysis. it can.
  • the second anti-Siglec-15 antibody When the second anti-Siglec-15 antibody binds to the partial peptide or partial conformation to which the first anti-Siglec-15 antibody binds, it is determined that the first antibody and the second antibody have a common epitope. Can do. Also, the second anti-Siglec-15 antibody competes for binding of the first anti-Siglec-15 antibody to Siglec-15 (ie, the second antibody prevents binding of the first antibody to Siglec-15). It is possible to determine that the first antibody and the second antibody have a common epitope even if the specific epitope sequence or structure is not determined. Furthermore, when the first antibody and the second antibody bind to a common epitope and the first antibody has a special effect such as antigen neutralization activity, the second antibody has the same activity. Can be expected.
  • CDRs complementarity determining regions
  • the complementarity-determining region is also called a hypervariable domain, and is located in the variable region of the heavy and light chains of the antibody and has a particularly high primary structure variability.
  • the polypeptide chains are separated at three locations on the primary structure of the polypeptide chain.
  • the complementarity determining region of an antibody is expressed as CDRH1, CDRH2, CDRH3 from the amino terminal side of the heavy chain amino acid sequence, and the complementarity determining region of the light chain is lightly expressed.
  • CDRL1, CDRL2, and CDRL3 are represented from the amino terminal side of the chain amino acid sequence. These sites are close to each other on the three-dimensional structure and determine the specificity for the antigen to be bound.
  • hybridize under stringent conditions means to hybridize at 68 ° C. in a commercially available hybridization solution ExpressHyb Hybridization Solution (manufactured by Clontech) or use a filter on which DNA is fixed. After hybridization at 68 ° C in the presence of 0.7-1.0 M NaCl, 0.1-2 fold SSC solution (1 fold SSC consists of 150 mM NaCl, 15 mM sodium citrate) ) And hybridization under conditions that can be identified by washing at 68 ° C. or equivalent conditions.
  • Siglec-15 The inventors have found that the Siglec-15 gene is specifically expressed in giant cell tumors. The present inventors have also found that the expression level of the Siglec-15 gene increases when the monocyte-derived cell line differentiates into osteoclasts.
  • Siglec-15 used in the present invention is directly purified from human, non-human mammals (eg, guinea pig, rat, mouse, rabbit, pig, sheep, cow, monkey, etc.) or chicken monocyte cells or bone marrow cells. It can be used, or it can be used by preparing a cell membrane fraction of the above-mentioned cells, or by synthesizing Siglec-15 in vitro or producing it in a host cell by genetic manipulation. .
  • Siglec-15 cDNA is incorporated into an expressible vector and then synthesized in a solution containing enzymes, substrates and energy substances necessary for transcription and translation, or other prokaryotic organisms, or The protein can be obtained by expressing Siglec-15 by transforming a eukaryotic host cell.
  • the nucleotide sequence of human Siglec-15 cDNA was registered with GenBank under accession number: NM — 213602 and is also shown in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing, and its amino acid sequence is shown in SEQ ID NO: 2 in the sequence listing.
  • the nucleotide sequence of mouse Siglec-15 cDNA was registered with GenBank under the accession number: XM — 844636, and is also shown in SEQ ID NO: 3 in the sequence listing. Its amino acid sequence is shown in SEQ ID NO: 4 in the sequence listing. .
  • Mature human Siglec-15 from which the signal sequence has been removed corresponds to an amino acid sequence consisting of the 21st to 328th amino acid residues of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2. Further, mouse Siglec-15 from which the signal sequence was removed corresponds to an amino acid sequence consisting of the 21st to 341th amino acid residues of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 4.
  • Siglec-15 is sometimes called CD33 antigen-like 3, CD33 molecular-like 3, CD33-like 3, or CD33L3, and these all indicate the same molecule.
  • the Siglec-15 cDNA is, for example, a polymerase chain reaction (hereinafter referred to as “PCR”) using a cDNA library expressing the Siglec-15 cDNA as a template and a primer that specifically amplifies the Siglec-15 cDNA.
  • PCR polymerase chain reaction
  • a polynucleotide comprising a nucleotide sequence complementary to the nucleotide sequence shown in at least one selected from SEQ ID NOS: 1 and 3 in the sequence listing, and Siglec-15
  • a polynucleotide encoding a protein having equivalent biological activity is also included in the cDNA of Siglec-15.
  • a splicing variant transcribed from the human or mouse Siglec-15 gene locus or a polynucleotide that hybridizes to this under stringent conditions, and that encodes a protein having a biological activity equivalent to Siglec-15 Nucleotides are also included in the Siglec-15 cDNA.
  • amino acid sequence shown in at least one selected from SEQ ID NOs: 2 and 4 in the sequence listing or in the amino acid sequence obtained by removing the signal sequence from these sequences, one or several amino acids are substituted or missing.
  • a protein having a lost or added amino acid sequence and having a biological activity equivalent to that of Siglec-15 is also included in Siglec-15.
  • an amino acid sequence encoded by a splicing variant transcribed from the human or mouse Siglec-15 gene locus, or an amino acid sequence in which one or several amino acids are substituted, deleted, or added, and A protein having biological activity equivalent to that of Siglec-15 is also included in Siglec-15.
  • the Siglec-15 gene is a bone tumor in which many osteoclast-like multinucleated giant cells appear when the expression level of the gene in various bone tissue specimens is analyzed. Characterized by sexual bone destruction (Bullough et al., Atlas of Orthopedic Pathology 2nd edition, pp 17.6-17.8, Lippincott Williams & Wilkins Publishers (1992) G It was found that the expression level increased.
  • Siglec-15 is considered to be involved in human pathological conditions such as GCT where bone resorption is enhanced. That is, by measuring the expression level in each cell and / or each tissue of the Siglec-15 gene and / or Siglec-15, the state of abnormal bone metabolism accompanied by overexpression of Siglec-15 can be determined.
  • abnormal bone metabolism is a disorder characterized by net bone loss.
  • osteoporosis postmenopausal osteoporosis, senile osteoporosis, use of therapeutic drugs such as steroids and immunosuppressive agents
  • Secondary osteoporosis osteoporosis associated with rheumatoid arthritis
  • bone destruction associated with rheumatoid arthritis cancerous hypercalcemia
  • bone destruction associated with multiple myeloma and cancer bone metastasis giant cell tumor
  • osteopenia periodontal ligament
  • examples include, but are not limited to, tooth loss due to inflammation, osteolysis around artificial joints, bone destruction in chronic osteomyelitis, Paget's disease of bone, renal osteodystrophy, osteogenesis imperfecta and the like.
  • the “specimen” to be examined for the expression level of the Siglec-15 gene and / or Siglec-15 refers to bone marrow, bone, prostate, testis, penis, bladder, kidney obtained from a subject or clinical specimen.
  • a tissue such as a node, muscle, adipose tissue, blood, body fluid or excrement, but in the present invention, blood or bone marrow is more preferable.
  • RANKL which is known to be related to osteoclast differentiation
  • knockout mice have been prepared, and the phenotype when RANKL function is lost has been analyzed (Young-Yun Kong, et Al., Nature (1999) 397, p. 315-323).
  • Siglec-15 By producing a knockout mouse for Siglec-15, it is possible to analyze the phenotype when the function of Siglec-15 is lost.
  • the antibody against Siglec-15 of the present invention is immunized in vivo using a conventional method to immunize animals with any polypeptide selected from the amino acid sequence of Siglec-15 or Siglec-15. It can be obtained by collecting and purifying the produced antibody.
  • the species of Sigle-15 used as an antigen is not limited to humans, and Sigle-15 derived from animals other than humans such as mice and rats can also be used to immunize animals.
  • an antibody applicable to a human disease can be selected by examining the cross-reactivity between the obtained antibody that binds to different types of Siglec-15 and human Siglec-15.
  • a hybridoma can be established by fusing an antibody-producing cell producing an antibody against Siglec-15 with a myeloma cell to obtain a monoclonal antibody.
  • Sigle-15 as an antigen can be obtained by producing a Siglec-15 gene in a host cell by genetic manipulation.
  • a vector capable of expressing the Siglec-15 gene is prepared, introduced into a host cell to express the gene, and the expressed Siglec-15 is purified.
  • a method for obtaining an antibody against Siglec-15 will be specifically described.
  • (1) Preparation of antigen As an antigen for producing an anti-Siglec-15 antibody, Siglec-15 or at least 6 consecutive partial amino acid sequences thereof are used. Or a derivative obtained by adding an arbitrary amino acid sequence or carrier thereto.
  • Siglec-15 can be used by directly purifying from human tumor tissue or tumor cells, and can be obtained by synthesizing Sigle-15 in vitro or by producing it in a host cell by genetic manipulation. it can.
  • Siglec-15 cDNA is incorporated into an expressible vector and then synthesized in a solution containing enzymes, substrates and energy substances necessary for transcription and translation, or other prokaryotic organisms,
  • the antigen can be obtained by expressing Siglec-15 by transforming a eukaryotic host cell.
  • an antigen as a secreted protein by expressing a fusion protein in which an extracellular region of Siglec-15, which is a membrane protein, and an antibody constant region are linked in an appropriate host / vector system.
  • the Siglec-15 cDNA is, for example, a polymerase chain reaction (hereinafter referred to as “PCR”) using a cDNA library expressing the Siglec-15 cDNA as a template and a primer that specifically amplifies the Siglec-15 cDNA (hereinafter referred to as “PCR”) ( Saiki, R. K., et al. Science (1988) 239, p.487-487) can be obtained by the so-called PCR method.
  • PCR polymerase chain reaction
  • Examples of in vitro synthesis of a polypeptide include, but are not limited to, a rapid translation system (RTS) manufactured by Roche Diagnostics.
  • RTS rapid translation system
  • prokaryotic cell hosts examples include Escherichia coli and Bacillus subtilis.
  • the host cell is transformed with a plasmid vector containing a replicon or origin of replication from a species compatible with the host and regulatory sequences.
  • the vector preferably has a sequence capable of imparting phenotypic (phenotypic) selectivity to transformed cells.
  • Examples of eukaryotic host cells include vertebrates, insects, and yeast cells, and examples of vertebrate cells include COS cells (Gluzman, Y. Cell (1981) 23, p. 175-182, ATCC CRL-1650), mouse fibroblast NIH3T3 (ATCC No. CRL-1658) and Chinese hamster ovary cells (CHO cells, ATCC CCL-61) deficient strains (Urlauub, G. et al.). and Chasin, LA Proc. Natl. Acad. Sci. USA (1980) 77, p. 4126-4220), etc., are not limited to these.
  • the transformant obtained as described above can be cultured according to a conventional method, and the target polypeptide is produced inside or outside the cell by the culture.
  • the medium used for the culture various commonly used media can be appropriately selected depending on the host cells employed. If Escherichia coli is used, for example, an antibiotic such as ampicillin or IPMG can be added to the LB medium as necessary. It can be added and used.
  • an antibiotic such as ampicillin or IPMG can be added to the LB medium as necessary. It can be added and used.
  • Recombinant protein produced inside or outside of the transformant by the above culture can be separated and purified by various known separation methods utilizing the physical and chemical properties of the protein. it can.
  • the method include various liquid chromatography such as treatment with an ordinary protein precipitating agent, ultrafiltration, molecular sieve chromatography (gel filtration), adsorption chromatography, ion exchange chromatography, affinity chromatography and the like. , Dialysis methods, combinations thereof, and the like.
  • a histidine tag consisting of 6 residues
  • it can be efficiently purified with a nickel affinity column.
  • it can be efficiently purified on a protein A column by linking an IgG Fc region to a recombinant protein to be expressed.
  • the target polypeptide can be easily obtained in high yield and purity by combining the above methods. Can be manufactured in large quantities.
  • a method for producing a monoclonal antibody will be described in detail according to the above steps, but the method for producing the antibody is not limited thereto, and for example, antibody-producing cells other than spleen cells and myeloma can also be used.
  • a membrane fraction prepared from a Siglec-15-expressing recombinant cell, or the Siglec-15-expressing recombinant cell itself, and further, a partial peptide of the protein of the present invention chemically synthesized using a method well known to those skilled in the art Can also be used as an antigen.
  • step (B) Preparation of antibody-producing cells
  • the antigen obtained in step (a) is mixed with Freund's complete or incomplete adjuvant, or an adjuvant such as potassium alum, and an experimental animal is immunized as an immunogen.
  • an animal used in a known hybridoma production method can be used without any problem. Specifically, for example, mice, rats, goats, sheep, cows, horses and the like can be used. However, from the viewpoint of easy availability of myeloma cells to be fused with the extracted antibody-producing cells, it is preferable to use mice or rats as immunized animals.
  • mice there are no particular limitations on the mouse and rat strains actually used.
  • rats for example, Wistar, Low, Lewis, Sprague, Dawley, ACI, BN Fischer or the like can be used.
  • mice and rats can be obtained, for example, from laboratory animal breeders such as Japan Marie and Japan Charles River.
  • the BALB / c strain is particularly preferable as the immunized animal in mice and the Wistar and Low strains in rats.
  • mice with reduced biological mechanisms for removing autoantibodies that is, autoimmune disease mice.
  • the age at the time of immunization of these mice or rats is preferably 5 to 12 weeks old, more preferably 6 to 8 weeks old.
  • a membrane protein fraction that is an antigen or a cell in which the antigen is expressed is administered intradermally or intraperitoneally in an animal.
  • the immune efficiency can be particularly enhanced.
  • the antigen administration schedule varies depending on the type of animal to be immunized, individual differences, and the like, but in general, the number of antigen administrations is preferably 3 to 6 times, and the administration interval is 2 to 6 weeks. More preferably 4 weeks.
  • the dose of the antigen varies depending on the kind of animal and individual differences, but is generally 0.05 to 5 mg, preferably about 0.1 to 0.5 mg.
  • the booster immunization is performed 1 to 6 weeks, preferably 2 to 4 weeks, more preferably 2 to 3 weeks after the antigen administration as described above.
  • the dose of antigen for performing booster immunization varies depending on the type and size of the animal, but generally, for example, 0.05 to 5 mg, preferably 0.1 to 0.5 mg, more preferably in the case of mice. Is about 0.1 to 0.2 mg.
  • Spleen cells or lymphocytes containing antibody-producing cells are aseptically removed from the immunized animal 1 to 10 days after the boost, preferably 2 to 5 days, and more preferably 2 to 3 days later.
  • Examples of the antibody titer measurement method used here include, but are not limited to, the RIA method and the ELISA method.
  • the measurement of the antibody titer in the present invention can be performed according to the procedure described below, for example, according to the ELISA method.
  • a purified or partially purified antigen is adsorbed on a solid phase surface such as a 96-well plate for ELISA, and a solid phase surface on which no antigen is adsorbed is a protein unrelated to the antigen, such as bovine serum albumin (hereinafter referred to as “BSA”). ),
  • BSA bovine serum albumin
  • the surface is washed, and then contacted with a serially diluted sample (for example, mouse serum) as the first antibody, and the antibody in the sample is bound to the antigen.
  • an antibody against a mouse antibody labeled with an enzyme as a second antibody is added and bound to the mouse antibody. After washing, the substrate of the enzyme is added, and the change in absorbance due to color development based on the decomposition of the substrate is measured. calculate.
  • Separation of antibody-producing cells from these spleen cells or lymphocytes can be performed by a known method (for example, Kohler et al., Nature (1975) 256, p. 495; Kohler et al., Eur. J. Immunol. ( 1977) 6, p. 511; Milstein et al., Nature (1977), 266, p. 550, and Walsh, Nature, (1977) 266, p. 495).
  • spleen cells a general method of separating antibody-producing cells by chopping the spleen and filtering the cells through a stainless mesh and then suspending them in the Eagle's minimum essential medium (MEM) can be employed.
  • MEM Eagle's minimum essential medium
  • myeloma Preparation of myeloma cells (hereinafter referred to as “myeloma”)
  • myeloma cells used for cell fusion are not particularly limited and can be appropriately selected from known cell lines. However, in consideration of convenience when selecting hybridomas from the fused cells, it is preferable to use a HGPRT (Hypoxanthine-guanine phosphoryltransferase) deficient strain in which the selection procedure has been established.
  • HGPRT Hydropoxanthine-guanine phosphoryltransferase
  • HGPRT-deficient strains can be obtained from, for example, the American Type Culture Collection (ATCC).
  • ATCC American Type Culture Collection
  • 8-azaguanine in a suitable medium such as 8-azaguanine medium [RPMI-1640 medium supplemented with glutamine, 2-mercaptoethanol, gentamicin, and fetal calf serum (hereinafter referred to as “FCS”). Added medium], Iscove's Modified Dulbecco's Medium (Iscove's Modified Dulbecco's Medium; hereinafter referred to as "IMDM”), or Dulbecco's Modified Eagle Medium (Dulbecco's Modified Eagle Medium; hereinafter referred to as "DMEM").
  • IMDM Iscove's Modified Dulbecco's Medium
  • DMEM Dulbecco's Modified Eagle Medium
  • Such a method may be, for example, a chemical method in which antibody-producing cells and myeloma cells are mixed in a high-concentration polymer solution such as polyethylene glycol, or a physical method using electrical stimulation.
  • the antibody-producing cells are used in a polyethylene glycol solution having a molecular weight of 1500 to 6000, preferably 2000 to 4000, at a temperature of 30 to 40 ° C., preferably 35 to 38 ° C. Mix with myeloma cells for 1-10 minutes, preferably 5-8 minutes.
  • the selection method of the hybridoma obtained by the cell fusion is not particularly limited, but is usually a HAT (hypoxanthine / aminopterin / thymidine) selection method (Kohler et al., Nature (1975) 256, p. 495; Milstein et al., Nature (1977) 266, p. 550).
  • HAT hyperxanthine / aminopterin / thymidine
  • This method is effective when a hybridoma is obtained using HGPRT-deficient myeloma cells that cannot survive with aminopterin.
  • hybridomas having resistance to aminopterin can selectively remain and proliferate.
  • cloning a known method such as a methyl cellulose method, a soft agarose method, a limiting dilution method, or the like can be used (for example, Barbara, B. M. and Stanley, MS: Selected Methods in Cellular Immunology, W. H. Freeman and Company, San Francisco (1980)). Of these methods, the limiting dilution method is particularly preferable.
  • a feeder such as a rat fetal fibroblast cell line or normal mouse spleen cells, thymocytes, ascites cells is inoculated on a microplate.
  • the hybridoma is diluted in advance to a concentration of 0.2 to 0.5 / 0.2 ml, and 0.1 ml of the diluted hybridoma suspension is added to each well, and is removed at regular intervals (for example, 3 Hybridoma clones can be grown by continuing the culture for about 2 weeks while replacing about 1/3 of the medium with a new one every day.
  • cloning by limiting dilution method is repeated 2 to 4 times, and those with stable antibody titer are selected as anti-Siglec-15 monoclonal antibody-producing hybridoma strains.
  • hybridoma strains cloned in this manner examples include hybridoma # 32A1 described in WO09 / 48072.
  • Hybridoma # 32A1 is dated August 28, 2008 at the Patent Organism Depositary, National Institute of Advanced Industrial Science and Technology (location: postal code 305-8565, 1-1-1 Higashi 1-chome, Tsukuba, Ibaraki, Japan) The deposit number is FERM BP-10999 under the name of anti-Siglec-15 Hybridoma # 32A1.
  • an antibody produced by hybridoma # 32A1 is referred to as “# 32A1 antibody” or simply “# 32A1”.
  • antibody names other than the antibody # 32A1 in the examples of the present specification are described in the same manner.
  • the partial fragment containing the heavy chain variable region of antibody # 32A1 has an amino acid sequence consisting of amino acid residues 20 to 167 of SEQ ID NO: 28 in the Sequence Listing.
  • the partial fragment containing the light chain variable region sequence of the # 32A1 antibody has an amino acid sequence consisting of amino acid residues 21 to 139 in SEQ ID NO: 30 in the sequence listing.
  • a method known per se can be used for this screening.
  • Measurement of the antibody titer in the present invention can be performed by, for example, the ELISA method described in the item (b) above.
  • the hybridoma obtained by the above method can be stored in a frozen state in liquid nitrogen or in a freezer at ⁇ 80 ° C. or lower.
  • the hybridoma that has been cloned is cultured by changing the medium from the HT medium to the normal medium.
  • Mass culture is performed by rotary culture using a large culture bottle or spinner culture.
  • a monoclonal antibody that specifically binds to the protein of the present invention can be obtained by purifying the supernatant in this mass culture using a method well known to those skilled in the art, such as gel filtration.
  • ascites containing a large amount of the monoclonal antibody of the present invention can be obtained by injecting a hybridoma into the abdominal cavity of a mouse of the same strain (for example, the above-mentioned BALB / c) or a Nu / Nu mouse and proliferating the hybridoma. Can be obtained.
  • mineral oil such as 2,6,10,14-tetramethylpentadecane (2,6,10,14-tetramethylpentadecane) (pristane) is administered in advance (3-7 days before). More ascites can be obtained.
  • a monoclonal antibody having a concentration of about 100 times or more compared with that in the culture solution can be obtained.
  • Monoclonal antibodies obtained by the above method are described in Weir, D. et al. M.M. : Handbook of Experimental Immunology, Vol. I, II, III, Blackwell Scientific Publications, Oxford (1978) can be used for purification.
  • ammonium sulfate salting-out method gel filtration method, ion exchange chromatography method, affinity chromatography method and the like.
  • a commercially available monoclonal antibody purification kit for example, MAbTrap GII kit; manufactured by Pharmacia
  • MAbTrap GII kit manufactured by Pharmacia
  • the monoclonal antibody thus obtained has a high antigen specificity for Siglec-15.
  • examples of the identification method include an octerlony method, an ELISA method, and an RIA method.
  • Octelrony method is simple, but concentration is necessary when the concentration of monoclonal antibody is low.
  • the culture supernatant is directly reacted with the antigen-adsorbed solid phase, and further, antibodies corresponding to various immunoglobulin isotypes and subclasses are used as secondary antibodies. Isotypes and subclasses can be identified.
  • a commercially available identification kit for example, mouse typer kit; manufactured by Bio-Rad
  • a commercially available identification kit for example, mouse typer kit; manufactured by Bio-Rad
  • the antibodies of the present invention include genetically engineered antibodies that have been artificially modified for the purpose of reducing heteroantigenicity against humans, such as chimeras. Also included are (Chimeric) antibodies, humanized antibodies, human antibodies and the like. These antibodies can be produced using known methods.
  • chimeric antibody examples include antibodies in which the variable region and the constant region of the antibody are different from each other, for example, a chimeric antibody in which the variable region of a mouse or rat-derived antibody is joined to a human-derived constant region (Proc. Natl. Acad). Sci.U.S.A., 81, 6851-6855, (1984)).
  • a chimeric antibody derived from rat anti-mouse antibody # 32A1 a heavy chain having an amino acid sequence consisting of amino acid residues 20 to 470 of SEQ ID NO: 41 in the sequence listing, and amino acid residues 21 to 237 of SEQ ID NO: 43
  • An antibody consisting of a light chain having an amino acid sequence consisting of a group can be mentioned.
  • humanized antibody an antibody in which only a complementarity determining region (CDR; complementarity determining region) is incorporated into a human-derived antibody (see Nature (1986) 321, p.522-525), a CDR sequence is obtained by CDR grafting.
  • CDR complementarity determining region
  • an antibody International Publication Pamphlet WO 90/07861 in which amino acid residues of some frameworks are grafted to a human antibody can be mentioned.
  • Examples of the humanized antibody of rat antibody # 32A1 include amino acid residues 20 to 140 of SEQ ID NO: 51, amino acids 20 to 140 of SEQ ID NO: 53, and 20 to 140 of SEQ ID NO: 55.
  • a heavy chain comprising a heavy chain variable region consisting of an amino acid sequence consisting of amino acid sequence consisting of amino acid residue consisting of 1st to 121st amino acid residue of any one of the amino acid sequences of SEQ ID NO: 72 to 77; and SEQ ID NO: 61 21 to 133 amino acid residues, SEQ ID NO: 63 21 to 133 amino acid residues, SEQ ID NO: 65 21 to 133 Amino acid residues 21 to 132 of SEQ ID NO: 67, 21 to 133 amino acid residues of SEQ ID NO: 69, 21 to 133 amino acid residues of SEQ ID NO: 71, 21 to SEQ ID NO: 103 From the amino acid sequence consisting of the 133rd amino acid residue, the 21st to
  • a preferred combination includes a heavy chain comprising a heavy chain variable region consisting of the amino acid sequence consisting of amino acid residues 20 to 140 of SEQ ID NO: 51 and an amino acid sequence consisting of amino acid residues 21 to 133 of SEQ ID NO: 61.
  • it comprises a heavy chain having an amino acid sequence consisting of amino acid residues 20 to 470 of SEQ ID NO: 51 and a light chain having an amino acid sequence consisting of amino acid residues 21 to 238 of SEQ ID NO: 61.
  • the heavy chain variable region of antibody # 32A1 consists of CDRH1 (DYFMN) consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 44, CDRH2 (QIRNKIYTYATYAYASLEG) consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 45, or CDRH2 (SEQ ID NO: 97).
  • CDRH1 DYFMN
  • CDRH2 QIRNKIYTYATYAYASLEG
  • CDRH2 SEQ ID NO: 97
  • QIRNKYYTYTFYA QIRNKIYTYATYAYASLEG
  • SEQ ID NO: 97 One of QIRNKYYTYTFYA and CDRH3 (SLTGGGDYFDY) consisting of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 46.
  • CDRH2 shown in SEQ ID NO: 45 is based on the definition of Kabat (SEQUENCES OF PROTEINS OF IMMUNOLOGICAL INTEREST VOL.I, FIFTH EDION (1991)).
  • CDRH2 shown in SEQ ID NO: 97 the C-terminus is shortened by 5 residues from the Kabat definition.
  • this heavy chain sequence containing CDRH2 since the CDR sequence derived from rat is reduced and more human framework sequences are incorporated, it is more difficult to be recognized as a heterologous antigen when administered to humans.
  • the light chain variable region of the # 32A1 antibody consists of CDRL1 (RASQSVTGISGFIH) consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 47, CDRL2 (RASNLAS) consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 48, and amino acids shown in SEQ ID NO: 49. It has CDRL3 (QQSRKSPWT) consisting of the sequence.
  • the anti-Siglec-15 human antibody means a human antibody having only the gene sequence of an antibody derived from a human chromosome.
  • Anti-Siglec-15 human antibody is a method using a human antibody-producing mouse having a human chromosome fragment containing heavy and light chain genes of human antibody (Tomizuka, K. et al., Nature Genetics (1997) 16, p. 133-143; Kuroiwa, Y. et.al., Nucl.Acids Res. (1998) 26, p.3447-3448; Yoshida, H. et.al., Animal Cell Technology: Basic and Applied Aspects.
  • the endogenous immunoglobulin heavy chain and light chain loci are disrupted, and instead, a human immunoglobulin is produced via a yeast artificial chromosome (YAC) vector or the like.
  • YAC yeast artificial chromosome
  • Genetically modified animals into which heavy and light chain loci have been introduced can be produced by creating knockout animals and transgenic animals, and crossing these animals together.
  • eukaryotic cells are transformed with cDNA encoding each of the heavy and light chains of such a human antibody, preferably a vector containing the cDNA, to produce a gene recombinant human monoclonal antibody.
  • This antibody can also be obtained from the culture supernatant by culturing the transformed cells.
  • eukaryotic cells preferably CHO cells
  • mammalian cells such as lymphocytes and myeloma can be used.
  • a method for obtaining a human antibody derived from phage display selected from a human antibody library (Wormstone, IM et al, Investigative Ophthalmology & Visual Science. (2002) 43 (7), p. 2301-2308; Mé, S. et.al., Briefings in Functional Genomics and Proteomics (2002), 1 (2), p.189-203; Siriwardena, D. et., Ophthalmology (2002) 109 (3), p. 427-431 etc.) are also known.
  • a phage display method (Nature Biotechnology (2005), 23, (9), p. 1105) in which a variable region of a human antibody is expressed on a phage surface as a single chain antibody (scFv) and a phage that binds to an antigen is selected. ⁇ 1116) can be used.
  • the DNA sequence encoding the variable region of the human antibody that binds to the antigen can be determined.
  • an expression vector having the sequence is prepared, and introduced into a suitable host for expression to obtain a human antibody (WO92 / 01047, WO92 / 20791, WO 93/06213, WO 93/11236, WO 93/19172, WO 95/01438, WO 95/15388, Annu. Rev. Immunol (1994) 12, p. 433-455, Nature Biotechnology (2005) 23 (9), p. 1105-1116).
  • the antibody obtained by the above method can be selected for a suitable antibody by evaluating the binding property to the antigen by the method shown in Example 25 or the like.
  • An example of another index for comparing antibody properties is antibody stability.
  • the differential scanning calorimetry (DSC) shown in Example 33 is an apparatus that can quickly and accurately measure the thermal denaturation midpoint (Tm), which is an indicator of good relative structural stability of proteins.
  • Tm thermal denaturation midpoint
  • the difference in thermal stability can be compared by measuring the Tm value using DSC and comparing the values. It is known that the storage stability of an antibody shows a certain degree of correlation with the thermal stability of the antibody (Lori Burton, et. Al., Pharmaceutical Development and Technology (2007) 12, p.265-273), and heat.
  • a suitable antibody can be selected using stability as an index.
  • Other indicators for selecting antibodies include high yields in suitable host cells and low aggregation in aqueous solutions. For example, since the antibody with the highest yield does not necessarily exhibit the highest thermal stability, it is necessary to select the most suitable antibody for human administration based on a comprehensive judgment based on the above-mentioned indicators. .
  • the antibody of the present invention may be an antibody having a single heavy chain variable region and no light chain sequence.
  • Such an antibody is called a single domain antibody (sdAb) or nanobody, and is actually observed in a camel or llama and reported to retain antigen-binding ability.
  • sdAb single domain antibody
  • nanobody single domain antibody
  • the above antibody can also be interpreted as a kind of functional fragment of the antibody in the present invention.
  • WO99 / 54342, WO00 / 61739, WO02 / 31140, and the like are known as regulation techniques for antibody sugar chain modification, but are not limited thereto.
  • an antibody gene When an antibody gene is once isolated and then introduced into an appropriate host to produce an antibody, a combination of an appropriate host and an expression vector can be used.
  • Specific examples of the antibody gene include a combination of a gene encoding the heavy chain sequence of the antibody described in the present specification and a gene encoding the light chain sequence.
  • the heavy chain sequence gene and the light chain sequence gene When transforming a host cell, the heavy chain sequence gene and the light chain sequence gene can be inserted into the same expression vector, or can be inserted into separate expression vectors. is there.
  • eukaryotic cells When eukaryotic cells are used as hosts, animal cells, plant cells, and eukaryotic microorganisms can be used. Examples of animal cells include (1) mammalian cells such as COS cells (Gluzman, Y. Cell (1981) 23, p.
  • ATCC CRL-1650 which are monkey cells, mouse fibroblasts NIH3T3 (ATCC). No. CRL-1658) and Chinese hamster ovary cells (CHO cells, ATCC CCL-61) dihydrofolate reductase-deficient strains (Urlauub, G. and Chasin, LA Proc. Natl. Acad. Sci. U.). S. A. (1980) 77, p. 4126-4220).
  • Escherichia coli and Bacillus subtilis can be mentioned, for example.
  • An antibody can be obtained by introducing a desired antibody gene into these cells by transformation, and culturing the transformed cells in vitro. In the above culture method, the yield may vary depending on the sequence of the antibody. From the antibodies having equivalent binding activity, those that can be easily produced as pharmaceuticals can be selected using the yield as an index.
  • IgG IgG1, IgG2, IgG3, IgG4
  • IgM IgA (IgA1, IgA2)
  • IgD or IgE preferably IgG or IgM
  • IgG1 or IgG2 More preferably, IgG1 or IgG2 can be mentioned.
  • the antibody of the present invention may be a functional fragment of an antibody having an antigen-binding portion of the antibody or a modified product thereof.
  • a fragment of the antibody can be obtained by treating the antibody with a proteolytic enzyme such as papain or pepsin, or modifying the antibody gene by a genetic engineering technique and expressing it in an appropriate cultured cell.
  • a fragment that retains all or part of the functions of the full-length antibody molecule can be referred to as an antibody functional fragment.
  • Antibody functions generally include antigen-binding activity, activity that neutralizes antigen activity, activity that enhances antigen activity, antibody-dependent cytotoxic activity, complement-dependent cytotoxic activity, and complement-dependence Mention may be made of cellular cytotoxic activity.
  • the function retained by the functional fragment of the antibody in the present invention is the binding activity to Siglec-15, preferably the activity of suppressing the formation of osteoclasts, more preferably the process of cell fusion of osteoclasts. Activity.
  • antibody fragments include Fab, F (ab ′) 2, Fv, or single chain Fv (scFv), diabodies (diabodies), linear antibody in which Fvs of heavy and light chains are linked by an appropriate linker.
  • Fab ' which is a monovalent fragment of the variable region of an antibody obtained by treating F (ab') 2 under reducing conditions, is also included in the antibody fragment.
  • the antibody of the present invention may be a multispecific antibody having specificity for at least two different antigens.
  • a molecule binds to two types of antigens (ie, bispecific antibodies), but the “multispecific antibody” in the present invention is more than that (for example, three types). It includes an antibody having specificity for the antigens.
  • the multispecific antibody of the present invention may be a full-length antibody or a fragment of such an antibody (for example, F (ab ') 2 bispecific antibody).
  • Bispecific antibodies can be prepared by combining the heavy and light chains (HL pairs) of two types of antibodies, or by hybridizing hybridomas that produce different monoclonal antibodies to produce a bispecific antibody. It can also be produced by producing cells (Millstein et al., Nature (1983) 305, p. 537-539).
  • the antibody of the present invention may be a single chain antibody (also referred to as scFv).
  • a single-chain antibody is obtained by linking an antibody heavy chain variable region and light chain variable region with a polypeptide linker (Pluckthun, The Pharmacology of Monoclonal Antibodies, 113 (Rosenberg and Moore, edited by Springer Verlag, New). York, p. 269-315 (1994), Nature Biotechnology (2005), 23, p. 1126-1136)
  • a BiscFv fragment produced by linking two scFvs with a polypeptide linker is used as a bispecific antibody. It can also be used.
  • the heavy chain variable region and the light chain variable region are linked via a linker that does not form a conjugate, preferably a polypeptide linker (Huston, JS et al., Proc. Natl. Acad. Sci.U.S.A. (1988), 85, p.5879-5883).
  • the heavy chain variable region and the light chain variable region in scFv may be derived from the same antibody or different antibodies.
  • the polypeptide linker that links the variable regions for example, any single chain peptide consisting of 12 to 19 residues is used.
  • the scFv-encoding DNA is a DNA encoding the heavy chain or heavy chain variable region of the antibody, and a DNA encoding the light chain or light chain variable region.
  • an expression vector containing them and a host transformed with the expression vector can be obtained in accordance with a conventional method.
  • ScFv can be obtained according to the method.
  • These antibody fragments can be produced by a host after obtaining and expressing the gene in the same manner as described above.
  • the antibody of the present invention may be one that has been increased in quantity and has increased affinity for the antigen.
  • the antibody that multiplies may be one type of antibody or a plurality of antibodies that recognize multiple epitopes of the same antigen. Examples of the method for increasing the number of antibodies include binding of IgG CH3 domain and two scFvs, binding to streptavidin, introduction of helix-turn-helix motif, and the like.
  • the antibody of the present invention may be a polyclonal antibody that is a mixture of a plurality of types of anti-Siglec-15 antibodies having different amino acid sequences.
  • a polyclonal antibody a mixture of plural kinds of antibodies having different CDRs can be mentioned.
  • a polyclonal antibody a mixture of cells producing different antibodies can be cultured, and an antibody purified from the culture can be used (see WO 2004/061104).
  • an antibody conjugated with various molecules such as polyethylene glycol (PEG) can also be used.
  • PEG polyethylene glycol
  • the antibody of the present invention may be one in which these antibody and another drug form a conjugate (Immunoconjugate).
  • conjugate examples include those in which the antibody is bound to a radioactive substance or a compound having a pharmacological action (Nature Biotechnology (2005) 23, p. 1137-1146).
  • the obtained antibody can be purified to homogeneity. Separation and purification of antibodies may be carried out using separation and purification methods used for ordinary proteins. For example, antibodies can be separated and purified by appropriately selecting and combining column chromatography, filter filtration, ultrafiltration, salting out, dialysis, preparative polyacrylamide gel electrophoresis, isoelectric focusing, etc. (Stratesies) for Protein Purification and Characterization: A Laboratory Course Manual, Daniel R.Marshak et al.eds, Cold Spring Harbor Laboratory Press (1996); Antibodies:. A Laboratory Manual.Ed Harlow and David Lane, Cold Spring Harbor Laboratory ( 988)) it is not intended to be limited thereto.
  • chromatography examples include affinity chromatography, ion exchange chromatography, hydrophobic chromatography, gel filtration chromatography, reverse phase chromatography, and adsorption chromatography.
  • chromatography can be performed using liquid chromatography such as HPLC or FPLC.
  • Examples of columns used for affinity chromatography include protein A columns and protein G columns.
  • Medicament containing anti-Siglec-15 antibody Among the anti-Siglec-15 antibodies obtained by the method described in the above section "3. Production of anti-Siglec-15 antibody”, neutralize the biological activity of Siglec-15 Antibody can be obtained. These antibodies that neutralize the biological activity of Siglec-15 inhibit the biological activity of Siglec-15 in vivo, that is, the differentiation and / or maturation of osteoclasts. And / or can be used as a therapeutic and / or preventive agent for abnormal bone metabolism caused by abnormal maturation. An abnormal bone metabolism may be any disorder characterized by net bone loss (osteopenia or osteolysis). In general, treatment and / or prevention with anti-Siglec-15 antibody is applied when bone resorption needs to be suppressed.
  • Bone metabolic disorders that can be treated and / or prevented with anti-Siglec-15 antibodies include osteoporosis (postmenopausal osteoporosis, senile osteoporosis, secondary osteoporosis due to the use of therapeutic agents such as steroids and immunosuppressants, and rheumatoid arthritis Osteoporosis), bone destruction associated with rheumatoid arthritis, cancerous hypercalcemia, bone destruction associated with multiple myeloma and cancer bone metastasis, giant cell tumor, osteopenia, periodontitis, tooth loss, periarticular joint Bone osteolysis, bone destruction in chronic osteomyelitis, Paget's disease of bone, renal osteodystrophy, osteogenesis imperfecta, etc., but if the disease involves net bone loss due to osteoclasts, It is not limited to these.
  • osteoporosis postmenopausal osteoporosis, senile osteoporosis, secondary osteoporosis due to the use of therapeutic agents
  • anti-Siglec-15 antibody as a pharmaceutical, from # 32A1 antibody to 3.
  • a chimeric antibody or a humanized antibody prepared by the method described in “Other antibodies” can be mentioned. Chimeric antibodies, humanized antibodies and human antibodies having the same epitope as the # 32A1 antibody can also be used as pharmaceuticals.
  • the fact that certain anti-Siglec-15 antibodies have the same epitope as the # 32A1 antibody can be confirmed by observing whether these antibodies bind in common to a specific partial peptide of Siglec-15. Also, if an anti-Siglec-15 antibody competes with the # 32A1 antibody for binding to Siglec-15, it can be determined that these antibodies have a common epitope.
  • the in vitro neutralizing activity of Siglec-15 biological activity by anti-Siglec-15 antibody can be measured, for example, by the activity of inhibiting differentiation of cells overexpressing Siglec-15 into osteoclasts. For example, adding anti-Siglec-15 antibody at various concentrations to mouse monocyte-derived cell line RAW264.7 cell or RAW264 cell, and measuring the inhibitory activity on differentiation into osteoclasts by RANKL or TNF- ⁇ stimulation Can do.
  • anti-Siglec-15 antibody can be added to bone marrow-derived primary cultured cells at various concentrations, and the inhibition activity of osteoclast differentiation by RANKL, TNF- ⁇ or activated vitamin D 3 stimulation can be measured. it can.
  • anti-Siglec-15 antibody was added to normal human osteoclast precursor cells (Normal Human Natural Osteoblast Precursor Cells, available from Sanko Junyaku, catalog number 2T-110) at various concentrations, and stimulated with RANKL and M-CSF.
  • the activity of inhibiting the differentiation into osteoclasts can be measured.
  • Such an osteoclast differentiation inhibitory effect can be measured using as an index the inhibition of the tartrate-resistant acid phosphatase (TRAP) activity of osteoclasts.
  • the osteoclast differentiation inhibitory effect can be measured using as an index the inhibition of formation of TRAP-positive multinucleated osteoclasts, that is, inhibition of cell fusion of osteoclasts.
  • the therapeutic or preventive effect on bone metabolism abnormalities of anti-Siglec-15 antibody using an in vivo experimental animal is, for example, anti-Siglec-15 antibody in osteoporosis model animals or transgenic animals overexpressing Siglec-15. Can be confirmed by measuring the change of osteoclasts.
  • the antibody that neutralizes the biological activity of Siglec-15 thus obtained is used as a medicine, particularly for the treatment or prevention of abnormal bone metabolism such as osteoporosis, bone destruction associated with rheumatoid arthritis, bone destruction associated with bone metastasis of cancer, etc. It is useful as a pharmaceutical composition for the purpose of, or as an antibody for immunological diagnosis of such diseases.
  • RA rheumatoid arthritis
  • RANKL and TNF- ⁇ are considered to be the most important causes of osteoclast induction (differentiation and maturation), activation, and bone destruction in RA (Romas E et al., Bone 30, p340-). 346, 2002).
  • the RANKL decoy receptor OCIF / OPG can suppress RANKL-induced osteoclast formation, but not TNF- ⁇ -induced osteoclast formation.
  • the anti-Siglec-15 antibody of the present invention effectively suppressed both RANKL-induced osteoclast formation and TNF- ⁇ -induced osteoclast formation. Therefore, the anti-Siglec-15 antibody of the present invention is expected to suppress TNF- ⁇ -induced bone loss and bone destruction in RA and the like more strongly than RANKL blockers (OCIF / OPG, anti-RANKL antibody, etc.).
  • RANKL blockers OCIF / OPG, anti-RANKL antibody, etc.
  • the anti-Siglec-15 antibody can be administered alone or in combination with at least one other bone disease therapeutic agent for the treatment or prevention of abnormal bone metabolism.
  • the anti-Siglec-15 antibody can be administered in combination with a therapeutically effective amount of an anti-bone metabolic disorder therapeutic agent.
  • Therapeutic agents that can be administered in combination with an anti-Siglec-15 antibody include bisphosphonates (eg, alendronate, etidonate, ibandronate, incadronate, pamidronate, risedronate, or zoledronate), active vitamin D 3 , calcitonin and its derivatives, estradiol, etc.
  • SERMs Selective estrogen receptor modulators
  • ipriflavone vitamin K 2 (menatetrenone), calcium preparations
  • PTH parathyroid hormone
  • non-steroidal anti-inflammatory agents e.g., celecoxib or rofecoxib
  • soluble TNF receptor e.g., Etanercep
  • An anti-TNF ⁇ antibody or a functional fragment of the antibody for example, infliximab
  • an anti-PTHrP parathyrido hormone-related protein antibody or a functional fragment of the antibody
  • an IL-1 receptor antagonist for example, anakinra
  • anti-IL-6 examples include, but are not limited to, a receptor antibody or a functional fragment of the antibody (for example, tocilizumab), an anti-RANKL antibody or a functional fragment of the antibody (for example, denosumab), and OCIF (osteoblastogenesis inhibitory factor).
  • two, three or more types of drugs can be administered, and these drugs can be encapsulated in the same formulation. Can be supplied at the same time. These drugs and anti-Siglec-15 antibody can also be supplied simultaneously by encapsulating them in the same formulation. In addition, these drugs can be simultaneously supplied by encapsulating them as a treatment and / or prevention kit. These drugs and anti-Siglec-15 antibody can also be supplied separately.
  • the protein bone disease therapeutic agent gene and the anti-Siglec-15 antibody gene can be inserted separately or downstream of the same promoter region, and can be inserted into separate or the same vector. Can be introduced.
  • any antibody fragment can be applied as long as the recognition of osteoclasts is not completely lost.
  • fragments such as Fab, F (ab ′) 2, Fv, etc.
  • antibodies and fragments thereof can also be used in the present invention.
  • the binding mode of the anti-Siglec-15 antibody or a fragment of the antibody and the bone disease therapeutic agent is described in M.M. C.
  • Examples of drug carriers include liposomes and water-soluble polymers. More specifically, these drug carriers are intervened in such a manner that an antibody and a bone disease therapeutic agent are included in a liposome, the mode in which the liposome and the antibody are bound, and the bone disease therapeutic agent is highly water-soluble.
  • a mode in which an antibody is bound to a molecule a compound having a molecular weight of about 1000 to 100,000
  • a spacer such as an oligopeptide and bound to the water-soluble polymer
  • the binding of the antibody (or the fragment) to a drug carrier such as a bone disease therapeutic agent, a liposome and a water-soluble polymer is described in G. T.A.
  • the complex of the antibody (or the fragment) and the proteinaceous bone disease therapeutic agent (or the fragment) can be prepared by a method well known to those skilled in the art, in addition to the above method, by genetic engineering.
  • the present invention also provides a pharmaceutical composition
  • a pharmaceutical composition comprising a therapeutically and / or prophylactically effective amount of an anti-Siglec-15 antibody and a pharmaceutically acceptable diluent, carrier, solubilizer, emulsifier, preservative and / or adjuvant. To do.
  • the present invention comprises a therapeutically and / or prophylactically effective amount of an anti-Siglec-15 antibody, a therapeutically and / or prophylactically effective amount of at least one bone disease therapeutic agent, and a pharmaceutically acceptable diluent, carrier, solubilization
  • pharmaceutical compositions comprising agents, emulsifiers, preservatives and / or adjuvants.
  • bone disease therapeutic agents include bisphosphonates (for example, alendronate, etidonate, ibandronate, incadronate, pamidronate, risedronate, or zoledronate), active vitamin D 3 , calcitonin and derivatives thereof, hormones such as estradiol, SERMs (selectort).
  • Ipriflavone Ipriflavone, vitamin K 2 (menatetrenone), calcium preparations, PTH (parathyroid hormone), non-steroidal anti-inflammatory agents (eg celecoxib or rofecoxib), soluble TNF receptor (eg ethanercept), anti-TNF ⁇ antibody or function of the antibody Disagreement A fragment (eg, infliximab), an anti-PTHrP (parathyrido hormone-related protein) antibody or a functional fragment thereof, an IL-1 receptor antagonist (eg, anakinra), an anti-IL-6 receptor antibody or a functional fragment thereof (eg, , Tocilizumab), an anti-RANKL antibody or a functional fragment of the antibody (for example, denosumab), and OCIF (osteogenesis inhibitory factor), but are not limited thereto.
  • PTH parathyroid hormone
  • non-steroidal anti-inflammatory agents eg celecoxib or rofecoxib
  • soluble TNF receptor
  • the substance used in the preparation acceptable in the pharmaceutical composition of the present invention is preferably a substance that is non-toxic to a person who is administered the pharmaceutical composition at a dosage or concentration.
  • the pharmaceutical composition of the present invention changes or maintains pH, osmotic pressure, viscosity, transparency, color, isotonicity, sterility, stability, dissolution rate, sustained release rate, absorption rate, and penetration rate. Can be included for the formulation.
  • Substances for formulation may include, but are not limited to: amino acids such as glycine, alanine, glutamine, asparagine, arginine or lysine, antibacterial agents, ascorbic acid, sodium sulfate or sodium bisulfite Antioxidants, phosphoric acid, citric acid, boric acid buffer, sodium bicarbonate, buffer such as tris-hydrochloric acid (Tris-Hcl) solution, filler such as mannitol and glycine, chelate such as ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) Agents, caffeine, polyvinylpyrrolidine, complexing agents such as ⁇ -cyclodextrin and hydroxypropyl- ⁇ -cyclodextrin, bulking agents such as glucose, mannose or dextrin, other carbohydrates such as monosaccharides and disaccharides, coloring agents, Flavoring agent, diluent, emulsifier and polyvinylpyrrolidine Hydrophilic polymers such as low
  • the amount of these substances for preparation is preferably 0.01 to 100 times, more preferably 0.1 to 10 times the weight of the anti-Siglec-15 antibody.
  • the composition of a suitable pharmaceutical composition in the preparation can be appropriately determined by those skilled in the art depending on the disease to be applied, the route of administration and the like.
  • the excipient or carrier in the pharmaceutical composition may be liquid or solid.
  • Appropriate excipients and carriers may be water for injection, physiological saline, artificial cerebrospinal fluid and other substances commonly used for parenteral administration.
  • Neutral physiological saline or physiological saline containing serum albumin can also be used as a carrier.
  • the pharmaceutical composition may include Tris buffer at pH 7.0-8.5, acetate buffer at pH 4.0-5.5, citrate buffer at pH 3.0-6.2. These buffers may also contain sorbitol and other compounds.
  • Examples of the pharmaceutical composition of the present invention include a pharmaceutical composition containing an anti-Siglec-15 antibody and a pharmaceutical composition containing an anti-Siglec-15 antibody and at least one therapeutic agent for bone disease.
  • a pharmaceutical composition comprising an anti-Siglec-15 antibody and a pharmaceutical composition comprising an anti-Siglec-15 antibody and at least one agent for treating bone metabolism disorders are molded as lyophilized products using an appropriate excipient such as sucrose. You can also.
  • the pharmaceutical composition of the present invention can be prepared for parenteral administration or for oral digestive tract absorption.
  • the composition and concentration of the preparation can be determined by the administration method, and the affinity of the anti-Siglec-15 antibody for Siglec-15, that is, the dissociation constant (Kd value) for Siglec-15 contained in the pharmaceutical composition of the present invention.
  • Kd value the dissociation constant
  • the higher the affinity (the lower the Kd value) the more effective the drug can be exerted even if the dose to humans is reduced. Based on this result, the pharmaceutical composition of the present invention is administered to humans.
  • the amount can also be determined.
  • about 0.1 to 100 mg / kg may be administered once every 1 to 180 days.
  • Examples of the form of the pharmaceutical composition of the present invention include injections containing infusions, suppositories, nasal agents, sublingual agents, and transdermal absorption agents. Examples Hereinafter, the present invention will be specifically described by way of examples. However, the present invention is not limited to these examples. In the following examples, unless otherwise specified, each operation relating to gene manipulation is “Molecular Cloning” (Sambrook, J., Fritsch, EF, and Maniatis, T., Cold Spring Harbor Laboratory Press). Or published in 1989), or when using commercially available reagents and kits, they were used according to the instructions for commercial products.
  • soluble mouse Siglec-15 protein expression construct The nucleotide sequence of the portion encoding the extracellular region of mouse Siglec-15 protein is SEQ ID NO: 5 in the sequence listing, and the amino acid sequence is SEQ ID NO: 6 in the sequence listing. It is. By utilizing such a partial sequence, soluble mouse Siglec-15 protein can be produced in the culture supernatant of animal cells and the like.
  • primers were designed as amplification primers for Gateway entry clone preparation so that the attB1 sequence was added to mSiglec-15-ECD-F and the attB2 sequence was added to mSiglec-15-ECD-R.
  • PCR was performed according to a conventional method using this primer combination and a polynucleotide containing the mouse Siglec-15 open reading frame sequence as a template.
  • the thermal cycler was set up after heating at 94 ° C. for 5 minutes and then repeating the temperature cycle of “94 ° C. for 0.5 minutes, 55 ° C. for 0.5 minutes, 68 ° C. for 1.5 minutes” 15 times. The mixture was heated at 68 ° C. for 5 minutes and kept at 4 ° C.
  • the destination vector is pDONM designed to add a V5 epitope and 6 ⁇ His tag to the C-terminal side of the insert, and phIgFc designed to add a human Fc tag to the C-terminal side of the insert.
  • Escherichia coli DH10B was transformed using the reaction solution obtained by the LR reaction, and colony PCR was performed on the obtained drug-resistant clone to confirm the insert size. For clones in which the size of the insert was confirmed correctly, sequence analysis of both ends from the insert side to the vector side was performed.
  • Sequence primer for sequencing 5'-tgcgtgaagg tgcaggggcag-3 '(mSiglec-15-ECD-seq-upstm: SEQ ID NO: 9 in the sequence listing) And 5'-cctcgcctgg tcgggtc-3 '(mSiglec-15-ECD-seq-dnstm: SEQ ID NO: 10 in the sequence listing)
  • expression clones soluble mouse Siglec-15 / pDONM and soluble mouse Siglec-15 / phIgFc
  • mRNA having the base sequence set forth in SEQ ID NO: 11 in the sequence listing is transcribed, and the amino acid sequence set forth in SEQ ID NO: 12 in the sequence listing is converted to Protein (mouse Siglec-15-His) is translated.
  • the mRNA having the base sequence set forth in SEQ ID NO: 13 in the sequence listing is transcribed, and the amino acid sequence described in SEQ ID NO: 14 in the sequence listing is converted to Protein (mouse Siglec-15-Fc) is translated.
  • Example 1 Large-scale preparation of a culture medium containing soluble mouse Siglec-15 protein using 293-F cells
  • the two types of expression vectors obtained in Example 1 was prepared about 5 mg each.
  • Invitrogen PureLink HiPlasmid Gigaprep Kit manufactured by Invitrogen
  • the prepared plasmid was mixed with Opti-MEM (Invitrogen), sterilized by filter, added with 10 ml of 293fectin (Invitrogen) as a transfection reagent, and incubated at room temperature for 20 minutes.
  • This mixed solution was cultured in an Erlenmeyer flask so as to be 1.1 ⁇ 10 6 cells / ml ⁇ 5 L (1 L / five flasks) in FreeStyle 293 Expression Medium (manufactured by Invitrogen). It added to F cell (made by Invitrogen). The culture broth was collected after rotating culture (125 rpm) for 96 hours (4 days) at 8.0% CO 2 concentration and 37 ° C., and the culture supernatant was prepared after centrifugation.
  • mouse Siglec-15-His Purification of mouse Siglec-15-His a) HisTrap HP column chromatography 225 ml of 10 ⁇ buffer (500 mM Tris, 1.5 M NaCl, 200 mM Imidazole, 2 L) of culture solution of mouse Siglec-15-His expression 293F cells prepared in Example 2 After adding pH 8.0) and stirring well, it was filtered with a Sterivex GV filter (manufactured by Millipore).
  • This culture solution was applied to a three-column column of HisTrap HP 5 mL (manufactured by Amersham Biosciences) that had been treated with a pyrogen remover PyroCLEAN (manufactured by ALerCHEK) and washed with distilled water for injection at a flow rate of 2 ml / min. I left.
  • the column was washed with 60 ml of 50 mM Tris-HCl buffer (pH 8.0) containing 300 mM NaCl at a flow rate of 1 ml / min, and then 50 mM Tris-HCl buffer (pH 8.0) containing 300 mM NaCl and 500 mM imidazole 50 ml was used to elute the protein adsorbed on the column at a flow rate of 1 ml / min. The eluted solution was added to 1 ml / Fr. In Mini-sorp tube (manufactured by Nunk) to which 10 ⁇ l of 10% Tween 20 had been added in advance.
  • Mini-sorp tube manufactured by Nunk
  • the product was applied to Bioscience) at a flow rate of 1 ml / min, and the column was subsequently washed with this buffer at a flow rate of 1 ml / min to collect protein fractions not adsorbed on the column.
  • the protein adsorbed on the column was eluted at a flow rate of 1 ml / min using 50 mM Tris-HCl buffer (pH 7.5) containing 0.1% CHAPS, 1M NaCl.
  • a 26.5 ml fraction that was not adsorbed on the column was concentrated to 2.0 ml with a centrifugal membrane concentrator Amicon Ultra-15 (Millipore), and then 3,000 r. p. m. Centrifugation for 10 minutes to remove the precipitate.
  • the centrifuged supernatant was stored frozen at ⁇ 80 ° C. until use.
  • the above purification operation HisTrap HP column chromatography, Resource Q column chromatography
  • a rainbow molecular weight marker (manufactured by Amersham Bioscience) was used as a molecular weight marker. After the electrophoresis was completed, silver staining was performed using PhasGel Silver Kit (manufactured by Amersham Bioscience) and PhasSystem, and the results are shown in FIG. It was shown that a protein (mouse Siglec-15-His) having a molecular weight of about 35 kDa was efficiently purified and concentrated in the protein fraction that was not adsorbed on the Resource Q column.
  • the protein in the gel was subjected to electrophoresis under the same conditions as above except that ECL DualVue Western Blotting Markers, manufactured by Amersham Biosciences, was used as the molecular weight marker. And then transferred (blotted) to a PVDF membrane (Hybond-P, Amersham Biosciences).
  • the PVDF membrane was gently shaken for 1 hour at room temperature in 10 ml of a blocking agent (BlockAce, manufactured by Snow Brand Milk Products Co., Ltd.) containing 0.1% Tween 20.
  • HiTrap protein A column chromatography After filtration of 1.8 L of the culture solution of mouse Siglec-15-Fc-expressing 293F cells prepared in Example 2 with a Sterivex GV filter (Millipore) Then, it was applied to a HiTrap protein A 5 mL column (Amersham Biosciences) equilibrated with Dulbecco PBS (D-PBS, Invitrogen) at a flow rate of 5 ml / min.
  • D-PBS Dulbecco PBS
  • the protein adsorbed on the column was eluted with 50 ml of 0.1 M sodium citrate buffer (pH 3.0) at a flow rate of 5 ml / min.
  • the eluted solution was added to a Mini-sorb tube (manufactured by Nunk) at 5 ml / Fr. After the separation, 1.3 ml of 1M Tris was immediately added to neutralize.
  • the fraction (Fr.1, 2) in which the eluted protein was detected was concentrated to 2.5 ml with a centrifugal membrane concentrator Amicon Ultra-15 (Millipore), and then injected with Otsuka containing 0.01% Tween 20 On a PD-10 desalting column (Amersham Biosciences) equilibrated with physiological saline (TO-SS, manufactured by Otsuka Pharmaceutical Co., Ltd.) and eluted with TO-SS to replace the solvent with TO-SS A sample of 3.5 ml was obtained. This sample was stored frozen at ⁇ 80 ° C. until use. The same purification procedure was repeated once more using 2.9 L of 293F cell culture.
  • Electrophoresis and silver staining were performed in the same manner as the purity test of mouse Siglec-15-His described in Example 3, c), and the results were obtained as a result of examination of prepurification conditions on a small scale (applied culture).
  • the pH of the solution is shown in FIG. 3 together with 8.9 or 7.0). It was shown that a protein having a molecular weight of about 55 kDa (mouse Siglec-15-Fc) was efficiently purified and concentrated in the protein fraction eluted from the HiTrap protein A column.
  • the mouse Siglec-15-His protein used as an antigen the mouse Siglec-15-Fc protein prepared in Example 4 or bovine serum albumin (BSA) immobilized on ELISA Carried out.
  • BSA bovine serum albumin
  • reactivity to mouse Siglec-15-His protein and mouse Siglec-15-Fc protein was observed in all four rats (rat Nos. 1 to 4).
  • reactivity to BSA was not observed. From the above, it was confirmed that the antibody titer in the serum of the immunized rat was increased. Two rats proceeded to the cell fusion operation.
  • a 61-well culture supernatant in which survival of the cell-fused hybridoma was confirmed was collected, and mouse Siglec-15-His protein used as an antigen, mouse Siglec-15-Fc protein prepared in Example 4 or BSA was immobilized.
  • Antibody titers were evaluated by phased ELISA, and anti-mouse Siglec-15 monoclonal antibody-producing hybridomas were screened. From the screening results, 12 holes with high antibody titers were selected, and the hybridomas were selected for cloning.
  • Hybridoma # 32A1 was registered at the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology Patent Biological Deposit Center (location: postal code 305-8586, 1st, 1st East, 1-chome, Tsukuba, Ibaraki Prefecture, Japan) on August 28, 2008. Deposited by date and given the accession number FERM BP-10999 under the name of anti-Siglec-15 Hybridoma # 32A1.
  • the binding of rat anti-mouse Siglec-15 monoclonal antibody to mouse Siglec-15 protein was evaluated by ELISA.
  • the mouse Siglec-15-Fc protein prepared in Example 4 was diluted with 0.1 M sodium carbonate buffer (pH 9.5) to a concentration of 5 ⁇ g / ml, and a 96-well plate (manufactured by Nargenunk, catalog number: 430341). 100 ⁇ l / well was added. After standing at room temperature for 1 hour, the solution was removed, and 300 ⁇ l / well of wash buffer (phosphate buffered saline containing 0.05% Tween 20) was added and removed.
  • wash buffer phosphate buffered saline containing 0.05% Tween 20
  • HRP horseradish peroxidase
  • femur and tibia were removed from 5- to 8-week-old male ddY mice, and the soft tissues were removed. Both ends of the femur or tibia were cut off, and D-PBS was injected with a syringe with a 25 gauge injection needle to extrude bone marrow cells and collected in a centrifuge tube. After centrifuging at 100 g for 5 minutes at room temperature and discarding the supernatant, 1 ml of Hemolytic Buffer (RED BLOOD CELL LYSING BUFFER, manufactured by Sigma) was added to the cell pellet and suspended, and left at room temperature for 5 minutes.
  • Hemolytic Buffer RED BLOOD CELL LYSING BUFFER
  • the cell pellet contains 5 ng / ml M-CSF (manufactured by R & D Systems), 10% fetal bovine serum (FBS) 10 ml of MEM- ⁇ medium (Invitrogen) was added and suspended, and aggregates were removed through a cell strainer (40 ⁇ m Nylon, BD Falcon). The cells were transferred to a 75 cm 2 -T flask (for adherent cells) and cultured overnight in a CO 2 incubator. After overnight culture, cells that did not adhere to the T-flask were collected and used as mouse bone marrow non-adherent cells.
  • M-CSF manufactured by R & D Systems
  • FBS fetal bovine serum
  • MEM- ⁇ medium Invitrogen
  • RANKL human RANKL
  • M-CSF containing 10 ng / ml. 100 ⁇ l of ⁇ medium was added.
  • a sample obtained by removing sodium azide from the rat anti-mouse Siglec-15 monoclonal antibody prepared in Example 6 a commercially available rat control IgG (Purified Rat IgG, manufactured by R & D Systems), and a separately prepared rabbit Anti-mouse Siglec-15 polyclonal antibody (No.
  • the polyclonal antibody (No. 3) is an antibody that has already been confirmed to inhibit osteoclast formation in the experimental system described in this Example.
  • the tartrate-resistant acid phosphatase (TRAP) activity of the formed osteoclasts was measured by the following operation.
  • the culture medium in each well of the 96-well plate was removed by aspiration, 50 ⁇ l of 50 mM sodium citrate buffer (pH 6.1) containing 1% Triton X-100 was added to each well, and the plate was shaken for 5 minutes. The cells were solubilized.
  • a substrate solution 50 mM sodium citrate buffer (pH 6.1) containing 5 mg / ml p-nitrophenyl phosphate and 0.46% sodium tartrate
  • 50 ⁇ l of a substrate solution 50 mM sodium citrate buffer (pH 6.1) containing 5 mg / ml p-nitrophenyl phosphate and 0.46% sodium tartrate
  • the enzyme reaction was stopped by adding 50 ⁇ l of 1N sodium hydroxide solution to each well of the 96-well plate. After stopping the enzyme reaction, the absorbance at 405 nm of each well was measured and used as an index of TRAP activity.
  • FIGS In the commercially available rat control IgG, no significant suppression of TRAP activity was observed.
  • # 32A1 antibody # 8A1 antibody and affinity-purified rabbit polyclonal No. 5 were used in the range of 32 ng / ml to 1000 ng / ml.
  • significant suppression of TRAP activity was observed in the range of 63 ng / ml to 1000 ng / ml.
  • the # 3A1, # 34A1, and # 39A1 antibodies also showed dose-dependent suppression of TRAP activity at a relatively high concentration of 500 ng / ml or more. Inhibition of mouse osteoclast formation by other antibodies was not observed.
  • soluble human Siglec-15 protein Preparation of expression construct of soluble human Siglec-15 protein
  • the nucleotide sequence of the portion encoding the extracellular region of human Siglec-15 protein is SEQ ID NO: 15 in the sequence listing, and the amino acid sequence is SEQ ID NO: 16 in the sequence listing. It is.
  • soluble human Siglec-15 protein can be produced in the culture supernatant of animal cells and the like.
  • primers were designed as amplification primers for Gateway entry clone preparation so that the attB1 sequence was added to hSiglec-15-ECD-F and the attB2 sequence was added to hSiglec-15-ECD-R.
  • PCR was performed according to a conventional method using this primer combination and a polynucleotide containing an open reading sequence of human Siglec-15 as a template.
  • the obtained PCR reaction solution was purified using PureLink PCR Purification Kit (manufactured by Invitrogen).
  • the destination vector is pDONM designed to add a V5 epitope and 6 ⁇ His tag to the C-terminal side of the insert, and phIgFc designed to add a human Fc tag to the C-terminal side of the insert.
  • Escherichia coli TOP10 was transformed using the reaction solution obtained by the LR reaction, and the resulting drug-resistant clone was subjected to sequence analysis to confirm whether recombination was correctly performed.
  • sequence analysis As a result of sequence analysis, expression clones (soluble human Siglec-15 / pDONM and soluble human Siglec-15 / phIgFc) correctly recombined with both pDONM and phIgFc were obtained, respectively.
  • mRNA having the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 19 in the sequence listing is transcribed, and the amino acid sequence set forth in SEQ ID NO: 20 in the sequence listing is The protein (human Siglec-15-His) is translated.
  • transfecting human cells with soluble human Siglec-15 / phIgFc mRNA having the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 21 in the sequence listing is transcribed, and the amino acid sequence set forth in SEQ ID NO: 22 in the sequence listing is The protein (human Siglec-15-Fc) is translated.
  • This mixed solution was added to a 25 L bioprocess culture apparatus (WAVE Bioreactor) at 1.0 to 3.4 ⁇ 10 6 cells / ml in FreeStyle 293 Expression Media (Invitrogen) containing 1% penicillin-streptomycin. Was added to FreeStyle 293-F cells (manufactured by Invitrogen). The culture broth was collected after 96-hour (4 days) stirring culture (30 rpm) at 6-12% CO 2 concentration and 37 ° C., and centrifuged to prepare a culture supernatant.
  • This mixed solution was cultured in an Erlenmeyer flask so as to be 1.0 to 3.0 ⁇ 10 6 cells / ml ⁇ 5 L (1 L / five flasks) in FreeStyle 293 Expression Media (manufactured by Invitrogen). Added to the FreeStyle 293-F cells (Invitrogen). The culture broth was collected after rotating culture (125 rotations / min) at 8.0% CO 2 concentration and 37 ° C. for 96 hours (4 days), and centrifuged to prepare a culture supernatant. It is considered that a protein (human Siglec-15-Fc) having a human Fc tag added to the extracellular region C-terminal side of human Siglec-15 is expressed in the culture supernatant thus prepared.
  • a protein human Siglec-15-Fc
  • the product was applied to Bioscience) at a flow rate of 1 ml / min, and the column was subsequently washed with this buffer at a flow rate of 1 ml / min to collect protein fractions not adsorbed on the column.
  • the protein adsorbed on the column was eluted at a flow rate of 1 ml / min using 50 mM Tris-HCl buffer (pH 7.5) containing 0.1% CHAPS, 1M NaCl.
  • a 26.5 ml fraction that was not adsorbed on the column was concentrated to 3.0 ml with a centrifugal membrane concentrator Amicon Ultra-15 (Millipore), followed by 3,000 r. p. m. Centrifugation for 10 minutes to remove the precipitate.
  • PD-10 desalting column manufactured by Amersham Biosciences in which 2.5 ml of the supernatant was previously equilibrated with phosphate buffered saline (pH 7.0, A-PBS) containing 50 mM arginine hydrochloride And eluted with A-PBS to obtain 3.5 ml of sample in which the solvent was replaced with A-PBS.
  • Arginine hydrochloride in the solvent of the prepared sample was added to prevent precipitation of soluble human Siglec-15-His. The centrifuged supernatant was stored frozen at ⁇ 80 ° C. until use. The above purification operation (Resource Q column chromatography) was repeated twice.
  • the electrophoresis was carried out in the same manner as in Example 3 except that a rainbow molecular weight marker (Amersham Bioscience) was used as the molecular weight marker.
  • a rainbow molecular weight marker (Amersham Bioscience) was used as the molecular weight marker.
  • silver staining was performed using PhasGel Silver Kit (manufactured by Amersham Bioscience) and PhasSystem, and the results are shown in FIG. It was shown that a protein (human Siglec-15-His) having a molecular weight of about 35 kDa was efficiently purified and concentrated in the protein fraction that was not adsorbed on the Resource Q column.
  • the binding of rat anti-mouse Siglec-15 monoclonal antibody to human Siglec-15 protein was evaluated by ELISA.
  • the human Siglec-15-Fc protein (substituted with A-PBS) prepared in Example 12, b) was diluted with 0.1 M sodium carbonate buffer (pH 9.5) to a concentration of 5 ⁇ g / ml, and a 96-well plate 100 ⁇ l / hole was added to (Nalgenunk Co., catalog number: 430341).
  • washing buffer phosphate buffered saline containing 0.05% Tween 20
  • Block Ace Block Ace
  • the rat anti-mouse Siglec-15 monoclonal antibody or rat control IgG (manufactured by R & D Systems) prepared in Example 6 was washed with ELISA buffer (12.5% block). Ace, phosphate buffered saline containing 0.05% Tween 20) diluted to a final concentration of 1.28 to 20,000 ng / ml (5-fold dilution series), added 100 ⁇ l / well did. After standing at room temperature for 1 hour, the solution was removed and the plate was washed 3 times with 300 ⁇ l / well of washing buffer.
  • HRP horseradish peroxidase
  • ELISA buffer diluted 1,000 times with an ELISA buffer was added at 100 ⁇ l / well, and left at room temperature for 1 hour.
  • the color was developed using a peroxidase coloring kit (manufactured by Sumitomo Bakelite) according to the instructions attached to the kit. After color development, the absorbance at 492 nm was measured using a microplate reader (manufactured by Nihon Molecular Device Co., Ltd.).
  • Normal human osteoclast precursor cells Normal Human Natural Osteoblast Precursor Cells, purchased from Sanko Junyaku, catalog number 2T-110) are seeded in a 96-well plate at 1 ⁇ 10 4 cells / well according to the protocol attached to the cells. did.
  • the medium is an OPGM additive factor set (purchased from Sanko Junyaku) containing fetal bovine serum (final concentration 10%), human RANKL (final concentration 66 ng / ml), human M-CSF (final concentration 33 ng / ml), etc.
  • the basic medium for osteoclast precursor cells (OPBM, purchased from Sanko Junyaku, catalog number PT-8201) supplemented with catalog number PT-9501) was used.
  • OPBM The basic medium for osteoclast precursor cells
  • rat anti-mouse Siglec-15 monoclonal antibody prepared in Example 6 and rat control IgG were added to a final concentration of 30 ⁇ g / ml, and were added in a CO 2 incubator. Cultured for 4 days. After the culture, the supernatant was removed, and 10% neutral formalin was added to fix the cells.
  • the # 41B1 antibody also remarkably suppressed the formation of giant osteoclasts that were highly cell-fused.
  • rat anti-mouse Siglec-15 monoclonal antibodies # 1A1 antibody, etc.
  • rat control IgG rat control IgG
  • rat anti-mouse Siglec-15 monoclonal antibody # 32A1
  • Normal human osteoclast precursor cells Normal Human Natural Osteoblast Precursor Cells, purchased from Sanko Junyaku, catalog number 2T-110) are seeded in a 96-well plate at 1 ⁇ 10 4 cells / well according to the protocol attached to the cells. did.
  • the medium was an OPGM additive factor set (from Sanko Junyaku) containing fetal bovine serum (final concentration 10%), human RANKL (final concentration 68.4 ng / ml), human M-CSF (final concentration 33 ng / ml), etc.
  • the basic medium for osteoclast precursor cells (OPBM, purchased from Sanko Junyaku, catalog number PT-8201) supplemented with catalog number PT-9501) was used.
  • OPBM The basic medium for osteoclast precursor cells
  • PT-8201 The basic medium for osteoclast precursor cells
  • catalog number PT-9501 The basic medium for osteoclast precursor cells was used.
  • the rat anti-mouse Siglec-15 monoclonal antibody (# 32A1 antibody) prepared in Example 6 was added to a final concentration of 0.1, 0.3, 1, 3 ⁇ g / ml.
  • the cells were cultured for 3 days in a CO 2 incubator. After the culture, the supernatant was removed, and 10% neutral formalin was added to fix the cells.
  • TRAP staining solution (0.27 mM naphthol AS-MX phosphate (manufactured by Sigma), 1.6 mM Fast red violet salt LB salt (manufactured by Sigma), 1% dimethylformamide, 100 ⁇ l / well of 50 mM sodium tartrate, 0.1 M sodium acetate buffer (pH 5.0)) was added and allowed to react at room temperature for 5 minutes.
  • the cells were washed twice with distilled water and the cells were observed under a microscope (FIG. 11).
  • TRAP-positive multinucleated osteoclast formation was suppressed in a concentration-dependent manner in the range of # 32A1 antibody from 0.3 ⁇ g / ml to 3 ⁇ g / ml.
  • Osteoclasts are known to degrade type I collagen, a component of bone tissue, by releasing proteases such as cathepsin K.
  • OsteoLyce Assay Kit (manufactured by Lonza, catalog number PA-1500) provides a 96-well plate (96-well OsteoLyse cell culture plate) coated with human collagen to which europium is bound. By measuring the amount of fluorescent collagen fragments released into the supernatant when cultivated, it is possible to evaluate the bone resorption activity of osteoclasts in vitro.
  • Normal human osteoclast progenitor cells Normal Human Natural Osteoblast Precursor Cells, purchased from Sanko Junyaku, catalog number 2T-110, according to the protocol attached to the cells, 96-well OsteoLyce cell culture plate with 1 ⁇ 10 4 cells / well Sowing.
  • the medium is an OPGM additive factor set (purchased from Sanko Junyaku) containing fetal bovine serum (final concentration 10%), human RANKL (final concentration 68.4 ng / ml), human M-CSF (final concentration 33 ng / ml), etc.
  • the basic medium for osteoclast precursor cells (OPBM, purchased from Sanko Junyaku, catalog number PT-8201) supplemented with catalog number PT-9501) was used.
  • the rat anti-mouse Siglec-15 monoclonal antibody (# 32A1 antibody) prepared in Example 6 was added to a final concentration of 0.1, 0.3, 1, 3 ⁇ g / ml, The cells were cultured for 3 days in a CO 2 incubator. 10 ⁇ l of the culture supernatant was collected, 200 ⁇ l of Fluorophore Release Reagent attached to OsteoLyse Assay Kit was added, and fluorescence intensity was measured using a fluorescence plate reader (ARVO MX, manufactured by PerkinElmer) (Excitation: 340 nm, Emission: 615 nm). The amount of free fluorescent collagen fragments released into the culture supernatant was quantified (FIG. 12).
  • Biological activity evaluation of rat anti-mouse Siglec-15 monoclonal antibody using ovariectomized rats a) Protocol for animal experiments 12-week-old female F344 rats (obtained from Charles River, Japan) were treated with bilateral ovariectomy and treated with solvent The rats were divided into three groups: a rat anti-mouse Siglec-15 monoclonal antibody # 8A1 antibody administration group and a # 32A1 antibody administration group. One group was also set for the sham operation group.
  • the rat anti-mouse Siglec-15 monoclonal antibody # 8A1 antibody and # 32A1 antibody prepared in Example 6 were administered intraperitoneally at a dose of 1 mg / kg three times a week for 4 weeks from the day after the operation. Repeated administration. PBS containing 0.01% Tween 20 was intraperitoneally administered as a solvent to the solvent administration group and the sham operation group. Four weeks after the start of administration, urine was collected under fasting for 24 hours, and urine samples were stored at ⁇ 80 ° C. until measurement. After urine collection, the rats were euthanized and the lumbar spine was removed.
  • the urine specimen that had been cryopreserved was thawed, and insoluble substances were precipitated by centrifugation to obtain a supernatant.
  • the amount of deoxypyridinoline contained in the supernatant was measured using Osteolinks “DPD” (DS Pharma Biomedical).
  • the creatinine content in the supernatant was also measured using creatinine-Test Wako (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.), and the amount of deoxypyridinoline corrected for creatinine was calculated. The results are shown in FIG.
  • Escherichia coli Rosetta-gamiB (DE3) (Novagen, catalog number: 71136-4) was transformed and cultured in TB medium (Invitrogen, catalog number: 22711-022). After culturing, the sonicated cells were centrifuged, and the supernatant was purified with a HisTrap HP column (GE Healthcare, catalog number: 17-5247-01).
  • a 96-well Maxi-sorb plate was washed 5 times with 0.05% Tween-20 (Bio-Rad, catalog number: 170-6531) / PBS solution (hereinafter referred to as PBST solution), and then an HRP-labeled goat anti-rat IgG antibody (Beckman Coulter, catalog number: 732664, diluted 2,000 times) was added in an amount of 100 ⁇ l and reacted at room temperature for 1 hour. After washing 5 times with PBST solution, ELISA POD substrate B. T. T. S. 100 ⁇ l of the coloring solution of the kit (Nacalai Tesque, catalog number: 14351-80) was added and allowed to react for 30 minutes.
  • the absorbance at 405 nm was measured.
  • the epitope of rat anti-mouse Siglec-15 monoclonal antibody # 32A1 is the human Siglec-15 V-set domain (NCBI protein database ACCESSION No. NP — 998767 amino acid sequence or SEQ ID NO: 2 of the amino acid sequence set forth in SEQ ID NO: 2). To 165th amino acid residue) (FIG. 14).
  • the UPM attached to SMART RACE cDNA Amplification Kit (Clontech) was used, and RG2AR2 was synthesized from the sequence of the constant region of the rat heavy chain (IgG2a) in the database and then synthesized according to a conventional method.
  • the variable region cDNA of the # 32A1 heavy chain gene was amplified by 5′-RACE PCR using the primer combination and the cDNA synthesized in b) (5′-RACE-Ready cDNA) as a template.
  • PCR uses Advantage 2 PCR Kit (Clontech), and the thermal cycler is set at a temperature cycle of 94 ° C for 1 minute, followed by 5 cycles of 94 ° C for 0.5 minutes and 72 ° C for 3 minutes.
  • variable region cDNA of # 32A1 light chain gene by 5'-RACE PCR UPM (Universal Primer A Mix: SMART RACE cDNA) (Amplification Kit included) And 5′-CATGCTGTACCGTCTGTCTTTGCTGTCCTGATCAG-3 ′ (RKR2: SEQ ID NO: 24 in the Sequence Listing), UPM is the one attached to SMART RACE cDNA Amplification Kit (Clontech), and RKR2 is a database After designing from the sequence of the constant region of rat light chain ( ⁇ chain), it was synthesized according to a conventional method.
  • variable region cDNA of the # 32A1 light chain gene was amplified by 5′-RACE PCR using the primer combination and the cDNA synthesized in b) (5′-RACE-Ready cDNA) as a template.
  • PCR uses Advantage 2 PCR Kit (Clontech), and the thermal cycler is set at a temperature cycle of 94 ° C for 1 minute, followed by 5 cycles of 94 ° C for 0.5 minutes and 72 ° C for 3 minutes.
  • the temperature cycle of “94 ° C. for 0.5 min, 70 ° C. for 0.5 min, 72 ° C. for 3 min” was repeated 5 times, and then “94 ° C. for 0.5 min, 68 ° C. for 0 min. .5 minutes, 3 minutes at 72 ° C. ”was repeated 20 times, and then the temperature was kept at 4 ° C.
  • the light chain variable region cDNA amplified in d) was purified using MinElute PCR Purification Kit (QIAGEN), followed by sequence analysis of the DNA sequence.
  • QIAGEN MinElute PCR Purification Kit
  • An oligonucleotide having the sequence of 5′-TCCAGTGCTAACTGTTCCG-3 ′ was designed from the sequence of the constant region of the rat light chain ( ⁇ chain) in the database and then synthesized according to a conventional method.
  • the cDNA containing the heavy chain variable region obtained by sequence analysis has the base sequence shown in SEQ ID NO: 27 in the sequence listing, and encodes the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 28 in the sequence listing.
  • the amino acid sequence represented by amino acid numbers 1 to 19 of SEQ ID NO: 28 is a secretion signal
  • the amino acid sequence represented by amino acid numbers 20 to 140 is a heavy chain variable region
  • the amino acid sequence represented by amino acid numbers 141 to 167 is a heavy chain constant region It corresponds to (part).
  • the heavy chain variable region includes CDRH1 (DYFMN) consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 44, CDRH2 (QIRNKYTYTFYAAESLEEG) consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 45, and CDRH3 consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 46. (SLTGGGDYFDY).
  • the cDNA containing the light chain variable region has the base sequence described in SEQ ID NO: 29 in the sequence listing and encodes the amino acid sequence described in SEQ ID NO: 30 in the sequence listing.
  • the amino acid sequence represented by amino acid numbers 1 to 20 of SEQ ID NO: 30 is a secretion signal
  • the amino acid sequence represented by amino acid numbers 21 to 132 is a light chain variable region
  • the amino acid sequence represented by amino acid numbers 133 to 139 is a light chain constant region It corresponds to (part).
  • the light chain variable region is composed of CDRL1 (RASQSVTGISGSFFIH) consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 47
  • CDRL2 RASNLAS
  • CDRL3 consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 49.
  • fragment B 5′-CCACCGCGCCCTGTTAGCGCGCATTAAGC-3 ′ (primer EFF1: SEQ ID NO: 31 in the sequence listing) 5′-AAACCCGGGAGCTTTTTGCAAAAGCCCTAGGG-3 ′ (primer EFsmaR: SEQ ID NO: 32)
  • fragment B 5′-CCACCGCGCCCTGTTAGCGCGCATTAAGC-3 ′
  • fragment B 5′-AAACCCGGGAGCTTTTTGCAAAAGCCCTAGGG-3 ′
  • fragment A + B The obtained DNA fragment (hereinafter referred to as “fragment A + B”) in which fragment A and fragment B were combined was digested with restriction enzymes KpnI and SmaI, and plasmid pEF6 / V5-HisB digested with restriction enzymes KpnI and SmaI ( And a human light chain expression vector pEF6KCL having a signal sequence, a cloning site, a human kappa chain constant region, and a human polyA addition signal sequence downstream of the EF1 promoter was constructed.
  • Human heavy chain expression vector pEF1 / FCCU-1 A DNA fragment (SEQ ID NO: 34 in the sequence listing) containing the human IgG1 signal sequence and the amino acid sequence of the constant region was ligated with restriction enzymes NheI and PmeI.
  • Human heavy chain expression vector pEF1 / FCCU which is digested and ligated with plasmid pEF1 / KCL digested with NheI and PmeI, and has a signal sequence, a cloning site, a human heavy chain constant region, and a human polyA addition signal sequence downstream of the EF1 promoter. -1 was constructed.
  • primers were designed so that a restriction enzyme BlpI recognition sequence was added in order to incorporate the PCR product into pEF1 / FCCU-1.
  • PCR was performed according to a conventional method using the heavy chain variable region cDNA purified in Example 17, e) as the primer combination and template.
  • the PCR product was purified using MinElute PCR Purification Kit (QIAGEN) and then digested with restriction enzyme BlpI (NEW ENGLAND BIOLABS).
  • a # 32A1 human chimeric antibody heavy chain expression construct was constructed by inserting into the cleaved site. The sequence of the insert was confirmed by sequence analysis.
  • An oligonucleotide having the sequence 5′-TAATACGACTCACTATAGG-3 ′ (F11: SEQ ID NO: 37 in the sequence listing) was synthesized according to a conventional method.
  • the expression vector into which the insert was correctly inserted was named “32A1H / pEF1 / FCCU”.
  • primers were designed so that a restriction enzyme NdeI recognition sequence was added to 32A1LF and a restriction enzyme BsiWI recognition sequence was added to 32A1LR in order to incorporate the PCR product into pEF6KCL.
  • PCR was performed according to a conventional method using the light chain variable region cDNA purified in Example 17, e) as the primer combination and template. After the PCR product was purified using MinElute PCR Purification Kit (QIAGEN), the DNA fragment digested with restriction enzymes NdeI (TAKARA) and BsiWI (NEW ENGLAND BIOLABS) was used to convert pEF6KCL into restriction enzyme NdeI (TAKARA).
  • # 32A1 human chimeric antibody light chain expression construct was constructed by inserting it into the site cut with BsiWI (NEW ENGLAND BIOLABS). The sequence of the insert was confirmed by sequence analysis. As a primer for sequencing, primer F11 described in SEQ ID NO: 37 in the sequence listing was used. The expression vector into which the insert was correctly inserted was named “32A1L / pEF6KCL”.
  • the # 32A1 human chimeric antibody heavy chain gene prepared in b) has the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 40 in the Sequence Listing and encodes the amino acid sequence set forth in SEQ ID NO: 41 in the Sequence Listing.
  • the amino acid sequence represented by amino acid numbers 1 to 19 of SEQ ID NO: 41 is a secretion signal
  • the amino acid sequence represented by amino acid numbers 20 to 140 is a heavy chain variable region
  • the amino acid sequence represented by amino acid numbers 141 to 470 is a heavy chain constant region It corresponds to.
  • the # 32A1 human chimeric antibody light chain gene prepared in c) has the nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 42 in the sequence listing and encodes the amino acid sequence set forth in SEQ ID NO: 43 in the sequence listing. .
  • the amino acid sequence represented by amino acid numbers 1 to 20 of SEQ ID NO: 43 is a secretion signal
  • the amino acid sequence represented by amino acid numbers 21 to 132 is a light chain variable region
  • the amino acid sequence represented by amino acid numbers 133 to 237 is a light chain constant region It corresponds to.
  • the # 32A1 human chimeric antibody heavy chain expression vector 32A1H / pEF1 / FCCU and the # 32A1 human chimeric antibody light chain expression vector 32A1L / pEF6KCL prepared in Example 18 were prepared using the PureLink HiPure Plasmid kit (Invitrogen). 32A1H / pEF1 / FCCU (15 ⁇ g) and 32A1L / pEF6KCL (45 ⁇ g) were suspended in 1 ml of Opti-ProSFM medium (Invitrogen), and added to 1 ml of Polyethylenemine / OptiProSFM mixture left at room temperature for 5 minutes, and further allowed to stand at room temperature for 5 minutes. did.
  • Opti-ProSFM medium Invitrogen
  • Mouse Osteoclast Formation Test of Human Chimeric Antibody of Rat Anti-Mouse Siglec-15 Monoclonal Antibody # 32A1 and Evaluation of Biological Activity in Human Osteoclast Formation Test a) Mouse Osteoclast Formation Test Rat anti-mouse prepared in Example 19 The effect of mouse bone marrow non-adherent cells on osteoclast differentiation was examined using a human chimeric antibody of Siglec-15 monoclonal antibody # 32A1. Mouse bone marrow non-adherent cells prepared by the method of Example 8 were prepared at 1.5 ⁇ 10 5 cells / ml in ⁇ -MEM medium containing 10% FBS and 10 ng / ml M-CSF (R & D Systems).
  • the tartrate-resistant acid phosphatase (TRAP) activity of the formed osteoclasts was measured by the method described in Example 9. After stopping the enzyme reaction, the absorbance at 405 nm of each well was measured and used as an index of TRAP activity. The results are shown in FIG. In the human chimeric antibody of # 32A1 antibody and rat anti-mouse Siglec-15 monoclonal antibody # 32A1, a dose-dependent suppression of TRAP activity was observed at a concentration of 50 ng / ml or more.
  • the human chimeric antibody of the rat anti-mouse Siglec-15 monoclonal antibody # 32A1 has the same activity of inhibiting the osteoclast formation (osteoclast differentiation and maturation) of the mouse as the rat # 32A1 antibody.
  • Normal human osteoclast precursor cells Normal Human Natural Osteoblast Precursor Cells, purchased from Sanko Junyaku, catalog number 2T-110) are seeded in a 96-well plate at 1 ⁇ 10 4 cells / well according to the protocol attached to the cells. did.
  • the medium is an OPGM additive factor set (purchased from Sanko Junyaku) containing fetal bovine serum (final concentration 10%), human RANKL (final concentration 66 ng / ml), human M-CSF (final concentration 33 ng / ml), etc.
  • the basic medium for osteoclast precursor cells (OPBM, purchased from Sanko Junyaku, catalog number PT-8201) supplemented with catalog number PT-9501) was used.
  • OPBM The basic medium for osteoclast precursor cells
  • the human chimeric antibody of rat anti-mouse Siglec-15 monoclonal antibody # 32A1 prepared in Example 19 was added to a final concentration of 0.3, 1, 3, 10 ⁇ g / ml, and CO 2 was added.
  • the cells were cultured for 3 days in an incubator. After the culture, the supernatant was removed, and 10% neutral formalin was added to fix the cells.
  • 1LK3 was selected as having the highest sequence homology among antibodies that are similarly defective in the framework for the light chain variable region of # 32A1.
  • 1AD0 was also selected as having the highest sequence homology to the variable region of the heavy chain of # 32A1.
  • the three-dimensional structure of the framework region was created by combining the coordinates of 1LK3 and 1AD0 corresponding to the # 32A1 light and heavy chains to obtain a “framework model”.
  • the CDR of # 32A1 is described by Thornton et al. According to the classification of (J. Mol. Biol., 263, 800-815, (1996)), CDRL1, CDRL2, CDRL3, CDRH1 and CDRH2 were assigned to clusters 15A, 7A, 9A, 10A, 12B, respectively.
  • CDRH3 was classified as k (8) C using the H3 rule (FEBS letter 399, 1-8 (1996)). A representative conformation for each CDR was then incorporated into the framework model.
  • amino acid residues in the framework region for M37GO37′CL were aligned with the amino acid residues for # 32A1, and the positions where different amino acids were used were identified. The positions of these residues are analyzed using the # 32A1 3D model constructed above, and the donor residues to be grafted on the acceptor are described by Queen et al. (Proc. Natl. Acad. Sci. USA 86, 1000029-10033 (1989)).
  • the sequence of the framework region of # 32A1 was compared with all human frameworks of IgBLAST (Nuc. Acid Res. 36, D25-D30 (2007)), and as a result, the L chain was identified by AAB34430 for 79 framework regions. Selected as acceptor due to% sequence homology. The heavy chain was selected as an acceptor because CAF 31288 was due to 78% sequence homology to the framework regions. The L chain was aligned with the amino acid residues in the framework region for AAB34430 and the H chain for CAF31288 with the amino acid residues for # 32A1 to identify the position where the different amino acids were used.
  • the amino acid sequence of the h # 32A1-T1H type heavy chain is described in SEQ ID NO: 51 of the Sequence Listing.
  • the sequence consisting of amino acid residues 1 to 19 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 51, the sequence consisting of amino acid residues 20 to 140, and the sequence consisting of amino acid residues 141 to 470 are a signal sequence and a heavy chain, respectively. It corresponds to the variable region and heavy chain constant region.
  • the nucleotide sequence encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 51 is set forth in SEQ ID NO: 50 of the Sequence Listing.
  • the sequence consisting of the 1st to 57th nucleotides, the sequence consisting of the 58th to 420th nucleotides, and the sequence consisting of the 421th to 1410th nucleotides of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 50 are the signal sequence, heavy chain variable region sequence and heavy chain constant, respectively.
  • the normal region sequence is encoded.
  • the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 50 and the amino acid sequence of SEQ ID NO: 51 are also shown in FIG.
  • h # 32A1-T2H type heavy chain Amino acid number 23 (isoleucine), 24 (leucine), 26 (threonine), 32 (lysine), 43 (threonine), 95 (aspartic acid), 96 (serine) of the # 32A1 heavy chain shown in SEQ ID NO: 28 of the Sequence Listing ), 97 (glutamic acid), 98 (serine), 100 (valine), 104 (valine), 114 (isoleucine), 118 (threonine), 134 (valine), 135 (methionine), 140 (leucine), leucine,
  • the humanized # 32A1 heavy chain designed with replacement of valine, serine, glutamine, alanine, asparagine, alanine, lysine, asparagine, leucine, methionine, valine, alanine, threonine, leucine, serine is replaced with “h # 32A1-T2H Named
  • the amino acid sequence of the h # 32A1-T2H type heavy chain is described in SEQ ID NO: 53 of the Sequence Listing.
  • the sequence consisting of amino acid residues 1 to 19 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 53, the sequence consisting of amino acid residues 20 to 140, and the sequence consisting of amino acid residues 141 to 470 are a signal sequence and a heavy chain, respectively. It corresponds to the variable region and heavy chain constant region.
  • the nucleotide sequence encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 53 is set forth in SEQ ID NO: 52 of the Sequence Listing.
  • the sequence consisting of the 1st to 57th nucleotides, the sequence consisting of the 58th to 420th nucleotides, and the sequence consisting of the 421th to 1410th nucleotides of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 52 are the signal sequence, heavy chain variable region sequence and heavy chain constant, respectively.
  • the normal region sequence is encoded.
  • the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 52 and the amino acid sequence of SEQ ID NO: 53 are also shown in FIG.
  • h # 32A1-T3H type heavy chain Amino acid number 24 (leucine), 26 (threonine), 32 (lysine), 104 (valine), 114 (isoleucine), 134 (valine), 135 (methionine) of the # 32A1 heavy chain shown in SEQ ID NO: 28 of the Sequence Listing , 140 (leucine) was replaced with valine, serine, glutamine, methionine, valine, threonine, leucine, serine, and the humanized # 32A1 heavy chain was named “h # 32A1-T3H type heavy chain”. .
  • the amino acid sequence of the h # 32A1-T3H type heavy chain is described in SEQ ID NO: 55 in the sequence listing.
  • the sequence consisting of the 1st to 19th amino acid residues, the sequence consisting of the 20th to 140th amino acid residues, and the sequence consisting of the 141st to 470th amino acid residues of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 55 are respectively a signal sequence and a heavy chain It corresponds to the variable region and heavy chain constant region.
  • the nucleotide sequence encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 55 is described in SEQ ID NO: 54 of the Sequence Listing.
  • the sequence consisting of the 1st to 57th nucleotides, the sequence consisting of the 58th to 420th nucleotides, and the sequence consisting of the 421th to 1410th nucleotides of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 54 are the signal sequence, heavy chain variable region sequence and heavy chain constant, respectively.
  • the normal region sequence is encoded.
  • the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 54 and the amino acid sequence of SEQ ID NO: 55 are also shown in FIG.
  • h # 32A1-T5H type heavy chain Amino acid number 23 (isoleucine), 24 (leucine), 26 (threonine), 32 (lysine), 61 (glutamic acid), 89 (valine), 95 (aspartic acid) of the # 32A1 heavy chain shown in SEQ ID NO: 28 of the Sequence Listing ), 97 (glutamic acid), 99 (serine), 104 (valine), 105 (serine), 114 (isoleucine), 134 (valine), 135 (methionine), 140 (leucine), respectively, valine, valine, serine, glutamine , Glycine, phenylalanine, asparagine, lysine, threonine, methionine, asparagine, valine, threonine, leucine, serine designed humanized # 32A1 heavy chain was named “h # 32A1-T5H type heavy chain” .
  • the amino acid sequence of the h # 32A1-T5H type heavy chain is described in SEQ ID NO: 57 in the sequence listing.
  • the sequence consisting of amino acid residues 1 to 19 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 57, the sequence consisting of amino acid residues 20 to 140, and the sequence consisting of amino acid residues 141 to 470 are a signal sequence and a heavy chain, respectively. It corresponds to the variable region and heavy chain constant region.
  • the nucleotide sequence encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 57 is set forth in SEQ ID NO: 56 of the Sequence Listing.
  • the sequence consisting of nucleotides 1 to 57, the sequence consisting of nucleotides 58 to 420, and the sequence consisting of nucleotides 421 to 1410 of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 56 are a signal sequence, a heavy chain variable region sequence and a heavy chain constant, respectively.
  • the normal region sequence is encoded.
  • the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 56 and the amino acid sequence of SEQ ID NO: 57 are also shown in FIG.
  • h # 32A1-T6H type heavy chain Amino acid number 23 (isoleucine), 24 (leucine), 26 (threonine), 32 (lysine), 95 (aspartic acid), 97 (glutamic acid), 99 (serine) of the # 32A1 heavy chain shown in SEQ ID NO: 28 of the Sequence Listing ), 104 (valine), 114 (isoleucine), 134 (valine), 135 (methionine) and 140 (leucine), respectively, valine, valine, serine, glutamine, asparagine, lysine, threonine, methionine, valine, threonine, leucine, The humanized # 32A1 heavy chain designed with replacement with serine was named “h # 32A1-T6H type heavy chain”.
  • the amino acid sequence of the h # 32A1-T6H type heavy chain is described in SEQ ID NO: 59 in the sequence listing.
  • the sequence consisting of the 1st to 19th amino acid residues, the sequence consisting of the 20th to 140th amino acid residues, and the sequence consisting of the 141st to 470th amino acid residues of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 59 are respectively a signal sequence and a heavy chain It corresponds to the variable region and heavy chain constant region.
  • the nucleotide sequence encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 59 is set forth in SEQ ID NO: 58 of the Sequence Listing.
  • the sequence consisting of the 1st to 57th nucleotides, the sequence consisting of the 58th to 420th nucleotides, and the sequence consisting of the 421th to 1410th nucleotides of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 58 are the signal sequence, heavy chain variable region sequence and heavy chain constant, respectively.
  • the normal region sequence is encoded.
  • the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 58 and the amino acid sequence of SEQ ID NO: 59 are also shown in FIG.
  • the amino acid sequence of the h # 32A1-T7H type heavy chain is described in SEQ ID NO: 72 in the sequence listing.
  • the sequence consisting of amino acid residues 1 to 121 and the sequence consisting of amino acid residues 122 to 451 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 72 correspond to the heavy chain variable region and heavy chain constant region, respectively.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 72 is also shown in FIG.
  • the amino acid sequence of the h # 32A1-T8H type heavy chain is described in SEQ ID NO: 73 in the sequence listing.
  • the sequence consisting of amino acid residues 1 to 121 and the sequence consisting of amino acid residues 122 to 451 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 73 correspond to the heavy chain variable region and heavy chain constant region, respectively.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 73 is also shown in FIG.
  • h # 32A1-T9H type heavy chain Amino acid number 23 (isoleucine), 24 (leucine), 26 (threonine), 32 (lysine), 43 (threonine), 61 (glutamic acid), 89 (valine) of the # 32A1 heavy chain shown in SEQ ID NO: 28 of the Sequence Listing 95 (aspartic acid), 96 (serine), 97 (glutamic acid), 98 (serine), 100 (valine), 104 (valine), 114 (isoleucine), 118 (threonine), 134 (valine), 135 (methionine) ), 140 (leucine) are designed to replace leucine, valine, serine, glutamine, alanine, glycine, phenylalanine, asparagine, alanine, lysine, asparagine, leucine, methionine, valine, alanine, threonine, leucine, serine
  • the amino acid sequence of the h # 32A1-T9H type heavy chain is set forth in SEQ ID NO: 74 in the sequence listing.
  • the sequence consisting of amino acid residues 1 to 121 and the sequence consisting of amino acid residues 122 to 451 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 74 correspond to the heavy chain variable region and heavy chain constant region, respectively.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 74 is also shown in FIG.
  • the amino acid sequence of the h # 32A1-T10H type heavy chain is described in SEQ ID NO: 75 in the sequence listing.
  • the sequence consisting of amino acid residues 1 to 121 and the sequence consisting of amino acid residues 122 to 451 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 75 correspond to the heavy chain variable region and heavy chain constant region, respectively.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 75 is also shown in FIG.
  • the amino acid sequence of the h # 32A1-T11H type heavy chain is described in SEQ ID NO: 76 in the sequence listing.
  • the sequence consisting of amino acid residues 1 to 121 and the sequence consisting of amino acid residues 122 to 451 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 76 correspond to the heavy chain variable region and the heavy chain constant region, respectively.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 76 is also shown in FIG.
  • amino acid sequence of the h # 32A1-T12H type heavy chain is described in SEQ ID NO: 77 in the Sequence Listing.
  • the sequence consisting of amino acid residues 1 to 121 and the sequence consisting of amino acid residues 122 to 451 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 77 correspond to the heavy chain variable region and heavy chain constant region, respectively.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 77 is also shown in FIG.
  • the amino acid sequence of the h # 32A1-T1L type light chain is set forth in SEQ ID NO: 61 in the sequence listing.
  • the sequence consisting of amino acid residues 1 to 20 in the amino acid sequence of SEQ ID NO: 61, the sequence consisting of amino acid residues 21 to 133, and the sequence consisting of amino acid residues 134 to 238 are a signal sequence and a light chain, respectively. It corresponds to the variable region and the light chain constant region.
  • the nucleotide sequence encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 61 is set forth in SEQ ID NO: 60 of the Sequence Listing.
  • the sequence consisting of the 1st to 60th nucleotides of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 60, the sequence consisting of the 61st to 399th nucleotides, and the sequence consisting of the 400th to 714th nucleotides are respectively a signal sequence, a light chain variable region sequence and a light chain constant.
  • the normal region sequence is encoded.
  • the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 60 and the amino acid sequence of SEQ ID NO: 61 are also shown in FIG.
  • h # 32A1-T2L type light chain Between amino acids 24 (leucine), 29 (alanine), 29-30 (deleted residue), 36 (glutamine), 66 (glutamine), 81 (isoleucine) of the # 32A1 light chain shown in SEQ ID NO: 30 of the Sequence Listing ), 99 (asparagine), 100 (proline), 101 (valine), 104 (aspartic acid), 106 (isoleucine), 108 (threonine), 127 (leucine), 129 (leucine), 130 (arginine), 132 ( Humanized # 32A1 light chain designed to replace alanine) with methionine, aspartic acid, serine, glutamic acid, proline, valine, serine, serine, leucine, glutamic acid, valine, valine, valine, isoleucine, lysine, threonine, respectively Is named “h # 32A1-T2L type light chain”.
  • the amino acid sequence of the h # 32A1-T2L type light chain is set forth in SEQ ID NO: 63 in the sequence listing.
  • the sequence consisting of amino acid residues 1 to 20 in the amino acid sequence of SEQ ID NO: 63, the sequence consisting of amino acid residues 21 to 133, and the sequence consisting of amino acid residues 134 to 238 are respectively a signal sequence and a light chain It corresponds to the variable region and the light chain constant region.
  • the nucleotide sequence encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 63 is set forth in SEQ ID NO: 62 of the Sequence Listing.
  • the sequence consisting of the 1st to 60th nucleotides of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 62, the sequence consisting of the 61st to 399th nucleotides, and the sequence consisting of the 400th to 714th nucleotides are respectively a signal sequence, a light chain variable region sequence and a light chain constant.
  • the normal region sequence is encoded.
  • the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 62 and the amino acid sequence of SEQ ID NO: 63 are also shown in FIG.
  • h # 32A1-T3L type light chain Between amino acid numbers 29 (alanine) and 29-30 (deleted residue), 36 (glutamine), 99 (asparagine), 100 (proline), 101 (valine) of the # 32A1 light chain shown in SEQ ID NO: 30 in the Sequence Listing ), 104 (aspartic acid), 106 (isoleucine), 127 (leucine), 129 (leucine), 130 (arginine), and 132 (alanine) aspartic acid, serine, glutamic acid, serine, serine, leucine, glutamic acid, valine, respectively.
  • the humanized # 32A1 light chain designed with replacement with valine, isoleucine, lysine and threonine was named “h # 32A1-T3L type light chain”.
  • the amino acid sequence of the h # 32A1-T3L type light chain is set forth in SEQ ID NO: 65 in the sequence listing.
  • the sequence consisting of amino acid residues 1 to 20 in the amino acid sequence of SEQ ID NO: 65, the sequence consisting of amino acid residues 21 to 133, and the sequence consisting of amino acid residues 134 to 238 are a signal sequence and a light chain, respectively. It corresponds to the variable region and the light chain constant region.
  • the nucleotide sequence encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 65 is set forth in SEQ ID NO: 64 in the sequence listing.
  • the sequence consisting of the 1st to 60th nucleotides, the sequence consisting of the 61st to 399th nucleotides, and the sequence consisting of the 400th to 714th nucleotides of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 64 are respectively a signal sequence, a light chain variable region sequence and a light chain constant. The normal region sequence is encoded.
  • the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 64 and the amino acid sequence of SEQ ID NO: 65 are also shown in FIG.
  • the amino acid sequence of the h # 32A1-T4L type light chain is set forth in SEQ ID NO: 67 in the sequence listing.
  • the sequence consisting of amino acid residues 1 to 20 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 67, the sequence consisting of amino acid residues 21 to 132, the sequence consisting of amino acid residues 133 to 237 are respectively a signal sequence and a light chain It corresponds to the variable region and the light chain constant region.
  • the nucleotide sequence encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 67 is set forth in SEQ ID NO: 66 of the Sequence Listing.
  • the sequence consisting of the 1st to 60th nucleotides, the sequence consisting of the 61st to 396th nucleotides, and the sequence consisting of the 400th to 711th nucleotides of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 66 are respectively a signal sequence, a light chain variable region sequence and a light chain constant.
  • the normal region sequence is encoded.
  • the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 66 and the amino acid sequence of SEQ ID NO: 67 are also shown in FIG.
  • the amino acid sequence of the h # 32A1-T5L type light chain is set forth in SEQ ID NO: 69 in the sequence listing.
  • the sequence consisting of amino acid residues 1 to 20 in the amino acid sequence of SEQ ID NO: 69, the sequence consisting of amino acid residues 21 to 133, and the sequence consisting of amino acid residues 134 to 238 are respectively a signal sequence and a light chain It corresponds to the variable region and the light chain constant region.
  • the nucleotide sequence encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 69 is set forth in SEQ ID NO: 68 of the Sequence Listing.
  • the sequence consisting of the 1st to 60th nucleotides of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 68, the sequence consisting of the 61st to 399th nucleotides, and the sequence consisting of the 400th to 714th nucleotides are respectively a signal sequence, a light chain variable region sequence and a light chain constant.
  • the normal region sequence is encoded.
  • the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 68 and the amino acid sequence of SEQ ID NO: 69 are also shown in FIG.
  • h # 32A1-T6L type light chain Between amino acid numbers 29 (alanine) and 29-30 (deleted residue), 36 (glutamine), 66 (glutamine), 99 (asparagine), 100 (proline) of the # 32A1 light chain shown in SEQ ID NO: 30 in the Sequence Listing ), 101 (valine), 104 (aspartic acid), 106 (isoleucine), 127 (leucine), 129 (leucine), 130 (arginine), 132 (alanine), respectively, aspartic acid, serine, glutamic acid, proline, serine,
  • the humanized # 32A1 light chain designed with replacement with serine, leucine, glutamic acid, valine, valine, isoleucine, lysine and threonine was named “h # 32A1-T6L type light chain”.
  • the amino acid sequence of the h # 32A1-T6L type light chain is set forth in SEQ ID NO: 71 in the sequence listing.
  • the sequence consisting of amino acid residues 1 to 20 in the amino acid sequence of SEQ ID NO: 71, the sequence consisting of amino acid residues 21 to 133, and the sequence consisting of amino acid residues 134 to 238 are respectively a signal sequence and a light chain It corresponds to the variable region and the light chain constant region.
  • the nucleotide sequence encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 71 is set forth in SEQ ID NO: 70 of the Sequence Listing.
  • the sequence consisting of the 1st to 60th nucleotides of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 70, the sequence consisting of the 61st to 399th nucleotides, and the sequence consisting of the 400th to 714th nucleotides are respectively a signal sequence, a light chain variable region sequence and a light chain constant.
  • the normal region sequence is encoded.
  • the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 70 and the amino acid sequence of SEQ ID NO: 71 are also shown in FIG.
  • the amino acid sequence of the h # 32A1-T7L type light chain is set forth in SEQ ID NO: 78 in the sequence listing.
  • the sequence consisting of amino acid residues 1 to 113 and the sequence consisting of amino acid residues 114 to 218 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 78 correspond to the light chain variable region and the light chain constant region, respectively.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 78 is also shown in FIG.
  • the amino acid sequence of the h # 32A1-T8L type light chain is described in SEQ ID NO: 79 in the sequence listing.
  • the sequence consisting of amino acid residues 1 to 113 and the sequence consisting of amino acid residues 114 to 218 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 79 correspond to the light chain variable region and the light chain constant region, respectively.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 79 is also described in FIG.
  • the amino acid sequence of the h # 32A1-T9L type light chain is set forth in SEQ ID NO: 80 of the sequence listing.
  • the sequence consisting of amino acid residues 1 to 113 and the sequence consisting of amino acid residues 114 to 218 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 80 correspond to the light chain variable region and the light chain constant region, respectively.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 80 is also shown in FIG.
  • the amino acid sequence of the h # 32A1-T10L type light chain is set forth in SEQ ID NO: 81 in the sequence listing.
  • the sequence consisting of amino acid residues 1 to 113 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 81 and the sequence consisting of amino acid residues 114 to 218 correspond to the light chain variable region and the light chain constant region, respectively.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 81 is also shown in FIG.
  • the amino acid sequence of the h # 32A1-T11L type light chain is set forth in SEQ ID NO: 82 in the sequence listing.
  • the sequence consisting of amino acid residues 1 to 113 and the sequence consisting of amino acid residues 114 to 218 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 82 correspond to the light chain variable region and the light chain constant region, respectively.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 82 is also shown in FIG.
  • the amino acid sequence of the h # 32A1-T12L type light chain is described in SEQ ID NO: 83 in the sequence listing.
  • the sequence consisting of amino acid residues 1 to 113 and the sequence consisting of amino acid residues 114 to 218 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 83 correspond to the light chain variable region and the light chain constant region, respectively.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 83 is also shown in FIG.
  • the amino acid sequence of the h # 32A1-T13L type light chain is described in SEQ ID NO: 84 in the sequence listing.
  • the sequence consisting of amino acid residues 1 to 113 and the sequence consisting of amino acid residues 114 to 218 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 84 correspond to the light chain variable region and the light chain constant region, respectively.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 84 is also described in FIG.
  • amino acid sequence of the h # 32A1-T14L type light chain is described in SEQ ID NO: 85 of the sequence listing.
  • sequence consisting of amino acid residues 1 to 113 and the sequence consisting of amino acid residues 114 to 218 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 85 correspond to the light chain variable region and the light chain constant region, respectively.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 85 is also described in FIG.
  • the amino acid sequence of the h # 32A1-T15L type light chain is described in SEQ ID NO: 86 in the sequence listing.
  • the sequence consisting of amino acid residues 1 to 113 and the sequence consisting of amino acid residues 114 to 218 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 86 correspond to the light chain variable region and the light chain constant region, respectively.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 86 is also shown in FIG.
  • amino acid sequence of the h # 32A1-T16L type light chain is described in SEQ ID NO: 87 in the sequence listing.
  • sequence consisting of amino acid residues 1 to 113 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 87 and the sequence consisting of amino acid residues 114 to 218 correspond to the light chain variable region and the light chain constant region, respectively.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 87 is also shown in FIG.
  • amino acid sequence of the h # 32A1-T17L type light chain is described in SEQ ID NO: 88 in the sequence listing.
  • sequence consisting of amino acid residues 1 to 113 and the sequence consisting of amino acid residues 114 to 218 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 88 correspond to the light chain variable region and the light chain constant region, respectively.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 88 is also shown in FIG.
  • the amino acid sequence of the h # 32A1-T18L type light chain is described in SEQ ID NO: 89 in the sequence listing.
  • the sequence consisting of amino acid residues 1 to 113 and the sequence consisting of amino acid residues 114 to 218 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 89 correspond to the light chain variable region and the light chain constant region, respectively.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 89 is also shown in FIG.
  • the amino acid sequence of the h # 32A1-T19L type light chain is described in SEQ ID NO: 90 in the sequence listing.
  • the sequence consisting of amino acid residues 1 to 113 and the sequence consisting of amino acid residues 114 to 218 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 90 correspond to the light chain variable region and the light chain constant region, respectively.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 90 is also described in FIG.
  • the amino acid sequence of h # 32A1-T20L type light chain is set forth in SEQ ID NO: 91 in the sequence listing.
  • the sequence consisting of amino acid residues 1 to 113 and the sequence consisting of amino acid residues 114 to 218 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 91 correspond to the light chain variable region and the light chain constant region, respectively.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 91 is also shown in FIG.
  • the amino acid sequence of the h # 32A1-T21L type light chain is described in SEQ ID NO: 92 in the sequence listing.
  • the sequence consisting of amino acid residues 1 to 113 and the sequence consisting of amino acid residues 114 to 218 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 92 correspond to the light chain variable region and the light chain constant region, respectively.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 92 is also shown in FIG.
  • the amino acid sequence of the h # 32A1-T22L type light chain is described in SEQ ID NO: 93 in the sequence listing.
  • the sequence consisting of amino acid residues 1 to 113 and the sequence consisting of amino acid residues 114 to 218 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 93 correspond to the light chain variable region and the light chain constant region, respectively.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 93 is also shown in FIG.
  • the amino acid sequence of h # 32A1-T23L type light chain is set forth in SEQ ID NO: 94 in the sequence listing.
  • the sequence consisting of amino acid residues 1 to 113 and the sequence consisting of amino acid residues 114 to 218 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 94 correspond to the light chain variable region and the light chain constant region, respectively.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 94 is also shown in FIG.
  • the amino acid sequence of the h # 32A1-T24L type light chain is set forth in SEQ ID NO: 95 in the sequence listing.
  • the sequence consisting of amino acid residues 1 to 113 and the sequence consisting of amino acid residues 114 to 218 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 95 correspond to the light chain variable region and the light chain constant region, respectively.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 95 is also shown in FIG.
  • the amino acid sequence of the h # 32A1-T25L type light chain is described in SEQ ID NO: 96 in the sequence listing.
  • the sequence consisting of amino acid residues 1 to 113 and the sequence consisting of amino acid residues 114 to 218 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 96 correspond to the light chain variable region and the light chain constant region, respectively.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 96 is also shown in FIG.
  • the obtained expression vectors were designated as “pEF6KCL / h # 32A1-T1L”, “pEF6KCL / h # 32A1-T2L”, “pEF6KCL / h # 32A1-T3L”, “pEF6KCL / h # 32A1-T4L”, “pEF6KCL / h # 32A1-T5L ”and“ pEF6KCL / h # 32A1-T6L ”.
  • the obtained expression vectors are respectively “pEF1 / FCCU / h # 32A1-T1H”, “pEF1 / FCCU / h # 32A1-T2H”, “pEF1 / FCCU / h # 32A1-T3H”, “pEF1 / FCCU / h # 32A1- “T5H” and “pEF1 / FCCU / h # 32A1-T6H”.
  • a heavy chain expression plasmid (0.05 mg) and a light chain expression plasmid (0.15 mg) prepared using the PureLink HiPure Plasmid kit (Invitrogen) were suspended in 4 ml of Opti-ProSFM medium (Invitrogen).
  • 4 ml of the expression plasmid / OptiProSFM mixture was added to 4 ml of the Polyethyleneimine / OptiProSFM mixture left at room temperature for 5 minutes, and the mixture was further left at room temperature for 5 minutes.
  • 8 ml of a polyethyleneimine / expression plasmid / OptiProSFM mixed solution was added to the 293 FreeStyle cell suspension, and the shaking culture was continued. After culturing at 37 ° C. and 8% CO 2 for 7 days, the culture supernatant was recovered.
  • the humanized antibody of # 32A1 obtained by the combination of pEF6KCL / h # 32A1-T1L and pEF1 / FCCU / h # 32A1-T1H is designated as “h # 32A1-T1”, pEF6KCL / h # 32A1-T2L and pEF1 / FCCU.
  • the humanized antibody of # 32A1 obtained by combination with / h # 32A1-T2H is obtained by the combination of “h # 32A1-T2”, pEF6KCL / h # 32A1-T3L and pEF1 / FCCU / h # 32A1-T3H
  • the humanized antibody # 32A1 obtained by combining “h # 32A1-T3” with pEF6KCL / h # 32A1-T4L and pEF1 / FCCU / h # 32A1-T3H was designated “h # 32A1-T3”.
  • # 32A1-T4 ", pEF6KCL / h # 32A1-T5L and pEF1 /
  • the humanized antibody of # 32A1 obtained by combination with CCU / h # 32A1-T5H is obtained by combining “h # 32A1-T5”, pEF6KCL / h # 32A1-T6L and pEF1 / FCCU / h # 32A1-T6H.
  • the obtained # 32A1 humanized antibody was designated as “h # 32A1-T6”.
  • Rat anti-mouse Siglec-15 # 32A1 humanized antibody T1-T6 mouse Siglec-15-Fc and human Siglec-15 -Fc binding was evaluated by the following method.
  • Mouse Siglec-15-Fc purified in Example 4 or human Siglec-15-Fc purified in Example 12 was diluted to 1 ⁇ g / ml with PBS, and then added to an immunoplate (Nunc # 437111) at 100 ⁇ l / ml. The protein was dispensed in wells and allowed to stand overnight at 4 ° C. to adsorb each protein to the plate.
  • the solution was diluted with a 0.5% skim milk-containing PBS solution to a final concentration of 1 to 0.004 ⁇ g / ml (4-fold dilution series), dispensed at 100 ⁇ l / well, and allowed to stand at room temperature for 2 hours.
  • concentration of each antibody was determined at 280 nm with a spectrophotometer DU7400 (manufactured by Beckman) and determined based on the molar molecular extinction coefficient of each antibody.
  • the fluorescence intensity of the mouse Siglec-15-Fc adsorption plate was measured with Spectramax M5 (manufactured by Molecular Devices) 10 minutes after addition of the fluorescent substrate solution and 15 minutes after the addition of the human Siglec-15-Fc plate. As a result, it was confirmed that in all 6 rat anti-mouse Siglec-15 humanized antibodies examined, the binding to mouse Siglec-15 protein (FIG. 18) and human Siglec-15 protein (FIG. 19) depending on the antibody concentration was confirmed. It was.
  • Mouse bone marrow non-adherent cells prepared by the method of Example 8 were mixed with 10% fetal bovine serum (FBS), 10 ng / ml M-CSF, and 2 ng / ml TGF- ⁇ (manufactured by R & D Systems). 200 ⁇ l of the cells prepared at 1.5 ⁇ 10 5 cells / ml was seeded in each well of a 96-well plate and cultured in a CO 2 incubator for 2 days.
  • FBS fetal bovine serum
  • 10 ng / ml M-CSF 10 ng / ml M-CSF
  • 2 ng / ml TGF- ⁇ manufactured by R & D Systems
  • the old culture solution in the 96-well plate was removed, and 10% FBS-containing MEM to which human recombinant TNF ⁇ (manufactured by R & D Systems) was added to a final concentration of 30 ng / ml and M-CSF to 10 ng / ml was added. -100 ⁇ l of ⁇ medium was added.
  • 0.125 to 4 ⁇ g / ml of the chimeric antibody of rat anti-mouse Siglec-15 monoclonal antibody # 32A1 prepared in Example 9 and rat anti-mouse Siglec-15 monoclonal antibody # 32A1 prepared in Example 19 was added. And further cultured for 3 days in a CO 2 incubator.
  • Rat Osteoclast Formation Test Using rat anti-mouse Siglec-15 monoclonal antibodies # 8A1 and # 32A1 prepared in Example 6, The effect of differentiation of adherent cells into osteoclasts was examined.
  • Rat bone marrow non-adherent cells were prepared by modifying the method of Example 8. That is, the femur was removed from both legs of a 12-week-old female F344 rat, and the soft tissue was removed.
  • MEM- ⁇ medium was injected with a syringe with a 23 gauge needle, the bone marrow cells were pushed out, and collected in a centrifuge tube. After centrifuging at 100 g for 5 minutes at room temperature and discarding the supernatant, 1 ml of Hemolytic Buffer (RED BLOOD CELL LYSING BUFFER, manufactured by Sigma) was added to the cell pellet and suspended, and left at room temperature for 5 minutes.
  • Hemolytic Buffer RED BLOOD CELL LYSING BUFFER, manufactured by Sigma
  • the cell pellet contains 5 ng / ml M-CSF (manufactured by R & D Systems), 10% fetal bovine serum (FBS) 10 ml of MEM- ⁇ medium (Invitrogen) was added and suspended, and aggregates were removed through a cell strainer (40 ⁇ m Nylon, BD Falcon). The cells were transferred to a 75 cm 2 -T flask (for adherent cells) and cultured overnight in a CO 2 incubator. After overnight culture, cells not attached to the T-flask were collected and used as non-adherent rat bone marrow cells.
  • M-CSF manufactured by R & D Systems
  • FBS fetal bovine serum
  • MEM- ⁇ medium Invitrogen
  • Rat bone marrow non-adherent cells prepared by this method were cultured according to the method of Example 9, and a rat osteoclast formation test was performed. That is, the prepared rat bone marrow non-adherent cells were adjusted to 1.5 ⁇ 10 5 cells / ml in ⁇ -MEM medium containing 10% FBS and 10 ng / ml M-CSF (manufactured by R & D Systems). Each well was inoculated with 200 ⁇ l and cultured in a CO 2 incubator for 2 days.
  • RANKL human RANKL
  • M-CSF M-CSF containing 10 ng / ml.
  • 100 ⁇ l of ⁇ medium was added.
  • rat anti-mouse Siglec-15 monoclonal antibodies # 8A1 and # 32A1 prepared in Example 6 were added to a concentration of 31 to 1000 ng / ml, and further cultured in a CO 2 incubator for 3 days. did.
  • the tartrate-resistant acid phosphatase (TRAP) activity of the formed osteoclasts was measured by the method described in Example 9.
  • the CDR sequence derived from rat is shortened, more human framework sequences are incorporated, and it is more difficult to recognize as a heterologous antigen when administered to humans.
  • Acceptor antibodies were selected based on amino acid homology within the framework regions.
  • the sequence of the framework region of # 32A1 was compared with all human frameworks in the Kabat database of antibody amino acid sequences (Nuc. Acid Res. 29, 205-206 (2001)).
  • the L chain was GF4 / 1.1'CL was selected as an acceptor due to 71% sequence homology for the framework regions.
  • the H chain was selected as an acceptor due to M37GO37′CL having 73% sequence homology to the framework regions.
  • the amino acid residues in the framework region for L chain for GF4 / 1.1'CL and H chain for M37GO37'CL were aligned with the amino acid residues for # 32A1 to identify the position where the different amino acids were used. .
  • the positions of these residues were analyzed using the # 32A1 three-dimensional model constructed in Example 22a) -i), and the donor residues to be graphed on the acceptor are described in Queen et al. (Proc. Natl. Acad. Sci. USA 86, 1000029-10033 (1989)).
  • the humanized # 32A1 sequence was constructed as described in the examples below by transferring several selected donor residues into the acceptor antibody.
  • the amino acid sequence of the h # 32A1-H1-1 type heavy chain is described in SEQ ID NO: 99 in the sequence listing.
  • a sequence consisting of amino acid residues 1 to 19 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 99, a sequence consisting of amino acid residues 20 to 140, and a sequence consisting of amino acid residues 141 to 466 are a signal sequence and a heavy chain, respectively. It corresponds to the variable region and heavy chain constant region.
  • the nucleotide sequence encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 99 is set forth in SEQ ID NO: 98 of the Sequence Listing.
  • a sequence consisting of nucleotides 1 to 57, a sequence consisting of nucleotides 58 to 420, and a sequence consisting of nucleotides 421 to 1398 of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 98 are a signal sequence, a heavy chain variable region sequence and a heavy chain constant, respectively.
  • the normal region sequence is encoded.
  • the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 98 and the amino acid sequence of SEQ ID NO: 99 are also shown in FIG.
  • Methionine, threonine, serine, leucine, proline gluta Humanized 32A1 light chain designed to replace acid, leucine, alanine, serine, serine, leucine, glutamic acid, proline, glutamic acid, phenylalanine, leucine, tyrosine, glycine, glutamine, valine, isoleucine, lysine, threonine It was named “h # 32A1-L2-15 type light chain”.
  • the amino acid sequence of the h # 32A1-L2-15 type light chain is set forth in SEQ ID NO: 103 in the sequence listing.
  • the sequence consisting of amino acid residues 1 to 20 in the amino acid sequence of SEQ ID NO: 103, the sequence consisting of amino acid residues 21 to 133, and the sequence consisting of amino acid residues 134 to 238 are respectively a signal sequence and a light chain It corresponds to the variable region and the light chain constant region.
  • the nucleotide sequence encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 103 is described in SEQ ID NO: 102 of the Sequence Listing.
  • the sequence consisting of the 1st to 60th nucleotides, the sequence consisting of the 61st to 399th nucleotides, and the sequence consisting of the 400th to 714th nucleotides of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 102 are respectively a signal sequence, a light chain variable region sequence and a light chain constant.
  • the normal region sequence is encoded.
  • the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 102 and the amino acid sequence of SEQ ID NO: 103 are also shown in FIG.
  • Glutamic acid, leucine, alanine, serine, serine, leu The humanized 32A1 light chain designed to be replaced with guanine, glutamic acid, proline, glutamic acid, phenylalanine, leucine, glutamine, valine, isoleucine, lysine, threonine was named “h # 32A1-L2-16 type light chain” .
  • the amino acid sequence of the h # 32A1-L2-16 type light chain is set forth in SEQ ID NO: 105 in the sequence listing.
  • the sequence consisting of amino acid residues 1 to 20 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 105, the sequence consisting of amino acid residues 21 to 133, and the sequence consisting of amino acid residues 134 to 238 are respectively a signal sequence and a light chain It corresponds to the variable region and the light chain constant region.
  • the nucleotide sequence encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 105 is described in SEQ ID NO: 104 of the sequence listing.
  • the sequence consisting of the 1st to 60th nucleotides, the sequence consisting of the 61st to 399th nucleotides, and the sequence consisting of the 400th to 714th nucleotides of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 104 are respectively a signal sequence, a light chain variable region sequence and a light chain constant.
  • the normal region sequence is encoded.
  • the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 104 and the amino acid sequence of SEQ ID NO: 105 are also shown in FIG.
  • This DNA fragment is combined with an about 6200 bp DNA fragment obtained by digesting pEF1 / FCCU-1 with NheI and PmeI and removing the about 1100 bp DNA fragment, thereby allowing generalization of humanized antibody (hIgG2 type) heavy chain expression.
  • Vector pEG2 was constructed.
  • the amino acid sequence of the h # 32A1-H5 type heavy chain is described in SEQ ID NO: 101 of the sequence listing.
  • the sequence consisting of the 1st to 19th amino acid residues, the sequence consisting of the 20th to 140th amino acid residues, and the sequence consisting of the 141st to 466th amino acid residues of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 101 are respectively a signal sequence and a heavy chain It corresponds to the variable region and heavy chain constant region.
  • the nucleotide sequence encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 101 is described in SEQ ID NO: 100 of the sequence listing.
  • a sequence consisting of nucleotides 1 to 57, a sequence consisting of nucleotides 58 to 420, and a sequence consisting of nucleotides 421 to 1398 of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 100 are a signal sequence, a heavy chain variable region sequence and a heavy chain constant, respectively.
  • the normal region sequence is encoded.
  • the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 100 and the amino acid sequence of SEQ ID NO: 101 are also shown in FIG.
  • the DNA fragment cleaved with the restriction enzyme BlpI from pEF1 / FCCU / h # 32A1-T5H prepared in Example 23 was placed at the site where the humanized antibody (hIgG2 type) heavy chain expression general-purpose vector (pEG2) was cleaved with the restriction enzyme BlpI. By inserting, an h # 32A1-H5 heavy chain expression vector was constructed. The obtained expression vector was designated as “pEG2 / h # 32A1-H5”.
  • Polyethyleneimine (Polyscience # 24765) 3.6 mg was dissolved in 20 ml of Opti-Pro SFM medium (Invitrogen), and then the H chain expression plasmid (0.4 mg) and L chain prepared using PureLink HiPure Plasmid kit (Invitrogen) The expression plasmid (0.8 mg) was suspended in 20 ml of Opti-Pro SFM medium. 20 ml of the expression plasmid / Opti-Pro SFM mixture was added to 20 ml of the polyethylenemine / Opti-Pro SFM mixture, gently stirred, allowed to stand for another 5 minutes, and then added to the FreeStyle 293F cells. The culture supernatant obtained by shaking culture at 90 rpm in a 37 ° C., 8% CO 2 incubator for 7 days was filtered with a Disposable Capsule Filter (Advantec # CCS-045-E1H).
  • the humanized antibodies of # 32A1 obtained by the combination of pEF6KCL / h # 32A1-T5L and pEG2 / h # 32A1-H5 were designated as “h # 32A1-H5 / L5”, pEF6KCL / h # 32A1-T5L and pEG2 / h.
  • the humanized antibodies of # 32A1 obtained by combination with # 32A1-H1-1 were designated as “h # 32A1-H1-1 / L5”, pEF6KCL / h # 32A1-L2-15 and pEG2 / h # 32A1-H1-
  • c) -ii) Purification of humanized antibody
  • the culture supernatant obtained in c) -i) above was purified in two steps, rProtein A affinity chromatography (4-6 ° C.) and ceramic hydroxylapatite (room temperature). did.
  • the buffer replacement step after purification of rProtein A affinity chromatography and after purification of ceramic hydroxylapatite was carried out at room temperature.
  • 1100-1200 ml of the culture supernatant was applied to MabSelectSuRe (GE Healthcare Bioscience, HiTrap column: volume 1 ml ⁇ 2 linked) equilibrated with PBS. After all of the culture solution entered the column, the column was washed with 15-30 ml of PBS.
  • the substituted antibody solution was applied to a ceramic hydroxyapatite column (Nippon Bio-Rad, Bio-Scale CHT2-1 Hydroxyapatite Column: volume 2 ml) equilibrated with a buffer of 5 mM NaPi / 50 mM MES / 20 mM NaCl / pH 6.5. Applied. Linear gradient elution with sodium chloride was performed and the fractions containing antibody were collected. The fraction was subjected to liquid replacement with CBS (10 mM citrate buffer / 140 mM sodium chloride, pH 6.0) with a desalting column (manufactured by GE Healthcare Bioscience, HiTrap Desalting column: volume 5 ml ⁇ 2 linked).
  • CBS 10 mM citrate buffer / 140 mM sodium chloride, pH 6.0
  • desalting column manufactured by GE Healthcare Bioscience, HiTrap Desalting column: volume 5 ml ⁇ 2 linked.
  • Example 9 Mouse bone marrow non-adherent cells prepared by the method of Example 8 were prepared at 1.5 ⁇ 10 5 cells / ml in ⁇ -MEM medium containing 10% FBS and 10 ng / ml M-CSF (R & D Systems). Was seeded in each well of a 96-well plate and cultured in a CO 2 incubator for 2 days.
  • the old culture medium in the 96-well plate was removed, and human RANKL (RANKL, manufactured by Peprotech) was added to a final concentration of 20 ng / ml and M-CSF containing 10 ng / ml. 100 ⁇ l of ⁇ medium was added.
  • human RANKL RANKL, manufactured by Peprotech
  • 100 ⁇ l of ⁇ medium was added.
  • the rat anti-mouse Siglec-15 monoclonal antibody (# 32A1 antibody) prepared in Example 6 and the six types of humanized # 32A1 antibodies (h # 32A1-T1, h # 32A1) prepared in Example 24 were used.
  • h # 32A1-T3, h # 32A1-T4, h # 32A1-T5, h # 32A1-T6) were added to a concentration of 3 to 100 ng / ml, and further in a CO 2 incubator for 3 days In culture.
  • the tartrate-resistant acid phosphatase (TRAP) activity of the formed osteoclasts was measured by the following operation.
  • the culture medium in each well of the 96-well plate was removed by aspiration, 50 ⁇ l of 50 mM sodium citrate buffer (pH 6.1) containing 1% Triton X-100 was added to each well, and the plate was shaken for 5 minutes. The cells were solubilized.
  • a substrate solution 50 mM sodium citrate buffer (pH 6.1) containing 5 mg / ml p-nitrophenyl phosphate and 0.46% sodium tartrate
  • 50 ⁇ l of a substrate solution 50 mM sodium citrate buffer (pH 6.1) containing 5 mg / ml p-nitrophenyl phosphate and 0.46% sodium tartrate
  • the enzyme reaction was stopped by adding 50 ⁇ l of 1N sodium hydroxide solution to each well of the 96-well plate. After stopping the enzyme reaction, the absorbance at 405 nm of each well was measured and used as an index of TRAP activity. The results are shown in FIGS. 44 and 45.
  • Example 6 the rat anti-mouse Siglec-15 monoclonal antibody (# 32A1 antibody) prepared in Example 6, the human chimeric antibody of # 32A1 antibody prepared in Example 19, and the four types prepared in Example 28 were used.
  • Humanized # 32A1 antibodies (h # 32A1-H1-1 / L5, h # 32A1-H5 / L5, h # 32A1-H1-1 / L2-16, h # 32A1-H1-1 / L2-15) The biological activity was evaluated and the results are shown in FIGS.
  • the medium is an OPGM additive factor set (purchased from Sanko Junyaku) containing fetal bovine serum (final concentration 10%), human RANKL (final concentration 63.8 ng / ml), human M-CSF (final concentration 33 ng / ml), etc.
  • the basic medium for osteoclast precursor cells (OPBM, purchased from Sanko Junyaku, catalog number PT-8201) supplemented with catalog number PT-9501) was used.
  • rat anti-mouse Siglec-15 monoclonal antibody prepared in Example 6 (# 32A1 antibody), human chimeric antibody of # 32A1 antibody prepared in Example 19, and 10 prepared in Examples 24 and 28 were used.
  • Types of humanized # 32A1 antibodies (h # 32A1-T1, h # 32A1-T2, h # 32A1-T3, h # 32A1-T4, h # 32A1-T5, h # 32A1-T6, h # 32A1-H1- 1 / L5, h # 32A1-H5 / L5, h # 32A1-H1-1 / L2-16, h # 32A1-H1-1 / L2-15) to final concentrations of 4, 20, 100, 500 ng / ml And cultured for 5 days in a CO 2 incubator.
  • VP-Capillary DSC Platform manufactured by MicroCal, USA was used. Baseline correction was performed by subtracting the baseline (scan curve obtained by filling the sample cell with the reference solution) from the scan curve obtained from the sample solution.
  • 50 is a thermogram of h # 32A1-H5 / L5
  • FIG. 51 is a thermogram of h # 32A1-H1-1 / L5
  • FIG. 52 is a thermogram of h # 32A1-H1-1 / L2-15
  • the Tm value of h # 32A1-H5 / L5 is 81.2 ° C.
  • the Tm value of h # 32A1-H1-1 / L5 is 84.1 ° C.
  • H # 32A1-H1-1 / L2-15 had a Tm value of 80.0 ° C.
  • h # 32A1-1-1 / L2-16 (IgG2) had a Tm value of 77.9 ° C.
  • the chimeric or humanized anti-Siglec-15 antibody of the present invention has the ability to suppress osteoclast differentiation or bone resorption activity, and the pharmaceutical composition containing the anti-Siglec-15 antibody is a therapeutic or prophylactic agent for bone metabolic disorders Can be.

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Abstract

　破骨細胞で強く発現する遺伝子にコードされる蛋白質を標的とした骨代謝異常治療及び／又は予防用医薬組成物を提供すること。　ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５を特異的に認識し、破骨細胞の形成を抑制する活性を有する抗体を含む医薬組成物の提供等

Description

抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体
　本発明は、骨代謝異常の治療及び／又は予防薬として有用な物質、並びに骨代謝異常の治療及び／又は予防方法に関する。
　骨は、自らの形態変化や血中カルシウム濃度の維持のために、常に形成と吸収を繰り返して再構築を行う動的な器官として知られている。正常な骨では骨芽細胞による骨形成と破骨細胞による骨吸収とは平衡関係にあり、骨量は一定に保たれている。一方、骨形成と骨吸収との平衡関係が崩れると、骨粗鬆症などの骨代謝異常になる（国際公開第ＷＯ０７／０９３０４２号、及びＥｎｄｏｃｒｉｎｏｌｏｇｉｃａｌ　Ｒｅｖｉｅｗ，（１９９２）１３，ｐ６６－８０）。
　骨代謝を調節する因子としては、全身性のホルモンや局所性のサイトカインが数多く報告されており、それらの因子の共同作用により骨の形成と維持が営まれている（国際公開第ＷＯ０７／０９３０４２号、及びＥｎｄｏｃｒｉｎｏｌｏｇｉｃａｌ　Ｒｅｖｉｅｗ，（１９９６）１７，ｐ３０８－３３２）。加齢による骨組織の変化としては、骨粗鬆症の発症が広く知られているが、その発症機構は性ホルモンの分泌低下やそのレセプター異常、骨局所におけるサイトカイン発現の変動、老化遺伝子の発現、破骨細胞や骨芽細胞の分化あるいは機能不全など多岐にわたっており、加齢による単純な生理現象として理解するのは困難である。原発性骨粗鬆症はエストロゲンの分泌低下による閉経後骨粗鬆症と加齢による老人性骨粗鬆症に大別されているが、その発症機構の解明と治療薬開発の為には、骨吸収と骨形成の調節機構についての基礎的研究の進展が必須である。
　破骨細胞は、造血幹細胞に由来する多核の細胞であり、骨との接着面に塩素イオンと水素イオンを放出することによって、細胞と骨の接着面の間隙を酸性化すると共に酸性プロテアーゼであるカテプシンＫなどを分泌する（Ａｍｅｒｉｃａｎ　Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ，（１９９１）２６０，Ｃ１３１５－Ｃ１３２４）。この結果、リン酸カルシウムの分解、酸性プロテアーゼの活性化と骨基質蛋白質の分解が引き起こされ、骨吸収が進行する。
　破骨細胞の前駆細胞は骨表面の骨芽細胞／ストローマ細胞の細胞膜上に発現するＲＡＮＫＬ（Ｒｅｃｅｐｔｏｒ　ａｃｔｉｖａｔｏｒ　ｏｆ　ＮＦ－κＢ　ｌｉｇａｎｄ）の刺激を受けて、破骨細胞へ分化することが明らかにされた（Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ　ｏｆ　ｔｈｅ　Ｎａｔｉｏｎａｌ　Ａｃａｄｅｍｙ　ｏｆ　Ｓｃｉｅｎｃｅ　ｏｆ　ｔｈｅ　Ｕｎｉｔｅｄ　Ｓｔａｔｅｓ　ｏｆ　Ａｍｅｒｉｃａ，（１９９８）９５，ｐ３５９７－３６０２、及びＣｅｌｌ，（１９９８）９３，ｐ１６５－１７６）。ＲＡＮＫＬは骨芽細胞／ストローマ細胞が産生する膜蛋白質であり、その発現は骨吸収因子により調節されること、及びＲＡＮＫＬは破骨細胞前駆細胞から成熟多核破骨細胞への分化を誘導することなどが明らかにされた（Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ　ｏｆ　ｔｈｅ　Ｎａｔｉｏｎａｌ　Ａｃａｄｅｍｙ　ｏｆ　Ｓｃｉｅｎｃｅ　ｏｆ　ｔｈｅ　Ｕｎｉｔｅｄ　Ｓｔａｔｅｓ　ｏｆ　Ａｍｅｒｉｃａ，（１９９８）９５，ｐ３５９７－３６０２、及びＪｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｂｏｎｅ　ａｎｄ　Ｍｉｎｅｒａｌ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ，（１９９８）２３，Ｓ２２２）。さらに、ＲＡＮＫＬをノックアウトしたマウスが、大理石骨病様の病態を発症することが見出され、ＲＡＮＫＬが生理的な破骨細胞分化誘導因子であることが証明された（Ｎａｔｕｒｅ，（１９９９）３９７，ｐ３１５－３２３）。
　骨代謝疾患の治療や治療期間の短縮を図る医薬品として、ビスホスホネート、活性型ビタミンＤ３、カルシトニン及びその誘導体、エストラジオール等のホルモン、ＳＥＲＭｓ（Ｓｅｌｅｃｔｉｖｅ　ｅｓｔｒｏｇｅｎ　ｒｅｃｅｐｔｏｒ　ｍｏｄｕｌａｔｏｒｓ）、イプリフラボン、ビタミンＫ２（メナテトレノン）、ＰＴＨ及びカルシウム製剤等が使用されている。しかし、これらの薬剤は、治療結果において必ずしも満足できるものではなく、より治療効果の高い薬剤の開発が望まれていた。
　免疫系細胞の細胞膜上はシアル酸含有糖鎖などの多様な糖鎖によって高度に覆われており、様々な糖鎖結合蛋白質によって認識されている。シアル酸結合免疫グロブリン様レクチン（Ｓｉａｌｉｃ－ａｃｉｄ－ｂｉｎｄｉｎｇ　ｉｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎ－ｌｉｋｅ　ｌｅｃｔｉｎｓ、以下、「Ｓｉｇｌｅｃｓ」という。）は、シアル酸含有糖鎖を認識して結合するＩ型膜蛋白質ファミリーである。Ｓｉｇｌｅｃｓは免疫系細胞の細胞膜上で多く発現しており、同じく免疫系細胞の細胞膜上に存在するシアル酸を認識して細胞間相互作用や細胞機能を調節し、免疫応答に関与していると考えられている（Ｎａｔｕｒｅ　Ｒｅｖｉｅｗｓ　Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，（２００７）７，ｐ２５５－２６６）が、生理的機能が明らかとなっていないＳｉｇｌｅｃｓ分子も多い。Ｓｉｇｌｅｃ－１５（Ｓｉａｌｉｃ－ａｃｉｄ　ｂｉｎｄｉｎｇ　ｉｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎ－ｌｉｋｅ　ｌｅｃｔｉｎ　１５）は、Ｓｉｇｌｅｃｓに属することが新たに報告された分子で（例えば、非特許文献１０を参照）、ＣＤ３３Ｌ３（ＣＤ３３　ｍｏｌｅｃｕｌｅ－ｌｉｋｅ　３）と呼ばれる分子と同一である。この分子は魚類からヒトまで進化的な保存度が高く、ヒト脾臓及びリンパ節において、樹状細胞／マクロファージ系の細胞に強く発現することが明らかにされた。またシアル酸プローブを用いた結合試験の結果、ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５はＮｅｕ５Ａｃα２－６ＧａｌＮＡｃと、マウスＳｉｇｌｅｃ－１５はさらにＮｅｕ５Ａｃα２－３Ｇａｌβ１－４Ｇｌｃと結合することなども明らかにされた（例えば、Ｇｌｙｃｏｂｉｏｌｏｇｙ，（２００７）１７，ｐ８３８－８４６を参照）。最近まで、Ｓｉｇｌｅｃ－１５の生理的役割は明らかではなかったが、破骨細胞の分化、成熟に伴ってＳｉｇｌｅｃ－１５の発現が亢進し、ＲＮＡ干渉によってＳｉｇｌｅｃ－１５の発現を低下させると破骨細胞の分化が抑制されることが報告された（例えば、国際公開第ＷＯ０７／０９３０４２号を参照）。さらに、抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体が破骨細胞分化におよぼす作用について、国際公開第ＷＯ０９／４８０７２号（２００９年４月１６日公開）において初めて明らかにされたが、ヒトに投与可能な抗体配列については、これまで明らかにされていなかった。
　本発明の目的は、骨粗鬆症、関節リウマチ、癌の骨転移等に見られる種々の骨代謝異常の際に特異的に発現する遺伝子、破骨細胞の分化成熟と活性を阻害する物質、及び骨代謝異常の治療及び／又は予防剤を提供することにある。
　本発明者らは、骨代謝異常の治療及び／又は予防効果を有する物質を探索する目的で、破骨細胞の分化、成熟及び活性化の機構（メカニズム）の解明を目指した研究を行った結果、破骨細胞の分化、成熟に伴いＳｉｇｌｅｃ－１５遺伝子の発現が上昇することを見出した。また、本発明者らは、Ｓｉｇｌｅｃ－１５と特異的に結合する抗体により、破骨細胞の分化が抑制されることを見出した。さらに発明者らは、得られたラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５抗体をヒト化して、本発明を完成させた。
すなわち、本発明は、以下の発明を包含する。
（１）配列番号２に示されるアミノ酸配列の３９乃至１６５番目のアミノ酸残基からなるポリペプチドに結合し、破骨細胞の形成及び／又は破骨細胞による骨吸収を抑制する抗体又は該抗体の機能性断片。
（２）重鎖配列が、CDRH1、CDRH2、CDRH3を有する可変領域を含み、前記CDRH1は配列番号４４に示されるアミノ酸配列からなり、前記CDRH2は配列番号４５又は配列番号９７に示されるいずれか一つのアミノ酸配列からなり、前記CDRH3は、配列番号４６に示されるアミノ酸配列からなること；及び
軽鎖配列がCDRL1、CDRL2、CDRL3を有する可変領域を含み、前記CDRL1は配列番号４７に示されるアミノ酸配列からなり、前記CDRL2は配列番号４８に示されるアミノ酸配列からなり、前記CDRL3は、配列番号４９に示されるアミノ酸配列からなること；
を特徴とする（１）に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
（３）配列番号４１に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域配列及び配列番号４３に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３２番目のアミノ酸残基からなる軽鎖可変領域配列を含むことを特徴とする（２）に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
（４）Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆａｂ’及びＦｖからなる群から選択される、（１）乃至（３）のいずれか一つに記載の抗体の機能性断片。
（５）ｓｃＦｖであることを特徴とする、（１）乃至（３）のいずれか一つに記載の抗体。
（６）キメラ抗体であることを特徴とする、（１）乃至（４）のいずれか一つに記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
（７）配列番号４１に示されるアミノ酸配列の２０乃至４７０番目のアミノ酸残基からなる重鎖配列及び配列番号４３に示されるアミノ酸配列の２１乃至２３７番目のアミノ酸残基からなる軽鎖配列からなることを特徴とする（６）に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
（８）ヒト化されていることを特徴とする、（１）乃至（４）又は（６）のいずれか一つに記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
（９）重鎖がヒト免疫グロブリンＧ２重鎖の定常領域を含み、軽鎖がヒト免疫グロブリンκ軽鎖の定常領域を含む、（７）又は（８）に記載の抗体。
（１０）破骨細胞の形成及び／又は破骨細胞による骨吸収を抑制する抗体又は該抗体の機能性断片であって、
（ａ）以下のアミノ酸配列からなる群から選択される重鎖可変領域：
ａ１）　配列番号５１に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列；
ａ２）　配列番号５３に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列；
ａ３）　配列番号５５に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列；
ａ４）　配列番号５７に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列；
ａ５）　配列番号５９に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列；
ａ６）　配列番号９９に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列；
ａ７）　配列番号１０１に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列；
ａ８）　ａ１）乃至ａ７）から選択されるいずれか一つのアミノ酸配列と少なくとも９５％の相同性を持つアミノ酸配列；
ａ９）　ａ１）乃至ａ７）から選択されるいずれか一つのアミノ酸配列と少なくとも９９％の相同性を持つアミノ酸配列；
ａ１０）　ａ１）乃至ａ７）から選択されるいずれか一つのアミノ酸配列に１乃至数個のアミノ酸残基が置換、欠失又は付加されたアミノ酸配列；及び
（ｂ）以下のアミノ酸配列からなる群から選択される軽鎖可変領域：
ｂ１）　配列番号６１に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列；
ｂ２）　配列番号６３に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列；
ｂ３）　配列番号６５に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列；
ｂ４）　配列番号６７に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３２番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列；
ｂ５）　配列番号６９に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列；
ｂ６）　配列番号７１に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列；
ｂ７）　配列番号１０３に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列；
ｂ８）　配列番号１０５に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列；
ｂ９）　ｂ１）乃至ａ８）から選択されるいずれか一つのアミノ酸配列と少なくとも９５％の相同性を持つアミノ酸配列；
ｂ１０）　ｂ１）乃至ｂ８）から選択されるいずれか一つのアミノ酸配列と少なくとも９９％の相同性を持つアミノ酸配列；
ｂ１１）　ｂ１）乃至ｂ８）から選択されるいずれか一つのアミノ酸配列に１乃至数個のアミノ酸残基が置換、欠失又は付加されたアミノ酸配列；
を含むことを特徴とする抗体又は該抗体の機能性断片。
（１１）配列番号５１に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域を含む重鎖配列及び配列番号６１に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む軽鎖配列を含むことを特徴とする（１０）に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
（１２）配列番号５３に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域を含む重鎖配列及び配列番号６３に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む軽鎖配列を含むことを特徴とする（１０）に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
（１３）配列番号５５に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域を含む重鎖配列及び配列番号６５に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む軽鎖配列を含むことを特徴とする（１０）に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
（１４）配列番号５５に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域を含む重鎖配列及び配列番号６７に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む軽鎖配列を含むことを特徴とする（１０）に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
（１５）配列番号５７に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域を含む重鎖配列及び配列番号６９に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む軽鎖配列を含むことを特徴とする（１０）に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
（１６）配列番号５９に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域を含む重鎖配列及び配列番号７１に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む軽鎖配列を含むことを特徴とする（１０）に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
（１７）配列番号９９に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域を含む重鎖配列及び配列番号６９に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む軽鎖配列を含むことを特徴とする（１０）に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
（１８）配列番号１０１に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域を含む重鎖配列及び配列番号６９に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む軽鎖配列を含むことを特徴とする（１０）に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
（１９）配列番号９９に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域を含む重鎖配列及び配列番号１０３に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む軽鎖配列を含むことを特徴とする（１０）に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
（２０）配列番号９９に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域を含む重鎖配列及び配列番号１０５に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む軽鎖配列を含むことを特徴とする（１０）に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
（２１）配列番号５１に示されるアミノ酸配列の２０乃至４７０番目のアミノ酸残基からなる重鎖配列及び配列番号６１に示されるアミノ酸配列の２１乃至２３８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖配列を含むことを特徴とする（１０）に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
（２２）配列番号５３に示されるアミノ酸配列の２０乃至４７０番目のアミノ酸残基からなる重鎖配列及び配列番号６３に示されるアミノ酸配列の２１乃至２３８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖配列を含むことを特徴とする（１０）に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
（２３）配列番号５５に示されるアミノ酸配列の２０乃至４７０番目のアミノ酸残基からなる重鎖配列及び配列番号６５に示されるアミノ酸配列の２１乃至２３８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖配列を含むことを特徴とする（１０）に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
（２４）配列番号５５のアミノ酸配列に示される２０乃至４７０番目のアミノ酸残基からなる重鎖配列及び配列番号６７に示されるアミノ酸配列の２１乃至２３７番目のアミノ酸残基からなる軽鎖配列を含むことを特徴とする（１０）に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
（２５）配列番号５７に示されるアミノ酸配列の２０乃至４７０番目のアミノ酸残基からなる重鎖配列及び配列番号６９に示されるアミノ酸配列の２１乃至２３８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖配列を含むことを特徴とする（１０）に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
（２６）配列番号５９に示されるアミノ酸配列の２０乃至４７０番目のアミノ酸残基からなる重鎖配列及び配列番号７１に示されるアミノ酸配列の２１乃至２３８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖配列を含むことを特徴とする（１０）に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
（２７）配列番号９９に示されるアミノ酸配列の２０乃至４６６番目のアミノ酸残基からなる重鎖配列及び配列番号６９に示されるアミノ酸配列の２１乃至２３８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖配列を含むことを特徴とする（１０）に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
（２８）配列番号１０１に示されるアミノ酸配列の２０乃至４６６番目のアミノ酸残基からなる重鎖配列及び配列番号６９に示されるアミノ酸配列の２１乃至２３８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖配列を含むことを特徴とする（１０）に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
（２９）配列番号９９に示されるアミノ酸配列の２０乃至４６６番目のアミノ酸残基からなる重鎖配列及び配列番号１０３に示されるアミノ酸配列の２１乃至２３８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖配列を含むことを特徴とする（１０）に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
（３０）配列番号９９に示されるアミノ酸配列の２０乃至４６６番目のアミノ酸残基からなる重鎖配列及び配列番号１０５に示されるアミノ酸配列の２１乃至２３８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖配列を含むことを特徴とする（１０）に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
（３１）（１）乃至（３０）に記載の抗体又は該抗体の機能性断片の少なくともいずれか一つを含有することを特徴とする、医薬組成物。
（３２）骨代謝異常の治療及び／又は予防剤であることを特徴とする、（３１）に記載の医薬組成物。
（３３）（１）乃至（３０）に記載の抗体又は該抗体の機能性断片の少なくともいずれか一つ、並びに、ビスホスホネート、活性型ビタミンＤ３、カルシトニン及びその誘導体、エストラジオール等のホルモン、ＳＥＲＭｓ（ｓｅｌｅｃｔｉｖｅ　ｅｓｔｒｏｇｅｎ　ｒｅｃｅｐｔｏｒ　ｍｏｄｕｌａｔｏｒｓ）、イプリフラボン、ビタミンＫ２（メナテトレノン）、カルシウム製剤、ＰＴＨ（ｐａｒａｔｈｙｒｏｉｄ　ｈｏｒｍｏｎｅ）、非ステロイド性抗炎症剤、可溶性ＴＮＦレセプター、抗ＴＮＦα抗体又は該抗体の機能性断片、抗ＰＴＨｒＰ（ｐａｒａｔｈｙｒｏｉｄ　ｈｏｒｍｏｎｅ－ｒｅｌａｔｅｄ　ｐｒｏｔｅｉｎ）抗体又は該抗体の機能性断片、ＩＬ－１レセプターアンタゴニスト、抗ＩＬ－６レセプター抗体又は該抗体の機能性断片、抗ＲＡＮＫＬ抗体又は該抗体の機能性断片、及びＯＣＩＦ（ｏｓｔｅｏｃｌａｓｔｏｇｅｎｅｓｉｓ　ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｙ　ｆａｃｔｏｒ）からなる群から選択される少なくともいずれか一つを含有することを特徴とする、骨代謝異常の治療及び／又は予防用医薬組成物。
（３４）骨代謝異常が、骨粗鬆症、関節リウマチに伴う骨破壊、癌性高カルシウム血症、多発性骨髄腫や癌の骨転移に伴う骨破壊、巨細胞腫、骨減少症、歯根膜炎による歯の喪失、人工関節周囲の骨融解、慢性骨髄炎における骨破壊、骨ページェット病、腎性骨異栄養症、及び骨形成不全症からなる群から選択される、（３２）又は（３３）に記載の医薬組成物。
（３５）骨代謝異常が、骨粗鬆症、関節リウマチに伴う骨破壊、又は癌の骨転移に伴う骨破壊であることを特徴とする、（３４）に記載の医薬組成物。
（３６）骨代謝異常が、骨粗鬆症であることを特徴とする、（３５）に記載の医薬組成物。
（３７）骨粗鬆症が、閉経後骨粗鬆症、老人性骨粗鬆症、ステロイドや免疫抑制剤等の治療用薬剤の使用による続発性骨粗鬆症、又は関節リウマチに伴う骨粗鬆症であることを特徴とする（３６）に記載の医薬組成物。
（３８）（１）乃至（３０）に記載の抗体又は該抗体の機能性断片の少なくともいずれか一つを投与することを特徴とする、骨代謝異常の治療及び／又は予防方法。
（３９）（１）乃至（３０）に記載の抗体又は該抗体の機能性断片の少なくともいずれか一つ、並びに、ビスホスホネート、活性型ビタミンＤ３、カルシトニン及びその誘導体、エストラジオール等のホルモン、ＳＥＲＭｓ（ｓｅｌｅｃｔｉｖｅ　ｅｓｔｒｏｇｅｎ　ｒｅｃｅｐｔｏｒ　ｍｏｄｕｌａｔｏｒｓ）、イプリフラボン、ビタミンＫ２（メナテトレノン）、カルシウム製剤、ＰＴＨ（ｐａｒａｔｈｙｒｏｉｄ　ｈｏｒｍｏｎｅ）、非ステロイド性抗炎症剤、可溶性ＴＮＦレセプター、抗ＴＮＦα抗体又は該抗体の機能性断片、抗ＰＴＨｒＰ（ｐａｒａｔｈｙｒｏｉｄ　ｈｏｒｍｏｎｅ－ｒｅｌａｔｅｄ　ｐｒｏｔｅｉｎ）抗体又は該抗体の機能性断片、ＩＬ－１レセプターアンタゴニスト、抗ＩＬ－６レセプター抗体又は該抗体の機能性断片、抗ＲＡＮＫＬ抗体又は該抗体の機能性断片、及びＯＣＩＦ（ｏｓｔｅｏｃｌａｓｔｏｇｅｎｅｓｉｓ　ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｙ　ｆａｃｔｏｒ）からなる群から選択される少なくともいずれか一つを同時又は連続して投与することを特徴とする、骨代謝異常の治療及び／又は予防方法。
（４０）骨代謝異常が、骨粗鬆症、関節リウマチに伴う骨破壊、又は癌の骨転移に伴う骨破壊であることを特徴とする、（３８）又は（３９）に記載の治療及び／又は予防方法。
（４１）骨代謝異常が、骨粗鬆症であることを特徴とする、（４０）に記載の治療及び／又は予防方法。
（４２）骨粗鬆症が、閉経後骨粗鬆症、老人性骨粗鬆症、ステロイドや免疫抑制剤等の治療用薬剤の使用による続発性骨粗鬆症、又は関節リウマチに伴う骨粗鬆症であることを特徴とする（４１）に記載の治療及び／又は予防方法。
（４３）（３）、（７）又は（１０）乃至（３０）のいずれか一つに記載の抗体をコードするポリヌクレオチド。
（４４）（４３）に記載のポリヌクレオチドであって、配列番号４０に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列及び配列番号４２に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９６番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列を含むことを特徴とするポリヌクレオチド。
（４５）配列番号４０に示されるヌクレオチド配列の５８乃至１４１０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列及び配列番号４２に示されるヌクレオチド配列の６１乃至７１１番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列を含むことを特徴とする（４４）に記載のポリヌクレオチド。
（４６）（４３）に記載のポリヌクレオチドであって、
（ａ）以下のヌクレオチド配列からなる群から選択されるポリヌクレオチド：
ａ１）　配列番号５０に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列；
ａ２）　配列番号５２に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列；
ａ３）　配列番号５４に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列；
ａ４）　配列番号５６に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列；
ａ５）　配列番号５８に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列；
ａ６）　配列番号９８に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列；
ａ７）　配列番号１００に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列；
ａ８）　ａ１）乃至ａ７）から選択されるいずれか一つのヌクレオチド配列と相補的なヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズするポリヌクレオチドが保有するヌクレオチド配列；
ａ９）　ａ１）乃至ａ７）から選択されるいずれか一つのヌクレオチド配列に１乃至数個のアミノ酸残基が置換、欠失又は付加されたヌクレオチド配列；及び
（ｂ）以下のヌクレオチド配列からなる群から選択されるポリヌクレオチド：
ｂ１）　配列番号６０に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列；
ｂ２）　配列番号６２に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列；
ｂ３）　配列番号６４に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列；
ｂ４）　配列番号６６に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９６番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列；
ｂ５）　配列番号６８に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列；
ｂ６）　配列番号７０に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列；
ｂ７）　配列番号１０２に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列；
ｂ８）　配列番号１０４に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列；
ｂ９）　ｂ１）乃至ｂ８）から選択されるいずれか一つのヌクレオチド配列と相補的なヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズするポリヌクレオチドが保有するヌクレオチド配列；
ｂ１０）　ｂ１）乃至ｂ８）から選択されるいずれか一つのヌクレオチド配列に１乃至数個のヌクレオチドが置換、欠失又は付加されたヌクレオチド配列；
を含むことを特徴とするポリヌクレオチド。
（４７）配列番号５０に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号６０に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする（４６）に記載のポリヌクレオチド。
（４８）配列番号５２に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号６２に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする（４６）に記載のポリヌクレオチド。
（４９）配列番号５４に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号６４に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする（４６）に記載のポリヌクレオチド。
（５０）配列番号５４に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号６６に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする（４６）に記載のポリヌクレオチド。
（５１）配列番号５６に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号６８に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする（４６）に記載のポリヌクレオチド。
（５２）配列番号５８に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号７０に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする（４６）に記載のポリヌクレオチド。
（５３）配列番号９８に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号６８に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする（４６）に記載のポリヌクレオチド。
（５４）配列番号１００に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号６８に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする（４６）に記載のポリヌクレオチド。
（５５）配列番号９８に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号１０２に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする（４６）に記載のポリヌクレオチド。
（５６）配列番号９８に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号１０４に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする（４６）に記載のポリヌクレオチド。
（５７）配列番号５０に示されるヌクレオチド配列の５８乃至１４１０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号６０に示されるヌクレオチド配列の６１乃至７１４番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする（４６）に記載のポリヌクレオチド。
（５８）配列番号５２に示されるヌクレオチド配列の５８乃至１４１０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号６２に示されるヌクレオチド配列の６１乃至７１４番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする（４６）に記載のポリヌクレオチド。
（５９）配列番号５４に示されるヌクレオチド配列の５８乃至１４１０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号６４に示されるヌクレオチド配列の６１乃至７１４番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする（４６）に記載のポリヌクレオチド。
（６０）配列番号５４に示されるヌクレオチド配列の５８乃至１４１０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号６６に示されるヌクレオチド配列の６１乃至７１１番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする（４６）に記載のポリヌクレオチド。
（６１）配列番号５６に示されるヌクレオチド配列の５８乃至１４１０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号６８に示されるヌクレオチド配列の６１乃至７１４番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする（４６）に記載のポリヌクレオチド。
（６２）配列番号５８に示されるヌクレオチド配列の５８乃至１４１０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号７０に示されるヌクレオチド配列の６１乃至７１４番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする（４６）に記載のポリヌクレオチド。
（６３）配列番号９８に示されるヌクレオチド配列の５８乃至１３９８番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号６８に示されるヌクレオチド配列の６１乃至７１４番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする（４６）に記載のポリヌクレオチド。
（６４）配列番号１００に示されるヌクレオチド配列の５８乃至１３９８番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号６８に示されるヌクレオチド配列の６１乃至７１４番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする（４６）に記載のポリヌクレオチド。
（６５）配列番号９８に示されるヌクレオチド配列の５８乃至１３９８番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号１０２に示されるヌクレオチド配列の６１乃至７１４番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする（４６）に記載のポリヌクレオチド。
（６６）配列番号９８に示されるヌクレオチド配列の５８乃至１３９８番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号１０４に示されるヌクレオチド配列の６１乃至７１４番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする（４６）に記載のポリヌクレオチド。
（６７）（４３）乃至（６６）に記載のいずれか一つのポリヌクレオチドを含むベクター。
（６８）（４３）乃至（６６）に記載のいずれか一つのポリヌクレオチドを含む形質転換宿主細胞。
（６９）（６７）に記載のベクターを含む形質転換宿主細胞。
（７０）（６８）又は（６９）に記載の宿主細胞を培養し、培養産物から抗体を精製する工程を含む（３）、（７）又は（１０）乃至（３０）に記載の抗体の生産方法。
　本発明によれば、破骨細胞の分化成熟、及び骨吸収活性の阻害を作用機序とする、骨代謝異常の治療剤及び／又は予防剤を得ることができる。
ＨｉｓＴｒａｐ　ＨＰカラムクロマトとＲｅｓｏｕｒｃｅ　Ｑカラムクロマトで精製したマウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｈｉｓの純度をＳＤＳ－ポリアクリルアミド電気泳動と銀染色で評価した結果である。 ＨｉｓＴｒａｐ　ＨＰカラムクロマトとＲｅｓｏｕｒｃｅ　Ｑカラムクロマトで精製したマウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｈｉｓの挙動を、ＳＤＳ－ポリアクリルアミド電気泳動と抗Ｖ５－ＨＲＰ抗体を用いたウェスタンブロッティングで検出した結果である。 ＨｉＴｒａｐ　ｐｒｏｔｅｉｎ　Ａ　カラムクロマトで精製したマウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃの純度をＳＤＳ－ポリアクリルアミド電気泳動と銀染色で評価した結果である。 マウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃ固相化プレートに対するラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体の結合をＥＬＩＳＡ法で試験した結果である。シンボル（◆）は＃１Ａ１抗体を、シンボル（■）は＃３Ａ１抗体を、シンボル（▲）は＃８Ａ１抗体を、シンボル（×）は＃２４Ａ１抗体を、シンボル（●）は＃３２Ａ１抗体を、シンボル（○）は＃３４Ａ１抗体を、シンボル（＋）は＃３９Ａ１抗体を、シンボル（‐）は＃４０Ａ１抗体を、シンボル（－）は＃４１Ｂ１抗体を、シンボル（◇）は＃６１Ａ１抗体を、シンボル（□）はコントロールＩｇＧをそれぞれ表している。 ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体（＃３Ａ１、＃８Ａ１又は＃３２Ａ１）の添加による、マウス骨髄非付着細胞の破骨細胞分化（ＲＡＮＫＬ刺激）への影響を試験した結果である。なお、図中のラットコントロールＩｇＧは、図５及び６で共通の陰性コントロールである。 ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体（＃３４Ａ１、＃３９Ａ１又は＃４０Ａ１）の添加による、マウス骨髄非付着細胞の破骨細胞分化（ＲＡＮＫＬ刺激）への影響を試験した結果である。なお、図中のウサギ抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５ポリクローナル抗体Ｎｏ．３は、図５及び６で共通の陽性コントロールである。 ＨｉｓＴｒａｐ　ＨＰカラムクロマトとＲｅｓｏｕｒｃｅ　Ｑカラムクロマトで精製したヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｈｉｓの純度を、ＳＤＳ－ポリアクリルアミド電気泳動と銀染色で評価した結果である。 Ｐｒｏｔｅｉｎ　Ａカラムクロマトで精製したヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃの純度を、ＳＤＳ－ポリアクリルアミド電気泳動で評価した結果である。 ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃ固相化プレートに対するラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体の結合をＥＬＩＳＡ法で試験した結果である。シンボル（◆）は＃１Ａ１抗体を、シンボル（■）は＃３Ａ１抗体を、シンボル（▲）は＃８Ａ１抗体を、シンボル（×）は＃２４Ａ１抗体を、シンボル（●）は＃３２Ａ１抗体を、シンボル（○）は＃３４Ａ１抗体を、シンボル（＋）は＃３９Ａ１抗体を、シンボル（‐）は＃４０Ａ１抗体を、シンボル（－）は＃４１Ｂ１抗体を、シンボル（◇）は＃６１Ａ１抗体を、シンボル（□）はコントロールＩｇＧをそれぞれ表している。 ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体の添加による、正常ヒト破骨前駆細胞からの巨大破骨細胞形成の抑制をＴＲＡＰ染色で示した顕微鏡写真である。 ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体（＃３２Ａ１抗体）の添加による、正常ヒト破骨前駆細胞からの巨大破骨細胞形成の抑制をＴＲＡＰ染色で示した顕微鏡写真である。 ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体（＃３２Ａ１抗体）の添加による、正常ヒト破骨細胞の骨吸収活性の抑制を示したグラフである（Ｎ＝６）。 ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体を卵巣摘除ラットに4週間投与した際の腰椎骨密度の増加作用（Ａ）及び尿中デオキシピリジノリン排泄量の低下作用（Ｂ）を示したグラフである。 ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃３２Ａ１がヒトＳｉｇｌｅｃ－１５のＶ－ｓｅｔドメインに結合することを競合ＥＬＩＳＡによって示した図である。 ラット＃３２Ａ１抗体とこれのヒトキメラ抗体が、マウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃに対してほぼ同等の親和性を持つことを競合ＥＬＩＳＡによって示した図である。 ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体（＃３２Ａ１抗体）及びそのキメラ抗体の添加による、マウス破骨細胞形成の抑制をＴＲＡＰ酵素活性で示したグラフである（Ｎ＝３）。 ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃３２Ａ１のヒトキメラ抗体の添加による、正常ヒト破骨前駆細胞からの巨大破骨細胞形成の抑制をＴＲＡＰ染色で示した顕微鏡写真である。 ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５ヒト化抗体６種が、抗体の濃度に依存してマウスＳｉｇｌｅｃ－１５蛋白質に結合することを、マウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃ固相化プレートを用いたＥＬＩＳＡ法によって確認した図である。 ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５ヒト化抗体６種が、抗体の濃度に依存してヒトＳｉｇｌｅｃ－１５蛋白質に結合することを、ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃ固相化プレートを用いたＥＬＩＳＡ法によって確認した図である。 ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体（＃３２Ａ１抗体）及びそのキメラ抗体の添加による、ＴＮＦα刺激下でのマウス巨大破骨細胞形成の抑制をＴＲＡＰ染色で示した顕微鏡写真である。 ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体（＃３２Ａ１抗体）及びそのキメラ抗体の添加による、ＴＮＦα刺激下でのマウス破骨細胞形成の抑制をＴＲＡＰ酵素活性で示したグラフである（Ｎ＝３）。 ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体（＃８Ａ１及び＃３２Ａ１抗体）の添加による、ラット破骨細胞形成の抑制をＴＲＡＰ酵素活性で示したグラフである（Ｎ＝３）。 クローニングしたラット＃３２Ａ１重鎖のヌクレオチド配列、及びアミノ酸配列を示した図である。 クローニングしたラット＃３２Ａ１軽鎖のヌクレオチド配列、及びアミノ酸配列を示した図である。 ＃３２Ａ１ヒトキメラ抗体重鎖のヌクレオチド配列、及びアミノ酸配列を示した図である。 ＃３２Ａ１ヒトキメラ抗体軽鎖のヌクレオチド配列、及びアミノ酸配列を示した図である。 ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１Ｈのヌクレオチド配列、及びアミノ酸配列を示した図である。 ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２Ｈのヌクレオチド配列、及びアミノ酸配列を示した図である。 ｈ＃３２Ａ１－Ｔ３Ｈのヌクレオチド配列、及びアミノ酸配列を示した図である。 ｈ＃３２Ａ１－Ｔ５Ｈのヌクレオチド配列、及びアミノ酸配列を示した図である。 ｈ＃３２Ａ１－Ｔ６Ｈのヌクレオチド配列、及びアミノ酸配列を示した図である。 ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１Ｌのヌクレオチド配列、及びアミノ酸配列を示した図である。 ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２Ｌのヌクレオチド配列、及びアミノ酸配列を示した図である。 ｈ＃３２Ａ１－Ｔ３Ｌのヌクレオチド配列、及びアミノ酸配列を示した図である。 ｈ＃３２Ａ１－Ｔ４Ｌのヌクレオチド配列、及びアミノ酸配列を示した図である。 ｈ＃３２Ａ１－Ｔ５Ｌのヌクレオチド配列、及びアミノ酸配列を示した図である。 ｈ＃３２Ａ１－Ｔ６Ｌのヌクレオチド配列、及びアミノ酸配列を示した図である。 ｈ＃３２Ａ１－Ｔ７Ｈ、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ８Ｈ、及びｈ＃３２Ａ１－Ｔ９Ｈのアミノ酸配列を示した図である。 ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１０Ｈ、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１１Ｈ、及びｈ＃３２Ａ１－Ｔ１２Ｈのアミノ酸配列を示した図である。 ｈ＃３２Ａ１－Ｔ７Ｌ、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ８Ｌ、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ９Ｌ、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１０Ｌ、及びｈ＃３２Ａ１－Ｔ１１Ｌのアミノ酸配列を示した図である。 ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１２Ｌ、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１３Ｌ、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１４Ｌ、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１５Ｌ、及びｈ＃３２Ａ１－Ｔ１６Ｌのアミノ酸配列を示した図である。 ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１７Ｌ、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１８Ｌ、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１９Ｌ、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２０Ｌ、及びｈ＃３２Ａ１－Ｔ２１Ｌのアミノ酸配列を示した図である。 ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２２Ｌ、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２３Ｌ、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２４Ｌ、及びｈ＃３２Ａ１－Ｔ２５Ｌのアミノ酸配列を示した図である。 ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５ヒト化抗体（ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ３）の添加による、マウス破骨細胞形成の抑制をＴＲＡＰ酵素活性で示したグラフである。なお、図中のラット＃３２Ａ１抗体は、図４４及び図４５で共通の陽性コントロールである。 ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５ヒト化抗体（ｈ＃３２Ａ１－Ｔ４、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ５、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ６）の添加による、マウス破骨細胞形成の抑制をＴＲＡＰ酵素活性で示したグラフである。 ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５ヒト化抗体（ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１／Ｌ５、ｈ＃３２Ａ１－Ｈ５／Ｌ５）の添加による、マウス破骨細胞形成の抑制をＴＲＡＰ酵素活性で示したグラフである。なお、図中のラット＃３２Ａ１抗体及び＃３２Ａ１ヒトキメラ抗体は、図４６及び図４７で共通の陽性コントロールである。 ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５ヒト化抗体（ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１／Ｌ２－１６、ｈ＃３２Ａ１－Ｈ－１／Ｌ２－１５）の添加による、マウス破骨細胞形成の抑制をＴＲＡＰ酵素活性で示したグラフである。 ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５ヒト化抗体（ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ３、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ４、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ５、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ６）の添加による、正常ヒト破骨細胞の骨吸収活性の抑制を示したグラフである。なお、図中のラット＃３２Ａ１抗体及び＃３２Ａ１ヒトキメラ抗体は、図４８及び図４９で共通の陽性コントロールである。 ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５ヒト化抗体（ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１／Ｌ５、ｈ＃３２Ａ１－Ｈ５／Ｌ５、ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１／Ｌ２－１６、ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１／Ｌ１２－５）の添加による、正常ヒト破骨細胞の骨吸収活性の抑制を示したグラフである。 ｈ＃３２Ａ１－Ｈ５／Ｌ５抗体の熱安定性を測定したサーモグラムである。 ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１／Ｌ５抗体の熱安定性を測定したサーモグラムである。 ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１／Ｌ１２－５抗体の熱安定性を測定したサーモグラムである。 ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１／Ｌ２－１６抗体の熱安定性を測定したサーモグラムである。 ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１のヌクレオチド配列、及びアミノ酸配列を示した図である。 ｈ＃３２Ａ１－Ｈ５のヌクレオチド配列、及びアミノ酸配列を示した図である。 ｈ＃３２Ａ１－Ｌ２－１５のヌクレオチド配列、及びアミノ酸配列を示した図である。 ｈ＃３２Ａ１－Ｌ２－１６のヌクレオチド配列、及びアミノ酸配列を示した図である。
　本明細書中において、「遺伝子」という語には、ＤＮＡのみならずｍＲＮＡ、ｃＤＮＡ及びｃＲＮＡも含まれるものとする。
　本明細書中において、「ポリヌクレオチド」という語は核酸と同じ意味で用いており、ＤＮＡ、ＲＮＡ、プローブ、オリゴヌクレオチド、及びプライマーも含まれている。
　本明細中においては、「ポリペプチド」と「蛋白質」は区別せずに用いている。
　本明細書中において、「ＲＮＡ画分」とは、ＲＮＡを含んでいる画分をいう。
　本明細書中において、「細胞」には、動物個体内の細胞、培養細胞も含んでいる。
　本明細書中において、「Ｓｉｇｌｅｃ－１５」は、Ｓｉｇｌｅｃ－１５蛋白質と同じ意味で用いている。
　本明細書中において、「破骨細胞の形成」は、「破骨細胞の分化」又は「破骨細胞の成熟」と同じ意味で用いている。
　本明細書中における「抗体の機能性断片」とは、抗原との結合活性を有する抗体の部分断片を意味しており、Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆｖ、ｓｃＦｖ、ｄｉａｂｏｄｙ、線状抗体、及び抗体断片より形成された多特異性抗体等を含む。また、Ｆ（ａｂ’）２を還元条件下で処理した抗体の可変領域の一価の断片であるＦａｂ’も抗体の機能性断片に含まれる。但し、抗原との結合能を有している限りこれらの分子に限定されない。また、これらの機能性断片には、抗体蛋白質の全長分子を適当な酵素で処理したもののみならず、遺伝子工学的に改変された抗体遺伝子を用いて適当な宿主細胞において産生された蛋白質も含まれる。
　本明細書における、「エピトープ」とは、特定の抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体の結合するＳｉｇｌｅｃ－１５の部分ペプチドまたは部分立体構造を意味する。前記のＳｉｇｌｅｃ－１５の部分ペプチドであるエピトープは、免疫アッセイ法等当業者によく知られている方法によって決定することができるが、例えば以下の方法によって行うことが出来る。Ｓｉｇｌｅｃ－１５の様々な部分構造を作製する。部分構造の作製にあたっては、公知のオリゴペプチド合成技術を用いることが出来る。例えば、Ｓｉｇｌｅｃ－１５のＣ末端あるいはＮ末端から適当な長さで順次短くした一連のポリペプチドを当業者に周知の遺伝子組み換え技術を用いて作製した後、それらに対する抗体の反応性を検討し、大まかな認識部位を決定した後に、さらに短いペプチドを合成してそれらのペプチドとの反応性を検討することによって、エピトープを決定することができる。又、特定のＳｉｇｌｅｃ－１５抗体の結合するＳｉｇｌｅｃ－１５の部分立体構造であるエピトープは、Ｘ線構造解析によって前記の抗体と隣接するＳｉｇｌｅｃ－１５のアミノ酸残基を特定することによって決定することができる。第一の抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体の結合する部分ペプチド又は部分立体構造に第二の抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体が結合すれば、第一の抗体と第二の抗体が共通のエピトープを有すると判定することができる。また、第一の抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体のＳｉｇｌｅｃ－１５に対する結合に対して第二の抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体が競合する（すなわち、第二の抗体が第一の抗体とＳｉｇｌｅｃ－１５の結合を妨げる）ことを確認することによって、具体的なエピトープの配列又は構造が決定されていなくても、第一の抗体と第二の抗体が共通のエピトープを有すると判定することができる。さらに、第一の抗体と第二の抗体が共通のエピトープに結合し、かつ第一の抗体が抗原の中和活性等の特殊な効果を有する場合、第二の抗体も同様な活性を有することが期待できる。
　抗体分子の重鎖及び軽鎖にはそれぞれ３箇所の相補性決定領域（ＣＤＲ：Ｃｏｍｐｌｅｍｅｔａｒｉｔｙ　ｄｅｔｅｒｒｉｎｇ　ｒｅｇｉｏｎ）があることが知られている。相補性決定領域は、超可変領域（ｈｙｐｅｒｖａｒｉａｂｌｅ　ｄｏｍａｉｎ）とも呼ばれ、抗体の重鎖及び軽鎖の可変領域内にあって、一次構造の変異性が特に高い部位であり、重鎖及び軽鎖のポリペプチド鎖の一次構造上において、それぞれ３ヶ所に分離している。本明細書中においては、抗体の相補性決定領域について、重鎖の相補性決定領域を重鎖アミノ酸配列のアミノ末端側からＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２、ＣＤＲＨ３と表記し、軽鎖の相補性決定領域を軽鎖アミノ酸配列のアミノ末端側からＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２、ＣＤＲＬ３と表記する。これらの部位は立体構造の上で相互に近接し、結合する抗原に対する特異性を決定している。
　本発明において、「ストリンジェントな条件下でハイブリダイズする」とは、市販のハイブリダイゼーション溶液ＥｘｐｒｅｓｓＨｙｂ　Ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ　Ｓｏｌｕｔｉｏｎ（クロンテック社製）中、６８℃でハイブリダイズすること、又は、ＤＮＡを固定したフィルターを用いて０．７－１．０ＭのＮａＣｌ存在下６８℃でハイブリダイゼーションを行った後、０．１－２倍濃度のＳＳＣ溶液（１倍濃度ＳＳＣとは１５０　ｍＭ　ＮａＣｌ、１５　ｍＭ　クエン酸ナトリウムからなる）を用い、６８℃で洗浄することにより同定することができる条件又はそれと同等の条件でハイブリダイズすることをいう。
　１．Ｓｉｇｌｅｃ－１５
　本発明者らによって、Ｓｉｇｌｅｃ－１５遺伝子は巨細胞腫において特異的に発現していることが見出された。また、本発明者らによってＳｉｇｌｅｃ－１５遺伝子は単球由来細胞株が破骨細胞に分化する際に発現量が増加することも見出された。
　本発明で用いるＳｉｇｌｅｃ－１５は、ヒト、ヒト以外の哺乳動物（例えば、モルモット、ラット、マウス、ウサギ、ブタ、ヒツジ、ウシ、サルなど）あるいはニワトリの単球細胞あるいは骨髄細胞から直接精製して使用するか、あるいは上記の細胞の細胞膜画分を調製して使用することができ、また、Ｓｉｇｌｅｃ－１５をｉｎ　ｖｉｔｒｏにて合成する、あるいは遺伝子操作により宿主細胞に産生させることによって得ることができる。遺伝子操作では、具体的には、Ｓｉｇｌｅｃ－１５　ｃＤＮＡを発現可能なベクターに組み込んだ後、転写と翻訳に必要な酵素、基質及びエネルギー物質を含む溶液中で合成する、あるいは他の原核生物、又は真核生物の宿主細胞を形質転換させることによってＳｉｇｌｅｃ－１５を発現させることにより、該蛋白質を得ることが出来る。
　ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５のｃＤＮＡのヌクレオチド配列は、ＧｅｎＢａｎｋにアクセッション番号：ＮＭ＿２１３６０２で登録され、配列表の配列番号１にも示されており、そのアミノ酸配列は配列表の配列番号２に示されている。マウスＳｉｇｌｅｃ－１５のｃＤＮＡのヌクレオチド配列は、ＧｅｎＢａｎｋにアクセッション番号：ＸＭ＿８８４６３６で登録され、配列表の配列番号３にも示されており、そのアミノ酸配列は配列表の配列番号４に示されている。シグナル配列が除かれた成熟ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５は、配列番号２に示されるアミノ酸配列の２１番目から３２８番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列に相当する。また、シグナル配列が除かれたマウスＳｉｇｌｅｃ－１５は、配列番号４に示されるアミノ酸配列の２１番目から３４１番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列に相当する。なお、Ｓｉｇｌｅｃ－１５は、ＣＤ３３　ａｎｔｉｇｅｎ－ｌｉｋｅ　３、ＣＤ３３　ｍｏｌｅｃｕｌｅ－ｌｉｋｅ　３、ＣＤ３３－ｌｉｋｅ　３又はＣＤ３３Ｌ３と呼ばれることがあり、これらは全て同じ分子を示している。
　Ｓｉｇｌｅｃ－１５のｃＤＮＡは例えば、Ｓｉｇｌｅｃ－１５のｃＤＮＡを発現しているｃＤＮＡライブラリーを鋳型として、Ｓｉｇｌｅｃ－１５のｃＤＮＡを特異的に増幅するプライマーを用いてポリメラーゼ連鎖反応（以下「ＰＣＲ」という）（Ｓａｉｋｉ，Ｒ．　Ｋ．，ｅｔ　ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ，（１９８８）２３９，４８７－４９）を行なう、いわゆるＰＣＲ法により取得することができる。
　なお、配列表の配列番号１及び３から選択される少なくともいずれか一つに示されるヌクレオチド配列と相補的なヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズし、かつ、Ｓｉｇｌｅｃ－１５と同等の生物活性を有する蛋白質をコードするポリヌクレオチドもＳｉｇｌｅｃ－１５のｃＤＮＡに含まれる。さらに、ヒト若しくはマウスＳｉｇｌｅｃ－１５遺伝子座から転写されるスプライシングバリアント又はこれにストリンジェントな条件でハイブリダイズするポリヌクレオチドであって、かつ、Ｓｉｇｌｅｃ－１５と同等の生物活性を有する蛋白質をコードするポリヌクレオチドもＳｉｇｌｅｃ－１５のｃＤＮＡに含まれる。
　また、配列表の配列番号２及び４から選択される少なくともいずれか一つに示されるアミノ酸配列、又はこれらの配列からシグナル配列が除かれたアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸が置換、欠失、又は付加されたアミノ酸配列からなり、Ｓｉｇｌｅｃ－１５と同等の生物活性を有する蛋白質もＳｉｇｌｅｃ－１５に含まれる。さらに、ヒト若しくはマウスＳｉｇｌｅｃ－１５遺伝子座から転写されるスプライシングバリアントにコードされるアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸が置換、欠失、又は付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、Ｓｉｇｌｅｃ－１５と同等の生物活性を有する蛋白質もＳｉｇｌｅｃ－１５に含まれる。
　２．骨代謝異常の検出
　Ｓｉｇｌｅｃ－１５遺伝子は、ヒト各種骨組織検体群における遺伝子の発現量の解析をすると、破骨細胞様の多核巨細胞が多数出現する骨腫瘍であり、臨床的所見として骨溶解性の骨破壊を特徴とする（Ｂｕｌｌｏｕｇｈ　ｅｔ　ａｌ．，Ａｔｌａｓ　ｏｆ　Ｏｒｔｈｏｐｅｄｉｃ　Ｐａｔｈｏｌｏｇｙ　２ｎｄ　ｅｄｉｔｉｏｎ，　ｐｐ１７．６－１７．８，Ｌｉｐｐｉｎｃｏｔｔ　Ｗｉｌｌｉａｍｓ　＆　Ｗｉｌｋｉｎｓ　Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓ（１９９２））巨細胞腫（Ｇｉａｎｔ　ｃｅｌｌ　ｔｕｍｏｒ；　ＧＣＴ）において有意に発現量が増加していることが見出された。
　また、Ｓｉｇｌｅｃ－１５遺伝子は単球由来細胞株が破骨細胞に分化する際に発現量が増加することも見出された。
　したがって、Ｓｉｇｌｅｃ－１５はＧＣＴのような骨吸収が亢進するヒトの病態に関与していると考えられる。すなわち、Ｓｉｇｌｅｃ－１５遺伝子及び／又はＳｉｇｌｅｃ－１５の各細胞、及び／又は各組織における発現量を測定することでＳｉｇｌｅｃ－１５の過剰発現を伴う骨代謝異常の状態を判定することができる。なお、本明細書における骨代謝異常とは、正味の骨喪失によって特徴付けられる障害であり、具体的には骨粗鬆症（閉経後骨粗鬆症、老人性骨粗鬆症、ステロイドや免疫抑制剤等の治療用薬剤の使用による続発性骨粗鬆症、関節リウマチに伴う骨粗鬆症）、関節リウマチに伴う骨破壊、癌性高カルシウム血症、多発性骨髄腫や癌の骨転移に伴う骨破壊、巨細胞腫、骨減少症、歯根膜炎による歯の喪失、人工関節周囲の骨融解、慢性骨髄炎における骨破壊、骨ページェット病、腎性骨異栄養症、骨形成不全症等を挙げることができるが、これらに限定されない。
　本発明においてＳｉｇｌｅｃ－１５遺伝子及び／又はＳｉｇｌｅｃ－１５の発現量を調べる対象となる「検体」とは、被験者や臨床検体等から得られた、骨髄、骨、前立腺、精巣、陰茎、膀胱、腎臓、口腔、咽頭、口唇、舌、歯肉、鼻咽頭、食道、胃、小腸、大腸、結腸、肝臓、胆嚢、膵臓、鼻、肺、軟部組織、皮膚、乳房、子宮、卵巣、脳、甲状腺、リンパ節、筋肉、脂肪組織等の組織、血液、体液又は排泄物等の試料を意味するが、本発明においては血液又は骨髄がより好ましい。
　破骨細胞の分化に関連することが知られているＲＡＮＫＬについては、ノックアウトマウスが作製されており、ＲＡＮＫＬの機能が失われた場合の表現型について解析がなされている（Ｙｏｕｎｇ－Ｙｕｎ　Ｋｏｎｇ，ｅｔ．ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ（１９９９）３９７，ｐ．３１５－３２３）。Ｓｉｇｌｅｃ－１５についても同様にノックアウトマウスを作製することによって，Ｓｉｇｌｅｃ－１５の機能が失われた場合の表現型の解析を行うことができる。
　３．抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体の製造
　本発明のＳｉｇｌｅｃ－１５に対する抗体は、常法を用いて、Ｓｉｇｌｅｃ－１５又はＳｉｇｌｅｃ－１５のアミノ酸配列から選択される任意のポリペプチドを動物に免疫し、生体内に産生される抗体を採取、精製することによって得ることができる。抗原となるＳｉｇｌｅｃ－１５の生物種はヒトに限定されず、マウス、ラット等のヒト以外の動物に由来するＳｉｇｌｅｃ－１５を動物に免疫することもできる。この場合には、取得された異種Ｓｉｇｌｅｃ－１５に結合する抗体とヒトＳｉｇｌｅｃ－１５との交差性を試験することによって、ヒトの疾患に適用可能な抗体を選別できる。
　また、公知の方法（例えば、Ｋｏｈｌｅｒ　ａｎｄ　Ｍｉｌｓｔｅｉｎ，Ｎａｔｕｒｅ　（１９７５）２５６，ｐ．４９５－４９７、Ｋｅｎｎｅｔ，Ｒ．ｅｄ．，Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ　Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ，ｐ．３６５－３６７，Ｐｌｅｎｕｍ　Ｐｒｅｓｓ，Ｎ．Ｙ．（１９８０））に従って、Ｓｉｇｌｅｃ－１５に対する抗体を産生する抗体産生細胞とミエローマ細胞とを融合させることによりハイブリドーマを樹立し、モノクローナル抗体を得ることもできる。
　なお、抗原となるＳｉｇｌｅｃ－１５はＳｉｇｌｅｃ－１５遺伝子を遺伝子操作により宿主細胞に産生させることによって得ることができる。
　具体的には、Ｓｉｇｌｅｃ－１５遺伝子を発現可能なベクターを作製し、これを宿主細胞に導入して該遺伝子を発現させ、発現したＳｉｇｌｅｃ－１５を精製すればよい。以下、具体的にＳｉｇｌｅｃ－１５に対する抗体の取得方法を説明する
　（１）　抗原の調製
　抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体を作製するための抗原としては、Ｓｉｇｌｅｃ－１５又はその少なくとも６個の連続した部分アミノ酸配列からなるポリペプチド、あるいはこれらに任意のアミノ酸配列や担体が付加された誘導体を挙げることができる。
　Ｓｉｇｌｅｃ－１５は、ヒトの腫瘍組織あるいは腫瘍細胞から直接精製して使用することができ、また、Ｓｉｇｌｅｃ－１５をｉｎ　ｖｉｔｒｏにて合成する、あるいは遺伝子操作により宿主細胞に産生させることによって得ることができる。
　遺伝子操作では、具体的には、Ｓｉｇｌｅｃ－１５のｃＤＮＡを発現可能なベクターに組み込んだ後、転写と翻訳に必要な酵素、基質及びエネルギー物質を含む溶液中で合成する、あるいは他の原核生物、又は真核生物の宿主細胞を形質転換させることによってＳｉｇｌｅｃ－１５を発現させることにより、抗原を得ることが出来る。
　また、膜蛋白質であるＳｉｇｌｅｃ－１５の細胞外領域と抗体の定常領域とを連結した融合蛋白質を適切な宿主・ベクター系において発現させることによって、分泌蛋白質として抗原を得ることも可能である。
　Ｓｉｇｌｅｃ－１５のｃＤＮＡは例えば、Ｓｉｇｌｅｃ－１５のｃＤＮＡを発現しているｃＤＮＡライブラリーを鋳型として、Ｓｉｇｌｅｃ－１５　ｃＤＮＡを特異的に増幅するプライマーを用いてポリメラーゼ連鎖反応（以下「ＰＣＲ」という）（Ｓａｉｋｉ，Ｒ．　Ｋ．，ｅｔ　ａｌ．Ｓｃｉｅｎｃｅ（１９８８）２３９，ｐ．４８７－４８９　参照）を行なう、いわゆるＰＣＲ法により取得することができる。
　ポリペプチドのイン・ビトロ（ｉｎ　ｖｉｔｒｏ）合成としては、例えばロシュ・ダイアグノスティックス社製のラピッドトランスレーションシステム（ＲＴＳ）を挙げることができるが、これに限定されない。
　原核細胞の宿主としては、例えば、大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ　ｃｏｌｉ）や枯草菌（Ｂａｃｉｌｌｕｓ　ｓｕｂｔｉｌｉｓ）などを挙げることができる。目的の遺伝子をこれらの宿主細胞内で形質転換させるには、宿主と適合し得る種由来のレプリコンすなわち複製起点と、調節配列を含んでいるプラスミドベクターで宿主細胞を形質転換させる。また、ベクターとしては、形質転換細胞に表現形質（表現型）の選択性を付与することができる配列を有するものが好ましい。
　真核細胞の宿主細胞には、脊椎動物、昆虫、酵母などの細胞が含まれ、脊椎動物細胞としては、例えば、サルの細胞であるＣＯＳ細胞（Ｇｌｕｚｍａｎ，Ｙ．Ｃｅｌｌ（１９８１）２３，ｐ．１７５－１８２、ＡＴＣＣ　ＣＲＬ－１６５０）、マウス線維芽細胞ＮＩＨ３Ｔ３（ＡＴＣＣ　Ｎｏ．ＣＲＬ－１６５８）やチャイニーズ・ハムスター卵巣細胞（ＣＨＯ細胞、ＡＴＣＣ　ＣＣＬ－６１）のジヒドロ葉酸還元酵素欠損株（Ｕｒｌａｕｂ，Ｇ．　ａｎｄ　Ｃｈａｓｉｎ，Ｌ．Ａ．Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ（１９８０）７７，ｐ．４１２６－４２２０）等がよく用いられているが、これらに限定されない。
　上記のようにして得られる形質転換体は、常法に従い培養することができ、該培養により細胞内、又は細胞外に目的のポリペプチドが産生される。
　該培養に用いられる培地としては、採用した宿主細胞に応じて慣用される各種のものを適宜選択でき、大腸菌であれば、例えば、ＬＢ培地に必要に応じて、アンピシリン等の抗生物質やＩＰＭＧを添加して用いることができる。
　上記培養により、形質転換体の細胞内又は細胞外に産生される組換え蛋白質は、該蛋白質の物理的性質や化学的性質などを利用した各種の公知の分離操作法により分離・精製することができる。
　該方法としては、具体的には例えば、通常の蛋白質沈殿剤による処理、限外濾過、分子ふるいクロマトグラフィー（ゲル濾過）、吸着クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィーなどの各種液体クロマトグラフィー、透析法、これらの組合せなどを例示できる。
　また、発現させる組換え蛋白質に６残基からなるヒスチジンタグを繋げることにより、ニッケルアフィニティーカラムで効率的に精製することができる。あるいは、発現させる組換え蛋白質にＩｇＧのＦｃ領域を繋げることにより、プロテインＡカラムで効率的に精製することができる
　上記方法を組合せることにより容易に高収率、高純度で目的とするポリペプチドを大量に製造できる。
　（２）　抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体の製造
　Ｓｉｇｌｅｃ－１５と特異的に結合する抗体の例として、Ｓｉｇｌｅｃ－１５と特異的に結合するモノクローナル抗体を挙げることができるが、その取得方法は、以下に記載する通りである。
　モノクローナル抗体の製造にあたっては、一般に下記のような作業工程が必要である。
すなわち、
（ａ）抗原として使用する生体高分子の精製、
（ｂ）抗原を動物に注射することにより免疫した後、血液を採取しその抗体価を検定して脾臓摘出の時期を決定してから、抗体産生細胞を調製する工程、
（ｃ）骨髄腫細胞（以下「ミエローマ」という）の調製、
（ｄ）抗体産生細胞とミエローマとの細胞融合、
（ｅ）目的とする抗体を産生するハイブリドーマ群の選別、
（ｆ）単一細胞クローンへの分割（クローニング）、
（ｇ）場合によっては、モノクローナル抗体を大量に製造するためのハイブリドーマの培養、又はハイブリドーマを移植した動物の飼育、
（ｈ）このようにして製造されたモノクローナル抗体の生理活性、及びその結合特異性の検討、あるいは標識試薬としての特性の検定、等である。
　以下、モノクローナル抗体の作製法を上記工程に沿って詳述するが、該抗体の作製法はこれに制限されず、例えば脾細胞以外の抗体産生細胞及びミエローマを使用することもできる。
　（ａ）抗原の精製
　抗原としては、前記したような方法で調製したＳｉｇｌｅｃ－１５又はその一部を使用することができる。
　また、Ｓｉｇｌｅｃ－１５発現組換え体細胞より調製した膜画分、又はＳｉｇｌｅｃ－１５発現組換え体細胞自身、さらに、当業者に周知の方法を用いて、化学合成した本発明の蛋白質の部分ペプチドを抗原として使用することもできる。
　（ｂ）抗体産生細胞の調製
　工程（ａ）で得られた抗原と、フロインドの完全又は不完全アジュバント、又はカリミョウバンのような助剤とを混合し、免疫原として実験動物に免疫する。実験動物は公知のハイブリドーマ作製法に用いられる動物を支障なく使用することができる。具体的には、たとえばマウス、ラット、ヤギ、ヒツジ、ウシ、ウマ等を使用することができる。ただし、摘出した抗体産生細胞と融合させるミエローマ細胞の入手容易性等の観点から、マウス又はラットを被免疫動物とするのが好ましい。
　また、実際に使用するマウス及びラットの系統には特に制限はなく、マウスの場合には、たとえば各系統　Ａ、ＡＫＲ、ＢＡＬＢ／ｃ、ＢＤＰ、ＢＡ、ＣＥ、Ｃ３Ｈ、５７ＢＬ、Ｃ５７ＢＬ、Ｃ５７Ｌ、ＤＢＡ、ＦＬ、ＨＴＨ、ＨＴ１、ＬＰ、ＮＺＢ、ＮＺＷ、ＲＦ、Ｒ　ＩＩＩ、ＳＪＬ、ＳＷＲ、ＷＢ、１２９等が、またラットの場合には、たとえば、Ｗｉｓｔａｒ、Ｌｏｗ、Ｌｅｗｉｓ、Ｓｐｒａｇｕｅ、Ｄａｗｌｅｙ、ＡＣＩ、ＢＮ、Ｆｉｓｃｈｅｒ等を用いることができる。
　これらのマウス及びラットは例えば日本クレア、日本チャ－ルスリバー、等実験動物飼育販売業者より入手することができる。
　このうち、後述のミエローマ細胞との融合適合性を勘案すれば、マウスでは　ＢＡＬＢ／ｃ　系統が、ラットではＷｉｓｔａｒ及びＬｏｗ系統が被免疫動物として特に好ましい。
　また、抗原のヒトとマウスでの相同性を考慮し、自己抗体を除去する生体機構を低下させたマウス、すなわち自己免疫疾患マウスを用いることも好ましい。
　なお、これらマウス又はラットの免疫時の週齢は、好ましくは５～１２週齢、さらに好ましくは６～８週齢である。
　Ｓｉｇｌｅｃ－１５又はこの組換え体によって動物を免疫するには、例えば、Ｗｅｉｒ，　Ｄ．Ｍ．，Ｈａｎｄｂｏｏｋ　ｏｆ　Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ　Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ　Ｖｏｌ．Ｉ．ＩＩ．ＩＩＩ．，Ｂｌａｃｋｗｅｌｌ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ　Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎｓ，Ｏｘｆｏｒｄ（１９８７）、Ｋａｂａｔ，Ｅ．Ａ．ａｎｄ　Ｍａｙｅｒ，Ｍ．Ｍ．，Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ　Ｉｍｍｕｎｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，Ｃｈａｒｌｅｓ　Ｃ　Ｔｈｏｍａｓ　Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒ　Ｓｐｒｉｎｇｆｉｅｌｄ，Ｉｌｌｉｎｏｉｓ（１９６４）　等に詳しく記載されている公知の方法を用いることができる。
　これらの免疫法のうち、本発明において好適な方法を具体的に示せば、たとえば以下のとおりである。
　すなわち、まず、抗原である膜蛋白質画分、もしくは抗原を発現させた細胞を動物の皮内又は腹腔内に投与する。
　ただし、免疫効率を高めるためには投与方法の併用が好ましく、前半は皮内投与を行い、後半又は最終回のみ腹腔内投与を行うと、特に免疫効率を高めることができる。
　抗原の投与スケジュールは、被免疫動物の種類、個体差等により異なるが、一般には、抗原投与回数３～６回、投与間隔２～６週間が好ましく、投与回数３～４回、投与間隔２～４週間がさらに好ましい。
　また、抗原の投与量は、動物の種類、個体差等により異なるが、一般には０．０５～５ｍｇ、好ましくは０．１～０．５ｍｇ程度とする。
　追加免疫は、以上の通りの抗原投与の１～６週間後、好ましくは２～４週間後、さらに好ましくは２～３週間後に行う。
　なお、追加免疫を行う際の抗原投与量は、動物の種類、大きさ等により異なるが、一般に、例えばマウスの場合には０．０５～５ｍｇ、好ましくは０．１～０．５ｍｇ、さらに好ましくは０．１～０．２ｍｇ程度とする。
　上記追加免疫から１～１０日後、好ましくは２～５日後、さらに好ましくは２～３日後に被免疫動物から抗体産生細胞を含む脾臓細胞又はリンパ球を無菌的に取り出す。
　なお、その際に抗体価を測定し、抗体価が十分高くなった動物を抗体産生細胞の供給源として用いれば、以後の操作の効率を高めることができる。
　ここで用いられる抗体価の測定法としては、例えば、ＲＩＡ法又はＥＬＩＳＡ法を挙げることができるがこれらの方法に制限されない。
　本発明における抗体価の測定は、例えばＥＬＩＳＡ法によれば、以下に記載するような手順により行うことができる。
　まず、精製又は部分精製した抗原をＥＬＩＳＡ用９６穴プレート等の固相表面に吸着させ、さらに抗原が吸着していない固相表面を抗原と無関係な蛋白質、例えばウシ血清アルブミン（以下「ＢＳＡ」という）により覆い、該表面を洗浄後、第一抗体として段階希釈した試料（例えばマウス血清）に接触させ、上記抗原に試料中の抗体を結合させる。
　さらに第二抗体として酵素標識されたマウス抗体に対する抗体を加えてマウス抗体に結合させ、洗浄後該酵素の基質を加え、基質分解に基づく発色による吸光度の変化等を測定することにより、抗体価を算出する。
　これらの脾臓細胞又はリンパ球からの抗体産生細胞の分離は、公知の方法（例えば、Ｋｏｈｌｅｒ　ｅｔ　ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ（１９７５）２５６，ｐ．４９５，；Ｋｏｈｌｅｒ　ｅｔ　ａｌ．，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．（１９７７）６，ｐ．５１１，；Ｍｉｌｓｔｅｉｎ　ｅｔ　ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ（１９７７），２６６，ｐ．５５０，；Ｗａｌｓｈ，Ｎａｔｕｒｅ，（１９７７）２６６，ｐ．４９５，）に従って行うことができる。
　例えば、脾臓細胞の場合には、脾臓を細切して細胞をステンレスメッシュで濾過した後、イーグル最小必須培地（ＭＥＭ）に浮遊させて抗体産生細胞を分離する一般的方法を採用することができる。
　（ｃ）骨髄腫細胞（以下、「ミエローマ」という）の調製
　細胞融合に用いるミエローマ細胞には特段の制限はなく、公知の細胞株から適宜選択して用いることができる。ただし、融合細胞からハイブリドーマを選択する際の利便性を考慮して、その選択手続が確立しているＨＧＰＲＴ（Ｈｙｐｏｘａｎｔｈｉｎｅ－ｇｕａｎｉｎｅ　ｐｈｏｓｐｈｏｒｉｂｏｓｙｌ　ｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅ）欠損株を用いるのが好ましい。
　すなわち、マウス由来のＸ６３－Ａｇ８（Ｘ６３）、ＮＳ１－ＡＮＳ／１（ＮＳ１）、Ｐ３Ｘ６３－Ａｇ８．Ｕ１（Ｐ３Ｕ１）、Ｘ６３－Ａｇ８．６５３（Ｘ６３．６５３）、ＳＰ２／０－Ａｇ１４（ＳＰ２／０）、ＭＰＣ１１－４５．６ＴＧ１．７（４５．６ＴＧ）、ＦＯ、Ｓ１４９／５ＸＸＯ、ＢＵ．１等、ラット由来の２１０．ＲＳＹ３．Ａｇ．１．２．３（Ｙ３）等、ヒト由来のＵ２６６ＡＲ（ＳＫＯ－００７）、ＧＭ１５００・ＧＴＧ－Ａ１２（ＧＭ１５００）、ＵＣ７２９－６、ＬＩＣＲ－ＬＯＷ－ＨＭｙ２（ＨＭｙ２）、８２２６ＡＲ／ＮＩＰ４－１（ＮＰ４１）等である。
　これらのＨＧＰＲＴ欠損株は例えば、Ａｍｅｒｉｃａｎ　Ｔｙｐｅ　Ｃｕｌｔｕｒｅ　Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ　（ＡＴＣＣ）等から入手することができる。
　これらの細胞株は、適当な培地、例えば８－アザグアニン培地［ＲＰＭＩ－１６４０培地にグルタミン、２－メルカプトエタノール、ゲンタマイシン、及びウシ胎児血清（以下「ＦＣＳ」という）を加えた培地に８－アザグアニンを加えた培地］、イスコフ改変ダルベッコ培地（Ｉｓｃｏｖｅ’ｓ　Ｍｏｄｉｆｉｅｄ　Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ　Ｍｅｄｉｕｍ；以下「ＩＭＤＭ」という）、又はダルベッコ改変イーグル培地（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ　Ｍｏｄｉｆｉｅｄ　Ｅａｇｌｅ　Ｍｅｄｉｕｍ；以下「ＤＭＥＭ」という）で継代培養するが、細胞融合の３乃至４日前に正常培地［例えば、１０％　ＦＣＳを含むＡＳＦ１０４培地（味の素（株）社製）］で継代培養し、融合当日に２×１０７以上の細胞数を確保しておく。
　（ｄ）細胞融合
　抗体産生細胞とミエローマ細胞との融合は、公知の方法（Ｗｅｉｒ，Ｄ．Ｍ．，Ｈａｎｄｂｏｏｋｏｆ　Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ　Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ　Ｖｏｌ．Ｉ．ＩＩ．ＩＩＩ．，Ｂｌａｃｋｗｅｌｌ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ　Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎｓ，Ｏｘｆｏｒｄ（１９８７）、Ｋａｂａｔ，Ｅ．Ａ．ａｎｄ　Ｍａｙｅｒ，Ｍ．Ｍ．，Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ　Ｉｍｍｕｎｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，Ｃｈａｒｌｅｓ　Ｃ　Ｔｈｏｍａｓ　Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒ　Ｓｐｒｉｎｇｆｉｅｌｄ，Ｉｌｌｉｎｏｉｓ（１９６４）等）に従い、細胞の生存率を極度に低下させない程度の条件下で適宜実施することができる。
　そのような方法は、例えば、ポリエチレングリコール等の高濃度ポリマー溶液中で抗体産生細胞とミエローマ細胞とを混合する化学的方法、電気的刺激を利用する物理的方法等を用いることができる。
　このうち、上記化学的方法の具体例を示せば以下のとおりである。
すなわち、高濃度ポリマー溶液としてポリエチレングリコールを用いる場合には、分子量１５００～６０００、好ましくは２０００～４０００のポリエチレングリコール溶液中で、３０～４０℃、好ましくは３５～３８℃の温度で抗体産生細胞とミエローマ細胞とを１～１０分間、好ましくは５～８分間混合する。
　（ｅ）ハイブリドーマ群の選択
　上記細胞融合により得られるハイブリドーマの選択方法は特に制限はないが、通常ＨＡＴ（ヒポキサンチン・アミノプテリン・チミジン）選択法（Ｋｏｈｌｅｒ　ｅｔ　ａｌ．，　Ｎａｔｕｒｅ（１９７５）２５６，ｐ．４９５；Ｍｉｌｓｔｅｉｎ　ｅｔ　ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ（１９７７）２６６，ｐ．５５０）が用いられる。
　この方法は、アミノプテリンで生存し得ないＨＧＰＲＴ欠損株のミエローマ細胞を用いてハイブリドーマを得る場合に有効である。
　すなわち、未融合細胞及びハイブリドーマをＨＡＴ培地で培養することにより、アミノプテリンに対する耐性を持ち合わせたハイブリドーマのみを選択的に残存させ、かつ増殖させることができる。
　（ｆ）単一細胞クローンへの分割（クローニング）
　ハイブリドーマのクローニング法としては、例えばメチルセルロース法、軟アガロース法、限界希釈法等の公知の方法を用いることができる（例えばＢａｒｂａｒａ，　Ｂ．Ｍ．　ａｎｄ　Ｓｔａｎｌｅｙ，　Ｍ．Ｓ．：Ｓｅｌｅｃｔｅｄ　Ｍｅｔｈｏｄｓ　ｉｎ　Ｃｅｌｌｕｌａｒ　Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，Ｗ．Ｈ．　Ｆｒｅｅｍａｎ　ａｎｄ　Ｃｏｍｐａｎｙ，Ｓａｎ　Ｆｒａｎｃｉｓｃｏ（１９８０）参照）。これらの方法のうち、特に限界希釈法が好適である。
　この方法では、マイクロプレートにラット胎児由来線維芽細胞株、あるいは正常マウス脾臓細胞、胸腺細胞、腹水細胞などのフィーダー（ｆｅｅｄｅｒ）を接種しておく。
　一方、あらかじめハイブリドーマを０．２～０．５個／０．２ｍｌになるように培地中で希釈し、この希釈したハイブリドーマの浮遊液を各ウェルに０．１ｍｌずつ入れ、一定期間毎（例えば３日毎）に約１／３の培地を新しいものに交換しながら２週間程度培養を続けることによってハイブリドーマのクローンを増殖させることができる。
　抗体価の認められたウェルについて、例えば限界希釈法によるクローニングを２～４回繰返し、安定して抗体価の認められたものを抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体産生ハイブリドーマ株として選択する。
　このようにしてクローニングされたハイブリドーマ株の例としては、ＷＯ０９／４８０７２に記載のハイブリドーマ＃３２Ａ１を挙げることができる。ハイブリドーマ＃３２Ａ１は、日本国独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センター（所在地：郵便番号３０５－８５６６　日本国　茨城県つくば市東１丁目１番地１　中央第６）に２００８年８月２８日付けで寄託され、ａｎｔｉ－Ｓｉｇｌｅｃ－１５　Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ　＃３２Ａ１の名称で受託番号ＦＥＲＭ　ＢＰ－１０９９９が付与されている。なお、本明細書中においては、ハイブリドーマ＃３２Ａ１が産生する抗体を、「＃３２Ａ１抗体」又は単に「＃３２Ａ１」と記載する。また、本明細書の実施例において＃３２Ａ１抗体以外に取得された抗体についても、同様な方法で抗体名を記載する。＃３２Ａ１抗体の重鎖可変領域を含む部分断片は、配列表の配列番号２８の２０乃至１６７番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する。また、＃３２Ａ１抗体の軽鎖可変領域配列を含む部分断片は、配列表の配列番号３０の２１乃至１３９番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する。
　（ｇ）ハイブリドーマの培養によるモノクローナル抗体の調製
　このようにして選択されたハイブリドーマは、これを培養することにより、モノクローナル抗体を効率よく得ることができるが、培養に先立ち、目的とするモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマをスクリーニングすることが望ましい。
　このスクリーニングにはそれ自体既知の方法が採用できる。
　本発明における抗体価の測定は、例えば上記（ｂ）の項目で説明したＥＬＩＳＡ法により行うことができる。
　以上の方法によって得たハイブリドーマは、液体窒素中又は－８０℃以下の冷凍庫中に凍結状態で保存することができる。
　クローニングを完了したハイブリドーマは、培地をＨＴ培地から正常培地に換えて培養される。
　大量培養は、大型培養瓶を用いた回転培養、あるいはスピナー培養で行われる。
この大量培養における上清から、ゲル濾過等、当業者に周知の方法を用いて精製することにより、本発明の蛋白質に特異的に結合するモノクローナル抗体を得ることができる。
　また、同系統のマウス（例えば、上記のＢＡＬＢ／ｃ）、あるいはＮｕ／Ｎｕマウスの腹腔内にハイブリドーマを注射し、該ハイブリド－マを増殖させることにより、本発明のモノクローナル抗体を大量に含む腹水を得ることができる。
　腹腔内に投与する場合には、事前（３～７日前）に２，６，１０，１４－テトラメチルペンタデカン（２，６，１０，１４－ｔｅｔｒａｍｅｔｈｙｌ　ｐｅｎｔａｄｅｃａｎｅ）（プリスタン）等の鉱物油を投与すると、より多量の腹水が得られる。
　たとえば，ハイブリドーマと同系統のマウスの腹腔内に予め免疫抑制剤を注射し、Ｔ細胞を不活性化した後、２０日後に１０６～１０７個のハイブリドーマ・クローン細胞を、血清を含まない培地中に浮遊（０．５ｍｌ）させて腹腔内に投与し、通常腹部が膨満し、腹水がたまったところでマウスより腹水を採取する。
　この方法により、培養液中に比べて約１００倍以上の濃度のモノクローナル抗体が得られる。
　上記方法により得たモノクローナル抗体は、例えばＷｅｉｒ，Ｄ．Ｍ．：Ｈａｎｄｂｏｏｋ　ｏｆ　Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ　Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，Ｖｏｌ．Ｉ，ＩＩ，ＩＩＩ，Ｂｌａｃｋｗｅｌｌ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ　Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎｓ，Ｏｘｆｏｒｄ（１９７８）に記載されている方法で精製することができる。
　すなわち、硫安塩析法、ゲル濾過法、イオン交換クロマトグラフィー法、アフィニティークロマトグラフィー法等である。
　精製の簡便な方法としては、市販のモノクローナル抗体精製キット（例えば、ＭＡｂＴｒａｐ　ＧＩＩキット；ファルマシア社製）等を利用することもできる。
　かくして得られるモノクローナル抗体は、Ｓｉｇｌｅｃ－１５に対して高い抗原特異性を有する。
　（ｈ）モノクローナル抗体の検定
　かくして得られたモノクローナル抗体のアイソタイプ及びサブクラスの決定は以下のように行うことができる。
　まず、同定法としてはオクテルロニー（Ｏｕｃｈｔｅｒｌｏｎｙ）法、ＥＬＩＳＡ法、又はＲＩＡ法を挙げることができる。
　オクテルロニー法は簡便ではあるが、モノクローナル抗体の濃度が低い場合には濃縮操作が必要である。
　一方、ＥＬＩＳＡ法又はＲＩＡ法を用いた場合は、培養上清をそのまま抗原吸着固相と反応させ、さらに第二次抗体として各種イムノグロブリンアイソタイプ、サブクラスに対応する抗体を用いることにより、モノクローナル抗体のアイソタイプ、サブクラスを同定することが可能である。
　また、さらに簡便な方法として、市販の同定用のキット（例えば、マウスタイパーキット；バイオラッド社製）等を利用することもできる。
　さらに、蛋白質の定量は、フォーリンロウリー法、及び２８０ｎｍにおける吸光度［１．４（ＯＤ２８０）＝イムノグロブリン１ｍｇ／ｍｌ］より算出する方法により行うことができる。
　（３）その他の抗体
　本発明の抗体には、上記Ｓｉｇｌｅｃ－１５に対するモノクローナル抗体に加え、ヒトに対する異種抗原性を低下させること等を目的として人為的に改変した遺伝子組換え型抗体、例えば、キメラ（Ｃｈｉｍｅｒｉｃ）抗体、ヒト化（Ｈｕｍａｎｉｚｅｄ）抗体、ヒト抗体なども含まれる。これらの抗体は、既知の方法を用いて製造することができる。
　キメラ抗体としては、抗体の可変領域と定常領域が互いに異種である抗体、例えばマウス又はラット由来抗体の可変領域をヒト由来の定常領域に接合したキメラ抗体を挙げることができる（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．，８１，６８５１－６８５５，　（１９８４）参照）。ラット抗マウス抗体＃３２Ａ１由来のキメラ抗体の一例として、配列表の配列番号４１の２０乃至４７０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する重鎖、及び配列番号４３の２１乃至２３７番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する軽鎖からなる抗体を挙げることができる。
　ヒト化抗体としては、相補性決定領域（ＣＤＲ；ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔａｒｉｔｙ　ｄｅｔｅｒｍｉｎｉｎｇ　ｒｅｇｉｏｎ）のみをヒト由来の抗体に組み込んだ抗体（Ｎａｔｕｒｅ（１９８６）３２１，ｐ．５２２－５２５参照）、ＣＤＲ移植法によって、ＣＤＲの配列に加え一部のフレームワークのアミノ酸残基もヒト抗体に移植した抗体（国際公開パンフレットＷＯ９０／０７８６１）を挙げることができる。ラット抗体＃３２Ａ１のヒト化抗体の実例としては、配列表の配列番号５１の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基、配列番号５３の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基、配列番号５５の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基、配列番号５７の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基、配列番号５９の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基、配列番号９９の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基、配列番号１０１の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基、又は配列番号７２乃至７７に記載のいずれか一つのアミノ酸配列の１乃至１２１番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域を含む重鎖、及び配列番号６１の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基、配列番号６３の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基、配列番号６５の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基、配列番号６７の２１乃至１３２番目のアミノ酸残基、配列番号６９の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基、配列番号７１の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基、配列番号１０３の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基、配列番号１０５の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基、又は配列番号７８乃至９６のいずれか一つに記載のアミノ酸配列の１乃至１１３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む軽鎖の任意の組合せを挙げることができる。
　好適な組合せとしては、配列番号５１の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域を含む重鎖及び配列番号６１の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む軽鎖からなる抗体、配列番号５３の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域を含む重鎖及び配列番号６３の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む軽鎖からなる抗体、配列番号５５の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域を含む重鎖及び配列番号６５の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む軽鎖からなる抗体、配列番号５５の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域を含む重鎖及び配列番号６７の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む軽鎖からなる抗体、配列番号５７の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域を含む重鎖及び配列番号６９の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む軽鎖からなる抗体、配列番号５９の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域を含む重鎖及び配列番号７１の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む軽鎖からなる抗体、配列番号９９の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域を含む重鎖及び配列番号６９の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む軽鎖からなる抗体、配列番号１０１の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域を含む重鎖及び配列番号６９の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む軽鎖からなる抗体、配列番号９９の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域を含む重鎖及び配列番号１０３の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む軽鎖からなる抗体、又は配列番号９９の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域を含む重鎖及び配列番号１０５の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む軽鎖からなる抗体を挙げることができる。
　さらに好適な組合せとしては、配列番号５１の２０乃至４７０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する重鎖及び配列番号６１の２１乃至２３８番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する軽鎖からなる抗体、配列番号５３の２０乃至４７０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する重鎖及び配列番号６３の２１乃至２３８番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する軽鎖からなる抗体、配列番号５５の２０乃至４７０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する重鎖及び配列番号６５の２１乃至２３８番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する軽鎖からなる抗体、配列番号５５の２０乃至４７０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する重鎖及び配列番号６７の２１乃至２３７番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する軽鎖からなる抗体、配列番号５７の２０乃至４７０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する重鎖及び配列番号６９の２１乃至２３８番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する軽鎖からなる抗体、配列番号５９の２０乃至４７０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する重鎖及び配列番号７１の２１乃至２３８番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する軽鎖からなる抗体、配列番号９９の２０乃至４６６番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する重鎖及び配列番号６９の２１乃至２３８番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する軽鎖からなる抗体、配列番号１０１の２０乃至４６６番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する重鎖及び配列番号６９の２１乃至２３８番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する軽鎖からなる抗体、配列番号９９の２０乃至４６６番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する重鎖及び配列番号１０３の２１乃至２３８番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する軽鎖からなる抗体、又は配列番号９９の２０乃至４６６番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する重鎖及び配列番号１０５の２１乃至２３８番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有する軽鎖からなる抗体、を挙げることができる。
　但し、＃３２Ａ１抗体由来のヒト化抗体としては、＃３２Ａ１の６種全てのＣＤＲ配列を保持し、破骨細胞の形成を抑制する活性を持つ限り、上記のヒト化抗体に限定されない。なお、＃３２Ａ１抗体の重鎖可変領域は、配列番号４４に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ１（ＤＹＦＭＮ）、配列番号４５に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ２（ＱＩＲＮＫＩＹＴＹＡＴＦＹＡＥＳＬＥＧ）又は配列番号９７に示されるＣＤＲＨ２（ＱＩＲＮＫＩＹＴＹＡＴＦＹＡ）のいずれか一つ、及び配列番号４６に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ３（ＳＬＴＧＧＤＹＦＤＹ）を保有している。配列番号４５に示されるＣＤＲＨ２は、Ｋａｂａｔの定義（ＳＥＱＵＥＮＣＥＳ　ＯＦ　ＰＲＯＴＥＩＮＳ　ＯＦ　ＩＭＭＵＮＯＬＯＧＩＣＡＬ　ＩＮＴＥＲＥＳＴ　ＶＯＬ．Ｉ，ＦＩＦＴＨ　ＥＤＴＩＯＮ（１９９１））によるものである。配列番号９７に示されるＣＤＲＨ２では、Ｃ末端がＫａｂａｔの定義より５残基短縮されている。このＣＤＲＨ２を含む重鎖配列においては、ラット由来のＣＤＲ配列を減らしてヒトフレームワーク配列をより多く取り入れているために、ヒトに投与した際に異種抗原としてより一層認識されにくい。また、＃３２Ａ１抗体の軽鎖可変領域は、配列番号４７に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ１（ＲＡＳＱＳＶＴＩＳＧＹＳＦＩＨ）、配列番号４８に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ２（ＲＡＳＮＬＡＳ）、及び配列番号４９に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ３（ＱＱＳＲＫＳＰＷＴ）を保有している。
　本発明の抗体としては、さらに、ヒト抗体を挙げることができる。抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５ヒト抗体とは、ヒト染色体由来の抗体の遺伝子配列のみを有するヒト抗体を意味する。抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５ヒト抗体は、ヒト抗体の重鎖と軽鎖の遺伝子を含むヒト染色体断片を有するヒト抗体産生マウスを用いた方法（Ｔｏｍｉｚｕｋａ，Ｋ．ｅｔ　ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ　Ｇｅｎｅｔｉｃｓ（１９９７）１６，ｐ．１３３－１４３，；　Ｋｕｒｏｉｗａ，Ｙ．ｅｔ．ａｌ．，Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ　Ｒｅｓ．（１９９８）２６，ｐ．３４４７－３４４８；Ｙｏｓｈｉｄａ，　Ｈ．ｅｔ．ａｌ．，Ａｎｉｍａｌ　Ｃｅｌｌ　Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ：Ｂａｓｉｃ　ａｎｄ　Ａｐｐｌｉｅｄ　Ａｓｐｅｃｔｓ　ｖｏｌ．１０，ｐ．６９－７３（Ｋｉｔａｇａｗａ，　Ｙ．，Ｍａｔｓｕｄａ，Ｔ．ａｎｄ　Ｉｉｊｉｍａ，Ｓ．ｅｄｓ．），Ｋｌｕｗｅｒ　Ａｃａｄｅｍｉｃ　Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓ，１９９９．；Ｔｏｍｉｚｕｋａ，Ｋ．ｅｔ．ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ（２０００）９７，ｐ．７２２－７２７等を参照。）によって取得することができる。
　このようなヒト抗体産生マウスは、具体的には、内在性免疫グロブリン重鎖及び軽鎖の遺伝子座が破壊され、代わりに酵母人工染色体（Ｙｅａｓｔ　ａｒｔｉｆｉｃｉａｌ　ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅ，ＹＡＣ）ベクターなどを介してヒト免疫グロブリン重鎖及び軽鎖の遺伝子座が導入された遺伝子組み換え動物を、ノックアウト動物及びトランスジェニック動物の作製、及びこれらの動物同士を掛け合わせることにより作り出すことができる。
　また、遺伝子組換え技術により、そのようなヒト抗体の重鎖及び軽鎖の各々をコードするｃＤＮＡ、好ましくは該ｃＤＮＡを含むベクターにより真核細胞を形質転換し、遺伝子組換えヒトモノクローナル抗体を産生する形質転換細胞を培養することにより、この抗体を培養上清中から得ることもできる。
　ここで、宿主としては例えば真核細胞、好ましくはＣＨＯ細胞、リンパ球やミエローマ等の哺乳動物細胞を用いることができる。
　また、ヒト抗体ライブラリーより選別したファージディスプレイ由来のヒト抗体を取得する方法（Ｗｏｒｍｓｔｏｎｅ，Ｉ．Ｍ．ｅｔ．ａｌ，Ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｖｅ　Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌｏｇｙ　＆　Ｖｉｓｕａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅ．（２００２）４３（７），ｐ．２３０１－２３０８；Ｃａｒｍｅｎ，Ｓ．ｅｔ．ａｌ．，Ｂｒｉｅｆｉｎｇｓ　ｉｎ　Ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ　Ｇｅｎｏｍｉｃｓ　ａｎｄ　Ｐｒｏｔｅｏｍｉｃｓ（２００２），１（２），ｐ．１８９－２０３；Ｓｉｒｉｗａｒｄｅｎａ，Ｄ．ｅｔ．ａｌ．，Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌｏｇｙ（２００２）１０９（３），ｐ．４２７－４３１等参照。）も知られている。
　例えば、ヒト抗体の可変領域を一本鎖抗体（ｓｃＦｖ）としてファージ表面に発現させて、抗原に結合するファージを選択するファージディスプレイ法（Ｎａｔｕｒｅ　Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（２００５），２３，（９），ｐ．１１０５－１１１６）を用いることができる。
　抗原に結合することで選択されたファージの遺伝子を解析することによって、抗原に結合するヒト抗体の可変領域をコードするＤＮＡ配列を決定することができる。
　抗原に結合するｓｃＦｖのＤＮＡ配列が明らかになれば、当該配列を有する発現ベクターを作製し、適当な宿主に導入して発現させることによりヒト抗体を取得することができる（ＷＯ９２／０１０４７、ＷＯ９２／２０７９１、ＷＯ９３／０６２１３、ＷＯ９３／１１２３６、ＷＯ９３／１９１７２、ＷＯ９５／０１４３８、ＷＯ９５／１５３８８、Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ（１９９４）１２，ｐ．４３３－４５５、Ｎａｔｕｒｅ　Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（２００５）２３（９），ｐ．１１０５－１１１６）。
　以上の方法によって得られた抗体は、実施例２５に示された方法等によって抗原に対する結合性を評価し、好適な抗体を選抜することができる。抗体の性質を比較する際の別の指標の一例としては、抗体の安定性を挙げることができる。実施例３３で示された示差走査カトリメトリー（ＤＳＣ）は、蛋白の相対的構造安定性の良い指標となる熱変性中点（Ｔｍ）を素早く、また正確に測定することができる装置である。ＤＳＣを用いてＴｍ値を測定し、その値を比較することによって、熱安定性の違いを比較することができる。抗体の保存安定性は、抗体の熱安定性とある程度の相関を示すことが知られており（Ｌｏｒｉ　Ｂｕｒｔｏｎ，ｅｔ．　ａｌ．，Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ　Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ　ａｎｄ　Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（２００７）１２，ｐ．２６５－２７３）、熱安定性を指標に、好適な抗体を選抜することができる。抗体を選抜するための他の指標としては、適切な宿主細胞における収量が高いこと、及び水溶液中での凝集性が低いことを挙げることができる。例えば収量の最も高い抗体が最も高い熱安定性を示すとは限らないので、以上に述べた指標に基づいて総合的に判断して、ヒトへの投与に最も適した抗体を選抜する必要がある。
　また、抗体の重鎖及び軽鎖の全長配列を適切なリンカーを用いて連結し、一本鎖イムノグロブリン（ｓｉｎｇｌｅ　ｃｈａｉｎ　ｉｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎ）を取得する方法も知られている（Ｌｅｅ，Ｈ－Ｓ，ｅｔ．ａｌ．，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ（１９９９）３６，ｐ．６１－７１；Ｓｈｉｒｒｍａｎｎ，Ｔ．ｅｔ．ａｌ．，ｍＡｂｓ（２０１０），２，（１）ｐ．１－４）。このような一本鎖イムノグロブリンは二量体化することによって、本来は四量体である抗体と類似した構造と活性を保持することが可能である。また、本発明の抗体は、単一の重鎖可変領域を有し、軽鎖配列を有さない抗体であっても良い。このような抗体は、単一ドメイン抗体（ｓｉｎｇｌｅ　ｄｏｍａｉｎ　ａｎｔｉｂｏｄｙ：ｓｄＡｂ）またはナノボディ（ｎａｎｏｂｏｄｙ）と呼ばれており、実際にラクダ又はラマで観察され、抗原結合能が保持されていることが報告されている（Ｍｕｙｌｄｅｍａｎｓ　Ｓ．ｅｔ．ａｌ．，Ｐｒｏｔｅｉｎ　Ｅｎｇ．（１９９４）７（９），１１２９－３５，Ｈａｍｅｒｓ－Ｃａｓｔｅｒｍａｎ　Ｃ．ｅｔ．ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ（１９９３）３６３（６４２８）４４６－８）。上記の抗体は、本発明における抗体の機能性断片の一種と解釈することも可能である。
　また、本発明の抗体に結合している糖鎖修飾を調節することによって、抗体依存性細胞障害活性を増強することが可能である。抗体の糖鎖修飾の調節技術としては、ＷＯ９９／５４３４２、ＷＯ００／６１７３９、ＷＯ０２／３１１４０等が知られているが、これらに限定されるものではない。
　抗体遺伝子を一旦単離した後、適当な宿主に導入して抗体を作製する場合には、適当な宿主と発現ベクターの組み合わせを使用することができる。　抗体遺伝子の具体例としては、本明細書に記載された抗体の重鎖配列をコードする遺伝子、及び軽鎖配列をコードする遺伝子を組み合わせたものを挙げることができる。宿主細胞を形質転換する際には、重鎖配列遺伝子と軽鎖配列遺伝子は、同一の発現ベクターに挿入されていることが可能であり、又別々の発現ベクターに挿入されていることも可能である。真核細胞を宿主として使用する場合、動物細胞、植物細胞、真核微生物を用いることができる。動物細胞としては、（１）哺乳類細胞、例えば、サルの細胞であるＣＯＳ細胞（Ｇｌｕｚｍａｎ，Ｙ．Ｃｅｌｌ（１９８１）２３，ｐ．１７５－１８２、ＡＴＣＣ　ＣＲＬ－１６５０）、マウス線維芽細胞ＮＩＨ３Ｔ３（ＡＴＣＣ　Ｎｏ．ＣＲＬ－１６５８）やチャイニーズ・ハムスター卵巣細胞（ＣＨＯ細胞、ＡＴＣＣ　ＣＣＬ－６１）のジヒドロ葉酸還元酵素欠損株（Ｕｒｌａｕｂ，Ｇ．ａｎｄ　Ｃｈａｓｉｎ，Ｌ．Ａ．Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．（１９８０）７７，ｐ．４１２６－４２２０）を挙げることができる。また、原核細胞を使用する場合は、例えば、大腸菌、枯草菌を挙げることができる。これらの細胞に目的とする抗体遺伝子を形質転換により導入し、形質転換された細胞をｉｎ　ｖｉｔｒｏで培養することにより抗体が得られる。以上の培養法においては抗体の配列によって収量が異なる場合があり、同等な結合活性を持つ抗体の中から収量を指標に医薬としての生産が容易なものを選別することが可能である。
　本発明の抗体のアイソタイプとしての制限はなく、例えばＩｇＧ（ＩｇＧ１，ＩｇＧ２，ＩｇＧ３，ＩｇＧ４）、ＩｇＭ、ＩｇＡ（ＩｇＡ１，ＩｇＡ２）、ＩｇＤあるいはＩｇＥ等を挙げることができるが、好ましくはＩｇＧ又はＩｇＭ、さらに好ましくはＩｇＧ１又はＩｇＧ２を挙げることができる。
　また本発明の抗体は、抗体の抗原結合部を有する抗体の機能性断片又はその修飾物であってもよい。抗体をパパイン、ペプシン等の蛋白質分解酵素で処理するか、あるいは抗体遺伝子を遺伝子工学的手法によって改変し適当な培養細胞において発現させることによって、該抗体の断片を得ることができる。このような抗体断片のうちで、抗体全長分子の持つ機能の全て又は一部を保持している断片を抗体の機能性断片と呼ぶことができる。抗体の機能としては、一般的には抗原結合活性、抗原の活性を中和する活性、抗原の活性を増強する活性、抗体依存性細胞障害活性、補体依存性細胞傷害活性及び補体依存性細胞性細胞傷害活性を挙げることができる。本発明における抗体の機能性断片が保持する機能は、Ｓｉｇｌｅｃ－１５に対する結合活性であり、好ましくは破骨細胞の形成を抑制する活性であり、より好ましくは破骨細胞の細胞融合の過程を抑制する活性である。
　例えば、抗体の断片としては、Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆｖ、又は重鎖及び軽鎖のＦｖを適当なリンカーで連結させたシングルチェインＦｖ（ｓｃＦｖ）、ｄｉａｂｏｄｙ（ｄｉａｂｏｄｉｅｓ）、線状抗体、及び抗体断片より形成された多特異性抗体などを挙げることができる。また、Ｆ（ａｂ’）２を還元条件下で処理した抗体の可変領域の一価の断片であるＦａｂ’も抗体の断片に含まれる。
　さらに、本発明の抗体は少なくとも２種類の異なる抗原に対して特異性を有する多特異性抗体であってもよい。通常このような分子は２種類の抗原に結合するものであるが（即ち、二重特異性抗体（ｂｉｓｐｅｃｉｆｉｃ　ａｎｔｉｂｏｄｙ））、本発明における「多特異性抗体」は、それ以上（例えば、３種類）の抗原に対して特異性を有する抗体を包含するものである。
　本発明の多特異性抗体は、全長からなる抗体、又はそのような抗体の断片（例えば、Ｆ（ａｂ’）２二重特異性抗体）でもよい。二重特異性抗体は２種類の抗体の重鎖と軽鎖（ＨＬ対）を結合させて作製することもできるし、異なるモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを融合させて、二重特異性抗体産生融合細胞を作製することによっても、作製することができる（Ｍｉｌｌｓｔｅｉｎ　ｅｔ　ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ（１９８３）３０５，ｐ．５３７－５３９）。
　本発明の抗体は一本鎖抗体（ｓｃＦｖとも記載する）でもよい。一本鎖抗体は、抗体の重鎖可変領域と軽鎖可変領域とをポリペプチドのリンカーで連結することにより得られる（Ｐｌｕｃｋｔｈｕｎ，Ｔｈｅ　Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ　ｏｆ　Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ　Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ，１１３（Ｒｏｓｅｎｂｅｒｇ及びＭｏｏｒｅ編、Ｓｐｒｉｎｇｅｒ　Ｖｅｒｌａｇ，Ｎｅｗ　Ｙｏｒｋ，ｐ．２６９－３１５（１９９４）、Ｎａｔｕｒｅ　Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（２００５），２３，ｐ．１１２６－１１３６）。また、２つのｓｃＦｖをポリペプチドリンカーで結合させて作製されるＢｉｓｃＦｖ断片を二重特異性抗体として使用することもできる。
　一本鎖抗体を作製する方法は当技術分野において周知である（例えば、米国特許第４，９４６，７７８号、米国特許第５，２６０，２０３号、米国特許第５，０９１，５１３号、米国特許第５，４５５，０３０号等を参照）。このｓｃＦｖにおいて、重鎖可変領域と軽鎖可変領域は、コンジュゲートを作らないようなリンカー、好ましくはポリペプチドリンカーを介して連結される（Ｈｕｓｔｏｎ，Ｊ．Ｓ．ｅｔ　ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．（１９８８），８５，ｐ．５８７９－５８８３）。ｓｃＦｖにおける重鎖可変領域及び軽鎖可変領域は、同一の抗体に由来してもよく、別々の抗体に由来してもよい。
可変領域を連結するポリペプチドリンカーとしては、例えば１２～１９残基からなる任意の一本鎖ペプチドが用いられる。
　ｓｃＦｖをコードするＤＮＡは、前記抗体の重鎖又は重鎖可変領域をコードするＤＮＡ、及び軽鎖又は軽鎖可変領域をコードするＤＮＡのうち、それらの配列のうちの全部又は所望のアミノ酸配列をコードするＤＮＡ部分を鋳型とし、その両端を規定するプライマー対を用いてＰＣＲ法により増幅し、次いで、さらにポリペプチドリンカー部分をコードするＤＮＡ、及びその両端が各々重鎖、軽鎖と連結されるように規定するプライマー対を組み合わせて増幅することにより得られる。
　また、一旦ｓｃＦｖをコードするＤＮＡが作製されると、それらを含有する発現ベクター、及び該発現ベクターにより形質転換された宿主を常法に従って得ることができ、また、その宿主を用いることにより、常法に従ってｓｃＦｖを得ることができる。これらの抗体断片は、前記と同様にして遺伝子を取得し発現させ、宿主により産生させることができる。
　本発明の抗体は、多量化して抗原に対する親和性を高めたものであってもよい。多量化する抗体としては、１種類の抗体であっても、同一の抗原の複数のエピトープを認識する複数の抗体であってもよい。抗体を多量化する方法としては、ＩｇＧ　ＣＨ３ドメインと２つのｓｃＦｖとの結合、ストレプトアビジンとの結合、へリックスーターン‐へリックスモチーフの導入等を挙げることができる。
　本発明の抗体は、アミノ酸配列が異なる複数種類の抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体の混合物である、ポリクローナル抗体であってもよい。ポリクローナル抗体の一例としては、ＣＤＲが異なる複数種類の抗体の混合物を挙げることができる。そのようなポリクローナル抗体としては、異なる抗体を産生する細胞の混合物を培養し、該培養物から精製された抗体を用いることが出来る（ＷＯ２００４／０６１１０４号参照）。
　抗体の修飾物として、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）等の各種分子と結合した抗体を使用することもできる。
　本発明の抗体は、更にこれらの抗体と他の薬剤がコンジュゲートを形成しているもの（Ｉｍｍｕｎｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ）でもよい。このような抗体の例としては、該抗体が放射性物質や薬理作用を有する化合物と結合している物を挙げることができる（Ｎａｔｕｒｅ　Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（２００５）２３，ｐ．１１３７－１１４６）。
　得られた抗体は、均一にまで精製することができる。抗体の分離、精製は通常の蛋白質で使用されている分離、精製方法を使用すればよい。例えばカラムクロマトグラフィー、フィルター濾過、限外濾過、塩析、透析、調製用ポリアクリルアミドゲル電気泳動、等電点電気泳動等を適宜選択、組み合わせれば、抗体を分離、精製することができる（Ｓｔｒａｔｅｇｉｅｓ　ｆｏｒ　Ｐｒｏｔｅｉｎ　Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ａｎｄ　Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ：Ａ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　Ｃｏｕｒｓｅ　Ｍａｎｕａｌ，Ｄａｎｉｅｌ　Ｒ．Ｍａｒｓｈａｋ　ｅｔ　ａｌ．ｅｄｓ．，Ｃｏｌｄ　Ｓｐｒｉｎｇ　Ｈａｒｂｏｒ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　Ｐｒｅｓｓ（１９９６）；Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　Ｍａｎｕａｌ．Ｅｄ　Ｈａｒｌｏｗ　ａｎｄ　Ｄａｖｉｄ　Ｌａｎｅ，Ｃｏｌｄ　Ｓｐｒｉｎｇ　Ｈａｒｂｏｒ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ（１９８８））が、これらに限定されるものではない。
　クロマトグラフィーとしては、アフィニティークロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、疎水性クロマトグラフィー、ゲル濾過クロマトグラフィー、逆相クロマトグラフィー、吸着クロマトグラフィー等を挙げることができる。
　これらのクロマトグラフィーは、ＨＰＬＣやＦＰＬＣ等の液体クロマトグラフィーを用いて行うことができる。
　アフィニティークロマトグラフィーに用いるカラムとしては、プロテインＡカラム、プロテインＧカラムを挙げることができる。
　例えばプロテインＡカラムを用いたカラムとして、Ｈｙｐｅｒ　Ｄ，ＰＯＲＯＳ，Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ　Ｆ．Ｆ．（ファルマシア）等を挙げることができる。
また抗原を固定化した担体を用いて、抗原への結合性を利用して抗体を精製することも可能である。
　４．抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体を含有する医薬
　上述の「３．抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体の製造」の項に記載された方法で得られる抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体の中から、Ｓｉｇｌｅｃ－１５の生物活性を中和する抗体を得ることができる。これらＳｉｇｌｅｃ－１５の生物活性を中和する抗体は、生体内でのＳｉｇｌｅｃ－１５の生物活性、即ち、破骨細胞の分化及び／又は成熟を阻害することから、医薬として、破骨細胞の分化及び／又は成熟異常に起因する骨代謝異常に対する治療及び／又は予防剤として用いることができる。骨代謝異常は正味の骨喪失（骨減少症又は骨溶解症）によって特徴付けられるいずれの障害であってもよい。一般に、抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体による治療及び／又は予防は、骨吸収を抑制する必要がある場合に適用される。抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体で治療及び／又は予防可能な骨代謝異常としては、骨粗鬆症（閉経後骨粗鬆症、老人性骨粗鬆症、ステロイドや免疫抑制剤等の治療用薬剤の使用による続発性骨粗鬆症、関節リウマチに伴う骨粗鬆症）、関節リウマチに伴う骨破壊、癌性高カルシウム血症、多発性骨髄腫や癌の骨転移に伴う骨破壊、巨細胞腫、骨減少症、歯根膜炎による歯の喪失、人工関節周囲の骨融解、慢性骨髄炎における骨破壊、骨ページェット病、腎性骨異栄養症、骨形成不全症などを挙げることができるが、破骨細胞による正味の骨喪失を伴う疾患であれば、これらに限定されない。上記の医薬としての抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体の例として、＃３２Ａ１抗体から３．（３）「その他の抗体」に記載の方法によって作製されたキメラ抗体又はヒト化抗体を挙げることができる。また、＃３２Ａ１抗体と同じエピトープを有するキメラ抗体、ヒト化抗体及びヒト抗体も医薬として使用可能である。ある抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体が、＃３２Ａ１抗体と同じエピトープを持つことは、Ｓｉｇｌｅｃ－１５の特定の部分ペプチドに対してこれらの抗体が共通に結合するか否かを観察することによって確認できる。また、ある抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体が、Ｓｉｇｌｅｃ－１５との結合において＃３２Ａ１抗体と競合するのであれば、これらの抗体が共通のエピトープを持つと判定することができる。
　ｉｎ　ｖｉｔｒｏでの抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体によるＳｉｇｌｅｃ－１５の生物活性の中和活性は例えば、Ｓｉｇｌｅｃ－１５を過剰発現している細胞の破骨細胞への分化の抑制活性で測定することができる。例えば、マウス単球由来細胞株ＲＡＷ２６４．７細胞又はＲＡＷ２６４細胞に種々の濃度で抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体を添加し、ＲＡＮＫＬあるいはＴＮＦ－α刺激による、破骨細胞への分化の抑制活性を測定することができる。また、骨髄由来の初代培養細胞に種々の濃度で抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体を添加し、ＲＡＮＫＬ、ＴＮＦ－αあるいは活性型ビタミンＤ３刺激による、破骨細胞への分化の抑制活性を測定することができる。さらに、正常ヒト破骨前駆細胞（Ｎｏｒｍａｌ　Ｈｕｍａｎ　Ｎａｔｕｒａｌ　Ｏｓｔｅｏｃｌａｓｔ　Ｐｒｅｃｕｒｓｏｒ　Ｃｅｌｌｓ、三光純薬より購入可能、カタログ番号２Ｔ－１１０）に種々の濃度で抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体を添加し、ＲＡＮＫＬ及びＭ－ＣＳＦ刺激による、破骨細胞への分化の抑制活性を測定することができる。このような破骨細胞の分化抑制効果は、破骨細胞の酒石酸耐性酸性フォスファターゼ（ＴＲＡＰ）活性の抑制を指標として測定できる。また、ＴＲＡＰ陽性多核破骨細胞の形成の抑制、すなわち破骨細胞の細胞融合の抑制を指標としても、破骨細胞の分化抑制効果を測定することができる。さらに、大腿骨及び／又は脛骨由来の細胞を用いたピットアッセイ（Ｔａｋａｄａ　ｅｔ　ａｌ．，Ｂｏｎｅ　ａｎｄ　Ｍｉｎｅｒａｌ，（１９９２）１７，３４７－３５９）実験において、大腿骨及び／又は脛骨由来の細胞に種々の濃度で抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体を添加して象牙切片上のピットの形成を観察することによって、ｉｎ　ｖｉｔｒｏにおける破骨細胞による骨吸収の抑制活性を測定することができる。ｉｎ　ｖｉｔｒｏにおける破骨細胞による骨吸収の抑制活性の測定系としては、ユーロピウムが結合したヒトコラーゲンをコーティングしたプレートを使用することも可能である。ｉｎ　ｖｉｖｏでの実験動物を利用した抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体の骨代謝異常に対する治療又は予防効果は、例えば、骨粗鬆症モデル動物又はＳｉｇｌｅｃ－１５を過剰に発現しているトランスジェニック動物に抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体を投与し、破骨細胞の変化を測定することで確認することができる。
　このようにして得られたＳｉｇｌｅｃ－１５の生物活性を中和する抗体は、医薬として、特に骨粗鬆症、関節リウマチに伴う骨破壊、癌の骨転移に伴う骨破壊等の骨代謝異常の治療又は予防を目的とした医薬組成物として、あるいはこのような疾患の免疫学的診断のための抗体として有用である。
　関節リウマチ（ＲＡ）の治療において、疾患の発症に伴って発生する骨喪失が大きな課題になっている。ＲＡに伴うこの骨喪失においては、破骨細胞が中心的な役割を果たしていることが報告されている。ＲＡにおける破骨細胞の誘導（分化、成熟）、活性化、及び骨破壊の原因として最も重要と考えられているサイトカインはＲＡＮＫＬとＴＮＦ－αである（Ｒｏｍａｓ　Ｅ　ｅｔ　ａｌ．，　Ｂｏｎｅ　３０，　ｐ３４０－３４６，　２００２）。ＲＡＮＫＬのデコイレセプターであるＯＣＩＦ／ＯＰＧではＲＡＮＫＬで誘導される破骨細胞形成は抑制できるが、ＴＮＦ－αで誘導される破骨細胞形成は抑制されない。その一方で、本発明における抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体によって、ＲＡＮＫＬで誘導される破骨細胞形成とＴＮＦ－αで誘導される破骨細胞形成の両方が効果的に抑制された。したがって、本発明の抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体によって、ＲＡなどにおけるＴＮＦ－αで誘導される骨喪失と骨破壊が、ＲＡＮＫＬブロッカー（ＯＣＩＦ／ＯＰＧ、抗ＲＡＮＫＬ抗体など）以上に強力に抑制できることが期待される。
　抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体は、一つの例としては、骨代謝異常の治療又は予防に対しては該抗体単独で、あるいは少なくとも一つの他の骨疾患治療剤と併用して投与することができる。また一つの例として、抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体は治療上有効な量の抗骨代謝異常治療薬剤と併用して投与することができる。抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体と併用して投与できる治療剤としては、ビスホスホネート（例えば、ａｌｅｎｄｒｏｎａｔｅ、ｅｔｉｄｒｏｎａｔｅ、ｉｂａｎｄｒｏｎａｔｅ、ｉｎｃａｄｒｏｎａｔｅ、ｐａｍｉｄｒｏｎａｔｅ、ｒｉｓｅｄｒｏｎａｔｅ、又はｚｏｌｅｄｒｏｎａｔｅ）、活性型ビタミンＤ３、カルシトニン及びその誘導体、エストラジオール等のホルモン、ＳＥＲＭｓ（Ｓｅｌｅｃｔｉｖｅ　ｅｓｔｒｏｇｅｎ　ｒｅｃｅｐｔｏｒ　ｍｏｄｕｌａｔｏｒｓ）、イプリフラボン、ビタミンＫ２（メナテトレノン）、カルシウム製剤、ＰＴＨ（ｐａｒａｔｈｙｒｏｉｄ　ｈｏｒｍｏｎｅ）、非ステロイド性抗炎症剤（例えば、ｃｅｌｅｃｏｘｉｂ又はｒｏｆｅｃｏｘｉｂ）、可溶性ＴＮＦレセプター（例えば、ｅｔａｎｅｒｃｅｐｔ）、抗ＴＮＦα抗体又は該抗体の機能性断片（例えば、ｉｎｆｌｉｘｉｍａｂ）、抗ＰＴＨｒＰ（ｐａｒａｔｈｙｒｏｉｄ　ｈｏｒｍｏｎｅ－ｒｅｌａｔｅｄ　ｐｒｏｔｅｉｎ）抗体又は該抗体の機能性断片、ＩＬ－１レセプターアンタゴニスト（例えばａｎａｋｉｎｒａ）、抗ＩＬ－６レセプター抗体又は該抗体の機能性断片（例えば、ｔｏｃｉｌｉｚｕｍａｂ）、抗ＲＡＮＫＬ抗体又は該抗体の機能性断片（例えば、ｄｅｎｏｓｕｍａｂ）、及びＯＣＩＦ（ｏｓｔｅｏｃｌａｓｔｏｇｅｎｅｓｉｓ　ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｙ　ｆａｃｔｏｒ）等を挙げることができるがこれらに限定されない。骨代謝異常の状態やどの程度の治療及び／又は予防を目指すかによって、２、３あるいはそれ以上の種類の薬剤を投与することもできるし、それらの薬剤は同じ製剤の中に封入することによって同時に供給することができる。それらの薬剤と抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体は同じ製剤の中に封入することによって同時に供給することもできる。また、それらの薬剤は治療及び／又は予防用キットとして封入することによって同時に供給することもできる。また、それらの薬剤と抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体は別々に供給することもできる。遺伝子治療において投与する場合には、蛋白質性の骨疾患治療剤の遺伝子と抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体の遺伝子は、別々のあるいは同じプロモーター領域の下流に挿入することができ、別々のあるいは、同じベクターに導入することができる。
　抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体、あるいはそのフラグメントに対し骨疾患治療剤を結合させることにより、Ｍ．Ｃ．Ｇａｒｎｅｔ「Ｔａｒｇｅｔｅｄ　ｄｒｕｇ　ｃｏｎｊｕｇａｔｅｓ：　ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ　ａｎｄ　ｐｒｏｇｒｅｓｓ」，Ａｄｖａｎｃｅｄ　Ｄｒｕｇ　Ｄｅｌｉｖｅｒｙ　Ｒｅｖｉｅｗｓ，（２００１）５３，１７１－２１６記載の標的型薬物複合体を製造することができる。この目的には、抗体分子のほか、破骨細胞の認識性を完全消失していない限り、いずれの抗体フラグメントも適用可能であるが、例えば、Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆｖ等のフラグメントを例として挙げることができ、本発明においても同様に、抗体及び該フラグメントを使用することができる。抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体又は該抗体のフラグメントと骨疾患治療剤との結合様式は、Ｍ．Ｃ．Ｇａｒｎｅｔ「Ｔａｒｇｅｔｅｄ　ｄｒｕｇ　ｃｏｎｊｕｇａｔｅｓ：ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ　ａｎｄ　ｐｒｏｇｒｅｓｓ」，Ａｄｖａｎｃｅｄ　Ｄｒｕｇ　Ｄｅｌｉｖｅｒｙ　Ｒｅｖｉｅｗｓ，　（２００１）５３，１７１－２１６、Ｇ．Ｔ．Ｈｅｒｍａｎｓｏｎ「Ｂｉｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ　Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ」Ａｃａｄｅｍｉｃ　Ｐｒｅｓｓ，　Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ　（１９９６）、Ｐｕｔｎａｍ　ａｎｄ　Ｊ．Ｋｏｐｅｃｅｋ「Ｐｏｌｙｍｅｒ　Ｃｏｎｊｕｇａｔｅｓ　ｗｉｔｈ　Ａｎｔｉｃａｎｃｅｒ　Ａｃｔｉｖｉｔｙ」Ａｄｖａｎｃｅｓ　ｉｎ　Ｐｏｌｙｍｅｒ　Ｓｃｉｅｎｃｅ（１９９５）１２２，５５－１２３等に記載される種々の形態があり得る。すなわち、抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体と骨疾患治療剤が化学的に直接あるいはオリゴペプチド等のスペーサーを介在して結合される様式や、適当な薬物担体を介在して結合される様式を挙げることができる。薬物担体の例としては、リポソームや水溶性高分子を挙げることができる。これら薬物担体が介在される様式としては、より具体的には、抗体と骨疾患治療剤とがリポソームに包含され、該リポソームと抗体とが結合した様式、及び、骨疾患治療剤が水溶性高分子（分子量１０００乃至１０万程度の化合物）に化学的に直接あるいはオリゴペプチド等のスペーサーを介在させて結合され、該水溶性高分子に抗体が結合した様式、を例として挙げることができる。抗体（又は該フラグメント）と骨疾患治療剤、リポソーム及び水溶性高分子等の薬物担体との結合は、Ｇ．Ｔ．Ｈｅｒｍａｎｓｏｎ「Ｂｉｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ　Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ」Ａｃａｄｅｍｉｃ　Ｐｒｅｓｓ，　Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ（１９９６）、Ｐｕｔｎａｍ　ａｎｄ　Ｊ．　Ｋｏｐｅｃｅｋ「Ｐｏｌｙｍｅｒ　Ｃｏｎｊｕｇａｔｅｓ　ｗｉｔｈ　Ａｎｔｉｃａｎｃｅｒ　Ａｃｔｉｖｉｔｙ」Ａｄｖａｎｃｅｓ　ｉｎ　Ｐｏｌｙｍｅｒ　Ｓｃｉｅｎｃｅ　（１９９５）１２２，　５５－１２３に記載の方法等の当業者周知の方法により実施することができる。骨疾患治療剤のリポソームへの包含は、Ｄ．Ｄ．Ｌａｓｉｃ「Ｌｉｐｏｓｏｍｅｓ：Ｆｒｏｍ　Ｐｈｙｓｉｃｓ　ｔｏ　Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ」，Ｅｌｓｅｖｉｅｒ　Ｓｃｉｅｎｃｅ　Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓ　Ｂ．Ｖ．，　Ａｍｓｔｅｒｄａｍ（１９９３）等に記載の方法等の当業者周知の方法により実施することができる。骨疾患治療剤の水溶性高分子への結合は、Ｄ．Ｐｕｔｎａｍ　ａｎｄ　Ｊ　Ｋｏｐｅｃｅｋ「Ｐｏｌｙｍｅｒ　Ｃｏｎｊｕｇａｔｅｓ　ｗｉｔｈ　Ａｎｔｉｃａｎｃｅｒ　Ａｃｔｉｖｉｔｙ」Ａｄｖａｎｃｅｓ　ｉｎ　Ｐｏｌｙｍｅｒ　Ｓｃｉｅｎｃｅ（１９９５）１２２，５５－１２３記載の方法等の当業者周知の方法により、実施することができる。抗体（又は該フラグメント）と蛋白質性の骨疾患治療剤（又は該フラグメント）との複合体は、上記の方法のほか、遺伝子工学的に、当業者周知の方法により作製することができる。
　本発明は、治療及び／又は予防に有効な量の抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体と薬学上許容される希釈剤、担体、可溶化剤、乳化剤、保存剤及び／又は補助剤を含む医薬組成物も提供する。
　本発明は、治療及び／又は予防に有効な量の抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体と治療及び／又は予防に有効な量の少なくとも一つの骨疾患治療剤と薬学上許容される希釈剤、担体、可溶化剤、乳化剤、保存剤及び／又は補助剤を含む医薬組成物も提供する。骨疾患治療剤としては、ビスホスホネート（例えば、ａｌｅｎｄｒｏｎａｔｅ、ｅｔｉｄｒｏｎａｔｅ、ｉｂａｎｄｒｏｎａｔｅ、ｉｎｃａｄｒｏｎａｔｅ、ｐａｍｉｄｒｏｎａｔｅ、ｒｉｓｅｄｒｏｎａｔｅ、又はｚｏｌｅｄｒｏｎａｔｅ）、活性型ビタミンＤ３、カルシトニン及びその誘導体、エストラジオール等のホルモン、ＳＥＲＭｓ（ｓｅｌｅｃｔｉｖｅ　ｅｓｔｒｏｇｅｎ　ｒｅｃｅｐｔｏｒ　ｍｏｄｕｌａｔｏｒｓ）、イプリフラボン、ビタミンＫ２（メナテトレノン）、カルシウム製剤、ＰＴＨ（ｐａｒａｔｈｙｒｏｉｄ　ｈｏｒｍｏｎｅ）、非ステロイド性抗炎症剤（例えば、ｃｅｌｅｃｏｘｉｂ又はｒｏｆｅｃｏｘｉｂ）、可溶性ＴＮＦレセプター（例えば、ｅｔａｎｅｒｃｅｐｔ）、抗ＴＮＦα抗体又は該抗体の機能性断片（例えば、ｉｎｆｌｉｘｉｍａｂ）、抗ＰＴＨｒＰ（ｐａｒａｔｈｙｒｏｉｄ　ｈｏｒｍｏｎｅ－ｒｅｌａｔｅｄ　ｐｒｏｔｅｉｎ）抗体又は該抗体の機能性断片、ＩＬ－１レセプターアンタゴニスト（例えばａｎａｋｉｎｒａ）、抗ＩＬ－６レセプター抗体又は該抗体の機能性断片（例えば、ｔｏｃｉｌｉｚｕｍａｂ）、抗ＲＡＮＫＬ抗体又は該抗体の機能性断片（例えば、ｄｅｎｏｓｕｍａｂ）、及びＯＣＩＦ（ｏｓｔｅｏｃｌａｓｔｏｇｅｎｅｓｉｓ　ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｙ　ｆａｃｔｏｒ）等を挙げることができるがこれらに限定されない。
　本発明の医薬組成物において許容される製剤に用いる物質としては好ましくは投与量や投与濃度において、医薬組成物を投与される者に対して非毒性のものが好ましい。
　本発明の医薬組成物は、ｐＨ、浸透圧、粘度、透明度、色、等張性、無菌性、安定性、溶解率、徐放率、吸収率、浸透率を変えたり、保持したりするための製剤用の物質を含むことができる。製剤用の物質として以下のものを挙げることができるが、これらに制限されない：グリシン、アラニン、グルタミン、アスパラギン、アルギニン又はリジン等のアミノ酸類、抗菌剤、アスコルビン酸、硫酸ナトリウム又は亜硫酸水素ナトリウム等の抗酸化剤、リン酸、、クエン酸、ホウ酸バッファー、炭酸水素ナトリウム、トリス－塩酸（Ｔｒｉｓ－Ｈｃｌ）溶液等の緩衝剤、マンニトールやグリシン等の充填剤、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）等のキレート剤、カフェイン、ポリビニルピロリジン、β－シクロデキストリンやヒドロキシプロピル－β－シクロデキストリン等の錯化剤、グルコース、マンノース又はデキストリン等の増量剤、単糖類、二糖類等の他の炭水化物、着色剤、香味剤、希釈剤、乳化剤やポリビニルピロリジン等の親水ポリマー、低分子量ポリペプチド、塩形成対イオン、塩化ベンズアルコニウム、安息香酸、サリチル酸、チメロサール、フェネチルアルコール、メチルパラベン、プロピルパラベン、クロレキシジン、ソルビン酸又は過酸化水素等の防腐剤、グリセリン、プロピレン・グリコール又はポリエチレングリコール等の溶媒、マンニトール又はソルビトール等の糖アルコール、懸濁剤、ソルビタンエステル、ポリソルベート２０やポリソルベート８０等のポリソルベート、トリトン（ｔｒｉｔｏｎ）、トロメタミン（ｔｒｏｍｅｔｈａｍｉｎｅ）、レシチン又はコレステロール等の界面活性剤、スクロースやソルビトール等の安定化増強剤、塩化ナトリウム、塩化カリウムやマンニトール・ソルビトール等の弾性増強剤、輸送剤、賦形剤、及び／又は薬学上の補助剤。これらの製剤用の物質の添加量は、抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体の重量に対して０．０１～１００倍、特に０．１～１０倍添加するのが好ましい。製剤中の好適な医薬組成物の組成は当業者によって、適用疾患、適用投与経路などに応じて適宜決定することができる。
　医薬組成物中の賦形剤や担体は液体でも固体でもよい。適当な賦形剤や担体は注射用の水や生理食塩水、人工脳脊髄液や非経口投与に通常用いられている他の物質でもよい。中性の生理食塩水や血清アルブミンを含む生理食塩水を担体に用いることもできる。医薬組成物にはｐＨ７．０－８．５のＴｒｉｓバッファー、ｐＨ４．０－５．５の酢酸バッファー、ｐＨ３．０－６．２のクエン酸バッファーを含むことができる。また、これらのバッファーにソルビトールや他の化合物を含むこともできる。本発明の医薬組成物には抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体を含む医薬組成物並びに、抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体及び少なくとも一つの骨疾患治療剤を含む医薬組成物を挙げることができ、本発明の医薬組成物は選択された組成と必要な純度を持つ薬剤として、凍結乾燥品あるいは液体として準備される。抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体を含む医薬組成物並びに、抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体及び少なくとも一つの骨代謝異常治療薬剤を含む医薬組成物はスクロースのような適当な賦形剤を用いた凍結乾燥品として成型されることもできる。
　本発明の医薬組成物は非経口投与用に調製することもできるし、経口による消化管吸収用に調製することもできる。製剤の組成及び濃度は投与方法によって決定することができるし、本発明の医薬組成物に含まれる、抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体のＳｉｇｌｅｃ－１５に対する親和性、即ち、Ｓｉｇｌｅｃ－１５に対する解離定数（Ｋｄ値）に対し、親和性が高い（Ｋｄ値が低い）ほど、ヒトへの投与量を少なくしても薬効を発揮することができるので、この結果に基づいて本発明の医薬組成物の人に対する投与量を決定することもできる。投与量は、ヒト型抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体をヒトに対して投与する際には、約０．１～１００ｍｇ／ｋｇを１～１８０日間に１回投与すればよい。
　本発明の医薬組成物の形態としては、点滴を含む注射剤、坐剤、経鼻剤、舌下剤、経皮吸収剤などを挙げることができる。
実施例
　以下、本発明を実施例により具体的に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。なお、下記実施例において遺伝子操作に関する各操作は特に明示がない限り、「モレキュラークローニング（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｃｌｏｎｉｎｇ）」（Ｓａｍｂｒｏｏｋ，Ｊ．，Ｆｒｉｔｓｃｈ，Ｅ．Ｆ．及びＭａｎｉａｔｉｓ，Ｔ．著，Ｃｏｌｄ　Ｓｐｒｉｎｇ　Ｈａｒｂｏｒ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　Ｐｒｅｓｓより１９８９年に発刊）に記載の方法により行うか、又は、市販の試薬やキットを用いる場合には市販品の指示書に従って使用した。 
可溶型マウスＳｉｇｌｅｃ－１５蛋白質の発現コンストラクトの作製
　マウスＳｉｇｌｅｃ－１５蛋白質の細胞外領域をコードする部分のヌクレオチド配列は、配列表の配列番号５であり、アミノ酸配列は、配列表の配列番号６である。このような部分配列を利用することにより、動物細胞などの培養上清中に可溶型マウスＳｉｇｌｅｃ－１５蛋白質を産生させることができる。
　ａ）可溶型マウスＳｉｇｌｅｃ－１５遺伝子のＰＣＲによる増幅
　マウスＳｉｇｌｅｃ－１５の細胞外領域ｃＤＮＡをＰＣＲで増幅するためのプライマーとして
５’－ｇｇｇｇａｃａａｇｔ　ｔｔｇｔａｃａａａａ　ａａｇｃａｇｇｃｔｔ　ｃａｃｃＡＴＧＧＡＧ　ＧＧＧＴＣＣＣＴＣＣ　ＡＡＣＴＣ－３’（ｍＳｉｇｌｅｃ－１５－ＥＣＤ－Ｆ：配列表の配列番号７）
及び
５’－ｇｇｇｇａｃｃａｃｔ　ｔｔｇｔａｃａａｇａ　ａａｇｃｔｇｇｇｔｃ　ＴＣＣＧＧＧＧＧＣＧ　ＣＣＧＴＧＧＡＡＧＣ　ＧＧＡＡＣ－３’（ｍＳｉｇｌｅｃ－１５－ＥＣＤ－Ｒ：配列表の配列番号８）、
の配列を有するオリゴヌクレオチドを常法に従って合成した。なお、これらのプライマーは、Ｇａｔｅｗａｙエントリークローン作製用増幅用プライマーとして、ｍＳｉｇｌｅｃ－１５－ＥＣＤ－ＦにはａｔｔＢ１配列が、ｍＳｉｇｌｅｃ－１５－ＥＣＤ－ＲにはａｔｔＢ２配列が付加されるように設計した。このプライマーの組み合わせと、テンプレートとしてマウスＳｉｇｌｅｃ－１５のオープンリーディングフレーム配列を含むポリヌクレオチドを用い、常法に従いＰＣＲを行った。サーマルサイクラーの設定条件は、９４℃で５分間加熱した後、「９４℃で０．５分、５５℃で０．５分、６８℃で１．５分」の温度サイクルを１５回繰り返してから、６８℃で５分加熱し、４℃で保温とした。
　ｂ）Ｇａｔｅｗａｙ　ＢＰ反応によるエントリークローンの作製
　λファージの部位特異的組換えシステムを応用したＧａｔｅｗａｙテクノロジー（インビトロジェン社）により、マウスＳｉｇｌｅｃ－１５細胞外領域のｃＤＮＡを組み込んだエントリークローンを以下の方法で作製した。まず、ａ）で作製した、ａｔｔＢ配列を両端に持つＰＣＲ産物と、ａｔｔＰ配列を有するドナーベクターであるｐＤＮＯＲ２２１（インビトロジェン社製）との間で、ＢＰクロナーゼを用いたＢＰ反応を行った。この反応液を用いて大腸菌ＤＨ１０Ｂを形質転換し、薬剤耐性クローンに対してコロニーＰＣＲを行い、インサートサイズを確認した。インサートのサイズが正しく確認されたクローンについて、インサートの全ＤＮＡ配列のシークエンス解析を実施した結果、目的とするマウスＳｉｇｌｅｃ－１５蛋白質の細胞外領域をコードするヌクレオチド配列（配列表の配列番号５）と完全に一致するエントリークローンが得られた。
　ｃ）Ｇａｔｅｗａｙ　ＬＲ反応による発現クローンの作製
　λファージの部位特異的組換えシステムを応用したＧａｔｅｗａｙテクノロジー（インビトロジェン社）により、マウスＳｉｇｌｅｃ－１５細胞外領域のｃＤＮＡを組み込んだ発現クローンを以下の方法で作製した。ｂ）で作製したエントリークローンは、インサートの両端にａｔｔＬ配列を有している。このエントリークローンと、ａｔｔＲ配列を有する２種類のディストネーションベクターとの間でＬＲクロナーゼを用いたＬＲ反応を行った。なおディストネーションベクターは、インサートのＣ末側にＶ５エピトープと６×Ｈｉｓタグが付加される様に設計されたｐＤＯＮＭ、及びインサートのＣ末側にヒトＦｃタグが付加されるように設計されたｐｈＩｇＦｃの２種類を用いた。ＬＲ反応により得られた反応液を用いて大腸菌ＤＨ１０Ｂを形質転換し、得られた薬剤耐性クローンに対してコロニーＰＣＲを行い、インサートサイズを確認した。インサートのサイズが正しく確認されたクローンについて、インサート側からベクター側への両末端のシークエンス解析を行った。
　シークエンス用プライマー配列：
５’－ｔｇｃｇｔｇａａｇｇ　ｔｇｃａｇｇｇｃａｇ－３’（ｍＳｉｇｌｅｃ－１５－ＥＣＤ－ｓｅｑ－ｕｐｓｔｍ：配列表の配列番号９）
及び
５’－ｃｃｔｃｇｃｃｔｇｇ　ｔｃｇｇｇｔｃ－３’（ｍＳｉｇｌｅｃ－１５－ＥＣＤ－ｓｅｑ－ｄｎｓｔｍ：配列表の配列番号１０） 
　シークエンス解析の結果、ｐＤＯＮＭ及びｐｈＩｇＦｃの両方で正しく組換わった発現クローン（可溶型マウスＳｉｇｌｅｃ－１５／ｐＤＯＮＭ及び可溶型マウスＳｉｇｌｅｃ－１５／ｐｈＩｇＦｃ）が、それぞれ得られた。可溶型マウスＳｉｇｌｅｃ－１５／ｐＤＯＮＭを動物細胞などにトランスフェクションすることにより、配列表の配列番号１１に記載した塩基配列を有するｍＲＮＡが転写され、配列表の配列番号１２に記載したアミノ酸配列を有する蛋白質（マウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｈｉｓ）が翻訳される。可溶型マウスＳｉｇｌｅｃ－１５／ｐｈＩｇＦｃを動物細胞などにトランスフェクションすることにより、配列表の配列番号１３に記載した塩基配列を有するｍＲＮＡが転写され、配列表の配列番号１４に記載したアミノ酸配列を有する蛋白質（マウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃ）が翻訳される。
２９３－Ｆ細胞を用いた可溶型マウスＳｉｇｌｅｃ－１５蛋白質含有培養液の大量調製
　実施例１で得られた２種類の発現ベクター（可溶型マウスＳｉｇｌｅｃ－１５／ｐＤＯＮＭ及び可溶型マウスＳｉｇｌｅｃ－１５／ｐｈＩｇＦｃ）をそれぞれ約５ｍｇ調製した。なお、大量培養した大腸菌からのプラスミド精製には、インビトロジェン　ＰｕｒｅＬｉｎｋ　ＨｉＰｕｒｅ　Ｐｌａｓｍｉｄ　Ｇｉｇａｐｒｅｐ　Ｋｉｔ（インビトロジェン社製）を使用した。調製したプラスミドをＯｐｔｉ－ＭＥＭ（インビトロジェン社製）と混合し、フィルター滅菌した後トランスフェクション試薬である２９３ｆｅｃｔｉｎ（インビトロジェン社製）を１０　ｍｌ添加して室温で２０分間インキュベーションした。この混和液を、ＦｒｅｅＳｔｙｌｅ　２９３　Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　Ｍｅｄｉｕｍ（インビトロジェン社製）中で１．１×１０６細胞／ｍｌ×５Ｌ（１Ｌ／フラスコを５本）となるようにエルレンマイヤーフラスコ中で培養したＦｒｅｅＳｔｙｌｅ　２９３－Ｆ細胞（インビトロジェン社製）に添加した。８．０％　ＣＯ２濃度、３７℃で９６時間（４日間）回転培養（１２５回転／分）した後培養液を回収し、遠心分離後培養上清を調製した。このようにして調製した培養上清中には、マウスＳｉｇｌｅｃ－１５の細胞外領域Ｃ末側にＶ５エピトープと６×Ｈｉｓタグが付加された蛋白質（マウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｈｉｓ）及びＣ末側にヒトＦｃタグが付加された蛋白質（マウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃ）が、それぞれ発現すると考えられる。
マウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｈｉｓの精製
　ａ）ＨｉｓＴｒａｐ　ＨＰカラムクロマト
　実施例２で調製したマウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｈｉｓ　発現２９３Ｆ細胞の培養液２　Ｌに２２５ｍｌの１０ｘｂｕｆｆｅｒ（５００ｍＭ　Ｔｒｉｓ，１．５Ｍ　ＮａＣｌ，２００ｍＭ　Ｉｍｉｄａｚｏｌｅ，ｐＨ８．０）を加えて良く攪拌した後にＳｔｅｒｉｖｅｘ　ＧＶフィルター（ミリポア社製）でろ過した。この培養液を、予めパイロジェン除去剤・ＰｙｒｏＣＬＥＡＮ（ＡＬｅｒＣＨＥＫ社製）で処理して注射用蒸留水で洗浄しておいたＨｉｓＴｒａｐ　ＨＰ　５ｍＬの３本直列カラム（アマシャムバイオサイエンス社製）に流速２ｍｌ／ｍｉｎでかけた。３００ｍＭ　ＮａＣｌを含む５０ｍＭ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ８．０）６０　ｍｌを用いて流速１ｍｌ／ｍｉｎでカラムを洗浄した後に、３００ｍＭ　ＮａＣｌ，５００ｍＭ　Ｉｍｉｄａｚｏｌｅを含む５０ｍＭ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ８．０）５０　ｍｌを用いて流速１ｍｌ／ｍｉｎでカラムに吸着している蛋白質を溶出した。溶出した液は、予め１０％　Ｔｗｅｅｎ　２０　１０μｌを加えておいたＭｉｎｉ－ｓｏｒｐ　ｔｕｂｅ（ヌンク社製）に１ｍｌ／Ｆｒ．にて分取した。溶出された蛋白質を含む画分約２０ｍｌ（Ｆｒ．１４－２０）を遠心膜濃縮器Ａｍｉｃｏｎ　Ｕｌｔｒａ－１５（ミリポア社製）で２．５ｍｌに濃縮した後に、０．０１％　Ｔｗｅｅｎ　２０を含むリン酸塩緩衝生理食塩水（Ｔ－ＰＢＳ）で平衡化しておいたＰＤ－１０脱塩カラム（アマシャムバイオサイエンス社製）にかけ、Ｔ－ＰＢＳで溶出して、溶媒をＴ－ＰＢＳに置換したサンプル３．５ｍｌを得た。
　ｂ）Ｒｅｓｏｕｒｃｅ　Ｑカラムクロマト
　ＨｉｓＴｒａｐ　ＨＰカラムクロマトで精製したＴ－ＰＢＳ置換サンプル３．５ｍｌに０．１％　ＣＨＡＰＳを含有する５０ｍＭ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．５）２２．５ｍｌを加えて攪拌した後に、４℃、３，０００ｒ．ｐ．ｍ．にて３０分間遠心して沈殿物を除去した。この上清液をＭｉｌｌｅｘ　ＧＶフィルター（ミリポア社製）でろ過した後、０．１％　ＣＨＡＰＳを含有する５０ｍＭ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．５）で予め平衡化しておいたＲｅｓｏｕｒｃｅ　Ｑ　６ｍＬカラム（アマシャムバイオサイエンス社製）に流速１ｍｌ／ｍｉｎでかけ、引き続きこの緩衝液を用いて流速１ｍｌ／ｍｉｎでカラムを洗浄して、カラムに吸着しない蛋白質画分を集めた。カラムに吸着した蛋白質は、０．１％　ＣＨＡＰＳ，１Ｍ　ＮａＣｌを含有する５０ｍＭ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．５）を用いて流速１ｍｌ／ｍｉｎで溶出した。カラムに吸着しなかった画分２６．５ｍｌを、遠心膜濃縮器Ａｍｉｃｏｎ　Ｕｌｔｒａ－１５（ミリポア社製）で２．０ｍｌに濃縮した後に、４℃、３，０００ｒ．ｐ．ｍ．にて１０分間遠心して沈殿物を除去した。遠心後の上清液は使用するまで－８０℃で凍結保存した。以上の精製操作（ＨｉｓＴｒａｐ　ＨＰカラムクロマト、Ｒｅｓｏｕｒｃｅ　Ｑカラムクロマト）を２回繰り返して実施した。
　ｃ）精製したマウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｈｉｓの検出と純度検定
　上記の精製操作（ＨｉｓＴｒａｐ　ＨＰカラムクロマト、Ｒｅｓｏｕｒｃｅ　Ｑカラムクロマト）で調製したサンプルを用いて還元条件下でＳＤＳ－ポリアクリルアミド電気泳動と銀染色を行った。即ち各精製ステップのサンプル５μｌに同量のＳＤＳ－処理液を加えて、９５℃で１０分間熱処理した。熱処理した各サンプル０．３μｌをＳＤＳ－ポリアクリルアミド電気泳動に使用した。電気泳動のゲルとして８－２５％ポリアクリルアミドグラジエントゲル（アマシャムバイオサイエンス社製）を用い、電気泳動はＰｈａｓｔＳｙｓｔｅｍ（アマシャムバイオサイエンス社製）を用いて実施した。また分子量マーカーとしてレインボー分子量マーカー（アマシャムバイオサイエンス社製）を用いた。電気泳動終了後にＰｈａｓｔＧｅｌ　Ｓｉｌｖｅｒ　Ｋｉｔ（アマシャムバイオサイエンス社製）とＰｈａｓｔＳｙｓｔｅｍを用いて銀染色を行い、その結果を図１に示した。Ｒｅｓｏｕｒｃｅ　Ｑカラムに吸着しなかった蛋白質画分に分子量約３５ｋＤａの蛋白質（マウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｈｉｓ）が効率的に精製濃縮されたことが示された。
　分子量マーカーとしてＥＣＬ　ＤｕａｌＶｕｅ　Ｗｅｓｔｅｒｎ　Ｂｌｏｔｔｉｎｇ　Ｍａｒｋｅｒｓ、アマシャムバイオサイエンス社製）を用いた以外は上記と同じ条件で電気泳動したゲル中の蛋白質を、ＰｈａｓｔＴｒａｎｓｆｅｒ　Ｓｅｍｉ－ｄｒｙ　Ｔｒａｎｓｆｅｒ　Ｋｉｔ（アマシャムバイオサイエンス社製）とＰｈａｓｔＳｙｓｔｅｍを用いてＰＶＤＦ膜（Ｈｙｂｏｎｄ－Ｐ、アマシャムバイオサイエンス社製）に転写（ブロット）した。このＰＶＤＦ膜を０．１％　Ｔｗｅｅｎ　２０を含むブロッキング剤（ＢｌｏｃｋＡｃｅ，雪印乳業社製）１０ｍｌ中室温で１時間緩やかに振とうした。このブロッキング溶液にＳ－ｐｒｏｔｅｉｎ　ＨＲＰ（アマシャムバイオサイエンス社）１０μｌと抗Ｖ５－ＨＲＰ抗体（Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ　Ａｎｔｉｂｏｄｙ　ｔｏ　Ｐｋ－ＴＡＧ－ＨＲＰ、Ａｃｒｉｓ　Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ社製）１０μｌを加えて、更に室温で１時間緩やかに振とうした。ＰＶＤＦ膜を０．０１％　Ｔｗｅｅｎ　２０を含むリン酸塩緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）５０ｍｌ中で緩やかに振とうしながら５分間４回洗浄した。洗浄後このＰＶＤＦ膜をＥＣＬ　ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ　ｋｉｔ（アマシャムバイオサイエンス社）のプロトコールに従って処理して、蛋白質のバンドの発色をＥＣＬ　ｍｉｎｉ－ｃａｍｅｒａ（アマシャムバイオサイエンス社）ポラロイドフィルム（Ｐｏｌａｐａｎ　３２００Ｂ、ポラロイド社）で検出した。結果を図２に示した。この結果からも、抗Ｖ５－ＨＲＰ抗体に反応する分子量約３５ｋＤａの蛋白質（マウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｈｉｓ）がＲｅｓｏｕｒｃｅ　Ｑカラムに吸着しなかった蛋白質画分に効率良く精製濃縮されたことが確認できた。
　ｄ）精製したマウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｈｉｓの蛋白質濃度の測定
　精製マウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｈｉｓ（Ｒｅｓｏｕｒｃｅ　Ｑカラムに吸着しなかった蛋白質画分）について、ウシ血清アルブミンを標準サンプルとして用い、ＤＣ－Ｐｒｏｔｅｉｎ　Ａｓｓａｙ　ｋｉｔ（ＢｉｏＲａｄ社製）で蛋白質濃度を測定した。表１に示したように、２回の精製操作で合計１．６６ｍｇの精製マウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｈｉｓ蛋白質を得た。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　マウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃの精製
　ａ）ＨｉＴｒａｐ　ｐｒｏｔｅｉｎ　Ａカラムクロマト
　実施例２で調製したマウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃ発現２９３Ｆ細胞の培養液１．８　ＬをＳｔｅｒｉｖｅｘ　ＧＶフィルター（ミリポア社製）でろ過した後、予めダルベッコＰＢＳ（Ｄ－ＰＢＳ、インビトロジェン社製）で平衡化しておいたＨｉＴｒａｐ　ｐｒｏｔｅｉｎ　Ａ　５ｍＬカラム（アマシャムバイオサイエンス社製）に流速５ｍｌ／ｍｉｎでかけた。Ｄ－ＰＢＳを用いて流速５ｍｌ／ｍｉｎでカラムを洗浄した後に、０．１Ｍ　クエン酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ３．０）５０ｍｌを用いて流速５ｍｌ／ｍｉｎでカラムに吸着している蛋白質を溶出した。溶出した液は、Ｍｉｎｉ－ｓｏｒｐ　ｔｕｂｅ（ヌンク社製）に５ｍｌ／Ｆｒ．にて分取した後に、１Ｍ　Ｔｒｉｓ　１．３ｍｌを直ちに加えて中和した。溶出された蛋白質が検出された画分（Ｆｒ．１，２）を遠心膜濃縮器Ａｍｉｃｏｎ　Ｕｌｔｒａ－１５（ミリポア社製）で２．５ｍｌに濃縮した後に、０．０１％　Ｔｗｅｅｎ　２０を含む大塚注射用生理食塩水（ＴＯ－ＳＳ、大塚製薬社製）で平衡化しておいたＰＤ－１０脱塩カラム（アマシャムバイオサイエンス社製）にかけてＴＯ－ＳＳで溶出して、溶媒をＴＯ－ＳＳに置換したサンプル３．５ｍｌを得た。このサンプルは、使用するまで－８０℃で凍結保存した。２．９Ｌの２９３Ｆ細胞の培養液を用いて、同様の精製操作を更に１回繰り返して実施した。
　ｂ）精製したマウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃの検出と純度検定
　上記の精製操作で調製したサンプルを用いて還元条件下のＳＤＳ－ポリアクリルアミド電気泳動と銀染色を行った。即ち各精製ステップのサンプル５μｌに同量のＳＤＳ－処理液を加えて、９５℃で１０分間加熱した。熱処理した各サンプルを１／２濃度のＳＤＳ－処理液で１／３００又は１／９００倍希釈したサンプル０．３μｌをＳＤＳ－ポリアクリルアミド電気泳動に使用した。電気泳動と銀染色は実施例３、ｃ）に記載のマウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｈｉｓの純度検定と同様の方法で実施して、その結果を小スケールでの予備精製条件検討の結果（アプライした培養液のｐＨが８．９又は７．０）と共に図３に示した。ＨｉＴｒａｐ　ｐｒｏｔｅｉｎ　Ａ　カラムから溶出した蛋白質画分に分子量約５５ｋＤａの蛋白質（マウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃ）が効率的に精製濃縮されたことが示された。
　ｃ）精製したマウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃの蛋白質濃度の測定
　精製マウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃ（ＰＤ－１０脱塩カラムから溶出された蛋白質画分）について、ウシ血清アルブミンを標準サンプルとして用い、ＤＣ－Ｐｒｏｔｅｉｎ　Ａｓｓａｙ　ｋｉｔ（ＢｉｏＲａｄ社製）で蛋白質濃度を測定した。表２に示したように、２回の精製操作で合計９２ｍｇの精製マウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃ蛋白質を得た。　
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体産生ハイブリドーマの樹立
　ａ）抗原の調製
　実施例３で作製した、マウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｈｉｓ蛋白質を１００μｇ／０．５ｍｌとなるように調製し、アジュバントを同量加えガラスシリンジにてエマルジョンを作製した。なおアジュバントは、初回免疫時のみＦｒｅｕｎｄ’ｓ　Ｃｏｍｐｌｅｔｅ　Ａｄｊｕｖａｎｔ（ＦＣＡ、ディフコ社製）を使用し、２回目以降Ｆｒｅｕｎｄ’ｓ　Ｉｎｃｏｍｐｌｅｔｅ　Ａｄｊｕｖａｎｔ（ＦＩＣＡ、ディフコ社製）を使用した。
　ｂ）ラットへの免疫
　ラット（Ｗｉｓｔａｒ、雌、６週齢、日本クレア社より購入）４匹を免疫動物として使用した。ａ）で得られたエマルジョンを、抗原量が５０μｇ／ラットとなるよう皮下及び皮内に２７Ｇ注射針を用いて注射した。以降７日毎に合計４回の免疫を実施した。４回目の免疫から７日後に尾静脈より少量（２００μｌ）採血し、抗血清を調製した。抗血清の抗体力価を確認するため、抗原として用いたマウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｈｉｓ蛋白質、実施例４で作製したマウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃ蛋白質、あるいはウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）を固相化したＥＬＩＳＡを実施した。その結果、４匹のラット（ラットＮｏ．１～４）の何れにおいてもマウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｈｉｓ蛋白質及びマウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃ蛋白質への反応性が認められた。一方、ＢＳＡへの反応性は認められなかった。以上より、免疫したラットの血清中抗体力価が上昇していることが確認されたため、抗体価が最も高かったＮｏ．２ラットについて細胞融合操作へ進めた。
　ｃ）細胞融合
　細胞融合は、一般的なマウス（ラット）脾臓細胞とミエローマ細胞との融合法に従って実施した。ラットをエーテル麻酔下で心臓より全採血して安楽死させ、その後脾臓を摘出した。採取した脾臓細胞と、マウスミエローマ細胞であるＰ３Ｘ６３Ａｇ８．６５３細胞（ＡＴＣＣ　ＣＲＬ　１５８０）を、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）を用いて細胞融合させた。９６穴プレートに細胞を播種し、ｈｙｐｏｘａｎｔｈｉｎｅ（Ｈ）、ａｍｉｎｏｐｔｅｒｉｎ（Ａ）、ｔｈｙｍｉｄｉｎｅ（Ｔ）を含有した培地（ＨＡＴ選択培地）を添加して７～１０日間培養した。細胞融合したハイブリドーマの生存が確認された６１穴の培養上清を採取し、抗原として用いたマウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｈｉｓ蛋白質、実施例４で作製したマウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃ蛋白質、あるいはＢＳＡを固相化したＥＬＩＳＡにて抗体価を評価し、抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体産生ハイブリドーマをスクリーニングした。スクリーニングの結果から、抗体価の高い１２穴を選抜し、その中のハイブリドーマをクローニング操作へ進めた。
　ｄ）ハイブリドーマのクローニング
選抜したハイブリドーマについて、限界希釈法により１次クローニングした。限界希釈後の培養は２週間行い、培養上清中の抗体価の確認を、実施例４で作製したマウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃ蛋白質あるいはＢＳＡを固相化したＥＬＩＳＡにて実施した。陽性クローンと認められた１１クローンについて、さらに２次クローニングを実施（１次クローニングと同様の作業）することにより、最終的に抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体産生ハイブリドーマを１０クローン（＃１Ａ１、＃３Ａ１、＃８Ａ１、＃２４Ａ１、＃３２Ａ１、＃３４Ａ１、＃３９Ａ１、＃４０Ａ１、＃４１Ｂ１、＃６１Ａ１）樹立した。なお、ハイブリドーマ＃３２Ａ１は、日本国独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センター（所在地：郵便番号３０５－８５６６　日本国　茨城県つくば市東１丁目１番地１　中央第６）に２００８年８月２８日付けで寄託され、ａｎｔｉ－Ｓｉｇｌｅｃ－１５　Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ　＃３２Ａ１の名称で受託番号ＦＥＲＭ　ＢＰ－１０９９９が付与されている。
ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体の調製
　ａ）ヌードマウス腹水の調製
　実施例５で樹立したハイブリドーマを、１０％　ＦＣＳ含有ＴＩＬ　Ｍｅｄｉａ　Ｉ（（株）免疫生物研究所製）培地を用いて培養した。なお細胞の継代は５×１０５細胞／ｍｌ程度に増殖した時点を目安に４分の１程度に希釈する作業を、２～３日に１度実施した。プリスタンを腹腔内に前投与（０．２ｍｌ／マウス）したヌードマウスに、培養したハイブリドーマを１×１０７細胞／マウスとなるように腹腔内に移植した。移植には、１０クローンのハイブリドーマそれぞれにつき各３匹のヌードマウスを使用した。移植後、腹水の蓄積が十分に見られた時点で腹水を採取し、各ハイブリドーマ３匹分を１つにまとめて採取量を測定後、抗体の精製まで凍結保存した。各ハイブリドーマについて、腹水の採取量を表３にまとめた。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　ｂ）抗体の精製
採取した腹水の全量を、２０ｍｌのＰｒｏｔｅｉｎ　Ｇカラム（ＧＥ　Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社製）を用いたＩｇＧの精製に供した。精製されたＩｇＧはゲルろ過分析（Ｓｕｐｅｒｄｅｘ　２００カラムクロマト）により純度検定を行い、一部を遠心膜濃縮した。すなわち、精製した抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体の内、＃２４Ａ１抗体を除く９種類の抗体を、遠心膜濃縮器Ａｍｉｃｏｎ　Ｕｌｔｒａ－１５（ミリポア社製）を用いて３０００ｒ．ｐ．ｍ．、４℃で３０～６０分間遠心することによって約６倍～８倍濃縮した。続いて、＃２４Ａ１抗体及び濃縮した他の９種類の抗体について、ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）を標準サンプルとして用い、ＤＣ－Ｐｒｏｔｅｉｎ　Ａｓｓａｙ　Ｋｉｔ（ＢｉｏＲａｄ社製）で蛋白質濃度を測定した。以上の操作により、抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体を調製した。
ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体のマウスＳｉｇｌｅｃ－１５蛋白質に対する結合性評価
　ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体のマウスＳｉｇｌｅｃ－１５蛋白質に対する結合性をＥＬＩＳＡ法により評価した。実施例４で作製したマウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃ蛋白質を５μｇ／ｍｌとなるように０．１Ｍ炭酸ナトリウムバッファー（ｐＨ　９．５）で希釈し、９６穴プレート（ナルジェヌンク社製、カタログ番号：４３０３４１）に１００μｌ／穴添加した。室温で１時間放置後に溶液を除去し、３００μｌ／穴の洗浄バッファー（０．０５％　Ｔｗｅｅｎ　２０含有リン酸塩緩衝生理食塩水）を添加して、除去した。この洗浄作業をさらに１回行った後、２５％ブロックエース（大日本住友製薬社製）を含むリン酸塩緩衝生理食塩水を２００μｌ／穴添加し、室温で１時間放置することによりブロッキングを行った。液を除き３００μｌ／穴の洗浄バッファーで２回洗浄した後、実施例６で調製したラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体あるいはラットコントロールＩｇＧ（Ｒ＆Ｄ　Ｓｙｓｔｅｍｓ社製）を、ＥＬＩＳＡバッファー（１２．５％ブロックエース、０．０５％　Ｔｗｅｅｎ　２０を含むリン酸塩緩衝生理食塩水）を用いて終濃度が１．２８～２０，０００ｎｇ／ｍｌ（５倍希釈系列）となるように希釈し、１００μｌ／穴添加した。室温で１時間放置後に液を除き、３００μｌ／穴の洗浄バッファーで３回洗浄した。続いてＥＬＩＳＡバッファーを用いて１，０００倍希釈したＨＲＰ（西洋ワサビペルオキシダーゼ）標識ヤギ抗ラットＩｇＧ抗体（ベックマンコールター社製）を１００μｌ／穴添加し、室温で１時間放置した。液を除き、３００μｌ／穴の洗浄バッファーで３回洗浄後、ペルオキシダーゼ用発色キット（住友ベークライト社製）を用いて、キットに添付された説明書に従い発色させた。発色後、マイクロプレートリーダー（日本モレキュラーデバイス社製）を用いて４９２ｎｍでの吸光度を測定した。その結果、検討したラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体１０検体全てにおいて、抗体の濃度に依存したマウスＳｉｇｌｅｃ－１５蛋白質への結合が確認された（図４）。一方ラットコントロールＩｇＧでは、マウスＳｉｇｌｅｃ－１５蛋白質への結合が認められなかった。
マウス骨髄非付着細胞の調製
　５～８週齢の雄ｄｄＹマウスより大腿骨と脛骨を摘出し、軟組織を除去した。この大腿骨あるいは脛骨の両端を切り落とし、２５ゲージの注射針付きシリンジによりＤ－ＰＢＳを注入して骨髄細胞を押し出して、遠心チューブに回収した。室温で１００ｇ、５分間遠心して上清を捨てた後に、細胞のペレットにＨｅｍｏｌｙｔｉｃ　Ｂｕｆｆｅｒ　１ｍｌ（ＲＥＤ　ＢＬＯＯＤ　ＣＥＬＬ　ＬＹＳＩＮＧ　ＢＵＦＦＥＲ、シグマ社製）を加えて懸濁し、室温で５分間放置した。２０ｍｌのＤ－ＰＢＳを加えて室温で１００ｇ，５分間遠心し、上清を捨てた後に細胞のペレットに５ｎｇ／ｍｌ　Ｍ－ＣＳＦ（Ｒ＆Ｄ　Ｓｙｓｔｅｍｓ社製）、１０％　ウシ胎児血清（ＦＢＳ）を含有するＭＥＭ－α培地（インビトロジェン社製）１０ｍｌを加えて懸濁し、セルストレイナー（４０μｍ　Ｎｙｌｏｎ、ＢＤファルコン社製）を通して凝集物を除いた。この細胞を７５ｃｍ２－Ｔ　フラスコ（付着細胞用）に移して、ＣＯ２インキュベーター中で１晩培養した。１晩培養後、Ｔ－フラスコに付着していない細胞を回収して、マウス骨髄非付着細胞として使用した。
ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体のマウス破骨細胞形成試験での生物活性評価
　実施例６において作製した１０検体全ての抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体を用い、マウス骨髄非付着細胞の破骨細胞分化への影響を検討した。実施例８の方法で調製したマウス骨髄非付着細胞を１０％　ＦＢＳと１０ｎｇ／ｍｌ　Ｍ－ＣＳＦ（Ｒ＆Ｄ　Ｓｙｓｔｅｍｓ社製）を含むα－ＭＥＭ培地で１．５×１０５細胞／ｍｌに調製したものを９６穴プレートの各ウェルに２００μｌ播種して、ＣＯ２インキュベーター中で２日間培養した。９６穴プレート中の古い培養液を除去して、ヒトＲＡＮＫＬ（ＲＡＮＫＬ、ぺプロテック社製）を終濃度２０ｎｇ／ｍｌ、Ｍ－ＣＳＦを１０ｎｇ／ｍｌになるように添加した１０％　ＦＢＳ含有ＭＥＭ－α培地１００μｌを添加した。この細胞培養液に、実施例６で作製したラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体、市販のラットコントロールＩｇＧ（Ｐｕｒｉｆｉｅｄ　Ｒａｔ　ＩｇＧ、Ｒ＆Ｄ　Ｓｙｓｔｅｍｓ社製）よりアジ化ナトリウムを除去したサンプル、及び別途作製したウサギ抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５ポリクローナル抗体（Ｎｏ．３）を３２～１，０００ｎｇ／ｍｌの濃度になるように添加して、更に３日間ＣＯ２インキュベーター中で培養した。なお、ポリクローナル抗体（Ｎｏ．３）は、本実施例に記載の実験系において破骨細胞形成を阻害することが既に確認されている抗体である。培養終了後に、形成された破骨細胞の酒石酸耐性酸性フォスファターゼ（ＴＲＡＰ）活性を以下の操作で測定した。９６穴プレートの各ウェルの培養液を吸引除去して、１％　Ｔｒｉｔｏｎ　Ｘ－１００を含有する５０ｍＭクエン酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ６．１）５０μｌを各ウェルに加え、プレート振とう機で５分間振とうして細胞を可溶化した。これらの各ウェルに基質溶液（５ｍｇ／ｍｌ　ｐ－ｎｉｔｒｏｐｈｅｎｙｌ　ｐｈｏｓｐｈａｔｅ及び０．４６％　酒石酸ナトリウムを含有する５０ｍＭクエン酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ６．１））５０μｌを加えて室温で５分間インキュベートした。インキュベート後に９６穴プレートの各ウェルに１Ｎ水酸化ナトリウム溶液５０μｌを加えて酵素反応を停止した。酵素反応停止後に各ウェルの４０５ｎｍの吸光度を測定してＴＲＡＰ活性の指標にした。結果を図５及び６に示した。市販のラットコントロールＩｇＧでは顕著なＴＲＡＰ活性の抑制は認められなかった。その一方で、＃３２Ａ１抗体では３２ｎｇ／ｍｌから１０００ｎｇ／ｍｌの範囲で、＃８Ａ１抗体とアフィニティー精製ウサギポリクローナルＮｏ．３抗体では６３ｎｇ／ｍｌから１０００ｎｇ／ｍｌの範囲で、顕著なＴＲＡＰ活性の抑制が認められた。また＃３Ａ１抗体、＃３４Ａ１抗体、＃３９Ａ１抗体においても、５００ｎｇ／ｍｌ以上の比較的高濃度においてＴＲＡＰ活性の用量依存的な抑制が認められた。その他の抗体によるマウス破骨細胞形成の抑制は認められなかった。以上の結果より、調製したラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体の中に、マウスの破骨細胞形成（破骨細胞の分化と成熟）を強く抑制する抗体が見出された。また、＃３Ａ１抗体、＃８Ａ１抗体、＃３２Ａ１抗体、＃３４Ａ１抗体、＃３９Ａ１抗体に共通な性質として、１０００ｎｇ／ｍｌ、すなわち１μｇ／ｍｌ以下の濃度において破骨細胞形成を阻害する作用を挙げることができる。
可溶型ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５蛋白質の発現コンストラクトの作製
　ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５蛋白質の細胞外領域をコードする部分のヌクレオチド配列は、配列表の配列番号１５であり、アミノ酸配列は、配列表の配列番号１６である。このような部分配列を利用することにより、動物細胞などの培養上清中に可溶型ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５蛋白質を産生させることができる。
　ａ）可溶型ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５遺伝子のＰＣＲによる増幅
　ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５の細胞外領域ｃＤＮＡをＰＣＲで増幅するためのプライマーとして
５’－ｇｇｇｇａｃａａｇｔ　ｔｔｇｔａｃａａａａ　ａａｇｃａｇｇｃｔｔ　ｃａｃｃＡＴＧＧＡＡ　ＡＡＧＴＣＣＡＴＣＴ　ＧＧＣＴＧＣ－３’（ｈＳｉｇｌｅｃ－１５－ＥＣＤ－Ｆ：配列表の配列番号１７）
及び
５’－ｇｇｇｇａｃｃａｃｔ　ｔｔｇｔａｃａａｇａ　ａａｇｃｔｇｇｇｔｃ　ＣＣＣＧＣＴＧＧＣＧ　ＣＣＡＴＧＧＡＡＧＣ　ＧＧ－３’（ｈＳｉｇｌｅｃ－１５－ＥＣＤ－Ｒ：配列表の配列番号１８）、
の配列を有するオリゴヌクレオチドを常法に従って合成した。なお、これらのプライマーは、Ｇａｔｅｗａｙエントリークローン作製用増幅用プライマーとして、ｈＳｉｇｌｅｃ－１５－ＥＣＤ－ＦにはａｔｔＢ１配列が、ｈＳｉｇｌｅｃ－１５－ＥＣＤ－ＲにはａｔｔＢ２配列が付加されるように設計した。このプライマーの組み合わせと、テンプレートとしてヒトＳｉｇｌｅｃ－１５のオープンリーディング配列を含むポリヌクレオチドを用い、常法に従いＰＣＲを行った。得られたＰＣＲ反応液は、ＰｕｒｅＬｉｎｋ　ＰＣＲ　Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ　Ｋｉｔ（インビトロジェン社製）を用いて精製した。
　ｂ）Ｇａｔｅｗａｙ　ＢＰ反応によるエントリークローンの作製
　λファージの部位特異的組換えシステムを応用したＧａｔｅｗａｙテクノロジー（インビトロジェン社）により、ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５細胞外領域のｃＤＮＡを組み込んだエントリークローンを以下の方法で作製した。まず、ａ）で作製した、ａｔｔＢ配列を両端に持つＰＣＲ産物と、ａｔｔＰ配列を有するドナーベクターであるｐＤＮＯＲ２２１（インビトロジェン社製）との間で、ＢＰクロナーゼを用いたＢＰ反応を行った。この反応液を用いて大腸菌ＴＯＰ１０を形質転換し、薬剤耐性クローンに対してコロニーＰＣＲを行い、インサートサイズを確認した。インサートのサイズが正しく確認されたクローンについて、インサートの全ＤＮＡ配列のシークエンス解析を実施した結果、目的とするヒトＳｉｇｌｅｃ－１５蛋白質の細胞外領域をコードするヌクレオチド配列（配列表の配列番号１５）と完全に一致するエントリークローンが得られた。
　ｃ）Ｇａｔｅｗａｙ　ＬＲ反応による発現クローンの作製
　λファージの部位特異的組換えシステムを応用したＧａｔｅｗａｙテクノロジー（インビトロジェン社）により、ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５細胞外領域のｃＤＮＡを組み込んだ発現クローンを以下の方法で作製した。ｂ）で作製したエントリークローンは、インサートの両端にａｔｔＬ配列を有している。このエントリークローンと、ａｔｔＲ配列を有する２種類のディストネーションベクターとの間でＬＲクロナーゼを用いたＬＲ反応を行った。なおディストネーションベクターは、インサートのＣ末側にＶ５エピトープと６×Ｈｉｓタグが付加される様に設計されたｐＤＯＮＭ、及びインサートのＣ末側にヒトＦｃタグが付加されるように設計されたｐｈＩｇＦｃの２種類を用いた。ＬＲ反応により得られた反応液を用いて大腸菌ＴＯＰ１０を形質転換し、得られた薬剤耐性クローンに対してシークエンス解析を行い、組換えが正しく行われたかを確認した。
シークエンス解析の結果、ｐＤＯＮＭ及びｐｈＩｇＦｃの両方で正しく組換わった発現クローン（可溶型ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５／ｐＤＯＮＭ及び可溶型ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５／ｐｈＩｇＦｃ）が、それぞれ得られた。可溶型ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５／ｐＤＯＮＭを動物細胞などにトランスフェクションすることにより、配列表の配列番号１９に記載した塩基配列を有するｍＲＮＡが転写され、配列表の配列番号２０に記載したアミノ酸配列を有する蛋白質（ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｈｉｓ）が翻訳される。可溶型ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５／ｐｈＩｇＦｃを動物細胞などにトランスフェクションすることにより、配列表の配列番号２１に記載した塩基配列を有するｍＲＮＡが転写され、配列表の配列番号２２に記載したアミノ酸配列を有する蛋白質（ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃ）が翻訳される。
２９３－Ｆ細胞を用いた可溶型ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５蛋白質含有培養液の大量調製
　a) ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｈｉｓ含有培養液の調製
　実施例１０で得られた可溶型ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５／ｐＤＯＮＭを約２５ｍｇ調製した。なお、大量培養した大腸菌からのプラスミド精製には、インビトロジェン　ＰｕｒｅＬｉｎｋ　ＨｉＰｕｒｅ　Ｐｌａｓｍｉｄ　Ｇｉｇａｐｒｅｐ　Ｋｉｔ（インビトロジェン社製）を使用した。調製したプラスミドをＯｐｔｉ－ＭＥＭ（インビトロジェン社製）と混合し、トランスフェクション試薬である２９３ｆｅｃｔｉｎ（インビトロジェン社製）を５０　ｍｌ添加して室温で２０分間インキュベーションした。この混和液を、１％ペニシリン－ストレプトマイシンを含有するＦｒｅｅＳｔｙｌｅ　２９３　Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　Ｍｅｄｉａ（インビトロジェン社製）中で１．０～３．４×１０６細胞／ｍｌとなるように２５Ｌバイオプロセス培養装置（ＷＡＶＥ　Ｂｉｏｒｅａｃｔｏｒ）を用いて培養したＦｒｅｅＳｔｙｌｅ　２９３－Ｆ細胞（インビトロジェン社製）に添加した。６～１２％　ＣＯ２濃度、３７℃で９６時間（４日間）攪拌培養（３０回転／分）した後に培養液を回収し、遠心分離して培養上清を調製した。このようにして調製した培養上清中には、ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５の細胞外領域Ｃ末側にＶ５エピトープと６×Ｈｉｓタグが付加された蛋白質（ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｈｉｓ）が発現すると考えられる。
　ｂ）　ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃ含有培養液の調製
　実施例１０で得られた可溶型ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５／ｐｈＩｇＦｃを約５ｍｇ調製した。なお、大量培養した大腸菌からのプラスミド精製には、インビトロジェン　ＰｕｒｅＬｉｎｋ　ＨｉＰｕｒｅ　Ｐｌａｓｍｉｄ　Ｇｉｇａｐｒｅｐ　Ｋｉｔ（インビトロジェン社製）を使用した。調製したプラスミドをＯｐｔｉ－ＭＥＭ（インビトロジェン社製）と混合し、フィルター滅菌した後トランスフェクション試薬である２９３ｆｅｃｔｉｎ（インビトロジェン社製）を１０　ｍｌ添加して室温で２０分間インキュベーションした。この混和液を、ＦｒｅｅＳｔｙｌｅ　２９３　Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　Ｍｅｄｉａ（インビトロジェン社製）中で１．０～３．０×１０６細胞／ｍｌ×５Ｌ（１Ｌ／フラスコを５本）となるようにエルレンマイヤーフラスコ中で培養したＦｒｅｅＳｔｙｌｅ　２９３－Ｆ細胞（インビトロジェン社製）に添加した。８．０％　ＣＯ２濃度、３７℃で９６時間（４日間）回転培養（１２５回転／分）した後に培養液を回収し、遠心分離して培養上清を調製した。このようにして調製した培養上清中には、ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５の細胞外領域Ｃ末側にヒトＦｃタグが付加された蛋白質（ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃ）が発現すると考えられる。
可溶型ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５蛋白質の精製
　ａ）可溶型ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｈｉｓの精製
　ａ－ｉ）ＨｉｓＴｒａｐ　ＨＰカラムクロマト
　実施例１１、ａ）で調製したヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｈｉｓを発現させた２９３Ｆ細胞の培養液１２Ｌに１３５０ｍｌの１０ｘｂｕｆｆｅｒ（５００ｍＭ　Ｔｒｉｓ，１．５Ｍ　ＮａＣｌ，２００ｍＭ　Ｉｍｉｄａｚｏｌｅ，ｐＨ８．０）を加えて良く攪拌した後に、ＭｉｌｌｉＰａｋ　６０フィルター（ミリポア社製）でろ過した。この培養液を、予め純水（Ｍｉｌｌｉ　Ｑ水）で洗浄しておいたＮｉ－Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ　ＨＰ（アマシャムバイオサイエンス社製）１００ｍｌカラムに流速１０ｍｌ／ｍｉｎでかけた。３００ｍＭ　ＮａＣｌを含む５０ｍＭ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ８．０）４００ｍｌを用いて流速８ｍｌ／ｍｉｎでカラムを洗浄した後に、３００ｍＭ　ＮａＣｌ，５００ｍＭ　Ｉｍｉｄａｚｏｌｅを含む５０ｍＭ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ８．０）２００ｍｌを用いて流速２．５ｍｌ／ｍｉｎでカラムに吸着している蛋白質を溶出して、Ｍｉｎｉ－ｓｏｒｐ　ｔｕｂｅ（ヌンク社製）に分取した。溶出された蛋白質を含む画分約４０ｍｌに蛋白質の沈殿を防止する目的で５Ｍ　ＮａＣｌ溶液８ｍｌを加えて攪拌した後に、遠心膜濃縮器Ａｍｉｃｏｎ　Ｕｌｔｒａ－１５（ミリポア社製）で約２０ｍｌに濃縮した。濃縮時に発生した不溶物を３０００ｒ．ｐ．ｍ．、４℃で３０分間遠心して除き、その上清液２．５ｍｌを予め１Ｍ　ＮａＣｌを含むリン酸塩緩衝生理食塩水（Ｎ－ＰＢＳ）で平衡化しておいたＰＤ－１０脱塩カラム（アマシャムバイオサイエンス社製）にかけ、Ｎ－ＰＢＳで溶出して、溶媒をＮ－ＰＢＳに置換したサンプル３．５ｍｌを得た。この操作を更に７回繰り返して行い、ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｈｉｓ粗精製溶液約２８ｍｌを得た。
　ａ－ｉｉ）Ｒｅｓｏｕｒｃｅ　Ｑカラムクロマト
　Ｎｉ－Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ　ＨＰカラムクロマトで精製したＮ－ＰＢＳ置換サンプル１２ｍｌを０．１％　ＣＨＡＰＳを含有する５０ｍＭ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．５）に４℃で一晩透析（１Ｌ、３回）した後に、４℃、３，０００ｒ．ｐ．ｍ．にて３０分間遠心して沈殿物を除去した。この上清液をＭｉｌｌｅｘ　ＧＶフィルター（ミリポア社製）でろ過した後、０．１％　ＣＨＡＰＳを含有する５０ｍＭ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．５）で予め平衡化しておいたＲｅｓｏｕｒｃｅ　Ｑ　６ｍＬカラム（アマシャムバイオサイエンス社製）に流速１ｍｌ／ｍｉｎでかけ、引き続きこの緩衝液を用いて流速１ｍｌ／ｍｉｎでカラムを洗浄して、カラムに吸着しない蛋白質画分を集めた。カラムに吸着した蛋白質は、０．１％　ＣＨＡＰＳ，１Ｍ　ＮａＣｌを含有する５０ｍＭ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．５）を用いて流速１ｍｌ／ｍｉｎで溶出した。カラムに吸着しなかった画分２６．５ｍｌを、遠心膜濃縮器Ａｍｉｃｏｎ　Ｕｌｔｒａ－１５（ミリポア社製）で３．０ｍｌに濃縮した後に、４℃、３，０００ｒ．ｐ．ｍ．にて１０分間遠心して沈殿物を除去した。その上清液２．５ｍｌを予め５０ｍＭ　アルギニン塩酸塩を含むリン酸塩緩衝生理食塩水（ｐＨ７．０、Ａ－ＰＢＳ）で平衡化しておいたＰＤ－１０脱塩カラム（アマシャムバイオサイエンス社製）にかけ、Ａ－ＰＢＳで溶出して、溶媒をＡ－ＰＢＳに置換したサンプル３．５ｍｌを得た。調製したサンプルの溶媒中のアルギニン塩酸塩は可溶型ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｈｉｓが沈殿することを防止するために添加した。遠心後の上清液は使用するまで－８０℃で凍結保存した。以上の精製操作（Ｒｅｓｏｕｒｃｅ　Ｑカラムクロマト）を２回繰り返して実施した。
　ａ－ｉｉｉ）精製したヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｈｉｓの検出と純度検定
　上記の精製操作（Ｎｉ－Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ　ＨＰカラムクロマト、Ｒｅｓｏｕｒｃｅ　Ｑカラムクロマト）で調製したサンプルを用いて還元条件下でＳＤＳ－ポリアクリルアミド電気泳動と銀染色を行った。即ち各精製ステップのサンプル５μｌに同量のＳＤＳ－処理液を加えて、９５℃で１０分間熱処理した。熱処理した各サンプル０．３μｌをＳＤＳ－ポリアクリルアミド電気泳動に使用した。電気泳動の操作は分子量マーカーとしてレインボー分子量マーカー（アマシャムバイオサイエンス社製）を用いた以外は、実施例３と同様の方法で実施した。電気泳動終了後にＰｈａｓｔＧｅｌ　Ｓｉｌｖｅｒ　Ｋｉｔ（アマシャムバイオサイエンス社製）とＰｈａｓｔＳｙｓｔｅｍを用いて銀染色を行い、その結果を図７に示した。Ｒｅｓｏｕｒｃｅ　Ｑカラムに吸着しなかった蛋白質画分に分子量約３５ｋＤａの蛋白質（ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｈｉｓ）が効率的に精製濃縮されたことが示された。
　ａ－ｉｖ）精製したヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｈｉｓの蛋白質濃度の測定
　精製ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｈｉｓ（Ｒｅｓｏｕｒｃｅ　Ｑカラムに吸着しなかった蛋白質画分）について、ウシ血清アルブミンを標準サンプルとして用い、ＤＣ－Ｐｒｏｔｅｉｎ　Ａｓｓａｙ　ｋｉｔ（ＢｉｏＲａｄ社製）で蛋白質濃度を測定した。２回の精製操作で合計１．６６ｍｇの精製ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｈｉｓを得た。
　ｂ）可溶型ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃの精製
　ｂ－ｉ）ＨｉＴｒａｐ　ｐｒｏｔｅｉｎ　Ａカラムクロマト
　実施例１１、ｂ）で調製したヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃを発現させた２９３Ｆ細胞の培養液１．５　ＬをＳｔｅｒｉｖｅｘ　ＧＶフィルター（ミリポア社製）でろ過した後、予めダルベッコＰＢＳ（Ｄ－ＰＢＳ、インビトロジェン社製）で平衡化しておいたＨｉＴｒａｐ　ｐｒｏｔｅｉｎ　Ａ　５ｍＬカラム（アマシャムバイオサイエンス社製）に流速５ｍｌ／ｍｉｎでかけた。Ｄ－ＰＢＳ　７０ｍｌを用いて流速５ｍｌ／ｍｉｎでカラムを洗浄した後に、０．１Ｍ　クエン酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ３．０）２４ｍｌを用いて流速１．２ｍｌ／ｍｉｎでカラムに吸着している蛋白質を溶出した。溶出した液は、Ｍｉｎｉ－ｓｏｒｐ　ｔｕｂｅ（ヌンク社製）に１．２ｍｌ／Ｆｒ．にて分取した後に、１Ｍ　Ｔｒｉｓ　０．３１ｍｌを直ちに加えて中和した。溶出された蛋白質の画分（Ｆｒ．５～９）約７．５ｍｌ中の２．５ｍｌを、５０ｍＭ　アルギニン塩酸塩を含むリン酸塩緩衝生理食塩水（ｐＨ７．０、Ａ－ＰＢＳ）で平衡化しておいたＰＤ－１０脱塩カラム（アマシャムバイオサイエンス社製）にかけてＡ－ＰＢＳで溶出して、溶媒をＡ－ＰＢＳに置換したサンプル３．５ｍｌを得た。この作業を２回繰り返して実施した。溶媒中のアルギニン塩酸塩は可溶型ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃが沈殿することを防止するために添加した。溶出された蛋白質画分（Ｆｒ．５～９）の残り２．５ｍｌは、１Ｍ　ＮａＣｌを含むリン酸塩緩衝生理食塩水（ｐＨ６．７、Ｎ－ＰＢＳ）で平衡化しておいたＰＤ－１０脱塩カラム（アマシャムバイオサイエンス社製）にかけてＮ－ＰＢＳで溶出して、溶媒をＮ－ＰＢＳに置換したサンプル３．５ｍｌを得た。調製したサンプルの溶媒中のＮａＣｌは、アルギニン等のアミノ基含有化合物を添加せずに、可溶型ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃの沈殿を防止する目的で添加した。以上の操作で調製したサンプルは、使用するまで－８０℃で凍結保存した。
　ｂ－ｉｉ）精製したヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃの検出と純度検定
　上記の精製操作で調製したサンプルを用いて還元条件下のＳＤＳ－ポリアクリルアミド電気泳動と銀染色を行った。即ち各精製ステップのサンプル５μｌに同量のＳＤＳ－処理液を加えて、９５℃で１０分間加熱した。熱処理した各サンプルを１／２濃度のＳＤＳ－処理液で１／１００又は１／３００倍希釈したサンプル０．３μｌをＳＤＳ－ポリアクリルアミド電気泳動に使用した。電気泳動と銀染色は、ａ－ｉｉｉ）に記載のヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｈｉｓの純度検定と同様の方法で実施して、その結果を図８に示した。ＨｉＴｒａｐ　ｐｒｏｔｅｉｎ　Ａ　カラムから溶出した蛋白質画分に分子量約５５ｋＤａの蛋白質（ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃ）が効率的に精製濃縮されたことが示された。
　ｂ－ｉｉｉ）精製したヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃの蛋白質濃度の測定
　精製ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃ（ＰＤ－１０脱塩カラムから溶出された蛋白質画分）について、ウシ血清アルブミンを標準サンプルとして用い、ＤＣ－Ｐｒｏｔｅｉｎ　Ａｓｓａｙ　ｋｉｔ（ＢｉｏＲａｄ社製）で蛋白質濃度を測定した。表４に示したように、２回の精製操作で合計２５．２ｍｇの精製ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃを得た。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体のヒトＳｉｇｌｅｃ－１５蛋白質に対する結合性評価
　ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体のヒトＳｉｇｌｅｃ－１５蛋白質に対する結合性をＥＬＩＳＡ法により評価した。実施例１２、ｂ）で作製したヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃ蛋白質（Ａ－ＰＢＳ置換したもの）を５μｇ／ｍｌとなるように０．１Ｍ炭酸ナトリウムバッファー（ｐＨ９．５）で希釈し、９６穴プレート（ナルジェヌンク社製、カタログ番号：４３０３４１）に１００μｌ／穴添加した。室温で１時間放置後に溶液を除去し、３００μｌ／穴の洗浄バッファー（０．０５％　Ｔｗｅｅｎ　２０含有リン酸塩緩衝生理食塩水）を添加、除去した。この洗浄作業をさらに１回行った後、２５％ブロックエース（大日本住友製薬社製）を含むリン酸塩緩衝生理食塩水を２００μｌ／穴添加し、室温で１時間放置することによりブロッキングを行った。液を除き３００μｌ／穴の洗浄バッファーで２回洗浄した後、実施例６で調製したラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体あるいはラットコントロールＩｇＧ（Ｒ＆Ｄ　Ｓｙｓｔｅｍｓ社製）を、ＥＬＩＳＡバッファー（１２．５％ブロックエース、０．０５％　Ｔｗｅｅｎ　２０を含むリン酸塩緩衝生理食塩水）を用いて終濃度が１．２８～２０，０００ｎｇ／ｍｌ（５倍希釈系列）となるように希釈し、１００μｌ／穴添加した。室温で１時間放置後に液を除き、３００μｌ／穴の洗浄バッファーで３回洗浄した。続いてＥＬＩＳＡバッファーを用いて１，０００倍希釈したＨＲＰ（西洋ワサビペルオキシダーゼ）標識ヤギ抗ラットＩｇＧ抗体（ベックマンコールター社製）を１００μｌ／穴添加し、室温で１時間放置した。液を除き、３００μｌ／穴の洗浄バッファーで３回洗浄後、ペルオキシダーゼ用発色キット（住友ベークライト社製）を用いて、キットに添付された説明書に従い発色させた。発色後、マイクロプレートリーダー（日本モレキュラーデバイス社製）を用いて４９２ｎｍでの吸光度を測定した。その結果、検討したラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体１０検体全てにおいて、抗体の濃度に依存したヒトＳｉｇｌｅｃ－１５蛋白質への結合が確認された（図９）。特に結合活性が強かったのは、＃１Ａ１、＃３Ａ１、＃２４Ａ１、＃３２Ａ１、＃６１Ａ１の５検体であり、＃８Ａ１、＃３４Ａ１、＃３９Ａ１の３検体は比較的結合活性が弱かった。一方ラットコントロールＩｇＧは、ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５蛋白質への結合が認められなかった。以上の結果から、実施例６で調製したラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体は、マウスＳｉｇｌｅｃ－１５だけでなくヒトＳｉｇｌｅｃ－１５にも結合することが示され、しかも一部の抗体はヒトＳｉｇｌｅｃ－１５に強く結合することが判明した。
ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体添加による正常ヒト破骨前駆細胞の細胞融合、及び骨吸収活性への影響（ｉｎ　ｖｉｔｒｏ生物活性評価）
　実施例１３において、ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体がヒトＳｉｇｌｅｃ－１５にも結合することが確認されたので、これらの抗体のヒト破骨細胞形成及び骨吸収活性に対する効果を検討した。
　ａ）ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体添加による正常ヒト破骨前駆細胞の破骨細胞融合への影響（ＴＲＡＰ染色）
　正常ヒト破骨前駆細胞（Ｎｏｒｍａｌ　Ｈｕｍａｎ　Ｎａｔｕｒａｌ　Ｏｓｔｅｏｃｌａｓｔ　Ｐｒｅｃｕｒｓｏｒ　Ｃｅｌｌｓ、三光純薬より購入、カタログ番号２Ｔ－１１０）を、細胞に添付のプロトコールに従い９６穴プレートに１×１０４細胞／穴となるように播種した。なお培地は、ウシ胎児血清（終濃度１０％）、ヒトＲＡＮＫＬ（終濃度６６　ｎｇ／ｍｌ）及びヒトＭ－ＣＳＦ（終濃度３３　ｎｇ／ｍｌ）等を含むＯＰＧＭ添加因子セット（三光純薬より購入、カタログ番号ＰＴ－９５０１）を添加した破骨前駆細胞用基礎培地（ＯＰＢＭ、三光純薬より購入、カタログ番号ＰＴ－８２０１）を用いた。この培養上清中に、実施例６で調製したラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体及びラットコントロールＩｇＧ（Ｒ＆Ｄ　Ｓｙｓｔｅｍｓ社製）を終濃度３０μｇ／ｍｌとなるように添加して、ＣＯ２インキュベーター中で４日間培養した。培養後上清を除去し、１０％中性ホルマリンを添加して細胞固定を行った。細胞固定後、蒸留水で２回洗浄し、ＴＲＡＰ染色液（０．２７ｍＭナフトールＡＳ－ＭＸリン酸（シグマ社製）、１．６ｍＭ　Ｆａｓｔ　ｒｅｄ　ｖｉｏｌｅｔ　ＬＢ　ｓａｌｔ（シグマ社製）、１％ジメチルホルムアミド、５０ｍＭ酒石酸ナトリウム、０．１Ｍ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ５．０））を１００μｌ／穴添加し、室温で５分反応させた。蒸留水で２回洗浄し、顕微鏡下で細胞を観察した（図１０）。その結果、＃３２Ａ１抗体添加により、高度に細胞融合した巨大破骨細胞の形成がほぼ完全に抑制された。また、＃４１Ｂ１抗体でも、高度に細胞融合した巨大破骨細胞の形成が顕著に抑制された。一方、それ以外のラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体（＃１Ａ１抗体他）及びラットコントロールＩｇＧでは、このような破骨細胞融合の顕著な抑制は認められなかった。このように、正常ヒト破骨前駆細胞からのＴＲＡＰ陽性破骨細胞の多核化・細胞融合が、Ｓｉｇｌｅｃ－１５蛋白質と特異的に結合するモノクローナル抗体により抑制されることが明らかとなった。
　ｂ）ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体（＃３２Ａ１）添加による正常ヒト破骨前駆細胞の破骨細胞融合への影響（ＴＲＡＰ染色）
　正常ヒト破骨前駆細胞（Ｎｏｒｍａｌ　Ｈｕｍａｎ　Ｎａｔｕｒａｌ　Ｏｓｔｅｏｃｌａｓｔ　Ｐｒｅｃｕｒｓｏｒ　Ｃｅｌｌｓ、三光純薬より購入、カタログ番号２Ｔ－１１０）を、細胞に添付のプロトコールに従い９６穴プレートに１×１０４細胞／穴となるように播種した。なお培地は、ウシ胎児血清（終濃度１０％）、ヒトＲＡＮＫＬ（終濃度６８．４　ｎｇ／ｍｌ）及びヒトＭ－ＣＳＦ（終濃度３３ｎｇ／ｍｌ）等を含むＯＰＧＭ添加因子セット（三光純薬より購入、カタログ番号ＰＴ－９５０１）を添加した破骨前駆細胞用基礎培地（ＯＰＢＭ、三光純薬より購入、カタログ番号ＰＴ－８２０１）を用いた。この培養上清中に、実施例６で調製したラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体（＃３２Ａ１抗体）を終濃度０．１、０．３、１、３μｇ／ｍｌとなるように添加して、ＣＯ２インキュベーター中で３日間培養した。培養後上清を除去し、１０％中性ホルマリンを添加して細胞固定を行った。細胞固定後、蒸留水で２回洗浄し、ＴＲＡＰ染色液（０．２７ｍＭナフトールＡＳ－ＭＸリン酸（シグマ社製）、１．６ｍＭ　Ｆａｓｔ　ｒｅｄ　ｖｉｏｌｅｔ　ＬＢ　ｓａｌｔ（シグマ社製）、１％ジメチルホルムアミド、５０ｍＭ酒石酸ナトリウム、０．１Ｍ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ５．０））を１００μｌ／穴添加し、室温で５分反応させた。蒸留水で２回洗浄し、顕微鏡下で細胞を観察した（図１１）。その結果、ＴＲＡＰ陽性多核破骨細胞形成が、＃３２Ａ１抗体　０．３μｇ／ｍｌから３μｇ／ｍｌの範囲で濃度依存的に抑制された。
　ｃ）ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体（＃３２Ａ１）添加による正常ヒト破骨前駆細胞の骨吸収活性への影響（コラーゲンコートプレートを用いた評価）
　破骨細胞はカテプシンＫなどのプロテアーゼを放出することにより、骨組織の構成成分であるＩ型コラーゲンを分解することが知られている。ＯｓｔｅｏＬｙｓｅ　Ａｓｓａｙ　Ｋｉｔ（Ｌｏｎｚａ社製、カタログ番号　ＰＡ－１５００）は、ユーロピウムが結合したヒトコラーゲンをコーティングした９６穴プレート（９６－ｗｅｌｌ　ＯｓｔｅｏＬｙｓｅ　ｃｅｌｌ　ｃｕｌｔｕｒｅ　ｐｌａｔｅ）を提供しており、同プレート上で破骨細胞を培養した際に上清に遊離される蛍光コラーゲン断片量を測定することにより、破骨細胞の骨吸収活性をｉｎ　ｖｉｔｒｏで評価することが可能である。
正常ヒト破骨前駆細胞（Ｎｏｒｍａｌ　Ｈｕｍａｎ　Ｎａｔｕｒａｌ　Ｏｓｔｅｏｃｌａｓｔ　Ｐｒｅｃｕｒｓｏｒ　Ｃｅｌｌｓ、三光純薬より購入、カタログ番号２Ｔ－１１０）を、細胞に添付のプロトコールに従い９６－ｗｅｌｌ　ＯｓｔｅｏＬｙｓｅ　ｃｅｌｌ　ｃｕｌｔｕｒｅ　ｐｌａｔｅに１×１０４細胞／穴となるように播種した。なお培地は、ウシ胎児血清（終濃度１０％）、ヒトＲＡＮＫＬ（終濃度６８．４ｎｇ／ｍｌ）及びヒトＭ－ＣＳＦ（終濃度３３ｎｇ／ｍｌ）等を含むＯＰＧＭ添加因子セット（三光純薬より購入、カタログ番号ＰＴ－９５０１）を添加した破骨前駆細胞用基礎培地（ＯＰＢＭ、三光純薬より購入、カタログ番号ＰＴ－８２０１）を用いた。この培養上清中に、実施例６で調製したラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体（＃３２Ａ１抗体）を終濃度０．１、０．３、１、３μｇ／ｍｌとなるように添加して、ＣＯ２インキュベーター中で３日間培養した。培養上清１０μｌを採取し、ＯｓｔｅｏＬｙｓｅ　Ａｓｓａｙ　Ｋｉｔに付属のＦｌｕｏｒｏｐｈｏｒｅ　Ｒｅｌｅａｓｉｎｇ　Ｒｅａｇｅｎｔを２００μｌ添加して、蛍光プレートリーダー（ＡＲＶＯ　ＭＸ、パーキンエルマー社製）を用いて蛍光強度を測定（Ｅｘｃｉｔａｔｉｏｎ：３４０ｎｍ、Ｅｍｉｓｓｉｏｎ：６１５ｎｍ）することにより、培養上清中に放出された遊離蛍光コラーゲン断片量を定量した（図１２）。その結果、ＲＡＮＫＬ添加により増加した蛍光コラーゲン断片量が、＃３２Ａ１抗体によって、０．３μｇ／ｍｌから３μｇ／ｍｌの範囲で濃度依存的に抑制された。このことから、ヒト破骨細胞の骨吸収活性が、Ｓｉｇｌｅｃ－１５蛋白質と特異的に結合するモノクローナル抗体により抑制されることが明らかとなった。
ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体の卵巣摘出ラットを用いた生物活性評価
　ａ）動物実験のプロトコール
　１２週齢雌性Ｆ３４４ラット（日本チャールス・リバー社より入手）に両側卵巣摘除を施術し、溶媒投与群、ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃８Ａ１抗体投与群及び＃３２Ａ１抗体投与群の３群に分けた。また偽手術群についても１群設定した。抗体を投与する群については、実施例６で調製したラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃８Ａ１抗体及び＃３２Ａ１抗体を、各１ｍｇ／ｋｇの用量で腹腔内に週３回、手術翌日から４週間反復投与した。溶媒投与群及び偽手術群には、溶媒として０．０１％　Ｔｗｅｅｎ２０含有ＰＢＳを腹腔内に投与した。投与開始４週後に絶食下で２４時間採尿を行い、尿検体は測定まで－８０℃で保存した。採尿終了後にラットを安楽死させ、腰椎を摘出した。
　ｂ）腰椎骨密度の測定
　摘出した腰椎に付着している軟組織を除去し、第４～６腰椎を切り出した。エタノール中で振とう後に風乾することにより脱脂及び脱水し、骨密度測定装置（ＤＣＳ－６００ＥＸ、アロカ社製）を用いて骨密度を測定した。結果を図１３（Ａ）に示した。偽手術群に対し、卵巣摘除群では有意な腰椎骨密度の減少が認められたが、＃８Ａ１及び＃３２Ａ１抗体投与群では卵巣摘除による骨密度の減少が有意に抑制された。
　ｃ）尿中デオキシピリジノリン排泄量の測定
　I型コラーゲン架橋の各種代謝産物は骨の代謝回転、特に骨吸収を鋭敏に反映し、なかでもデオキシピリジノリンは主として骨のコラーゲンに局在することから骨吸収の指標として信頼性が高いとされている。
　凍結保存していた尿検体を融解し、遠心操作により不溶物質を沈殿させて上清を得た。この上清中に含まれるデオキシピリジノリン量を、オステオリンクス「ＤＰＤ」（ＤＳファーマバイオメディカル社製）を用いて測定した。また、クレアチニン－テストワコー（和光純薬工業社製）を用いて上清中のクレアチニン含量も測定し、クレアチニン補正を行ったデオキシピリジノリン量を算出した。結果を図１３（Ｂ）に示した。偽手術群に対し、卵巣摘除群では尿中デオキシピリジノリン排泄量が有意に増加したことから、卵巣摘除ラットでは破骨細胞による骨吸収が亢進していることが示唆された。一方＃８Ａ１及び＃３２Ａ１抗体投与群では、卵巣摘除によるデオキシピリジノリン排泄量の増加が偽手術群と同程度まで抑制された。このことから、Ｓｉｇｌｅｃ－１５に特異的に結合するモノクローナル抗体が破骨細胞の骨吸収を抑制することが動物モデルでも確認され、この骨吸収抑制作用により卵巣摘除ラットの腰椎骨密度減少を抑制したことが強く示唆された。
ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体の結合部位（エピトープ）の決定
　ａ）ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５ Ｖ－ｓｅｔドメインの発現精製
　ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５　Ｖ－ｓｅｔドメイン（ＮＣＢＩの蛋白質データベースのＡＣＣＥＳＳＩＯＮ番号ＮＰ＿９９８７６７のアミノ酸配列又は配列表の配列番号２に記載のアミノ酸配列の３９乃至１６５番目のアミノ酸残基からなるポリペプチド）のＮ末端側にＨｉｓタグ、及び、Ｔｈｒｏｍｂｉｎ認識配列を連結させた蛋白質をコードするＤＮＡをベクターｐＤＥＳＴ１４（インビトロジェン社、カタログ番号：１１８０１－０１６）に組み込んだ。このプラスミドを用いて、大腸菌Ｒｏｓｅｔｔａ－ｇａｍｉＢ（ＤＥ３）（ノバジェン社、カタログ番号：７１１３６－４）を形質転換し、ＴＢ培地（インビトロジェン社、カタログ番号：２２７１１－０２２）で培養した。培養後、超音波破砕した菌体を遠心分離し、上清をＨｉｓＴｒａｐ　ＨＰカラム（ＧＥヘルスケア社、カタログ番号：１７－５２４７－０１）で精製した。その後、ＴｈｒｏｍｂｉｎでＨｉｓタグを切断後、Ｍｏｎｏ　Ｓ５／５０　ＧＬカラム（ＧＥヘルスケア社、カタログ番号：１７－５１６８－０１）、さらに、Ｓｕｐｅｒｄｅｘ　７５　１０/３００カラム（ＧＥヘルスケア社、カタログ番号：１７－５１７４－０１）を用いて、電気泳動で分子量１４ｋＤａの単一バンドになるまでヒトＳｉｇｌｅｃ－１５　Ｖ－ｓｅｔドメインを精製した。
　ｂ）可溶型ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃの精製
　可溶型ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃは、実施例１２の方法で精製した。
　ｃ）ヒトＶ－ｓｅｔドメインとラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃３２Ａ１の競合ＥＬＩＳＡ
　９６穴Ｍａｘｉ－ｓｏｒｐプレート（ヌンク社製、型番：４４２４０４）に１．２５μｇ/ｍｌのヤギ抗ヒトＦｃ抗体（ジャクソンイムノリサーチ社、型番：１０９－００５－０９８）を１００μｌ添加し、４℃で一晩固相化した。９６穴Ｍａｘｉ－ｓｏｒｐプレートをＰＢＳで２回洗浄後、１μg/ｍｌの可溶型ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃを１００μｌ添加し、室温で１時間固相化した。その後、５％スキムミルク/ＰＢＳ溶液を３００μｌ添加し、室温で３時間、ウェルのブロッキングを実施した。一方、2μｇ/ｍｌのラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃３２Ａ１と０、０．０３２、０．１６、０．８、４、２０μｇ/ｍｌのヒトＳｉｇｌｅｃ－１５ Ｖ－ｓｅｔドメインをそれぞれ等量混合し、室温で１．５時間反応させた。９６穴Ｍａｘｉ－ｓｏｒｐプレートをＰＢＳで２回洗浄後、ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃３２Ａ１とヒトＳｉｇｌｅｃ－１５ Ｖ－ｓｅｔドメインの混合溶液を１００μｌ添加し、室温で１時間反応させた。０．０５％Ｔｗｅｅｎ－２０（バイオラッド社、カタログ番号：１７０－６５３１）/ＰＢＳ溶液（以下、ＰＢＳＴ溶液とする）で９６穴Ｍａｘｉ－ｓｏｒｐプレートを５回洗浄後、ＨＲＰ標識ヤギ抗ラットＩｇＧ抗体（ベックマンコールター社、カタログ番号：７３２６６４、２，０００倍希釈）を１００μｌ添加し、室温で１時間反応させた。ＰＢＳＴ溶液で５回洗浄後、ＥＬＩＳＡ　ＰＯＤ基質Ａ．Ｂ．Ｔ．Ｓ．キット（ナカライテスク社、カタログ番号：１４３５１－８０）の発色液を１００μｌ添加して３０分間反応させた。反応停止液を１００μｌ添加後４０５ｎｍの吸光度を測定した。競合ＥＬＩＳＡの結果、ヒトＶ－ｓｅｔドメインの濃度依存的にラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃３２Ａ１の固相化したヒトＳｉｇｌｅｃ－１５への結合が阻害されることが示された。よって、ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃３２Ａ１のエピトープは、ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５　Ｖ－ｓｅｔドメイン（ＮＣＢＩの蛋白質データベースのＡＣＣＥＳＳＩＯＮ番号ＮＰ＿９９８７６７のアミノ酸配列又は配列表の配列番号２に記載のアミノ酸配列の３９乃至１６５番目のアミノ酸残基からなるドメイン）であることが示された（図１４）。
ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃３２Ａ１の可変領域をコードするｃＤＮＡの増幅と塩基配列の解析
　ａ）ｍＲＮＡの調製
　ハイブリドーマ＃３２Ａ１は、実施例６、ａ）に従って培養した。４ｘ１０７個のハイブリドーマ＃３２Ａ１から、ＱｕｉｃｋＰｒｅｐ　ｍＲＮＡ　Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ　Ｋｉｔ（ＧＥ　Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社）を用いて、約６５μｇのｍＲＮＡを調製した。
　ｂ）ｃＤＮＡ（５’－ＲＡＣＥ－Ｒｅａｄｙ　ｃＤＮＡ）の合成
　ｃＤＮＡ（５’－ＲＡＣＥ－Ｒｅａｄｙ　ｃＤＮＡ）の合成はａ）で合成したｍＲＮＡの０．３μｇを用い、ＰｒｉｍｅＳｃｒｉｐｔ　Ｒｅｖｅｒｓｅ　Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔａｓｅ（ＴＡＫＡＲＡ社）とＳＭＡＲＴ ＲＡＣＥ ｃＤＮＡ Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｋｉｔ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社）を用いて実施した。
　ｃ）５’-ＲＡＣＥ　ＰＣＲによる＃３２Ａ１遺伝子の重鎖可変領域のｃＤＮＡの増幅
　＃３２Ａ１重鎖遺伝子のの可変領域のｃＤＮＡをＰＣＲで増幅するためのプライマーとして、ＵＰＭ (Ｕｎｉｖｅｒｓａｌ Ｐｒｉｍｅｒ Ａ　Ｍｉｘ：ＳＭＡＲＴ ＲＡＣＥ ｃＤＮＡ Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｋｉｔに付属)
及び
５’－ＧＧＣＣＧＧＧＴＧＧＧＣＴＡＣＧＴＴＧＣＡＧＧＴＧＡＣＧＧＴＣＴＧ－３’（ＲＧ２ＡＲ２：配列表の配列番号２３）の配列を有するオリゴヌクレオチドを用いた。ＵＰＭはＳＭＡＲＴ ＲＡＣＥ ｃＤＮＡ Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｋｉｔ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社）に付属のものを使用し、ＲＧ２ＡＲ２はデータベースのラット重鎖（ＩｇＧ２ａ）の定常領域の配列から設計した後に常法に従って合成した。
このプライマーの組み合わせと、ｂ）で合成したｃＤＮＡ（５’－ＲＡＣＥ－Ｒｅａｄｙ　ｃＤＮＡ）を鋳型とした、５’－ＲＡＣＥ　ＰＣＲにより＃３２Ａ１重鎖遺伝子の可変領域のｃＤＮＡを増幅した。ＰＣＲは、Ａｄｖａｎｔａｇｅ　２　ＰＣＲ　Ｋｉｔ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社）を用い、サーマルサイクラーの設定条件は、９４℃で１分間加熱した後、「９４℃で０．５分、７２℃で３分」の温度サイクルを５回繰り返し、次に「９４℃で０．５分、７０℃で０．５分、７２℃で３分」の温度サイクルを５回繰り返し、さらに「９４℃で０．５分、６８℃で０．５分、７２℃で３分」の温度サイクルを２０回繰り返してから、４℃で保温とした。
　ｄ）５’-ＲＡＣＥ　ＰＣＲによる＃３２Ａ１軽鎖遺伝子の可変領域のｃＤＮＡの増幅
　＃３２Ａ１軽鎖遺伝子の可変領域のｃＤＮＡをＰＣＲで増幅するためのプライマーとして、ＵＰＭ (Ｕｎｉｖｅｒｓａｌ Ｐｒｉｍｅｒ Ａ　Ｍｉｘ：ＳＭＡＲＴ ＲＡＣＥ ｃＤＮＡ Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｋｉｔに付属)
及び
５’－ＣＡＴＧＣＴＧＴＡＣＧＴＧＣＴＧＴＣＴＴＴＧＣＴＧＴＣＣＴＧＡＴＣＡＧ－３’（ＲＫＲ２：配列表の配列番号２４）の配列を有するオリゴヌクレオチドを用い、ＵＰＭはＳＭＡＲＴ ＲＡＣＥ ｃＤＮＡ Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｋｉｔ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社）に付属のものを使用し、ＲＫＲ２はデータベースのラット軽鎖（κ鎖）の定常領域の配列から設計した後に常法に従って合成した。
このプライマーの組み合わせと、ｂ）で合成したｃＤＮＡ（５’－ＲＡＣＥ－Ｒｅａｄｙ　ｃＤＮＡ）を鋳型とした、５’－ＲＡＣＥ　ＰＣＲにより＃３２Ａ１軽鎖遺伝子の可変領域のｃＤＮＡを増幅した。ＰＣＲは、Ａｄｖａｎｔａｇｅ　２　ＰＣＲ　Ｋｉｔ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社）を用い、サーマルサイクラーの設定条件は、９４℃で１分間加熱した後、「９４℃で０．５分、７２℃で３分」の温度サイクルを５回繰り返し、次に「９４℃で０．５分、７０℃で０．５分、７２℃で３分」の温度サイクルを５回繰り返し、さらに「９４℃で０．５分、６８℃で０．５分、７２℃で３分」の温度サイクルを２０回繰り返してから、４℃で保温とした。
　ｅ）重鎖及び軽鎖可変領域のｃＤＮＡの塩基配列の決定
　ｃ）で増幅した重鎖の可変領域のｃＤＮＡをＭｉｎＥｌｕｔｅ　ＰＣＲ　Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ　Ｋｉｔ（ＱＩＡＧＥＮ社）を用いて精製した後に、ＤＮＡ配列のシークエンス解析を実施した。シークエンスプライマーとして、
５’－ＣＴＣＣＡＧＡＧＴＴＣＣＡＧＧＴＣＡＣＧＧＴＧＡＣＴＧＧＣ－３’（ＲＧ２ＡＲ３：配列表の配列番号２５）の配列を有するオリゴヌクレオチドをデータベースのラット重鎖（ＩｇＧ２ａ）の定常領域の配列から設計した後に常法に従って合成した。
　ｄ）で増幅した軽鎖の可変領域のｃＤＮＡをＭｉｎＥｌｕｔｅ　ＰＣＲ　Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ　Ｋｉｔ（ＱＩＡＧＥＮ社）を用いて精製を行った後に、ＤＮＡ配列のシークエンス解析を実施した。シークエンスプライマーとして、
５’－ＴＣＣＡＧＴＴＧＣＴＡＡＣＴＧＴＴＣＣＧ－３’（ｓｑＲＫ：配列表の配列番号２６）の配列を有するオリゴヌクレオチドをデータベースのラット軽鎖（κ鎖）の定常領域の配列から設計した後に常法に従って合成した。
　シークエンス解析により得られた重鎖可変領域を含むｃＤＮＡは、配列表の配列番号２７に記載の塩基配列を有しており、配列表の配列番号２８に記載のアミノ酸配列をコードしている。配列番号２８のアミノ酸番号１乃至１９に示されるアミノ酸配列が分泌シグナル、アミノ酸番号２０乃至１４０に示されるアミノ酸配列が重鎖可変領域、そしてアミノ酸番号１４１乃至１６７で示されるアミノ酸配列が重鎖定常領域（部分）に相当する。上記の重鎖可変領域は、配列番号４４に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ１（ＤＹＦＭＮ）、配列番号４５に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ２（ＱＩＲＮＫＩＹＴＹＡＴＦＹＡＥＳＬＥＧ）、及び配列番号４６に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ３（ＳＬＴＧＧＤＹＦＤＹ）を保有している。また、軽鎖可変領域を含むｃＤＮＡは、配列表の配列番号の２９に記載の塩基配列を有しており、配列表の配列番号３０に記載のアミノ酸配列をコードしている。配列番号３０のアミノ酸番号１乃至２０に示されるアミノ酸配列が分泌シグナル、アミノ酸番号２１乃至１３２に示されるアミノ酸配列が軽鎖可変領域、そしてアミノ酸番号１３３乃至１３９で示されるアミノ酸配列が軽鎖定常領域（部分）に相当する。上記の軽鎖可変領域は、配列番号４７に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ１（ＲＡＳＱＳＶＴＩＳＧＹＳＦＩＨ）、配列番号４８に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ２（ＲＡＳＮＬＡＳ）、及び配列番号４９に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ３（ＱＱＳＲＫＳＰＷＴ）を保有している。
ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃３２Ａ１のヒトキメラ抗体遺伝子発現コンストラクトの作製　
　ａ）汎用発現ベクターｐＥＦ１/ＦＣＣＵ－１及びｐＥＦ６ＫＣＬの作製
　ａ）－ｉ）ヒト軽鎖発現ベクターｐＥＦ６ＫＣＬの構築
　プラスミドｐＥＦ６／Ｖ５－ＨｉｓＢ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を鋳型として下記プライマーを用いてＰＣＲを行うことにより、ＢＧＨｐＡの直後（２１７４）から、Ｓｍａ　Ｉ（２９５８）までのＤＮＡ断片（ｆ１　ｏｒｉｇｉｎ　ｏｆ　ｒｅｐｌｉｃａｔｉｏｎ及びＳＶ４０　ｐｒｏｍｏｔｏｒ　ａｎｄ　ｏｒｉｇｉｎを含むＤＮＡフラグメント、以下、「フラグメントＡ」とする。）を取得した。
５’－ＣＣＡＣＧＣＧＣＣＣＴＧＴＡＧＣＧＧＣＧＣＡＴＴＡＡＧＣ－３’（プライマーＥＦＦ１：配列表の配列番号３１）
５’－ＡＡＡＣＣＣＧＧＧＡＧＣＴＴＴＴＴＧＣＡＡＡＡＧＣＣＴＡＧＧ－３’（プライマーＥＦｓｍａＲ：配列番号３２）
　得られたフラグメントＡと、ヒトκ鎖分泌シグナル、ヒトκ鎖定常領域及びヒトｐｏｌｙＡ付加シグナルをコードするＤＮＡ配列を含むＤＮＡフラグメント（配列番号３３）以下、「フラグメントＢ」とする。）をオーバーラップＰＣＲにより結合した。得られたフラグメントＡとフラグメントＢとが結合したＤＮＡ断片（以下、「フラグメントＡ＋Ｂ」とする。）を制限酵素ＫｐｎＩ及びＳｍａＩで消化し、制限酵素ＫｐｎＩ及びＳｍａＩで消化したプラスミドｐＥＦ６／Ｖ５－ＨｉｓＢ　（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）とライゲーションし、ＥＦ１プロモーターの下流にシグナル配列、クローニングサイト、ヒトκ鎖定常領域、及びヒトｐｏｌｙＡ付加シグナル配列をもつ、ヒト軽鎖発現ベクターｐＥＦ６ＫＣＬを構築した。
　ａ）－ｉｉ）ｐＥＦ１／ＫＣＬの構築
　上記の方法で得られたｐＥＦ６ＫＣＬから制限酵素ＫｐｎＩ及びＳｍａＩで切り出されたＤＮＡ断片を、ＫｐｎＩ及びＳｍａＩで消化したｐＥＦ１／ｍｙｃ－ＨｉｓＢ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）とライゲーションし、プラスミドｐＥＦ１／ＫＣＬを構築した。
　ａ）－ｉｉｉ）ヒト重鎖発現ベクターｐＥＦ１／ＦＣＣＵ－１の構築
　ヒトＩｇＧ１シグナル配列及び定常領域のアミノ酸をコードするＤＮＡ配列を含むＤＮＡ断片（配列表の配列番号３４）を制限酵素ＮｈｅＩ及びＰｍｅＩで消化し、ＮｈｅＩ及びＰｍｅＩで消化したプラスミドｐＥＦ１／ＫＣＬと結合し、ＥＦ１プロモーターの下流にシグナル配列、クローニングサイト、ヒト重鎖定常領域、及びヒトｐｏｌｙＡ付加シグナル配列をもつヒト重鎖発現ベクターｐＥＦ１／ＦＣＣＵ－１を構築した。
　ｂ）＃３２Ａ１ヒトキメラ抗体重鎖発現コンストラクトの作製
　＃３２Ａ１重鎖可変領域のｃＤＮＡをＰＣＲで増幅するためのプライマーとして、
５’－ａａａｇｃｔｇａｇｃＧＡＧＧＴＧＣＡＡＡＴＴＴＴＧＧＡＧＡＣＴＧＧＡＧＧＡＧＧＣ－３’（３２Ａ１ＨＦ：配列表の配列番号３５）
及び
５’－ａａａｇｃｔｇａｇｃｔＧＡＣＴＧＴＧＡＣＣＡＴＧＡＣＴＣＣＴＴＧＧＣＣＣＣＡＧ－３’（３２Ａ１ＨＲ：配列表の配列番号３６）の配列を有するオリゴヌクレオチドを常法に従って合成した。
　なお、これらのプライマーはＰＣＲ産物をｐＥＦ１／ＦＣＣＵ－１に組み込むために、制限酵素ＢｌｐＩ認識配列が付加されるように設計した。このプライマーの組み合わせとテンプレートとして、実施例１７、ｅ）で精製した重鎖可変領域のｃＤＮＡを用い、常法に従いＰＣＲを行った。ＰＣＲ産物をＭｉｎＥｌｕｔｅ　ＰＣＲ　Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ　Ｋｉｔ（ＱＩＡＧＥＮ社）を用いて精製した後に、制限酵素ＢｌｐＩ（ＮＥＷ　ＥＮＧＬＡＮＤ　ＢＩＯＬＡＢＳ社）で消化したＤＮＡ断片を、ｐＥＦ１／ＦＣＣＵ－１を制限酵素ＢｌｐＩ（ＮＥＷ　ＥＮＧＬＡＮＤ　ＢＩＯＬＡＢＳ社）で切断した箇所に挿入することにより＃３２Ａ１ヒトキメラ抗体重鎖発現コンストラクトを構築した。インサートの配列はシークエンス解析により確認した。シークエンスのためのプライマーとして、
５’－ＴＡＡＴＡＣＧＡＣＴＣＡＣＴＡＴＡＧＧＧ－３’（Ｆ１１：配列表の配列番号３７）の配列を有するオリゴヌクレオチドを常法に従って合成した。正しくインサートが挿入できた発現ベクターを「３２Ａ１Ｈ／ｐＥＦ１／ＦＣＣＵ」と命名した。
　ｃ）＃３２Ａ１ヒトキメラ抗体軽鎖発現コンストラクトの作製
　＃３２Ａ１軽鎖可変領域のｃＤＮＡをＰＣＲで増幅するためのプライマーとして、
５’－ａａａｃａｔａｔｇｇｃＧＡＣＡＴＴＧＴＣＴＴＧＡＣＣＣＡＧＴＣＴＣＣＴＧＣＴＴＴＧＧ－３’（３２Ａ１ＬＦ：配列表の配列番号３８）
及び
５’－ａａａｃｇｔａｃｇＴＣＴＣＡＡＴＴＣＣＡＧＣＴＴＧＧＴＧＣＣＴＣＣＡＧＣＧ－３’（３２Ａ１ＬＲ：配列表の配列番号３９）の配列を有するオリゴヌクレオチドを常法に従って合成した。
　なお、これらのプライマーはＰＣＲ産物をｐＥＦ６ＫＣＬに組み込むために、３２Ａ１ＬＦには制限酵素ＮｄｅＩ認識配列が、３２Ａ１ＬＲには制限酵素ＢｓｉＷＩ認識配列が付加されるように設計した。このプライマーの組み合わせとテンプレートとして、実施例１７、ｅ）で精製した軽鎖可変領域のｃＤＮＡを用い、常法に従いＰＣＲを行った。ＰＣＲ産物をＭｉｎＥｌｕｔｅ　ＰＣＲ　Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ　Ｋｉｔ（ＱＩＡＧＥＮ社）を用いて精製した後に、制限酵素ＮｄｅＩ（ＴＡＫＡＲＡ社）及び、ＢｓｉＷＩ（ＮＥＷ　ＥＮＧＬＡＮＤ　ＢＩＯＬＡＢＳ社）で消化したＤＮＡ断片を、ｐＥＦ６ＫＣＬを制限酵素ＮｄｅＩ（ＴＡＫＡＲＡ社）及び、ＢｓｉＷＩ（ＮＥＷ　ＥＮＧＬＡＮＤ　ＢＩＯＬＡＢＳ社）で切断した箇所に挿入することにより＃３２Ａ１ヒトキメラ抗体軽鎖発現コンストラクトを構築した。インサートの配列はシークエンス解析により確認した。シークエンスのためのプライマーとしては、配列表の配列番号３７に記載のプライマーＦ１１を使用した。正しくインサートが挿入できた発現ベクターを「３２Ａ１Ｌ／ｐＥＦ６ＫＣＬ」と命名した。
　ｂ）で作製された＃３２Ａ１ヒトキメラ抗体重鎖遺伝子は、配列表の配列番号４０に記載のヌクレオチド配列を有しており、配列表の配列番号４１に記載のアミノ酸配列をコードしている。配列番号４１のアミノ酸番号１乃至１９に示されるアミノ酸配列が分泌シグナル、アミノ酸番号２０乃至１４０に示されるアミノ酸配列が重鎖可変領域、そしてアミノ酸番号１４１乃至４７０で示されるアミノ酸配列が重鎖定常領域に相当する。また、ｃ）で作製された＃３２Ａ１ヒトキメラ抗体軽鎖遺伝子は、配列表の配列番号４２に記載のヌクレオチド配列を有しており、配列表の配列番号４３に記載のアミノ酸配列をコードしている。配列番号４３のアミノ酸番号１乃至２０に示されるアミノ酸配列が分泌シグナル、アミノ酸番号２１乃至１３２に示されるアミノ酸配列が軽鎖可変領域、そしてアミノ酸番号１３３乃至２３７で示されるアミノ酸配列が軽鎖定常領域に相当する。
ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃３２Ａ１のヒトキメラ抗体の調製
　ａ）ヒトキメラ抗体の生産
　対数増殖期の２９３ＦｒｅｅＳｔｙｌｅ細胞　３×１０7個を新鮮な３０ｍｌ（３０ｍｌ培養を１ロットとして４ロット作製）のＦｒｅｅＳｔｙｌｅ２９３　Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　Ｍｅｄｉｕｍ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）に播種し、３７℃、８％ＣＯ２インキュベーターで振とう培養した（１２５ｒｐｍ）。Ｐｏｌｙｅｔｈｙｌｅｎｅｉｍｉｎｅ（Ｐｏｌｙｓｃｉｅｎｃｅ社製　＃２４７６５）３００μｇをＯｐｔｉ－ＰｒｏＳＦＭ培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）1ｍｌに溶解し、室温で５分間放置した。実施例１８において作製された＃３２Ａ１ヒトキメラ抗体重鎖発現ベクター　３２Ａ１Ｈ／ｐＥＦ１／ＦＣＣＵ、及び＃３２Ａ１ヒトキメラ抗体軽鎖発現ベクター　３２Ａ１Ｌ／ｐＥＦ６ＫＣＬを、ＰｕｒｅＬｉｎｋ　ＨｉＰｕｒｅ　Ｐｌａｓｍｉｄ　キット（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）を用いて調製した。３２Ａ１Ｈ／ｐＥＦ１／ＦＣＣＵ（１５μｇ）及び３２Ａ１Ｌ／ｐＥＦ６ＫＣＬ（４５μｇ）を1ｍｌのＯｐｔｉ－ＰｒｏＳＦＭ培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）に懸濁し、室温で５分間放置したＰｏｌｙｅｔｈｙｌｅｎｅｉｍｉｎｅ／ＯｐｔｉＰｒｏＳＦＭ混合液1ｍｌに加え、さらに室温５分間放置した。次にＰｏｌｙｅｔｈｙｌｅｎｅｉｍｉｎｅ／発現ベクター／ＯｐｔｉＰｒｏＳＦＭ混合液２ｍｌを２９３ＦｒｅｅＳｔｙｌｅ細胞懸濁液の１ロットに添加し、振とう培養を続けた。３７℃、８％ＣＯ２中で７日間培養した後、培養上清をロットごとに回収した。
　ｂ）ヒトキメラ抗体の精製
　上記で得られた培養上清９０ｍｌ (３ロット分)をフィルターろ過(ＮＡＬＧＥＮＥ社製　＃２９５－４５４５)後、ＰＢＳで平衡化したＭａｂＳｅｌｅｃｔＳｕＲｅ　０．５ｍｌ　（ＧＥ　Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ　Ｂｉｏ－ｓｃｉｅｎｃｅ社製　＃１７－５４３８－０１）を加え、８０ｒｐｍ、１０℃で一晩振とうさせた。翌日、担体を回収しＰＢＳで洗浄後、1Ｍアルギニン溶液（ｐＨ４．０）にて抗体を溶出した。溶出液をＰＤ１０カラム(ＧＥヘルスケアバイオサイエンス社製　＃１７－０８５１－０１)にてＰＢＳに置換後、アミコンウルトラー４(ミリポア社製　＃ＵＦＣ８０５００８)にて濃縮しヒトキメラ抗体　１．２ｍｌ（０．９８ｍｇ／ｍｌ）を得た。抗体の濃度は日立ダイオードアレー型バイオ光度計 Ｕ－００８０Ｄにて２８０ｎｍを測定し算出した。
ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃３２Ａ１のヒトキメラ抗体のマウスＳｉｇｌｅｃ－１５蛋白質に対する結合性評価
　実施例１９において調製した精製ヒトキメラ抗体に対するラット＃３２Ａ１抗体の競合阻害を以下の方法で測定した。実施例４にて精製したマウスＳｉｇｌｅｃ－１５－ＦｃをＰＢＳで１μｇ／ｍｌに希釈後、イムノプレート（Ｎｕｎｃ社製　＃４３７１１１）に１００μｌ／ウェルで分注し、４℃で一晩静置することでプレートに蛋白質を吸着させた。翌日、ウェルをＰＢＳ－Ｔ液（ＰＢＳ、０．０５％（ｖ／ｖ）　Ｔｗｅｅｎ　２０）で２回洗浄後、スキムミルク（森永乳業社製）をＰＢＳで５％に希釈した溶液を３５０μｌ／ウェルで分注し、室温で２時間静置した。ウェル中の液を除去しＰＢＳ－Ｔ液にて３回洗浄後、０．２５μｇ／ｍｌのヒトキメラ抗体と各種濃度（０μｇ／ｍｌ、０．０１６μｇ／ｍｌ、０．０５μｇ／ｍｌ、０．１６μｇ／ｍｌ、０．５μｇ／ｍｌ、１．６６μｇ／ｍｌ、５μｇ／ｍｌ）の＃３２Ａ１抗体又はラットコントロールＩｇＧ抗体（Ｒ＆Ｄ　ｓｙｓｔｅｍｓ社製　＃６－００１－Ａ）の混合溶液（最終濃度０．５％のスキムミルク含有ＰＢＳ液）をそれぞれ１００μｌ／ウェルで分注し、２時間室温で静置した。ＰＢＳ－Ｔ液で３回ウェルを洗浄後、ＴＢＳ－Ｔ液（ＴＢＳ、０．０５％（ｖ／ｖ）　Ｔｗｅｅｎ　２０）で２５００倍に希釈したＡｌｋａｌｉｎｅ　Ｐｈｏｓｐｈａｔａｓｅ－ｃｏｎｊｕｇａｔｅｄ　ＡｆｆｉｎｉＰｕｒｅ　Ｇｏａｔ　Ａｎｔｉ－Ｈｕｍａｎ　ＩｇＧ（Ｊａｃｋｓｏｎ　ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ社製　＃１０９－０５５－０９７）を１００μｌ／ウェルで添加し、室温で１時間静置した。ウェル中の液を除去し、ＴＢＳ－Ｔ液で５回ウェルを洗浄した後、蛍光基質液（Ｒｏｃｈｅ社製　＃１１６８１９８２００１）を１００μｌ／ウェルで添加し蛍光反応を行った。蛍光基質液添加１０分後、プレートリーダーにて蛍光強度を測定した。その結果、＃３２Ａ１抗体は、ヒトキメラ抗体のマウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃに対する結合を濃度依存的に阻害することが示された。また＃３２Ａ１抗体とヒトキメラ抗体を同濃度(１：１)にて混合した場合、約４０％の競合阻害が示された。従って、＃３２Ａ１抗体とヒトキメラ抗体は、マウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃに対してほぼ同等の親和性を持つと考えられる。一方ラットコントロールＩｇＧは、競合阻害を示さなかった（図１５）。
ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃３２Ａ１のヒトキメラ抗体のマウス破骨細胞形成試験、並びにヒト破骨細胞形成試験での生物活性評価
　ａ）マウス破骨細胞形成試験
　実施例１９において調製したラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃３２Ａ１のヒトキメラ抗体を用い、マウス骨髄非付着細胞の破骨細胞分化への影響を検討した。実施例８の方法で調製したマウス骨髄非付着細胞を１０％　ＦＢＳと１０ｎｇ／ｍｌ　Ｍ－ＣＳＦ（Ｒ＆Ｄ　Ｓｙｓｔｅｍｓ社製）を含むα－ＭＥＭ培地で１．５×１０５細胞／ｍｌに調製したものを９６穴プレートの各ウェルに２００μｌ播種して、ＣＯ２インキュベーター中で２日間培養した。９６穴プレート中の古い培養液を除去して、ヒトＲＡＮＫＬ（ＲＡＮＫＬ、ぺプロテック社製）を終濃度２０ｎｇ／ｍｌ、Ｍ－ＣＳＦを１０ｎｇ／ｍｌになるように添加した１０％　ＦＢＳ含有ＭＥＭ－α培地１００μｌを添加した。この細胞培養液に、実施例６において作製したラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃３２Ａ１と実施例１９において作製したラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃３２Ａ１のヒトキメラ抗体を３～１００ｎｇ／ｍｌの濃度になるように添加して、更に３日間ＣＯ２インキュベーター中で培養した。培養終了後に、形成された破骨細胞の酒石酸耐性酸性フォスファターゼ（ＴＲＡＰ）活性を実施例９に記載の方法で測定した。酵素反応停止後に各ウェルの４０５ｎｍの吸光度を測定してＴＲＡＰ活性の指標にした。結果を図１６に示した。＃３２Ａ１抗体及びラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃３２Ａ１のヒトキメラ抗体において、５０ｎｇ／ｍｌ以上の濃度で用量依存的なＴＲＡＰ活性の抑制が認められた。この結果より、ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃３２Ａ１のヒトキメラ抗体はラット＃３２Ａ１抗体とほぼ同等のマウスの破骨細胞形成（破骨細胞の分化と成熟）抑制活性を有することが示された。
　ｂ）正常ヒト破骨前駆細胞を用いた評価（ＴＲＡＰ染色）
　正常ヒト破骨前駆細胞（Ｎｏｒｍａｌ　Ｈｕｍａｎ　Ｎａｔｕｒａｌ　Ｏｓｔｅｏｃｌａｓｔ　Ｐｒｅｃｕｒｓｏｒ　Ｃｅｌｌｓ、三光純薬より購入、カタログ番号２Ｔ－１１０）を、細胞に添付のプロトコールに従い９６穴プレートに１×１０４細胞／穴となるように播種した。なお培地は、ウシ胎児血清（終濃度１０％）、ヒトＲＡＮＫＬ（終濃度６６　ｎｇ／ｍｌ）及びヒトＭ－ＣＳＦ（終濃度３３　ｎｇ／ｍｌ）等を含むＯＰＧＭ添加因子セット（三光純薬より購入、カタログ番号ＰＴ－９５０１）を添加した破骨前駆細胞用基礎培地（ＯＰＢＭ、三光純薬より購入、カタログ番号ＰＴ－８２０１）を用いた。この培養上清中に、実施例１９で調製したラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃３２Ａ１のヒトキメラ抗体を終濃度０．３、１、３、１０μｇ／ｍｌとなるように添加して、ＣＯ２インキュベーター中で３日間培養した。培養後上清を除去し、１０％中性ホルマリンを添加して細胞固定を行った。細胞固定後、蒸留水で２回洗浄し、ＴＲＡＰ染色液（０．２７ｍＭナフトールＡＳ－ＭＸリン酸（シグマ社製）、１．６ｍＭ　Ｆａｓｔ　ｒｅｄ　ｖｉｏｌｅｔ　ＬＢ　ｓａｌｔ（シグマ社製）、１％ジメチルホルムアミド、５０ｍＭ酒石酸ナトリウム、０．１Ｍ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ５．０））を１００μｌ／穴添加し、室温で５分反応させた。蒸留水で２回洗浄し、顕微鏡下で細胞を観察した（図１７）。その結果、ＴＲＡＰ陽性多核破骨細胞形成が、＃３２Ａ１のヒトキメラ抗体の添加により０．３μｇ／ｍｌから１０μｇ／ｍｌの範囲で抑制された。
ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃３２Ａ１のヒト化抗体の設計（１）
　ａ）＃３２Ａ１のヒト化バージョンの設計
　ａ）－ｉ）　＃３２Ａ１の可変領域の分子モデリング
　＃３２Ａ１の可変領域の分子モデリングは、相同性モデリングとして一般的に公知の方法（Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ，２０３，１２１－１５３，（１９９１））によって実行された。Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｄａｔａ Ｂａｎｋ（Ｎｕｃ．Ａｃｉｄ Ｒｅｓ．３５，D３０１－D３０３（２００７））に登録されるヒト免疫グロブリンの可変領域の１次配列（Ｘ線結晶構造から誘導される三次元構造が入手可能である）を、上で決定された＃３２Ａ１の可変領域と比較した。結果として、１ＬＫ３が、＃３２Ａ１の軽鎖の可変領域に対して同様にフレームワーク中に欠損がある抗体の中で、最も高い配列相同性を有するとして選択された。また、１ＡＤ０が、＃３２Ａ１の重鎖の可変領域に対して最も高い配列相同性を有するとして選択された。フレームワーク領域の三次元構造は、＃３２Ａ１の軽鎖及び重鎖に対応する１ＬＫ３及び１AＤ０の座標を組み合わせて、「フレームワークモデル」を得ることによって作製された。＃３２Ａ１のＣＤＲは、Ｔｈｏｒｎｔｏｎ ｅｔ ａｌ．（Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．，２６３，８００－８１５，（１９９６））の分類に従って、ＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２、ＣＤＲＬ３、ＣＤＲＨ１及びＣＤＲＨ２は、それぞれクラスター１５A、７A、９A、１０Ａ、１２Ｂに割り当てられた。ＣＤＲＨ３は、Ｈ３ルール（ＦＥＢＳ ｌｅｔｔｅｒ ３９９，１－８（１９９６））を使用して、ｋ（８）Ｃに分類された。次いで、それぞれのＣＤＲについての代表的なコンホメーションがフレームワークモデルに組み込まれた。
　最後に、エネルギーの点で＃３２Ａ１の可変領域の可能性のある分子モデルを得るために、不利な原子間接触を除くためのエネルギー計算を行った。上記手順を、市販の蛋白質立体構造予測プログラムＰｒｉｍｅ及び配座探索プログラムＭａｃｒｏＭｏｄｅｌ（Ｓｃｈｒｏｄｉｎｇｅｒ，　ＬＬＣ）を用いて行った。
　ａ）－ｉｉ）　ヒト化＃３２Ａ１に対するアミノ酸配列の設計
ヒト化＃３２Ａ１抗体の構築を、ＣＤＲグラフティング（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８６，１００２９－１００３３（１９８９））として一般的に公知の方法によって行った。アクセプター抗体は、フレームワーク領域内のアミノ酸相同性に基づいて２通り選択された。＃３２Ａ１のフレームワーク領域の配列を、抗体のアミノ酸配列のＫａｂａｔデータベース（Ｎｕｃ．Ａｃｉｄ Ｒｅｓ．２９，２０５－２０６（２００１））の全てのヒトフレームワークと比較し、結果として、Ｍ３７ＧＯ３７‘ＣＬ抗体がフレームワーク領域についての７３％の配列相同性に起因して、アクセプターとして選択された。Ｍ３７ＧＯ３７‘ＣＬについてのフレームワーク領域のアミノ酸残基を、＃３２Ａ１についてのアミノ酸残基と整列させ、異なるアミノ酸が使用される位置を同定した。これらの残基の位置は、上で構築された＃３２Ａ１の三次元モデルを使用して分析され、そしてアクセプター上にグラフティングされるべきドナー残基が、Ｑｕｅｅｎ ｅｔ ａｌ．（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８６，１００２９－１００３３（１９８９））によって与えられる基準によって選択された。
　＃３２Ａ１のフレームワーク領域の配列を、ＩｇＢＬＡＳＴ（Ｎｕｃ．Ａｃｉｄ Ｒｅｓ．３６，Ｄ２５－Ｄ３０（２００７））の全てのヒトフレームワークと比較し、結果として、Ｌ鎖はＡＡＢ３４４３０がフレームワーク領域についての７９％配列相同性に起因して、アクセプターとして選択された。H鎖はＣＡＦ３１２８８がフレームワーク領域についての７８％の配列相同性に起因して、アクセプターとして選択された。Ｌ鎖はＡＡＢ３４４３０について、Ｈ鎖はＣＡＦ３１２８８についてのフレームワーク領域のアミノ酸残基を、＃３２Ａ１についてのアミノ酸残基と整列させ、異なるアミノ酸が使用される位置を同定した。これらの残基の位置は、上で構築された＃３２Ａ１の三次元モデルを使用して分析され、そしてアクセプター上にグラフティングされるべきドナー残基が、Ｑｕｅｅｎ ｅｔ ａｌ．（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８６，１００２９－１００３３（１９８９））によって与えられる基準によって選択された。いずれの方法も、選択されたいくつかのドナー残基をアクセプター抗体に移入することによって、ヒト化＃３２Ａ１配列を以下の実施例に記載されるように構築した。
　ｂ）　＃３２Ａ１重鎖のヒト化
　ｂ）－ｉ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１Hタイプ重鎖：
　配列表の配列番号２８に示される＃３２Ａ１重鎖のアミノ酸番号２３（イソロイシン）、２４（ロイシン）、２６（スレオニン）、３２（リジン）、４３（スレオニン）、６１（グルタミン酸）、８９（バリン）、９５（アスパラギン酸）、９６（セリン）、９７（グルタミン酸）、９８（セリン）、１００（バリン）、１０４（バリン）、１０５（セリン）、１１４（イソロイシン）、１１８（スレオニン）、１３４（バリン）、１３５（メチオニン）、１４０（ロイシン）をそれぞれロイシン、バリン、セリン、グルタミン、アラニン、グリシン、フェニルアラニン、アスパラギン、アラニン、リジン、アスパラギン、ロイシン、メチオニン、アスパラギン、バリン、アラニン、スレオニン、ロイシン、セリンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１重鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１Ｈタイプ重鎖」と命名した。
　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１Ｈタイプ重鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号５１に記載されている。配列番号５１のアミノ酸配列の１乃至１９番目のアミノ残基からなる配列、２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなる配列、１４１乃至４７０番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれシグナル配列、重鎖可変領域、重鎖定常領域に相当する。配列番号５１のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列は、配列表の配列番号５０に記載されている。配列番号５０のヌクレオチド配列の１乃至５７番目のヌクレオチドからなる配列、５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなる配列、４２１乃至１４１０番目のヌクレオチドからなる配列が、それぞれシグナル配列、重鎖可変領域配列、重鎖定常領域配列をコードしている。配列番号５０のヌクレオチド配列及び配列番号５１のアミノ酸配列は、図２７にも記載されている。 
　ｂ）－ｉｉ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２Hタイプ重鎖：
　配列表の配列番号２８に示される＃３２Ａ１重鎖のアミノ酸番号２３（イソロイシン）、２４（ロイシン）、２６（スレオニン）、３２（リジン）、４３（スレオニン）、９５（アスパラギン酸）、９６（セリン）、９７（グルタミン酸）、９８（セリン）、１００（バリン）、１０４（バリン）、１１４（イソロイシン）、１１８（スレオニン）、１３４（バリン）、１３５（メチオニン）、１４０（ロイシン）をそれぞれロイシン、バリン、セリン、グルタミン、アラニン、アスパラギン、アラニン、リジン、アスパラギン、ロイシン、メチオニン、バリン、アラニン、スレオニン、ロイシン、セリンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１重鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２Ｈタイプ重鎖」と命名した。
　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２Ｈタイプ重鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号５３に記載されている。配列番号５３のアミノ酸配列の１乃至１９番目のアミノ残基からなる配列、２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなる配列、１４１乃至４７０番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれシグナル配列、重鎖可変領域、重鎖定常領域に相当する。配列番号５３のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列は、配列表の配列番号５２に記載されている。配列番号５２のヌクレオチド配列の１乃至５７番目のヌクレオチドからなる配列、５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなる配列、４２１乃至１４１０番目のヌクレオチドからなる配列が、それぞれシグナル配列、重鎖可変領域配列、重鎖定常領域配列をコードしている。配列番号５２のヌクレオチド配列及び配列番号５３のアミノ酸配列は、図２８にも記載されている。
　ｂ）－ｉｉｉ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ３Hタイプ重鎖：
　配列表の配列番号２８に示される＃３２Ａ１重鎖のアミノ酸番号２４（ロイシン）、２６（スレオニン）、３２（リジン）、１０４（バリン）、１１４（イソロイシン）、１３４（バリン）、１３５（メチオニン）、１４０（ロイシン）をそれぞれバリン、セリン、グルタミン、メチオニン、バリン、スレオニン、ロイシン、セリンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１重鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ３Ｈタイプ重鎖」と命名した。
　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ３Ｈタイプ重鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号５５に記載されている。配列番号５５のアミノ酸配列の１乃至１９番目のアミノ残基からなる配列、２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなる配列、１４１乃至４７０番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれシグナル配列、重鎖可変領域、重鎖定常領域に相当する。配列番号５５のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列は、配列表の配列番号５４に記載されている。配列番号５４のヌクレオチド配列の１乃至５７番目のヌクレオチドからなる配列、５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなる配列、４２１乃至１４１０番目のヌクレオチドからなる配列が、それぞれシグナル配列、重鎖可変領域配列、重鎖定常領域配列をコードしている。配列番号５４のヌクレオチド配列及び配列番号５５のアミノ酸配列は、図２９にも記載されている。
　ｂ）－ｉｖ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ５Hタイプ重鎖：
　配列表の配列番号２８に示される＃３２Ａ１重鎖のアミノ酸番号２３（イソロイシン）、２４（ロイシン）、２６（スレオニン）、３２（リジン）、６１（グルタミン酸）、８９（バリン）、９５（アスパラギン酸）、９７（グルタミン酸）、９９（セリン）、１０４（バリン）、１０５（セリン）、１１４（イソロイシン）、１３４（バリン）、１３５（メチオニン）、１４０（ロイシン）をそれぞれバリン、バリン、セリン、グルタミン、グリシン、フェニルアラニン、アスパラギン、リジン、スレオニン、メチオニン、アスパラギン、バリン、スレオニン、ロイシン、セリンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１重鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ５Ｈタイプ重鎖」と命名した。
　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ５Ｈタイプ重鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号５７に記載されている。配列番号５７のアミノ酸配列の１乃至１９番目のアミノ残基からなる配列、２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなる配列、１４１乃至４７０番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれシグナル配列、重鎖可変領域、重鎖定常領域に相当する。配列番号５７のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列は、配列表の配列番号５６に記載されている。配列番号５６のヌクレオチド配列の１乃至５７番目のヌクレオチドからなる配列、５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなる配列、４２１乃至１４１０番目のヌクレオチドからなる配列が、それぞれシグナル配列、重鎖可変領域配列、重鎖定常領域配列をコードしている。配列番号５６のヌクレオチド配列及び配列番号５７のアミノ酸配列は、図３０にも記載されている。
　ｂ）－ｖ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ６Hタイプ重鎖：
　配列表の配列番号２８に示される＃３２Ａ１重鎖のアミノ酸番号２３（イソロイシン）、２４（ロイシン）、２６（スレオニン）、３２（リジン）、９５（アスパラギン酸）、９７（グルタミン酸）、９９（セリン）、１０４（バリン）、１１４（イソロイシン）、１３４（バリン）、１３５（メチオニン）、１４０（ロイシン）をそれぞれバリン、バリン、セリン、グルタミン、アスパラギン、リジン、スレオニン、メチオニン、バリン、スレオニン、ロイシン、セリンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１重鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ６Ｈタイプ重鎖」と命名した。
　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ６Ｈタイプ重鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号５９に記載されている。配列番号５９のアミノ酸配列の１乃至１９番目のアミノ残基からなる配列、２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなる配列、１４１乃至４７０番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれシグナル配列、重鎖可変領域、重鎖定常領域に相当する。配列番号５９のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列は、配列表の配列番号５８に記載されている。配列番号５８のヌクレオチド配列の１乃至５７番目のヌクレオチドからなる配列、５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなる配列、４２１乃至１４１０番目のヌクレオチドからなる配列が、それぞれシグナル配列、重鎖可変領域配列、重鎖定常領域配列をコードしている。配列番号５８のヌクレオチド配列及び配列番号５９のアミノ酸配列は、図３１にも記載されている。 
　ｂ）－ｖｉ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ７Hタイプ重鎖：
　配列表の配列番号２８に示される＃３２Ａ１重鎖のアミノ酸番号２３（イソロイシン）、２４（ロイシン）、２６（スレオニン）、３２（リジン）、４３（スレオニン）、８９（バリン）、９５（アスパラギン酸）、９６（セリン）、９７（グルタミン酸）、９８（セリン）、１００（バリン）、１０４（バリン）、１０５（セリン）、１１４（イソロイシン）、１１８（スレオニン）、１３４（バリン）、１３５（メチオニン）、１４０（ロイシン）をそれぞれロイシン、バリン、セリン、グルタミン、アラニン、フェニルアラニン、アスパラギン、アラニン、リジン、アスパラギン、ロイシン、メチオニン、アスパラギン、バリン、アラニン、スレオニン、ロイシン、セリンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１重鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ７Ｈタイプ重鎖」と命名した。
　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ７Ｈタイプ重鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号７２に記載されている。配列番号７２のアミノ酸配列の１乃至１２１番目のアミノ残基からなる配列、１２２乃至４５１番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれ重鎖可変領域、重鎖定常領域に相当する。配列番号７２のアミノ酸配列は、図３８にも記載されている。
　ｂ）－ｖｉｉ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ８Hタイプ重鎖：
配列表の配列番号２８に示される＃３２Ａ１重鎖のアミノ酸番号２３（イソロイシン）、２４（ロイシン）、２６（スレオニン）、３２（リジン）、４３（スレオニン）、６１（グルタミン酸）、９５（アスパラギン酸）、９６（セリン）、９７（グルタミン酸）、９８（セリン）、１００（バリン）、１０４（バリン）、１０５（セリン）、１１４（イソロイシン）、１１８（スレオニン）、１３４（バリン）、１３５（メチオニン）、１４０（ロイシン）をそれぞれロイシン、バリン、セリン、グルタミン、アラニン、グリシン、アスパラギン、アラニン、リジン、アスパラギン、ロイシン、メチオニン、アスパラギン、バリン、アラニン、スレオニン、ロイシン、セリンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１重鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ８Ｈタイプ重鎖」と命名した。
　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ８Ｈタイプ重鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号７３に記載されている。配列番号７３のアミノ酸配列の１乃至１２１番目のアミノ残基からなる配列、１２２乃至４５１番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれ重鎖可変領域、重鎖定常領域に相当する。配列番号７３のアミノ酸配列は、図３８にも記載されている。 
　ｂ－ｖｉｉｉ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ９Hタイプ重鎖：
　配列表の配列番号２８に示される＃３２Ａ１重鎖のアミノ酸番号２３（イソロイシン）、２４（ロイシン）、２６（スレオニン）、３２（リジン）、４３（スレオニン）、６１（グルタミン酸）、８９（バリン）、９５（アスパラギン酸）、９６（セリン）、９７（グルタミン酸）、９８（セリン）、１００（バリン）、１０４（バリン）、１１４（イソロイシン）、１１８（スレオニン）、１３４（バリン）、１３５（メチオニン）、１４０（ロイシン）をそれぞれロイシン、バリン、セリン、グルタミン、アラニン、グリシン、フェニルアラニン、アスパラギン、アラニン、リジン、アスパラギン、ロイシン、メチオニン、バリン、アラニン、スレオニン、ロイシン、セリンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１重鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ９Ｈタイプ重鎖」と命名した。
　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ９Ｈタイプ重鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号７４に記載されている。配列番号７４のアミノ酸配列の１乃至１２１番目のアミノ残基からなる配列、１２２乃至４５１番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれ重鎖可変領域、重鎖定常領域に相当する。配列番号７４のアミノ酸配列は、図３８にも記載されている。
　ｂ）－ｉｘ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１０Hタイプ重鎖：
　配列表の配列番号２８に示される＃３２Ａ１重鎖のアミノ酸番号２３（イソロイシン）、２４（ロイシン）、２６（スレオニン）、３２（リジン）、４３（スレオニン）、９５（アスパラギン酸）、９６（セリン）、９７（グルタミン酸）、９８（セリン）、１００（バリン）、１０４（バリン）、１０５（セリン）、１１４（イソロイシン）、１１８（スレオニン）、１３４（バリン）、１３５（メチオニン）、１４０（ロイシン）をそれぞれロイシン、バリン、セリン、グルタミン、アラニン、アスパラギン、アラニン、リジン、アスパラギン、ロイシン、メチオニン、アスパラギン、バリン、アラニン、スレオニン、ロイシン、セリンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１重鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１０Ｈタイプ重鎖」と命名した。
　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１０Ｈタイプ重鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号７５に記載されている。配列番号７５のアミノ酸配列の１乃至１２１番目のアミノ残基からなる配列、１２２乃至４５１番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれ重鎖可変領域、重鎖定常領域に相当する。配列番号７５のアミノ酸配列は、図３９にも記載されている。
　ｂ）－ｘ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１１Hタイプ重鎖：
　配列表の配列番号２８に示される＃３２Ａ１重鎖のアミノ酸番号２３（イソロイシン）、２４（ロイシン）、２６（スレオニン）、３２（リジン）、４３（スレオニン）、８９（バリン）、９５（アスパラギン酸）、９６（セリン）、９７（グルタミン酸）、９８（セリン）、１００（バリン）、１０４（バリン）、１１４（イソロイシン）、１１８（スレオニン）、１３４（バリン）、１３５（メチオニン）、１４０（ロイシン）をそれぞれロイシン、バリン、セリン、グルタミン、アラニン、フェニルアラニン、アスパラギン、アラニン、リジン、アスパラギン、ロイシン、メチオニン、バリン、アラニン、スレオニン、ロイシン、セリンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１重鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１１Ｈタイプ重鎖」と命名した。
　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１１Ｈタイプ重鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号７６に記載されている。配列番号７６のアミノ酸配列の１乃至１２１番目のアミノ残基からなる配列、１２２乃至４５１番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれ重鎖可変領域、重鎖定常領域に相当する。配列番号７６のアミノ酸配列は、図３９にも記載されている。 
　ｂ）－ｘｉ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１２Hタイプ重鎖：
配列表の配列番号２８に示される＃３２Ａ１重鎖のアミノ酸番号２３（イソロイシン）、２４（ロイシン）、２６（スレオニン）、３２（リジン）、４３（スレオニン）、６１（グルタミン酸）、９５（アスパラギン酸）、９６（セリン）、９７（グルタミン酸）、９８（セリン）、１００（バリン）、１０４（バリン）、１１４（イソロイシン）、１１８（スレオニン）、１３４（バリン）、１３５（メチオニン）、１４０（ロイシン）をそれぞれロイシン、バリン、セリン、グルタミン、アラニン、グリシン、アスパラギン、アラニン、リジン、アスパラギン、ロイシン、メチオニン、バリン、アラニン、スレオニン、ロイシン、セリンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１重鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１２Ｈタイプ重鎖」と命名した。
　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１２Ｈタイプ重鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号７７に記載されている。配列番号７７のアミノ酸配列の１乃至１２１番目のアミノ残基からなる配列、１２２乃至４５１番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれ重鎖可変領域、重鎖定常領域に相当する。配列番号７７のアミノ酸配列は、図３９にも記載されている。
　ｃ）　＃３２Ａ１軽鎖のヒト化
　ｃ）－ｉ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１Ｌタイプ軽鎖：
配列表の配列番号３０に示される＃３２Ａ１軽鎖のアミノ酸番号２４（ロイシン）、２９（アラニン）、２９－３０の間（欠損残基）、３６（グルタミン）、４１（セリン）、６６（グルタミン）、６８（アルギニン）、８１（イソロイシン）、９９（アスパラギン）、１００（プロリン）、１０１（バリン）、１０４（アスパラギン酸）、１０６（イソロイシン）、１０８（スレオニン）、１１０（フェニルアラニン）、１２２（アラニン）、１２７（ロイシン）、１２９（ロイシン）、１３０（アルギニン）、１３２（アラニン）をそれぞれメチオニン、アスパラギン酸、セリン、グルタミン酸、アスパラギン、プロリン、リジン、バリン、セリン、セリン、ロイシン、グルタミン酸、バリン、バリン、チロシン、グリシン、バリン、イソロイシン、リジン、スレオニンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１軽鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１Ｌタイプ軽鎖」と命名した。
　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１Ｌタイプ軽鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号６１に記載されている。配列番号６１のアミノ酸配列の１乃至２０番目のアミノ残基からなる配列、２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなる配列、１３４乃至２３８番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれシグナル配列、軽鎖可変領域、軽鎖定常領域に相当する。配列番号６１のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列は、配列表の配列番号６０に記載されている。配列番号６０のヌクレオチド配列の１乃至６０番目のヌクレオチドからなる配列、６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなる配列、４００乃至７１４番目のヌクレオチドからなる配列が、それぞれシグナル配列、軽鎖可変領域配列、軽鎖定常領域配列をコードしている。配列番号６０のヌクレオチド配列及び配列番号６１のアミノ酸配列は、図３２にも記載されている。
　ｃ）－ｉｉ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２Ｌタイプ軽鎖：
　配列表の配列番号３０に示される＃３２Ａ１軽鎖のアミノ酸番号２４（ロイシン）、２９（アラニン）、２９－３０の間（欠損残基）、３６（グルタミン）、６６（グルタミン）、８１（イソロイシン）、９９（アスパラギン）、１００（プロリン）、１０１（バリン）、１０４（アスパラギン酸）、１０６（イソロイシン）、１０８（スレオニン）、１２７（ロイシン）、１２９（ロイシン）、１３０（アルギニン）、１３２（アラニン）をそれぞれメチオニン、アスパラギン酸、セリン、グルタミン酸、プロリン、バリン、セリン、セリン、ロイシン、グルタミン酸、バリン、バリン、バリン、イソロイシン、リジン、スレオニンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１軽鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２Ｌタイプ軽鎖」と命名した。
　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２Ｌタイプ軽鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号６３に記載されている。配列番号６３のアミノ酸配列の１乃至２０番目のアミノ残基からなる配列、２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなる配列、１３４乃至２３８番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれシグナル配列、軽鎖可変領域、軽鎖定常領域に相当する。配列番号６３のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列は、配列表の配列番号６２に記載されている。配列番号６２のヌクレオチド配列の１乃至６０番目のヌクレオチドからなる配列、６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなる配列、４００乃至７１４番目のヌクレオチドからなる配列が、それぞれシグナル配列、軽鎖可変領域配列、軽鎖定常領域配列をコードしている。配列番号６２のヌクレオチド配列及び配列番号６３のアミノ酸配列は、図３３にも記載されている。
　ｃ）－ｉｉｉ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ３Ｌタイプ軽鎖：
　配列表の配列番号３０に示される＃３２Ａ１軽鎖のアミノ酸番号２９（アラニン）、２９－３０の間（欠損残基）、３６（グルタミン）、９９（アスパラギン）、１００（プロリン）、１０１（バリン）、１０４（アスパラギン酸）、１０６（イソロイシン）、１２７（ロイシン）、１２９（ロイシン）、１３０（アルギニン）、１３２（アラニン）をそれぞれアスパラギン酸、セリン、グルタミン酸、セリン、セリン、ロイシン、グルタミン酸、バリン、バリン、イソロイシン、リジン、スレオニンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１軽鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ３Ｌタイプ軽鎖」と命名した。
　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ３Ｌタイプ軽鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号６５に記載されている。配列番号６５のアミノ酸配列の１乃至２０番目のアミノ残基からなる配列、２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなる配列、１３４乃至２３８番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれシグナル配列、軽鎖可変領域、軽鎖定常領域に相当する。配列番号６５のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列は、配列表の配列番号６４に記載されている。配列番号６４のヌクレオチド配列の１乃至６０番目のヌクレオチドからなる配列、６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなる配列、４００乃至７１４番目のヌクレオチドからなる配列が、それぞれシグナル配列、軽鎖可変領域配列、軽鎖定常領域配列をコードしている。配列番号６４のヌクレオチド配列及び配列番号６５のアミノ酸配列は、図３４にも記載されている。
　ｃ）－ｉｖ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ４Ｌタイプ軽鎖：
　配列表の配列番号３０に示される＃３２Ａ１軽鎖のアミノ酸番号３６（グルタミン）、９９（アスパラギン）、１００（プロリン）、１０１（バリン）、１０４（アスパラギン酸）、１０６（イソロイシン）、１２９（ロイシン）、１３０（アルギニン）、１３２（アラニン）をそれぞれグルタミン酸、セリン、セリン、ロイシン、グルタミン酸、バリン、イソロイシン、リジン、スレオニンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１軽鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ４Ｌタイプ軽鎖」と命名した。
　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ４Ｌタイプ軽鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号６７に記載されている。配列番号６７のアミノ酸配列の１乃至２０番目のアミノ残基からなる配列、２１乃至１３２番目のアミノ酸残基からなる配列、１３３乃至２３７番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれシグナル配列、軽鎖可変領域、軽鎖定常領域に相当する。配列番号６７のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列は、配列表の配列番号６６に記載されている。配列番号６６のヌクレオチド配列の１乃至６０番目のヌクレオチドからなる配列、６１乃至３９６番目のヌクレオチドからなる配列、４００乃至７１１番目のヌクレオチドからなる配列が、それぞれシグナル配列、軽鎖可変領域配列、軽鎖定常領域配列をコードしている。配列番号６６のヌクレオチド配列及び配列番号６７のアミノ酸配列は、図３５にも記載されている。
　ｃ）－ｖ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ５Ｌタイプ軽鎖：
　配列表の配列番号３０に示される＃３２Ａ１軽鎖のアミノ酸番号２９（アラニン）、２９－３０の間（欠損残基）、３６（グルタミン）、４１（セリン）、６６（グルタミン）、６８（アルギニン）、９９（アスパラギン）、１００（プロリン）、１０１（バリン）、１０４（アスパラギン酸）、１０６（イソロイシン）、１１０（フェニルアラニン）、１２２（アラニン）、１２３（グリシン）、１２７（ロイシン）、１２９（ロイシン）、１３０（アルギニン）、１３２（アラニン）をそれぞれアスパラギン酸、セリン、グルタミン酸、アスパラギン、プロリン、リジン、セリン、セリン、ロイシン、グルタミン酸、バリン、チロシン、グリシン、グルタミン、バリン、イソロイシン、リジン、スレオニンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１軽鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ５Ｌタイプ軽鎖」と命名した。
　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ５Ｌタイプ軽鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号６９に記載されている。配列番号６９のアミノ酸配列の１乃至２０番目のアミノ残基からなる配列、２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなる配列、１３４乃至２３８番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれシグナル配列、軽鎖可変領域、軽鎖定常領域に相当する。配列番号６９のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列は、配列表の配列番号６８に記載されている。配列番号６８のヌクレオチド配列の１乃至６０番目のヌクレオチドからなる配列、６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなる配列、４００乃至７１４番目のヌクレオチドからなる配列が、それぞれシグナル配列、軽鎖可変領域配列、軽鎖定常領域配列をコードしている。配列番号６８のヌクレオチド配列及び配列番号６９のアミノ酸配列は、図３６にも記載されている。
　ｃ）－ｖｉ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ６Ｌタイプ軽鎖：
　配列表の配列番号３０に示される＃３２Ａ１軽鎖のアミノ酸番号２９（アラニン）、２９－３０の間（欠損残基）、３６（グルタミン）、６６（グルタミン）、９９（アスパラギン）、１００（プロリン）、１０１（バリン）、１０４（アスパラギン酸）、１０６（イソロイシン）、１２７（ロイシン）、１２９（ロイシン）、１３０（アルギニン）、１３２（アラニン）をそれぞれアスパラギン酸、セリン、グルタミン酸、プロリン、セリン、セリン、ロイシン、グルタミン酸、バリン、バリン、イソロイシン、リジン、スレオニンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１軽鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ６Ｌタイプ軽鎖」と命名した。
　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ６Ｌタイプ軽鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号７１に記載されている。配列番号７１のアミノ酸配列の１乃至２０番目のアミノ残基からなる配列、２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなる配列、１３４乃至２３８番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれシグナル配列、軽鎖可変領域、軽鎖定常領域に相当する。配列番号７１のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列は、配列表の配列番号７０に記載されている。配列番号７０のヌクレオチド配列の１乃至６０番目のヌクレオチドからなる配列、６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなる配列、４００乃至７１４番目のヌクレオチドからなる配列が、それぞれシグナル配列、軽鎖可変領域配列、軽鎖定常領域配列をコードしている。配列番号７０のヌクレオチド配列及び配列番号７１のアミノ酸配列は、図３７にも記載されている。
　ｃ）－ｖｉｉ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ７Ｌタイプ軽鎖：
　配列表の配列番号３０に示される＃３２Ａ１軽鎖のアミノ酸番号２４（ロイシン）、２９（アラニン）、２９－３０の間（欠損残基）、３６（グルタミン）、６６（グルタミン）、６８（アルギニン）、８１（イソロイシン）、９９（アスパラギン）、１００（プロリン）、１０１（バリン）、１０４（アスパラギン酸）、１０６（イソロイシン）、１０８（スレオニン）、１１０（フェニルアラニン）、１２２（アラニン）、１２７（ロイシン）、１２９（ロイシン）、１３０（アルギニン）、１３２（アラニン）をそれぞれメチオニン、アスパラギン酸、セリン、グルタミン酸、プロリン、リジン、バリン、セリン、セリン、ロイシン、グルタミン酸、バリン、バリン、チロシン、グリシン、バリン、イソロイシン、リジン、スレオニンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１軽鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ７Ｌタイプ軽鎖」と命名した。
　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ７Ｌタイプ軽鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号７８に記載されている。配列番号７８のアミノ酸配列の１乃至１１３番目のアミノ残基からなる配列、１１４乃至２１８番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれ軽鎖可変領域、軽鎖定常領域に相当する。配列番号７８のアミノ酸配列は、図４０にも記載されている。
　ｃ）－ｖｉｉｉ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ８Ｌタイプ軽鎖：
　配列表の配列番号３０に示される＃３２Ａ１軽鎖のアミノ酸番号２４（ロイシン）、２９（アラニン）、２９－３０の間（欠損残基）、３６（グルタミン）、４１（セリン）、６６（グルタミン）、８１（イソロイシン）、９９（アスパラギン）、１００（プロリン）、１０１（バリン）、１０４（アスパラギン酸）、１０６（イソロイシン）、１０８（スレオニン）、１１０（フェニルアラニン）、１２２（アラニン）、１２７（ロイシン）、１２９（ロイシン）、１３０（アルギニン）、１３２（アラニン）をそれぞれメチオニン、アスパラギン酸、セリン、グルタミン酸、アスパラギン、プロリン、バリン、セリン、セリン、ロイシン、グルタミン酸、バリン、バリン、チロシン、グリシン、バリン、イソロイシン、リジン、スレオニンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１軽鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ８Ｌタイプ軽鎖」と命名した。
　また、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ８Ｌタイプ軽鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号７９に記載されている。配列番号７９のアミノ酸配列の１乃至１１３番目のアミノ残基からなる配列、１１４乃至２１８番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれ軽鎖可変領域、軽鎖定常領域に相当する。配列番号７９のアミノ酸配列は、図４０にも記載されている。
　ｃ）－ｉｘ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ９Ｌタイプ軽鎖：
　配列表の配列番号３０に示される＃３２Ａ１軽鎖のアミノ酸番号２４（ロイシン）、２９（アラニン）、２９－３０の間（欠損残基）、３６（グルタミン）、４１（セリン）、６６（グルタミン）、６８（アルギニン）、８１（イソロイシン）、９９（アスパラギン）、１００（プロリン）、１０１（バリン）、１０４（アスパラギン酸）、１０６（イソロイシン）、１０８（スレオニン）、１２２（アラニン）、１２７（ロイシン）、１２９（ロイシン）、１３０（アルギニン）、１３２（アラニン）をそれぞれメチオニン、アスパラギン酸、セリン、グルタミン酸、アスパラギン、プロリン、リジン、バリン、セリン、セリン、ロイシン、グルタミン酸、バリン、バリン、グリシン、バリン、イソロイシン、リジン、スレオニンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１軽鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ９Ｌタイプ軽鎖」と命名した。
　また、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ９Ｌタイプ軽鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号８０に記載されている。配列番号８０のアミノ酸配列の１乃至１１３番目のアミノ残基からなる配列、１１４乃至２１８番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれ軽鎖可変領域、軽鎖定常領域に相当する。配列番号８０のアミノ酸配列は、図４０にも記載されている。 
　ｃ）－ｘ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１０Ｌタイプ軽鎖：
　配列表の配列番号３０に示される＃３２Ａ１軽鎖のアミノ酸番号２４（ロイシン）、２９（アラニン）、２９－３０の間（欠損残基）、３６（グルタミン）、４１（セリン）、６６（グルタミン）、６８（アルギニン）、８１（イソロイシン）、９９（アスパラギン）、１００（プロリン）、１０１（バリン）、１０４（アスパラギン酸）、１０６（イソロイシン）、１０８（スレオニン）、１１０（フェニルアラニン）、１２７（ロイシン）、１２９（ロイシン）、１３０（アルギニン）、１３２（アラニン）をそれぞれメチオニン、アスパラギン酸、セリン、グルタミン酸、アスパラギン、プロリン、リジン、バリン、セリン、セリン、ロイシン、グルタミン酸、バリン、バリン、チロシン、バリン、イソロイシン、リジン、スレオニンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１軽鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１０Ｌタイプ軽鎖」と命名した。
　また、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１０Ｌタイプ軽鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号８１に記載されている。配列番号８１のアミノ酸配列の１乃至１１３番目のアミノ残基からなる配列、１１４乃至２１８番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれ軽鎖可変領域、軽鎖定常領域に相当する。配列番号８１のアミノ酸配列は、図４０にも記載されている。
　ｃ）－ｘｉ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１１Ｌタイプ軽鎖：
　配列表の配列番号３０に示される＃３２Ａ１軽鎖のアミノ酸番号２４（ロイシン）、２９（アラニン）、２９－３０の間（欠損残基）、３６（グルタミン）、６６（グルタミン）、８１（イソロイシン）、９９（アスパラギン）、１００（プロリン）、１０１（バリン）、１０４（アスパラギン酸）、１０６（イソロイシン）、１０８（スレオニン）、１１０（フェニルアラニン）、１２２（アラニン）、１２７（ロイシン）、１２９（ロイシン）、１３０（アルギニン）、１３２（アラニン）をそれぞれメチオニン、アスパラギン酸、セリン、グルタミン酸、プロリン、バリン、セリン、セリン、ロイシン、グルタミン酸、バリン、バリン、チロシン、グリシン、バリン、イソロイシン、リジン、スレオニンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１軽鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１１Ｌタイプ軽鎖」と命名した。
　また、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１１Ｌタイプ軽鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号８２に記載されている。配列番号８２のアミノ酸配列の１乃至１１３番目のアミノ残基からなる配列、１１４乃至２１８番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれ軽鎖可変領域、軽鎖定常領域に相当する。配列番号８２のアミノ酸配列は、図４０にも記載されている。
　ｃ）－ｘｉｉ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１２Ｌタイプ軽鎖：
　配列表の配列番号３０に示される＃３２Ａ１軽鎖のアミノ酸番号２４（ロイシン）、２９（アラニン）、２９－３０の間（欠損残基）、３６（グルタミン）、６６（グルタミン）、６８（アルギニン）、８１（イソロイシン）、９９（アスパラギン）、１００（プロリン）、１０１（バリン）、１０４（アスパラギン酸）、１０６（イソロイシン）、１０８（スレオニン）、１２２（アラニン）、１２７（ロイシン）、１２９（ロイシン）、１３０（アルギニン）、１３２（アラニン）をそれぞれメチオニン、アスパラギン酸、セリン、グルタミン酸、プロリン、リジン、バリン、セリン、セリン、ロイシン、グルタミン酸、バリン、バリン、グリシン、バリン、イソロイシン、リジン、スレオニンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１軽鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１２Ｌタイプ軽鎖」と命名した。
　また、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１２Ｌタイプ軽鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号８３に記載されている。配列番号８３のアミノ酸配列の１乃至１１３番目のアミノ残基からなる配列、１１４乃至２１８番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれ軽鎖可変領域、軽鎖定常領域に相当する。配列番号８３のアミノ酸配列は、図４１にも記載されている。
　ｃ）－ｘｉｉｉ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１３Ｌタイプ軽鎖：
　配列表の配列番号３０に示される＃３２Ａ１軽鎖のアミノ酸番号２４（ロイシン）、２９（アラニン）、２９－３０の間（欠損残基）、３６（グルタミン）、６６（グルタミン）、６８（アルギニン）、８１（イソロイシン）、９９（アスパラギン）、１００（プロリン）、１０１（バリン）、１０４（アスパラギン酸）、１０６（イソロイシン）、１０８（スレオニン）、１１０（フェニルアラニン）、１２７（ロイシン）、１２９（ロイシン）、１３０（アルギニン）、１３２（アラニン）をそれぞれメチオニン、アスパラギン酸、セリン、グルタミン酸、プロリン、リジン、バリン、セリン、セリン、ロイシン、グルタミン酸、バリン、バリン、チロシン、バリン、イソロイシン、リジン、スレオニンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１軽鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１３Ｌタイプ軽鎖」と命名した。
　また、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１３Ｌタイプ軽鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号８４に記載されている。配列番号８４のアミノ酸配列の１乃至１１３番目のアミノ残基からなる配列、１１４乃至２１８番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれ軽鎖可変領域、軽鎖定常領域に相当する。配列番号８４のアミノ酸配列は、図４１にも記載されている。
　ｃ）－ｘｉｖ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１４Ｌタイプ軽鎖：
　配列表の配列番号３０に示される＃３２Ａ１軽鎖のアミノ酸番号２４（ロイシン）、２９（アラニン）、２９－３０の間（欠損残基）、３６（グルタミン）、４１（セリン）、６６（グルタミン）、８１（イソロイシン）、９９（アスパラギン）、１００（プロリン）、１０１（バリン）、１０４（アスパラギン酸）、１０６（イソロイシン）、１０８（スレオニン）、１２２（アラニン）、１２７（ロイシン）、１２９（ロイシン）、１３０（アルギニン）、１３２（アラニン）をそれぞれメチオニン、アスパラギン酸、セリン、グルタミン酸、アスパラギン、プロリン、バリン、セリン、セリン、ロイシン、グルタミン酸、バリン、バリン、グリシン、バリン、イソロイシン、リジン、スレオニンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１軽鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１４Ｌタイプ軽鎖」と命名した。
　また、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１４Ｌタイプ軽鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号８５に記載されている。配列番号８５のアミノ酸配列の１乃至１１３番目のアミノ残基からなる配列、１１４乃至２１８番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれ軽鎖可変領域、軽鎖定常領域に相当する。配列番号８５のアミノ酸配列は、図４１にも記載されている。
　ｃ）－ｘｖ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１５Ｌタイプ軽鎖：
　配列表の配列番号３０に示される＃３２Ａ１軽鎖のアミノ酸番号２４（ロイシン）、２９（アラニン）、２９－３０の間（欠損残基）、３６（グルタミン）、４１（セリン）、６６（グルタミン）、８１（イソロイシン）、９９（アスパラギン）、１００（プロリン）、１０１（バリン）、１０４（アスパラギン酸）、１０６（イソロイシン）、１０８（スレオニン）、１１０（フェニルアラニン）、１２７（ロイシン）、１２９（ロイシン）、１３０（アルギニン）、１３２（アラニン）をそれぞれメチオニン、アスパラギン酸、セリン、グルタミン酸、アスパラギン、プロリン、バリン、セリン、セリン、ロイシン、グルタミン酸、バリン、バリン、チロシン、バリン、イソロイシン、リジン、スレオニンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１軽鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１５Ｌタイプ軽鎖」と命名した。
　また、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１５Ｌタイプ軽鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号８６に記載されている。配列番号８６のアミノ酸配列の１乃至１１３番目のアミノ残基からなる配列、１１４乃至２１８番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれ軽鎖可変領域、軽鎖定常領域に相当する。配列番号８６のアミノ酸配列は、図４１にも記載されている。
　ｃ）－ｘｖｉ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１６Ｌタイプ軽鎖：
　配列表の配列番号３０に示される＃３２Ａ１軽鎖のアミノ酸番号２４（ロイシン）、２９（アラニン）、２９－３０の間（欠損残基）、３６（グルタミン）、４１（セリン）、６６（グルタミン）、６８（アルギニン）、８１（イソロイシン）、９９（アスパラギン）、１００（プロリン）、１０１（バリン）、１０４（アスパラギン酸）、１０６（イソロイシン）、１０８（スレオニン）、１２７（ロイシン）、１２９（ロイシン）、１３０（アルギニン）、１３２（アラニン）をそれぞれメチオニン、アスパラギン酸、セリン、グルタミン酸、アスパラギン、プロリン、リジン、バリン、セリン、セリン、ロイシン、グルタミン酸、バリン、バリン、バリン、イソロイシン、リジン、スレオニンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１軽鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１６Ｌタイプ軽鎖」と命名した。
　また、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１６Ｌタイプ軽鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号８７に記載されている。配列番号８７のアミノ酸配列の１乃至１１３番目のアミノ残基からなる配列、１１４乃至２１８番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれ軽鎖可変領域、軽鎖定常領域に相当する。配列番号８７のアミノ酸配列は、図４１にも記載されている。
　ｃ）－ｘｖｉｉ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１７Ｌタイプ軽鎖：
　配列表の配列番号３０に示される＃３２Ａ１軽鎖のアミノ酸番号２４（ロイシン）、２９（アラニン）、２９－３０の間（欠損残基）、３６（グルタミン）、６６（グルタミン）、８１（イソロイシン）、９９（アスパラギン）、１００（プロリン）、１０１（バリン）、１０４（アスパラギン酸）、１０６（イソロイシン）、１０８（スレオニン）、１２２（アラニン）、１２７（ロイシン）、１２９（ロイシン）、１３０（アルギニン）、１３２（アラニン）をそれぞれメチオニン、アスパラギン酸、セリン、グルタミン酸、プロリン、バリン、セリン、セリン、ロイシン、グルタミン酸、バリン、バリン、グリシン、バリン、イソロイシン、リジン、スレオニンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１軽鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１７Ｌタイプ軽鎖」と命名した。
　また、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１７Ｌタイプ軽鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号８８に記載されている。配列番号８８のアミノ酸配列の１乃至１１３番目のアミノ残基からなる配列、１１４乃至２１８番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれ軽鎖可変領域、軽鎖定常領域に相当する。配列番号８８のアミノ酸配列は、図４２にも記載されている。
　ｃ）－ｘｖｉｉｉ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１８Ｌタイプ軽鎖：
　配列表の配列番号３０に示される＃３２Ａ１軽鎖のアミノ酸番号２４（ロイシン）、２９（アラニン）、２９－３０の間（欠損残基）、３６（グルタミン）、６６（グルタミン）、８１（イソロイシン）、９９（アスパラギン）、１００（プロリン）、１０１（バリン）、１０４（アスパラギン酸）、１０６（イソロイシン）、１０８（スレオニン）、１１０（フェニルアラニン）、１２７（ロイシン）、１２９（ロイシン）、１３０（アルギニン）、１３２（アラニン）をそれぞれメチオニン、アスパラギン酸、セリン、グルタミン酸、プロリン、バリン、セリン、セリン、ロイシン、グルタミン酸、バリン、バリン、チロシン、バリン、イソロイシン、リジン、スレオニンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１軽鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１８Ｌタイプ軽鎖」と命名した。
　また、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１８Ｌタイプ軽鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号８９に記載されている。配列番号８９のアミノ酸配列の１乃至１１３番目のアミノ残基からなる配列、１１４乃至２１８番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれ軽鎖可変領域、軽鎖定常領域に相当する。配列番号８９のアミノ酸配列は、図４２にも記載されている。
　ｃ）－ｘｉｘ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１９Ｌタイプ軽鎖：
　配列表の配列番号３０に示される＃３２Ａ１軽鎖のアミノ酸番号２４（ロイシン）、２９（アラニン）、２９－３０の間（欠損残基）、３６（グルタミン）、６６（グルタミン）、６８（アルギニン）、８１（イソロイシン）、９９（アスパラギン）、１００（プロリン）、１０１（バリン）、１０４（アスパラギン酸）、１０６（イソロイシン）、１０８（スレオニン）、１２７（ロイシン）、１２９（ロイシン）、１３０（アルギニン）、１３２（アラニン）をそれぞれメチオニン、アスパラギン酸、セリン、グルタミン酸、プロリン、リジン、バリン、セリン、セリン、ロイシン、グルタミン酸、バリン、バリン、バリン、イソロイシン、リジン、スレオニンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１軽鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１９Ｌタイプ軽鎖」と命名した。
　また、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１９Ｌタイプ軽鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号９０に記載されている。配列番号９０のアミノ酸配列の１乃至１１３番目のアミノ残基からなる配列、１１４乃至２１８番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれ軽鎖可変領域、軽鎖定常領域に相当する。配列番号９０のアミノ酸配列は、図４２にも記載されている。
　ｃ）－ｘｘ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２０Ｌタイプ軽鎖：
　配列表の配列番号３０に示される＃３２Ａ１軽鎖のアミノ酸番号２４（ロイシン）、２９（アラニン）、２９－３０の間（欠損残基）、３６（グルタミン）、４１（セリン）、６６（グルタミン）、８１（イソロイシン）、９９（アスパラギン）、１００（プロリン）、１０１（バリン）、１０４（アスパラギン酸）、１０６（イソロイシン）、１０８（スレオニン）、１２７（ロイシン）、１２９（ロイシン）、１３０（アルギニン）、１３２（アラニン）をそれぞれメチオニン、アスパラギン酸、セリン、グルタミン酸、アスパラギン、プロリン、バリン、セリン、セリン、ロイシン、グルタミン酸、バリン、バリン、バリン、イソロイシン、リジン、スレオニンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１軽鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２０Ｌタイプ軽鎖」と命名した。
　また、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２０Ｌタイプ軽鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号９１に記載されている。配列番号９１のアミノ酸配列の１乃至１１３番目のアミノ残基からなる配列、１１４乃至２１８番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれ軽鎖可変領域、軽鎖定常領域に相当する。配列番号９１のアミノ酸配列は、図４２にも記載されている。
　ｃ）－ｘｘｉ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２１Ｌタイプ軽鎖：
　配列表の配列番号３０に示される＃３２Ａ１軽鎖のアミノ酸番号２１（アスパラギン酸）、２４（ロイシン）、２９－３０の間（欠損残基）、３１（アラニン）、３２（バリン）、３４（ロイシン）、３６（グルタミン）、４０（イソロイシン）、６６（グルタミン）、９９（アスパラギン）、１００（プロリン）、１０１（バリン）、１０２（グルタミン）、１０３（アラニン）、１０４（アスパラギン酸）、１０６（イソロイシン）、１０８（スレオニン）、１１０（フェニルアラニン）、１２２（アラニン）、１２３（グリシン）、１２７（ロイシン）、１２９（ロイシン）、１３０（アルギニン）、１３２（アラニン）をそれぞれグルタミン酸、メチオニン、スレオニン、セリン、ロイシン、プロリン、グルタミン酸、ロイシン、アラニン、セリン、セリン、ロイシン、グルタミン酸、プロリン、グルタミン酸、フェニルアラニン、ロイシン、チロシン、グリシン、グルタミン、バリン、イソロイシン、リジン、スレオニンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１軽鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２１Ｌタイプ軽鎖」と命名した。
　また、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２１Ｌタイプ軽鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号９２に記載されている。配列番号９２のアミノ酸配列の１乃至１１３番目のアミノ残基からなる配列、１１４乃至２１８番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれ軽鎖可変領域、軽鎖定常領域に相当する。配列番号９２のアミノ酸配列は、図４２にも記載されている。
　ｃ）－ｘｘｉｉ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２２Ｌタイプ軽鎖：
　配列表の配列番号３０に示される＃３２Ａ１軽鎖のアミノ酸番号２１（アスパラギン酸）、２４（ロイシン）、２９－３０の間（欠損残基）、３１（アラニン）、３２（バリン）、３４（ロイシン）、３６（グルタミン）、４０（イソロイシン）、６６（グルタミン）、９９（アスパラギン）、１００（プロリン）、１０１（バリン）、１０２（グルタミン）、１０３（アラニン）、１０４（アスパラギン酸）、１０６（イソロイシン）、１０８（スレオニン）、１２３（グリシン）、１２７（ロイシン）、１２９（ロイシン）、１３０（アルギニン）、１３２（アラニン）をそれぞれグルタミン酸、メチオニン、スレオニン、セリン、ロイシン、プロリン、グルタミン酸、ロイシン、アラニン、セリン、セリン、ロイシン、グルタミン酸、プロリン、グルタミン酸、フェニルアラニン、ロイシン、グルタミン、バリン、イソロイシン、リジン、スレオニンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１軽鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２２Ｌタイプ軽鎖」と命名した。
　また、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２２Ｌタイプ軽鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号９３に記載されている。配列番号９３のアミノ酸配列の１乃至１１３番目のアミノ残基からなる配列、１１４乃至２１８番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれ軽鎖可変領域、軽鎖定常領域に相当する。配列番号９３のアミノ酸配列は、図４３にも記載されている。
　ｃ）－ｘｘｉｉｉ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２３Ｌタイプ軽鎖：
　配列表の配列番号３０に示される＃３２Ａ１軽鎖のアミノ酸番号２４（ロイシン）、２９－３０の間（欠損残基）、３１（アラニン）、３２（バリン）、３４（ロイシン）、３６（グルタミン）、４０（イソロイシン）、６６（グルタミン）、９９（アスパラギン）、１００（プロリン）、１０１（バリン）、１０２（グルタミン）、１０３（アラニン）、１０４（アスパラギン酸）、１０６（イソロイシン）、１０８（スレオニン）、１２７（ロイシン）、１２９（ロイシン）、１３０（アルギニン）、１３２（アラニン）をそれぞれメチオニン、スレオニン、セリン、ロイシン、プロリン、グルタミン酸、ロイシン、アラニン、セリン、セリン、ロイシン、グルタミン酸、プロリン、グルタミン酸、フェニルアラニン、ロイシン、バリン、イソロイシン、リジン、スレオニンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１軽鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２３Ｌタイプ軽鎖」と命名した。
　また、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２３Ｌタイプ軽鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号９４に記載されている。配列番号９４のアミノ酸配列の１乃至１１３番目のアミノ残基からなる配列、１１４乃至２１８番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれ軽鎖可変領域、軽鎖定常領域に相当する。配列番号９４のアミノ酸配列は、図４３にも記載されている。
　ｃ）－ｘｘｉｖ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２４Ｌタイプ軽鎖：
　配列表の配列番号３０に示される＃３２Ａ１軽鎖のアミノ酸番号２１（アスパラギン酸）、２９－３０の間（欠損残基）、３１（アラニン）、３２（バリン）、３４（ロイシン）、３６（グルタミン）、４０（イソロイシン）、６６（グルタミン）、９９（アスパラギン）、１００（プロリン）、１０１（バリン）、１０２（グルタミン）、１０３（アラニン）、１０４（アスパラギン酸）、１０６（イソロイシン）、１０８（スレオニン）、１１０（フェニルアラニン）、１２２（アラニン）、１２３（グリシン）、１２７（ロイシン）、１２９（ロイシン）、１３０（アルギニン）、１３２（アラニン）をそれぞれグルタミン酸、スレオニン、セリン、ロイシン、プロリン、グルタミン酸、ロイシン、アラニン、セリン、セリン、ロイシン、グルタミン酸、プロリン、グルタミン酸、フェニルアラニン、ロイシン、チロシン、グリシン、グルタミン、バリン、イソロイシン、リジン、スレオニンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１軽鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２４Ｌタイプ軽鎖」と命名した。
　また、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２４Ｌタイプ軽鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号９５に記載されている。配列番号９５のアミノ酸配列の１乃至１１３番目のアミノ残基からなる配列、１１４乃至２１８番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれ軽鎖可変領域、軽鎖定常領域に相当する。配列番号９５のアミノ酸配列は、図４３にも記載されている。 
　ｃ）－ｘｘｖ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２５Ｌタイプ軽鎖：
配列表の配列番号３０に示される＃３２Ａ１軽鎖のアミノ酸番号２９－３０の間（欠損残基）、３１（アラニン）、３２（バリン）、３４（ロイシン）、３６（グルタミン）、４０（イソロイシン）、９９（アスパラギン）、１００（プロリン）、１０１（バリン）、１０２（グルタミン）、１０３（アラニン）、１０４（アスパラギン酸）、１０６（イソロイシン）、１１０（フェニルアラニン）、１２７（ロイシン）、１２９（ロイシン）、１３０（アルギニン）、１３２（アラニン）をそれぞれスレオニン、セリン、ロイシン、プロリン、グルタミン酸、ロイシン、セリン、セリン、ロイシン、グルタミン酸、プロリン、グルタミン酸、フェニルアラニン、チロシン、バリン、イソロイシン、リジン、スレオニンに置き換えることを伴い設計されたヒト化＃３２Ａ１軽鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２５Ｌタイプ軽鎖」と命名した。
　また、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２５Ｌタイプ軽鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号９６に記載されている。配列番号９６のアミノ酸配列の１乃至１１３番目のアミノ残基からなる配列、１１４乃至２１８番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれ軽鎖可変領域、軽鎖定常領域に相当する。配列番号９６のアミノ酸配列は、図４３にも記載されている。
ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃３２Ａ１のヒト化抗体遺伝子の作製
　ａ）ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１Ｌ、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２Ｌ、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ３Ｌ、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ４Ｌ、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ５Ｌ及びｈ＃３２Ａ１－Ｔ６Ｌタイプ軽鎖発現ベクターの構築
　配列表の配列番号６１のアミノ酸番号１乃至１３３、配列番号６３のアミノ酸番号１乃至１３３、配列番号６５のアミノ酸番号１乃至１３３、配列番号６７のアミノ酸番号１乃至１３２、配列番号６９のアミノ酸番号１乃至１３３及び配列番号７１のアミノ酸番号１乃至１３３にそれぞれ示される、分泌シグナルと融合したｈ＃３２Ａ１－Ｔ１Ｌ、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２Ｌ、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ３Ｌ、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ４Ｌ、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ５Ｌ及びｈ＃３２Ａ１－Ｔ６Ｌタイプ軽鎖可変領域をコードする遺伝子を含むＤＮＡを合成し（ＭＢＬ社、人工遺伝子合成サービス）、制限酵素ＮｈｅＩ及びＢｓｉＷＩで切り出されたＤＮＡ断片を、ヒト化抗体軽鎖発現汎用ベクター（ｐＥＦ６ＫＣＬ）を制限酵素ＮｈｅＩ及びＢｓｉＷＩで切断した箇所に挿入することにより、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１Ｌ、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２Ｌ、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ３Ｌ、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ４Ｌ、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ５Ｌ及びｈ＃３２Ａ１－Ｔ６Ｌタイプ軽鎖発現ベクターを構築した。得られた発現ベクターをそれぞれ「ｐＥＦ６ＫＣＬ／ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１Ｌ」、「ｐＥＦ６ＫＣＬ／ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２Ｌ」、「ｐＥＦ６ＫＣＬ／ｈ＃３２Ａ１－Ｔ３Ｌ」、「ｐＥＦ６ＫＣＬ／ｈ＃３２Ａ１－Ｔ４Ｌ」、「ｐＥＦ６ＫＣＬ／ｈ＃３２Ａ１－Ｔ５Ｌ」及び「ｐＥＦ６ＫＣＬ／ｈ＃３２Ａ１－Ｔ６Ｌ」と命名した。
　ｂ）ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１Ｈ、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２Ｈ、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ３Ｈ、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ５Ｈ及びｈ＃３２Ａ１－Ｔ６Ｈ重鎖発現ベクターの構築
　配列表の配列番号５１、５３、５５、５７及び５９のアミノ酸番号１乃至１４０にそれぞれ示される、分泌シグナルと融合したｈ＃３２Ａ１－Ｔ１Ｈ、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２Ｈ、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ３Ｈ、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ５Ｈ及びｈ＃３２Ａ１－Ｔ６Ｈ重鎖可変領域をコードする遺伝子を含むＤＮＡを合成し（ＭＢＬ社　人工遺伝子合成サービス）、制限酵素ＢｌｐＩで切り出されるＤＮＡ断片を、ヒト化抗体重鎖発現汎用ベクター（ｐＥＦ１／ＦＣＣＵ－１）を制限酵素ＢｌｐＩで切断した箇所に挿入することにより、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１Ｈ、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２Ｈ、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ３Ｈ、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ５Ｈ及びｈ＃３２Ａ１－Ｔ６Ｈ重鎖発現ベクターを構築した。得られた発現ベクターをそれぞれ「ｐＥＦ１／ＦＣＣＵ／ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１Ｈ」、「ｐＥＦ１／ＦＣＣＵ／ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２Ｈ」「ｐＥＦ１／ＦＣＣＵ／ｈ＃３２Ａ１－Ｔ３Ｈ」「ｐＥＦ１／ＦＣＣＵ／ｈ＃３２Ａ１－Ｔ５Ｈ」及び「ｐＥＦ１／ＦＣＣＵ／ｈ＃３２Ａ１－Ｔ６Ｈ」と命名した。
ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃３２Ａ１のヒト化抗体の調製
　ａ）ヒト化抗体の生産
　対数増殖期の２９３ＦｒｅｅＳｔｙｌｅ細胞１．５×１０８を新鮮な１００ｍｌのＦｒｅｅＳｔｙｌｅ２９３　Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　Ｍｅｄｉｕｍ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）に播種し、３７℃、８％ＣＯ２インキュベーターで振とう培養した（１２５ｒｐｍ）。Ｐｏｌｙｅｔｈｙｌｅｎｅｉｍｉｎｅ（Ｐｏｌｙｓｃｉｅｎｃｅ　＃２４７６５）１ｍｇをＯｐｔｉ－ＰｒｏＳＦＭ培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）４ｍｌに溶解し、室温で５分間放置した。ＰｕｒｅＬｉｎｋ　ＨｉＰｕｒｅ　Ｐｌａｓｍｉｄキット（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）を用いて調製した重鎖発現プラスミド（０．０５ｍｇ）及び軽鎖発現プラスミド（０．１５ｍｇ）を４ｍｌのＯｐｔｉ－ＰｒｏＳＦＭ培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）に懸濁した。室温で５分間放置したＰｏｌｙｅｔｈｙｌｅｎｅｉｍｉｎｅ／ＯｐｔｉＰｒｏＳＦＭ混合液４ｍｌに、発現プラスミド／ＯｐｔｉＰｒｏＳＦＭ混合液４ｍｌを加え、さらに室温５分間放置した。次にＰｏｌｙｅｔｈｙｌｅｎｅｉｍｉｎｅ／発現プラスミド／ＯｐｔｉＰｒｏＳＦＭ混合液８ｍｌを２９３ＦｒｅｅＳｔｙｌｅ細胞懸濁液に添加し、振とう培養を続けた。３７℃、８％ＣＯ２中で７日間培養したのち、培養上清を回収した。
　ｂ）ヒト化抗体の精製
　上記ａ）で得られた培養上清を、ＰｒｏｔｅｉｎＡアフィニティークロマトグラフィーで精製した。５００ｍｌ容キャップつきフラスコに培養上清１００ｍｌを入れ、ＰＢＳで平衡化したＭａｂＳｅｌｅｃｔＳｕＲｅ（ＧＥ　Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ　Ｂｉｏ－ｓｃｉｅｎｃｅ社製）懸濁液（５０％スラリー）１ｍｌを添加した。１０℃のインキュベーター中、１００ｒｐｍで一晩攪拌した。ＺｅｂａＳｐｉｎＣｏｌｕｍｎ，ｅｍｐｔｙ５ｍＬ（ＰＩＥＲＣＥ社）に２９３Ｆ培養上清／ＭａｂＳｅｌｅｃｔＳｕＲｅ懸濁液をアプライした。樹脂がカラムに全て入ったのち、１Ｍ　ＮａＣｌ１０ｍｌで洗浄した。次に１Ｍアルギニン溶液（ｐＨ４．０）１ｍｌをアプライし、抗体の含まれる画分を集めた。その画分をＣｅｎｔｒｉｆｕｇａｌ　Ｆｉｌｔｅｒ　Ｄｅｖｉｃｅ（ＡｍｉｃｏｎＵｌｔｒａ４，分画分子量５０Ｋ、ミリポア社）に添加し、クエン酸緩衝への液置換及び濃縮をおこなった。最終的な容量を２００μｌとし、精製サンプルとした。
　ｐＥＦ６ＫＣＬ／ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１ＬとｐＥＦ１／ＦＣＣＵ／ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１Ｈとの組合せによって取得された＃３２Ａ１のヒト化抗体を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１」、ｐＥＦ６ＫＣＬ／ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２ＬとｐＥＦ１／ＦＣＣＵ／ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２Ｈとの組合せによって取得された＃３２Ａ１のヒト化抗体を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２」、ｐＥＦ６ＫＣＬ／ｈ＃３２Ａ１－Ｔ３ＬとｐＥＦ１／ＦＣＣＵ／ｈ＃３２Ａ１－Ｔ３Ｈとの組合せによって取得された＃３２Ａ１のヒト化抗体を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ３」、ｐＥＦ６ＫＣＬ／ｈ＃３２Ａ１－Ｔ４ＬとｐＥＦ１／ＦＣＣＵ／ｈ＃３２Ａ１－Ｔ３Ｈとの組合せによって取得された＃３２Ａ１のヒト化抗体を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ４」、ｐＥＦ６ＫＣＬ／ｈ＃３２Ａ１－Ｔ５ＬとｐＥＦ１／ＦＣＣＵ／ｈ＃３２Ａ１－Ｔ５Ｈとの組合せによって取得された＃３２Ａ１のヒト化抗体を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ５」、ｐＥＦ６ＫＣＬ／ｈ＃３２Ａ１－Ｔ６ＬとｐＥＦ１／ＦＣＣＵ／ｈ＃３２Ａ１－Ｔ６Ｈとの組合せによって取得された＃３２Ａ１のヒト化抗体を「ｈ＃３２Ａ１－Ｔ６」と命名した。
ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃３２Ａ１のヒト化抗体のマウスＳｉｇｌｅｃ－１５蛋白質に対する結合性評価
　ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５＃３２Ａ１ヒト化抗体Ｔ１－Ｔ６のマウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃ及びヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃに対する結合性を以下の方法で評価した。実施例４にて精製したマウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃ、あるいは実施例１２にて精製したヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－ＦｃをＰＢＳで１μｇ／ｍｌに希釈後、イムノプレート（Ｎｕｎｃ社製　＃４３７１１１）に１００μｌ／ウェルで分注し、４℃で一晩静置することでプレートに各蛋白質を吸着させた。翌日、ウェルをＰＢＳ－Ｔ液（ＰＢＳ、０．０５％（ｖ／ｖ）　Ｔｗｅｅｎ　２０）で５回洗浄後、スキムミルク（森永乳業社製）をＰＢＳで５％に希釈した溶液を３５０μｌ／ウェルで分注し、室温で２時間静置した。ウェル中の液を除去しＰＢＳ－Ｔ液にて５回洗浄後、実施例２４で調製した精製ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５＃３２Ａ１ヒト化抗体Ｔ１－Ｔ６あるいは実施例１９にて調製したヒトキメラ抗体を、０．５％スキムミルク含有ＰＢＳ液を用いて終濃度が１～０．００４μｇ／ｍｌ（４倍希釈系列）となるように希釈後１００μｌ／ウェルで分注し、２時間室温で静置した。その際、各抗体濃度はスペクトロホトメーターＤＵ７４００（ベックマン社製）にて２８０ｎｍを測定し、各抗体のモル分子吸光係数に基づき決定した。ＰＢＳ－Ｔ液で５回ウェルを洗浄後、ＴＢＳ－Ｔ液（ＴＢＳ、０．０５％（ｖ／ｖ）　Ｔｗｅｅｎ　２０）で２５００倍に希釈したＡｌｋａｌｉｎｅ　Ｐｈｏｓｐｈａｔａｓｅ－ｃｏｎｊｕｇａｔｅｄ　ＡｆｆｉｎｉＰｕｒｅ　Ｇｏａｔ　Ａｎｔｉ－Ｈｕｍａｎ　ＩｇＧ（Ｊａｃｋｓｏｎ　ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ社製　＃１０９－０５５－０９７）を１００μｌ／ウェルで添加し、室温で１時間静置した。ウェル中の液を除去し、ＴＢＳ－Ｔ液で５回ウェルを洗浄した後、蛍光基質液（Ｒｏｃｈｅ社製　＃１１６８１９８２００１）を１００μｌ／ウェルで添加し蛍光反応を行った。マウスＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃ吸着プレートは蛍光基質液添加１０分後、ヒトＳｉｇｌｅｃ－１５－Ｆｃプレートは１５分後に、各々スペクトラマックスＭ５（モレキュラーデバイス社製）にて蛍光強度を測定した。その結果、検討したラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５ヒト化抗体６検体全てにおいて、抗体の濃度に依存したマウスＳｉｇｌｅｃ－１５蛋白質（図１８）及びヒトＳｉｇｌｅｃ－１５蛋白質（図１９）への結合が確認された。
ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃３２Ａ１のキメラ抗体の添加による、マウス骨髄付着細胞の破骨細胞分化への影響（ＴＮＦα刺激）
　実施例６で調製したラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃３２Ａ１及び実施例１９で調製したラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃３２Ａ１のキメラ抗体を用い、マウス骨髄非付着細胞のＴＮＦα刺激による破骨細胞分化への影響を検討した。実施例８の方法で調製したマウス骨髄非付着細胞を、１０％ウシ胎児血清（ＦＢＳ）、１０ｎｇ／ｍｌ　Ｍ－ＣＳＦ、及び２ｎｇ／ｍｌ　ＴＧＦ－β（Ｒ＆Ｄ　Ｓｙｓｔｅｍｓ社製）を含むα－ＭＥＭ培地で１．５×１０５細胞／ｍｌに調製したものを９６穴プレートの各ウェルに２００μｌ播種して、ＣＯ２インキュベーター中で２日間培養した。９６穴プレート中の古い培養液を除去して、ヒト遺伝子組換え型ＴＮＦα（Ｒ＆Ｄ　Ｓｙｓｔｅｍｓ社製）を終濃度３０ｎｇ／ｍｌ、Ｍ－ＣＳＦを１０ｎｇ／ｍｌになるように添加した１０％　ＦＢＳ含有ＭＥＭ－α培地１００μｌを添加した。この細胞培養液に、実施例９で作製したラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃３２Ａ１及び実施例１９で作製したラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃３２Ａ１のキメラ抗体を０．１２５～４μｇ／ｍｌの濃度になるように添加して更に３日間　ＣＯ２インキュベーター中で培養した。同時に特許ＷＯ９６／２６２１７の明細書に記載の方法で調製したヒト遺伝子組換え型ＯＣＩＦ／ＯＰＧを１００ｎｇ／ｍｌの濃度になるように添加して培養したウェルも準備した。培養終了後に、Ｌｅｕｋｏｃｙｔｅ　Ａｃｉｄ　Ｐｈｏｓｐｈａｔａｓｅ　ｋｉｔ（シグマ社製）を用いて、キットに添付のプロトコールに従いＴＲＡＰ染色を行い、ＴＲＡＰ陽性多核破骨細胞の形成を観察した。その結果、抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５ポリクローナル抗体の添加によってＴＲＡＰ陽性で巨大な多核破骨細胞の形成が抑制された（図２０）。ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃３２Ａ１及びそのキメラ抗体を添加した場合でも単核で小型の破骨細胞は形成されたが、ＴＮＦαで誘導される大型で多核の破骨細胞の形成はほぼ完全に抑制された。その一方で、ＲＡＮＫＬブロッカーであるＯＣＩＦ／ＯＰＧを十分量添加しても、大型で多核の破骨細胞の形成は殆ど抑制されなかった。また同様に、形成された破骨細胞の酒石酸耐性酸性フォスファターゼ（ＴＲＡＰ）活性を実施例９に記載の操作で測定した。酵素反応停止後に各ウェルの４０５ｎｍの吸光度を測定してＴＲＡＰ活性の指標にした。結果を図２１に示した。＃３２Ａ１抗体及び＃３２Ａ１のキメラ抗体において、１２５ｎｇ／ｍｌから４μｇ／ｍｌの範囲で、顕著なＴＲＡＰ活性の抑制が認められた。これらの結果から、ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体及びそのキメラ抗体はＴＮＦαで誘導される破骨細胞の分化成熟における細胞融合の過程を強く抑制することが示された。
ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃８Ａ１、＃３２Ａ１のラット破骨細胞形成試験での生物活性評価
　実施例６において調製したラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃８Ａ１、＃３２Ａ１を用い、ラット骨髄非付着細胞の破骨細胞への分化の影響を検討した。実施例８の方法を改変してラット骨髄非付着細胞を調製した。即ち、１２週齢の雌Ｆ３４４ラットの両足より大腿骨を摘出し、軟組織を除去した。この大腿骨の両端を切り落とし、２３ゲージの注射針付きシリンジによりＭＥＭ－α培地を注入して骨髄細胞を押し出して、遠心チューブに回収した。室温で１００ｇ、５分間遠心して上清を捨てた後に、細胞のペレットにＨｅｍｏｌｙｔｉｃ　Ｂｕｆｆｅｒ　１ｍｌ（ＲＥＤ　ＢＬＯＯＤ　ＣＥＬＬ　ＬＹＳＩＮＧ　ＢＵＦＦＥＲ、シグマ社製）を加えて懸濁し、室温で５分間放置した。２０ｍｌのＤ－ＰＢＳを加えて室温で１００ｇ，５分間遠心し、上清を捨てた後に細胞のペレットに５ｎｇ／ｍｌ　Ｍ－ＣＳＦ（Ｒ＆Ｄ　Ｓｙｓｔｅｍｓ社製）、１０％　ウシ胎児血清（ＦＢＳ）を含有するＭＥＭ－α培地（インビトロジェン社製）１０ｍｌを加えて懸濁し、セルストレイナー（４０μｍ　Ｎｙｌｏｎ、ＢＤファルコン社製）を通して凝集物を除いた。この細胞を７５ｃｍ２－Ｔ　フラスコ（付着細胞用）に移して、ＣＯ２インキュベーター中で１晩培養した。１晩培養後、Ｔ－フラスコに付着していない細胞を回収して、ラット骨髄非付着細胞として使用した。
　この方法で調製したラット骨髄非付着細胞を実施例９の方法に準じて培養してラット破骨細胞形成試験を実施した。即ち、調製したラット骨髄非付着細胞を１０％　ＦＢＳと１０ｎｇ／ｍｌ　Ｍ－ＣＳＦ（Ｒ＆Ｄ　Ｓｙｓｔｅｍｓ社製）を含むα－ＭＥＭ培地で１．５×１０５細胞／ｍｌに調製したものを９６穴プレートの各ウェルに２００μｌ播種して、ＣＯ２インキュベーター中で２日間培養した。９６穴プレート中の古い培養液を除去して、ヒトＲＡＮＫＬ（ＲＡＮＫＬ、ぺプロテック社製）を終濃度２０ｎｇ／ｍｌ、Ｍ－ＣＳＦを１０ｎｇ／ｍｌになるように添加した１０％　ＦＢＳ含有ＭＥＭ－α培地１００μｌを添加した。この細胞培養液に、実施例６において作製したラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃８Ａ１、＃３２Ａ１を３１～１０００ｎｇ／ｍｌの濃度になるように添加して、更に３日間ＣＯ２インキュベーター中で培養した。培養終了後に、形成された破骨細胞の酒石酸耐性酸性フォスファターゼ（ＴＲＡＰ）活性を実施例９に記載の方法で測定した。酵素反応停止後に各ウェルの４０５ｎｍの吸光度を測定してＴＲＡＰ活性の指標にした。結果を図２２に示した。＃８Ａ１抗体では、６３ｎｇ／ｍｌ以上の濃度で用量依存的なＴＲＡＰ活性の抑制が認められた。また＃３２Ａ１抗体では、３１ｎｇ／ｍｌ以上の濃度で用量依存的なＴＲＡＰ活性の抑制が認められた。これらの結果より、ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃８Ａ１、＃３２Ａ１はマウスの破骨細胞形成と同様にラットの破骨細胞形成も強く抑制すること、及び＃３２Ａ１抗体のｉｎ　ｖｉｔｒｏでのラット破骨細胞形成抑制活性は＃８Ａ１抗体よりも強いことが示された。
ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃３２Ａ１のヒト化抗体の設計（２）
　ａ）＃３２Ａ１のヒト化バージョンの設計
　ａ）－ｉ）　ヒト化＃３２Ａ１に対するアミノ酸配列の設計
ヒト化＃３２Ａ１抗体の構築を、ＣＤＲグラフティング（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８６，１００２９－１００３３（１９８９））として一般的に公知の方法によって行った。ＣＤＲ領域の定義は、ＣＤＲＨ２以外は全てＫａｂａｔの定義（ＳＥＱＵＥＮＣＥＳ　ＯＦ　ＰＲＯＴＥＩＮＳ　ＯＦ　ＩＭＭＵＮＯＬＯＧＩＣＡＬ　ＩＮＴＥＲＥＳＴ　ＶＯＬ．Ｉ，ＦＩＦＴＨ　ＥＤＴＩＯＮ（１９９１））を用いた。ＣＤＲＨ２については、独自の定義を用いてＣ末端をＫａｂａｔの定義より５残基短縮した。このように定義されたＣＤＲＨ２を含む重鎖配列では、ラット由来のＣＤＲ配列が短縮され、ヒトフレームワーク配列がより多く取り入れられており、ヒトに投与された際に異種抗原としてより一層認識されにくい。アクセプター抗体は、フレームワーク領域内のアミノ酸相同性に基づいて選択された。＃３２Ａ１のフレームワーク領域の配列を、抗体のアミノ酸配列のＫａｂａｔデータベース（Ｎｕｃ．Ａｃｉｄ Ｒｅｓ．２９，２０５－２０６（２００１））の全てのヒトフレームワークと比較し、結果として、Ｌ鎖はＧＦ４／１．１‘ＣＬがフレームワーク領域についての７１％配列相同性に起因して、アクセプターとして選択された。H鎖はＭ３７ＧＯ３７’ＣＬがフレームワーク領域についての７３％の配列相同性に起因して、アクセプターとして選択された。Ｌ鎖はＧＦ４／１．１‘ＣＬについて、Ｈ鎖はＭ３７ＧＯ３７’ＣＬについてのフレームワーク領域のアミノ酸残基を、＃３２Ａ１についてのアミノ酸残基と整列させ、異なるアミノ酸が使用される位置を同定した。
これらの残基の位置は、実施例２２ａ）－ｉ）で構築された＃３２Ａ１の三次元モデルを使用して分析され、そしてアクセプター上にグラフティングされるべきドナー残基が、Ｑｕｅｅｎ ｅｔ ａｌ．（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８６，１００２９－１００３３（１９８９））によって与えられる基準によって選択された。選択されたいくつかのドナー残基をアクセプター抗体に移入することによって、ヒト化＃３２Ａ１配列を以下の実施例に記載されるように構築した。
　ａ）－ｉｉ）　＃３２Ａ１重鎖のヒト化
　ａ）－ｉｉ）－ｉ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１タイプ重鎖：
　配列表の配列番号２８に示される３２Ａ１のアミノ酸番号２３（イソロイシン）、２４（ロイシン）、２６（スレオニン）、３２（リジン）、４３（スレオニン）、６１（グルタミン酸）、８３（グルタミン酸）、８５（ロイシン）、８６（グルタミン酸）、８９（バリン）、９５（アスパラギン酸）、９６（セリン）、９７（グルタミン酸）、９８（セリン）、１００（バリン）、１０４（バリン）、１０５（セリン）、１１４（イソロイシン）、１１８（スレオニン）、１３４（バリン）、１３５（メチオニン）、１４０（ロイシン）をそれぞれロイシン、バリン、セリン、グルタミン、アラニン、グリシン、アラニン、バリン、リジン、フェニルアラニン、アスパラギン、アラニン、リジン、アスパラギン、ロイシン、メチオニン、アスパラギン、バリン、アラニン、スレオニン、ロイシン、セリンに置き換えることを伴い設計されたヒト化３２Ａ１重鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１タイプ重鎖」と命名した。
　ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１タイプ重鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号９９に記載されている。配列番号９９のアミノ酸配列の１乃至１９番目のアミノ残基からなる配列、２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなる配列、１４１乃至４６６番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれシグナル配列、重鎖可変領域、重鎖定常領域に相当する。配列番号９９のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列は、配列表の配列番号９８に記載されている。配列番号９８のヌクレオチド配列の１乃至５７番目のヌクレオチドからなる配列、５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなる配列、４２１乃至１３９８番目のヌクレオチドからなる配列が、それぞれシグナル配列、重鎖可変領域配列、重鎖定常領域配列をコードしている。配列番号９８のヌクレオチド配列及び配列番号９９のアミノ酸配列は、図５４にも記載されている。
　ａ）－ｉｉｉ）　＃３２Ａ１軽鎖のヒト化
　ａ）－ｉｉｉ）－ｉ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｌ２－１５タイプ軽鎖：
　配列表の配列番号３０に示される３２Ａ１のアミノ酸番号２１（アスパラギン酸）、２３（バリン）、２４（ロイシン）、２９－３０の間（欠損残基）、３１（アラニン）、３２（バリン）、３４（ロイシン）、３６（グルタミン）、４０（イソロイシン）、６６（グルタミン）、９９（アスパラギン）、１００（プロリン）、１０１（バリン）、１０２（グルタミン）、１０３（アラニン）、１０４（アスパラギン酸）、１０６（イソロイシン）、１０８（スレオニン）、１１０（フェニルアラニン）、１２２（アラニン）、１２３（グリシン）、１２７（ロイシン）、１２９（ロイシン）、１３０（アルギニン）、１３２（アラニン）をそれぞれグルタミン酸、ロイシン、メチオニン、スレオニン、セリン、ロイシン、プロリン、グルタミン酸、ロイシン、アラニン、セリン、セリン、ロイシン、グルタミン酸、プロリン、グルタミン酸、フェニルアラニン、ロイシン、チロシン、グリシン、グルタミン、バリン、イソロイシン、リジン、スレオニンに置き換えることを伴い設計されたヒト化３２Ａ１軽鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｌ２－１５タイプ軽鎖」と命名した。
　ｈ＃３２Ａ１－Ｌ２－１５タイプ軽鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号１０３に記載されている。配列番号１０３のアミノ酸配列の１乃至２０番目のアミノ残基からなる配列、２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなる配列、１３４乃至２３８番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれシグナル配列、軽鎖可変領域、軽鎖定常領域に相当する。配列番号１０３のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列は、配列表の配列番号１０２に記載されている。配列番号１０２のヌクレオチド配列の１乃至６０番目のヌクレオチドからなる配列、６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなる配列、４００乃至７１４番目のヌクレオチドからなる配列が、それぞれシグナル配列、軽鎖可変領域配列、軽鎖定常領域配列をコードしている。配列番号１０２のヌクレオチド配列及び配列番号１０３のアミノ酸配列は、図５６にも記載されている。
　ａ）－ｉｉｉ）－ｉｉ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｌ２－１６タイプ軽鎖：
　配列表の配列番号３０に示される３２Ａ１のアミノ酸番号２１（アスパラギン酸）、２３（バリン）、２４（ロイシン）、２９－３０の間（欠損残基）、３１（アラニン）、３２（バリン）、３４（ロイシン）、３６（グルタミン）、４０（イソロイシン）、６６（グルタミン）、９９（アスパラギン）、１００（プロリン）、１０１（バリン）、１０２（グルタミン）、１０３（アラニン）、１０４（アスパラギン酸）、１０６（イソロイシン）、１０８（スレオニン）、１２３（グリシン）、１２７（ロイシン）、１２９（ロイシン）、１３０（アルギニン）、１３２（アラニン）をそれぞれグルタミン酸、ロイシン、メチオニン、スレオニン、セリン、ロイシン、プロリン、グルタミン酸、ロイシン、アラニン、セリン、セリン、ロイシン、グルタミン酸、プロリン、グルタミン酸、フェニルアラニン、ロイシン、グルタミン、バリン、イソロイシン、リジン、スレオニンに置き換えることを伴い設計されたヒト化３２Ａ１軽鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｌ２－１６タイプ軽鎖」と命名した。
　ｈ＃３２Ａ１－Ｌ２－１６タイプ軽鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号１０５に記載されている。配列番号１０５のアミノ酸配列の１乃至２０番目のアミノ残基からなる配列、２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなる配列、１３４乃至２３８番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれシグナル配列、軽鎖可変領域、軽鎖定常領域に相当する。配列番号１０５のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列は、配列表の配列番号１０４に記載されている。配列番号１０４のヌクレオチド配列の１乃至６０番目のヌクレオチドからなる配列、６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなる配列、４００乃至７１４番目のヌクレオチドからなる配列が、それぞれシグナル配列、軽鎖可変領域配列、軽鎖定常領域配列をコードしている。配列番号１０４のヌクレオチド配列及び配列番号１０５のアミノ酸配列は、図５７にも記載されている。 
　ｂ）ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃３２Ａ１のヒト化抗体遺伝子の作製
　ｂ）－ｉ）　ヒト重鎖発現汎用ベクターｐＥＧ２の構築
　配列番号１０６に示すヒトＩｇＧ２シグナル配列及び定常領域のアミノ酸をコードするＤＮＡ配列を含むＤＮＡ断片を合成し（ＭＢＬ社、人工遺伝子合成サービス）、制限酵素ＮｈｅＩ及びＰｍｅＩで消化し、約１１００ｂｐのＤＮＡ断片を得た。このＤＮＡ断片を、ｐＥＦ１／ＦＣＣＵ－１をＮｈｅＩおよびＰｍｅＩで消化し、約１１００ｂｐのＤＮＡ断片を取り除いて得られる約６２００ｂｐのＤＮＡ断片と結合させることにより、ヒト化抗体（ｈＩｇＧ２型）重鎖発現汎用ベクターｐＥＧ２を構築した。
　ｂ）－ｉｉ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１重鎖発現ベクターの構築
　　配列表の配列番号９９のアミノ酸番号１乃至１４０に示される、分泌シグナルと融合したｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１重鎖可変領域をコードする遺伝子を含むＤＮＡを合成し（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）、制限酵素ＢｌｐＩで切り出されるＤＮＡ断片を、ヒト化抗体（ｈＩｇＧ２型）重鎖発現汎用ベクター（ｐＥＧ２）を制限酵素ＢｌｐＩで切断した箇所に挿入することにより、ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１重鎖発現ベクターを構築した。得られた発現ベクターを「ｐＥＧ２／ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１」と命名した。
　ｂ）－ｉｉｉ）　ｈ＃３２Ａ１－Ｈ５重鎖発現ベクターの構築
　実施例２２、ｂ）－ｉｖ）で設計されたｈ＃３２Ａ１－Ｔ５Ｈタイプ重鎖のシグナル配列及び定常領域をＩｇＧ２タイプに変更したヒト化３２Ａ１重鎖を「ｈ＃３２Ａ１－Ｈ５タイプ重鎖」と命名した。
　ｈ＃３２Ａ１－Ｈ５タイプ重鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号１０１に記載されている。配列番号１０１のアミノ酸配列の１乃至１９番目のアミノ残基からなる配列、２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなる配列、１４１乃至４６６番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれシグナル配列、重鎖可変領域、重鎖定常領域に相当する。配列番号１０１のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列は、配列表の配列番号１００に記載されている。配列番号１００のヌクレオチド配列の１乃至５７番目のヌクレオチドからなる配列、５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなる配列、４２１乃至１３９８番目のヌクレオチドからなる配列が、それぞれシグナル配列、重鎖可変領域配列、重鎖定常領域配列をコードしている。配列番号１００のヌクレオチド配列及び配列番号１０１のアミノ酸配列は、図５５にも記載されている。
　実施例２３で作製したｐＥＦ１／ＦＣＣＵ／ｈ＃３２Ａ１－Ｔ５Ｈから制限酵素ＢｌｐＩで切り出されるＤＮＡ断片を、ヒト化抗体（ｈＩｇＧ２型）重鎖発現汎用ベクター（ｐＥＧ２）を制限酵素ＢｌｐＩで切断した箇所に挿入することにより、ｈ＃３２Ａ１－Ｈ５重鎖発現ベクターを構築した。得られた発現ベクターを「ｐＥＧ２／ｈ＃３２Ａ１－Ｈ５」と命名した。
　ｂ）－ｉｖ）ｈ＃３２Ａ１－Ｌ２－１５及びｈ＃３２Ａ１－Ｌ２－１６タイプ軽鎖発現ベクターの構築
　配列表の配列番号１０３のアミノ酸番号１乃至１３３及び配列番号１０５のアミノ酸番号１乃至１３３にそれぞれ示される、分泌シグナルと融合したｈ＃３２Ａ１－Ｌ２－１５及びｈ＃３２Ａ１－Ｌ２－１６タイプ軽鎖可変領域をコードする遺伝子を含むＤＮＡを合成し（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）、実施例２３と同様の方法によって、ｈ＃３２Ａ１－Ｌ２－１５及びｈ＃３２Ａ１－Ｌ２－１６タイプ軽鎖発現ベクターを構築した。得られた発現ベクターをそれぞれ「ｐＥＦ６ＫＣＬ／ｈ＃３２Ａ１－Ｌ２－１５」及び「ｐＥＦ６ＫＣＬ／ｈ＃３２Ａ１－Ｌ２－１６」と命名した。
　ｃ）ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃３２Ａ１のヒト化抗体の調製
　ｃ）－ｉ）ヒト化抗体の生産
　１．２×１０９個の対数増殖期のＦｒｅｅＳｔｙｌｅ　２９３Ｆ細胞（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を新鮮な１．２ＬのＦｒｅｅＳｔｙｌｅ２９３　ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　ｍｅｄｉｕｍ　（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）に播種し、３７℃、８％ＣＯ２インキュベーター内で９０ｒｐｍで一時間振とう培養した。Ｐｏｌｙｅｔｈｙｌｅｎｅｉｍｉｎｅ（Ｐｏｌｙｓｃｉｅｎｃｅ　＃２４７６５）３．６ｍｇをＯｐｔｉ－Ｐｒｏ　ＳＦＭ培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）２０ｍｌに溶解し、次にＰｕｒｅＬｉｎｋ　ＨｉＰｕｒｅ　Ｐｌａｓｍｉｄキット（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）を用いて調製したＨ鎖発現プラスミド（０．４ｍｇ）及びＬ鎖発現プラスミド（０．８ｍｇ）を２０ｍｌのＯｐｔｉ－Ｐｒｏ　ＳＦＭ培地に懸濁した。Ｐｏｌｙｅｔｈｙｌｅｎｅｉｍｉｎｅ／Ｏｐｔｉ－Ｐｒｏ　ＳＦＭ混合液２０ｍｌに、発現プラスミド／Ｏｐｔｉ－Ｐｒｏ　ＳＦＭ混合液２０ｍｌを加え穏やかに攪拌し、さらに５分間放置した後にＦｒｅｅＳｔｙｌｅ　２９３Ｆ細胞に添加した。３７℃、８％ＣＯ２インキュベーターで７日間、９０ｒｐｍで振とう培養して得られた培養上清をＤｉｓｐｏｓａｂｌｅ　Ｃａｐｓｕｌｅ　Ｆｉｌｔｅｒ　（Ａｄｖａｎｔｅｃ　＃ＣＣＳ－０４５－Ｅ１Ｈ）でろ過した。
　ｐＥＦ６ＫＣＬ／ｈ＃３２Ａ１－Ｔ５ＬとｐＥＧ２／ｈ＃３２Ａ１－Ｈ５との組合せによって取得された＃３２Ａ１のヒト化抗体を「ｈ＃３２Ａ１－Ｈ５／Ｌ５」、ｐＥＦ６ＫＣＬ／ｈ＃３２Ａ１－Ｔ５ＬとｐＥＧ２／ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１との組合せによって取得された＃３２Ａ１のヒト化抗体を「ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１／Ｌ５」、ｐＥＦ６ＫＣＬ／ｈ＃３２Ａ１－Ｌ２－１５とｐＥＧ２／ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１との組合せによって取得された＃３２Ａ１のヒト化抗体を「ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１／Ｌ２－１５」、ｐＥＦ６ＫＣＬ／ｈ＃３２Ａ１－Ｌ２－１６とｐＥＧ２／ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１との組合せによって取得された＃３２Ａ１のヒト化抗体を「ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１／Ｌ２－１６」と命名した。
　ｃ）－ｉｉ）ヒト化抗体の精製
　上記ｃ）－ｉ）で得られた培養上清を、ｒＰｒｏｔｅｉｎＡアフィニティークロマトグラフィー（４－６℃下）とセラミックヒドロキシルアパタイト（室温下）の２段階工程で精製した。ｒＰｒｏｔｅｉｎＡアフィニティークロマトグラフィー精製後とセラミックヒドロキシルアパタイト精製後のバッファー置換工程は室温下で実施した。最初に、培養上清１１００－１２００ｍｌを、ＰＢＳで平衡化したＭａｂＳｅｌｅｃｔＳｕＲｅ（ＧＥ　Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ　Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社製、ＨｉＴｒａｐカラム：容積１ｍｌ×２連結）にアプライした。培養液がカラムに全て入ったのち、ＰＢＳ１５－３０ｍｌでカラムを洗浄した。次に２Ｍアルギニン塩酸塩溶液（ｐＨ４．０）で溶出し、抗体の含まれる画分を集めた。その画分を脱塩カラム（ＧＥ　Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ　Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社製、ＨｉＴｒａｐ　Ｄｅｓａｌｔｉｎｇカラム：容積５ｍｌ×２連結）で５ｍＭ　りん酸ナトリウム／５０ｍＭ　ＭＥＳ／２０ｍＭ　ＮａＣｌ／ｐＨ６．５のバッファーへ置換を行った。さらにその置換した抗体溶液を、５ｍＭ　ＮａＰｉ／５０ｍＭ　ＭＥＳ／２０ｍＭ　ＮａＣｌ／ｐＨ６．５のバッファーで平衡化されたセラミックハイドロキシルアパタイトカラム（日本バイオラッド、Ｂｉｏ－Ｓｃａｌｅ　ＣＨＴ２－１　Ｈｙｄｒｏｘｙａｐａｔｉｔｅ　Ｃｏｌｕｍｎ：容積２ｍｌ）にアプライした。塩化ナトリウムによる直線的濃度勾配溶出を実施し、抗体の含まれる画分を集めた。その画分を脱塩カラム（ＧＥ　Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ　Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社製、ＨｉＴｒａｐ　Ｄｅｓａｌｔｉｎｇカラム：容積５ｍｌｘ２連結）でＣＢＳ（１０ｍＭクエン酸緩衝液／１４０ｍＭ塩化ナトリウム、ｐＨ６．０）への液置換を行った。最後にＣｅｎｔｒｉｆｕｇａｌ　ＵＦ　Ｆｉｌｔｅｒ　Ｄｅｖｉｃｅ　ＶＩＶＡＳＰＩＮ２０（分画分子量３０Ｋ，Ｓａｒｔｏｒｉｕｓ社，４℃下）にて濃縮し、ＩｇＧ濃度を１．０ｍｇ／ｍｌ以上に調製し精製サンプルとした。各精製サンプルの容量は、ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１／Ｌ５：２．２ｍｌ，ｈ＃３２Ａ１－Ｈ５／Ｌ５：１．８ｍｌ、ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１／Ｌ２－１６：６．０ｍｌ、ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１／Ｌ２－１５：２．２ｍｌであった。
ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃３２Ａ１のヒト化抗体のマウス破骨細胞形成試験での生物活性評価
　実施例２４及び２８によって取得されたヒト化抗体の示すマウス破骨細胞形成抑制効果を、実施例９に記載の方法を一部改変して評価した。実施例８の方法で調製したマウス骨髄非付着細胞を１０％　ＦＢＳと１０ｎｇ／ｍｌ　Ｍ－ＣＳＦ（Ｒ＆Ｄ　Ｓｙｓｔｅｍｓ社製）を含むα－ＭＥＭ培地で１．５×１０５細胞／ｍｌに調製したものを９６穴プレートの各ウェルに２００μｌ播種して、ＣＯ２インキュベーター中で２日間培養した。９６穴プレート中の古い培養液を除去して、ヒトＲＡＮＫＬ（ＲＡＮＫＬ、ぺプロテック社製）を終濃度２０ｎｇ／ｍｌ、Ｍ－ＣＳＦを１０ｎｇ／ｍｌになるように添加した１０％　ＦＢＳ含有ＭＥＭ－α培地１００μｌを添加した。この細胞培養液に、実施例６で調製したラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体（＃３２Ａ１抗体）及び実施例２４で調製した６種類のヒト化＃３２Ａ１抗体（ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ３、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ４、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ５、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ６）を３～１００ｎｇ／ｍｌの濃度になるように添加して、更に３日間ＣＯ２インキュベーター中で培養した。培養終了後に、形成された破骨細胞の酒石酸耐性酸性フォスファターゼ（ＴＲＡＰ）活性を以下の操作で測定した。９６穴プレートの各ウェルの培養液を吸引除去して、１％　Ｔｒｉｔｏｎ　Ｘ－１００を含有する５０ｍＭクエン酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ６．１）５０μｌを各ウェルに加え、プレート振とう機で５分間振とうして細胞を可溶化した。これらの各ウェルに基質溶液（５ｍｇ／ｍｌ　ｐ－ｎｉｔｒｏｐｈｅｎｙｌ　ｐｈｏｓｐｈａｔｅ及び０．４６％　酒石酸ナトリウムを含有する５０ｍＭクエン酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ６．１））５０μｌを加えて室温で１０分間インキュベートした。インキュベート後に９６穴プレートの各ウェルに１Ｎ水酸化ナトリウム溶液５０μｌを加えて酵素反応を停止した。酵素反応停止後に各ウェルの４０５ｎｍの吸光度を測定してＴＲＡＰ活性の指標にした。結果を図４４及び４５に示した。またこの試験と同じ方法で、実施例６で調製したラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体（＃３２Ａ１抗体）、実施例１９で調製した＃３２Ａ１抗体のヒトキメラ抗体、及び実施例２８で調製した４種類のヒト化＃３２Ａ１抗体（ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１／Ｌ５、ｈ＃３２Ａ１－Ｈ５／Ｌ５、ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１／Ｌ２－１６、ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１／Ｌ２－１５）についてその生物活性を評価して、その結果を図４６及び４７に示した。活性を評価した１０種類のヒト化＃３２Ａ１抗体（ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ３、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ４、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ５、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ６、ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１／Ｌ５、ｈ＃３２Ａ１－Ｈ５／Ｌ５、ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１／Ｌ２－１６、ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１／Ｌ２－１５）の全てにおいて、ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体（＃３２Ａ１抗体）、又は＃３２Ａ１抗体のヒトキメラ抗体とほぼ同等の強い破骨細胞形成抑制活性が認められた。
ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃３２Ａ１のヒト化抗体添加による正常ヒト破骨前駆細胞の骨吸収活性への影響（コラーゲンコートプレートを用いた評価）
　正常ヒト破骨前駆細胞（Ｎｏｒｍａｌ　Ｈｕｍａｎ　Ｎａｔｕｒａｌ　Ｏｓｔｅｏｃｌａｓｔ　Ｐｒｅｃｕｒｓｏｒ　Ｃｅｌｌｓ、三光純薬より購入、カタログ番号２Ｔ－１１０）を、細胞に添付のプロトコールに従い９６－ｗｅｌｌ　ＯｓｔｅｏＬｙｓｅ　ｃｅｌｌ　ｃｕｌｔｕｒｅ　ｐｌａｔｅ（三光純薬より購入、カタログ番号ＰＡ－１５００）に１×１０４細胞／穴となるように播種した。なお培地は、ウシ胎児血清（終濃度１０％）、ヒトＲＡＮＫＬ（終濃度６３．８ｎｇ／ｍｌ）及びヒトＭ－ＣＳＦ（終濃度３３ｎｇ／ｍｌ）等を含むＯＰＧＭ添加因子セット（三光純薬より購入、カタログ番号ＰＴ－９５０１）を添加した破骨前駆細胞用基礎培地（ＯＰＢＭ、三光純薬より購入、カタログ番号ＰＴ－８２０１）を用いた。この培養上清中に、実施例６で調製したラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体（＃３２Ａ１抗体）、実施例１９で調製した＃３２Ａ１抗体のヒトキメラ抗体、および実施例２４及び２８で調製した１０種類のヒト化＃３２Ａ１抗体（ｈ＃３２Ａ１－Ｔ１、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ２、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ３、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ４、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ５、ｈ＃３２Ａ１－Ｔ６、ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１／Ｌ５、ｈ＃３２Ａ１－Ｈ５／Ｌ５、ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１／Ｌ２－１６、ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１／Ｌ２－１５）を終濃度４、２０、１００、５００ｎｇ／ｍｌとなるように添加して、ＣＯ２インキュベーター中で５日間培養した。培養上清１０μｌを採取し、ＯｓｔｅｏＬｙｓｅ　Ａｓｓａｙ　Ｋｉｔに付属のＦｌｕｏｒｏｐｈｏｒｅ　Ｒｅｌｅａｓｉｎｇ　Ｒｅａｇｅｎｔを２００μｌ添加して、蛍光プレートリーダー（ＡＲＶＯ　ＭＸ、パーキンエルマー社製）を用いて、ユーロピウムによる蛍光測定に適した時間分解蛍光測定（Ｔｉｍｅ－ｒｅｓｏｌｖｅｄ　ｆｌｕｏｒｅｃｅｎｃｅ　ｆｌｕｏｒｉｍｅｔｅｒ）（Ｅｘｃｉｔａｔｉｏｎ：３４０ｎｍ、Ｅｍｉｓｓｉｏｎ：６１５ｎｍ）することにより、培養上清中に放出された遊離蛍光コラーゲン断片量を定量した（図４８及び４９）。その結果、ＲＡＮＫＬ添加により増加した蛍光コラーゲン断片量が、ラット＃３２Ａ１抗体やヒトキメラ＃３２Ａ１抗体添加により濃度依存的に抑制された。同様に、検討した１０種類全てのヒト化＃３２Ａ１抗体によっても、濃度依存的な抑制が認められた。このことから、ヒト破骨細胞の骨吸収活性が、Ｓｉｇｌｅｃ－１５蛋白質と特異的に結合するヒト化＃３２Ａ１抗体により抑制されることが明らかとなった。
ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃３２Ａ１のヒト化抗体の卵巣摘出ラットを用いた生物学的評価
　実施例２４及び２８によって取得されたヒト化抗体の示す、卵巣摘出ラットにおける骨密度減少に対する抑制効果は、実施例１５に記載の方法で評価することが可能である。 
ラット抗マウスＳｉｇｌｅｃ－１５モノクローナル抗体＃３２Ａ１のヒト化抗体のＴＮＦα刺激によるマウス破骨細胞形成試験での生物活性評価
　実施例２４及び２８によって取得されたヒト化抗体の示すＴＮＦα刺激によるマウス破骨細胞形成抑制効果は、実施例２６に記載の方法で評価することが可能である。
示差走査カロリメトリー（ＤＳＣ）を用いたヒト化抗体の熱安定性測定
　ｈ＃３２Ａ１－Ｈ５／Ｌ５、ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１／Ｌ５、ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１／Ｌ２－１５、ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１／Ｌ２－１６について、熱安定性の測定を行なった。これらのサンプルを０．５ｍｇ／ｍｌの濃度（ＣＢＳ溶液）に調製し、４００μｌずつ試料溶液としてＤＳＣ測定に使用した。ＤＳＣ測定条件は、以下のように設定した。即ち、初期温度は２０℃、最終温度を１００℃とし、昇温速度を６０℃／１時間、フィルター時間１０秒とした。参照液はＣＢＳを使用した。ＤＳＣ測定装置としては、米国ＭｉｃｒｏＣａｌ社製ＶＰ－Ｃａｐｉｌｌａｒｙ　ＤＳＣ　Ｐｌａｔｆｏｒｍを使用した。試料溶液から得られたスキャン曲線からベースライン（試料セルにも参照溶液を充填して得られたスキャン曲線）を差し引いてベースライン補正を行なった。図５０がｈ＃３２Ａ１－Ｈ５／Ｌ５のサーモグラム、図５１がｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１／Ｌ５のサーモグラム、図５２がｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１／Ｌ２－１５のサーモグラム、図５３がｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１／Ｌ２－１６のサーモグラムを示す。それぞれのピークトップ値をＦａｂ領域の熱変性中点Ｔｍとすると、ｈ＃３２Ａ１－Ｈ５／Ｌ５のＴｍ値が８１．２℃、ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１／Ｌ５のＴｍ値が８４．１℃、ｈ＃３２Ａ１－Ｈ１－１／Ｌ２－１５のＴｍ値が８０．０℃、ｈ＃３２Ａ１－１－１／Ｌ２－１６（ＩｇＧ２）のＴｍ値が７７．９℃、であった。
　本発明のキメラ又はヒト化抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体は破骨細胞の分化又は骨吸収活性の抑制能を有し、該抗Ｓｉｇｌｅｃ－１５抗体を含む医薬組成物は骨代謝異常疾患の治療又は予防剤となり得る。
ＦＥＲＭ　ＢＰ－１０９９９

Claims (70)

  1. 配列番号２に示されるアミノ酸配列の３９乃至１６５番目のアミノ酸残基からなるポリペプチドに結合し、破骨細胞の形成及び／又は破骨細胞による骨吸収を抑制する抗体又は該抗体の機能性断片。
  2. 重鎖配列が、CDRH1、CDRH2、CDRH3を有する可変領域を含み、前記CDRH1は配列番号４４に示されるアミノ酸配列からなり、前記CDRH2は配列番号４５又は配列番号９７に示されるいずれか一つのアミノ酸配列からなり、前記CDRH3は、配列番号４６に示されるアミノ酸配列からなること；及び
    軽鎖配列がCDRL1、CDRL2、CDRL3を有する可変領域を含み、前記CDRL1は配列番号４７に示されるアミノ酸配列からなり、前記CDRL2は配列番号４８に示されるアミノ酸配列からなり、前記CDRL3は、配列番号４９に示されるアミノ酸配列からなること；
    を特徴とする請求項１に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
  3. 配列番号４１に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなる重鎖可変領域配列及び配列番号４３に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３２番目のアミノ酸残基からなる軽鎖可変領域配列を含むことを特徴とする請求項２に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
  4. Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆａｂ’及びＦｖからなる群から選択される、請求項１乃至３のいずれか一つに記載の抗体の機能性断片。
  5. ｓｃＦｖであることを特徴とする、請求項１乃至３のいずれか一つに記載の抗体。
  6. キメラ抗体であることを特徴とする、請求項１乃至４のいずれか一つに記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
  7. 配列番号４１に示されるアミノ酸配列の２０乃至４７０番目のアミノ酸残基からなる重鎖配列及び配列番号４３に示されるアミノ酸配列の２１乃至２３７番目のアミノ酸残基からなる軽鎖配列からなることを特徴とする請求項６に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
  8. ヒト化されていることを特徴とする、請求項１乃至４又は６のいずれか一つに記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
  9. 重鎖がヒト免疫グロブリンＧ２重鎖の定常領域を含み、軽鎖がヒト免疫グロブリンκ軽鎖の定常領域を含む、請求項７又は８に記載の抗体。
  10. 破骨細胞の形成及び／又は破骨細胞による骨吸収を抑制する抗体又は該抗体の機能性断片であって、
    （ａ）以下のアミノ酸配列からなる群から選択される重鎖可変領域：
    ａ１）　配列番号５１に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列；
    ａ２）　配列番号５３に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列；
    ａ３）　配列番号５５に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列；
    ａ４）　配列番号５７に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列；
    ａ５）　配列番号５９に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列；
    ａ６）　配列番号９９に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列；
    ａ７）　配列番号１０１に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列；
    ａ８）　ａ１）乃至ａ７）から選択されるいずれか一つのアミノ酸配列と少なくとも９５％の相同性を持つアミノ酸配列；
    ａ９）　ａ１）乃至ａ７）から選択されるいずれか一つのアミノ酸配列と少なくとも９９％の相同性を持つアミノ酸配列；
    ａ１０）　ａ１）乃至ａ７）から選択されるいずれか一つのアミノ酸配列に１乃至数個のアミノ酸残基が置換、欠失又は付加されたアミノ酸配列；及び
    （ｂ）以下のアミノ酸配列からなる群から選択される軽鎖可変領域：
    ｂ１）　配列番号６１に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列；
    ｂ２）　配列番号６３に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列；
    ｂ３）　配列番号６５に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列；
    ｂ４）　配列番号６７に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３２番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列；
    ｂ５）　配列番号６９に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列；
    ｂ６）　配列番号７１に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列；
    ｂ７）　配列番号１０３に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列；
    ｂ８）　配列番号１０５に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列；
    ｂ９）　ｂ１）乃至ａ８）から選択されるいずれか一つのアミノ酸配列と少なくとも９５％の相同性を持つアミノ酸配列；
    ｂ１０）　ｂ１）乃至ｂ８）から選択されるいずれか一つのアミノ酸配列と少なくとも９９％の相同性を持つアミノ酸配列；
    ｂ１１）　ｂ１）乃至ｂ８）から選択されるいずれか一つのアミノ酸配列に１乃至数個のアミノ酸残基が置換、欠失又は付加されたアミノ酸配列；
    を含むことを特徴とする抗体又は該抗体の機能性断片。
  11. 配列番号５１に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域を含む重鎖配列及び配列番号６１に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む軽鎖配列を含むことを特徴とする請求項１０に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
  12. 配列番号５３に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域を含む重鎖配列及び配列番号６３に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む軽鎖配列を含むことを特徴とする請求項１０に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
  13. 配列番号５５に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域を含む重鎖配列及び配列番号６５に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む軽鎖配列を含むことを特徴とする請求項１０に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
  14. 配列番号５５に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域を含む重鎖配列及び配列番号６７に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む軽鎖配列を含むことを特徴とする請求項１０に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
  15. 配列番号５７に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域を含む重鎖配列及び配列番号６９に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む軽鎖配列を含むことを特徴とする請求項１０に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
  16. 配列番号５９に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域を含む重鎖配列及び配列番号７１に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む軽鎖配列を含むことを特徴とする請求項１０に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
  17. 配列番号９９に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域を含む重鎖配列及び配列番号６９に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む軽鎖配列を含むことを特徴とする請求項１０に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
  18. 配列番号１０１に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域を含む重鎖配列及び配列番号６９に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む軽鎖配列を含むことを特徴とする請求項１０に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
  19. 配列番号９９に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域を含む重鎖配列及び配列番号１０３に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む軽鎖配列を含むことを特徴とする請求項１０に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
  20. 配列番号９９に示されるアミノ酸配列の２０乃至１４０番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域を含む重鎖配列及び配列番号１０５に示されるアミノ酸配列の２１乃至１３３番目のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む軽鎖配列を含むことを特徴とする請求項１０に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
  21. 配列番号５１に示されるアミノ酸配列の２０乃至４７０番目のアミノ酸残基からなる重鎖配列及び配列番号６１に示されるアミノ酸配列の２１乃至２３８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖配列を含むことを特徴とする請求項１０に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
  22. 配列番号５３に示されるアミノ酸配列の２０乃至４７０番目のアミノ酸残基からなる重鎖配列及び配列番号６３に示されるアミノ酸配列の２１乃至２３８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖配列を含むことを特徴とする請求項１０に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
  23. 配列番号５５に示されるアミノ酸配列の２０乃至４７０番目のアミノ酸残基からなる重鎖配列及び配列番号６５に示されるアミノ酸配列の２１乃至２３８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖配列を含むことを特徴とする請求項１０に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
  24. 配列番号５５のアミノ酸配列に示される２０乃至４７０番目のアミノ酸残基からなる重鎖配列及び配列番号６７に示されるアミノ酸配列の２１乃至２３７番目のアミノ酸残基からなる軽鎖配列を含むことを特徴とする請求項１０に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
  25. 配列番号５７に示されるアミノ酸配列の２０乃至４７０番目のアミノ酸残基からなる重鎖配列及び配列番号６９に示されるアミノ酸配列の２１乃至２３８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖配列を含むことを特徴とする請求項１０に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
  26. 配列番号５９に示されるアミノ酸配列の２０乃至４７０番目のアミノ酸残基からなる重鎖配列及び配列番号７１に示されるアミノ酸配列の２１乃至２３８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖配列を含むことを特徴とする請求項１０に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
  27. 配列番号９９に示されるアミノ酸配列の２０乃至４６６番目のアミノ酸残基からなる重鎖配列及び配列番号６９に示されるアミノ酸配列の２１乃至２３８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖配列を含むことを特徴とする請求項１０に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
  28. 配列番号１０１に示されるアミノ酸配列の２０乃至４６６番目のアミノ酸残基からなる重鎖配列及び配列番号６９に示されるアミノ酸配列の２１乃至２３８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖配列を含むことを特徴とする請求項１０に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
  29. 配列番号９９に示されるアミノ酸配列の２０乃至４６６番目のアミノ酸残基からなる重鎖配列及び配列番号１０３に示されるアミノ酸配列の２１乃至２３８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖配列を含むことを特徴とする請求項１０に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
  30. 配列番号９９に示されるアミノ酸配列の２０乃至４６６番目のアミノ酸残基からなる重鎖配列及び配列番号１０５に示されるアミノ酸配列の２１乃至２３８番目のアミノ酸残基からなる軽鎖配列を含むことを特徴とする請求項１０に記載の抗体又は該抗体の機能性断片。
  31. 請求項１乃至３０に記載の抗体又は該抗体の機能性断片の少なくともいずれか一つを含有することを特徴とする、医薬組成物。
  32. 骨代謝異常の治療及び／又は予防剤であることを特徴とする、請求項３１に記載の医薬組成物。
  33. 請求項１乃至３０に記載の抗体又は該抗体の機能性断片の少なくともいずれか一つ、並びに、ビスホスホネート、活性型ビタミンＤ３、カルシトニン及びその誘導体、エストラジオール等のホルモン、ＳＥＲＭｓ（ｓｅｌｅｃｔｉｖｅ　ｅｓｔｒｏｇｅｎ　ｒｅｃｅｐｔｏｒ　ｍｏｄｕｌａｔｏｒｓ）、イプリフラボン、ビタミンＫ２（メナテトレノン）、カルシウム製剤、ＰＴＨ（ｐａｒａｔｈｙｒｏｉｄ　ｈｏｒｍｏｎｅ）、非ステロイド性抗炎症剤、可溶性ＴＮＦレセプター、抗ＴＮＦα抗体又は該抗体の機能性断片、抗ＰＴＨｒＰ（ｐａｒａｔｈｙｒｏｉｄ　ｈｏｒｍｏｎｅ－ｒｅｌａｔｅｄ　ｐｒｏｔｅｉｎ）抗体又は該抗体の機能性断片、ＩＬ－１レセプターアンタゴニスト、抗ＩＬ－６レセプター抗体又は該抗体の機能性断片、抗ＲＡＮＫＬ抗体又は該抗体の機能性断片、及びＯＣＩＦ（ｏｓｔｅｏｃｌａｓｔｏｇｅｎｅｓｉｓ　ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｙ　ｆａｃｔｏｒ）からなる群から選択される少なくともいずれか一つを含有することを特徴とする、骨代謝異常の治療及び／又は予防用医薬組成物。
  34. 骨代謝異常が、骨粗鬆症、関節リウマチに伴う骨破壊、癌性高カルシウム血症、多発性骨髄腫や癌の骨転移に伴う骨破壊、巨細胞腫、骨減少症、歯根膜炎による歯の喪失、人工関節周囲の骨融解、慢性骨髄炎における骨破壊、骨ページェット病、腎性骨異栄養症、及び骨形成不全症からなる群から選択される、請求項３２又は３３に記載の医薬組成物。
  35. 骨代謝異常が、骨粗鬆症、関節リウマチに伴う骨破壊、又は癌の骨転移に伴う骨破壊であることを特徴とする、請求項３４に記載の医薬組成物。
  36. 骨代謝異常が、骨粗鬆症であることを特徴とする、請求項３５に記載の医薬組成物。
  37. 骨粗鬆症が、閉経後骨粗鬆症、老人性骨粗鬆症、ステロイドや免疫抑制剤等の治療用薬剤の使用による続発性骨粗鬆症、又は関節リウマチに伴う骨粗鬆症であることを特徴とする請求項３６に記載の医薬組成物。
  38. 請求項１乃至３０に記載の抗体又は該抗体の機能性断片の少なくともいずれか一つを投与することを特徴とする、骨代謝異常の治療及び／又は予防方法。
  39. 請求項１乃至３０に記載の抗体又は該抗体の機能性断片の少なくともいずれか一つ、並びに、ビスホスホネート、活性型ビタミンＤ３、カルシトニン及びその誘導体、エストラジオール等のホルモン、ＳＥＲＭｓ（ｓｅｌｅｃｔｉｖｅ　ｅｓｔｒｏｇｅｎ　ｒｅｃｅｐｔｏｒ　ｍｏｄｕｌａｔｏｒｓ）、イプリフラボン、ビタミンＫ２（メナテトレノン）、カルシウム製剤、ＰＴＨ（ｐａｒａｔｈｙｒｏｉｄ　ｈｏｒｍｏｎｅ）、非ステロイド性抗炎症剤、可溶性ＴＮＦレセプター、抗ＴＮＦα抗体又は該抗体の機能性断片、抗ＰＴＨｒＰ（ｐａｒａｔｈｙｒｏｉｄ　ｈｏｒｍｏｎｅ－ｒｅｌａｔｅｄ　ｐｒｏｔｅｉｎ）抗体又は該抗体の機能性断片、ＩＬ－１レセプターアンタゴニスト、抗ＩＬ－６レセプター抗体又は該抗体の機能性断片、抗ＲＡＮＫＬ抗体又は該抗体の機能性断片、及びＯＣＩＦ（ｏｓｔｅｏｃｌａｓｔｏｇｅｎｅｓｉｓ　ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｙ　ｆａｃｔｏｒ）からなる群から選択される少なくともいずれか一つを同時又は連続して投与することを特徴とする、骨代謝異常の治療及び／又は予防方法。
  40. 骨代謝異常が、骨粗鬆症、関節リウマチに伴う骨破壊、又は癌の骨転移に伴う骨破壊であることを特徴とする、請求項３８又は３９に記載の治療及び／又は予防方法。
  41. 骨代謝異常が、骨粗鬆症であることを特徴とする、請求項４０に記載の治療及び／又は予防方法。
  42. 骨粗鬆症が、閉経後骨粗鬆症、老人性骨粗鬆症、ステロイドや免疫抑制剤等の治療用薬剤の使用による続発性骨粗鬆症、又は関節リウマチに伴う骨粗鬆症であることを特徴とする請求項４１に記載の治療及び／又は予防方法。
  43. 請求項３、７又は１０乃至３０のいずれか一つに記載の抗体をコードするポリヌクレオチド。
  44. 請求項４３に記載のポリヌクレオチドであって、配列番号４０に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列及び配列番号４２に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９６番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列を含むことを特徴とするポリヌクレオチド。
  45. 配列番号４０に示されるヌクレオチド配列の５８乃至１４１０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列及び配列番号４２に示されるヌクレオチド配列の６１乃至７１１番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列を含むことを特徴とする請求項４４に記載のポリヌクレオチド。
  46. 請求項４３に記載のポリヌクレオチドであって、
    （ａ）以下のヌクレオチド配列からなる群から選択されるポリヌクレオチド：
    ａ１）　配列番号５０に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列；
    ａ２）　配列番号５２に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列；
    ａ３）　配列番号５４に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列；
    ａ４）　配列番号５６に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列；
    ａ５）　配列番号５８に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列；
    ａ６）　配列番号９８に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列；
    ａ７）　配列番号１００に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列；
    ａ８）　ａ１）乃至ａ７）から選択されるいずれか一つのヌクレオチド配列と相補的なヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズするポリヌクレオチドが保有するヌクレオチド配列；
    ａ９）　ａ１）乃至ａ７）から選択されるいずれか一つのヌクレオチド配列に１乃至数個のアミノ酸残基が置換、欠失又は付加されたヌクレオチド配列；及び
    （ｂ）以下のヌクレオチド配列からなる群から選択されるポリヌクレオチド：
    ｂ１）　配列番号６０に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列；
    ｂ２）　配列番号６２に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列；
    ｂ３）　配列番号６４に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列；
    ｂ４）　配列番号６６に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９６番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列；
    ｂ５）　配列番号６８に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列；
    ｂ６）　配列番号７０に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列；
    ｂ７）　配列番号１０２に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列；
    ｂ８）　配列番号１０４に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列；
    ｂ９）　ｂ１）乃至ｂ８）から選択されるいずれか一つのヌクレオチド配列と相補的なヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズするポリヌクレオチドが保有するヌクレオチド配列；
    ｂ１０）　ｂ１）乃至ｂ８）から選択されるいずれか一つのヌクレオチド配列に１乃至数個のヌクレオチドが置換、欠失又は付加されたヌクレオチド配列；
    を含むことを特徴とするポリヌクレオチド。
  47. 配列番号５０に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号６０に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする請求項４６に記載のポリヌクレオチド。
  48. 配列番号５２に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号６２に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする請求項４６に記載のポリヌクレオチド。
  49. 配列番号５４に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号６４に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする請求項４６に記載のポリヌクレオチド。
  50. 配列番号５４に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号６６に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする請求項４６に記載のポリヌクレオチド。
  51. 配列番号５６に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号６８に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする請求項４６に記載のポリヌクレオチド。
  52. 配列番号５８に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号７０に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする請求項４６に記載のポリヌクレオチド。
  53. 配列番号９８に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号６８に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする請求項４６に記載のポリヌクレオチド。
  54. 配列番号１００に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号６８に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする請求項４６に記載のポリヌクレオチド。
  55. 配列番号９８に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号１０２に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする請求項４６に記載のポリヌクレオチド。
  56. 配列番号９８に示されるヌクレオチド配列の５８乃至４２０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号１０４に示されるヌクレオチド配列の６１乃至３９９番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする請求項４６に記載のポリヌクレオチド。
  57. 配列番号５０に示されるヌクレオチド配列の５８乃至１４１０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号６０に示されるヌクレオチド配列の６１乃至７１４番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする請求項４６に記載のポリヌクレオチド。
  58. 配列番号５２に示されるヌクレオチド配列の５８乃至１４１０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号６２に示されるヌクレオチド配列の６１乃至７１４番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする請求項４６に記載のポリヌクレオチド。
  59. 配列番号５４に示されるヌクレオチド配列の５８乃至１４１０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号６４に示されるヌクレオチド配列の６１乃至７１４番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする請求項４６に記載のポリヌクレオチド。
  60. 配列番号５４に示されるヌクレオチド配列の５８乃至１４１０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号６６に示されるヌクレオチド配列の６１乃至７１１番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする請求項４６に記載のポリヌクレオチド。
  61. 配列番号５６に示されるヌクレオチド配列の５８乃至１４１０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号６８に示されるヌクレオチド配列の６１乃至７１４番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする請求項４６に記載のポリヌクレオチド。
  62. 配列番号５８に示されるヌクレオチド配列の５８乃至１４１０番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号７０に示されるヌクレオチド配列の６１乃至７１４番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする請求項４６に記載のポリヌクレオチド。
  63. 配列番号９８に示されるヌクレオチド配列の５８乃至１３９８番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号６８に示されるヌクレオチド配列の６１乃至７１４番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする請求項４６に記載のポリヌクレオチド。
  64. 配列番号１００に示されるヌクレオチド配列の５８乃至１３９８番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号６８に示されるヌクレオチド配列の６１乃至７１４番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする請求項４６に記載のポリヌクレオチド。
  65. 配列番号９８に示されるヌクレオチド配列の５８乃至１３９８番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号１０２に示されるヌクレオチド配列の６１乃至７１４番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする請求項４６に記載のポリヌクレオチド。
  66. 配列番号９８に示されるヌクレオチド配列の５８乃至１３９８番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド及び配列番号１０４に示されるヌクレオチド配列の６１乃至７１４番目のヌクレオチドからなるヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする請求項４６に記載のポリヌクレオチド。
  67. 請求項４３乃至６６に記載のいずれか一つのポリヌクレオチドを含むベクター。
  68. 請求項４３乃至６６に記載のいずれか一つのポリヌクレオチドを含む形質転換宿主細胞。
  69. 請求項６７に記載のベクターを含む形質転換宿主細胞。
  70. 請求項６８又は６９に記載の宿主細胞を培養し、培養産物から抗体を精製する工程を含む請求項３、７又は１０乃至３０に記載の抗体の生産方法。
     
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