WO2010087344A1 - シゾサッカロミセス・ポンベの形質転換方法および形質転換体、ならびに異種蛋白質の製造方法 - Google Patents

シゾサッカロミセス・ポンベの形質転換方法および形質転換体、ならびに異種蛋白質の製造方法 Download PDF

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WO2010087344A1
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WO
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schizosaccharomyces pombe
heterologous protein
transformant
chromosome
vector
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PCT/JP2010/050984
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アリムジャン イディリス
英毅 東田
Yuko HAMA (浜 祐子)
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旭硝子株式会社
浜 千尋
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    • C12P21/00—Preparation of peptides or proteins

Definitions

  • the present invention relates to a transformation method and a transformant of Schizosaccharomyces pombe, and a method for producing a heterologous protein.
  • a technology that uses genetic recombination technology to produce a heterologous protein that is not originally produced by a host using a transformant into which a foreign gene (heterologous protein structural gene) encoded by the protein is introduced is widely used in various industries. ing.
  • a method using a microorganism that is a eukaryote as a host is particularly good when producing a protein derived from a eukaryote.
  • many expression systems used as hosts have been developed because yeast does not contain substances that adversely affect the human body, and because it is a single cell, it is easy to handle.
  • Schizosaccharomyces pombe which is a fission yeast
  • S. pombe has a cell cycle, a chromosomal structure, RNA splicing, and the like, compared with budding yeast such as Saccharomyces cerevisiae. Is more similar to that of animal cells, and the post-translational modification of the protein produced can be more complex than that of animal cells.
  • the expression vector integrated into the chromosome is present without dropping until after passage of the 50th generation.
  • industrial production of heterologous proteins requires stable production of heterologous proteins by continuous culture over a longer period of time, further improvement of the maintenance stability in the passage of transformants is expected. It is rare.
  • the present invention provides a transformant that is excellent in passage stability and that can stably produce the desired heterologous protein.
  • the present invention is directed to a method for transforming pombe, a transformant thereof, and a method for producing a heterologous protein using the transformant.
  • [2] The method for transforming Schizosaccharomyces pombe according to [1], wherein the target site is present in 5 or more sites in the Schizosaccharomyces pombe chromosome.
  • [3] The method for transforming Schizosaccharomyces pombe according to the above [1] or [2], wherein the target site is a base sequence in the transposon gene Tf2.
  • An expression cassette containing a promoter that functions in Schizosaccharomyces pombe, a heterologous protein structural gene, and a terminator, and a recombination site for homologous recombination with the chromosome of Schizosaccharomyces pombe A transformation method for incorporating the expression cassette into the target site of the chromosome of Schizosaccharomyces pombe by homologous recombination, wherein the target site of the chromosome of Schizosaccharomyces pombe is located in the transposon gene Tf2.
  • [5] The method for transforming Schizosaccharomyces pombe according to any one of the above [1] to [4], wherein one in which the expression cassette is incorporated at two or more of the target sites is selected.
  • [6] The method for transforming Schizosaccharomyces pombe according to any one of the above [1] to [5], wherein the vector comprises two or more expression cassettes.
  • [7] The schizophrenia according to any one of [1] to [6] above, wherein after the homologous recombination is performed, one having a total number of 3 to 40 expression cassettes integrated into the chromosome is selected. Transformation method of Saccharomyces pombe.
  • a transformant that is superior in the maintenance stability of passage and can stably produce the target heterologous protein can be obtained.
  • the transformant of the present invention is superior in passage maintenance stability, and the target heterologous protein can be produced more stably.
  • the method for producing a heterologous protein of the present invention uses a transformant that is superior in passage stability, the target heterologous protein can be produced more stably.
  • the transformant in the present invention is S. cerevisiae. Pombe is used as a host, and the S. It is obtained by incorporating an expression cassette containing a promoter that functions in pombe, a heterologous protein structural gene (gene encoding a heterologous protein), and a terminator. S. used in the present invention.
  • the pombe may be a wild type, or a mutant type in which a specific gene is deleted or inactivated depending on the use.
  • a known method can be used as a method for deleting or inactivating a specific gene. Specifically, a gene can be deleted by using the Latour method (Nucleic Acids Res (2006) 34: e11, described in International Publication No.
  • S. cerevisiae used as a host. It is preferable to use a pombe having a marker for selecting a transformant. For example, it is preferable to use a host in which a specific nutritional component is essential for growth because a certain gene is missing. By incorporating this missing gene (auxotrophic complementary marker) into the vector, the transformant loses the auxotrophy of the host. Due to the difference in auxotrophy between the host and the transformant, the transformant can be obtained by distinguishing both. For example, an orotidine phosphate decarboxylase gene (ura4 gene) has been deleted or inactivated and has become uracil-requiring.
  • ura4 gene an orotidine phosphate decarboxylase gene
  • a transformant incorporating the vector can be obtained by selecting those that have lost uracil requirement.
  • the gene that becomes auxotrophic due to deletion in the host is not limited to the ura4 gene as long as it is used for selection of transformants, and may be an isopropylmalate dehydrogenase gene (leu1 gene) or the like.
  • the vector in the present invention comprises a heterologous protein structural gene and S. cerevisiae.
  • An expression cassette comprising a promoter and terminator that functions in Pombe; It has a recombination site that allows homologous recombination to occur in the pombe chromosome.
  • An expression cassette is a combination of DNAs necessary for expressing a heterologous protein encoded by a heterologous protein structural gene. Includes a promoter and terminator that function within the pombe.
  • the expression cassette may further contain any one or more of 5′-untranslated region and 3′-untranslated region.
  • a preferred expression cassette is an expression cassette containing all of the heterologous protein structural gene, promoter, terminator, 5′-untranslated region, and 3′-untranslated region. Furthermore, the auxotrophic complementary marker, S. cerevisiae, introduced into the 5 ′ end of the heterologous protein structural gene. It may have a gene such as a secretory signal gene that functions in the pombe.
  • a heterologous protein structural gene is a gene encoding a heterologous protein.
  • the heterologous protein in the present invention means S. cerevisiae. It means a protein that is not naturally produced by pombe (wild-type S. pombe does not have a gene encoding the protein).
  • the heterologous protein is not particularly limited, but is a pharmaceutical raw material protein produced by humans and other mammals, an industrial enzyme protein produced by microorganisms, or a food material protein produced by plants, because of its superior industrial value. Is preferred.
  • the promoter and terminator are the host S. cerevisiae. Any substance that functions in a pombe and can express a heterologous protein may be used. S. Examples of promoters that function in pombe include S. cerevisiae. Pombe's inherent promoter (preferably having high transcription initiation activity) or S. A promoter (eg, a virus-derived promoter) that Pombe does not originally have can be used. Two or more promoters may be present in the vector. S.
  • promoters inherent in Pombe include alcohol dehydrogenase gene promoter, nmt1 gene promoter involved in thiamine metabolism, fructose-1, 6-bisphosphatase gene promoter involved in glucose metabolism, and invertase gene involved in catabolite repression. Examples include promoters (see International Publication No. 99/23223 pamphlet), heat shock protein gene promoters (see International Publication No. 2007/26617 pamphlet), and the like.
  • promoters that Pombe does not originally include are promoters derived from animal cell viruses described in JP-A-5-15380, JP-A-7-163373, and JP-A-10-234375, and CMV A promoter, SV40 promoter is preferred. S.
  • S. Pombe's inherent terminator and S.P. A terminator that Pombe does not originally have can be used. Two or more terminators may be present in the vector. Examples of the terminator include human terminators described in JP-A-5-15380, JP-A-7-163373, and JP-A-10-234375, and human lipocortin I terminator is preferable. .
  • the vector in the present invention preferably contains a selection marker.
  • a vector incorporating the auxotrophic complementary marker according to the auxotrophy of the host.
  • a secretory signal gene that functions in pombe is a gene having a function of secreting an expressed heterologous protein outside the host cell.
  • a heterologous protein with a secretory signal bound to the N-terminal side is expressed from a heterologous protein structural gene to which the secretory signal gene is bound.
  • the secretory signal is deleted in the endoplasmic reticulum or Golgi apparatus in the host, and then the secretory signal is deleted.
  • the heterologous protein is secreted extracellularly.
  • the secretion signal gene (and secretion signal) is It is necessary to function in the pombe. S. As a secretory signal gene that functions in pombe, for example, those described in International Publication No. 1996/23890 pamphlet can be used.
  • the vector in the present invention is a vector having a circular DNA structure or a linear DNA structure.
  • a linear DNA structure that is, in the case of a vector having a circular DNA structure such as a commonly used plasmid DNA, S. It is preferable to introduce into pombe cells.
  • the position for opening the vector having a circular DNA structure is within the recombination site.
  • the recombination sites partially exist at both ends of the opened vector, and the entire vector is integrated into the target site of the chromosome by homologous recombination.
  • the vector can have a linear DNA structure in which a part of the recombination site exists at each end, a method other than the method of cleaving a vector having a circular DNA structure, such as an enzymatic amplification method or a chemistry by PCR. It may be constructed by a synthesis method.
  • plasmids derived from E. coli such as pBR322, pBR325, pUC118, pUC119, pUC18, and pUC19 can be preferably used.
  • a vector constructed using a plasmid derived from E. coli usually has a replication initiation region called “ori” necessary for replication in E. coli. Even when not using the above-mentioned plasmid derived from Escherichia coli, when using Escherichia coli to construct and amplify the vector in the present invention, the above “ori” is utilized, and the vector having “ori” Is obtained.
  • the vector used for homologous recombination preferably has a replication initiation region called “ori” that is necessary for replication in E. coli.
  • ori replication initiation region
  • the method for constructing the vector from which the replication initiation region has been removed is not particularly limited, but the method described in JP-A-2000-262284 is preferably used. That is, a method is preferred in which a precursor vector in which a replication initiation region is inserted at the cleavage site in the recombination site is constructed so that the replication initiation region is excised at the same time as the linear DNA structure as described above. Thereby, a vector from which the replication initiation region has been easily removed can be obtained.
  • a method may be used in which a precursor vector having an expression cassette and a recombination site is constructed, and a vector used for homologous recombination is obtained by removing the replication initiation region from the precursor vector by a normal genetic engineering technique.
  • the number of expression cassettes in the vector may be only one or two or more. Even if the number of expression cassettes in the vector is 1, Two or more expression cassettes may be incorporated at the same location on the pombe chromosome. If the number of expression cassettes in the vector is 2 or more, S. cerevisiae is used. A plurality of expression cassettes are continuously integrated at the same location on the pombe chromosome.
  • the vector in the present invention preferably has 1 to 8 expression cassettes, particularly preferably 2 to 4 expression cassettes. If the number of expression cassettes in the vector is 2 or more, S. It becomes easy to increase the number of expression cassettes incorporated into the pombe chromosome and increase the expression level of the heterologous protein. However, in the present invention, when the number of target sites described later is large, the number of expression cassettes to be incorporated can be increased even if the number is one. Moreover, if the number of expression cassettes contained in the vector is 8 or less, it is easy to suppress the reduction of the vector integration efficiency due to homologous recombination due to the vector becoming too large. If the number of expression cassettes is 4 or less, the incorporation efficiency can be further increased.
  • the recombination site of the vector is S. This is a site having a base sequence that allows homologous recombination to be performed on a target site for homologous recombination in the pombe chromosome.
  • the target site is S. pneumoniae. This is a target site for integrating the expression cassette in the pombe chromosome.
  • the target site can be freely set by setting the recombination site of the vector to a base sequence that allows homologous recombination to be performed on the target site.
  • the homology between the base sequence of the recombination site and the base sequence of the target site must be 70% or more. Further, the homology between the base sequence of the recombination site and the base sequence of the target site is preferably 90% or more, and more preferably 95% or more from the viewpoint that homologous recombination is likely to occur.
  • the expression cassette is incorporated into the target site by homologous recombination.
  • the length (number of bases) of the recombination site is preferably 20 to 2000 bp.
  • the length of the recombination site is 20 bp or more, homologous recombination is likely to occur. Moreover, if the length of the recombination site is 2000 bp or less, it is easy to prevent the vector from becoming too long and causing homologous recombination to hardly occur.
  • the length of the recombination site is more preferably 100 bp or more, and further preferably 200 bp or more. Further, the length of the recombination site is more preferably 800 bp or less, and further preferably 400 bp or less.
  • Target sites incorporating the expression cassette are S. cerevisiae.
  • Target sites incorporating the expression cassette are S. cerevisiae.
  • the three chromosomes possessed by pombe (1) two or more target sites existing on different chromosomes, or (2) multiple positions of the same chromosome so that one or more essential genes are sandwiched between them Or two or more target sites that satisfy both (1) and (2).
  • These two or more target sites are sites having substantially the same base sequence.
  • the substantially identical base sequence means that the homology of the base sequences of the target sites is 90% or more.
  • the homology between target sites is preferably 95% or more, and more preferably 99% or more.
  • the above essential gene means a gene that cannot grow when the gene is deleted or inactivated, that is, a gene that is essential for the growth of the transformant of the present invention. Therefore, if the expression cassette introduced across this essential gene is dropped, the essential gene is also dropped and the transformant cannot grow. Thereby, in the culture of the transformant, there is less risk that the transformant from which the expression cassette has been dropped will grow together with the transformant from which the expression cassette has not been dropped, and the possibility that the production efficiency of the heterologous protein will be reduced ( This is because the transformant from which the expression cassette is usually removed has a higher growth rate).
  • the target site is S.P. Since the expression cassettes are dispersed and incorporated in the chromosome due to the presence in the pombe chromosomes, the incorporated expression cassettes are difficult to drop off, and the maintenance stability in passage is extremely high. Therefore, a heterologous protein can be stably produced with high productivity. In addition, by setting the target sites having substantially the same base sequence in this way, even if a plurality of target sites exist at different positions, the vector can be easily incorporated into these target sites with a single vector. it can.
  • the number of target sites into which the vector is incorporated is preferably 5 or more. If the number of target sites is 5 or more, it becomes easy to increase the number of expression cassettes incorporated into the chromosome, so that the productivity of the heterologous protein is further improved. More preferably, the target site is 10 to 60 sites. If there are 10 or more target sites, the number of expression cassettes incorporated into the chromosome can be further increased, and the productivity of heterologous proteins can be further improved. If the target site is 60 sites or less, it is easy to suppress that the expression cassette incorporated in the chromosome becomes too much and the expression level of the heterologous protein decreases.
  • the target site is a S. cerevisiae vector.
  • the transposon gene Tf2 (a total of 13 locations on each of the three chromosomes, having a total length (number of bases) of about 4900 bp) is that the expression cassette can be incorporated at once into the target sites that are dispersed and present on a plurality of pombe chromosomes.
  • the base sequence homology with each other is 99.7%. (Literature name) Nathan J. Bowen et al, “Retrotransposons and Their Recognition of pol II Promoters: A Comprehensive Survey of the Transposable Elements From the Complete Genome Sequence of Schizosaccharomyces pombe”, Genome Res. 2003 13: 1984-1997
  • the target site is not limited to the above.
  • a target site eg, a gene
  • a target site having a plurality of substantially identical base sequences having a length equal to or longer than the recombination site in the chromosome
  • a vector may be introduced into the target site.
  • Transformant, transformation method S. of the present invention.
  • the method for transforming Pombe uses S. cerevisiae as the host by homologous recombination using the vector. This is a method of incorporating an expression cassette into the target site of the pombe chromosome.
  • a publicly known or well-known method can be used (for example, see JP-A-2000-262284).
  • the transformant of the present invention is a transformant obtained by this transformation method.
  • the vector is S. cerevisiae. It may be integrated into one of the target sites present in a plurality of locations in the pombe chromosome, or may be integrated into two or more locations. In the present invention, it is preferable to select a vector in which the vector is incorporated at two or more locations. Moreover, a vector may be integrated in all the locations of the target site which exists in multiple places in a chromosome, and may be integrated only in a part of target sites. If too many expression cassettes are incorporated into the chromosome, the expression level of the heterologous protein may be reduced. Therefore, the number of target sites into which the vector is incorporated is preferably 20 or less.
  • the vector may be incorporated in all the target sites, and if the number of target sites existing in the chromosome exceeds 20, the vector
  • the number of target sites into which is incorporated is preferably 20 or less. More preferably, the number of target sites into which the vector is incorporated is 2 to 15 (however, if the number of target sites is less than 15), 3 to 10 (however, the number of target sites) Is less than 10 locations, the number of target sites) is preferred.
  • the target site is the transposon gene Tf2 (the number of target sites is 13)
  • the number of Tf2 into which the vector is incorporated is preferably 2 to 13, and particularly preferably 2 to 8.
  • the vector may have two or more expression cassettes. Therefore, the total number of expression cassettes integrated into the chromosome is the product of the number of expression cassettes in the vector and the number of target sites into which the vector has been integrated.
  • the total number of expression cassettes in the chromosome is preferably 2 to 40, more preferably 2 to 20. If too many expression cassettes are incorporated into the chromosome, the expression level of the heterologous protein may be reduced. For this reason, the total number of expression cassettes incorporated into the chromosome is preferably 40 or less, more preferably 20 or less.
  • the obtained transformant is usually selected after homologous recombination.
  • the selection method include the following methods. Screening is performed with a medium capable of selecting transformants using the auxotrophic marker, and a plurality of colonies obtained are selected. Next, after separately cultivating them, the expression level of the heterologous protein in each culture solution is examined, and a transformant with a higher expression level of the heterologous protein is selected. Moreover, the number of vectors integrated in the chromosome and the number of expression cassettes can be examined by performing genome analysis by pulse field gel electrophoresis on the selected transformants.
  • the number of vectors integrated into the chromosome can be adjusted to some extent by adjusting the integration conditions and the like, but it is considered that the integration efficiency and the number of integrations vary depending on the size (number of bases) and structure of the vector.
  • the object of the present invention is to obtain a transformant with high expression efficiency of a heterologous protein, and not simply to obtain a transformant having a larger total number of expression cassettes. In general, it is expected that the expression efficiency increases as the number of expression cassettes increases. However, if the number of expression cassettes is too large, the load on the survival and proliferation of cells increases, and thus the expression efficiency of heterologous proteins decreases.
  • the size of the vector is considered to be influenced not only by the number of expression cassettes but also by the length (number of bases) of the heterologous protein structural gene. Therefore, it is considered that the number of expression cassettes to be incorporated is limited when the heterologous protein structural gene is long compared to when the heterologous protein structural gene is short. In addition, it seems that the heterologous protein structural gene changes not only with its length but also with the type of gene such as its sequence composition.
  • the transformant of the present invention is a transformant obtained by the transformation method of the present invention.
  • This transformant has two or more expression cassettes and has higher expression efficiency than a transformant having one identical expression cassette.
  • the optimal total number of expression cassettes for obtaining a transformant with high heterologous protein expression efficiency is considered to vary depending on requirements such as the length and type of the heterologous protein structural gene as described above. However, as long as transformants with a ratio equal to or higher than the homologous recombination method are generated, transformants can be obtained by selection, and obtained by measuring the expression efficiency of heterologous proteins in the obtained transformants. A strain having high expression efficiency of a heterologous protein can be selected from the transformants.
  • the number of expression cassettes in the transformant can be measured to correlate the expression efficiency with the number of expression cassettes. If one kind of heterologous protein structural gene is targeted, the expression efficiency usually increases as the number of expression cassettes increases to some extent. However, it is considered that the relationship between the number of expression cassettes and the expression efficiency may not be constant between different heterologous protein structural genes.
  • the transformant of the present invention incorporates the expression cassettes dispersedly in the chromosome, so that the maintenance stability in passage is extremely high. Get higher. For example, as compared to the case where expression cassettes are concentrated in one place, the load of proliferation and expression is distributed, and even if the expression cassette is dropped in one place, the expression cassettes in other places remain. Because it is considered.
  • an expression cassette is introduced into each of two or more target sites using different vectors for each target site (vectors with different base sequences of recombination sites) to obtain a transformant having an expression cassette at multiple locations.
  • the expression cassette is simultaneously introduced into a plurality of target sites using the same vector, the production of the transformant becomes extremely easy.
  • the method for producing a heterologous protein of the present invention is a method for culturing the transformant of the present invention and obtaining the heterologous protein produced by the transformant.
  • a known yeast culture medium can be used as the culture solution. Containing carbon sources, nitrogen sources, inorganic salts, etc. that can be utilized by Pombe; Any material that can efficiently culture pombe is acceptable.
  • a natural medium or a synthetic medium may be used as the culture solution.
  • Examples of the carbon source include sugars such as glucose, fructose, and sucrose.
  • Examples of the nitrogen source include inorganic acids such as ammonia, ammonium chloride, and ammonium acetate, ammonium salts of inorganic acids, peptone, casamino acids, and the like.
  • examples of inorganic salts include magnesium phosphate, magnesium sulfate, and sodium chloride.
  • a well-known yeast culture method can be used for culture
  • the culture temperature is preferably 23 to 37 ° C.
  • the culture time can be determined as appropriate.
  • the culture may be batch culture or continuous culture.
  • a known protein obtaining method can be used for obtaining the heterologous protein. For example, after culturing, the cells are separated from the culture solution, the separated cells are destroyed to obtain a component containing the target heterologous protein, and the target heterologous protein is obtained from the component using a known protein purification method it can.
  • a heterologous protein is secreted into the culture medium from a transformant obtained using an expression vector having a heterologous protein structural gene combined with a secretory signal gene. Therefore, in this case, the target heterologous protein can be obtained from the culture solution using a known protein purification method.
  • the heterologous protein can be efficiently obtained using a method of culturing the transformant in continuous culture. For example, there is a method of continuously culturing by obtaining a heterologous protein from a culture solution cultured for a certain period of time, collecting the culture supernatant, adding the culture solution to the culture supernatant again, and culturing.
  • Example 1 Identification of a locus capable of integrating an expression cassette by a single transformation Highly conserved in a fission yeast chromosome, which is considered to be suitable for simultaneously integrating an expression cassette into many locations at once. Numerous sequence duplications have been revealed by chromosomal sequencing (Wood et al., Nature 415, 871-880, 2002). Therefore, using the gene database (http://www.genedb.org/genedb/) of the Sanger Institute, gene loci capable of incorporating an exhaustive expression cassette in one transformation. Identified.
  • Tf2-integrated vector A vector pTf2-ura4-EGFP (R) (Fig. 2) capable of incorporating an expression cassette of green fluorescent protein (GFP) into the Tf2 locus is shown in the following method. It was produced with. That is, using a whole genome DNA extraction kit (DNeasy manufactured by Qiagen) from cells, S. cerevisiae was used.
  • DNeasy manufactured by Qiagen DNeasy manufactured by Qiagen
  • Pombe total genomic DNA was purified, 1 ⁇ g of which was used as a template, a primer pair in which a restriction enzyme BsiWI recognition sequence (CGTACG) was introduced at the 5 ′ end, 5′-AAGGCCTGCGGTGAAAGCAAGGAGAAACGA-3 ′ and 5′-AAGGCCCTCGTACGCTGCTTTTGTCCT 'And the PCR method.
  • a DNA fragment (about 3950 base pairs) of Pombe Tf2-2 (line name SPAC167.08 gene listed in GeneDB) was amplified. Both ends of the amplified DNA fragment were treated with the restriction enzyme BsiWI, separated and purified by agarose gel electrophoresis, and prepared as an insert fragment.
  • chromosomal integration vector pXL4 (Idiris et al. Et al., Yeast magazine 23: 83-99, 2006) was digested with the same restriction enzyme BsiWI, and the ampicillin resistance gene (ApR) and the origin of replication of E. coli were also digested. A region (approximately 2130 base pairs) containing (pBR322 ori) was obtained.
  • the DNA fragment was further dephosphorylated with a dephosphorylating enzyme (CIAP manufactured by Takara Bio Inc.), separated and purified by agarose gel electrophoresis, and prepared as a vector fragment.
  • the insert fragment and the vector fragment were ligated using a ligation kit (DNA Ligation Kit ver.
  • Both ends are digested with KpnI, separated and purified by agarose gel electrophoresis, self-circularized using a ligation kit, and 6058 base pairs having a multicloning site (MCS) inside the transposon gene Tf2-2 sequence.
  • the vector pTf2 (MCS) was prepared.
  • the construction vector pTf2 (MCS) was double digested with restriction enzymes KpnI and NheI, and a 6040 base pair fragment was separated and purified by agarose gel electrophoresis. In addition, S.
  • MCS 8246 base pair vector pTf2
  • MCS multiple cloning site
  • the above construction vector pTf2 (MCS) -ura4 was digested with the restriction enzyme SalI, both ends of the obtained 8246 base pair fragment were blunted with a blunting kit (manufactured by Takara Bio Inc., DNA Blunting kit), and agarose gel electrophoresis After separation and purification by the above method, vector fragments were prepared by dephosphorylation. Furthermore, pTL2EGFP1 was double digested with restriction enzymes SpeI and Bst1107I, a 1720 base pair GFP expression cassette was excised, blunted with a blunting kit at both ends, separated and purified by agarose gel electrophoresis, and inserted. A fragment. The above vector and the insert fragment were ligated using a ligation kit to prepare a Tf2-integrated vector pTf2-ura4-EGFP (R) (FIG. 2).
  • Example 3 Acquisition of transformant 3 ⁇ g of the Tf2 integration vector pTf2-ura4-EGFP (R) prepared in Example 2 was digested with the restriction enzyme BsiWI, and the total amount was used to determine the method of Okazaki et al.
  • the fission yeast ARC010 strain (genotype: h-leu1-32 ura4-D18) was transformed by Nucleic Acids Research, Vol. 18, pp. 6485-6489 (1990). The transformant was smeared on the surface of a minimal medium (MMA + leu) supplemented with leucine and cultured at 32 ° C. for 4 days.
  • GFP green fluorescent protein
  • YES liquid medium yeast extract (Becton Dickinson) 5 g / l, glucose (Wako Pure Chemical Industries) 30 g / l, SP Supplements (Qbiogene) 250 mg / l
  • YES liquid medium yeast extract (Becton Dickinson) 5 g / l, glucose (Wako Pure Chemical Industries) 30 g / l, SP Supplements (Qbiogene) 250 mg / l
  • Example 4 Analysis of integration position on chromosome and copy number Total DNA fraction was extracted from the transformant prepared in Example 3. Using the DNA as a template, the vector-side common primer 5′-GGTGATGACGGTGAAAACCT-3 ′ was combined with each of the 13 Tf2 gene-specific primer pairs shown in Table 1, and KOD Plus (Toyobo Co., Ltd.) was used. PCR was performed to analyze the integration position and copy number of the expression cassette on the chromosome. As a result, as shown in FIG. 3, it was found that a total of five expression cassettes were incorporated at five locations Tf2-1, 2, 6, 7, and 8.
  • Example 5 Comparison of maintenance stability of expression cassette in passaging Comparison of maintenance stability of expression cassette in passaging between the transformant prepared in Example 3 and the strain described in JP-A-2000-262284 I did it. Clone isolation is performed by culturing the above two strains to be evaluated once in 5 ml of YES liquid medium (test tube) and twice in 50 ml of YES liquid medium (erlenmeyer flask), and then applying to YES solid medium. went. Twenty-two isolated clones were randomly selected for each strain, inoculated again into 1 ml of YES liquid medium, and cultured with shaking in a 24-well culture plate for about 24 hours. Two bacterial solutions before isolation were also cultured as a target at the same time.
  • the transformant (pTL2 (ura4-EGFP)) prepared in Example 3 has a fluorescence intensity per OD660 of 21.1, a strain described in JP 2000-262284 A (pTL2 (EGFP-8XL)). ) was almost equivalent to 21.2. However, as shown in FIG. 4, the variation of the former calculated from the standard deviation was ⁇ 11%, whereas the latter was 30%. Maintenance stability was shown.
  • the target heterologous protein can be stably produced with high productivity. Therefore, it can be suitably used for the production of heterologous proteins in various industries.
  • the entire contents of the specification, claims, drawings and abstract of Japanese Patent Application No. 2009-015472 filed on Jan. 27, 2009 are incorporated herein as the disclosure of the specification of the present invention. Is.

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Abstract

　継代の維持安定性により優れ、目的の異種蛋白質を安定して製造できる形質転換体を得るための、Ｓ．ポンベの形質転換方法を提供する。ならびに、前記方法で得られた形質転換体、および当該形質転換体を用いた異種蛋白質の製造方法、を提供する。　シゾサッカロミセス・ポンベ（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ　ｐｏｍｂｅ）内で機能するプロモーターと異種蛋白質構造遺伝子とターミネーターを含む発現カセット、および前記シゾサッカロミセス・ポンベの染色体に対して相同組換えを行わせる組換え部位を有するベクターを用いて、相同組換えによりシゾサッカロミセス・ポンベの染色体のトランスポゾン遺伝子Ｔｆ２部位に前記発現カセットを組み込む形質転換方法。ならびに、前記方法で得られた形質転換体、および当該形質転換体を用いた異種蛋白質の製造方法。

Description

シゾサッカロミセス・ポンベの形質転換方法および形質転換体、ならびに異種蛋白質の製造方法
　本発明は、シゾサッカロミセス・ポンベ（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ　ｐｏｍｂｅ）の形質転換方法および形質転換体、ならびに異種蛋白質の製造方法に関する。
　遺伝子組換え技術を応用し、宿主が本来生産しない異種蛋白質を、それがコードする外来遺伝子（異種蛋白質構造遺伝子）を導入した形質転換体を用いて、製造する技術が様々な産業で広く用いられている。このような異種蛋白質の製造では、特に真核生物由来の蛋白質を製造する場合、真核生物である微生物を宿主として用いる方法が良いと考えられている。特に酵母は人体に悪影響を及ぼす物質を含まないこと、単細胞であるために取扱いが容易であること、などから、宿主として用いた多くの発現系が開発されている。
　なかでも、分裂酵母であるシゾサッカロミセス・ポンベ（以下、「Ｓ．ポンベ」という。）は、サッカロミセス・セレビジエ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ　ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）等の出芽酵母に比べて、細胞周期や染色体の構造、ＲＮＡスプライシング等が動物細胞のものにより類似しており、生産される蛋白質の翻訳後修飾も動物細胞のそれに近いより複雑なものが可能である。
　Ｓ．ポンベを宿主として用いる異種蛋白質の製造では、従来Ｓ．ポンベに発現ベクター（異種蛋白質構造遺伝子、プロモーターおよびターミネーターを有するベクター）を導入し、該発現ベクターを染色体外性遺伝体（プラスミド）として存在させていた。しかし、この場合には、Ｓ．ポンベの培養中に該発現ベクターが細胞から脱落して消失してしまうことがあるため、栄養要求性相補や薬剤耐性を用いてプラスミドを積極的に保持する必要があった。そのため、より安定に異種蛋白質を生産する方法として、相同組換えにより発現ベクターをＳ．ポンベの染色体に組み込んだ形質転換体を用いる方法が示されている（特許文献１）。
特開２０００－２６２２８４号公報
　特許文献１に記載の形質転換体は、５０世代継代後まで染色体に組み込まれた発現ベクターが脱落せずに存在している。しかし、工業的な異種蛋白質の製造では、より長期間での連続的な培養による安定した異種蛋白質の生産が求められていることから、形質転換体の継代における維持安定性のさらなる向上が望まれている。
　そこで本発明は、継代の維持安定性により優れ、目的の異種蛋白質を安定して製造できる形質転換体が得られるＳ．ポンベの形質転換方法、およびその形質転換体、ならびに該形質転換体を用いた異種蛋白質の製造方法を目的とする。
　本発明のＳ．ポンベの形質転換方法および形質転換体、ならびに該形質転換体を用いた異種蛋白質の製造方法を以下に示す。
　［１］シゾサッカロミセス・ポンベ（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ　ｐｏｍｂｅ）の染色体に、前記シゾサッカロミセス・ポンベ内で機能するプロモーターと異種蛋白質構造遺伝子とターミネーターを含む発現カセット、および前記シゾサッカロミセス・ポンベの染色体に対して相同組換えを行わせる組換え部位を有するベクターを用いて、前記発現カセットを相同組換えにより組み込む形質転換方法であって、
　前記組換え部位の塩基配列が、前記シゾサッカロミセス・ポンベの複数の染色体のうちの、別々の染色体の各々に存在する、および／または１つ以上の必須遺伝子が間に挟まれるように同一染色体の複数位置に存在する、実質的に同一の塩基配列を有する部位を標的部位とし、当該標的部位と相同組換えを起こし得る配列であることを特徴とするシゾサッカロミセス・ポンベの形質転換方法。
　［２］前記標的部位がシゾサッカロミセス・ポンベ染色体中に５箇所以上存在する、前記［１］に記載のシゾサッカロミセス・ポンベの形質転換方法。
　［３］前記標的部位がトランスポゾン遺伝子Ｔｆ２中の塩基配列である、前記［１］または［２］に記載のシゾサッカロミセス・ポンベの形質転換方法。
　［４］シゾサッカロミセス・ポンベ（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ　ｐｏｍｂｅ）内で機能するプロモーターと異種蛋白質構造遺伝子とターミネーターを含む発現カセット、および前記シゾサッカロミセス・ポンベの染色体に対して相同組換えを行わせる組換え部位を有するベクターを用いて、相同組換えによりシゾサッカロミセス・ポンベの染色体の標的部位に前記発現カセットを組み込む形質転換方法であって、前記シゾサッカロミセス・ポンベ染色体の標的部位をトランスポゾン遺伝子Ｔｆ２中の塩基配列としたことを特徴とするシゾサッカロミセス・ポンベの形質転換方法。
　［５］前記標的部位の２箇所以上に前記発現カセットが組み込まれたものを選択する、前記［１］～［４］のいずれかに記載のシゾサッカロミセス・ポンベの形質転換方法。
　［６］前記ベクターが２個以上の発現カセットを含む、前記［１］～［５］のいずれかに記載のシゾサッカロミセス・ポンベの形質転換方法。
　［７］相同組換えを行わせた後、前記染色体に組み込まれた発現カセットの総数が３～４０個であるものを選択する、前記［１］～［６］のいずれかに記載のシゾサッカロミセス・ポンベの形質転換方法。
　［８］前記発現カセット中の異種蛋白質構造遺伝子の５’末端側にシゾサッカロミセス・ポンベ内で機能する分泌シグナル遺伝子を有する、前記［１］～［７］のいずれかに記載のシゾサッカロミセス・ポンベの形質転換方法。
　［９］前記［１］～［８］のいずれかに記載の形質転換方法により得られた形質転換体。
　［１０］前記［９］に記載の形質転換体を培養し、該形質転換体により産生された異種蛋白質を取得する、異種蛋白質の製造方法。
　［１１］前記［８］に記載の形質転換方法により得られる形質転換体を培養液中で培養し、該形質転換体により産生された異種蛋白質を前記培養液から取得する、異種蛋白質の製造方法。
　本発明のＳ．ポンベの形質転換方法によれば、継代の維持安定性により優れ、目的の異種蛋白質を安定して製造できる形質転換体が得られる。
　また、本発明の形質転換体は、継代の維持安定性により優れており、目的の異種蛋白質をより安定して製造することができる。
　また、本発明の異種蛋白質の製造方法は、継代の維持安定性により優れる形質転換体を用いるため、目的の異種蛋白質をより安定に製造することができる。
Ｔｆ２遺伝子の染色体上の分布を示す模式図である。 Ｔｆ２組込み型ベクターの構成図である。 組み込まれたコピー数とその位置を示す電気泳動観察図である。 ５０世代継代後の安定性比較を示すグラフである。
［宿主］
　本発明における形質転換体はＳ．ポンベを宿主として用い、この宿主の染色体に、該Ｓ．ポンベ内で機能するプロモーターと異種蛋白質構造遺伝子（異種蛋白質をコードする遺伝子）とターミネーターを含む発現カセットを組み込むことにより得られる。本発明に用いるＳ．ポンベは野生型であってもよく、用途に応じて特定の遺伝子を欠失または失活させた変異型であってもよい。特定の遺伝子を欠失または失活させる方法としては、公知の方法を用いることができる。具体的には、Ｌａｔｏｕｒ法（Ｎｕｃｒｅｉｃ　Ａｃｉｄｓ　Ｒｅｓ（２００６）３４：ｅ１１、国際公開第２００７／０６３９１９号パンフレット等に記載）を用いることにより遺伝子を欠失させることができる。また、変異剤を用いた突然変異分離法（酵母分子遺伝学実験法、１９９６年、学会出版センター）や、ＰＣＲ（ポリメラーゼ連鎖反応）を利用したランダム変異法（ピーシーアール・メソッズ・アプリケーション（ＰＣＲ　Ｍｅｔｈｏｄｓ　Ａｐｐｌ．）、１９９２年、第２巻、ｐ．２８－３３。）等により遺伝子の一部に変異を導入することにより該遺伝子を失活させることができる。特定遺伝子を欠失または失活させたＳ．ポンベ宿主としては、例えば、国際公開第２００２／１０１０３８号パンフレット、国際公開第２００７／０１５４７０号パンフレット等に記載されている。
　さらに宿主として使用するＳ．ポンベには、形質転換体を選択するためのマーカーを有するものを用いることが好ましい。例えば、ある遺伝子が欠落していることにより特定の栄養成分が生育に必須である宿主を使用することが好ましい。ベクターにこの欠落している遺伝子（栄養要求性相補マーカー）を組み込んでおくことにより、形質転換体は宿主の栄養要求性が消失する。この宿主と形質転換体の栄養要求性の相違により、両者を区別して形質転換体を得ることができる。
　例えば、オロチジンリン酸デカルボキシラーゼ遺伝子（ｕｒａ４遺伝子）が欠失または失活してウラシル要求性となっているＳ．ポンベを宿主とし、ｕｒａ４遺伝子（栄養要求性相補マーカー）を有するベクターにより形質転換した後、ウラシル要求性が消失したものを選択することにより、ベクターが組み込まれた形質転換体を得ることができる。宿主において欠落により栄養要求性となる遺伝子は、形質転換体の選択に用いられるものであればｕｒａ４遺伝子には限定されず、イソプロピルリンゴ酸デヒドロゲナーゼ遺伝子（ｌｅｕ１遺伝子）等であってもよい。
［ベクター］
　本発明におけるベクターは、異種蛋白質構造遺伝子とＳ．ポンベ内で機能するプロモーターとターミネーターを含む発現カセット、およびＳ．ポンベの染色体に相同組換えを行わせる組換え部位を有する。発現カセットとは、異種蛋白質構造遺伝子がコードする異種蛋白質を発現するために必要なＤＮＡの組み合わせであり、異種蛋白質構造遺伝子とＳ．ポンベ内で機能するプロモーターとターミネーターとを含む。
　発現カセットには、さらに、５’－非翻訳領域、３’－非翻訳領域のいずれか１つ以上が含まれていてもよい。好ましい発現カセットは、異種蛋白質構造遺伝子、プロモーター、ターミネーター、５’－非翻訳領域、３’－非翻訳領域を全て含む発現カセットである。さらに、前記栄養要求性相補マーカー、異種蛋白質構造遺伝子の５’末端側に導入したＳ．ポンベ内で機能する分泌シグナル遺伝子、などの遺伝子を有していてもよい。
　異種蛋白質構造遺伝子とは、異種蛋白質をコードする遺伝子である。ただし、本発明における異種蛋白質とは、Ｓ．ポンベが本来産生しない（野生型のＳ．ポンベがその蛋白質をコードする遺伝子を有しない）蛋白質を意味する。異種蛋白質は、特に限定されないが、産業的価値に優れる点から、ヒトや他の哺乳動物が生産する医薬品原料蛋白質、微生物が生産する産業用酵素蛋白質、植物が生産する食糧品素材蛋白質であることが好ましい。
　プロモーターとターミネーターは、宿主であるＳ．ポンベ内で機能して異種蛋白質を発現できるものであればよい。Ｓ．ポンベ内で機能するプロモーターとしては、Ｓ．ポンベが本来有するプロモーター（転写開始活性が高いものが好ましい）やＳ．ポンベが本来有しないプロモーター（ウイルス由来のプロモーターなど）を使用することができる。なお、プロモーターはベクター内に２種以上存在していてもよい。
　Ｓ．ポンベが本来有するプロモーターとしては、例えば、アルコールデヒドロゲナーゼ遺伝子プロモーター、チアミンの代謝に関与するｎｍｔ１遺伝子プロモーター、グルコースの代謝に関与するフルクトース－１、６－ビスホスファターゼ遺伝子プロモーター、カタボライト抑制に関与するインベルターゼ遺伝子のプロモーター（国際公開第９９／２３２２３号パンフレット参照）、熱ショック蛋白質遺伝子プロモーター（国際公開第２００７／２６６１７号パンフレット参照）などが挙げられる。
　Ｓ．ポンベが本来有しないプロモーターとしては、例えば、特開平５－１５３８０号公報、特開平７－１６３３７３号公報、特開平１０－２３４３７５号公報に記載されている動物細胞ウイルス由来のプロモーターが挙げられ、ＣＭＶプロモーター、ＳＶ４０プロモーターが好ましい。
　Ｓ．ポンベ内で機能するターミネーターとしては、Ｓ．ポンベが本来有するターミネーターやＳ．ポンベが本来有しないターミネーターを使用することができる。なお、ターミネーターはベクター内に２種以上存在していてもよい。
　ターミネーターとしては、例えば、特開平５－１５３８０号公報、特開平７－１６３３７３号公報、特開平１０－２３４３７５号公報に記載されているヒト由来のターミネーターが挙げられ、ヒトリポコルチンＩのターミネーターが好ましい。
　本発明におけるベクターは、選択マーカーを含むことが好ましい。例えば、宿主の栄養要求性に応じて前記栄養要求性相補マーカーを組み込んだベクターを使用することが好ましい。
　Ｓ．ポンベ内で機能する分泌シグナル遺伝子は、発現した異種蛋白質を宿主細胞外に分泌させる機能を有する遺伝子である。分泌シグナル遺伝子が結合した異種蛋白質構造遺伝子からＮ末端側に分泌シグナルが結合した異種蛋白質が発現し、この蛋白質が宿主内の小胞体やゴルジ装置等で分泌シグナルが削除され、その後分泌シグナルが削除された異種蛋白質が細胞外に分泌される。分泌シグナル遺伝子（および分泌シグナル）はＳ．ポンベ内で機能することが必要である。Ｓ．ポンベ内で機能する分泌シグナル遺伝子としては、例えば、国際公開第１９９６／２３８９０号パンフレットに記載のものを使用できる。
　本発明におけるベクターは、環状ＤＮＡ構造または線状ＤＮＡ構造を有するベクターであり、Ｓ．ポンベの細胞に導入する際には線状ＤＮＡ構造で導入することが好ましい。すなわち、通常用いられるプラスミドＤＮＡのような環状ＤＮＡ構造を有するベクターである場合には、制限酵素でベクターを線状に切り開いた後にＳ．ポンベの細胞に導入することが好ましい。この場合、環状ＤＮＡ構造を有するベクターを切り開く位置は、組換え部位内とする。これにより、切り開かれたベクターの両端にそれぞれ組換え部位が部分的に存在することとなり、相同組換えによりベクター全体が染色体の標的部位に組み込まれる。
　ベクターは、両端それぞれに組換え部位の一部が存在するような線状ＤＮＡ構造とすることができれば、環状ＤＮＡ構造を有するベクターを切り開く方法以外の方法、たとえばＰＣＲによる酵素的な増幅法や化学合成法、で構築してもよい。
　本発明におけるベクターを構築するために、例えば、ｐＢＲ３２２、ｐＢＲ３２５、ｐＵＣ１１８、ｐＵＣ１１９、ｐＵＣ１８、ｐＵＣ１９等の大腸菌由来のプラスミドを好適に用いることができる。大腸菌由来のプラスミドを用いて構築したベクターは、通常、大腸菌内での複製のために必要な「ｏｒｉ」と呼ばれる複製開始領域を有する。また、上記のような大腸菌由来のプラスミドを用いない場合であっても、本発明におけるベクターを構築し増幅するために大腸菌を使用する場合は上記「ｏｒｉ」が利用され、「ｏｒｉ」を有するベクターが得られる。
　この場合、相同組換えに用いる際のベクターは、大腸菌内での複製のために必要であった「ｏｒｉ」と呼ばれる複製開始領域が除去されていることが好ましい。これにより、上述したベクターを染色体に組み込む際に、その組み込み効率を向上させることができる（特開２０００－２６２２８４号公報参照）。
　複製開始領域が除去されたベクターの構築方法は特に限定されないが、特開２０００－２６２２８４号公報に記載されている方法を用いることが好ましい。すなわち、組換え部位内の切断箇所に複製開始領域が挿入された前駆体ベクターを構築しておき、前述のように線状ＤＮＡ構造とすると同時に複製開始領域が切り出されるようにする方法が好ましい。これにより、簡便に複製開始領域が除去されたベクターを得ることができる。
　また、特開平５－１５３８０号公報、特開平７－１６３３７３号公報、国際公開第９６／２３８９０号パンフレット、特開平１０－２３４３７５号公報等に記載された発現ベクターやその構築方法を適用して、発現カセットおよび組換え部位を有する前駆体ベクターを構築し、さらに通常の遺伝子工学的手法で該前駆体ベクターから複製開始領域を除去して相同組換えに用いるベクターを得る方法であってもよい。
　ベクター中の発現カセットの数は、１個のみであってもよく、２個以上であってもよい。ベクター中の発現カセットの数が１個であったとしても、Ｓ．ポンベの染色体の同一箇所に２個以上の発現カセットが組み込まれることがある。また、ベクター中の発現カセットの数が２個以上であれば、Ｓ．ポンベの染色体の同一箇所に複数の発現カセットが連続して組み込まれる。
　本発明におけるベクターは、発現カセットを１～８個有することが好ましく、特に２～４個が好ましい。
　ベクターが有する発現カセットの数が２個以上であれば、Ｓ．ポンベの染色体に組み込まれる発現カセットの数を増やし、異種蛋白質の発現量をより多くすることが容易になる。ただし、本発明においては後記標的部位の数が多い場合には１個であっても組み込まれる発現カセットの数を多くすることができる。また、ベクターが有する発現カセットの数が８個以下であれば、ベクターが大きくなりすぎることにより相同組換えによるベクターの組み込み効率が低下してしまうことを抑制しやすい。発現カセットの数が４個以下であれば、組み込み効率をより高くすることができる。
　ベクターの組換え部位は、Ｓ．ポンベの染色体における相同組換えの標的部位に対して相同組換えを行わせることのできる塩基配列を有する部位である。また、標的部位は、Ｓ．ポンベの染色体内で発現カセットを組み込む標的となる部位である。標的部位は、ベクターの組換え部位を該標的部位に対して相同組換えを行わせる塩基配列とすることにより自由に設定することができる。
　相同組換えを行わせるには、前記組換え部位の塩基配列と、標的部位の塩基配列との相同性を７０％以上とすることが必要である。また、組換え部位の塩基配列と標的部位の塩基配列との相同性は、相同組換えが起きやすくなる点から、９０％以上とすることが好ましく、９５％以上であることがより好ましい。このような組換え部位を有するベクターを用いることにより、発現カセットが相同組換えにより標的部位に組み込まれる。
　組換え部位の長さ（塩基数）は、２０～２０００ｂｐであることが好ましい。組換え部位の長さが２０ｂｐ以上であれば、相同組換えが起きやすくなる。また、組換え部位の長さが２０００ｂｐ以下であれば、ベクターが長くなりすぎて相同組換えが起き難くなることを防ぎやすい。組換え部位の長さは１００ｂｐ以上であることがより好ましく、２００ｂｐ以上であることがさらに好ましい。また、組換え部位の長さは８００ｂｐ以下であることがより好ましく、４００ｂｐ以下であることがさらに好ましい。
［宿主の標的部位］
　発現カセットを組み込む標的部位は、Ｓ．ポンベが有する３本の染色体のうち、（１）別々の染色体に存在する２箇所以上の標的部位であるか、（２）１つ以上の必須遺伝子が間に挟まれるように同一染色体の複数位置に存在する２箇所以上の標的部位であるか、（１）および（２）の両方を満たす複数の標的部位である。これら２箇所以上の標的部位は、実質的に同一の塩基配列を有する部位である。ただし、実質的に同一の塩基配列とは、互いの標的部位の塩基配列の相同性が９０％以上であることを意味する。標的部位同士の相同性は、９５％以上であることが好ましく、９９％以上であることがより好ましい。
　上記の必須遺伝子とは、その遺伝子が欠失または失活すると生育できなくなる遺伝子を意味し、すなわち本発明の形質転換体の生育に不可欠な遺伝子を意味する。したがって、この必須遺伝子を挟んで導入された発現カセットは、それが脱落すると必須遺伝子も脱落して形質転換体が生育できなくなる。これにより、形質転換体の培養において、発現カセットが脱落した形質転換体が発現カセットが脱落していない形質転換体とともに生育するおそれが少なくなり、異種蛋白質の生産効率が低下するおそれが少なくなる（通常発現カセットが脱落した形質転換体の方が増殖速度が高い、という理由による）。
　このように、標的部位がＳ．ポンベの染色体において分散して存在していることにより、染色体に発現カセットが分散して組み込まれるため、組み込まれた発現カセットが脱落し難くなり、継代における維持安定性が極めて高くなる。そのため、異種蛋白質を安定して高い生産性で製造することができる。
　また、このように塩基配列が実質的に同一の標的部位とすることにより、異なる位置に複数の標的部位が存在していても、１種のベクターでそれら標的部位に簡便にベクターを組み込むことができる。
　本発明の形質転換方法では、ベクターを組み込む標的部位が５箇所以上であることが好ましい。標的部位が５箇所以上であれば、染色体に組み込まれる発現カセットの数を増加させることが容易になるため、異種蛋白質の生産性がより向上する。
　また、標的部位は１０～６０箇所であることがより好ましい。標的部位が１０箇所以上であれば、染色体に組み込まれる発現カセットの数をさらに増加させやすく、異種蛋白質の生産性がさらに向上する。標的部位が６０箇所以下であれば、染色体に組み込まれる発現カセットが多くなりすぎて異種蛋白質の発現量が少なくなることを抑制しやすい。
　標的部位は、１種のベクターでＳ．ポンベの複数の染色体に分散して存在する標的部位に一度に発現カセットを組み込める点から、トランスポゾン遺伝子Ｔｆ２（３本の染色体それぞれに合計１３箇所存在する、長さ（塩基数）約４９００ｂｐのトランスポゾン遺伝子であり、互いの塩基配列相同性は９９．７％である。下記文献参照）中の塩基配列とすることが好ましい。
　（文献名）
　　Nathan J. Bowen et al, “Retrotransposons and Their Recognition of pol II Promoters: A Comprehensive Survey of the Transposable Elements From the Complete Genome Sequence of Schizosaccharomyces pombe”, Genome Res. 2003 13: 1984-1997
　ただし、標的部位は上記のものには限定されない。例えば、トランスポゾン遺伝子Ｔｆ２以外に、前記組換え部位の長さ以上の長さを有する実質的に同一の塩基配列が染色体中に複数有する部位（遺伝子など）を標的部位とすることができる。また、例えば、前記組換え部位の長さ以上の長さを有する実質的に同一の塩基配列を有する遺伝子（標的部位）を染色体に新たに複数導入して標的部位を形成した後に、それら複数の標的部位にベクターを導入するようにしてもよい。
［形質転換体、形質転換方法］
　本発明のＳ．ポンベの形質転換方法は、前記ベクターを用いて、相同組換えにより、宿主であるＳ．ポンベの染色体の前記標的部位に発現カセットを組み込む方法である。相同組換えによりベクターを染色体に組み込む方法自体は公知ないし周知の方法を使用できる（例えば、特開２０００－２６２２８４号公報参照）。また、本発明の形質転換体はこの形質転換方法により得られた形質転換体である。
　前記ベクターは、Ｓ．ポンベの染色体中に複数箇所存在する標的部位の１箇所に組み込まれてもよく、２箇所以上に組み込まれてもよい。本発明では、ベクターが２箇所以上に組み込まれたものを選択することが好ましい。
　また、染色体中に複数箇所存在する標的部位のすべての箇所にベクターが組み込まれてもよく、一部の標的部位のみに組み込まれてもよい。染色体に組み込まれる発現カセットが多くなりすぎると異種蛋白質の発現量が少なくなるおそれがあり、そのためにベクターが組み込まれた標的部位の数は２０箇所以下が好ましい。したがって、染色体中に存在する標的部位の数が２０以下の場合はその標的部位のすべての箇所にベクターが組み込まれてもよく、染色体中に存在する標的部位の数が２０箇所を超える場合はベクターが組み込まれる標的部位の数は２０箇所以下が好ましい。より好ましいベクターが組み込まれる標的部位の数は２～１５箇所（ただし、標的部位の数が１５箇所未満の場合はその標的部位の数）であり、さらに３～１０箇所（ただし、標的部位の数が１０箇所未満の場合はその標的部位の数）が好ましい。標的部位が前記トランスポゾン遺伝子Ｔｆ２の場合（標的部位の数は１３）、ベクターが組み込まれるＴｆ２の数は２～１３箇所が好ましく、特に２～８箇所が好ましい。
　前記のように、前記ベクターは発現カセットを２個以上有していてもよい。したがって染色体に組み込まれる発現カセットの総数は、ベクター中の発現カセットの数とベクターが組み込まれた標的部位の数の積となる。本発明によって得られる形質転換体においてその染色体中の発現カセットの総数は２～４０個が好ましく、２～２０個がより好ましい。染色体に組み込まれる発現カセットが多くなりすぎると異種蛋白質の発現量が少なくなるおそれがあり、そのために染色体に組み込まれた発現カセットの総数は４０以下が好ましく、２０以下がより好ましい。
　本発明の形質転換法では、通常、相同組換えを行った後、得られた形質転換体を選択する。選択する方法としては、例えば、以下に示す方法が挙げられる。前記栄養要求性マーカーにより形質転換体を選択できる培地によりスクリーニングし、得られたコロニーから複数を選択する。次に、それらを別々に液体培養した後、それぞれの培養液における異種蛋白質の発現量を調べ、異種蛋白質の発現量がより多い形質転換体を選択する。また、それら選択した形質転換体に対してパルスフィールドゲル電気泳動法によるゲノム解析を行うことにより、染色体に組み込まれたベクターの数や発現カセットの数を調べることができる。
　染色体に組み込まれるベクターの数は組み込み条件などを調整することによりある程度は調整可能であるが、ベクターの大きさ（塩基数）や構造により組み込み効率や組み込み数も変化すると考えられる。
　本発明の目的は異種蛋白質発現効率の高い形質転換体を得ることにあり、単に発現カセットの総数がより多い形質転換体を得ることを目的とするものではない。一般には発現カセットの数が多いほど発現効率が高まると予想されるが、発現カセットの数が多すぎると細胞の生存や増殖に対する負荷が増大し、ひいては異種蛋白質の発現効率が低下すると考えられる。また、ベクターが大きくなると、染色体に組み込まれる確率が低下し、組み込まれるベクター数を多くすることが困難となり、ひいては形質転換体を得ること自体が困難となると考えられる。ベクターの大きさは発現カセットの数ばかりでなく、異種蛋白質構造遺伝子の長さ（塩基数）にも影響されると考えられる。したがって、異種蛋白質構造遺伝子が短い場合に比較して、異種蛋白質構造遺伝子が長い場合には組み込まれる発現カセットの数は制約されると考えられる。また、単に異種蛋白質構造遺伝子がその長さばかりでなく、その配列の構成などの遺伝子の種類によっても変化すると思われる。
　本発明の形質転換体は前記本発明の形質転換方法により得られた形質転換体である。この形質転換体は２個以上の発現カセットを有し、同じ発現カセットを１個有する形質転換体よりも発現効率が高い。異種蛋白質発現効率の高い形質転換体を得るために最適の発現カセットの総数は、前記のように異種蛋白質構造遺伝子の長さや種類などの要件によって異なると考えられる。しかし、相同組み換え法である割合以上の形質転換体が生成する限り、選択により形質転換体を得ることができるとともに、得られた形質転換体における異種蛋白質の発現効率を測定して、得られた形質転換体から異種蛋白質の発現効率の高い株を選択することができる。この選択とともに、形質転換体中の発現カセットの数を測定し、発現効率と発現カセットの数とを関係付けることができる。ある１種の異種蛋白質構造遺伝子を対象とすれば、通常、発現カセットの数がある程度多いほど発現効率は高い。しかし、異なる異種蛋白質構造遺伝子間では、発現カセットの数と発現効率の関係が一定の関係にあるとはいえない場合があると考えられる。
　本発明者らの先の発明（特開２０００－２６２２８４号公報記載の発明）では、染色体の１箇所に２以上の発現カセットを有する形質転換体を提供した。しかし、複数の発現カセットが染色体の１箇所のみに存在している場合に比較して、本発明の形質転換体では染色体に発現カセットが分散して組み込まれるため、継代における維持安定性が極めて高くなる。例えば、発現カセットが１箇所に集中して存在している場合に比較して増殖や発現の負荷が分散され、また、１箇所で発現カセットの脱落が起こっても他の箇所の発現カセットは残ると考えられるからである。さらに、２種以上の標的部位のそれぞれに標的部位ごとに異なるベクター（組み換え部位の塩基配列が異なるベクター）を使用して発現カセットを導入し、複数箇所に発現カセットを有する形質転換体を得ることができるとしても、本発明では同一のベクターを使用して複数の標的部位に同時に発現カセットを導入するため、形質転換体の製造が極めて容易となる。
［異種蛋白質の製造方法］
　本発明の異種蛋白質の製造方法は、本発明の形質転換体を培養し、該形質転換体により産生された異種蛋白質を取得する方法である。
　培養液には、公知の酵母培養培地を用いることができ、Ｓ．ポンベが資化しうる炭素源、窒素源、無機塩類等を含有し、Ｓ．ポンベの培養を効率良く行えるものであればよい。培養液としては、天然培地を用いてもよく、合成培地を用いてもよい。
　炭素源としては、例えば、グルコース、フルクトース、スクロース等の糖が挙げられる。
　窒素源としては、例えば、アンモニア、塩化アンモニウム、酢酸アンモニウム等の無機酸または無機酸のアンモニウム塩、ペプトン、カザミノ酸等が挙げられる。
　無機塩類としては、例えば、リン酸マグネシウム、硫酸マグネシウム、塩化ナトリウムが挙げられる。
　培養には公知の酵母培養方法を用いることができ、例えば振盪培養、攪拌培養等により行うことができる。
　また、培養温度は、２３～３７℃であることが好ましい。また、培養時間は適宜決定することができる。
　また、培養は、回分培養であってもよく、連続培養であってもよい。
　異種蛋白質の取得は、公知の蛋白質取得方法を用いることができる。例えば、培養後菌体を培養液から分離し、分離された菌体を破壊して目的の異種蛋白質を含む成分を得て、その成分から公知の蛋白質精製方法を用いて目的の異種蛋白質を取得できる。また、分泌シグナル遺伝子を結合させた異種蛋白質構造遺伝子を有する発現ベクターを用いて得られた形質転換体からは異種蛋白質が培養液に分泌される。したがって、この場合は培養液から公知の蛋白質精製方法を用いて目的の異種蛋白質を取得できる。
　異種蛋白質を培養液に分泌する形質転換体を使用し、連続培養で形質転換体を培養する方法を用いて効率良く異種蛋白質を取得することができる。例えば、一定時間培養した培養液から異種蛋白質を取得すると共に培養上清を回収し、該培養上清に再び培養液を加えて培養することを繰り返して連続的に培養する方法が挙げられる。
　以下、実施例および比較例を示して本発明を詳細に説明する。ただし、本発明は以下の記載によっては限定されない。
［実施例１］発現カセットを一度の形質転換で組込むことが可能な遺伝子座の特定
　分裂酵母の染色体には、発現カセットを一度に多くの箇所に同時に組込むことに適すると考えられる、高度に保存された配列の重複が多数あることが、染色体の塩基配列決定より明らかになっている（Ｗｏｏｄ他、Ｎａｔｕｒｅ　４１５巻、８７１－８８０頁、２００２年）。そこで、サンガー研究所（the Sanger Institute）のデータベースＧｅｎｅＤＢ（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｇｅｎｅｄｂ．ｏｒｇ／ｇｅｎｅｄｂ／）を用いて、網羅的な発現カセットを一度の形質転換で組込むことが可能な遺伝子座の特定を行なった。
　まず、セントロメアや複製開始起点にＡＴ－ｒｉｃｈな配列の重複が多く見られることを同定した。しかしながらこれらの配列は必ずしも一次配列上の相同性が高くなく、外来遺伝子の導入には不向きであった。
　次に、ＬＴＲやＴｆ２というトランスポゾンに由来すると思われる配列も多く存在することがわかった。前者は１７４個の存在が知られている（Ｂｏｗｅｎ他、Ｇｅｎｏｍｅ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ誌、１３巻、１９８４－１９９７頁、２００３年）が、やはり相同性が必ずしも高くはなかった。しかしながらＴｆ２は、１３個の配列が９９％以上の相同性で染色体全体に散在していた。その構成を図１に示す。このように、Ｔｆ２－７とＴｆ２－８が隣接している以外は染色体上に散在しており、その間には生育に必須の遺伝子が必ず存在していた。よってこれらの配列を遺伝子組込みの座として用いるこが可能であると判断した。
　さらに、染色体末端領域には４個の相同な遺伝子が重複していることも推定されている（Ｍａｎｄｅｌｌ他、Ｇｅｎｏｍｅ　Ｂｉｏｌｏｇｙ誌、６巻、Ｒ１頁、２００４年）。しかしながらサブテロメア領域は遺伝子の転写が抑えられており、外来遺伝子の発現の場としては不適切であった。テロメア自身も重複した配列より構成されているが、その長さが細胞周期によって変化する等の現象が予想されるため、異種蛋白質の生産には不向きであった。
［実施例２］Ｔｆ２組込型ベクターの作製
　Ｔｆ２遺伝子座に緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）の発現カセットを組込むことが可能なベクターｐＴｆ２－ｕｒａ４－ＥＧＦＰ（Ｒ）（図２）を、次に示す方法で作製した。
　すなわち、細胞からの全ゲノムＤＮＡ抽出キット（キアゲン社（Qiagen）製ＤＮｅａｓｙ）を用いて、Ｓ．ポンベの全ゲノムＤＮＡを精製し、そのうちの１μｇを鋳型として、５’末端側に制限酵素ＢｓｉＷＩの認識配列（ＣＧＴＡＣＧ）を導入したプライマーペアー、５’ －ＡＡＧＧＣＣＴＣＧＴＡＣＧＴＧＡＡＡＧＣＡＡＧＡＧＣＡＡＡＡＣＧＡ－３’と５’ －ＡＡＧＧＣＣＴＣＧＴＡＣＧＴＧＣＴＴＴＧＴＣＣＧＣＴＴＧＴＡＧＣ－３’とを用いて、ＰＣＲ法によって、Ｓ．ポンベのＴｆ２－２（ＧｅｎｅＤＢ収載の系統名ＳＰＡＣ１６７．０８遺伝子）のＤＮＡ断片（約３９５０塩基対）を増幅した。増幅ＤＮＡ断片の両末端を制限酵素ＢｓｉＷＩで処理し、アガロースゲル電気泳動によって分離・精製し、インサート断片として調製した。
　次に、染色体組込み用ベクターｐＸＬ４（イディリス（Ｉｄｉｒｉｓ　ｅｔ　ａｌ．）他、Ｙｅａｓｔ誌２３巻８３－９９頁、２００６年）も同じ制限酵素ＢｓｉＷＩで消化し、アンピシリン耐性遺伝子（ＡｐＲ）と大腸菌の複製起点（ｐＢＲ３２２　ｏｒｉ）を含む領域（約２１３０塩基対）を得た。そのＤＮＡ断片をさらに脱リン酸化酵素（タカラバイオ社製ＣＩＡＰ）で脱リン酸化処理し、アガロースゲル電気泳動によって分離・精製し、ベクター断片として調製した。
　上記インサート断片とベクター断片とを、ライゲーションキット（タカラバイオ社製ＤＮＡ　Ｌｉｇａｔｉｏｎ　Ｋｉｔ　ｖｅｒ．２）を用いて連結した後、大腸菌ＤＨ５（東洋紡社製）を形質転換し、組換えプラスミドｐＴｆ２－２（６０７１塩基対）を作製した。
　上記構築ベクターｐＴｆ２－２の０．１μｇを鋳型として、プライマーペアー５’－ＧＧＧＧＴＡＣＣＡＡＧＣＴＴＣＴＡＧＡＧＴＣＧＡＣＴＣＣＧＧＴＧＣＴＡＣＧＡＣＡＣＴＴＴ－３’（５’末端に制限酵素ＫｐｎＩ、ＨｉｎｄＩＩＩ、ＸｂａＩ、ＳａｌＩの認識配列を持つ）と５’－ＧＧＧＧＴＡＣＣＡＧＧＣＣＴＣＴＣＧＡＧＧＣＴＡＧＣＣＡＴＴＴＣＣＡＧＣＧＴＡＣＡＴＣＣＴ－３’（５’末端に制限酵素ＫｐｎＩ、ＳｔｕＩ、Ｘｈｏ Ｉ、ＮｈｅＩの認識配列を持つ）を用い、ＰＣＲ法によって全長を増幅し、６０６０塩基対の断片を得た。その両末端をＫｐｎＩで消化し、アガロースゲル電気泳動によって分離・精製したのち、ライゲーションキットを用いて自己環状化し、トランスポゾン遺伝子Ｔｆ２－２配列の内部にさらにマルチクローニングサイト（ＭＣＳ）を持つ６０５８塩基対のベクターｐＴｆ２（ＭＣＳ）を作製した。
　上記構築ベクターｐＴｆ２（ＭＣＳ）を制限酵素ＫｐｎＩおよびＮｈｅＩを用いて二重消化し、６０４０塩基対の断片をアガロースゲル電気泳動によって分離・精製した。さらにＳ．ポンベのウラシル要求性マーカーｕｒａ４（ＧｅｎｅＤＢ収載の系統名ＳＰＣＣ３３０．０５ｃ、オロチジン－５’－リン酸脱炭酸酵素遺伝子）の両端にＰＣＲ法を用いて制限酵素ＫｐｎＩおよびＮｈｅＩの認識配列を付加した断片を作成し、制限酵素ＫｐｎＩおよびＮｈｅＩを用いて二重消化し、２２０６塩基対の断片をアガロースゲル電気泳動によって分離・精製した。これら二本の断片をライゲーションキットを用いて連結し、トランスポゾン遺伝子Ｔｆ２－２配列の内部にさらにマルチクローニングサイト（ＭＣＳ）を持つ８２４６基対のベクターｐＴｆ２（ＭＣＳ）－ｕｒａ４を作製した。
　上記構築ベクターｐＴｆ２（ＭＣＳ）－ｕｒａ４を制限酵素ＳａｌＩで消化し、得られた８２４６塩基対の断片の両末端をブランティングキット（タカラバイオ社製、ＤＮＡ　Ｂｌｕｎｔｉｎｇ　ｋｉｔ）によって平滑化し、アガロースゲル電気泳動によって分離・精製したのち脱リン酸化してベクター断片を作製した。さらにｐＴＬ２ＥＧＦＰ１を制限酵素ＳｐｅＩとＢｓｔ１１０７Ｉを用いて二重消化し、１７２０塩基対のＧＦＰ発現カセットを切り出し、その両末端のブランティングキットによって平滑化したのち、アガロースゲル電気泳動によって分離・精製し、インサート断片とした。上記ベクターならびにインサート断片をライゲーションキットを用いて連結し、Ｔｆ２組込型ベクターｐＴｆ２－ｕｒａ４－ＥＧＦＰ（Ｒ）（図２）を作製した。
［実施例３］形質転換体の取得
　実施例２で作製したＴｆ２組込型ベクターｐＴｆ２－ｕｒａ４－ＥＧＦＰ（Ｒ）の３μｇを制限酵素ＢｓｉＷＩで消化し、その全量を用い、岡崎らの方法（Ｏｋａｚａｋｉ他、Ｎｕｃｌｅｉｃ　Ａｃｉｄｓ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ誌、１８巻、６４８５－６４８９頁、１９９０年）によって分裂酵母ＡＲＣ０１０株（遺伝子型：ｈ－　ｌｅｕ１－３２　ｕｒａ４－Ｄ１８）を形質転換した。形質転換物をロイシン添加最少培地（ＭＭＡ＋ｌｅｕ）表面に塗抹し、３２℃で４日間培養した。出現したウラシル要求性復帰コロニー約５００個のなかから、蛍光観察装置（ＧＦＰ　Ｖｉｅｖｅｒ　ＴＲ－１００、池田理化社製）を用いた目視観察によって、緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）の蛍光を示すコロニーを９６個選抜した。
　各コロニーをかきとり、１ｍｌのロイシン不含合成培地ＳＤＣ－Ｌｅｕ（ＳＤ　Ｍｅｄｉｕｍ－ＬＥＵ、Ｑｂｉｏｇｅｎｅ社製）に植菌し、２４穴培養プレートで約２４時間振盪培養した。菌体増殖液をそれぞれ０．１ｍｌ取得し、１ｍｌのＹＥＳ液体培地（酵母エキス（ベクトン・ディッキンソン社製）５ｇ／ｌ、グルコース（和光純薬社製）３０ｇ／ｌ、ＳＰ　Ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔｓ（Ｑｂｉｏｇｅｎｅ社製）２５０ｍｇ／ｌ）に植菌し、再び２４穴培養プレートで約２４時間振盪培養した。その後、蛍光強度測定装置（ＳｐｅｃｔｒａＭａｘ　Ｇｅｍｉｎｉ　ＸＳ、日本モレキュラーデバイス社製）を用いて、菌体培養液１ｍｌあたりの蛍光強度を測り、ＧＦＰが示す蛍光強度が最も高いクローンを選抜した。
［実施例４］染色体上の組込み位置ならびにコピー数の解析
　実施例３で作製した形質転換体より全ＤＮＡ画分を抽出した。そのＤＮＡを鋳型にして、ベクター側の共通プライマー５’－ＧＧＴＧＡＴＧＡＣＧＧＴＧＡＡＡＡＣＣＴ－３’を表１で示した１３個の各Ｔｆ２遺伝子特異的なプライマーペアーのそれぞれと合わせ、ＫＯＤ　Ｐｌｕｓ（東洋紡社製）を用いてＰＣＲを行い、染色体上の発現カセットの組込み位置ならびにコピー数の解析を行なった。
　その結果、図３に示すように、Ｔｆ２－１、２、６、７、８の５箇所に合計５個の発現カセットが組み込まれたことがわかった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
［実施例５］継代における発現カセットの維持安定性の比較
　実施例３で作製した形質転換体と特開２０００－２６２２８４号公報記載の株との、継代における発現カセットの維持安定性比較を行なった。
　評価対象の上記２株を、５ｍｌのＹＥＳ液体培地（試験管）で１回、５０ｍｌのＹＥＳ液体培地（三角フラスコ）で２回培養し、そのあとＹＥＳ固体培地に塗布することによってクローン単離を行った。単離クローンを株ごとに２２個ずつ無作為に選抜し、再び１ｍｌのＹＥＳ液体培地に植菌し、２４穴培養プレートで約２４時間振盪培養した。単離する前の菌液も同時に対象として２個ずつ培養した。その後、増殖菌体をクローンごとに０．１ｍｌ取り、１ｍｌの新しいＹＥＳ液体培地に植菌し、再び２４穴培養プレートで約２４時間振盪培養した。最後に、蛍光強度測定装置（ＳｐｅｃｔｒａＭａｘ　Ｇｅｍｉｎｉ　ＸＳ、日本モレキュラーデバイス社製）を用いて、菌体培養液１ｍｌあたりの蛍光強度を測り、緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）の示す蛍光強度の分布を調べた。
　その結果を図４に示す。すなわち、実施例３で作製した形質転換体（ｐＴＬ２（ｕｒａ４－ＥＧＦＰ））ではＯＤ６６０あたりの蛍光強度が２１．１、特開２０００－２６２２８４号公報に記載されている株（ｐＴＬ２（ＥＧＦＰ－８ＸＬ））では２１．２とほぼ同等であった。しかし、図４に示すように、標準偏差から計算した前者のばらつきが±１１％だったのに対して後者は３０％であり、本発明の組込み方法の方がより高い継代における発現カセットの維持安定性を示した。
　本発明の方法により得られる形質転換体を用いれば、目的の異種蛋白質を安定して高い生産性で製造することができる。そのため、様々な産業における異種蛋白質の製造に好適に用いることができる。
　なお、２００９年１月２７日に出願された日本特許出願２００９－０１５４７２号の明細書、特許請求の範囲、図面、要約書の全内容をここに引用し、本発明の明細書の開示として取り入れるものである。

Claims (11)

  1. 　シゾサッカロミセス・ポンベ（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ　ｐｏｍｂｅ）の染色体に、前記シゾサッカロミセス・ポンベ内で機能するプロモーターと異種蛋白質構造遺伝子とターミネーターを含む発現カセット、および前記シゾサッカロミセス・ポンベの染色体に対して相同組換えを行わせる組換え部位を有するベクターを用いて、前記発現カセットを相同組換えにより組み込む形質転換方法であって、
    　前記組換え部位の塩基配列が、前記シゾサッカロミセス・ポンベの複数の染色体のうちの、別々の染色体の各々に存在する、および／または１つ以上の必須遺伝子が間に挟まれるように同一染色体の複数位置に存在する、実質的に同一の塩基配列を有する部位を標的部位とし、当該標的部位と相同組換えを起こし得る配列であることを特徴とするシゾサッカロミセス・ポンベの形質転換方法。
  2. 　前記標的部位がシゾサッカロミセス・ポンベ染色体中に５箇所以上存在する、請求項１に記載のシゾサッカロミセス・ポンベの形質転換方法。
  3. 　前記標的部位がトランスポゾン遺伝子Ｔｆ２中の塩基配列である、請求項１または２に記載のシゾサッカロミセス・ポンベの形質転換方法。
  4. 　シゾサッカロミセス・ポンベ（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ　ｐｏｍｂｅ）内で機能するプロモーターと異種蛋白質構造遺伝子とターミネーターを含む発現カセット、および前記シゾサッカロミセス・ポンベの染色体に対して相同組換えを行わせる組換え部位を有するベクターを用いて、相同組換えによりシゾサッカロミセス・ポンベの染色体の標的部位に前記発現カセットを組み込む形質転換方法であって、前記シゾサッカロミセス・ポンベ染色体の標的部位をトランスポゾン遺伝子Ｔｆ２中の塩基配列としたことを特徴とするシゾサッカロミセス・ポンベの形質転換方法。
  5. 　前記標的部位の２箇所以上に前記発現カセットが組み込まれたものを選択する、請求項１～４のいずれか１項に記載のシゾサッカロミセス・ポンベの形質転換方法。
  6. 　前記ベクターが２個以上の発現カセットを含む、請求項１～５のいずれか１項に記載のシゾサッカロミセス・ポンベの形質転換方法。
  7. 　相同組換えを行わせた後、前記染色体に組み込まれた発現カセットの総数が３～４０個であるものを選択する、請求項１～６のいずれか１項に記載のシゾサッカロミセス・ポンベの形質転換方法。
  8. 　前記発現カセット中の異種蛋白質構造遺伝子の５’末端側にシゾサッカロミセス・ポンベ内で機能する分泌シグナル遺伝子を有する、請求項１～７のいずれか１項に記載のシゾサッカロミセス・ポンベの形質転換方法。
  9. 　請求項１～８のいずれか１項に記載の形質転換方法により得られた形質転換体。
  10. 　請求項９に記載の形質転換体を培養し、該形質転換体により産生された異種蛋白質を取得する、異種蛋白質の製造方法。
  11. 　請求項８に記載の形質転換方法により得られる形質転換体を培養液中で培養し、該形質転換体により産生された異種蛋白質を前記培養液から取得する、異種蛋白質の製造方法。
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