JP6488666B2 - クローニングベクター、発現ベクターおよび形質転換体の製造方法 - Google Patents
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Description
[1]宿主の染色体中の標的部位と相同組換えを行うための1組の組換え部位の間に、第1の領域と第2の領域とクローニングサイトとを有し、該第1の領域の下流側に該第2の領域が位置しており、該第1の領域と第2の領域は互いに90%以上の相同性を有し、該クローニングサイトは、該第1の領域の上流側または該第2の領域の下流側に位置しており、該第1の領域と該第2の領域の間に、選択マーカー遺伝子とカウンター選択マーカー遺伝子とから構成されるマーカー遺伝子を有し、該選択マーカー遺伝子と該カウンター選択マーカー遺伝子が連結されており、かつ該連結された遺伝子の上流に、該連結された遺伝子の発現を制御するプロモーターを有することを特徴とするクローニングベクター。
[2]該カウンター選択マーカー遺伝子がura遺伝子である、前記[1]のクローニングベクター。
[3]該第1の領域が、該選択マーカー遺伝子と該カウンター選択マーカー遺伝子のうちの上流側の遺伝子の発現を制御するプロモーターとして機能する領域である、前記[1]または[2]のクローニングベクター。
[4]該第2の領域が、該マーカー遺伝子のターミネーターとして機能する領域である、前記[1]〜[3]のいずれかのクローニングベクター。
[5]該クローニングサイトが該第1の領域の上流側に位置し、該クローニングサイトの上流に該クローニングサイトに導入される外来遺伝子の発現を制御するプロモーターを有し、該第1の領域および該第2の領域が、いずれも、該外来遺伝子のターミネーターとして機能しうる領域である、前記[1]〜[3]のいずれかのクローニングベクター。
[6]該第1の領域と該第2の領域が、いずれも、該クローニングサイトに導入される外来遺伝子のターミネーターおよび該マーカー遺伝子のターミネーターとして機能しうる領域である、前記[5]のクローニングベクター。
[7]宿主の染色体中の標的部位と相同組換えを行うための1組の組換え部位の間に、第1の領域と第2の領域とクローニングサイトとを有し、該第1の領域の下流側に該第2の領域が位置しており、該第1の領域と第2の領域は互いに90%以上の相同性を有し、該クローニングサイトは、該第2の領域の下流側に位置しており、該第1の領域と該第2の領域の間に、選択マーカー遺伝子とカウンター選択マーカー遺伝子とから構成されるマーカー遺伝子またはura遺伝子からなるマーカー遺伝子を有し、該第1の領域と該第2の領域が、いずれも、該クローニングサイトに導入される外来遺伝子の発現を制御しうるプロモーターとして機能しうる領域であることを特徴とするクローニングベクター。
[8]該カウンター選択マーカー遺伝子がura遺伝子である、前記[7]のクローニングベクター。
[9]選択マーカー遺伝子とカウンター選択マーカー遺伝子とから構成されるマーカー遺伝子を有し、該選択マーカー遺伝子の上流に、該選択マーカー遺伝子の発現を制御するプロモーターを有しており、該カウンター選択マーカー遺伝子の上流に、該カウンター選択マーカー遺伝子の発現を制御するプロモーターを有しており、該選択マーカー遺伝子のプロモーターと、該カウンター選択マーカー遺伝子のプロモーターが、互いに相同性が90%未満の配列からなる、前記[7]または[8]のクローニングベクター。
[10]選択マーカー遺伝子とカウンター選択マーカー遺伝子とから構成されるマーカー遺伝子を有し、該選択マーカー遺伝子と該カウンター選択マーカー遺伝子が連結されており、かつ該連結された遺伝子の上流に、該連結された遺伝子の発現を制御するプロモーターを有する、前記[7]または[8]のクローニングベクター。
[11]該第1の領域が、該選択マーカー遺伝子と該カウンター選択マーカー遺伝子のうちの上流側の遺伝子の発現を制御するプロモーターとして機能する領域である、前記[9]または[10]のクローニングベクター。
[12]ura遺伝子からなるマーカー遺伝子を有し、該ura遺伝子の上流に該ura遺伝子の発現を制御するプロモーターを有する、前記[7]のクローニングベクター。
[13]該第1の領域が、ura遺伝子の発現を制御するプロモーターとして機能する領域である、前記[12]のクローニングベクター。
[14]該第1の領域と該第2の領域が、いずれも、該クローニングサイトに導入される外来遺伝子のプロモーターおよび該マーカー遺伝子のプロモーターとして機能しうる領域である、前記[7]のクローニングベクター。
[15]該クローニングサイトがマルチクローニングサイトである、前記[1]〜[14]のいずれかのクローニングベクター。
[16]前記[1]〜[15]のいずれかのクローニングベクターのクローニングサイトに外来遺伝子を導入してなる発現ベクター。
[17]シゾサッカロミセス・ポンベの染色体に相同組換えにより外来遺伝子を組込むために用いられる、前記[16]の発現ベクター。
[18]前記[15]のクローニングベクターまたは前記[16]の発現ベクターを宿主細胞に導入した後、該選択マーカー遺伝子を利用して該マーカー遺伝子を有する形質転換体のみを選択するベクター導入工程と、該ベクター導入工程により選択された形質転換体から、該カウンター選択マーカー遺伝子またはura遺伝子を利用して該マーカー遺伝子が脱落した形質転換体のみを選択するカウンター選択工程と、
を有することを特徴とする、形質転換体の製造方法。
[19]該カウンター選択マーカーがura遺伝子である、または該マーカー遺伝子がura遺伝子である該発現ベクターを使用し、該カウンター選択工程において、該ベクター導入工程により選択された形質転換体をFOA処理し、ura遺伝子が脱落した形質転換体のみを選択する、前記[18]の形質転換体の製造方法。
本発明に係るクローニングベクターは、宿主の染色体中の標的部位と相同組換えを行うための1組の組換え部位の間に、第1の領域と第2の領域とクローニングサイトとを有し、該第1の領域の下流側に該第2の領域が位置しており、該第1の領域と第2の領域は互いに90%以上の相同性を有し、該クローニングサイトは、該第1の領域の上流側または該第2の領域の下流側に位置しており、該第1の領域と該第2の領域の間に、選択マーカー遺伝子とカウンター選択マーカー遺伝子とから構成されるマーカー遺伝子またはura遺伝子からなるマーカー遺伝子を有することを特徴とする。該クローニングベクターの該クローニングサイトに外来遺伝子を導入した発現ベクター(本発明に係る発現ベクター)は、宿主の染色体に、外来遺伝子と共に、相同性の高い領域(第1の領域と第2の領域)に挟まれた状態のマーカー遺伝子を組込む発現ベクターである。該発現ベクターが宿主の染色体に組込まれた後、該第1の領域と該第2の領域による相同組換えが生じることによって、該染色体から該マーカー遺伝子が脱落した形質転換体が得られる。
ura遺伝子は、選択マーカーとしての機能とカウンター選択マーカーとしての機能の両方を備える蛋白質をコードし、選択マーカー遺伝子としてもカウンター選択マーカー遺伝子としても機能する。
蛍光タンパク質遺伝子としては、たとえば、緑色蛍光タンパク質(GFP)遺伝子等が挙げられる。
呈色反応を触媒する酵素をコードする遺伝子としては、たとえば、ルシフェラーゼ遺伝子、β−グルクロニダーゼ(GUS)遺伝子、lacZ遺伝子が挙げられる。
Nathan J. Bowen et al, “Retrotransposons and Their Recognition of pol II Promoters: A Comprehensive Survey of the Transposable Elements From the Complete Genome Sequence of Schizosaccharomyces pombe”, Genome Res. 2003 13: 1984-1997
該ベクターは、両端それぞれに組換え部位の一部が存在するような線状DNA構造とすることができれば、環状DNA構造を有するベクターを切り開く方法以外の方法で構築してもよい。
この場合、該プラスミドベクターは、大腸菌内での複製のために必要な「ori」と呼ばれる複製開始領域が除去されていることが好ましい。これにより、上述したベクターを染色体に組込む際に、その組込み効率を向上させられる。
複製開始領域が除去されたベクターの構築方法は特に限定されないが、特開2000−262284号公報に記載されている方法を用いることが好ましい。すなわち、線状化のための切断箇所に複製開始領域を挿入しておくことにより、線状DNA構造とすると同時に複製開始領域が切り出されるようにする方法が好ましい。これにより、簡便に複製開始領域が除去されたベクターを得られる。
また、特開平5−15380号公報、特開平7−163373号公報、国際公開第96/23890号パンフレット、特開平10−234375号公報等に記載された発現ベクターやその構築方法を適用して、該組込み領域を有する前駆体ベクターを構築し、さらに通常の遺伝子工学的手法で該前駆体ベクターから複製開始領域を除去して相同組換えに用いるベクターを得る方法であってもよい。
本発明に係る形質転換体の製造方法は、本発明に係るクローニングベクターまたは発現ベクターを、宿主細胞に導入した後、該選択マーカー遺伝子を利用して該マーカー遺伝子を有する形質転換体のみを選択するベクター導入工程と、該ベクター導入工程により選択された形質転換体から、該カウンター選択マーカー遺伝子またはura遺伝子を利用して該マーカー遺伝子が脱落した形質転換体のみを選択するカウンター選択工程と、を有することを特徴とする。
また、特定の遺伝子の削除または不活性化を行う部分はORF(オープンリーディングフレーム)部分であってもよく、発現調節配列部分であってもよい。特に好ましい方法は、構造遺伝子のORF部分をマーカー遺伝子に置換するPCR媒介相同組換え法(Yeast誌、第14巻、943-951ページ、1998年)による削除または不活性化の方法である。
染色体に組込まれるベクターの数は組込み条件等を調整することによりある程度は調整できる。ベクターの大きさ(塩基数)や構造により、組込み効率や組込み数も変化すると考えられる。
たとえば、宿主がシゾサッカロミセス属酵母の場合、該形質転換体の培養のための培養液には、公知の酵母培養培地を用いることができ、シゾサッカロミセス属酵母が資化しうる炭素源、窒素源、無機塩類等を含有し、シゾサッカロミセス属酵母の培養を効率良く行えるものであればよい。培養液としては、天然培地を用いてもよく、合成培地を用いてもよい。
窒素源としては、たとえば、アンモニア、塩化アンモニウム、酢酸アンモニウム等の無機酸または無機酸のアンモニウム塩、ペプトン、カザミノ酸が挙げられる。
無機塩類としては、たとえば、リン酸マグネシウム、硫酸マグネシウム、塩化ナトリウムが挙げられる。
具体的には、YPD培地等の栄養培地(M.D.Rose et al.,"Methods In Yeast Genetics",Cold Spring Harbor LabolatoryPress(1990) )またはMB培地等の最少培地(K.Okazaki et al.,Nucleic AcidsRes.,18,6485-6489(1990))等を使用できる。
培養温度は、宿主がシゾサッカロミセス属酵母の場合、23〜37℃であることが好ましい。また、培養時間は適宜決定できる。
<発現ベクターpSEl−EGFPの製造>
選択マーカー遺伝子としてleu1遺伝子を、カウンター選択マーカー遺伝子としてura4遺伝子を、外来遺伝子としてEGFP遺伝子を有するS.ポンベを宿主とする発現ベクターpSEl−EGFP(図1)を製造した。pSEl−EGFPは、DNA合成により配列番号1に示す塩基配列からなるDNA断片として作製できる。
<発現ベクターpSHa−EGFPの製造>
選択マーカー遺伝子としてade6遺伝子を、カウンター選択マーカー遺伝子としてura4遺伝子を、外来遺伝子としてEGFP遺伝子を有するS.ポンベを宿主とする発現ベクターpSHa−EGFP(図2)を製造した。pSHa−EGFPは、DNA合成により配列番号2に示す塩基配列からなるDNA断片として作製できる。
<形質転換体の製造>
S.ポンベのウラシル要求性株ARC019株(遺伝子型:h− 、leu1−32、ura4−D18、Ade6−M216)(Strain name: JY741, NBRPID: FY7512)を宿主とし、pSE1−EGFP、pSHa−EGFP、Leu1−EGFP断片、およびAde6−EGFP断片の4種類のDNA断片でそれぞれ形質転換した。Leu1−EGFP断片は、pSE1−EGFPからura4遺伝子配列を除去したDNA断片であり、Ade6−EGFP断片はpSHa−EGFPからura4遺伝子配列を除去したDNA断片である。
<形質転換体の製造>
ARC019株を、pSE1−EGFPのみ、pSHa−EGFPのみ、pSE1−EGFPとpSHa−EGFPの混合物、ならびにLeu1−EGFP断片とAde6−EGFP断片の混合物の4種類のDNA断片でそれぞれ形質転換した。形質転換の方法は、実施例3と同様にして行った。
(1)
<S.ポンベPDC2遺伝子削除株の作製>
S.ポンベのウラシル要求性株ARC010株(遺伝子型:h− 、leu1−32、ura4−D18)(国際公開第2007/015470号パンフレット参照。)をLatour法(Nucleic Acids Res.誌、2006年、34巻、e11頁、国際公開第2007/063919号パンフレットに記載)に従って形質転換し、PDC2遺伝子(系統名:SPAC1F8.07c)を削除した削除株(IGF543株)を作製した。
削除断片の作製には、S.ポンベのARC032株(遺伝子型:h−)(国際公開第2007/015470号パンフレット参照。)からDNeasy(キアゲン社製)によって調製した全ゲノムDNAを鋳型とし、表1に示す塩基配列を有する8種の合成オリゴDNA(オペロン社製)を使用した。
<S.ポンベLDH遺伝子1コピー導入株の作製>
PaDLDH遺伝子、PpDLDH遺伝子、LbDLDH遺伝子、LbrDLDH遺伝子、LpDLDH遺伝子、ラクトバチルス・ファーメンタム(Lactobacillus fermentum)のD−LDH遺伝子(LfDLDH遺伝子)(GenBank accession number:BAG28106.1.)、ラクトバチルス・カゼイ(Lactobacillus casei)のD−LDH遺伝子(LcDLDH遺伝子)(GenBank accession number:CAQ67405.1.)、ラクトバチルス・プランタラム(Lactobacillus plantarum)のD−LDH遺伝子(LplDLDH遺伝子)(GenBank accession number:CCC79301.1.)、スタヒロコッカス・アウレウス(Staphylococcus aureus)のD−LDH遺伝子(SaDLDH遺伝子)(GenBank accession number:BAB96309.1.)、またはロイコノストック・メセンテロイデス(Leuconostoc mesenteroides)のD−LDH遺伝子(LmDLDH遺伝子)(GenBank accession number:ABJ62843.1.)を導入したポンベ形質転換株を作製した(表13)。
得られた各形質転換体をYPD6液体培地(イーストエキス1%、ペプトン2%、グルコース6%)に植菌して、温度32℃、振盪速度100rpmの条件下で24時間培養を行った。培養終了後、菌体を回収し、4.5mLの11.1%グルコース水溶液に初発菌体濃度を36g(乾燥菌体換算)/Lになるように接種し、温度32℃、振盪速度100rpmの条件下で3または7時間培養を行い、終了後、培養液中のグルコース、エタノールおよび乳酸の濃度(g/L)を測定した。測定結果ならびに該測定結果より計算した、乳酸生産速度(g/(L・h))、乳酸の対糖収率(選択率、%)、培養終了後の乾燥菌体濃度(g/L)、および乾燥菌体あたりの乳酸生産速度(g/(g・h))を、発酵(培養)時間とともに表14に示す。
<D−LDH遺伝子2コピー導入株の作製>
例1で作製したIGF543株の染色体中の2箇所に、同種または異種の生物由来のD−LDH遺伝子を導入した形質転換体を作製し、それぞれの乳酸産生能を調べた。ウラシル要求性およびロイシン要求性を回復させた株であって、PaDLDH遺伝子が2コピー導入された株をASP4707株、PaDLDH遺伝子とLpDLDH遺伝子が1コピーずつ導入された株をASP4156株、PaDLDH遺伝子とLbDLDH遺伝子が1コピーずつ導入された株をASP4703株、PaDLDH遺伝子とLbrDLDH遺伝子が1コピーずつ導入された株をASP4704株、PaDLDH遺伝子とPpDLDH遺伝子が1コピーずつ導入された株をASP4708株、LfDLDH遺伝子とLpDLDH遺伝子が1コピーずつ導入された株をASP4752株とした。
例2と同様にして、各S.ポンベLDH遺伝子2コピー導入株をそれぞれYPD6液体培地に植菌して培養し、回収した菌体を11.1%グルコース水溶液中で培養を行い、終了後、培養液中のグルコース、エタノールおよび乳酸の濃度(g/L)を測定した。また、乳酸の光学純度を、配位子交換型カラムを用いて光学異性体を分離し測定した。光学純度は、各光学異性体のピークエリア面積から、下記式([D体]:D−乳酸のピークエリア面積、[L体]:L−乳酸のピークエリア面積)により算出して求めた。
式:[光学純度(%ee)]=([D体]−[L体])/([D体]+[L体])×100
<S.ポンベHsLDH遺伝子1コピー導入株の作製>
S.ポンベの染色体のgpm1遺伝子座およびその近傍に、ヒト由来のLDH遺伝子(HsLDH遺伝子)を組込むための発現ベクターpSM−HsLDHベクター(4562bp、図5)を作製した。pSM−HsLDHベクターは、DNA合成により、配列番号61に示す塩基配列からなるDNA断片として作製した。
ASP3494株を、HsLDH遺伝子発現カセットを保持し、ihc1プロモーターを有する発現ベクターpSL17−HsLDH(国際公開第2014/030655号参照。)の制限酵素BsiWI消化物で、Bahlerらの方法(Yeast誌、1998年、14巻、943−951頁)に従い形質転換した。該操作により、該発現カセットがゲノム上のleu1遺伝子座近傍に導入され、gpm1遺伝子座近傍にhCMVプロモーターによって制御されたHsLDH遺伝子を1コピーと、Leu1遺伝子座近傍にihcプロモーターによって制御されたHsLDH遺伝子を1コピーとの合計2コピーのHsLDH遺伝子が導入された形質転換株を作製した。該形質転換株(HsLDH遺伝子2コピー導入株)をASP4121株とした。
pSM−HsLDHベクターによりS.ポンベのゲノムに導入されたura4遺伝子は、2つのhCMVプロモーター配列に挟まれている為、ホモロガスリコンビネーションによりゲノム上から脱落しやすい。
そこで、ASP4121株をFOA処理し、ウラシルの要求性を復帰させた。
まず、HsLDH遺伝子発現カセットを保持し、S.ポンベの染色体のeno101遺伝子座近傍にHsLDH遺伝子を組込むための発現ベクターpSN−HsLDHベクター(4535bp、図6)を作製した。pSN−HsLDHベクターは、DNA合成により、配列番号62に示す塩基配列からなるDNA断片として作製した。
pSM−HsLDHベクターによる場合と同様に、pSN−HsLDHベクターによりS.ポンベのゲノムに導入されたura4遺伝子は、2つのhCMVプロモーター配列に挟まれている為、ホモロガスリコンビネーションによりゲノム上から脱落しやすい。
そこで、ASP4956株をFOA処理し、ウラシルの要求性を復帰させた。
ASP4956株をFOA処理してウラシルの要求性を復帰させた形質転換株を、ura4遺伝子を含むDNA断片(3277bp、配列番号63)で形質転換し、ウラシル要求性が補完された形質転換株を作製した。該形質転換株(HsLDH遺伝子3コピー導入栄養要求補完株)をASP5019株とした。
ASP5019株の増殖能と乳酸産生能を調べた。具体的には、形質転換株をYPD6液体培地(イーストエキス1%、ペプトン2%、グルコース6%)に植菌して、温度32℃、振盪速度100rpmの条件下で24時間培養を行った。培養終了後、菌体を回収し、4.5mLの11.1%グルコース水溶液に初発菌体濃度を36g(乾燥菌体換算)/Lになるように接種し、温度32℃、振盪速度100rpmの条件下で3または20時間培養を行い、終了後、培養液のOD660および培養液中の乳酸の濃度(g/L)を測定した。この結果、ASP5019株の20時間培養後の培養液のOD660は22.5であり、3時間培養(発酵)後の乳酸濃度は91.0g/Lであった。
Claims (19)
- 宿主の染色体中の標的部位と相同組換えを行うための1組の組換え部位の間に、第1の領域と第2の領域とクローニングサイトとを有し、
該第1の領域の下流側に該第2の領域が位置しており、該第1の領域と第2の領域は互いに90%以上の相同性を有し、
該クローニングサイトは、該第1の領域の上流側または該第2の領域の下流側に位置しており、
該第1の領域と該第2の領域の間に、選択マーカー遺伝子とカウンター選択マーカー遺伝子とから構成されるマーカー遺伝子を有し、
該選択マーカー遺伝子と該カウンター選択マーカー遺伝子が連結されており、かつ該連結された遺伝子の上流に、該連結された遺伝子の発現を制御するプロモーターを有することを特徴とするクローニングベクター。 - 該カウンター選択マーカー遺伝子がura遺伝子である、請求項1に記載のクローニングベクター。
- 該第1の領域が、該選択マーカー遺伝子と該カウンター選択マーカー遺伝子のうちの上流側の遺伝子の発現を制御するプロモーターとして機能する領域である、請求項1または2に記載のクローニングベクター。
- 該第2の領域が、該マーカー遺伝子のターミネーターとして機能する領域である、請求項1〜3のいずれか一項に記載のクローニングベクター。
- 該クローニングサイトが該第1の領域の上流側に位置し、該クローニングサイトの上流に該クローニングサイトに導入される外来遺伝子の発現を制御するプロモーターを有し、該第1の領域および該第2の領域が、いずれも、該外来遺伝子のターミネーターとして機能しうる領域である、請求項1〜3のいずれか一項に記載のクローニングベクター。
- 該第1の領域と該第2の領域が、いずれも、該クローニングサイトに導入される外来遺伝子のターミネーターおよび該マーカー遺伝子のターミネーターとして機能しうる領域である、請求項5に記載のクローニングベクター。
- 宿主の染色体中の標的部位と相同組換えを行うための1組の組換え部位の間に、第1の領域と第2の領域とクローニングサイトとを有し、
該第1の領域の下流側に該第2の領域が位置しており、該第1の領域と第2の領域は互いに90%以上の相同性を有し、
該クローニングサイトは、該第2の領域の下流側に位置しており、
該第1の領域と該第2の領域の間に、選択マーカー遺伝子とカウンター選択マーカー遺伝子とから構成されるマーカー遺伝子またはura遺伝子からなるマーカー遺伝子を有し、
該第1の領域と該第2の領域が、いずれも、該クローニングサイトに導入される外来遺伝子の発現を制御しうるプロモーターとして機能しうる領域であることを特徴とするクローニングベクター。 - 該カウンター選択マーカー遺伝子がura遺伝子である、請求項7に記載のクローニングベクター。
- 選択マーカー遺伝子とカウンター選択マーカー遺伝子とから構成されるマーカー遺伝子を有し、
該選択マーカー遺伝子の上流に、該選択マーカー遺伝子の発現を制御するプロモーターを有しており、
該カウンター選択マーカー遺伝子の上流に、該カウンター選択マーカー遺伝子の発現を制御するプロモーターを有しており、
該選択マーカー遺伝子のプロモーターと、該カウンター選択マーカー遺伝子のプロモーターが、互いに相同性が90%未満の配列からなる、請求項7または8に記載のクローニングベクター。 - 選択マーカー遺伝子とカウンター選択マーカー遺伝子とから構成されるマーカー遺伝子を有し、
該選択マーカー遺伝子と該カウンター選択マーカー遺伝子が連結されており、かつ該連結された遺伝子の上流に、該連結された遺伝子の発現を制御するプロモーターを有する、請求項7または8に記載のクローニングベクター。 - 該第1の領域が、該選択マーカー遺伝子と該カウンター選択マーカー遺伝子のうちの上流側の遺伝子の発現を制御するプロモーターとして機能する領域である、請求項9または10に記載のクローニングベクター。
- ura遺伝子からなるマーカー遺伝子を有し、該ura遺伝子の上流に該ura遺伝子の発現を制御するプロモーターを有する、請求項7に記載のクローニングベクター。
- 該第1の領域が、ura遺伝子の発現を制御するプロモーターとして機能する領域である、請求項12に記載のクローニングベクター。
- 該第1の領域と該第2の領域が、いずれも、該クローニングサイトに導入される外来遺伝子のプロモーターおよび該マーカー遺伝子のプロモーターとして機能しうる領域である、請求項7に記載のクローニングベクター。
- 該クローニングサイトがマルチクローニングサイトである、請求項1〜14のいずれか一項に記載のクローニングベクター。
- 請求項1〜15のいずれか一項に記載のクローニングベクターのクローニングサイトに外来遺伝子を導入してなる発現ベクター。
- シゾサッカロミセス・ポンベ(Schizosaccharomyces pombe)の染色体に相同組換えにより外来遺伝子を組込むために用いられる、請求項16に記載の発現ベクター。
- 請求項15に記載のクローニングベクターまたは請求項16に記載の発現ベクターを宿主細胞に導入した後、該選択マーカー遺伝子を利用して該マーカー遺伝子を有する形質転換体のみを選択するベクター導入工程と、
該ベクター導入工程により選択された形質転換体から、該カウンター選択マーカー遺伝子またはura遺伝子を利用して該マーカー遺伝子が脱落した形質転換体のみを選択するカウンター選択工程と、
を有することを特徴とする、形質転換体の製造方法。 - 該カウンター選択マーカーがura遺伝子である、または該マーカー遺伝子がura遺伝子である該発現ベクターを使用し、
該カウンター選択工程において、該ベクター導入工程により選択された形質転換体をFOA処理し、ura遺伝子が脱落した形質転換体のみを選択する、請求項18に記載の形質転換体の製造方法。
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