WO2010074164A1 - 水存在下における親油性成分の分解・劣化を抑制する方法 - Google Patents

水存在下における親油性成分の分解・劣化を抑制する方法 Download PDF

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康治 橋本
仁慈 正野
明子 鴨井
信昭 柘植
正輝 中村
正 ▲浜▼島
守紘 青▲柳▼
宜秀 仲川
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ハウス食品株式会社
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Definitions

  • the present invention relates to a method for suppressing decomposition / deterioration of lipophilic components.
  • Lipophilic components are decomposed and deteriorated by interaction with water or by interaction with light, enzyme, oxygen, heat, etc. in the presence of water.
  • an isothiocyanate clathrated with cyclodextrin is kneaded with a synthetic resin to be formed into a film, a sheet, a tray, or included in a printing ink or paint to form a film.
  • a food packaging material that improves the stability of isothiocyanate by printing or coating and retains the antibacterial effect of isothiocyanate even after heat drying (Patent Document 1).
  • JP 7-46973 A Japanese Patent Laid-Open No. 10-231224
  • An object of the present invention is to provide a method for suppressing decomposition / degradation of lipophilic components by interaction with water or by interaction with light, enzyme, oxygen, heat, etc. in the presence of water.
  • the present invention provides a method for suppressing degradation / degradation of a lipophilic component in the presence of water, and this method forms a complex comprising a lipophilic component, a plant sterol ester and a cyclodextrin, and the form of the complex And storing the new oil component in the presence of water.
  • degradation / degradation of lipophilic components due to interaction with water or due to interaction with light, enzyme, oxygen, heat, etc. in the presence of water can be suppressed over time.
  • the lipophilic component to which the present invention is applied is a lipophilic component that is decomposed and deteriorated by interaction with water or by interaction with light, enzyme, oxygen, heat, etc. in the presence of water.
  • mustard extract containing allyl isothiocyanate e.g., mustard extract containing allyl isothiocyanate
  • turmeric extracts such as curcumin, capsaicinoids, capsicum extract containing capsinoids, gingerol, gingerol, gingerol containing gingerone, piperine, etc.
  • Preferable pepper extract docosahexaenoic acid (DHA), eicosapentaenoic acid (EPA), and other unsaturated fatty acids that are easily oxidized.
  • DHA docosahexaenoic acid
  • EPA eicosapentaenoic acid
  • the mustard extract containing allyl isothiocyanate has the property of being easily degraded over time in the presence of water.
  • a turmeric extract such as curcumin has a property of being easily decomposed over time by interaction with light in the presence of water.
  • capsaicinoids have the property of being easily degraded over time by the interaction with enzymes in the presence of water.
  • Capsinoids have a property that they are easily decomposed over time in the presence of water.
  • ginger extracts such as gingerol, gingerol and gingerone have the property of being easily degraded over time in the presence of water.
  • pepper extract such as piperine, has the property of being easily degraded over time in the presence of water.
  • unsaturated fatty acids such as docosahexaenoic acid and eicosapentaenoic acid have the property of being decomposed and deteriorated over time by the interaction with oxygen in the presence of water.
  • the plant sterol ester used in the present invention is a substance obtained by esterifying a fatty acid with a hydroxyl group in the sterol skeleton of a plant sterol.
  • Examples of the method for producing a plant sterol ester include an enzyme method using an enzyme.
  • Examples of the enzymatic method include a method in which a plant sterol ester is obtained by using lipase or the like as a catalyst, mixing plant sterol and a fatty acid, and reacting them (at 30 to 50 ° C. for about 48 hours).
  • plant sterols include sterols contained in vegetable oils and fats, such as those extracted and purified from vegetable oils such as soybeans, rapeseed, and cottonseed, and ⁇ -sitosterol, campesterol, stigmasterol, It may be a mixture containing brush casterol, fucosterol, dimethyl sterol and the like.
  • soy sterols include 53-56% sitosterol, 20-23% campesterol and 17-21% stigmasterol.
  • What is marketed as "phytosterol F” (made by Tama Seikagaku Corporation) can also be used as plant sterol.
  • the fatty acid may be derived from plants, such as those derived from rapeseed oil or palm oil, or may be derived from animals.
  • Examples include myristic acid, stearic acid, palmitic acid, arachidonic acid, oleic acid, linoleic acid, ⁇ -linolenic acid, ⁇ -linolenic acid, eicosapentaenoic acid, docosahexaenoic acid, palmitooleic acid, lauric acid and the like.
  • Preferred plant sterol esters include plant sterols obtained from soybean-derived plant sterols and fatty acids derived from rapeseed oil, and plant sterols obtained from soybean and rapeseed-derived plant sterols and palm oil-derived fatty acids.
  • the former includes “Santosterol NO. 3” from Saneigen FFI Co., Ltd., and the latter includes “Plant Sterol Fatty Acid Esters” from Tama Biochemical Co., Ltd.
  • the cyclodextrin used in the present invention is a cyclic non-reducing maltooligosaccharide having glucose as a structural unit.
  • Cyclodextrin can be any of ⁇ -cyclodextrin, 6 ⁇ -cyclodextrin and 8 ⁇ -cyclodextrin with 6 glucose, but it is decomposed by human digestive enzymes and soluble in water ⁇ -cyclodextrin is preferred because it is high in food and drink, and particularly easy to use in beverages.
  • the above-mentioned lipophilic component, a plant sterol ester and a cyclodextrin are formed into a complex, and the novel oily component is stored in the presence of water in the form of the complex, thereby interacting with water. Or degradation of lipophilic components over time due to interaction with light, enzymes, oxygen, heat, etc. in the presence of water.
  • the complex here can be produced by a method including a complexing step in which a lipophilic component, a plant sterol ester, and a cyclodextrin are mixed to form a complex in the presence of water.
  • the amount of the plant sterol ester is preferably 0.5 to 30000 parts by weight with respect to 1 part by weight of the lipophilic component, for example.
  • the addition amount of the cyclodextrin mentioned later increases and the ratio of a lipophilic component becomes relatively low.
  • the amount of cyclodextrin is, for example, preferably 0.01 to 1000 parts by weight, more preferably 0.1 to 100 parts by weight with respect to 1 part by weight of the plant sterol ester.
  • the amount of water coexisting in the production of the complex is preferably 0.01 to 100 parts by weight, for example, 0.1 to 10 parts by weight with respect to 1 part by weight of cyclodextrin. More preferred.
  • the mixing is preferably performed by heating at 40 to 90 ° C., more preferably 50 to 85 ° C.
  • the order of addition and mixing of water, a new oil component, a plant sterol ester, and a cyclodextrin when producing the complex is not particularly limited.
  • a mixture of a new oil component and a plant sterol ester (and water in the case of poor dispersibility) to prepare a mixture, while cyclodextron is dispersed in water to prepare another mixture, then both mixtures are preferably mixed.
  • the mixing conditions and means are not limited as long as they are appropriately dispersed.
  • a mixing device having a strong shearing force such as a kneader in order to sufficiently knead to form a complex.
  • the new oil component is stored in the presence of water in the form of the composite thus obtained. More specifically, for example, in the form of a complex obtained in this way, by adding to and stored in foods and drinks, pharmaceuticals, cosmetics, etc. containing water, by interaction with water or in the presence of water The degradation and degradation of lipophilic components due to the interaction with light, enzymes, oxygen, heat, etc. can be suppressed over time.
  • Example 1 To 5.67 parts by weight of the plant sterol ester dissolved by heating at 60 ° C., 0.63 parts by weight of mustard essential oil was added and dissolved. Meanwhile, 62.4 parts by weight of ⁇ -cyclodextrin and 31.3 parts by weight of water (75 ° C.) were added to the mortar and mixed with a pestle to obtain a paste. The plant sterol ester which melt
  • Comparative Example 1 In a mortar, 66.24 parts by weight of ⁇ -cyclodextrin and 33.13 parts by weight of water (60 ° C.) were added and mixed with a pestle to obtain a paste. To this, 0.63 parts by weight of mustard essential oil was added and kneaded in a hot water bath (75 ° C.) for 10 minutes. After the kneading was completed, the scattered water was added and kneaded again uniformly. The amount (g) of Comparative Example 1 is shown in Table 1 below.
  • Example 2 0.07 parts by weight of capsicum oleoresin was added to and dissolved in 3.5 parts by weight of the plant sterol ester heated and dissolved at 60 ° C. To the mortar, 64.3 parts by weight of ⁇ -cyclodextrin and 32.13 parts by weight of water (60 ° C.) were added and mixed with a pestle to obtain a paste. To this was added the plant sterol ester in which the aforementioned capsicum oleoresin was dissolved, and the mixture was kneaded in a hot water bath (60 ° C.) for 10 minutes. After the kneading was completed, the scattered water was added and kneaded again uniformly. The amount (g) of Example 2 is shown in Table 2 below.
  • Comparative Example 2 66.6 parts by weight of ⁇ -cyclodextrin and 33.33 parts by weight of water (60 ° C.) were added to the mortar and mixed with a pestle to obtain a paste. To this, 0.07 part by weight of capsicum oleoresin was added and kneaded in a hot water bath (60 ° C.) for 10 minutes. After the kneading was completed, the scattered water was added and kneaded again uniformly. The amount (g) of Comparative Example 2 is shown in Table 2 below.
  • Example 2 and Comparative Example 2 Each sample obtained in Example 2 and Comparative Example 2 was diluted 10-fold with 50 mM Tris buffer (capsaicin concentration 0.0028%). Acylase was added to this so that it might become 0.05 u / ml. The enzyme was reacted by shaking in a 37 ° C constant temperature water bath.
  • a capsaicin reagent (capsaicin content of 95% or more) manufactured by SIGMA was diluted with 50 mM Tris buffer so that the capsaicin concentration was the same (0.0028%) as in Example 2 and Comparative Example 2.
  • Acylase was added to a concentration of 05 u / ml. In the same manner as in Example 2 and Comparative Example 2, the mixture was shaken in a 37 ° C. constant temperature water bath to react with the enzyme.
  • Fig. 2 shows changes in capsaicin concentration.
  • the capsicum oleoresin is formed by forming a complex with a plant sterol ester and ⁇ -cyclodextrin and storing the capsicum oleoresin in the form of the complex in the presence of water.
  • the degradation of capsaicin was clearly suppressed.
  • the capsaicin remaining rate after the enzyme reaction for 60 minutes with respect to the start of shaking was 78.6% in Example 2, 58.9% in Comparative Example 2, and 2.0% in the Reference Example.
  • capsinoids those extracted from “Natura” manufactured by Ajinomoto Co., Inc. were used. 0.35 parts by weight of fats and oils containing capsinoids was added to and dissolved in 0.70 parts by weight of the plant sterol ester heated to 70 ° C. On the other hand, 7.0 parts by weight of ⁇ -cyclodextrin and 3.5 parts by weight of water were placed in a mortar and mixed in a 70 ° C. hot water bath to obtain a paste. To this was added 1.05 parts by weight of the oil phase in which the capsinoids were dissolved, and the mixture was kneaded in a 70 ° C. hot water bath for 10 minutes to prepare a composite.
  • the complex-containing model beverage was heated to a temperature of 93 ° C., sterilized by holding at 90 ° C. for 3 minutes, and then filled in a pouch. Thereafter, it was kept in a constant temperature water bath at 83 ° C. for 7 minutes, and then sterilized.
  • capsinoids those extracted from “Natura” manufactured by Ajinomoto Co., Inc. were used. 0.37 parts by weight of fats and oils containing capsinoids were added to and dissolved in 0.70 parts by weight of rapeseed white drawn oil heated to 70 ° C. Add 0.33 parts by weight of emulsifier (polyglycerin fatty acid ester SWA-10D manufactured by Mitsubishi Chemical Foods Co., Ltd.) and 1.05 parts by weight of the oil phase in which the capsinoids are dissolved to 10.2 parts by weight of water, and emulsify with a mixer. An emulsion was prepared.
  • the obtained emulsion, 11.58 parts by weight, 0.56 parts by weight of citric acid and 0.27 parts by weight of trisodium citrate are dispersed in 87.6 parts by weight of water, and stirred for 30 seconds with a mixer.
  • a beverage was prepared.
  • the emulsion-containing model beverage was heated to a temperature of 93 ° C., sterilized by holding at 90 ° C. for 3 minutes, and then filled into a pouch. Thereafter, it was kept in a constant temperature water bath at 83 ° C. for 7 minutes, and then sterilized.
  • capsinoids those extracted from “Natura” manufactured by Ajinomoto Co., Inc. were used. 0.37 parts by weight of fats and oils containing capsinoids were added to and dissolved in 0.70 parts by weight of rapeseed white drawn oil heated to 70 ° C.
  • 7.0 parts by weight of ⁇ -cyclodextrin and 3.5 parts by weight of water were placed in a mortar and mixed in a 70 ° C. hot water bath to obtain a paste.
  • the complex-containing model beverage was heated to a temperature of 93 ° C., sterilized by holding at 90 ° C. for 3 minutes, and then filled in a pouch. Thereafter, it was kept in a constant temperature water bath at 83 ° C. for 7 minutes, and then sterilized.
  • Example 3 The model beverages prepared in Example 3 and Comparative Examples 3-1 and 3-2 were stored at 40 ° C. Samples of capsinoids after a certain period of time were quantified by liquid chromatography. The residual ratio of capsinoids was expressed as a percentage of the value of capsinoids immediately after the start of storage (day 0) as 100%, and the values after 1 day, 5 days, and 25 days after storage at 40 ° C. The results are shown in FIG. As is clear from FIG. 3, Example 3 can significantly suppress the degradation of capsinoids when stored at 40 ° C., as compared with Comparative Examples 3-1 and 3-2. From the above results, it was found that the present invention can suppress the decomposition of capsinoids in the presence of water and can improve the stability.
  • Example 3 and Comparative Example 3-2 Liquid Chromatography Pretreatment Method
  • 12.5 g of model beverage was centrifuged (3000 rpm for 10 minutes), the supernatant was removed, 6 ml of DMSO (dimethyl sulfoxide) was added, and Sonic was applied to dissolve the precipitate. Further, the volume was made up to 25 ml with methanol, and after filtration through a 0.45 ⁇ m filter, a test solution was obtained.
  • Comparative Example 3-1 5 g of a model beverage was collected, made up to a volume of 10 ml with methanol, filtered through a 0.45 ⁇ m filter, and used as a test solution.
  • Example 4 As the ginger extract, a supercritical ginger extract (gingerol: 24.8% gingerol: 10.7% Takasago fragrance) was used. To 0.18 parts by weight of plant sterol ester heated to 80 ° C. and 0.12 parts by weight of edible fats and oils, 0.015 parts by weight of ginger extract was added and dissolved. On the other hand, 1.093 parts by weight of ⁇ -cyclodextrin and 1.093 parts by weight of water were mixed with a TK homomixer while heating to 80 ° C.
  • the ginger extract complex-containing model beverage was heated to 93 ° C., sterilized by holding at 90 ° C. for 3 minutes, and then filled into a pouch. Then, it kept at 83 degreeC for 5 minute (s) in the constant temperature water tank, and performed post-sterilization.
  • the produced ginger extract complex-containing model beverage had a gingerol component of 36.1 ppm and a gingerol component of 15.4 ppm.
  • emulsified preparation obtained by emulsifying the ginger extract (gingerol: 1.79% gingerol 0.89% Takasago flavor) was used.
  • Emulsified preparation 0.23 parts by weight, citric acid 0.3 part by weight, trisodium citrate 0.12 part by weight is dispersed in 99.35 parts by weight of water, and stirred for 30 seconds with a mixer.
  • a beverage was prepared.
  • the ginger extract emulsion preparation model beverage was heated to a temperature of 93 ° C., sterilized by holding at 90 ° C. for 3 minutes, and then filled in a pouch. Then, it kept at 83 degreeC for 5 minute (s) in the constant temperature water tank, and performed post-sterilization.
  • the gingerol component of the produced ginger extract emulsified preparation-containing model beverage was 40.9 ppm, and the gingerol component was 16.2 ppm.
  • Example 4 The model beverage prepared in Example 4 and Comparative Example 4 was stored at 60 ° C. Samples of gingerol and gingerol were quantified by liquid chromatography before storage, one week and two weeks later. As for the remaining ratio of gingerol and gingerol, each value before storage (week 0) was taken as 100%, and the value after 1 week after storage and the value after 2 weeks were expressed as percentages. The results are shown in FIGS. As is clear from FIGS. 4 and 5, Example 4 suppresses the decomposition of gingerol, particularly gingerol, as compared with Comparative Example 4. From the above results, it was found that the present invention can suppress the decomposition of ginger extract in the presence of water and can improve the stability.
  • Example 4 Liquid Chromatography Pretreatment Method
  • 25 g of model beverage was centrifuged (3000 rpm for 10 minutes), the supernatant was removed, 3 ml of DMSO (dimethyl sulfoxide) was added, and the precipitate was dissolved by applying ultrasonic waves. did. Furthermore, the solution was made up to 50 ml with methanol, filtered through a 0.45 ⁇ m filter, and used as a test solution.
  • DMSO dimethyl sulfoxide
  • Example 5 As the pepper extract, piperine powder (piperin content: 92% or more, rice field flavor) was used. To 0.18 parts by weight of plant sterol ester heated to 80 ° C. and 0.12 parts by weight of edible fats and oils, 0.0064 parts by weight of pepper extract was added and dissolved. On the other hand, 1.097 parts by weight of ⁇ -cyclodextrin and 1.097 parts by weight of water were mixed with a TK homomixer while heating to 80 ° C. To this was added 0.3064 parts by weight of the oil phase in which the pepper extract was dissolved, and the mixture was then stirred with a TK homomixer while warming at 80 ° C. to perform preliminary emulsification.
  • piperine powder piperin content: 92% or more, rice field flavor
  • a high-pressure homogenizer (lab 1000, LAB1000 pressure: 100 MPa) was passed to prepare a pepper extract-containing composite. 2.5 parts by weight of the resulting composite, 0.3 part by weight of citric acid and 0.12 part by weight of trisodium citrate are dispersed in 97.08 parts by weight of water, and stirred for 30 seconds with a mixer.
  • a body-containing model beverage was prepared.
  • the pepper extract complex-containing model beverage was heated to 93 ° C., sterilized by holding at 90 ° C. for 3 minutes, and then filled into a pouch. Then, it kept at 83 degreeC for 5 minute (s) in the constant temperature water tank, and performed post-sterilization.
  • the amount of piperine contained in the prepared pepper extract complex-containing model beverage was 62 ppm.
  • pepper extract (piperine content: 300-1400 ppm Maruzen Pharmaceutical) was used. Disperse 0.15 parts by weight of pepper extract, 0.3 part by weight of citric acid and 0.12 part by weight of trisodium citrate in 99.43 parts by weight of water, and stir with a mixer for 30 seconds. Was made.
  • the pepper extract-containing model beverage was heated to 93 ° C., sterilized by holding at 90 ° C. for 3 minutes, and then filled into a pouch. Then, it kept at 83 degreeC for 5 minute (s) in the constant temperature water tank, and performed post-sterilization. The amount of piperine contained in the prepared pepper extract-containing model beverage was 0.25 ppm.
  • Example 5 The model beverage prepared in Example 5 and Comparative Example 5 was stored at 60 ° C. Samples of piperine before storage, one week and two weeks later were quantified by liquid chromatography. The residual ratio of piperine was expressed as a percentage after 1 week of storage and 2 weeks after storage of piperine before storage (week 0) as 100%. The results are shown in FIG. As is clear from FIG. 6, Example 5 suppressed the decomposition of piperine as compared with Comparative Example 5. From the above results, it was found that the present invention can suppress the decomposition of the pepper extract in the presence of water and can improve the stability.
  • Example 5 Liquid Chromatography Pretreatment Method For Example 5, 10 g of model drink was centrifuged (3000 rpm for 10 minutes), the supernatant was removed, 3 ml of DMSO (dimethyl sulfoxide) was added, and the precipitate was dissolved by applying ultrasonic waves. did. Furthermore, the solution was made up to 50 ml with methanol, filtered through a 0.45 ⁇ m filter, and used as a test solution. For Comparative Example 5, after dilution with methanol, the solution was filtered through a 0.45 ⁇ m filter.
  • DMSO dimethyl sulfoxide
  • odorless processed fish oil “DHA-22HG” manufactured by Maruha Nichiro Foods Co., Ltd.
  • odorless processed fish oil “DHA-22HG” manufactured by Maruha Nichiro Foods Co., Ltd.
  • 10 parts by weight of ⁇ -cyclodextrin and 5 parts by weight of water (90 ° C.) were mixed to prepare a mixture (paste).
  • a plant sterol ester in which odorless processed DHA-containing fish oil was dissolved was added to the mixed paste, and the mixture was kneaded for 10 minutes while heating to 70 ° C. using a mortar to prepare a composite.
  • 82.895 parts by weight of water was added and mixed, and then 0.5 parts by weight of citric acid and 0.25 parts by weight of trisodium citrate were added and mixed.
  • the white liquid was stirred and the temperature reached 93 ° C., it was filled in a colorless and transparent glass container, and then cooled to produce a beverage containing the container.
  • pH of this drink was 3.4.
  • a plant sterol ester in which odorless processed DHA-containing fish oil was dissolved was added to the emulsion, and the mixture was stirred with a homomixer at 5000 rpm for 10 minutes to prepare an emulsion.
  • 82.895 parts by weight of water was added and mixed, and then 0.5 parts by weight of citric acid and 0.25 parts by weight of trisodium citrate were added and mixed. Thereafter, after reaching a temperature of 93 ° C. with stirring, it was filled in a colorless and transparent glass container and then cooled to produce a container-containing beverage.
  • pH of this drink was 3.4.
  • rapeseed white squeezed oil in which odorless processed DHA-containing fish oil was dissolved was added and stirred with a homomixer at 5000 rpm for 10 minutes to prepare an emulsion.
  • 82.895 parts by weight of water was added and mixed, and then 0.5 parts by weight of citric acid and 0.25 parts by weight of trisodium citrate were added and mixed. Thereafter, after reaching a temperature of 93 ° C. with stirring, it was filled in a colorless and transparent glass container and then cooled to produce a container-containing beverage.
  • pH of this drink was 3.4.
  • Example 7 As an unsaturated fatty acid, odorless processed fish oil “DHA-22HG” (manufactured by Maruha Nichiro Foods Co., Ltd.) containing 22% or more of DHA was used. Add 0.455 parts by weight of odorless processed DHA-containing fish oil to 0.9 parts by weight of plant sterol ester, and stir this to warm and dissolve at 70 ° C to dissolve the odorless processed DHA-containing fish oil. Prepared. Separately, 10 parts by weight of ⁇ -cyclodextrin and 5 parts by weight of water (90 ° C.) were mixed to prepare a mixture (paste).
  • a plant sterol ester in which odorless processed DHA-containing fish oil was dissolved was added to the mixed paste, and the mixture was kneaded for 10 minutes while heating to 70 ° C. using a mortar to prepare a composite.
  • 82.895 parts by weight of water was added and mixed, and then 0.5 parts by weight of citric acid and 0.25 parts by weight of trisodium citrate were added and mixed.
  • the white liquid was stirred and the temperature reached 93 ° C., it was filled in a colorless and transparent glass container, and then cooled to produce a beverage containing the container.
  • pH of this drink was 3.4.

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Abstract

　本発明の目的は、水との相互作用による、又は水存在下における光、酵素、酸素、熱などとの相互作用による親油性成分の分解、劣化を抑制する方法を提供することにある。 　本発明は、水存在下における親油性成分の分解、劣化を抑制する方法を提供し、この方法は、親油性成分、植物ステロールエステル及びシクロデキストリンを含む複合体を形成し、該複合体の形態にして前記新油性成分を水存在下で保存することを特徴とする。

Description

水存在下における親油性成分の分解・劣化を抑制する方法
　本発明は親油性成分の分解・劣化を抑制する方法に関するものである。
　親油性成分は水との相互作用により、又は水存在下における光、酵素、酸素、熱などとの相互作用により分解・劣化される。このような分解・劣化を抑制する方法に関して、イソチオシアネートをシクロデキストリンで包接したものを、合成樹脂とともに混練してフィルム、シート、トレイに成形したり、印刷インクや塗料に含ませてフィルムに印刷や塗布することでイソチオシアネートの安定性を向上させ、加熱乾燥後もイソチオシアネートの抗菌効果を保持した食品包装材料が提案されている（特許文献１）。しかしながら、これらは乾燥状態では安定であるが、飲料や高水分食品中のように、水分を多く含むような状態では、充分な保存安定性を保持できない。
　一方、シクロデキストリンを溶解した水、又は親水性溶液に脂溶性Ｌ－アスコルビン酸高級脂肪酸エステルを加え、５０～１００℃でかき混ぜる事によって、経時的安定性、及び熱安定性を持ったＬ－アスコルビン酸高級脂肪酸エステル類の親水性複合体を得ることが出来る（特許文献２）。しかしながら、この方法では包接時に水、又は親水性溶媒と接触する上、高温にさらされる為、特に水存在下で不安定な物質に関しては分解等の反応が起こり易いという課題があった。又、得られた複合体の安定性も充分とは言えなかった。
特開平７－４６９７３号公報 特開平１０－２３１２２４号公報
　本発明の目的は、水との相互作用による、又は水存在下における光、酵素、酸素、熱などとの相互作用による親油性成分の分解・劣化を抑制する方法を提供することにある。
　本発明は、水存在下における親油性成分の分解・劣化を抑制する方法を提供し、この方法は、親油性成分、植物ステロールエステル及びシクロデキストリンを含む複合体を形成し、該複合体の形態にして前記新油性成分を水存在下で保存することを特徴とする。
　本発明により、水との相互作用による、又は水存在下における光、酵素、酸素、熱などとの相互作用による親油性成分の分解・劣化を経時的に抑制することができる。これにより、香辛料成分、不飽和脂肪酸など分解しやすい素材の機能性や色調を飲料、高水分食品中で長期間保持する事が可能になる。
実施例１及び比較例１のアリル量変化を示すグラフである。 実施例２及び比較例２のカプサイシン量変化を示すグラフである。 実施例３、比較例３－１及び３－２のカプシノイド類の残存率の変化を示すグラフである。 実施例４及び比較例４のジンゲロールの保存中の変化を示すグラフである。 実施例４及び比較例４のショウガオールの保存中の変化を示すグラフである。 実施例５及び比較例５のピペリンの保存中の変化を示すグラフである。
　本発明が適用される親油性成分としては、水との相互作用により、又は水存在下における光、酵素、酸素、熱などとの相互作用により分解・劣化する親油性成分である。具体的には、例えばアリルイソチオシアネートを含むカラシ抽出物やクルクミンなどのウコン抽出物、カプサイシノイド類、カプシノイド類などを含むトウガラシ抽出物、ジンゲロール、ショウガオール、ジンゲロンなどを含むショウガ抽出物、ピペリンなどを含むコショウ抽出物、ドコサヘキサエン酸（ＤＨＡ）、エイコサペンタエン酸（ＥＰＡ）などの酸化しやすい不飽和脂肪酸などが挙げられる。アリルイソチオシアネートを含むカラシ抽出物は水存在下において経時的に分解されやすい性質を有する。また、クルクミンなどのウコン抽出物は水存在下において光との相互作用により経時的に分解されやすい性質を有する。また、カプサイシノイド類は水存在下において酵素との相互作用により経時的に分解されやすい性質を有する。また、カプシノイド類は水存在下において経時的に分解されやすい性質を有する。また、ジンゲロール、ショウガオール、ジンゲロンなどのショウガ抽出物は水存在下において経時的に分解されやすい性質を有する。また、ピペリンなどのコショウ抽出物は水存在下において経時的に分解されやすい性質を有する。また、ドコサヘキサエン酸、エイコサペンタエン酸などの不飽和脂肪酸は水存在下において酸素との相互作用により経時的に分解・劣化する性質を有する。
　本発明において使用する植物ステロールエステルとは、植物性ステロールのステロール骨格中の水酸基に脂肪酸がエステル結合することによって得られる物質である。植物ステロールエステルの製造方法としては、例えば酵素を利用した酵素方法などが挙げられる。酵素方法としては、触媒としてリパーゼなどを利用し、植物ステロールと脂肪酸とを混合し、反応（３０～５０℃で４８時間程度）させることによって植物ステロールエステルを得る方法などが挙げられる。また、その他の合成方法としては、大豆などから生成された植物性ステロールを菜種油、コーン油などから得られた脂肪酸で、触媒の存在下で脱水することにより、エステル化して植物ステロールエステルを得る方法などが挙げられる。
　植物性ステロールとしては、植物油脂中に含まれるステロールなどが挙げられ、例えば大豆、菜種、綿実などの植物油脂から抽出・精製されたものであり、β－シトステロール、カンペステロール、スチグマステロール、ブラシカステロール、フコステロール、ジメチルステロールなどを含む混合物であってもよい。例えば、大豆ステロールには、５３～５６％のシトステロール、２０～２３％のカンペステロール及び１７～２１％のスチグマステロールが含まれる。植物性ステロールとして、「フィトステロール Ｆ」（タマ生化学工業株式会社製）として市販されているものを使用することもできる。
　脂肪酸としては、植物由来のもの、例えば菜種油、パーム油由来のものであってもよく、又は動物由来のものであってもよい。例えば、ミリスチン酸、ステアリン酸、パルミチン酸、アラキドン酸、オレイン酸、リノール酸、α－リノレン酸、γ－リノレン酸、エイコサペンタエン酸、ドコサヘキサエン酸、パルミトオレイン酸、ラウリン酸などが挙げられる。
　好ましい植物ステロールエステルとしては、大豆由来の植物ステロールと菜種油由来の脂肪酸から得られる植物ステロールや大豆及び菜種由来の植物ステロールとパーム油由来の脂肪酸から得られる植物ステロールなどが挙げられる。前者には、三栄源エフ・エフ・アイ（株）の「サンステロールＮＯ．３」などがあり、後者には、タマ生化学（株）の「植物ステロール脂肪酸エステル」などがある。
　本発明において使用するシクロデキストリンとは、ブドウ糖を構成単位とする環状無還元マルトオリゴ糖のことである。シクロデキストリンとしては、ブドウ糖の数が６つのα－シクロデキストリン、７つのβ－シクロデキストリン、８つのγ－シクロデキストリンの何れも使用できるが、人の消化酵素で分解されると共に水への溶解性が高く飲食品、特に飲料に使用しやすいという点からγ－シクロデキストリンが好ましい。
　本発明においては、前述した親油性成分、植物ステロールエステル及びシクロデキストリンの複合体を形成し、該複合体の形態にして前記新油性成分を水存在下で保存することによって、水との相互作用による、又は水存在下における光、酵素、酸素、熱などとの相互作用による経時的な親油性成分の分解を抑制することができる。ここでいう複合体は、水の共存下において、親油性成分と、植物ステロールエステルと、シクロデキストリンとを混合して複合体を形成する複合化工程を含む方法により製造することができる。この複合体を製造する場合、植物ステロールエステルの量は、例えば親油性成分１重量部に対して０．５～３００００重量部であるのが好ましい。なお、植物ステロールエステルの割合が大きいほど分解抑制効果は大きくなるが、後述するシクロデキストリンの添加量が多くなり、相対的に親油性成分の割合が低くなる。また、シクロデキストリンの量は、例えば植物ステロールエステル１重量部に対して０．０１～１０００重量部であるのが好ましく、０．１～１００重量部であるのがより好ましい。また、複合体を製造する場合に共存させる水の量としては、例えばシクロデキストリン１重量部に対して０．０１～１００重量部であるのが好ましく、０．１～１０重量部であるのがより好ましい。また、複合体を製造する場合、混合は好ましくは４０～９０℃、より好ましくは５０～８５℃に加温して行うのがよい。
　複合体を製造する際の水と、新油性成分と、植物ステロールエステルと、シクロデキストリンとの添加順序や混合順序は特に限定されない。例えば、新油性成分と植物ステロールエステル（分散性が悪い場合には水も）を混合して混合物を調製し、一方でシクロデキストロンを水に分散させて他の混合物を調製し、次いで両混合物を混合することが好ましい。しかしこれに限定されず、例えば、新油性成分と植物ステロールエステルとシクロデキストリンと水を同時に混合してもよい。
　親油性成分と植物ステロールエステルの混合において、適切に分散していれば、混合条件や手段は問わない。
　シクロデキストリンを添加した後は、十分に混練して複合体を形成するために、ニーダ等のせん断力の強い混合装置を使用するのがよい。
　本発明においては、このようにして得られた複合体の形態として前記新油性成分を水存在下で保存する。より具体的には、例えば、このようにして得られた複合体の形態として水を含む飲食品、医薬品、化粧品などに添加して保存することによって、水との相互作用による、又は水存在下における光、酵素、酸素、熱などとの相互作用による親油性成分の分解、劣化を経時的に抑制することができる。
（実施例１）
　６０℃に加温溶解した植物ステロールエステル５．６７重量部に対し、マスタードエッセンシャルオイル０．６３重量部を添加して溶解した。一方で乳鉢にγシクロデキストリン６２．４重量部及び水３１．３重量部（７５℃）を加えて乳棒で混合し、ペースト状とした。これに、前述のマスタードエッセンシャルオイルを溶解した植物ステロールエステルを加え、湯煎（７５℃）中で１０分間混練した。混練終了後、飛散した分の水を添加し、再度均一に混練した。実施例１の配合量（ｇ）を下記表１に示す。
（比較例１）
　乳鉢にγシクロデキストリン６６．２４重量部及び水３３．１３重量部（６０℃）を加えて乳棒で混合し、ペースト状とした。これに、マスタードエッセンシャルオイル０．６３重量部を加え、湯煎（７５℃）中で１０分間混練した。混練終了後、飛散した分の水を添加し、再度均一に混練した。比較例１の配合量（ｇ）を下記表１に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
（保存方法）
　実施例１及び比較例１で得られた各サンプル１重量部に対し、水５重量部を添加し、均一に分散させた。この水分散させた複合体サンプルをＧＣ用バイアル瓶に満中充填し、キャップで密閉した後、アルミパウチに入れてシールした。これを５０℃で保存した。
（ＧＣ測定）
　０日（保存開始時）、１日及び６日保存したサンプルをヘキサンで１００倍に希釈し、１６～１８時間室温で放置し、０．４５μｍフィルターを通してＧＣ検体とした。ＧＣ測定はＦＩＤ検出器を使用し、以下の条件で測定した。
カラム：ＤＢ－ＷＡＸ（内径０．５３ｍｍ、長さ３０ｍ、膜厚１μｍ）
キャリアガス：ヘリウムガス
背圧：２０ｋｐａ
注入口温度：２００℃
検出器温度：２２０℃
昇温条件：１００℃から１８０℃まで昇温（昇温速度　２０℃／分）
　アリル濃度の変化を図１に示す。図１に示されるように、植物ステロールエステル及びγシクロデキストリンと複合体を形成し、該複合体の形態にしてマスタードエッセンシャルオイルを水存在下で保存することにより、該オイル中のアリルイソチオシアネートの分解は明らかに抑制された。尚、保存開始時に対して、６日保存後のアリルイソチオシアネート残存率は、実施例１で６０．２％、比較例１で１５．５％であった。
（実施例２）
　６０℃に加温溶解した植物ステロールエステル３．５重量部に対し、カプシカムオレオレジン０．０７重量部を添加して溶解した。乳鉢にγシクロデキストリン６４．３重量部及び水３２．１３重量部（６０℃）を加えて乳棒で混合し、ペースト状とした。これに、前述のカプシカムオレオレジンを溶解した植物ステロールエステルを加え、湯煎（６０℃）中で１０分間混練した。混練終了後、飛散した分の水を添加し、再度均一に混練した。実施例２の配合量（ｇ）を下記表２に示す。
（比較例２）
　乳鉢にγシクロデキストリン６６．６重量部及び水３３．３３重量部（６０℃）を加えて乳棒で混合し、ペースト状とした。これに、カプシカムオレオレジン０．０７重量部を加え、湯煎（６０℃）中で１０分間混練した。混練終了後、飛散した分の水を添加し、再度均一に混練した。比較例２の配合量（ｇ）を下記表２に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
（酵素添加及び保存方法）
　実施例２及び比較例２で得られた各サンプルを５０ｍＭトリス緩衝液で１０倍に希釈した（カプサイシン濃度　0.0028％）。これに０．０５ｕ／ｍｌとなるようにアシラーゼを添加した。３７℃恒温水槽中で振とうし、酵素を反応させた。
　また、参考例として、ＳＩＧＭＡ社製カプサイシン試薬（カプサイシン含量95％以上）を実施例２、比較例２とカプサイシン濃度が同じ（0.0028％）になるよう５０ｍＭトリス緩衝液で希釈し、これに０．０５ｕ／ｍｌとなるようにアシラーゼを添加した。実施例２、比較例２と同様に３７℃恒温水槽中で振とうし、酵素を反応させた。
（ＨＰＬＣ測定）
　０（振とう開始時）分、３０分及び６０分酵素を反応させたサンプル２ｍｌに対し、水３ｍｌを添加し、５ｍｌに調整した。更に２．５Ｎ　ＮａＯＨを１ｍｌ添加し、１００℃沸騰水中で１０分間加熱した。加熱後、メタノールを２０ｍｌ添加した。２．５Ｎ　ＨＣｌ１ｍｌを加え、メタノールで５０ｍｌに定容した後、０．４５μｍフィルターを通してＨＰＬＣ検体とした。ＨＰＬＣ測定は、蛍光検出器を使用し、以下の条件で実施した。
カラム：ＯＤＳ（センシュー科学）
流速：１ｍｌ／ｍｉｎ
移動相：アセトニトリル：ＴＦＡ＝１：１
注入量：２μｌ
検出：ｅｘ２７０、ｅｍ３３０
　カプサイシン濃度の変化を図２に示す。図２に示されるように、植物ステロールエステル及びγシクロデキストリンと複合体を形成し、該複合体の形態にしてカプシカムオレオレジンを水存在下で保存することにより、該カプシカムオレオレジン中のカプサイシンの分解は明らかに抑制された。尚、振とう開始時に対して、６０分酵素反応後のカプサイシン残存率は実施例２で７８．６％、比較例２で５８．９％、参考例で２．０％であった。
（実施例３）
　カプシノイド類として、味の素社製の「ナチュラ」より抽出したものを使用した。
　７０℃に加温した植物ステロールエステル０．７０重量部に対し、カプシノイド類を含む油脂０．３５重量部を添加して溶解した。一方で乳鉢に、γシクロデキストリン７．０重量部及び水３．５重量部を入れて、７０℃湯浴で混合し、ペースト状とした。これに、上記のカプシノイド類を溶解した油相１．０５重量部を加え、７０℃湯浴中で１０分間混練し、複合体を作製した。得られた複合体１１．５５重量部、クエン酸０．５６重量部、クエン酸三ナトリウム０．２７重量部を水８７．６重量部に分散させ、ミキサーで３０秒攪拌し、複合体含有モデル飲料を作製した。複合体含有モデル飲料を９３℃達温まで加熱し、３分間９０℃保持で殺菌後、パウチに充填した。その後、恒温水槽中に８３℃７分間保持し、後殺菌を行った。
（比較例３－１）
　カプシノイド類として、味の素社製の「ナチュラ」より抽出したものを使用した。
　７０℃に加温した菜種白絞油０．７０重量部に対して、カプシノイド類を含む油脂０．３５重量部を添加して溶解した。水１０．２重量部に乳化剤０．３３重量部（三菱化学フーズ社製　ポリグリセリン脂肪酸エステル　ＳＷＡ－１０Ｄ）、上記のカプシノイド類を溶解した油相１．０５重量部を加え、ミキサーで乳化させ、乳化物を作製した。得られた乳化物１１．５８重量部、クエン酸０．５６重量部、クエン酸三ナトリウム０．２７重量部を水８７．６重量部に分散させ、ミキサーで３０秒攪拌し、乳化物含有モデル飲料を作製した。乳化物含有モデル飲料を９３℃達温まで加熱し、３分間９０℃保持で殺菌後、パウチに充填した。その後、恒温水槽中に８３℃７分間保持し、後殺菌を行った。
（比較例３－２）
　カプシノイド類として、味の素社製の「ナチュラ」より抽出したものを使用した。
　７０℃に加温した菜種白絞油０．７０重量部に対して、カプシノイド類を含む油脂０．３５重量部を添加して溶解した。一方で乳鉢に、γシクロデキストリン７．０重量部及び水３．５重量部を入れて、７０℃湯浴で混合し、ペースト状とした。これに、上記のカプシノイド類を溶解した油相１．０５重量部を加え、７０℃湯浴中で１０分間混練し、複合体を作製した。得られた複合体１１．５５重量部、クエン酸０．５６重量部、クエン酸三ナトリウム０．２７重量部を水８７．６重量部に分散させ、ミキサーで３０秒攪拌し、複合体含有モデル飲料を作製した。複合体含有モデル飲料を９３℃達温まで加熱し、３分間９０℃保持で殺菌後、パウチに充填した。その後、恒温水槽中に８３℃７分間保持し、後殺菌を行った。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　実施例３、比較例３－１及び３－２で作製したモデル飲料を４０℃で保存した。一定期間経過後のサンプルのカプシノイド類を液体クロマトグラフィーで定量した。カプシノイド類の残存率は、保存開始直後（０日）のカプシノイド類の値を１００％とし、４０℃保存１日、５日、２５日後の値を百分率で表した。結果を図３に示す。図３から明らかなように、実施例３は、比較例３－１及び３－２と比べて、４０℃保存でのカプシノイド類の分解を顕著に抑制できている。以上の結果より、本発明によってカプシノイド類の水存在下での分解を抑制でき、安定性を向上できることが分かった。
液体クロマトグラフィー　前処理方法
　実施例３及び比較例３－２については、モデル飲料１２．５ｇを遠心分離（３０００ｒｐｍ　１０分間）後、上清を除去し、ＤＭＳＯ（ジメチルスルホキシド）６ｍｌを添加し、超音波を当てて沈殿物を溶解した。さらに、メタノールで２５ｍｌに定容し、０．４５μｍフィルター濾過後、検液とした。
　比較例３－１については、モデル飲料５ｇを採取し、メタノールで１０ｍｌに定容し、０．４５μｍフィルター濾過後、検液とした。
液体クロマトグラフィー　測定条件
　蛍光検出器使用
　カラム　ｍｉｇｈｔｙｓｉｌ　（２５０ｍｍ　φ２．０）
　流速　０．２ｍｌ／ｍｉｎ
　注入量　３μｌ
　移動相　ｐＨ３．３ＴＦＡ水：アセトニトリル＝２０：８０
　検出ＦＬＤ　ＥＸ２７０　ＥＭ３３０
（実施例４）
　ショウガ抽出物として、超臨界ショウガ抽出物（ジンゲロール：２４．８％　ショウガオール：１０．７％　高砂香料）を使用した。
　８０℃に加温した植物ステロールエステル０．１８重量部、食用油脂０．１２重量部に対し、ショウガ抽出物０．０１５重量部を添加して溶解した。一方で、γシクロデキストリン１．０９３重量部、水１．０９３重量部を８０℃に加温しながらＴＫホモミキサーで混合した。これに、上記のショウガ抽出物を溶解した油相０．３１５重量部を加え、引き続き、８０℃で加温しながらＴＫホモミキサーで攪拌し、予備乳化を行った。予備乳化後、高圧ホモジナイザー（エスエムティー社製　ＬＡＢ１０００　圧力：１００ＭＰａ）を通過させ、ショウガ抽出物含有複合体を作製した。得られた複合体２．５重量部、クエン酸０．３重量部、クエン酸三ナトリウム０．１２重量部を水９７．０８重量部に分散させ、ミキサーで３０秒攪拌し、ショウガ抽出物複合体含有モデル飲料を作製した。ショウガ抽出物複合体含有モデル飲料を９３℃達温まで加熱し、３分間９０℃保持で殺菌後、パウチに充填した。その後、恒温水槽中に８３℃５分間保持し、後殺菌を行った。作製したショウガ抽出物複合体含有モデル飲料のジンゲロール成分は３６．１ｐｐｍであり、ショウガオール成分は１５．４ｐｐｍであった。
（比較例４）
　ここでは、ショウガ抽出物を乳化加工した乳化製剤（ジンゲロール：１．７９％　ショウガオール０．８９％　高砂香料）を使用した。
　乳化製剤０．２３重量部、クエン酸０．３重量部、クエン酸三ナトリウム０．１２重量部を水９９．３５重量部に分散させ、ミキサーで３０秒攪拌し、ショウガ抽出物乳化製剤含有モデル飲料を作製した。ショウガ抽出物乳化製剤モデル飲料を９３℃達温まで加熱し、３分間９０℃保持で殺菌後、パウチに充填した。その後、恒温水槽中に８３℃５分間保持し、後殺菌を行った。作製したショウガ抽出物乳化製剤含有モデル飲料のジンゲロール成分は４０．９ｐｐｍであり、ショウガオール成分は１６．２ｐｐｍであった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
　実施例４及び比較例４で作製したモデル飲料を６０℃で保存した。保存前、１週間、２週間後のサンプルのジンゲロール、ショウガオールを液体クロマトグラフィーで定量した。ジンゲロール、ショウガオールの残存率は、保存前（０週）の各値を１００％とし、保管１週間後の値、２週間後の値を百分率で表した。結果を図４及び５に示す。図４及び５から明らかなように、実施例４は、比較例４と比べて、ジンゲロール、特にショウガオールの分解を抑制している。以上の結果より、本発明によってショウガ抽出物の水存在下での分解を抑制でき、安定性を向上できることが分かった。
液体クロマトグラフィー　前処理方法
　実施例４については、モデル飲料２５ｇを遠心分離（３０００ｒｐｍ　１０分間）後、上清を除去し、ＤＭＳＯ（ジメチルスルホキシド）３ｍｌを添加し、超音波を当てて沈殿物を溶解した。さらに、メタノールで５０ｍｌに定容し、０．４５μｍフィルター濾過後、検液とした。
　比較例４については、モデル飲料２５ｇを採取し、メタノールで５０ｍｌに定容し、０．４５μｍフィルター濾過後、検液とした。
液体クロマトグラフィー　測定条件
　ＵＶ　２８２ｎｍ　
　カラム　ＯＤＳ　Ｃ１８　（センシュー科学）
　流速　１．０ｍｌ／ｍｉｎ
　注入量　２０μｌ
　分析時間　３０分　
　移動相　アセトニトリル：水：ＴＨＦ（テトラヒドロフラン）＝４５：５０：５
（実施例５）
　コショウ抽出物として、ピペリン粉末（ピペリン含量：９２％以上　稲畑香料）を使用した。
　８０℃に加温した植物ステロールエステル０．１８重量部、食用油脂０．１２重量部に対し、コショウ抽出物０．００６４重量部を添加して溶解した。一方で、γシクロデキストリン１．０９７重量部、水１．０９７重量部を８０℃に加温しながらＴＫホモミキサーで混合した。これに、上記のコショウ抽出物を溶解した油相０．３０６４重量部を加え、引き続き、８０℃で加温しながらＴＫホモミキサーで攪拌し、予備乳化を行った。予備乳化後、高圧ホモジナイザー（エスエムティー社製　ＬＡＢ１０００　圧力：１００ＭＰａ）を通過させ、コショウ抽出物含有複合体を作製した。得られた複合体２．５重量部、クエン酸０．３重量部、クエン酸三ナトリウム０．１２重量部を水９７．０８重量部に分散させ、ミキサーで３０秒攪拌し、コショウ抽出物複合体含有モデル飲料を作製した。コショウ抽出物複合体含有モデル飲料を９３℃達温まで加熱し、３分間９０℃保持で殺菌後、パウチに充填した。その後、恒温水槽中に８３℃５分間保持し、後殺菌を行った。作製したコショウ抽出物複合体含有モデル飲料に含まれるピペリン量は６２ｐｐｍであった。
（比較例５）
　ここでは、コショウ科ヒハツ抽出物（ピペリン類含量：３００～１４００ｐｐｍ　丸善製薬）を使用した。
　コショウ抽出物０．１５重量部、クエン酸０．３重量部、クエン酸三ナトリウム０．１２重量部を水９９．４３重量部に分散させ、ミキサーで３０秒攪拌し、コショウ抽出物含有モデル飲料を作製した。コショウ抽出物含有モデル飲料を９３℃達温まで加熱し、３分間９０℃保持で殺菌後、パウチに充填した。その後、恒温水槽中に８３℃５分間保持し、後殺菌を行った。作製したコショウ抽出物含有モデル飲料に含まれるピペリン量は０．２５ｐｐｍであった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
　実施例５及び比較例５で作製したモデル飲料を６０℃で保存した。保存前、１週間、２週間後のサンプルのピペリンを液体クロマトグラフィーで定量した。ピペリンの残存率は、保存前（０週）のピペリンを１００％とし、保管１週間後の値、２週間後の値を百分率で表した。結果を図６に示す。図６から明らかなように、実施例５は、比較例５と比べて、ピペリンの分解を抑制している。以上の結果より、本発明によってコショウ抽出物の水存在下での分解を抑制でき、安定性を向上できることが分かった。
液体クロマトグラフィー　前処理方法
　実施例５については、モデル飲料１０ｇを遠心分離（３０００ｒｐｍ　１０分間）後、上清を除去し、ＤＭＳＯ（ジメチルスルホキシド）３ｍｌを添加し、超音波を当てて沈殿物を溶解した。さらに、メタノールで５０ｍｌに定容し、０．４５μｍフィルター濾過後、検液とした。
　比較例５については、メタノールで希釈後、０．４５μｍフィルター濾過し、検液とした。
液体クロマトグラフィー　測定条件
　ＵＶ　３４３ｎｍ　
　カラム　ＹＭＣＰａｃｋ　ＯＤＳ－Ａ
　流速　１．０ｍｌ／ｍｉｎ
　注入量　５μｌ
　移動相　アセトニトリル：水：ＴＨＦ（テトラヒドロフラン）＝４５：５５：７
（実施例６）
　不飽和脂肪酸として、ＤＨＡを２２％以上含有する無臭加工魚油「ＤＨＡ－２２ＨＧ」（（株）マルハニチロ食品社製）を使用した。
　無臭加工ＤＨＡ含有魚油０．４５５重量部を植物ステロールエステル０．９重量部に加え、これを攪拌しながら、７０℃に加温溶解して、無臭加工ＤＨＡ含有魚油を溶解させた植物ステロールエステルを調製した。別途、γシクロデキストリン１０重量部と水（９０℃）５重量部とを混合して混合物（ペースト）を調製した。前記混合ペーストに、無臭加工ＤＨＡ含有魚油を溶解させた植物ステロールエステルを加え、乳鉢を用いて、７０℃に加温しつつ１０分間混練して複合体を調製した。上記複合体に、水８２．８９５重量部を加えながら混合し、次いでクエン酸０．５重量部、クエン酸三ナトリウム０．２５重量部を添加混合した。さらに、ホモミキサーで５０００ｒｐｍで２分間攪拌し、均一な白色液を得た。白色液を攪拌しながら９３℃達温後、無色透明のガラス容器に充填の後、冷却して容器入り飲料を製造した。尚、この飲料のｐＨは、３．４であった。
（比較例６－１）
　不飽和脂肪酸として、ＤＨＡを２２％以上含有する無臭加工魚油「ＤＨＡ－２２ＨＧ」（（株）マルハニチロ食品社製）を使用した。
　無臭加工ＤＨＡ含有魚油０．４５５重量部を植物ステロールエステル０．９重量部に加え、これを攪拌しながら、７０℃に加温溶解して、無臭加工ＤＨＡ含有魚油を溶解させた植物ステロールエステルを調製した。別途、乳化剤０．５重量部を水（７０℃）１４．５重量部に溶解した。前記乳化液に、無臭加工ＤＨＡ含有魚油を溶解させた植物ステロールエステルを加え、ホモミキサーで５０００ｒｐｍで１０分間攪拌し、乳化液を調製した。上記乳化液に、水８２．８９５重量部を加えながら混合し、次いでクエン酸０．５重量部、クエン酸三ナトリウム０．２５重量部を添加混合した。その後、攪拌しながら９３℃達温後、無色透明のガラス容器に充填の後、冷却して容器入り飲料を製造した。尚、この飲料のｐＨは、３．４であった。
（比較例６－２）
　不飽和脂肪酸として、ＤＨＡを２２％以上含有する無臭加工魚油「ＤＨＡ－２２ＨＧ」（（株）マルハニチロ食品社製）を使用した。
　無臭加工ＤＨＡ含有魚油０．４５５重量部を菜種白絞油０．９重量部に加え、これを攪拌しながら、７０℃に加温溶解して、無臭加工ＤＨＡ含有魚油を溶解させた菜種白絞油を調製した。別途、乳化剤０．５重量部を水（７０℃）１４．５重量部に溶解した。前記乳化液に、無臭加工ＤＨＡ含有魚油を溶解させた菜種白絞油を加え、ホモミキサーで５０００ｒｐｍで１０分間攪拌し、乳化液を調製した。上記乳化液に、水８２．８９５重量部を加えながら混合し、次いでクエン酸０．５重量部、クエン酸三ナトリウム０．２５重量部を添加混合した。その後、攪拌しながら９３℃達温後、無色透明のガラス容器に充填の後、冷却して容器入り飲料を製造した。尚、この飲料のｐＨは、３．４であった。
（飲料の評価）
　容器入り飲料を、恒温槽（「ＳＡＮＹＯ　ＧＲＯＷＴＨ　ＣＡＢＩＮＥＴ」、温度２５℃、照度１万ルクス）に入れ、６日間保存した。保存後の飲料の臭い（魚臭）を官能評価した。配合及び官能評価の結果を下記表６に示す。この結果より、本発明によって、無臭加工ＤＨＡ含有魚油の劣化を抑制できることが分かった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
（実施例７）
　不飽和脂肪酸として、ＤＨＡを２２％以上含有する無臭加工魚油「ＤＨＡ－２２ＨＧ」（（株）マルハニチロ食品社製）を使用した。
　無臭加工ＤＨＡ含有魚油０．４５５重量部を植物ステロールエステル０．９重量部に加え、これを攪拌しながら、７０℃に加温溶解して、無臭加工ＤＨＡ含有魚油を溶解させた植物ステロールエステルを調製した。別途、γシクロデキストリン１０重量部と水（９０℃）５重量部とを混合して混合物（ペースト）を調製した。前記混合ペーストに、無臭加工ＤＨＡ含有魚油を溶解させた植物ステロールエステルを加え、乳鉢を用いて、７０℃に加温しつつ１０分間混練して複合体を調製した。上記複合体に、水８２．８９５重量部を加えながら混合し、次いでクエン酸０．５重量部、クエン酸三ナトリウム０．２５重量部を添加混合した。さらに、ホモミキサーで５０００ｒｐｍで２分間攪拌し、均一な白色液を得た。白色液を攪拌しながら９３℃達温後、無色透明のガラス容器に充填の後、冷却して容器入り飲料を製造した。尚、この飲料のｐＨは、３．４であった。
（比較例７）
　不飽和脂肪酸として、ＤＨＡを２２％以上含有する無臭加工魚油「ＤＨＡ－２２ＨＧ」（（株）マルハニチロ食品社製）を使用した。
　γシクロデキストリン１０重量部と水（９０℃）５重量部とを混合して混合物（ペースト）を調製した。前記混合ペーストに、無臭加工ＤＨＡ含有魚油を加え、乳鉢を用いて、７０℃に加温しつつ１０分間混練して複合体を調製した。上記複合体に、水８３．７９５重量部を加えながら混合し、次いでクエン酸０．５重量部、クエン酸三ナトリウム０．２５重量部を添加混合した。さらに、ホモミキサーで５０００ｒｐｍで２分間攪拌し、均一な白色液を得た。白色液を攪拌しながら９３℃達温後、無色透明のガラス容器に充填の後、冷却して容器入り飲料を製造した。尚、この飲料のｐＨは、３．４であった。
（飲料の評価）
　容器入り飲料を、恒温槽（「ＳＡＮＹＯ　ＧＲＯＷＴＨ　ＣＡＢＩＮＥＴ」、温度２５℃、照度１万ルクス）に入れ、６日間保存した。保存後の飲料の臭い（魚臭）を官能評価した。さらに、過酸化物価（試験方法：酢酸－イソオクタン法）を測定した。配合及び官能評価の結果を下記表７に示す。この結果より、本発明によって、無臭加工ＤＨＡ含有魚油の劣化を抑制できることが分かった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007

Claims (2)

  1. 　水存在下における親油性成分の分解・劣化を抑制する方法であって、
    　親油性成分、植物ステロールエステル及びシクロデキストリンを含む複合体を形成し、該複合体の形態にして前記新油性成分を水存在下で保存することを特徴とする前記方法。
  2. 　前記親油性成分がカラシ抽出物、トウガラシ抽出物、ショウガ抽出物、コショウ抽出物、不飽和脂肪酸及びウコン抽出物からなる群より選ばれる、請求項１記載の方法。
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