WO1998009599A2 - Utilisation d'un nouvel acide bicafeoylquinique dans le traitement de l'hepatite b et des maladies liees a des retrovirus, et derives de cet acide bicafeolyquinique - Google Patents

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Zhongming Tang
Zhibao Mi
Bingji Wang
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    • A61P31/12—Antivirals
    • A61P31/14—Antivirals for RNA viruses
    • A61P31/18—Antivirals for RNA viruses for HIV

Definitions

  • the present invention relates to dicaffeine quinic acid derivatives in the treatment of hepatitis B and related to retroviruses such as
  • Hepatitis B is a severe worldwide infectious disease caused by the hepatitis B virus (HBV). There are currently approximately 350 million people infected with the HBV mark worldwide. China is a high-endemic area of hepatitis B. 50 to 70% of the population has been infected with HBV, and about 8 to 10% are carriers of hepatitis B surface antigen. Mortality is high because persistent HBV infection can cause chronic liver diseases such as cirrhosis and primary hepatocellular carcinoma.
  • HBV hepatitis B virus
  • drugs for treating hepatitis B such as chemical drugs such as arabinosyl arabine monophosphate, acyclovir, threonine Lamin, copper quinols, active ingredients of traditional Chinese herbal medicines such as matrine, glycyrrhizin, polyporus polysaccharide, lentinan, etc., biological agents such as interferon, interleukin-2, hepatitis B vaccine, etc.
  • drugs for treating hepatitis B, such as chemical drugs such as arabinosyl arabine monophosphate, acyclovir, threonine Lamin, copper quinols, active ingredients of traditional Chinese herbal medicines such as matrine, glycyrrhizin, polyporus polysaccharide, lentinan, etc.
  • biological agents such as interferon, interleukin-2, hepatitis B vaccine, etc.
  • retroviral related diseases such as human immunodeficiency syndrome (AIDS) caused by retroviruses such as HIV infection
  • AIDS human immunodeficiency syndrome
  • retroviral related diseases such as human immunodeficiency syndrome (AIDS) caused by retroviruses such as HIV infection
  • AIDS human immunodeficiency syndrome
  • retroviral drugs such as HIV
  • the purpose of the present invention is to provide a new class of anti-hepatitis B drugs and new anti-retroviral drugs, which have excellent curative effect and low side effects, especially after the drug is discontinued, it can make hepatitis B disease Poison levels rarely rebound.
  • the present inventors have unexpectedly found that dicaffeoylquinic acid derivatives and caffeine quinic acid derivatives can inhibit the expression of hepatitis B virus and retroviral antigen, and have a good inhibitory effect on viral DNA replication. , Especially after stopping the drug, can make the hepatitis B virus level almost rebound.
  • the dicaffeoquinic acid and its derivatives of the present invention also have good inhibitory activity against HiV virus. The present invention has been completed based on the above findings.
  • the first day of the present invention relates to the use of a dicaffinoquinic acid derivative of formula I for the treatment of hepatitis B and diseases related to retroviruses.
  • R ,, R 2 and R 3 may be the same or different, respectively, OH or caffeoyl, provided that: R is a caffeoyl, R 2 , R 3 is OH, or R 2 is a coffee Sb group, When R 1 5 R 3 is OH or R 3 is a caffeoyl group, R 2 is OH.
  • a second object of the present invention relates to a novel caffeoquinic acid derivative of formula II.
  • R 2 and R 3 may be the same or different and each is argon, d - fi alkyl,
  • t is an alkali metal M
  • d 6 embankment radical M is selected from alkali metals such as N a, K and the like,
  • Another object of the present invention relates to a pharmaceutical composition containing a compound of formula I, which has a good inhibitory effect on hepatitis B virus (HBV) and retroviruses.
  • various pharmaceutical excipients, additives and carriers can be added to the pharmaceutical composition.
  • the compound of formula I or formula II or the pharmaceutical composition containing the compound of formula I or formula II of the present invention can be used for treating hepatitis B and various diseases related to retrovirus, especially for treating hepatitis B And diseases related to HIV infection.
  • the pharmaceutical composition of the present invention can be formulated into preparations for enteral or parenteral administration, such as tablets, capsules, granules, injections, etc., according to methods known in the art.
  • the compound of formula I or formula II of the present invention is mainly derived from plants, such as convolvulus flowers of Asteraceae plants.
  • the compound of formula II can be obtained through appropriate chemical modification of the compound of formula I by a semi-synthetic method.
  • the preferred anti-HBV and retroviral compounds of the present invention are the following formula 1, 5-dione () -caffeoylquinic acid.
  • 1,5-bis-O-coffee St quinine acid can be extracted from Convolvulus flowers of Compositae, and the specific extraction route is as follows:
  • compound ⁇ 1,5-bis-O-caffeine quinic acid
  • HBV suspension purchased from Institute of Liver Diseases, Beijing Medical University.
  • ⁇ ⁇ DNA clone 2.2.15 cell line transfected with human hepatoma cells (Hep G2), constructed by Mount Sinai Medical Center in the United States, introduced by the Department of Infectious Diseases, Beijing Medical University, China, Institute of Medical Biotechnology, Chinese Academy of Medical Sciences Provided, and subcultured by itself.
  • Duck hepatitis B virus Shanghai hemp duck serum, nucleic acid hybridization DHBV DNA positive (+++), stored at -70 'C.
  • HBV DNA plasmid and DHBV DNA plasmid provided by Li Zhuang, Institute of Medical Biotechnology, Chinese Academy of Medical Sciences.
  • Nitrocellulose membrane Amersham, UK.
  • DMEM DuIbecco's Modified Eagle Medium
  • Jianguo GIBCO BRL mouth fetal bovine serum American GIBCO BRL products.
  • G-418 (Geneticin): American GIBCO BRL product.
  • Tetramethylazozolam (MTT): Sigma product (400 ⁇ g / 100ml MEM); HBsAg, HBeAg solid-phase radioimmunoassay kit: Product of Northern Institute of Immunological Reagents; adenosine triphosphate (dATP) , Deaerated cytidine triphosphate (dCTP), deaerated guanosine triphosphate (dGTP), and deoxythymidine triphosphate (dTTP): Products of Sigma Company, USA
  • NP-40 It is a product of British BDH company.
  • DMEM culture medium Contains fetal bovine serum 10%, berberine 100 g / ml, streptavidin 100u / ml, adjust pH to 7.0 with 5% NaHC0 3 « G418 380 g / ml for DMEM
  • MTT staining solution made with DMEM solution, stored at -4 ⁇ , 400 g / ml, 100 ⁇ l per well.
  • Compound A solution Compound A was made into two stock solutions at 100 mg / ml and 10 mg / ml in DMEM culture medium, and the pH was adjusted to 7.2 with 5% NaHC0 3 .
  • 2.2.15 Introduced from the Laboratory of Virology, Institute of Medicine and Biotechnology, Chinese Academy of Medical Sciences, and subcultured on its own. In a culture flask full of 2.2.15 cells, add 5ml of 0.25% pancreatic digestive juice and wash gently, pour it out, add 2ml of digestive juice, and digest it. Pour out the digestive juice before the cells change, and place it flat. When the cells begin to fall off, add the culture medium and pipette. Passage 1: 3, add 15 ( ⁇ g / ml G418 pressure clones, and grow for 7 days. Count the cells and formulate 10 5 / ml inoculated cell culture plates, 96 wells per well. 0.2 ml, 1 ml per well in a 24-well plate, 37 V, 5% CC> 2 cultured for 24 hours, the cells were grown into a monolayer and then the experiment was performed.
  • Compound A stock solution (100mg / ml) was diluted 10 times with culture medium, 20 ⁇ l per well in a 96-well cell culture plate to a final concentration of 8-0.03 mg / ml, 6 wells per concentration, and the same concentration was changed every 4 days.
  • the drug solution was set up without drug cells, and the results were observed for 8 days.
  • H BeA and HBsAg Using the product of the Northern Institute of Immune Reagents of China Isotope Company to determine the solid phase immunoassay box. The method is described in the instructions: 200 ⁇ l of the culture medium in each well of the corresponding cell culture plate was added to the anti-HBe (HBs) coating 1 capsule, overnight at room temperature, washed 6 times with 0.01 M PBS washing solution (containing 0.05% Tween-20), drained, add 200 ⁇ 1 125 1-anti-HBe (HBs), overnight at room temperature, washed 6 times with PBS, drained . Y-counter was used to determine the cpm value of each well.
  • HBs anti-HBe
  • Equation 2.1
  • IC o The cpm value or the logarithm of the inhibition rate and the drug concentration is used to fit a four-parameter Logistic function to fit the graph. If the curve shape is a typical S-type concentration-response curve, the amount of antigen produced by different concentrations of Rima can be measured to determine cpm. Maximum value (E réelle 1; 1 ,) and minimum value (E min ), maximum chop inhibition rate, minimum inhibition rate, concentration required to inhibit 50% (IC 5 n), and slope (HiH's coefficient) ⁇ , IC 5 , As the most important parameter in the inhibition curve, it represents the drug concentration required to inhibit antigen production. Under the same slope of the curve, it is obvious that the lower the concentration, the higher the inhibitory activity of the drug.
  • 24-well plate 2.2.15 Cell culture plus different concentrations of drug solution for 12 days.
  • the culture solution was decanted, washed three times with PBS, and 0.1 ml of digestion solution (0.1% SDS, 0.15M NaCl, O.OlMTris, HCI PH7.5, 0.01M EDTA, 2mg / ml Pronase) was added, and the reaction was performed for 2 hours.
  • the volume of phenylhydrazone-chloroform-isoamyl alcohol (25: 24: 1) was extracted twice, each time for 10 minutes, and centrifuged at 12,000 rpm for 10 minutes.
  • Electrophoresis Connect one end of the sample well to the cathode, and run at 50mA overnight.
  • Denaturation Put the gel in a denaturing solution (1.5MNaCl, 0.5MNaOH) for 1 hour, shake gently without interruption, and rinse with water.
  • a denaturing solution 1.5MNaCl, 0.5MNaOH
  • Neutralization Put the gel in a neutralization solution (lMTds.HCi PH7.6, 1.5MNaCl) for 1 hour, keep simmering, replace the neutralization solution, and continue neutralization for 15 minutes.
  • Transfer film Add 10 X SSC to the transfer tank. Lay two layers of wet filter paper on a small shelf, immerse both ends in 10 X SSC, place another layer of filter paper of the same size as the glue on the filter paper, remove the air bubbles, and cover with plastic strips around to avoid "short circuit".
  • Pre-hybridization Put the gel in the hybridization bag and add the pre-hybridization solution (3 X SSC-0.1% SDS I 0ml) for 65 30 minutes. Change 10x Denhardt's solution-0.1% SDS 10ml, lOmg / ml denatured carrier DNA 200ml, 65'C overnight.
  • Hybridization Remove the pre-hybridization solution, replace the hybridization solution (50% formamide, 25% Denhardt's solution 0.1% SDS), 20% 2 X SSC, 5% DDH 2 0, ⁇ denaturation ONA, 200 ⁇ denaturation probe, 1% Pyrophosphate), 42 'C, 48 hours.
  • Clip exposure Clip, -70 exposure, D 72 develop for 7 minutes, fix for 10 minutes, and wash the film.
  • the first batch 7 days after DHBV infected ducklings, they were randomly divided into 5 groups of 7 ducks.
  • the doses of the three groups of Compound A administration groups were 50, 12.5, and 5 mg / kg body weight, respectively, and the positive drug was acyclic glucoside ((50 mg / kg orally, bid ⁇ 14.).
  • the second batch 7 days after DHBV infected ducklings, 4 New Zealand were randomly divided into 5 ducks per group. Binarization The doses of the compound A administration group were 50 and 12.5 mg / k body weight, respectively, and the positive drug was acyclovir (ACV) 50 mg / kg orally, bid ⁇ 10. Let the virus control group use saline instead of drugs. Blood was taken from duck foot veins 7 days before the infection (T0), 5th day (T5), 10th day (T10), and 3rd day (P3) after discontinuation, and the serum was separated and stored at -70 for testing. .
  • T0 The infection
  • T5 5th day
  • T10 10th day
  • P3 3rd day
  • DHBV DNA probe labeling ot 32 P-dCTP labeling probe according to the Promega Gap Translation Kit instructions: The method is the same as HBV DNA probe labeling.
  • Membrane treatment Soak the nitrocellulose membrane with distilled ice and 10 X SSC for 30 minutes each, and let it cool and dry in the room.
  • Pre-hybridization Put the gel in the hybridization bag and add the pre-hybridization solution (3 X SSC-0. 1% SDS 10ml) 65 "C for 30 minutes. Change to 10 ⁇ Denhardt's solution -0.1 ° / 0 SDS l Oml, l 200 mg Omg / ml denatured vector DNA, 65 overnight.
  • Hybridization Remove the pre-hybridization solution, replace the hybridization solution (50% formamidine, 25% Denhardt's solution 0.1% SDS), 20% 2 X SSC, 5% DDH 2 0, ⁇ denature DNA, 200 ⁇ denaturing probe, 1% pyrophosphate), 42 'C, 48 hours.
  • Clip exposure Clip, -70 'C exposure, 1) 72 minutes development, 10 minutes fixing. Wash the film.
  • the DHBV DNA inhibition rate of each group at different times was compared with the same index of the control group at the same time, and the t test was performed.
  • Equation 2.2
  • the cpm value is 6.4 to 12.8J.
  • Drug concentration ( ⁇ / ml) 1 10 100 10 110 Compound ⁇ cpm value 9856.1 ⁇ 200.9 79 K. 4 soil 78.5 3522.0 soil 50.6 * * 1982.7 ⁇ 158 / »* * Chop suppression rate (%) 1 1 .17 ⁇ 1.93 3 ⁇ Agriculture81 ⁇ 0.75 68.39 ⁇ ⁇ ». 4 ⁇ ) 82.31 ⁇ 1.52
  • 2.2.15 cells at 105 cells / ml were seeded in 96-well cell culture plate, each well 0.2ml, 37 X:, 5% C0 2 for 48 hours, add 2-fold diluted solution of 10 concentrations of compound A, compound 8 in ⁇ , From the 4th day of the 2 mg / ml dose group, the 2.2.15 cell culture solution began to have a slight color change, and the 8mg / ml dose group became green on the 8th day. Under the microscope, the morphology of Compound A was slightly changed from the 4th day of the 8, 4, and 2 mg / ml dose group. The cell morphology of 2.2.15 in the dose group below 0.5 mg / ml was normal.
  • the cells were stained with MTT, and the O.l) values were measured at a wavelength of 570 nm.
  • 2.2.2.2 Effect of compound A on HBsAg synthesis and secretion in 2.2.15 cell cultures It can be seen from Tables 3 and 4 that 2.2.15 cell forests were cultured under different concentrations of compound ⁇ treatment for 4, 8 and 12 days, Inhibition of HBeAg production in culture was proportional to the logarithm of the concentration. The iC 5 ( > on the 4th and 8th days were similar, and a batch of test IC 5 «increased on the 12th day. Table 6. 2.2.15 Cell forests were cultured at different concentrations of Compound A for 4, 8 and 12 days. Effect of Hepatitis B Virus Surface Antigen (HBsAg Production in Culture Medium).
  • Figure 1 shows the inhibitory effect of Compound A on intracellular HBV ⁇ DNA 6 in 2.2.15 cell culture at different concentrations (southern Blot tiller)
  • Figures 2 and 3 are autoradiograms of infected ducklings before treatment, 7 and 14 days after treatment, and 5 days after treatment with duck serum taken and hybridized with 32 P-dCTP dots.
  • Table 7 shows the serum levels of 7 ducks in each treatment group at the same examination time, the blackness of the spots, the standard deviation of the average number of optical densities, and the amount of DHBV DNA in each group with treatment. The main result was that there was no statistical difference in the amount of virus DNA between the groups before treatment; the saline control optical density values fluctuated slightly after treatment but had no statistical significance. The blackness of the acyclovir group was significantly reduced at 7 and 14 days after treatment, but the mean value after discontinuation was higher than before treatment.
  • the efficacy of the compound A group depends on the duration of treatment and the dosage.
  • the continuous treatment for 14 days is better than the treatment for 7 days, and the effect is weakened after discontinuation.
  • the 5 m group had no significant effect on reducing viral DNA, and the 50 mg dose group had the best effect.
  • the inhibitory effect appeared earlier, the detected virus level was lower, and it remained at a significantly lower level than the pre-treatment control after discontinuation (p ⁇ 0.05)
  • DHBV infected ducklings were administered orally 7 days after infection, before treatment (T0), medication 5th day (T5), and 10th day (T10).
  • T0 medication 5th day
  • T10 10th day
  • P3 On day 3 (P3) after drug withdrawal, blood was collected from duck foot veins, serum was isolated and DHBV DNA was detected by hybridization.
  • Fig. 3 is an autoradiogram, and Table 8 shows the results obtained by the image division method.
  • viral DNA had a tendency to decrease (P> 0.05) 10 days after treatment in the A ⁇ group.
  • the 12.5mg group of the compound A did not show a significant effect, but the 50mg group showed a similar effect to the first trial.
  • HBV DNAp is a key enzyme in HBV DINA replication. Once DNAp is inhibited, HBV DNA replication will be interrupted. The growth and proliferation of HBV will stop. Therefore, drugs that inhibit HBV DNAp activity have antiviral effects. The determination of the inhibitory effect of HBV DNAp activity is an important guide for drug selection and efficacy judgment. Mark
  • Compound A in each dose group was cultured for 2.2.15 cells for 8 days. After MTT staining, the OD value of each dose group was basically the same as the normal cell control, and even slightly increased at high concentrations (8 and 4 mg / ml). Microscopic observation of 2.2.15 cell morphology of compound A in the 8, 4, and 2 mg / ml dose groups showed a slight change in cell morphology, which may be related to the colored substances produced by the drug in serum and various metal ions over a long period of 37 hours. The cell morphology of 2.2.15 in the dose group below lmg / ml was normal.
  • DHBV-infected Beijing ducklings were treated 7 days after infection and 14 days after administration.
  • the main result was that there was no statistical difference in the amount of viral DNA in each group before treatment; there was fluctuation in serum DH BV DNA levels in the saline control group after treatment, but there was no statistical significance.
  • DNA levels in the acyclovir group were significantly reduced at 7 and 4 days after treatment, but the mean value after discontinuation was higher than before treatment.
  • the efficacy of the compound A group depends on the duration of the treatment and the dosage. The continuous treatment for 14 days is better than the treatment for 7 days, and the efficacy is weakened after discontinuation.
  • the 5 mg group did not significantly reduce the effect of viral DNA, and the 50 mg dose group had the best effect.
  • the inhibitory effect appeared earlier, the detected virus level was lower, and it remained at a significantly lower level than the pre-treatment control after stopping the drug ( ⁇ ⁇ 0 ⁇ 05).
  • Similar results were obtained by repeated experiments.
  • ACV (50mg / kg) treatment showed no obvious inhibitory effect for 5 days, and the effect on day 10 was relatively small. At the same time, the effect of compound ⁇ was lower than that of the first experiment.
  • Compound A was isolated and screened by in vitro HBV DNAp activity inhibition experiments, and showed obvious anti-HBV effects in both 2.2.15 cells and DHBV infected duck models, further proving the feasibility and reliability of the preliminary screening method, and explaining compound A It has a function of inhibiting DNA polymerization and thus inhibiting DNA replication.
  • Compound A has a strong inhibitory effect on HBV replication and antigen production in 2.2.15 cell culture. It synthesizes and secretes HBeAg and HBsA in culture.
  • Compound A also had antiviral effects in an in vivo model of DHBV infection in Peking duck.
  • Peking duck was infected with DHBV on day 7 after oral administration.
  • Compound A had a dose-dependent inhibitory effect on serum DHBV on days 7 and 14 after administration of 50 mg. The effect was the strongest in the / kg / day dose group, and the serum DHBV DNA remained low after 5 days of discontinuation, which was significantly lower than in the NS and ACV groups.
  • Preliminary test table The maximum oral dose of Compound A was greater than 4 g / kg. Fourth, the anti-HIV effect of compound A in vitro
  • Viruses Human immunodeficiency virus ⁇ -1, -70 "C.
  • MT 4 cells were prepared at 4 ⁇ 10 5 / ml, seeded into 96-well plates, compound A at different concentrations, 0.1 ml / well, cultured in a 37 "C 5% C0 2 box for 5 days, and 0.25% MTT (PH7.2 PBS preparation), 20 ⁇ l per well, cultured at 37 'C for 4 hours, the yellow MTT will turn into purple formazan crystals under the action of mitochondrial dearginase in living cells.
  • MTT PH7.2 PBS preparation
  • MT 4 cells were prepared at 4 ⁇ 10 5 / ml, seeded into 96-well plates, and 8 10-fold dilutions of HIV and different concentrations of Compound A were added, 0.1 ml / well, 37 "C 5% C () 2 in a culture box On day 7, 0.25% MTT was added to observe the cytopathic changes and the number of viable cells. Calculate T (: ID S () as 10 '.
  • the cell culture supernatant of each group was centrifuged at 2000 rpm for 10 minutes to remove cell debris. 20 ⁇ of the supernatant was taken, added to a plastic tube, and 10 ⁇ of virus lysate (0.5% Triton X-100, 0.8M NaCI, O.SmM) was added. Formamidine fluoride, 20% (VV) glycerol, 50 mM Tris-HCl PH7.8), to lyse virus particles in the supernatant, and release reverse transcription (RT) therein. Then 170 ⁇ of the reaction mixture was added.
  • the preparation method of the reaction mixture was as follows: 52 mMTris -Hcl (PH 7.8), 10 mMMgCI 2 , 2 mM DTT (dithiothreitol), 5 g / ml poly (A)-(dT) 12 , 85 g / ml dATI), L 3 HjTTP.
  • the activity of RT can be incorporated into poly (A)-(dT) 12 by H1TTP and the amount of template primer Means.
  • Murine leukemia virus (MULV) LP-BM 5 strain was used to divide the experimental animals into 10 groups.
  • the 5 groups of animals were inoculated intraperitoneally with LP-BM5 virus (0.5ml / mouse), and were divided into a normal saline control group and a positive drug (AZT) control group, compound A treatment of large, medium and small dose groups, non-infected animals (not vaccinated) were also divided into 5 groups.
  • Compound A treatment started on the second day of virus inoculation and 50 days of treatment. The weight of each mouse was measured. After the drug was stopped for 24 hours, the spleen was taken aseptically and tested for virology and immunology. The results are shown in Table 14.
  • Lymphocyte proliferation response Aseptically control the mouse spleen, prepare a spleen cell suspension, dissolve red blood cells with PH7.2 Tris-NH 4 C1 buffer solution, and wash the spleen cells to 5x l 0 ( 7ml, take ⁇ was added to a 96-well culture plate, and 100 ⁇ L of 20 g / ml and 40 g / ml of ConA and LPS were used as mitogen activation, each of which was made into 3 replicates, 37 -C 5% C0 2 incubation for 56 hours , 3 H- TdR was added per well 0.5 ⁇ / hole, and cultured 16 hours, the cells were collected in a glass cellulose film cpm counts liquid scintillation counter, and calculate the relative proliferation index.
  • Toxicity test of compound A on cells The color of the culture medium darkened after 5 days in the compound A above 400 ⁇ ⁇ ⁇ 1 group, which had a certain effect on cell growth.
  • the lowest non-toxic concentration of Compound A on MT 4 cells was about 20 g / ml.
  • the solvent control group had lesions in 4 well cells under 1000TCID 5 ⁇ , and 100TCiD 5 ( , HIV infection, and two batches of experimental compound A in doses above 25 g / ml did not have cell concentrations at two virus concentrations.
  • the lesions occurred in the 12.5 g / m! Group of 4 wells in the middle hole of 1 cell; in the other two batches of experiments, the 12.5 g / nil dose group had no lesions, and in the 6.25 g / ml group, there were 1 well of cells in the 4 wells.
  • ConA (2.5 g / ml) ConA (5 g / mI) group cpm RPI cpm RPI uninfected control group 35631 ⁇ 3018 100 56032 ⁇ 4013 100 saline group 13489 ⁇ 1634 37.86 17921 ⁇ 1771 31.98

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Description

咖啡酰奎宁酸衍生物在治疗乙型肝炎及与逆转录病毒有关疾病 中的用途及新的咖啡酰奎宁酸衍生物 本发明领域
本发明涉及二咖啡跣奎宁酸衍生物在治疗乙型肝炎及与逆转录病毒如
HIV 有关疾病上的新用途， 新的咖啡銑奎宁酸衍生物及含二咖啡酰奎宁酸 衍生物或新的咖啡酰奎宁酸衍生物的药物组合物。 背景技术
乙型肝炎是由乙 ¾?肝炎病毒 （ HBV )引起的一种严重的世界性传染疾 病。 目前全世界约有 3.5亿人带有 HBV标志的感染者。 中国是乙型肝炎的 高流行区， 其中 50 - 70 %的人群受过 HBV感染， 约 8 - 10 %的人是乙 型肝病毒表面抗原携带者。 由于 HBV持续感染会导致肝硬化和原发性肝细 胞肝癌等慢性肝脏疾病， 故其死亡率很高。 近几十年以来， 人们一直在寻 找治疗和 /或预防乙型肝炎的药物， 并已开发出一些治疗乙型肝炎的药物， 如化学药物如阿糖腺苷单磷酸， 无环鸟苷， 苏拉明， 喹诺铜类药物， 中国 传统中草药的有效成份如苦参碱、 甘草^素、 猪苓多糖、 香菇多糖等， 生 物制剂如干扰素， 白细胞介素 - 2 ， 乙肝疫苗等。 但这些药物由于副作用 或使用不方便， 尤其是停药后病毒水平反跳等原因， 尚不能达到令人满意 的治疗程度。 另外， 与逆转录病毒有关的疾病， 如由逆转录病毒如 HIV感 染引发的人免疫缺乏综合症 （ AIDS ) ， 目前仍无十分有效的药物对其进 行治疗。 因此， 研究和开发停药后使乙型肝炎病毒水平几乎没冇反跳的新 的治疗乙型肝炎药物及新的抗逆转录病毒， 如 HIV病毒的药物是十分需要 的。 本发明简述
本发明的目的是提供一类新的抗乙型肝炎药物及新的抗逆转录病毒药 物， 其具有优良的疗效且副作用很低， 尤其是其停药后， 可使乙型肝炎病 毒水平几乎不发生反跳。
本发明人经广泛深入的研究， 出人意料地发现二咖啡酰奎宁酸衍生物 及咖啡酕奎宁酸衍生物对乙型肝炎病毒及逆转录病毒抗原的表达， 病毒 DNA的复制有良好的抑制作用， 尤其是在停药后， 可使乙型肝炎病毒水平 几乎不发生反跳。 另外本发明的二咖啡跣奎宁酸及其衍生物对 HiV病毒也 具有良好的抑制活性。 本发明基于上述发现得以完成。
本发明第一个日的涉及式 I 的二咖啡酕奎宁酸衍生物在治疗乙型肝炎 及与逆转录病毒有关疾病中的用途。
Figure imgf000004_0001
式 I 其中 R,， R2和 R3可相同或不同， 分别为 OH或咖啡酰基， 条件是: R,为咖啡酰基时， R2 , R3为 OH，或 R2为咖啡 Sb基时， Rl 5 R3为 OH 或 R3为咖啡酰基时， R2为 OH。
本发明第二个目的涉及的是式 Π新的咖啡酰奎宁酸衍生物。
Figure imgf000004_0002
式 Π 其中 Ι¾ ， R2，和 R3，可相同或不同， 分别为氩， d - fi烷基,
Figure imgf000005_0001
条件是 R,， R2， R3不能同时为氩，
t为碱金属 M， d 6垸基， M选自碱金属如 Na， K等，
且为氩， d - 6烷基， CH3CO。
本发明再一目的涉及的是含式 I 化合物的药物组合物， 该药物组合物 对乙型肝炎病毒 （ HBV ) 及逆转录病毒有良好的抑制作用。 根据本发明， 该药物组合物中可加有各种药用赋形剂， 添加剂及载体。
根据本发明， 本发明的式 I或式 II化合物或含式 I或式 II化合物的药 物组合物可用于治疗乙型肝炎及与逆转录病毒有关的各种疾病， 尤其是用 于治疗乙型肝炎及与 HIV感染有关的疾病。
根据本发明， 本发明的药物组合物可按本领域已知方法配成肠道或非 肠道给药的制剂， 如片剂， 胶囊， 粒剂， 注射液等。
根据本发明， 本发明的式 I 或式 II化合物， 主要来自植物， 如菊科植 物旋复花。 其中式 II 化合物可通过半合成法对式 I化合物进行适当化学修 饰得到。
根据本发明， 本发明优选的抗乙肝病毒及逆转录病毒的化合物为下式 1， 5 -二 一 () —咖啡酰奎宁酸。
Figure imgf000005_0002
Figure imgf000005_0003
根据本发明， 1 ， 5 -二 - O -咖啡 St奎宁酸可从菊科植物旋复花中 提取得到， 其具体提取路线如下所示：
Figure imgf000006_0002
Figure imgf000006_0001
在上述提取路线中， 组份 ίΕΒ5即为 1 ， 5 - 二 Ο -咖啡 ¾奎宁酸。 本发明详细描述
下面将通过 1 ， 5 - 二 - O -咖啡跣奎宁酸 （今后简称为化合物 Λ ) 在体内外抗乙型肝炎病毒的生物作用及其体外抗 HIV病毒作用来进一步阐 述本发明。
在下面生物实验中主要通过化合物 A对 HBV DNA聚合 的抑制作用 和对 2.2.15细胞合成、 分泌 HBeAg和 HBsAg的抑制作用对 HBV DNA复 制的抑制作用及对 HIV病毒抑制作用的研究， 对化合物 A 的体外抗 HBV 作用和化合物 A的体外抗 HIV作用进行评价。 利用鴨乙型肝炎病毒模型对 化合物 A进行初步体内抗 HBV作用评价。 一. 化合物 A抗 HBV作用实验中的材料与方法
1.1 材料
1.1.1 病毒， 细胞和动物
HBV悬液： 购自北京医科大学肝病研究所。
2.2.1 细胞株： ΗΒλ^ DNA克隆转染人肝癌细胞 (Hep G2)的 2.2.15细 胞系， 美国 Mount Sinai 医学中心构建， 我国北京医科大学传染科引进， 中国医学科学院医药生物技术研究所滕立提供， 自行传代培养。
鸭乙型肝炎病毒： 上海麻鸭血清， 核酸杂交 DHBV DNA阳性 (+++), -70 'C保存。
动物： 1 日龄北京鸭， 购自北京禽蛋公司养殖场。
1.1.2 试剂
HBV DNA质粒、 DHBV DNA质粒： 中国医学科学院医药生物技术研 究所李壮提供。
32P-dCTP： 北京福瑞生物技术工程公司。
缺口翻译药盒： Promega 公司。
Sephadex G-50 ， PVP： 瑞典 Pharmacia 公司。
SDS： 德国 Merck公司。
硝酸纤维素膜： 英国 Amersham公司。
鱼精蛋白， 牛血清白蛋白： 中国科学院生物物理所
DMEM(DuIbecco s Modified Eagle Medium)干粉： 姜国 GIBCO BRL 口 胎牛血清： 美国 GIBCO BRL产品。
G-418(Geneticin): 美国 GIBCO BRL产品。
青霉素， 链霎素， 华北制药厂 HEPES : 香港 FARCO公司产品。
四甲基偶氣唑益（MTT): Sigma公司产品 (400 μ g/100ml MEM ); HBsAg , HBeAg固相放射免疫测定盒： 北方免疫试剂研究所产品； 脱氡三礴酸腺苷 (dATP)、 脱氣三磷酸胞苷 (dCTP)、 脱氣三磷酸鸟苷 (dGTP)和脱氧三磷酸胸甙 (dTTP): 为美国 Sigma公司产品。
-巯基乙醇（0 -1\ £)、 NP-40: 为英国 BDH公司产品。
1,4-双 -[2-(5-笨基 a恶唑) j苯 (POPOP): 为 Baker公司产品。
3II-dTTP: 英国 Amersham 公司产品。
十二烷基磺酸钠 (S.D.S)、 2， 5-二笨 c恶唑 (PPO): 西德 Merck 公司产 οα
其它化学试剂均为国产优级纯或分柝纯试剂， 均由本院提供。
2.2.15细胞培养液及试剂配制：
检测 DNAp用 3H-dTTP底物掺入液:
配制终浓度 ί&存液浓度 驭量
Tris.HCI PH 7.6 200mmoI/L l mol/L ΙΟΟΟμΙ
NH4C1 200mmol/L l mol/L 1000μΙ
MgCI2 50mmol/L lmol/L 250μΙ
NIMO 2% 100% ΙΟΟμΙ β -ΜΕ 0.6% 100% 3ϋμΙ dATP 0.3mmol/L lOOmmoI/L 15μΙ d TP 0.3mmol/L 100讓 ol/L 15μΙ dGTP 0.3mmoI/L lOOmmol/L 15μΙ
3H-dTTP 20μ€ΐ/ιιι1 lmCi/ml ΙΟΟμΙ
D.D.W 加至 5000μΙ 在冰浴中配制， 即配即用。
闪烁液： 0.5% ΡΡΟ 和 0.015% ΡΟΡ()Ρ 的二甲笨溶液。
DMEM 培养液： 含胎牛血清 10% , 青霎素 100 g/ml ， 链 素 lOOu/ml , 用 5% NaHC03调 PH至 7.0 « 传代用 DMEM培养液加 G418 380 g/ml ,
细胞消化液： 0.25%胰鲦， 用 Hanks液配制。
MTT 染色液： 用 DMEM 液 制成， -4 匸保存， 400 g/ml ， 每孔 ΙΟΟμΙ 。
化合物 Α 溶液： 化合物 A 以 DMEM 培养液 制成 100mg/ml 和 lOmg/ml两种^存液， 以 5%NaHC03调节 PH至 7.2 。
实验用品及仪器：
培养瓶， 丹麦 Tunclon TM；
培养板， 96孔板， 24孔板， 美国 Corning公司产品；
二氣化碳孵箱， 美国 Shel-Lab产品；
γ-计数器
1.2 实验方法
1.2.1 化合物 Α对 HBV DNA聚合醉活性的抑制试验
1.2.1.1 方法
以下步骤在冰浴上进行：
(1 ) 取新配制的摻入液 40μ1， 加到 1.5ml的 Eppendorf 管中， 再加配 制好的化合物 Λ溶液 8μ1于管中， 最后加超离心制备的 HBV DNA 样品 32μΙ , 充分混匀， Eppendorf 管中溶液总体积为 80μΙ 。 獰对照组不加药 而加 8μΙ双蒸水， 阳性对照药为 PFA (磷甲酸） ， 阴性对照为 40μΙ摻入液 加 40μΙ双蒸水。 将管内反应体系充分混匀。
(2)离心 10秒， 将装有反应体系的 Eppendorf 管放置在 37 °C水浴， 慢 摇 (50转 /分）反应 3小时。
(3) 65 'C水浴 2分钟， 终止反应。 离心 10秒。
(4)取上清 70μΙ 点样于已编号标记的 Whatman 3 号滤纸片 园片（2cm) 上。
(5)将点好样的滤纸片用 4 预冷好的 5%三氯乙酸 (TCA) (含 0.1 %焦磷 酸)拫荡洗涤 10分钟， 共 3次。
(6)用 4 °C预冷的无水乙醇浸泡 10分钟， 自然晾干。 (7)将滤片置于闪烁液中， 用液烁仪測定其 cpm值。
1.2.1.2 化合物 A作用结杲处理与统计
计算化合物 A在不同浓度时 3H-d TTP摻入 HBV DNA 的 cpm均值与 标准误， 与不加化合物 A阳性对照组比较进行 t检验。
计算化合物 A在不同浓度时对 HBV DNAp活性的抑制率。
公式 1 :
(诲对照组 cpm-化合物 Acpm)
抑制百分率（％) = X 100%
( 对照组 cpm -阴性对照 cpm) 抑制率与化合物 A浓度转化为两参数的 logit作图法作图若为直线， 可 以在图上直接读出 I(:5o。 IQo = 10(截距 ,針牟】
1.2.2 化合物 A对 2.2.15细胞合成分泌 HBV的抑制作用
1.2.2.1 2.2.15细胞培养
2.2.15 自中国医学科学院医药生物技术研究所病毒研究室引进， 自行传 代培养。 在长满 2.2.15 细胞的培养瓶内加 5ml 0.25%胰 消化液轻洗， 倒 出， 再加 2ml 消化液， 37 消化， 于细胞发生变化前倒出消化液， 平放。 待细胞开始脱落时加培养液吹打， 1 :3传代，加 15(^g/ml G418压克隆， 7 天长满。 进行细胞计数， 配制成 105个 / ml 接种细胞培养板， 96 孔每孔 0.2ml， 24孔板每孔 l ml , 37 V , 5%CC>2培养 24小时， 细胞长成单层 后进行实验。
1.2.2.2 细胞毒性试验
化合物 A 存液（100mg/ml)用培养液 2倍稀释 10个浓度， 每孔 20μΙ 于 96孔细胞培养板至终浓度为 8-0.03 mg/ml， 每浓度 6孔， 每 4天换同浓 度药液， 设无药物细胞对照， 8天观察结果。
倾去培养液， 每孔加入 MTT培养液 (40()μίξ/πιΙ), 每孔 ΙΟΟμΙ， 37 V , 5% (:()2孵育 4小时， 可见黃黑色甲瓒敉粒， 弃去上清， 加 DMSO I OO^I 溶 解， 待甲瓒颗拉完全溶解后， 用絝标仪 570nm波长测定 OD值。
1.2.2.3 对 HBeAg、 HBsAg合成和分泌的抑制试验 1.2.2.3.1 方法
2.2.15 细胞以 105个 /ml 接种 24孔细胞培养板， 每孔 l mi ， 37 ， 5% C02培养 48小时， 加无毒浓度以下 2倍稀释化合物 A溶液， 至终浓度 分别为 250 , 125 ， 62.5 , 31.25 , 15.6和 7.8 g/ml。 每浓度 3孔， 同时 设阳性对照药和无药物细胞对照， 37 'C 5% C02培养， 共 12天， 每 4天 更换原浓度药液培养， 将收集的培养液 -20 冰冻保存； 将收集的培养 液同时测定 HBeAg 和 HBsAg , 同时设细胞对照和阳性药物对照。计算细 胞对照及各浓度 cpm均值及标准误 、 对 HBsAg和 HBeAg的抑制百分率 (%)和半数抑制浓度 (IC5«):
H BeA 和 HBsAg测定： 用中国同位素公司北方免疫试剂研究所产品， 固相放设免疫测定盒测定， 方法见说明书： 分别驭相应细胞培养板各孔培 养液 200μΙ加入抗 HBe(HBs)包被抹 1 粒，室温过夜，以 0.01 M PBS洗液 (含 0.05%吐温 -20)洗涤 6次， 沥干， 加 200μ1 1251-抗 -HBe(HBs), 室温过夜， PBS洗涤 6次， 沥干。 用 Y -计数器测定每孔药液 cpm值。
1.2.2.3.2 化合物 A作用结果处理与统计
化合物 A对 HBsAg和 HBeAg的抑制百分率(％)计算：
公式 2. 1 :
细胞对照 cpm - 给药组 cpm
抑制百分率（％) = X 100
细胞对照 cpm - 阴性对照 cpm
IC o: 以 cpm值或抑制率与药物浓度的对数用四参数 Logistic函数拟 合作图， 曲线形状若为典型的 S型浓度 - 效应曲线， 可以得到在不同浓度 处理时抗原生成量 RIMA测定 cpm的最大值 (E„1;1、)和最小值 (Emin)， 最大抑 剁率、 最低抑制率、 抑制 50 %所需浓度 （ IC5n ) 和斜率 （ HiH's 系数) <, IC5,,为抑制曲线中最重要的参数， 它代表抑制抗原生成所需的药物浓度， 在曲线斜率相同的条件下， 显然浓度越低表示药物的抑制活性越高。 抑制 率与药物浓度转化为两参数的 logit作图法作图若为直线， 可以在图上直接 读出 ICS(,。 IC½ = 10(截距斜率)。 1.2.2.4 化合物 A对 2.2.15 细胞内 HBV-DNA复制的抑制作用
2.2.15细胞 DNA提取：
24孔板 2.2.15细胞培养加不同浓度药液培养 12天。倾去培养液， PBS 洗三次， 加 0.1 ml 消化液 (0.1 %SDS， 0.15MNaCl , O.OlMTris , HCI PH7.5 , 0.01M EDTA, 2mg/ml Pronase), 37 反应 2小时， 消化产物以 等体积苯朌-氯仿 -异戊醇 (25:24:1)抽提 2 次， 每次处理 10 分钟， 离心 12000rpm， 10分钟。 馭上清， 加 1/10体积 5MNaCI和 2.5倍体积元水乙 醇，液氮气相冷冻 30分钟， 12000 rpm 离心 10分钟沉淀 DNA ,真空抽干， 重溶于 TE緩冲液中， 作为样品。
α-32Ρ探针标记：
按 Promega 缺口转移试剂盒说明书标记探针： 取 ΙμΙ含 HBV DNA 质 ϋ， 加 10μΙ lOOmM dNTP(dATP， dGTP， clTTP), 5μΙ 10 χ缺口翻 译緩冲液， a32P-dCTP 5μα， 5μΙ DNA 聚合鉻 /DNA内切 混合物， 用 双蒸水补足 50μ1， 置 12 X 反应 2小时。 加 0.5Μ EDTA 5μΙ终止反应。 标 记物加到用 1 X ΤΕ平衡的 Sephadex G-50柱 (0.6 χ 12cm), TE洗脱， 从 上样开始计数， 第 8滴开始收集， 每管 8 滴， 共收集 10管， 低能辐射仪测 定各管放射性强度。 合并第一 液体， -20 'C备用„
细胞 DNA的 Southern Blot分柝：
1 )凝胶制备： 制做 1 %琼脂糖凝胶， 凝固后将胶置于电泳槽中， 拔出梳 子。
2)上样： 样品加 1/10体积的加样緩冲液， 混匀， 加至各梳孔中， 同 时加 Hindlll DNA作对照。
3)电泳： 样品孔一端接阴极， 50mA 电泳过夜
4)检查： 加溴化乙锭染色 30分钟， 紫外灯下检查， 切除不需要部分。
5)预处理： 将胶放入 0.25M HCf 中 10分钟， 水冲洗三遍。
6)变性： 将胶放入变性液 (1.5MNaCl， 0.5MNaOH)中 1 小时， 不间断 的轻轻摇动， 以水漂洗。
7)中和： 将胶放入中和液 (lMTds.HCi PH7.6， 1.5MNaCl)中 1 小时， 不断拫徭， 更换中和液， 继续中和 15分钟。 8)转膜： 在转移槽中加入 10 X SSC。 在小架子上铺两层润湿的滤纸， 两端浸在 10 X SSC中， 滤纸上再放一层与胶大小相同的滤纸， 赶走气泡， 四周用塑料条盖上， 以免 "短路" 。 将胶翻转过来放在滤纸上， 赶气泡， 将大小相同的硝酸纤维素膜仔细放在胶上， 赶走气泡， 再放大小相同的滤 纸若干层， 最后放吸水纸， 压上玻璃板及重物， 适时更换吸水纸， 转栘过. 夜。 丢弃吸氷纸、 滤纸， 小心取下硝酸纤维素膜， 夹在干燥滤纸中， 做好 标记， 室温凉干， 放冰箱中备用。
9)预杂交： 将胶置于杂交袋中加入预杂交液（3 X SSC-0.1 %SDS I 0ml)65 30 分钟。 换 10 χ Denhardt液 -0.1 %SDS 10ml， lOmg/ml 变性载体 DNA 200ml， 65 'C过夜。
10)杂交： 去掉预杂交液， 换杂交液 (50%甲酰胺， 25% Denhardt 液 0.1 % SDS), 20% 2 X SSC, 5%D.D.H20, ΙΟΟμΙ 变性 ΟΝΑ，200μΙ 变性探针， 1 %焦磷酸）， 42 'C , 48小时。
1 1)洗膜： 用 3 X SSC-0.1 %SDS分别在室温， 42和 65 X：各洗涤 10分 钟。
12)夹片曝光： 夹片， -70 曝光， D72显影 7分钟， 定影 10分钟， 水 洗胶片。
1.2.3 化合物 A在鸭体内的抗 HBV作用
1.2.3.1 鸭乙型肝炎病毒感染
孵出 24小时内的北京鴨， 由足静脉注射上海麻鸭 DHBV DNA阳性血 清， 每只 0.2ml， 在感染后 7夫驭血， 分离血清， -70 保存等检。
1.2.3.2 药物治疗试验
第一批： DHBV 感染雏鸭 7 天后， 随机分为 5组， 每纽 7只。 三组 化合物 A给药组剂量分別为 50、 12.5和 5mg/kg体重， 阳性药物为无环 ¾苷( ( \ 50 mg/kg 口服， bid χ 14 。 设病毒对照组以生理盐水代替药 物。 在感染后 7天用药前 (Τ0)、 用药第 7天 (Τ7)、 第 14天 (T14)和停药后第 5天（Ρ5)自鸭足静脉取血， 分离血清， -70 'C保存待检。
第二批： DHBV感染雏鸭 7 天后， 随机分 4纽， 每组 5 只。 二组化 合物 A 给药组剂量分别为 50 和 12.5mg/k 体重， 阳性药物为无环乌苷 (ACV)50 mg/kg 口服， bid χ 10。 设病毒对照组以生理盐水代替药物。 在感 染后 7天用药前 (Τ0)、 用药第 5天 (Τ5)、 第 10天 (T10)和停药后第 3天 (Ρ3) 自鸭足靜脉取血， 分离血清， -70 保存待检。
DHBV DNA检测方法
DHBV DNA探针标记：按 Promega缺口翻译药盒说明书用 ot32P-dCTP 标记探针： 方法同 HBV DNA探针标记。
点杂交检测鸭血清中 DHBV DNA：
1 )膜处理： 用蒸馏氷和 10 X SSC浸泡硝酸纤维素膜各 30分钟， 置室 温凉干。
1 )点膜： 取 40μΙ上述待检血清， 每批各组样品同时点膜， 室温凉干。
2)变性： 将硝酸纤维素膜分别浸于下列变性液中变性：
变性液 1 , 0.5MNaOH 10分钟。
中和液 II， l MTris.HCI PH7.6 , 0.6MNaCI , 10分钟
中和液 III， O.SMTris.HC! PH7.6 , l .SMNaCI , 10分钟 <. 室温凉 干。
3)置 80 烤箱中 2小时。
4)预杂交： 将胶置于杂交袋中加入预杂交液 (3 X SSC-0. 1 %SDS 10ml)65 "C , 30分钟。 换 10 χ Denhardt液 -0.1 °/0SDS l Oml, l Omg/ml 变性 载体 DNA 200 ml， 65 过夜。
5)杂交： 去掉预杂交液，换杂交液 (50%甲酖胺， 25%Denhardt液 0.1 % SDS), 20% 2 X SSC, 5%D.D.H20, Ι ΟΟμΙ变性 DNA, 200μΙ变性探针， 1 %焦 磷酸）， 42 'C , 48小时。
6)洗膜： 用 3 X SSC-0.1 %SDS分别在室温， 42 'C和 65 'C各洗涤 10分 钟„
7)夹片曝光： 夹片， -70 'C曝光， 1)72显影 7分钟， 定影 10分钟. 水洗 胶片。
8)用 DG3022 型铬标检測仪测定光密度值 (ΟΟ)(λ=490ηιτι)和 Primax扫 描仪测定总灰度。 计算每组鸭不同时间血清 DHBV DNA OD49» (总灰度）均数并将每组鸭 用药后各时间及停药后血清 OD49« (总灰度）与给药前 TO比较， 进行 t检验。
将各组不同时间 DHBV DNA抑制率分別与对照组相同时间的同一指 标比较， 进行 t检验。
计算每组鸭用药后 DHBV DNA抑制率
公式 2.2:
给药前 (TO)OD值-给药后 OD值
抑制率（％)= X 100%
给药前 OD值
2.1 化合物 A对 HBV DNA聚合酶活性的抑制作用
表 1. 化合物 A和 PFA对 HBV DNAp活性的体外抑制作用
[HBV DNA 3H-dTTP摻入值 (cpm)和抑制率（％)，
表内数值为标准差土标准误， n=2， 病毒阳性对照为 11093 土 992.6 , 不加錄阴性对照 cpm值为 6.4 土 12.8J
药物 浓度（μίί/ml) 1 10 100 10110 化合物 Λ cpm值 9856.1 ± 200.9 79 K.4土 78.5 3522.0土 50.6* * 1982.7 ± 158/» * * 抑剁率（％) 1 1 .17 ± 1.93 3<».81 ± 0.75 68.39士 <».4<) 82.31 土 1.52
I'FA cpm值 10266.8士 76.6 5495.» ± 218.4 * * 3064.9 ± 67. * ^ 2377.1 土 321人0" 抑制率（％> -5.23 ±15.31 44.39 ± 2.27 69.65 ± (1.7(1 76.81 + 3.42 重复实验结果显示： 化合物 A具有较强的抑制 ΗΒλ' DNAp活性的作 用， 具有典型的量效关系， 各批实验 lC5u 变化很小，为 14.3-30.6 g/ml 。 化 合物 A和 PFA在以两参数 logit作图法所得抑制曲线中 IC5,,接近， 化合物 A斜率较 PFA小， 说明化合物 A在低浓度时作用强， 而在高浓度时 PFA作 用较强 。
2.2+ 化合物 A在 2.2.15细胞培养中的抗乙型肝炎病毒作用 2.2.1 化合物 A对 2.2.15细胞增殖的影响
2.2.15 细胞以 105个 /ml 接种 96孔细胞培养板，每孔 0.2ml， 37 X： , 5% C02培养 48小时， 加 2倍稀释化合物 A溶液 10个浓度， 化合物 Λ在 8、 4、 2 mg/ml剂量组第 4 天起， 2.2.15细胞培养液开始有轻微颜色变 化， 8mg/ml剂量组第 8天时颜色变绿。在显微镜下观察化合物 A在 8、 4、 2 mg/ml 剂量组第 4 天起形态有较轻微的变化， 0.5mg/ml 以下剂量组 2.2.15细胞形态正常。 MTT染色后， 各剂量组 OD值与正常细胞对照基本 相同（结杲见表 2) 表 2 不同浓度化合物 A对转染 HBV DNA肝癌细胞林 HepG2 2.2.15细胞 的影响，
培养 8天后细胞用 MTT染色， 在 570 nm波长条件下测定 O.l).值。
M 量 8.(H) 4.<K) 2.(10 1.0(1 (1.5») (1.25 0.13 0.06 0.<»3 0.(115 11
(mn/ml)
一批 均& 2.76 2.19 2.23 2.03 2.(13 1.96 1.96 1.95 1.89 2.(19 ]
SD 0.12 (l.(»9 «.09 (1.(17 0.06 (). ! () 0.05 (1.05 (1.(17 ().(18 (1.04 二批 均 ft 2.17 2.21 2.05 1.86 1.86 1.83 1 Μ 1 .9(1 1.45 1.78 Ι .Χ
SI) 0.19 0.1 0.15 0.1 0.12 0.12 0.09 (1.13 (1.23 ().13 0.09
2.2.2 化合物 Α在 2.2.15细胞培养内对 HBeAg和 HBsAg表达的作用
2.2.15 细胞以 105个 /ml 接种 24孔细胞培养板， 加无毒浓度以下 2倍 稀释化合物 A溶液， 将加药后第 4， 8和 12天收集的培养液同时以 R1MA法 测定 HBeAg 和 HBsAg的量- 用 γ -计数器测定每孔药液 cpm值。 两批重 复实验结果见表 3 、 4 表 3. 化合物 A在 2.2.15培养中对 HBeAg和 HBsAg合成和分泌的抑制作 用
(表内数据为均值士标准误， n=3， 阴性血清对照为 171.1±13.86) (第一批实验） 时间 HBc Ag HBs Ag
(μκ/πιΙ) (天） cpm值 抑制率（％) cpm值 抑制率
4 5062.4 2(14.7 831.5 36.6
0 8 6731.8 571.8# 866.3 ± 66.2
12 7499.4 ± 167.7## 773.4 ± 11.8
4 4830.7 ± 269.7 4.84 ± 5.61 786.6 ± 36.1 6.47 ± 5.1
7.S1 8 6600.7 544.9 2.1)3 ± 8.43 728.7 43.6 18.85 + 5.98
12 6421.7 + 716.7 14.9 ± 9.91 8(10.5 + 67.0 -4.25 10.5
4 4187.7 + 230.4* 18.25 ± 4.79 652.2 + 50.2* 25.78 + 7.22
15.63 8 5912.3 + 1001 12.67 ± 1.56 671.0 + 20.(»* 26.75 + 2.74
12 5544.8 ± 763/» 27.02 ± 10.6 774.9 ± 53.7 -(1.23 ± 8.43
4 3270.1 84.3** 37.37 1.76 530.2 66.5* 43.33 9.56
31.25 8 4373.7 ± 241.9* 36.47 ± 3.74 640.7 + 24.5* 30.89 + 3M
12 5(> (>.9 + 2C8. ** 33.29 ± 3.72 674.2 + 55.1 15.57 8.65
4 3(114.7 ± 64.5** 42.70 ± 1.35 466.2 27.9** 52.53 ■4.01
(>2. 8 3789.0 134.0** 45.36 ± 2.07 55(1.9 14.1** 43.19 1.93
12 3782.8 + 379.5** 51.38 ± 5.25 5(19.(1 39.9** 41.49 ± (>.!(>
4 2667.7 67.0** 49.93 + 1.40 435.4 1 .6** 56.97 ± 2.38
125 8 3136.4 471.4*" 55.6(1 ± 7.29 479.5 + 20.1** 52.98 + 3.3(1
12 3314.8 + 255.9** 57.85 + 3.54 432.« + 21.7** 53.44 3.4(»
4 22(»(». + 19-1.5 ** 9.66 ± 4.05 393.4 32.2** 63.01 ± 4.63
25(1 X 2341.5 + 359.4** 67.9» ± 5.56 454.1 ± 27.4** 56.45 3.76
12 2558.8 + 281.8** 68.30 ± 3.9» 389.9 ± 27.5** 60.18 + 4.32
4 4720.5 354.9 7.14 ± 7.39 7(16.5 ± 23.7* 1 ΊΜ ± 3.41
ACV 8 6101.9 ± 949.2 9.74 ±〗4.7 769.3 85.1 !3.29 11.7
12 6527.5 + 2081 13.44 ± 28.8 749.8 12.8 3.71 i 2.01
*和 * *与同一培养时间不加药细胞对照比较 p<0.05或 0.01
#和## 不加药正常细胞培养不同时间比较 p<0.05或 0.01
表 4. 化合物 A在 2.2.15培养中对 HBeAg和 H BsA 合成和分泌的抑制作 用
(表内数据为均值士标准误， n=3， 阴性血清对照为 265.85±16.36) (第二实验) 浓度 时间 HBc HBs
(μκ/ml) (天) cpm值 抑制半（％) cpm值 抑制半（％»
5205.2 ± 136.2 1211.6 ± 39.1
8231.8 ± 172， 1163.2 ± 41.8
8499.4 ± 167.7## 759.(1 ± 15.6
4764.1» + 212.0 8.94 ± 4.29 1032.6 ± 10.8' 17.21 1.03
.81 74"0.7 ± 163.3* H 3 ± 2.(15 979.3 ± 42.3* 18.54 4.26
7188.3 ± 197.5* 15.93 士 2.4» 617.(1 ± 27.2*' 24.17 4.63
4264.0 ± 1 2.Γ 19.06 ± 3.89 941.1 ± 27.2' 26.()(» 2.62
15.63 5707.(1 ± 567.8' 31.7(1 ± 7.1 888.9 ± 16.3* 27.65 1.64
6211.5 + 183.3' 27.8(1 + 2.23 574.6 ± 18.8' 31.37 3.2(1
3503.4 + 328.9** 34.47 + C.66 824.2 ± 29.7' 37.24 2Μ
31.25 49((6.8 ± 1 .4** 41.75 2.47 808.5 ± 18.9' 35.75 1.9(1
5991.2 ± 291.9** 30.47 ± 3.55 546.5 ± 8.7*' 36.15 1.4«
31X1.4 + 181.7' 4(1.99 i 3.68 717.5 12.2** 47.48 Ι.Γ' 2.5 4631.7 + 1 .8' 45.21 i 2.47 699.7 ± 20.2 *A 46.72 2A)3
46(»3.5 ± 66.76' 47.33 + 0.81 464.2 + 7.5 *Λ 50.14 ± 1.2ίί
2867.7 47.35 l.' 618.5 ± 25.4* 57.00 2.44 4052.1 + 150.6 52.49 + I.X 617.7 ± 20.6' 54.91) IM
4014.8 ± Κ2.8* 54.48 ± 1.01 416.1 ± 14.7' 58.32 2. 1
2I»34.2 64.23 + 2.113 5C3.5 ± 23.1** 62.29 ± 2.21
250 3081.5 64.67 ± 2.28 480.8 ± 46.S** 68.79 + 4.6»
3(125.4 66.50 + (Κ ΙΙ 367.5 ± 6.7(1" 66.6(1 ± 1.1 i;
4 39111.9 ± 57/.** 26.22 ± 1.17 710.1 i- 65.7* 48.2(1 6.31
ACV X 101.9 ± 96.17* 26.75 + 1.21 870.1 ± 51.1* 29.54 5.1:=；
12 8194.1 - 111.5 3.71 ± 1.36 622.5 ± 58.8 23.22 2.01
*和 * *与同一培养时间不加药细胞对照比较 p<0.05或 0.01 "m 不加药正常细胞培养不同时间比较 p<o.o5或 0.01
2.2.2.1 化合物 A在 2.2.15细胞培养内对 HBeAg合成和分泌的抑制作用 自表 3 、 4结果看出： 2.2.15细胞株在不同浓度的化合物 A处理条件下 培养 4 、 8和 12天后， 对培养液 HBeAg 生成量的抑制作用与浓度的对数 成正比。 抑制程度并不随药物作用时间延长而变化， 第 4 、 8和 12天时的 IC5„相近.
表 5. 2.2.15细胞株在不同浓度的化合物 A处理条件下培养 4 、 8和 12天后， 对培养液 HBeAg生成量的影响。
Logit 模型拟合量效曲线数据
¾养时间 间截矩 A ) 斜半 ( B ) R P
4 天 - 1 -2.05 ± 0.27 1.41 ± (1.1 7 28.4 0.98 (>.<)()378
天 -2 ± 0.17 1.02 ± 0.10 44.4 ".98 (>.( )(ί54
8 天 - 1 -2.45 ± 0.27 1.55 + (1.18 38.1 0.98 (1.003(16
8 天 -2 -2.70 ± 1.(14 2.02 ± () >() 11. Ί i)M 0.(12834
1 2 天- 1 - 1.41 + 0.08 0.88 土 0.05 40.U 0.99 (U>"(I»S
12 天 -2 - 1.27 ± 0.(18 (1.67 + (1.05 78.6 0.99 (,細 15
2.2.2.2 化合物 Α在 2.2.15细胞培养内对 HBsAg合成和分泌的作用 从表 3 、 4可以看出： 2.2.15细胞林在不同浓度的化合物 Λ处理条件下 培养 4 、 8和 12天后， 对培养液 HBeAg 生成量的抑制作用与浓度的对数 成正比。 第 4和 8天时的 iC5(>相近， 第 12天时一批试验 IC5«增大。 表 6. 2.2.15细胞林在不同浓度的化合物 A处理条件下培养 4 、 8 和 12天后， 对培养液乙肝病毒表面抗原（HBsAg生成量的影响。
Logit 模型拟合量效曲线数掂。 截矩 （ A ) 斜率 （ B ) IC50 R P 天 -2.18 0.23 1.64 ± 0.15 21.3 0.987 Ι). ()Κ>Γ>
4 天 -2 - 1.30 ± ().«19 0.895 ± 0.01 1 28.3 (1.999 O.iHKHH
8 天 - 1 - 1.34 + (1.145* * 0.889 ± (1.084 32.2 (1.992 (,.(圆
8 天 -2 -2.7(» 1.'>4* 2.02 ± U.60 21.7 0.982 0.00046
12 天 - 1 -4.35 ± 0.353* * 2.59 ± 0.21 47.8 0.993 () )()653
12 天 -2 - 1.03 + (MM1 * * 0.464 ± (1.023 165 (1.995 <(.(><)(M
t与药物作用 4 天时比较时， P<0.05 P<0.01 和
P<0.001
2.2.3 化合物 A在 2.2.15细胞培养内对细胞内 HBV-DNA复制的抑制作用 (Southern Blot分柝) 对正常 2.2.15细胞及经不同浓度化合物 A处理的 2.2.15细胞进行 DNA 提取， 凝胶电泳和转膜杂交。 放射自显影结果可见正常细胞对照冇约 3.7kb 的游离的 IIBV DNA带， 化合物 A在 62.5和 125 g/ml时 DNA带的量明显 降低， 25( g/ml时降低最为明显。 可见化合物 A能抑制 HBV DNA的复制, 抑制作用随剂量增加而增强。
图 1 表示化合物 A于不同浓度下在 2.2.15细胞培养内对细胞内 HBV ― DNA 6 抑制作用 ( southern Blot分柝）
2.3 化合物 A口服治疗对 DHBV感染雏鸭血清 DHBV DNA量的抑制作 用 口服不同剂量化合物 A对感染鸭肝病毒 （ DHBV )雏鸭血清 DHBV D!NA 量的影响（试验一 ） DHBV感染雏鸭 7天后， 开始口服给药， 分别在感染后 7 天用药前 (T0)、 用药第 7天 (Τ7)、 第 14天 (T14)和停药后第 5天 (Ρ5)自鸭 足铮脉取血， 分离血清， 32P-dCTP标记探针， ώ点杂交检测 DHBV DNA, 放射自显影图象所得显影图象见图 2 口服不同剂量化合物 A 对感染鸭肝病毒 （ DHBV ) 雏鴨血清 DHBV DNA量的影响（试验二 ） DHBV感染雏鸭 7天后， 口服给药， 在感染后 7 天用药前 (T0)、 用药第 5天 (Τ5)、 第 10天 (T10)和停药后第 3天 (Ρ3)自鸭足 铮脉取血， 分离血清， 32P-dCTP标记探针， M点杂交检测 DHBV DNA， 放 射自显影图象所得显影图象见图 3 化合物 A 北京鸭最大耐受量 > 4g/kg
图 2和图 3是感染雏鴨治疗前、 治疗后第 7和 14天和停药后 5天取鸭 血清， 用 32P-dCTP 点杂交后的放射自显影图象。 表 7显示各处理组同一 检查时间 7 只鸭血清 点， 黪标仪检测 ώ点黑度、 光密度的平均数土标准 差和各组 DHBV DNA 量随治疗的变化。 其主要结果是治疗前各组病毒 DNA 量无统计差别 ； 治疗后盐水对照光密度值冇些波动但无统计意义。 阿昔洛书组治疗后 7和 14天黑度明显减低， 但停药后平均值高于治疗前。 化合物 A组的疗效依赖于治疗持续的时间和服药剂量， 连续治疗 14天的疗 效优于治疗 7 天， 停药后疗效减弱。 5 m 组无明显降低病毒 DNA的作 用， 50mg剂量组疗效最好， 抑制作用出现较早， 检测到的病毒水平较低， 而且在停药后仍保持在与治疗前对照明显低的水平 （ p<0.05 )
表 7. 口服不同剂量化合物 A对感染鸭肝病毒 （ DHBV )雏鸭血清病毒 D!NA 量的影响（试验一） ώ点杂交法检测， 酶标仪测定 点总吸光度 （ （).!)./ ώ 点， 均数士标准误， η = 7 )
对 «?. 阿 洛韦 化合物 A 化合物 A 化合物 A
5(1 m^kg 5 mg/kg 12.5 mg/kg
治疗 iii 0.17 + ".16 0.15 + 0.16 ± (».(I5 0.21 + ().()6 0.15 + 0.06 治疗/ 6 7 大 (1.13 ± (I.IM ().03 ± 0.04** (>.\(, ± 〖M>5 0.13 + ( M* (1.(16 ".1,4" 治疗 14 天 ((.19 0.13 ".03 ± 0.04** (1.15 ,."5 0.(16 1 6** ().<»3 + 1».()6** 停药后 5 天 0.22 0.13 11.24 ± 0.16 0.16 ± 0.04 ".17 ± 0.08 0.05 7*
与治疗前比较时 P<0.05和 P<0.01
] 为了验证结果的可靠性进行了第二次重复试验， DHBV 感染雏鸭 7 天 后， 口服给药， 在感染后 7天治疗前 (T0)、 用药第 5天 (Τ5)、 第 10天 (T10) 和停药后第 3 天 (Ρ3)自鸭足静脉取血 ， 分离血清用 ώ点杂交检测 DHBV DNA。 图 3是放射自显影图， 表 8是用图象分柝法得到的结果。 本次试验 中 A ^组治疗后 10天病毒 DNA有减低趋势 （ Ρ>0.05 ) , 化合物 Α 的 12.5mg組未显示明显疗效， 但是 50mg组显示与第一次试验类似特点的疗 效。 表 8. 口服不同剂量化合物 A 对感染鸭肝病毒 (DHBV)雏鸭血清病毒 DNA 量的影响 （试验二） ώ点杂交法：图象分柝法测定½点总灰度 （ KGrayness / ώ点， 均数土标准误， n = 4或 5 )
对照 阿普洛韦 化合物 A 化合物 Λ
5(1 mg kg 12.5 mg/kg 50 mg/kj; 治疗前 4.0 ± 1.5 4.0 ± 1.4 2.6 ± 0.4 9.1 + 3.2 治疗后 5 天 3/» i 1.1 5.1 + (1.8 2.1 * 0.8 4.0 2·:
治疗后 1 (1 天 3.6 ± 1 .0 2.4 ± 1.6 2.4 ± (1.4 1.5
停药后 3 天 4.3 ± 1.4 6.4 (1.8 2.4 (1.4 3.8 i 1 .4 * 与治疗前比较时 P < 0.05和 P < 0.01 三、 讨论与结论 在 HBV DNA复制过程中， 至少有 3种病毒特异性 ¾活性是必须的： 1 ) 依赖 RNA 的 DNAp, 2)依赖 DNA 的 DNAp, 3)RNase H (为降解前基因组 RNA而合成正股 DNA的蘇）。 一般认为， 这三种醉活性为同一蛋白分子所 具冇， 与 DNA P区基因编码有关 u HBV DNAp是 HBV DINA 复制过 ^中 的关键酶， 一旦 DNAp被抑制， HBV DNA的复制就会中断， HBV的生长增 殖就会停止。 因此能抑制 HBV DNAp 活性的药物即具冇抗病毒作用。 对 HBV DNAp 活性抑制作用的测定， 是进行药物 选和疗效判断的重要指 标
化合物 A各剂量组 2.2.15细胞培养 8天， MTT染色后，各剂量组 OD 值与正常细胞对照基本相同， 甚至高浓度 (8和 4mg/ml)时略有升高。在显微 镜下观察化合物 A在 8 、 4 、 2 mg/ml剂量组 2.2.15细胞形态有较轻的变 化， 可能与药物在血清及各种金属离子于 37 长时间作用下生成的有色物 质有关。 lmg/ml以下剂量组 2.2.15细胞形态正常。
2.2.15细胞培养液中 HBeAg的量较高， 而 HBsAg的量则较低。 药物 作用 4 、 8和 12天后， 对 HBeAg和 HBsAg的生成量都有显著的抑制作 用， 作用随化合物 A浓度增强， 但是剂量增大至一定量后 （ 1CS(, ) 抑制作 用呈饱和趋势， 表现为典型的 S 形抑制曲线。 培养时间越长， 不加药时培 养液中生成 HBeAg抗原量越多， 而 HBsAg则有相反的趋势， 但抑制程度并 不随药物作用时间延长而增强或降低， iC50稳定在一定范围内， 说明化合物 A的抑制作用比较稳定。 化合物 A对 2.2.15细胞 DNA复制也有抑制作用。
感染 DHBV北京雏鴨于感染后 7天进行治疗， 给药 14天， 其主要结果是 治疗前各組病毒 DNA量无统计差别 ； 治疗后盐水对照组血清 DH B V DNA 水平有波动， 但无统计意义。 阿昔洛韦组治疗后 7和 〗 4 天 DNA 水平明显 减低， 但停药后平均值高于治疗前。 化合物 A 组的疗效依赖于治疗持续的 时间和服药剂量， 连续治疗 14天的疗效优于治疗 7天， 停药后疗效减弱。
5 mg组无明显降低病毒 DNA的作用， 50 mg剂量组疗效最好， 抑制作用 出现较早， 检测到的病毒水平较低， 而且在停药后仍保持在与治疗前对照 明显低的水平 （ ρ<0·05 ) 。 重复实验得到类似的结果， ACV(50mg/kg)治疗 5 天未见明显的抑制作用， 第 10天的作用也相对较小， 同时化合物 Λ 的作 用也较第一次实验偏低。
用体外 HBV DNAp活性抑制实验筛选分离得到的化合物 A, 在 2.2.15 细胞和 DHBV 感染鴨模型中都显示明显的抗 HBV 作用， 进一步证明了初 筛方法的可行性和可靠性， 同时说明化合物 A 具有抑制 DNA 聚合醉活性， 从而抑制 DNA 复制的作用途径。 结论： 化合物 A 具有较强的抑制 HBV DNA 的作用， 为 14.3- 30.(^g/ml， 具有典型的 S型浓度 -效应曲线， 化合物 A在 2.2.15 细胞培 养中对 HBV 复制及抗原生成有较强抑制作用。 对培养液中 HBeAg 和 HBsA 的合成和分泌有典型的量效关系的抑制作用， 两批重复实验 IC5n分 别为 21〜 78 g/ml和 2 165 g/ml， Southern杂交表明对 HBV DNA的生 成有抑制作用。 1.0 g./m〖浓度的化合物 A对 2.2.15细胞的增殖无明显不 良影响。
化合物 A在 DHBV感染北京鸭体内模型也冇抗病毒作用， 北京鸭感染 DHBV 第 7 天开始口服给药， 化合物 A给药后第 7和 14 天对血清 DHBV 有依赖于剂量的抑制作用， 50 mg/ kg/天 剂量组作用最强， 停药 5天后血 清 DHBV DNA仍維持在较低水平， 明显低于 NS和 ACV 组。 初步试验表 听化合物 A 口服最大对受量大于 4g/kg。 四、 化合物 A体外抗 HIV作用
体外实验：
病毒： 人的免疫缺陷病毒 ΙΠν-1, -70 "C保存。
细胞： 人 Τ淋巴细胞传代林 ΜΤ4。
4.1. 化合物 Α对细胞的毒性实验
将 MT4细胞配成 4xl05/ml，种入 96孔板，加入不同浓度化合物 A,0.1ml/ 孔， 37 "C 5%C02袢箱内培养 5天,加入 0.25%MTT(PH7.2的 PBS配制），每 孔 20μΙ，37 'C 培养 4小时，則黄色的 ΜΤΤ在活细胞的线粒体脱氬酶的作用 下，变成紫色甲瓒结晶，活细胞越多则紫色结品越多，此时,仔细吸出部分培养 液,加入 150 llO%SDS，溶解紫色结晶，结晶越多则溶液颜色越深 <， 于 Bio- Rad臶标仪上测 OD值，检测波长 570nm,参考波长 630nm，每样作 3 复孔，统 计学处理以 t 检验法判定各实验组与对照组的差別，以下所冇实验的统计学 方法处理比较均与此相同。
4.2. MT4细胞培养上清中 HIV的滴定
将 MT4细胞配成 4xl05/ml，种入 96孔板，加入 8个 10倍比稀释的 HIV 及不同浓度化合物 A，0.1ml/孔， 37 "C 5%C()2 粹箱 内培养 7 天，加入 0.25%MTT，观察其细胞病变及活细胞数。 计算 T(:IDS()为 10 '。
4.3.化合物 A对不同量 HIV的抑剝作用： 将 MT4 细胞 4 χ 105 个 /ml, 种入 96 孔板， 0.1 ml/孔， 分别加入 1000TCID5(»和 100TCID5()两个浓度的 HIV, 0.1 ml/孔，分别在加入 HIV 同 时、 24小时和 48小时后加入 2倍稀释 5个浓度的使成终浓度为 100, 50, 25， 12.5和 6.25 g/ml， 每个浓度 4复孔， 观察细胞病变（见表 9 - 12)及活细胞 数 （见表 13 ) 。
4.4. 细胞上清中逆转录蘇的测定
将各组细胞培养上清，2000rpm离心 10分钟，去除细胞碎片，取上清 20μΙ， 加入塑料管中，再加入 Ι ΟμΙ 病毒裂解液 (0.5% Triton X-100, 0.8M NaCI, O.SmM笨甲磧跣氟， 20%(V V)甘油， 50mM Tris-HCl PH7.8), 以裂解上清 中病毒颗粒， 释放出其中的逆转录诲 (RT)。 然后加入 170μΙ 的反应混合物， 反应混合物的配制方法如下： 52 mMTris -Hcl (PH 7.8)， 10mMMgCI2, 2mM DTT (二疏苏糖醇）， 5 g/ml 的 poly(A)-(dT)12， 85 g/ml 的 dATI),
Figure imgf000025_0001
的 l3HjTTP 。 将上述反应体系（20μΙ 培养上清 +10μ1 病毒裂解液 + 170μ1反应混合物)，置 37 反应 2小时，則 RT的活性可通过 HlTTP摻入 poly(A)-(dT)12，模板引物的量来表示。 反应结束后，加入 3ml冰冷的 10%三 氯乙酸沉淀 DNA，沉淀的 DNA收集于玻璃纤维素膜上，然后以 15ml5%的三 氣乙酸及 6ml 70%的乙醇洗膜，将膜烘干，液闪计数仪计数 cpm，计算抑制率：
4.5. 体内抗逆转录病毒试验
采用小鼠白血病病毒（murine leukemia virus, MuLV) LP-BM5株 将实验动物分为 10组， 5组动物腹腔接种 LP-BM5病毒 (0.5ml/鼠)，分生理盐 水对照组、 阳性药物 (AZT)对照组、 化合物 A 治疗大、 中、 小三个剂量组， 非感染动物（不接种病毒）同样分为 5组。化合物 A治疗于病毒接种第二天开 始，治疗 50天，测量每鼠体重，停药 24小时后，无菌取脾，进行病毒学、 免疫学 等检测。 结果见表 14。
4.6. 小鼠血相的测定
驭小鼠眼部静脉血，以 5% EDTA 抗凝，计数白细胞、 红细胞和血红蛋 白,，
淋巴细胞增殖反应 (3H-TdR 摻入法）无菌馭小鼠脾脏，制备脾细胞悬液，以 PH7.2 Tris-NH4C1 緩冲液溶解红细胞洗净后将脾细胞配成 5x l 0(7ml，取 ΙΟΟμΙ加入 96孔培养板中，分別以 ΙΟΟμΙ 20 g/ml和 40 g/ml的 ConA和 LPS 作丝裂原激活，每样作 3 复孔， 37 -C 5%C02孵箱内培养 56 小时，加入 3H- TdR每孔 0.5μα/孔，继续培养 16小时，将细胞收集于玻璃纤维素膜上液闪计 数仪上计数 cpm，并计算相对增殖指数。 实验结果
体外细胞培养试验结果：
化合物 A对细胞的毒性试验： 400μ^ιη1以上化合物 Α組 5天后培养液 颜色加深,对细胞生长有一定影响。化合物 A对 MT4细胞的最低无毒浓度约 为 20(^g/ml 。
四批实验结果为： 溶剂对照组在 1000TCID5<,和 100TCiD5(, HIV 感染 下 4孔细胞全部发生病变， 两批实验化合物 A 的 25 g/ml 以上剂量组在两 个病毒浓度下细胞未发生病变， 12.5 g/m!组 4孔中冇 1 孔细胞病变； 另两 批实验 12.5 g/nil剂量组未发生病变， 6.25 g/ml组 4孔中有 1 孔细胞发生 病变。
表 9. 化合物 A在 MT4细胞中对 HIV的抑制作用 （细胞病变）
(加入 H1V同时给药）
剂量 ^g/ml) 1000TCID5„ 100TCID5
100
50
25
12.5 - - - + - - - -
6.25 + + - - + - - +
3.125 + + + + + - + +
0 + + + + + + + + 化合物 A在 MT4细胞中对 HIV的抑制作用 （细胞病变）
(加入 HIV同时给药）
Figure imgf000027_0001
1 1. 化合物 A在 MT4细胞中对 HIV的抑制作用 （细胞病变）
(加入 HIV 24小时后给药）
剂量 (^g/ml) lOOOTCIDso lOOTCID
100
50 - - - - - - - -
25
12.5 + + - + + - - +
6.25 + + + + + + + +
3.125 + + + + + + + +
1.5625 + + + + + + + +
0 + + + + + + + + 表 12. 化合物 A在 MT4细胞中对 HIV的抑制作用 （细胞病变） (加入 HIV 48小时后给药）
Figure imgf000028_0001
表 13. 化合物 A在 MT4细胞中对 HIV的抑制作用 （活细胞数） (加入 HIV 48小时后给药）
剂量 lOOOTCIDso lOOTCIDs
O.D.值 抑制率（％) O.D.值 抑制率（％)
100 0.721 ±0.103 61.52 0.781±0.097 57.69
50 0.817±0.051 74.76 0.803±0.024 60.61
25 0.782±0.030 69.93 0.826±0.019 63.66
12.5 0.674±0.046 55.03 0.772±0.057 56.50
6.25 0.565±0.062 40 0.680±0.033 44.30
3.13 0.428±0.025 21.10 0.489±0.060 18.97
1.56 0.327±0.038 7.17 0.407+0.041 8.09
0 0.275±0.008 0 0.346±0.019 0 表 14. 化合物 A对 LP-BM5感染小鼠淋巴细胞增殖反应能力的影响
ConA(2.5 g/ml) ConA(5 g/mI) 组別 cpm RPI cpm RPI 未感染对照组 35631±3018 100 56032±4013 100 生理盐水组 13489±1634 37.86 17921±1771 31.98
AZT(50mg/kg) 33212±2609 93.21 53287±2043 95.10 化合物 A(25mg/kg) 28627±3206 80.34 49308±2967 88.00 化合物 A(50mg/kg) 31578±3312 88.63 51098±3270 91.19 小鼠于 dl接种病毒， d2-d28天给药， d30进行实验 以上结果显示化合物 A在细胞培养中有较强的抗 HIV作用。

Claims

权 利 要 求
1. 下式的二 -如啡酖奎宁酸衍生物在制备用于治疗乙型肝炎及与逆转 录病毒如 HIV感染有关疾病的药物中的用途，
Figure imgf000030_0001
其中 R2和 3可相同或不同， 分别为 OH或咖啡酖基， 条件是： ^为咖啡酰基时， R2， ！^为 OH，或 R2为咖啡酰基时， ， 1¾3为 011， 或 为咖啡跣基时， Ri， R2为 OH
2. 下式的咖啡酖奎宁酸衍生物，
Figure imgf000030_0002
2X 其中 R R2，和 R3，可相同或不同， 分别为氢， C1 (>烷基，
Figure imgf000031_0001
条件是 W， R2，， R3，不能同时为氢，
R4为碱金属 M , C, 6烷基， M选自碱金属如 Na， K等，
R5 = R6 iL为氣， 6烷基， CH3CO。
3. 一种用于治疗乙型肝炎及与逆转录病毒感染有关疾病的药物组合 物， 其包括作为活性成份的权利要求 1 的二 -咖啡酰奎宁酸衍生物或权利 要求 2所要求的咖啡酰奎宁酸衍生物， 及药用赋形剂或载体。
4. 根据权利要求 1 的用途，其中二 -咖啡酕奎宁酸衍生物为下式的 1， 5 -二 - O -咖啡酖奎宁酸。
Figure imgf000031_0002
5. 权利要求 3的药物组合物，其中作为活性成份的权利要求 1 的二 咖 啡跣奎宁酸衍生物是下式的 1， 5 -二 - （） -咖啡跣奎宁酸。
Figure imgf000032_0001
6. 权利要求 2的咖啡跣奎宁酸衍生物在治疗乙型肝炎及与逆转录病毒 有关疾病中的用途。
7. 权利要求 3的药物组合物， 其中所述药物纽合物可被配成片剂， 胶 嚢， 注射液或其它适宜剂型。
8. 权利要求 6的用途， 其中所述逆转录病毒是 HIV 。
9. 治疗乙型肝炎及与逆转录病毒感染有关疾病的方法，其包括将治疗冇 效量的权利要求 1 中的二 -咖啡銑奎宁酸衍生物或权利要求 2的咖啡酰奎 宁酸衍生物或权利要求 3的药物组合物给药于需治疗的患者。
10. 权利要求 9的方法， 其中所述逆转录病毒是 HIV 。
1 1. 权利要求 9的方法， 其中所述患者是人类。
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