WO1997018829A1 - Materiaux inducteurs d'os/de cartilage en vue de leur reparation - Google Patents

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WO1997018829A1
WO1997018829A1 PCT/JP1996/003333 JP9603333W WO9718829A1 WO 1997018829 A1 WO1997018829 A1 WO 1997018829A1 JP 9603333 W JP9603333 W JP 9603333W WO 9718829 A1 WO9718829 A1 WO 9718829A1
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osteoinductive
cartilage
glycols
polyoxyethylene polyoxypropylene
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PCT/JP1996/003333
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Takesada Shimura
Satsuki Toriyama
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Hoechst Marion Roussel Ltd.
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Definitions

  • the present invention relates to a bone / osteoinductive repair material useful for treating a fracture or a bone defect. More specifically, the present invention relates to a cartilage / osteoinductive repair material containing an osteoinductive factor and polyoxyethylene glycol.
  • a method of implanting a prosthetic agent for bone and bone defect in the affected area using a combination of an osteoinductive factor and an appropriate carrier is used.
  • the affected part is exposed during the surgical operation, and the bone and bone repair material containing an osteoinductive factor can be applied directly to the affected part, so that solid forms such as easy-to-handle blocks, sponges and sheets are used. It has been widely used.
  • semi-solid forms such as gel or paste can be used. Carriers that enable these solid or semi-solid forms include metals such as stainless steel and titanium alloys, collagen and hydroxyapatite (HAP) or mixtures thereof.
  • collagen has been known as a carrier for osteoinductive factors, Good biocompatibility and bioabsorbability have been recognized (Japanese Patent Publication No. 5-42525).
  • injectable collagen which has the potential for injectable cartilage and osteogenic materials (JP-B-7-23322 and JP-B-5-53140).
  • collagen which can be used as a pharmaceutical at present, is a material derived from natural products such as rice and pigs, so its molecular weight, amino acid composition, water retention, etc. are not constant. Furthermore, they have side effects such as antigenicity caused by being a heterogeneous protein for humans.
  • biodegradable polymers such as polylactic acid and polylactic acid-glycolic acid copolymer as pharmaceutical carriers
  • these biodegradable bolimers are in a solid or semi-solid form and belong to a group of materials applied during surgical operations in that they maintain a constant form.
  • an organic solvent had to be used in the manufacturing process, and the osteoinductive factor, an active ingredient, was inactivated. It is easily anticipated that this will be a problem.
  • An object of the present invention is to overcome the disadvantages or disadvantages of the conventional method as described above, to have a high bioabsorbability, a good affinity for an osteoinductive factor as an active ingredient, and to cause a reversible sol-gel change with temperature. Accordingly, it is an object of the present invention to provide a material for repairing cartilage and osteoinductive with less side effects such as antigenicity by maintaining the pharmacologic effect of osteoinductive factors.
  • the present inventors have proposed a method for repairing bone that does not require surgery.
  • the present inventors mixed osteoinductive factors with an aqueous solution of polyoxetylene polyoxyquine propylene glycol, and at the time of administration, it was an injectable liquid at 1 ° C to 30 ° C and 37 ° C within 3 minutes after administration.
  • An osteogenic material that gels around C was prepared, and an osteoinductive factor was retained at the administration site after administration in the thigh muscle of the mouse, where it was found that it had the ability to form heterozygous bone and stomach.
  • the present invention has been completed.
  • the present invention relates to a bone / osteoinductive repair material comprising a polyokine ethylene polyokine propylene glycol and an osteoinductive factor.
  • Polyoxyethylene polyoxypropylene glycols are a general term for high molecular weight nonionic surfactants with low hydrophilic polypropylene glycol as hydrophobic groups and ethylene oxide as hydrophilic groups. By changing the molecular weight of the polymer and the mixing ratio with ethylene oxide, it becomes possible to construct a surfactant having various properties.
  • composition of polyoxyquine ethylene boroxy propylene glycols that can be synthesized is in the range of 900 to 4000 molecular weight force of polypropylene glycol, and the weight percentage of ethylene oxide in the total molecule is 5% to 90%.
  • Asahi Denka's polyoxyethylene polyoxypropylene glycols (Adeiki ®) are systematically named according to the molecular weight of polypropylene glycol and the weight ratio of added ethylene oxide. Is shown in FIG.
  • polyoxetylene polyoxypropylene glycols include the use as general detergents and defoamers, as well as in the field of pharmaceuticals such as laxatives, ointment bases, artificial blood, It is used as a coating on tablets, pills, solubilizers and dissolution accelerators for injections.
  • Pluronic F-68 Polypropylene glycol molecular weight: 1750, ethylene oxide content: 80%
  • Exocopol (3) by Green Cross as an additive for extracorporeal circulation of blood. I have.
  • polyquineethylenepolyoxypropylene glycols exhibit a reversible sol-gel phase change, which is superior to the irreversible phase transition at a temperature change of collagen.
  • This property is achieved by selecting the optimum polyquineethylenepolyoxypropylene glycols and changing the concentration of the aqueous solution of the polyoxyethylenepolyoxypropylene glycols to achieve the phase change temperature. It can be controlled (Int. J. Pharm. 22. 207-218, 1984, EP 0551626A1).
  • polyoxyethylene boropropyl propylene glycols have excellent qualities as pharmaceutical carriers and can be used in combination with low molecular weight drugs such as local anesthetics and anticancer drugs (Int. J. Pharm. 8, 89-99, 1981 and Chem. Pharm. Bull. 32, 4205-4208, 1984), and attempts have been made to mix high molecular weight bioactive proteins such as interleukin ( Pharm. Res. 9, 425-434, 1992).
  • the present invention relates to a bone / osteoinductive repair material containing polyoxyethylene / ethylene / polypropylene glycols and an osteoinductive factor, and relates to polypropylene glycol as a component of polyoxyethylenepolyoxypropylene glycols.
  • the present invention relates to a bone / osteoinductive repair material having a molecular weight in the range of about ⁇ 00 to 4,000 and an ethylenoxide content in the range of about 40 to 80%.
  • a pluronic that can make a reversible sol-gel change with temperature which is a characteristic of the pluronic of the present invention, is obtained.
  • the reversible change temperature of polyoxyethylene-polypropylene glycols generally varies depending on the concentration of the aqueous solution prepared, and the like. In the case of glycols, gelation occurs in the range of about 10 to 90% of the aqueous solution concentration around the body temperature, that is, around 37 ° C.
  • the most suitable example is a poly (propylene glycol) having a molecular weight of 3850 and an ethylene oxide content of 70%.
  • Bone morphogenetic protein is a protein that has the activity of inducing undifferentiated mesenchymal cells into chondrocytes and forming bone tissue.
  • the osteoinductive factors used in the present invention include a series of proteins such as MP-2 to BMP-9 belonging to the TGF-3 / 3 super family, proteins called MP52, and GDF-5.
  • the power of proteins to be produced is not limited to these.
  • BMP-2 a protein produced using Chinese hamsterovary (CH0) cells by genetic recombination technology reported by Wang et al. (Pro atl. Acad. Sci. USA, 87, 2220-2224, 1990 and US4877864) Issue) and MP 52 A novel protein MP52 (Japanese Patent Application No.
  • This novel protein is a plasmid containing a DNA sequence obtained by adding a codon coding for methionine to the N-terminal of a DNA sequence encoding an amino acid sequence described in SEQ ID NO: 1 derived from MP52. Transforming the plasmid into Escherichia coli, solubilizing the inclusion body obtained by culturing the Escherichia coli, regenerating the monomeric protein obtained by purification into a dimer, It is obtained by purifying it.
  • Aqueous solution of 15-30% polyoxyethylene boroxypropylene glycols containing BMP-2 and 1 ⁇ ? 52 as active ingredients is injected into the thigh muscle of mice, and MP 52 is maintained at the administration site after administration Then, it was observed that it had ectopic cartilage and bone formation ability.
  • the present invention further relates to a bone and bone repair agent comprising an osteoinductive factor and a polyoxoxethylene boroxypropylene glycol.
  • the present invention provides a bone / bone repair treatment comprising applying a bone / bone repair agent containing an osteoinductive factor and a polyoxyethylenepolyoxypropylene glycol to a human or animal fracture or bone defect site.
  • a bone / bone repair treatment comprising applying a bone / bone repair agent containing an osteoinductive factor and a polyoxyethylenepolyoxypropylene glycol to a human or animal fracture or bone defect site.
  • FIG. 1 is a classification diagram of Aderik® pull mouth nicks.
  • the horizontal axis represents the content of ethylene oxide in the total molecules of the polyoxyethylenepolyoxypropylene glycols by weight%, and the vertical axis represents the molecular weight of the polypropylene glycol as a component of the polyoxyethylenepolyoxypropylene glycols.
  • FIG. 2 is a soft X-ray photograph of bone / cartilage calcified tissue of the right hind thigh of the mouse obtained in Example 4. (A) was taken only two weeks after administration of ADEKA® Pluronic F-127 alone and (1?) Was taken of ADEKA Pluronic F-127 containing ⁇ 1 ⁇ 52. The part that looks black in the muscle is the ectopically formed bone matrix.
  • FIG. 3 is a tissue staining micrograph of a non-decalcified section of the right hind leg of the mouse obtained in Example 4; Von-Kossa staining (a) Smell of ',', 'ma' 'lin', 'non', ii e in a a X y 1 ⁇ -0 s 1 n In (b), formation of bone matrix with osteoblasts and formation of bone marrow are confirmed.
  • FIG. 4 is a plasmid map of the expression vector (PK0T245) for protein MP52 obtained in Reference Example 1 (2).
  • Example 1 Method for Preparing Cartilage and Bone Inducible Repair Material Containing BMP-2
  • Aderik® Pull Mouth Nick F-127 (Asahi Denka Kogyo) is known as one of the least toxic of polyoxyethylene propylene glycols (Pharmaceutical Factory 6, 875-880, 1986). 3.0 g of this Adekki® pull mouth nick F-127 was dissolved in 7.0 g of distilled water for injection under ice cooling to prepare a 30% Adeiki® pull mouth nick F-127 aqueous solution. Add ADERIC® pull mouth nick F-127 aqueous solution under ice-cooling to a 96-well plate at 360 / well, add 40 ml of 0.01N HC1 containing 80yc g BMP-2 to each well, and mix.
  • the solution was sterilized by passing through a 0.22 // m filter at 4 ° C to obtain a total of about 400 mg of BMP-2 injection (the final concentration of Adeky ®® pull mouth nick F-127 was 27%).
  • BMP-2 injections having final concentrations of ADEKA 3 pull mouth nick F-127 of 10, 15, 18 and 22.5% were prepared.
  • MP52 Similar to the method for preparing a material for cartilage and osteoinductive repair using BMP-2 in Example 1, MP52 with a final strength of ADERIKI® Pull Mouth Nick F-127 of 10, 15, 18, 22.5 and 27% As a result of preparing an injection, using MP52, the same injection as BMP-2, that is, Adeiki® Pull Mouth F-127 at a final concentration of 27%, 5 ° C or less, Adeiki® Pluronic F-127 final Injectable preparations were obtained at a concentration of 22.5% and below 10 ° C, and Adeka3Pull mouth nick F-127 at a final concentration of 10% to 18% and below 25 ° C.
  • mice ICR type, 8 weeks old intramuscularly in the right hind thigh of 18 was prepared in the same manner by adding 1 25 I-labeled MP52 in the formulation of Example 2, 22.5 and 27% Adeka 3 Pluronic F- 127 final concentration of '25 I labeled M P52 injections to 100 administered 23G needle (about 37KBq 1 25 I - MP52 / site), right hind or these radioactive loss passed 0.5, 2 and After 8 hours, the residual ratio was observed. As a control, 1 25 I - with injection ⁇ of M P52 solution. Table 2 shows the results. Table 2 Residual rate of 125 I-MP52 in the right hind paw after administration of Aderick® Buluronic F-127 formulation (final concentration 18% Aderick® pull mouth nick F—127) or aqueous solution
  • Fig. 3 shows a micrograph of tissue staining of the mouse on the right end of the five mice shown in Fig. 2-b.
  • the phone (von-Kossa) staining (Fig. 3-a) shows calcium deposits in the shaded area.
  • Hematoxylin-Eos in staining (Fig. 3-b) shows osteoblasts, Bone matrix and bone marrow were observed, and bone formation was confirmed. No inflammatory response was observed.
  • BM, OB and MA in the figure indicate bone matrix, osteoblast and bone marrow, respectively.
  • the human MP52 cDNA was amplified using the plasmid vector containing cDNA (pSK52s) described in WO 93/16099 as type III DNA, and only the mature part was subjected to polymerase chain reaction (PCR).
  • substitution was performed by PCR using the forward PCR primer of SEQ ID NO: 2.
  • SEQ ID NO: 2 was used as a forward primer
  • DNA described in SEQ ID NO: 3 was used as a reverse primer.
  • PCR was performed in the same test tube in the same test tube, type I DNA (10 nanograms), forward and reverse PCR primers 50 picomoles each, dNTP (0.2 millimoles), And M g C 1 2 (1.5 mi Rimoru) was carried out by obtaining pressurized with Taq DNA poly main hydrolase (5 U).
  • the product from the PCR reaction was separated by electrophoresis in 1.5% low-melting point agarose (FMC), and from approximately 360 bp corresponding to the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 ('No. Z z ⁇ , ⁇ this so no o
  • the replication origin was changed from pBR to pUC.
  • E. coli expression vector pKK223 _ 3 purchased from off Al Macia Biotech Co., Ltd.
  • restriction enzyme Ssp l and EcoR I in Mun g Bean Nuclease (Takara Shuzo Co., Ltd. Catalog No. 2420A)
  • the fragment was ligated to the start codon side of fragment 1 with 4 DNA Ligase (Takara Shuzo Co., Ltd., catalog number 2011A), and the rrnBTJz yuichiminator region of ⁇ 23-13 was digested with restriction enzymes Sal I and Ssp I.
  • pKOT245 An expression vector for production of this protein (pKOT245) (Fig. 4) was constructed by binding to the termination codon side of fragment 1 digested with Sal I and incorporating it into the Sma I site of pUC18.
  • This vector was created by the Ministry of International Trade and Industry, National Institute of Advanced Industrial Science and Technology (NIBH) (referred to as 1-3-1 Tsukuba East, Ibaraki Pref., Japan) under accession number FERM P-895 on April 14, 1995. And transferred to a deposit based on the Budapest Treaty on April 10, 1996.
  • NIBH National Institute of Advanced Industrial Science and Technology
  • FERM BP-5499 pKOT245 has a DNA length of 3.7 kb. Yuichi Baek determined its nucleotide sequence using Pharmacia ALF DNA Sequencer.
  • Escherichia coli expressing this protein was transformed into a modified S0C medium (Bacto tryptone 20g / ⁇ ,
  • ⁇ ⁇ D 550 reached 150.
  • the temperature was controlled at 32 ° C and the pH was controlled to 7.15 by adding ammonia, and the stirring speed was used to prevent the dissolved oxygen concentration from decreasing.
  • the dissolved oxygen concentration was controlled to 50% of the air saturation by using the above method, and a 50% glucose solution was added at a concentration of 0.2% with a sharp increase in the dissolved oxygen concentration as an index to obtain a high bacterial concentration. Cultured.
  • the culture solution obtained by the above method is centrifuged to collect the cells, and a 25 mM Tris-llCl buffer containing ⁇ ethylenediaminetetraacetic acid is suspended in (pH 7.3), and a cell disrupter (manufactured by Gorin Co., Ltd.) The bacteria were disrupted using) and centrifuged again to collect the precipitate containing the inclusion body.
  • the lysate was centrifuged at 20000 ⁇ g for 30 minutes at 4 ° C., and the supernatant was recovered. ⁇ ⁇ /; ⁇ 3 ⁇ 4 1 i.is ⁇ ⁇ ⁇ 1 extracted 3 ⁇ 4r Kin ⁇ . ⁇ , o Mw system, SP-Separated with 1 mM EDTA, Sepharose FF (Pharmacia), washed with the same solution Thereafter, the eluate was eluted with the same solution containing 0.5 M salt. Final concentrations of Na 2 S0 3 and Na 2 S 4 0 6 in eluate LllraM, Te 4 added to a 13 mM, was carried out 15 hours sulfonation.
  • the sulfonated solution was subjected to gel filtration using Sephacryl S-200 HR (Pharmacia) equilibrated with 20 mM Tris-HC1 buffer, pH 8.3, 6 M urea, 0.2 M salt, and lmM EDTA to obtain a single sulfonated book. An evening monomer was obtained.
  • the refolded sample was diluted 2-fold with pure water, and the pH was adjusted to about 7.4 by adding 6 N hydrochloric acid to perform isoelectric point precipitation.
  • the precipitate was collected by centrifugation at 3000 ⁇ g for 20 minutes, and then dissolved in 30% acetate and 0.1% TFA.
  • the solution was diluted 2-fold with pure water and passed through a RESOURCE RPC column (Pharmacia) for reversed-phase HPLC, which had been equilibrated with 0.05% TFA and 25% acetonitrile. It was eluted with an acetonitrile gradient.
  • the eluate is Monitoring was performed using an absorbance photometer at an absorbance of 280 ⁇ to obtain a purified protein dimer fraction of the present invention. This was freeze-dried with a speed back concentrator (Servant).
  • the ⁇ -terminal amino acid sequence was analyzed using an amino acid sequencer, model 476 ⁇ (Applied Biosystems, Inc.). The amino acid sequence from the terminal to the 30th was confirmed.
  • the amino acid composition of the purified present protein obtained above was examined using an amino acid analyzer [PIC0 TAG system (Waters)]. The results are shown in Table 3. The numbers shown in the table indicate the number of amino acid residues per monomer.
  • this protein is a protein consisting of 119 residues whose N-terminus solely starts with Pro.
  • the bone / osteoinductive repair ffi material of the present invention has a high bioabsorbability, a good affinity for the osteoinductive factor as an active ingredient, and a sol-gel depending on temperature in a fracture treatment method that does not require surgical operation. Since the reversible change occurs, the operation is simple and can be applied to the affected area without causing pain to the patient due to surgical operation. According to the present invention, it is possible to provide a bone / osteoinductive repair material that maintains the efficacy of the osteoinductive factor and has less side effects.
  • Fragment type N-terminal fragment
  • Organism name Hoku (homo sapiens)
  • Tissue Type Human Fetus
  • Sequence type nucleic acid
  • Sequence type nucleic acid

Description

明 細 書
軟骨 · 骨誘導性修復用 材料
技 術 分 野
本発明は骨折あるいは骨欠損の治療に有用な软骨 ·骨誘導性修復用材 料に関する。 さらに詳しくは、 本発明は骨誘導因子とポリオキシェチレ ンボリ才キシプロピレングリコール類を含む軟骨 ·骨誘導性修復用材料 に関する。
: ^ 技
軟骨 ·骨の修復方法として、 患者自身の自家骨移植以外に骨誘導因子 と適当な担体との組み合わせによる钦骨 ·骨欠損部の補てつ剤を患部に 埋め込む方法が行われている。 この場合、 外科的手術時に患部を露出し 骨誘導因子を含む钦骨 ·骨修復用材料を直接患部に適用する事が可能で あるため、 取り扱い易いプロック、 スポンジおよびシ一 卜等の固体形態 が広く用いられてきた。 また、 ゲルあるいはペース ト等の半固体形態も 使用できる。 これらの固体または半固体形態を可能にする担体としては- 例えばステンレスおよびチタン合金等の金属やコラーゲンおよびハイ ド 口キシァパタイ 卜 (HAP ) またはそれらの混合剤等が利用されている。 一方、 外科的手術を必要としない骨折や変形関節症などの治療に骨誘 導因子を投与する試みがなされている。 この投与形態は、 非侵襲性投与 すなわち注入形態が患者の苦痛を軽減する点で切望されている。 しかし ながら骨誘導因子の単なる水性液剤をこの形態で投与すると、 投与後の 薬物の拡散消失が起こるため骨誘導因子を効率よく投与するためには適 応患部へ一定期間骨誘導因子を滞留させる必要がある。 そこで、 投与時 には通針性を有する液状であって投与後にゲル状に相変化し患部に骨誘 導因子を滞留させ得る担体が考えられている。 この担体としては毒性が 無く、 生体との適合性が良く、 生体吸収性が高いものが好ま しい。
これまでに、 骨誘導因子の担体としてはコラーゲンが知られており、 良好な生体適合性及び生体吸収性が認められている (特公平 5— 75425 号)。 さらに注射可能なコラーゲンとの組み合わせについても知られて おり、 注入可能な軟骨 · 骨形成材の可能性を有している (特公平 7 — 23322号及び特公平 5— 53 1 4 0号) 。 しかしながら、 現在医薬品として 利用可能なコラーゲンはその起源がゥシあるいはブタなどの天然物由来 の材料であるために、 その分子量、 アミノ酸組成量、 保水量等が一定し ない。 さらに、 これらはヒ トにとつて異種の蛋白質であることに起因す る抗原性等の副作用を有する。 特に抗原性については、 コラ一 ンのテ 口べプチ ド部位を排除したァテロコラーゲンを使用しても完全に無くす ことは出来ない ( J . Amer i can Academy o f Derma to l ogy 10, 638- 646 and 647-651, 1984及び J . American Academy of Dermatol ogy 21 , 1203 - 1208, 1989)。
一方、 ポリ乳酸やポリ乳酸グリ コール酸共重合体等の生体分解性ポリ マーを医薬用担体として用いることは知られている (US 5385887号及び 特公平 6— 22570号)。 しかし、 これら生体分解性ボリマーの形状は固体 形態または半固体形態であり、 一定形態を保持する点で外科的手術時に 適用する材料群に属する。 仮に、 この様な生分解性ポリマーを用いて注 射可能な複合体を作製できたとしても、 その製造工程において有機溶剤 を使用せざるをえず、 有効成分である骨誘導因子の失活か問題となるこ とが容易に予測される。
発明の開示
本発明の目的は上に示したように従来法の不利点ないしは欠点を克服 し、 生体吸収性が高く、 有効成分である骨誘導因子との親和性が良く、 温度によってゾルーゲル可逆変化を起こすことにより骨誘導因子の薬効 を持続させ、 さらには抗原性等の副作用の少ない軟骨 ·骨誘導性修復用 材料を提供することにある。
本発明者らは外科的手術を必要としない骨修復方法において、 有効成 分となる骨誘導因子とその担体との関係について鋭意検討していたとこ ろ、 ある種のポリオキシエチレンポリオキンプロピレングリコール類に- 生体吸収性が高く骨誘導因子との親和性が良く温度によってゾルーゲル 可逆変化を起こすものがあることを見い出した。 本発明者らは、 ポリオ キシェチレンポリオキンプロピレングリコール類水性溶液に骨誘導因子 を混合し、 投与時 1 °Cから 30°Cにおいては注入可能な液体であり投与後 3分以内に 37°C付近でゲル化する骨形成材を作製し、 マウス大腿部筋肉 内に投与後投与 位に骨誘導因子を保持させ、 こで異^性钦骨 · 胃形 成能があることを見い出し、 本発明を完成した。
本発明は、 ポリオキンエチレンポリオキンプロピレングリコール類と 骨誘導因子とを含む钦骨 ·骨誘導性修復用材料に関するものである。 ポリオキシエチレンポリオキシプロピレングリ コール類とは、 親水性 の低いポリプロピレングリコールを疎水基としェチレンォキサイ ドを親 水基として付加した高分子型の非イオン性界面活性剤の総称であり、 ボ リプロピレングリコールの分子量及びエチレンォキサイ ドとの混合比を 変化させることにより種々の特性を有する界面活性剤を構成することが 可能となる。 合成可能なポリオキンエチレンボリォキシプロピレングリ コール類の組成は、 ポリプロピレングリ コールの分子量力 900から 4000 の範囲にあり、 総分子中のエチレンォキサイ ドの重量%が 5 %から 90 % である。 例えば、 旭電化社製のポリオキシエチレンポリオキシプロピレ ングリ コール類 (アデ力 ® ) は、 ポリプロピレングリコ一ルの分子量と 付加するェチレンォキサイ ドの重量比により系統的に命名されており、 その分類図を図 1に示す。
ポリォキシェチレンポリォキシプロピレングリ コール類の産業上の利 用としては、 一般洗浄剤 '消泡剤としての使用の他、 医薬品の分野にお いて钦下剤、 軟膏基材、 人工血液、 錠剤の被膜、 陚形剤、 注射剤の可溶 化剤および溶解促進剤などに使用されている。 特にプルロニック F - 68 (ポリプロ ピレングリ コールの分子量 1 750、 ェチレンォキサイ ド含量が 80% ) の溶血防止作用は顕著であることより、 血液の体外循環用添加剤 として(株)ミ ドリ十字からェキソコポール③ と して市販されている。 各 種動物における毒性試験結果から、 ポリオキンエチレンポリオキンプロ ピレングリ コール類は毒性及び刺激性が極めて低いことが明らかであり. 抗原性等の副作用を示すとの報告もない (フ レグラ ンスジャーナル 7 . 82 - 87, 1974)。 毒性試験の結果を表 1 に示す。 表 1
アデ力 ®プル口ニックの急性毒性試験結果
アデカ③プル口ニック —動 — 物 _種 — U 5。 (gZkg)
L-44, L-62, L-64 ラッ 卜 5
F - 68 マウス > 1 5
F-68 ラッ 卜、 ゥサギ、 ィヌ 急性毒性反応なし
P-85 ラッ 卜 3 4. 6
—方、 取り扱い上において、 ポリオキンエチレンポリオキシプロピレ ングリ コール類は可逆的なゾル—ゲル相変化を示す点においてコラーゲ ンの温度変化における非可逆的相転移よ り も優れる。 この性質は、 相変 化を示す温度を至適なポリォキンエチレンポリォキシプロ ピレンダリ コ ール類の選択及びそのポリオキシエチレンポリオキシプロ ピレングリ コ ール類の水溶液の濃度を変えることにより制御可能である(In t. J . Pha rm. 22. 207-218, 1984, EP 0551626A 1号)。
以上のことから、 ポリオキシエチレンボリォキシプロ ピレングリ コー ル類は医薬用担体と しての資質に優れており、 局所麻酔剤 · 抗癌剤等の 低分子量の薬物と組み合わせたり (Int . J . Pharm. 8, 89-99, 1981 及 び Chem . Pharm. Bu l l . 32, 4205 -4208, 1984 )、 イ ンタ一ロイキン等 の高分子量の生理活性タ ンパク質を混合する試みが既になされている (Pharm. Res. 9, 425-434, 1992) 。 本発明は、 ポリオキンエチレンポリオキンプロピレングリ コ ール類と 骨誘導因子とを含む钦骨 ·骨誘導性修復用材料に関し、 ポリオキシェチ レンポリオキシプロピレングリコ一ル類の構成成分のポリプロピレング リコールの分子量が約^ 00〜4000の範囲にあり、 ェチレンォキシ ド含量 が約 40〜80%ノ分子の範囲にある软骨 ·骨誘導性修復用材料に関する。 この構成成分の範囲内であれば、 本発明のプルロニックの特性である温 度によるゾルーゲル可逆変化を成し得るプルロニックになる。
e りに、 小? e "、 ノ K r 欣 ン; i ,¾s の つ 、 丄 [: 丁、リ キ ン丄 チレンポリオキシプロピレングリコール類の対水溶液濃度が約 10〜50% からなる軟骨 ·骨誘導性修復用材料に関する。 ポリオキシエチレンポリ ォキシプロピレングリ コール類は、 一般的に水溶液の調製濃度等により その可逆変化温度が変動することも知られており、 上記構成成分の範囲 にあるポリオキシエチレンポリオキシプロピレングリコール類では体温 付近すなわち 37°C近辺では対水溶液濃度約 10~90%の範囲でゲル化が起 こる。 最適な例としてはポリプロピレングリコールの分子量 3850、 ェチ レンォキサイ ド含量が 70%であるポリォキシェチレンポリォキシプロピ レングリ コール類 (プル口ニック F— 127) を対水溶液濃度 15〜30%で 調製する。
骨誘導因子(Bone morphogenetic protein : BMP)とは、 未分化間葉系 細胞を軟骨細胞へ誘導し、 骨組織を形成する活性をもつ蛋白質である。 本発明で用いられる骨誘導因子の例としては、 TGF— /3ジー ンスーパ ーフア ミ リーに属する MP— 2から BMP— 9等の一連のタンパク質、 M P 52と称されるタンパク質、 GDF— 5と称されるタンパク質などがあげら れる力 これらに限定されるものではない。 BMP— 2としては、 Wangら が報告した遺伝子組み替え技術により Chinese hamsterovary (CH0) 細 胞を用いて生産したタンパク質 BMP— 2 (Pro atl. Acad. Sci. USA, 87, 2220 - 2224, 1990および US4877864号) および M P 52としては本発 明者らが提案した遺伝子組み換え技術により製造される新規なタンパク 質 M P 52 (特願平 7— 93644号)が特に好適である。 この新規なタンパク 質は、 M P 52由来の配列表配列番号 1記載のァミ ノ酸配列をコー ドする D N A配列の N末端にメチォニンをコ一 ドするコ ドンを付加した D N A を含有するプラスミ ドを構築し、 そのプラスミ ドを大腸菌に形質転換し- その大腸菌を培養することによって得られるイ ンクルージョ ンボディを 可溶化し、 精製することによって得られる単量体のタンパク質を二量体 に再生し、 これを精製することによって得られる。
BMP - 2および 1^ ? 52を有効成分とする1 5 ~ 30 %ポリオキシエチレン ボリォキシプロピレングリコール類の水性溶液をマウス大腿部筋肉内に 注射し、 投与後投与部位に M P 52を保持させ、 そこで異所性軟骨 ·骨形 成能があることを観察した。
このように、 ポリオキシエチレンポリオキシプロピレングリコール類 と骨誘導因子との組み合わせからなる軟骨 ·骨誘導性修復用注入材料は 今まで報告されておらず、 钦骨 ·骨修復、 特に骨折治療剤として有効で ある。
本発明はさらに、 骨誘導因子とポリォキシェチレンボリォキシプロピ レングリ コール類を含む钦骨 ·骨修復剤に関する。
さらに本発明は、 骨誘導因子とポリォキシエチレンポリオキシプロピ レングリ コール類を含む钦骨 ·骨修復剤をヒ トまたは動物の骨折または 骨欠損部位に適用することからなる钦骨 ·骨修復治療方法に関する。 図面の簡単な説明
図 1は、 アデ力 ®プル口ニックの分類図である。 横軸はポリオキシェ チレンポリオキシプロピレングリコール類の総分子中のエチレンォキサ ィ ドの含量を重量%で表し、 縦軸はポリオキシエチレンポリオキシプロ ピレングリ コール類の構成成分のポリプロピレングリ コールの分子量を 表す。 図 2は、 実施例 4で得られたマウスの右後足大腿部の骨 ·軟骨石灰化 組織の軟 X線写真である。 ( a )はアデ力 ®プル口ニック F— 127のみ、 (1?)は^1?52含有ァデカ プルロニック F—127をそれぞれ投与後 2週 間に撮影した。 筋肉内に黒く見える部分が異所性に形成された骨マ 卜リ ックスである。
図 3は、 実施例 4で得られたマウスの右後足大腿部の非脱灰切片の組 織染色顕微鏡写真である。 フォ ンコッサ (von- Kossa) 染色(a)におい ノ か'、 '、マ 十 ン' リ ン '' 一 ' —ノ ン 、 ii e in aし ΰ X y 1ュ π - 0 s 1 nノ 染色(b)において骨芽細胞をともなった骨基質の形成および骨髄の形成 が確認される。
図 4は、 参考例 1 ( 2 )で得られたタンパク質 MP52の発現ベクター (PK0T245) のプラスミ ドマップである。
発明を実施するための最良の形態
以下に、 実施例および参考例を示して本発明の効果を具体的に説明す る。 なお、 本発明はこれらの実施例により限定されるものではない。 実施例 1 BMP - 2を含有する軟骨 ·骨誘導性修復用材料の調製法
アデ力 ®プル口ニック F— 127 (旭電化工業) は、 ポリオキシェチレ ンポリオキンプロピレングリ コール類種の中で最も毒性が少ないもの の一つとして知られている (製薬工場 6, 875-880, 1986)。 このアデ 力 ®プル口ニック F— 127 3.0 gを注射用蒸留水 7.0 gに氷冷下溶解し、 30%アデ力 ®プル口ニック F—127水溶液を調製した。 氷冷下アデ力 ® プル口ニック F— 127水溶液を 96—ウェルタィタープレー 卜に 360 / ゥエルで分注し、 80yc g BMP— 2を含む 0.01N HC1 40〃 を各ゥエル に加え混和後、 4 °Cで 0.22//mのフィルターを透過させて滅菌し、 全量 約 400〃 の BMP— 2注射剤とした (アデ力 ®プル口ニック F— 127の最終 濃度は 27%)。 同様にアデカ③プル口ニック F—127の最終濃度が 10、 15、 18及び 22.5%の BMP— 2注射剤も作製した。 その結果、 アデカ③プルロニック F— 127最終濃度 27%では 5 °C以下、 アデカ③プル口ニック F—127最終濃度 22.5%では 10°C以下、 アデカ③ プルロニック F— 127最終濃度 10%から 18%では 25°C以下で注入可能で あり、 37°Cにおいてゲル状に相変化したアデ力 ®プルロニック F— 127 注射剤は、 最終濃度が 15%以上の製剤であった。 従って、 室温で液状で あり 37°Cでゲル状を示したアデカ③プルロニック F— 127最終濃度 18% の製剤が最適である。
芙施 ' 2 M P52を含有する钦骨 ' 骨誘導性 復用材料の ¾製法
実施例 1の BMP— 2を用いた軟骨 ·骨誘導性修復用材料の調製方法と 同様にアデ力 ®プル口ニック F— 127の最終濃度が 10、 15、 18、 22.5お よび 27%の MP52注射剤を作製した結果、 MP52を用いても BMP— 2の 場合と同様な注射剤つまりアデ力 ®プル口ニック F— 127最終濃度 27% では 5 °C以下、 アデ力 ®プルロニック F— 127最終濃度 22.5%では 10°C 以下、 アデカ③プル口ニック F— 127最終濃度 10%から 18%では 25°C以 下で注入可能な製剤が得られた。
実施例 3 イ ン ' ビボ (in vivo) における軟骨 ·骨誘導性修復用材料 投与後の M P 52の残存性
麻酔下雄性マウス (ICR系、 8週令) の右後足大腿部の筋肉内に、 実施例 2の処方に1 25 I標識 MP52を添加して同様に作製した 18、 22.5 及び 27%アデカ③プルロニック F— 127最終濃度の'25 I標識 M P52注射 剤を 23G針で 100 投与し (約 37KBq 1 25 I — MP52/部位)、 右後足か らの放射能消失経過を 0.5、 2及び 8時間後のその残存率を観察した。 対照として、 1 25 I — M P52水溶液の注射剂を用いた。 結果を表 2に示 す。 表 2 アデ力 ®ブルロニック F— 127製剤 (最終濃度 18 % アデ力 ®プル口ニック F— 127) または水溶液剤を投 与後の右後足における125 I—MP 52の残存率
時 間 (hr) ブル口ニック製剤 水 溶 液 剤
0.5 60.5% 32.7%
2 19.7% 13.8%
8 14.9% 7.9% 表 2から、 ポリオキシエチレンポリオキシプロピレングリコ一ル類を 医薬用担体として用いた場合、 残存する MP52は単に MP52水溶液を注 入した場合に比較して明らかに薬物を保持することが示された。 また実 施例 1の注射剤についても同様の結果が得られた。
実施例 4 異所性钦骨 ·骨形成能による薬効試験
麻酔下雄性マウス (ICR系、 8週令) の右後足大腿部の筋肉内に、 実 施例 2で作製した 18%アデ力 ®プル口ニック F— 127最終濃度の MP 52 注射剤を 23G針で 100/ 投与した (20 g MP52Z部位)。 この時対照と しては、 M P 52を含有しないアデ力 ®プル口ニック F— 127の注射剤を 用いた。 软骨 ·骨形成の判断は、 投与 2週間後に行った。 マウスを頸椎 脱臼により屠殺後、 投与部位である右後足を切り出し钦 X線照射器によ り撮像を得、 投与部位における骨形成の有無を確認した。 結果を図 2に 示す(n = 5)。 軟 X線撮像の結果、 アデ力 ®プル口ニック F— 127のみ (図 2— a )では投与部位である筋肉内に影は認められなかったが、 MP 52を含有するアデ力 ®プル口ニック F— 127 (図 2— b) では試験した 動物の 80%以上に明らかな影が確認された。
さらに、 Ϊ欠 X線撮影終了後、 検体を 10%ホルマリ ン内で保存し、 組織 学的検査を実施した。 図 2— bに示した 5匹のマウスのうち右端のマウ スの組織染色の顕微鏡写真を図 3に示す。 図 3においてフ ォ ンコッサ (von-Kossa) 染色 (図 3— a ) により影の部分にカルシウムの沈着が観 察され、 へマトキシリ ン一ェォシン (Hematoxylin- Eos in) 染色 (図 3 一 b) の結果から骨芽細胞、 骨基質および骨髄が認められ骨の形成が確 認された。 また炎症反応は観察されなかった。 図中の BM、 OBおよび MAはそれぞれ骨基質、 骨芽細胞および骨髄を示す。
実施例 1で作製した 18%アデカ③プルロニック F— 127最終濃度の BMP ― 2注射剤についての同様の試験を実施したところ、 同様の結果が得ら れた。
以上の結果からポリォキシェチレンポリォキシプロピレングリコール 類を骨形成因子の担体として使用する場合の安全性、 有用性が確認され た。
参考例 新規なタンパク質 MP 52の調製
1. ベクターの作製
( 1 ) 変異型 MP 52成熟型部分の単離
ヒ ト MP52cDNAは、 WO 93/16099に記載された c D N Aを含んだプラス ミ ドベクタ一 (pSK52s) を銪型 DN Aとして、 成熟型部分のみをポリメ ラーゼ連鎖反応 (PCR) を用いて増幅した。
開始コ ドン A TG周辺の AT含量を上げる事により、 目的タンパク質 の生産性を上げる方法 {M. Nobuharaらの報告 (Agric. Biol. Chem. , 52 (6), 1331〜1338, 1988)) に従い成熟型の Μ Ρ 52遺伝子の一部の D Ν A を置換した。
置換の方法は、 配列番号 2の順方向 P C Rプライマーを用い、 P CR 法で行った。 P C Rプライマーの DNA配列は、 順方向プライマーとし て配列番号 2、 及び逆方向ブライマ一として配列番号 3記載の D N Aを 用いた。
P C Rは、 同じ試験管中で、 鍩型 D NA (10ナノ グラム)、 順方向及 び逆方向 P C Rプライマー各々 50ピコモル、 d NT P (0.2ミ リモル)、 及び M g C 12 (1.5ミ リモル) を Taq DNAポリ メ ラーゼ ( 5 U) と共に加 えることにより行った。
各サイ クルが、 変性 (94° (:、 1分間)、 プライマ一アニーリ ング (55 、 1分間)、 およびプライマー伸長 (72°C 2分間) からなる 30サイ クルの P C Rを行った (以下の PCRはすべてこの条件で行った)。
P CR反応からの生成物を 1.5%低融点ァガロース (FMC社) 中で電気 泳動により分離し、 配列番号 1のァ ミ ノ酸配列に相当する約 360bpから ,よ ( 'ノ mレ / 41¾ ソ ン z ι、 丄 こ s oノ o
(2) 本タンパク質の大腸菌発現べクタ一の構築
プラス ミ ドの複製数を上げるためには、 複製ォリ ジンを p B R系から p U C系に改変した。 市販の大腸菌発現ベクター pKK223 _ 3 (フ アル マシア · バイオテク株式会社より購入) の t a cプロモーター領域を制 限酵素 Ssp l と EcoR Iで消化後、 Mung Bean Nuclease (宝酒造株式会社. カタログ番号 2420A)で処理し、 フラグメ ン ト 1の開始コ ドン側に丁 4DNA Ligase (宝酒造株式会社, カタログ番号 2011A) で結合させ、 ρΚΠ23 一 3の rrnBTJz夕一ミネーター領域を制限酵素 Sal I と Ssp Iで消化し、 Sal I で消化したフラグメ ン ト 1の終止コ ドン側に結合させ、 p UC18 の Sma I部位に組み込むことにより、 本タンパク質の生産のための発現 ベクタ一 (pKOT245) (図 4) を構築した。 このベク ターは通商産業省ェ 業技術院生命工学工業技術研究所 (NIBH) (曰本国茨城県つく ば巿東 1 丁目 1番 3号に 1995年 4月 14日付で受託番号 FERM P- 895号と して寄 託され、 1996年 4月 10日付でブダぺス ト条約に基づく寄託へ移管された (FERM BP- 5499 pKOT245の D N Aの長さは 3.7kbである。 作製した本タ ンパク質発現べク夕一は、 Pharmacia ALF DNA シークェンサ一によりそ の塩基配列の決定を行った。
(3) 形質転換
形質牵云換は、 Kushnerらの塩化ノレビジゥム法 (Genetic Engineering, p.17, Elsevier (1978)) に従った。 即ち、 pKOT245を宿主大腸菌 W3110M へ上記の手法に従い移入し、 本タンパク質生産大腸菌と した。
2. 培 養
(1) 培養
本タ ンパク質発現大腸菌を改変 S0C培地 (Bacto tryptone 20g/^,
Bacto yeast extract 5 g/£, NaCl 0. g/e, gCl2-6H20 2.03 g/ £, Glucose 3.6 ^) で前培養し、 生産用培地 (Bacto tryptone 5 g / Citric acid 4.3 /' i, Κ2!!Γ04 4. C75 g / H, ΙΙ2Ρ 04 1.275 g / aCl 0.865 g/^, FeS04-7H20 100rag/i?, CuS04-5H20 1 m ^, MnS04-nH20 0. mg/ £, CaCl2-2H20 2 mg/^, Na2B407 · 10H20 0.225mg/ £, ( H4)6 o7024 - 4H20 0. g/ ZnS04-7H20 2. 5mg ^, CoCl2-6H20 6 mg ^, MgS04 ·7Η20 2.2 g / i, Thiamine HC1 5. Glucose 3 g/ 5 に対し菌体懸濁液を 100m 添加し、 10 の培養槽で通気攪 拌しながら培養し、 対数増殖前期 (OD550 = 5.0) に達した段階で l mM の濃度でイ ソプロピル一 S— D—チォガラク ト ビラノ シ ドを添加し、 さ らに〇 D 550が 150に達するまで培養した。 培養中、 温度は 32°C、 pHは アンモニアを添加することにより 7.15に制御し、 溶存酸素濃度の低下を 防ぐために攪拌速度をあげることにより空気飽和の 50%に溶存酸素濃度 を制御した。 また、 高菌体濃度とするために溶存酸素濃度の急激な上昇 を指標と して、 50%グルコース溶液を 0.2%濃度で添加しながら培養し た。
(2 ) 大腸菌イ ンクル一ジ ョ ンボディの調製
上記方法により得られた培養液を遠心して菌体を回収し、 ΙΟπιΜェチレ ンヂァ ミ ン四酢酸を含む 25mM Tris-llCl緩衝液を (pH7.3) に懸濁し菌 体破砕装置 (ゴーリ ン社製) を用いて細菌を破碎し、 再度遠心してイ ン クルージ ョ ンボディ を含む沈殿を回収した。
3. 精 製 (1 ) 大腸菌イ ンクル一ジョ ンボディの可溶化
大腸菌ィンクルージョ ンボディを 1 % Triton X—100で 3回洗浄後、 3000 x gで 30分間、 4°Cで遠心し、 得られた沈殿を 20mM Tris— HC1緩衝 液、 pH8.3、 8M尿素、 10mM DTT、 1 mM EDTAで超音波をかけながら可溶 化した。
(2) 単量体精製
その可溶化液を 20000 X gで 30分間、 4°Cで遠心し、 その上清を回収 レた。 侍られた上 ί¾¾τ/;ΰπι¾ 1 i.is · Ηし 1抜 ¾r欣 ριΐδ. ύ、 o Mw系、 1 mM EDTAで平衡化した SP— Sepharose FF (フアルマシア社) に通し、 同溶 液で洗浄後、 0.5M食塩を含む同溶液で溶出させた。 溶出液に Na2S03と Na2S 406をそれぞれ最終濃度が lllraM、 13mMになるように加え 4て、 15 時間スルホン化を行った。 スルホン化溶液を 20mM Tris— HC1緩衝液、 pH 8.3、 6M尿素、 0.2M食塩、 lmM EDTAで平衡化した Sephacryl S-200 HR (フアルマシア社) でゲル濾過を行い、 単一なスルホン化された本夕 ンパク質単量体を得た。
(3 ) リ フ ォールデイ ング
スルホン化された本タンパク質単量体の溶液に 9倍量の 5 OmM Na- Glycine緩衝液 pH9.8、 0.2M塩化ナトリウム、 16m CHAPS. 5mM EDTAヽ 2πι GSH (還元型グルタチオン) 、 l mM GSSG (酸化型グルタチオン) を加えた後、 1日間、 4 °Cで撹拌しリフ ォールデイ ングを行った。
(4) 二量体精製
リフオールディ ングされた試料を純水で 2倍希釈し、 6 N塩酸を加え pHを約 7.4に合わせて等電点沈殿を行った。 沈殿を 3000x g 20分の遠心 で集めた後、 30%ァセ 卜二 ト リル、 0.1%TFAに溶解した。 その溶液を 純水で 2倍希釈し、 0.05%TFA、 25%ァセ トニ 卜リルで平衡化しておい た逆相 HPLCの RESOURCE RPCカラム (フアルマシア社) に通し、 0.05% TFA、 25〜45%ァセ トニ ト リルグラジ ン トにより溶出した。 溶出液は 吸光度光度計を用い 280ηπιの吸光度によりモニターし、 精製された本発 明のタンパク質二量体画分を得た。 これを、 スピー ドバックコ ンセン ト レーター (サーバント社) により凍結乾燥した。
(5) 精製された本タンパク質の物理化学的性質の測定
(ァ) Ν末端ァミ ノ酸配列分析
上記で得られた精製された本タンパク質にっき、 Ν末端ァミ ノ酸配列 をアミ ノ酸シークェンサ一、 モデル 476 Α (アプライ ドバイオシステム ズ社) により分析したところ、 配列表配列番号 1で示す N末端から 30番 目までのアミノ酸配列が確認された。
(ィ) アミ ノ酸組成分析
上記で得られた精製された本タンパク質のァミ ノ酸組成をァミ ノ酸分 析機 〔PIC0 TAGシステム(ウ ォーターズ社)〕 により調べた。 その結果 を表 3に示す。 表に示された数は 1モノ マー当りのアミ ノ酸残基数を示 す。
表 3
ァ ミ ノ B 実 刺 値 期 待
A s X 11. 5 12
G 1 X 10. 9 11
S e r 8. 4 9
G I y 4. 3 4
H i s 4. 0 4
A r g 7. 7 7
Th r 5. 4 6
A 1 a 7. 3 7
P r o 10. 2 10
Ty r 2.9 3
V a 1 5. 7 7
Me t 5. 1
1ん Cy s 2. 6 7
I 1 e 4. 9 6
L e u 1 ϋ. 0 10
P h e 4. 0 4
し y s 5. 9 6
T r p 2
列の長さ 119
:検出不可 (ゥ) 電気泳動による分析
上記で得られた精製された本タンパク質の分子量を非還元条件下の
SDS— PAGEにより確認したところ、 約 28KDaの分子量を示した。
上記(了)、 (ィ)および(ゥ)に示された結果より、 本タンパク質は N末 端が単一に Proから始まる 1 19残基からなるタンパク質であることが解つ た。
産業上の利用可能性
本発明の钦骨 ·骨誘導性修復 ffi材料は、 外科的手術を必要としない骨 折治療法において、 生体吸収性が高く、 有効成分である骨誘導因子との 親和性が良く、 温度によってゾルーゲル可逆変化を起こすことから操作 が簡便なうえ、 患者に外科的手術による苦痛を与えることなく患部に適 用できる。 本発明により骨誘導因子の薬効を持続させ、 さらには副作用 の少ない钦骨 ·骨誘導性修復用材料が提供できる。
配 列 表
配列番号: 1
配列の長さ : 1 1 9
配列の型:アミノ酸
トポロジー:直線状
配列の種類:ぺプチド
フラグメ ント型: N末端フラグメ ント
起源:
生物名: ヒ卜 (homo sapiens)
組織の種類: ヒ ト胎児
配列の特徴:
存在位置:
他の情報: MP52ァミノ酸配列の 383番目から 501番目のァミノ酸配列。 配列:
CCA CTG GCC ACT CGC CAG GGC AAG CGA CCC AGC AAG AAC CTT AAG GCT 48 Pro Leu Ala Thr Arg Gin Gly Lys Arg Pro Ser Lys Asn Leu Lys Ala
5 10 15
CGC TGC AGT CGG AAG GCA CTG CAT GTC AAC TTC AAG GAC ATG GGC TGG 96 Arg Cys Ser Arg Lys Ala Leu His Val Asn Phe Lys Asp Met Gly Trp
20 25 30
GAC GAC TGG ATC ATC GCA CCC CTT GAG TAC GAG GCT TTC CAC TGC GAG 144 Asp Asp Trp lie l ie Ala Pro Leu Glu Tyr Glu Ala Phe His Cys Glu
35 40 45
GGG CTG TGC GAC TTC CCA TTG CGC TCC CAC CTG GAG CCC ACG ΑΛΤ CAT 192 Gly Leu Cys Glu Phe Pro Leu Arg Ser His Leu Glu Pro Thr Asn His
50 55 60
GCA GTC ATC CAG ACC CTG ATG AAC TCC ATG GAC CCC GAG TCC ACA CCA 240 Ala Val lie Gin Thr Leu Met Asn Ser Met Asp Pro Glu Ser Thr Pro 65 70 75 80
CCC ACC TGC TGT GTG CCC ACG CGA CTG AGT CCC ATC AGC ATC CTC TTC 288 Pro Thr Cys Cys Val Pro Thr Arg Leu Ser Pro lie Ser lie Leu Phe
85 90 95
ATT GAC TCT GCC AAC AAC GTG GTG TAT AAG CAG TAT GAG GAC ATG GTC 336 He Asp Ser Ala Asn Asn Val Val Tyr Lys Gin Tyr Glu Asp Met Val
100 105 110
GTG GAG TCG TGT GGC TGC AGG 357 Val Glu Ser Cys Gly Cys Arg
115
配列番号: 2
配列の長さ : 27
配列の型:核酸
鎖の数:一本鎖
トポロジー:直線状
配列の種類:他の核酸
起源:なし
生物名 :なし
株名:なし
配列の特徴: MP52成熟型単離用順方向 PCRプライマ—。
配列:
ATAATGCCAC TAGC AACTCG TCAGGGC 27 配列番号: 3
配列の長さ : 26
配列の型:核酸
鎖の数:一本鎖
Π— トポロジー :直線状
配列の種類:他の核酸
起源:なし
生物名:なし
株名:なし
配列の特徴: MP52成熟型単離用逆方向 PCRプライマー。
配列:
し(J I C LI Aし し し 1 し し し Aし Λし し I z り

Claims

請 求 の 範 囲
1 . ポリオキシエチレンポリオキシプロ ピレングリ コール類と骨誘導因 子とを含む钦骨 ·骨誘導性修復用材料。
2 . 請求項 1に記載のポリオキンエチレンポリオキシプロピレングリコ ール類の構成成分であるポリプロピレングリ コールの分子量が約 1500
〜4000の範囲にあり、 エチレンォキサイ ド含量が約 40〜 80 % /分子の 範囲にある軟骨 ·骨誘導性修復用材料。
. 7j、 fti Π wノ门ン, ひリ っ ヽ 、 ソ 刁 っ J J ノ ノ し グリコール類の対水溶液濃度が約 10~ 50 %からなる請求項 2に記載の 钦骨 ·骨誘導性修復用材料。
4 . 骨誘導因子がタンパク質 BMP— 2である請求項 1 〜 3のいずれかの 項に記載の軟骨 ·骨誘導性修復用材料。
5 . 骨誘導因子がタンパク質 M P 52である請求項 1 ~ 3のいずれかの項 に記載の钦骨 ·骨誘導性修復用材料。
6 . ボリォキシエチレンポリオキシプロピレングリ コール類と骨誘導因 子とを含む骨折,骨欠損治療剤。
7 . ポリオキシエチレンポリオキシプロピレングリコ一ル類と骨誘導因 子とを含む骨折 ·骨誘導性修復用材料をヒ トまたは動物の骨折または 骨欠損部位に適用することからなる、 骨折または骨欠損の治療方法。
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NO19982236A NO325119B1 (no) 1995-11-17 1998-05-15 Brusk- og benmorfogenetisk reparasjonsmateriale, brusk- og benreparasjonsmiddel og anvendelser derav.
HK99103183A HK1018205A1 (en) 1995-11-17 1999-07-23 Cartilage/bone inducing materials for preparation.
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Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1999011298A2 (en) * 1997-09-02 1999-03-11 Gensci Regeneration Laboratories, Inc. Reverse phase connective tissue repair composition
EP0957943B2 (en) 1997-02-07 2008-11-26 Stryker Corporation Matrix-free osteogenic devices, implants and methods of use thereof

Families Citing this family (18)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH09143093A (ja) * 1995-11-17 1997-06-03 Hoechst Japan Ltd 軟骨・骨誘導性修復用材料
US9616150B2 (en) 1999-10-29 2017-04-11 Children's Hospital Los Angeles Bone hemostasis method and materials
ATE304870T1 (de) * 1999-10-29 2005-10-15 Los Angeles Childrens Hospital Verfahren und material zur hämostase bei knochen
ES2491866T3 (es) 1999-11-15 2014-09-08 Piramal Healthcare (Canada) Limited Disolución biopolimérica acuosa autogelificante controlada por la temperatura y dependiente del pH
US7747332B2 (en) * 2000-05-08 2010-06-29 International Rehabilitative Sciences, Inc. Electrical stimulation combined with a biologic to increase osteogenesis
DK1294414T3 (da) * 2000-06-29 2006-07-24 Biosyntech Canada Inc Præparat og fremgangsmåde til heling og regenerering af brusk og andre væv
JP2002306163A (ja) * 2001-04-11 2002-10-22 Chemo Sero Therapeut Res Inst 大腸菌を宿主とする遺伝子組換えヒトトロンビンの調製方法
KR20040075901A (ko) * 2001-12-21 2004-08-30 아이소티스 오르토바이올로직스, 인크. 말단-캡핑된 폴리알킬렌 글리콜 및 이들 화합물을함유하는 조성물
US7205337B2 (en) * 2001-12-21 2007-04-17 Isotis Orthobiologics, Inc. End-capped polymers and compositions containing such compounds
US7994153B2 (en) * 2002-05-20 2011-08-09 Otsuka Pharmaceutical Co., Ltd. Chloasma amelioration composition and dullness amelioration composition
WO2004022120A1 (en) * 2002-09-04 2004-03-18 Yissum Research Development Company Of The Hebrew University Of Jerusalem Compositions comprising bone marrow cells, demineralized bone matrix and rtg polymers for use in the induction of bone and cartilage formation
TWI367113B (en) 2003-02-12 2012-07-01 Syncera Inc Random and non-random alkylene oxide polymer alloy compositions
CA2646486A1 (en) * 2006-03-23 2007-09-27 Citagenix Inc. Reverse phase osteoconductive composition
US20100047299A1 (en) * 2007-01-25 2010-02-25 Biopharm Gesellschaft Zur Biotechnologischen Entwicklung Von Pharmaka Mbh Use of gdf-5 for the improvement or maintenance of dermal appearance
US8290780B2 (en) 2009-06-24 2012-10-16 International Business Machines Corporation Dynamically extending the speech prompts of a multimodal application
KR101405104B1 (ko) * 2011-12-26 2014-06-10 한남대학교 산학협력단 약물의 서방형 방출 특성을 가지는 골 시멘트
US10743996B2 (en) * 2017-03-24 2020-08-18 Robert L. Bundy Amnion putty for cartilage repair
CN109125791B (zh) * 2018-09-29 2019-08-30 广州贝奥吉因生物科技有限公司 一种具有促进骨修复功能的可吸收骨蜡及制备方法

Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS61277612A (ja) * 1985-05-31 1986-12-08 Kiyoshi Morikawa 接種用徐放性組成物
JPS62135431A (ja) * 1985-12-07 1987-06-18 Katsuyuki Fujii 液状骨形成剤からなる注射液
JPH01265968A (ja) * 1987-12-16 1989-10-24 Collagn Corp 骨誘導性修復用の注入可能な組成物
WO1994001483A1 (en) * 1992-07-02 1994-01-20 Collagen Corporation Biocompatible polymer conjugates
JPH06508777A (ja) * 1991-06-21 1994-10-06 ジェネティックス・インスティテュート・インコーポレイテッド 骨形成性蛋白医薬処方物
WO1996021427A1 (en) * 1995-01-09 1996-07-18 Atrix Laboratories, Inc. Liquid polymer delivery system

Family Cites Families (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
NZ226171A (en) * 1987-09-18 1990-06-26 Ethicon Inc Gel formulation containing polypeptide growth factor
US5162430A (en) * 1988-11-21 1992-11-10 Collagen Corporation Collagen-polymer conjugates
JPH045227A (ja) * 1990-04-17 1992-01-09 Pharmetrix Corp 歯周疾患治療システム
CA2040460C (en) * 1990-05-01 1997-06-10 Tacey X. Viegas Drug delivery with thermoreversible gels
JPH07500315A (ja) * 1991-05-10 1995-01-12 セルトリックス ファーマシューティカルズ,インコーポレイテッド 骨成長因子の標的送達
EP0551626A1 (en) * 1991-12-19 1993-07-21 LEK, tovarna farmacevtskih in kemicnih izdelkov, d.d. Thermoreversible gel as a liquid pharmaceutical carrier for a galenic formulation
IL110589A0 (en) * 1993-08-10 1994-11-11 Bioph Biotech Entw Pharm Gmbh Growth/differentiation factor of the TGF- beta family
JP3696265B2 (ja) * 1994-02-04 2005-09-14 日本オルガノン株式会社 点鼻液剤
DE4423396C2 (de) 1994-07-04 2001-10-25 Fraunhofer Ges Forschung Verfahren zum Herstellen einer mikromechanischen Oberflächenstruktur
US5902785A (en) * 1995-06-06 1999-05-11 Genetics Institute, Inc. Cartilage induction by bone morphogenetic proteins
JPH09143093A (ja) * 1995-11-17 1997-06-03 Hoechst Japan Ltd 軟骨・骨誘導性修復用材料

Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS61277612A (ja) * 1985-05-31 1986-12-08 Kiyoshi Morikawa 接種用徐放性組成物
JPS62135431A (ja) * 1985-12-07 1987-06-18 Katsuyuki Fujii 液状骨形成剤からなる注射液
JPH01265968A (ja) * 1987-12-16 1989-10-24 Collagn Corp 骨誘導性修復用の注入可能な組成物
JPH06508777A (ja) * 1991-06-21 1994-10-06 ジェネティックス・インスティテュート・インコーポレイテッド 骨形成性蛋白医薬処方物
WO1994001483A1 (en) * 1992-07-02 1994-01-20 Collagen Corporation Biocompatible polymer conjugates
WO1996021427A1 (en) * 1995-01-09 1996-07-18 Atrix Laboratories, Inc. Liquid polymer delivery system

Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0957943B2 (en) 1997-02-07 2008-11-26 Stryker Corporation Matrix-free osteogenic devices, implants and methods of use thereof
WO1999011298A2 (en) * 1997-09-02 1999-03-11 Gensci Regeneration Laboratories, Inc. Reverse phase connective tissue repair composition
WO1999011298A3 (en) * 1997-09-02 1999-06-17 Gensci Regeneration Lab Inc Reverse phase connective tissue repair composition
US6309659B1 (en) 1997-09-02 2001-10-30 Gensci Orthobiologics, Inc. Reverse phase connective tissue repair composition
US6623748B2 (en) 1997-09-02 2003-09-23 Gensci Orthobiologics, Inc. Reverse phase connective tissue repair composition
EP1537882A1 (en) * 1997-09-02 2005-06-08 GenSci OrthoBiologics, Inc. Reverse phase connective tissue repair composition

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