UA73716C2 - Site-specific preparation of grf conjugated with polyethylene glycol - Google Patents

Site-specific preparation of grf conjugated with polyethylene glycol Download PDF

Info

Publication number
UA73716C2
UA73716C2 UA2000063885A UA2000063885A UA73716C2 UA 73716 C2 UA73716 C2 UA 73716C2 UA 2000063885 A UA2000063885 A UA 2000063885A UA 2000063885 A UA2000063885 A UA 2000063885A UA 73716 C2 UA73716 C2 UA 73716C2
Authority
UA
Ukraine
Prior art keywords
res
conjugate
conjugation
poke
peptide
Prior art date
Application number
UA2000063885A
Other languages
English (en)
Original Assignee
Applied Research Systems
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Applied Research Systems filed Critical Applied Research Systems
Publication of UA73716C2 publication Critical patent/UA73716C2/uk

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K8/00Cosmetics or similar toiletry preparations
    • A61K8/18Cosmetics or similar toiletry preparations characterised by the composition
    • A61K8/30Cosmetics or similar toiletry preparations characterised by the composition containing organic compounds
    • A61K8/64Proteins; Peptides; Derivatives or degradation products thereof
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K47/00Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
    • A61K47/50Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates
    • A61K47/51Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent
    • A61K47/56Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being an organic macromolecular compound, e.g. an oligomeric, polymeric or dendrimeric molecule
    • A61K47/59Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being an organic macromolecular compound, e.g. an oligomeric, polymeric or dendrimeric molecule obtained otherwise than by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds, e.g. polyureas or polyurethanes
    • A61K47/60Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being an organic macromolecular compound, e.g. an oligomeric, polymeric or dendrimeric molecule obtained otherwise than by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds, e.g. polyureas or polyurethanes the organic macromolecular compound being a polyoxyalkylene oligomer, polymer or dendrimer, e.g. PEG, PPG, PEO or polyglycerol
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P5/00Drugs for disorders of the endocrine system
    • A61P5/02Drugs for disorders of the endocrine system of the hypothalamic hormones, e.g. TRH, GnRH, CRH, GRH, somatostatin
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P5/00Drugs for disorders of the endocrine system
    • A61P5/06Drugs for disorders of the endocrine system of the anterior pituitary hormones, e.g. TSH, ACTH, FSH, LH, PRL, GH

Description

Опис винаходу
Даний винахід стосується способу сайт-специфічного отримання кон'югатів НЗКЕ-РЕС, що містять одну або декілька РЕС одиниць (в розрахунку на ПОРЕ), ковалентно пов'язаних з ув 77 і/або (ув?! і/або Мо, який відрізняється тим, що реакцію кон'югування між пептидом ПОКЕ і активованим РЕС проводять в розчині і цільовий продукт - кон'югат ПОКЕ-РЕС очищають хроматографічними методами.
Кон'югати, отримані даним способом, а також їх застосування для лікування, профілактики і діагностики / захворювань, пов'язаних з гормоном росту, також складають об'єкт даного винаходу.
На початку 1980-х декілька груп дослідників виділили і охарактеризували рилізинг-ч-инник гормону росту (ОКЕ).
СК (званий також соматорелін) являє собою пептид, який секретується гіпоталамусом, який діє на свій рецептор і може сприяти вивільненню гормону росту (СН) з передньої частки гіпофіза. Він являє собою пептид з 44, 40 або 37 амінокислотних залишків; його форма, що складається з 44 амінокислотних залишків, може бути то фізіологічно перетворена в форми з більш короткими послідовностями. Повідомляється, що всі три форми є активними, причому активність зосереджена, в основному, в перших 29 амінокислотних залишках. Синтетичний пептид, відповідний 1-29 амінокислотам послідовності людського ЗКЕ|ПОКЕ(1-29)), званий також сермореліном, був отриманий за допомогою технології рекомбінантних ДНК, як описано в Європейському патенті ЕР 105759.
Серморелін в формі ацетату був використаний для діагностики і лікування недостатності гормону росту.
ОКЕ має реальну терапевтичну цінність при лікуванні певних, пов'язаних з гормоном росту захворювань.
Використання СКЕ для стимулювання вивільнення СН являє собою фізіологічний метод прискорення росту довгих кісток або анаболізму білків.
Одна проблема, пов'язана з використанням ОКЕ, стосується його короткого біологічного часу напівжиття (від ря біля 12 до ЗОхв). ПОКЕ (І-29)-МН» зазнає ферментативного руйнування і швидко руйнується в плазмі під впливом с дипептиділпептидази ІМ-(ОРР-ІМ) в точці між залишками Аа? і Авр3. о)
Таким чином доцільно розробити біологічно стабільні, тривало діючі аналоги ЗКЕ шляхом специфічної хімічної модифікації СКЕ для того, щоб перешкодити або зменшити деградацію під впливом ферменту.
Поліетиленгліколь (РЕС) - цей гідрофільний біосумісний і нетоксичний полімер загальної формули. Н со зо (ОСНо.СНО)ОН, де п»4. Його молекулярна маса може варіювати від 200 до 20000 дальтон.
Було показано, що хімічна кон'югація РЕС в його монометоксильованій формі з білками і/або пептидами -- значно збільшує тривалість їх біологічної дії. Подібно вуглеводним залишкам в глікопротеїні, РЕС забезпечує М захисне оточення і збільшує розмір молекули, зменшуючи тим самим його метаболічне руйнування і швидкість його виведення нирками. о
Кон'югація з РЕС є вже розробленою сукупністю способів доставки пептидів і білків, пріоритет в яких ї- належить фундаментальним дослідженням Раміз, Ариспомузкі | АВиспому»кі еї аї., 1977а і 19778). Кон'югація РЕС з пептидами або білками звичайно приводить до неспецифічного хімічного приєднання РЕС до декількох амінокислотних залишків. Одним з ключових питань в даній технології є, таким чином, вишукування відповідних хімічних способів ковалентного скріплення молекули (молекул) РЕС з певними амінокислотними залишками. «
Наприклад, активований трихлортриазином РЕС, відносно якого було встановлено, що він токсичний і з с взаємодіє неспецифічним шляхом, був пізніше замінений різними РЕС реагентами з хімічними лінкерами, які могли специфічно взаємодіяти з аміногрупами (ІВепспатр еї аїЇ.,, 1983; Мегопезе еї а!., 1985; 7/аїїрзКу еї аї., ;» 1983; 7аїїрзекі еї аІ., 1990; апа ОеїЇдадо еї аІ., 1990), з сульфгідрильними групами |Загіоге еї аї., 1991; апа
Могригоо еї а/ї., 1996) або із залишками гуанідину (Рапае еї аї., 19801.
Було встановлено, що різні РЕС - білкові кон'югати захищені від протеолізу і/або мають зменшену -І імуногенність (Мопгагаїпі еї аі!., 1995; апа Хатзвгикі еї аї., 1988).
Інша технічна трудність, супроводжуюча "Кон'югацію з РЕС" білків, виникає в зв'язку з тим, що кон'югати о білків з РЕС звичайно мають різну кількість приєднаних молекул РЕС, і це приводить до отримання суміші -І кон'югатів з різною стехиометрією РЕС:білок. Сайт - специфічна кон'югація з РЕС залишається хімічною 5р проблемою. Кон'югування РЕС і СН являє собою типовий приклад, що відображає цю проблему |Сіагк еї аї|., - 1996). Було показано, що кон'югація з РЕ І уз - залишків СН відбувається за випадковими положеннями.
Ф Для того, щоб уникнути або зменшити вплив ферменту, активний сайт спочатку повинен бути захищений з тим, щоб кон'югація РЕС з ферментом відбувалася в неактивному сайті(-ах) Саїісеїі еї аї., 19931.
Недавно був запропонований інший підхід для сайт-специфічного кон'югування РЕС з низькомолекулярними в пептидами, такими як СЕРЕ, який отримували твердофазним пептидним синтезом. У цих кон'югатах заздалегідь отриману і кон'юговану з РЕС амінокислоту вводили в пептидний ланцюжок за допомогою твердофазного (Ф, синтезу. Ця процедура, однак, вимагає вельми складного очищення продукту, що, як відомо, є пілігтуючою ка стадією при твердофазному синтезі. Наявність РЕС, внаслідок його високої молекулярної маси і полідиспергованості, з великою ймовірністю приводить до отримання цільового продукту з небажаними бо домішками і/або продуктів з пропущенням (недостачею) амінокислотних залишків, причому останнє звичайно відбувається при використанні методу Мегтійеїа'а.
Недавно в літературі повідомлялося (Реїїх еї аІ., 1995| про приєднання тільки однієї молекули РЕС до специфічного амінокислотного залишку ІАІа "У-пОвЕ(1-29)-МН» з використанням твердофазного синтезу. У цьому дослідженні показано, що ІАТа"51-пО В (1-29)-МН», кон'югований з РЕС в положеннях 21-го або 25-го залишків, 65 повністю зберігає активність іп міго по порівнянню з вихідним (Аа У)1-иСЕ(1-29)-МН». Однак відсутні дані, що показують, чи виявляють ці кон'юговані з РЕС кон'югати більш тривалий час свою активність іп мімо в порівнянні з некон'югованим з РЕС аналогом.
Зовсім недавно було показано І(Сатррбеї! еї аі., 1997), що приєднання РЕС з різною молекулярною масою до
С-кінця різних аналогів НОКРЕ, знову ж при використанні твердофазного синтезу, збільшує тривалість збереження активності при випробуваннях як на свинях, так і на мишах, в порівнянні з некон'югованим з РЕС аналогом.
У протилежність методу твердофазного отримання монокон'югованого з РЕС НОКЕ, згаданого вище, даний винахід відноситься до сайт-специфічного кон'югування з РЕС пОКЕ в розчині. Встановлено, що пОКЕ має низьку розчинність в нейтрально-лужному буферному розчині, внаслідок чого має місце хімічна умова для найбільш ефективного здійснення реакції кон'югації з РЕС. У розбавленому розчині гідроліз активованого РЕО 7/0 (наприклад, РЕС-ефіру) має тенденцію до зменшення виходу реакції кон'югації з РЕ.
У даному винаході встановлено, що у відповідному розчиннику, що забезпечує високу розчинність НОКЕ, можна здійснювати реакцію сайт-специфічного кон'югування з РЕС в рідкій фазі. У цьому випадку, навіть якщо початковий пептид ПОКЕ незахищений, РЕС-ланцюжки будуть зв'язуватися з високими виходами і майже виключно з первинними аміногрупами (є аміногрупами ) Гуз!?, Гув2! або Мо в залежності від умов реакції. 75 Були отримані наступні чотири кон'югати, які входять в об'єм даного винаходу, зі стехиометричним співвідношенням ПОКЕ:РЕС в кон'югатах, що залежить головним чином від молярного співвідношення ПОКЕ і
РЕ.
Кон'югат ЯНОКЕ-РЕС, в якому 1 молекула РЕС ковалентно приєднана до І ув "7, кон'югат НОКЕ-РЕС, в якому 1 молекула РЕС ковалентно приєднана до Гув7, кон'югат ПОВЕ-2РЕС, в якому 2 молекули РЕС ковалентно приєднані до І ув 12 і І ув, Ї кон'югат ПОВЕ-ЗРЕС, в якому З молекули РЕО ковалентно приєднані до І уз 12 і до І ув! і до Мо. "Мо" означає в описі даного винаходу аміногрупу на М-кінці пептиду (Туг).
Після цієї стадії можна здійснювати просте хроматографічне фракціонування кон'югатів, отриманих згідно з сч ов вказаною реакцією, або гель-фільтрацією, або шляхом безпосереднього нанесення на колонку С18 ВЕРХ з елюцією градієнтом суміші води і ацетонітрилу. Другий спосіб більш переважний, так як можна отримати і (о) очистити великі кількості продуктів.
Тому головним об'єктом даного винаходу є спосіб сайт-специфічного отримання різних кон'югатів НЗКЕ-РЕО, що містять один або декілька РЕС-фрагментів (в розрахунку на НОР), ковалентно пов'язаних з І уз 12 і/або І ув?! «о зо мМабо Мо, що характеризується тим, що реакцію кон'югації з РЕС проводять в розчині і цільовий кон'югаті
ПОКЕ-РЕС очищають, наприклад, хроматографічним способами. -
Кон'югати НОКЕ і РЕС, що містять один або декілька РЕС-фрагментів (на моль ПОКР), ковалентно пов'язаних р. з Гув2 і/або І ув"! і/або Мо, також є об'єктом даного винаходу.
Переважними продуктами даного винаходу є кон'югати ПОКЕ-РЕС, в яких 1 молекула РЕС ковалентно о 35 пов'язана з І уз 2 і/або І ув7!, М.
Згідно з іншим втіленням даного винаходу, якщо одна або більш з цих трьох аміногруп, до яких приєднані ланцюжки РЕС, оборотно захищені певними хімічними групами від кон'югації з РЕС, реакція кон'югації з РЕО буде давати безпосередньо цільовий кон'югат зі специфічними сайтами кон'югації з РЕС, який можна потім « виділити з реакційної суміші, наприклад, ультрафільтрацією або іншими хроматографічними методами. У цьому 40 випадку спосіб отримання може далі необов'язково включати реакцію зняття захисту. т с Реакцію зняття захисту переважно здійснюють відомими способами і в залежності від хімічної природи в захисних груп, яку потрібно видалити. -» Відповідно до винаходу мається на увазі, що під термін "пОКЕ", якщо тільки це спеціально не обумовлено, підпадають будь-які пептиди КЕ людини, особливо, це стосується пептидів 1-44, 1-40, 1-29 і відповідних до 45 них амідів (утримуючих амідну групу на М- і С-кінцях). Переважним пептидом ПОКЕ є пПОКЕ-(1-29)-МН 5, -і амінокислотна послідовність якого приводиться в 5ЕО ІЮ МО:1. с "Активований РЕС" (або "РЕС-кон'югуючий агент") являє собою будь-яку похідну РЕС, яка може бути використана для модифікації білків завдяки тому, що вона містить функціональну групу, здатну взаємодіяти з - деякими функціональними групами в молекулі білкаулептиду з отриманням кон'югата РЕС з білком або -лщ 20 пептидом. Огляд похідних РЕС, які можуть використовуватися в якості модифікаторів білків, може бути знайдений у Наїтіз (1985). Активований РЕС може бути алкілуючим реагентом, таким як альдегідні або епоксидні
І) похідні РЕС, РЕС-трезилат, або він може бути ацилованим реагентом, таким як складний ефір РЕО.
Активований РЕС переважно використовують в монометоксильованій формі. Він переважно має молекулярну масу між 2000 і 20000. Монометоксильований РЕС50О00О особливо переважний для отримання активованого РЕС згідно з винаходом.
Ге! Якщо активований РЕС є ацилованим агентом, він переважно містить залишок або норлейцину, або орнітину, пов'язаний з іншою частиною молекули РЕС за допомогою амідного зв'язку. Ці залишки дозволяють зробити де точне визначення фрагментів РЕС, що приєдналися на моль пептиду |див. для прикладу Загіоге еї аї!., 19911.
Тому особливо переважним активованим РЕС є монометоксильований РЕСьоо, пов'язаний за допомогою 60 амідного зв'язку з альфа-аміногрупою норлейцину, так що карбоксигрупа перетворюється в сукцинимідну ефірну групу.
РЕС з розгалуженим ланцюгом також можуть використовуватися. Розгалужені РЕС можуть бути представлені як К(- РЕС-ОН) уд, в яких К являє собою центральний серцевинний залишок молекули, такий як пентаєритрит або гліцерин, а т показує кількість розгалужень. Кількість розгалужень (т) може варіювати від 65 трьох до ста і більше. Гідроксильні групи можуть бути хімічно модифіковані.
Інша розгалужена форма, така як, наприклад, описана в заявці на видачу патенту РСТ УУО 96/21469, має єдину групу на кінці молекули, яка може бути піддана хімічній модифікації. Цей тип РЕС може бути представлений як (СН 3О-РЕС-)рК-Х, де Р дорівнює 2 або 3, К являє собою центральну серцевинну частину молекули, таку як лізин або гліцерин, а Х являє собою функціональну групу, таку як карбокси, яку можна хімічно активувати. Ще одна розгалужена форма має реакційно здатні групи, такі як карбоксигрупи, розподілені вздовж основного ланцюжка молекули РЕбС, а не на кінцях РЕС - ланцюгів.
Всі ці розгалужені РЕС і можуть бути "активовані", як показано вище.
Під "хроматографічними методами" мають на увазі будь-який метод, що використовується для виділення компонентів з суміші шляхом нанесення на носій (в стаціонарній фазі), через який пропускають розчинник /о0 (рухома фаза). Принципи хроматографічного виділення базуються на відмінностях фізичної природи стаціонарної і пересувної фаз.
Деякі різновиди хроматографічних методів, які добре відомі з літератури, включають: рідинну, рідинну високого тиску, іонообмінну, адсорбційну, афінну іонообмінну, розділову, гідрофобну, зворотно-фазову, гельфільтраційну, ультрафільтраційну або тонкошарову хроматографію. "Кон'югація з РЕС" - це реакція, з допомогою якої на основі активованого РЕС і білка або пептиду отримують РЕС - білок/пептидний відповідний кон'югат.
Молярне співвідношення РЕС: пОКЕ може бути 1:1, 2:11 або 3:1 в залежності від того, який кон'югат отриманий з високими виходами.
Розчинник для реакції кон'югації з РЕС вибирають з групи, що складається з висококонцентрованого водного 2о розчину нікотинаміду, водного буферного розчину денатуруючого агента (такого як сечовина), або ним може бути полярний органічний розчинник, вибраний з диметилсульфоксиду, суміші диметилформаміду з буфером або суміші ацетонітрилу з буфером. рН розчину звичайно підтримують між 7 і 9.
Перелік хімічних захисних груп для ув.» і Гувої може (без обмеження) включати: АйПос (алилоксикарбоніл), сч дв Юае (1-4,4-Диметил-2,6-диоксоциклогекс-1-іліден)етил), Адрос (1-(1-Адамантил)-1-метил-етоксикарбоніл) або 2-С1-2 (2-Хлор-бензилоксикарбоніл). АМПос є переважною захисною групою для лізинової групи. Після кон'югації і) з РЕС АПос може бути видалений одним з способів, описаних в Сгеепе еї аї!. (1991). Оде може бути видалений 2905 гідразином в ДМФ |див. МУ.С. Спеп еї аї!., 1995). Адрос може бути видалений аналогічно АПЇПос |див. також ріск Р.еї аІ.,, 1997)Ї. Для зняття 2-СІ-2 може бути потрібна більш сильна кислота (НЕ, ТЕМ5А, НВг) або «о зо Гідрування |див. також Рат еї а1., 1987).
Захисні групи для Мо; можуть являти собою алкильні групи, такі як метил, етил, пропил, ізопропил, бутил, -- третбутил, бензил або циклогексил. Переважною групою є ізопропил. Ці алкильні групи можуть бути введені р відновним алкилюванням |див. Мигрпу еї а/!., 1988 або Носагчі еї а/!., 19871.
ІМо-ізопропил-Туг", І ув (АЇПос)7-пОРЕ і (І ув-(АПос)227|-НОВБЕ також входять в об'єм даного винаходу в о
Якості нових і що використовуються як проміжні сполуки в реакції кон'югації з РЕС. їч-
Було також встановлено, що кон'югація з РЕС згідно з винаходом: 1. не змінює конформації пептиду, 2. збільшує стійкість до протеолітичного розкладання, « 3. не впливає або лише дуже слабо знижує біологічну активність в залежності від міри кон'югації з РЕС і 4. дозволяє отримувати продукти (кон'югати), які мають більшу розчинність у водних буферних розчинах. - с Іншим об'єктом даного винаходу є кон'югати ПОКЕ-РЕС з високою мірою чистоти, які застосовуються в ц фармацевтичних композиціях в якості активних інгредієнтів. "» Іншим аспектом даного винаходу є застосування кон'югатів винаходу в якості лікарського засобу для лікування, профілактики або діагностики порушень, пов'язаних з гормоном росту, наприклад, недостатності гормону росту, особливо, недостатності гормону росту в дітей. - І Лікарський засіб переважно знаходиться в формі фармацевтичної композиції, що містить кон'югати за винаходом разом з одним або декількома фармацевтично прийнятними носіями і/або наповнювачами. Такі о фармацевтичні композиції складають ще один об'єкт даного винаходу. - І Реалізація винаходу полягає у введенні фармакологічно активної кількості кон'югатів даного винаходу цу 5 особам, схильним до ризику розвитку, пов'язаного з гормоном росту, захворювання або що вже має таку патологію. о Інший об'єкт даного винаходу являє собою спосіб лікування, профілактики або діагностики розладів, пов'язаних з гормоном росту, що передбачає введення ефективної кількості кон'югатів за винаходом в присутності одного або декількох фармацевтично прийнятних наповнювачів.
Термін "Ефективна кількість" означає кількість активних інгредієнтів, достатньої для надання ефекту на течію і тяжкість вищеописаних порушень, приводячи до полегшення або ремісії цієї патології. Ефективна
ІФ) кількість буде залежати від способу введення і стану пацієнта. ко "Фармацевтично прийнятний" означає будь-який носій, який не перешкоджає вияву біологічної активності активного інгредієнта і нетоксичний для пацієнта, якому він вводиться. Наприклад, для парентерального 60 введення вищезазначені активні інгредієнти можуть бути представлені у вигляді сумішей в дозованих формах для ін'єкцій, таких як сольові, декстрозні розчини, розчин сировоточного альбуміну і розчину Рінгера.
Крім фармацевтично прийнятного носія композиції по винаходу можуть включати мінорні кількості таких добавок, як стабілізатори, наповнювачі, буфери і консерванти.
Може використовуватися будь-який тип введення, сумісний з активним початком. Переважним є 65 парентеральне введення, таке як підшкірне, внутрішньом'язове або внутрішньовенна ін'єкція. Доза активного інгредієнта, яку треба ввести, залежить в основному, від медичного показання, відповідно до віку, маси тіла і індивідуальної реакції хворого.
Доза активного інгредієнта для лікування людини може складати від 5 до бОООмкг/кг маси тіла і переважно складає від 10 до ЗО0б0Омкг/кг маси тіла.
Даний винахід описаний з посиланням на конкретні форми його втілення, але зміст опису включає всі модифікації, які можуть бути виконані фахівцем в даній області, без виходу за межі об'єму домагань.
Далі винахід буде описаний за допомогою прикладів, які не треба сприймати як такі, що обмежують даний винахід. Приклади будуть співвіднесені з графічними матеріалами, пояснення до яких приводяться нижче.
На Фігурі 1 показані амінокислотна послідовність НОКЕ(1-29)-МН». 70 Стрілками показані можливі сайти кон'югації з РЕС.
На Фігурі 2 показані дані ВЕРХ із зверненою фазою суміші, отриманою після реакції кон'югації з РЕОС в
ОМ5О, проведеної як описано в прикладі 1. Перші два більших піки відповідають кон'югатам, що містить 1 РЕО ланцюжок на моль ПОКР. Наступний мінорний пік відповідає кон'югату з співвідношенням НОКЕ:РЕС і останній мінорний пік відповідає кон'югату з співвідношенням АОКЕ:ЗРЕО.
На Фігурі За показано розкладання ПОКК(1-29) і кон'югатів РЕС даного винаходу під впливом субтилізину.
На Фігурі 365 показане розкладання НОКН(1-29) і кон'югатів РЕС даного винаходу під впливом хімотрипсину.
На Фігурі 4 показана спектроскопічна характеристика | уУб(МРЕСвьод-СНо-СО-Ме-СО)1221-пвЕ(1-29)-МНОЇ, отриману шляхом кругового дихроїзму. Спектри є вельми вражаючими в порівнянні з такими "нативного" ПОКЕ.
На Фігурі 5 показаний біологічний ефект різних кон'югатів ПНОКЕ-РЕС (від 1-го "ОМ5БО отримання) в СНО-пОКЕК-ЦОС ов дослідженнях іп мйго. Дані відображають середні результати трьох незалежних експериментів.
На Фігурі 6 показаний біологічний ефект різних кон'югатів ПОКЕ-РЕС (від 2-го. МБО отримання) в
СНО-пОКЕК-ЦОС в дослідженні іп міїго. Дані відображають середні результати двох незалежних експериментів.
На Фігурі 7 показаний біологічний ефект різних кон'югатів ПОКЕ-РЕС (отримані з нікотинамідом) в с
СНО-пПОКЕК-ЦС дослідженні іп міїго. Дані відображають середні результати двох незалежних експериментів.
Фігура 8 ілюструє біологічну дію різних кон'югатів АЗКЕ-РЕС (1-е ОМ5О отримання) на виділення СН з клітин і9) гіпофіза пацюка іп міго.
Фігура 9 показує біологічну дію різних кон'югатів АЗКЕ-РЕС (2-е ОМ5О отримання) на виділення ОН з клітин гіпофіза пацюка іп міго. (Те)
Фігура 10 показує криву динаміки залежності рівнів ПОКЕ в плазмі і ОН в сироватці в залежності від НОКЕ (400мкг/пацюк), при внутрішньовенній ін'єкції пацюкам-самцям. Кожна точка представляє значення -ї- величина --
ЗЕМ, отримана на 9 пацюках. їч-
Фігура 11А (див. перший графік на сторінці) показує криву динаміки у часі залежності рівнів сировоточного
СН після ім. ін'єкції 40Омкг/пацюк кон'югатів АЗКЕ-РЕС (0М5О отримання) пацюкам-самцям. Кожна точка о показує значення, отримане для трьох пацюків. -
Фігура 118 (див. другий графік на сторінці) показує криву динаміки залежності рівнів НОКЕ плазми після ім. ін'єкції 40Омкг/пацюк кон'югатів НЗКЕ-РЕС (0ОМ5О отримання) пацюкам-самцям. Кожна точка показує значення, отримане для трьох пацюків. «
На Фігурі 12 представлена карта рестрикції плазміди рс ОМАЗ-пПОКЕ-К, що використовується в дослідженні 470 маркерного гену для визначення ОКР-активності. - с На Фігурі 13 показана карта рестрикції плазміди ртТЕ5-53--(ОС, що використовується в дослідженні ц маркерного гену для визначення ОКР-активності. "» Приклади
Скорочення
Ацетонітрил (АСМ), алілоксикарбоніл (АїПос), бензил (871), трет-бутилоксикарбоніл (Вос), дихлорметан - І (ОСМ), диїзопропілетиламін (ОПІБА), диметилформамід (ОМРЕ), диметилсульфоксид (0М59), 9-фторфенілметилоксикарбоніл (ЕМОС), гексафторфосфат 2-(/1Н-бензотриазол-1-іл|-1,1,3,3- тетраметилуронію, о 1-гідроксибензотриазол (НОВО, метил-т-бутиловий ефір, норлейцин (Міє), М-метилпіролідон (ММР), - І 2,2,5,1,8-пентаметил-хроман-б-сульфоніл (Р тс), трет-бутил (ІВи), трифтороцтова кислота (ТЕА), трифенілметил шу 20 (т.
Приклад 1. 4) Рідиннофазна кон'югація ПНОКЕ з РЕО
У цих експериментах в якості кон'югуючого з РЕС агента використали монометоксильований
РЕОБороІМРЕС»000| пов'язаний амідним зв'язком з альфа-аміногрупою норлейцину, тобто активований за карбоксигрупою до сукцинімідної ефірної групи. Це може бути виконано, наприклад, по І и еї аї., 1994.
Людський ОКЕ1-29 ПОКЕ(1-29)-МН», який був отриманий від Васпет, використовувався як пептид пПОКЕ.
ІФ) При умові, що низька розчинність НОКН(1-29) у водному розчині при нейтральних і слаболужних значеннях ко рН була необхідна для кон'югації з РЕС, заздалегідь були підібрані альтернативні реакційні умови від А до Е:
А. Диметилсульфоксид: 20мг пептиду розчиняли в їмл ЮОМ5О і відразу ж додавали відповідні кількості 60 кон'югуючого з РЕС реагенту.
В. Диметилформамід/0,2М боратний буфер рН 8,0 при об'ємному співвідношенні 1:1:пептид і відповідні кількості кон'югуючого з РЕС реагенту додавали відразу ж.
С. Висококонцентрований водний розчин нікотинаміду (200мг/мл): 200мг нікотинаміду додавали до розчину 40мг пОКг(1-29) в їмл 10мММ оцтової кислоти. тїмл 0,2М боратного буфера при рН 8,0 додавали до вказаного 65 розчину кислоти для досягнення бажаного рН перед доданням відповідних кількостей кон'югуючого з РЕС реагенту.
О. Ацетонітрил 0,2М боратний буфер рН 8,0 при об'ємному співвідношенні 1:1 і відповідні кількості кон'югуючого з РЕС реагенту додавали відразу ж.
Е. 0,2М боратний буфер, 5М мочевина, рН 8,0 і відповідні кількості кон'югуючого з РЕС реагенту додавали відразу ж.
Сухий РЕС реагент додавали при перемішуванні, щоб досягнути остаточного молярного співвідношення
РЕС: ПОКЕ 1:21, 2:1 або 3:1. Переважним є 2:11.
Використання різних значень молярного співвідношення РЕС:ЛОКЕ дозволило отримувати реакційну суміш, в якій переважаючим кон'югатом був цільовий кон'югат. 70 Реакційний розчин перед очищенням залишали на З години при кімнатній температурі.
Наступні 4 кон'югата НЗКЕ-РЕС (А1-А4) були отримані:
А1: (УВ(МРЕСодо-СНо-СО-Міе-СО) 72-пОв(1-29)-МНаЇ,
А2: |УВ(МРЕС5одо-СНо-СО-Міе-СО) 21-пО в (1-29)-МНаЇ,
АЗ: | УВ(МРЕС5одо-СНо-СО-Міе-СО) 1221-пО В (1-29)-МНО) і 19 Ад: Меа-(МРЕС5оро-СНо-СО-Міе-СО|( уУв(МРЕС5000-СН 5-СО-МІе-СО) 1221-нО В Е(1-29)-МНУЇ.
Надлишок ОМ5О, диметилформаміду, ацетонітрилу або мочевини і побічний продукт реакції (гідроксисукцинимід) видаляли гельфільтрацією, використовуючи мембрану з 1000Д відсіканням. Об'єм доводили до 1Омл 10мММ оцтовою кислотою і потім знижували до Тмл. Цю процедуру повторювали тричі.
Кон'югати НОКЕ-РЕС виділяли гельфітрацією або ж хроматографією з зверненою фазою.
Приклад 2.
Гельфільтраційна хроматографія
З допомогою гельфільтраційної хроматографії продукти були фракціоновані по молекулярній вазі компонентів (в цьому випадку МВ кон'югатів НОКЕ-РЕС 1:1-8,358, МВ пОКЕ-РЕС 1:2-13,358 і МВ пОКЕ-РЕО 1:3-18,358. МВ некон'югованого пОКЕ-3358). Виділення здійснювали на серії колонок системи Зирегдех с 75-ВЗирегове 12 смол (Віоїесі, Рпагтасіа) з елюцією 10мл оцтової кислоти при швидкості потоку 1,5мл/хв. г)
Зібрані фракції об'ємом Тмл аналізувалися по оптичній щільності (ОО) при 280нм на вміст білка і за допомогою йодного тесту на вміст РЕС |Зітзвг еї а/., 19801.
Після кон'югації з РЕС в ОМ5О при мольному співвідношенні НОКЕ:РЕС 1:1 були отримані З піки: - кон'югат
ПОКЕ-РЕС при елюйованому об'ємі в 132мл (основний пік); ісе) - кон'югат НОКЕ-РЕС при елюйованому об'ємі в 108мл (слабий, мінорний пік); і «- - некон'югований НОКЕ при елюйованому об'ємі в 108мл (слабий пік). Після кон'югації з РЕС в ОМ5О при мольному співвідношенні НОКЕ:РЕС 1:2 були отримані три піки: ї- кон'югат НОКЕ-РЕС при елюйованому об'ємі в 108мл (основний пік); со кон'югат НОКЕ-РЕС при елюйованому об'ємі в 132мл (слабий пік); і
Зо кон'югат НОКЕ-РЕС при елюйованому об'ємі в 7Змл (слабий пік). ї-
Після кон'югації з РЕС в ОМ5О при мольному співвідношенні НЗКЕ:РЕС 1:3 були отримані два піки: кон'югат НОКЕ-РЕС при елюйованому об'ємі в 7Змл (основний пік); і кон'югат НОКЕ-РЕС при елюйованому об'ємі в 108мл (слабий пік). «
Елюйовані піки збирали, концентрували ультрафільтрацією на мембрані з 1000Д відсіканням, ліофілізували, розчиняли в 10ММ оцтової кислоти і продукти охарактеризували, як тут указано, після їх ідентифікації і З с визначення їх кількостей. Було встановлено, що пік в елюйованому об'ємі 7Змл відповідає сполуці А4. "» Встановлено, що пік в елюйованому об'ємі 132мл відповідає сполуці АЗ. " Встановлено, що пік в елюйованому об'ємі 108мл відповідає суміші сполук А2 і А1.
Встановлено, що пік в елюйованому об'ємі 232мл відповідає некон'югованому ПОКЕ.
Однак, даний метод очищення не дозволяє розділити кон'югати НЗКЕ-РЕС, що мають однакову молекулярну ш- вагу, але різні сайти кон'югації з РЕС (позиційні ізомери). 2) Приклад 3.
Хроматографія із зверненою фазою
Ш- Більш специфічне фракціонування виконується шляхом гідофобної хроматографії з використанням КР-НРІ С -кл 20 С 18 колонки. Цим способом можна розділити можливі ізомери, що вийшли з однією і тією ж молекулярною вагою. Фактично було встановлено, що при такому способі одиничний отриманий гельфільтрацією пік, 0 відповідний кон'югатам з 1 ковалентно приєднаним РЕС, розділяється на два піки.
Зверненофазову хроматографію виконували на КР-НРІС С18 препаративній колонці (Мудас) з елюцією градієнтом НьО/0,0595 ТЕА (Елюент А) і ацетонитрил/-0,595 ТРА (Елюент В), таким чином: о О-бхв о ЗБОБА іме) Б-ЗБхв ЗБОБА. У296А 35-ЗВхв 296А 60 38-4бхв 296А. 53596
Швидкість потоку: 1Омл/хв, Іоор Тмкл;
ОМ-Мів Детектор при 28Онм.
Після кон'югації з РЕС в ОМ5О при мольному співвідношенні НОКЕ:РЕС 1:1 були отримані 4 піки: б5 1. 13,2хв основний пік;
2. 13,7хв основний пік; 3. 14 4хв слабий пік; і 4. 8,бхв слабий пік 9 Після кон'югації з РЕС в ОМ5О при мольному співвідношенні НОКЕ:РЕС 1:2 були отримані 4 піки: 1. 13,2хв слабий пік; 2. 13,7хв слабий пік; 3. 14,4хв основний пік, і 4. 15,Бхв слабий пік.
Після кон'югації з РЕС в ОМ5О при мольному співвідношенні: РЕС 1:3 були отримані 2 піки: 1. 14 4хв слабий пік; і 2. 15,5хв основний пік.
Елюйовані фракції, відповідні пікам, збирали, випаровували, щоб видалити ацетонітрил і трифтороцтову кислоту, і потім ліофілізували. Сухий продукт потім розчиняли в 10мММ розчині оцтової кислоти і аналізували, як тут указано, після ідентифікації і визначення кількостей виділених зразків.
Було встановлено, що кон'югат ПОКЕ-РЕС, елюйований за 13,2хв, є сполукою АТ (СКЕ-1РЕбС, перший пік).
Було встановлено, що кон'югат ПОКЕ-РЕС, елюйований за 13,7хв, є сполукою А2 (СКЕ-РЕС, другий пік).
Було встановлено, що кон'югат ПОКЕ-РЕС, елюйований за 14 4хв, є сполукою АЗ (СКЕ-2РЕВ).
Було встановлено, що кон'югат ПОКЕ-РЕС, елюйований за 15,5хв, є сполукою А4 (СКЕ-ЗРЕВ).
Було встановлено, що пік, елюйований за 8,9хв, містить некон'югований ПНОКЕ. са
Як типовий приклад зворотно-фазова хроматографія продуктів кон'югації з РЕС, отриманих при молярному (5) співвідношенні РЕС:ХАОКЕ 2:1, показана на Фіг.2.
Сухі продукти отримували випаровуванням розчинника або ліофілізацією.
Приклад За.
Кон'югація НОКЕ за допомогою РЕС 10000 в розчині. (Се)
У цьому прикладі використовувався монометоксильований РЕС з розгалуженим ланцюгом і молекулярною - масою 10000 Дальтон з лізином в якості спейсера (отриманий від Зпеагмайег Роїутегзв Іпс.). Цей розгалужений
РЕС був отриманий скріпленням кожної аміногрупи лізину і РЕСворо. -
Карбоксигрупа лізинового спейсера, активована до сукцинимідного ефіру, взаємодіяла в ОМ5О з с аміногрупами ПОКЕ-(1-29)-МН» при мольному співвідношенні О,9моль РЕС на моль ОКР.
Розчинник видаляли і залишок фракціонували гельексклюзивною хроматографією на препаративній колонці -
Зцрегозе 12 ТМ. Елюювались 2 піки, відповідні двом кон'югатам НОКЕ-РЕС. Перший (слабий) пік відповідав кон'югату, що має 2 фрагменти РЕС10000, пов'язаних з ПОКЕР, другий (основної) пік відповідав кон'югату, що містить один фрагмент РЕС10000 на пОКЕ. «
Приклад ЗБ.
Кон'югація НОКЕ з РЕС20000 в розчині - с У цьому прикладі використовувався монометоксильований розгалужений РЕС з молекулярною масою 20000 и Дальтон з лізином в якості спейсера (отриманий від Зпеагмайег РоїЇутегв, Іпс.). є» Цей розгалужений РЕС був отриманий скріпленням кожної аміногрупи лізину і РЕС10000.
Карбоксигрупа лізинового спейсера, активована до сукцинимідного ефіру, взаємодіяла в ОМ5О з аміногрупами ПОКР-(1-29)-МН» при молярному співвідношенні О,9моль ПЕГ на Тїмоль СКЕ. -і Розчинник видаляли ліофілізацією, а залишок фракціонували гельексклюзивною хроматографієєю на препаративній колонці Зирегозе 12 ТМ. Був отриманий єдиний пік, відповідний кон'югату, що містить один (95) фрагмент РЕС20000 в розрахунку на ПОКЕР. - і Приклад 4. -л 20 Аналітична характеристика кон'югатів НОКЕ-РЕО.
Продукти, отримані так, як описано вище, були перевірені на наявність пов'язаних ланцюгів РЕС за 42) допомогою наступних методик: 1. Колориметричний спосіб, заснований на (використанні) тринітробензолсульфонату, використали для визначення вільних аміногруп (як описано у Набееа еї а!., 1966); 2. Колориметричний метод, заснований на йодному аналізі, був використаний для визначення вмісту РЕС |Як о описано у 5ітзвг еї а!., 19801;
З. Використали кількість ланцюгів РЕС, засновану на (використанні) норлейцину в якості показника в їмо) амінокислотному аналізі (як описано у 5Загіоге еї аї., 19911; 4. Мас-спектроскопія використовувалася для визначення молекулярної маси кон'югатів. 60 МАГОЇ - мас-спектрометрія використовувалася, щоб визначити молекулярну масу кон'югатів і їх полідиспергованість, породжену полідиспергованістю початкового РЕО.
Аналіз кон'югатів НОКЕ-РЕС відносно сайта приєднання РЕС проводили за допомогою амінокислотної послідовності. Кожний зразок розбавляли в 100 раз. Потім 1Омкл цього розчину (біля 5Опікомоль) завантажували в секвенатор. 65 Чистота кінцевого продукту підтверджувалася даними КР НРІ С аналітичної хроматографії.
Аналіз виконували за допомогою С18 аналітичної колонки (Мудас) з елюцією градієнтом НьО/0,0590 трифтороцтової кислоти (елюент А) і сумішшю ацетонітрилу і 0,0595 трифтороцтової кислоти (елюент В) таким чином:
О-бхв /8096А 9 5-БОхв 8096А. »595А 50О-Бохв БоБА 52-54хв 5956А-»809А 70 Швидкість потоку мл/хв, сор 20мкл/ ОМ-Мів. Детектор при 226бнм.
Некон'югований НОКЕ елюювали за 20,7хв.
Сполуку АТ елюювали за 22,9хв, сполуку А2 елюювали за 23,4хв, сполуку АЗ за 24 4хХв і сполуку А4 за 25,5хв.
Конформаційна характеристика "нативного" і полімерпов'язаних пептидів здійснювалася на основі аналізу кругового дихроїзму.
Спектроскопічну характеристику некон'югованого ПОКЕ і кон'югатів НОКЕ-РЕС здійснювали на основі аналізу кругового дихроїзму в межах 190-300нм. Зразки (5Омкг/мл) розчиняли в Т1О0мММ оцтової кислоти або суміші метанол/10мММ оцтової кислоти з молярним співвідношенням 30:70 і 60:40. У всіх вище перелічених розчинах некон'югований ПОКЕ і кон'югати НЗКЕ-РЕС виявили свої особливості, як це показано на Фіг.4 для сполуки АЗ. У розчині оцтової кислоти пептиди були в хаотичній конформації, тоді як при підвищенні концентрації метанолу ор пептиди приймали о-спіралевидну структуру.
Результати показують, що кон'югація РЕС не змінює значно структурних особливостей цього пептиду.
Приклад 5.
Визначення стабільності кон'югатів НОКЕ-РЕО
Стабільність ПОКЕ і кон'югатів НЙОКЕ-РЕС у відношенні протеолізу досліджували за допомогою с протеолітичних ферментів, таких як субтилізин і хімотрипсин.
Досвід з субтилізином здійснювали шляхом інкубування при 42С 0,297мММ пептидного розчину в 0,1М Тріс НСІ о 0,О05М Сасі. рН 8,0 при мольному співвідношенні пептид/протеазу 1:50000.
У випадку з хімотрипсином пептид був розчинений в 0,08М Тріс НОСІ, 0,1М Сасі. рН 7,8 і використовувалося мольне співвідношення пептид/протеазу 1:15000. Ге)
Після режиму деградації проводили аналітичну КР-НРІ С за допомогою колонки С18 з елюцією в тих же умовах, що приведені в прикладі 4. Висота, відповідна піку початкової сполуки, була обчислена перед -- інкубацією з протеолтичним ферментом і після наміченої за планом тривалості інкубації. Відсоткова частка че залишкової висоти при наміченій тривалості була обчислена, і вона показана на Фігурах За і ЗБ.
Приклад 6. о
Кон'югація з алкилюванням РЕОС че
ПОКЕ кон'югували з монометоксильованим РЕС, активованим різними ацилованими групами, а також алкілувальними групами. Алкілюючий РЕС мав перевагу, що дозволяє отримувати кон'югати, в яких зберігається позитивний заряд на залишку лізину.
Виділення і оцінка властивостей здійснювалися так само, як описано в прикладах 1-4. «
Приклад 7. шщ с Оцінка активності кон'югатів НОКЕ-РЕО. й Матеріали «» Сполуки, що використовуються
Людський ОКЕ1-29 пОКЕ(1-29)-МН», партія 1299201, поставлений Васпет;
Людський СКЕЗ3-29 пОКг(3-29), поставлений Васнепт; -і Людський ОКЕЗ3-29, поставлений ІІ; і кон'югати ПОКЕ-РЕС приготовані, як описано вище. о Реагенти -І СНО-пОКЕК-ЦШС для досліджень іп мікго.
Середовище МЕМ альфа з рибонуклеозидами і дезоксирибонуклеозидами (Сірсо), що містить 1090 - навколоплідної сироватки теляти (бірсо) плюс бО0Омкг/мл сульфату дженетицину 5418 (бірсо);
Ф Реагент для лізису клітинної культури (Рготеда);
Реагент для аналізу на основі люциферази (Рготеода); і
Ї исійе (Раскага).
Іп міго біообстеження гіпофізарних клітин пацюка.
Набір збалансованих солей Еагпе (ЕВЗБ5)((зірсо), що містить 5Омкг/мл сульфату гентаміцину (Зідта). іФ) Середовище 199 (М199) з солями Еагпіе (бірсо) з 12,595 навколоплідної сироватки теляти (ЕВ) (Сібсо) і 5Омкг/мл ко сульфату гентаміцину.
Набір для дослідження СН пацюка, поставлений Атегепат. Ферментний розчин для біодеструкції тканин бо (приготований на ЗоОмл ЕВЗ5): 120мг колагенази (Зідта)
Зомг гіалуронидази (5ідта)
ЗОмг ДНКази І (Зідта) 900мг БСА (Зідта) 65 Після складання розчину його стерильно фільтрують і вміщують в термостат при 372
Біологічний аналіз іп мікго.
Набір для радіоїмуноаналізи (ЇН пацюка, поставлений Атегепат. Набір для радіоїмуноаналізу СКЕ (1-44) людини, поставлений Ріоепіх РІіаптасеціїсаї.
Тварини
ЗРЕ дорослі пацюки - самці Зргадое-ОСаміеу, вагою 200-250г, постачання Спагіез Кімег, використовувалися після періоду акліматизації, що продовжувався, щонайменше, 7 днів.
Методи
Дослідження іп міго СНО-ПОКЕК-І ОС.
СНО-пОКЕК-ЦОС (клон 1-11-20) представляє собою лінію клону клітин, яка була отримана шляхом спільної /о трансфекції векторами рсоОМАЗ-пеКР-К і ртТЕ5-53 ОС СНО-РИКХ клітинних лінії.
Плазміда рсоОМАЗ-пОКЕ-К була сконструйована включенням СОМА рецептора рилізинг-чинника гормону росту людини (ПОКЕ-К) у вектор експресії рсОМАЗ. ВіІпезстгірі плазміда, що містить СОМА-пОКЕ-К, була люб'язно представлена д-ром В.Сауїїпп (Опімегейу ої Мігдіпіа), експресуючий вектор рсОМА ссавців був отриманий від
Іпмйгодеп. Кодуюча ПОКЕ-К послідовність була отримана за допомогою промотора цитомегаловірусу (СММ) /5 людини. її карта рестрикції приведена на Фіг.12.
Плазміда рТЕ5-53 ОС була сконструйована вбудуванням с-о5з елемента відповіді ЦАМФ в область розташування ендогенного промотора вище кодуючої люциферази послідовності в плазміді роЇ и5. Елемент відповіді з ЦАМФ і с-юз промотор були отримані з плазміди рТЕ5-53 (описана Рїзп еї аї!., 1989). Вектор, що містить безпромоторний маркерний ген (роЇ и5) з багатьма сайтами клонування в області, розташованій над 2о послідовністю, що кодує люциферазу, був отриманий від д-ра Вгазієг (Опімегейу ої Техаз, Саїмевіоп). Його карта рестрикції приводиться на Фіг.13.
Ці клітини СНО-БШКХ, отримані, як указано вище, котрансфекцією, звичайним способом культивували на середовищі МЕМ альфа, що містить рибонуклеозиди і дезоксирибонуклеозиди, а також 1095 навколоплідної сироватки теляти плюс бООмкг/мл сульфату дженетицину 5418. сч
Перед дослідженням клітини висівали (40000 клітин на лунку) на білі 9б-луночні планшети (Бупаїесі) і інкубували протягом 16-18 годин в 200мкг/мл культурального середовища. і)
На наступний день середовище видалили і замінили його середовищем, що містить різні концентрації
ОК (1-29), введені в еталонний стандарт (Васпет), або різні кон'югати ПОКЕ-РЕС, перед інкубуванням планшету при 372С і 595 СО» протягом 2-х годин. У кінці інкубування СНО-СОКЕК-І ОС-клітини двічі промивали Ге 3о 20Омкл РВЗ (Зідта) і потім лізували доданням в кожний осередок 50мкл спеціального реагенту для лізису клітин (Рготеда). Після подальшого 15-хвилинного інкубування при кімнатній температурі і введенні 15О0мкл - люциферазного реагенту для аналізу (Рготеда) пластини переглянули в люмінометрі (Оупайесі). ї-
В якості альтернативнного способу СНО-пПОКЕК-І ОС-клітини, засіяні по 50000 клітин в осередок, в кінці інкубування з різними кон'югатами НЗКЕ-РЕС промивали РВ5, як описано вище. В кожний осередок додавали і.
ООмкг/мл РВ5, що містить іони кальцію і магнію, потім додавали 10Омкл І исійе (РасКага). Після 10-хвилинної ї- витримки при кімнатній температурі пластини зчитувалися в люмінометрі (І итісоипі-РаскКага).
Результати виражали у відносних світлових одиницях (КІ )).
Оцінка біологічної активності (1-29) на клітинах гіпофізу пацюків
Тваринні (ЗРЕ пацюки-самці Зргадце-Оваулеу з масою тіла 200г були умертвлені інгаляцією СО» і в них були « видалені гіпофізи. Тканину ретельно подрібнювали і вміщували в місткість з розчином ферменту для шщ с біодеструкції тканини. Місткість вміщували в термостат при 372С на 1 годину. ц Деструктировану тканину витягували і клітини двічі промивали, підраховували і доводили концентрацію до ня Бх105/мл. Клітини вмі 48 і х . щували на пластину з осередками (200мкл/осередок), пластину вміщували в термостат на 72 години.
Через 72 години клітини інкубували з ПОКЕР при різних його концентраціях протягом 4 годин. По завершенні - інкубування збирали надосадкові рідини і зберігали їх при -8020. с Вміст СН в кожному зразку визначали за допомогою набору, що є в продажі для радіоїмуноаналізу щурячого
Он. - Дослідження іп мімо -оУу 70 Тваринам ім. вводили НОКЕ (1-29) (400мкг/пацюк). За декілька хвилин до забору крові тварин анестезували (кета-мін-ксилазин). У кожного пацюка з нижньої порожнистої вени відбиралося по два мл крові. Зразок ділили ії; на 2 аліквоти: 1мл відбирали сам по собі і сироватку отримували після інкубування протягом біля З годин при 3720 з подальшим центрифугуванням; їмл, що залишився збирали в ампулу, що містить 5Омкл розчину гепарину з концентрацією 4мг/мл, негайно поміщали на лід і отримували плазму після центрифугування при 429С. 25 Зразки крові відбирали в різні моменти часу після ін'єкції випробуваної сполуки від різних тварин. У
ГФ) кожному експерименті для кожного моменту часу використовувалося по троє пацюків. юю Зразки плазми і сироватки негайно заморожувалися і зберігалися при -2090.
Рівні вмісту СН в сироватці вимірювали за допомогою набору, який є в продажу, рівні вмісту в плазмі вимірювали за допомогою КІА набору, що продається для ПОКЕ(1-44). бо Результати
Примітка: У цьому розділі і відповідних фігурах "СКЕ-ІРЕО 1-й пік" відповідає
І .У(МРЕС5000-СН2-СО-Міе-СО) 21-пО В Е(1-29)-МН», "СВЕ-ТРЕС 2-й пік" відповідає
І УВ(МРЕО, у 307УН,-СО-Міве-СО) 12. (1-29)-МНаЇ, "ОКЕ-2РЕС" відповідає 65 І Уг(МРЕС водо СН.-СО-Міе-СО) 12277 -пОвВ(1-29)-МНЇ і "СКЕ-ЗРЕС" відповідає Мо-(МРЕЄСводо-СНо-СО-Міе-СО)
ІСУЗ(МРЕСвьовсо-СНо-СО-Міе-СО) 1221-НОВЕ(1-29)-МНУ1.
Дослідження іп міго СНО-ПОКЕК-Г ОС
Активність двох різних груп кон'югатів ПОКЕ-РЕС, приготованих з використанням ЮОМ5О, при дослідженні іп
Мо СНО-пОКЕК-ЦШС, показана на Фігурах 5 і 6.
Було встановлено, що всі препарати активні, незважаючи на менший рівень вмісту в порівнянні з "нативним"
НЯОКЕ (ПОКЕ, підданий тим же стадіям очищення, використовувався для кон'югації з РЕС сполук), причому
СКЕ-ІРЕС (ії 1-й, і 2-й піки) був більш активним, ніж СКЕ-2РЕС і ЗКЕ-ЗРЕО. Ніякої різниці між пОКЕ і "нативним" ПОКЕ не спостерігалося (дані не приводяться). 70 Спостерігалася подібна іп омйго біологічна активність кон'югатів ПОКЕ-РЕС з обох отриманих з використанням ЮОМ5О партій (Фіг.5 ме Фіг.б), а також кон'югатів, з партії, отриманої з використанням розчину нікотинаміду (Фіг.7). На Фіг.б показані також 2 різних ПНОКН(3-29) препарати, що не мають значну активність іп міо в порівнянні з НОКЕ (1-29).
Дослідження іп міїго гіпофізарних клітин пацюка на активність НОКЕ 29.
У обох дослідженнях, проведених на основі кон'югатів НЗКЕ-РЕС, отриманих з використанням ОМ5О, було встановлено, що ЗКЕ-1РЕС 1-й пік відповідає самій активній сполуці, потім йде СКЕ-1РЕС 2-й пік, потім -
СКЕ-2РЕС і нарешті, ЗКЕ-ЗРЕС (Фігури 8 і 9). Ці висновки добре узгоджуються з тими, які отримані при дослідженні маркерного гену.
Дослідження іп мімо
У попередніх дослідах рівні сировоточного СН і плазмений ПОКЕ визначалися на пацюках, вихід з ім. ін'єкції 4А0О0мкг АЯОКР. Відповідні результати проілюстровані на Фіг.10. Як показано, і СН і ПОКЕ дають піки через 1Охв після ін'єкції НОКЕ. Потім концентрації СОН в сироватці швидко знижуються і повертаються до базального рівня через бОхв, тоді як концентрації НОКЕ в плазмі зберігаються на колишньому рівні протягом того ж тимчасового інтервалу. с
На Фіг.11А ї 118 показані рівні СН і ОКЕ в крові в різні моменти часу протягом 48 годин у пацюків, яким були і.м. введені по 40Омкг 1-го і 2-го піків ЗКЕ-ТРЕС; СКЕ-2РЕС і СКЕ-ЗРЕС (приготовані з ОМ5О). і9)
Всі кон'юговані з РЕС препарати дають пік сировоточного СН через 10хв після ім. ін'єкції подібно ПОКЕ 1-29. Однак, хоч 1-й і 2-й піки ЗКЕ-1РЕС і ЗКЕ-2РЕС показують рівні сировоточного СН, порівнянні з тими, що отримані від НОКЕ..2о, підтверджується, що СКЕ-ЗРЕС є менш активним, ніж це встановлено у випробуванняхіп.о «о
М.
Що ж до рівнів ОКЕ в плазмі, то тут спостерігається абсолютно інша картина у відношенні 1-го і 2-го піків --
СКЕ-ІРЕС ов порівнянні з СКЕ-2РЕС і ОКЕ-ЗРЕС безвідносно типу приготування препарату, що рч- використовується (з використанням ОМ5О або нікотинаміду). Протягом 48 годин після ін'єкції ЗКЕ-ІТРЕС 1-го і 2-го піків концентрації СОКЕ в плазмі повертаються до базального рівня, тоді як рівні вмісту, що найбільш о довго зберігаються відповідають ЗКЕ-2РЕС і СКЕ-ЗРЕО. -
Приклад 8.
Твердофазний синтез сайт-захищених похідних пПОКЕ(1-29)-МНо, в якості початкових сполук в процесі кон'югації з РЕО. «
Був здійснений твердофазний синтез похідних ПОКЕ(1-29)-МНо, що містять специфічну захисну групу (М-алілоксикарбоніл-групу) в положенні первинних аміногруп як Гуз 72, так і ув", Це дозволяє провести - с сайт-специфічну кон'югацію з РЕС Мо-кінців. Інші амінозахищені похідні отримують блокуванням Мо-кінця за "» допомогою оацилювання і Гуз 72 Мо-лілоксикарбонільною групою. Цю похідну використовують для " сайт-специфічної кон'югації з РЕО.
Матеріали і методи
Операції пептидного синтезу
Ш- Всі продукти приєднання ПОКЕР пептидних похідних до смол були спочатку зібрані Етос-хімічним методом за
Га допомогою пептидного синтезатора фірми Арріїед Віозузіетв Іпс. модель 431А, з використанням РАГ-РЕОС-Р5 смоли з низькою мірою заміщення (0,1бммоль/г) і подвійного поєднання з введенням протоколу для кожного - залишку, щоб оптимізувати кількість і чистоту неочищеного продукту, що отримується. Додатково продукт - 70 приєднання пептиду |(М-изопропил-Туг ", І ув(АПос) 2-пОВЕ(1-29)-МНо до смоли піддавали процедурі відновного алкилювання, що виконується вручну, щоб приєднати М-термінальну ізопропільну групу. с Всі продукти приєднання пептидів до смоли розщеплювали сумішшю трифтороцтової кислоти (ТЕА), 1,2-етандитиола, тіоанізолу і води 1(10:0,5:0,5:0,5 (об'єм/об'єм) протягом 2 годин і неочищені пептиди виділяли осадженням в МТВЕ і центрифугуванням. Ліофілізовані неочищені пептиди очищали градієнтною ВЕРХ 29 |з зверненням фаз на препаративній колонці Мудас С18 з допомогою 0,195 ТРА - вода/ацетонітрильної буферної
ГФ) системи. Всі очищені пептиди були охарактеризовані за допомогою аналітичної хроматографії із зверненням фаз до МАЇ 0І-ТОЕ мас-спектрометрії. іме) .
Матеріали.
Етос-І -амінокислоти (Васпет Віозсіепсе, Регзеріїме Віозузіетв, МомаВіоспет), ДМФ, 20л бочка (9.Т. ВакКег), 60 піперидин (Арріїей Віозузіетв, Спет-Ітрех), НВТИШ (Каїпіп, Кіспеїйеи Віоїесппоіодіеєв), МММ (Аїагіс!п), оцтовий ангідрид (Арріїед Віозузіетв), смоли (Регзеріїме Віозувіетв, Мома Віоспет), о-ціано-4-гідрокси-корична кислота (бБідта), синапінова кислота (А1-агістп), ацетонітрил (У.Т. ВаКег), ТЕА (Зідта, Ріегсе), деїонізована вода (МіПроге Міїї-О УМагег Ззузіет). Інші розчинники і реагенти перераховуються нижче: б5 Реагенти/Розчинники Продавці
ММ Арріїеа Віовувіетв Іпс., У.Т. Вакег нвт Арріїеа Віозувіетв Іпс.,
Кіснеїїеи Віоїеснпоіодіев Іпс. 0,5 НОВІ в ОМЕ Арріїей Віозувіетв Іпс. 2,0М ОІЕА в ММР Арріїей Віозувіетв Іпс. піперидин Арріїей Віозувіетв Іпс. дихлорметан Арріїей Віозувіетв Іпс. оцтовий ангідрид Арріїей Віозувіетв Іпс.
Амінокислоти: велика частина ЕМОС - амінокислот, що використовуються на синтезаторі АВІ 431А, були закуплені у Арріїєд Віозувіетз у вигляді 1,0ммолярних картриджів з визначеною вагою. Етос-1І уз(АЇПос)-ОН була закуплена у Регзеріїме Віозувіетвз (РгатіпдаН2т, МА) по масі і картриджі заповнювалися на місці. Всі амінокислоти, що використовуються були І -конфігурації.
Смоли: початкові смоли, ті, що використовуються для пОКЕ-аналогів були РАІ -РЕС-РЗ (пептид-амідний лінкер - поліетиленгліколь-полістирол)смоли. РАГЇ-РЕС-РОЗ носії, закуплені у Регзеріїме Віозузіетв, постійно показують чудові результати по чистоті і виходу неочищеного продукту. Смолу з низькою мірою заміщення 0О,1бммоль/г використали для всіх похідних. Смоли з низькою мірою заміщення звичайно використовують для довгих важких ланцюгів, щоб забезпечити краще поєднання і зменшити стеричне ускладнення і виникнення 2о ефекту р-розпластання в пептидних ланцюжках, що нарощуються.
Методи
Збирання ланцюжка - пептидний синтезатор фірми Арріїєд Віозузіетвзв Іпс., модель 431А.
Ланцюжки захищених пептидів спочатку збирають за допомогою Етос-методу на пептидному синтезаторі фірми Арріїеа Віозувзіетзг Іпс., модель 431А, в якому використовуються програмні цикли швидкого Етос(Раві с
Мостм) НВТИи використовується для активації і поєднання, 2095 піперидин - для зняття захисту, а ММР - основний розчинник, що використовується для зняття захисту, розчинення амінокислот і промивки смоли. Амінокислотами і) заповнюють 1,0ммоль картриджі розраховані на заздалегідь визначену вагу. У 0,25ммольних Раві Мостм циклах використовують 1,О0ммольні картриджі і реакційну місткість об'ємом 4Омл.
Збирання ланцюжка - спосіб (се)
Стадії для програмних циклів, каліброваних по О0,25ммоль, можуть бути загалом охарактеризовані таким чином: - 1. Зняття захисту піперидином. - Смолу спочатку промивають ММР, потім обробляють 1895 розчином ї- піперидину в ММР, і зняття захисту відбувається за Зхв. Рідині в реакційній місткості дають стекти, заливають 2090 розчину піперидину і процес зняття захисту продовжується біля 8хв. о 2. Розчинення амінокислоти - ММР (2,1г) і О0,Уммоль 0,45М НВТИО/НОВІ в ОМЕ (2,0г)додають в картридж і че перемішують протягом 6 хвилин.
З. Промивання ММР - з реакційної місткості дають стекти рідині і промивають смолу ММР 5 раз. 4. Активація амінокислоти і перенесення в реакційну місткість (КМ) - їмл 0,2М ОІЕА в ММР додають в « картридж, щоб почати активацію амінокислоти, потім переносять з картриджа в КМ. 5. Поєднання і кінцеве промивання - Реакція поєднання між активованою амінокислотою і пептидом зі знятим - с М-кінцевим захистом, приєднаним до смоли, продовжується біля 20 хвилин, потім рідку фазу з КМ зливають і ц смолу промивають ММР. ,» 6. Завершення (при бажанні) - Приблизно 12мл 0,5М оцтового ангідриду, 0,125М ОІЕА і 0,015 НОВІ в розчині
ММР додають в реакційну місткість і збовтують протягом 5 хвилин. Це повинно приводити до ацетилювання будь-яких вільних точок, що не зазнали поєднання на смолі, що дає в результаті усічені, а не делеговані - І ланцюжки, що потім значно спрощує стадії очищення. с Повний протокол для цих циклів можна знайти в Арріїей Віо-зувіетвз Овег ВиПейп М 35 (РГазіМостм 0,25 і 0,10 для Моделі 431А). -і Стандартний план для типового синтезу -л 20 Стадія 1. Промивка смоли ЗХ ОМЕ.
Стадія 2. Зняття захисту 2Х по 5хв 2095 піперидином в ОМЕ. 4) Стадія 3. Промивка смоли 6Х ЮОМЕ.
Стадія 4. Поєднання протягом 45хв амінокислоти, активованої сумішшю НВТО/МММ в ОМЕ.
Стадія 5. Промивка смоли ЗХ ОМЕ.
Для важких ланцюгів додаткова стадія завершення, в якій використовується 7095 оцтовий ангідрид в ОМЕ о протягом 20хв для ацетилювання будь-яких незайнятих точках на смолі з приєднаним пептидом, що дає в результаті в кінцевому неочищеному продукті усічені, а не делеговані ланцюги, може здійснюватися після стадії ко поєднання.
Відщеплення/Екстракція 6о0 Суміш, яка відщдеплюється, що використовується для видалення захищаючих груп і від'єднання пептиду від смоли, є стандартною сумішшю, що застосовується для пептидів, що містять аргинін і/або метіонін. Для 0,1-1,5г продукту приєднання пептиду до смоли: 1Омл трифтороцтової кислоти, 0,5мл деїонізованої води, 0,5мМл тіоанізолу, О,5мл етандитіолу (8796 трифтороцтової кислоти, 4,390 деїонізованої води, 4,390 тіоанізолу, 4,390 етандитіолу). бБ Процедура відщеплення 100мг-1г приєднаного до смоли пептиду вміщують в 20мл скляну посудину і охолоджують в бані з льодом.
Готують відщеплюючу суміш і також охолоджують Її на льоду, потім додають до пептиду, пов'язаного зі смолою, до кінцевого об'єму приблизно 1Омл.
Посудину витягують з крижаної бані і дають йому нагрітися до кімнатної температури. Посудину закривають кришкою і перемішують реакційну суміш при кімнатній температурі протягом 2 годин.
Через 2 години розчин відфільтровують під вакуумом через пористий фільтр, що забезпечує протікаємість середовища, в приблизно ЗОмл холодного МТВЕ. Реакційну судину промивають тТмл трифтороцтової кислоти і фільтрують через ту ж саму фільтруючу воронку в холодний МТВЕ. Вся суспензія потім переноситься в 5Омл центрифужну пробірку і центрифугується протягом «10хв при 2000об/хв при кімнатній температурі. 70 Супернатант відсмоктують, залишок ресуспендують в 40мл холодного МТВЕ і центрифугують знову. Цю стадію повторюють ще раз. Кінцевий супернатант відсмоктують, а осад продувають азотом для випаровування основної кількості ефіру, що залишився в ньому.
Потім пептид розчиняють в 20-ЗОмл 1-1095 водного розчину оцтової кислоти, розбавленого приблизно 100-15Омл деїіонізованої води, заморожують і ліофілізують.
Очищення
Методи ВЕРХ із зверненою фазою
Система - М/айег: Оей(а Ргер 4000
Колонка - Мудас звернено - фазовий С18, 10мкм; 2,2х25см (Кат. Мо218ТР1022)
Буфери - А: Вода/0,1956 ТФК В:Ацетонітріл/0,1956 ТФК
Швидкість потоку - 15мл/хв
Детекція - УУа(егв 484 УФ детектор, 220нм,
Градієнт - такий, що змінюється, звичайно 0,295 В/хв аж до 1,095 В/хв.
Ліофілізовані неочищені пептиди отримують розчиненням 50-100мг пептиду в 200мл 0,195 водного розчину трифтороцтової кислоти. Пептидний розчин потім наносять безпосередньо на препаративну колонку через с ов резервуарну лінію буфера "А" і включають програму градієнта.
Зібрані фракції протягом ночі проганяють на аналізуючій ВЕРХ системі з автопробником. Фракції, які і) виходять, що досягають в піці більше за 9295 чистоти, збираються, розбавляються деїонізованою водою в співвідношенні 4-1, заморожуються і потім ліофілізуються в Міпіз 2551. заморожуючій сушарці.
Характеристика «о зо Звернено-фазовий ВЕРХ.
Умови: -
Система - насосна УУаїегз 510, 717 Автопробник, М
УФ детектор 490 мультидовгохвильовий,
Колонка - Мудас С18, 5мкм, 0,46Хх25см (Кат. Мо218ТРБ4) і
Буфери - А: НьО/0,195 ТЕА В: АСМ/О,195 ТЕА ї-
Швидкість потоку -Імл/хв.
Детекція - УФ: 214нм, 280нм.
Градієнт - 295 В/хв.
Обчищені ліофілізовані пептидні зразки готують розчиненням 0,2-1Омг пептиду у 0,195 водній трифтороцтової « 470 Кислоті до концентрації 0,5-1,Омг/мл. шщ с 15-185мкл наносять на колонку і елюють за допомогою градієнтної програми 0-5095 ацетонітрилу через 25хв. й Результати хроматографії збирають і зберігають, використовуючи УУ/адегз Ехреп-Еазе зоїмаге. «» Мас-спектрометрія
Тип: МАСО1І-ТОЕ (Матрикс-супутня лазерна десорбція) іонізація періоду польоту
Система: Регзеріїме Віозувіетз Моуадег ЕШе -І Матриці: а-ціано-4-гідроксикорична кислота, 1Омг/мл в 6795 АСМ/О,195 ТРА або синапінова кислота, 1Омг/мл в 5Одо АСІМ/О,190 ТЕА. о Зразки пептидів готують концентрацією 1-20мкмоль в 50956 АСМ/О,195 ТЕА. 0,5мкл розчину матрикса, а потім -І О,бБмкл зразка пептиду наносять на осередки пластинки для аналізу і дають висохнути. Аналітичну пластину 5о завантажують в машину, зразки сканують і аналізують, використовуючи КейПесіог ОеІауед-Ехігасіопметод, - оптимізований для пептидів. Для кожного зразка дані у вигляді кумулятивного сигналу від 32-128 лазерних доз
Ф збиралися і аналізувалися. У кожний прогон для калібрування включався осередок з пробою контрольного пептиду.
Специфічний синтез
Отримання ЦІ м5(АПос) 122711-НО В Е(1-293МН» о Продукт скріплення |(ГУз(АйПос) 12211-пОвЕ(1-29)-РАІ -РЕС-РЗ-смола спочатку синтезували Ріпос-методом на пептидноме синтезаторі Арріїейа Віозувіетв 431А (див. Методи синтезу вище), що включає зняття захисту ко М-кінцевої Етос-групи.
Продукт пептид - смола розщеплювали сумішшю ТЕА: 1/2-етандитіол:тіоанізол:івода 1(10:0,5:0,5:0,5 60 (об'єм/об'єм)| протягом 2 годин і виділяли пептид осадженням в МТВЕ з отриманням 240мг неочищеного пептиду. Очищення препаративною зверненофазовою ВЕРХ на колонці Мудас С18 (22 х250мм) приводило до отримання бОмг очищеного продукту (295905 - аналітична ВЕРХ). МАГ0І-ТОЕ мас-спектр.
Обчислено: 3523/8. Знайдено: 35242.
Отримання (Мео-ізопропіл- Туг!, І ув(АїПос) 2-пОВЕ(1-29)-МН» бо Збирання початкового продукту (ГГ Уз(АїПос) 171-пЛОВЕ(1-29)-РАІ -РЕС-РОЗ-смола.
І ув(АШос) 171-пО В Е(1-29)-РАЇ-РЕС-РЗ-смолу збирають Етос-методом на пептидному синтезаторі 431А фірми Арріїей Віозувіетвз (див. вище Методи синтезу), включаючи зняття захисту ЕГтос групи М-кінцевого залишку.
Мо-ізопропілювання шляхом відновного алкілювання
Ма-іїзопропільну групу приєднували відновним алкілюванням приєднаного до смоли пептиду з допомогою натрій-ціанборгідриду і відповідного кетону (ацетону), як описано Носагі еї аї.,, 1987. 880мг пептиду, приєднаного до смоли (77Омкмоль) замочували для набухання в бмл ЮОСМ протягом ЗОхв, потім додавали 1О0ммоль (174мкл) ацетону в 7мл МеоОнН/195 НОАс і суміш періодично збовтували протягом 2 годин при 70 температурі навколишнього середовища. Потім додавали 2ммоля (129мг) натрій-ціанборгідриду в 12мл
Меон/лияв НОАс, суміш періодично збовтували протягом 2 годин і потім залишили на ніч (15 годин). Якісний моніторинг з нінгідрином показав завершення реакції (відсутність блакитного фарбування). Пептид від'єднували від смоли сумішшю ТЕА;:1,2-етандитіол:тіоанізол:вода (|10:0,5:0,5:0,5 (об'єм/об'єм)| за 2 години і виділили пептид осадженням в МТВЕ з отриманням «200мг неочищеного продукту. Очищення препаративною 75 звернено-фазовою градієнтною ВЕРХ в системі розчинників Вода/Ацетонітрил/0,195 трифтороцтова кислота на колонці Мудас С18 (22х250мм) привела до отримання 5Омг чистого продукту ( 29595-аналітична ВЕРХ).
МА! 0І-ТОЕ мас-спектр: Обчислено:3481, 9, Знайдено: 3481,8.
Приклад 9:
Кон'югація з РЕС захищених ПпОКН(1-29)
Похідні НОКЕ, отримані як описано в прикладі 8, кон'югували з активованим РЕС, як описано в прикладах 1 і 6.
Очищення в цьому випадку включало тільки виділення з надлишку реагентів і побічних продуктів, тоді як не було необхідності здійснювати процедуру, описану в прикладах? І 3.
Список літератури с
Ариспомузкі А. еї аї., 9У.ВіоІ.Спет., 252, 3571-3581, 1977а; о
Ариспомузкі А. еї а/., У.Віої.Спет., 252, 3582-3586, 19776;
Вепспатр С.О.еї а!.. АпаіІ.Віоспет., 131, 25-33, 1983;
Саїісейїі еї аї., У.Віоасіїме Сотраїйбіе Роїутег, 8,41-50,1993;
Сатрреї! МК. еї аї. 9У.Рерііде Кез., 49, 527-537, 1997; (се)
Спап МУ.С.еї а!., У.Спет.Зос.Спет.Соттип., р.2209, 1995; «-
Сіагк МК. еї а1., У.Віої.Спет., 36, 21969-21977, 1996;
Бедавдо С. еї а!., Віоїесппоіоду апа Арріїей4 Віоспетівігу, 12, 119-128,1990; -
Е.ріск еї а!., Реріідез 1996. Ргосеєдіпоз ої (пе 24 Епгореап Реріїде Зутрозішт, Едіпригой, ЗсойМапа, 1997; с
Ееїїх А.М. еї аї., Іпї..Рерііде Ргоїеїіп Кез., 46, 253-264, 1995;
Рівй еї аІ,, Сепез апа ЮОемеіІортегпі, З, 1989, 198-211; -
Сгеепе Т.МУ. еї аі.. Ргоїесіїме Сгоиурз іп Огдапіс Зупіпевзів, допп УмМПеу апа Бопв, Іпс. Риб., рр.331-333, 1991;
Набреей А.5.Р.А. еї аї., Апаї.Віоспет., 14, 328-336, 1966. Наїтів 9У.М., Кем.Масготої. Спет.РПуз., С25, рр.325-76, 1985; «
Носагі еї а!., У.Меа.Спет., 30(4), 739-743, 1987;
Гм еї аї.. Іпі. 9У.Рерііде Ргоїеіп Кезв. 43, 1994, 127-138; - с Моптгагаїпі еї аї!., Віосоп.СНет., 6, 62-69, 1995; ч Могригоо еї а!., Віосоп.Спет., 7, 363-368, 1996; ,» Мигрпу, МУ.А. еї аі., Реріїде Кезеагспі, 1(1), 36, 1988;
Рапаеє С.5. еї а)., Ргос.Мак.Асайд.Зсі.О5А, 77, 895-899, 1980; запоге І. еї аї., Аррі.Віоспет.ВіогесппоїЇ., 27, 45, 1991; -і запоге І. еї аі., Арріїеа.Віоспет.Віоїесппо)., 31, 213-22, 1991; с Зітвз О.Е.С. єї аї., Апаї. Віоспет., 107, 60-63, 1980;
Тагп Р. еї аї.. Бігопуд асій дергоїесіоп ої зупіпеїййс рер-йдев. Іп Те Рерііде5, 9, 5.Одепітіепа апа -і У.Меїйепгрогег, едз.. Асадетіс Ргезв, МУ, рр. 185-248, 1987; шу 70 Мегопезе Г.М. еї аї., Аррі.Віоспет., 11, 141-152(1985);
Уатзвикі еї а!., Адгіс. Віої.Спет., 52, 2185-2196, 1988; 4; 7аїїрзКу 5. егаіІ., Роїутегіс Огидз апа Огид Оеїїмегу Зувіетв, адг: 9-110 АС5 Зутрозіцт зегіез 469, 1990, апа 7аїїрзКу 5. еї аіІ., Еигор.Роїут..)., 19, 1177-1183, 1983.
ПЕРЕЛІК ПОСЛІДОВНОСТЕЙ
(1) ЗАГАЛЬНА ІНФОРМАЦІЯ: о () ЗАЯВНИК (А) НАЗВА-АРРІИЕО КЕЗЕАКСН 5УЗТЕМ5 АК НОЇ ОІМО М.М. де (В) ВУЛИЦЯ: 14 ХОНМ В.СОБКБІКАУЕО (С) МІСТО: СОКАСАО 60 (Е) КРАЇНА: ТНЕ МЕТНЕКІ АОБ АМТІС Е5 (Р) ПОШТОВИЙ ІНДЕКС (7ІР): МОМЕ (б) ТЕЛЕФОН: 639300 (Н) ФАКС: 614129 (ї) НАЗВА ВИНАХОДУ: РІДИННОФАЗНЕ САЙТ-СПЕЦИФІЧНЕ ОТРИМАННЯ КОН'ЮГАТІВ 65 (її) ЧИСЛО ПОСЛІДОВНОСТЕЙ: І (м) ТИП КОМП'ЮТЕРНОГО ПРОЧИТАННЯ
(А) ТИП НОСІЯ: ГНУЧКИЙ ДИСК (В) КОМП'ЮТЕР: РС СУМІСНИЙ З ІВМ (С) ОПЕРАЦІЙНА СИСТЕМА: рс-дов/тв-дов (Б) ПРОГРАМНЕ ЗАБЕЗПЕЧЕННЯ: Раїепіїп Кеїеазе 241.0, Мегвіоп К 1.30 (ЕРО) (2) ДАНІ ДЛЯ ПОСЛІДОВНОСТІ ЗЕО ІО МО:1: () ХАРАКТЕРИСТИКИ ПОСЛІДОВНОСТІ: (А) ДОВЖИНА: 29 амінокислот (В) ТИП: амінокислотна 70 (С) ЛАНЦЮЖНІСТЬ (Б) ТОПОЛОГІЯ: лінійна (ї) ТИП МОЛЕКУЛИ: пептид (ії) ГІПОТЕТИЧНІСТЬ: НЕМАЄ (м) АНТИЧУТЛИВІСТЬ: НЕМАЄ (хї) ОПИС ПОСЛІДОВНОСТІ: 5ЕО ІО МО: І:

Claims (1)

  1. Формула винаходу 20 1. Спосіб сайт-специфічного одержання кон'югату ПОКЕ-РЕС, що містить одну або декілька ланок РЕС (у розрахунку на ПОРЕ), ковалентно зв'язаних щонайменше з одним з І уз 72, | ув?! і МА, який включає проведення реакції кон'югації між пептидом ПОКЕ і активованим РЕС у розчині при значенні рН 7-9 і виділення й очищення цільового кон'югату НОКЕ-РЕС з реакційної суміші.
    2. Спосіб за п. 1, у якому розчин являє собою концентрований водний розчин нікотинаміду або водний сч 25 буферний розчин денатуруючого агента.
    З. Спосіб за п. 71, у якому розчинник являє собою полярний органічний розчинник, вибраний з і) диметилсульфоксиду, суміші диметилформаміду і буфера або суміші ацетонітрилу і буфера.
    4. Спосіб за п. 1, у якому кон'югат НОКЕ-РЕС виділяють з реакційної суміші й очищають хроматографічними методами. Ге зо 5. Спосіб за будь-яким з попередніх пунктів, у якому пептид АОКЕ являє собою ПОКЕ(1-29)-МН» .
    6. Спосіб за п. 1, у якому перед реакцією кон'югації з РЕСО пептид ПОБЕ захищають по одному або декількох (87 з положень М", І ув? і І ув, М
    7. Спосіб за п. 1 або 6, який додатково включає зняття захисту після реакції кон'югації з РЕС.
    8. Спосіб за будь-яким з попередніх пунктів, у якому активований РЕС є алкілуючим або адилюючим РЕС у о з5 Ммонометоксильованій формі. ч-
    9. Спосіб за будь-яким з попередніх пунктів, у якому реакцію кон'югації з РЕС проводять при температурі навколишнього середовища.
    10. Кон'югат ПОКЕ-РЕС, що містить щонайменше одну ланку РЕС (у розрахунку на ПОКЕР), ковалентно « зв'язану щонайменше з одним з І уз 72, І ув?! і МА, 40 11. Кон'югат ПОРЕ-РЕС за п. 10, у якому одна ланка РЕС ковалентно зв'язана з І уз 72, т с 12. Кон'югат НОБЕ-РЕС за п. 10, у якому одна ланка РЕС ковалентно зв'язана з І ув7". » 13. Кон'югат НОБЕ-РЕС за п. 10, у якому одна ланка РЕС ковалентно зв'язана і з І ув 77, і з І ув",
    14. Кон'югат НОРБЕ-РЕС за п. 10, у якому одна ланка РЕС ковалентно зв'язана з кожним з І уз 12, І ув?! і МА,
    15. (Суз (Аїос)2211-НОРЕ, проміжна сполука в реакції кон'югації з РЕС за п. 1. -і 16. (МА -ізопропіл-ТУг!, І уз (АПос)12)-НОРЕ, проміжна сполука в реакції кон'югації з РЕС за п. 1.
    17. Кон'югати АЗКЕ-РЕС за пп. 10-14, застосовні як лікарський засіб. о 18. Застосування кон'югатів за будь-яким з пп. 10-14 у виробництві лікарського засобу для лікування, -І профілактики або діагностики порушень, пов'язаних з гормоном росту.
    19. Застосування за п. 18 у виробництві лікарського засобу для лікування або діагностики недостатності - гормону росту. Ф 20. Фармацевтична композиція, що містить кон'югати за будь-яким з пп. 10-14 разом з одним або декількома фармацевтично прийнятними носіями і/або наповнювачами. Ф) іме) 60 б5
UA2000063885A 1997-12-03 1998-01-12 Site-specific preparation of grf conjugated with polyethylene glycol UA73716C2 (en)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP97121264A EP0922446A1 (en) 1997-12-03 1997-12-03 Solution-phase site-specific preparation of GRF-PEG conjugates
PCT/EP1998/007748 WO1999027897A1 (en) 1997-12-03 1998-12-01 Site-specific preparation of polyethylene glycol-grf conjugates

Publications (1)

Publication Number Publication Date
UA73716C2 true UA73716C2 (en) 2005-09-15

Family

ID=8227732

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
UA2000063885A UA73716C2 (en) 1997-12-03 1998-01-12 Site-specific preparation of grf conjugated with polyethylene glycol

Country Status (30)

Country Link
US (3) US6528485B1 (uk)
EP (2) EP0922446A1 (uk)
JP (2) JP2001524505A (uk)
KR (1) KR100561768B1 (uk)
CN (1) CN1149967C (uk)
AR (1) AR017780A1 (uk)
AT (1) ATE236607T1 (uk)
AU (1) AU755285B2 (uk)
BG (1) BG64815B1 (uk)
BR (1) BR9815159A (uk)
CA (1) CA2312004C (uk)
DE (1) DE69813291T2 (uk)
DK (1) DK1037587T3 (uk)
EA (1) EA004269B1 (uk)
EE (1) EE200000319A (uk)
ES (1) ES2194376T3 (uk)
HK (1) HK1034203A1 (uk)
HU (1) HUP0100507A3 (uk)
IL (2) IL136551A0 (uk)
NO (1) NO327238B1 (uk)
NZ (1) NZ504570A (uk)
PL (1) PL192082B1 (uk)
PT (1) PT1037587E (uk)
SI (1) SI1037587T1 (uk)
SK (1) SK8242000A3 (uk)
TR (1) TR200001615T2 (uk)
TW (1) TWI254641B (uk)
UA (1) UA73716C2 (uk)
WO (1) WO1999027897A1 (uk)
ZA (1) ZA9811068B (uk)

Families Citing this family (47)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20010055581A1 (en) 1994-03-18 2001-12-27 Lawrence Tamarkin Composition and method for delivery of biologically-active factors
US6407218B1 (en) * 1997-11-10 2002-06-18 Cytimmune Sciences, Inc. Method and compositions for enhancing immune response and for the production of in vitro mabs
US7229841B2 (en) * 2001-04-30 2007-06-12 Cytimmune Sciences, Inc. Colloidal metal compositions and methods
AU9558901A (en) * 2000-10-05 2002-04-15 Ares Trading Sa Regioselective liquid phase pegylation
EP1234583A1 (en) * 2001-02-23 2002-08-28 F. Hoffmann-La Roche Ag PEG-conjugates of HGF-NK4
US20030171285A1 (en) * 2001-11-20 2003-09-11 Finn Rory F. Chemically-modified human growth hormone conjugates
ATE371680T1 (de) * 2002-01-16 2007-09-15 Biocompatibles Uk Ltd Polymerkonjugate
US7998705B2 (en) * 2002-08-06 2011-08-16 FUJIFILM Diosynth Biotechnologies U.S.A., Inc Increased dynamic binding capacity in ion exchange chromatography by addition of polyethylene glycol
MXPA05002991A (es) * 2002-09-18 2005-10-05 Univ Montreal Ct Hospitalier Chum Analogos de ghrh.
GB0301014D0 (en) * 2003-01-16 2003-02-19 Biocompatibles Ltd Conjugation reactions
US7662915B2 (en) * 2003-01-18 2010-02-16 Pegsphere Co., Ltd. Peptides having protected amines of untargeted sites, methods for production thereof and of specifically conjugated PEG peptides using the same
US20050058658A1 (en) * 2003-07-15 2005-03-17 Barros Research Institute Compositions and methods for immunotherapy of human immunodeficiency virus (HIV)
CA2532250A1 (en) * 2003-07-15 2005-02-03 Barros Research Institute Compositions and methods for immunotherapy of cancer and infectious diseases
JP2008504216A (ja) * 2003-12-02 2008-02-14 サイトイミューン サイエンシズ インコーポレイテッド モノクローナル抗体の生成のための方法および組成物
US20050175584A1 (en) * 2004-01-28 2005-08-11 Paciotti Giulio F. Functionalized colloidal metal compositions and methods
CN100355784C (zh) * 2004-02-12 2007-12-19 江苏恒瑞医药股份有限公司 聚乙二醇修饰α-干扰素1b的制备方法
US20050261475A1 (en) * 2004-02-13 2005-11-24 Harvard Medical School Solid-phase capture-release-tag methods for phosphoproteomic analyses
US6986264B1 (en) * 2004-07-15 2006-01-17 Carrier Corporation Economized dehumidification system
EP1824988B1 (en) 2004-11-12 2017-04-19 Bayer HealthCare LLC Site-directed modification of fviii
EP1907067B2 (en) 2005-07-26 2017-06-28 Solvay USA Inc. Polymers with pendant poly(alkyleneoxy) substituent groups and their use in personal care applications
US20070238656A1 (en) * 2006-04-10 2007-10-11 Eastman Kodak Company Functionalized poly(ethylene glycol)
US20080096819A1 (en) 2006-05-02 2008-04-24 Allozyne, Inc. Amino acid substituted molecules
EP2018437A2 (en) 2006-05-02 2009-01-28 Allozyne, Inc. Non-natural amino acid substituted polypeptides
DK2054074T3 (da) * 2006-08-04 2014-11-03 Prolong Pharmaceuticals Llc Modificeret erythropoietin
US20080083154A1 (en) * 2006-10-05 2008-04-10 Timothy M Gregory Bait retention fish hook
CA2707840A1 (en) 2007-08-20 2009-02-26 Allozyne, Inc. Amino acid substituted molecules
US20090104114A1 (en) * 2007-09-21 2009-04-23 Cytimmune Sciences, Inc. Nanotherapeutic Colloidal Metal Compositions and Methods
US20110014118A1 (en) * 2007-09-21 2011-01-20 Lawrence Tamarkin Nanotherapeutic colloidal metal compositions and methods
CA2706700A1 (en) 2007-11-08 2009-05-14 Cytimmune Sciences, Inc. Compositions and methods for generating antibodies
CA2742710A1 (en) * 2008-11-04 2010-05-14 Janssen Pharmaceutica Nv Crhr2 peptide agonists and uses thereof
KR101164453B1 (ko) 2009-03-20 2012-07-11 한미사이언스 주식회사 위치특이적 생리활성 폴리펩타이드 결합체의 제조방법
EP2421547A1 (en) * 2009-04-20 2012-02-29 Theratechnologies Inc. Use of (hexenoyl trans-3)hgrf(1-44)nh2 and ritonavir in combination therapy
US20100267636A1 (en) * 2009-04-20 2010-10-21 Theratechnologies Inc. Use of cytochrome p450-metabolized drugs and grf molecules in combination therapy
CN102869384B (zh) 2009-06-22 2016-01-13 伯纳姆医学研究所 使用带有c-端元件的肽和蛋白质的方法和组合物
EP2496248A2 (en) 2009-11-04 2012-09-12 Janssen Pharmaceutica, N.V. Method for treating heart failure with stresscopin-like peptides
WO2012118778A1 (en) 2011-02-28 2012-09-07 Sanford-Burnham Medical Research Institute Truncated car peptides and methods and compositions using truncated car peptides
WO2012142706A1 (en) 2011-04-21 2012-10-26 Theratechnologies Inc. Growth hormone releasing factor (grf) analogs and uses thereof
EP2715291A4 (en) 2011-05-31 2015-10-21 Airware Inc NON-DISPERSIVE GAS SENSORS WITH ABSORPTION INFRARED ABSORPTION (NDIR)
US10179801B2 (en) 2011-08-26 2019-01-15 Sanford-Burnham Medical Research Institute Truncated LYP-1 peptides and methods and compositions using truncated LYP-1 peptides
WO2013190520A2 (en) 2012-06-22 2013-12-27 The General Hospital Corporation Gh-releasing agents in the treatment of vascular stenosis and associated conditions
US10064940B2 (en) 2013-12-11 2018-09-04 Siva Therapeutics Inc. Multifunctional radiation delivery apparatus and method
WO2016187712A1 (en) 2015-05-28 2016-12-01 Institut National De La Recherche Scientifique Inhibitors of prototypic galectin dimerization and uses thereof
CN109153712B (zh) * 2016-04-19 2022-09-16 格里芬制药国际公司 Peg化生物活性肽及其用途
CN110317826B (zh) * 2019-05-22 2020-11-10 中国农业大学 调控PvGRF9含量或活性的物质在调控植物茎生长发育中的应用
WO2021133407A1 (en) 2019-12-27 2021-07-01 Compagnie Generale Des Etablissements Michelin Rubber mix with high specific surface area and high structure acetylene carbon black
US11623949B2 (en) 2021-01-28 2023-04-11 Talem Therapeutics Llc Anti-spike glycoprotein antibodies and the therapeutic use thereof
WO2024081918A1 (en) 2022-10-14 2024-04-18 Talem Therapeutics Llc Anti-trkb/cd3 antibodies and uses thereof

Family Cites Families (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4563352A (en) * 1982-10-04 1986-01-07 The Salk Institute For Biological Studies Human pancreatic GRF
ATE136315T1 (de) * 1989-05-27 1996-04-15 Sumitomo Pharma Verfahren für die herstellung von polyethylenglykolderivate und modifizierte proteine.
ZA914983B (en) * 1990-06-29 1992-03-25 Hoffmann La Roche His-grf-analogs
JP3051145B2 (ja) * 1990-08-28 2000-06-12 住友製薬株式会社 新規なポリエチレングリコール誘導体修飾ペプチド
JPH05507939A (ja) * 1991-04-09 1993-11-11 エフ・ホフマン―ラ ロシユ アーゲー 成長ホルモン放出因子の類似体
EP0518295A3 (en) * 1991-06-14 1993-09-01 Millipore Corporation Allyl side chain protection in peptide synthesis
FR2687681B1 (fr) * 1992-02-20 1995-10-13 Transgene Sa Conjugues polyethyleneglycol-hirudine, leur procede de preparation et leur emploi pour le traitement des thromboses.
US5932462A (en) * 1995-01-10 1999-08-03 Shearwater Polymers, Inc. Multiarmed, monofunctional, polymer for coupling to molecules and surfaces
WO1997017367A1 (en) * 1995-11-03 1997-05-15 Theratechnologies Inc. Method of grf peptides synthesis

Also Published As

Publication number Publication date
US6528485B1 (en) 2003-03-04
CN1280483A (zh) 2001-01-17
BG104484A (en) 2000-12-29
KR20010032494A (ko) 2001-04-25
ATE236607T1 (de) 2003-04-15
AR017780A1 (es) 2001-10-24
WO1999027897A9 (en) 1999-09-30
DE69813291D1 (de) 2003-05-15
EP0922446A1 (en) 1999-06-16
HUP0100507A2 (hu) 2001-08-28
JP2010024245A (ja) 2010-02-04
EP1037587A1 (en) 2000-09-27
NO20002664D0 (no) 2000-05-24
JP2001524505A (ja) 2001-12-04
EP1037587B1 (en) 2003-04-09
JP5431874B2 (ja) 2014-03-05
SK8242000A3 (en) 2001-01-18
SI1037587T1 (en) 2003-08-31
DE69813291T2 (de) 2003-11-13
US6869932B2 (en) 2005-03-22
US20040029794A1 (en) 2004-02-12
HUP0100507A3 (en) 2001-11-28
IL136551A (en) 2008-12-29
NO20002664L (no) 2000-07-13
DK1037587T3 (da) 2003-07-28
TR200001615T2 (tr) 2000-12-21
AU755285B2 (en) 2002-12-05
ES2194376T3 (es) 2003-11-16
EA004269B1 (ru) 2004-02-26
US7317002B2 (en) 2008-01-08
BR9815159A (pt) 2000-10-10
CN1149967C (zh) 2004-05-19
NO327238B1 (no) 2009-05-18
EA200000601A1 (ru) 2000-12-25
CA2312004A1 (en) 1999-06-10
ZA9811068B (en) 1999-06-28
BG64815B1 (bg) 2006-05-31
IL136551A0 (en) 2001-06-14
EE200000319A (et) 2001-08-15
NZ504570A (en) 2003-10-31
WO1999027897A1 (en) 1999-06-10
US20050159353A1 (en) 2005-07-21
TWI254641B (en) 2006-05-11
AU1563399A (en) 1999-06-16
PL192082B1 (pl) 2006-08-31
PT1037587E (pt) 2003-08-29
CA2312004C (en) 2009-05-19
PL341139A1 (en) 2001-03-26
HK1034203A1 (en) 2001-10-19
KR100561768B1 (ko) 2006-03-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
UA73716C2 (en) Site-specific preparation of grf conjugated with polyethylene glycol
US5661020A (en) Low diol polyalkylene oxide biologically active proteinaceous substances
JP2003206236A (ja) 接合安定化されたポリペプチド組成物
UA79430C2 (en) Method for the stepwise attachment of polyethylene glycol to polypeptide
KR20090089316A (ko) Peg 변형된 엑센딘 또는 엑센딘 유사체 및 조성물 및 이의 용도
JP2015512369A (ja) C1阻害剤のポリマーコンジュゲート
JP5458416B2 (ja) 二本鎖ポリエチレングリコール化成長ホルモン、その製造方法およびその使用
US5114926A (en) Tetrapeptide inhibiting the entry into cycle of hemopoietic stem cells processes for its preparation, and its uses
TW200944236A (en) G-CSF conjugates modified by water-soluble polymers
KR101104574B1 (ko) 폴리에틸렌글리콜로 화학적으로 수식된 인간 성장 호르몬, 이의 제조방법 및 용도
KR100550206B1 (ko) 상피세포성장인자와 폴리에틸렌글리콜의 접합체 및 이의제조방법
SK279227B6 (sk) Peptidy s ochrannou aktivitou na organizmus, terap
JPH06256394A (ja) 修飾インターロイキン6
Huang et al. A novel insulin derivative chemically modified with dehydrocholic acid: synthesis, characterization and biological activity
CN101385858A (zh) 纯化的peg化人生长激素缀合物及其药物制剂
KR20040066712A (ko) 인간 성장 호르몬의 결합체
CZ20002055A3 (cs) Způsob selektivní přípravy specifických konjugátů polyethylenglykol - GRF
MXPA00005138A (en) Site-specific preparation of polyethylene glycol-grf conjugates