PL177453B1 - Niederywatyzowany, rozpuszczalny w wodzie beta (1-3) glukan, sposób wytwarzania niederywatyzowanego,rozpuszczalnego w wodzie beta(1-3) glukanu i kompozycja zawierająca niederywatyzowany, rozpuszczalny w wodzie beta(1-3) glukan - Google Patents

Niederywatyzowany, rozpuszczalny w wodzie beta (1-3) glukan, sposób wytwarzania niederywatyzowanego,rozpuszczalnego w wodzie beta(1-3) glukanu i kompozycja zawierająca niederywatyzowany, rozpuszczalny w wodzie beta(1-3) glukan

Info

Publication number
PL177453B1
PL177453B1 PL93307567A PL30756793A PL177453B1 PL 177453 B1 PL177453 B1 PL 177453B1 PL 93307567 A PL93307567 A PL 93307567A PL 30756793 A PL30756793 A PL 30756793A PL 177453 B1 PL177453 B1 PL 177453B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
glucan
soluble
neutral
glucans
yeast
Prior art date
Application number
PL93307567A
Other languages
English (en)
Other versions
PL307567A1 (en
Inventor
Spiros Jamas
Davidson D. Easson Jr
Gary R. Ostroff
Original Assignee
Alpha Beta Technology
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=25464815&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=PL177453(B1) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Alpha Beta Technology filed Critical Alpha Beta Technology
Publication of PL307567A1 publication Critical patent/PL307567A1/xx
Publication of PL177453B1 publication Critical patent/PL177453B1/pl

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/70Carbohydrates; Sugars; Derivatives thereof
    • A61K31/715Polysaccharides, i.e. having more than five saccharide radicals attached to each other by glycosidic linkages; Derivatives thereof, e.g. ethers, esters
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/70Carbohydrates; Sugars; Derivatives thereof
    • A61K31/715Polysaccharides, i.e. having more than five saccharide radicals attached to each other by glycosidic linkages; Derivatives thereof, e.g. ethers, esters
    • A61K31/716Glucans
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P17/00Drugs for dermatological disorders
    • A61P17/02Drugs for dermatological disorders for treating wounds, ulcers, burns, scars, keloids, or the like
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04Antibacterial agents
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/12Antivirals
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P37/00Drugs for immunological or allergic disorders
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P37/00Drugs for immunological or allergic disorders
    • A61P37/02Immunomodulators
    • A61P37/04Immunostimulants
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P43/00Drugs for specific purposes, not provided for in groups A61P1/00-A61P41/00
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P7/00Drugs for disorders of the blood or the extracellular fluid
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C08ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08BPOLYSACCHARIDES; DERIVATIVES THEREOF
    • C08B37/00Preparation of polysaccharides not provided for in groups C08B1/00 - C08B35/00; Derivatives thereof
    • C08B37/0006Homoglycans, i.e. polysaccharides having a main chain consisting of one single sugar, e.g. colominic acid
    • C08B37/0024Homoglycans, i.e. polysaccharides having a main chain consisting of one single sugar, e.g. colominic acid beta-D-Glucans; (beta-1,3)-D-Glucans, e.g. paramylon, coriolan, sclerotan, pachyman, callose, scleroglucan, schizophyllan, laminaran, lentinan or curdlan; (beta-1,6)-D-Glucans, e.g. pustulan; (beta-1,4)-D-Glucans; (beta-1,3)(beta-1,4)-D-Glucans, e.g. lichenan; Derivatives thereof
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02ATECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Materials Engineering (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Dermatology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Diabetes (AREA)
  • Polysaccharides And Polysaccharide Derivatives (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Emergency Lowering Means (AREA)

Abstract

1. Niederywatyzowany, rozpuszczalny w wodzie ß (1-3)glukan, pochodzacy z drozdzy lub z calych czastek glukanu pochodza- cych z drozdzy, o konformacji potrójnego heliksu, majacy wlasciwosci immunostymulujace, i ciezar czasteczkowy od 30 000 do 500.000. 2 K om pozycja m ajaca wlasciwosci immunostymulacyjne, znam ienna tym , ze zawiera niederywatyzowany, rozpuszczal- ny w wodzie ß ( 1 -3)glukan (pochodzacy z drozdzy lub z calych czastek glukanu pochodzacych z drozdzy) o konformacji po- trójnego heliksu i fizjologicznie dopuszczalny nosnik, gdzie niede- rywatyzowany rozpuszczalny w wodzie ß ( 1-3)glukan konformacji potrójnego heliksu ma ciezar czasteczkowy od 30.000 do 500.000, korzystnie 30.000 do 300.000 dla glukanu z drozdzy lub calych czastek glukanu pochodzacych z drozdzy 5. Sposób wytwarzania niederywatyzowanego, rozpuszczal- nego w w'odzie ß ( 1-3)glukanu o ciezarze czasteczkowym od 30.000 do 500 000 o konformacji potrójnego heliksu, z n a - mienny tym , ze a) na zawiesine nierozpuszczalnego glukanu (pochodzace- go z drozdzy lub z calych czastek glukanu pochodzacych z drozdzy), dziala sie kwasem organicznym w celu rozpuszczenia czesci glukanu rozpuszczalnej w wodzie; b) na glukan rozpuszczalny w kwasie dziala sie alkaliami aby denaturowac natywna konformacje rozpuszczalnego glukanu; c) zobojetnia sie roztwór zawierajacy denaturowany roz- puszczalny glukan aby reasocjowac rozpuszczalny glukan; i d) oczyszcza sie reasocjowany rozpuszczalny glukan, otrzymujac niederywatyzowany, rozpuszczalny w wodzie ß (1- 3)glukan o konformacji potrójnego heliksu FIG. 1 PL PL PL

Description

We wczesnych latach 1960-tych zauważono, że zymosan, surowy, nierozpuszczalny ekstrakt z drożdży, otrzymany przez gotowanie drożdży przed i po obróbce trypsyną, wywołuje znaczną hiperplazję i pobudzenie funkcjonalne układu siateczkowo-śródbłonkowego u królików. W badaniach na zwierzętach wykazano, że preparaty zymosanu inaktywują komponent C3 dopełniacza, zwiększając produkcję przeciwciał, sprzyjając przeżyciom po napromieniowaniu, zwiększając odporność na zakażenia bakteryjne i hamując wywołaną dietą, hipercholsterolemię i cholesterolozę. Wykazano, że zymosan składa się z polisacharydów, białek, tłuszczów i pierwiastków nieorganicznych; jednakże późniejsze badania zidentyfikowały składniki czynne ścianki komórki drożdży jako czysty polisacharyd, w szczególności β-glukan. W konwencjonalnej nomenklaturze β-glukan jest znany jako poli-(1-6)-p-O-glukopiranozylo(1-3)-e-D-glukopiranoza (PGG). Powtórzenie badań biologicznych z β-glukanem wykazało, że większość z powyższych czynności funkcjonalnych zidentyfikowanych dla zymosanu jest utrzymana przez oczyszczony preparat β-glukanu.
Właściwości β-glukanu są podobne do właściwości endotoksyn jeśli chodzi o zwiększanie nieswoistej odporności immunologicznej i odporności na zakażenie. Właściwości β-glukanu jako adiuwanta immunologicznego i stymulatora hemopoetycznego są porównywalne z właściwościami bardziej złożonych modyfikatorów odpowiedzi biologicznej (BRMS), takich jak bacillus Calmette-Guerin (BCG) i Corynebacterium parvum. Czynności funkcjonalne drożdżowego β-glukanu są porównywalne również z właściwościami podobnych strukturalnie polimerów węglowodanowych wyizolowanych z grzybów i roślin. Te (1-3)-β-D-glukany o wyższym ciężarze cząsteczkowym, takie jak schizophyllan, lentinan, krestin, grifolan i pachyman wykazują podobne właściwości immunomodulujące. Wspólny mechanizm wszystkich tych preparatów β-glukanu polega na stymulowaniu przez nie cytokin, takich jak interleukina-1 (IL-1) i czynnik martwicy nowotworu (TNF). Badano szeroko właściwości przeciwnowotworowe lentinanu, zarówno na modelach zwierzęcych w dawce 1 mg/kg przez 10 dni jak i w badaniach klinicznych, przeprowadzonych w późnych latach 1970-tych w Japonii na zaawansowanym lub nawracającym chłoniaku złośliwym oraz rakach okrężnicy, sutka, płuc i żołądka. W chemioterapii raka lentinan podawano domięśniowo (i.m.) lub dożylnie (i.v.) w dawce 0,5-5 mg/dzień, dwa lub trzy razy w tygodniu pojedynczo lub w kombinacji z lekami przeciwnowotworowymi. Badania sugerowały, że oprócz czynności przypisywanych glukanom drożdżowym lentinan działa jako immunopotencjator komórek T, indukując czynności cytotoksyczne, w tym produkcję interleukin 1 i 3 i czynników stymulujących kolonizację (CSF). (Chihara i współpr., 1989, Int. J. Immunotherapy, 4:145-154; Hamuro i Chihara, w: Lentinan, An Immunopotentiator).
Na modelach zwierzęcych badano w celu ustalenia czynności biologicznych różne preparaty β-glukanów zarówno cząstkowych jak i rozpuszczalnych. Na modelach zwierzęcych wykazano, że zastosowanie rozpuszczalnych i nierozpuszczalnych β-glukanów pojedynczo lub jako adiuwantów szczepionek znacznie zwiększa oporność na wiele zakażeń bakteryjnych, grzybicznych, pierwotniakowych i wirusowych. Działania krwiotwórcze β-glukanu skorelowano ze zwiększoną liczbą leukocytów krwi obwodowej oraz ze zwiększoną liczbą komórek szpiku kostnego i śledziony, odzwierciedlającą zwiększoną liczbę komórekprzodków granulocytów-makrofagów, wieloróżnicujących się komórek macierzystych śledziony i czerwonawych komórek macierzystych, jak również zwiększony poziom we krwi czynnika stymulującego kolonizację granulocytów-monocytów (GM-CSF). Ponadto działanie krwiotwórcze i anty-infekcyjne β-glukanu były widoczne u zwierząt z odpornością immunologiczną obniżoną cyklofosfamidem. Wykazano korzystne działanie β-glukanu w zwierzęcych modelach urazu, gojenia ran i nowotworzenia. Jednakże różne nierozpuszczalne i rozpuszczalne preparaty β-glukanu różniły się znacznie specyficznością biologiczną i siłą działania, zaś dawki efektywne w modelach zabezpieczania przed zakażeniem i hemopoezy zawarte były w zakresie od 25 do 500 mg/kg dożylnie lub dootrzewnowo (i.p.). Preparaty nierozpuszczalne wykazywały niepożądane właściwości toksykologiczne, manifestujące się powiększeniem wątroby i śledziony oraz tworzeniem się ziarniniaka. Zainteresowanie kliniczne skupiło się na rozpuszczalnym preparacie glukanu, który zatrzymałby czynność biologiczną mając jednakże zaniedby walną toksyczność przy podawaniu systemicznym. Przewlekłe systemiczne
177 453 podawanie rozpuszczalnego, fosforylowanego glukanu w szerokim zakresie dawek (401000 mg/kg) dawało zaniedbywalną toksyczność u zwierząt (DiLuzio i współpr., 1979, Int. J. of Cancer, 24:773-779: DiLuzio, patent USA 4739046).
Mechanizm molekularny działania β-głukanu udowodniono przez wykazanie obecności specyficznych miejsc wiążących receptora β-glukanu na błonach komórkowych ludzkich neutrofili i makrofagów. Mannany, galaktany, α(1-4)-połączone polimery glukozy i β(1-4)połączone polimery glukozy nie mają powinowactwa do tego receptora. Te miejsca wiążące β-glukan są opsonino-niezależnymi receptorami fagocytowymi dla szczególnych aktywatorów alternatywnej ścieżki dopełniacza, podobnie jak lipopolisacharydy Escherichia coli (LPS) i niektóre zwierzęce czerwone krwinki. Ligand wiążąc się z receptorem β-glukanu, w nieobecności przeciwciał, powoduje aktywację dopełniacza, fagocytozę, uwalnianie enzymu lizosomalnego i tworzenie prostaglandyn, tromboksanu i leukotrienu, zwiększając w ten sposób nieswoistą odporność na zakażenie. Jednakże rozpuszczalne preparaty β-glukanu opisane w stanie techniki powodują stymulację cytokin. In vivo obserwowano, oprócz wzrostu poziomu TNF, wzrost poziomów w osoczu i śledzionie interleukin 1 i 2 (IL-1, IL-2), korespondujący z indukcją syntezy tych cytokin in vitro. (Patrz Sherwood i współpr., 1987, Int. J. Immunopharmac., 9:261-267 (wzrost poziomów IL-1 i IL-2 u szczurów po iniekcji rozpuszczalnego glukanu); Williams i współpr., 1988, Int. J. Immunopharmac., 10:405-414 (systemiczne podawanie rozpuszczalnego glukanu pacjentom chorym na AIDS zwiększało poziomy IL-1 i IL-2, czemu towarzyszyły dreszcze i gorączka); Browder i współpr., 1990, Ann. Surg., 211:605-613 (podawanie glukanu pacjentom po urazie zwiększało poziomy IL-1 w osoczu, ale nie zwiększało poziomów TNF); Adachi i współpr., 1990, Chem. Pharm. Buli., 38:988-992 (sieciowane chemicznie P(1-3)glukany indukowały wytwarzanie IL-1 u myszy).
Interleukina-1 jest podstawowym mediatorem immunologicznym, biorącym udział w komórkowych mechanizmach obronnych. Przeprowadzono wiele badań nad zastosowaniem IL-1 do zwiększania nieswoistej odporności na zakażenia w wielu stanach klinicznych (Pomposelli i współpr., J. Parent. Ent. Nutr. 12(2):212-218, (1988)). Głównym problemem związanym z nadmierną stymulacją lub egzogennym podawaniem IL-1 i innych mediatorów komórkowych u ludzi jest toksyczność i działania uboczne wynikające z zerwania delikatnej równowagi sieci immunoregulacyjnej (Fauci i współpr., Ann. Int. Med., 106:421-433 (1987)). IL-1 jest cytokiną zapalną, która wpływa szkodliwie na wiele tkanek i narządów. Wykazano na przykład, że rekombinacyjna IL-1 powoduje śmierć, wstrząs hipotensyjny, leukopenię, trombocytopenię, anemię i kwasicę mleczanową. Ponadto IL-1 indukuje wydalanie sodu, anoreksję, sen wolnofalowy, resorpcję kości, zmniejsza poziom odczuwania bólu i ekspresję wielu cytokin związanych ze stanem zapalnym. Jest ona również toksyczna dla wydzielających insulinę trzustkowych komórek beta. Pacjenci cierpiący na wiele chorób zapalnych mają podwyższone układowe poziomy IL-1. Podawanie środków dodatkowo zwiększających produkcję IL-1 tylko pogarsza te stany zapalne.
W zakażenie, stany zapalne i raka zaangażowany jest także czynnik martwicy nowotworu. Małe ilości TNF uwalniają czynniki wzrostu, natomiast w większych ilościach TNF może powodować wstrząs septyczny, bóle, gorączkę, krzepnięcie krwi, degradację kości i stymulację białych krwinek oraz innych obronnych odpowiedzi immunologicznych.
Wynalazek dotyczy obojętnych, rozpuszczalnych β-glukanów, które zwiększają obronne mechanizmy immunologiczne organizmu, ale nie indukują odpowiedzi zapalnej, preparatów zawierających obojętne, rozpuszczalne β-glukany, oraz nowych sposobów ich wytwarzania. W sposobie według wynalazku rozpuszczalny glukan, który indukuje produkcję cytokin, przetwarza się na drodze serii specjalnych etapów obróbki kwasowej, alkalicznej i obojętnej, otrzymując konformacyjnie czysty, obojętny, rozpuszczalny preparat glukanu o szczególnych właściwościach biologicznych. Obojętny, rozpuszczalny preparat glukanu zatrzymuje specyficznych podzbiór właściwości immunologicznych właściwy dla β-glukanów, ale wyjątkowo nie indukuje produkcji IL-1 i TNF in vitro lub in vivo. W opisie niniejszym, jeśli nie wskazano inaczej, określenia „obojętny, rozpuszczalny glukan” i „obojętny, rozpuszczalny β-glukan” odnoszą się do kompozycji otrzymanych w sposób opisany w przykładzie I.
ΠΊ 453
Rozpuszczalny, obojętny preparat glukanu wytwarza się przez działanie na nierozpuszczalny glukan kwasem z wytworzeniem glukanu rozpuszczalnego w wodzie, dysocjację konformacji natywnych rozpuszczalnego glukanu w pH alkalicznym, oczyszczenie frakcji o pożądanym ciężarze cząsteczkowym przy pH alkalicznym, re-asocjację zdysocjowanej frakcji glukanu w kontrolowanych warunkach czasu, temperatury i pH z utworzeniem specyficznej konformacji potrójnego heliksu, a następnie oczyszczanie w obojętnym pH w celu usunięcia pojedynczego heliksu i materiałów zagregowanych, z wytworzeniem konformacyjnie czystego, obojętnego, rozpuszczalnego w wodzie niederywatyzowanego glukanu, który ma specyficzny profil biologiczny.
Rozpuszczalny, obojętny preparat glukanu ma wysokie powinowactwo do receptora β-glukanu monocytów ludzkich i zatrzymuje dwie podstawowe czynności biologiczne, (1) zwiększanie czynności mikrobiologicznej komórek fagocytarnych, i (2) czynności krwiotwórczej monocytów, krwinek białych obojętnochłonnych i płytek. W przeciwieństwie do nierozpuszczalnych glukanów opisanych w stanie techniki, rozpuszczalny, obojętny glukan według wynalazku ani nie indukuje zwiększania produkcji IL-1 i TNF in vitro i in vivo, ani nie wpływa na zwiększanie produkcji przez komórki monojądrzaste.
Niederewatyzowany, rozpuszczalny w wodzie β(1-3) glukan, pochodzący z drożdży lub z całych cząstek glukanu pochodzących z drożdży według wynalazku, ma konformację potrójnego heliksu i właściwości immunostymulujące oraz ciężar cząsteczkowy od 30.000 do 500.000.
Rozpuszczalny, obojętny preparat glukanu jest odpowiedni do podawania pozajelitowego (na przykład dożylnego, dootrzewnowego, podskórnego), miejscowego, doustnego lub donosowego ludziom i zwierzętom jako środek anty-infekcyjny do zwalczania infekcji związanych z poparzeniami, operacjami chirurgicznymi, chemioterapią, zaburzeniami szpiku kostnego i innymi stanami, w których może być obniżona odporność immunologiczna. Rozpuszczalny, obojętny glukan otrzymywany sposobem według wynalazku może być utrzymywany w klarownym roztworze i równowagowany w dopuszczalnym farmaceutycznie nośniku. Bezpieczne i skuteczne preparaty rozpuszczalnego, obojętnego glukanu według wynalazku mogą być stosowane w terapii i/lub profilaktyce ludzi i zwierząt do zwiększania ich odpowiedzi immunologicznej, bez stymulowania produkcji niektórych mediatorów biochemicznych (na przykład IL-1 i TNF), które mogą być przyczyną, szkodliwych działań ubocznych, takich jak gorączka i stan zapalny.
Kompozycje według wynalazku, mają właściwości immunostymulacyjne ponieważ zawieraj aniedeiywytyzowanyr rozpuszczalyy w wodeie β(1 -3)gHiaan o0co°dzący zdrżżżyy lub z całych cząsteczek glukanu pochodzących z drożdży o konformacji potrójnego heliksu i ciężarze cząsteczkowym od -0.000 do 500.000, korzystnie od -0.000 do 300.000 i fizjologicznie dopuszczalny nośnik.
Krótki opis figur
Figura 1 przedstawia ogólną strukturę rozpuszczalnego, obojętnego glukanu jako liniowego e(1-3)-połączonego polimeru glukozy, mającego periodyczne rozgałęzienia poprzez pojedyncze e(1-3)-połącz.one ugrupowania glukozy.
Figura 2 przedstawia chromatogram żelowy (pH 7) rozpuszczalnego glukanu, nieoczyszczonego przez dysocjację alkaliczną i re-asocjację. Chromatogram pokazuje trzy rodzaje cząsteczek, określane jako agregat wysokocząsteczkowy (Ag), Pik A i Pik B (glukan z pojedynczym heliksem).
Figura 3 jest chromatogramem otrzymanym dla obojętnego, rozpuszczalnego glukanu za pomocą chromatografii żelowej. Linia ciągła przedstawia obojętny, rozpuszczalny glukan przy pH 7, a linia przerywana przedstawia obojętny, rozpuszczalny glukan przy pH 1-.
Figura 4 jest chromatogramem otrzymanym dla β-glukanu z pojedynczym heliksem (Pik B) przez chromatografię żelową. Linia ciągła przedstawia Pik B przy pH 7, a linia przerywana przedstawia Pik B przy pH 1-.
Figura 5 pokazuje zmianę poziomów IL-1 w czasie w osoczu pobranym od pacjentów, którym dożylnie podawano infuizję z placebo (linia przerywana) lub obojętnego, rozpuszczalnego glukanu (linia stała).
177 453
Figura 6 przedstawia zmianę poziomów TNF w czasie w osoczu pobranym od pacjentów, którym dożylnie podawano infUzję placebo (linia przerywana) łub obojętnego, rozpuszczalnego glukanu (linia stała).
Figura 7 jest wykresem, przedstawiającym analizę krwi obwodowej napromieniowanych myszy po podaniu obojętnego, rozpuszczalnego glukanu.
Figura 8 jest wykresem, przedstawiającym analizę krwi obwodowej myszy leczonych cis-plaayną.po podaniu obojętnego, rozpuszczalnego glukanu.
Wynalazek dotyczy obojętnego, rozpuszczalnego polimeru β-glukanu, który może wiązać się z receptorem β-glukanu i aktywuje tylko pożądany podzestaw odpowiedzi immunologicznych. Określenia „obojętny, rozpuszczalny β-glukan” i „obojętny, rozpuszczalny glukan”, jeśli nie podano inaczej, odnoszą się do kompozycji otrzymanej w sposób opisany w przykładzie I.
Wykazano, że ten „obojętny, rozpuszczalny β-glukan” zwiększa liczbę krwinek białych obojętnochłonnych i monocytów, jak również ich zdolność bezpośredniego zwalczania zakażenia (fagocytoza i zabijanie mikroorganizmów·). Jednakże obojętny, rozpuszczalny β-glukan nie stymuluje produkcji mediatorów biochemicznych, takich jak IL-1 i TNF, które mogą powodować szkodliwe działania uboczne, takie jak wysoka gorączka, stan zapalny, wyniszczenie i niewydolność narządów. Te korzystne właściwości sprawiają, że obojętne, rozpuszczalne preparaty β-glukanu według wynalazku są użyteczne w zapobieganiu i leczeniu zakażeń, ponieważ selektywnie aktywują tylko te składniki układu immunologicznego, które są odpowiedzialne za początkową odpowiedź na zakażenie, bez stymulowania uwalniania niektórych mediatorów biochemicznych, które mogą powodować szkodliwe działania uboczne. Roztwór zawierający obojętny, rozpuszczalny β-glukan nie ma także toksyczności, wspólnej wielu środkom immunomodulującym.
Obojętne, rozpuszczalne β-glukany według wynalazku składają się z monomerów glukozy zorganizowanych w postaci β(1-3)-związanego szkieletu glukopiranozy z okresowymi odgałęzieniami poprzez wiązania glikozydowe β(1-6). Obojętne, rozpuszczalne preparaty glukanu zawierają glukany, które nie zostały w znaczącym stopniu zmodyfikowane przez podstawienie grupami funkcyjnymi (na przykład naładowanymi) lub innymi kowalencyjnymi podstawnikami. Ogólna struktura obojętnego, rozpuszczalnego glukanu jest przedstawiona na fig. 1. Czynny biologicznie preparat według wynalazku jest konformacyjnie oczyszczoną postacią β-glukanu, wytworzoną przez dysocjację natywnych konformacji β-glukanu i reasocjację oraz oczyszczanie uzyskanej specyficznej konformacji potrójnego heliksu. Specyficzna konformacja obojętnego, rozpuszczalnego glukanu przyczynia się do zdolności glukanu do selektywnej aktywacji układu immunologicznego bez stymulowania produkcji szkodliwych mediatorów biochemicznych.
Obojętne, rozpuszczalne preparaty glukanu według wynalazku wytwarza się z nierozpuszczalnych cząstek glukanu, korzystnie z cząstek pochodzących z organizmów drożdży. Ogólna procedura otrzymywania nierozpuszczalnych glukanów drożdżowych, patrz Manners i współpr., Biochem. J., 135: 19-30 (1973). Cząstkami glukanu szczególnie użytecznymi jako materiały wyjściowe w wynalazku są całe cząstki glukanu (WGP), opisane przez Jamasa i współpr. w opisach patentowych USA o nr 4810646, 4992540, 5082936 i 5028703. Źródłem całych cząstek glukanu może być szerokie spektrum organizmów drożdży zawierających glukan, które zawierają β-glukan w ścianach komórkowych. Szczególnie użyteczne są całe cząstki glukanu otrzymane ze szczepów Saccharomyces cerevisiae R4 (NRRL Y-15903: depozyt złożony w związku z patentem USA nr 4810646) i R4 Ad (ATCC nr 74181). Do innych szczepów drożdży, które mogą być stosowane należą Saccharomyces delbruecki, Saccharomyces rosei, Saccharomyces microellipsodes, Saccharomyces carlsbergensis, Schizosaccharomyces pombe, Kluyveromyces lactis, Kluyveromyces fragilis, Kluyveromyces polysporus, Candida albicans, Candida colacae, Candida tropicalis, Candida utilis, Hansenula wingeri, Hansenula arni, Hansenula henricii, Hansenula americana.
Procedura ekstrakcji całych cząstek glukanu została opisana przez Jamasa i współpr. w opisach patentowych USA nr 4810646, 4992540, 5082936 i 5028703. Dla celów mniejszego wynalazku nie jest konieczne przeprowadzenie etapów końcowej ekstrakcji organicznej i przemywania, opisanych przez Jamasa i współpr.
177 453
W sposobie według wynalazku całe cząstki glukanu zawiesza się w roztworze kwaśnym w warunkach wystarczających do rozpuszczenia rozpuszczalnej w kwasie części glukanu. Dla większości glukanów wystarczający jest roztwór kwasu o pH od około 1 do około 5 i temperatura od około 20 do około 100°C. Jako kwas stosuje się kwas organiczny, zdolny do rozpuszczania rozpuszczalnej w kwasie części glukanu. Szczególnie użyteczne do tego celu są kwas octowy, w stężeniach od około 0,1 do około 5 M lub kwas mrówkowy w stężeniach od około 50% do 98% (w/v). Czas działania może zmieniać się od 10 minut do około 20 godzin, zależnie od stężenia kwasu, temperatury i źródła całych cząstek glukanu. Na przykład glukany modyfikowane, mające więcej rozgałęzień β(1-6) niż glukany naturalne lub glukany typu dzikiego wymagają ostrzejszych warunków, to jest dłuższych czasów ekspozycji i wyższych temperatur. Etap działania kwasem może być powtarzany w warunkach podobnych lub zmienionych. Jeden z preferowanych sposobów obróbki opisany jest w przykładzie przy użyciu glukanu pochodzącego ze szczepu R4 Ad S. cerevisiae. W innej odmianie sposobu według wynalazku stosuje się całe cząstki glukanu pochodzące ze szczepu S. cerevisiae R4, mające wyższy poziom rozgałęzienia β(1-6) niż glukan naturalny, a działanie kwasem prowadzi się stosując 90% (w/v) kwas mrówkowy w 20°C przez około 20 minut, a następnie w 85°C przez około 30 minut.
Następnie nierozpuszczalne cząstki glukanu oddziela się od roztworu za pomocą odpowiedniej techniki separacji, na przykład wirowania lub filtracji. pH uzyskanej zawiesiny ustawia się za pomocą związku zasadowego, takiego jak wodorotlenek sodu, na pH około 7 do około 14. Precypitat zbiera się przez wirowanie i gotuje się w oczyszczonej wodzie (na przykład według USP) przez 3 godziny. Następnie zawiesinę ponownie zawiesza się w gorącej zasadzie, mającej stężenie wystarczające do solubilizacji polimerów glukanu. Do związków zasadowych, które mogą być stosowane w tym etapie należą wodorotlenki metali alkalicznych lub metali ziem alkalicznych, takie jak wodorotlenek sodu lub wodorotlenek potasu, mające stężenie od około 0,01 do około 10 N. Etap ten może być prowadzony w temperaturze od około 4°C do około 121°C, korzystnie od około 20°C do około 100°C. W jednej z odmian sposobu stosuje się warunki: 1 M roztwór wodorotlenku sodu w temperaturze około 80-100°C i czas kontaktu około 1-2 godziny. Uzyskana mieszanina zawiera solubilizowane cząsteczki glukanu i pozostałość cząstkowego glukanu i na ogół ma ciemnobrązowy kolor, spowodowany utlenieniem zanieczyszczających białek i cukrów. Cząstkową pozostałość usuwa się z mieszaniny za pomocą dowolnej odpowiedniej techniki, na przykład wirowania i/lub filtracji. W innej odmianie sposobu rozpuszczalne w kwasie glukany wytrąca się po uprzedniej reakcji hydrolizy przez dodanie około 1,5 objętości etanolu. Mieszaninę chłodzi się do około 4°C przez dwie (2) godziny, a uzyskany precypitat oddziela się przez wirowanie lub filtrację i przemywa wodą. Następnie peletkę ponownie zawiesza się w wodzie i miesza przez trzy (3) do 12 (dwunastu) godzin w temperaturze między około 20°C a 100°C. W tym punkcie pH ustawia się na około 10 do 13 za pomocą zasady, takiej jak wodorotlenek sodu.
Uzyskany roztwór zawiera zdysocjowane, rozpuszczalne cząsteczki glukanu. Roztwór ten następnie oczyszcza się w celu usunięcia śladów nierozpuszczalnego glukanu i wysokocząsteczkowych rozpuszczalnych glukanów, które mogą powodować agregację. Ten etap może być prowadzony za pomocą odpowiedniej techniki oczyszczania, na przykład za pomocą ultrafiltracji z wykorzystaniem membran o nominalnych poziomach ciężarów cząsteczkowych (NMW) lub cut-off w zakresie od około 1.000 do 100.000. Odkryto, że w celu zapobieżenia stopniowej agregacji lub precypitacji polimerów glukanu korzystna membrana dla tego etapu ma nominalny ciężar cząsteczkowy lub cut-off około 100.000. Następnie rozpuszczalny glukan oczyszcza się dodatkowo przy pH zasadowym w celu usunięcia materiałów o niskim ciężarze cząsteczkowym. Ten etap może być prowadzony za pomocą dowolnej techniki oczyszczania, na przykład za pomocą ultrafiltracji, przy wykorzystaniu membran o nominalnych ciężarach cząsteczkowych lub cut-off w zakresie 1.000 do 30.000.
Uzyskany zdysocjowany rozpuszczalny glukan poddaje się re-asocjacji w warunkach kontrolowanego czasu (na przykład od około 10 do około 120 minut), temperatury (na przykład od około 50 do około 70°C) i pH. pH roztworu ustawia się w zakresie około 3,5-11 (korzystnie 6-8) za pomocą kwasu, takiego jak kwas chlorowodorowy. Celem tego etapu re8
177 453 asocjacji jest spowodowanie ponownej zmiany konformacji rozpuszczalnego glukanu z konformacji pojedynczego heliksu do nowej konformacji potrójnego heliksu. Następnie roztwór re-asocjowanego glukanu frakcjonuje się według wielkości, na przykład stosując ultrafiltry membranowe o cut-off 30.000-70.000 nMw i 100.000-500.000 NMW w celu selektywnego usunięcia wysoko- i niskocząsteczkowych rozpuszczalnych glukanów1.
W celu otrzymania glukanów o odpowiedniej masie cząsteczkowej, po etapie reasocjacji (etap c w sposobie wg. wynalazku), oczyszcza się reasocjowany rozpuszczalny glukan (etap d w sposobie wg. wynalazku), stosując przeponowy ultrafiltr odcinający dla nominalnej masy cząsteczkowej 30.000 do 100.000 i przeponowy ultrafiltr odcinający dla nominalnej masy cząsteczkowej 150.000 do 500.000. Przed rozdziałem według wielkości rozpuszczalne glukany istnieją w postaci mieszaniny konformacji, w tym statystycznych zwojów, matryc lub agregatów żelowych, potrójnych heliksów i pojedynczych heliksów. Celem etapu rozdziału według wielkości jest otrzymanie wzbogaconej frakcji reasocjowanej konformacji o szczególnym ciężarze cząsteczkowym. Kolejność stosowania ultrafiltrów jest sprawą preferencji.
Otrzymana zatężona frakcja jest wzbogacona w rozpuszczalny, biologicznie czynny obojętny rozpuszczalny glukan. Koncentrat glukanu oczyszcza się dodatkowo, na przykład przez diafiltrację przy użyciu membrany 10.000. Korzystne stężenie rozpuszczalnego glukanu po tym etapie wynosi od około 2 do około 10 mg/ml.
Zobojętniony roztwór może być następnie dodatkowo oczyszczany, na przykład przez diafiltrację przy użyciu dopuszczalnego farmaceutycznie medium (na przykład jałowa woda do iniekcji, solanka buforowana fosforanem (PBS), solanka izotoniczna, dekstroza) odpowiedniego do podawania pozajelitowego. Korzystną, membraną do tego etapu diafiltracji jest membrana a cut-off nominalnego ciężaru cząsteczkowego około 10.000. Końcowe stężenie roztworu glukanu reguluje się w zakresie od 0,5 do 10 mg/ml. Zgodnie ze standardami produkcji farmaceutycznej roztwór może być na końcu wyjaławiany przez filtrację poprzez filtr 0,22 gm. Obojętny, rozpuszczalny preparat glukanu otrzymany tym sposobem jest jałowy, nie-antygenny, zasadniczo pozbawiony pirogenów i może być przechowywany w wydłużonym czasie w temperaturze pokojowej (na przykład 15-30°C) bez degradacji. Sposób ten jest unikalny pod tym względem, że uzyskuje się obojętny roztwór wodny (pH 4,5 do 7,0) czynnego immunologicznie glukanu, nadający się do podawania pozajelitowego.
P r z y k ł a d. Wytwarzanie kompozycji farmaceutycznej do podawania pozajelitowego
Do rozpuszczalnego w wodzie p(1-3)glukanu (otrzymanego w procesie wytwarzania jako zatężona frakcja) o stężeniu od 0,5 do 10 mg dodaje się 1 ml dopuszczalnego farmaceutycznie medium np. solankę buforowaną fosforanem (PBS), w temperaturze około 20-25°C, przy pH od 5 do 7,5 uzyskując roztwór glukanu o stężeniu od 0,5 do 10 mg/ml.
Roztwór następnie wyjaławia się przez filtrację poprzez filtr 0,22 gm. Uzyskuje się w ten sposób kompozycję farmaceutyczną do podawania pozajelitowego, wyjałowioną, zasadniczo pozbawioną pirogenów i możliwą do przechowywania w temperaturze pokojowej od 15 do 30°C, przez dłuższy czas bez degradacji.
W razie potrzeby roztwór glukanu może być wysuszony i przechowywany w postaci stałej a następnie użyty do wytwarzania postaci np. tabletek z odpowiednimi dodatkowymi, znanymi składnikami jak to wskazano dalej w opisie. Obojętne, rozpuszczalne w wodzie glukany mogą być stosowane również pojedynczo albo jako adiuwanty, w celu zwiększenia odpowiedzi immunologicznej u ludzi i u zwierząt.
Stosowana dawka zależy od choroby, sposobu podania, wagi i wieku leczonego pacjenta (co opisano bardzo szczegółowo w opisie).
Stosowana dawka np. przy stosowaniu miejscowym na rany wynosi od 0,001 mg/ml do około 2 mg/ml wagi ciała.
Przy średniej wadze pacjenta około 50 kg dawka wynosi od 100 mg/ml.
Dla celów niniejszego wynalazku określenie „rozpuszczalny”, stosowane do opisania glukanów otrzymanych za pomocą sposobu według wynalazku oznacza wizualnie przejrzysty roztwór, który może się utworzyć w medium wodnym, takim jak woda, PBS, solanka izotoniczna lub roztwór dekstrozy o pH obojętnym (na przykład od pH około 5 do około 7,5), w
177 453 temperaturze pokojowej (około 20-25°C) i w stężeniu do około 10 mg/ml. Określenie „medium wodne” odnosi się do wody i faz bogatych w wodę, zwłaszcza do dopuszczalnych farmaceutycznie cieczy wodnych, w tym roztworów PBS, solanki i dekstrozy. Wyrażenie „wizualnie przejrzysty” oznacza, że przy stężeniu 1 mg/ml absorpcja roztworu przy 530 nm jest mniej niż 0,01 OD większa od OD identycznego roztworu, ale pozbawionego składnika β-glukanowego.
Uzyskany roztwór jest zasadniczo pozbawiony zanieczyszczeń białkowych, jest nieantygenny, nie-pirogeniczny i jest dopuszczalny farmaceutycznie do podawania pozajelitowego zwierzętom i ludziom. Jednakże w razie potrzeby rozpuszczalny glukan może być wysuszony za pomocą odpowiedniej metody suszenia, takiej jak liofilizacja, i przechowywany w postaci suchej.
Obojętne, rozpuszczalne glukany według wynalazku mogą być stosowane jako bezpieczne, skuteczne środki profilaktyczne i lecznicze, albo pojedynczo albo jako adiuwanty, w celu zwiększenia odpowiedzi immunologicznej u ludzi i zwierząt. Rozpuszczalne glukany wytwarzane sposobem według wynalazku selektywnie aktywują tylko te komponenty, które są odpowiedzialne za początkową odpowiedź na zakażenie, bez stymulowania układu immunologicznego do uwalniania niektórych mediatorów biochemicznych (na przykład IL-1, TNF, IL-6, IL-8 i GM-CSF), które mogą powodować niepożądane działania uboczne. Kompozycja rozpuszczalnego glukanu według wynalazku może być jako taka stosowana do zapobiegania lub leczenia chorób zakaźnych przy osłabionym układzie immunologicznym u pacjentów niedożywionych, pacjentów poddawanych operacjom chirurgicznym i przeszczepom szpiku kostnego, pacjentów poddawanych chemioterapii lub radioterapii, pacjentów z neutropenią, pacjentów zakażonych HIV, pacjentów po urazach, pacjentów po oparzeniach, pacjentów chorych na przewlekłe lub oporne infekcje takie jak infekcje będące wynikiem zespołu mielodysplazji oraz u osób starszych. Osoba o obniżonej odporności jest generalnie definiowana jako osoba, która wykazuje osłabioną lub zmniejszoną zdolność do normalnej komórkowej i/lub humoralnej odpowiedzi na prowokacje czynnikami zakaźnymi, takimi jak na przykład wirusy, bakterie, grzyby i pierwotniaki. Osoba źle odżywiona białkowo jest generalnie definiowana jako osoba, mająca poziom albuminy w osoczu krwi niższy od około 3,2 grama na decylitr (g/dl) i/lub niezamierzony spadek wagi ciała powyżej 10% zwykłej wagi ciała.
W szczególności kompozycja według wynalazku może być zastosowana do terapeutycznego lub profilaktycznego stosowania u zwierząt lub ludzi o zwiększonym ryzyku zakażenia, związanym z zagrażającą operacją chirurgiczną, urazem, chorobą, napromieniowaniem lub chemioterapią lub innym stanem, który szkodliwie wpływa na układ immunologiczny. Kompozycja jest użyteczna do leczenia pacjentów, mających zaburzenie lub chorobę, które powoduje zmniejszenie lub osłabienie normalnej metabolicznej odpowiedzi immunologicznej, takiej jak infekcja HIV (AIDS). Na przykład kompozycja może być wykorzystana do preinicjacji metabolicznej odpowiedzi immunologicznej u pacjentów poddawanych chemioterapii lub radioterapii, lub pacjentów o zwiększonym ryzyku rozwinięcia się zakażeń wtórnych lub komplikacji pooperacyjnych z powodu choroby, zaburzenia lub leczenia, powodującego zmniejszenie zdolności organizmu do mobilizacji normalnych metabolicznych odpowiedzi na zakażenie. Wykazano, że leczenie obojętnymi, rozpuszczalnymi glukanami jest szczególnie skuteczne do mobilizacji normalnych immunologicznych reakcji obronnych gospodarza, rodząc przez to miarę zabezpieczenia leczonego gospodarza przed zakażeniem.
Kompozycja według wynalazku jest generalnie podawana zwierzęciu lub człowiekowi w ilości wystarczającej do wzmocnienia układu immunologicznego. Sposób podawania obojętnego, rozpuszczalnego glukanu może być doustny, dojelitowy, pozajelitowy, dożylny, podskórny, dootrzewnowy, domięśniowy, miejscowy lub donosowy. Postać, w której kompozycja będzie podawana (na przykład proszek, tabletka, kapsułka, roztwór, emulsja) zależy od drogi podawania. Ilość podawanej kompozycji będzie ustalana indywidualnie i będzie uwzględniała co najmniej ciężkość zakażenia lub uszkodzenia ciała pacjenta, stan chorego lub jego zdrowie ogólne, wagę pacjenta oraz czas pozostały do operacji, chemioterapii lub innego leczenia obarczonego wysokim ryzykiem. Generalnie pojedyncza dawka będzie korzystnie zawierać około 0,01 do około 10 mg modyfikowanego glukanu na kilogram wagi ciała, a ko10
177 453 rzystnie od około 0,1 do 2,5 mg/kg. Dawka przy stosowaniu miejscowym będzie zależeć od rodzaju leczonej rany, stopnia zakażenia i ciężkości rany. Typowa dawka dla ran będzie wynosić od około 0,001 mg/ml do około 2 mg/ml, a korzystnie od około 0,01 do około 0,5 mg/ml.
Generalnie kompozycje według wynalazku mogą być podawane osobie okresowo, na ile potrzeba do stymulacji odpowiedzi immunologicznej. Specjalista w zakresie medycyny będzie zdolny do ustalenia czasu podawania kompozycji oraz dawki, zależnie od stanu fizycznego pacjenta lub leczonej choroby. Jak stwierdzono powyżej, kompozycja może być również stosowana jako środek zapobiegawczy do pre-inicjacji normalnej obrony metabolicznej, mobilizowanej przez organizm przeciwko infekcji.
Obojętny, rozpuszczalny β-glukan może być stosowany do zapobiegania i leczenia infekcji spowodowanych przez szerokie spektrum patogenów bakteryjnych, wirusowych, grzybowych i pierwotniakowych. Profilaktyczne podawanie obojętnego, rozpuszczalnego β-glukanu osobie poddawanej operacji chirurgicznej, przedoperacyjnie, śródoperacyjnie i/lub pooperacyjnie zmniejsza częstość występowania i ciężkość zakażeń pooperacyjnych u pacjentów normalnego ryzyka jak i wysokiego ryzyka. Na przykład u pacjentów przechodzących operacje chirurgiczne sklasyfikowane jako zanieczyszczające lub potencjalnie zanieczyszczające (na przykład operacje układu żołądkowo-jelitowego, wycięcie macicy, cesarskie cięcie, prostatektomia przezcewkowa) i pacjentów, dla których zakażenie miejsca operacji stanowiłoby poważne ryzyko (na przykład operacja rekonstrukcyjna stawu, operacje sercowonaczyniowe), jednoczesne terapia początkowa za pomocą odpowiedniego środka przeciwbakteryjnego i obojętnego, rozpuszczalnego preparatu glukanu według wynalazku zmniejszy częstość i ciężkość komplikacji infekcyjnych.
U pacjentów o obniżonej odporności immunologicznej, nie tylko przez chorobę (na przykład rak, AIDS) ale także przez chemioterapię i/lub radioterapię profilaktyczne podawanie obojętnego, rozpuszczalnego preparatu glukanu według wynalazku zmniejszy częstość zakażeń powodowanych przez szerokie spektrum patogenów oportunistycznych, w tym wiele nietypowych bakterii, grzybów i wirusów. Terapia przy użyciu obojętnego, rozpuszczalnego preparatu β-glukanu wykazała znaczny efekt radioochronny związany z jego zdolnością do wzmagania i przedłużania funkcji i regeneracji makrofagów, skutkiem czego jest zwiększenie odporności na inwazje i infekcje mikroorganizmów.
U pacjentów wysokiego ryzyka (na przykład w wieku powyżej 65 lat, cukrzyków, chorych na raka, źle odżywionych, chorych na chorobę nerek, obrzęk, odwodnionych, mających ograniczoną mobilność, etc.) hospitalizacji często towarzyszy wysoka częstość poważnych infekcji szpitalnych. Dla zapobieżenia infekcjom zwykle towarzyszącym tym procedurom leczenie obojętnym, rozpuszczalnym β-glukanem można rozpocząć empirycznie przed kateteryzacją użyciem drenów, jednostek intensywnej terapii, dłuższą hospitalizacją, etc. Jednoczesna terapia środkami przeciwbakteryjnymi i obojętnymi, rozpuszczalnym β-glukanem jest wskazana przy leczeniu zakażeń przewlekłych, poważnych, opornych, złożonych i trudnych do leczenia.
Kompozycje podawane w sposobie według wynalazku mogą ewentualnie zawierać inne składniki oprócz obojętnego, rozpuszczalnego β-glukanu. Inne składniki, które może zawierać kompozycja są zdeterminowane przede wszystkim przez sposób podawania kompozycji. Na przykład kompozycja podawana doustnie w postaci tabletki może oprócz obojętnego, rozpuszczalnego β-glukanu zawierać wypełniacz (na przykład laktozę), środek wiążący (na przykład karboksymetylocelulozę, gumę arabską, żelatynę), adiuwant, środek smakowozapachowy, barwnik i materiał powlekający (na przykład wosk lub plastyfikator). Kompozycja podawana w formie ciekłej może zawierać obojętny, rozpuszczalny β-glukan i ewentualnie środek emulgujący, środek smakowo-zapachowy i/lub barwnik. Kompozycja do podawania pozajelitowego może być zmieszana, rozpuszczona lub zemulgowana w wodzie, jałowej solance, PBS, dekstrozie lub innym dopuszczalnym biologicznie nośniku. Kompozycja do podawania miejscowego może być formułowana w postać żelu, maści, lotionu, kremu lub inną postać, w której kompozycja jest zdolna do powlekania leczonego miejsca, na przykład rany.
Kompozycje zawierające obojętny, rozpuszczalny glukan mogą być również stosowane miejscowo na miejsce rany w celu stymulacji i wzmożenia gojenia i naprawy rany. Rany
177 453 spowodowane między innymi przez wrzody, trądzik, zakażenia wirusowe, zakażenia grzybicze lub parodontozę mogą być w celu przyspieszenia procesu gojenia leczone kompozycją według wynalazku. Alternatywnie, obojętny, rozpuszczalny β-glukan może być wstrzyknięty do rany lub porażonego obszaru. Oprócz leczenia ran, kompozycja może być stosowana do leczenia zakażeń związanych z raną lub spowodowanych raną. Kompozycja do podawania miejscowego może być formułowana w postać żelu, maści, lotionu, kremu lub innej formy, w której kompozycja jest zdolna do powlekania leczonego miejsca, na przykład miejsca zranionego. Dawka przy podawaniu miejscowym zależeć będzie od rodzaju leczonej rany, stopnia zakażenia i ciężkości rany. Typowa dawka dla ran będzie wynosić od około 0,01 mg/ml do około 2 mg/ml, a korzystnie od około 0,01 do około 0,5 mg/ml.
Następnym szczególnym zastosowaniem kompozycji według wynalazku jest leczenie zespołu mielodysplazji (MDS). MDS, często określana jako zespół przedbiałaczkowy, jest grupą klonalnych zaburzeń krwiotwórczej komórki macierzystej, charakteryzujących się nienormalnym różnicowaniem i dojrzewaniem komórek szpiku kostnego, prowadzącym do cytopenii obwodowej o wysokim prawdopodobieństwie ewentualnej konwersji do białaczki. MDS towarzyszą zwykle nawracające infekcje, krwotoki i terminalna infekcja powodująca śmierć. Tak więc w celu zmniejszenia ciężkości choroby i częstości infekcji pacjentowi z diagnozą MDS można przewlekle podawać kompozycje zawierające zmodyfikowany glukan, w celu swoistego zwiększenia zdolności zwalczania infekcji przez białe krwinki pacjenta. Mogą być leczone inne choroby szpiku kostnego, takie jak anemia aplastyczna (stan ilościowo zmniejszonej i nieprawidłowej hematopoezy), w celu zmniejszenia infekcji i krwotoków związanych z tymi stanami chorobowymi.
Obojętny rozpuszczalny glukan wytwarzany sposobem według wynalazku zwiększa nieswoistą obronę komórek monojądrzastych ssaków i znacznie zwiększa ich zdolność do odpowiadania na infekcję. Specyficzną cechą aktywacji makrofagów przez obojętny, rozpuszczalny glukan jest to, że nie powoduje on wzrostu temperatury ciała (to jest gorączki), jak jest dla wielu nieswoistych stymulatorów tej obrony. Ta krytyczna zaleta obojętnego, rozpuszczalnego glukanu może być związana z naturalnym profilem jego oddziaływania na białe krwinki. Wykazano, że obojętny, rozpuszczalny β-glukan według wynalazku selektywnie aktywuje odpowiedzi immunologiczne, ale nie stymuluje bezpośrednio ani nie wyzwala uwalniania cytokin (na przykład IL-1 i TNF) z komórek monojądrzastych, co odróżnia obojętny, rozpuszczalny glukan według wynalazku od innych preparatów glukanu (na przykład lentinan, kresem) i immunostymulatorów.
Ponadto wykazano, że obojętny, rozpuszczalny preparat glukanu według wynalazku posiada nieoczekiwaną czynność stymulowania płytek. Chociaż wiadomo jest, że glukany mają zdolność do stymulacji hematopoezy białych krwinek, to ujawniona właściwość stymulowania płytek nie była ujawniona ani przewidywana. Właściwość ta może być wykorzystana w schemacie terapeutycznym przy stosowaniu jako adiuwant równolegle z chemioterapią lub radioterapią. Wiadomo jest, że chemioterapia i radioterapia powodują neutropenię (zmniejszona liczba leukocytów wielojądrzastych (PMN)) i małopłytkowość (zmniejszoną liczbę płytek). Obecnie stany te leczy się przez podawanie czynników stymulujących kolonizację, takich jak GM-CSF i czynnik stymulujący kolonizację granulocytów (G-CSF). Takie czynniki są efektywne przy przezwyciężaniu neutropenii, ale nie mają wpływu na małopłytkowość. Tak więc właściwość stymulowania płytek przez obojętny, rozpuszczalny preparat glukanu według wynalazku może być wykorzystana na przykład jako środek do zapobiegania lub minimalizowania rozwoju małopłytkowości, która ogranicza dawkowanie promieniowania lub środka terapeutycznego stosowanego do leczenia raka.
Wynalazek zostanie następnie zilustrowany za pomocą poniższych przykładów.
Przykład I. Otrzymywanie obojętnego, rozpuszczalnego glukanu z S. cerevisiae
Saccharomyces cerevisiae, szczep R4 Ad (nierekombinacyjna pochodna szczepu typu dzikiego A364A) namnażano w kulturze fermentacyjnej dużej skali, stosując podłoże minimalne z siarczanem amonu i glukozą. Kulturę fermentacyjną utrzymywano w warunkach limitacji glukozowej w trybie hodowli okresowej (New Brunswick MPP80). Po osiągnięciu przez rozrastającą się kulturę późnej fazy wzrostu logarytmicznego fermentację kończono, a
177 453 β-glukan stabilizowano przez ustawienie pH kultury na 12±0,5 za pomocą 10 M NaOH. Komórki drożdży zawierające β-glukan skaszano· przez wirowanie w przepływie ciągłym (Westfalia SA-1). Po wirowaniu komórki zbierano do naczynia ekstrakcyjnego ze stali nierdzewnej.
Pierwszym etapem w procesie ekstrakcji była ekstrakcja alkaliczna, prowadzona przez mieszanie komórek z 1 M wodorotlenkiem sodu (NaOH) w 90±5°C przez 1 godzinę. Po zakończeniu ekstrakcji alkalicznej β-glukan, który pozostawał w fazie stałej zbierano przez wirowanie ciągłe (Westfalia SA-1). Zebraną frakcję ścian komórkowych ekstrahowano drugi raz, stosując taką samą procedurę i takie same warunki. W wyniku działania alkaliami następowała hydroliza i solubilizacja białek komórkowych, kwasów nukleinowych, mannanów, rozpuszczalnych glukanów i polarnych lipidów do frakcji supematanta, a deacetylowanej chityny do chitozanu w ścianie komórkowej.
Drugim etapem procesu ekstrakcji była ekstrakcja przy pH 4,5±0,05 (ustawione stężonym HCl) w temperaturze 75±5°C przez 1 godzinę. Następnie prowadzono ekstrakcję 0,1 M kwasem octowym do całkowitego usunięcia glikogenu, chityny, chitozanu i pozostałych białek. Oddzielono substancje stałe i przemyto dwukrotnie wodą oczyszczaną według USP w celu usunięcia wszelkich resztek kwasu, jak również wszelkich produktów degradacji drożdży.
Trzecim etapem procesu ekstrakcji był komplet sześciu ekstrakcji organicznych. Pierwsze cztery ekstrakcje prowadzono w izopropanolu. Substancje stałe oddzielano przez wirowanie, po czym poddawano dwóm ekstrakcjom acetonem. W wyniku dwuetapowych ekstrakcji organicznych następowała eliminacja niepolarnych lipidów i białek hydrofobowych, które mogą zanieczyszczać substancję lekową. Uzyskany mokry osad suszono w suszarce próżniowej w 65±5°C przez 48-96 godzin, otrzymując sypki proszek.
Na tym etapie w wyniku procesu ekstrakcji otrzymywano stabilny, nierozpuszczalny półprodukt, składający się w przybliżeniu z 90% β-glukanu, zwany pełnymi cząstkami glukanu (RGP). Suchy półprodukt WGP przechowywano w 15-30°C aż do dalszego stosowania.
Proszek WGP zawieszano w 98% (w/v) kwasie mrówkowym w szklanym naczyniu reakcyjnym w temperaturze pokojowej. Uzyskaną mieszaninę ogrzewano do 85±5°C przez 20 minut. W tych warunkach WGP ulegały częściowej hydrolizie i solubilizacji z wytworzeniem pożądanego rozkładu ciężaru cząsteczkowego rozpuszczalnego β-glukanu, który następnie strącano przez dodanie 1,5 objętości etanolu. Po całkowitym zmieszaniu preparat wirowano w celu oddzielenia precypitatu β-glukanu. Wszelkie resztki kwasu mrówkowego usuwano przez gotowanie preparatu β-glukanu w wodzie oczyszczanej według USP przez trzy godziny.
Następnie z roztworu β-glukanu usunięto przez wirowanie wszelkie niezbydrolizowane WGP. pH β-glukanu podwyższono do 12,5±0,5 przez dodanie stężonego wodorotlenku sodu. Pozostałe etapy oczyszczania przeprowadzono przez ultrafiltrację.
Rozpuszczalny, alkaliczny preparat β-glukanu przepuszczono przez ultrafiltr membranowy (Amicon DC-10) z cut-off nominalnego ciężaru cząsteczkowego (NMW) 100000. W warunkach alkalicznych taki ultrafiltr membranowy usuwał nierozpuszczalny i wysokocząsteczkowy rozpuszczalny β-glukan. Następnie usuwano śladowe, niskocząsteczkowe produkty degradacji przez recyrkulację przez ultrafiltr membranowy o cut-off NMW 10000. Ultrafiltrację prowadzono przy stałej objętości przemywania za pomocą 0,1 M NaOH.
Roztwór β-glukanu poddawano re-asocjacji w warunkach kontrolowanych przez ustawienie pH na 7,0±0,5 za pomocą stężonego kwasu chlorowodorowego, ogrzewając do temperatury 60±10°C, którą utrzymywano przez 20 minut, po czym następnie ochłodzono. Następnie obojętny, re-asocjowany roztwór zatężono i przemyto chlorkiem sodu do iniekcji według USP w ultrafiltrze membranowym o cut-off 70000 nMw (Filtron Minisep) w celu wzbogacenia w re-asocjowany, obojętny rozpuszczalny glukan. Następnie materiał filtrowano przez ultrafiltr membranowy o cut-off 300000 NMW (Filtron-Minisep) w celu usunięcia cząsteczek glukanu o wysokim ciężarze cząsteczkowym i zagregowanych. W tym samym ultrafiltrze obojętny, rozpuszczalny materiał glukanu przemyto chlorkiem sodu do iniekcji według USP, stosując stałą objętość przemywania.
Obojętny, rozpuszczalny glukan zatężono następnie w ultrafiltrze membranowym o cutoff 10000 NMW. Proces zatężania kontynuowano aż do uzyskania stężenia co najmniej 1,0 mg/ml równoważnika heksozy.
1ΊΊ 453
Uzyskany rozpuszczalny glukan poddano następnie filtracji przez filtr usuwający pirogeny (Posidyne 0,1 mikrometra) i jałowy filtr (Millipak) 0,2 mikrometra w celu uzyskania jałowego, wolnego od pirogenów, obojętnego, rozpuszczalnego glukanu. Obojętny, rozpuszczalny roztwór glukanu przechowywano w kontrolowanej temperaturze pokojowej (15-30°C) do dalszego stosowania. Rozpuszczalność -w wodzie obojętnego, rozpuszczalnego glukanu w zakresie pH 4 do 8 wynosi około 100 mg/ml. Rozpuszczalność wzrastała przy wzroście pH i osiągała około 150 mg/ml przy pH 13.
Przykład II. Analiza obojętnego, rozpuszczalnego glukanu
A. Glukoza, mannoza i głukozamina
Analizę monosacharydów prowadzono w celu oznaczenia ilościowego w obojętnym, rozpuszczalnym glukanie względnych ilości β-glukanu (jako glukozy), mannanu lub fosfomannanu (jako mannozy) i chityny (jako N-acetyloglukozaminy). Próbkę Cydrolizowano do monosacharydów w 2 M kwasie trifluorooctowym przez 4 godziny w temperaturze 110°C, odparowano do sucha i ponownie rozpuszczono w wodzie. Monosacharydy rozdzielano na układzie Dionex HPLC, stosując kolumnę CarboPac PA100 (4 x 250 mm) za pomocą 5 M NaOH z szybkością 1 ml/min i oznaczano ilościowo stosując pulsowy detektor elektrochemiczny (Dionex Model PED-1). Czułość tej metody dla monosacharydów wynosi 0,1% (w/w).
Glukozę (czas retencji 16,6 min) zidentyfikowano jako jedyny składnik monosacharydowy obojętnego, rozpuszczalnego glukanu poza śladami produktów degradacji glukozy (z hydrolizy), anCydroglUkooy po 2,5 minuty i 5-hy0roksymetylwfiirfpralu po 4,3 minuty. Rezultaty potwierdzają, że obojętny, rozpuszczalny glukan składa się z >98% glukozy.
B. FTIR
W celu ustalenia struktury anomerycznej (a względnie p) i typu wiązania (β(1-3), β(1-6), β(1-4)) obecnego w obojętnym, rozpuszczalnym glukanie próbki liofilizowanego, obojętnego, rozpuszczalnego glukanu badano za pomocą spektroskopii w podczerwieni z transformacją Fouriera metodą rozproszeniowo-odbiciową (FTIR, Matson Instruments, Polaris). Maksima absorpcji przy 890 cm'1 identyfikowały wiązania β(1-3), a maksima przy 920 cm'1 wiązania β(1-6). Nie wykryto obecności anomerów α-połączonych (na przykład glikogenu, 850 cm'1) lub β(1-4)-połączonych polisacharydów (na przykład chityny, 930 cm'1).
Przykład III. Analiza konformacyjna
Tożsamość składu roztworu β-glukanu nie przetwarzanego przez Zcso^^ alkaliczna i re-asocjację analizowano za pomocą chromatografii żelowej (pH 7), stwierdzając, że zawiera on złożone cząstki, określane tu jako agregat wysokocząsteczkowy (Ag), Pik A i Pik B (patrz figura 2). Obojętny, rozpuszczalny glukan otrzymany przez Zcso^^ alkaliczną i reasocjację w sposób opisany w przykładzie I jest obecny w postaci pojedynczego piku (patrz figura 3) o średnim ciężarze cząsteczkowym około 92660 przy pH 7. Różnicę konformacji między obojętnym, rozpuszczalnym glukanem a Pikiem B wykazano za pomocą chromatografii żelowej przy pH 7 i pH 13, stosując detektor refrakcyjny. Obojętny, rozpuszczalny glukan ulegał znacznemu przejściu konformacyjnemu od pH 7 do pH 13, co ilustruje całkowita dysocjacja wielokrotnego heliksu przy pH 7 do pojedynczego heliks przy pH 13 (patrz Fig. 3). W przeciwieństwie do tego, Pik B ulegał tylko niewielkiemu przesunięciu ciężaru cząsteczkowego od pH 7 do pH 13 (patrz Fig. 4). Ciężar cząsteczkowy obojętnego, rozpuszczalnego glukanu i glukanów piku B jako funkcja pH są pokazane w tabeli 1.
Tabela 1
Próbka MW Stosunek MW (pH 7/pH 13)
pH 7 pH 13
Obojętny, rozpuszczalny glukan 92666 18693 4,96
Pik B 8317 7168 1,16
Konformację obojętnego, rozpuszczalnego glukanu i Piku B ustalono także za pomocą kompleksowania błękitem anilinowym (Evans i współpr., 1984, carb. Pol., 4:215-230; Adachi i współpr., 1988, Carb. Res., 177:91-100), stosując curdlan, liniowy ββ^^^Μ jako kon14
177 453 trolę potrójnego heliksu i pustułan, e(1-6)glukan jako kontrolę postaci nieuporządkowanej konformacyjnie. Wyniki omówiono poniżej i przedstawiono w tabeli 2.
W wyniku skompleksowania curdlanu, stosowanego jako kontrola potrójnego heliksu uzyskano silną fluorescencję. Przy wzroście stężenia NaOH potrójny heliks curdlanu zaczynała nieznacznie dysocjować, ale do całkowitej dysocjacji curdlanu wymagane są stężenia NaOH > 0,25 M. Pustulan jako kontrola postaci nieuporządkowanej tworzył jedynie słaby kompleks z błękitem anilinowym, co dawało słabe pomiary fluorescencji, na które nie miało wpływu stężenie NaOH.
Obojętny, rozpuszczalny glukan kompleksowa! się efektywnie z błękitem anilinowym przy niskich stężeniach NaOH (25 mM NaOH), co dawało wysoką fluorescencję. Jednakże konformacja obojętnego, rozpuszczalnego glukanu dysocjowała znacząco (50%) przy stężeniach NaOH już 150 mM NaOH, co wskazuje, że występuje on w postaci specyficznej w porównaniu z β-glukanami występującymi naturalnie, takimi jak laminarin i curdlan, które wymagają do zajścia dysocjacji znacznie wyższych stężeń NaOH. Pik B tworzył słaby kompleks z błękitem anilinowym z powodu swojej konformacji pojedynczego heliksu.
Tabela 2
Analiza konformacyjna glukanów za pomocą kompleksowania błękitem anilinowym
Materiał badany Fluorescencja
25 mM NaOH 100 mM NaOH 150 mM NaOH
Ślepa próba 0 2 0
Curdlan, p(1-3)glukan 53,5 41,6 36
Pustulan, e(1-6)glukan 9,8 8,3 8,0
Obojętny, rozpuszczalny glukan 40 25,6 20,2
Pik B 12,4 6,2 4,1
Przykład IV. Wpływ obojętnego, rozpuszczalnego glukanu na wytwarzanie TNFa przez monocyty ludzkie
Komórki monojądrzaste ludzkiej krwi obwodowej wyizolowano (Janusz i współpr., (1987), J. Immunol., 138:3897-3901) z normalnej krwi traktowanej cytrynianem i dekstranem, przemyto zrównoważonym roztworem soli Hanka (HBSS) pozbawionym wapnia, magnezu i czerwieni fenolowej i oczyszczono przez wirowanie w gradiencie na podkładce Ficoll-Paque (Pharmacia Fine Chemicals, Piscataway, NJ). Komórki monojądrzaste zebrano do HBSS, przemyto dwukrotnie, ponownie zawieszono w pożywce RPMI 1640 (Gibco, Grand island, NY) zawierającej 1% inaktywowanej termicznie surowicy autologicznej (56°C przez 30 minut) i zliczano na liczniku Coultera.
W celu otrzymania monowarstw monocytów do studzienek 24-studzienkowych płytek do hodowli wysiano 1 ml zawiesiny komórek monojądrzastych o stężeniu 2,2 x 106komórek/ml (Costar, Cambridge, MA), inkubowano przez 1 godzinę w 37°C w wilgotnej atmosferze zawierającej 5% CO2 i przemyto trzy razy RPMI w celu usunięcia komórek nieprzylegąjących. Do każdej studzienki położono warstwę drugiej porcji 1 ml zawiesiny komórek monojądrzastych o stężeniu 2,2 x 106 komórek/ml i inkubowano przez 2 godziny w sposób opisany powyżej, po czym usunięto komórki nieprzylegąjące. Obliczona wizualnie za pomocą mikroskopu z odwróconymi fazami i kalibrowanej siatki liczba komórek przylegających dla 30 różnych donorów wynosiła 077±0,20 x 106 na studzienkę (średnia ± SD). Za pomocą badania morfologii i wybarwiania niespecyficzną esterazą stwierdzono, że >95% komórek przylegających były monocytami.
Warstwy monocytów inkubowano w 37°C w komorze z CO2 przez 0 do 8 godzin z 0,5 ml RPMI, 1% inaktywowanej cieplnie surowicy autologicznej, 10 mM HEPES i 5 mM MgCL w nieobecności i obecności różnych preparatów glukanu. Supernatant hodowli usunięto, sklarowano przez wirowanie przy 14000 g przez 5 minut i przechowywano przed oznaczeniem TNFa w -70°C.
177 453
Stężenie TNFa w supernatantach monocytów mierzono za pomocą enzymatycznej techniki immunoadsorpcyjnej (ELISA) za pomocą zestawu testowego BIOKTNE TNF (T Celi Sciences, Cambridge, MA) o dolnej granicy wykrywalności 40 pg/ml. Dane przedstawiono w postaci pg na 106 monocytów, obliczanego przez podzielenie ilości cytokin w 0,5 ml supernatanta przez liczbę monocytów w studzience.
W celu oznaczenia komórkowych poziomów TNFa przylegające komórki lizowano w 0,25 ml PBS przez trzy cykle zamrażania i rozmrażania, lizaty sklarowano od resztek komórkowych przez wirowanie przy 14000 g przez 5 minut w 4°C, a uzyskane supernatanty przechowywano w -70°C. Świeżo przygotowane warstwy monocytów nie zawierały wykrywalnych ilości wewnątrzcząsteczkowego TNFa.
Wyniki przedstawiono poniżej w tabelach 3 i 4.
Tabela 3
Synteza TNFa przez monocyty ludzkie stymulowane różnymi preparatami glukanu
Glukan Stężenie TNFa (pg/106 monocytów)
1 2 3 Średnia ± SD
Bufor kontrolny 36 39 2 26+21
Obojętny, rozpuszczalny 1 mg/ml 44 51 33 43±9
Laminarin 1 mg/ml 372 324 227 308+74
Całe cząstki glukanu 4 x 107/ml 2129 1478 1683 1763+33
Tabela 4
Stymulacja TNFa przez różne struktury konformacyjne rozpuszczalnego β-glukanu
Glukan Stężenie TNFa (pg/106 monocytów)
Bufor kontrolny 1 mg/ml 40
Laminarin 1 mg/ml 1312
Obojętny, rozpuszczalny glukan 1 mg/ml 16
Pik B 1 mg/ml 1341
Cząstki glukanu 4 x 107ml 2065
Tabela 3 pokazuje, że TNFa był stymulowany przez nierozpuszczalne cząstki glukanu i przez laminarin, rozpuszczalny β(1-6) i β(1-3) połączony glukan. Nie występowała stymulacja TNFa przez obojętny, rozpuszczalny glukan. Tabela 4 pokazuje podobne rezultaty, ale dodatkowo potwierdza, że stymulacja TNFa jest zależna od struktury konformacyjnej. Obojętny, rozpuszczalny glukan nie stymuluje TNFa, natomiast Pik B (konformacja pojedynczego heliksu) stymulował TNFa.
Przykład V. Powinowactwo obojętnego, rozpuszczalnego glukanu do receptora glukanu
Monowarstwy monocytów ludzkich, otrzymane na silikonozowanych szkiełkach przykrywkowych (Czop i współpr., 1978, J. Immunol., 120: 1132) inkubowano przez 18 minut w 37°C w inkubatorze w atmosferze nawilgoconego CO2 albo z 0,25 ml bufora (RPMI-MgHEPES) lub -w zakresie stężeń (0,1-50 gg/ml) obojętnego, rozpuszczalnego glukanu. Następnie warstwy monocytów przemywano dwukrotnie 50 ml pożywki RPMI 1640 i nawarstwiano 0,25 ml zawiesiny cząstek zymosanu o stężeniu 4,8 x 10!7ml (Czop i Austen, 1985, J. Immunol., 134:2588-2593). Po 30 minutach inkubacji w 37°C monowarstwy przemyto trzykrotnie 50 ml zrównoważonego roztworu soli Hank'a w celu usunięcia niewchłoniętych cząstek zymosanu. Następnie monowarstwy przytwierdzano i wybarwiano za pomocą Giemsa. Wchłonięcie cząstek zymosanu przez co najmniej 300 monocytów na warstwę potwierdzano za pomocą obserwacji wizualnej pod mikroskopem świetlnym przy powiększeniu 1000Χ.
177 453
Monowarstwy monocytów po wstępnej obróbce buforem i obojętnym, rozpuszczalnym glukanem o stężeniu 50 lub 500 pg/ml w sposób opisany powyżej badano na zdolność wchłaniania erytrocytów owczych pokrytych IgG (EIgG). Po 18 minutach preinkubacji obojętnym, rozpuszczalnym glukanem monowarstwy inkubowano 0,25 ml EIgG o stężeniu 1 x 107ml przez 30 minut w 37°C, przemywano trzy razy 50 ml zrównoważonego roztworu soli Hanka, traktowano przez 4 minuty 0,84% NH4Cl w celu lizy niewchłoniętego EIgG i przytwierdzano oraz wybarwiano w sposób opisany powyżej. Procent monocytów wchłaniających > 1 i > 3 EIgG oznaczano przez zliczanie co najmniej 300 monocytów na monowarstwę.
Procent hamowania wchłaniania monocytów ustalono przez odjęcie procentu monocytów wchłaniających cele po wstępnym traktowaniu obojętnym, rozpuszczalnym glukanem od procentu wchłoniętych celów po wstępnej obróbce buforem, podzielenie tej liczby przez procent wchłoniętych celów po wstępnej obróbce buforem i podzielenie przez 100. Dane przedstawiono jako średnią z dwóch eksperymentów i podano w tabeli 5.
Tabela 5
Zdolność wiązania się z receptorem glukanu różnych konformacji rozpuszczalnych β-glukanów
Materiał badany Stężenie % hamowania
Bufor - 0%
Obojętny, rozpuszczalny glukan 50 pg/ml 500 pg/ml 74% 86%
Pik B 50 pg/ml 50%
500 pg/ml 56%
Oba badane powyżej preparaty β-glukanu hamowały wchłanianie cząstek zymosanu, wykazując zdolność do kompetycyjnego wiązania się z receptorem β-glukanu monocytów ludzkich. Obojętny, rozpuszczalny glukan wykazywał wyższą zdolność wiązania się z receptorem niż Pik B, na co wskazuje wyższy poziom hamowania, uzyskiwany zarówno przy 50 pg/ml jak i 500 pg/ml. Ta próba biologiczna wykazuje, że obojętny, rozpuszczalny β-glukan jest doskonałym ligandem dla receptora β-glukanu.
Przykład VI. Brak stymulacji in vitro IL-1 β i TNFa z monojądrzastych komórek ludzkich.
Komórki krwi żylnej pobrano od zdrowych ochotników płci męskiej, a komórki monojądrzaste frakcjonowano przez wirowanie Ficoll-Hypaque. Komórki monojądrzaste przemyto, ponownie zawieszono w pozbawionym endotoksyn podłożu hodowlanym RPMI 1640 (ultrafiltrowanym w celu usunięcia endotoksyn w sposób opisany przez Dinarello i współpr., w J. Clin. Microbiol., 25:1233-8, 1987) o stężeniu 5 x 106 komórek/ml i rozdzielono równe podwielokrotności do 96-studzienkowych mikropłytek (Endres i współpr., 1989, N. E. J. Med. 320:265-271). Następnie komórki inkubowano albo z 1 ng/ml endotoksyny (lipopolisacharyd, E. coli 055:B5, Sigma, St. Louis) lub z 10 do 1000 ng/ml β-glukanu, w 37°C przez 24 godziny w 5% CO2, po czym lizowano poprzez trzy cykle zamrażania-rozmrażania (Endres i współpr., N. E. J. Med. 320:265-271). Syntezę IL-β i TNFa oznaczano za pomocą swoistych technik radioimmunologicznych w sposób opisany przez Lisi i współpr., 1987, Lymph. Res. 6:229-244; Lonnemann i współpr., 1988, Lymph. Res. 7:75-84; Van der Meer i współpr., 1988, J. Leukocyte Biol. 43:216-223.
W celu ustalenia, czy obojętny rozpuszczalny glukan może działać jako czynnik starterowy dla syntezy cytokin z endotoksyną, znanym stymulatorem cytokin, komórki monojądrzaste pre-inkubowano z 1, 10 i 1000 ng/ml obojętnego rozpuszczalnego glukanu przez 3 godziny w 37°C w 5% CO2. Komórki przemyto w celu usunięcia obojętnego, rozpuszczalnego glukanu, po czym inkubowano z 1 ng/ml endotoksyny w sposób opisany powyżej.
177 453
Wyniki zestawiono w tabeli 6. Obojętny, rozpuszczalny glukan, stosowany jako stymulant w dawkach 10-1000 ng/ml pojedynczo nie indukował zwiększonych poziomów syntezy IL-1-β TNFa w stosunku do komórek traktowanych buforem kontrolnym. Endotoksyna LPS, znany stymulant, powodowała znaczne zwiększenie poziomów obu cytokin. W drugiej fazie tego eksperymentu obojętny, rozpuszczalny glukan testowano na zdolność do działania jako czynnika wyzwalającego syntezę cytokin komórek monojądrzastych. Komórki od tych samych dawców preinkubowano z trzema dawkami obojętnego, rozpuszczalnego glukanu (101000 ng/ml), po czym poddawano działaniu endotoksyny jako ko-stymulatora. Obojętny, rozpuszczalny glukan nie powodował jakiejkolwiek amplifikacji poziomów IL-Ιβ i TNFa w porównaniu z samąendotoksyną.
Tabela 6
Synteza in vitro IL-1 β i TNFa przez komórki monojądrzaste ludzkiej krwi obwodowej
— Stymulator IL-1P (ng/ml) TNFa (ng/ml)
Same komórki <0,10 0,14
Obojętny, rozpuszczalny glukan 10 ng/ml 0,13 0,16
100 ng/ml 0,12 0,16
1000 ng/ml <0,10 0,14
LPS 1 ng/ml 2,62 2,22
LPS (1 ng/ml)+ 10 ng/ml 2,62 2,25
Obojętny, rozpuszczalny glukan 100 ng/ml 2,57 2,07
1000 ng/ml 2,85 2,27
1 Wartości są średnią dla dwóch donorów
Przykład VII. Zabezpieczenie in vivo przed infekcjąu myszy
Opracowano model posocznicy u szczurów dla scharakteryzowania skuteczności β-glukanu jako środka zabezpieczającego gospodarza o nienaruszonej odporności na ciężkie zakażenia, takie jak zakażenia występujące typowo po operacjach na jamie brzusznej. Szczurzy model posocznicy wewnątrz-brzusznej jest dobrze opisany w literaturze naukowej (Onerdonk i współpr., 1974, Infect. Immun., 10:1256-1259).
Grupy szczurów otrzymywały domięśniowo obojętny, rozpuszczalny glukan (100 pg/0,2 ml) lub kontrolną solankę (0,2 ml) na 24 godziny lub 4 godziny przed zakażeniem. Zdefiniowaną zakaźną prowokację wielobakteryjną (posiew kątniczy) umieszczano w kapsułce żelatynowej, którą następnie implantowano chirurgicznie w jamie otrzewnowej uśpionych szczurów poprzez nacięcie dolnej linii środkowej. Wczesne zapalenie otrzewnej spowodowane tym eksperymentalnie wywołanym zakażeniem związane było z obecnością we krwi i jamie brzusznej organizmów gram-ujemnych, a jego kulminacją była śmierć. Posiew kątniczy zawierał zestaw dowolnie dobranych gatunków, takich jak E.coli oraz inne obowiązkowe beztlenowce (Streptococcus sp., Bacteroides sp., Clostridium sp., Clostridium perfringens, Clostridium ramosum, Peptostreptococcus magnus i productus, Proteus mirabilis). Zwierzęta obserwowano cztery razy na dzień przez pierwsze 48 godzin i następnie dwa razy na dzień. Wyniki opisano w tabeli 7.
177 453
Tabela 7
Wpływ obojętnego, rozpuszczalnego glukanu na umieralność w szczurzym modelu posocznicy brzusznej
Grupa Umieralność (%) p w stosunku do solanki
Solanka 12/20 (60)
Obojętny, rozpuszczalny glukan 2/10 (10) <0,01
Wyniki te wykazują, że obojętny, rozpuszczalny glukan, który nie indukuje lLł-β i TNFa, zabezpiecza myszy przed śmiertelną infekcją bakteryjną..
Przykład VIII. Wykazanie bezpieczeństwa przy podawaniu ludziom Statystyczne, kontrolowane placebo badania kliniczne z podwójną ślepą próbą przeprowadzono na zdrowych mężczyznach w celu oceny bezpieczeństwa obojętnego, rozpuszczalnego glukanu (2,25 mg/kg), wstrzykiwanego przez infuzję dożylną, w porównaniu z kontrolą placebo. Nie zaobserwowano żadnych działań ubocznych. Nie zaobserwowano również podwyższenia IL-1, TNF, IL-6, IL-8 i GM-CSF. Pojedyncze podanie dożylne obojętnego, rozpuszczalnego glukanu spowodowało wzrost liczby monocytów i neutrofili oraz aktywności zabójczej tych komórek, co udowodniło, że obojętny, rozpuszczalny glukan zatrzymuje pożądane czynności immunologiczne u ludzi. Patrz poniższe tabele 8, 9 i 10. Jednakże, jak pokazano na figurach 5 i 6, nie wystąpiły żadne zmiany w surowicy IL-1 i TNF i żaden z pacjentów nie doświadczył gorączki ani reakcji zapalnych. Wyniki są zgodne z danymi in vitro, opisanymi we wcześniejszych przykładach.
Tabela 8
Zmiana absolutnej liczby neutrofili (x 1000/pl) po podawaniu obojętnego, rozpuszczalnego glukanu
Dawka B 8 godzin 12 godzin 24 godz.
Średnia 4,06 4,34 4,31 3,43
Solanka SD 2,12 1,53 1,16 1,46
N 6 6 6 6
2,5 mg/kg Średnia 4,11 11,29 8,18 5,32
SD 1 15 4 39 3 80 1 75
Obojętny, rozpuszczalny glukan N 6 6 6 6
B = pomiar linii podstawowej *p < 0,01
Tabela 9
Zmiana liczby monocytów (x 1000/pl) po podawaniu obojętnego, rozpuszczalnego glukanu
Dawka B 8 godzin 12 godzin 24 godz.
Średnia 0,33 0,44 0,59 0,33
Solanka SD 0,09 0,10 0,22 0,12
N 6 6 6 6
2,5 mg/kg Obojętny, rozpuszczalny glukan Średnia 0,24 0,63 0,67 0,31
SD N 0,10 6 0,24 6 0,32 6 0,15 6
B = pomiar linii podstawowej •p < 0,01
177 453
Tabela 10
Pomiar czynności mikrobójczej ex vivo u zdrowych ochotników po podaniu obojętnego, rozpuszczalnego glukanu Średnia zmiana w % zabijania1
Dawka Godz. 3 Godz. 6 Godz. 24 Dzień 2 Dzień 3 Dzień 6
Solanka 0 0 0 0 0 0
2,5 mg/kg obojętnego rozpuszczalnego glukanu Średnia 42,86 32,33 20,90 48,96 39,22 31,17
N 6 6 6 6 6 6
wartość p 0,062 0,036 0,300 0,045 0,085 0,026
1 Znormalizowana w odniesieniu do solanki kontrolnej
Przykład IX. Wykazanie skuteczności in vivo jako środka przeciw-infekcyjnego dla ludzi
W tych badaniach klinicznych oceniano bezpieczeństwo, tolerancję i potencjalną skuteczność obojętnego, rozpuszczalnego β-glukanu u pacjentów poddawanych poważnym operacjom chirurgicznym piersiowo-brzusznym o wysokim ryzyku infekcji pooperacyjnej. Trzydzieści cztery osoby płci męskiej i żeńskiej poddawane operacjom otrzymywały 0,5 mg/kg preparatu obojętnego, rozpuszczalnego β-glukanu lub solanki jako placebo w postaci infuzji dożylnej 50 do 200 ml, podawanej co godzinę. Pacjenci otrzymywali wielokrotne, kolejne dawki obojętnego, rozpuszczalnego β-glukanu lub placebo na 12 do 24 godzin przed operacją, do 4 godzin przed operacją, 48 godzin przed operacją i 96 godzin po operacji.
Jako potencjalne parametry skuteczności klinicznej badano hospitalizację, infekcje i stosowanie antybiotyków. W porównaniu z pacjentami otrzymującymi infuzje solanki, pacjenci otrzymujący obojętny, rozpuszczalny β-glukan spędzali średnio o pięć dni mniej w szpitalu (12,3±6,1 dnia w porównaniu z 17,3±15,5 dnia) i trzy dni krócej w oddziale intensywnej terapii (0,1±0,4 w porównaniu z 3,3±6,3 dnia; p<0,03, jednostronna analiza wariancji).
Liczba przepisań leków przeciw-infekcyjnych na dzień badania po operacji była znacznie wyższa dla pacjentów kontrolnych niż dla pacjentów otrzymujących β-glukan. Przez okres czasu od operacji do wypisania ze szpitala pacjentom kontrolnym przepisywano średnio trzy razy większą ilość leków anty-infekcyjnych niż pacjentom przyjmującym β-glukan. Podczas fazy leczenia oraz następującej po leczeniu fazy obserwacji zidentyfikowano łącznie 22 potwierdzonych bakteriologicznie infekcji u 5 pacjentów kontrolnych i 8 infekcji u 5 pacjentów otrzymujących β-glukan (p<0,002).
Neutrofile (PMN) i monocyty/makrofagi (MO) oczyszczano z próbek krwi otrzymanych w czasie zerowym, dnia 1 i dnia 5 i badano je na podstawową i stymulowaną mirystynianooctanem forbolu czynność mikrobobójczzą przeciwko Staphylococcus aureus, Escherichia coli i Candida albicans. Leczenie obojętnym, rozpuszczalnym β-glukanem generalnie zwiększa czynność mikrobobójczą MO i PMN.
Przykład X. Wpływ obojętnych, rozpuszczalnych glukanów na gojenie ran
Badania gojenia ran prowadzono na modelu nagiej myszy z ranami pełnej grubości z zakażeniem lub bez zakażenia Staphylococcus aureus. Nagie myszy wsobne SKH-1 (w wieku 6-8 tygodni) usypiano eterem i dokonywano pełnego 3 cm nacięcia wzdłużnego ostrzem skalpela nr 10, otrzymując ranę pełnej grubości, nie przenikającą poniżej powięzi. Nacięcia zamykano za pomocą stalowych klipsów w odstępach 1 cm.
Preparaty obojętnego, rozpuszczalnego glukanu w solance buforowanej fosforanem podawano w 30 minut po zranieniu i ponownie co 24 godziny przez okres 7 dni po operacji. Nanoszono miejscowo dwa mikrogramy obojętnego, rozpuszczalnego glukanu/mysz na dzień. Rany badano codziennie i szeregowano je pod względem skuteczności preparatu w wizual20
177 453 nym gojeniu rany. Zamykanie ran oceniano w skali 0-5, gdzie 5 wskazuje najlepsze wygojenie. W jednej z grup zainfekowanych myszy ranę traktowano kulturą 102 Staphylococcus aureus w 30 minut po zranieniu i na 2 godziny przed podaniem preparatu obojętnego, rozpuszczalnego glukanu.
Przeprowadzono badanie histologiczne miejsca rany dla każdej z grup badanych. Skóra właściwa grupy kontrolnej (rana nieleczona) była silnie infiltrowana zarówno limfocytami jak i monocytami/makrofagami. Jednakże epitelializacja zachodząca w warstwie naskórkowej była niekompletna. Sekcja tkanki wykazała, że tkanka skórna była słaba, co objawiało się w tym, że integralność tkanki nie utrzymywała się podczas sekcji.
Histologia zranionej tkanki wyizolowanej od myszy leczonych trzy dni solanką buforowaną fosforanem zawierającą obojętny, rozpuszczalny glukan wykazała, że jest silna infiltracja makrofagów i limfocytów. Integralność tkanki była dobra.
Po miejscowym naniesieniu na ranę kompozycja obojętnego, rozpuszczalnego glukanu stymulowała napływ czerwonych krwinek i ich aktywność przy miejscu zranienia oraz przyspieszała gojenie rany wewnątrz warstwy skóry właściwej. Ponadto, kompozycja skutecznie eliminowała infekcję bakteryjną (S. aureus) i zapobiegała postępowi posocznicy. W ranach nieleczonych następował postęp posocznicy.
Przykład XI. Stymulacja proliferacji płytek przez obojętny, rozpuszczalny glukan
Działania obojętnego, rozpuszczalnego glukanu stymulujące proliferację płytek badano na modelu zwierzęcym po napromieniowaniu albo po podaniu środka chemioterapeutycznego cis-platyny. Eksperymenty te wykazały nieoczekiwany efekt stymulujący płytki.
W szczególności grupom 10 myszy podawano solankę albo obojętny, rozpuszczalny glukan, otrzymany w sposób opisany w przykładzie I, w postaci pojedynczego wlewu, 20 godzin przed ekspozycją na promieniowanie. Myszy poddawano dwustronnej ekspozycji całego ciała na promieniowanie 7,5 Gy. Czternaście dni po napromieniowaniu myszy zabito, a w próbkach pełnej krwi analizowano parametry krwi obwodowej. Jak pokazano na fig. 7, liczba komórek płytek u myszy leczonych obojętnym, rozpuszczalnym glukanem była w przybliżeniu 3 razy większa w porównaniu z myszami kontrolnymi, leczonymi solanką.
Oprócz testów na myszach napromieniowanych przeprowadzono także badania wpływu obojętnego, rozpuszczalnego glukanu na hematopoezę płytkową u myszy leczonych cisplatyną. Na godzinę przed wstrzyknięciem dnia 0 solanki albo obojętnego, rozpuszczalnego glukanu, przygotowanego w sposób opisany w przykładzie I, domięśniowo w pojedynczej dawce 0 (solanka) lub 2 mg/kg myszom Balb/c wstrzykiwano dożylnie cis-platynę w dawce 9,3 mg/kg poprzez żyłę szyjną. Liczbę płytek oznaczano przed leczeniem (dzień 0) i 2, 4, 6, i 10 dni po leczeniu. Wyniki tego eksperymentu pokazano na figurze 8. Każdy punkt oznacza średnią i błąd średni standardowy liczby płytek od 5 myszy. Zanotowano istotne statystycznie różnice (p<0,05) między solanka i obojętnym rozpuszczalnym glukanem (2 mg/kg).
Depozyt biologiczny
Szczep Saccharomyces cerevisiae R4 Ad zdeponowano 20 sierpnia 1992 w kolekcji American Type Culture Collection (ATCC), 12301 Parklawn Drive, Rockville, Maryland, na mocy Porozumienia Budapeszteńskiego. Szczep uzyskał numer akcesyjny 74181.

Claims (11)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Niederywatyzowany, rozpuszczalny w wodzie P(1-3)glukan, pochodzący z drożdży lub z całych cząstek glukanu pochodzących z drożdży, o konformacji potrójnego heliksu, mający właściwości immunostymulujące, i ciężar cząsteczkowy od 30.000 do 500.000.
  2. 2. Kompozycja mająca właściwości immunostymulacyjne, znamienna tym, że zawiera niederywatyzowany, rozpuszczalny w wodzie P(1-3)glukan (pochodzący z drożdży lub z całych cząstek glukanu pochodzących z drożdży) o konformacji potrójnego heliksu i fizjologicznie dopuszczalny nośnik, gdzie niederywatyzowany rozpuszczalny w wodzie P(1-3)glukan konformacji potrójnego heliksu ma ciężar cząsteczkowy od 30.000 do 500.000, korzystnie 30.000 do 300.000 dla glukanu z drożdży lub całych cząstek glukanu pochodzących z drożdży.
  3. 3. Kompozycja według zastrz. 2, znamienna tym, że jako dopuszczalny nośnik zawiera wodę, jałową solankę, solankę buforowaną fosforanem, solankę izotoniczną lub dekstrozę.
  4. 4. Kompozycja według zastrz. 2 albo 3, znamienna tym, że zawiera glukan w stężeniu w dopuszczalnym fizjologicznie nośniku od 0,5 do 100 mg/ml.
  5. 5. Sposób wytwarzania niederywatyzowanego, rozpuszczalnego w wodzie p(1-3)glukanu o ciężarze cząsteczkowym od 30.000 do 500.000 o konformacji potrójnego heliksu, znamienny tym, że:
    a) na zawiesinę nierozpuszczalnego glukanu (pochodzącego z drożdży lub z całych cząstek glukanu pochodzących z drożdży), działa się kwasem organicznym w celu rozpuszczenia części glukanu rozpuszczalnej w wodzie;
    b) na glukan rozpuszczalny w kwasie działa się alkaliami aby denaturować natywną konformację rozpuszczalnego glukanu;
    c) zobojętnia się roztwór zawierający denaturowany rozpuszczalny glukan aby reasocjować rozpuszczalny glukan; i
    d) oczyszcza się reasocjowany rozpuszczalny glukan, otrzymując niederywatyzowany, rozpuszczalny w wodzie P(1-3)glukan o konformacji potrójnego heliksu.
  6. 6. Sposób według zastrz. 5, znamienny tym, że etap (a) przeprowadza się przy wartości pH od 1 do 5 i w temperaturze od 20°C do 100°C.
  7. 7. Sposób według zastrz. 5 albo 6, znamienny tym, że jako kwas stosuje się kwas octowy o stężeniu od 0,1 do 5 M, albo kwas mrówkowy o stężeniu od 50% do 98% (wag/objęt.).
  8. 8. Sposób według zastrz. 5, znamienny tym, że etap (b) przeprowadza się przy wartości pH od 7 do 14 i w temperaturze od 4°C do 121 °C.
  9. 9. Sposób według zastrz. 5, znamienny tym, że przed etapem (c) przeprowadza się dodatkowy etap oczyszczania denaturowanego glukanu, w celu usunięcia z niego nierozpuszczalnych w wodzie glukanów i agregowanych rozpuszczalnych w wodzie glukanów korzystnie z zastosowaniem przeponowych ultrafiltrów odcinających dla nominalnej masy cząsteczkowej 1000 do 100.000.
  10. 10. Sposób według zastrz. 5, znamienny tym, że etap (c) przeprowadza się przy wartości pH od 6 do 8 i w temperaturze od 50°C do 70°C.
  11. 11. Sposób według zastrz. 5, znamienny tym, że etap (d) przeprowadza się stosując przeponowy ultrafiltr odcinający dla nominalnej masy cząsteczkowej 30.000 do 100.000 i przeponowy ultrafiltr odcinający dla nominalnej masy cząsteczkowej 150.000 do 500.000.
PL93307567A 1992-08-21 1993-08-20 Niederywatyzowany, rozpuszczalny w wodzie beta (1-3) glukan, sposób wytwarzania niederywatyzowanego,rozpuszczalnego w wodzie beta(1-3) glukanu i kompozycja zawierająca niederywatyzowany, rozpuszczalny w wodzie beta(1-3) glukan PL177453B1 (pl)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US07/934,015 US5622939A (en) 1992-08-21 1992-08-21 Glucan preparation
PCT/US1993/007904 WO1994004163A1 (en) 1992-08-21 1993-08-20 Novel glucan preparation

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL307567A1 PL307567A1 (en) 1995-05-29
PL177453B1 true PL177453B1 (pl) 1999-11-30

Family

ID=25464815

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL93307567A PL177453B1 (pl) 1992-08-21 1993-08-20 Niederywatyzowany, rozpuszczalny w wodzie beta (1-3) glukan, sposób wytwarzania niederywatyzowanego,rozpuszczalnego w wodzie beta(1-3) glukanu i kompozycja zawierająca niederywatyzowany, rozpuszczalny w wodzie beta(1-3) glukan

Country Status (13)

Country Link
US (5) US5622939A (pl)
EP (1) EP0655921B1 (pl)
JP (3) JPH06107702A (pl)
KR (1) KR950702834A (pl)
AT (1) ATE210450T1 (pl)
AU (1) AU4095397A (pl)
BR (1) BR9307104A (pl)
DE (1) DE69331324T2 (pl)
FI (1) FI950770A (pl)
HU (1) HUT72418A (pl)
NZ (1) NZ255857A (pl)
PL (1) PL177453B1 (pl)
WO (1) WO1994004163A1 (pl)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2011078711A1 (en) 2009-12-23 2011-06-30 Wrocławski Park Technologiczny S.A. A kit and a method of producing beta-glucan, insoluble food fibre as well as a preparation of oat proteins

Families Citing this family (115)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5622939A (en) * 1992-08-21 1997-04-22 Alpha-Beta Technology, Inc. Glucan preparation
US5718694A (en) * 1993-11-09 1998-02-17 The Board Of Regents Of The University Of Nebraska Inhibition of adherence of microorganisms to biomaterial surfaces by treatment with carbohydrates
NO300692B1 (no) * 1994-04-29 1997-07-07 Biotec Mackzymal As Solubilisert forgrenet ß-1,3-glukan og anvendelse derav samt anvendelse av usolubilisert forgrenet ß-1,3-glukan
US5622940A (en) * 1994-07-14 1997-04-22 Alpha-Beta Technology Inhibition of infection-stimulated oral tissue destruction by β(1,3)-glucan
GB2331014C (en) * 1995-03-13 2005-06-21 Novogen Res Pty Ltd Therapeutic uses of glucan
AUPN166195A0 (en) 1995-03-13 1995-04-06 Norvet Research Pty Limited Process for glucan extraction
US6117850A (en) * 1995-08-28 2000-09-12 The Collaborative Group, Ltd. Mobilization of peripheral blood precursor cells by β(1,3)-glucan
US6090938A (en) * 1996-05-01 2000-07-18 Collaborative Group, Ltd. Activation of signal transduction by underivatized, aqueous soluble . .beta(1-3)-Glucan
US6110692A (en) * 1996-05-01 2000-08-29 The Collaborative Group, Ltd. Receptor for underivatized aqueous soluble β(1-3)-glucan
US6084092A (en) * 1997-01-31 2000-07-04 The Collaborative Group, Ltd. β(1-3)-glucan diagnostic assays
US6373972B1 (en) * 1996-12-18 2002-04-16 Kabushiki Kaisha Marutomo Microbe and cell function control device, a microbial ecology detector device, and a method of controlling a microbe and cell function control device
US6413715B2 (en) 1997-01-31 2002-07-02 The Collaborative Group β(1-3)-glucan diagnostic assays
GB9714102D0 (en) 1997-07-04 1997-09-10 Ciba Geigy Ag Compounds
US6046323A (en) * 1997-07-29 2000-04-04 The Collaborative Group, Ltd. Conformations of PPG-glucan
KR100680014B1 (ko) * 1997-10-03 2007-02-09 갈레니카 파마슈티칼스 인크. 이민 형성 폴리사카라이드, 이의 제조 방법 및 이것의 아쥬반트 및 면역자극제로서의 용도
US5980918A (en) * 1997-10-24 1999-11-09 Brennen Medical, Inc. β-D-glucan topical composition
WO1999031504A1 (en) * 1997-12-12 1999-06-24 Alpha-Beta Technology, Inc. ACTIVATION OF TRANSCRIPTION FACTOR COMPLEX BY β(1-3) GLUCAN
AU4683599A (en) * 1998-06-25 2000-01-10 Collaborative Group, Ltd., The Beta(1,3)-glucan microfibril assembly assay
US6369216B1 (en) * 1998-09-25 2002-04-09 Biopolymer Engineering Pharmaceutical, Inc. Very high molecular weight β-glucans
AU6261999A (en) 1998-09-25 2000-04-17 Collaborative Group, Ltd., The Very high molecular weight beta-glucans
US6210686B1 (en) 1998-12-18 2001-04-03 Beth Israel Deaconess Medical Center Dietary supplement and method for lowering risk of heart disease
US6143883A (en) * 1998-12-31 2000-11-07 Marlyn Nutraceuticals, Inc. Water-soluble low molecular weight beta-glucans for modulating immunological responses in mammalian system
WO2000042994A2 (en) * 1999-01-21 2000-07-27 North Shore-Long Island Jewish Research Institute Inhibition of bacterial dissemination
DE19911055A1 (de) * 1999-03-12 2000-09-21 Cognis Deutschland Gmbh Verwendung von oberflächenaktiven Gemischen
WO2000059490A2 (en) * 1999-04-06 2000-10-12 Genzyme Corporation Immunomodulating composition for use especially in the treatment of inflammations, infections and surgical adhesions
US6369648B1 (en) 1999-04-21 2002-04-09 Hughes Electronics Corporation Linear traveling wave tube amplifier utilizing input drive limiter for optimization
US20070077256A1 (en) 1999-11-19 2007-04-05 Los Angeles Biomedical Research Institute Pharmaceutical compositions and methods to vaccinate against disseminated candidiasis and other infectious agents
US8541008B2 (en) * 1999-11-19 2013-09-24 Los Angeles Biomedical Research Institute At Harbor-Ucla Medical Center Pharmaceutical compositions and methods to vaccinate against candidiasis
US20060083750A1 (en) * 1999-11-19 2006-04-20 Los Angeles Biomedical Research Institute At Harbor-Ucla Medical Center Pharmaceutical compositions and methods to vaccinate against disseminated candidiasis
US6713459B1 (en) 2000-04-28 2004-03-30 East Tennessee State University Methods for the prophylactic and therapeutic treatment of cardiac tissue damage
US7011845B2 (en) * 2000-05-09 2006-03-14 Mcp Hahnemann University β-glucans encapsulated in liposomes
JP2001354570A (ja) * 2000-06-15 2001-12-25 Ichimaru Pharcos Co Ltd 免疫賦活剤及びそれを利用した香粧品
CA2418030C (en) 2000-08-03 2010-10-26 Martin Sauter Isolation of glucan particles and uses thereof
US7906492B2 (en) * 2001-01-16 2011-03-15 Sloan-Kettering Institute For Cancer Research Therapy-enhancing glucan
WO2002058711A1 (en) * 2001-01-16 2002-08-01 Sloan-Kettering Institute For Cancer Research Therapy-enhancing glucan
US7507724B2 (en) * 2001-01-16 2009-03-24 Sloan-Kettering Institute For Cancer Research Therapy-enhancing glucan
US7923437B2 (en) * 2001-02-16 2011-04-12 Cargill, Incorporated Water soluble β-glucan, glucosamine, and N-acetylglucosamine compositions and methods for making the same
US8222232B2 (en) * 2001-02-16 2012-07-17 Cargill, Incorporated Glucosamine and N-acetylglucosamine compositions and methods of making the same fungal biomass
US7816514B2 (en) 2001-02-16 2010-10-19 Cargill, Incorporated Glucosamine and method of making glucosamine from microbial biomass
JP4499979B2 (ja) * 2001-05-21 2010-07-14 コンビ株式会社 病原菌感染抑制用組成物
US7914799B2 (en) * 2001-08-27 2011-03-29 Immunitor USA, Inc. Anti-fungal composition
NO20014256D0 (no) * 2001-09-03 2001-09-03 Bjoern Kristiansen Fremstilling av immunstimulerende forbindelse
US7786094B2 (en) * 2001-10-09 2010-08-31 Biopolymer Engineering, Inc. Use of beta-glucans against biological warfare weapons and pathogens including anthrax
WO2004014320A2 (en) * 2002-08-13 2004-02-19 Biopolymer Engineering, Inc. Methods of using beta glucan as a radioprotective agent
CA2496508C (en) * 2002-09-04 2014-04-22 University Of Louisville Research Foundation, Inc. Cancer therapy using beta glucan and antibodies
US20060165700A1 (en) * 2002-09-04 2006-07-27 Ostroff Gary R Cancer therapy using whole glucan particles and antibodies
US7018986B2 (en) * 2002-09-20 2006-03-28 Immudyne Use of beta glucans for the treatment of osteoporosis and other diseases of bone resorption
US7186725B2 (en) * 2003-01-03 2007-03-06 Genzyme Corporation Anti-inflammatory compositions and methods
KR100457270B1 (ko) * 2003-03-18 2004-11-16 주식회사 엔바이오테크놀러지 효모변이주 아이에스투 유래 수용성 글루칸 올리고머를함유하는 면역활성용 또는 암질환 예방 및 치료용 조성물,및 이의 제조방법
EP1622627B1 (en) * 2003-05-02 2013-05-22 Ceapro Inc. Pharmaceutical compositions comprising cereal beta(1-3) beta(1-4) glucan
US20060121131A1 (en) * 2003-05-02 2006-06-08 Ceapro Inc. Pharmaceutical compositions comprising cereal beta (1-3) beta (1-4) glucan
KR100419191B1 (ko) * 2003-06-23 2004-02-19 주식회사 엔바이오테크놀러지 독감 인플루엔자 바이러스 및 전염성 위장염 코로나바이러스 억제 활성을 갖는 효모변이주 아이에스2 유래수용성 글루칸 올리고머를 함유하는 조성물
US7197521B2 (en) * 2003-11-21 2007-03-27 Intel Corporation Method and system performing concurrently mark-sweep garbage collection invoking garbage collection thread to track and mark live objects in heap block using bit vector
KR100485056B1 (ko) * 2004-01-19 2005-04-22 (주)네추럴에프앤피 효모의 수용성 글루칸 올리고머를 함유하는 항 h1n2형 조류독감 바이러스제
WO2006085895A2 (en) * 2004-05-10 2006-08-17 Biopolymer Engineering, Inc. Whole glucan particles in combination with antibiotics, vaccines and viral monoclonal antibodies
US7740861B2 (en) * 2004-06-16 2010-06-22 University Of Massachusetts Drug delivery product and methods
US7514085B2 (en) 2004-07-16 2009-04-07 Medimush A/S Immune modulating compounds from fungi
CN101052383B (zh) * 2004-09-17 2013-01-30 马萨诸塞大学 用于溶酶体酶缺乏症的组合物和其用途
US20060079481A1 (en) * 2004-10-08 2006-04-13 Rolf Engstad Method of treating/preventing mucositis
US20060084629A1 (en) * 2004-10-15 2006-04-20 Alvin Needleman Immune system activating formula composed of selected long chain polysaccharides from natural sources
US20090092641A1 (en) * 2004-10-18 2009-04-09 Progressive Bioactivities, Inc. Uses of natural immunobiotic extract
AU2005318196B2 (en) * 2004-12-23 2010-08-19 Dsm Ip Assets B.V. Process to improve activity of mannoprotein as wine stabiliser
CN101087872B (zh) * 2004-12-23 2012-01-04 帝斯曼知识产权资产管理有限公司 可完全溶解于葡萄酒中的甘露糖蛋白及其在对葡萄酒加以稳定的过程中的应用
EP1714675A1 (en) * 2005-04-21 2006-10-25 Desol BV Method for increasing the speed of wound healing of injured animals
US20070059310A1 (en) * 2005-05-03 2007-03-15 Karel Steven J Therapeutic combination compositions and methods of using same
WO2006121803A1 (en) 2005-05-05 2006-11-16 Sensient Flavors Inc. Production of beta-glucans and mannans
EP1896600A2 (en) 2005-06-15 2008-03-12 Medimush A/S Anti-cancer combination treatment and kit-of-part
WO2006133708A1 (en) * 2005-06-15 2006-12-21 Medimush A/S Bioactive agents produced by submerged cultivation of a basidiomycete cell
US20090209624A1 (en) * 2005-10-24 2009-08-20 University Of Massachusetts Compositions and their uses for gene therapy of bone conditions
DK1965809T3 (da) 2005-11-21 2010-01-04 Bioatlantis Ltd Præparater til forbedring af sundhedstilstanden i dyrs tarmsystem og dyrs ydeevne omfattende Beta-glucanerne og Alfa-fucaner
US20090053221A1 (en) * 2006-01-17 2009-02-26 Cheung Nai-Kong V Immune response enhancing glucan
US8323644B2 (en) * 2006-01-17 2012-12-04 Sloan-Kettering Institute For Cancer Research Therapy-enhancing glucan
JP2009528267A (ja) * 2006-01-17 2009-08-06 スローン − ケッタリング インスティチュート フォー キャンサー リサーチ 治療を増強するグルカン
US7695246B2 (en) * 2006-01-31 2010-04-13 United Technologies Corporation Microcircuits for small engines
JP4802821B2 (ja) * 2006-03-31 2011-10-26 ダイソー株式会社 精製β−D−グルカンの製造方法
WO2007146440A2 (en) 2006-06-15 2007-12-21 Biopolymer Engineering, Inc. Dba Biothera, Inc. Glucan preparations
WO2008027580A2 (en) * 2006-09-01 2008-03-06 University Of Louisville PARTICULATE β-GLUCAN COMPOSITIONS FOR REGULATING DENDRITIC CELLS
US20080063650A1 (en) * 2006-09-01 2008-03-13 Jun Yan mCRP antagonists and their uses
EP2098240B1 (en) * 2006-11-02 2013-09-11 Aureo Co., Ltd. Agent for promoting healing of living body
US9457047B2 (en) 2006-11-06 2016-10-04 Whitehead Institute Immunomodulating compositions and methods of use thereof
WO2008057501A2 (en) * 2006-11-06 2008-05-15 Whitehead Institute Immunomodulating compositions and methods of use thereof
JP4979467B2 (ja) * 2006-12-05 2012-07-18 尚仁 大野 抗β−グルカン抗体測定方法と測定キット
CN105310078B (zh) * 2007-05-08 2018-03-30 生物高聚物工程公司Dba生物治疗公司 粒状可溶的葡聚糖制备
WO2009042230A1 (en) * 2007-09-27 2009-04-02 Biopolymer Engineering, Inc. Dba Biothera, Inc ß-GLUCAN TREATMENT OF UPPER RESPIRATORY TRACT INFECTION SYMPTOMS AND PSYCHOLOGICAL WELL-BEING
EP2222283A2 (en) * 2007-10-29 2010-09-01 University of Massachusetts Yeast cell wall protein (ycwp) encapsulated multilayered nanoparticles for nucleic acid delivery (sirna)
WO2009063221A2 (en) * 2007-11-13 2009-05-22 Biotec Pharmacon Asa Methods of treating or preventing inflammatory diseases of the intestinal tract
US20110065911A1 (en) * 2008-02-19 2011-03-17 Novogen Research Pty Ltd Method for producing a bioactive glucan product substantially free of endotoxin contamination
WO2009103115A1 (en) * 2008-02-19 2009-08-27 Novogen Research Pty Ltd Evaluating the therapeutic potential of a glucan
US8358882B2 (en) * 2008-03-11 2013-01-22 Future Fibre Technologies Pty Ltd. Modalmetric fibre sensor
EP2424547A4 (en) * 2008-10-15 2012-09-05 Novogen Res Pty Ltd TREATMENT PROCESS WITH GLUCAN FORMULATIONS
CN101434974B (zh) * 2008-12-18 2011-11-09 山东大学 一种利用酵母制备可溶性β-1,3-葡聚寡糖的方法
FI20080665A0 (fi) * 2008-12-18 2008-12-18 Glykos Finland Oy Luonnollisen tyyppiset sakkaridikoostumukset
US20110293784A1 (en) 2010-05-28 2011-12-01 Anja Wittke Milk-based nutritional compositions
TWI459949B (zh) * 2010-07-16 2014-11-11 Univ Fu Jen Catholic β-葡聚糖(β-glucan)用於製備抑制免疫球蛋白A不正常上升之藥物的用途
WO2012167061A1 (en) * 2011-06-03 2012-12-06 Biothera, Inc. OPSONIZED β-GLUCAN PREPARATIONS AND METHODS
CN103998056B (zh) 2011-07-22 2017-09-12 诺瓦蒂格姆疗法有限公司 用于接种抗金黄色葡萄球菌疫苗的方法和组合物
TWI652992B (zh) * 2011-10-31 2019-03-11 興人生命科學股份有限公司 酵母來源之調味料、酵母蛋白質組成物之製造方法、及酵母來源之調味料之製造方法
JP5903505B2 (ja) * 2012-01-30 2016-04-13 ティアッカディ ソチエタ ペル アツィオニ 裂肛の治療における組成物及びその使用
EA030005B1 (ru) 2013-03-15 2018-06-29 Лос-Анджелес Биомедикал Ресерч Институт Эт Харбор-Укла Медикал Центер Композиции и способы лечения грибковых и бактериальных патогенов
LT6145B (lt) 2014-04-14 2015-04-27 Uab "Biocentras" TERAPINĖ ß-GLIUKANŲ KOMPOZICIJA, MODULIUOJANTI ŽMOGAUS IMUNINĘ SISTEMĄ IR INICIJUOJANTI VĖŽINIŲ LĄSTELIŲ ARDYMĄ
JP6893594B2 (ja) 2014-07-10 2021-06-23 ハイバーセル,インク. 腫瘍微小環境に影響する抗癌剤と組み合わせたβ−グルカン
WO2016073763A2 (en) 2014-11-06 2016-05-12 Biothera, Inc. Beta-glucan methods and compositions that affect the tumor microenvironment
US20160256480A1 (en) * 2015-03-03 2016-09-08 Wintley PHIPPS Therapeutic composition for wound healing
CN105153440B (zh) * 2015-07-10 2018-01-16 南雄阳普医疗科技有限公司 一种葡聚糖微球凝胶的制备方法
JP2019507759A (ja) 2016-03-09 2019-03-22 ロサンゼルス バイオメディカル リサーチ インスティテュート アット ハーバー− ユーシーエルエー メディカル センター 外陰部膣カンジダ症の予防及び治療で使用するための方法及びキット
JP6293187B2 (ja) * 2016-03-22 2018-03-14 株式会社アウレオ 造血機能増進用の組成物、及び貧血の予防及び/又は改善用の組成物
WO2017180760A1 (en) * 2016-04-12 2017-10-19 Kemin Industries, Inc. Methods to facilitate the solubilization of beta-1,3-glucan and enhance immune function and other related uses
WO2018156888A1 (en) 2017-02-24 2018-08-30 Biothera Pharmaceuticals, Inc. Beta glucan immunopharmacodynamics
JP2021501186A (ja) 2017-10-30 2021-01-14 ユニバーシティ オブ サザン カリフォルニア 感染を防止するための免疫予防へのマルチアジュバントのみアプローチのための組成物および方法
CN112076208A (zh) * 2019-06-13 2020-12-15 青岛海洋生物医药研究院股份有限公司 一种葡聚糖在制备药物的应用
WO2023002252A1 (en) 2021-07-21 2023-01-26 Bioatlantis Limited Composition comprising beta-glucans and alpha-fucans for improving gut health and animal performance and methods of making the same
US11572420B1 (en) 2021-07-30 2023-02-07 Tissue repair ltd Isolated biological polysaccharide compound, methods of use and methods of manufacture thereof
US11384160B1 (en) 2021-07-30 2022-07-12 Tissue repair ltd Method of making a beta glucan compound
WO2023183080A1 (en) 2022-03-21 2023-09-28 University Of Southern California Triple vaccine protects against bacterial and fungal pathogens via trained immunity
WO2023240146A2 (en) * 2022-06-08 2023-12-14 The Administrators Of The Tulane Educational Fund COMPOSITIONS INCLUDING CANDIDA DUBLINIENSIS AND ALKALINIZED FUNGAL β-GLUCANS FOR PROTECTION AGAINST INFECTION-INDUCED SEPSIS

Family Cites Families (21)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4138479A (en) * 1975-11-07 1979-02-06 Bayer Aktiengesellschaft Process for the preparation of immunopotentiating agents from components of yeast cell wall material
JPS5461112A (en) * 1977-10-24 1979-05-17 Ono Pharmaceut Co Ltd Oncostatic polysaccharide* its preparation* and oncostatic drugs containing it as an effective component
JPS5571701A (en) * 1978-11-24 1980-05-30 Sankyo Co Ltd Hydrolyzate polysaccharide, its preparation, and immunoregulator containing hydrolyzate polysaccharide as active ingredient
JPS5676401A (en) * 1979-11-27 1981-06-24 Hitoshi Ito Simple glucan separated from cultured choray, preparation thereof and antitumor agent containing its polysaccharide as effective component
GB2076418A (en) * 1980-05-22 1981-12-02 Sankyo Co Hydrolyzed polysaccharide
JPS5945301A (ja) * 1982-09-09 1984-03-14 Toyo Soda Mfg Co Ltd 多糖類及びその製造法
JPS59210901A (ja) * 1983-05-17 1984-11-29 Nippon Kinoko Kenkyusho プロテオグルカン及びそれからなる抗ガン剤
SE456911B (sv) * 1983-12-19 1988-11-14 Olle Larm Vattenloeslig, aminerad beta-1,3-bunden d-glukan och makrofagstimulerande komposition innehaallande densamma
US4810646A (en) * 1984-11-28 1989-03-07 Massachusetts Institute Of Technology Glucan compositions and process for preparation thereof
US4739046A (en) * 1985-08-19 1988-04-19 Luzio Nicholas R Di Soluble phosphorylated glucan
US5057503A (en) * 1989-01-23 1991-10-15 The Brigham And Women's Hospital Derivativized polysaccharides with biologic activity, method of their isolation, and uses therefor
US5032401A (en) * 1989-06-15 1991-07-16 Alpha Beta Technology Glucan drug delivery system and adjuvant
JPH05503952A (ja) * 1989-09-08 1993-06-24 アルファ ベータ テクノロジー,インコーポレイティッド 可溶性グルカン類の製造方法
WO1991003248A2 (en) * 1989-09-08 1991-03-21 Alpha Beta Technology, Inc. Method for immune system activation
US5488040A (en) * 1989-09-08 1996-01-30 Alpha-Beta Technology, Inc. Use of neutral soluble glucan preparations to stimulate platelet production
US5622939A (en) * 1992-08-21 1997-04-22 Alpha-Beta Technology, Inc. Glucan preparation
JP2911554B2 (ja) * 1990-06-25 1999-06-23 台糖株式会社 抗ウィルス剤
AU1455292A (en) * 1991-02-01 1992-09-07 Bioglucans, L.P. Soluble glucans
ZA935649B (en) * 1992-08-05 1994-03-07 Bioglucans L P Method for preparing soluble glucans
IT1256035B (it) * 1992-08-10 1995-11-21 Consiglio Nazionale Ricerche Glucani ad attivita' immunostimolante
US6369216B1 (en) * 1998-09-25 2002-04-09 Biopolymer Engineering Pharmaceutical, Inc. Very high molecular weight β-glucans

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2011078711A1 (en) 2009-12-23 2011-06-30 Wrocławski Park Technologiczny S.A. A kit and a method of producing beta-glucan, insoluble food fibre as well as a preparation of oat proteins

Also Published As

Publication number Publication date
JP2005264167A (ja) 2005-09-29
NZ255857A (en) 1996-10-28
HUT72418A (en) 1996-04-29
JPH06107702A (ja) 1994-04-19
US20020032170A1 (en) 2002-03-14
DE69331324T2 (de) 2002-08-22
WO1994004163A1 (en) 1994-03-03
ATE210450T1 (de) 2001-12-15
EP0655921B1 (en) 2001-12-12
FI950770A0 (fi) 1995-02-20
US5783569A (en) 1998-07-21
AU679690B2 (en) 1997-07-10
AU5086893A (en) 1994-03-15
US20040116380A1 (en) 2004-06-17
BR9307104A (pt) 1999-03-30
DE69331324D1 (de) 2002-01-24
HU9500504D0 (en) 1995-04-28
PL307567A1 (en) 1995-05-29
US5817643A (en) 1998-10-06
EP0655921A1 (en) 1995-06-07
JPH08500623A (ja) 1996-01-23
US5622939A (en) 1997-04-22
FI950770A (fi) 1995-02-20
AU4095397A (en) 1997-12-18
KR950702834A (ko) 1995-08-23

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US5783569A (en) Uses for underivatized, aqueous soluble β(1-3) glucan and compositions comprising same
US5532223A (en) Use of aqueous soluble glucan preparations to stimulate platelet production
AU650626B2 (en) Method for producing soluble glucans
US5663324A (en) Method for producing underivatized, aqueous soluble β(1-3) glucan
US5504079A (en) Method for immune system activation by administration of a β(1-3) glucan which is produced by Saccharomyces cerevisiae strain R4
US6369216B1 (en) Very high molecular weight β-glucans
Di Luzio Update on the immunomodulating activities of glucans
US7566704B2 (en) Very high molecular weight β-glucans
Williams et al. Development, physicochemical characterization and preclinical efficacy evaluation of a water soluble glucan sulfate derived from Saccharomyces cerevisiae
US8865679B2 (en) Use of beta-glucans against biological warfare weapons and pathogens including anthrax
US6420348B1 (en) Pectic polysaccharides purified from Angelica gigas nakai and purification method and use as immunostimulating agent thereof
CA2142811C (en) Novel glucan preparation
AU679690C (en) Novel glucan preparation
EP0611304B1 (en) Use of acetylated mannan (acemannan) for the regulation of blood cholesterol levels and for removing plaques in blood vessels