PL171907B1 - Sposób wytwarzania dimeru Apolipoproteiny AL-Milano PL PL PL - Google Patents
Sposób wytwarzania dimeru Apolipoproteiny AL-Milano PL PL PLInfo
- Publication number
- PL171907B1 PL171907B1 PL92300262A PL30026292A PL171907B1 PL 171907 B1 PL171907 B1 PL 171907B1 PL 92300262 A PL92300262 A PL 92300262A PL 30026292 A PL30026292 A PL 30026292A PL 171907 B1 PL171907 B1 PL 171907B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- apo
- dimer
- apolipoprotein
- plasminogen
- monomer
- Prior art date
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/435—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
- C07K14/775—Apolipopeptides
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K38/00—Medicinal preparations containing peptides
- A61K38/16—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- A61K38/17—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
- A61K38/1703—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from vertebrates
- A61K38/1709—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from vertebrates from mammals
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P3/00—Drugs for disorders of the metabolism
- A61P3/06—Antihyperlipidemics
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P7/00—Drugs for disorders of the blood or the extracellular fluid
- A61P7/02—Antithrombotic agents; Anticoagulants; Platelet aggregation inhibitors
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P9/00—Drugs for disorders of the cardiovascular system
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P9/00—Drugs for disorders of the cardiovascular system
- A61P9/10—Drugs for disorders of the cardiovascular system for treating ischaemic or atherosclerotic diseases, e.g. antianginal drugs, coronary vasodilators, drugs for myocardial infarction, retinopathy, cerebrovascula insufficiency, renal arteriosclerosis
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P9/00—Drugs for disorders of the cardiovascular system
- A61P9/14—Vasoprotectives; Antihaemorrhoidals; Drugs for varicose therapy; Capillary stabilisers
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
- Y02A50/00—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
- Y02A50/30—Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Public Health (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Gastroenterology & Hepatology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Cardiology (AREA)
- Heart & Thoracic Surgery (AREA)
- Diabetes (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Vascular Medicine (AREA)
- Marine Sciences & Fisheries (AREA)
- Toxicology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Immunology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Hematology (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Urology & Nephrology (AREA)
- Obesity (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Steroid Compounds (AREA)
- Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Ink Jet (AREA)
Abstract
1. Sposób wytwarzania dimeru Apolipoproteiny Al-Milano o czystosci co najmniej 90%, znamienny tym, ze komórki E. coli transformuje sie wektorem ekspresyjnym obejmu- jacym gen kodujacy Apolipoproteine Al-Milano, prowadzi sie hodowle stransformowanych E. coli, po czym bakterie poddaje sie lizie i otrzymane bialko fuzyjne oczyszcza sie na immobilizowanej IgG, odszczepia sie Apolipoproteine A1 -Milano za pomoca kwasu mrówkowego, po czym monomer obecny w otrzymanej mieszaninie, skladajacej sie glównie z dimeru i niewielkich ilosci monomeru, przeprowadza sie w dimer i nastepnie oczyszcza sie dimer konwencjonalnymi metodami. PL PL PL
Description
Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania czystego dimeru apolipoproteiny A1-Milano (Apo A1-M/Apo A1-M). Produkt można stosować do leczenia miażdżycy tętnic i chorób sercowo-naczyniowych, również jako środek zawierający Apo A1-M o 'opóźnionym działaniu.
Wyraźna zależność pomiędzy podwyższonym poziomem cholesterolu i rozwojem choroby wieńcowej serca (CHD) była wielokrotnie potwierdzona w oparciu o badania epidemiologiczne i przekrojowe. Jednak określenie złożonych mechanizmów transportu cholesterolu w osoczu pozwoliło na rozpoznanie selektywnej funkcji cyrkulujących lipoprotein w określeniu ryzyka zachorowania na CHD.
Są cztery główne cyrkulujące lipoproteiny: chylomikrony (CM), lipoproteiny o bardzo małej gęstości (VLDL), lipoproteiny o małej gęstości (LDL) i lipoproteiny o dużej gęstości (HDL). Podczas gdy CM są krótkotrwałym produktem jelitowej absorpcji tłuszczu, VLDL a zwłaszcza LDL są odpowiedzialne za transport cholesterolu do- tkanek, w tym np. do ścianek tętnic. Przeciwnie HDL są włączone bezpośrednio w usuwanie cholesterolu z tkanek obwodowych i przenoszenie go z powrotem do wątroby albo do innych lipoprotein poprzez mechanizm znany jako odwrotny transport cholesterolu (RCT).
Ochronna rola HDL została potwierdzona w kilku badaniach (np. Miller i in., Lancet, 1977, 965-968 i Whayne i in. Atherosclerosis, 1981, 39, 411-419). Na podstawie tych badań wydaje się, że podwyższone poziomy LDL w mniejszym stopniu niż VLDL są wyraźnie związane ze zwiększonym ryzykiem zagrożenia chorobą sercowo-naezyniową, natomiast wysoki poziom HDL chroni przed tymi chorobami. Ochronna rola HDL została mocno poparta badaniami in vivo, wykazującymi, że infuzja HDL królikom może hamować rozwój uszkodzeń tętnic wywołanych cholesterolem (Badimon i in., Lab. Invest. 60,455-61, 1989) i/lub wywoływać ich regresję (Badimon i in., J. Clin. Invest. 85, 1234-41, 1990).
Ostatnie zainteresowania w badaniu mechanizmu(ów) ochronnych HDL skupiły się na apolipoproteinie A1 (Apo A1), głównym składniku HDL. Wysoki poziom Apo A1 w osoczu jest związany z obniżonym ryzykiem CHD i obecnością uszkodzeń wieńcowych (Maciejko i in., N.
Engl. J. Med. 1983; 309:385-389; Sedlis i in., Circulation, 1986; 73 i 978-981).
Apo A1 w osoczu jest pojedynczym łańcuchem polipeptydowym o 243 aminokwasach, których główna sekwencja jest znana (Brewer i in., Biochem Biophys Res. Commun., 1978; 80:623-630). Apo A1 jest syntetyzowana w komórce jako prekursor o 267 aminokwasach. Pre-pro-apolipoproteina najpierw podlega N-końcowemu rozszczepieniu wewnątrzkomórkowo, gdzie traci 18 aminokwasów, a następnie dalszemu odszczepieniu 6 aminokwasów w osoczu lub limfie dzięki aktywności specyficznych proteaz.
Uważa się, że główną strukturalną cechą cząsteczki Apo A1 jest obecność powtarzalnych jednostek 11 lub 22 aminokwasów, które, przypuszcza się, że występują w amfipatycznej konformacji helisy (Segrest i in. FEBS Lett. 1974; 38:247-253). Ta struktura stanowi o głównych aktywnościach biologicznych Apo A1, tj. wiązaniu lipidów i aktywowaniu acylotransferazy lecytynocholesterolowej (LCAT).
Inną, ostatnio opisaną właściwością Apo A1jest jej czynność przeciwwirusowa. Wynika to z badań in vitro, a czynność jest skierowana zarówno wobec szczepów wirusa Herpes (R.V. Srinivas i in. Virology, 1756, 48-57, 1990) jak i wobec ludzkiego wirusa upośledzenia odporności, HIV (Owe i in., J. Clin. Invest. 86,1142-50,1990). Wydaje się, że taka czynność działa przez interakcję między amfipatycznymi helikalnymi częściami Apo A1 i glikoproteinami otoczki wirusów.
Badania in vitro wskazują, że kompleksy Apo A1 i lecytyny mogą pobudzać wypływ wolnego cholesterolu z hodowanych komórek mięśni gładkich tętnicy (Stein i in., Biochem. Biophys. Acta, 1975; 380:106-118). Według tego mechanizmu HDL mogą także zmniejszać proliferację tych komórek (Yoshida i in., Exp. Mol. Pathol. 1984; 41:258-266).
Ostatnio wykazano, że infuzje Apo A1 lub HDL robione zwierzętom doświadczalnym wywołują istotne zmiany biochemiczne, jak również zmniejszają zasięg i powagę uszkodzeń miażdżycowych w tętnicach. Po początkowym doniesieniu Maciejki i Mao (Arteriosclerosis, 1982; 2:407a) Badimon i in. (patrz dwa cytowane powyżej badania) stwierdzili, że można znacznie zmniejszyć zakres uszkodzeń miażdżycowych (-45%) i zawartość estru cholesterolu (-58,5%) u karmionych cholesterolem królików, przez infuzję HDL (d = 1,063 - 1,325 g/ml). Stwierdzili także, x że infuzje HDL prowadzą do prawie 50% regresji istniejących uszkodzeń.
Wykazano także (Esper i in., Arteriosclerosis, 1987; 7:523a), że infuzje HDL mogą znacznie zmieniać skład lipoprotein w osoczu u królików Watanabe z dziedziczną hiporcholosterolemią, która powoduje wczesne uszkodzenia tętnic. W tym przypadku infuzje HDL mogą więcej niż podwoić stosunek między ochronnymi HDL i miażdżycorodnymi LDL.
Potencjalne działanie HDL w zapobieganiu chorobie tętnic u zwierząt modelowych potwierdzono jeszcze przez obserwację, że Apo Al może mieć aktywność fibrynolityczną in vitro (Saku i in., Thromb Res. 1985; 39:1-8). Ronneberger (X Międzynarodowy Kongres Farmakol., Sidney 1987, str. 990) wykazał, że ekstrakcyjna Apo A1 może zwiększać fibrynolizę u psów gończych i małp Cynomologous. Podobną aktywność można zauważyć in vitro na ludzkim osoczu. Autor ten mógł potwierdzić zmniejszenie osadzania się lipidów i tworzenia się płytek tętniczych u zwierząt, którym podaje się Apo A1.
Apolipoproteina A1-Milano (Apo A1-M) jest pierwszym opisanym molekularnym wariantem ludzkiej Apo A1 (Franceschini i in. J. Clin. Invest. 1980; 66:892-900). Charakteryzuje się tym, że Arg 173 jest zastąpiona Cys (Weisgraber i in., J. Biol. Chem., 1983; 258:2508-2513). Zmutowana apoproteinajest przenoszona jako autosomalna cecha dominująca i zidentyfikowano 8 pokoleń przonosicieli (Gualandri i in. Am. J. Hum. Genet. 1984; 37:1083-1097).
Stan osobnika przenosiciela Apo A1-M charakteryzuje znaczne obniżenie poziomu cholesterolu-HDL. Mimo tego, badani osobnicy najwyraźniej nie wykazują zwiększonego ryzyka choroby tętnic; faktycznie, z badania drzewa genealogicznego wynika, że osobnicy ci są zabezpieczeni przed miażdżycą tętnic.
Wydaje się, że mechanizm możliwego ochronnego działania Apo A1-M u przenosicmU jest związany z modyfikacją w strukturze zmutowanej apolipoproteiny polegającą na utracie jednego alfa-heliksu i zwiększonej ekspozycji reszt hydrofobowych (Francheschini i in., J. Biol.
Chem. 1985; 260:1632-1635). Utrata sztywnej struktury kilku alfa-heliksów prowadzi do zwiększonej elastyczności cząsteczki, która łatwiej łączy się z lipidami, w porównaniu z normalną A1. Ponadto, kompleksy apolipoproteina/lipid są bardziej podatna na denaturację, co sugeruje, że w przypadku mutanta poprawione jest także dostarczanie lipidów.
Lecznicze zastosowanie mutanta apolipoproteiny Apo A1-M jest obecnie ograniczone przez brak metody pozwalającej na wytwarzanie tych apolipoprotein w wystarczającej ilości i w odpowiedniej postaci.
Inną bardzo specyficzną cechą Apo A1-M jest zdolność do tworzenia dimerów ze sobą i kompleksów z Apo A1, w obu przypadkach, dzięki obecności reszty Cys. Z badań frakcji krwi zawierających mieszaninę Apolipoprotein wynikały wskazania, że obecność dimerów i kompleksów w obiegu może być odpowiedzialna za zwiększony okres ich połowicznego wydalania u przenosicieli, ostatnio opisanych w badaniach klinicznych (Gregg i in., NATO ARW on Human Apolipoprotein Mutants: From Gene Structure to Phenotypic Expression, Limone SG, 1988).
Dimery Apo A1-M (Apo A1-M/Apo A1-M) działają jako czynnik hamujący w interkonwersji cząstek HDL in vitro (Franceschini i in. J. Biol. Chem. 1990; 265:1224-12231).
Wcześniejsze badania mieszanin zawierających dimer są oparte na Apo A1-M wydzielonym z naturalnej krwi od osób z Apo A1-M, którą można było otrzymać tylko w małej ilości.
Trudności w wyprodukowaniu Apo A1 a zwłaszcza Apo A1-M z frakcji osocza są bardzo poważne (Franceschini i in., J. Biol. Chem. 1985; 260:16321-16325). Wydzielenia i produkcji nie można przeprowadzić na dużą skalę, ponieważ dostępna jest tylko mała ilość surowca. Ponadto, z produktami frakcjonowania osocza związane jest ryzyko, między innymi takie, jak zanieczyszczenie czynnikami zakaźnymi. To jest główny powód ich unikania.
Usiłowano wyprodukować ludzką Apo A1 na drodze rekombinacji DNA. W publikacji europejskiego patentu nr 0 267 703 jest opisany sposób otrzymywania Apo A1w E. coli. Jest tam opisany chimeryczny polipeptyd, w którym reszta Apo A1 jest połączona z N-końcowymi resztami aminokwasowymi beta-galaktozydazy lub zjedną lub więcej domenami wiążącymi IgG Proteiny A lub z pro-sekwencją ludzkiej Apo A1.
Ekspresja Apo A1 i Apo A1-M w szczepach drożdży i zastosowanie wytworzonych składników w leczeniu chorób miażdżycowych tętnic i chorób sercowo-naczyniowych są ujawnione w W090/12879. Geny kodujące Apo A1 i Apo A1-M są połączone z sekwencjami DNA kodującymi sygnały sekrecyjne i obróbki białka rozpoznawalne przez drożdże i podłączonymi przed genem kodującym dojrzałe białko. Stosowano modyfikowaną sekwencję MF-alfa1-lidera, w której ostatnimi resztami były HisGlySerLeuAspLysArg.
NINIEJSZY WYNALAZEK
Stwierdziliśmy nieoczekiwanie, że oczyszczony dimer Apo A1-M/Apo A1-M ma przedłużony półokres trwania w porównaniu z monomerem Apo A1-M, poza tym, że ma wyraźnie lepszą właściwość stymulowania fibrynolizy w porównaniu z normalną Apo A1, np. zdolność do bezpośredniego aktywowania plazminogenu (którego normalna Apo A1 nie aktywuje) oraz, że może być biologicznie ważny i może działać jako pro-lek dla Apo A1-M. Tworzy także rekonstytuowane cząstki HDL (lipoproteiny o dużej gęstości) o wyjątkowej wielkości, jakich nie znaleziono w rekombinacyjnych cząstkach HDL zawierających Apo A1-M lub Apo A1.
Sposobem według wynalazku wytwarza się zasadniczo czyste dimery apolipoproteiny A1-Milano, dalej określane jako Apo A1-M/Apo A1-M, o czystości co najmniej 90%, korzystnie co najmniej 98%.
Sposób według wynalazku polega na tym, że komórki E. coli transformuje się wektorem ekspresyjnym obejmującym gen kodujący Apolipoproteinę A1-Milano, prowadzi się hodowlę stransformowanych E. coli, po czym bakterie poddaje się lizie i otrzymane białko fuzyjne oczyszcza się na immobilizowanej IgG, odszczepia się Apolipoproteinę A1-Milano za pomocą kwasu mrówkowego, po czym monomer obecny w otrzymanej mieszaninie, składającej się głównie z dimeru i niewielkich ilości monomeru, przeprowadza się dimer i następnie oczyszcza się dimer konwencjonalnymi metodami.
Partnerem fuzji jest zmodyfikowana domena wiążąca IgG z białka A, a miejsce rozszczepienia przez kwas mrówkowy jest zaprojektowane między partnerem fuzji i Apo A1-M. Po lizie bakterii białko fuzyjne było oczyszczane na unieruchomionej IgG i rozszczepione za pomocą kwasu mrówkowego. Obecność Apo A1-M i dimeru wykazano metodą western blotting z użyciem elektroforezy w żelu SDS.
W przykładzie I wykazano, ze Apo A1-M wytwarzana w rekombinowanej E. coli ulega obróbce i że tworzą się dimsry. Jednak zastosowanie kwasu mrówkowego daje produkt skrócony o 2 aminokwasy od koóca N. Takie skróeenie nie zmienia aktywności czącteczld Apo Al-M.
Białko fuzyjne rozszczepia się między resztą asparaginy i proliny. Korzystnie monomer przeprowadza się w dimer przez utlenianie glutationu lub tioredoksyny, szczególnie korzystnie za pomocą utlenionego glutationu. Korzystne stężenie utlenionego glutationu jest w zakresie od 0,1 do 10,0 mM.
Dimer Apo A1-M/Apo A1-M służy do wytwarzania kompozycji farmaceutycznych i jest w nich obecny, ewentualnie razem z czynnikiem stabilizującym, np. stabilizującym związkiem lipidowym, takim jak fosfolipid i/lub z nośnikiem.
Kompozycje farmaceutyczne mogą także zawierać czynnik obniżający poziom lipidów i/lub inny lek, już znany w leczemu miażdżycy tętnic i chorób sercowo-naczyniowych, taki jak heparyna i fragmenty heparyny lub czynniki obniżające lipidy.
Środki te można stosować do leczenia miażdżycy tętnic i chorób sercowo-naczyniowych i do zapobiegania i leczenia głównych schorzeń sercowo-krążeniowych, takich jak zawał serca, dusznica bolesna niestabilna, ostre zamknięcie naczyń obwodowych i nawrót zwężenia po plastyce naczyń wieńcowych.
Gdy leczy się przewlekłe choroby tętnic, wówczas leczy się zarówno tętnice wieńcowe, jak i obwodowe, które charakteryzują się obecnością płytki okluzyjnej. Dimery będą stosowane do infuzji jako takie w celu wywołania usuwania tłuszczu z płytek lub ewentualnie razem z tradycyjnym leczeniem miażdżycy tętnic i chorób sercowo-naczyniowych, takim jak za pomocą heparyny, frakcji heparyny i fragmentów heparyny i/lub leków zmniejszających poziom miażCżycorodnynh lipoprotein w obiegu.
Lek zawierający dimer można stosować do zapobiegania lub leczenia trombozy w różnych klinicznych warunkach i można go stosować do stymulacji fibrynolizy.
Dimer może także działać jako pro-lek dla monomeru w leczeniu miażdżycy tętnic i chorób sercowo-naczyniowych.
W dimerze Apo A1-M występują w szerokim zakresie struktury kmfipatyczne i dimer przypuszczalnie ma działanie przeniwwirusowe. Teraz, po raz pierwszy, przez wykorzystanie niniejszego wynalazku, możliwe jest wytworzenie dimeru w zasadniczo czystej postaci, o stopniu czystości powyżej 90% i nawet powyżej 98% i możliwe jest także wykazanie, że produkt ten ma zadziwiająco lepszy wpływ na układy' biologiczne w porównaniu z Apo A1, co przedstawiono w przykładach poniżej.
Załączone są następujące figury:
Fig. 1 przedstawiająca syntetyczny linker (przykład Ia), fig 2 - plazmid (przykład Ia), fig 3 - ilustrująca analizę metodą western blotting po rozszczepieniu białka fuzyjnego (przykład Id), fig. 4 i fig. 5 - zależność wydajności dimeru w % od stężenia białka, fig. 6 - kinetykę tworzenia się Apo A1-M w ciągu 24 godzin.
Wynalazek ilustrują następujące przykłady.
Przykład I. Produkcja Apo A1-M/Apo A1-M metodą rekombinacji
a) Konstruowanie wektora ekspresji pKP644
Replikacyjną formę bakteriofaga M13mp 18 zawieraj ącą cDkA koduj ący Apolipoproteinę A1-M (C.R. Sharpe i in. kucleic Acids Research, vol. 12, nr 9, str. 3917,1984 i M.C. Cheung i in. Biochem. Biophys. Acta960, str. 73-82, 1988) trawiono enzymem restrykcyjnym BamHI i oczyszczano przez elektroforezę w żelu agarozowym o niskiej temperaturze żelowania (LGT) i odcięto fragment o długości 822 par zasad odpowiadający genowi Apo A1-M i zligowano z plazmidem pUC9, uprzednio trawionym BamHI i potraktowano fosfodiesterazą zjelit cielęcych.
Mieszaninę z ligacji zastosowano do transformacji kompetentnych E. coli JM83 i zebrano białe kolonie z płytek agarowych zawierających ampicylinę, X-Gal i IPTG. Przygotowano DkA plazmidowe i oczyszczono cakolumcknh QuiaGene (QuiaGene Inc., 9259 Eton ave., Chatsworth
Cal. 91311 USA) zgodnie z zaleceniami producenta. Uzyskany plazmid, określony jako pUC/Apo A1-M, trawiono EcoRI i kcoI. Próbkę mieszaniny z trawienia analizowano metodą
171 907 elektroforezy w agarozie w celu potwierdzenia prawidłowej orientacji. Inną próbkę wykorzystano do zligowania syntetycznego linkera AApo A1-Eco (fig. 1) z 5'-końcem genu Apo A1-M w celu utworzenia genu ApoA1, składającego się 724 par zasad. Sekwencja AApo A1-M generuje miejsce Asp-Pro przy N końcu kodowanego białka, które ułatwia rozszczepianie przez kwas mrówkowy. Kompetentne E. coli JM83 transformowano mieszaniną z ligacji i wyizolowano uzyskany plazmid (oznaczany jako pUC/AApo A1-M) na kolumnach QuiaGene jak powyżej.
Plazmid pUC/AApo A1-M i wektor ekspresji pEZZ trawiono EcoRI i bamHI, oczyszczano przez elektroforezę w agarozie LGT i fragment pUC/AApo A1-M o długości 799 par zasad zligowano z fragmentem pf pEZZ o długości 2763 par zasad. Mieszaninę z ligacji zastosowano do stransformowania kompetentnych E. coli RV308 i wytworzono plazmidowy DNA jak powyżej.
Procedury doświadczalne opisane są w pracy J. Sambrook, E.F. Fritsch i T. Maniatis (1989) Molecular Clonings; A laboratory manuał, 2 wyd. Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, N.Y.
Otrzymany plazmid oznaczono jako pKP644 (fig. 2).
b) Ekspresja białka fuzyjnego ZZAApo A1-M ml całonocnej hodowli E. coli RV308/pKP644 wzrastającej w 30°C w LB z 50 mg/ml kanamycyny, zaszczepiono na 2 x 500 ml pożywce mimalnej A (Curr. Meth. in Mol. Biol.) z dodatkiem 0,2 g/l kwasów kazaminowych, 1 mM MgSO4, 0,25% glukozy i 50 mg/ml kanamycyny. Hodowlę inkubowano w 37°C przez 24 godziny przy intensywnym wytrząsaniu.
c) Początkowe oczyszczanie Apo A1-M
1,0 l hodowli E. coli (RV308/pKP644) zawierającej opisany plazmid odwirowano i zebrane komórki zawieszono w 30 ml 1 x TS (25 mM Tris HC1, 0,2 M NaCl, 1 mM EDTA) i 6 M GdnHCl zhomogenizowano przez jednokrotne przepuszczenie przez prasę francuską (SLM Instruments Inc.) pod ciśnieniem roboczym 6895 MPa. Wytworzoną zawiesinę inkubowano w temperaturze pokojowej z łagodnym wytrząsaniem w ciągu 1 godziny i odwirowano. Następnie rozcieńczono supematant do końcowego stężenia GdnHCl 1M (tj. sześciokrotnie) i załadowano na kolumnę 15 ml Sepharose FastFlow IgG zrównoważoną 1 x TS. Po załadowaniu kolumnę przemyto 5 objętościami kolumny 1 x TS, następnie 20 mM octanu amonu pH 5,4 aż do osiągnięcia pH eluatu 5,4. Związany materiał eluowano 25 ml 0,2 M HAc i zanotowano absorbancję przy 280 nm (A280)· Wydajność z 11 hodowli wynosiła 1,9 mg w oparciu o wartość A2g0.
d) Rozszczepienie białka fuzyjnego . Eluat podzielono na próbki, liofilizowano i zawieszono w 75%, 50% i 25% kwasie mrówkowym, odpowiednio. Roztwory inkubowano w 37°C przez 28 godzin, po czym liofilizowano w celu usunięcia kwasu mrówkowego. Produkty rozszczepienia badano stosując SDS-PAGE, następnie analizę Westerna. Około 5 mg całego białka załadowano na żel sDS-PAGE z gradientem 8-25% w nieredukujących warunkach. Próbki analizowano podwójnie. Jeden żel barwiono błękitem Coomassie a jeden wykorzystano do analizy Westerna. Wyniki są przedstawione na Fig. 3. Jeden z produktów rozszczepienia migruje razem z oczyszczoną natywną Apo Al i jest przyczyną sygnału w analizie Westerna. Analizę Westerna przeprowadzono stosując poliklonalne przeciwciała sprzęgnięte z peroksydazą chrzanową (The Binding site Ltd; Cambridge, Anglia) i uwidoczniono stosując standardowe procedury.
Figura 3 przedstawia analizę wytworzonych protein pojozszczepieniu białka fuzyjnego. Płytka A: żel SDS-PAGE (8% - 25%) barwiony Coomassie. Ścieżka 1: 25% kwas mrówkowy, ścieżka 2: 50% kwas mrówkowy; ścieżka 3: 75% kwas mrówkowy; ścieżka 4: oczyszczona natywna Apo Al (Sigma) i ścieżka 5: znacznik LMW (Pharmacia). Płytka B: analiza Westerna podwójnego żelu. Ścieżka 1: oczyszczona natywna Apo A1 (Sigma); ścieżka 2: 75% kwas mrówkowy; ścieżka 3: 50% kwas mrówkowy i ścieżka 4: 25% kwas mrówkowy. Obecność pasma przy Apo A1-M o podwójnym ciężarze cząsteczkowym w analizie Westerna wykazała obecność dimerów Apo Al-M.
e) Synteza Apo Al-M/Apo Al-M
Roztwory Apo A1-M dializowano do 25 mM buforu Tris-HCl, pH 9,0. Zredukowaną Apo A1-M rozcieńczono do żądanego stężenia końcowego (3,6 - 53,6 uM) 25 mM buforem Tris-HCl zawierającym zredukowany glutation (GSH) (1-5 mM) i inkubowano wstępnie w 25°C przez 5 min.
Utlenianie zapoczątkowano dodatkiem utlenionego glutationu (GSSG) (0,1 - 10,0 mM) i prowadzono je dalej w szczelnie zamkniętych probówkach w tej samej temperaturze przez 24 godziny. Utlenianie monitorowano za pomocą SDS-PAGE (patrz powyżej). Po wybarwieniu i odbarwieniu żele przeszukiwano densytometrem laserowym LKB Ultroscan XL i obliczono procentowy rozdział pasm poszczególnych białek stosując program LKB 2400 Gelscan XL. Kinetykę' utleniania śledzono za pomocą HPSEC.
W celu zoptymalizowania syntezy dimeru przeprowadzono dodatkowe doświadczenia na utlenianie w obecności GSH/GSSG + Gdn-HCl i GSH/GSSG + tioredoxin (V.P. Pigiet i in., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1986; 83:7643-7647).
Utlenianie Apo A1-M prowadzono w zamkniętych probówkach, w obecności różnych stężeń glutationu zredukowanego/utlenionego (GSH/GSSG). Wydajność reakcji wytwarzania dimeru była zależna zarówno od stężenia białka (fig. 4, Tabela 1), jak i stosunku stężeń GSH/GSSG (fig. 5, Tabela 1). Przez zwiększenie stężenia białka z 8,9 uM do 53,6 uM, ilość Apo A1-M/Apo A1-M wzrosła o 26%-51% (fig. 4, Tabela 1). Zmniejszenie stosunku molowego GSH/GSSG z 1/2 do 1/16 prowadzi do 43% zmniejszenia wydajności; z ' drugiej strony wzrost stężenia GSH/GSSG przy stałym stosunku molowym GSH/GSSG był związany z do 42% wzrostem ilości wytworzonego Apo A1-M/Apo A1-M (fig. 5, Tabela 1). Ani temperatura reakcji, ani obecność czynnika denaturującego białko (Gdn-HCl) nie wpłynęły na stopień tworzenia się Apo A1-M/Apo A1-M. Wytworzono znaczną ilość Apo A1-M/Apo A1-M przez inkubację Apo Al-M z GSH/GSSG w obecności 0,2 mM tioredoxinu (Tabela 1).
Kinetykę reakcji utleniania śledzono za pomocą analitycznej HPSEC. Dimeryczna i monomeryczna Apo Al-M dawała wyraźne piki z czasami retencji 10,8 i 12,7 min., odpowiednio. Synteza A1-M/A1-M /GSH/GSSG 2 mM/4 mM, stężenie A1-M 8,9 mM/ była prawie całkowita po 3 godzinach; przedłużenie inkubacji do 24 godzin nie zwiększyło już tworzenia się A1-M/A1-M (fig. 6).
Tabela 1 Utlenianie Apo A1-M.
Białko uM | GSH mM | GSSG mM | Wydajność % | Uwagi |
3,6 | 1,0 | 0,1 | 34,8 | tioredoxin 0,2 mM |
8,9 | 1,0 | 2,0 | 9,1 | |
8,9 | 1,0 | 2,0 | 9,9 | 4°C |
8,9 | 1,0 | 4,0 | 7,2 | |
8,9 | 1,0 | 4,0 | 7,7 | 4°C |
8,9 | 1,0 | 8,0 | 6,6 | |
8,9 | 1,0 | 16,0 | 5,2 | |
8,9 | 2,0 | 4,0 | 19,6 | |
8,9 | 4,0 | 8,0 | 18,7 | |
8,9 | 5,0 | 10,0 | 23,9 | |
8,9 | 1,0 | 2,0 | 9,8 | Gdn-HCl 4M |
17,9 | 2,0 | 4,0 | 23 ,3 | |
17,9 | 4,0 | 8,0 | 25,5 | |
17,9 | 5,0 | 10,0 | 27,5 | |
35,7 | 2,0 | 4,0 | 25,9 | |
35,7 | 4,0 | 8,0 | 27,7 | |
35,7 | 5,0 | 10,0 | 27,9 | |
53,6 | 2,0 | 4,0 | 25,4 | |
53,6 | 4,0 | 8,0 | 30 | |
53,6 | 8,0 | 10,0 | 36,1 |
Warunki reakcji: Bufor: Tris-HCl 25 mM, pH 9,0 Temperatura: 25°C Czas: 24 godziny
METODY CHARAKTERYZOWANIA PRODUKTU
Inkubacja z fosfolipidami
Odważone ilości dimirystoilofosfatydylochołiny (DMPC) rozpuszczono w etanolu i odparowano rozpuszczalnik pod N 2; pozostały rozpuszczalnik usunięto pod próżnią w ciągu 2 godzin. Dyspersje DMPC w 20 nM buforu fosforanowego, pH 7,4, zmieszano Apo A1-M/Apo A1-M (0,1 mg/ml - stężenie końcowe) w stosunku molowym DMPC/Apo A1-M/Apo A1-M 100:1.
Spektroskopia
Roztwory Apo A1-M/Apo A1-M dializowano do 20 mM buforu fosforanowego, pH 7,4, i rozcieńczono tym samym buforem do żądanego stężenia białka.
Normalne widma UV i drugie pochodne widm roztworów Apo A1-M/Apo A1-M i Apo A1-M/Apo A1-M + DMPC otrzymano za pomocą spektrometrów Jasco Uvidec-610 i Perkin Elmer Lambda-2 w 25°C, stosując 1 cm pryzmat kwarcowy. Topograficzne umiejscowienie reszt tyrozyny badano zgodnie z równaniem Ragone i in. (R. Ragone, G. Colonna, C. Balestrieri, L. Servillo, G. Irace, Determination of tyrosine exposure in proteins by second-dervative spectroscopy. Biochemistry, 1984, 23: 1871-1875):
alfa = (r„ - ra)/(ru - ra) w którym alfa oznacza stopień ekspozycji tyrozyny na rozpuszczalnik, γ„ i ru oznaczają stosunki pików pochodnej (a/b) dla natywnego i nierozcieńczonego (w 6 M Gdn-HCl) Apo A1-M/Apo A1-M, odpowiednio, a ra oznacza stosunek pików drugiej pochodnej roztworu zawierającego wolną tyrozynę i tryptofan zmieszane w takim samym stosunku molowym jak w Apo A1-M/Apo A1-M.
Wewnętrzne widma fluorescencyjne roztworów Apo A1-M/Apo A1-M i Apo A1-M/Apo A1-M + DMPC otrzymano na spektrofluorometrze Jasco FP-550 w 25°C.
Widma dichroizmu kołowego (CD) roztworów Apo A1-M/Apo A1-M i Apo A1-M/ApoA1-M +DMPC otrzymano na spektropolarymetrze Jasco J500A w 25°C. Średnie wartości eliptyczności reszty [THEYE] wyrażono w stopniach x cm x dmol·1 i obliczono z równania:
[THEYĄ] = [TEEYA] · 1 06 10-I-c w którym [THEYE oznacza zaobserwowaną eliptyczność w stopniach, 106 jest średnim resztkowym ciężarem cząsteczkowym białka, I oznacza długość ścieżki w cm, a c oznacza stężenie białka w g/ml. Procent struktury alfa-helisy obliczono z równania:
% alfa - helisy ΕΉΕΥΑΒο^-4000
33000-4000 (N. Greenfield, G.D. Fasman. Computed circular dichroism spectra for the evaluation of protein conformation. Biochemistry 1969; 8:4108-4114).
Elekroforeza
Analityczne izoelektryczne ogniskowanie i SDS-PEGE prowadzono jak uprzednio opisano (G. Franceschini, M. Sirtori, G. Gianfranceschi, C.R. Sirtori. Relation between the HDL apoproteins and A1 isoproteins in subject with the A1-M abnormality. Metabolism 1981; 30:502-509).
Izoelektryczne ogniskowanie prowadzono w 10%o żelach akrylamidowych, zawierających 6 M mocznika i 4% amfoliny (pH 4-6). Po całonocnym ogniskowaniu żele utrwalano i barwiono błękitem Coomassie Brilliant Blue R-250 w mieszaninie kwasu octowego i alkoholu izopropylo171 907 wego. Punkt izoelektryczny (pl) pasm nieznanego białka obliczono przez wykreślenie pl znanych białek (wzorce z Bio-Rad i apo-HDL) w funkcji odpowiedniej odległości migracji.
Do SDS-PAGE stosowano 14% żele akryloamidowe zawierające 0,1% SDS. Żele traktoo nO^Anc ^aotamltnczk łCołbla ekli/bymzio TT wwlnkrrn 1ί1σ MM^W
W Clii U V£J±oCtliU5 Cl V1^’ZjCU. ν£4θΐυνω\νη J iii VUlluii j V11 ϋιαινιί vujLłvŁviiv aj Wjjnvuv» x w x»x »» wzorcowych białek (KABI-Pharmacia) w funkcji odległości migracji.
Wysokosprawna chromatografia ekskluzyjna
Rozdzielanie metodą analitycznej HPSEC prowadzono stosując ciekły chromatograf Jasco wyposażony w 10 μm kolumnę TSK-G3000 SW (7,5 x 300 mm). Kolumnę HPSEC zrównoważono i eluowano 0,1M buforem fosforanowym, 0,1M NaCl, pH 7,2, zawierającym 8 M mocznik. Białka eluowano przy szybkości przepływu 0,5 ml/min. i robiono odczyty przy 220 nm. Powierzchnie pików były scałkowane za pomocą urządzenia całkującego HP-3390.
BIOLOGICZNA OCENA Apo A1-M/Apo A1-M
Przykład II. Zachowanie kinetyczne dimeru Apo A1-M w porównaniu z monomerem Apo A1 u normalnych biorców.
Dimery wykazują przedłużoną trwałość obiegu, co zostało przedstawione poniżej w badaniach kinetycznych na ludziach.
Zdrowi ochotnicy otrzymali dożylnie Apo A1-M lub Apo A1-M/Apo A1-M znakowane 125J. Jak przedstawiono w Tabeli 2, 1 (h) osocza oraz frakcyjną szybkość kataboliczną (FCR) obliczano według dwóch różnych modeli. Obydwa potwierdzają wyraźnie zmniejszony katabolizm dimeru w porównaniu z monomerem.
Bardzo powolny katabolizm Apo A1-M/Apo A1-M wskazuje, że te cząsteczki mogą szkodzić konwersji lipoprotein i prawdopodobnie działają jako skuteczny prekursor Apo A1-M. W ten sposób, przez iniekcję Apo A1-M/Apo A1-M, przypuszczalnie dimer może pozostać w osoczu przez przedłużony okres, oddziaływując bezpośrednio na metabolizm lipoprotein i układ fibrynolityczny.
Tabela 2
Zachowanie kinetyczne Apo A1-M/Apo A1-M w porównaniu z monomerem Apo A1 u normalnych biorców (n = 2).
Apo A1-M | Apo A1-M/Apo A1-M | |
Sposób jednowykładniczy t1/2 | 16,07 | 52,04 |
(h) MRT | 23,19 | 75,09 |
(h) Sposób biwykładniczy tl/2 | 22,61 | 70,29 |
(h) MRT | 28,97 | 89,16 |
(h) FCR | 2,3% na godzinę | 1,1% na godzinę |
Wpływ Apo A1-M/Apo A1-M na układ fibrynolityczny
Wprowadzenie
Układ fibrynolityczny stanowi główną obronę przed osadzaniem fibryny na ściankach naczyń i jako taki odgrywa ważną rolę w mechanizmach, które zapobiegają zakrzepicy.
Enzymem odpowiedzialnym za lizę fibrynyjest plazmina. Plazmina tworzy się z nieaktywnego prekursora-plazminogenu przez działanie specyficznych aktywatorów (tkankowy aktywator plazminogenu, t-PA i urokinaza, uPA). Zarówno proces aktywacji, jak i działanie plazminy
171 907 regulują specyficzne inhibitory - inhibitor aktywatora plazminogenu 1 (PAI) i alfa-2-antyplazmina, odpowiednio. Schemat układu fibrynolitycznego jest przedstawiony poniżej.
PLAZMINOGEN
AKTYWATORY ,--PAI
PLAZMINOGEN-»PLAŻ MINA i--a2 ANTYPLAZMINA
FIBRYNA-> FDP
FDP = Produkt degradacji fibryny
Celem badania w przykładach II-IV było stwierdzeniejak dimer Apo A1-M działa na ludzki układ fibrynolityczny. Autoaktywację plazminogenu i jego aktywację za pomocą uPA i t-PA badano w obecności i nieobecności Apo A1-M/Apo A1-M. Ludzką Apo A1 wyizolowaną z osocza stosowano jako materiał kontrolny (produkt Sigmy nr A 9284).
Aktywację układu fibrynolitycznego mierzono stosując substraty chromogeniczne. To substraty zawierają chromoforowe grupy p-nitroaniliny, które mogą być odszczepione z cząsteczki substratu przez działanie plazminy. Wolna p-NA ma intensywny żółty kolor, który można łatwo śledzić przy długości fali 405 nm. Ilość uwolnionej p-NA jest wprost proporcjonalna do ilości wytworzonej aktywności enzymatycznej.
Wszystkie pomiary przeprowadzono stosując czytnik mikropłytkowy THERMOmax kontrolowany przez program SOFTmax™ wersja 2,01 firmy Molecular Devices, Menlo Par, CA, USA.
Materiały stosowane w tych badaniach były wytworzone metodą rekombinacji DNA. Oczyszczanie obejmowało wymianę jonową, interakcję hydrofobową i chromatografię żelową i następnie ultrafiltrację i odparowywanie ze stanu zamrożenia - wszystkie konwencjonalne metody biochemiczne.
Wszystkie badane materiały zawierały 90% formy dimerycznej, jak wykazała HPLC odwróconymi fazami. Stężenie oznaczano w próbie Kabi Pharmacia apolipoproteina A1 RIA 100. Badano trzy preparaty, A, B i C.
Przykład ILI. Autoaktywacja plazminogenu w obecności Apo A1-M/Apo A1-M i Apo A1.
Glu-Plazminogen (94 gg/ml - stężenie końcowe) inkubowano przez 3 godziny w 37°C w 0,1 mol/l buforze Tris, pH 7,6. Tworzenie się plazminy śledzono obserwując chromogeniczny substrat S-2251 (H-D-Val-L-Leu-Lys-pNA), z firmy Chromogenix AB, Molndal, Szwecja. Stosowano go w końcowym stężeniu 0,6 nmol/l. Plazminogeny otrzymane w tych próbach pochodziły z firmy Chromogenix AB lub IMCO Inc. Sztokholm, Szwecja.
W próbach tych badano partie Apo A1-M/Apo A1-M (stężenie końcowe 3,9 - 75 gg/ml) i porównywano ilość plazminy wytworzonej w ich obecności z ilością plazminy wytworzonej w obecności Apo A1 (stężenie końcowe 125 gg/ml) oraz z ilością plazminy wytworzonej w nieobecności tych dodatków (kontrolna) (Tabela 3).
Nieoczekiwanie okazało się, że Apo A1-M/Apo A1-M może zwiększyć aktywację plazminogenu w nieobecności aktywatorów plazminogenu. Apo A1 pochodząca z osocza nie działała na cząsteczkę plazminogenu.
171 907
Tabela 3
Samorzutne powstawanie aktywności plazminy w plazminogenie.
Wpływ Apo A1-M/Apo A1-M i Apo A1. Aktywność plazminy wyrażona jako OD przy 405 nm.
Próbka | Stężenie końcowe Apo gg/ml | OD 405 nm |
Kontrolna | 0 | 0,052 |
+ ApoA1 | 125 | 0,049 |
+ ApoA1-M/ApoA1-M A | 75 | 0,288 |
B | 31.3 | 0,325 |
B | 15.6 | 0,153 |
B | 7.8 | 0,104 |
B | 3.9 | 0,067 |
Obserwowaną aktywność można przypisać Apo A1-M/Apo A1-M. Jednak na podstawie tych danych nie można wykluczyć, że Apo A1-M/Apo A1-M był zanieczyszczony jakimś enzymem (enzymami) proteolitycznym, który mógł aktywować plazminogen. Przeprowadzono doświadczenia w celu wykluczenia takiej możliwości.
Wszystkie preparaty Apo A1-M/Apo A1-M stosowane w próbach fibrynolitycznych były badane z substratami chromogenicznymi: S-2251 (H-D-Val-L-Leu-L-Lys-pNA), wrażliwym na aktywność podobną do plazminy i S-2288 (H-D-Ile-Pro-Arg-pNA), wrażliwym na Arg-specyficzne proteazy. Substraty pochodziły z firmy Chromagenix AB. Stężenie końcowe Apo A1M/Apo A1-M w próbach było takie samo jak stężenie stosowane w próbach fibrynolitycznych, mogło zatem być różne w różnych partiach. Próba: 25 gl Apo A1-M/Apo A1-M, stężenie końcowe 60 - 70 gg/ml
150 gl 0,1 mol/1 buforu Tris pH 7,8 gl S-2251, 0,6 mmol/l lub S-2288 1,0 mmol/l.
Próbki zawierające tylko bufor i substrat stosowano jako kontrolne dla niespecyficznej hydrolizy substratu. Wszystkie próbki badano podwójnie. Płytkę do mikromianowania inkubowano w 37°C i co godzinę odczytywano absorbancję.
Tabela 4
Amidolityczna aktywność dwóch partii Apo A1-M/Apo A1-M (A i B) po 4 godzinach inkubacji w 37°C (OD przy 405 nm).
Apo A1-M/Apo A1-M | Substrat | |
S-2251 A | 0,023 | 0,022 |
B | 0,022 | |
S-2288 A | 0,037 | 0,034 |
B | 0,037 |
W innej serii doświadczeń Apo A1-M/Apo A1-M traktowano nieodwracalnym inhibitorem proteazy seryny - fluorofosforanem diizopropylu, DFP (produkt Sigma nr D 0789). Stężenie końcowe Apo A1-M/Apo A1-M w 0,2 mol/l buforu KHCO3, pH 7,6, wynosiło około 75 gg/ml. Do tego roztworu dodano DFP do końcowego stężenia 123 mmole/l. Po 4 godzinach próbkę do inkubacji dializowano przez noc do dwóch zmian buforu węglanowego.
Oznaczenie aktywności, w warunkach takich samych, jak opisane wcześniej, prowadzono na Apo A1-M/Apo A1-M traktowanym DFP i Apo A1-M/Apo A1-M nietraktowanym. Po 3 godzinach inkubacji z plazminogenem i S-2251, OD przy 405 nm wynosiło 0,209 dla próbek zawierających Apo A1-M/Apo A1-M traktowanych DFP, 0,234 dla próbek zawierających nietraktowany Apo A1-M/Apo A1-M i 0,030 dla próbek tylko z plazminogenem.
171 907
Można zatem wyciągnąć wniosek, że obserwowane aktywowanie plazminogenu jest bezpośrednio związane z obecnością Apo A1-M/Apo A1-M, a nie z potencjalnymi zanieczyszczeniami proteolitycznymi.
P — ad i J W Ί ł^TWU^p Aa1 M Λ1 K/n 4kVyvurc/nA sby/natorami riAjKldU IV. W ™ ζ-νΐ'ΐνχζ Λρυ ζΑχ~ιτχ ii<a tlKlj ττ w. j «» -νν! a*!** plazminogenu t-Pa i uPA.
Zarówno urokinaza (uPA) jak i tkankowy aktywator plazminogenu (t-PA) przekształcają plazminogen w plazminę przez proteolityczne rozszczepienie jednego wiązania peptydowego Arg 560-Val 561 w cząsteczce plazminogenu. Podczas gdy dwulańcuchowa urokinaza może aktywować plazminogen bezpośrednio, t-PA wymaga obecności fibryny dla optymalnej aktywacji plazminogenu. Obecność katalitycznych ilości fibryny, która razem z t-PA i plazminogenem, tworzy trzeciorzędowy kompleks, zwiększa wydajność enzymatyczną t-PA około 600-krotnie.
Aktywację plazminogenu przez t-PA badano stosując handlowo dostępny zestaw Spectrolyse (fibryna) t-PA/PAI firmy Biopool, Umea, Szwecja.
W tej próbie plazminogen inkubuje się z t-PA w obecności substratu chromogenicznego D-But-CHT-Lys-pNA i desAA fibrynogenu (monomeru fibryny), który działa jako stymulator aktywacji. Wytworzona plazmina rozszczepia substrat uwalniając pNA.
Do tego układu dodano Apo A1-M/Apo A1-M i porównano z preparatem Apo A1 firmy Sigma. Badano działanie obu apolipoprotein w układzie zarówno w obecności jak i nieobecności fibryny. Przykład układu do próby:
gl buforu Spectrolyse gl preparatu Apo lub buforu gl t-PA (= 1,7 IU/ml - stężenie końcowe)
150 gl odczynnika Spectrolyse PAR (= mieszanie plazminogenu i substratu) gl Desa fib (= monomer fibryny) lub 10 gl buforu. Próbki inkubowano na płytkach do mikromianowania w 37°c przez 3 godziny.
Tabela 5
Wpływ Apo A1-M/Apo A1-M i Apo A1 na aktywację plazminogenu przez t-PA w obecności i nieobecności fibryny. Wyniki są wyrażone jako OD przy 405 nm po 3 godzinach inkubacji w 37°C.
Próbka | Apo, stężenie końcowe gg/ml | OD 405 nm +fibryna | OD 405 nm -fibryna |
t-PA kontrolna | 0 | 0,656 | 0,048 |
+Apo Al | 54 | 1,050 | 0,066 |
+Apo A1-M/Apo A1-M | |||
A | 65 | 1.665 | 0,446 |
B | 54 | 2,366 | 0,225 |
Z Apo A1-M/Apo A1-M obserwowano znaczną stymulację aktywności plazminogenu, zarówno w obecności jak i nieobecności fibryny. Apo A1 stymulowała aktywację w mniejszym stopniu w obecności fibryny. W nieobecności fibryny stymulacja przez Apo A1-M/Apo A1-M była bardzo wyraźna w porównaniu z bardzo małą stymulacją przez ApoA1.
Apo A1-M/Apo A1-M wywierał także znaczne wzmagające działanie, gdy plazminogen był aktywowany przez uPA. Stosowana w tych próbach urokinaza była preparatem o wysokim ciężarze cząsteczkowym firmy Calbiochem.
Urokinazę (stężenie końcowe 2,5 IU/ml) mieszano z plazminogenem (stężenie końcowe gg/ml) i substratem chromogenicznym S-2251 (stężenie końcowe 0,6 mmola/l). Do tej próbki dodano Apo A1-M/Apo A1-M do końcowego stężenia 75 lub 62 gg/ml. Reakcję prowadzono w
0,1 mol/l buforze Tris, pH 7,6. Podobnie do t-PA, obserwowano silną stymulację tworzenia plazminy przez urokinazę, gdy do próby dodano Apo A1-M/Apo A1-M (Tabela 6).
Tabela 6
Wpływ Apo A1-M/Apo A1-M na aktywację plkzmicogecu przez uPA. Wyniki są wyrażone jako OD przy 405 nm, po 4 godzinach inkubacji w 37°C.
Próbka | Apo A1-M/Apo A1-M stężenie końcowe gg/ml | OD 405 nm |
uPA kontrolna | 0 | 0,325 |
+ Apo A1-M/Apo A1-M | ||
A | 75 | 1,263 |
B | 62 | 1,868 |
Takie zwiększone ' oddziaływanie na fibrynolizę występuje także, gdy Apo A1-M/Apo A1-M przygotowano w postaci kompozycji farmaceutycznej razem z nośnikiem. Jako potencjalny nośnik stosowano liposomy składające się z fosfatydylocholiny, PC (12 mg/ml). Stężenie Apo A1-±MApo A1-M (partia C) w liposomach wynosiło 3,6 mg/ml.
Aktywację plkzmicogecu (stężenie końcowe 94 gg/ml) przez uPA (stężenie końcowe 2,5 IU/ml) badano w obecności liposomów wypełnionych ApoA1-M/ApoA1-M i porównywano z aktywacją w obecności liposomów wolnych od białek. Próbki ickubowkco przez 4 godziny w 37°C z S-2251 i śledzono w sposób ciągły tworzenie się plazminy.
Tabela 7
Aktywacja plazmicogecu przez uPA. Wpływ Apo A1-M/Apo A1-M, seria C, w liposomach. Wyniki są wyrażone jako OD przy 405 nm.
Próbka | OD 405 nm |
uPA + plkzmicogec | 0,221 |
+ liposomy wolne od białka | 0,499 |
250 gg/ml PC | |
+ Apo A1-M/Apo A1-M 75 gg/ml | |
w liposomach, 250 gg/ml PC | 1,084 |
Obecność samych liposomów stymulowała aktywację plazminogenu około dwukrotnie. Dodatek do liposomów Apo A1-M/Apo A1-M zwiększał ten efekt pięciokrotnie w porównaniu z próbką zawierającą tylko urokinazę jako aktywator.
Przykład V. Wpływ Apo A1-M/Apo A1-M na konwersję jedcołαńcuchowej urokinazy w dwułańcuchową urokinazą
Jedno^^^owa urokinaza (scuPA) jest prekursorem urokinazy Cwułańcuchowej (uPA). W przeciwieństwie do uPA scuPA ma tylko bardzo niską aktywność amidolityczną wobec małych syntetycznych substratów. Aktywność amidolityczna stanowi najwyżej 0,4% aktywności uPA. Jednak scuPA, mimo iż jest proenzymem, ma zdolność aktywowania plazminogenu do plazminy. Proponowano sekwencję trzech reakcji w mieszaninach plazminogenu i scuPA, które zachodzą w aktywowaniu plazminogenu do plazminy:
1) scuPA + plazminogen — scuPA + plazmina
2) plazmina + scuPA — plazmina + uPA
3) uPA + plazminogen — uPA + plazmina
Badaliśmy sekwencję reakcji prowadzących do konwersji scuPA do uPA w obecności plazminogenu. Aktywność urokinazy wykryto za pomocą chromogenicznego substratu specyficznego wobec urokinazy S-2444 (piro-Glu-Gly-Arg-pkA, Chromogenix AB). Do układu dodawano partie Apo A1-M/Apo A1-M i Apo A1 i porównywano ilość wytworzonego aktywności uPA z aktywnością otrzymaną w próbkach bez dodatku apolipoproteiny. Stosowana w tych próbach jeCnołańcunhowa urokinaza była produktem firmy Grilcecthal GmbH, Aachen, Niemcy (partia nr 0088808).
171 907 gl Epo lub bufor gl 0,05 mola/l Tris, pH 7,6, zawierającego 0,1 mola/l NaCl i 0,02% Tween 80 25 gl scuPE, 454 pmoli/l - stężenie końcowe 50 gl S-2444, 1 mmol/l - stężenie końcowe 25 g plaaminogenu, 52,1 nmoh/1 - stężeme koócowe
Próbki inkubowano w 37°C przez 90 minut. Przez ostatnie 30 minut inkubacji notowano w sposób ciągły wzrost gęstości optycznej mierząc ilości wytworzonej uPA.
Tabela 8
Wpływ Epo E1-M/Epo E1-M na konwersję scuPA do uPA. Wyniki są wyrażone jako mOD/min. przy 405 nm.
Próbka | Epo, stężenie końcowe gg/ml | mOD/min |
scuPA | 0 | 0,073 |
+ plazminogen | 0 | 13,2 |
+ Epo E1 | 62 | 11,8 |
+ Apo E1-M/Apo A1-M | ||
B | 62 | 20,0 |
A | 75 | 24,0 |
Apo A1-M/Apo E1-M stymulował konwersję scuPA do uPA w obecności plazminogenu, natomiast Apo A1 wydzielona z osocza nie miała znaczącego działania w tych układzie.
Zaobserwowane działanie Apo E1-M/Apo A1-M na układ fibrynolityczny w tym badaniu było większe niż działanie Apo A1 wyizolowanej z osocza. Apo E1-M/Apo E1-M ma dużą zdolność do stymulowania aktywności fibrynolitycznej, przewyższającą taką właściwość Apo E1.
Podobnie stwierdzono, też zwiększony wpływ Apo A1-M/Apo A1-M w stosunku do Apo A1 in vivo.
FIG. 2
171 907
8,9
53.6
Stężenie białka (μΜ)
FIG. 4
FIG. 5
171 907
FIG. 6
Linker- A Apo Ai-Eco
Długość linkero Δ ApoAi-Eco (kołowy): 28pz;
Prosto restrykcja | od: | 1 do: 28; |
X ΑναΙΙ | X | Banli |
X | Bspl286 | |
X EcoRI | X | Dsal |
X | EcoTUl | |
X | NcoS | |
X | Nspll | |
X | Styl |
GAAHCGGAC CCACCGCAGA GCCCATGG AsnSerAsp ProProGInSerGreTrp
20 Pro 28
DApoAi-Eco-5 : 22 bp; + 1 przy 1;
5’-AATTCGGACC CACCGCAGAG CC 10 20 22
DApoAI-Eco-3 : 22 pz; + 1 prxy 1;
5’-CATGGGCTCT GCGGTGGGTC CG 10 20 22
FIG. 1
Departament Wydawnictw UP RP. Nakład 90 egz. Cena 4,00 zł
Claims (5)
- Zastrzeżenia patentowe1. Sposób wytwarzania dimeru Apolipoproteiny Al-Milano o czystości co najmniej 90%, znamienny tym, że komórki E. coli transformuje się wektorem ekspresyjnym obejmującym gen kodujący Apolipoproteinę Al-Milano, prowadzi się hodowlę stransformowanych E. coli, po czym bakterie poddaje się lizie i otrzymane białko fuzyjne oczyszcza się na immobilizowanej IgG, odszczepia się Apolipoproteinę Al-Milano za pomocą kwasu mrówkowego, po czym monomer obecny w otrzymanej mieszaninie, składającej się głównie z dimeru i niewielkich ilości monomeru, przeprowadza się w dimer i następnie oczyszcza się dimer konwencjonalnymi metodami.
- 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że białko fuzyjne rozszczepia się między resztą asparaginy i proliny.
- 3. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że monomer przeprowadza się w dimer przez utlenianie za pomocą glutationu lub tioredoksyny.
- 4. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że monomer przeprowadza się w dimer przez utlenianie za pomocą utlenionego glutationu.
- 5. Sposób według zastrz. 4, znamienny tym, że stosuje się utleniony glutation w stężeniu od 0,1 do 10,0 mM.
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SE9103701A SE9103701D0 (sv) | 1991-12-13 | 1991-12-13 | Apolipoprotein |
PCT/SE1992/000858 WO1993012143A1 (en) | 1991-12-13 | 1992-12-11 | Dimer of molecular variant of apolipoprotein and processes for the production thereof |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
PL300262A1 PL300262A1 (en) | 1994-03-07 |
PL171907B1 true PL171907B1 (pl) | 1997-06-30 |
Family
ID=20384608
Family Applications (3)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
PL92314894A PL172544B1 (pl) | 1991-12-13 | 1992-12-11 | Sposób wytwarzania dimeru apolipoproteiny Al-Milano PL PL PL |
PL92300262A PL171907B1 (pl) | 1991-12-13 | 1992-12-11 | Sposób wytwarzania dimeru Apolipoproteiny AL-Milano PL PL PL |
PL92314896A PL172168B1 (pl) | 1991-12-13 | 1992-12-11 | Sposób wytwarzania dimeru Apolipoproteiny Al-Milano PL PL PL |
Family Applications Before (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
PL92314894A PL172544B1 (pl) | 1991-12-13 | 1992-12-11 | Sposób wytwarzania dimeru apolipoproteiny Al-Milano PL PL PL |
Family Applications After (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
PL92314896A PL172168B1 (pl) | 1991-12-13 | 1992-12-11 | Sposób wytwarzania dimeru Apolipoproteiny Al-Milano PL PL PL |
Country Status (28)
Country | Link |
---|---|
US (2) | US5876968A (pl) |
EP (1) | EP0571602B1 (pl) |
JP (1) | JPH07502892A (pl) |
AT (1) | ATE242269T1 (pl) |
AU (2) | AU3175593A (pl) |
BG (1) | BG61451B1 (pl) |
BR (1) | BR9205640A (pl) |
CA (1) | CA2103996C (pl) |
CZ (1) | CZ289879B6 (pl) |
DE (1) | DE69233092T2 (pl) |
DK (1) | DK0571602T3 (pl) |
EE (1) | EE03058B1 (pl) |
ES (1) | ES2199939T3 (pl) |
FI (1) | FI115771B (pl) |
HU (2) | HU217203B (pl) |
IL (1) | IL103956A (pl) |
MX (1) | MX9207224A (pl) |
NO (1) | NO315076B1 (pl) |
NZ (2) | NZ246223A (pl) |
PL (3) | PL172544B1 (pl) |
PT (1) | PT571602E (pl) |
RO (1) | RO115636B1 (pl) |
RU (1) | RU2134696C1 (pl) |
SE (1) | SE9103701D0 (pl) |
SG (1) | SG47453A1 (pl) |
SK (1) | SK86893A3 (pl) |
WO (1) | WO1993012143A1 (pl) |
ZA (1) | ZA928989B (pl) |
Families Citing this family (86)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
SE9103701D0 (sv) * | 1991-12-13 | 1991-12-13 | Kabi Pharmacia Ab | Apolipoprotein |
SE9203753D0 (sv) * | 1992-12-11 | 1992-12-11 | Kabi Pharmacia Ab | Expression system for producing apolipoprotein ai-m |
SE9500778D0 (sv) * | 1995-03-03 | 1995-03-03 | Pharmacia Ab | Process for producing a protein |
FR2734568B1 (fr) * | 1995-05-22 | 1997-06-20 | Rhone Poulenc Rorer Sa | Nouveaux variants de l'apolipoproteine |
US6258596B1 (en) | 1995-05-22 | 2001-07-10 | Aventis Pharmaceuticals Products Inc. | Variants of apolipoprotein A-I |
SE9603068D0 (sv) | 1996-08-23 | 1996-08-23 | Pharmacia & Upjohn Ab | Process for purifying a protein |
SE9603303D0 (sv) | 1996-09-11 | 1996-09-11 | Pharmacia & Upjohn Ab | Process for purifying a protein |
SE9603304D0 (sv) | 1996-09-11 | 1996-09-11 | Pharmacia & Upjohn Ab | Process for purifying a compound |
US6306433B1 (en) | 1997-08-12 | 2001-10-23 | Pharmacia Ab | Method of preparing pharmaceutical compositions |
US20020064820A1 (en) * | 2000-03-13 | 2002-05-30 | Jean-Michel Dayer | Apo-A-I regulation of T-cell signaling |
CA2407083A1 (en) | 2000-04-21 | 2001-11-01 | Amgen Inc. | Apo-ai/aii peptide derivatives |
BRPI0003386B8 (pt) * | 2000-08-08 | 2021-05-25 | Cristalia Produtos Quim Farmaceuticos Ltda | pró-droga homo ou heterodiméricas úteis no tratamento de doenças ou disfunções mediadas por fosfodiesterases; composições farmacêuticas contendo a pró-droga ou seus sais farmacêuticos aceitáveis; processo de obtenção destas pró-drogas |
US6664230B1 (en) * | 2000-08-24 | 2003-12-16 | The Regents Of The University Of California | Orally administered peptides to ameliorate atherosclerosis |
US8568766B2 (en) | 2000-08-24 | 2013-10-29 | Gattadahalli M. Anantharamaiah | Peptides and peptide mimetics to treat pathologies associated with eye disease |
EP2343317A1 (en) * | 2000-11-10 | 2011-07-13 | F. Hoffmann-La Roche Ltd. | Apolipoprotein analogues |
US7217785B2 (en) | 2001-05-09 | 2007-05-15 | The Regents Of The University Of California | Cysteine-containing peptides having antioxidant properties |
JP2005504085A (ja) * | 2001-09-28 | 2005-02-10 | エスペリオン セラピューティクス,インコーポレイテッド | 薬剤の局所投与による再狭窄の予防および治療 |
US20030229062A1 (en) * | 2001-12-07 | 2003-12-11 | The Regents Of The University Of California | Treatments for age-related macular degeneration (AMD) |
US7470659B2 (en) | 2001-12-07 | 2008-12-30 | The Regents Of The University Of California | Methods to increase reverse cholesterol transport in the retinal pigment epithelium (RPE) and Bruch's membrane (BM) |
WO2003049685A2 (en) * | 2001-12-07 | 2003-06-19 | The Regents Of The University Of California | Treatment for age-related macular degeneration |
US7223726B2 (en) * | 2002-01-14 | 2007-05-29 | The Regents Of The University Of California | Apolipoprotein A-I mutant proteins having cysteine substitutions and polynucleotides encoding same |
US20100204103A1 (en) * | 2002-05-08 | 2010-08-12 | The Regents Of The University Of California | Helical synthetic peptides that stimulate cellular cholesterol efflux |
BR0310099A (pt) | 2002-05-17 | 2007-03-20 | Esperion Therapeutics Inc | método para tratar dislipidemia ou uma doença associada com a dislipidemia |
CN1668645A (zh) * | 2002-05-17 | 2005-09-14 | 埃斯佩里安医疗公司 | 治疗缺血再灌注的方法和组合物 |
DE10324447A1 (de) | 2003-05-28 | 2004-12-30 | Scil Proteins Gmbh | Generierung künstlicher Bindungsproteine auf der Grundlage von Ubiquitin |
PE20050438A1 (es) * | 2003-10-20 | 2005-06-14 | Esperion Therapeutics Inc | Formulas farmaceuticas, metodos y regimenes de dosificacion para el tratamiento y la prevencion de sindromes coronarios agudos |
WO2005051413A2 (en) * | 2003-11-26 | 2005-06-09 | Novartis Ag | Disease associated genes |
AU2004299486B2 (en) * | 2003-12-15 | 2011-05-19 | The Regents Of The University Of California | Helical synthetic peptides that stimulate cellular cholesterol efflux |
JP2007531537A (ja) * | 2004-04-06 | 2007-11-08 | セダーズ−シナイ メディカル センター | アポリポタンパク質a−iおよびアポリポタンパク質a−imilanoをコードする組換えアデノ随伴ウイルスベクターによる血管疾患の予防および処置 |
KR100560102B1 (ko) * | 2004-06-25 | 2006-03-13 | 한국생명공학연구원 | 프로아포리포단백질 a-ⅰ 변이체와, 이를 포함하는고지혈증 또는 동맥경화증 예방 및 치료제 |
WO2012047930A2 (en) * | 2010-10-04 | 2012-04-12 | The Regents Of The University Of California | Compositions and methods for treatment of gynecologic cancers |
US8206750B2 (en) | 2005-03-24 | 2012-06-26 | Cerenis Therapeutics Holding S.A. | Charged lipoprotein complexes and their uses |
EP2269623A1 (en) | 2005-04-29 | 2011-01-05 | The Regents of The University of California | Peptides and peptide mimetics to treat pathologies characterized by an inflammatory response |
WO2007000924A1 (ja) * | 2005-06-28 | 2007-01-04 | Osaka University | プログラニュリン活性を抑制または促進する物質を含む医薬組成物、およびプログラニュリン活性を抑制または促進する物質のスクリーニング方法 |
KR100719389B1 (ko) | 2005-10-18 | 2007-05-17 | 주식회사 녹십자 | 인간혈장으로부터 아포리포단백질 a-i을 분리 정제하는방법 |
US20070254832A1 (en) * | 2006-02-17 | 2007-11-01 | Pressler Milton L | Methods for the treatment of macular degeneration and related eye conditions |
CA2659655A1 (en) | 2006-08-08 | 2008-02-21 | Alan M. Fogelman | Salicylanilides enhance oral delivery of therapeutic peptides |
CA2695951A1 (en) * | 2006-08-10 | 2008-02-14 | Plantechno S.R.L. | In-plant production of dimeric and/or oligomeric (comprising three or more units) forms of human apo a-1 protein muteins |
US8541236B2 (en) * | 2006-12-08 | 2013-09-24 | University Of Washington | Mutant apolipoprotein A-1 polypeptide with increased resistance to oxidation and reactive carbonyls |
DK2195331T3 (da) | 2007-08-28 | 2014-02-03 | Uab Research Foundation | Syntetiske polypeptider, der efterligner apolipoprotein e, og anvendelsesmetoder |
US8557767B2 (en) | 2007-08-28 | 2013-10-15 | Uab Research Foundation | Synthetic apolipoprotein E mimicking polypeptides and methods of use |
US20100212030A1 (en) * | 2007-10-19 | 2010-08-19 | Pronota N.V. | Use of n-terminal and c-terminal proteomics technology to enhance protein therapeutics and diagnostics |
EP2573113A3 (en) | 2007-10-23 | 2013-07-24 | The Cleveland Clinic Foundation | Oxidant resistant apolipoprotein a-1 and mimetic peptides |
US8241861B1 (en) | 2008-07-08 | 2012-08-14 | Insilicos, Llc | Methods and compositions for diagnosis or prognosis of cardiovascular disease |
KR102344392B1 (ko) | 2008-11-10 | 2021-12-28 | 알닐람 파마슈티칼스 인코포레이티드 | 치료제 운반용 신규 지질 및 조성물 |
AU2010208035B2 (en) | 2009-01-29 | 2016-06-23 | Arbutus Biopharma Corporation | Improved lipid formulation for the delivery of nucleic acids |
NZ594995A (en) | 2009-03-12 | 2013-06-28 | Alnylam Pharmaceuticals Inc | LIPID FORMULATED COMPOSITIONS AND METHODS FOR INHIBITING EXPRESSION OF HUMAN KINESIN FAMILY MEMBER 11 (Eg5) AND VASCULAR ENDOTHELIAL GROWTH FACTOR (VEGF) GENES |
NZ621981A (en) | 2009-05-05 | 2015-09-25 | Tekmira Pharmaceuticals Corp | Lipid compositions |
EA201791744A3 (ru) | 2009-06-10 | 2018-07-31 | Арбутус Биофарма Корпорэйшн | Улучшенная липидная композиция |
WO2011020023A2 (en) | 2009-08-14 | 2011-02-17 | Alnylam Pharmaceuticals, Inc. | Lipid formulated compositions and methods for inhibiting expression of a gene from the ebola virus |
WO2011044545A2 (en) | 2009-10-09 | 2011-04-14 | Sigalov Alexander B | Methods and compositions for targeted imaging |
US9687550B2 (en) | 2009-12-07 | 2017-06-27 | Arbutus Biopharma Corporation | Compositions for nucleic acid delivery |
WO2011073209A1 (en) * | 2009-12-14 | 2011-06-23 | Scil Proteins Gmbh | Modified ubiquitin proteins having a specific binding activity for the extradomain b of fibronectin |
ES2749426T3 (es) | 2009-12-18 | 2020-03-20 | Univ British Columbia | Métodos y composiciones para administración de ácidos nucleicos |
WO2011139911A2 (en) | 2010-04-29 | 2011-11-10 | Isis Pharmaceuticals, Inc. | Lipid formulated single stranded rna |
WO2011143362A1 (en) * | 2010-05-11 | 2011-11-17 | Esperion Therapeutics, Inc. | Dimeric oxidation-resistant apolipoprotein a1 variants |
DK2575764T3 (en) | 2010-06-03 | 2017-08-07 | Alnylam Pharmaceuticals Inc | BIODEGRADABLE LIPIDS FOR THE ACTIVATION OF ACTIVE AGENTS |
WO2012016188A2 (en) | 2010-07-30 | 2012-02-02 | Alnylam Pharmaceuticals, Inc. | Methods and compositions for delivery of active agents |
WO2012016184A2 (en) | 2010-07-30 | 2012-02-02 | Alnylam Pharmaceuticals, Inc. | Methods and compositions for delivery of active agents |
US20130142760A1 (en) | 2010-08-18 | 2013-06-06 | Cedars-Sinai Medical Center | Atherosclerosis inhibition via modulation of monocyte-macrophage phenotype using apo a-i milano gene transfer |
CN103370054A (zh) | 2010-11-09 | 2013-10-23 | 阿尔尼拉姆医药品有限公司 | 用于抑制Eg5和VEGF基因的表达的脂质配制的组合物和方法 |
EP2663548B1 (en) | 2011-01-11 | 2017-04-05 | Alnylam Pharmaceuticals, Inc. | Pegylated lipids and their use for drug delivery |
CN103443123B (zh) * | 2011-02-07 | 2020-05-29 | 塞勒尼斯医疗控股公司 | 脂蛋白复合物及其制备和用途 |
CA2837804C (en) | 2011-06-15 | 2018-03-20 | Scil Proteins Gmbh | Dimeric binding proteins based on modified ubiquitins |
JP6207507B2 (ja) | 2011-08-25 | 2017-10-04 | エフ.ホフマン−ラ ロシュ アーゲーF. Hoffmann−La Roche Aktiengesellschaft | 短縮されたテトラネクチン−アポリポプロテインa−i融合タンパク質、それを含む脂質粒子、及びその使用 |
EP2760477B1 (en) | 2011-09-27 | 2018-08-08 | Alnylam Pharmaceuticals, Inc. | Di-aliphatic substituted pegylated lipids |
US10894098B2 (en) | 2012-04-09 | 2021-01-19 | Signablok, Inc. | Methods and compositions for targeted imaging |
US9610324B2 (en) | 2012-07-11 | 2017-04-04 | Esperion Therapeutics, Inc. | Apolipoprotein mixtures |
EP2853259A1 (en) | 2013-09-30 | 2015-04-01 | Université Pierre et Marie Curie (Paris 6) | Reconstituted high density lipoproteins composition and uses thereof |
RU2016144908A (ru) | 2014-05-02 | 2018-06-05 | Серени Терапеутикс Холдинг Са | Маркеры hdl-терапии |
EP3189069A4 (en) | 2014-07-31 | 2018-03-07 | UAB Research Foundation | Apoe mimetic peptides and higher potency to clear plasma cholesterol |
WO2016124702A1 (en) | 2015-02-06 | 2016-08-11 | Scil Proteins Gmbh | Novel egfr binding proteins |
KR102064396B1 (ko) | 2015-07-16 | 2020-01-09 | 나피고 프로타인스 게엠베하 | 신규한 면역글로불린-결합 단백질 및 친화도 정제에서의 이의 용도 |
WO2017013136A1 (en) | 2015-07-20 | 2017-01-26 | Scil Proteins Gmbh | Novel binding proteins based on di-ubiquitin muteins and methods for generation |
CA3022751A1 (en) | 2016-05-04 | 2017-11-09 | Navigo Proteins Gmbh | Targeted compounds for the site-specific coupling of chemical moieties comprising a peptide linker |
AU2017311541B2 (en) | 2016-08-11 | 2020-08-13 | Navigo Proteins Gmbh | Novel alkaline stable immunoglobulin-binding proteins |
WO2019030574A1 (en) | 2017-08-10 | 2019-02-14 | Cerenis Therapeutics Holding | CARGOMÈRES |
EP3668549B1 (en) | 2017-08-10 | 2024-05-15 | Abionyx Pharma SA | Apomers |
EP3706804B1 (en) | 2017-11-07 | 2022-02-23 | Navigo Proteins GmbH | Fusion proteins with specificity for ed-b and long serum half-life for diagnosis or treatment of cancer |
CN115427064A (zh) | 2020-04-16 | 2022-12-02 | 阿比奥尼克斯制药公司 | 使用基于脂质结合蛋白的复合物治疗急性病况的方法 |
US20240000948A1 (en) | 2020-10-01 | 2024-01-04 | Abionyx Pharma Sa | Methods for treating eye diseases using lipid binding protein-based complexes |
EP4322746A1 (en) | 2021-04-15 | 2024-02-21 | Abionyx Pharma SA | Use of lipid binding protein-based complexes in organ preservation solutions |
WO2023194798A1 (en) | 2022-04-06 | 2023-10-12 | Abionyx Pharma Sa | Methods for treating leukocytosis, endothelial dysfunction and carditis using lipid binding protein-based complexes |
WO2023194797A1 (en) | 2022-04-06 | 2023-10-12 | Abionyx Pharma Sa | Methods for treating eye diseases using lipid binding protein-based complexes |
WO2023237935A2 (en) | 2022-06-10 | 2023-12-14 | Abionyx Pharma Sa | Methods for treating acute conditions using lipid binding protein-based complexes |
WO2023237927A2 (en) | 2022-06-10 | 2023-12-14 | Abionyx Pharma Sa | Methods for treating hyperinflammatory conditions using lipid binding protein -based complexes |
Family Cites Families (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
GB8625435D0 (en) * | 1986-10-23 | 1986-11-26 | Erba Farmitalia | Human apolipoprotein ai |
IT1229996B (it) * | 1989-04-20 | 1991-09-20 | Cesare Sirtori | Espressione di apolipoproteina ai e apolipoproteina ai-milano in lievito e composizioni farmaceutiche che contengono dette apolipoproteine. |
SE9103701D0 (sv) * | 1991-12-13 | 1991-12-13 | Kabi Pharmacia Ab | Apolipoprotein |
-
1991
- 1991-12-13 SE SE9103701A patent/SE9103701D0/xx unknown
-
1992
- 1992-11-20 ZA ZA928989A patent/ZA928989B/xx unknown
- 1992-12-03 IL IL10395692A patent/IL103956A/en not_active IP Right Cessation
- 1992-12-11 BR BR9205640A patent/BR9205640A/pt not_active Application Discontinuation
- 1992-12-11 US US08/104,063 patent/US5876968A/en not_active Expired - Lifetime
- 1992-12-11 CZ CZ19931589A patent/CZ289879B6/cs not_active IP Right Cessation
- 1992-12-11 PL PL92314894A patent/PL172544B1/pl not_active IP Right Cessation
- 1992-12-11 NZ NZ246223A patent/NZ246223A/en unknown
- 1992-12-11 JP JP5510842A patent/JPH07502892A/ja active Pending
- 1992-12-11 SG SG1996001800A patent/SG47453A1/en unknown
- 1992-12-11 AT AT93900484T patent/ATE242269T1/de not_active IP Right Cessation
- 1992-12-11 RU RU93054168A patent/RU2134696C1/ru not_active IP Right Cessation
- 1992-12-11 MX MX9207224A patent/MX9207224A/es unknown
- 1992-12-11 PT PT93900484T patent/PT571602E/pt unknown
- 1992-12-11 ES ES93900484T patent/ES2199939T3/es not_active Expired - Lifetime
- 1992-12-11 HU HU9302344A patent/HU217203B/hu not_active IP Right Cessation
- 1992-12-11 SK SK868-93A patent/SK86893A3/sk unknown
- 1992-12-11 DE DE69233092T patent/DE69233092T2/de not_active Expired - Lifetime
- 1992-12-11 DK DK93900484T patent/DK0571602T3/da active
- 1992-12-11 AU AU31755/93A patent/AU3175593A/en not_active Abandoned
- 1992-12-11 RO RO93-01116A patent/RO115636B1/ro unknown
- 1992-12-11 EP EP93900484A patent/EP0571602B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1992-12-11 WO PCT/SE1992/000858 patent/WO1993012143A1/en active IP Right Grant
- 1992-12-11 CA CA002103996A patent/CA2103996C/en not_active Expired - Fee Related
- 1992-12-11 PL PL92300262A patent/PL171907B1/pl not_active IP Right Cessation
- 1992-12-11 PL PL92314896A patent/PL172168B1/pl unknown
- 1992-12-11 NZ NZ280516A patent/NZ280516A/en unknown
-
1993
- 1993-08-11 BG BG98036A patent/BG61451B1/bg unknown
- 1993-08-12 NO NO19932866A patent/NO315076B1/no not_active IP Right Cessation
- 1993-08-12 FI FI933557A patent/FI115771B/fi not_active IP Right Cessation
-
1994
- 1994-11-16 EE EE9400375A patent/EE03058B1/xx unknown
-
1995
- 1995-06-30 HU HU95P/P00630P patent/HU211667A9/hu unknown
-
1996
- 1996-07-12 AU AU59473/96A patent/AU703283B2/en not_active Ceased
-
1999
- 1999-03-01 US US09/259,434 patent/US6617134B1/en not_active Expired - Fee Related
Also Published As
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
PL171907B1 (pl) | Sposób wytwarzania dimeru Apolipoproteiny AL-Milano PL PL PL | |
KR100291529B1 (ko) | 단백질 씨 유도체 | |
JP3440097B2 (ja) | ヒト/ブタハイブリッド第viii因子 | |
JP3122127B2 (ja) | 抗凝血タンパク質 | |
JP4451514B2 (ja) | 血液凝固第vii因子改変体 | |
KR930007434B1 (ko) | 혈액응고 억제 단백질 제조방법 | |
US7223726B2 (en) | Apolipoprotein A-I mutant proteins having cysteine substitutions and polynucleotides encoding same | |
JP2015501137A (ja) | 止血を調節するための組成物および方法 | |
JP2000509993A (ja) | アポリポタンパク質b―100由来の抗凝血性ペプチド断片 | |
Ehnholm et al. | Interaction of lipoprotein (a) with fibronectin and its potential role in atherogenesis | |
JPS63119675A (ja) | 変形組織プラスミン活性化剤 | |
US8557762B2 (en) | Snake factor V and methods of use thereof as a procoagulant | |
JP2000504941A (ja) | トロンビンによって活性化され得るプラスミノーゲンアクチベーター | |
US20130156848A1 (en) | Compositions and methods for modulating hemostasis | |
WO1998055130A1 (en) | Exosite assay for anticoagulants |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
LAPS | Decisions on the lapse of the protection rights |
Effective date: 20091211 |