KR910009343B1 - 헤모글로빈 주성분의 혈액 대체제 - Google Patents

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Description

헤모글로빈 주성분의 혈액 대체제
제1도는 하기 실시예 3에 따라 제조된 안정화된 인체 데옥시 헤모글로빈과 SFH의 분석적 겔투과 HPLC 선도.
제2도는 실시예 3 및 4에 따라 제조된 헤모세이프(I)의 산소 분해곡선.
제3도는 실시예 3 및 15에 따라 제조된 생성물의 흡수 스펙트럼.
제4도는 실시예 3, 실시예 9 및 SFH 생성물의 반감기를 나타낸 그래프.
제5도는 실시예 9에 따라 제조된 생성물의 분석적 겔투과 HPLC 선도.
본 발명은 일반적으로 독특한 구조의 거대한 생체분자의 안정화 및 이들과 관련된 활성과 기능을 생체의학과 생체기능에 적용시키는 방법에 관한 것이다. 보다 구체적으로, 천연적 구조[경색된 Hb(T) 또는 이완된 Hb(R)]상태의 헤모글로빈은 모두가 해리를 막고 원하는 리간드-결합 친화도를 성취하기 위하여 안정화 및/또는 가교된다. 적혈구 또는 ″혈액 대체제″의 산소운반기능을 위한 유전학적으로 개발된 헤모글로빈 주성분 대체제, 인체-헤모글로빈과 새로운 동물-헤모글로빈족의 제조방법과 시아나이드 중독치료에 사용하는 옥시헤모글로빈 유도체를 메트-헤모글로빈 유도체로 전환시키기 위한 공정과 시약이 개발되었다.
혈액을 수혈액으로 사용하기에는 커다란 제한이 따른다. 이러한 원인은 주로 적혈구(RBC)의 특성과 질병전염의 위험에 기인한다.
혈액과 혈액생성물에 의한 비루스 질병전염은 수혈 의약의 커다란 문제점이다. 비루스 감염된 혈액을 검출하기 위한 스크리이닝(선별법)은 고가이며 완전한 효과를 나타내지 않는다. 혈액-유도체 약제에 있어서 비루스 감염을 비활성시키기 위한 유용한 방법의 공업 표준법은 습-열 멸균법이다. 그러나 적혈구는 멸균되지 않는다.
모든 혈액을 수주법에 사용하는데 따른 그 외의 제한은 엄격한 저장요건, 짧은 보존수명 및 적혈구의 복합된 면역특성등이 포함된다. 그러므로, 스트로마 유리된 헤모글로빈의 화학적 변성에 의한 세포-유리된 헤모글로빈 주성분의 혈액 대체제에 대한 광범위한 연구가 행하여졌다.
공지된 바와 같이, 헤모글로빈은 천연적으로 2개의 알파 및 2개의 베타 글로빈사슬로 구성된 4개의 서브유니트(subunit)의 사량체를 포함한다. 사량체의 분자량은 약 64킬로달톤(Kd, Kilo-dalton)인데 각각의 서브유니트는 거의 유사한 분자량을 갖는다. 희석용액중에서, 사량체 헤모글로빈은 αB 이량체의 반-분자로 쉽게 해리된다. 비교적 적은 분자량을 갖는 이들 이량체는 신장에의한 순환에 의하여 신속히 여과되어 뇨로 배출된다. 이것은 약 2 내지 3시간의 불만족한 짧은 반감기(T 1/2)를 가져온다.
또한, 적혈구막의 보호가 없는 헤모글로빈은 그의 천연 리간드 디포스포글리세라이트(DPG)를 손실한다. DPG는 일반적으로 헤모글로빈의 산소 친화도를 낮추며 손실후에는 가용성 헤모글로빈은 산소와 더욱 강하게 결합되어 적혈구와 같이 효과적으로 조직내로 산소를 운반하지는 못하다. 이러한 이유로, 스트로마-유리된 헤모글로빈은 혈액 대체제로 사용하기에 적당하지 못하다.
이러한 결점을 종래에 피리독살-5'-포스페이트(PLP)와 같은 DPG 유사체를 데옥시-상태의 Hb(T)의 헤모글로빈에 공유 결합시켜 적혈구와 유사한 낮은 산소 친화도를 갖는 PLP-Hb를 산출하는 방법으로 처리되어 왔다. 따라서, 그린버그(그린버그등의 Surqery, Vol, 86(1979), 11-16페이지)는 혈액 대체제로서 생리학적 산소 친화도를 갖는 PLP-Hb를 사용하는 방법을 연구하였다. 그러나 SFH와 같은 내부 분자가교가 없는 PLP-Hb는 반분자로 분해되고 신장에 의하여 빠르게 배출된다. 또한 쉬아와 그의 동료(맥가리티등의 Journal of Chromatography, 419권(1987), 37-50페이지)들은 PLP-Hb가 헤모글로빈 1몰에 대하여 0내지 6몰의 PLP를 함유하는 변성된 헤모글로빈의 착체 혼합물이며, 이들 각각은 상이한 산소 친화도를 갖는다는 것을 알아내었다.
DPG 유사체는 분자내 가교 Hb를 갖는 것으로 알려졌다. 이들 가교제는 인체 헤모글로빈의 DPG-결합부 위에 특이하게 결합되도록 고안되었으며, 상기 가교제는 β-서브유니트(비니쉬 등의 Biochem. Biophys. Res. Commun., Vol. 63, No. 4(1975) pp. 1123-1129: 비니쉬등의 Method in Enzymology, Vol. 76. Hemoglobins(1981) pp, 147-159 Academic Press) 또는 서브유니트(챠터지 등의 Journal of Biol. Chem., Vol. 261, July 25, 1986, pp. 9929-9937)에 대한 특정한 제제들을 포함한다.
이들 특정 리간드에 의해 가교는 일반적으로 낮은 수율(〈70%)을 산출할뿐만 아니라 생성물을 추가로 정제해야 한다. 활성화된 트리포스페이트 뉴클레오티드는 헤모글로빈을 가교시키고 DPG 결합부위를 점유하는데 동시에 사용되어, PLP-Hb 에 비하여 낮은 산소친화도와 장기간의 플라즈마 유지시간을 갖는 ATP-Hb를 산출한다.
그린버그등의 Progress in Clinical and Biologioal Research, Vol. 122, Advances in Blood Substitute Research (1983), pp. 9-17, Alan R. Liss, New York; 맥가리티등의 Journal of Chro, atography, Vol 415, (1987), pp. 136-142. 80 내지 90%의 혈액을 대치할 때, ATP-Hb는 흉막 및 복막내로 내출혈 되므로 혈액대치제를 고농도로 사용하는 것은 안전하지가 못하다.
비특성 가교제[예, 글로타르 알데하이드(GA)]에 의한 PLP-Hb의 분자대 가교(중합)에 의하여 플라즈마 유지시간이 연장된다(보나르등의 미합중국 특허 제4,136,093, 1979년 1월 23일). 생성된 중합체 PLP-Hb(14g Hb/dl)는 생화학적 산소-운반능력(1dl에 대하여 20cc 의 O2)과 등팽창 압력을 갖는다. 그러나 중합은 불완전하며, 그 성분들은 비균질의 산소 친화도를 갖는다.
그러나 PLP-Hb과 폴리에틸렌 글리콜(이와사끼등의 Artificial Organs, Vol.10, No. 5, (1986), pp. 411-416), 이눌린(이와사끼등의 Biochem, Biophys. Res. Commun., Vol 113, No. 2(1983), pp. 513-518) 및 Hb와 덱스트란(탐등의 Proc. Nat'l, Acad. Sci., USA, Vol. 73,(1976), pp 2128-2131의 공역에 의한 플라즈마 반감기를 연장시키려는 시도가 있었다. 생성물의 비균일성과 그들의 높은 산소 친화도가 다시 결점이 되었다.
다양한 2가의 가교제를 사용하여 Hb를 중합하여 혈액 대체제인 폴리 Hb를 산출하는 방법은 선행기술에 기술되어있다. 이들 방법의 난점은 과잉 중합(생성물의 90%는 150Kd 이상의 크기를 갖는다), 가변상있는 산소 친화도, 착체반응기구, 사용된 가교제의 생리학적 비상용성등이 있다(예, 디비닐설폰, 강력한 칼시노젠-미합중국 특허 제4,001,300:4,001,401:4,053,590호). 이러한 방법에 부가하여, 분자내 가교된 Hb의 제조에 동일한 2가 시약군이 사용되었다. 또한 디비닐설폰은 생성물에 가변성의 산소 친화도와 비특이조성을 제공하는 것으로 나타났다(미합중국 특허 제4,061,736호).
본 발명의 목적은 신규의 혈액대체제 및 이것의 제조방법을 제공하는 것이다.
본 발명의 또다른 목적은 수혈의약의 치료제로서 유용한 안정화되고 살균된 헤모글로빈을 제공하는 것인데 상기 살균은 전염가능한 감염제가 거의 없는 헤모글로빈을 만든다.
본 발명의 또다른 목적은 천연적 헤모글로빈 구조(경색된(T) 또는 이완된(R))의 헤모글로빈을 분자내 가교시키는 방법 및 이용가능한 가교제의 제조방법을 제공하는 것인데, 그와 같은 구조는 가교생성물내에 유지되어 구조적으로 안정화된다. 상기와 같은 구조적 안정화는 일반적으로 생체분자에 적용할 수 있다.
본 발명은 사량체형의 헤모글로빈을 이량체 또는 단량체로 해리되는 것에 대하여 안정화시킬뿐만 아니라 일반적으로 데옥시헤모글로빈으로 칭해지는 경색된(T) 또는 옥시헤모글로빈으로 칭해지는 이완된(R)과 같은 천연 Hb 구조 모두를 안정화시키는 헤모글로빈을 사량체로 안정화시키는 신규의 방법에 관한 것이다. Hb(T)를 안정화하고, 가교시키는데 DPG 유사체를 사용하지 않더라도 본 발명의 생성물은 각각의 서브-유니트의 글로빈 사슬사이의 화학적 공유결합에 의하여, 해리와 구조적 변화에 대하여 안정하다. 출발물질인 사량체 헤모글로빈이 T 또는 R 이던지 간에 그 구조는 본 발명에 따라 안정화된 생성물로 유지된다.
Hb의 구조사이의 이동능력은 힐(Hill) 계수(n)으로 반영된다. 2 또는 그 이상의 계수는 구조적 변화에 따른 서브유니트 사이의 협동적 산소결합을 나타내며 약 1의 상수는 Hb가 T 또는 R 구조로 고정되어 있음을 나타낸다. 완전한 안정을 나타내며 산소결합의 상호-작용의 부재를 나타내는 약 21 내지 1.5에 접근하는 힐계수는 본 발명의 특징을 나타낸다.
본 발명의 선행기술에 비하여 뚜렷이 구별되는 것은 헤모글로빈의 안정화가 특정부위에서 글로빈 사슬이 연결되어 헤모글로빈 사량체를 형성함으로서 성취된다는 것이다. 이러한 생성물은 사량체가 분해되어 이량체 서브유니트로 되는 것에 대하여만 안정화된다는 것인데 즉 산소의 협동결합이 유지된다(힐상수 n-3). 이에 비하여 본 발명은 해리뿐만 아니라 구조적 변화에 대하여서도 사량체 헤모글로빈을 안정화한다는 것이다. 즉 협동산소결합이 없다(힐상수 n
Figure kpo00001
1-1.5). 이러한 구조적 안정은 본 발명의 생성물에 대하여서만 독특한 것이다.
본 발명의 구조적으로 안정화된 사량체 헤모글로빈은 다수의 독특한 잇점을 갖는다. 일례로, 특히 중요한 것은 T-구조로 안정화되는 것이며 용액내에 상기 구조로 남겨지며 천연 적혈구에 거의 가까운 산소 친화도를 갖는 생성물이 된다는 것이다. 본 발명의 생성물은 허파에서의 산소 획득력의 관점에서 볼 때 적혈구와 실질적으로 동등하다. 그외의 중요한 특징은 산소를 신체조직에 운반하는 능력이다. 신체조직내에서 실험되어진 산소의 부분압하에서, 본 발명의 T-구조적 안정화된 생성물은 알로스테리성 합동체(allosterically cooperative) 즉, 구조적으로 비-안정화된 헤모글로빈 생성물에 비하여 실질적으로 다량의 산소를 신체조직에 방출시킨다. 조직에 대한 높은 산소방출은 위급진료에서 흔히 부딪치는 조직-손상된 외상 환자에게 수혈할때에 매우 중요하다.
본 발명과 선행기술의 뚜렷한 차이는 본 발명의 안정화된 헤모글로빈(헤모세이프 I)이 단일 반응단계에서 고수율(95% 이상)로서 용이하게 제조할 수 있다는 것이다. 이것은 추가정제를 필요로하지 않기 때문에 잔류 미반응 물질을 제거하기 위한 연속적인 정제가 없더라도 용액내에 저분자량의 이량체 생성물이 극소량 형성된다. 따라서, 구조적으로 안정화된 단량체 Hb(이후로는 때때로 헤모세이프 I 로 지칭됨)은 스트로마-유리된 헤모글로빈보다 약 3배의 플라즈마 반감기를 가지며 위급상황에서 혈액대체제로서 유용하게 사용된다. 또한 안정화된 db(T)는 다른 신규의 헤모글로빈-주성분의 생성물의 제조에 특히 적합하다. Hb(T)는 함께 연결되어 혈액대체제로서 유용한 중합된 헤모글로빈(폴리 Hb(T) 또는 헤모세이프 II)을 형성하며, 보다 긴 플라즈마 반감기에 부합되는 증가된 분자량을 갖는 안정화된 사량체 생성물이므로 대부분의 경우에 있어서 양호하다. 이들은 두 번째-중합체에 공유결합되어 혈액대체제로 유용한 공역체(헤모세이프 I-배합체)를 형성한다. 이러한 모든 전환에 있어서, 헤모글로빈 사량체는 그들의 특정구조(예, Hb(T)를 유지한다. 연장된 저장을 위해 생성물을 동결 건조시킬 수 있다.
또한, 본 발명의 구조적으로 안정화된 헴-함유 사량체는 일산화탄소 또는 산화질소와 같은 산소치환제 또는 나트륨 디티오나이트와 같은 산소 식세포의 존재에 의하여 제1철에서 제2철상태로 철이 산화되는 것을 막기 위하여 처리된 뒤 모든 오염성 비루스를 파괴시키기 위해 살균시킨다. 본 발명의 생성물은 충분히 안정하기 때문에 단백질의 분해 또는 단백질의 변질없이 멸균에 필요한 60℃로 10시간 이상 가열해도 견딜수 있다. 이러한 공정은 사량체 즉 CO-헤모세이프 I, 중합체 즉 CO-헤모세이프 II와 공역 CO-헤모세이프 I-공역체를 멸균하는데 적용할 수 있다. 그 뒤 이들 CO 헤모세이프는 옥시-헤모세이프로 용이하게 재전환시킬 수 있는데, 이들은 혈액대체제로서 수혈되기에 알맞는데, 이들의 기능화 구조적 보존의 뚜렷한 손실은 전혀없다.
또한 이들 생성물은 중합 또는 공역에 의하여 또는 이들없이 산화되어 시아나이드 소거제로 효과적이며 목적하는 예방에 알맞는 메트-헤모글로빈 생성물(즉 메트-헤모세이프)로 산출된다.
따라서, 본 발명은 넓은 관점으로 볼 때 이량체로 분해되는 것에 대하여 안정하고 수용성 제제의 생성시에 T-구조와 R-구조사이의 구조적 변화에 대하여 안정한 사량체 헤모글로빈 단위로 구성된 헤모글로빈 생성물을 제공하는 것으로, 상기 사량체 단위는 서브유니트의 글로빈 사슬사이에서 화학적 공유결합을 가지고 있기 때문에 안정화에 영향을 준다.
본 발명의 생성물의 제조에 있어서, 데옥시-Hb(Hb(T))의 균일한 조성물의 안정화 및 동결 또는 60℃까지의 가온에서의 불안정상태로부터 보호하기 위한 신규의 제제, 반응조건 및 공정은 최종적으로 마무리처리된 생성물의 멸균, 동결건조와 균일한 생리학적 산화친화도를 성취하도록 개발되어 왔다.
구조적 특성 안정제 및 가교제(CSSC)
본 발명에 따른 사량체 헤모글로빈 단위의 원하는 구조적 및 분자내 안정화를 성취하기 위한 양호한 방법은 소위 구조적-특성 안정화제와 가교제로 불리우는 시약군중의 하나 또는 그 이상과의 반응에 의하여 성취된다. 일반적으로, 디알데하이드 또는 폴리알데하이드가 알려져 있다. 이들은 글로빈 사슬상에서 일차아미노기와 반응하여 쉬프(Schiff) 염기 결합을 형성하는데 이들은 계속하여 2급 아민 결합으로 환원될 수 있다. 사량체 글로빈에 있어서, 이들은 1급 아민의 α-사슬과 β-사슬에 알맞게 위치하며, 우선적으로 반응하여 원하는 목적에 따라 디알데하이드와 폴리알데하이드와 선택적으로 반응하여 안정화를 위한 양호한 공유결합을 형성한다.
본 발명에서 CSSC로 사용하기 위한 디알데하이드의 실례로는 글루타르알데하이드(GA)가 있는데 이들은 알맞는 조건하에서 사용된다. 헤모글로빈과 GA의 반응은 이전에 기술되어 있다. 그러나, 전술된 공정하에서는 사량체 단위의 원하는 구조적 안정화가 완전하게 이루어지지 않는 조건하에서 실시되며 생성물은 실질적으로 안정화된 사량체로 구성되지 않는다. 이미 사용된 바와 같이, 글루타르알데하이드는 비-특이적 시양이며 사량체 사이에서 분자내 공유결합을 야기시켜 사량체의 서브-유니트 사이의 분자내 결합을 형성하는 것보다 빠르게 헤모글로빈 중합체를 형성한다. 그로 인하여 광범위한 분자량 분포를 갖는 안정화된 중합체, 안정화된 사량체와 비안정화된 사합체의 혼합물이 산출되는데 각각의 성분은 상이한 산소친화도를 갖는다.
본 발명에 있어서, 헤모글로빈은 GA와 반응하는데 헤모글로빈의 농도는 낮으며(즉, 1-4g/dl) 헤모글로빈에 대한 GA의 몰비율은 높게한다(즉, 약 6:1 내지 약 60:1), 이러한 조건하에서, 사량체형의 최소한 95%, 일반적으로는 최소한 98%의 Hb 단량체의 안정화가 헤모글로빈 중합체내에서 성취된다. 따라서 실질적으로 완전하게 구조적으로 안정하고 중합화된 생성물이 산출된다. 그뒤 안정화된 중합체형은 멸균을 위하여 일산화탄소화 한다.
만약 동물 헤모글로빈형 혈액대체제를 인체에 사용한다면 올리고머와 중합체의 형성은 그들의 항원성에 의하여 제지된다.
Hb를 GA 와 함께 단량체인 Hb(T)로 고정시키는 공정에 있어서, 중합화하려는 경향이 더 크다. 그러므로, 본 발명의 양호한 예는 헤모글로빈(Hb)의 안정화에 상이한 CSSC 시약과 반응조건을 도입하는 것이다. 이러한 CSSC 화합물을 사용함으로서 Hb 단량체가 안정화되고 이량체형성이 최소(〈5%)로 되며, 중합체는 생성되지 않을뿐 아니라 상이한 CSSC 화합물은 선택된 구조의 그외의 분자를 안정화하고 중합화를 최소화한다. 이와 같은 CSSC 화합물은 거대분자를 독특한 구조로서 안정화시킴으로서 생체 거대분자의 활성과 기능을 유지시킨다. 그러나 CSSC 화합물의 사용은 부가적으로 반응조건을 배가시킴으로서 거대분자를 각각에 연결(중합화)하거나 그들을 이눌린과 같은 상이한 거대분자에 공역화한다. 경색된 (T)구조의 데옥시헤모글로빈(Hb(T))과 결합체로서 상기와 같은 CSSC를 사용함에 따라 반응조건은 배가되어 안정화된 Hb(T) 단량체를 중합화하며 필요에 따라 안정화된 Hb(T)를 다른 거대분자와 결합시킨다. 이와 같은 CSSC 화합물은 반응조건에 따라 PLP-Hb와 같은 헤모글로빈 유도체를 안정화 및 중합시키며 부가적으로 이러한 유도체를 다른 거대분자와 연결시킨다.
본 발명에 사용되는 CSSC 화합물은 일반적으로 디알데하이드 또는 폴리알데하이드이다. 구체적인 실례로 HOC-COH 의 식을 갖는 글리옥살이다. 또 다른 실례로는 방향족 가교제가 잔여 방향족기로부터 면역반응을 일으키는 위험 때문에 덜 양호하기는 하지만 벤젠 디알데히드(오르토, 메타와 파라)가 있다. CSSC 화합물로서 가장 양호한 것으로는 모노사카라이드와 올리고사카라이드의 산화성 개환 반응에 의하여 생성되는 알데히드 생성물이 있다. 페리오데이트 산화와 같은 상기 반응은 공지되어 있다. 상기 반응에 의하여 올리고사카라이드내의 각각의 사카라이드 단량체에 대하여 2개의 알데히드기를 갖는 생성물이 산출된다. 일례로 라피노스(O-라피노스) 또는 말토트리오스(O-말토트리오스)로부터 6개의 알데히드기가 유도된다. 동족체 계열에 있어서, 글루코스와 같은 2가 알데히드인 서브-유니트와 똑같은 안정화를 얻기 위하여 필요한 동몰의 폴리알데히드 가교제의 수는 CSSC의 원자가에 반비례한다. GA 에 비하여 O-라피노스은 분자내 가교제로서 중합체-유리된 Hb(T)의 제조시 O-라피노즈 : Hb의 몰랄비율을 높여야 한다(20:1). 이러한 발견은 CSSC가 최소한의 분자내 교차-결합으로서 Hb 단량체를 독특한 구조로 효과적으로 안정화시킨다는 것을 나타낸다. 따라서 중합속도를 낮춤으로서 반응을 더욱 효과적으로 조절하고 실질적으로 중합체-유리된 안정화된 Hb 생성물의 제조를 보다 용이하게 한다.
유용한 CSSC 화합물의 예로는 글루코스, 이눌린, 말토스, 말토트리오스, 말토테트로스, 말토펜토스, 말토헥소스와 말토헵토스의 페리오데이트 산화된 사카라이드의 동족체 계열이 포함된다. 일반적으로 당의 개환 산화반응으로부터 유도된 CSSC 화합물은 하기의 식으로 나타낼 수 있다.
Figure kpo00002
또는
Figure kpo00003
상기식에서, 각각의 R, R1, R2, R3, R4및 R5는 수소, 히드록시, 메톡시와 히드록시 메틸에서 선택되며: m 은 0 또는 1이며: Q는 36개까지의 당잔기를 갖는 디- 또는 올리고 사카라이드의 산화 개환반응에 의하여 생성된 화학기이다.
출발화합물이 라피노스(트리사카라이드)일 때 CSSC 산화 생성물은 다음의 식으로 나타내진다.
Figure kpo00004
출발화합물이 폴리사카라이드인 이눌린일 때 CSSC 산화 생성물은 다음의 식으로 나타내진다.
Figure kpo00005
n 은 약 35
본 발명에 사용되는 가교제는 사량체형의 Hb를 안정화시키고 가교시키기 위해 선행기술에서 사용된 DPG 유사체와는 상이하게 다르다. 이들은 인산염, 카르복실레이트 등과 같은 음전하기가 없으며 Hb의 DPG 부위와 특이적으로 반응하지 않는다고 알려졌다. 그러므로, 이들은 인체와 가축으로부터의 Hb의 구조적 안정화에 영향을 줌으로서 구조내에서 각각의 Hb 개체가 유지되어 가교제와 접촉하여 반응한다. 반응을 용이하게 하는데는 수용성 가교제가 양호하다.
헤모글로빈에 대한 알데하이드의 상대적인 양은 알데하이드기: 헤모글로빈의 몰랄비가 최소한 12:1, 바람직하게는 최소한 60:1이 되도록 조절된다. 폴리알데하이드가 사용되었을때는 똑같은 양의 헤모글로빈에 대하여 디알데하이드가 사용된 경우에 비하여 적은양의 폴리알데하이드가 사용된다. 몰랄비의 계산은 헤모글로빈이 약 50개의 1차 아민기를 갖는다는 가정하에 이루어졌다. 본 발명이 글로빈 사슬연결반응의 부위 특이성을 필요로하지 않기 때문에 안정화된 생성물의 높은 수율(95% 이상)을 얻기 위해서는 과잉량의 알데하이드가 사용된다.(예, O-라피노스의 경우 5 내지 30의 몰랄비율이 20:1로 양호하게 사용된다)부위 특성 반응을 필요로 하는 선행 기술공정은 시약의 실질적으로 화학양론적 함량을 사용하므로 결과적으로 수율이 감소된다. 반응은 4°내지 37℃, 바람직하게는 주위온도에서 수용액중에서 알맞게 진행된다. 반응 혼합물의 pH는 적당한 완충용액에 의하여 6.7 내지 9.5 사이, 바람직하게는 8.0으로 조절된다.
폴리 Hb(T)를 제조하는데 가교제로서 GA를 사용한 경우, 반응 전반에 걸친 필요한 조절을 수행하기 위하여 용액내의 Hb 농도는 약 5 내지 7g/dl 이하가 되어야 한다. 그러나, 그외의 CSSC 생성물에 있어서는, 반응이 더욱 용이하게 조절되므로, 1-20g/dl, 바람직하게는 3-4g/dl 정도의 고농도의 Hb가 사용된다.
적혈구로부터 얻어진 스트로마유리된 헤모글로빈의 헤모글로빈 농도는 약 3-4g/dl이다. 이러한 헤모글로빈의 용액은 희석 또는 농축없이 편리하게 사용된다. 양호한 농도는 알데히드의 선택에 의한다. 따라서 2가의 GA에 대한 신규의 CSSC의 잇점은 중합체-유리된 인체 Hb 유도체와 중합체-유리된 동물 Hb 유도체의 제도에 동등하게 사용될 수 있다는 것이나 O-라피노스와 같은 신규의 CSSC 사용에 의한 폴리 Hb 형성의 억제는 동물-Hb-유도된 헤모세이프 생성물을 인체에 사용할 수 있게 한다.
안정화된 헤모글로빈
본 발명의 구조적으로 안정화되고 가교된 데옥시-Hb(XL-HB(T))의 제조에 있어서, 분자내 가교반응은 적당한 시기에 환원 또는 급냉제를 첨가함으로서 이량체, 삼량체, 사량체와의 더 큰 중합체를 형성하는 분자내 가교가 이루어지기 시작하기 전에 중단시킬 수 있다. 1급 아민기와 CSSC의 알데히드기의 반응에 의하여 쉬프 염기 결합이 형성된다. 나트륨 또는 칼륨 보로하이드라이드등의 첨가는 쉬프 염기의 결합을 2급 아민결합으로 환원시키고 또는 과잉의 알데하이드성기도 1차 알콜로 환원시켜 가교가 계속 이루어지는 것을 막는다. 환원을 위한 알맞는 시간은 반응 혼합물 샘플의 HPLC 분석에 의하여 측정할 수있다.
구조적으로 안정화된 사량체 Hb 생성물은 표준 기술에 의하여 회수 및 정제된다. 따라서, 상기 생성물은 막 여과에 의하여 세척 및 농축된 뒤, 맥관계통에 있어서의 비교적 짧은 반감기가 허용되는 위급한 상황시에 혈액 대체제로서 유용한 생리 식염수로 제조된다. 또한, 상기 물질은 본 발명이외의 다른 생성물의 제조에 출발물질로서 사용할 수 있다.
중합체로 안정화된 헤모글로빈
이와 같은 생성물중의 실례로 중합화된 Hb(헤모세이프 II)가 있는데, 구조적으로 안정화되고 해리에 대하여 안정한 사량체 헤모글로빈(헤모세이프 I)은 분자내 결합하여 14g/dl의 헤모글로빈 농도에서 등-팽창압을 줄 정도의 분자량을 지닌 중합된 Hb를 형성한다. 중합은 디알데히드 또는 폴리알데히드를 사용하여 적절하게 성취할 수있는데 이들 물질은 구조적 안정성을 확인하는데 사용되는 물질과 동일하거나 다르다. 일례로 글루타르알데하이드를 사용한 선행 기술공정에서 제조된 폴리(Hb) 생성물은 헤모세이프 1로부터 제조되지 않기 때문에 본 발명의 생성물이 갖는 완전한 구조식 안정성이 결여되어 있다.
본 발명에 따른 중합체 생성물은 분자량(중합체내의 단위수)의 관점에서 볼 때 서로 다른 중합체의 혼합물을 함유한다. 그러나, 모든 종은 T-구조로서 구조적으로 안정하다. 모두 종은 동일하거나 실질적으로 동일한 산소 친화도를 갖는다. 따라서, 중합체의 제조에 적당한 반응조건은 실온 상태의 수용액인데 어떠한 경우일지라도 약 37℃를 초과해서는 안된다. 헤모글로빈: 알데하이드의 비율은 1몰의 Hb 당 알데히드기 몰수를 기준으로했을 때 2내지 100이 적당하다. 반응액의 pH는 6.7 내지 9.5, 바람직하게는 8.0으로 완충되어야 한다. 반응은 쉬프 염기를 탄소-질소 공유결합으로 전환시키고, 잔류 알데하이드기를 환원시킬 수있도록, 나트륨 보로하이드라이드 또는 나트륨 시아노보로하이드라이드와 같은 환원제를 첨가하여 종결지울수 있다.
본 발명에 특히 알맞는 양호한 중합체 생성물의 조성물은 중합체 성분의 20-25%가 5또는 그 이상의 사합체 헤모글로빈 단량체 단위로 구성되며, 중합체 성분의 50-60%가 2내지 4개의 헤모글로빈 단위를 함유하고, 성분중 20-25%가 단일 헤모글로빈단위(분자량은
Figure kpo00006
64킬로달톤)로구성되었으며, 1-2%는 불완전하게 안정화된 헤모글로빈으로 구성된 분자량 분포를 지닌다.
상기 조성물은 14g/dl에서 등 팽창성을 가지며 혈압에 대한 문제점을 발생시킴없이 혈액 대치제로서 동일한 부피로 사용할 수 있다.
안정화된-헤모글로빈 공역체
이러한 생성물중 다른 실례로는 ″공역 헤모세이프 I″인데 구조적으로 안정화되었고 분해에 대하여 안정한 헤모글로빈(헤모세이프 I은)은 생체-거대분자와 공유결합하여 고분자량의 바람직한 생성물을 형성한다. 헤모글로빈과 생체-중합체(이눌린, 덱스트란, 히드록시에틸 전분등)의 공역체는 선행기술에 공지되어있다. 그러나 본 발명은 선행기술과 유사한 헤모글로빈의 결합방법 및 동일한 생체-중합체가 사용되는 반면, 헤모글로빈은 구조적으로 안정한, 양호하게는 T-배합체형으로 유지되는데 상기에 언급된 부수적인 잇점을 갖는다.
본 발명에 따른 공역체의 제조를 위한 중합체로서 특히 양호한 것은 이눌린이다. 진단용 산에 사용한다고 알려진 것은 약 5000의 분자량을 갖는 다당류이다.
멸균된 생성물
선행 기술의 안정화, 중합화 및 공역 공정은 거대분자의 가열, 건조 또는 동결시에 산화로부터 헴 또는 변질로부터 거대분자를 보호하지는 못한다. 본 발명에 따라서, 먼저 안정화된 뒤 선택적으로 중합되거나 공역된 헴-함유 거대분자는 산화치환체 또는 소거제의 사용에 의하여 양호하게는 변질없이 멸균과 동결건조가 용이한 일산화탄소-헴 유도체를 형성하는 것과 같은 방법으로 일산화탄소(CO) 또는 산화질소등과의 반응에 의하여 형성되어지는 헤모-보호착체형성에 의하여 열적산화로부터 보호된다.
특히, GA를 사용하거나 CSSC 생성물을 사용하여 유도된 신규의 안정화된 헤모글로빈에 CO를 첨가함으로서 본원에서 CO-헤모세이프(들)로 불리우는 신규의 생성물이 산출된다. 이때 CO는 헤모글로빈의 분리없이 반응혼합물에 첨가된다. 이미 안정화된 헤모글로빈에 있어서, CO에 의한 헴의 보호와 알로스테릴성 구조의 변화의 방지로서 가온과 동결 건조의 조건하에서 CO-헤모세이프(들)의 산화와 변질이 방지된다. 헤모세이프 I, 헤모세이프 II 와 헤모세이프:-이눌린 또는 그외의 헤모글로빈-주성분의 혈액대체제에 적용된 일산화탄소화와 멸균은 선행기술에는 서술되어있지 않았다.
알맞는 보호제의 첨가없이 헤모글로빈 유도체를 멸균(예, 60℃에서 10시간 습식-가열) 및 동결건조시키면 침전과 변질이 일어난다. 본 발명에 따라 독특하게 안정화된 헤모글로빈의 헴을 CO로 보호시킴으로서, CO-헤모세이프의 가열 및 동결건조가 성공적으로 성취될 수 있다. 성공적인 멸균은 가용성의 변질되지 않은 CO-헤모세이프를 산출하는데, 이것은 비루스-질병전염이 없다. 이어서, 성공적인 동결건조에 의하여 무수 CO-헤모세이프 생성물이 산출된다. 액체 및 무수-헤모세이프 생성물은 적당한 온도에서 장시간 안정하다(예, 56℃에서 60일간). CO-헤모세이프는 안정하지만 산소를 운반하지 않는다. 그러므로 수혈에 사용하기 위하여서는, CO-헤모세이프 용액은 산소존재하에 광처리 함으로서 옥시-헤모세이프로 전환시켜야 한다. 그러므로, 본 발명의 또다른 목적은 CO-헤모세이프를 수혈에 앞서 옥시-헤모세이프로 광전환시키는 것이다.
본 발명의 초기단계에서 사용되는 GA 농도(즉, 5mM)는 HTVV-III/LAV 또는 HIV-I 로 알려진 비루스의 95%를 비활성화 시키는데 필요하다고 선행기술에서 알려진 1mM 보다는 훨씬 크다. 그러나 비루스 수혈 안정성을 확실히 하기위해서는 멸균 시켜야한다. 즉, 60℃로 10시간 가열되어야 하는데 이러한 방법은 알부민과 같은 플라즈마-유도된 약학적 제제의 표준 처리방법이다. 일례로 상기와 같이 유도된 안정화된 옥시-=Hb(T)를 60℃로 10시간 처리하였을 때 갈색침전(즉 변질된 메트-Hb(T))이 형성되는데 이들을 계속 사용하는 것은 부적당하다. 그러나 안정화된 Hb(T)를 카르본모노옥시 유도체로 전환시키면 CO-헤모세이프 I(T)가 형성되는데 이것은 멸균에 변질되지 않으며 25℃ 또는 56℃에서 60일간 저장해도 HPLC 에 의하여 지시된 바와같이 가스 스펙트럼, 산소친화도(즉 P50)또는 조성등에 있어서 감지할 만한 n 물리적-화학적 성질의 변화가 검출되지 않는다. 더욱이, CO-헤모세이프 I(T)는 상기 멸균시 상술한 바와 같이 25℃ 또는 56℃에서 60일간 저장 및 동결건조시 물리적-화학적 성질에서 감지할 만한 변화가 없었다.
수혈 생성물
순수한 CO-헤모세이프는 산소와 결합하거나 산소를 운반하지 못하기 때문에, 제,조 멸균과 동결건조시, 안정성에도 불구하고 산소의 운반과 수혈에 사용하기에 적당하지 않다. 무균 건조하에서 CO를 제거하는 것은 혈액대체제로 사용시 필수 불가결한 것이다. 그러므로 본 발명은 CO-헤모세이프가 용이하게 광전환되어 산화유도체인 옥시헤모글로빈을 만들어낸다는 것을 가르치고 있다. 이로서, 산소는 용액내로 공급되고 이 용액은 투명튜브를 통과하여 가시광선에 노출된다. CO-헤모세이프와 옥시-헤모세이프의 광학 흡착 스펙트럼은 2종류의 성분을 특성화와 정량화시키는 편리한 방법이다. 현재의 혈액대체제인 폴리 PLP-Hb 등에 비하여, 헤모세이프는 생리학적 잇점 및 균일한 산소친화성을 갖는다. 이것의 전구체인 CO-헤모세이프는 멸균, 동결건조, 광 전환 및 최고 60℃ 온도에서 저장해도 안정하다. 따라서 본 발명은 무균의 비루스-질병 전염이 없는, 효과적인 혈액대체제를 제조하는 방법을 제공한다.
또한, 본 발명에 따라 선행기술에 기술된 모든 Hb-주성분의 혈액대체제에 일산화탄소화 공정을 부가함으로서 안정화가 성취될 수 있음을 알아내었다. 일례로, 본 발명에 따라 폴리 PLP-Hb(폴리 CO-PLP-HB), ATP-Hb(CO-ATP-Hb)와 폴리 ATP-Hb(폴리 CO-ATP-Hb)의 일산화탄소 유도체들은 이들의 옥시유도체와 똑같이 안정하고, 멸균가능하고 동결건조될 수 있으며, 광 전환될 수 있다. 따라서 본 발명은 헤모글로빈상에 지지된 인공호흡용 산소운반 액체로부터 병원성 비루스를 박멸하고 이들의 저장성을 개량시키기 위한 일반적인 치료방법을 포함한다. 그러므로, 덱스트란-Hb, 히드록시 에틸전분 Hb, 폴리에틸렌 글리콜-Hb와 디아스피린 가교된 Hb와같은 모든 현존하는 헤모글로빈 주성분의 혈액대체제는 본 발명에 서술된 바와 동일한 방법에 의하여 비루스-질병 전염이 없다.
본 발명의 헤모세이프의 양호한 실질적인 제조방법은 다음과 같다:
(i) 모든 혈액을 등장성의 NaCl 용액으로 희석시키고, 막(membrane)형태의 여과 시스템에 적용시킨다.
(ii) 접선 흐름 막 여과에 의하여 혈액의 세포원소로부터 플라즈마를 분리한다.
(iii) 적혈구를 등장성 염수로 세척한다.
(iv) 적혈구를 저침투압 인산염 완충액으로 용해한다. 이어서, 세포파편과 그와의 입자를 접선흐름 여과에 의하여 가용성 헤모글로빈으로부터 분리시킨다.
(v) 전공 또는 기체 교환장치와 환원제로서 옥시-Hb를 데옥시-Hb로 전환시킨다.
(vi) 소망하는 바에 따라 단량체 또는 중합체 조성물 또는 공역체인 구조적 특이 안정화 가교적(CSSC)를 첨가하여 데옥시-Hb를 안정화시킨다.
(vii) 일산화탄소로서 데옥시-Hb를 물리적으로 안정화시켜 CO-헤모세이프를 산출한다.
(viii) CO- 헤모세이프를 세척 및 농축하거나 알맞는 생리식염수를 첨가하여 전해질 균형을 제조절한다.
(ix) CO-헤모세이프를 멸균시킨다.
(x) 산소의 존재하에서 CO-헤모세이프를 광전환시켜 옥시-헤모세이프를 산출한다.
(xi) 옥시-헤모세이프를 멸균여과시킨 뒤 수혈을 위해 포장한다.
본 발명에 따라 일단 옥시-헤모세이프가 이용가능해지면 이것을 해독제로서, 또는 화학적 방어물과 같은 시아나이드 중독이 예상되는곳에 예방수혈제로서 유용한 메트-헤모세이프 유도체로 전환시키는 것이 가능하다. 따라서, 본 발명은 옥시-헤모세이프의 제조한후에 공지된 방법을 사용하여 이것을 메트-헤모세이프로 전환시키는 방법을 제공하는 것으로 상기 메트-헤모세이프는 즉시 효력을 나타내며 장시간의 활성을 갖는 시아나이드 소거제로서 수혈할 수있다. 메트-헤모세이프를 정맥내 투여하으로서 경구용 아질산염을 사용하여 메트-Hb를 형성하는 것과 같은 시간의 지연을 피할 수 있다. 아질산염은 종래의 적혈구 옥시헤모글로빈으로부터 메트-Hb를 형성하는데도 필요하기 때문에 메트 헤모세이프의 사용은 종래의 산소 운반능력을 저해하지는 않는다. 그러므로, 메트-헤모세이프는 선행기술에 사용되는 것보다 시아나이드 해독치료에도 사용된다.
옥시-헤모세이프의 수혈은 혈액도핑의 데채제로서도 사용된다. 반면, 선행기술은 적혈구를 개인에게 주입하면 산소 운반 능력이 증가되며, 적혈구의 점도의 상승은 10-15%로 제한된다. 그러나 옥시-헤모세이프와 공지된 플라즈마페로시스기술을 같이 사용함으로서 플라즈마는 이론적으로 옥시-헤모세이프로 대치할 수있으며 산소운반능력이 50%까지 증가되며 혈액의 해마토크리트 또는 흐름특성을 변화시키지 않는다.
본 발명 또는 본 발명의 목적이 제조방법의 메카니즘 또는 생성물의 구조의 특정이론으로 제한하지는 않지만 생성물의 구조제 안정성과 분해에 대한 안정성은 CSSC 에 의한 사량체 헤모글로빈의 공유결합인 내부-서브유니트로부터 유도된다. 이들 결합은 이량체로 분리되는 것을 막을 만큼 충분히 안정하며 구조적 변화를 방지할 정도로 충분히 견고하다. 구조설명이 어떠하던지 간에 헤모세이프는 구조적 안정성이 매우 독특하다.
더욱이, 본 발명은 그 범주가 헤모글로빈 처리와 헤모글로빈 생성물에만 제한되는 것은 아니다. 본 발명은 하나 또는 그 이상의 구조로 존재할 수 있는 그 외의 단백질에도 적용 가능하다. 용액 또는 생물학적 막형태를 단백질을 본 발명에 따라 CSSC 화합물로 처리함으로서 CSSC와 접하는 단백질의 구조를 안정화한다. 이론적으로, 이것은 안정화된 구조와 연합된 생물학적 활성을 안정화시키고 멸균시 분자를 안정시킨다. 따라서, 본 발명은 그들 중 대부분이 특별한 구조로서만 유용한 생물학적 활성의 펩타이드를 포함한 생물학적 거대분자에 광범위하게 적용할 수 있다는 것이다.
본 발명은 다음의 비-제한적 실시예에 의하여 상세히 설명될 것이다.
[실시예 1]
[인체와 동물 스트로마 없는 헤모글로빈의 제조방법]
카나다 적십자로부터 얻은 포장된 적혈구 또는 시간이 지난 혈액으로부터 인체스트로마 없는 헤모글로빈을 제조하였다. 먼저 모든 혈액을 3,000rpm으로 30분간 원심분리하였다. 플라즈마와 담황색 피복물은 피펫을 통한 흡입 제거한 뒤, 버린다. 침전된 에리트로사이트를 그 부피의 3배가 되는 얼음-냉각된 정상적인 염수에 현탁시키는 방법으로서 세 번 세척하였다. 매번 세척한후 세포를 원심분리로 재-침전화한 뒤 상징액을 버린다.
다음에, 세척된 적혈구를 pH가 7.6인 5mM 인산염 완충액의 4배 부피양으로 용해시켜 손상되지 않은 세포벽을 파괴시키고 헤모글로빈을 제거시킨다. 스트로마와 막파편을 제거하기 위하여 헤모리세이트를 폴리설폰 필터(HVLP, 0.5㎛의 기공)가 설치된 펠리콘 카세트 시스템(밀리포어)으로 여과한 뒤 그 뒤에 폴리설폰필터(100,000분자량을 제거)를 사용하여 여과한다. 여액내의 헤모글로빈을 먼저 14-20g/dl 의 농도로 농축하고 5.0ft2의 멤브레인 카세트(PT 시리즈, 30,000 분자량을 제거)가 장착된 펠리콘카세트 시스템과 10배 부피의 pH가 7.4 인 PBS 완충용액을 사용하여 세척하고 0.22㎛밀리포어필터 장치로서 여액을 멸균한 뒤, 사용할때까지 4℃로 저장한다.
동물 헤모글로빈 제조에 있어서, 헤모글로빈의 용해도를 강화하기 위하여 PBS 완충액(pH 7.4)대신에 20mM 브레이트 완충용액(pH 9.5)으로 대치시킨 래트 헤모글로빈을 사용하는 것을 제외하고는 인체 헤모글로빈에서와 동일한 방법으로 제조하였다.
[실시예 2]
[헤모글로빈에 대한 CSSC로서, 페리오데이트 산화된 파리노스와 그외의 당류 제조방법]
각각 200mg의 글루코스, 슈크로스, 라피노스, 말토스, 말토트리오스, 말토펜토스, 말토헥토스, 말토헵토스와 그외의 당류가 내재된 6ml의 증류수를 실온에서 사카라이드 1몰당 일정한 몰랄비의 고체 나트륨 m-페리오 데이트로 처리하였다(1몰의 사카라이드에 대하여 사용된 나트륨 n-페이로 데이트의 몰 비율은 피라노시드에 대하여서는 2.2이고 푸라노시드에 대하여서는 1.1이다). 1시간 뒤, 반응혼합물을 빙수욕조에서 냉각시킨 뒤, 침전화된 요오드가 재용해되어 무색 용액이 될 때까지 격렬한 교반과 함께 중아황산 나트륨을 첨가하였다. 이어서, 즉시 6N의 NaOH를 첨가하여 pH를 8.0±0.1로 조절하였다. 여기서 생성된 산화된 당류 용액을 최종농도가 20mg/ml로 되게 희석하고 밀리포어 0.45㎛형 GS 멤브레인 필터를 통해 여과한 뒤 사용시까지 4℃로 저장한다.
[실시예 3]
[개환 라피노스(0-라피노스)에 의하여 구조적으로 안정화되고 가교된 인체 헤모세이프(I)의 제조방법]
분자내 가교된 데옥시헤모글로빈 CXL-Hb(T)의 제조방법: 350ml의 스트로마 없는 옥시헤모글로빈(Hb(R)) 1% w/v이 들어있는 pH 8.0의 0.1M인산염 완충용액을 진공하에서 실온으로 약 4시간 자기교반시켜 데옥시헤모글로빈(Hb(T))으로 전환시켰다. 0.1몰의 나트륨 디티오 나이트가 용해된 0.3ml 의 탈기체화한 완충용액을 헤모글로빈 용액에 첨가하고 반응을 5분간 유지하였다. 가교제인 0-라피노스 1.08ml 가 들어있는 20ml 의 탈기체화된 pH 8.0의 완충용액을 격렬한 교반하에서, 첨가한 뒤 용액을 실온에서 4시간 교반하였다. 반응 혼합물을 빙욕중에서 냉각한 뒤 15.0m mole 의 나트륨 보호하이드라이드가 들어있는 5ml의 탈기체화된 1mM의 NaOH를 불활성 가스압력하에서 첨가한 뒤 반응을 45분간 유지시켰다.
제1도는 5㎍/100ml의 생성물(실선)과 대조물 인체 SFH(대시-라인)의 HPLC 결과이다. B-글로빈 반분자(피크a)와 (B2)안정화된 인체(Hb(T))(피크b)의 분자량 측정값을 표시하였다. 사용된 완충용액은 50mM 인산염과 150mM의 NaCl(pH7.0)이었다. 크로마토그램은 GP.250 변화프로그래머, p500 펌프, 482차트 기록기 모델과 405mm 필터의 단일 경로 UV 모니터로 장치된 Pharmacia FPALC 로 측정하였다.
결과에 의하면 95% 이상의 헤모글로빈이 안정화 및 가교가 이루어졌으며, 5% 이하의 XL-Hb(T)가 반-분자로 분해되었다. 똑같은 실험조건하에서 헤모글로빈은 완전하게 반-분자로 분해되었다.
XL-Hb(T)의 CO 유도체(COXL-Hb(T))의 제조와 멸균:나트륨 보호하이드라이드의 환원한 뒤 CO 기포를 XL-Hb(T) 반응혼합물내에 직접 주입시켰다. 막 여과에 의하여 세척 및 농축후 100% CO하의 COXL-Hb(T)를 대기압하에서 10시간 동안 60℃로 가열한 뒤, 멸균시켜 CO-헤모세이프 I를 산출하였다. 주위온도에서 장시간 저장을 위하여 CO-헤모세이프 I을 동결건조하여 무수 분말화하고 필요에 따라 완충용액으로 제조합한다.
CO-헤모세이프 I(T)를 옥시-헤모세이프 I(T)로 광전환:15ml의 CO-헤모세이프 I(T)를 회전 증발기상에 장착된 650ml의 둥근바닥 플라스크에 유입시키고 CGE Brooder 램프하의 0℃의 빙수욕조내에서 연속적으로 회전시킨다.(C 250R 40/1 내부는 무광인 연성유리). 비결합된 CO를 제거하기 위해 흡입기 또는 진공펌프를 사용하여 플라스크를 진공시킨다. 2분 뒤, 공기 또는100% 산소를 주입시킨다. 이러한 반복을 스펙트로포토미터에 의해 샘플측정이 흡착비가 1.8을 나타내는 577 내지560mm 사이가 될 때까지 반복하여 CO를 완전히 제거한다.(Enzymology, vol. 76, Hemoglobin, pp. 60 164의 방법에 의한다). 여기서 얻어진 최종생성물은 변형시키지 않고 겔투과 크로마토그라피하였으며 그 결과를 제1도에 도시하였다.
제3도는 22℃의 pH 7.4인 링거 완충액중에서 본 실시예 및 다른 실시예의 생성물의 상대 흡착 스펙트럼을 도시한 것이다. 실선은 XL-Hb(T) 즉 일산화탄소화 하기전의 상태를 나타낸 것이며, 점선은 옥시-헤모세이프 최종 생성물을 나타낸다. 제3도의 곡선은 최종 생성물이 실질적으로 변화되지 않는 물리적-화학적 특성을 갖는다는 것을 나타낸다.
제2도는 본 실시예(대시라인)에서 0-라피노스에 의하여 가교되고 안정화된 헤모세이프(1)와 옥시-헤모글로빈 또는 Hb(R)(실선)의 산소 분해곡선을 나타낸것인데 헤모글로빈의 농도는 3.5g/dl 이며, pH 7.4의 링거의 산업 완충용액을 사용하였다. 이것은 그와같은 생성물의 전형적인 곡선이다. 50% 포화(P50)에서의 산소의 부분압의 값은 곡선으로부터 직접 읽을 수 있다.
본 실시예의 헤모세이프(I)는 제2도에 도시되어있는데, PBS 완충용액(pH 7.4)내에서 P50값인 산소분해 쌍곡선은 37℃에서 27mmHg이었다. (P은 50%의 헤모글로빈이 산화상태에 있을때의 산소의 부분압이다). 힐 상수(Hill Coefficient 는 약 1-1.5이다.)
제4도는 본 실시예의 최종 생성물인 옥시-헤모세이프(T)를 함유하는 헤모글로빈-주성분의 혈액 대치제의 전형적인 플라즈마 반감기를 대시라인으로 나타내었다. 측정값은 30% 초과 부피를 사용한 레트를 사용하여 측정하였다. 생성물은 헤모글로빈(점선)이 약 1-1.5시간인 것에 비하여 약 4-5시간의 반감기를 갖는다.
[실시예 4]
[개환 라피노스(0-라피노스)에 의하여 구조적으로 안정화되고 가교된 인체 헤모세이프 I(R)의 제조방법.]
본 방법은 반응을 옥시-상태에서, 나트륨 디티오나이트가 없는 상태에서 실시하는 것을 제외하고는 실시예 3의 헤모세이프 I(T)에서 기술된 방법과 비슷하다.
최종 생성물은 pH 가 7.4인 PBS 완충용액에서 37℃, 2 내지 3mmHg의 P50산소분해 쌍곡선(제2도, 실선)을 나타내며 겔투과 크로마토그래피 조성물과 가시광산 스펙트럼은 헤모세이프 I(T)와 구별이 안된다.
[실시예 5]
[글리옥살에 의하여 구조적으로 안정화되고 가교된 인체 헤모세이프 I(T)의 제조방법]
글리옥살에 의하여 분자내 가교되고 스트로마-없는 데옥시 헤모글로빈의 제조방법: 자기교반하에 있는 인체 스트로마-없는 헤모글로빈 2.9g, 4% w/v 가 들어있는 0.1M의 중탄산나트륨을 진공하에서 약 2시간동안 데옥시 헤모글로빈으로 전환시켰다. 가교제인 글리옥살 2.58m mole이 들어있는 7.5ml의 탈기체화된 0.1M의 중탄산 나트륨을 첨가하고, 용액을 실온에서 2시간동안 교반하였다. 반응 혼합물을 빙수욕중에서 냉각하고 6m mole의 나트륨 보로하이드라이드가 들어있는 3ml의 탈기체화된 1mH 의 NaOH를 양성 불활성 가스기압하에서 첨가하였다. 45분간 환원을 계속 유지하였다. HPLC 겔 투과성은 제1도와 비슷하며, 90% 이상의 헤모글로빈이 분자내 안정화 되었다.
글리옥살 안정화된 CO-헤모세이프 I(T), 그의 멸균법, 동결 건조와 옥시-헤모세이프 I(T)로의 광전환은 실시예 3에 기술된 것과 유사하다. 최종 생성물의 반감기는 30%과 부피적 대치로서 래트에서 측정한 결과 약 3.5시간이었다.
[실시예 6]
[개환 라피노스(0-라피노스)에 의하여 구조적으로 안정화되고 가교된 소의 헤모세이프 I(T)의 제조방법]
분자내 가교된 소의 데옥시 헤모글로빈의 제조방법: 자기 교반하의 90ml의 소의 스트로마-없는 옥시 헤모글로빈 1% w/v 가 들어있는 0.1M의 인산염 완충용액(pH 8.0)을 진공하에서 약 2시간동안 실온에서 데옥시헤모글로빈으로 전환시켰다. 400μ몰의 나트륨 디티오나이트가 용해된 0.3ml의 탈기체화된 완충용액을 헤모글로빈 용액에 첨가하고 5분간 반응시켰다. 가교제인 0-라피노스 276μ몰이 들어있는 6ml의 탈기체화 된 pH 8.0의 완충용액을 진공하에서 첨가하고 실온에서 3시간 교반하였다. 반응 혼합물을 빙수욕중에서 냉각하고, 3.5m mole의 나트륨 보로하이드라이드가 들어있는 2ml의 1mM의 NaOH(탈기체화됨)를 양성 불활성 가스기압하에서 첨가하였다.45분간 환원시킨 뒤 HPLC 겔투과 크로마토그라피는 90%의 소의 헤모글로빈이 분자내 안정화되었음을 나타낸다. 가교된 소의 헤모글로빈의 크로마토 그라피는 제1도와 유사하다.
0-라피노스 안정화된 소의 CO-헤모세이프 I(T) 제조방법, 그의 멸균, 동결건조와 옥시-헤모세이프 I(T)로의 광전환은 실시예 3에 기술된 것과 유사하다.
상기에 의하여 산출된 최종 생성물은 변하지 않는 겔투과 크로마토그라피 조성 및 물리-화학적 특성을 갖는다. 생성물을 37℃의 PBS 완충용액(pH 7.2)에서 측정했을 때 34mmHg의 P50의 산소분해 쌍곡선과 ∼1.5의 힐상수, 래트에 30%과 부피로 투여하였을 때 ∼4시간의 플라즈마 반감기를 갖는다.
[실시예 7]
[개환 라피노스(0-라피노스)에 의하여 구조적으로 안정화되고 가교된 양의 헤모세이프 I(T)의 제조방법]
분자내 가교된 양의 데옥시 헤모글로빈의 제조방법: 자기 교반하의 100ml의 양의 스트로마-없는 옥시헤모글로빈 1% w/v가 들어있는 0.1M의 인산염 완충용액을 진공하에서 약 2시간동안 실온에서 데옥시 헤모글로빈을 전환시켰다. 50μ몰의 나트륨 디티오나이트가 용해된 100㎕의 탈기체화된 완충용액을 헤모글로빈 용액에 첨가하고 5분간 반응시켰다. 가교제 0-라피노스 16μ몰이 들어있는 12.5ml의 탈기체화된 pH 8.0의 완충용액을 진공 교반하에서 첨가하였다. 4℃에서 16시간 반응시킨 뒤 반응 혼합물을 빙수욕중에서 냉각하고, 4.4m mole의 나트륨 보로하이드라이드가 들어있는 2.5ml의 1mM의 NaOH(탈기체화됨)를 양성불활성 가스 압력하에서 첨가하였다. 45분간 환원시킨 뒤 HPLC 겔투과 크로마토그라피는 95%이상의 양의 헤모글로빈이 제1도에 나타낸것과 유사한 분자내 안정화되었음을 나타낸다.
0-라피노스 안정화된 양의 CO-헤모세이프 I(T) 제조방법 및 멸균, 동결건조와 옥시-헤모세이프 I(T)로의 광전환은 실시예 3에 기술된 것과 유사하다.
여기서 얻어진 최종 생성물은 변하지 않는 겔투과, 크로마토그라피 조성 및 물리-화학적 특성을 갖는다. 생성물은 37℃의 PBS 완충용액(pH7.4)에서 측정했을 때 38mmHg의 P50의 값을 갖는다.
[실시예 8]
[개환 라피노스(0-라피노스)에 의하여 구조적으로 안정화되고 가교된 래트의 헤모세이프 I(T)의 제조방법]
분자내 가교된 래트의 데옥시 헤모글로빈의 제조방법: 자기 교반하의 18ml 의 래트의 스트로마-없는 옥시헤모글로빈 2% w/v가 내재된 20mM의 보레이트 완충용액(pH 9.5)을 진공하에서 약 1시간동안 실온에서 데옥시 헤모글로빈으로 전환시켰다. 50μ몰의 나트륨 디티오나이트가 용해된 0.1ml의 탈기체화된 완충용액을 헤모글로빈 용액에 첨가하고 5분간 반응시켰다. 가교제인 0-라피노스 110μ몰이 들어있는 3ml의 탈기체화된 pH8.0의 완충용액을 진공하에서 첨가하고 교반하고 4℃에서 16시간 가교시켰다. 반응 혼합물을 방수욕중에서 냉각하고 1.2m mole 의 나트륨 보로하이드라이드가 내재된 1ml 의 1mM 의 NaOH(탈기체화됨)를 양성 불활성 가스 기압하에서 첨가하였다. 45분간 환원시킨 뒤 HPLC 겔투과 크로마토그라피는 〉90%의 래트의 헤모글로빈이 분자내적으로 안정화되었음을 나타내는데 제1도에 나타낸것과 유사하다.
0-라피노스 안정화된 래트의 CO-헤모세이프 I(T) 제조방법 및 멸균, 동결건조와 옥시-헤모세이프 I(T)로의 광전환은 실시예 3에 기술된 것과 유사하다.
여기서 얻어진 최종 생성물은 변하지 않는 겔투과 크로마토그라피 조성 및 물리-화학적 특성을 갖는다. 생성물은 37℃의 PBS 완충용액 (pH 7.4)에서 측정했을 때 24mmHg 의 P50의 산소분해 쌍곡선과 ∼1.5의 힐상수를 갖는다.
[실시예 9]
[개환 라피노스(0-라피노스)에 의하여 구조적으로 안정화되고 중합화된 인체 헤모세이프 I(T)의 제조방법]
분자내 안정화되고 가교된 인체 데옥시헤모글로빈의 제조방법: 자기교반하의 77ml 의 인체 옥시헤모글로빈 4% w/v가 들어있는 0.1M 의 인산염 완충용액(pH 8.0)을 진공해서 약 4시간동안 실온에서 데옥시헤모글로빈으로 전환시켰다. 0.10m mole 의 나트륨 디티오나이트가 용해된 0.3ml의 탈기체화된 완충용액을 헤모글로빈 용액에 첨가하고 5분간 반응시켰다. 가교제인 0-라피노즈 0.95m mole의 들어있는 20ml 의 탈기체화된 완충용액을 진공하에서 첨가하고 6시간 냉각하고 9.5m mole 의 나트륨 보로하이드라이드가 들어있는 4ml의 1mM 의 NaOH(탈 기체화됨)를 양성 불황성가스 압력하에서 첨가한 뒤, 45분간 환원시켰다. 제5도에서 알 수 있듯이 HPLC 겔투과 크로마토그라피는 98% 이상의 헤모글로빈이 분자내적으로 안정화되었으며, 가교되었음을 나타내며 20-25%는 안정화된 단량체, 55-5%는 이량체, 삼량체와 4량체이며 20-25%는 5량체 또는 그 이상의 중합체와 결합이다.
본 물질의 크로마토그라피는 제1도에서 설명된 장치와 50mM의 인산염 완충용액, 150mM 의 NaCl(pH 7)을 사용하여 얻어졌다. 폴리 Hb(T)를 유속이 0.4ml/min 으로 Superose 12 예비 충진된 HR 10/30 칼럼상의 단량체(피크a) 이량체, 삼량체와 사량체의 합(피크b) 뿐만 아니라 오량체 또는 이상(피크 c)에 용해하였다.
0-라피노스 안정화된 CO-헤모세이프 II(T) 제조방법 및 멸균, 동결건조와 옥시-헤모세이프 II(T)로의 광전환은 실시예 3에 기술된 것과 유사하다.
여기서 얻어진 최종 생성물은 멸균 전후에도 변하지 않는 겔투과 크로마토그라피 조성 및 물리적-화학적 특성을 가지며 37℃의 PBS 완충용액(pH 7.2)에서 측정했을 때, 32mmHg의 P50의 산소분해 쌍곡선과 37℃의 pH 7.2인 PBS 완충용액에서 측정했을 때 1.6의 힐상수를 갖는다. 분리되고 정제된 헤모세이프 II(T)분율 즉 단량체, 이량체, 삼량체, 사량체, 오량체 또는 그 이상(제5도 참조)는 30% 과부피 대치한 래트에서 측정한 결과 상이한 P50, 힐상수와 7-8시간의 반감기를 갖는다.
[실시예 10]
[개환 수크로스 CO-수크로스에 대하여 구조적으로 안정화되고 중합된 인체 헤모세이프 II의 제조방법]
0-수크로스에 의한 분자내적으로 안정화되고 가교된 인체데옥시 헤모글로빈의 제조방법: 자기 교반하의 10ml의 인체 스트로마-없는 옥시헤모글로빈 13% w/v가 들어있는 0.1M의 인산염 완충용액(pH8.0)을 진공하에서 약 2시간동안 데옥시 헤모글로빈으로 절환시켰다. 40μ몰의 나트륨 디티오 나이트가 용해된 0.2ml의 탈 기체화된 완충용액을 헤모글로빈 용액에 첨가하고 5분간 반응시켰다. 가교제인 0-수크로스 200μ몰이 들어있는 3ml의 탈 기체화된 완충용액을 진공하에서 첨가하고 6시간 반응시켰다. 반응 혼합물을 빙수욕중에서 냉각하고 2.0ml mole의 나트륨 보로하이드라이드가 들어있는 1ml의 1mM의 NaOH (탈 기체화됨)를 양성 불활성 가스 압력하에서 첨가하였다. 45분간 환원시킨 뒤 HPLC 겔투과 크로마토그라피는 〉98%의 헤모글로빈이 분자내적으로 안정화되고 가교되었음을 나타낸다. 생성된 조성물은 실시예 9에 기술된 것과 유사하다(제5도).
0-수크로스 안정화된 CO-헤모세이프 II(T) 제조방법 및 멸균 동결건조와 옥시-헤모세이프 II(T)로의 광전환은 실시예 3에서와 유사하다.
여기서 얻어진 최종 생성물은 변하지 않는 겔투과 크로마토그라피 조성 및 물리적-화학적 특성을 갖는다. 생성물은 37℃ 과부피적 투여하여 측정한 결과 ∼7-8시간의 반감기를 갖는다.
[실시예 11]
[글루타르알데히드에 의하여 구조적으로 안정화되고 중합된 인체 헤모세이프 II(T)의 제조방법]
글루타르알데히드에 의한 분자내적으로 안정화되고 가교된 인체 데옥시헤모글로빈의 제조방법: 자기 교반하의 78ml의 인체스트로마-없는 옥시헤모글로빈 4% w/v 가 들어있는 0.1M의 인산염 완충용액(pH 8.0)을 진공하에서 약 4시간동안 실온에서 데옥시 헤모글로빈으로 전환시켰다. 0.1m mole의 나트륨 디티오나이트가 용해된 0.3ml의 탈기체화된 완충용액을 헤모글로빈 용액에 첨가하고 5분간 반응시켰다. 가교제인 글루타르알데히드 480μ몰이 들어있는 2.5ml의 가교제인 완충용액을 진공하에서 첨가하고 6시간 반응시켰다. 반응 혼합물을 빙수욕중에서 냉각한 뒤, 4m mole의 나트륨 보로하이드라이드가 들어있는 4ml 의 1mM 의 NaOH(탈 기체화됨)를 양성 불활성가스 압력에서 첨가하였다. 45분간 환원시킨 뒤 HPLC 겔투과 크로마토그라피는 〉98%의 인체 헤모글로빈이 분자내적으로 안정화되고 가교되었음을 나타낸다. 생성물은 실시예 9에 서술된 것과 유사하다.
글루타르알데하이드 안정화된 CO-헤모세이프 II(T) 제조방법 및 멸균, 동결건조와 옥시-헤모세이프 II(T)로의 광전환은 실시예 3에 기술된 것과 유사하다.
여기서 얻어진 최종 생성물은 변하지 않는 겔투과 크로마토그라피 조성 및 물리-화학적 특성을 갖는다. 생성물은 37℃의 PBS 완충용액(pH 7.4)에서 측정했을 때 ∼30mmHg의 P50의 산소분해 쌍곡선과 1.5의 힐상수, 래트에 30% 과부피적 투여에 의하여 측정한 결과 7-8시간의 반감기를 갖는다.
[실시예 12]
[개환 라피노스(0-라피노스)에 의하여 구조적으로 안정화되고 중합화된 소의 헤모세이프 II(T)의 제조방법]
0-라피노스에 의한 분자내적으로 안정화되고 가교된 소의 태옥시 헤모글로빈의 제조방법: 자기교반하의 40ml 의 소의 스트로마가 없는 옥시 헤모글로빈 6% w/v가 들어있는 0.1M의 인산염 완충용액(pH 8.0)을 진공하에서 약 4시간동안 실온에서 데옥시 헤모글로빈으로 전환시켰다. 80μ몰의 나트륨 디티오 나이트가 용해된 0.2ml의 탈기체화된 완충용액을 헤모글로빈 용액에 첨가하고 5분간 반응시켰다. 가교제인 0-라피노스 550μ몰이 들어있는 100ml의 탈기체화된 완충용액을 진공하에서 첨가하고 6시간 교반하였다. 반응 혼합물을 빙수욕중에서 냉각하고 3.5m mole의 나트륨 보로하이드라이드가 들어있는 4.0ml의 1mM의 NaOH (탈 기체화됨)를 양성 불활성 가스 압력하에서 첨가하였다. 45분간 환원시킨 뒤 HPLC 겔투과 크로마토그라피는 〉95%의 소의 헤모글로빈 반분자가 분자내적으로 안정화되고 가교되었음을 나타낸다. 생성된 조성물은 실시예 9에 기술된 것과 유사하다.
0-라피노스 안정화된 소의 CO-헤모세이프 II(T) 제조방법 및 멸균, 동결건조와 옥시-헤모세이프 II(T)로의 광전환은 실시예 3에 기술된 것과 유사하다.
여기서 얻어진 최종 생성물은 멸균 전후에 변하지 않는 겔투과 크로마토그라피 조성 및 물리-화학적 특성을 갖는다. 생성물은 37℃의 PBS 완충용액(pH 7.4)에서 측정했을 때 28mmHg의 P50의 산소분해 쌍곡선과 1.5 의 힐상수, 래트에서 30% 과부피적 투여후 측정했을 때 7-8시간의 반감기를 갖는다.
[실시예 13]
[개환 라피노스(0-라피노스)에 의하여 구조적으로 안정화되고 중합된 래트의 헤모세이프 II(T)의 제조방법]
분자내적으로 안정화되고 가교된 래트의 데옥시 헤모글로빈의 제조방법: 자기 교반하의 6ml의 래트의 스트로마-없는 옥시헤모글로빈 9.4% w/v가 들어있는 20mM의 보레이트 완충용액(pH9.5)을 진공하에서 약 2시간동안 실온에서 데옥시 헤모글로빈으로 전환시켰다. 20μ몰이 나트륨 디티오나트가 용해된 100㎕의 탈기체화된 완충용액을 헤모글로빈 용액에 첨가하고 5분간 반응시켰다. 가교제인 0-라피노스 87μ몰이 들어있는 2ml의 탈기체화된 완충용액을 진공하에서 첨가하고 4℃에서 16시간 실온에서 5시간 반응시켰다. 반응 혼합물을 빙수욕중에서 냉각하고 1.2m mole의 나트륨 보로하이드라이드가 들어있는 1ml의 1mM의 NaOH(탈 기체화됨)를 양성 불활성 가스 압력하에서 첨가하였다. 45분간 반응시킨 뒤 HPLC 겔투과 크로마토그라피는 98%의 래트의 헤모글로빈 반분자가 분자내적으로 안정화되고 가교되었음을 나타낸다. 생성물은 실시예 8에서 서술된 것과 유사하다.
0-라피노스 안정화된 래트의 CO-헤모세이프 II(T) 제조방법 및 멸균, 동결건조와 옥시-헤모세이프 II(T)로의 광전환은 실시예 3에서와 유사하다.
여기서 얻어진 최종 생성물은 멸균 전후에도 변하지 않는 겔투과 크로마토그라피 조성 및 물리-화학적 특성을 갖는다.
[실시예 14]
[개환 라피노스에 의한 구조적으로 안정화된 인체-헤모세이프 I(T)-이눌린 공역체의 제조방법]
분자내적으로 가교된 인체 헤모세이프(T)의 제조방법: 본 제조방법은 실시예 3과 유사하다.
페리오데이트 산화된 이눌린(0-이눌린)의 제조방법: 개환 이눌린의 제조방법은 실시예 2와 유사하다.
헤모세이프 I(T)-이눌린 공역체의 제조방법: 자기 교반하의 35ml의 인체 옥시-헤모세이프 I(T), 4% w/v 가 들어있는 0.1M의 NaHCO2를 진공하에서 약 2시간동안 실온에서 데옥시 헤모세이프 I(T)로 전환시켰다. 40몰의 나트륨 디티오나이트가 용해된 50㎕의 탈기체화된 완충용액을 첨가하였다. 5분 뒤 등몰량의 0-이눌린이 들어있는 8.5ml의 0.1M의 NaHCO3(탈 기체화됨)를 진공, 교반하에서 첨가하고 실온에서 5시간 반응을 유지하였다. 반응 혼합물을 빙수욕중에서 냉각하고 2.0m mole의 나트륨 보로하이드라이드가 들어있는 1.5ml의 탈기체화된 1mM의 NaOH를 양성 불활성가스 압력에서 첨가하였다. 환원을 45분간 계속하였다. HPLC 겔투과 크로마토그라피와 헤모세이프 I(T)-이눌린 공역체의 조성은 제5도와 유사하다. 라피노스 안정화된 인체 CO-헤모세이프 I(T)-이눌린 공역체의 제조방법 및 멸균, 동결건조, 인체 옥시-헤모세이프 I(T)-이눌린 공역체로의 광전은 실시예 3과 유사하다.
여기서 얻어진 최종 생성물은 변하지 않는 겔투과 크로마토그라피 조성 및 물리-화학적 특성을 갖는다. 생성물은 37℃의 완충용액(pH 7.2)에서 측정했을 때 27mmHg의 P501.2의 힐상수와 30% 과부피로 대치된 래트에서 측정했을 때 7-8시간의 반감기를 갖는다.
[실시예 15]
[0-라피노스로 안정화된 구조적으로 안정화된 인체 메트-헤모세이프 I(T)와 (R)의 제조방법]
상기(실시예 3)와 같이 CO-헤모세이프 I(T)와 (R)을 이들 각각의 옥시-헤모세이프로 광전환시킨 뒤 옥시 헤모세이프를 37℃로 유지하여 메트-헤모세이프로의 전환을 유지시켰다. 제3도에 대시라인으로 나타내어진 바와같이, 광학 흡수 스펙트럼으로 측정했을 때 메트-헤모글로빈 농도가 〉90%일 때 전환이 완결되었다. CN 소거제로서의 효율은 제3도에 대시-점선으로 나타내어진 바와같이 대응되는 시아노메트-헤모글로빈 광흡수 스펙트럼으로부터 확인된다.
[실시예 16]
[0-라피노스에 의하여 구조적으로 안정화되고 중합된 인체 메트-헤모세이프 II(T)와 (R)의 제조방법]
0-라피노스에 의하여 구조적으로 안정화되고 중합된 헤모세이프 II(T)와 (R)은 실시예 9에서와 같이 제조되었다. 이들은 실시예 15에서와 같이 이들 각각의 메트-헤모세이프로 전환되었다.
[실시예 17]
[0-라피노스에 의하여 구조적으로 안정화된 인체 메트-헤모세이프 I(T)-이눌린 배합체의 제조방법]
0-라피노스에 의하여 구조적으로 안정화된 인체 헤모세이프 I(T)-이눌린 배합체는 실시예 14에 서술된 방법으로 제조되며 실시예 15에서 서술된 방법으로 메트-헤모세이프로 전환된다.
[실시예 18]
[라피노스에 의하여 구조적으로 안정화되고 중합화된 인체 헤모세이프 II의 비루스적 비활성화 방법]
인체 헤모세이프 II 는 실시예 9에서, 서술된 방법으로 제조된다. 헤모세이프 II, 104HIV 단위로 스파이크된 헤모세이프 II와 104HIV 단위로 구성된 샘플을 제조하였다. 대조 실험으로서 용액내에 헤모세이프 II가 존재하는 용액은 HIV-I의 감염에 영향을 받지않는다. 이들 샘플은 1주간 56℃로 습윤 가열시켰다. 처리가 끝날즈음에, 항원 분석기술을 사용하여 샘플에 대한 HIV 감염 분석을 하였다. 어떠한 샘플에서도 HIV 감염은 검출되지 않았다.

Claims (28)

  1. 이합체로의 해리에 대하여 안정화고 수용성 제제 생성시 T-구조와 R-구조사이의 구조적 전환에 대하여 안정하며, 서브-유니트의 글로빈 사슬 사이에 화학적 공유 결합을 지님으로서 안정화에 효과를 주는 사량체 헤모글로빈 단위로 구성된 헤모글로빈 생성물.
  2. 제1항에 있어서, 상기 헤모글로빈 생성물이 T-구조로 안정되는 것을 특징으로 하는 생성물.
  3. 제2항에 있어서, 상기 헤모글로빈이 헤모글로빈의 사슬 사이의 2차 아미노 결합에 의하여 안정되는 것을 특징으로 하는 안정된 헤모글로빈 생성물.
  4. 제3항에 있어서, 상기 결합이 디-또는 폴리알데히드와 글로빈 사슬의 반응에 의하여 쉬프(Schiff)염기 결합을 형성한 뒤, 2차 아미노 결합으로 환원시켜 유도된 안정된 헤모글로빈 생성물.
  5. 제4항에 있어서, 상기 알데히드 반응물이 글루타르알데히드인 안정된 헤모글로빈 생성물.
  6. 제4항에 있어서, 상기 알데히드 반응물이 글리옥살인 안정된 헤모글로빈 생성물.
  7. 제4항에 있어서, 상기 알데히드가 당류 화합물의 개환 산화 반응의 생성물인 것을 특징으로 하는 안정된 헤모글로빈 생성물.
  8. 제7항에 있어서, 상기 당류 화합물이 분자당 1내지 7개의 당류 잔기를 가지는 것을 특징으로 하는 안정된 헤모글로빈 생성물.
  9. 제8항에 있어서, 상기 당류 화합물이 타피노스인 것을 특징으로 하는 안정된 헤모글로빈 생성물.
  10. 제1항에 있어서, 상기 헤모글로빈이 인체로부터 유래된 안정된 헤모글로빈 생성물.
  11. 제1항에 있어서, 상기 헤모글로빈이 동물로부터 유래된 안정된 헤모글로빈 생성물.
  12. 수용액중의 헤모글로빈을 적어도 별개의 2개의 기 또는 헤모글로빈의 글로빈 사슬과 실온에서 반응할수 있는 별개의 기능기를 지니며, 상기 헤모글로빈의 DDG 부위와 반응할 수 있는 음전하 이온기가 없는 2가 또는 다가 시약과 반응시키고; 헤모글로빈과의 반응이 거의 완결된 뒤 상기 상의 잔류 기능기를 비활성화시키고; 여기서 형성된 구조적으로 안정하고 해리에 대하여 안정한 헤모글로빈을 회수하는 것을 포함하는 제1항의 안정된 헤모글로빈 생성물의 제조방법.
  13. 제12항에 있어서, 상기 시약이 아미노기 또는 글로빈 사슬과 반응할 수 있는 기능기를 지니는 것을 특징으로 하는 방법.
  14. 제13항에 있어서, 상기 시약이 디알데히드 또는 폴리 알데히드이며, 이것의 잔류기는 환원에 의하여 비활성화되는 것을 특징으로 하는 방법.
  15. 제13항에 있어서, 상기 헤모글로빈 반응물과 안정된 헤모글로빈 생성물이 T-구조인 것을 특징으로 하는 방법.
  16. 제1항의 다수의 안정된 사량체 헤모글로빈 단위가 서로 공유 결합되어, 각각의 헤모글로빈이 구조적으로 안정되고 해리에 대하여 안정한 중합 헤모글로빈 생성물을 형성하는 안정된 헤모글로빈 생성물.
  17. 제16항에 있어서, 각각의 헤모글로빈 단위가 T-구조로 안정되는 것을 특징으로 하는 안정된 중합 헤모글로빈 생성물.
  18. 제17항에 있어서, 헤모글로빈 단위 사이의 공유 결합이 디알데히드 또는 폴리알데히드와 안정된 헤모글로빈을 반응시킨 뒤, 환원에 의하여 유도된 2차 아민 결합을 포함하는 것을 특징으로 하는 안정된 중합 헤모글로빈 생성물.
  19. 제17항에 있어서, 성분의 20내지 25%가 5또는 그 이상의 헤모글로빈 단위로 구성된 헤모글로빈 중합체, 성분의 50 내지 60%가 2내지 4개의 헤모글로빈 단위의 헤모글로빈 올리고마, 성분의 20 내지 25%가 헤모글로빈 단량체, 성분의 1내지 2%가 헤모글로빈 서브-유니트의 이량체로 구성된 조성물을 지니는 안정된 중합 헤모글로빈 생성물.
  20. 일산화탄소와 안정된 헤모글로빈 생성물의 착체가 수용액중에서 최고 80℃의 온도에서 10시간 동안 유지시켜도 실질적인 변질이나 분해없이 저항할 수 있는 것을 특징으로 하는 제1항의 안정된 헤모글로빈 생성물과 일산화탄소의 착체.
  21. 제20항에 있어서, 상기 헤모글로빈 단위가 T-구조로 안정되어 있는 안정된 CO-헤모글로빈 착체.
  22. 제21항에 있어서, 동결 건조형태로 존재하는 안정된 CO-헤모글로빈 착체.
  23. 제21항에 있어서, 상기 CO: 헤모글로빈의 몰랄비가 약 4:1인 것을 특징으로 하는 안정된 CO-헤모글로빈 착체.
  24. 제21항의 CO-안정된 헤모글로빈 착체 용액을 착체내의 어떠한 비루스 오염물질 비활성화시키기에 충분한 시간동안 적당한 멸균 온도로서, 상기 용액을 가온하여 멸균하고, 착체를 산소와 반응시켜 옥시-또는 데옥시-헤모글로빈 또는 이들의 혼합물로 전환시키는 것을 포함하는 혈액 대체제로서 유용하고 전염 가능한 비루스 감염이 없는 안정된 헤모글로빈 생성물의 제조방법.
  25. 제1항의 구조적으로 안정하고, 해리에 대하여 안정한 옥시- 또는 데옥시- 헤모글로빈 또는 이들 혼합물을 함유하는 멸균되고, 비루스가 비활성화된 혈액 대체제.
  26. 제25항의 멸균된 옥시 헤모글로빈을 적당한 조건하에서 산화시키는 것을 포함하는 시아나이드 소거제의 혈액 대체제로 사용하기에 적합한 데트-헤모글로빈 착체의 제조방법.
  27. 수용액 내의 다수의 상이한 구조로 존재 가능한 거대분자들을 포함하며, 상기 거대분자의 적어도 95%가 하나의 특정한 구조로 안정화되며, 이 안정화는 상기 거대분자와 디알데히드 또는 폴리 알데히드와의 비-부위 특정 반응 뒤, 환원에 의하여 2차 아민 공유 결합을 형성하는 생물학적 단백질 생성물.
  28. 제2철-제1철 산화에 대해 헴(heme)을 보호하기 위하여 혈액 대체제를 CO와 반응시키고, 비루스 오염물이 효과적으로 비활성화 되도록 충분한 시간동안 적당한 멸균 온도로 CO 혈 대체제를 유지시킨 뒤, 계속해서 상기 착체를 산소와 반응시켜 옥시-또는 데옥시-헤모글로빈 도는 이들의 혼합물로 전환시키는 것을 포함하는 비루스 오염이 거의 없는 생성물이 되도록 헤모글로빈 주성분의 혈액 대체제를 멸균하는 방법.
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