KR20160004288A - 약학적 조성물 및 이의 용도 - Google Patents

Abstract

항-연골형성 작용제의 조합물을 함유하는 약학적 조성물이 개시된다. 유효량의 하나 이상의 항-연골형성 작용제를 투여함으로써 공막 연골형성을 감소시키고, 하나 이상의 안구 연골발생 단백질을 감소시키고, 염증 유도 연골형성을 감소시키고, 근시를 치료하는 방법이 또한 제공된다. 약학적 조성물은 근시를 치료하는데 유용하다.

Description

약학적 조성물 및 이의 용도{PHARMACEUTICAL COMPOSITION AND USES THEREOF}

관련 출원에 대한 전후 참조

본 출원은 전체 개시내용이 참조로서 본원에 포함되는 2013년 5월 6일에 출원된 미국 출원 번호 61/819,709호의 이익을 주장한다.

기술 분야

본 발명은 근시를 치료하고, 안구 연골발생 단백질, 공막 연골형성 및 염증 유도 연골형성을 억제하기 위한 약학적 조성물 및 방법에 관한 것이다.

발명의 배경

근시는 눈의 진행성 연장 및 안구 조직의 신장으로 인한 것이다. 이는 중요한 공중 보건 문제인데, 이는 미국 인구의 약 25%가 걸려있고, 일부 아시아 국가에서는 인구의 80%만큼 많이 걸려있기 때문이다. 고도 근시의 황반병증은 백내장, 녹내장, 망막 박리, 근시 망막 변성, 시각 장애, 및 치료 불가능한 시각상실의 주요 원인이 되고 있다.

광학 및 레이저 수술 교정 기술이 근시안의 굴절 상태를 변경시키기 위해 사용되어 왔다. 그러나, 이들 치료는 눈의 이상 연장을 다루지 않으며, 따라서 고도 근시 환자의 병리학적 변화를 치료하지 않는다.

근시에 대한 더욱 효과적이고 안전한 치료가 여전히 필요하다. 본 발명은 상기 필요를 다룬다.

발명의 개요

2개의 항-연골형성 작용제를 포함하는 약학적 조성물이 본원에 제공된다. 약학적 조성물은 근시를 치료하고, 하나 이상의 연골발생 단백질을 감소시키고, 공막 연골형성을 감소시키는데 효과적이다.

유효량의 비-스테로이드성 항-염증제(NSAID)를 근시의 치료를 필요로 하는 대상체에 투여함으로써 근시를 치료하는 것을 포함하는 근시를 치료하는 방법이 제공된다. 한 구체예에서, 근시를 치료하기 위한 방법은 유효량의 항무스카린제를 투여하는 것을 추가로 포함한다.

유효량의 하나 이상의 항-연골형성 작용제를 하나 이상의 안구 연골발생 단백질을 감소시키는 것을 필요로 하는 대상체에 투여하여 하나 이상의 안구 연골발생 단백질을 감소시키는 것을 포함하는 하나 이상의 안구 연골발생 단백질을 감소시키는 방법이 또한 본원에 제공된다.

유효량의 하나 이상의 항-연골형성 작용제를 공막 연골형성을 감소시키는 것을 필요로 하는 대상체에 투여하여 공막 연골형성을 감소시키는 것을 포함하는 공막 연골형성을 감소시키는 방법이 또한 본원에 제공된다.

유효량의 하나 이상의 항-연골형성 작용제를 염증 유도 연골형성을 감소시키는 것을 필요로 하는 대상체에 투여하여 대상체의 염증 유도 연골형성을 감소시키는 것을 포함하는 염증 유도 연골형성을 감소시키는 방법이 또한 본원에 제공된다.

본 발명은 하기의 수반하는 도면 및 상세한 설명과 함께 읽는 경우 더욱 명백해질 것이다.

도면의 간단한 설명

도 1은 근시에 대한 메커니즘을 개략적으로 예시한다.

도 2는 전환 성장 인자 베타(TGF-β) 처리를 이용하거나 이용하지 않은 공막 줄기/전구 세포(SSPC)에서의 β-액틴 발현에 대해 표준화된 알파 평활근 액틴(α-SMA) 및 콜라겐 타입 2(Col2) mRNA의 수준을 예시하는 막대 그래프이다. 데이터는 델타-델타 Ct 방법에 의해 결정된 바와 같은 대조군 샘플에 비한 배수 변화로서 표현된다. 막대, SD. *는 통계적으로 유의한 것을 나타낸다.

도 3은 형태-결핍 근시(FDM)를 갖는 마우스의 공막에서의 α-SMA 및 Col2의 발현을 예시하는 이미지의 어셈블리이다. 패널 A는 공막 Col2 및 α-SMA 발현 수준이 FDM 눈에서 증가된 것을 나타내는 웨스턴 블롯의 사진이다. 패널 B는 FDM 눈에서의 공막 Col2 및 공막 α-SMA의 수준이 대조군 눈의 것보다 유의하게 높은 것을 나타내는 밀도측정 분석의 막대 그래프이다.

도 4는 FDM 눈의 RPE-맥락막 복합체에서의 TGF-β1, TGF-β2 및 TGF-β3 mRNA 발현의 수준이 대조군 눈의 것보다 유의하게 높은 것을 나타내는 막대 그래프이다.

도 5A(웨스턴 블롯 분석) 및 도 5B(막대 그래프)는 아트로핀, 케토롤락 및 디클로페낙과 함께 또는 아트로핀, 케토롤락 및 디클로페낙 없이 10 ng/ml의 TGF-β2로 처리된 인간 SSPC에서의 Col2 및 α-SMA의 발현 프로파일을 예시한다.

도 6은 아트로핀 점안약 및 조합된 아트로핀 및 케토롤락 점안약으로 처리된 11명의 근시 대상체에서의 근시 진행 속도(연간 디옵터)를 예시하는 막대 그래프이다.

도 7은 임의의 처리가 없는 근시 대상체 및 3개월의 케토롤락 처리 후의 근시 대상체의 근시 진행 속도를 예시하는 막대 그래프이다.

도 8A는 형태 결핍 근시(FDM) 마우스의 맥락막에서의 GADPH 발현에 대해 표준화된 인터루킨 6(IL-6) mRNA의 수준이 대조군 마우스의 것보다 높은 것을 예시하는 막대 그래프이다. 도 8B는 맥락막에서의 종양 괴사 인자-알파(TNF-α)의 수준이 대조군 마우스의 것보다 FDM 마우스에서 더 높은 것을 예시하는 막대 그래프이다. TNF-α 발현은 케토롤락 점안약에 의해 억제된다.

도 9A는 TGF-β2(T2)의 존재하에서의 SSPC에서의 α-SMA 발현에 대한 아트로핀(A), 케토롤락(X1) 및 아트로핀 및 케토롤락을 포함하는 약학적 조성물의 억제 효과를 예시하는 막대 그래프이다. 아트로핀 및 케토롤락을 포함하는 약학적 조성물은 α-SMA 억제에 대한 상승작용적 효과를 갖는다. 도 9B는 TGF-β2(T2)의 존재하에서의 SSPC에서의 Col2 발현에 대한 아트로핀(A), 케토롤락(X1) 및 아트로핀 및 케토롤락을 포함하는 약학적 조성물의 억제 효과를 예시하는 막대 그래프이다. 아트로핀 및 케토롤락을 포함하는 약학적 조성물은 Col2 억제에 대한 상승작용적 효과를 갖는다.

상세한 설명

정의

상기 이용된 바와 같고 본 발명의 개시 전체에 걸친 하기 용어는 달리 표시하지 않는 한 하기 의미를 갖는 것으로 이해될 것이다.

본원에서 사용되는 단수 형태는 문맥이 명백히 달리 표시하지 않는 한 복수의 지시대상을 포함한다.

본원에서 사용되는 "유효량"은 근시의 적어도 하나의 증상을 치료하거나 개선시키거나, 하나 이상의 안구 연골발생 단백질, 공막 연골형성 또는 염증 유도 연골형성을 감소시키기에 충분한 항-연골형성 작용제의 용량을 포함한다.

본원에서 사용되는 용어 "치료하는", "치료된" 또는 "치료"는 완화 용도 또는 결과, 및/또는 근시 진행 및/또는 근시 변화 지수(myopia shift index)의 진행을 늦추거나 억제하는 것을 나타낸다.

용어 "감소시키는" 또는 "감소시키다"는 안구 연골발생 단백질, 공막 연골형성, 염증 유도 연골형성 또는 근시 진행, 또는 근시 변화의 형성을 늦추거나, 이미 형성된 안구 연골발생 단백질을 분해시키는 것을 포함한다.

본 발명의 치료제의 약학적으로 허용되는 염은 적절한 염기로부터 유래된 염, 예를 들어, 알칼리 금속(예를 들어, 소듐, 및 포타슘), 알칼리토금속(예를 들어, 칼슘, 및 마그네슘), 암모늄 및 NX₄ ⁺(여기서, X는 C₁-C₄ 알킬임)를 포함한다. 아미노산의 약학적으로 허용되는 염은 유기 카르복실산, 예를 들어, 타르타르산, 유기산의 지방족, 사이클로지방족, 방향족, 헤테로사이클릭산, 카르복실산 및 술폰산 부류, 예를 들어, 포름산, 글루쿠론산, 말산, 말레산, 푸마르산, 피루브산, 아스파르트산, 글루탐산, 벤조산, 안트라닐산, 메실산, 살리실산, 하이드록시벤조산, 페닐아세트산, 만델산, 엠본산(embonic acid)(파모산), 메탄술폰산, 에탄술폰산, 벤젠술폰산, 판토텐산, 톨루엔술폰산, 2-하이드록시에탄술폰산, 술파닐산, 스테아르산, 알겐산, 하이드록시부티르산, 사이클로헥실아미노술폰산, 갈락타르산 및 갈락투론산 등, 락토비온산, 푸마르산, 및 숙신산; 유기 술폰산, 예를 들어, 메타니술포산(methaniesulfolic acid), 에탄술폰산, 이소티온산, 벤제닐레술폰산(benzenylesulfonic acid) 및 p-톨루엔술폰산; 및 무기산, 예를 들어, 염산, 브롬화수소산, 요오드화수소산, 질산, 탄산, 황산, 술팜산 및 인산 등의 염을 포함한다. 하이드록시기를 갖는 화합물의 약학적으로 허용되는 염은 적합한 양이온, 예를 들어, Na⁺, NH₄ ⁺ 또는 NX₄ ⁺(여기서, X는, 예를 들어, C₁-C₄ 알킬기임), Ca⁺⁺, Li⁺, Mg⁺⁺, 또는, K⁺와 조합된 상기 화합물의 음이온 및 일차, 이차 및 삼차 아민, 사이클릭 아민, N,N'-디벤질에틸렌디아민, 클로로프로카인, 콜린, 디에탄올아민, 에틸렌디아민, 메글루민 (N-메틸글루카민) 및 프로카인 등으로부터 제조된 아연 또는 유기염으로 구성된다. 이들 염 모두는, 예를 들어, 적절한 산 또는 염기와 자유 형태의 화합물을 반응시킴으로써 상응하는 화합물로부터 통상적인 수단에 의해 제조될 수 있다.

본원에서 사용되는 용어 "근시"는 광선이 눈으로 진입하여 망막 상에 직접 집중되는 것이 아니라 망막의 앞에 집중되는 하나 이상의 눈의 굴절 이상과 관련된 질환을 나타낸다. 본원에서 사용되는 용어 "근시"는 단순 근시, 변성 근시, 및 형태 결핍 근시를 포함하나, 이에 제한되지는 않는 공지되거나 공지되지 않은 다양한 병인 및 원인의 다양한 수준(가벼운 근시, 0 내지 -3 디옵터; 중간 근시, -3 내지 -5 디옵터; 및 고도 근시, -5 또는 그 미만), 및 유형 및 하위유형의 근시를 포함한다.

본원에서 사용되는 용어 "디옵터"는 시력을 정상화시키기 위해 망막 상에 빛을 집중시키기 위해 교정 렌즈가 얼마나 많이 빛을 굴절시켜야 하는지의 측정을 포함한다. 1 미터의 초점에 평행 광선을 굴절시킬 수 있는 렌즈가 1 디옵터(1.00D)의 배율을 갖는 것으로 언급된다. 2-디옵터 렌즈는 자신으로부터 0.5 미터 떨어진 지점에 광선을 집중시킬 수 있다.

본원에서 사용되는 용어 "대상체"는 통상적으로 본원에 기재된 방법에 적용되는 인간 또는 동물을 나타낸다. 대상체는 근시 장애가 공지되어 있거나 근시 장애로 의심되는 환자일 수 있으나, 근시 장애가 공지되지 않거나 근시 장애로 의심되지 않는 대상체, 예를 들어, 연구 대상체가 또한 용어 "대상체"의 범위 내에 포함되는 것이 이해되어야 한다.

본원의 모든 수는 "약"에 의해 변형되는 것으로 이해될 수 있다.

약학적 조성물

근시를 치료하거나, 안구 연골발생 단백질을 감소시키거나, 공막 연골형성을 감소시키거나, 염증 유도 연골형성을 감소시키기 위한 약학적 조성물이 본원에 제공된다. 2개의 항-연골형성 작용제의 조합물을 포함하는 약학적 조성물은 바람직하게는 조합의 유리한 상승작용적 효과가 있다.

항-연골형성 작용제는 연골형성의 과정을 감소시키거나 늦추는 임의의 작용제이다. 한 구체예에서, 약학적 조성물 내의 항-연골형성 작용제는 NSAID이다. 또 다른 구체예에서, 약학적 조성물 내의 항-연골형성 작용제는 항무스카린제이다. 항-연골형성 작용제의 비제한적인 예는 림프구 증강인자-결합 인자-1의 발현을 조절하는 마이크로RNA, 예를 들어, miR-449a(S Paik, et al., miR-449a regulates the chondrogenesis of human mesenchymal stem cells through direct targeting of lymphoid enhancer-binding factor-1, Stem Cells Dev;21(18):3298-308, 2012), 히스톤 데아세틸라제 억제제, 예를 들어, 발프로산(FH Paradis et al., Exposure to valproic acid inhibits chondrogenesis and osteogenesis in mid-organogenesis mouse limbs, Toxicol Sci;131(1):234-41, 2013), 니코틴(Y Deng et al., Nicotine-induced retardation of chondrogenesis through down-regulation of IGF-1 signaling pathway to inhibit matrix synthesis of growth plate chondrocytes in fetal rats, Toxicol Appl Pharmacol;269(1):25-33, 2013), bFGF 또는 부갑상선 호르몬-유사 펩티드(S Weiss et al., Impact of growth factors and PTHrP on early and late chondrogenic differentiation of human mesenchymal stem cells, J Cell Physiol;223(1):84-93, 2010), 류신을 제한하는 작용제(MS Kim, Leucine restriction inhibits chondrocyte proliferation and differentiation through mechanisms both dependent and independent of mTOR signaling, Am J Physiol Endocrinol Metab;296(6):E1374-82, 2009), 17베타-에스트라디올(S. Fushimi et al., 17beta-Estradiol inhibits chondrogenesis in the skull development of zebrafish embryos, Aquat Toxicol;95(4):292-8, 2009), 베르시칸(versican)(Y Yang et a., The G3 domain of versican inhibits mesenchymal chondrogenesis via the epidermal growth factor-like motifs, J Biol Chem;273(49):33054-63, 1998), SB203580(p38MAPK의 특이적 억제제, D Kim et al., Alterations in the temporal expression and function of cadherin-7 inhibit cell migration and condensation during chondrogenesis of chick limb mesenchymal cells in vitro, J Cell Physiol; 221(1):161-70, 2009), LiCl(GSK-3베타의 억제제, D Kim et al., 2009) 등을 포함한다.

한 예시적 구체예에서, 약학적 조성물은 적어도 하나의 NSAID 및 적어도 하나의 항무스카린제를 포함한다.

특정 구체예에서, 본 발명에서 사용하기 위한 NSAID는 비-선택적 사이클로옥시게나제(COX) 억제제, 이의 유도체, 염 및 구조적 유사체, 즉, COX-1 및 COX-2 단백질 둘 모두를 억제하는 화합물일 수 있다. 비-선택적 COX 억제제의 비제한적인 예는 살리실산 유도체(예를 들어, 아스피린, 소듐 살리실레이트, 콜린 마그네슘 트리살리실레이트, 살살레이트, 디플루니살, 술파살라진 및 올살라진), 인돌 및 인덴 아세트산(예를 들어, 인도메타신 및 술린닥), 헤테로아릴 아세트산(예를 들어, 톨메틴, 디클로페낙 및 케토롤락), 아릴프로피온산(예를 들어, 이부프로펜, 나프록센, 플루르비프로펜, 케토프로펜, 페노프로펜, 및 옥사프로진), 안트라닐산(페나메이트)(예를 들어, 메페남산 및 메클로스페남산), 에놀산(예를 들어, 옥시캄, 피록시캄 및 멜록시캄) 및 알카논(예를 들어, 나부메톤)을 포함한다.

특정 구체예에서, 본 발명에서 사용하기 위한 NSAID는 선택적 COX-2 억제제, 이의 유도체, 염 및 구조적 유사체일 수 있다. 선택적 COX-오브(COX-of) 선택적 COX-2 억제제의 비제한적인 예는 디아릴-치환된 푸라논(예를 들어, 로페콕시브(rofecoxib)), 디아릴-치환된 피라졸(예를 들어, 셀레콕시브(celecoxib)), 인돌 아세트산(예를 들어, 에토돌락(etodolac)) 및 술폰아닐리드(예를 들어, 니메술리드(nimesulide))를 포함한다. 선택적 COX-2 억제제의 추가 예는 전체내용이 참조로서 포함되는 미국 특허 번호 6,440,963호 및 WO 2004/054560호에 개시되어 있다.

본 발명에서 사용하기에 바람직한 NSAID는 케토롤락, 디클로페낙, 인도메타신, 브롬페낙, 네파페낙 및 플루르비프로펜을 포함하나, 이에 제한되지는 않는다.

항무스카린제의 예는 아트로핀, 호마트로핀(Homatropine), 스코폴아민(Scopolamine), 이의 유도체, 염, 및 구조적 유사체를 포함하나, 이에 제한되지는 않는다.

항무스카린제는 흐린 시력 및 눈부심의 부작용을 야기시킬 수 있다. 이들 부작용은 요망되는 치료 효과를 달성하기 위해 하나 이상의 항-연골형성 작용제와 조합된 더 적은 투여량의 항무스카린제를 투여함으로써 극복될 수 있다. 항무스카린제(예를 들어, 아트로핀) 및 NSAID(예를 들어, 케토롤락)의 조합물을 포함하는 약학적 조성물의 관찰된 상승작용적 효과는 근시의 효과적인 치료를 발생시킬 수 있으며, 더 적은 투여량의 항-연골형성 작용제 중 하나 또는 심지어 모두는 각각의 항-연골형성 작용제가 단일요법으로 사용되는 경우 치료 효과를 갖기에 충분하지 않을 것이다.

본원에 제공된 일부 구체예의 방법에 따라 투여되는 약학적 조성물은 약학적으로 허용되는 담체와 함께 용이하게 제형화되거나, 제조되거나, 투여될 수 있다. 이러한 제조물은 다양한 기술에 의해 제조될 수 있다. 이러한 기술은 약학적 조성물의 활성 성분(예를 들어, NSAID 또는 항무스카린제)과 적절한 담체를 회합시키는 것을 포함한다. 한 구체예에서, 약학적 조성물은 약학적 조성물의 활성 성분과 액체 담체, 고체 담체 또는 액체 담체 및 고체 담체 둘 모두를 회합시킴으로써 제조된다.

약학적 조성물은 음이온성, 중성 또는 양이온성 다당류 및 음이온성, 중성, 양이온성 중합체 또는 공중합체, 조성물 전달을 필요로 하는 곳 근처에 이식되는 미니펌프 또는 중합체를 포함하는 약학적 조성물의 지속된 방출을 가능케 하는 다양한 자연 또는 합성 중합체와 함께 크림, 젤, 리포솜(중성, 음이온성 또는 양이온성), 지질 나노구 또는 미세구, 중성, 음이온성 또는 양이온성 중합체 나노입자 또는 미세입자, 부위-특이적 에멀젼, 장기-체류 에멀젼, 점착성-에멀젼, 마이크로-에멀젼, 나노-에멀젼, 미세구, 나노구, 나노입자 및 미니펌프를 포함하나, 이에 제한되지는 않는 수성 현탁액, 오일 에멀젼, 유중수 에멀젼 및 수중유중수 에멀젼, 및 담체로 투여된다. 본원에 제공된 약학적 조성물은 임의로 항산화제, 완충제, 정균제, 현탁제, 증점제, 보존제, 공용매 및 점도 형성 작용제 또는 다른 치료 성분을 포함할 수 있다. 담체 및 다른 치료 성분은 조성물의 다른 성분과 상용되고, 이의 수용자에게 해롭지 않은 의미에서 허용되어야 한다. 안과용 제조물에 대해 적합한 보존제는 벤즈알코늄 클로라이드, 티메로살, 클로로부탄올, 메틸 파라벤, 프로필 파라벤, 페닐에틸 알콜, 에데테이트 디소듐, 소르브산, Onamer M, 또는 당업자에게 공지된 다른 작용제를 포함한다. 한 구체예에서, 보존제는 0.004% 내지 0.02%의 수준으로 이용된다.

비수성 담체에서의 투여를 위해, 본원에 제공된 약학적 조성물의 활성 성분은 무기질유 또는 중성 오일, 비제한적인 예로, 디글리세라이드, 트리글리세라이드, 인지질, 지질, 오일 및 이들의 혼합물로 유화되며, 여기서 오일은 다중불포화된 지방산 및 포화된 지방산의 적절한 혼합물을 함유한다. 예는 대두유, 카놀라유, 팜유, 올리브유 및 미글리올을 포함하나, 이에 제한되지는 않으며, 여기서 지방산 탄소의 수는 12 내지 22이고, 지방산은 포화 또는 불포화 지방산일 수 있다. 임의로, 하전된 지질 또는 인지질은 중성 오일에 현탁된다. 적합한 인지질은 대식세포 상의 수용체를 표적으로 하는 포스파티딜세린이나, 이에 제한되지는 않는다. 본원에 제공된 약학적 조성물은 임의로 공지된 기술을 이용하여 수성 매질 중 또는 에멀젼으로서 제형화된다.

약학적 조성물은 근시를 갖는 인간을 포함하는 동물에서 안구 연골발생 단백질을 감소시키거나, 공막 연골형성을 감소시키거나, 염증 유도 연골형성을 감소시키거나, 치료 반응을 유도시키는데 효과적인 양으로 투여된다. 투여되는 약학적 조성물의 투여량은 치료되는 질환의 중증도, 특정 제형, 및 다른 임상적 요인, 예를 들어, 수용자의 체중 및 전반적 상태 및 투여 경로에 좌우될 것이다. 한 예시적 구체예에서, 투여되는 약학적 조성물의 양은 약 0.001 중량% 내지 약 1 중량%의 아트로핀에 해당한다. 또 다른 예시적 구체예에서, 투여되는 약학적 조성물의 양은 약 0.005 중량%, 0.01 중량%, 0.015 중량%, 0.02 중량%, 0.025 중량%, 0.03 중량%, 0.035 중량%, 0.04 중량%, 0.045 중량%, 0.05 중량%, 0.055 중량%, 0.06 중량%, 0.065 중량%, 0.07 중량%, 0.075 중량%, 0.08 중량%, 0.085 중량%, 0.09 중량%, 0.095 중량%, 0.1 중량%의 아트로핀, 또는 0.001 중량% 증분의 0.001 중량% 내지 1 중량% 사이의 임의의 중량%에 해당한다. 또 다른 예시적 구체예에서, 투여되는 약학적 조성물의 양은 약 0.05 중량% 내지 약 1 중량%의 케토롤락에 해당한다. 또 다른 예시적 구체예에서, 투여되는 약학적 조성물의 양은 약 0.1 중량%, 0.2 중량%, 0.25 중량%, 0.3 중량%, 0.35 중량%, 0.4 중량%, 0.45 중량%, 0.5 중량%, 0.55 중량%, 0.6 중량%, 0.65 중량%, 0.7 중량%, 0.75 중량%, 0.8 중량%, 0.85 중량%, 0.9 중량%, 0.95 중량%의 케토롤락, 또는 0.01 중량% 증분의 상기 범위 사이의 임의의 중량 %에 해당한다. 또 다른 예시적 구체예에서, 투여되는 약학적 조성물의 양은 약 0.5 중량%의 케토롤락에 해당한다. 또 다른 예시적 구체예에서, 투여되는 약학적 조성물의 양은 약 0.01 중량%, 0.025 중량%, 0.05 중량%, 0.1 중량%, 0.15 중량% 내지 약 0.2 중량%의 디클로페낙 또는 0.01 중량% 증분의 상기 범위 사이의 임의의 중량 %에 해당한다. 본원에 제공되는 약학적 조성물의 유용한 투여량은 이들의 시험관내 활성, 및 동물 모델에서의 생체내 활성을 비교함으로써 결정된다. 마우스, 및 다른 동물에서의 효과적인 투여량의 인간으로의 외삽을 위한 방법은 당 분야에 공지되어 있으며, 예를 들어, 본원에 참조로서 포함되는 미국 특허 번호 4,938,949호를 참조하라.

본원에 제공된 방법에 따르면, 약학적 조성물은 주사(예를 들어, 피하, 근내, 정맥내, 동맥내, 복막내, 피내, 유리체내); 피부; 진피; 경피; 경구(예를 들어, 정제, 환약, 액체 약물, 식용 필름 스트립); 이식된 삼투 펌프; 좌약, 에어로졸 스프레이, 국소, 관절내, 안구, 비내 흡입, 폐 흡입, 피부로의 임프레션(impression) 및 전기천공을 포함하나, 이에 제한되지는 않는 다양한 경로 중 임의의 경로에 의해 전달된다. 한 구체예에서, 본 발명의 약학적 조성물은 적합한 안과용 비히클 중 용액으로 투여될 수 있다.

국소 안구 투여를 위한 약학적 조성물을 형성시키는데 있어서, 조합물은 4.5 내지 8.0, 예를 들어, 약 6.9의 pH의 물 중 0.001 중량% 내지 약 0.005 중량%의 아트로핀 및 0.1 중량% 내지 약 0.5 중량%의 케토롤락 용액을 포함한다. 용액은 하루에 1회 병에 걸린 눈에 하나의 점적을 배치함으로써 국적으로 적용되는 것이 권장된다.

약학적 조성물은 치료되는 질환에 적절한 기간에 걸쳐 단일 용량 처리 또는 다중 용량 처리로 투여될 수 있다. 약학적 조성물은 편리하게는 적절한 간격, 예를 들어, 적어도 3개월, 적어도 1년의 기간에 걸쳐 또는 근시의 증상 및 징후가 해소될 때까지 하루에 1회, 하루에 2회, 하루에 3회, 격일에 1회, 3일에 1회 또는 매주 1회로 투여될 수 있다.

공막 연골형성을 감소시키기 위한 방법

안구 연골발생 단백질 및/또는 안구 염증 마커의 하향조절은 공막 연골형성을 감소시킨다.

한 구체예에서, 본원에 기재된 유효량의 하나 이상의 항-연골형성 작용제 또는 약학적 조성물의 사용은 하나 이상의 안구 연골발생 단백질의 양을 변경시키거나 감소시키는 것을 필요로 하는 대상체에서 하나 이상의 안구 연골발생 단백질의 양을 변경시키거나 감소시킬 수 있다.

안구 연골발생 단백질의 한 예는 TGF-β이다. 한 구체예에서, TGF-β 단백질은 TGF-β1, TGF-β2 및 TGF-β3로 구성된 군으로부터 선택되며, 이들 모두는 맥락막 내에 주로 위치된다. 안구 연골발생 단백질의 또 다른 예는 α-SMA이다. 안구 연골발생 단백질의 또 다른 예는 Col2이다. α-SMA 및 Col2 둘 모두는 공막에 주로 위치된다.

또 다른 구체예에서, 본 발명은 염증 유도 연골형성을 감소시킬 필요가 있는 대상체에서 염증 유도 연골형성을 감소시키기 위한 본원에 기재된 유효량의 하나 이상의 항-연골형성 작용제 또는 약학적 조성물의 용도를 제공한다. 공막 연골형성을 유도하는 것을 담당하는 염증 마커는 IL-6 및 TNF-α를 포함하나, 이에 제한되지는 않는다.

또 다른 구체예에서, 본 발명은 공막 연골형성을 감소시킬 필요가 있는 대상체에서 공막 연골형성을 감소시키기 위한 본원에 기재된 유효량의 하나 이상의 항-연골형성 작용제 또는 약학적 조성물의 용도를 제공한다.

항-연골형성 작용제는 동시에 또는 동시적이지 않게 투여될 수 있다.

근시를 치료하거나 근시의 중증도를 감소시키기 위한 방법

임의의 특정 이론으로 제한하고자 하는 것은 아니지만, 안구 염증 마커 및 안구 연골발생 단백질, 예를 들어, TGF-β,α-SMA 및 Col2의 발현 프로파일이 공막 연골형성 및 근시와 관련된 것으로 생각되었다. 도 1은, 비제한적으로, 근시의 발달에 대한 메커니즘을 예시하며, 맥락막에서의 TGF-β 및 염증 마커(예를 들어, IL-6 및 TNF-α)의 수준 증가는 공막에서의 α-SMA 및 Col2의 형성 및 공막 연골형성을 발생시킨다. 이후, 공막은 재형성 및 연장 후, 근시의 발생을 겪는다.

본 발명은 근시 치료를 필요로 하는 근시 대상체에 본원에 기재된 유효량의 하나 이상의 항-연골형성 작용제 또는 약학적 조성물을 투여함으로써 근시를 치료하거나 근시의 중증도를 감소시키는 방법을 제공한다. 항-연골형성 작용제는 동시에 또는 동시적이지 않게 투여될 수 있다. 상기 방법은 또한 대상체에서 근시를 치료하거나 근시의 진행을 억제하는 시험관내 및 생체내 방법을 포함하는 연구 방법 및 용도를 포함한다.

한 구체예에서, 근시를 치료하는 방법은 항무스카린제에 대해 부작용을 나타내는 근시 대상체를 확인하고, 항무스카린제 없이 또는 적은 용량의 항무스카린제(예를 들어, 0.05%의 아트로핀)와 함께 유효량의 NSAID를 상기 대상체에 처리하는 것을 포함한다.

본 발명의 구체예는 하기 실시예에 의해 예시되며, 이러한 실시예는 어떠한 방식으로든 이의 범위에 제한을 두는 것으로 해석되어선 안된다. 하기 실시예에 기재된 연구 동안, 달리 언급하지 않는 한 통상적인 절차를 따랐다. 상기 절차 중 일부는 예시 목적을 위해 하기에 기재된다.

실시예에서 사용되는 물질 및 방법의 설명

마우스: 실시예에서 수컷 야생형 C57BL/6 마우스(Jackson Labs)를 사용하였다. 모든 절차를 의료시설 IACUC 승인 프로토콜 뿐만 아니라 안과 및 시력 연구에서 동물에서 사용하기 위한 ARVO 성명에 따라 수행하였다.

공막 줄기/전구 세포( SSPC ) 분리 및 배양: SSPC를 문헌[CL Tsai et al. (Identification of multipotent stem/progenitor cells in murine sclera. Invest Ophthalmol Vis Sci 52:5481-5487, 2011)]에 의해 이전에 기재된 바와 같이 분리시키고 배양하였다. 요컨대, 마우스로부터의 공막을 수득하고, 해부현미경 아래에서 가장자리 및 시신경유두로부터 조심스럽게 절개하였다. 망막 및 맥락막 조직을 제거한 후, 공막 조직을 작은 단편으로 절단하고, 37℃에서 1시간 동안 PBS 중 1.5 mg/ml의 콜라게나제 타입 I(Worthington Biochemical, Lakewood, USA) 및 2 mg/ml의 디스파제(Roche, Basel, Switzerland)로 분해시켜 개별적 세포를 방출시켰다. 개별적 세포를 5% CO₂, 37℃에서 8 내지 10일 동안 20% 로트(lot)-선택 FBS(Equitech-Bio, Kerrville, USA), 글루타민, 페니실린/스트렙토마이신 및 100 mM 2-머캅토에탄올(Invitrogen)이 보충된 α-MEM(Invitrogen, Carlsbad, USA)에서 배양하였다.

TGF -β 처리: 다양한 농도의 TGF-β2를 SSPC의 12-웰에 첨가하였다. 24시간 후, SSPC 형태의 이미지를 기록하였다. 전체 RNA를 추가 분석을 위해 추출하였다. 면역형광 연구를 위한 챔버 슬라이드 배양을 동일 조건하에서 수행하였다.

연골발생 분화의 유도. 세미컨플루언스(semiconfluence)에서, SSPC에 트립신 처리하고, 계수하여 2 ml 성장 배지 중 2×10⁵개의 세포의 분취액을 만들고, 이를 10분 동안 500g에서 스핀 다운(spin down)시켜, 펠렛을 수득하였다. 펠렛을 5% CO2 하에서 37℃에서 인큐베이션하였다. 인큐베이션 12-24시간 이내에, 세포는 튜브의 벽에 부착하지 않은 본질적으로 구형 응집물을 형성하였다. 배양 배지에 10 ng/ml의 TGF-β2를 첨가하고, 배지를 2 내지 3일 간격으로 교환하였다. 이후, 펠렛을 4주에서 수거하였다. 이후, 이들을 PBS로 2회 세척하고, 실온에서 3시간 동안 4% 파라포름알데하이드에서 고정시키고, 파라핀 포매를 위해 준비하였다. 면역조직화학을 위해 8 ㎛ 두께의 섹션을 수득하였다.

면역조직화학 및 면역형광 연구: 연골형성 동안 α-SMA 단백질 및 Col2의 존재를 입증하기 위해 면역조직화학 및 면역형광 연구를 수행하였다. 면역조직화학을 위해, 파라핀 섹션을 30분 동안 20% 블로킹 염소 혈청으로 처리한 후, 밤새 4℃에서 1:200 희석액의 토끼 IgG 항-SMA mAb(Abcam, Temecula, CA) 및 1:100 희석액의 마우스 IgG2a 항-타입 II 콜라겐 mAbb(Abcam, Temecula, CA)인 일차 항체와 함께 인큐베이션하였다. 이후, 섹션을 1시간 동안 1:200의 호스라디쉬 퍼옥시다제(HRP)-컨쥬게이션된 이차 항체(Santa Cruz Biotechnology, Santa Cruz, CA)로 처리하였다. 이후, 면역활성을 검출하기 위해 DAB 시약(디아미노벤지딘 테트라하이드로클로라이드)을 이용하였다. 면역형광을 위해, 냉동미세절단기 섹션 및 재수화된 파라핀 섹션에 블로킹 혈청을 처리하고, 일차 항체와 함께 인큐베이션시키고, 해당하는 플루오레세인-이소티오시아네이트-컨쥬게이션된 이차 항체와 반응시키고, 최종적으로 형광현미경검사법에 의해 평가하였다.

실시간 PCR : 각각의 눈의 SSPC 또는 맥락막 조직으로부터의 전체 RNA를 제조업체의 프로토콜에 따라 Trizol(Invitrogen, Carlsbad, CA)을 이용하여 분리시켰다. qRT-PCR 분석을 제조업체의 설명서에 따라 ABI PRISM 7900 HT 서열 검출 시스템(Applied Biosystems, Foster City, USA)에서 SYBR Green을 이용한 iScript 1-단계 RT-PCR 키트(Bio-Rad, Hercules, USA)를 이용하여 수행하였다. 실험에 사용된 프라이머는 다음과 같았다: α- SMA (정방향 프라이머: 5'-ATGCCTCTGGACGTACAACTG-3', 역방향 프라이머: 5'-CGGCAGTAGTCACGAAGGAAT-3'), Col2 (정방향 프라이머: 5'-GTCCTTCTGGCCCTAGAGGT-3', 역방향 프라이머: 5'-TGTTTCTCCTGAGCGTCCA-3'), β- 액틴 (정방향 프라이머: 5'-CATTGCTGACAGGATGCAGA-3', 역방향 프라이머: 5'-CTGATCCACATCTGCTGGAA-3'), 및 글리세르알데하이드 3-포스페이트 데하이드로게나제(GAPDH) (정방향 프라이머: 5'-AACTTTGGCATTGTGGAAGG-3', 역방향 프라이머: 5'-ACACATTGGGGGTAGGAACA-3'). GAPDH 및 β- 액틴을 대조군으로 제공하였다. 대조군 유전자의 Ct 값을 α- SMA 및 Col2의 Ct 값으로부터 공제하여 반정량적 분석을 제공하고, 비처리에 비한 배수 변화를 평가하였다.

마우스의 결핍 근시. 실험일(생후일 [P] 21~24)에, C57BL/6J 마우스를 케타민(90 mg/kg) 및 자일라진(10 mg/kg)의 복막내 주사에 의해 마취시키고, 디퓨져(diffuser) 안대를 우측 눈 주위 피부에 봉합시킨 반면, 좌측 눈을 대조군으로 제공하였다. 반구의 플라스틱 디퓨져 안대를 0.5-mL PCR 플라스틱 튜브의 캡으로부터 제조하였다. 마우스를 회복시키고, 이들이 완전히 움직일때까지 가온 패드 상에서 모니터하였다. 결핍 근시 마우스를 21일 동안 12시간의 빛(200 ± 15 럭스 수평면 조도) 및 12시간의 어둠하에서 투명 플라스틱 우리에서 사육하였다. 형태 결핍 근시 유도 전 및 후에 안구 생체계측 측정을 위해 스펙트럼-영역 빛 간섭 단층촬영을 이용하였다.

웨스턴 블롯 분석: 공막으로부터의 전체 단백질을 RIPA 단백질 추출 완충액을 이용하여 추출하였다. 공막 조직의 균질화 후, 샘플을 원심분리시키고, 상층액을 수거하였다. 각각의 샘플의 단백질 농도를 BCA^TM 단백질 검정 키트(Bio-Rad)를 이용하여 측정하였다. 공막 단백질 샘플을 10% SDS-PAGE 젤 상에서 표준화시키고 전기영동시킨 후, 1시간 동안 21 V에서 폴리비닐리덴 플루오라이드 전달 막(Immun-Blot PVDF Membrane, BIO-RAD)으로 옮겼다. 막을 0.1% Tween을 갖는 PBS 중에서 5% 분유를 이용하여 실온에서 1시간 동안 블로킹시키고, 일차 항체와 함께 밤새 4℃에서 인큐베이션하였다. 막을 세척하고, 실온에서 1시간 동안 호스라디쉬 퍼옥시다제에 컨쥬게이션된 1:10,000 염소 항-마우스 또는 항-토끼 IgG 항체(Santa Cruz)와 함께 인큐베이션시키고, 다시 세척하였다. 막을 시약 Lumigen TMA-6(GE Healthcare UK limited, Buckinghumshire, UK)을 이용한 화학발광에 의해 발달시키고, 이미지를 LAS-4000 영상화 시스템(Fujifilm, Tokyo, Japan)을 이용하여 포착하였다. 단백질 밴드를 ImageJ 소프트웨어를 이용하여 정량하였다.

통계 분석:

시험관내 연구를 위해, 본페로니 사후 검정(Bonferroni post hoc test)을 이용한 ANOVA 검정에 의해 통계적 유의성을 계산하였다. 생체내 연구를 위해, 분산의 분석(대응표본 t-검정)에 의해 통계적 유의성을 계산하였다. 통계적 유의성은 0.05 미만의 p 값으로 정의되었다.

실시예

실시예 1: TGF -β 처리 후의 SSPC 형태 변화

TGF-β 처리 후의 SSPC 형태 변화의 시험관내 연구를 수행하였다. SSPC를 이전에 기재된 바와 같이 24시간 동안 TGF-β2 처리(0.1-10 ng/ml)와 함께 인큐베이션하였다. 현미경검사 연구는 TGF-β2 처리 없이 또는 적은 농도의 TGF-β2 처리(0.1ng/ml)에서 많은 SSPC가 얇은 방추 형태를 갖고, 넓어진 표현형을 나타낸 것을 나타낸다. 또한, SSPC의 세포골격 미세섬유는 현저하지 않았다. 더 높은 농도의 TGF-β2(1 내지 10 ng/ml)에 대한 노출 후, SSPC는 현저한 세포골격 미세섬유와 함께 광범위해진다. 면역형광 현미경검사는 10 ng/ml의 TGF-β2를 이용한 처리 후에 증가된 수의 α-SMA 양성 SSPC(현저한 세포내 α-SMA 미세섬유 염색을 가짐)를 나타내었다.

실시예 2: α- SMA 및 Col2 발현에 대한 TGF -β 처리의 효과

α-SMA 및 Col2 발현에 대한 TGF-β 처리의 효과의 시험관내 연구를 SSPC 및 SSPC의 3-D 펠렛을 이용하여 수행하였다. 이전에 기재된 바와 같이 SSPC 및 SSPC의 3-D 펠렛에 다양한 농도의 TGF-β2를 처리하였다.

24시간 동안 0.1 내지 10 ng/ml의 TGF-β2 처리 후의 α- SMA 및 Col2 유전자 발현에서의 임의의 변화가 있었는지의 여부를 결정하기 위해 전체 mRNA를 분석하였다. 도 2는 용량 의존 방식의 정량적 실시간-PCR 분석을 이용하여 TGF-β2 처리 후에 α- SMA 및 Col2 유전자 발현에서 통계적으로 유의한 증가가 존재함을 나타낸다(각각, p<0.0001 및 =0.011).

SSPC 펠렛을 4주 동안 대조군 배지 및 10ng/ml의 TGF-β2(TM-펠렛)을 함유하는 배지에서 배양하였다. 조직학적 분석은 대부분의 SSPC가 TM-펠렛 내의 중심 기질 조직을 둘러싼 중간주변 및 주변 영역 내에 위치된 것을 나타내었다. 면역조직화학 분석은 Col2가 TM-펠렛의 국소적 중간주변 영역에서 발현된 반면, α-SMA 발현은 TM-펠렛 내, 특히 중간주변 영역 및 주변 영역에서 더욱 광범위한 것을 나타내었다. 대조적으로, Col2 및 α-SMA 발현은 대조군 그룹에서 더 적었다.

실시예 3: FDM 마우스의 공막에서의 Col2 및 α- SMA의 발현

공막에서의 Col2 및 α-SMA의 발현을 평가하는 생체내 연구를 FDM 마우스를 이용하여 평가하였다. 이전에 기재된 바와 같이 마우스의 우측 눈에서 FDM을 유도하였고, 좌측 눈을 대조군으로 제공하였다. 안구길이에서의 각각의 마우스의 2개의 눈 사이의 차이는 시작시에 유의하지 않았다(p=0.378). 21일까지, 형태 결핍 눈은 반대쪽 대조군 눈(3015±40㎛, p<0.001)보다 유의하게 긴 3055±39㎛의 안구길이를 갖는 근시를 가졌다.

도 3은 시각박탈 21일 후에, 웨스턴 블롯 분석을 이용하여 FDM 눈의 공막에서 Col2 및 α-SMA의 발현이 더 높은 것을 나타낸다. 도 3A 및 3B는 FDM 눈에서의 Col2 및 α-SMA의 발현이 동일 마우스의 반대쪽 대조군 눈보다 유의하게 높은 것을 나타낸다(Col2에 대해 P=0.021 및 α-SMA에 대해 p=0.042). 면역염색은 Col2 발현이 대조군 눈에서보다 FDM 눈의 공막 영역에서 더 높은 반면, α-SMA 발현이 대조군 눈과 비교하여 FDM 눈의 공막(맥락막 측면에 가까움) 및 맥락막 영역에서 더 큰 것을 나타낸다.

실시예 4: FDM 마우스의 맥락막에서의 TGF -β mRNA 수준의 발현

맥락막에서 TGF-β의 발현을 평가하는 생체내 연구를 FDM 마우스를 이용하여 수행하였다. FDM을 이전에 기재된 바와 같이 마우스에서 유도하였다.

FDM 마우스의 맥락막에서의 TGF-β1, TGF-β2 및 TGF-β3 mRNA의 상대 발현은 반대쪽 대조군 맥락막보다 유의하게 높았다(각각 2.98, 4.44 및 3.86 배수 변화, p=0.042, 0.045 및 0.041, 도 4).

실시예 5: Col2 및 α- SMA 발현에 대한 항무스카린제 및 NSAID의 효과

Col2 및 α-SMA 발현에 대한 항무스카린제 및 NSAID의 효과를 시험하는 시험관내 연구를 인간 SSPC를 이용하여 수행하였다. SSPC에 이전에 기재된 바와 같이 TGF-β2(10ng/ml)의 존재하에서 1mM의 아트로핀, 5mM의 케토롤락 및 1mM의 디클로페낙을 처리하였다.

도 5A 및 5B는 Col2 및 α-SMA의 발현이 TGF-β2의 존재하에서 아트로핀, 케토롤락 및 디클로페낙에 의해 억제된 것을 나타낸다.

실시예 6: 항무스카린제 및 NSAID를 포함하는 약학적 조성물을 이용한 근시 대상체 처리

아트로핀 및 아트로핀 및 케토롤락을 포함하는 약학적 조성물을 이용한 11명의 근시 환자의 임상 연구를 수행하였다.

11명의 근시 환자에 1년에 적어도 1회 아트로핀 처리를 제공하였으며, 아트로핀의 용량은 단위 용량(약 0.05 내지 0.5ml) 당 0.005 중량% 내지 1 중량%의 아트로핀 범위였다. 각각의 병에 걸린 눈에 밤에 1 점적(약 0.05 내지 0.5ml)의 아트로핀 안과 용액을 제공하였다. 아트로핀 처리 동안, 상기 11명의 근시 환자에 대한 평균 근시 진행 속도는 연간 -0.9 디옵터였다.

이후, 이들 11명의 근시 환자에게 적어도 3개월 동안 아트로핀 및 케토롤락을 포함하는 약학적 조성물을 제공하였다. 아트로핀의 용량은 단위 용량(약 0.05 내지 0.5ml) 당 약 0.005 중량% 내지 약 1 중량%의 아트로핀 범위였고, 케토롤락의 용량은 단위 용량(0.5ml) 당 약 0.25 중량% 내지 약 0.5 중량%의 케토롤락 범위였다. 각각의 병에 걸린 눈에 밤에 1 점적(약 0.05 내지 0.5ml)의 조합된 아트로핀과 케토롤락의 안과 용액을 제공하였다. 조합된 아트로핀과 케토롤락 처리 동안, 상기 11명의 근시 환자에 대한 평균 근시 진행 속도는 연간 -0.38 디옵터로 감소하였다(도 6).

실시예 7: NSAID를 이용한 근시 대상체의 처리

근시 환자는 아트로핀의 부작용을 견딜 수 없었으며, 근시를 치료하기 위해 NSAID를 제공하였다. 케토롤락의 용량은 단위 용량(약 0.05 내지 0.5ml) 당 약 0.5 중량%의 케토롤락이었고, 병에 걸린 눈에 밤에 1 점적(약 0.05 내지 0.5ml)의 케토롤락 안과 용액을 제공하였다.

상기 환자에 대한 평균 근시 진행 속도는 우측 눈에서 연간 -0.78 디옵터였고, 어떠한 처리도 없는 좌측 눈에서 연간 -0.91 디옵터였다. NSAID 처리 3개월 후, 둘 모두의 눈에서 근시 진행이 없었다(도 7).

실시예 8: FDM 마우스의 맥락막에서의 염증 마커의 발현

맥락막에서의 염증 마커의 발현을 평가하는 생체내 연구를 FDM 마우스를 이용하여 평가하였다. FDM을 이전에 기재된 바와 같이 마우스의 우측 눈에서 유도하였고, 좌측 눈을 대조군으로 제공하였다.

도 8A는 FDM 눈의 맥락막에서의 실시간 PCR에 의한 IL-6의 수준이 대조군 눈에서보다 높은 것을 나타낸다. 도 8b는 FDM 눈의 맥락막에서의 실시간 PCR에 의한 TNF-α의 수준이 대조군 눈에서보다 높은 것을 나타낸다. TNF-α의 수준은 FDM 눈에 하루에 1회 하나의 케토롤락 점안약을 투여함으로써 억제되었다.

실시예 9: α- SMA 및 Col2를 감소시킨 아트로핀 및 케토롤락을 포함하는 약학적 조성물을 이용한 SSPC의 처리

α-SMA 및 Col2 발현에 대한 아트로핀 및 케토롤락을 포함하는 약학적 조성물의 효과의 시험관내 연구를 SSPC를 이용하여 수행하였다. SSPC에 이전에 기재된 바와 같이 10 ng/ml의 TGF-β2를 처리하였다.

도 9A는 α-SMA의 발현이 TGF-β2(T2)의 존재하에서 증가하였으나, TGF-β2의 존재하에서 0.5mM의 아트로핀(A), 0.25mM의 케토롤락(X1), 및 아트로핀 및 케토롤락을 포함하는 약학적 조성물을 이용하여 감소한 것을 나타낸다.

도 9B는 Col2의 발현이 TGF-β2(T2)의 존재하에서 증가하였으나, TGF-β2의 존재하에서 0.5mM의 아트로핀(A), 0.25mM의 케토롤락(X1), 및 아트로핀 및 케토롤락을 포함하는 약학적 조성물을 이용하여 감소한 것을 나타낸다.

결과는 아트로핀 및 케토롤락을 포함하는 약학적 조성물이 α-SMA 및 Col2 감소에 있어서 상승작용적 효과를 갖는 것을 나타낸다.

Claims (18)

1. 2개의 항-연골형성 작용제를 포함하는 약학적 조성물.
2. 제 1항에 있어서, 항-연골형성 작용제가 항무스카린제인 약학적 조성물.
3. 제 2항에 있어서, 항무스카린제가 아트로핀인 약학적 조성물.
4. 제 2항에 있어서, 항무스카린제가 약 0.001 중량% 내지 약 1 중량%의 아트로핀을 포함하는 약학적 조성물.
5. 제 2항에 있어서, 항무스카린제가 약 0.005 중량% 내지 약 0.05 중량%의 아트로핀을 포함하는 약학적 조성물.
6. 제 1항에 있어서, 항-연골형성 작용제가 비-스테로이드성 항-염증 약물(NSAID)인 약학적 조성물.
7. 제 6항에 있어서, NSAID가 케토롤락(Ketorolac), 디클로페낙(Diclofenac), 인도메타신(Indomethacin), 브롬페낙(Bromfenac), 네파페낙(Nepafenac), 플루르비프로펜(Flurbiprofen), 또는 이들의 조합물로부터 선택되는 약학적 조성물.
8. 제 6항에 있어서, NSAID가 약 0.05 중량% 내지 약 1 중량%의 케토롤락을 포함하는 약학적 조성물.
9. 제 6항에 있어서, NSAID가 약 0.01 중량% 내지 약 0.2 중량%의 디클로페낙을 포함하는 약학적 조성물.
10. 유효량의 하나 이상의 항-연골형성 작용제를 근시 대상체에 투여하는 것을 포함하는 근시를 치료하는 방법.
11. 제 10항에 있어서, 항-연골형성 작용제가 NSAID인 방법.
12. 제 11항에 있어서, NSAID가 케토롤락, 디클로페낙, 인도메타신, 브롬페낙, 네파페낙, 플루르비프로펜, 또는 이들의 조합물로부터 선택되는 방법.
13. 제 11항에 있어서, NSAID가 약 0.05 중량% 내지 약 1 중량%의 케토롤락을 포함하는 방법.
14. 제 11항에 있어서, NSAID가 약 0.01 중량% 내지 약 0.2 중량%의 디클로페낙을 포함하는 방법.
15. 제 10항에 있어서, 항-연골형성 작용제가 항무스카린제인 방법.
16. 제 15항에 있어서, 항무스카린제가 아트로핀인 방법.
17. 제 15항에 있어서, 항무스카린제가 약 0.001 중량% 내지 약 1 중량%의 아트로핀을 포함하는 방법.
18. 제 15항에 있어서, 항무스카린제가 약 0.005 중량% 내지 약 0.05 중량%의 아트로핀을 포함하는 방법.

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