본 발명의 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 서열번호 1 내지 10 중 어느 하나의 염기서열로 이루어진 인삼(Panax ginseng)과 화기삼(Panax quinquefolius) 을 구별하기 위한 마커를 제공한다. 상기 마커는 구체적으로는 서열번호 1 내지 5, 7 내지 10의 염기서열로 이루어진 SNP(single nucleotide polymorphism) 마커 및 서열번호 5 및 6의 염기서열로 이루어진 InDel(insertion and deletion) 마커로 이루어진다 (도 1 참고).
본 명세서에서, '인삼'은 특별한 언급이 없는 한, 고려인삼(Panax ginseng)을 말한다.
본 발명은 고려인삼과 화기삼 간의 유전적인 차이를 확인할 수 있는 DNA 마커의 개발에 관한 것으로서, DNA 마커를 개발하기 위하여 인삼 시료를 수집하고 엽록체 DNA를 추출하여 이미 완전히 해독된 인삼 엽록체 게놈 염기서열에 기반하여 제작한 프라이머를 이용하여 증폭시키고, 이후 분자생물학적인 방법을 통해 고려인삼과 화기삼 엽록체 DNA의 다형성(polymorphism)을 분석하여 실제 눈으로 확인할 수 있는 종간의 차이점을 발견하였다.
식물의 엽록체 게놈은 한 개의 세포에 동일한 엽록체 게놈이 수백 개 이상 존재하기 때문에 핵 게놈에 비해 상대적으로 분석이 용이하고, 양친 유전자간의 교잡 없이 모계 유전을 통해서만 후대로 전이되어 종내 변이가 거의 없기 때문에 특정 종 혹은 동일 종내 특정 계통을 구분하는 마커로서 가장 신뢰할 수 있으면서도 신속하게 분석할 수 있는 마커이다.
인삼 엽록체 게놈은 2004년 김 등에 의해 이미 그 염기서열이 완전히 해독되었는데, 본 발명에서는 알려진 엽록체 게놈의 정보를 이용하여 인삼과 화기삼을 포함하는 다른 근연종을 구분할 수 있는 종 특이 변이를 탐색하여 마커를 개발하고자 하였다. 이러한 유전적 변이는 생명현상에 필수적인 유전자(gene) 지역보다는 유전자와 유전자 사이에 해당하는 유전자간 부위(intergenic region)에서 더욱 빈번하게 발생하는 것으로 알려져 있고, 이러한 중간 지역에서의 변이가 최근에 여러 가지 생명현상에 직간접적인 영향을 끼치는 것으로 확인되고 있기 때문에 이 지역에서 나타나는 다형성에 대한 연구는 앞으로의 유전자의 기능을 밝히는 연구에 큰 도움이 될 것이다. 본 발명 역시 이러한 이론적인 배경을 토대로 실시되었으며, 본질적으로 품종간의 정확한 판별 방법 개발이 요구되는 고려인삼과 화기삼의 식별에 대해서 엽록체 게놈 내 유전자간 부위를 이용한 마커를 개발하여 활용하고자 수행되었다.
총 10개의 프라이머 지역에서 11개의 다형성을 확인하였다. 대부분 다형성의 형태는 SNP(single nucleotide polymorphism)였고 InDel(insertion and deletion)은 두 곳의 마커 지역에서 나타났다. 엽록체 게놈상의 rbcL 내지 accD 지역에서는 특이적으로 두 개의 다형성이 발견되었다 (서열번호 5). 고려인삼과 화기삼의 구별을 위해 제작된 프라이머와 이를 이용해서 밝혀낸 마커는 표 1과 표 2에 나타내었다.
하기 표 1은 인삼 엽록체 게놈상의 DNA 마커를 나타낸다. 적색 부분은 유전적 다형성(polymorphism)을 나타내고, 황색 부분은 마커의 증폭을 위해 사용한 프라이머를 표시한다.
표 1. 인삼 엽록체 게놈상의 DNA 마커
상기 표 1에서 알 수 있는 바와 같이, 서열번호 1의 SNP 마커는 서열 내의 적색으로 표시된 부분에서 인삼은 T인 반면, 화기삼은 C이며, 서열번호 2의 SNP 마커는 서열 내의 적색으로 표시된 부분에서 인삼은 TT인 반면, 화기삼은 GA이며, 서열번호 3의 SNP 마커는 서열 내의 적색으로 표시된 부분에서 인삼은 A인 반면, 화기삼은 C이며, 서열번호 4의 SNP 마커는 서열 내의 적색으로 표시된 부분에서 인삼은 T인 반면, 화기삼은 C이며, 서열번호 5의 SNP 마커는 서열 내의 적색으로 표시된 부분에서 인삼은 A인 반면, 화기삼은 C이며, 서열번호 7의 SNP 마커는 서열 내의 적색으로 표시된 부분에서 인삼은 A인 반면, 화기삼은 C이며, 서열번호 8의 SNP 마커는 서열 내의 적색으로 표시된 부분에서 인삼은 G인 반면, 화기삼은 C이며, 서열번호 9의 SNP 마커는 서열 내의 적색으로 표시된 부분에서 인삼은 G인 반면, 화 기삼은 T이며, 서열번호 10의 SNP 마커는 서열 내의 적색으로 표시된 부분에서 인삼은 G인 반면, 화기삼은 A이다.
서열번호 5의 InDel(insertion and deletion) 마커는 서열 내의 적색으로 표시된 부분에서 인삼은 GTTGGAAT가 존재하는 반면, 화기삼은 상기 8bp 서열이 삭제되어 있으며, 서열번호 6의 InDel 마커는 서열 내의 적색으로 표시된 부분에서 인삼은 23bp가 존재하는 반면, 화기삼은 23bp 서열이 중복되어 있다.
본 발명은 또한, 서열번호 11 내지 33 중 어느 하나의 염기서열로 이루어진 인삼(Panax ginseng)과 화기삼(Panax quinquefolius)을 구별하기 위한 마커를 증폭하기 위한 프라이머를 제공한다.
고려인삼과 화기삼의 구별을 위해 제작된 프라이머는 하기 표 2에 나타낸다.
표 2. 마커 증폭을 위한 프라이머
상기 프라이머는 정방향 프라이머 및 역방향 프라이머가 하나의 세트로 구성되며, 서열번호 1의 마커 증폭용 프라이머 세트는 서열번호 11 및 12의 프라이머 쌍으로 이루어지며, 서열번호 2의 마커 증폭용 프라이머 세트는 서열번호 13 및 14의 프라이머 쌍으로 이루어지며, 서열번호 3의 마커 증폭용 프라이머 세트는 서열번호 15 및 16의 프라이머 쌍으로 이루어지며, 서열번호 4의 마커 증폭용 프라이머 세트는 서열번호 17 및 18의 프라이머 쌍으로 이루어지며, 서열번호 5의 마커 증폭용 프라이머 세트는 서열번호 19 및 20의 프라이머 쌍으로 이루어지며, 서열번호 6의 마커 증폭용 프라이머 세트는 서열번호 21 및 22의 프라이머 쌍으로 이루어지며, 서열번호 7의 마커 증폭용 프라이머 세트는 서열번호 23 및 24의 프라이머 쌍으로 이루어지며, 서열번호 8의 마커 증폭용 프라이머 세트는 서열번호 25 및 26의 프라이머 쌍으로 이루어지며, 서열번호 9의 마커 증폭용 프라이머 세트는 서열번호 27 및 28의 프라이머 쌍으로 이루어지며, 서열번호 10의 마커 증폭용 프라이머 세트는 서열번호 29 및 30의 프라이머 쌍으로 이루어진다.
본 명세서에 있어서, "프라이머"는 카피하려는 핵산 가닥에 상보적인 단일 가닥 올리고뉴클레오티드 서열을 말하며, 프라이머 연장 산물의 합성을 위한 개시점으로서 작용할 수 있다. 상기 프라이머의 길이 및 서열은 연장 산물의 합성을 시작하도록 허용해야 한다. 프라이머의 구체적인 길이 및 서열은 요구되는 DNA 또는 RNA 표적의 복합도(complexity)뿐만 아니라 온도 및 이온 강도와 같은 프라이머 이용 조건에 의존할 것이다.
본 발명에 있어서, 프라이머로서 이용된 올리고뉴클레오티드는 또한 뉴클레 오티드 유사체(analogue), 예를 들면, 포스포로티오에이트(phosphorothioate), 알킬포스포로티오에이트 또는 펩티드 핵산(peptide nucleic acid)를 포함할 수 있거나 또는 삽입 물질(intercalating agent)를 포함할 수 있다.
본 발명은 또한, 서열번호 5에서 나타난 InDel 마커를 이용하여 아가로스 겔 상에서 PCR 밴드의 유무만으로 고려인삼과 화기삼을 구별할 수 있는 염기서열 특이적인 프라이머를 제작하였고 (표 3), 이를 이용하여 직접 겔 상에서 고려인삼과 화기삼을 구별하였다 (도 3 참고).
표 3. 염기서열 특이적 프라이머
본 발명은 또한, 대상 시료에서 게놈 DNA를 분리하는 단계;
상기 분리된 게놈 DNA를 주형으로 하고, 서열번호 11 내지 33 중 어느 하나의 프라이머 세트를 이용하여 증폭 반응을 수행하여 표적 서열을 증폭하는 단계; 및
상기 증폭 산물을 동정하는 단계를 포함하는, 인삼(Panax ginseng)과 화기삼(Panax quinquefolius)을 구별하는 방법을 제공한다.
본 발명의 방법은 대상 시료에서 게놈 DNA를 분리하는 단계를 포함한다. 상기 시료는 인삼 또는 화기삼일 수 있다. 상기 (a) 단계에서 게놈 DNA의 추출은 당업계에서 통상적으로 사용되는 페놀/클로로포름 추출법, SDS 추출법 (Tai et al., Plant Mol. Biol. Reporter, 8: 297-303, 1990), CTAB 분리법(Cetyl Trimethyl Ammonium Bromide; Murray et al., Nuc. Res., 4321-4325, 1980) 또는 상업적으로 판매되는 DNA 추출 키트를 이용하여 수행할 수 있다.
상기 분리된 게놈 DNA를 주형으로 하고, 서열번호 11 내지 33 중 어느 하나의 프라이머 세트를 이용하여 증폭 반응을 수행하여 표적 서열을 증폭할 수 있다. 표적 핵산을 증폭하는 방법은 중합효소연쇄반응(PCR), 리가아제 연쇄반응(ligase chain reaction), 핵산 서열 기재 증폭(nucleic acid sequence-based amplification), 전사 기재 증폭 시스템(transcription-based amplification system), 가닥 치환 증폭(strand displacement amplification) 또는 Qβ 복제효소(replicase)를 통한 증폭 또는 당업계에 알려진 핵산 분자를 증폭하기 위한 임의의 기타 적당한 방법이 있다. 이 중에서, PCR이란 중합효소를 이용하여 표적 핵산에 특이적으로 결합하는 프라이머 쌍으로부터 표적 핵산을 증폭하는 방법이다. 이러한 PCR 방법은 당업계에 잘 알려져 있으며, 상업적으로 이용가능한 키트를 이용할 수도 있다. PCR은 PCR 반응에 필요한 당업계에 공지된 여러 성분을 포함하는 PCR 반응 혼합액을 이용하여 수행될 수 있다. 상기 PCR 반응 혼합액에는 분석하고자 하는 인삼에서 추출된 게놈 DNA와 본 발명에서 제공되는 프라이머 세트 이외에 적당량의 DNA 중합효소, dNTP, PCR 완충용액 및 물을 포함한다. 상기 PCR 완충용액 은 트리스-HCl(Tris-HCl), MgCl2, KCl 등을 포함한다. 이 때 MgCl2 농도는 증폭의 특이성과 수량에 크게 영향을 주며, 바람직하게는 1.5-2.5 mM의 범위로 사용될 수 있다. 일반적으로 Mg2 + 가 과량인 경우는 비특이적인 PCR 증폭 산물이 증가하고, Mg2 + 가 부족한 경우 PCR 산물의 산출율이 감소한다. 상기 PCR 완충용액에는 적당량의 트리톤 X-100(Triton X-100)이 추가로 포함될 수도 있다.
상기 증폭된 표적 서열은 검출가능한 표지 물질로 표지될 수 있다. 일 구현예에서, 상기 표지 물질은 형광, 인광 또는 방사성을 발하는 물질일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다. 바람직하게는, 상기 표지 물질은 Cy-5 또는 Cy-3이다. 표적 서열의 증폭시 프라이머의 5'-말단에 Cy-5 또는 Cy-3를 표지하여 PCR을 수행하면 표적 서열이 검출가능한 형광 표지 물질로 표지될 수 있다. 또한, 방사성 물질을 이용한 표지는 PCR 수행시 32P 또는 35S 등과 같은 방사성 동위원소를 PCR 반응액에 첨가하면 증폭 산물이 합성되면서 방사성이 증폭 산물에 혼입되어 증폭 산물이 방사성으로 표지될 수 있다. 표적 서열을 증폭하기 위해 이용된 하나 이상의 프라이머 세트는 상기에 기재된 바와 같다.
본 발명의 방법은 상기 증폭 산물을 동정하는 단계를 포함한다. 상기 증폭 산물의 동정은 InDel 마커의 경우에는 증폭 산물을 겔 전기영동함으로써 수행될 수 있다. 전기영동은 증폭 산물의 크기에 따라 아가로스 겔 전기영동 또는 아크릴아미드 겔 전기영동을 이용할 수 있다. SNP 마커의 경우에는 증폭 산물을 SNP 자리를 자르는 적당한 제한효소로 절단하여 절단 산물을 전기영동하거나 증폭 산물을 직접 시퀀싱함으로써 동정할 수 있다.
본 발명은 또한, 본 발명의 프라이머를 포함하는 인삼(Panax ginseng)과 화기삼(Panax quinquefolius)을 구별하기 위한 키트를 제공한다. 상기 키트는 증폭 반응을 수행하기 위한 시약 및 필요에 따라 제한효소를 포함할 수 있으며, 상기 증폭 반응을 수행하기 위한 시약은 내열성 DNA 중합효소, dNTPs, 및 버퍼를 포함할 수 있다. 상기 dNTP 혼합물은 dATP, dCTP, dGTP, dTTP를 포함하며, 내열성 DNA 중합효소는 Taq DNA 중합효소, Tth DNA 중합효소 등 시판되는 내열성 중합효소를 이용할 수 있다. 또한, 본 발명의 키트는 최적의 반응 수행 조건을 기재한 사용자 설명서를 추가로 포함할 수 있다.
본 발명은 또한, 본 발명의 마커가 고정화되어 있는 기판을 갖는 마이크로어레이를 제공한다.
본 발명의 명세서에서, "마이크로어레이"란 기판 상에 폴리뉴클레오티드의 그룹이 높은 밀도로 고정화되어 있는 것으로서, 상기 폴리뉴클레오티드 그룹은 각각 일정한 영역에 고정화되어 있는 마이크로어레이를 의미한다. 이러한 마이크로어레이는 당업계에 잘 알려져 있다. 마이크로어레이에 관하여는 예를 들면, 미국특허 제5,445,934호 및 제5,744,305호에 개시되어 있으며, 이들 특허의 내용은 참조에 의하여 본 명세서에 포함된다. 마커에 대하여는 상기 기재한 바와 같다.
용어 "기판"은 혼성화 특성을 보유하고, 혼성화의 배경 수준이 낮게 유지되는 조건하에 마커가 부착될 수 있는 임의의 기판을 말한다. 통상적으로, 상기 기 판은 미세역가(microtiter) 플레이트, 막(예를 들면, 나일론 또는 니트로셀룰로오스) 또는 미세구(비드) 또는 칩일 수 있다. 막에 적용 또는 고정 전에, 핵산 프로브를 변형시켜 고정화를 촉진시키거나 혼성화 효율을 개선시킬 수 있다. 상기 변형은 단독중합체 테일링(homopolymer tailing), 지방족기, NH2 기, SH 기 및 카르복실기와 같은 상이한 반응성 작용기와의 커플링, 또는 바이오틴, 합텐 또는 단백질과의 커플링을 포함할 수 있다.
본 발명은 또한,
대상 시료에서 게놈 DNA를 분리하는 단계;
상기 분리된 게놈 DNA를 주형으로 하고, 서열번호 11 내지 33 중 어느 하나의 프라이머 세트를 이용하여 증폭 반응을 수행하여 표적 서열을 증폭하는 단계;
상기 증폭 산물을 본 발명의 마커와 혼성화하는 단계; 및
상기 혼성화 정도를 검출하는 단계를 포함하는, 인삼(Panax ginseng)과 화기삼(Panax quinquefolius)을 구별하는 방법을 제공한다.
본 발명의 방법에서, 대상 시료에서 게놈 DNA를 분리하는 단계 및 상기 분리된 게놈 DNA를 주형으로 하고, 서열번호 11 내지 33 중 어느 하나의 프라이머 세트를 이용하여 증폭 반응을 수행하여 표적 서열을 증폭하는 단계는 전술한 바와 같이 수행할 수 있다.
본 발명의 방법은 상기 증폭 산물을 본 발명의 마커와 혼성화하는 단계 및 상기 혼성화 정도를 검출하는 단계를 포함한다. 증폭 산물을 본 발명의 마커와 혼 성화할 때, SNP 마커의 경우에는 엄격도 (stringency)를 높여, 즉 혼성화 온도를 높이고 염 농도를 낮추어 서열 유사성이 매우 높은 것만 혼성화할 수 있는 조건하에 혼성화를 수행하며, InDel 마커의 경우에는 SNP 마커의 경우보다는 덜 엄격한 조건에서 혼성화를 수행한다. 예를 들면, 인삼 유래의 증폭 산물은 본 발명의 마커와 혼성화를 할 것이며, 화기삼 유래의 증폭 산물은 본 발명의 마커와 혼성화하지 않을 것이다.
본 명세서에 있어서, "혼성화"란 핵산의 2개의 상보적 가닥이 조합하여 이중가닥 분자 (혼성체)를 형성하는 과정을 말한다. 본 발명의 방법에 있어서 상기 혼성화는 높은 엄격도 혼성화 조건하에서 수행되는 것인 방법이다.
또한, 본 명세서에 있어서, "엄격도 (stringency)"란 혼성화 및 그 후의 처리 단계 동안 존재하는 온도 및 용매 조성을 기술하기 위하여 사용되는 용어이다. 높은 엄격도 조건하에서는 고도로 상동적인 핵산 혼성체가 형성될 것이다. 즉, 충분한 정도의 상보성이 없는 혼성체는 형성되지 않을 것이다. 따라서, 분석 조건의 엄격도는 혼성체를 형성하는 2 핵산 가닥 사이에 필요한 상보성의 양을 결정한다. 엄격도는 표적과 비표적 핵산과 형성된 혼성체 사이의 안정성의 차이를 최대화하기 위하여 선택된다.
혼성화 정도를 검출하기 위해, 상기 표적 서열은 검출가능한 표지 물질로 표지될 수 있다. 본 구체예에서, 상기 표지 물질은 형광, 인광 또는 방사성을 발하는 물질일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다. 바람직하게는, 상기 표지 물질은 Cy-5 또는 Cy-3이다. 표적 서열의 증폭시 프라이머의 5'-말단에 Cy-5 또는 Cy-3를 표 지하여 PCR을 수행하면 표적 서열이 검출가능한 형광 표지 물질로 표지될 수 있다. 또한, 방사성 물질을 이용한 표지는 PCR 수행시 32P 또는 35S 등과 같은 방사성 동위원소를 PCR 반응액에 첨가하면 증폭 산물이 합성되면서 방사성이 증폭 산물에 혼입되어 증폭 산물이 방사성으로 표지될 수 있다.
본 발명의 방법은 검출가능한 신호를 발생시키는 물질로 상기 PCR 산물을 표지하고, 이를 상기 마커와 혼성화시키고, 그로부터 발생하는 신호를 검출하여 이루어질 수 있다. 상기 검출가능한 신호는 예를 들면, 광학적 신호 또는 전기적 신호가 될 수 있으나, 이들 예에 한정되는 것은 아니다. 상기 광학적 활성 물질은 형광 또는 인광을 발생시키는 물질일 수 있다. 상기 형광 물질은 예를 들면, 플루오로레신(fluorescein), Cy-5 및 Cy-3 일 수 있다. 또한, 상기 PCR 산물은 혼성화 전 또는 후에 검출가능한 신호를 발생시키는 물질로 표지되거나, 표지되어 있지 않을 수 있다. 표지되어 있지 않은 경우의 상기 PCR 산물과 마커의 혼성화 결과는 예를 들면, 전기적 신호를 통하여 검출할 수 있으나, 이들 예에 한정되는 것은 아니다.
본 발명의 방법에 있어서 상기 마커는 마이크로어레이의 기판 상에 고정화될 수 있다. 마이크로어레이 기판 상에 고정화되는 마커에 대하여는 상기 기재한 바와 같다.
이하 본 발명을 실시예를 통하여 보다 상세하게 설명한다. 그러나, 이들 실시예는 본 발명을 예시적으로 설명하기 위한 것으로 본 발명의 범위가 이들 실시예 에 한정되는 것은 아니다.
실시예
실시예
1: 인삼 시료의 준비 및 게놈
DNA
의 추출
실험을 위한 재료로 국내외에서 재배중인 고려인삼 13종과 화기삼 3종, 화기삼(母)과 고려인삼(父) 종간교잡 1종, 죽절삼(P. japonicus) 1종을 사용하였다. 18개 종은 KT&G(Korea Tobacco and Ginseng)의 실험 포장에서 수집하였다. 엽록체 DNA의 추출은 CTAB 방법 (Cetyl Trimethyl Ammonium Bromide; Murray et al., Nuc. Res., 4321-4325, 1980)을 통해서 실시하였다.
실시예
2: 본 발명의
프라이머의
디자인 및
마커의
선발
프라이머는 완전 해독된 인삼 엽록체 염기서열에서 100~500bp, 500~1000bp의 지역을 증폭시킬 수 있도록 제작하였다. 약 156kb에 해당하는 고려인삼 엽록체 게놈에서 총 89개의 프라이머 조합을 제작하였고, 그 중 60개 조합을 이용하여 DNA 상의 다형성을 확인하였다.
총 10개의 프라이머 지역에서 11개의 다형성을 확인하였다. 각각의 길이는 200~500bp, 700bp이었다. 대부분 다형성의 형태는 SNP(single nucleotide polymorphism)였고, InDel(insertion and deletion)은 두 곳의 마커 지역에서 나타났다. 엽록체 게놈상의 rbcL 내지 accD 지역에서는 특이적으로 두 개의 다형성이 발견되었다 (서열번호 5). 고려인삼과 화기삼의 구별을 위해 제작된 프라이머와 이를 이용해서 밝혀낸 마커는 표 1과 표 2에 나타내었다.
추출된 엽록체 DNA는 완전히 해독된 인삼 엽록체 염기서열에 기반하여 제작된 프라이머를 이용하여 PCR(polymerase chain reaction)을 통해 증폭시켰고, 아가로스 겔과 폴리아크릴아마이드 겔 전기영동을 통해 증폭된 DNA의 길이를 확인하였다. 또한, DNA에 형광염색시약(Syto9)을 붙인 후 Light Cycler
을 이용하여 HRM(high resolution melting) 곡선을 그어 염기서열에 따른 흡광도를 분석하여 인삼과 화기삼 간 염기서열 차이를 확인하였다 (도 2).
HRM 곡선은 실시간(realtime) PCR을 이용한 결과를 나타낸 것으로, 증폭된 PCR 산물에 형광염색시약인 Syto9을 넣고(DNA 이중나선 상태에서만 발광) 95℃에서 1분, 40℃에서 1분, 70℃에서 5초간 반응시켜 DNA와 Syto9 염색시약을 안정되게 결합시킨 후, 70℃부터 90℃까지 8분 동안 서서히 온도를 증가시켜 이중나선 DNA를 단일나선으로 변성될 때 Syto9이 DNA로부터 분리되며 발광이 줄어드는 변화를 온도(℃) 당 25회 단위로 측정하여 그래프로 나타낸 것이다 (도 2).
최종적으로 ABI3730XL 자동염기서열 분석기(sequencer)를 이용하여 다형성을 나타내는 마커의 게놈상 실제 염기서열을 확인하였다 (표 1).
실시예
3: 본 발명의
마커
특이적인
프라이머를
이용한 고려인삼과 화기삼의 구별
서열번호 5에 나타난 InDel 마커를 이용하여 아가로스 겔 상에서 PCR 밴드의 유무만으로 고려인삼과 화기삼을 구별할 수 있는 염기서열 특이적인 프라이머를 제작하였고 (표 3), 이를 이용하여 직접 겔 상에서 고려인삼과 화기삼을 구별하였다 (도 3 참고). 자세한 프라이머 조합은 표 3에 기재되어 있다. PCR 조건은 하기와 같다: 1) 예비변성 94℃ 4분, 2) 38 사이클 (변성 94℃ 15초, 어닐링 60℃ 18초 (조합 1)/63℃ 8초 (조합 2)/61℃ 16초 (조합 3), 연장 72℃ 30초), 3) 최종연장 72℃ 7분.
도 3에서 알 수 있는 바와 같이, 인삼에 특이적인 프라이머 조합 1 및 2는 인삼을 특이적으로 검출하였으며 (도 3의 레인 2 내지 8 및 13 내지 17), 화기삼에 특이적인 프라이머 조합 3은 화기삼을 특이적으로 검출하였다 (도 3의 레인 9 내지 12).