CN116287411A - 一种基于二代测序开发用于西洋参药材真伪检测的引物、探针及其检测方法 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及一种基于二代测序开发用于西洋参药材真伪检测鉴定的引物、探针及其检测方法,用于西洋参检测的上下游特异性引物序列如SEQ ID NO.1和2所示,探针序列如SEQ ID NO.3所示,探针的5’端修饰VIC,3’端修饰MGB。用于西洋参的实时荧光定量PCR检测,本发明具有特异性强,灵敏度高等优点。
Description
技术领域
本发明属于生物技术技术领域,具体的说,涉及一种基于二代测序开发用于西洋参药材真伪检测鉴定的引物、探针及其检测方法。
背景技术
西洋参(Panax quinquefolius)是五加科、人参属多年生草本植物。根为肉质,其形状有椭圆形和纺锤形,外皮表面呈浅黄色,较细致光滑,生长茂盛,断面的纹理具有菊花状;茎为直立圆柱形,光滑无毛,绿色或暗紫绿色,茎的高矮随参龄不同而不一样;叶一般为由5片小叶组成的掌状复叶,小叶片为倒卵形或卵形,叶较薄,边缘有不规则的粗锯齿,一般一年生西洋参植株只有1枚3片小叶的复叶,二年生的有1枚或2枚对生的5片小叶的复叶,3-5年生的有3-5枚轮生5片小叶的复叶;由许多小花组成伞形花序;浆果形状为扁圆形,呈对状分布,成熟后的颜色为鲜红;花期、果实成熟期分别为7月、9月。
西洋参是一种“清凉”参,其味苦、微甘,性凉,具有滋阴补气、生津止渴、除烦躁、清虚火、扶正气、抗疲劳的功效,西洋参中的有效成分为人参皂苷,具有提高人体抵抗力的作用。
实时荧光PCR技术在物种鉴定上已经是非常成熟与成功的技术,使用一组或多组特异性的引物探针,通过监测荧光强度变化达到鉴定的目的,该方法学不仅具备特异性强、灵敏度高,操作简单等优势,还具有较高的检测效率。运用实时荧光PCR技术鉴定三七,不仅特异性强,灵敏度高,结果准确快速,更具有良好的市场应用前景和推广应用价值。
发明内容
为了克服背景技术中存在的问题,本发明提供了一种基于二代测序开发用于西洋参药材真伪检测鉴定的引物、探针及其检测方法。
为实现上述目的,本发明是通过如下技术方案实现的:
一种基于二代测序开发用于西洋参检测的引物、探针,用于西洋参检测的上下游引物序列如SEQ ID NO.1和2所示,探针序列如SEQ ID NO.3所示,探针的5’端修饰VIC,3’端修饰MGB。
本发明还提供一种基于二代测序开发用于西洋参检测的引物、探针的检测方法,包含以下步骤:
S1,使用植物基因组DNA提取试剂盒提取待测样品的基因组DNA;
S2,使用S1步骤提取的待测样品的基因组DNA作为待测模板,并使用如权利要求1所示的引物、探针对待测模板进行实时荧光定量PCR扩增反应;
S3,待测样品中是否含有西洋参基因组特有DNA片段的判断方法如下:依据CT值来判断待测样品中是否含有西洋参基因组特有DNA片段,CT值小于40则判断为阳性,样品CT值大于40或无任何数值则判断为阴性。
进一步的,所述S2步骤中实时荧光定量PCR扩增的反应体系为:2xT5 Fast qPCRMix 10μL、10uM的上游引物0.7μL、10uM的下游引物0.7μL、10uM的探针0.6μL、待测模板1μL,使用ddH2O补足至20μL反应体系。
进一步的,所述S2步骤中实时荧光定量PCR扩增程序为:95℃1min,一个循环;95℃15s,60℃1min,40个循环;在60℃退火延伸阶段采集对应荧光1min。
本发明还提供用于西洋参检测的引物、探针在制备西洋参检测试剂盒中的应用。
本发明的有益效果:本发明通过对西洋参叶绿体基因组的序列比对分析,筛选出具有一定特异性和灵敏度的TaqMan-MGB荧光探针,使探针可以特异性的检测目的基因片段的CT值,从而实现对西洋参的快速鉴定。
附图说明
图1是本发明中实时荧光定量PCR的标准曲线和相关扩增曲线图;
图2是本发明中引物探针特异性验证试验扩增曲线图;
图3是本发明中引物探针灵敏度验证试验扩增曲线图;
具体实施方式
为了使本发明的目的、技术方案和有益效果更加清楚,下面将对本发明的优选实施例进行详细的说明,以方便技术人员理解。
实施例一、引物对和探针的设计
设计:基于西洋参叶绿体基因组DNA,利用分子生物学软件进行引物和探针设计。
引物和探针序列如下表1所示:
表1Panax quinquefolius西洋参引物探针序列
反应体系:
反应体系(20μL) | 加入体积 |
2xT5 Fast qPCR Mix | 10μL |
上游引物(10uM) | 0.7μL |
下游引物(10uM) | 0.7μL |
探针(10uM) | 0.6μL |
DNA模板 | 1μL |
ddH2O up to | 20μL |
扩增程序:
实施例二、西洋参标准质粒的制备和探针标准曲线的创建
1、申请人委托生物公司提取西洋参的基因组DNA,根据实施例一的引物序列、反应体系和扩增程序,进行PCR扩增,获得PCR产物。
2、根据PCR产物制备阳性克隆样品,然后进行测序,选择测序结果中序列完全正确的阳性克隆样品,使用质粒提取试剂盒完成质粒的提取。
3、运用公式:C=A·B-1×6.02×1014(其中A代表质粒浓度ng·μL-1,B代表质粒DNA分子量,C代表copies·μL-1)计算出质粒浓度拷贝数,获得母液浓度:西洋参标准质粒(2.66*1010copies·μL-1),将作为实验质粒标准品使用。
4、使用溶剂将西洋参质粒标准品稀释至2.66*108copies·μL-1,再按10倍浓度将其稀释为5个梯度。分别以稀释过的质粒标准品为模板,在前述反应条件下进行TaqMan RT-qPCR检测,每组试验重复3次,制定标准曲线。西洋参质粒标准品检测结果如表2所示,标准曲线和相关扩增曲线如图1所示。
西洋参标准曲线:y=-3.4303x+45.069,R2=0.9999;
且西洋参标准曲线的相关系数(R2)大于0.98。
表2Panax quinquefolius西洋参质粒标准品检测结果
标准质粒 | 碱基数 | 分子量 | 浓度(ng/μL) | 拷贝数(copies/μL) |
2-P.quin | 2030 | 1339800 | 59.259 | 2.66E+10 |
稀释倍数 | 基因 | 拷贝数 | 拷贝数log值 | CT值平均值 |
10*2 | 2-P.quin | 2.66E+08 | 8.425310836 | 16.240 |
10*2 | 2-P.quin | 2.66E+08 | 8.425310836 | 16.240 |
10*2 | 2-P.quin | 2.66E+08 | 8.425310836 | 16.240 |
10*3 | 2-P.quin | 2.66E+07 | 7.425310836 | 19.490 |
10*3 | 2-P.quin | 2.66E+07 | 7.425310836 | 19.490 |
10*3 | 2-P.quin | 2.66E+07 | 7.425310836 | 19.490 |
10*4 | 2-P.quin | 2.66E+06 | 6.425310836 | 23.034 |
10*4 | 2-P.quin | 2.66E+06 | 6.425310836 | 23.034 |
10*4 | 2-P.quin | 2.66E+06 | 6.425310836 | 23.034 |
10*5 | 2-P.quin | 2.66E+05 | 5.425310836 | 26.480 |
10*5 | 2-P.quin | 2.66E+05 | 5.425310836 | 26.480 |
10*5 | 2-P.quin | 2.66E+05 | 5.425310836 | 26.480 |
10*6 | 2-P.quin | 2.66E+04 | 4.425310836 | 29.897 |
10*6 | 2-P.quin | 2.66E+04 | 4.425310836 | 29.897 |
10*6 | 2-P.quin | 2.66E+04 | 4.425310836 | 29.897 |
实施例三、实时荧光PCR检测西洋参样品的方法
1、根据实施例一配制反应体系和设置扩增程序。
2、检测过程除了样品外,设置阳性对照、阴性对照,阳性对照为:西洋参质粒标准品,阴性对照为:ddH2O;
3、在阳性对照、阴性对照结果均正常的情况下,依据CT值来判断待测样品中是否含有西洋参基因组特有DNA片段,CT值小于40则判断为阳性,样品CT值大于40或无任何数值则判断为阴性。
实施例四、引物探针特异性验证
验证内容:特定引物探针分别对七个近缘种进行扩增,每个样本重复3次;结果如表3所示,扩增曲线如图2所示。
验证目的:验证引物探针的特异性;
表3Panax quinquefoliu西洋参引物探针特异性检测结果
结果:如上表3所示,Panax quinquefolius西洋参引物探针只与西洋参种有扩增与其它种无扩增反应,特异性较好,3个重复CT值接近,重复性较好。
实施例五、引物探针灵敏度验证
验证内容:对应样本DNA浓度从0.00001ng/μL、0.0001ng/μL、0.001ng/μL、0.01ng/μL、0.1ng/μL、1ng/μL,6个浓度梯度测试对应引物探针的灵敏度,每个样本重复三次,并使用实时荧光定量PCR仪进行测定;检测结果如表4和图3所示。
验证目的:验证在反应体系下Panax quinquefolius西洋参种引物探针的最低检测下限即灵敏度。
QuantStudio Dx检测结果(灵敏度)
表4:Panax quinquefolius西洋参种引物探针灵敏度:0.001ng/μL
Sample Name | Target Name | Task | Reporter | Quencher | Cт | CтMean | CтSD |
1 | 2-P.quin | UNKNOWN | VIC | NFQ-MGB | 22.170 | 22.062 | 0.098 |
1 | 2-P.quin | UNKNOWN | VIC | NFQ-MGB | 22.035 | 22.062 | 0.098 |
1 | 2-P.quin | UNKNOWN | VIC | NFQ-MGB | 21.980 | 22.062 | 0.098 |
0.1 | 2-P.quin | UNKNOWN | VIC | NFQ-MGB | 25.696 | 25.705 | 0.010 |
0.1 | 2-P.quin | UNKNOWN | VIC | NFQ-MGB | 25.704 | 25.705 | 0.010 |
0.1 | 2-P.quin | UNKNOWN | VIC | NFQ-MGB | 25.715 | 25.705 | 0.010 |
0.01 | 2-P.quin | UNKNOWN | VIC | NFQ-MGB | 29.775 | 29.761 | 0.013 |
0.01 | 2-P.quin | UNKNOWN | VIC | NFQ-MGB | 29.758 | 29.761 | 0.013 |
0.01 | 2-P.quin | UNKNOWN | VIC | NFQ-MGB | 29.749 | 29.761 | 0.013 |
0.001 | 2-P.quin | UNKNOWN | VIC | NFQ-MGB | 33.529 | 33.746 | 0.188 |
0.001 | 2-P.quin | UNKNOWN | VIC | NFQ-MGB | 33.842 | 33.746 | 0.188 |
0.001 | 2-P.quin | UNKNOWN | VIC | NFQ-MGB | 33.866 | 33.746 | 0.188 |
0.0001 | 2-P.quin | UNKNOWN | VIC | NFQ-MGB | 38.013 | 37.936 | 0.108 |
0.0001 | 2-P.quin | UNKNOWN | VIC | NFQ-MGB | 37.860 | 37.936 | 0.108 |
0.0001 | 2-P.quin | UNKNOWN | VIC | NFQ-MGB | Undetermined | 37.936 | 0.108 |
0.00001 | 2-P.quin | UNKNOWN | VIC | NFQ-MGB | Undetermined | ||
0.00001 | 2-P.quin | UNKNOWN | VIC | NFQ-MGB | Undetermined | ||
0.00001 | 2-P.quin | UNKNOWN | VIC | NFQ-MGB | Undetermined |
如表4和图3所示,本发明记载的引物探针灵敏度较高。
实施例六、引物探针重复性验证
分别从以下两个方面验证:
1.同实验员同实时荧光定量PCR仪(QuantStudio Dx)不同批次酶之间比较;
2.同批次酶同实时荧光定量PCR仪(QuantStudio Dx)不同人员操作;
验证内容:每个样本重复3次,通过计算变异系数(CV%)值来进行重复性评价。计算公式:cv=sd(标准偏差)/mean(平均值)×100%。
验证目的:验证重复性、人员操作性、不同批次聚合酶的稳定性。
表5:同实验员同QPCR仪(QuantStudio Dx)不同批次酶结果
表6:同批次酶同QPCR仪(QuantStudio Dx)不同人员操作
结果:据表5-6所示,同实验员同实时荧光定量PCR仪(QuantStudio Dx)不同批次酶之间比较;同批次酶同实时荧光定量PCR仪(QuantStudio Dx)不同人员操作;实验结果:重复性CV%均小于3%,实验重复性好,不同批次聚合酶稳定性优良。
最后说明的是,以上优选实施例仅用于说明本发明的技术方案而非限制,尽管通过上述优选实施例已经对本发明进行了详细的描述,但本领域技术人员应当理解,可以在形式上和细节上对其做出各种各样的改变,而不偏离本发明权利要求书所限定的范围。
Claims (5)
1.一种基于二代测序开发用于西洋参药材真伪检测鉴定的引物、探针,其特征在于:用于西洋参检测的上下游引物序列如SEQ ID NO.1和2所示,探针序列如SEQ ID NO.3所示,探针的5’端修饰VIC,3’端修饰MGB。
2.如权利要求1所述的一种基于二代测序开发用于西洋参药材真伪检测鉴定的引物、探针的检测方法,其特征在于:包含以下步骤:
S1,使用植物基因组DNA提取试剂盒提取待测样品的基因组DNA;
S2,使用S1步骤提取的待测样品的基因组DNA作为待测模板,并使用如权利要求1所示的引物、探针对待测模板进行实时荧光定量PCR扩增反应;
S3,待测样品中是否含有西洋参基因组特有DNA片段的判断方法如下:依据CT值来判断待测样品中是否含有西洋参基因组特有DNA片段,CT值小于40则判断为阳性,样品CT值大于40或无任何数值则判断为阴性。
3.根据权利要求2所述的一种基于二代测序开发用于西洋参药材真伪检测鉴定的引物、探针的检测方法,其特征在于:所述S2步骤中实时荧光定量PCR扩增的反应体系为:2xT5Fast qPCR Mix 10μL、10uM的上游引物0.7μL、10uM的下游引物0.7μL、10uM的探针0.6μL、待测模板1μL,使用ddH2O补足至20μL反应体系。
4.根据权利要求2所述的一种基于二代测序开发用于西洋参药材真伪检测鉴定的引物、探针的检测方法,其特征在于:所述S2步骤中实时荧光定量PCR扩增程序为:95℃ 1min,一个循环;95℃ 15s,60℃ 1min,40个循环;在60℃退火延伸阶段采集对应荧光1min。
5.如权利要求1所述的引物、探针在制备西洋参检测试剂盒中的应用。
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