KR100422293B1 - 델타-5,7스테롤,델타-7리덕타제활성을갖는에이.탈리아나의단백질을코딩하는dna서열,델타-7레드단백질,그제조방법,형질전환된효모균주및그용도 - Google Patents

델타-5,7스테롤,델타-7리덕타제활성을갖는에이.탈리아나의단백질을코딩하는dna서열,델타-7레드단백질,그제조방법,형질전환된효모균주및그용도 Download PDF

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Abstract

본 발명은 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성을 갖는 에이. 탈리아나 단백질을 코딩하는 cDNA 서열(서열 확인 번호 1)에 관한 것이다.
또한, 본 발명은 클로닝 방법, C-7위치에서 불포화된 스테롤의 환원 방법 및 프레그네놀론의 제조 방법에 관한 것이다.

Description

델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성을 갖는 에이. 탈리아나의 단백질을 코딩하는 DNA 서열, 델타-7레드 단백질, 그 제조 방법, 형질전환된 효모 균주 및 그 용도{DNA Sequence Coding for a Protein of A. Thaliana having a Delta-5,7 Sterol,Delta-7 Reductase Activity, Delta7-Red Protein, Production Process, Strains of Transformed Yeasts, Uses}
본 발명은 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성을 갖는 에이. 탈리아나(A. thaliana)의 단백질을 코딩하는 DNA 서열, 델타-7레드(Red) 단백질, 제조 방법, 형질전환된 효모 균주 및 용도에 관한 것이다.
본 발명은 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성을 갖는 에이. 탈리아나의 단백질을 코딩하는 DNA 서열, 델타-7레드 단백질, 이들의 제조 방법, 형질전환된 효모 균주 및 그 용도에 관한 것이다.
델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 (E.C.1.3.1.21)은 쥐 간의 호모게네이트에서[뎀프지(M.E. Dempsey) 등의 "Methods Enzymol.", 15, 501-514, 1969] 및 지 메이즈(Zea mays)의 식물 제제에서[테이톤(M. Taton) 등의 "Biochem. Biophys. Res. Commun.", 181, 465-473, 1991]의 활성에 의해 존재가 밝혀진 마이크로좀 효소이다. 이 리덕타제는 NADPH에 의존하며, 시험관내에서 7-데히드로콜레스테롤을 콜레스테롤로 환원시킨다.
스테롤은 진핵생물 막의 주성분이나, 종에 따라 구조적 차이를 보인다. 효모와 같은 진핵생물 세포에서, 주된 스테롤은 C-5 및 C-7 위치에 이중 불포화도를 갖고, C-24 위치에서 분지된 측쇄와 C-22 위치에서 불포화도를 갖는 에르고스테롤이나, 포유 동물에서 콜레스테롤은 C-5 위치에서 불포화도를 갖고 포화 측쇄를 함유하는 특징이 있다. 식물의 경우 가장 일반적인 스테롤인 시토스테롤, 스티그마스테롤 및 캄페스테롤은 분지되었으나 포화된 측쇄를 가지며, 척추 동물문의 스테롤의 경우 C-7 위치에 불포화도를 갖지 않는다. 스테롤 핵의 이러한 구조적 차이를 일으키는 효소는 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제이다.
델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제는 결코 균일한 상태로 정제되지 않으며, 단지 부분적인 정제만이 가능한 것으로 개시되어 있다 (상기 뎀프지 등의 문헌 및 테이톤 등의 문헌 참조). 이 단백질은 그 물리적-화학적 특성에 의해 특징지어지지는 않는다. 이 단백질 서열에 대한 정보 및 그에 대한 항체는 문헌에 전혀 기재되어 있지 않다. 또한, 7-데히드로콜레스테롤 리덕타제에 있어서의 뚜렷한 결함은 RSH/Smith-Lemli-Opitz (SLO) 증후와 관련된 사람의 경우에 개시되어 있다[오피츠(J.M. Opitz) 등의 "Am. J. Med. Genet.", 50, 326-338, 1994 참조].
따라서, 대응하는 단백질의 서열을 동정할 수 있게 할 뿐만 아니라, 인체 유전자의 특성화 또는 그 선천적 결함의 발견을 가능하게 해주는 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제를 코딩하는 cDNA의 클로닝은, 예를 들어 혼성화 및(또는) 면역학적 검출 기술을 이용하는 공지된 방법으로는 성취될 수 없다. 따라서, 특히 단백질에 대한 정보가 없을 때 클로닝을 가능하게 하는 혁신적인 스크리닝방법에 대한 요구가 있다.
진균막의 주된 스테롤인 에르고스테롤은 나이스타틴과 같은 폴리엔류 화합물에게 항진균 활성을 부여하는 C-5,7 위치에 한 쌍의 공액된 이중 결합을 함유한다[비트만(Bittman) 등의 문헌, "J. Biol. Chem.", 260, 2884-2889, 1985 참조]. C-5,7 위치에 불포화된 스테롤의 막 농도에 대한 나이스타틴 작용의 강한 의존성은 에스. 세레비시아에(S. cerevisiae)에서 스테롤을 축적하는 돌연변이체 균주의 선택을 가능하게 한다[몰잔(S.W. Molzahn) 등의 문헌 "J. Gen. Microbiol.", 72, 339-348, 1972 참조]. 따라서, 돌연변이체 erg2 및 erg3는 스테롤 델타-8,7 이소머라제[애쉬만(W. Ashman) 등의 문헌 "Lipids", 26, 628, 1991] 및 스테롤 델타-5-데히드로게나제[아르틴톤(B. Arthinton) 등의 문헌 "Gene," 102, 39, 1991 참조]에서의 각 결함으로 인하여 C-5,7 위치에 공액된 이중 결합을 함유하지 않는 스테롤을 축적시킨다. 이러한 돌연변이체는 효모의 주된 천연 스테롤인 에르고스테롤이 특정 조건 하에 콜레스테롤을 함유하는 상이한 치환 스테롤에 의해 교체될 수 있기 때문에 생존가능하다.
C-5,7 위치에 이중 불포화도를 갖지 않는 스테롤이 풍부한 효모 균주가 나이스타틴에 대한 내성이 증가하는데, 이러한 점을 이용하여 에스. 세레비시아에에서 대사적 간섭(metabolic interference)을 이용하는 선별법으로 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성을 갖는 이질성 단백질을 코딩하는 cDNA를 클로닝하는 방법에 대한 발명자들의 인식이 있었다. 그러나, DNA 서열 또는 단백질 서열을 아는 것과는 무관하게 단지 효소적 활성만을 기초로 한 검출 이라는 장점을 제공하는 이러한 방법의 성공은 극복해야만 하는 많은 기술적 어려움으로 인하여 예측불가능하다.
이러한 첫번째 한계는 나이스타틴이 작용하는 방식이 완전히 밝혀진 것이 아니라는 사실로부터 기인한다[파크스(L.W. Parks) 등의 문헌 "CRC Critical Riviews in Microbiology," 301-304, 1978 참조]. 예를 들어, 효모에 있어서 erg 돌연변이체[상기한 몰잔의 문헌 참조]와 같은 자발적 게놈 돌연변이 또는 스테롤 경로와 독립적인 내성을 수반하는 게놈 돌연변이의 선택을 가져오는 나이스타틴의 이차적 성질로 인하여 나이스타틴에 의한 선택이 특이성이 낮을 것이라고 예측가능하다. 이와 유사하게, 유전자 라이브러리에 의해 형질전환된 세포는 스테롤 경로와 비연관된 나이스타틴에 내성을 부여하는 이질성 유전자를 발현시킬 수 있다.
예상된 한계의 또다른 일례는 이질성 단백질이 세포에서 약한 활성을 가져, 예를 들어 다음의 이유, 즉 1) 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제를 코딩하는 유전자가 약하게 발현되거나, 2) 조악한 폴딩 또는 부정확한 아세포 배향의 결과로 단백질의 활성이 약하거나 또는 활성을 갖지 않거나, 3) 식물 단백질이 효모 자체의 스테롤을 기질로서 인식하지 못하거나, 또는, 4) 기질이 될 수 있는 스테롤이 에스테르화된 형태이거나 또는 소낭내에 저장되어 있어 효소와는 접촉하지 못하는 것과같은 이유 중 한 가지로 인해, 나이스타틴에 내성을 부여하지 못하거나 또는 낮은 내성을 부여할 수 있다는 사실과 관련이 있다. 따라서, 이러한 방식으로 축적된 스테롤은 진핵생물에서 마이크로좀에 편재되어 있는 것으로 간주되는 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제의 작용을 회피하는 것으로 예측할 수 있다.
본 발명은 나이스타틴에 대한 내성을 기초로 대사적 간섭에 의해 효모에서 행해지는 클로닝 방법에 따라 델타-7-레드로 명명되는 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성을 갖는 단백질을 코딩하는 에이. 탈리아나의 cDNA의 클로닝 방법에 관한 것이다. 델타7-레드 단백질은 C-7 위치에서 불포화도를 갖는 스테롤의 생물학적 환원 공정에 의한 환원을 가능하게 하며, 이 공정은 화학적 경로를 이용하는 환원 방법이 허용하지 않는 C-5,7 위치에서의 이중 불포화도를 갖는 스테롤 또는 스테로이드의 C-7 위치에서의 선택적 환원 문제에 대한 유리한 해결책을 추가로 제공한다.
본 발명은 또한, 에르고스테롤과는 대조적으로, 콜레스테롤의 측쇄의 제한 효소인 사이토크롬 P450SCC의 기질인, C-7 위치에서 포화되고 C-22 위치에서 임의로 포화된 생성물을 놀라운 방식으로 축적시키는 델타-7레드를 발현시키는 형질전환된 효모 세포에 관한 것이다.
이와 같이 예기치 못한 특성으로 본 발명의 형질전환된 효모는 공업적 및(또는) 약리학적 용도를 갖는 스테롤 또는 스테로이드의 제조 방법, 특히 아드레노독신 리덕타제 (ADR) 및 아드레노독신 (ADX)의 존재 하에서 사이토크롬P450SCC(P450SCC)에 의해 C-7 위치에서 환원된, 내생적 효모 스테롤의 생물학적 산화에 의한 프레그네놀론의 제조 방법에 사용할 수 있다. 본 발명의 형질전환된 효모는 또한 포유동물 및 다른 척추동물문에서 콜레스테롤의 하이드로코르티손으로의 대사 경로에서 중간체 스테로이드의 제조 방법에도 사용될 수 있다. 이러한 용도는 초기 기질로서 콜레스테롤과 같은 외인성 스테롤의 사용을 필요로 하지 않는 생물학적 산화 공정에 있어서 하이드로코르티손 또는 그 중간체의 제조를 가능하게 하는 잇점을 가짐으로써, 스테롤이 효모 속으로 침투하는 문제를 피할 수 있다(호기생활 조건 하에서 외인성 스테롤에 대한 효모의 불투과성에 대해서는 문헌[로렌쯔(R.T Lorentz) 등의 "J. Bacteriology," 981-985, 1986]에 개시되어 있다).
본 발명은 또한 본 발명의 클로닝 방법을 사용하여 얻어지는 핵산 서열의 용도에 관한 것이다. 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제를 코딩하는 RNA 또는 DNA 서열은 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제의 유전자 생성물과 연관된 감염의 진단 또는 치료에 사용될 수 있다. 예를 들어, 7-데히드로콜레스테롤을 콜레스테롤로 전환시키는 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제에 있어서의 결함은 RSH/SLO 증후와 연관된 것으로 추정된다. 따라서, 인체 DNA 서열은 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제의 결함을 진단하기 위한 탐침으로 사용될 수 있을 뿐만 아니라, 이러한 결함을 교정하기 위한 유전자 요법에도 사용될 수 있다.
따라서, 본 발명의 과제는 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성을 갖는 단백질을 코딩하는 서열을 함유하는 DNA 또는 RNA, 특히 cDNA 핵산 서열을 제공하는 것이다.
델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성은 예를 들어 이하 실험 부분에서 후술되는 시험관내 효소적 시험을 사용하여 입증될 수 있다.
본 발명의 보다 구체적인 과제는 코딩 서열이 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성을 갖고 하기 서열 확인 번호 1의 뉴클레오티드 서열을 갖는 에이. 탈리아나의 단백질을 코딩하는 cDNA 서열 및 이 서열의 대립 유전자 변이체를 제공하는것이다.
제3도에 나타낸 서열(서열 확인 번호 2)에 대응하는 430개의 아미노산을 갖는 단백질을 코딩하는 상기 cDNA 서열은, 예를 들어 후술되는 상세한 설명의 조업 조건에 따라 에이. 탈리아나 발현 라이브러리에서 출발하여 나이스타틴에 대한 효모의 내성의 출현을 기초로 한 선별법을 사용함으로써 효모에서의 클로닝에 의해얻을 수 있는 cDNA 서열이다.
상기 서열 확인 번호 1의 뉴클레오티드 서열에 대한 정보는, 예를 들어 화학적 합성이나, 또는 혼성화 기술에 의해서나 또는 PCR 증폭에 의한 합성 올리고뉴클레오티드 탐침을 사용하여 유전자 라이브러리 또는 cDNA 라이브러리를 선별함으로써 당업자에게 공지된 방법에 의하여 본 발명이 재현될 수 있게 한다.
본 발명의 또다른 과제는 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성을 갖는 단백질을 코딩하고, 평균 또는 고도의 엄격한 조건하에서 서열 확인 번호 1의 뉴클레오티드 서열과 혼성화되거나 또는 이 서열과 약 60%이상의 서열 일치성을 갖는 DNA 서열을 제공하는 것이다.
서열 확인 번호 1의 서열과 검출가능한 방식으로 혼성화되는 서열은, 보통의 엄격한 표준 조건, 예를 들어 42℃에서 12시간 동안 50% 포름아미드 용액 SSCX6 중에서 혼성화된 후 세척하거나, 또는 보다 덜 엄격한 조건, 예컨대 42℃에서 24시간 동안 20% 포름아미드 SSCX6 용액 중에서 혼성화된 후 공지된 표준 조건 하에서 세척함으로써 혼성화된다[마니아티스(T. Maniatis) 등의 문헌 "Molecular cloning," cold Spring Harbor Laboratory Press, 1989 참조].
뉴클레오티드 서열 일치 백분율은, 예를 들어 NCBI 서버(server)에 대한 블라스트(BLAST) 프로그램 "basic local alignment search tool"을 사용하여 결정할 수 있다[알츠슐(S.F. Altschul) 등의 문헌 "J. Mol. Biol," 215, 403-410, 1990 참조].
본 발명은 또한, 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성을 갖는 단백질을 코딩하고, 프라이머로서 하기 서열 확인 번호 3의 아미노산 서열을 갖는 공통 서열을 코딩하는 올리고뉴클레오티드를 사용하는 PCR 기술에 의해 증폭될 수 있는 DNA 서열에 관한 것이다.
여기서, 제7 위치의 Xaa는 Trp 또는 Tyr이고, 제12 위치의 Xaa는 His 또는 Lys이다.
상기 서열 확인 번호 3의 서열은 서열 확인 번호 1의 뉴클레오티드 서열로부터 유래된 서열 확인 번호 2의 새로운 서열과 이하의 실험 부분에서 보다 상세히 설명되어 있는 바와 같이 C-7 위치와 다른 위치에서 작용 특이성을 갖는 다른 스테를 리덕타제나 또는 라민 B 수용체 중 어느 하나의 공지된 서열 사이에 일치하는 아미노산 서열을 배치함으로써 정의되어진 새로운 공통 서열에 해당한다. 서열 확인 번호 3의 아미노산 서열에 의해 주어진 정보로부터, 최대 45개의 뉴클레오티드로 구성된 프라이머가 정의 및 합성될 수 있으며, 이것은 재결합된 서열로서 제2 프라이머 올리고dT (17 뉴클레오티드)와 결합되어, 시판되는 PCR 분석 키트(예컨대, 스트라타젠사 제품)를 사용하여 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성을 갖는 단백질을 코딩하는 DNA의 증폭을 가능하게 할 것이다.
본 발명은 또한, 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성을 가지며, 하기 서열 확인 번호 2의 아미노산 서열 및 이 서열의 대립유전자 변이체 및 유사체를 갖는 에이. 탈리아나 단백질에 관한 것이다.
대립유전자 및 유사체란, 동일한 기능을 보유하는 한, 1 이상의 아미노산의 치환, 삭제 또는 첨가에 의해 변형된 서열을 포함한다. 변형된 서열은 예를 들면 당업자들에게 공지되어 있는 부위 지향적 돌연변이 유발 기술을 사용하여 제조할 수 있다.
본 발명의 특유 과제는 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성을 갖고, 상기 서열 확인 번호 2의 아미노산 서열을 가지며, 델타-7레드로 명명된 에이. 탈리아나 단백질에 관한 것이다.
본 발명은 또한, 서열 확인 번호 2의 서열과 약 60% 이상의 서열 일치성을 갖는 아미노산 서열을 갖는, 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성을 갖는 단백질에 관한 것이다.
서열 일치 백분율은 예를 들어 상기한 BLAST 프로그램을 사용하여 결정할 수 있다.
본 발명은 또한, 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성을 가지며, 상기한 델타-7레드로 명명된 에이. 탈리아나의 단백질과 교차 면역학적 반응성을 갖는 단백질에 관한 것이다.
상기 단백질은 예를 들면 공지된 방법에 따라 제조된 델타-7레드 단백질에 대한 항혈청을 사용하여 면역침전법에 의해 검출할 수 있다.
본 발명의 일 측면은 상기한 DNA 서열을 함유하는 숙주 세포에서의 발현에 의해 얻어지는, 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성을 갖는 단백질에 관한 것이며, 특히 상기 서열 확인 번호 2의 아미노산 서열을 코딩하는 DNA 서열을 함유하는 숙주 세포에서의 발현에 의해 얻어지는, 에이. 탈리아나의 단백질에 관한 것이다.
본 발명의 단백질이 숙주 세포에서의 발현에 의해 얻어지는 경우, 이 발현은 당업자들에게 공지되어 있는 유전 공학 방법 및 세포 배양법에 따라 행해진다.
상기 발현은 적당한 프로모터가 선행된 본 발명의 델타-7레드를 코딩하는 서열을 함유하는 원핵생물 숙주 세포, 예컨대 대장균, 또는 진핵생물 숙주 세포, 예컨대 포유동물 세포, 곤충 세포 또는 효모에서 수행될 수 있다.
얻어진 재조합 단백질은 글리코실화되거나 또는 비글리코실화될 수 있다.
특히, 본 발명은 효모에서의 발현에 의해 얻어지는 것과 같은 본 발명에 따른 단백질에 관한 것이다.
본 발명은 또한, 상기한 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성을 갖는 단백질에 대한 항체에 관한 것이다. 이 항체는 당업자에게 공지되어 있는 방법에 따라 제조된 다클론성 항체 또는 모노클론성 항체일 수 있다.
본 발명은 또한, 상기한 DNA 서열을 함유하는 발현 벡터 및 이 벡터에 의해 형질전환된 숙주 세포에 관한 것이다.
발현 벡터란 적당한 프로모터의 조절 하에서 단백질의 발현을 가능하게 하는 공지된 벡터이다. 원핵생물 세포의 경우, 프로모터는 예를 들어 lac 프로모터, trp 프로모터, tac 프로모터, β-락타마제 프로모터 또는 PL 프로모터일 수 있다. 포유동물 세포의 경우, 프로모터는 SV40 프로모터 또는 아데노-바이러스의 프로모터일 수 있다. 바쿨로바이러스 타입의 벡터는 곤충 세포에서의 발현을 위해 사용될 수도 있다. 효모 세포의 경우, 프로모터는 예를 들어 PGK 프로모터, ADH 프로모터, CYC1 프로모터 또는 GAL10/CYC1 프로모터일 수 있다.
숙주 세포는 원핵생물 또는 진핵생물 세포일 수 있다. 원핵생물 세포는 예를 들면, 대장균, 바실루스 또는 스트렙토마이세스일 수 있다. 진핵생물 숙주 세포에는 효모 및 사상균섬유상 진균 및 고등 생물 세포, 예컨대 포유동물 세포 또는 곤충 세포가 포함된다. 포유동물 세포는 햄스터 CHO 세포 또는 원숭이 Cos 세포일 수 있다. 곤충 세포는 예를 들면 SF9 세포이다. 효모 세포는 예를 들면 사카로마이세스 세레비시아에(Saccharomyces cerevisiae), 쉬조사카로마이세스 폼베(Schizoshaccharomyces pombe) 또는 클루이베로마이세스 락티스 (Kluyveromyces lactis)일 수 있다.
본 발명은 또한,
- C-7 위치가 불포화된 스테롤의 존재에 따라 그 독성이 좌우되는 나이스타틴 또는 그 유사 화합물에 대한 미생물의 내성을 이용하는 방법,
- 핵산과 상기 서열 확인 번호 1의 뉴클레오티드 서열을 혼성화시키는 방법,
- 무작위로 단리한 DNA 서열로부터의 데이타 처리 기술을 사용하여 핵산을동정하는 방법, 또는
- 단백질의 직접 발현에 이어, 상기 서열 확인 번호 2의 아미노산 서열을 갖는 단백질에 대한 항체를 사용하여 면역검출하는 방법
중에서 선택된 선별법으로 이루어지는, 미생물의 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성을 갖는 단백질을 코딩하는 핵산의 클로닝 방법에 관한 것이다.
본 명세서에서, 미생물이란 예를 들어 에스. 세레비시아에(S. cerevisiae), 에스. 폼베(S. pombe) 또는 케이. 락티스 (K. lactis)와 같은 효모를 의미한다.
나이스타틴과 유사한 화합물에는 예를 들면 암포테리신 B 또는 필리핀이 포함된다.
본 명세서에서, 혼성화란 공지된 표준 조건에 따라 보통 수준의 또는 매우 엄격한 조건 하에서의 혼성화를 의미한다(상기 마니아티스의 문헌 참조).
데이타 처리 기술을 이용한 동정은 예를 들면 상기한 BLAST 프로그램에 따라 수행될 수 있다.
선별법이 효모에서 나이스타틴에 대한 내성을 이용하는 상기 클로닝 방법의 일례는 이하 실험 부분에서 추가로 설명될 것이다.
본 발명의 주제는 상기 클로닝 방법에 의해 얻어지는 DNA 또는 RNA 핵산 서열이다. 이 핵산 서열은 클로닝이 행해지는 물질에 따라 원핵생물 기원 또는 진핵생물 기원, 예를 들면 인간 기원의 것일 수 있다.
본 발명의 주제는 또한, 상기 클로닝 방법에 의해 얻어지는 DNA 서열을 함유하는 벡터에 의해 형질전환된 숙주 세포이다. 이 숙주 세포는 원핵생물 또는 진핵생물 세포일 수 있다. 이러한 숙주 세포 및 벡터의 일례는 이미 위에서 기술한바 있다.
본 발명의 특별한 주제는 상기 정의된 본 발명에 따른 DNA 서열 또는 상기 클로닝 방법에 의해 얻어진 바와 같은 DNA 서열을 함유하는 벡터에 의해 형질전환된 효모 또는 사상균으로부터 선택된 숙주 세포이다.
또한, 본 발명의 주제중 하나는, 본 발명에 따라 형질전환된 숙주 세포를 배양해서 발현된 단백질을 단리시키는 것으로 이루어지는, 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성을 갖는 단백질의 제조 방법에 관한 것이며, 특히 숙주 세포가 코딩 DNA 서열이 효모 프로모터의 조절 하에 있게 되는 형질전환된 효모인 방법에 관한 것이다.
또한, 본 발명의 주제중 하나는, 환원될 스테롤을 상기 방법에 의해 얻어진 단백질과 함께 배양하고, 환원된 스테롤을 임의로 단리하는 것으로 이루어지는, C-7 위치에서 불포화된 스테롤의 시험관내 환원 방법에 관한 것이다.
또한, 본 발명의 주제중 하나는, 스테롤을 본 발명에 따라 형질전환된 숙주 세포와 함께 배양하고 얻어진 환원된 스테롤을 임의로 단리하는 것으로 이루어지는, C-7 위치에서 불포화된 외인성 스테롤의 생체내 환원 방법에 관한 것이다. 이 숙주 세포는 원핵생물 또는 진핵생물 세포, 특히 효모 또는 사상균일 수 있다.
또한, 본 발명의 주제중 하나는, 효모 또는 사상균 중에서 선택된 본 발명에 따라 형질전환된 숙주 균주를 배양하고, 축적된 환원된 스테롤을 임의로 단리하는 것으로 이루어지는, C-7 위치에서 불포화된 내인성 스테롤의 생체내 환원 방법에관한 것이다.
특히, 본 발명은 얻어진 환원된 스테롤이 콜레스테롤(P450SCC)의 측쇄의 제한 효소의 기질인 상기한 시험관내 또는 생체내 환원 방법에 관한 것이며, 특히 환원될 내인성 스테롤이 에르고스타 5,7 디엔 3-올, 에르고스타 5,7,24(28) 트리엔 3-올 또는 에르고스타 5,7,22 트리엔 3-올 또는 이들의 혼합물인 생체내 환원 방법에 관한 것이다.
본 발명의 주제는 또한, 효모 또는 사상균 중에서 선택된 본 발명에 따라 형질전환된 숙주 세포를 배양하고, 이와 같이 하여 축적된 C-7 위치에서 환원된 내인성 스테롤 또는 스테롤들을 임의로 단리하며, 환원된 스테롤을 P450SCC, 임의로는 아드레노독신 리덕타제(ADR) 및 아드레노독신(ADX)의 존재 하에서 배양하고, 얻어진 프레그네놀론을 임의로 단리하는 것으로 이루어지는, 프레그네놀론의 제조 방법에 관한 것이다.
본 발명의 특유한 주제는 숙주 세포가 효모인 상기한 프레그네놀론의 생산 방법이다.
본 발명은 또한, 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제의 활성을 갖는 단백질과 P450SCC, 임의로는 ADR 및 ADX를 공발현시키는 1종 이상의 벡터에 의해 형질전환된 효모를 배양하고, 유리 또는 에스테르화된 프레그네놀론을 임의로 단리시키는 것으로 이루어지는 프레그네놀론의 생산 방법에 관한 것이다.
본 발명은 특히, 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제의 활성을 갖는 단백질,P450SCC, ADR 및 ADX를 공발현시키는 형질전환된 효모가 배양되는 것인 상기 방법, 보다 구체적으로는 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성을 갖는 단백질이 에이. 탈리아나 델타 7-레드 단백질인 상기 방법, 특별히 효모 균주가 EC01/pCD63 균주인 상기 방법에 관한 것이다.
본 발명에 따른 프레그네놀론의 생산 방법의 예들이 하기 실험 부분에 제시되어 있다.
상기 프레그네놀론의 생산 방법을 수행하기 위해 사용되는 형질전환된 효모는, 예를 들면 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성을 갖는 단백질을 코딩하는 DNA 서열을 함유하는 본 발명의 발현 벡터, 및 사이토크롬 P450SCC 및 임의로는 ADR 및 ADX의 발현 벡터에 의해 공형질전환된 효모일 수 있다. 사이토크롬 P450SCC 및(또는) ADX의 발현 벡터는 공지되어 있으며, 그 제조 방법은 유럽 특허출원 제0340878호 및 하기 실험 부분에 추가로 기술되어 있다.
사용되는 형질전환된 효모는, 또한 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성을 갖는 단백질을 코딩하는 DNA 서열이 게놈의 특정 좌위, 예컨대 ADE2 좌위에서 조입되고, 에르고스테롤이 델타-7 리덕타제의 발현 조건 하에서 더 이상 주요 스테롤이 아닌 효모일 수 있다. 이어서, 얻어진 "조입된" 효모는 조입적 발현 카세트에 의하거나 또는 사이토크롬 P450SCC 및 임의로는 ADR 및 ADX를 코딩하는 DNA 서열을 함유하는 발현 벡터에 의해 형질전환될 수 있다.
프레그네놀론 또는 생체내에서 그의 아세트산 에스테르를 생성하는 효모 균주의 작제 방법의 일례는 이하의 실험 부분에 추가로 기술되어 있다.
따라서, 본 발명의 주제는 또한, 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제의 활성을 갖는 단백질, P450SCC, ADR 및 ADX를 공발현시키고, 유리 또는 에스테르화된 프레그네놀론을 축적하는 형질전환된 효모 균주, 특히 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성을 갖는 단백질이 에이. 탈리아나 델타 7-레드의 단백질인 상기 효모 균주, 특별히 정확한 작제 방법이 이하의 실험 부분에 추가로 주어져 있는 EC01/pCD63로 명명되는 효모 균주이다.
본 발명은 또한, 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제의 선천성 결함을 진단하기 위한 탐침으로서 사용되는, 상기 클로닝 방법에 따라 얻어지는 인체 DNA 서열을 포함한다. 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제의 결함은 예를 들면 혈청에서 콜레스테롤의 농도가 비정상적으로 낮은 것의 원인이 되는 7-데히드로콜레스테롤 리덕타제의 결함을 포함한다.
본 발명은 또한, 인체 게놈 DNA를 함유하는 시료를 표준 혼성화 조건 하에서 상기한 탐침과 함께 배양하여 게놈 DNA에 대해 탐침이 고정되었는지 또는 고정되지 않았는지의 여부를 밝히는 것을 포함하며, 고정이 되지 않거나 또는 고정이 감소되었다는 것은 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제가 선천성 결함이 있음을 나타내는 델타-5,7 스테롤, 델타-7 리덕타제의 결함을 검출하는 방법에 관한 것이다.
본 발명의 방법은 예를 들면 산모의 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제의 선천성 결함이나 또는 신생아 및 각종 질환 환자, 특히 RSH/SLO 증후가 임상적으로나타나는 환자의 선천성 결함의 검출을 가능하게 할 수 있다.
첨부된 도면은 본 발명의 특정 측면들을 예시한다.
다음의 실시예들은 본 발명을 제한하지 않고 예시한다.
실시예 1: 에이. 탈리아나의 델타-5,7 스데롤, 델타-7 리덕타제(델타-7레드)를 코딩하는 cDNA의 클로닝
A. 효모에서 에이. 탈리아나의 발현 라이브러리의 선별
출발 물질인 cDNA 발현 라이브러리는, 2엽 발아 단계의 에이. 탈리아나의 mRNA로부터 제조되고 Not I 부위로 경계를 이루고 있는 그 cDNA가 셔틀 벡터 대장균/에스. 세레비시아에 pFL61의 발현 카세트의 Bst XI 부위에 삽입되어진 것으로서 문헌[미네트(M. Minet) 등의 "Plant J.," 2, 417-422, 1992 참조]에 기술되어 있는 라이브러리이다. 이 카세트는 포스포글리세레이트 키나제 유전자(PGK)의 프로모터 및 종결 서열을 함유한다. 2u 서열로부터 유도된 효모의 복제 기원 및 선별 지시체인 URA3는 효모에서 벡터를 확실하게 증식시킨다. 대장균에서의 벡터의 증식은 플라스미드 pUC19로부터 유도된다.
문헌[티에리(A. Thierry) 등의 "Yeast", 6, 521-534, 1990]에 기술되어 있는 균주 S288C의 동종 균주인 효모 균주 FY1679 (Mata)는 문헌[기에츠(D. Gietz) 등의 "Nucleic Acids Res.," 20, 1425, 1992]에 기술되어 있는 리튬 아세테이트 방법을 사용하여 cDNA 라이브러리로 형질전환되었다.
이 세포를 "효모 질소 베이스"(디프코사) 7 g/l, 박토카스아미노산 (디프코사) 1 g/l, 글루코스 20 g/l, 트립토판 20 mg/l를 함유하고 우라실이 없는 합성 배지 SGI 상에 플레이팅하였다. 우라실에 대한 원영양주 형질전환체 105개를 얻은 후에, 이를 모으고, 다시 우라실이 없고 나이스타틴 2 또는 5 ㎍/ml를 함유하는 동일한 합성 배지상에 1 디쉬당 5 x 104세포의 비율로 플레팅하였다. 이러한 방법으로 각 나이스타틴 농도에 대하여 106개의 세포를 스크리닝하였다. 이를 28℃에서 3일간 배양한 후에, 2 ㎍/ml의 나이스타틴 농도에서 성장한 약 100개의 클론을 5개의 클론을 일 군으로 구성하여 수집하였다[여기서, 스테롤의 조성을 역상 고성능 액체 크로마토그래피(이하 RP-HPLC라 칭함)에 의해 분석하는 한편, 5 ㎍/ml의 나이스타틴 농도에서는 F22로 명명되는 하나의 내성 클론을 얻음].
B. 클론 F22에서 축적된 스테롤의 분석
효모의 전체 스테롤을 문헌[팍스(L. Parks) 등의 "Methods in Enzymol.," 111, 333-346, 1985]에 기술된 알칼리성 비누화 방법에 따라 준비한 후, RP-HPLC 및(또는) 기체 크로마토그래피(GC)에 의해 분석하였다.
얻어진 스테롤의 잔류물을 에탄올-테트라히드로푸란-물의 혼합물(65:10:25 v/v)에 용해시킨 후, 55℃의 온도 및 1 ml/분의 유속에서 물중 메탄올의 선형 구배(18분 동안 50% 내지 100%) 및 에르고스테롤, 캄페스테롤 및 콜레스테롤 표준물과 비교하여 205 nm 및 285 nm에서의 광도 측정 검출법을 사용하여 어플라이드 바이오시스템즈 C18 결합된 실리카 컬럼 (100 x 2.1 mm) 상에서 RP-HPLC에 의해 분석하였다.
또한, 스테롤의 조성을 담체 가스로서 헬륨을 사용하고 분사체 및 검출체 각각에 대한 온도가 280℃ 및 310℃인 알테크(Alltech) SE-30 모세관(30 mm x 0.32 mm) 상에서 GC에 의해 분석하였으며, 여기서 110℃ 내지 245℃의 온도에서 45℃/분의 비율로의 초기 증가시킨 후, 280℃에 도달하기 위하여 3℃/분의 비율로 온도를 증가시킨다.
RP-HPLC에 의한 분석(제1A도) 및 GC에 의한 분석(제1B도)은, 위에서 얻어진 클론 F22에 축적된 스테롤의 프로파일이 에르고스테롤, 형질전환되지 않은 균주 FY1679의 대부분의 스테롤 및 2개의 주요 스테롤에 의한 그의 교체물이 285 nm에서 흡수하지 않는 유사량으로 본질적으로 완전히 소실되는 특징을 가지고, 따라서 RP-HPLC에 의한 분석에 따른 공액된 이중 불포화도를 더 이상 갖지 않는다.
제1A도에서, 캄페스테롤(시그마사 제품) (24-R-에르고스타 5-엔 3-올)은 약 35%의 디히드로브라시카스테롤 (24-S-에르고스타 5-엔 3-올)을 함유한다.
C. 델타-7레드 cDNA의 클로닝
클론 F22에서 기원하는 플라스미드를 문헌[스트라데른(N. Strathern) 등의 "Methods in Enzymol.," 194, 319-329, 1991]에 기술되어 있는 방법에 따라 대장균에서 증폭시킨 후, Not I에 의해 절단시켰다. 약 600개의 염기쌍(bp)으로 이루어진 단편 및 1.6 kbp의 단편을 얻었다. 균주 FY1679를 상기 각 단편으로 형질전환시켰다. 형질전환된 효모의 각 클론의 스테롤에 있어서의 조성을 상기한 바와 같이 분석한 결과, 스테롤에서 변형된 프로파일의 원인이 되는 유전자를 운반하는 플라스미드를 식별할 수 있다. 이 방법으로 동정된 플라스미드를 pF22라 명명하였다.
D. 델타-7레드의 cDNA 서열의 결정
pF22의 cDNA 삽입물을, 다중 클로닝 부위의 Eco RI 부위가 Not I 제한 부위의 삽입에 의해 교체된 pUC9 (파마시아사 제품)으로부터 유도된 반면 LacZ 유전자의 해독 프레임을 보유하는 벡터 pUC9N의 Not I 부위에서 서브클로닝하였다. 이어서, 제한 효소 지도를 결정하였다(제2도).
Not I 외부 부위 및 EcoRI, PvuII 또는 HindIII 내부 부위를 각각 갖는 제한단편을 pBluscript 플라스미드(스트라타젠사 제품)에서 서브클로닝하였다. 뉴클레오티드 서열을 pBluscript pUC9, T3 및 T7의 직접 및 역 프라이머 또는 cDNA 뉴클레오티드 서열의 유도된 특이 프라이머를 사용함으로써 두 가닥 상에서 DNA 폴리머라제 시쿼나제(스트라타젠사제 키트)를 사용한 상거법(Sanger method)에 의해 결정하였다.
얻어진 모든 서열의 축적은 에이. 탈리아나의 델타-7레드 cDNA 뉴클레오티드 서열(서열 확인 번호 1)을 제공한다. 이것은 폴리아데닐화 서열로 종결되는 1496개의 뉴클레오티드로 구성된다. 이것은 제76 뉴클레오티드에서 메티오닌 개시서열로 시작하고 제1366 뉴클레오티드에서의 종결 코돈으로 끝나는 개방 해독 프레임을 갖는다. 이로부터 430개의 아미노산으로 된 단백질을 코딩하는 1290개의 뉴클레오티드로 된 개방된 해독 프레임이 생긴다. 델타-7레드 cDNA의 코딩 영역은 그로부터 유도된 아미노산 서열(서열 확인 번호 3)이 제3도에 도시되어 있는 델타-7레드 단백질을 코딩한다. 이 단백질의 서열은 49.286 kDa의 이론적 분자량을 갖는 430개의 아미노산 아민을 포함한다.
벡터 pUC9N에 델타-7레드 cDNA을 함유하는 대장균 DH5-1 균주(델타-7레드/pUC9N으로 명명됨)의 시료는 1995년 2월 1일자로 수탁 번호 I-1535로 CNCM에 기탁하였다.
E. 서열 확인 번호 3의 공통 서열의 결정
서열 데이타베이스(진뱅크 및 EMBL사)의 컴퓨터 탐색을 사용한 결과, 에이. 탈리아나의 델타-7레드 단백질의 서열이 다른 스테롤 리덕타제, 특히 문헌[로렌쯔(R.T. Lorentz) 등의 "DNA Cell Biol.," 11, 685-692, 1992 및 첸(W. Chen) 등의 "Yeast", 7, 305-308, 1991]에 각각 기재되어 있는 에스. 세레비시아에의 스테롤 C-14 리덕타제 및 스테롤 C-24(28) 리덕타제뿐만 아니라 문헌[시마누끼(M. Shimanuki)등의 "Mol. Biol. Cell," 3, 263-273, 1992]에 기술되어 있는 에스. 폼 베의 sts 1+ 유전자의 생성물 및 뉴로스포라 크라사(Neurospora crassa)의 스테롤 C-14 리덕타제와 약간의 서열 유사성을 갖는 것으로 나타났다. 또한, 델타-7레드 단백질은 닭의 라민 B 수용체 및 대응하는 인체 수용체의 C-종결 말단의 400개의 아미노산과 유사성을 보인다[우르만(H.J. Worman) 등의 "J. Cell Biol.," 111, 1535-1542, 1990 및 슐러(E. Schuler) 등의 "J. Biol. Chem.," 269, 11312-11317, 1994 참조].
위에서 얻은 델타-7레드 cDNA로부터 유도된 서열 확인 번호 2의 아미노산 서열과 3개의 효모 스테롤 리덕타제 및 2개의 라민 B 수용체의 아미노산 서열 사이에 서열 일치 배열을 확립한 후, PCR에 의해 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성을 갖는 단백질을 코딩하는 새로운 게놈 DNA 또는 cDNA 서열을 증폭시키기 위한 프라이머로서 사용될 수 있는 올리고뉴클레오티드를 제조하기 위하여, 다음 서열 확인번호 3의 아미노산 서열을 갖는 새로운 공통 서열을 동정하였다.
여기서, 제7 위치의 Xaa는 Trp 또는 Tyr이고, 제12 위치의 Xaa는 His 또는 Lys이다.
F. 효모에서 델타-7레드 단백질의 발현
a) 효모에서 유도할 수 있는 발현 벡터 델타-7/V8의 작제
개시 코돈의 직상류에 BamH I 제한 부위을 도입하고 중지 코돈의 직하류에 Kpn I 부위를 도입하기 위하여 정의된 하기 특이 올리고뉴클레오티드를 사용하여 PCR 증폭에 의해 pF22의 cDNA의 비코딩 영역을 삭제하였다.
cDNA는 Pfu DNA 폴리머라제 2 단위 및 0.2 uM의 상기 각 프라이머의 존재 하에서 "델타-7레드/pUC9N cDNA" 플라스미드 1 ng을 출발 물질로 하여 94℃, 10초; 52℃, 50초; 74℃, 90초; 스트라타젠사 PCR 키트를 사용한 33회 사이클과 같은 증폭 조건을 사용하여 증폭시켰다.
이로부터 약 1300 bp로 된 단편을 얻고, 이어서 제한 효소 BamH I 및 Kpn I으로 소화시키고, 대장균/에스. 세레비시아 pYeDP1/8-2 셔틀 벡터 (V8로 명명됨)의 BamH I 및 Kpn I 부위내로 삽입하였다[쿨린(C. Cullin) 등의 "Gene," 65, 203-217, 1988 참조]. V8은 선별 지시제 URA3를 가지고 있으며, 프로모터 GAL10/CYC1 및 PGK유전자의 종결 서열을 함유하는 효모 중에 발현 카세트를 함유한다. 이렇게 얻어진 벡터는 델타-7/V8로 명명되며, 갈락토스에 의한 델타-7레드 단백질의 유도성 발현을 가능하게 한다.
b) 델타-7레드 단백질의 생산
효모 균주 FY1679(마타사)를 상기한 기에츠의 문헌에 기술되어 있는 리튬 아세테이트 방법을 사용하여 위에서 얻은 델타-7/V8 플라스미드로 형질전환시켰다.
형질전환된 효모를 27℃에서 상기한 SGI 선택 배지(이 배지의 글루코스 농도는 5 g/l임)에서 배양하여, 마침내 세포 밀도 포화도(OD600nm= 12)를 얻었다. 이어서, 배양물을 일정 부피의 완전 배지 YP [효모 추출물(디프코사) 10 g/l 및 박토펩톤(디프코사) 10 g/l]를 첨가하여 희석시킨 후, 탄소원으로서 에탄올 1.5% v/v를 첨가하였다. 세포의 성장이 적어도 7 x 107세포/ml의 세포 농도에 도달하게 한 후, 20 g/l 농도의 갈락토스를 첨가하여 델타-7레드의 발현을 유도하였다.
이 유도는 또한 글루코스를 갈락토스(20 g/l)로 대체시킨 SGI 배지에 해당하는 SLI 최소 선택 배지 중에서 행하여, 마침내 2 x 107세포/ml의 세포 농도를 얻었다.
c) 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성의 시험관내 효소 시험
델타-7레드 단백질의 발현을 NADPH 재생 시스템없이 위에서 유도된 효모의 마이크로좀 또는 시토졸 세포 제제를 사용하는, 문헌[테이톤(M. Taton) 등의 "Biochem. Bioph. Res. Commun.," 181, 465-473, 1991]에 기술되어 있는 효소적 방법을 사용하여 분석하였다.
세포 분획들을 유도된 세포의 기계적 파괴에 의해 얻고, 문헌[어번(P. Urban) 등의 "Eur. J. Biochem.," 222, 843-850, 1994]에 개시되어 있는 방법에 따라 초원심분리에 의해 분획들을 단리하였다. 이어서, 수집된 세포를 TE-KCl 완충액(50 mM Tris-HCl, pH 7.4; 1 mM EDTA, 0.1M KCl)으로 2회 세척하고, 0.6 MTE-소르비톨 용혈 완충액에 재현탁시켰다. 여기에 0.45-0.5 mm 직경의 유리 비드(브라운사)를 이들이 세포 현탁액의 표면을 통해 보일 때까지 첨가한 후, 4℃에서 5분간 진탕하였다. 표면상의 세포 용해산물을 수집하고, 유리 비드를 용혈 완충액으로 3회 세척하였다. 이어서, 용해산물 및 세척액을 미토콘드리아 분획들을 제거하기 위하여 4℃에서 13분동안 20,000 g에서 원심분리하였다. 마이크로좀 분획을 함유하는 펠릿과 시토졸 분획을 나타내는 상청액을 각각 수집하였다.
얻어진 마이크로좀 분획 또는 시토졸 분획을 각각 37℃에서 기질로서 트윈 80 (1.5 g/l)로 유화시킨 150 um의 7-데히드로콜레스테롤을 함유하는 pH 7.3의 100 mM Tris-HCl 완충액 중에서 2 mM NADPH의 존재 하에서 90분간 배양하였다. 여기에 3 부피의 메탄올-디클로로메탄 혼합물(50:50, v/v)를 첨가하여 스테롤을 추출한 후, 표준 제품과 비교하여 GC에 의해 분석하였다.
7-데히드로콜레스테롤(RT = 16.528분)로부터의 콜레스테롤(RT = 15.887분)의 형성은 제4도에 보면, 3시간 동안 유도된 델타-7/V8 벡터에 의해 형질전환된 효모 FY1679로부터 위에서 얻은 마이크로좀 분획 (단백질 3.5 mg/ml)과, 더 큰 체류 시간(에르고스타 5-22 디엔 3-올에 대해서 RT = 16.682분; 에르고스테롤에 대해서 RT= 17.249분 및 에르고스타 5-엔 3-올에 대해서 RT = 17.664분)을 갖는 내인성 스테롤을 갖는 것으로 나타나 있다.
이러한 결과는, 델타-7레드 단백질이 한 편으로는 형질전환된 효모에서 발현되고, 다른 한 편으로는 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성을 갖는 것을 나타낸다.
실시예 2: C-7 위치에서 불포화된 효모의 내인성 스테롤의 생체내 환원
대부분의 스테롤이 C-5,7 위치에서 이중 결합을 갖는 효모 균주를 실시예 1에서 얻은 델타-7/V8 벡터로 형질전환시킨 후, 배양하고, 실시예 1에서 개시한 바와 같이 유도하였다. GC에 의해 프로파일을 분석한 내인성 스테롤을 추출하고, 실시예 1에 나타낸 바와 같이 예비 C18 컬럼 (100 x 4.6 mm)을 사용하여 RP-HPLC에 의해 정제한 후, IR, UV, MS 및 NMR에 의해 동정하였다. 다음의 3균주를 각각 사용하였다:
- 실시예 1에 기술한 균주 FY1679;
- 스테롤 C-22 디세추라제에 결함을 갖는 것을 특징으로 하고, 균주 FY1679와 문헌[몰잔(S.W. Molzahn) 등의 "J. Gen. Microbiol.," 72, 339-348, 1972]에 개시되어 있는 최초 균주 po15 사이를 교차시킴으로써 작제되고 에르고스타 5,7-디엔 3-올을 축적시키는 PLC 1051로 명명되는 돌연변이체 균주 erg5;
- 스테롤 C-22 디세추라제(erg5) 및 스테롤 C-24(28) 리덕타제(erg4)에 결함을 갖는 것을 특징으로 하고, 균주 FT1679와 스테롤의 돌연변이체를 탐색하는 효모의 조직적인 선별과정 동안 나이스타틴에 대한 자연적 내성을 획득한 상기한 몰잔등의 문헌에 개시되어 있는 균주 po15 사이를 교차시킴으로써 작제되고, 에르고스타 5,7,24(28) 트리엔 3-올을 축적시키는 PLC 1451로 명명되는 이중 돌연변이체 균주 erg4,5. 이중 돌연변이 erg4 및 erg5를 운반하는 생성된 단상체 균주는 갈락토스 및 비발효성 기질의 존재 하에서 성장하고, 우라실, 트립토판 및 히스티틴에 대해 영양요구성이다. 균주 PLC 1051 및 PLC 1451은 CNCM에 1995년 2월 10일자로 수탁번호 I-1536 및 I-1537로 각각 기탁하였다.
상기 3개의 형질전환된 균주로부터 각각 동정된 주요 환원된 스테롤은 다음 표에 주어져 있다.
실시예 3: C-7 위치에서 환원된 효모의 내인성 스테롤의 제한에 의한 시험관내 프레그네놀론의 생산
프레그네놀론을 문헌[와다(Wada) 등의 "Arch. Biochem. Biophys.," 290, 376-380, 1991]에 개시되어 있는 시험관내 콜레스테롤 측쇄의 효소적 제한 시험을사용하여 생산하였으며, 여기서 실시예 2에서 얻은 C-7 위치에서 환원된 260 uM의 스테롤은 140 nM의 아드레노독신 리덕타제, 1.16 uM의 아드레노독신 및 예를 들면 문헌[세이버트(D.W. Seybert) 등의 "J. Biol. Chem.," 254, 12088-12098, 1979]에 따른 부신으로부터 얻은 소 기원의 0.68 uM의 사이토크롬 P450SCC 존재하에서 pH 7.4의 10 mM 인산염 완충액 150 ul, 100 mM NaCl, 0.3% Tween 20 중에서 배양하였다.
반응을 150 uM의 NADPH를 첨가하여 촉발시켰다. 이를 37℃에서 80분간 배양시킨 후에, 메탄올-디클로로메탄 혼합물(50:5 v/v) 일 부피를 첨가하여 반응을 중지시켰다. 스테롤을 추출하고, 실시예 1에 나타낸 바와 같이 GC에 의해 분석하였다.
제5도는 각각 에르고스타 5-엔 3-올(제5A도), 에르고스타 5,24(28) 디엔 3-올(제5B도) 또는 에르고스타 5,22-디엔 3-올(제5C도)가 사이토크롬 P450SCC의 기질이고, 콜레스테롤의 제한에 의해 동일한 조건 하에서 얻어진 프레그네놀론의 RT와 동일한 RT를 갖는 생성물을 제공하는 것으로 나타났다.
얻어진 결과는, 델타-7레드를 발현시키는 형질전환된 효모가 사용할 수 있는 스테롤을 직접 축적하여 시험관내 생물학적 산화에 의해 프레그네놀론을 제조하는 것으로 나타났다.
실시예 4: 생체내 프레그네놀론 또는 그 아세트산 에스테르를 생산하는 효모 균주의 작제
A - 반수체 균주 FY1679교배형 에이(a) (FY1679 Mata)의 ADE2 좌위에 조입된 에이. 탈리아나의 델타-7레드어 대한 발현 카세트를 함유하는 균주 ELRO1의 작제
a) 조입 플라스미드 pAD델타-7(pADA7)의 작제
플라스미드 pAD 7을 제6도에 개시되어 있는 바와 같이 작제하였다. 에스. 세레비시아에의 ADE2 유전자를 함유하는 BgIII 단편 (2244bp)를 플라스미드 pASZ 11[스토츠(A. Stotz) 등의 "Gene," 95, 91, 1990]로부터 단리하고, 다중 클로닝 부위의 BamHI 부위에서 pBluescriptII KS+ 벡터(스트라타젠사)내로 삽입하였다.
이어서, pBS-ADE2로 명명되는 얻어진 플라스미드를 그의 단일 Stu I 부위에서 선형화하고 탈포스포릴화하였다. 실시예 1f에서 프라이머로서 tPGK의 3' 말단 및 URA3 유전자의 3' 말단과 각각 쌍을 이루는 것으로 정의된 다음의 올리고뉴클레오티드를 사용하는 PCR 기술에 의해 얻어진, 플라스미드 델타-7/V8로부터 프로모터 GAL0/CYC1, 델타-7레드 (스테롤 7 리덕타제) 코딩부위 및 종결부위 PGK(tPGK)를 함유하는 약 2.44 kb의 단편을 얻었다.
여기서 주형(80 ng)으로서 플라스미드 델타-7/V8와, 상기 올리고뉴클레오티드(각각 0.5 μM), 천연 Pfu DNA 폴리머라제(스트라트젠사에 의해 추천되는 완충액 중 1단위)를 사용하고, 35 사이클; 95℃에서 1분; 95℃에서 5초; 56℃에서 30초; 70℃에서 4분 30초와 같은 증폭 조건을 사용하였다. 이어서, 얻어진 증폭 단편을 상기 선형화된 플라스미드 pBS-ADE2의 무딘 단부에서 클로닝하여 약 4720 bp의 NotI-PstI 단편이 델타-7레드의 발현 카세트에 의해 간섭된 ADE2 유전자를 운반하는 플라스미드 pADA7를 얻었다.
b) 효모 균주 FY1679 Mata내로의 염색체 조입
제한 효소 NotI 및 PstI로 소화시킨 플라스미드 pADA7로부터 단리한 4720 bp의 NotI-PstI 단편을 상기한 기에츠 등의 문헌에 기술되어 있는 리튬 아세테이트 방법을 사용하여 형질전환시켜 효모 FY1679 Mata내로 도입하였다.
상동성 재조합에 의해 조입된 이 단편을 갖는 형질전환체를 나이스타틴에 대한 이들의 내성에 의해 선택하고, 이 표현형은 효모의 델타-5,7 스테롤을 델타-5 스테롤로 전환시키는 델타-7레드의 발현에 기인한다.
형질전환된 세포를 글루코스 (20 g/l)를 함유하고 아데노신 (20 mg/l)가 보충된 실시예 1F에 기술된 완전 배지 YP 중에서 4시간 동안 28℃에서 배양하였다. 이어서, 이들을 농축한 후, SLI-한천 최소 배지(박토카스아미노산 1 g/l; "효모 질소 기재" 7 g/l; 갈락토스 20 g/l; 아데노신 20 mg/l; 한천 20 g/l)위에 플레이팅하고, 28℃에서 철야 배양하여 델타-7레드 유전자의 발현을 유도하였다. 우라실 보충몰이 존재하지 않을 경우 세포의 성장이 제한을 받을 수 있다. 클론을 수집하고, 그룹화한 후, 아데닌 20 mg/l으로 보충된 갈락토스 20 g/l를 함유하는 완전 배지 YP상의 디쉬에 나이스타틴의 농도를 증가시키면서(각각 0 ㎍/ml, 1 ㎍/ml, 2 ㎍/ml, 5 ㎍/ml, 20 ㎍/ml) 플레이팅하였다. 제4일에, 5 ㎍/ml의 나이스타틴 농도에서 성장한 약 20개의 클론을 얻었다. 이 클론 중 12개를 우라실, 류이신, 트립토판, 히스티딘 및 아데닌(각각 20 mg/l)이 풍부한 최소 배지 WO(아미노산이 없는 "효모 질소 베이스" 7 g/l, 글루코스 20 g/l) 중의 디쉬에서 계대 배양하였다.
이어서, ADE2 유전자의 붕괴로 인한 아데닌의 영양요구성을 우라실, 류이신, 트립토판, 히스티딘이 풍부하되 아데닌이 없는 상기한 최소 배지 WO상에서의 성장이 없음을 관찰함으로써 확인하였다.
효모의 게놈내 발현 카세트의 존재는 얻어진 클론의 게놈 DNA로부터 PCR 증폭에 의해서, 그리고 상기 서열 확인 번호 6및 7의 서열을 갖는 프라이머를 사용함으로써 확인하였다.
조입된 델타-7레드 유전자의 기능성은 효모에서 축적되고 5 미터 크기의 SE 30 모세관 컬럼(알테크사)으로 제1B도에 도시되어 있는 조작 방법에 따라 알칼리성 비누화에 의해 추출한 스테롤의 조성을 GC로 분석하여 확인하였다. 이 분석은 클론을 갈락토스의 존재 하에서 배양하였을 때 C-7 위치에 포화된 스테롤을 함유하는 변형된 프로파일을 나타낸다. ELRO1로 명명된 균주는 에르고스타 5,7,22 트리엔 3-올(에르고스테롤) 대신에 에르고스타 5-엔 3-올 및 에르고스타 5,22-디엔 3-올을 축적시키며, 초기 균주 FY1679의 대부분의 스테롤은 제7도에 도시되어 있다.
이 방법으로 작제된 균주 ELRO1은 갈락토스의 존재 하에서 배양될 때 프로모터 GAL10/CYC1에 의한 전사 조절 때문에 델타-7레드 유전자를 발현시킨다. 비록 델타-7레드에 대한 발현 단위가 ADE2 유전자와 동일한 전사 방향을 갖지만, 상기 배양이 글루코스의 존재하에서 행해졌을 때는 프로모터 GAL10/CYC1이 억제되기 때문에 델타-7레드의 발현이 GC에 의한 스테롤의 조성의 분석에 의해 검출될 수 없다.
B - 반수체 군주FY1679 교배형 알파 (mat. 알파)의 좌위 LEU2와 SPL1 사이에 조입된 소 아드레노독신 리덕타제 (ADRm)의 성숙형에 대한 발현 카세트를 함유하는 균주 CDR01의 작제
a) 셔틀 벡터 대장균-에스. 세레비시아 V13의 작제
V13 벡터는 선별 지시체 URA3(상기한 쿨린의 문헌 참조) 및 프로모터 GAL10/CYC1 (pG/C)를 함유하는 효모내 발현 카세트를 가지고 있으며, 또한 추가의 SalI 부위(Sa)가 제8도에 주어져 있는 작제 다이아그램에 따라 다중 클로닝 부위로 도입되어진 V8 벡터에 해당한다.
V8 벡터는 제한 효소 HindIII 및 BamHI에 의해 소화되었으며, URA3 유전자 및 프로모터 GAL10/CYC1를 함유하는 얻어진 BamHI-HindIII 단편(이하 "ura-gal"이라 칭함)(1722 bp)은 제한 효소 HindIII 및 BamHI에 의해 소화된 pUC18 벡터(파마시아사)의 대응 부위 사이에 서브클로닝되었다.
이어서, "ura-gal" 단편을 30 사이클; 86℃, 5초; 95℃, 10초; 38℃, 40초; 55℃, 5초 및 74℃, 2분의 조건을 사용하여 95℃에서 30초간 변성시켜 얻은 pUC18/"ura-gal" 플라스미드 30 ng, 제조업자의 완충액 중의 Taq DNA 폴리머라제(뵈링거사) 2 단위 및 1μM의 다음 서열을 갖는 각 프라이머로부터 PCR에 의해 증폭시켰다.
서열 확인 번호 8의 프라이머는 "ura-gal" 단편과 동일한 BamIII GGATCC 부위, 주형과 혼성화되지 않는 BamIII 부위에서의 3개의 연속적 뉴클레오티드 및 GAL10/CYC1 프로모터와 상동성인 서열을 함유한다. 서열 확인 번호 9의 프라이머는 다중 클로닝 부위 pUC18의 HindIII 부위에 선행하는 서열과 쌍을 이룬다. 증폭 후에 얻어진 1722 bp의 HindIII-BamIII 단편을 GAL10/CYC1 프로모터 (pG/C)를 함유하는 254 bp의 단편을 방출하는 XhoI 및 BamHI에 의해 소화시킨 후, 제한 효소 XhoI 및 BamHI에 의해 소화시킨 V8 벡터내에 서브클로닝시켰다.
생성된 V13 벡터는 성숙한 소 아드레노독신 리덕타제 (ADRm), 성숙한 소 아드레노독신 (ADXm) 및 소 사이토크롬 P450SCC를 코딩하는 cDNA의 용이한 서브클로닝을 가능하게 하는 제한 부위를 포함한다.
V13 벡터에서 출발하여, V13-ADR 벡터, V13-ADX 벡터 및 V13-SCC10 벡터를 각각 다음 방법으로 제조하였다.
a)V13-ADR 백터의 작제
ADRm을 코딩하는 cDNA를 운반하는 1478 bp의 SalI-KpnI 단편을 유럽 특허 출원 제340878호의 실시예 25에 개시되어 있는 플라스미드 pGBADR-2로부터 단리시키고, V13 백터의 대응하는 부위에서 서브클로닝하여 V13-ADR 벡터를 얻었다.
b)V13-ADX 벡터의 작제
ADXm을 코딩하는 cDNA를 운반하는 390 bp의 SalI-BamHI 단편을 유럽 특허 출원 제340878호의 실시예 23에 개시되어 있는 플라스미드 pGBADX-1로부터 단리시키고, V13 벡터의 대응하는 부위에서 서브클로닝하여 V13-ADZ 벡터를 얻었다.
c)V13-SCC10 벡터의 작제
P450SCC를 코딩하는 CDNA를 운반하는 1554 bP의 SalI-EcoRI 단편을 유럽 특허 출원 제340878호의 실시예 6에 개시되어 있는 플라스미드 pGBSCC-10으로부터 단리시키고, V13 백터의 대응하는 부위에서 서브클로닝하여 V13-SCC10 벡터를 얻었다.
b) 조입 플라스미드 pCD62-1 및 pCD62-2의 작제
플라스미드 pCD62-1 및 pCD62-2를 제9도에 도시되어 있는 바와 같이 작제하였다.
a)조입 플라스미드 pFL26CD의 작제
다음 방법에 따라, 플라스미드 pFL62[본네우드(N. Bonneaud) 등의 "Yeast," 7, 609-615, 1991 참조]내 spl1 유전자(spl1이라 칭함)[콜만(C. Kolman) 등의 "J. Bacteriol.," 175, 1422, 1993 참조]의 5' 말단과 leu2 유전자를 분리시키는 유전자간 영역에 NotI 부위를 도입시켰다.
leu2의 5' 말단 및 spl1의 3' 말단을 운반하는 704 bp 및 347 bp의 DNA 단편을, 704 bp의 단편을 증폭시키기 위해서 다음의 뉴클레오티드 서열(서열 확인 번호 10 및 11)을 갖는 프라이머 및 347 bp의 단편을 증폭시키기 위해서 다음의 뉴클레오티드 서열(서열 확인 번호 12 및 13)을 갖는 프라이머를 각각 사용하여 PCR에 의해 합성하였다.
서열 확인 번호 11 및 12의 프라이머는 NotI 부위에 대응하는 서열 GGCGGCCG 서열을 가지며, 여기서 3개의 염기는 주형과 쌍을 이루지 않는다. 서열 확인 번호 10의 프라이머는 leu2의 중지 코돈으로부터 536 bp 상류에 위치하는 서열과 쌍을 이루며, 서열 확인 번호 13의 프라이머는 spl1A의 194 bp 상류에 위치하는 서열과 쌍을 이룬다.
704 bp 및 347 bp의 단편은 주형으로서 플라스미드 pFL26을 사용하고 효소로서 Pfu DNA 폴리머라제를 사용하여 공급자(스트라타젠사)에 의해 설명되는 표준조건 하에서 PCR을 사용하여 먼저 증폭시킨다.
얻어진 2개의 증폭된 단편은 5' 말단에서 출발하여 서열 확인 번호 11의 프라이며(704 bp 단편) 및 서열 확인 번호 12의 프라이머(347 bp의 단편)에 의해 생성되는 말단 수준에서 20 bp이상 쌍을 이루며, 이 20 bp는 상기 각 프라이머의 첫번째로부터 20개의 뉴클레오티드에 각각 해당한다.
704 bp (1ng) 및 347 bp (2 ng)의 DNA 단편을 쌍으로 만듦으로 인해 생기는 생성물을, 서열 확인 번호 10 및 13의 프라이머를 사용하고, 30사이클; 95℃, 10초; 60℃, 5초; 45℃, 1분; 65℃, 5초; 및 72℃, 2분의 조건을 30 사이클을 행한후 72℃에서 7분의 사이클을 행하는 조건을 사용하고, 각 프라미어 50 pmol 및 반응 완충액 50 μl 중의 Pfu DAN 폴리머라제(스트라타젠사) 1 단위를 사용하여 증폭시켰다. NotI 제한 부위를 함유하는 1031 bp의 증폭된 단편을 얻었다. 이어서, 이 단편을 BstXI 및 Nsil 효소로 소화시키고, NotI 부위를 함유하는 920 bp의 얻어진 단편을 pFL26의 초기 BstXI-NsiI 단편내로 삽입하여 제9a도에 도시되어 있는 바와 같은 유전자 지도를 갖는 플라스미드 pFL2SCD를 얻었다.
b)플라스미드 pCD60의 작제
- 플라스미드 pDP10036의 준비
성숙한 소 아드레노독신(ADXm)을 코딩하는 cDNA를 운반하는 390 bp의 SalI-BamHI 단편을 플라스미드 V13-ADX로부터 단리시킨 후, 유도가능한 GAL10/CYC1 프로모터 및 종결체 terPGK와 접하는 플라스미드 pTG10033의 다중 클로닝 부위의 SalI-BgIII 부위에서 서브클로닝하였다. 제18도에 도시되어 있는 유전자 지도를 갖고 발현 벡터 pTG10031(제17도)에 대응하는, 프로모터 CYC1 및 terPGK(여기서, 프로모터 CYC1은 프로모터 GAL10/CYC1에 의해 교체되었음)를 함유하는 플라스미드 pTG10031을 이하 후술되는 방법에 따라 준비하였다.
이렇게 얻어진 pDP10034로 명명되는 플라스미드는 ADX 발현 카세트, 즉 GAL10/CYC1 및 terPGK의 전사적 조절 하에서 ADXm을 코딩하는 유전자를 운반한다. 이하에서, "발현 카세트"란 용어는 GAL10/CYC1 및 terPGK의 전사적 조절 하에 있는 모든 유전자에 대해 사용될 것이다.
선별 지시체 URA3 및 ADR 발현 카세트를 운반하는 3593 bp의 HindIII 단편을 제한 효소 HindIII에 의한 소화에 의해 플라스미드 V13-ADR로부터 단리시킨 후, 제한 효소 HindIII에 의해 소화된 플라스미드 pDP10034의 대응 부위내에 삽입하였다. 이렇게 얻어진 pDP10036으로 명명되는 플라스미드는 마커 URA3(제9b도)에 의해 서로 분리된 ADX 및 ADR 발현 카세트를 함유한다.
- 플라스미드 pCD60의 준비
ADR 발현 카세트를 운반하는 2770 bp의 AflIII-AccI 단편을 제한 효소 AflIII 및 AccI를 사용하여 플라스미드 pDP10036의 부분적 소화에 의해 단리시키고, DNA 폴리머라제 1의 클레노우(klenow) 단편으로 처리하여 무딘 단부를 생성한후, 플라스미드 pBlue-Script KS+(스트라타젠사)의 SamI 부위의 무딘 단부에 연결시킨 후 서브클로닝하였다. 이렇게 얻어진 pCD60으로 명명되는 플라스미드에서는, ADR 발현 카세트가 AflIII/SamI 연결 부위의 209 bp 상부에 위치하고 서브를 로닝된 단편으로부터 유래되는 쪽 또는, pBlue-Script KS+(제9b도)의 다중 클로닝 부위(MCS1)으로부터 유래되는 쪽 중 하나인 NotI 부위의 어느 한 쪽에 프레임화된다.
c) 플라스미드 pCD62-1 및 pCD62-2의 작제
제한 효소 NotI에 의해 소화된 플라스미드 pCD60으로부터 단리한 2558 bp의 NotI 단편을 플라스미드 pFL26CD의 단일 NotI 부위에서 서브클로닝하였다. 단편이 삽입되는 방향에 따라, pCD62-1 및 pCD62-2로 명명되는 2개의 플라스미드를 얻었다(제9c도).
플라스미드 pCD62-1에서, ADR 발현 카세트는 leu2 유전자의 전사 방향으로 배향되는 반면에, 이 배향은 플라스미드 pCD62-2에서는 역전된다.
플라스미드 pCD62-1는 후속 작제를 위해 보존하였다.
c) 효모 균주 FY1679(Mat알파)에서의 염색체 조입
플라스미드 pCD62-1은 균주 FY1679의 염색체 좌위와 상동적인 영역을 함유한다. 이들 영역은 제10도에 도시되어 있는 1060 bp(A)의 BglII-ClaI 단편, 707 bp(B)의 EcoRI-NotI 단편, 및 602 bp(C)의 NotI-BglII 단편에 각각 대응한다.
플라스미드 pCD62-1의 486 bp의 ClaI-EcoRI 단편에 대응하는 영역을 균주 FY1679로부터 삭제하였는데, 이는 이 균주가 류신 영양요구주임을(균주 LEU2-)을 의미한다[시코르스키(R.S. Sikorski) 등의 "Genetics," 122, 19, 1989 참조].
플라스미드 pCD62-1을 제한 부위가 상동성 영역 밖에 위치하는 제한 효소 XbaI로 소화시킴으로써 선형화하고, 이어서 리튬 아세테이트 방법을 사용하여 균주 FY1679(Mat알파)에 형질전환에 의해 도입시켰다(상기한 기에츠의 문헌 참조].
효모에 의한 DNA의 세포 수복능("갭 수복") 및 표현형 LEU2+를 갖는 재조합체의 선택은 첫번째 예로서 다음과 같은 2 유형의 재조합체가 선택될 수 있게 하는데, 즉 단편 A 및 B의 수준에서 상동성 재조합후에 제1 유형이 얻어지고, 단편 A 및 C의 수준에서 상동성 재조합후에 제2 유형이 얻어진다. 그러나, 후자의 재조합만이 표현형 LEU2+의 회복뿐만 아니라 ADR 발현 카세트의 조입을 가능하게 한다.
이 제2 유형의 클론을 선택하기 위해서는, 균주 FY1679(Mat알파)의 게놈에서 ADR 발현 카세트의 존재 및 올바른 편재화를 모두 확인하기 위하여 상기 서열 확인번호 10의 프라이머 및 다음 뉴클레오티드 서열을 갖는 프라이머를 사용하여 PCR에 의해 선별을 행할 수 있다.
이러한 선별에서, 서열 확인 번호 14의 프라이머는 ADRm을 코딩하는 서열과 전적으로 쌍을 이루며, 서열 확인 번호 10의 프라이머는 염색체 서열과 쌍을 이룬다(제10도).
증폭 반응은 공급자에 의해 설명된 표준 조건 하에서 주형으로서 균주 FY1679(Mat알파)로부터 단리한 게놈 DNA(20 ng)[호프만(C. Hoffman) 등의 "Gene," 57, 267, 1987]과, Taq DNA 폴리머라제(1U, 뵈링거사), 및 각각의 프라이머화된 30 PCR 사이클(95℃, 10초; 55℃, 1분 및 72℃, 3분) 50 pmol을 사용하여 수행하였다.
이러한 증폭의 결과, 발현 카세트가 조입되어진 경우에는 2.9 kb의 대응하는 단편이 단리되었다. 이와 반대의 경우에는, 증폭 생성물이 검출되지 않았다.
조입된 ADR 발현 카세트를 함유하는, 이 방식으로 선택된 균주 FY1679(Matalpha)는 CDR01이라 명명된다.
이 균주에 의한 ADR의 발현은 실시예 1F에 기술된 프로토콜에 따라 제조된 시토졸 세포 분획으로부터 항ADR 항체에 의해 인식된 단백질의 면역검출에 의해 드러났다.
균주 CDR01에 의해 발현된 ADR의 기능성은 실시예 3에서 기술된 시험관내 콜레스테롤의 측쇄에 대한 효소적 제한 시험에서 확인되었으며, 여기서 정제된 ADR(0.28 pmol)은 총 단백질 100 ug를 함유하는 균주 CDRO1의 시토졸 세포 분획으로 교체되었다. 콜레스테롤의 프레그네놀론으로의 생체전환률은 정제된 ADR에 의해 얻어진 것과 비교할만한 약 25%인 것으로 관찰되었다.
C. 에이. 탈리아나의 델타-7레드 및 ADRm을 공발현시키는 배수체 균주 ECO1의 작제.
배수체 균주 ECO1은 문헌[스프라규(G. Sprague) 등의 "Methods in Enzymology," 194, 77, 1991]에 개시되어 있는 프로토콜에 따라 얻어진 반수체 군주 CDRO1 및 ELRO1을 교차시킴으로써 얻었다.
우라실, 트립토판 및 히스티딘 (각각 20 mg/ml)이 풍부하나 류이신이 없는 상기한 최소 배지 WO에 대한 일차 선택은 배수체 클론 LEU2+(ADR 발현 카세트의 존재를 나타내는 원영양성 형질)의 단리를 가능하게 한다. 이어서, 이 클론을 상기한 고상 합성 SLI-한천 배지 상에서 5 ㎍/ml에서 나이스타틴에 대한 그들의 내성(델타-7레드에 대한 발현 카세트의 존재를 보여주는 내성 형질)에 대해 시험하였다.
이렇게 하여 나이스타틴에 내성인 클론들로부터 임의로 한 종을 분리하여 ECO1이라 칭하였다.
D - 프레그네놀론 및 프레그네놀론 3-아세테이트를 생성하는 ECO1/pCD63의 작제
a) 발현 플라스미드 pCD63의 작제
플라스미드 pCD63을 제11도에 도시되어 있는 바와 같이 작제하였다.
ADX 발현 카세트, 선별 지시체 URA3 및 ADR 발현 카세트를 함유하는 4961 bp의 NotI 단편을 위에서 제조한 플라스미드 pDP10036으로부터 단리시키고, 제한 효소 NotI로 소화시킨 후, 플라스미드 pFL45L의 다중 클로닝 부위의 NotI 부위에서 클로닝하였다[본네우드(N. Bonneud) 등의 "Yeast," 7, 609, 1991]. pDP10037로 명명되는, 이렇게 얻어진 벡터는 제11도에 도시되어 있다.
한편, 플라스미드 pDP10037을 제한 부위가 ADRm을 코딩하는 유전자내에 위치하는 효소 TthlIII로 소화시킴으로써 선형화하였다.
다른 한편, P450SCC에 대한 발현 카세트 및 URA3 마커의 5' 말단을 함유하는 3476 bp의 PvuII-EcoRV 단편을 위에서 얻은 플라스미드 V13-SCC10으로부터 정제하고, 제한 효소 PvuII 및 EcoRV로 소화시켰다.
얻어진 2개의 각 선형 DNA는 한편으로는 유전자 URA3의 5' 말단 및 GAL10/CYC1에 대응하고, 다른 한편으로는 제11a도에 도시한 바와 같은 terPGK에 대응하는 상동성 영역을 갖는다.
이어서, 이러한 2개의 단편을 리튬 아세테이트 방법(상기한 기에츠의 문헌 참조)을 사용하여 공형질전환에 의해 효모 균주 FY1679 (Mata)내로 도입시켰다.
우라실 및 트립토판에 대한 원영양성 재조합체(URA3+, RTP1+)의 후속 선택은 제한 효소 TthlIII로 소화시킴으로써 생성되는 이중 가닥 파괴가 상동성 재조합에 의한 발현 카세트 P450SCC의 조입으로 인해 수복되어진 클론이 단리되게 한다.
재조합체(URA3+, RTP1+)의 선택은 류이신, 히스티딘 및 류이신(각각 20mg/ml)이 풍부하나 우라실 및 트립토판이 없는 상기한 최소 배지 WO 상에서 수행하였다. 50개의 수집된 클론에서 시작하여, 전체 DNA를 문헌[호프만(C. Hoffman)등의 "Gene," 57, 267, 1987]에 기술되어 있는 방법으로 추출한 후, 대장균 XL1-Blue(스트라타젠사)의 균주내로 일렉트로포레이션에 의해 도입시켰다. "갭수복"에 의해 생성된 플라스미드에 의해 형질전환된 클론을 암피실린 50 mg/l를 함유하는 풍부 배지 LB(트립토판 1%, 효모 추출물 0.5%, NaCl 1%) 상에서 선택하였다. 선택된 클론 중 하나에서 시작하여, pCD63으로 명명되는 플라스미드를 문헌[샘브룩(J. Sambrook) 등의 "Molecular Cloning," 코올드 스프링 하버 레버러토리 출판사, 1989]에 개시되어 있는 방법에 따라 추출하였다. 얻어진 플라스미드 pCD63은 제11b도에 도시되어 있는 바와 같이 발현 카세트 ADX 및 URA3에 의해 분리된 P450SCC를 함유한다.
b) 플라스미드 pCD63에 의한 균주 EC01의 형질전환
플라스미드 pCD63을 리튬 아세테이트 방법(상기한 기에츠의 문헌 참조)을 사용한 형질전환으로써 위에서 얻어진 균주 ECO1내로 도입하였다. 이어서, 형질전환된 효모를 우라실, 트립토판 및 류이신이 없으나 히스티딘(20 mg/l)이 보충된 상기한 최소 배지 WO 상에서 배양하였다.
이 방법으로 ECO1/pCD63으로 명명되는 균주를 단리하였다. 이 균주 시료를 ECO1/pCD63을 참고하여 CNCM에 1995년 2월 10일자로 수탁 번호 I-1538로 기탁하였다.
c) 프레그네놀론 및 프레그네놀론 3-아세테이트의 생체내 생산
균주 ECO1/pCD63을 28℃에서 호기성 조건 (130 r/분) 하에 3리터 들이 얼렌메이어 플라스크 내 실시예 1A에 기술한 선택 배지 SGI(여기서, 글루코오스의 농도는 5 g/l임)내에서 최고 성장(정지 성장 상태)에 도달(DO600 = 12-13)할 때까지 배양하였다. 이어서, 배양물을 상기한 완전 배지 YP 일 부피를 첨가하여 희석시키고, 이어서 탄소 공급원으로서 추가량의 에탄올(0.5 % v/v)을 첨가하였다. 새로운 최고 성장상태에 도달하면(DO600 = 12-13), 배양물에 갈락토스 20 g/l를 진한 용액(500 g/l)의 형태로 첨가하여 각각 프로모터 GAL10/CYC1의 조절 하에 있는 ADXm, ADRm, P450SCC 및 델타-7레드를 코딩하는 유전자의 발현을 동시에 유도하였다.
4개의 유전자의 공발현은 다음의 방법에 따른 각각의 배양물의 세포 및 상청액에 축적된 스테롤의 분석에 의해 드러났다:
유도한 지 9시간 및 24시간 후에 배양액 중 시료 50 ml를 수거하였다. 배양배지로부터 세포를 분리시키기 위하여 각 시료를 원심분리하였다(4000 g, 10분, 4℃).
한편, 세포를 실시예 1F에 기술되어 있는 방법에 따라 유리 비드의 존재 하에서 기계적 분쇄에 의해 용혈시켰다. 이렇게 얻어진 용해산물에서 출발하여, 핵산 일 부피를 첨가하여 세포내 스테롤을 추출하였다.
다른 한편, 배양 배지에 존재하는 스테롤을 핵산 일 부피를 첨가하여 직접 추출하였다.
추출된 스테롤의 조성을 표준 생성물과 비교하여 실시예 1에 나타낸 바와 같이 GC에 의해 분석하였다.
유도한 지 9시간 및 24시간 후에 얻어진 생성물을 제12a도 및 제12b도에 각각 나타내었다.
유도한 지 9시간 후에, 제12a도는 다음 결과를 나타낸다.
- 세포 용해산물에, 매우 약한 피크만이 프레그네놀론의 체류 시간(RT = 9.9분)에서 존재하는 반면 대부분의 화합물이 표준 프레그네놀론 아세테이트의 체류 시간(RT = 11.8분)과 동일한 체류 시간에서 존재함. 소량의 C-7 위치에서 환원된 효모의 내인성 스테롤(에르고스타 5-엔 3-올 및 에르고스타 5,22 디엔 3-올)이 RT = 18분 및 RT = 17분에서 각각 동정되었다. 분석하기 전에 세포 용해산물을 알칼리 비누화하면 대부분의 화합물이 프레그네놀론과 동시에 이동한다. 이로부터 11.8의 RT를 갖는 축적된 화합물이 프레그네놀론 아세테이트에 해당한다는 것이 확인되었다.
- 세포 배지에, 프레그네놀론 또는 그의 아세트산염이 확실하게 존재하지 않음.
유도한 지 24시간 후에, 제12b도는 다음 결과를 나타낸다.
- 세포 용해산물에, 효모의 환원된 내인성 스테롤(RT = 17분 및 RT = 18분)뿐만 아니라 소량의 프레그네놀론(RT = 10.2분) 및 프레그네놀론 아세테이트(RT = 12분)이 존재함. 콜레스테롤(RT = 16.2분)은 추출전에 첨가된 내부 표준물이다.
- 세포 배지에, 프레그네놀론 아세테이트가 대부분 존재하고 프레그네놀론은극소량 존재함.
상기한 pFL45L과 같은 대조 플라스미드에 의해 형질전환된 균주 ECO1으로 이루어진 병행 실험에서는, 프레그네놀론 또는 그의 아세트산염에 대응하는 피크가 나타나지 않았다.
이 방법으로 행한 스테롤의 동정으로부터, 효모 균주 ECO1/pCD63이 외인성 스테롤의 어떤 공급원의 부재 하에서도 갈락토스의 존재로 유도한 후, 유도한지 9시간 후에 대부분이 생성되는 프레그네놀론 및 프레그네놀론 아세테이트를 축적하는 것으로 나타났다.
이러한 결과는 한편으로는 균주 ECO1의 C-7 위치에서 환원된 내인성 스테롤의 효과적인 이동을 증명하며, 다른 한편으로는 내인성 스테롤의 측쇄의 제한 반응의 커플링이 매우 효과적임을 증명한다.
조입된 균주의 요약 표
실시예 4의 제조 방법: 플라스미드 pTG10033의 작제
1. 새로운 다중 클로닝 부위를 갖는 pUC19의 유도체
클로닝 벡터 M13mp19[야니쉬-폐론(C. Yanish-Peron) 등의 "Gene," 33, 103, 1985]를 끝을 절단한 1acI 유전자의 서열내로 NotI 부위를 도입시키기 위하여 다음의 올리고뉴클레오티드를 사용하여 돌연변이시켜 플라스미드 M13TG724를 얻었다.
이어서, EcoRI, SnaBI 및 NotI 부위를 함유하는 "폴리링커"를 다음의 올리고 뉴클레오티드를 사용하여 플라스미드 M13TG724의 EcoRI 부위내로 도입시켜, 증폭단계동안 삽입물의 변형이 관찰된 플라스미드 M13TG7244를 얻었다.
플라스미드 M13TG7244의 삽입물은 다음의 뉴클레오티드 서열을 갖는다.
여기서, EcoRI, SnaBI 및 SstI 부위는 밑줄이 그어져 있으며, pUC19의 lacZ 서열은 이탤릭체로 쓰여져 있다. 플라스미드 M13TG7244를 제한 효소 EcoRI 및 SstI로 소화시킨 후, MluI 및 AvrII 부위를 함유하는 "폴리링커"를 다음의 올리고뉴클레오티드를 사용하여 도입하였다.
효소 PvuII로 소화시킨 후에, 얻어진 PvuII 단편을 pUC19에서 서브클로닝하여(상기한 야니쉬-포르크의 문헌 참조) 플라스미드 pTG7457을 얻었다(제13도).
2. PGK 종결체의 서브클로닝
pUC19를 제한 효소 BamHI 및 EcoRI으로 소화하고, 다음의 올리고뉴클레오티드를 사용하여 새로운 "폴리링커" BamHI SstI를 도입하였다.
이 방법으로 얻은 플라스미드 pTG7453을 제한 효소 BamHI 및 SstI로 소화시켰다. BamHI와 SstI 사이의 "폴리링커" 부위를 위에서 얻은 플라스미드 pTG7457의 유도체내로 도입하고, 제한 효소 BamHI 및 SstI로 소화시켰다. 얻어진 새로운 플라스미드는 PvuIII, HindIII, BamHI, EcoRI, XbaI, SmaI, BgIII, SstI(=SacI), MluI, AvrII, EcoRI, SnaBI, NotI, SnaBI 및 PvuI 부위를 함유한다.
이 새로운 플라스미드를 제한 효소 BgIII 및 HindIII로 소화시키고, 여기에 PGK 종결체를 함유하는 BgIII-HindIII 단편[히체만(R.A. Hitzeman) 등의 "Nucleic Acids Res.," 10, 7791, 1982; 로이슨(G. Loison), "Yeast," 5, 497, 1989]을 삽입하여 플라스미드 pTG10014를 얻었다(제15도).
3. 프로모터의 서브클로닝
a) CYC1 프로모터
플라스미드 pTG7453의 BamHI와 SstI 사이의 "폴리링커"의 부위를 상기한 플라스미드 pTG7454의 유도체내로 도입시켰다. 얻어진 새로운 플라스미드를 제한 효소 SnaBI에 의해 제한한 후, 파아지 f1의 복제 기원을 함유하는 플라스미드 pEMBL8[덴테(L. Dente), "Nucleic acid Res.," 11, 1645, 1983]의 456 bp의 RsaI-DraI 단편을 도입시켜 플라스미드 pTG7503을 얻었다.
유럽 특허 출원 제0340378호의 실시예 6에서 제조된 에스. 세레비시아에의 CYC1 프로모터를 함유하는 플라스미드 pGBSCC-9의 0.78 kb의 BglII HindIII 단편, "폴리링커" 및 케이. 락티스의 락타제 종결체를 제한 효소 BglII 및 HindIII로 소화시킨 플라스미드 pTG7503에서 서브클로닝하여 플라스미드 pTG10004를 얻었다(제16도).
이어서, CYC1 프로모터의 XhoI 및 MluI 부위를 다음의 올리고뉴클레오티드를 사용하여 플라스미드 pTG10004의 이중 가닥 DNA의 부위 지향적 돌연변이유발에 의해 제거하였다.
이렇게 얻은 플라스미드 pTG10005를 제한 효소 SalI 및 XhoI로 소화시킨 후, MluI 부위를 다음의 올리고뉴클레오티드를 사용하여 도입시켜 플라스미드 pTG10006을 얻었다.
b) GAL10/CYC1 프로모터
플라스미드 pYeDP1/8-2[쿨린(C. Cullin) 등의 "Gene," 203, 1988]를 제한 효소 XhoI로 개방시켰다. 생성된 응집성 말단을 DNA 폴리머라제의 클레노우 단편으로 충진시킨 후, 플라스미드를 재연결시켰다. 이렇게 얻은 플라스미드 pTG10010(여기서, GAL10/CYC1 프로모터는 더 이상 XhoI 부위를 함유하지 않음)이 PCR 증폭을 위한 주형으로서 사용된다.
4. 발현 벡터 pTG10031의 작제
lacZ를 코딩하는 서열의 나머지 부분을 다음의 올리고뉴클레오티드를 사용하여 부위 지향적 돌연변이 유발에 의해 플라스미드 pTG753에서 제거하여 플라스미드 pTG7549를 얻었다.
이어서, 플라스미드 pTG7549에 존재하는 LacZ 프로모터를 삭제하기 위하여 미리 제한 효소 NotI 및 HindIII에 의해 소화된 플라스미드내에 하기 올리고뉴클레오티드를 삽입시켰다. 이로서 상기 두 제한 부위를 회복시키는 플라스미드 pTG7553을 얻었다.
CYC1 프로모터를 함유하는 BamHI MluI 단편을 제한 효소 BamHI 및 MluI에 의해 소화시킨 플라스미드 pTG10006로부터 얻고, PGK 프로모터를 함유하는 MluIHindIII 단편을 제한 효소 MluI 및 HindIII에 의해 소화시킨 플라스미드 pTG10015로부터 단리하였다. 이러한 2단편을 연결시키고, 얻어진 연결 생성물을 미리 제한 효소 MluI 및 HindIII에 의해 소화된 플라스미드 pTG7553내에 삽입하였다.
ClaI 및 NotI 부위를 함유하는 BamI MluI "링커"를 구성하는 서열 확인 번호 31의 하기 올리고뉴클레오티드와 혼성화되는 서열 확인 번호 30의 하기 올리고뉴클레오티드를 첨가하고 연결시켜 발현 벡터 pTG10031을 얻었다(제17도).
위에서 플라스미드 pYeDP1/8-2로부터 얻어진 PCR에 의해 증폭된 단편을 제한 효소 ClaI 및 SalI로 소화시킨 후, 동일한 제한 효소로 미리 소화시킨 플라스미드pTG10031내로 삽입시켜 플라스미드 pTG10033을 얻었다(제18도).
제1도는 효모 FY 1679에서 에이. 탈리아나 라이브러리를 선별함으로써 얻어진 나이스타틴에 대해 내성이 있는 클론 F22로부터 추출한 전체 스테롤의 프로파일. 분석은 205 nm 또는 285 nm에서 RP-HPLC에 의하거나 (제1A도) 또는 형질전환되지 않은 효모 FY1679와 비교하여 GC에 의해 (제2B도) 행한다.
제2도는 플라스미드 pF22의 Not I 단편의 제한효소 지도 및 서열화 전략을 나타낸 도면.
제3도는 cDNA 델타-7레드의 뉴클레오티드 서열 (서열 확인 번호 1) 및 대응하는 아미노산 서열(서열 확인 번호 2)를 나타내는 도면.
제4도는 유도가능한 발현 벡터 "델타-7/V8"로 형질전환시킨 F11679의 마이크로좀 분획의 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성의 시험관내 측정 결과를 나타내는 도면. 분석은 GC로 행하였으며, 분석 결과 내인성 스테롤 5,22 디엔 3-올(RT=16.682); 에르고스테롤 (RT=17.249); 에르고스타 5-엔 3-올 (RT=17.664)의존재 하에서 기질인 7-데히드로콜레스테롤 (RT=16.528)이 콜레스테롤 (RT=15.887)로 형질전환된 것으로 나타났다.
제5도는 델타-7레드를 발현시키는 형질전환된 효모로부터 정제한 에르고스타 5-엔 3-올(제5A도); 에르고스타 5,24(28) 디엔 3-올(5B도) 또는 에르고스타 5,22 디엔 3-올(5C도)의 제한에 의해 시험관내에서 프레그네놀론을 생성한 후, P450SCC, ADX 및 ADR로 배양시키는 것을 나타낸 도면. 분석은 콜레스테롤의 조절 제한(실선)과 비교하여 GC로 행한다.
제6도는 ADE2 좌위에서 델타 7-레드 (스테롤 델타 7-리덕타제)를 코딩하는 cDNA의 조입을 허용하는 조입 플라스미드 pDA델타-7의 작제를 예시하는 도면.
제7도는 균주 FY1679 및 갈락토스의 존재 하에서 배양된 조입된 균주 ELR01의 알칼리성 비누화에 의해 추출된 전체 스테롤의 GC에 의한 분석을 나타내는 도면.
제8도는 다중 클로닝 부위에 단일 SalI (Sa) 부위를 함유하는 셔틀 벡터 대장균-에스. 세레비시아에 V13의 작제를 예시하는 도면.
제9도는 ADR 발현 카세트의 유전자 leu2와 spl1델타의 유전자간 영역으로의 삽입을 가능하게 하는 조입 플라스미드 pCD62-1 및 pCD62-2의 작제 단계를 나타내는 도면. MCS1 및 MCS2; 다중 클로닝 부위
제10도는 균주 CDR01의 작제 전략을 나타내는 도면.
제11도는 2개의 발현 카세트 ADX 및 P450SCC를 함유하는 발현 플라스미드pCD63의 작제 단계를 나타내는 도면.
제12도는 갈락토스로 9시간(제12a도) 또는 24시간(제12b도)동안 유도한 후 균주 EC01/pCD63으로부터 단리한 세포 (세포 용해산물) 또는 배양 배지 (배지)로부터 추출한 스테롤의 GC에 의한 분석을 나타내는 도면.
제13도는 플라스미드 pTG 7457의 구조를 나타내는 도면.
제14도는 플라스미드 pTG 7453의 구조를 나타내는 도면.
제15도는 플라스미드 pTG 10014의 구조를 나타내는 도면.
제16도는 플라스미드 pTG 10004의 구조를 나타내는 도면.
제17도는 플라스미드 pTG 10031의 구조를 나타내는 도면.
제18도는 플라스미드 pTG 10033의 구조를 나타내는 도면.

Claims (30)

  1. 서열 확인 번호 2의 아미노산 서열 및 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성을 갖는 단백질을 코딩하는 DNA 또는 RNA 핵산 서열.
  2. 제1항에 있어서, 핵산이 cDNA인 핵산 서열.
  3. 제2항에 있어서, 코딩 서열이 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성을 갖고 하기 서열 확인 번호 1의 뉴클레오티드 서열을 갖는 에이. 탈리아나의 단백질을 코딩하는 것인 cDNA 서열.
  4. 하기 서열 확인 번호 3의 아미노산 서열을 갖는 공통 서열을 코딩하는 핵산 서열.
    여기서, 제7 위치의 Xaa는 Trp 또는 Tyr이고, 제12 위치의 Xaa는 His 또는 Lys이다.
  5. 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성을 가지며, 하기 서열 확인 번호 2의 아미노산 서열을 갖는 에이. 탈리아나 단백질.
  6. 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성을 갖고 서열 확인 번호 2의 아미노산 서열을 가지며, 델타-7레드로 명명된 에이. 탈리아나 단백질.
  7. 제1항 내지 3항 및 제4항 중 어느 한 항에 따른 DNA 서열을 함유하는 숙주 세포에서의 발현에 의해 얻어지는, 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성을 갖는 단백질.
  8. 서열 확인 번호 2의 아미노산 서열을 코딩하는 DNA 서열을 함유하는 숙주 세포에서의 발현에 의해 얻어지는, 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성을 갖는 에이. 탈리아나 단백질.
  9. 제7항에 있어서, 숙주 세포가 효모인 단백질.
  10. 제1항 내지 3항 및 제4항 중 어느 한 항에 따른 DNA 서열을 함유하는 발현 벡터.
  11. 제10항에 따른 벡터에 의해 형질전환된 숙주 세포.
  12. C-7 위치가 불포화된 스테롤의 존재에 따라 독성이 좌우되는 나이스타틴 또는 그 유사 화합물에 대한 미생물의 내성을 이용하는 방법,
    - 핵산과 서열 확인 번호 1의 뉴클레오티드 서열을 혼성화시키는 방법,
    - 무작위로 단리한 DNA 서열로부터의 데이타 처리 기술을 사용하여 핵산을 동정하는 방법, 또는
    - 단백질의 직접 발현에 이어, 서열 확인 번호 2의 아미노산 서열을 갖는 단백질에 대한 항체를 사용하여 면역검출하는 방법
    중에서 선택된 선별법으로 이루어지는, 미생물의 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성을 갖는 단백질을 코딩하는 핵산의 클로닝 방법.
  13. 제11항에 있어서, 숙주 세포가 효모 또는 사상균인 형질전환된 숙주 세포.
  14. 제11항에 따른 형질전환된 숙주 세포를 배양해서 발현된 단백질을 단리시키는 것으로 이루어지는 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성을 갖는 단백질의 제조 방법.
  15. 제14항에 있어서, 숙주 세포는 코딩 DNA 서열이 효모 프로모터의 조절하에 있게 되는 형질전환된 효모인 방법.
  16. 환원될 스테롤을 제14항에 따라 얻어진 단백질과 함께 배양하고, 얻어진 환원된 스테롤을 임의로 단리시키는 것으로 이루어지는, C-7 위치가 불포화된 스테롤을 시험관내에서 환원시키는 방법.
  17. 스테롤을 제11항에 따른 형질전환된 숙주 세포와 함께 배양하고, 얻어진 환원된 스테롤을 임의로 단리시키는 것으로 이루어지는, C-7 위치가 불포화된 외인성 스테롤을 생체내에서 환원시키는 방법.
  18. 제13항에 따른 형질전환된 숙주 세포를 배양하고, 축적된 환원된 스테롤을 임의로 단리시키는 것으로 이루어지는, C-7 위치가 불포화된 내인성 스테롤을 생체내에서 환원시키는 방법.
  19. 제16항 또는 제18항에 있어서, 얻어진 환원된 스테롤이 콜레스테롤(P450SCC)의 측쇄의 제한 효소의 기질인 시험관내 또는 생체내 환원 방법.
  20. 제19항에 있어서, 환원될 내인성 스테롤이 에르고스타 5,7 디엔 3-올, 에르고스타 5,7,24(28) 트리엔 3-올 또는 에르고스타 5,7,22 트리엔 3-올 또는 이들의 혼합물인 생체내 환원 방법.
  21. 제13항에 따른 형질전환된 숙주 세포를 배양하고, 이와 같이 하여 축적된 C-7 위치가 환원된 내인성 스테롤 또는 스테롤들을 임의로 단리하며, 환원된 스테롤을 P450SCC, 임의로는 아드레노독신 리덕타제(ADR) 및 아드레노독신(ADX)의 존재하에서 배양하고, 얻어진 프레그네놀론을 임의로 단리하는 것으로 이루어지는, 프레그네놀론의 제조 방법.
  22. 제21항에 있어서, 숙주 세포가 효모인 방법.
  23. 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 및 P450SCC, 임의로는 ADR 및 ADX의 활성을 갖는 단백질의 공발현을 허용하는 1종 이상의 벡터에 의해 형질전환된 효모를 배양하고, 유리 또는 에스테르화된 프레그네놀론을 임의로 단리하는 것으로 이루어지는프레그네놀론의 제조 방법.
  24. 제23항에 있어서, 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제, P450SCC, ADR 및 ADX 활성을 갖는 단백질을 공발현시키는 형질전환된 효모가 배양되는 것인 프레그네놀론의 제조 방법.
  25. 제24항에 있어서, 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성을 갖는 단백질이 에이. 탈리아나 델타 7-레드 단백질인 방법.
  26. 제25항에 있어서, 효모 균주가 ECO1/pCD63 균주인 방법.
  27. 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제, P450SCC, ADR 및 ADX 활성을 갖는 단백질을 공발현하고 유리 또는 에스테르화된 프레그네놀론을 축적하는 형질전환된 효모 균주.
  28. 제27항에 있어서, 델타-5,7 스테롤,델타-7 리덕타제 활성을 갖는 단백질이 에이. 탈리아나 델타 7-레드 단백질인 효모 균주.
  29. 제28항에 있어서, ECO1/pCD63로 명명되는 효모 균주.
  30. 제17항에 있어서, 얻어진 환원된 스테롤이 콜레스테롤(P450SCC)의 측쇄의 제한 효소의 기질인 시험관내 또는 생체내 환원 방법.
KR1019960003564A 1995-02-15 1996-02-14 델타-5,7스테롤,델타-7리덕타제활성을갖는에이.탈리아나의단백질을코딩하는dna서열,델타-7레드단백질,그제조방법,형질전환된효모균주및그용도 KR100422293B1 (ko)

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