JPWO2004103360A1 - 抗ウイルス作用を有する化合物およびその配合剤 - Google Patents

Abstract

式１［Ｒ１は、−（ＣＨ２ａＸ（ＣＨ２）ｂＣＨ３又は−（ＣＨ２ｃＸ（ＣＨ２）ｄＹＣＨ３又は−ＣＯ（ＣＨ２）ｅＣＨ３又は−（ＣＨ２）ｆＣＨ３、Ｒ２は、−ＣＯ（ＣＨ２）ｎＣＨ３、Ｒ３、Ｒ４及びＲ５は、水素、脂肪族あるいは芳香族カルボン酸残基を表す（式中Ｘ及びＹは０又はＳ、ａ〜ｆ、ｎは数を表す）］で表され、かつ、ＭＴ−４細胞におけるＨＩＶ−１誘発細胞病原性効果（ＣＰＥ）を５０％阻害する濃度ＥＣ５０と、細胞増殖試験におけるＭＴ−４細胞の生存を５０％減少させる濃度ＥＣ５０との比安全係数Ｓ．Ｉ＝ＥＣ５０／ＥＣ５０が１０以上であるホルボール誘導体を有効成分として含む抗ウイルス配合剤。特にヒト免疫不全ウイルス（ＨＩＶ）に対して有効である。

Description

本発明は、抗ウイルス作用を有するホルボール誘導体を有効成分とし、更にウイルスの複製過程又は成熟過程の阻害剤、及び所望により他の薬剤、例えば、ホルボール誘導体以外の抗ウイルス作用を有する薬剤、前述の各種薬剤による副作用を抑制又は除去するための解毒剤を含む抗ウイルス配合剤、特にヒト免疫不全ウイルス（ＨＩＶ）のようなウイルスに対して有効な抗ウイルス配合剤に関するものである。

後天性免疫不全症候群（ＡＩＤＳ；エイズ）を引き起こす原因であるヒト免疫不全ウイルス（ＨＩＶ）が発見されて以来、有効な抗ＨＩＶ薬を開発するための研究がさかんに行われ、近年、この分野で著しい進歩が見られる。エイズ治療薬の研究開発においては、抗ＨＩＶ作用を有する新規化学薬剤の研究開発以外に、天然の抗ＨＩＶ作用を有する物質の探索も盛んに行われており、例えば、種々の化学構造を有する植物由来の化合物が、ＨＩＶ−１の複製やそれにかかわる酵素を阻害することが報告されている（例えばＣｈｅ，１９９１；Ｓｃｈｉｎａｚｉ，１９９２；Ｎａｓｒ，Ｃｒａｄｏｃｋ ＆ Ｊｏｈｎｓｏｎ，１９９２；Ｅｌ−Ｍｅｋｋａｗｙ ｅｔ ａｌ．，１９９５；Ｅｌ−Ｍｅｋｋａｗｙ，Ｍｅｓｅｌｈｙ，Ｋｕｓｕｍｏｔｏ，Ｋａｄｏｔａ，Ｈａｔｔｏｒｉ，Ｎａｍｂａ，１９９８；Ｎｇ，Ｈｕａｎｇ，Ｆｏｎｇ ＆ Ｙｅｕｎｇ，１９９７；Ｋｕｓｕｍｏｔｏ ＆ Ｈａｔｔｏｒｉ，１９９９参照）。
植物由来の生理活性物質は、原料である植物から比較的容易に入手可能であり、また和漢薬や世界各地の民間治療薬の原料として使用される植物も多く、生理活性についての多量の情報の蓄積があることから、有効な抗ＨＩＶ薬としても期待されている。
しかしながら、現在までに発見されている植物由来の抗ＨＩＶ作用を有する物質は何れも活性が充分ではない。また、植物由来の前記物質のなかには毒性や発癌性などの有害な副作用を有するものもあるので、有用な生理活性と有害な生理活性とを勘案して、例えば抗ＨＩＶ薬のような抗ウイルス剤として最適なものを選択することは非常に難しい。そのため、高い抗ウイルス作用（例えば、抗ＨＩＶ作用）を有し且つ有害な副作用が少ない前記物質の発見及びそれをベースとした有効な抗ウイルス剤、例えば抗ＨＩＶ剤の開発が望まれていた。
本発明者らは天然のエイズ治療薬を探索する過程で、抗ＨＩＶ作用を指標に種々のエジプト民間薬を探索し、クロトン・チグリウム（Ｃｒｏｔｏｎ ｔｉｇｌｉｕｍ）種子〔種子の生薬名：ハズ（巴豆）〕のメタノールエキス及び水エキスが細胞毒性濃度（選択インデックスは各々３４．４，５０．０）より低い濃度（ＩＣ_５０は各々０．０２５と２．０μｇ／ｍＬ）でＭＴ−４細胞でのＨＩＶの増殖及び細胞病原性効果（ＣＰＥ）を阻害することを見出した（Ｋａｗａｈａｔａ，Ｏｔａｋｅ，Ｍｏｒｉ，Ｍｏｒｉｍｏｔｏ，Ｕｅｂａ，Ｋｕｓｕｍｏｔｏ ｅｔ ａｌ．，１９９６）。本発明者は特に、クロトン・チグリウムに含まれるチグリアン型のホルボールエステル、とりわけ特定のホルボール誘導体にエイズウイルスの増殖を強く抑制する効果があることを見出した。
ところで、現在の抗ＨＩＶ療法においては、抗ウイルス剤を単独で使用することは殆どなく、複数の薬剤を同時に用いる多剤併用療法が主流となっている。その背景には、エイズ治療に使用可能な逆転写酵素阻害剤、プロテアーゼ阻害剤などを抗ＨＩＶ薬として単独で使用した場合には、必ずしも充分な抗エイズウイルス効果が期待できないことがある。
すなわち、現在の抗ＨＩＶ薬は、エイズウイルスの複製又は成熟を抑制又は阻止するに過ぎないので、エイズ治療では絶えずエイズウイルスの増殖を抑制又は阻止し続けなければならない。一方、エイズウイルスは逆転写を繰り返す毎に変異を起こすので、薬剤耐性が出現し易く、その結果、エイズウイルスの複製又は成熟を抑制又は阻止する機序による抗ＨＩＶ薬は、臨床効果が低下することが判っている。
前述の欠点を補うために、例えば、２種の逆転写酵素阻害剤を併用してウイルスの複製抑制を行う２剤併用療法が行われている。更に、２剤併用療法を用いても、長期投与により抗ＨＩＶ薬に対するエイズウイルスの耐性が生じ、充分な治療効果が得られなくなった場合は、より強力な３剤併用療法、すなわち、例えば、ヌクレオシド系の逆転写酵素阻害剤２種＋プロテアーゼ阻害剤１種による３剤併用療法が行われ、臨床試験によりその長期的効果が認められている。
抗ＨＩＶ薬としては現在、逆転写酵素阻害薬及びプロテアーゼ阻害薬が市販されており、またインテグラーゼ阻害薬及びコレセプター薬などが開発されつつある。
このような現状において、以下に示すように、種々の阻害剤、抗ウイルス剤、前記阻害剤や抗ウイルス剤に対する解毒剤が提案されている。
阻害剤関連：例えば、特開平５−２７９３２９号公報（内部ラクタム環を有するＨＩＶプロテアーゼ阻害剤）、特開平５−３３１０６７号公報（レトロウイルスプロテアーゼの阻害剤）、特開平６−２５１５８号公報（置換ピロリジン誘導体及びＨＩＶプロテアーゼ阻害剤）、特開平６−７３００４号公報（置換ピペコリン酸誘導体及びＨＩＶプロテアーゼ阻害剤）、特開平７−２８５８７７号公報（ＨＩＶ−１の逆転写酵素阻害剤）、並びに特開平１１−３２２７８９号公報（アミノ酸誘導体）。
抗ウイルス剤関連：例えば、特開平５−９７８８８号公報（新規オキセタノシン誘導体、その塩及び抗ウイルス剤）、特開平６−５６８２５号公報（ベンゾジアゼピン類）、特開平６−２３４６４１号公報（抗ウイルス組合せ）、特開平６−３１６５２４公報（抗エイズウイルス剤）、並びに特開平７−８２２９２号公報（新規なグリチルレチン酸関連化合物又はそれらの塩）。
解毒剤関連：例えば、特開平９−３０９７４号公報（エイズウイルス抑制剤等の毒性、副作用の消除法とその製造方法）。
抗ＨＩＶ薬の作用機序に関しては、ＨＩＶが正常宿主細胞（ヒトのＣＤ４陽性Ｔリンパ球やマクロファージ）に結合した後、続く感染細胞中での複製から成熟するまでの過程において、いくつかの作用点が考えられている。以下、図１，２に基づいて、ＨＩＶウイルスの複製及び成熟過程について簡単に説明する。
図１にＨＩＶウイルスの概略構造を示す。ウイルス殻１は脂質二重膜２からなり、その表面に、マトリックス・蛋白質（ＭＡ）とｇｐ４１とｇｐ１２０とからなる構造体を有している。ウイルス殻１の内部には、コア・蛋白質（ＣＡ）、ヌクレオキャプシド・蛋白質（ＮＣ）、ＲＮＡ、逆転写酵素３、インテグレース４及びプロテアーゼ５などが存在する。
図１に示す構造を有するＨＩＶウイルスは、図２に示す機序により複製され、成熟する。図２において、エンベロープ（ウイルス殻１）を持ったウイルス粒子は、特異的な細胞膜分子（受容体；ケモカインレセプター及びＣＤ４）に結合する〔過程▲１▼〕。次いで、エンベロープを利用して細胞膜に融合して〔過程▲２▼〕、細胞内に侵入する。脱殼した〔過程▲３▼〕ウイルスは自らの逆転写酵素によってＲＮＡを逆転写して〔過程▲４▼〕ＤＮＡを複製し、複製されたＤＮＡは細胞核内へ移行する〔過程▲５▼〕。細胞核内のＤＮＡはインテグラーゼによって組み込まれ〔過程▲６▼〕、プロウイルスとなる。更に、ＨＩＶの遺伝子情報が増幅転写され、ＨＩＶの蛋白質がＨＩＶウイルスの有するプロテアーゼの働きで合成され〔過程▲７▼〕、コア−蛋白質の集合〔過程▲８▼〕と、エンベロープの会合〔過程▲９▼〕が行われて、感染性ウイルス粒子の成熟〔過程▲１０▼〕が完了する。また、結合−成熟の過程でウイルスを抑制する未知の作用部位又は作用機序〔過程▲１１▼〕が考えられている。トランスゴルジ網によるＨＩＶウイルスの形成、放出及び成熟〔過程▲１２▼、▲１３▼及び▲１４▼〕も行われる。
現在のエイズ治療においては、図２に示す機序におけるＨＩＶウイルスの細胞膜への結合からＤＮＡの組み込みまでの前記過程において、ＲＮＡをＤＮＡに転写する逆転写酵素を阻害する〔過程▲４▼を阻害する〕薬剤と、プロウイルスが成熟するまでの後期過程において、コア−蛋白質の合成に関与するプロテアーゼを阻害する〔過程▲７▼を阻害する〕薬剤の２種が抗ＨＩＶ薬の中心であり、これらの薬剤を２剤以上を組み合わせた多剤併用療法が試みられている。
一方、前記の特定のホルボール誘導体は、逆転写酵素の阻害及びプロテアーゼの阻害という前述の二つの代表的な抗ＨＩＶ作用を有せず、別の機序による抗ＨＩＶ作用、すなわち、ＨＩＶウイルスが宿主細胞と結合して融合するまでの過程を阻害する〔過程▲１▼及び過程▲２▼を阻害する〕ことによる抗ＨＩＶ作用を有するものと考えられる。
従って、特定のホルボール誘導体と前述の各種阻害剤（又は従来の抗ＨＩＶ薬）１種以上とを組み合わせて用いれば、すなわち、このような構成を有するいわゆるカクテル製剤を用いれば、このカクテル製剤は、ＨＩＶウイルスの複製又は成熟に関する複数の過程に同時に作用するので、従来の抗ＨＩＶ薬に比べて一層強い抗ＨＩＶ作用を有することが予想される。
本発明は、前述のような観点に基づいて成されたものであり、その目的とするところは、従来から知られている抗ウイルス剤に比べて一層高い抗ウイルス作用を有し、且つ有害な副作用が少ない抗ウイルス剤（例えば抗ＨＩＶ剤）を提供することにある。

本願の第一の発明は、少なくとも次式１：

［式中、Ｒ_１は、
−（ＣＨ_２）ａＸ（ＣＨ_２）ｂＣＨ_３（式中、ＸはＯ又はＳを表し、ａは１ないし３の数であり、ｂは０ないし５の数である。）で表される基を表すか、
−（ＣＨ_２）ｃＸ（ＣＨ_２）ｄＹＣＨ_３（式中、Ｘ及びＹはＯ又はＳを表し、ｃは１ないし３の数であり、ｄは１ないし５の数である。）で表される基を表すか、
−ＣＯ（ＣＨ_２）ｅ ＣＨ_３（式中、ｅは０ないし１２の数である。）で表される基を表すか、又は
−（ＣＨ_２）ｆ ＣＨ_３（式中、ｆは０ないし５の数である。）で表される基を表し、
Ｒ_２は−ＣＯ（ＣＨ_２）ｎＣＨ_３（式中、ｎは３ないし１２の数を表す。）で表される基を表し、
Ｒ_３，Ｒ_４およびＲ_６は、互いに独立して、水素原子、脂肪族あるいは芳香族カルボン酸残基を表す。］
で表され、かつ、
ＭＴ−４細胞におけるＨＩＶ−１誘発細胞病原性効果（ＣＰＥ）を５０％阻害する濃度ＥＣ_５０と、細胞増殖試験におけるＭＴ−４細胞の生存を５０％減少させる濃度ＣＣ_５０との比安全係数Ｓ．Ｉ＝ＣＣ_５０／ＥＣ_５０が１０以上であるホルボール誘導体を有効成分として含むことを特徴とする抗ウイルス配合剤に関する。
本願の第二の発明は、式１中のＲ_１は、（ＣＨ_２）ａＸ（ＣＨ_２）ｂＣＨ_３（式中、ＸはＯ又はＳを表し、ａは１ないし３の数であり、ｂは０ないし５の数である。）で表される基を表す本願の第一の発明記載の抗ウイルス配合剤に関する。
本願の第三の発明は、式１中のＲ_１は、−（ＣＨ_２）ｃＸ（ＣＨ_２）ｄＹＣＨ_３（式中、Ｘ及びＹはＯ又はＳを表し、ｃは１ないし３の数であり、ｄは１ないし５の数である。）で表される基を表す本願の第一の発明記載の抗ウイルス配合剤に関する。
本願の第四の発明は、式１中のＲ_１は、−ＣＯ（ＣＨ_２）ｅ ＣＨ_３（式中、ｅは０ないし１２の数である。）で表される基を表す本願の第一の発明記載の抗ウイルス配合剤に関する。
本願の第五の発明は、式１中のＲ_１は、−（ＣＨ_２）ｆ ＣＨ_３（式中、ｆは０ないし５の数である。）で表される基を表す本願の第一の発明記載の抗ウイルス配合剤に関する。
本願の第六の発明は、天然由来あるいは合成によって得られた次式２

で表される中間体ホルボール中の−ＣＨ_２ＯＨ基を−ＣＨ_２ＯＬ基（Ｌは保護基を表す。）に変換して、次式

で表される化合物を得、該化合物をＣＨ_３（ＣＨ_２）ｎＣＯＣｌ（式中、ｎは本願の第一の発明で定義されたとおりである。）で表される化合物と反応させて、次式

で表される化合物を得、該化合物をＲ_１Ｃｌ（式中、Ｒ_１は本願の第一の発明で定義されたとおりである）で表される化合物と反応させて、次式

で表される化合物を得、さらに得られた該化合物中の−ＣＨ_２ＯＬ基を−ＣＨ_２ＯＨ基に変換して、本願の第一の発明記載の式１で表されるホルボール誘導体を製造する方法に関する。
本願の第七の発明は、本願の第一の発明記載のホルボール誘導体のうちの少なくとも１種及び他の抗ＨＩＶ作用を有する薬剤のうちの少なくとも１種からなる抗ＨＩＶウイルス配合剤に関する。
本願の第八の発明は、前記他の抗ＨＩＶ作用を有する薬剤が、逆転写酵素阻害剤であることを特徴とする本願の第七の発明記載の抗ＨＩＶウイルス配合剤に関する。
本願の第九の発明は、前記他の抗ＨＩＶ作用を有する薬剤が、インテグラーゼを介したＤＮＡの組み込みを阻害する薬剤であることを特徴とする本願の第七の発明記載の抗ＨＩＶウイルス配合剤に関する。
本願の第十の発明は、前記他の抗ＨＩＶ作用を有する薬剤が、プロウイルスの転写を抑制する薬剤であることを特徴とする本願の第七の発明記載の抗ＨＩＶウイルス配合剤に関する。
本願の第十一の発明は、前記他の抗ＨＩＶ作用を有する薬剤が、プロテアーゼを介したコア−蛋白質の合成を阻害する薬剤であることを特徴とする本願の第七の発明記載の抗ＨＩＶウイルス配合剤に関する。
本願の第十二の発明は、前記他の抗ＨＩＶ作用を有する薬剤が、コア蛋白質の集合とパッケージングを抑制する薬剤であることを特徴とする本願の第七の発明記載の抗ＨＩＶウイルス配合剤に関する。
本願の第十三の発明は、前記他の抗ＨＩＶ作用を有する薬剤が、コア蛋白質と殼外蛋白質の会合を抑制する薬剤であることを特徴とする本願の第七の発明記載の抗ＨＩＶウイルス配合剤に関する。
本願の第十四の発明は、前記他の抗ＨＩＶ作用を有する薬剤が、細胞膜から遊離脱出した感染性のウイルス粒子の成熟を抑制する薬剤であることを特徴とする本願の第七の発明記載の抗ＨＩＶウイルス配合剤に関する。

図１は、ＨＩＶウイルスの概略構造を示す図であり、図２は、ＨＩＶウイルスの複製過程又は成熟過程の機序を示す図であり、図３は、種々のホルボール誘導体の生成機構を示す図であり、図４は、ＮＰＢ−１１の抗ウイルス作用を示したグラフである。

式１で表されるホルボール誘導体において、Ｒ_１，Ｒ_２，Ｒ_３，Ｒ_４及びＲ_５は、定義される範囲内の基を表わす。脂肪族カルボン酸残基又は芳香族カルボン酸残基とは、一般式ＲＣＯＯＨで表わされる脂肪族又は芳香族カルボン酸（式中、Ｒは脂肪族基又は芳香族基を表わす）からＯＨ部分を除いたＲＣＯ部分を表わし、具体的には、例えば、アセチル基，ベンジル基，チグロイル基等であってよい。
式１で表されるホルボール誘導体は、好ましい態様として、天然由来あるいは合成によって得られた次式２

で表される中間体ホルボール中の−ＣＨ_２ＯＨ基を、−ＣＨ_２ＯＴＢＳ基に変換して、次式

で表される化合物を得、該化合物をＣＨ_３（ＣＨ_２）ｎＣＯＣｌ（式中、ｎは３ないし１２の数である。）で表される化合物と反応させて、次式

で表される化合物を得、該化合物をＲ_１Ｃｌ（式中、Ｒ_１は請求項１で定義されたとおりである）で表される化合物で表される化合物と反応させて、次式

で表される化合物を得、さらに得られた該化合物中の−ＣＨ_２ＯＴＢＳ基を−ＣＨ_２ＯＨ基に変換して、製造され得る。
前記式１で表わされるホルボール誘導体は優れた抗ウイルス作用を有するものが多く、それ故、これらは本抗ウイルス配合剤、例えば抗ＨＩＶ剤の有効成分として使用し得る。しかしながら、式１で表わされるホルボール誘導体には抗ウイルス作用の小さいものや有害な副作用が大きいものが含まれるため、ＭＴ−４細胞におけるＨＩＶ−１誘発細胞病原性効果（ＣＰＥ）を５０％阻害する濃度ＥＣ５０と、細胞増殖試験におけるＭＴ−４細胞の生存を５０％減少させる濃度ＣＣ５０との比安全係数Ｓ．Ｉ＝ＣＣ５０／ＥＣ５０が１０以上であるものを選択する必要がある。式１で表されるホルボール誘導体を有効成分として含む抗ウイルス配合剤は、図２に示すＨＩＶウイルスのライフサイクルの機序のうち、過程▲１▼及び▲２▼を有効に阻止し得る。
また、本願発明の抗ウイルス配合剤において、他の抗ＨＩＶ作用を有する薬剤が、以下の群：
（１）逆転写酵素阻害剤、
（２）インテグラーゼを介したＤＮＡの組み込みを阻害する薬剤、
（３）プロウイルスの転写を抑制する薬剤、
（４）プロテアーゼを介したコア−蛋白質の合成を阻害する薬剤、
（５）コア蛋白質の集合とパッケージングを抑制する薬剤、
（６）コア蛋白質と殻外蛋白質の会合を抑制する薬剤、
（７）細胞膜から遊離脱出した感染性のウイルス粒子の成熟を抑制する薬剤、及びから選択された少なくとも１種の薬剤であるものが好ましい。
これら薬剤（１）〜（７）は、式１で表されるホルボール誘導体と組み合わせて使用され、本発明の抗ウイルス配合剤の使用目的に応じて適宜選択してよい。本願発明の抗ウイルス配合剤を抗ＨＩＶ薬として使用する場合は、式１で表されるホルボール誘導体と、例えば、（１）の逆転写酵素阻害剤及び／又は（４）のプロテアーゼを介したコア−蛋白質の合成を阻害する薬剤を組合せて用いることができる。
具体的には、例えば、（１）の逆転写酵素阻害剤は、例えば、ジドブジン（ＡＺＴ）、ジダノシン（ｄｄＩ）、ザルシタビン（ｄｄＣ）、ラミブジン（３ＴＣ）、サニルブジン（ｄ４Ｔ）、アバカビル（ＡＢＣ）、ジドブジン・ラミブジン製剤（ＡＺＴ・３ＴＣ）、ネビラビン（ＮＶＰ）、エファビレンツ（ＥＦＶ）、Ｎ’−〔１（Ｓ）−ベンジル−３−〔４ａ（Ｓ），８ａ（Ｓ），３（Ｓ）−第三ブチルカルバモイル）デカヒドロイソキノリン−２−イル〕−２（Ｒ）−ヒドロキシルプロピル−〕−Ｎ”−（キノリン−２−イルカルバモイル）−Ｌ−アスパラギンアミド（Ｒｏ３１−８９５９）又は（＋）−Ｓ−４，５，６，７−テトラヒドロ−５−メチル−６−（３−メチル−２−ブテニル）イミダゾ〔４，５，１−ｊｋ〕〔１，４〕ベンゾジアゼピン−２（１Ｈ）−チオン（Ｒ−８２９１３，ＴＩＢＯ）、又はそれらの薬学上許容され得る誘導体である。
また、（４）のプロテアーゼを介したコア−蛋白質の合成を阻害する薬剤は、例えば、インジナビル（ＩＤＶ）、サキナビル（ＳＱＶ）、リトナビル（ＲＴＶ）、ネルフィナビル（ＮＦＶ）又はアンプレナビル（ＡＰＶ）、又はそれらの薬学上許容され得る誘導体である。
本願発明の抗ウイルス配合剤は、実際の使用形態に応じて種々の変形が可能である。例えば、複数のウイルスに対する作用を望む場合、具体的には、例えば、ＨＩＶウイルスに加えて、他のウイルスにも汚染された物の滅菌や、ＨＩＶウイルスに加えて、他のウイルスにも感染した患者の治療を行う場合には、更に他の抗ウイルス剤、例えば、ジデオキシアデノシン（ＤＤＡ）、フォスカネットなどを併用してもよい。
他の抗ＨＩＶ作用を有する薬剤を併用する場合には、該薬剤の副作用が問題となる場合もあるので、この場合には適当な解毒剤、前記式１で表わされるホルボール誘導体やそれ以外の他の抗ウイルス剤に対する解毒剤を更にブレンドして用いることができる。
本願発明の抗ウイルス配合剤は、好適であれば、各種の用途に用いてよい。前記用途は、例えば、ウイルス性の疾患を患う人間や人間以外の動物の治療、ウイルスに汚染された物の滅菌、ウイルスに汚染され得るものへの予防的適用（塗布、噴霧、散布、等）などである。また、本発明の抗ウイルス配合剤の使用形態は用途に応じて適宜選択してよい。例えば、本発明の抗ウイルス配合剤の使用形態は、粉剤、顆粒剤、錠剤、溶液剤、乳化剤、分散剤、ペースト等であってよい。

ａ）機器分析
旋光度はＤＩＰ−３６０自動旋光度計（ＪＡＳＣＯ，Ｋｙｏｔｏ，Ｊａｐａｎ）で測定した。赤外吸収スペクトルはＦＴ／ＩＲ−２３０分光度計（ＪＡＳＣＯ，Ｋｙｏｔｏ，Ｊａｐａｎ）で記録した。紫外吸収スペクトルはＵＶ−２２００ＵＶ−ＶＩＳ分光光度計（Ｓｈｉｍａｄｚｕ，Ｋｙｏｔｏ，Ｊａｐａｎ）を用いて測定した。ＮＭＲスペクトルはＶａｒｉａｎ Ｕｎｉｔｙｐｌｕｓ５００（^１Ｈ，５００ＭＨｚ；^１３Ｃ，１２５ＭＨｚ）分光計で計測し、化学シフト（δ）はテトラメチルシラン（ＴＭＳ）を標準として表わした。
ｂ）クロマトグラフィー
イ）カラムクロマトグラフィー
シリカゲル６０（７０−２３０ｍｅｓｈ，Ｍｅｒｋ）、ＯＤＳ Ｃｏｓｍｏｓｉｌ １４０ Ｃ１８−ＯＰＮ（Ｎａｃａｌａｉ Ｔｅｓｑｕｅ，Ｋｙｏｔｏ，Ｊａｐａｎ）。
ｃ）試薬と酵素
何れも、この分野で慣用のものを使用した。
実施例１．ホルボール誘導体の合成
１）ＴＢＳ化
Ａｒ気流下、ホルボール（ｐｈｏｒｂｏｌ）（３６４ｍｇ，１ｍｍｏｌ）、イミダゾール（ｉｍｉｄａｚｏｌｅ）（２０１ｍｇ，３ｍｍｏｌ）、およびＮ，Ｎ−ジメチルアミノピリジン（Ｎ，Ｎ−ｄｉｍｅｔｈｙｌａｍｉｎｏｐｙｒｉｄｉｎｅ）（１２ｍｇ，０．１ｍｍｏｌ）の無水ＤＭＦ（２ｍｌ）溶液を氷冷し、ｔ−ブチルジメチルシリルクロリド（ｔ−ｂｕｔｙｌｄｉｍｅｔｈｙｌｓｉｌｙｌ ｃｈｌｏｒｉｄｅ）（１６６ｍｇ，１．１ｍｍｏｌ）の無水ＤＭＦ（２ｍｌ）溶液を加えて、氷冷下１ｈ撹拌した。反応液を直接シリカゲルカラムクロマトグラフィー（ＡｃＯＥｔ）に附し、生成物を含むフラクションの溶媒を減圧留去した。得られた残渣をＣＨ_２Ｃｌ_２−ヘキサン（ｈｅｘａｎｅ）（１：１）に懸濁して冷却後、析出した結晶を吸引ろ取して乾燥させ、無色結晶２７１ｍｇを得た。そのろ液を減圧乾固させ、残渣を再度シリカゲルカラムクロマトグラフィー（ＡｃＯＥｔ）に附し、無色結晶２１ｍｇ（図３の化合物１）を得た。合計、２９２ｍｇ（６１％）。Ｍｐ（融点）２７０−２７３℃（分解）
^１Ｈ−ＮＭＲ（アセトン−ｄ_６）：０．０５（３Ｈ，ｓ），０．０６（３Ｈ，ｓ），０．７１（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝５．６Ｈｚ），０．８８（９Ｈ，ｓ），１．０７（３Ｈ，ｄ，Ｊ＝６．４Ｈｚ），１．１６（３Ｈ，ｓ），１．２３（３Ｈ，ｓ），１．６９（３Ｈ，ｄｄ，Ｊ＝３．０，１．３Ｈｚ），１．９５−２．００（１Ｈ，ｍ），２．４６（２Ｈ，ｓ），３．０９−３．１４（２Ｈ，ｍ），３．２４（１Ｈ，ｂｓ），３．５１（１Ｈ，ｂｒ），４．０５（２Ｈ，ｓ），４．０９（１Ｈ，ｂｒ），４．１０（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝９．８Ｈｚ），４．６５（１Ｈ，ｓ），５．６１（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝５．６Ｈｚ），７．５８（１Ｈ，ｓ）；^１８Ｃ−ＮＭＲ（アセトン−ｄ_６）：−５．１４，１０．２２，１５．５３，１７．８１，１８．７８，２４．０８，２６．２２，２６．４６，３７．１５，３８．２５，４０．１２，４６．０６，５８．２３，６２．９９，６８．６４，７４．５０，７８．７９，８１．４３，１３０．３１，１３３．１４，１４０．９０，１５９．７５，２０８．４９；ＩＲ（ＫＢｒ）ｃｍ^−１：３３１５，１６７５；Ａｎａｌ．Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_２６Ｈ_４２Ｏ_６Ｓｉ計算値：Ｃ，６５．２４；Ｈ，８．８４，実測値：Ｃ，６４．９５；Ｈ，８．６９；［α］_Ｄ ^２５＝＋８３．３９（ｃ＝０．８５，ＭｅＯＨ）．
２）デカノイル化
Ａｒ気流下、ＴＢＳ体（図３の化合物１；４８ｍｇ，０．１ｍｍｏｌ）およびトリエチルエミン（ｔｒｉｅｔｈｙｌａｍｉｎｅ）（４２μｌ，０．３ｍｍｏｌ）の無水ＣＨ_２Ｃｌ_２（１ｍｌ）溶液を氷冷し、デカノイルクロリド（ｄｅｃａｎｏｙｌ ｃｈｌｏｒｉｄｅ）（４１μｌ，０．２ｍｍｏｌ）を加えて室温にて３ｈ撹拌した。反応液をＣＨ_２Ｃｌ_２で希釈して１０％ＨＣｌ、飽和ＮａＨＣＯ_３水、飽和食塩水で順次洗浄し、ＭｇＳＯ_４で乾燥後溶媒を減圧留去した。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（ＣＨ_２Ｃｌ_２−ＡｃＯＥｔ＝４：１）に附し、無色オイル（図３の化合物２；４７ｍｇ，７４％）を得た。
^１Ｈ−ＮＭＲ（ＣＤＣｌ_３）：０．０４（３Ｈ，ｓ），０．０５（３Ｈ，ｓ），０．８６−０．８９（１２Ｈ，ｍ），０．９９（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝５．６Ｈｚ），１．０４（３Ｈ，ｄ，Ｊ＝６．８Ｈｚ），１．１９（３Ｈ，ｓ），１．２２−１．３６（１７Ｈ，ｍ），１．５８−１．６５（２Ｈ，ｍ），１．７６（３Ｈ，ｄｄ，Ｊ＝３．０，１．３Ｈｚ），１．９７−２．０４（１Ｈ，ｍ），２．３３−２．３７（３Ｈ，ｍ），２．４６（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝１８．８Ｈｚ），２．７１（１Ｈ，ｓ），３．１３（２Ｈ，ｂｒ），３．９６（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝９．８Ｈｚ），４．００（２Ｈ，ｓ），５．５９（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝５．８Ｈｚ），７．５６（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝１．３Ｈｚ）；^１３Ｃ−ＮＭＲ（ＣＤＣｌ_３）：−５．２９，１０．１１，１４．１０，１５．０７，１６．９１，１８．３６，２２．６３，２３．６５，２４．７６，２５．８１，２５．９１，２６．５９，２９．０９，２９．２０，２９．２２，２９．３６，３１．８１，３４．２６，３５．４６，３８．３２，３８．９９，４４．９０，５６．８０，６７．９０，７３．４９，７７．５３，７８．２１，１２７．６３，１３２．９０，１４０．５４，１６０．４５，１７６．８６，２０８．９６；ＩＲ（ｎｅａｔ）３３９６，１７０６ｃｍ^−１；ＭＳ ｍ／ｚ５７５（Ｍ^＋−ｔ−Ｂｕ）；ＨＲＭＳ Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_３２Ｈ_５１Ｏ_７Ｓｉ計算値：５７５．３４０４（Ｍ^＋−ｔ−Ｂｕ），実測値：５７５．３４３２；［α］_Ｄ ^２５＝＋６５．９５（ｃ＝０．７１，ＣＨＣｌ_３）．
３）ＭＯＭ化
Ａｒ気流下、デカノイル体（図３の化合物２；１６．１ｍｇ，０．０２５ｍｍｏｌ）およびジイソプロピルエチルアミン（ｄｉｉｓｏｐｒｏｐｙｌｅｔｈｙｌａｍｉｎｅ）（１４ｍｌ，０．０７５ｍｍｏｌ）の無水ＣＨ_２Ｃｌ_２（０．５ｍｌ）溶液に、クロロメチルメチルエーテル（ｃｈｌｏｒｏｍｅｔｈｙｌ ｍｅｔｈｙｌ ｅｔｈｅｒ）（３．８ｍｌ，０．０５ｍｍｏｌ）を加えて室温にて２０ｈ撹拌した。反応液をＣＨ_２Ｃｌ_２で希釈して１０％ＨＣｌ、飽和ＮａＨＣＯ_３水、飽和食塩水で順次洗浄し、ＭｇＳＯ_４で乾燥後溶媒を減圧留去した。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（ＣＨ_２Ｃｌ_２−ＡｃＯＥｔ＝９：１）に附し、無色オイル（図３の化合物３ａ；１０．７ｍｇ，６３％）を得た。
^１Ｈ−ＮＭＲ（ＣＤＣｌ_３）：０．０４（３Ｈ，ｓ），０．０５（３Ｈ，ｓ），０．８７（９Ｈ，ｓ），０．８８（３Ｈ，ｔ，Ｊ＝７．２Ｈｚ），０．９７（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝５．６Ｈｚ），１．０５（３Ｈ，ｄ，Ｊ＝６．４Ｈｚ），１．１８（３Ｈ，ｓ），１．２２−１．３３（１７Ｈ，ｍ），１．７７（３Ｈ，ｄｄ，Ｊ＝３．０，１．３Ｈｚ），２．０２−２．０７（１Ｈ，ｍ），２．１８（１Ｈ，ｓ），２．２９−２．３６（２Ｈ，ｍ），２．３８（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝１８．８Ｈｚ），２．４７（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝１８．８Ｈｚ），３．１２（１Ｈ，ｔ，Ｊ＝５．６Ｈｚ），３．２３（１Ｈ，ｂｓ），３．３６（３Ｈ，ｓ），３．９４（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝９．４Ｈｚ），４．００（２Ｈ，ｓ），４．５４（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝６．４Ｈｚ），４．８８（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝６．８Ｈｚ），５．６１（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝６．３Ｈｚ），５．６５（１Ｈ，ｓ），７．６１（１Ｈ，ｓ）；^１３Ｃ−ＮＭＲ（ＣＤＣｌ_３）：−５．３０，−５．２８，１０．１１，１４．１０，１５．１６，１６．８０，１８．３６，２２．６４，２３．８４，２４．５６，２５．５５，２５．９２，２９．０７，２９．２３，２９．２４，２９．３８，３１．８３，３４．５３，３６．０８，３８．３９，３９．１１，４４．２３，５５．６８，５６．１２，６５．５６，６８．２０，７３．７３，７７．７６，７９．８０，９５．０５，１２８．４６，１３２．４４，１３９．８５，１６１．２０，１７６．１９，２０９．１９；ＩＲ（ｎｅａｔ）ｃｍ^−１：３４０４，１７０９；ＭＳ ｍ／ｚ６７６（Ｍ^＋）；ＨＲＭＳ Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_３８Ｈ_６４Ｏ_８Ｓｉ計算値：６７６．４３７０４（Ｍ^＋），実測値：６７６．４４０２；［α］_Ｄ ^２５＝＋７８．７５（ｃ＝０．５３，ＣＨＣｌ_３）．
４）脱シリル化
Ａｒ気流下、ＭＯＭ体（図３の化合物３ａ；４５ｍｇ，０．０６７ｍｍｏｌ）の無水ＴＨＦ（０．５ｍｌ）溶液を氷冷し、テトラ−ｎ−ブチルアンモニウムフルオライド（ｔｅｔｒａ−ｎ−ｂｕｔｙｌａｍｍｏｎｉｕｍ ｆｌｕｏｒｉｄｅ）（１Ｍ ＴＨＦ溶液，０．２ｍｌ，０．２ｍｍｏｌ）を加えて氷冷下１．５ｈ撹拌した。反応液に飽和ＮａＨＣＯ_３水を加えてＣＨＣｌ_３で抽出し、ＭｇＳＯ_４で乾燥後溶媒を減圧留去した。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（ＣＨ_２Ｃｌ_２−ＡｃＯＥｔ＝４：１）に附し、無色オイル（図３の化合物４ａ（試料ＮＰＢ−１１）；３５ｍｇ，９４％）を得た。
^１Ｈ−ＮＭＲ（ＣＤＣｌ_３）：０．８８（３Ｈ，ｔ，Ｊ＝７．３Ｈｚ），１．００（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝５．６Ｈｚ），１．０６（３Ｈ，ｄ，Ｊ＝６．８Ｈｚ），１．１９（３Ｈ，ｓ），１．２２−１．３５（１８Ｈ，ｍ），１．７８（３Ｈ，ｄ，Ｊ＝１．７Ｈｚ），２．０２−２．０７（１Ｈ，ｍ），２．２４（１Ｈ，ｓ），２．２９−２．３５（２Ｈ，ｍ），２．４６（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝１８．８Ｈｚ），２．５３（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝１８．８Ｈｚ），３．１８（１Ｈ，ｔ，Ｊ＝５．６Ｈｚ），３．２３（１Ｈ，ｓ），３．３６（３Ｈ，ｓ），３．９４（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝９．８Ｈｚ），３．９８（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝１２．８Ｈｚ），４．０４（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝１２．８Ｈｚ），４．５４（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝６．８Ｈｚ），４．８８（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝６．８Ｈｚ），５．６７（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝４．７Ｈｚ），５．７６（１Ｈ，ｓ），７．６１（１Ｈ，ｓ）；^１３Ｃ−ＮＭＲ（ＣＤＣｌ_３）：１０．１３，１４．１１，１５．２１，１６．７８，２２．６５，２３．８４，２４．５８，２５．６１，２９．０８，２９．２３，２９．２５，２９．３８，３１．８４，３４．５２，３６．０５，３８．６０，３９．０６，４４．２０，５５．７１，５６．１７，６５．５２，６８．０４，７３．６２，７７．９７，７９．６７，９５．０６，１２９．３７，１３２．６８，１４０．２７，１６１．０９，１７６．３２，２０９．０８；ＩＲ（ｎｅａｔ）ｃｍ^−１：３４０９，１７０９；ＭＳ ｍ／ｚ５０１（Ｍ^＋−ＯＣＨ_２ＯＣＨ_３）；ＨＲＭＳ Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_３０Ｈ_４５Ｏ_６計算値：５０１．３２１６（Ｍ^＋−ＯＣＨ_２ＯＣＨ_３），実測値：５０１．３２００；［α］_Ｄ ^２５＝＋８９．２７（ｃ＝０．１１，ＣＨＣｌ_３）．
５）ＭＥＭ化
Ａｒ気流下、デカノイル体（図３の化合物２；２３４ｍｇ，０．３７ｍｍｏｌ）およびジイソプロピルエチルアミン（ｄｉｉｓｏｐｒｏｐｙｌｅｔｈｙｌａｍｉｎｅ）（０．０５１ｍｌ，０．４４ｍｍｏｌ）の無水ＣＨ_２Ｃｌ_２（３ｍｌ）溶液に、クロロメチルメチルエーテル（ｃｈｌｏｒｏｍｅｔｈｙｌ ｍｅｔｈｙｌ ｅｔｈｅｒ）（０．１３ｍｌ，０．７４ｍｍｏｌ）を加えて室温にて２０ｈ撹拌した。反応液をＣＨ_２Ｃｌ_２で希釈して１０％ＨＣｌ、飽和ＮａＨＣＯ_３水、飽和食塩水で順次洗浄し、ＭｇＳＯ_４で乾燥後溶媒を減圧留去した。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（ＣＨ_２Ｃｌ_２−ＡｃＯＥｔ＝５：１）に附し、無色オイル（図３の化合物３ｂ；１０．７ｍｇ，６３％）を得た。
^１Ｈ−ＮＭＲ（ＣＤＣｌ_３）０．０２（６Ｈ，ｓ），０．８５（９Ｈ，ｓ），０．８８（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝５．８Ｈｚ），０．９８（３Ｈ，ｄ，Ｊ＝６．３Ｈｚ），１．１３（３Ｈ，ｓ），１．２０−１．２４（１７Ｈ，ｍ），１．５７−１．６８（２Ｈ，ｍ），１．７２（３Ｈ，ｍ），２．３１−２．２８（３Ｈ，ｍ），２．４６（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝７．９Ｈｚ），２．７２（１Ｈ，Ｂｒ），３．０８（１Ｈ，ｍ），３．１７（１Ｈ，Ｂｒ），３．３０（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ），３．３５（３Ｈ，ｓ），３．５０−３．５３（２Ｈ，ｍ），３．６１−３．７３（２Ｈ，ｍ），３．８９４（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝９．６Ｈｚ），３．９７（２Ｈ，ｓ），４．６４（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝６．６Ｈｚ），４．９４（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝６．６Ｈｚ），５．５７（１Ｈ，ｂｒ），５．６０（１Ｈ，ｓ），７．５５（１Ｈ，ｓ）；^１３Ｃ−ＮＭＲ（ＣＤＣｌ_３）：−４．９８（ｑ），１０．３３（ｑ），１４．３３（ｑ），１５．３８（ｓ），１７．１１（ｑ），１８．５８（ｑ），２２．８７（ｔ），２４．０３（ｑ），２４．７９（ｔ），２５．７７（ｓ），２６．１５（ｑ），２９．３４（ｔ），２９．４５（ｔ），２９．６２（ｔ），３２．０４（ｔ），３４．７３（ｔ），３６．３５（ｄ），３８．５２（ｔ），３９．３１（ｄ），４４．３１（ｄ），５６．３１（ｄ），５９．１４（ｑ），６５．６２（ｔ），６７．２３（ｔ），６８．３０（ｔ），７１．８５（ｓ），７３．８２（ｓ），７７．８８（ｓ），８０．１５（ｄ），９３．８２（ｔ），１２８．４２（ｄ），１３２．４５（ｓ），１３９．９９（ｓ），１６０．９５（ｄ），１７６．１２（ｓ），２０８．９７（ｓ）；ＩＲ（ｎｅａｔ）ｃｍ^−１：３４１１，１７１１；ＭＳ ｍ／ｚ７２０（Ｍ^＋）；ＨＲＭＳ Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_４０Ｈ_６８Ｏ_９Ｓｉ計算値：７２０．４６３３（Ｍ^＋），実測値：７２０．４６２２；［α］_Ｄ ^２５＝＋７９．９８（ｃ＝０．９０，ＣＨＣｌ_３）．
６）脱ＴＢＳ化
Ａｒ気流下、ＭＥＭ体（図３の化合物３ｂ；１４７ｍｇ，０．２０４ｍｍｏｌ）の無水ＴＨＦ（１．５ｍｌ）溶液を氷冷し、テトラ−ｎ−ブチルアンモニウムフルオライド（ｔｅｔｒａ−ｎ−ｂｕｔｙｌａｍｍｏｎｉｕｍ ｆｌｕｏｒｉｄｅ）（１Ｍ ＴＨＦ溶液，０．６ｍｌ，０．６１２ｍｍｏｌ）を加えて氷冷下１．５ｈ撹拌した。反応液に飽和ＮＨ_４Ｃｌ水を加えてＣＨＣｌ_３で抽出し、ＭｇＳＯ_４で乾燥後溶媒を減圧留去した。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（ＣＨ_２Ｃｌ_２−ＡｃＯＥｔ＝４：１）に附し、無色オイル（図３の化合物４ｂ（試料ＮＰＢ−１２）；８９ｍｇ，７２％）を得た。
^１Ｈ−ＮＭＲ（ＣＤＣｌ_３）：０．８６（３Ｈ，ｔ，Ｊ＝７．１Ｈｚ），０．９９（３Ｈ，ｔ，Ｊ＝６．２Ｈｚ），１．１６（３Ｈ，ｓ），１．２１−１．２５（１８Ｈ，ｍ），１．５８（２Ｈ，ｍ），１．７２（３Ｈ，ｄ，Ｊ＝１．４Ｈｚ），２．４６−２．５０（２Ｈ，ｍ），２．２９−２．３２（２Ｈ，ｍ），３．１７−３．１８（２Ｈ，ｍ），３．３３（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ），３．３６（３Ｈ，ｓ），３．５２（２Ｈ，ｔ，Ｊ＝４．９Ｈｚ），３．６４−３．７５（２Ｈ，ｍ），３．９５（２Ｈ，ｔ，Ｊ＝１０．３Ｈｚ），４．６５（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝６．９Ｈｚ），４．９４（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝６．９Ｈｚ），５．６３（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝５．２Ｈｚ），５．７５（１Ｈ，ｓ），７．５５（１Ｈ，ｓ）；^１３Ｃ−ＮＭＲ（ＣＤＣｌ_３）：１０．３６（ｑ），１４．３６（ｑ），１５．４８（ｑ），１７．０９（ｑ），２２．９０（ｔ），２４．０５（ｑ），２４．８４（ｔ），２５．８５（ｓ），２９．３７（ｔ），２９．４７（ｔ），２９．６３（ｔ），３２．０６（ｔ），３４．７６（ｔ），３６．３１（ｄ），３８．６８（ｔ）、３９．２１（ｄ），４４．３１（ｄ），５６．２６（ｄ），５９．１８（ｑ），６５．６６（ｓ），６７．２８（ｔ），６８．１６（ｔ），７１．８６（ｔ），７３．７５（ｓ），７８．２４（ｓ），８０．１３（ｄ），９３．９６（ｔ），１２９．３３（ｄ），１３２．７１（ｓ），１４０．５４（ｓ），１６０，９９（ｄ），１７６．２８（ｓ），２０９．１４（ｓ）；ＩＲ（ｎｅａｔ）ｃｍ^−１：３４０６，１７０９；ＭＳ ｍ／ｚ５８８（Ｍ^＋−Ｈ_２Ｏ）；ＨＲＭＳ Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_３４Ｈ_５４Ｏ_９計算値：６０６．３７６８（Ｍ^＋），実測値：６０６．３７７９；［α］_Ｄ ^２５＝＋８５．８８（ｃ＝１．００，ＣＨＣｌ_３）．
７）メチル化
Ａｒ気流下、アルコール体（図３の化合物２；１６５ｍｇ，０．２６ｍｍｏｌ）の無水ジクロロメタン溶液に、２，６−ジ−ｔ−ブチルルチジン（２，６−ｄｉ−ｔ−Ｂｕｔｙｌｌｕｔｉｄｉｎｅ）（４７４ｍｇ，１．８２ｍｍｏｌ）と、ＭｅＯＴｆ（０．１２２ｍｌ，１．０９ｍｍｏｌ）を加え、室温で２０時間攪拌後、ピリジンで溶液を塩基性にした後、飽和重曹水、飽和食塩水で洗浄した有機層を硫酸マグネシウムで乾燥ろ過後、溶媒を留去した。その残留物をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（ＣＨ_２Ｃｌ_２−ＡｃＯＥｔ＝５：１）で分離し、メチル体（図３の化合物５ａ；２３ｍｇ，０．０３５６ｍｍｏｌ，１４％）を無色油状物質として得た。
^１Ｈ−ＮＭＲ（ＣＤＣｌ_３）：０．０５（３Ｈ，ｓ），０．０７（３Ｈ，ｓ），０．８９（９Ｈ，ｓ），０．９７（３Ｈ，ｓ），１．０２（２Ｈ，ｄ，Ｊ＝６．６Ｈｚ），１．１４（３Ｈ，ｓ），１．２３−１．２６（１８Ｈ，ｍ），１．６１−１．６８（６Ｈ，ｍ），１．７９（３Ｈ，ｓ），２．０１−２．１７（４Ｈ，ｍ），２．２１−２．２６（１Ｈ，ｍ），２．３３−２．３９（４Ｈ，ｍ），２．４３−２．４９（１Ｈ，ｍ），２．６２（１Ｈ，ｂｒ），３．１９（１Ｈ，ｂｒ），３．２４（３Ｈ，ｓ），３．４３（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝８．０Ｈｚ），３．９７（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝１．３Ｈｚ），４．００（２Ｈ，ｓ），４．３１（１Ｈ，ｓ），５．６５（１Ｈ，ｓ），７．４６（１Ｈ，ｓ）；^１３Ｃ−ＮＭＲ（ＣＤＣｌ_３）：−４．９１（ｑ），１．３５（ｓ），１０．４６（ｑ），１４．４１（ｑ），１６．１１（ｑ），１７．４３（ｑ），２２．９５（ｔ），２３．６１（ｑ），２５．２２（ｔ），２５．９８（ｓ），２６．１９（ｑ），２７．５３（ｓ），２９．３９（ｔ），２９．５４（ｔ），２９．６８（ｔ），２９．９７（ｔ），３２．１２（ｔ），３４．３２（ｔ），３５．０９（ｄ），３８．２２（ｄ），３８．９８（ｔ），４６．４８（ｄ），４８．８９（ｄ），５２．２０（ｑ），６８．１４（ｔ），６９．６９（ｓ），７３．７１（ｓ），７８．４８（ｄ），８３．９０（ｑ），１２８．７０（ｄ），１３３．７２（ｓ），１３７．６８（ｓ），１６０．３１（ｄ），２０８．９７（ｓ）；ＩＲ（ｎｅａｔ）ｃｍ^−１：３４８４，１７１１；［α］_Ｄ ^２５＝＋６２．３０（ｃ＝０．９９，ＣＨＣｌ_３）．
８）脱シリル化
Ａｒ気流下、シリル体（図３の化合物５ａ；２３ｍｇ，０．０３５６ｍｍｏｌ）の無水ＴＨＦ溶液を氷冷し、これにテトラ−ｎ−ブチルアンモニウムフルオライド（ｔｅｔｒａ−ｎ−ｂｕｔｙｌａｍｍｏｎｉｕｍ ｆｌｕｏｒｉｄｅ）（１Ｍ ＴＨＦ溶液，０．０７１ｍｌ，０．０７１１ｍｍｏｌ）を加え、室温にて９０分攪拌後、飽和塩化アンモニウム水溶液で反応を停止し、クロロホルムで抽出した有機層を硫酸マグネシウムで乾燥、ろ過後溶媒を留去した。その残留物をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（ＡｃＯＥｔ）で分離後、アルコール体（図３の化合物６ａ（試料ＮＰＢ−１３）；８ｍｇ，０．０１５６ｍｍｏｌ，４４％）を無色油状物質として得た。
^１Ｈ−ＮＭＲ（ＣＤＣｌ_３）：０．８６−０．９１（３Ｈ，ｍ），０．９７−１．０４（４Ｈ，ｍ），１．１５（３Ｈ，ｓ），１．２４−１．２７（１６Ｈ，ｍ），１．６１−１．６８（４Ｈ，ｍ），１．７８（２Ｈ，ｑ，Ｊ＝１．４Ｈｚ），２．０４−２．１７（１Ｈ，ｍ），２．３４−２．３８（２Ｈ，ｍ），２．４２−２．５１（２Ｈ，ｍ），３．２０（１Ｈ，ｓ），３．２５（３Ｈ，ｓ），３．４０（１Ｈ，ｓ），３．９８（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝９．１Ｈｚ），４．０７（２Ｈ，ｓ），４．３１（１Ｈ，ｓ），５．６７（１Ｈ，ｓ），７．４７（１Ｈ，ｓ）；^１３Ｃ−ＮＭＲ（ＣＤＣｌ_３）：１．０２，１０．１５，１４．１０，１５．７８，１７．２０，２２．６２，２４．８９，２４．９８，２７．２２，２９．０６，２９．２１，２９．３５，２９．６４，３４．００，３５．１３，３７．９８，３８．８３，４６．１２，４８．５６，５１．９４，６８．１０，６９．２５，７３．２８，７８．１７，８３．６０，１２９．８４，１３３．５８，１３７．７１，１５９．９７，１７２．０４，１７７．５１，２０８．６７；ＩＲ（ｎｅａｔ）ｃｍ^−１：３４２２，１７０７；ＭＳ ｍ／ｚ５３１（Ｍ^＋−Ｈ）；ＨＲＭＳ Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_３１Ｈ_４７Ｏ_７計算値：５３１．３３２２（Ｍ^＋），実測値：５３１．３３２５；［α］_Ｄ ^２５＝＋１０６．６９（ｃ＝０．７５，ＣＨＣｌ_３）．
９）エチル化
Ａｒ気流下、アルコール体（図３の化合物２；２７５ｍｇ，０．４３ｍｍｏｌ）の無水ジクロロメタン溶液に、２，６−ジ−ｔ−ブチルルチジン（２，６−ｄｉ−ｔ−Ｂｕｔｙｌｌｕｔｉｄｉｎｅ）（３５６ｍｇ，１．７４ｍｍｏｌ）と、ＭｅＯＴｆ（０．１３４ｍｌ，１．０４ｍｍｏｌ）を加え、室温で６５時間攪拌後，水で反応を停止し、飽和重曹水、飽和食塩水で洗浄した有機層を硫酸マグネシウムで乾燥ろ過後、溶媒を留去した。その残留物をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（ＣＨ_２Ｃｌ_２−ＡｃＯＥｔ＝４：１）で分離し、エチル体（図３の化合物５ｂ；２８ｍｇ，０．０４２３ｍｍｏｌ，１０％）を無色油状物質として得た
^１Ｈ−ＮＭＲ（ＣＤＣｌ_３）：０．０５（６Ｈ，ｓ），０．８９（９Ｈ，ｓ），１．０１（４Ｈ，ｍ），１．１１−１．１６（２Ｈ，ｍ），１．１３（３Ｈ，ｓ），１．２２（３Ｈ，ｓ），１．２３−１．２７（１４Ｈ，ｍ），１．３２（３Ｈ，ｓ），１．６１−１．７２（２Ｈ，ｍ），１．７８（３Ｈ，ｓ），２．２８−２．６５（４Ｈ，ｍ），３．１７（１Ｈ，ｂｒ），３．３０−３．４０（１Ｈ，ｍ），３．９１−３．９９（３Ｈ，ｍ），５．６１−１Ｈ，ｓ），７．４７（１Ｈ，ｓ）；^１３Ｃ−ＮＭＲ（ＣＤＣｌ_３）：−４．９１，１０．４６，１４．４２，１５．９６，１６．１１．１７．４７，１８．７１，２２．９５，２３．６１，２５．３０，２６．１９，２７．４８，２９．３９，２９．５４，２９．６８，３０．４３，３２．１２，３４．４２，３５．３１，３８．５２，３９．００，４６．４９，４９．６８，５９．３５，６８．２４，６９．６９，７３．７４，７８．５９，８３．６６，１２８．８５，１３３．６０，１３７．５３，１６０．５６，１７７．７２；ＩＲ（ｎｅａｔ）ｃｍ^−１：３４１９，１７１１；ＭＳ ｍ／ｚ６５９（Ｍ^＋−Ｈ）；ＨＲＭＳ Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_３８Ｈ_６３Ｏ_７Ｓｉ計算値：６５９．４３４３（Ｍ^＋−Ｈ），実測値：６５９．４３８３；［α］_Ｄ ^２５＝＋８１．９７（ｃ＝０．１．２０，ＣＨＣｌ_３）．
１０）エチル体の脱シリル化
Ａｒ気流下、シリル体（図３の化合物５ｂ；２８ｍｇ，０．０４２４ｍｍｏｌ）の無水ＴＨＦ溶液を氷冷し、テトラ−ｎ−ブチルアンモニウムフルオライド（ｔｅｔｒａ−ｎ−ｂｕｔｙｌａｍｍｏｎｉｕｍ ｆｌｕｏｒｉｄｅ）（１Ｍ ＴＨＦ溶液，０．１３ｍｌ，０．１３ｍｍｏｌ）を室温にて４０分攪拌後、飽和塩化アンモニウム水溶液で反応を停止し、クロロホルムで抽出した有機層を硫酸マグネシウムで乾燥、ろ過後溶媒を留去した。その残留物をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（ＡｃＯＥｔ）で分離後、アルコール体（図３の化合物６ｂ（試料ＮＰＢ−１４）；１７ｍｇ，０．０３１７ｍｍｏｌ，７５％）を無色油状物質として得た。
^１Ｈ−ＮＭＲ（ＣＤＣｌ_３）：１．０１−１．０４（４Ｈ，ｍ），１．１４（３Ｈ，ｓ），１．２３−１．３２（１４Ｈ，ｍ），１．６１−１．６８（２Ｈ，ｍ），１．７８（３Ｈ，ｓ），１．９８−２．０４（２Ｈ，ｍ），２．３２−２．３９（２Ｈ，ｍ），２．９７（１Ｈ，ｂｒ），３．１７（１Ｈ，ｂｒ），３．２８−３．３５（１Ｈ，ｍ），３．４３−３．４９（１Ｈ，ｍ），３．９９−４．０１（３Ｈ，ｍ），５．６３（１Ｈ，ｓ），７．４８（１Ｈ，ｓ）；^１３Ｃ−ＮＭＲ（ＣＤＣｌ_３）：１０．４９，１４．４２，１５．９１，１６．１１，１７．６１，２２．９５，２３．６１，２５．３０，２５．９０，２７．５１，２９．３９，２９．５４，２９．６７，３２．１２，３４．４２，３５．１８，３８．６３，３９．０８，４６．５１，４９．６７，５９．３９，６８．４３，６９．６３，７３．７２，７８．６７，８３．７０，１３０．１４，１３３．８９，１３８．０５，１６０．５７，１７７．７４，２０９．１６；ＩＲ（ｎｅａｔ）ｃｍ^−１：３４４９，１７０８；ＭＳ ｍ／ｚ５４６（Ｍ^＋）；ＨＲＭＳ Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_３２Ｈ_５０Ｏ_７計算値：５４６．３５５７（Ｍ^＋），実測値：５４６．３５４８；［α］_Ｄ ^２５＝＋１０９．８１（ｃ＝０．７４５，ＣＨＣｌ_３）．
実施例２．抗ＨＩＶ作用
＜細胞培養＞
実験にはｈｕｍａｎ Ｔ−ｃｅｌｌ ｌｅｕｋｅｍｉａ ｖｉｒｕｓ Ｉ（ＨＴＬＶ−Ｉ）感染Ｔ細胞株、ＭＴ−４細胞およびＴ細胞白血病細胞株、ＭＯＬＴ−４（ｃｌｏｎｅ Ｎｏ．８）細胞、ＨＩＶ−１持続感染細胞、ＭＯＬＴ−４・ＩＩＩＢ細胞を使用した。細胞は１０％非動化ウシ胎児血清（ｆｅｔａｌ ｃａｌｆ ｓｅｒｕｍ：ＦＣＳ）（ＭＯＲＥＧＡＴＥ，Ａｕｓｔｒａｌｉａ），１００μｇ／ｍｌストレプトマイシンと１００Ｕ／ｍｌのペニシリンＧ（ＳＩＧＭＡ）を添加したＲＰＭＩ−１６４０培地（ＳＩＧＭＡ）を用い、５％ＣＯ２、３７℃の条件下で培養した。継代は３日ごとに３０ｘ１０^４個／ｍｌに調整しておこなった。
＜ウイルス＞
ウイルスはＨＩＶ−１ＩＩＩＢ株（Ｔ細胞指向性株：Ｔ−ｔｒｏｐｉｃ）とＨＩＶ−１ＪＲＣＳＦ（マクロファージ指向性：Ｍ−ｔｒｏｐｉｃ）を使用した。ＨＩＶ−１ＩＩＩＢはＭＯＬＴ−４／ＩＩＩＢ細胞上清から調整した。
ＭＯＬＴ−４／ＩＩＩＢ細胞を３０ｘ１０^４個／ｍｌに調整して培養を開始し、３日後に培養液を回収し、４℃，３０００ｒｐｍで１０分間遠心分離した。ＪＲＣＳＦは２９３Ｔ細胞にウイルスＤＮＡ１５μｇをトランスフェクションの後、培養をおこない、２日後に培養液を回収した。これらの上清を０．４５μｍのフイルターに通した。ウイルスストックは−８０℃に凍結保存した。ウイルス量はｐ２４量で調整した。
＜被検体＞
１）ｉｎ ｖｉｔｒｏ活性：ホルボール誘導体は１．０ｍｇを１．０ｍｌのＤＭＳＯに溶解して原液とし、これを生理食塩液あるいはリン酸緩衝液で所定の濃度に希釈して被検体とした。
２）血液中での安定性：生後６−７週令のＢＡＬＢ／ｃ系雄性マウスの腹大静脈から３．８％クエン酸ナトリウム０．１ｍｌを入れた注射筒で１ｍｌ採血し、５０００ｒｐｍ１０分間遠心分離して血漿を得た。被検液１に対して血漿９を加えて１０倍希釈の所定濃度とし、３７℃で３０分間インキュベーションして被検体とした。
３）ｉｎ ｓｉｔｕ活性：生後６−７週令のＢＡＬＢ／ｃ系雄性マウスに上記被検体１）を用いて１ｍｇ／ｋｇ経口投与し、投与２０，４０および６０分後にエーテル軽麻酔下で、腹大静脈から上記２）同様に採血し、血漿を得て被検体とした。アッセイ（Ａｓｓａｙ）系には５６℃３０分間加熱非動化した後、１−１０％を添加した。
＜抗ＨＩＶ活性の評価＞
各被検体の抗ＨＩＶ活性はＨＩＶ−１によって誘導される細胞変性に対する阻害活性をＭＴＴａｓｓａｙによって評価した。Ａｓｓａｙはトリプリケートでおこない、抗ＨＩＶ活性と細胞毒性を同時に測定した。
９６ウエルプレートを用い、内側６０ウエルに１０％ＦＣＳ／ＲＰＭＩ−１６４０培地を１００μｌ／ｗｅｌｌずつ加え、外側３６ウエルには蒸発を防ぐため２００μｌ／ｗｅｌｌのＲＰＭＩ−１６４０培地を加えた。
内側６０ウエルを用いＲＰＭＩ−１６４０培地で調整した被検体を２５μｌ／ｗｅｌｌで最初のレーンに加え、よくピペッティング操作をして５倍段階希釈系列を調整した。また、最後のレーンには被検体を加えず、コントロールとした。３０ｘ１０^４個／ｍｌに懸濁したＭＴ−４細胞を２本のフラスコに用意し、一方にはＨＩＶ−１ＩＩＩＢをｍｕｌｔｉｐｌｉｃｉｔｙ ｏｆ ｉｎｆｅｃｔｉｏｎ（ＭＯＩ）＝０．０１で感染させた。感染もしくは非感染ＭＴ−４細胞を直ちに１００μｌ／ｍｌずつ加え被検体と共に５％ＣＯ２，３７℃の条件下で培養した。
５日後、細胞のｖｉａｂｉｌｉｔｙをＴｉｔｅｒｔｅｋ Ｍｕｌｔｉｓｋａｎを用いたＭＴＴ法によって測定した。ＰＢＳ（Ｃａ＋＋，Ｍｇ＋＋・ｆｒｅｅ Ｐｈｏｓｐｈａｔｅ−ｂｕｆｆｅｒｅｄ ｓａｌｉｎｅ）で７．５ｍｇ／ｍｌに調整したＭＴＴを２０μｌ／ｗｅｌｌずつ加え５％ＣＯ２，３７℃の条件で１時間培養し、１５０μｌの培養上清を除いた後、１００μｌの細胞溶解液「５％（ｖ／ｖ）ＴｒｉｔｏｎＸ−１００／酸性ｉｓｏｐｒｏｐａｎｏｌ」を加えプレートミキサーで３０分間攪拌した。
プレートリーダーで５４０ｎｍにおける吸光度（リファレンス波長６９０ｎｍ）を測定した。被検体とウイルスを加えなかったウエルの吸光度の平均を１００％、被検体を加えず、ウイルスを加えたウエルの吸光度の平均を０％として、各ウエルのｖｉａｂｉｌｉｔｙ（％ ｏｆ ｃｏｎｔｒｏｌ）値を算出し、５０％細胞毒性濃度（５０％ ｃｙｔｏｔｏｘｉｃ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ）、ＣＣ_５０および５０％細胞変性阻害濃度（５０％ ｅｆｆｅｃｔｉｖｅ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ）、ＥＣ_５０を求めた。また、ＣＣ_５０とＥＣ_５０の比、ＳＩ（ｓｅｌｅｃｔｉｖｅ ｉｎｄｅｘ）値（ＳＩ＝ＣＣ５０／ＥＣ５０）を計算した。
一方、ＪＲＣＳＦの末梢単核球（ＰＢＭＣ）への感染と抗ＨＩＶ活性の評価は次のように行った。１ｘ１０^６ｃｅｌｌｓ／ｍｌのＰＢＭＣに２０ｎｇのｐ２４を持つＪＲＣＳＦを接種し、２時間後に細胞を洗った。この後、被験薬剤を含んだ培養液中で７日間培養し、ｐ２４を測定することによりその抗ウイルス活性を検討した。
＜結果＞
一連のホルボール誘導体のｉｎ ｖｉｔｒｏにおける抗ＨＩＶ活性は表２に示したとおりである。ホルボールのジエステルであり１２位にアセチル基、１３位にデカノイル基を有するＮ−６（Ｓ．Ｅｌ−Ｍｅｋｋａｗｙ他；Ｃｈｅｍ．Ｐｈａｒｍ．Ｂｕｌｌ．４７（９）１３４６−１３４７（１９９９））の抗ＨＩＶ活性は極めて強いが、血漿中で失活し生体内で不安定であった。おそらく１２位のエステルが血液中のプソイドコリンエステラーゼによって加水分解される可能性が考えられる。
そこで生体内で安定な誘導体を創るため１２位の置換基を検討した。１２位のアセチル基を、炭素数を増加したエステル型のＮＰＢ−５およびＮＰＢ−９に変えるとむしろ活性は減少した。
一方、１２位をエーテル型に変換したメトキシメチル基のＮＰＢ−１１は、活性も強くまた血漿中においても安定であった。しかしながらＮＰＢ−１２のように炭素数を１つ増やしたメトキシエチル基に代えると活性は減少した。
また、１２位をメトキシ基およびエトキシ基に代えたＮＰＢ−１３およびＮＰＢ−１４はＮＰＢ−１１に比べて活性が弱く熱に対しても不安定であった。
Ｎ−６を基本とし、１２位に置換基を導入した誘導体の合成により、抗ＨＩＶ活性の５０％抑制濃度が１．７ｎｇ／ｍｌと極めて低く、逆に正常細胞に対しては、５０％障害濃度が６．９１２３μｇ／ｍｌと高く、従って、安全係数が４０６６であり、熱および生物学的に安定なＮＰＢ−１１を創出することが出来た。

表に示した抗ＨＩＶ活性はＴ細胞指向性株のウイルスを用いて評価したものであり、ウイルスが宿主細胞に吸着・侵入する際の第２の受容体ＣＸＣＲ４が介在するａｓｓａｙ系である。現在、ＨＩＶウイルスが感染するタイプには２つがあり、上記以外に、マクロファージ指向性ウイルスの有する第２の受容体はＣＣＲ５が介在すると考えられている。
そこで、ホルボール誘導体がＣＣＲ５受容体に関わっているかどうかを明らかにするため、ＮＰＢ−１１について検討した。
マクロファージ指向性株（ＨＩＶ−１ ＪＲＣＳＦ）を感染させた末梢リンパ球におけるＮＰＢ−１１の抗ウイルス作用を図４に示した。ウイルスのｇａｇ蛋白に１つであるｐ２４量を定量して、その減少量から抗ＨＩＶ作用を調べたものであるが、ＮＰＢ−１１の１ｎｇ／ｍｌでウイルス蛋白はほとんど検出されず、明らかな抗ウイルス作用が認められた。
エイズウイルスは、（１）宿主細胞への吸着、（２）侵入・脱殻、（３）ウイルス遺伝子の逆転写と組み込み、（４）ウイルス遺伝子の転写・複製、（５）蛋白合成と修飾、（６）粒子の形成と放出のライフサイクルを繰り返して複製、増殖する。
これらのサイクルのどれか１つを阻止すればウイルスの増殖を阻害することが出来る。現在、（３）および（５）を阻止する薬剤があり、（３）の２剤と（５）の１剤の３剤を併用したカクテル療法が治療の中心となっている。しかしながら、ウイルスは次々に変異を繰り返すため、エイズの根治は困難である。また、近年（１）の過程をブロックする薬剤の開発が進められているが、まだ治療薬としては用いられていない。
本発明品は（１）の過程における２つの異なったコレセプターに指向するウイルス株に有効であることから、単独は勿論のこと、他のステップに作用する薬剤との併用も可能であり有用性は高いものと考えられる。

本発明の抗ウイルス配合剤では、特定のホルボール誘導体と、該誘導体と作用機序が異なる他の抗ＨＩＶ作用を有する薬剤とからなっていてもよい。それ故、異なる作用機序による複数の抗ウイルス性が同時に発現し得るため、非常に強力な抗ウイルス効果を得ることができる。また、本発明の抗ウイルス配合剤は、各種の解毒剤や式１で表わされるホルボール誘導体以外の他の抗ウイルス剤を含み得るため、有害な副作用がなく、且つ多くのウイルスに対しても有効である。それ故、本発明の抗ウイルス配合剤は、特に抗ＨＩＶ薬として有用である。

Claims (14)

1. 少なくとも次式１：
   

   

   ［式中、Ｒ_１は、
   −（ＣＨ_２）ａＸ（ＣＨ_２）ｂＣＨ_３（式中、ＸはＯ又はＳを表し、ａは１ないし３の数であり、ｂは０ないし５の数である。）で表される基を表すか、
   −（ＣＨ_２）ｃＸ（ＣＨ_２）ｄＹＣＨ_３（式中、Ｘ及びＹはＯ又はＳを表し、ｃは１ないし３の数であり、ｄは１ないし５の数である。）で表される基を表すか、
   −ＣＯ（ＣＨ_２）ｅＣＨ_３（式中、ｅは０ないし１２の数である。）で表される基を表すか、又は
   −（ＣＨ_２）ｆ ＣＨ_３（式中、ｆは０ないし５の数である。）で表される基を表し、
   Ｒ_２は−ＣＯ（ＣＨ_２）ｎＣＨ_３（式中、ｎは３ないし１２の数を表す。）で表される基を表し、
   Ｒ_３，Ｒ_４およびＲ_５は、互いに独立して、水素原子、脂肪族あるいは芳香族カルボン酸残基を表す。］
   で表され、かつ、
   ＭＴ−４細胞におけるＨＩＶ−１誘発細胞病原性効果（ＣＰＥ）を５０％阻害する濃度ＥＣ_５０と、細胞増殖試験におけるＭＴ−４細胞の生存を５０％減少させる濃度ＣＣ_５０との比安全係数Ｓ．Ｉ＝ＣＣ_５０／ＥＣ_５０が１０以上であるホルボール誘導体を有効成分として含むことを特徴とする抗ウイルス配合剤。
2. 式１中のＲ_１は、−（ＣＨ_２）ａＸ（ＣＨ_２）ｂＣＨ_３（式中、ＸはＯ又はＳを表し、ａは１ないし３の数であり、ｂは０ないし５の数である。）で表される基を表す請求項１記載の抗ウイルス配合剤。
3. 式１中のＲ_１は、−（ＣＨ_２）ｃＸ（ＣＨ_２）ｄＹＣＨ_３（式中、Ｘ及びＹはＯ又はＳを表し、ｃは１ないし３の数であり、ｄは１ないし５の数である。）で表される基を表す請求項１記載の抗ウイルス配合剤。
4. 式１中のＲ_１は、−ＣＯ（ＣＨ_２）ｅ ＣＨ_３（式中、ｅは０ないし１２の数である。）で表される基を表す請求項１記載の抗ウイルス配合剤。
5. 式１中のＲ_１は、−（ＣＨ_２）ｆ ＣＨ_３（式中、ｆは０ないし５の数である。）で表される基を表す請求項１記載の抗ウイルス配合剤。
6. 天然由来あるいは合成によって得られた次式２
   

   

   で表される中間体ホルボール中の−ＣＨ_２ＯＨ基を−ＣＨ_２ＯＬ基（Ｌは保護基を表す。）に変換して、次式
   

   

   で表される化合物を得、該化合物をＣＨ_３（ＣＨ_２）ｎＣＯＣｌ（式中、ｎは請求項１で定義されたとおりである。）で表される化合物と反応させて、次式
   

   

   で表される化合物を得、該化合物をＲ_１Ｃｌ（式中、Ｒ_１は請求項１で定義されたとおりである）で表される化合物と反応させて、次式
   

   

   で表される化合物を得、さらに得られた該化合物中の−ＣＨ_２ＯＬ基を−ＣＨ_２ＯＨ基に変換して、請求項１記載の式１で表されるホルボール誘導体を製造する方法。
7. 請求項１記載のホルボール誘導体のうちの少なくとも１種及び他の抗ＨＩＶ作用を有する薬剤のうちの少なくとも１種からなる抗ＨＩＶウイルス配合剤。
8. 前記他の抗ＨＩＶ作用を有する薬剤が、逆転写酵素阻害剤であることを特徴とする請求項７記載の抗ＨＩＶウイルス配合剤。
9. 前記他の抗ＨＩＶ作用を有する薬剤が、インテグラーゼを介したＤＮＡの組み込みを阻害する薬剤であることを特徴とする請求項７記載の抗ＨＩＶウイルス配合剤。
10. 前記他の抗ＨＩＶ作用を有する薬剤が、プロウイルスの転写を抑制する薬剤であることを特徴とする請求項７記載の抗ＨＩＶウイルス配合剤。
11. 前記他の抗ＨＩＶ作用を有する薬剤が、プロテアーゼを介したコア蛋白質の合成を阻害する薬剤であることを特徴とする請求項７記載の抗ＨＩＶウイルス配合剤。
12. 前記他の抗ＨＩＶ作用を有する薬剤が、コア蛋白質の集合とパッケージングを抑制する薬剤であることを特徴とする請求項７記載の抗ＨＩＶウイルス配合剤。
13. 前記他の抗ＨＩＶ作用を有する薬剤が、コア蛋白質と殻外蛋白質の会合を抑制する薬剤であることを特徴とする請求項７記載の抗ＨＩＶウイルス配合剤。
14. 前記他の抗ＨＩＶ作用を有する薬剤が、細胞膜から遊離脱出した感染性のウイルス粒子の成熟を抑制する薬剤であることを特徴とする請求項７記載の抗ＨＩＶウイルス配合剤。

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