本发明的目的旨在表明胆红素二牛磺酸钠(DTB)和其它胆红素衍生物抑制艾滋病毒,并可提供一种用来制备治疗艾滋病的药物的用途。
本发明的目的是这样实现的:
本发明的技术方案中所用胆红素衍生物的结构如式(I)所示:
其中R1,R2,R3,R6,R7,R8为烷基、乙烯基或烷基羰基;R4,R5为脂肪酸基、脂肪酸的钠盐、铵盐或药物学上可接受的盐;或含磺酸、磺酸的钠盐、铵盐或药物学上可接受的盐的取代基;R8还可以为含磺酸、磺酸的钠盐、铵盐或药物学上可接受的盐的取代基;
当取代基为如下基团时,为下述化合物:
R1 R2 R3 R4 R5 R6 R7 R8
胆红素二牛磺酸钠(DTB) M V M PS PS M M V
中胆红素XIIIα(MBR) M E M P P M E M
中胆红素XIIIα磺酸衍生物 M E M S S M E M
胆红素侧基衍生物 M V M P P M M ES
其中,M=CH3,V=CH∶CH2,PS=CH2CH2CONHCH2CH2SO3H、它的钠盐、铵盐或药物学上可接受的盐;E=CH2CH3,P=CH2CH2COOH、它的钠盐、铵盐、药物学上可接受的盐或二牛磺酸衍生物;S=(CH2)nSO3H、它的钠盐、铵盐或药物学上可接受的盐,其中n=1-3;ES=CH2CH(CH3)CH2CH2SO3H、它的钠盐、铵盐或药物学上可接受的盐。
本发明的技术方案中所用另一类胆红素衍生物的结构如式(II)所示:
其中R1,R2,R3为烷基、乙烯基或烷基羰基;R4为脂肪酸、脂肪酸的钠盐、脂肪酸的铵盐或药物学上可接受的盐、或含磺酸、磺酸的钠盐、铵盐或药物学上可接受的盐的取代基。
当取代基为如下基团时,为下述化合物:
R1 R2 R3 R4
黄胆红酸(XBR) M E M P
黄胆红酸的牛磺酸衍生物 M E M PS
其中M=CH3,E=CH2CH3,P=CH2CH2COOH、它的钠盐、铵盐或药物学上可接受的盐;PS=CH2CH2CONHCH2CH2SO3H、它的钠盐、铵盐或药物学上可接受的盐。
本发明的技术方案中所用胆红素二牛磺酸钠(DTB)的结构如式(III)所示:
其中M=CH3;V=CH∶CH2;PS=CH2CH2CONHCH2CH2SO3Na
胆红素二牛磺酸钠盐(DTB)物理化学性质:分子量798,9(不含Na),黄色固体,溶于水,二甲基亚砜,微溶于醇,不溶于非极性有机溶剂。处于固态时或在碱性溶液中是稳定的,酸性溶液中易氧化。
文献报道过它在蛋白缓冲液中的最大吸收和克分子吸光系数ε,见表1。参见《临床化学》1985年31卷1677-1682页(B.T.Doumas et.al.,Clin.Chem.31,1677-1682,1985)。
表1 DTB的最大吸收和克分子吸光系数
ε×10-3Lmol-1cm-1
三羟甲基氨基甲烷(pH8.5) 磷酸缓冲液(pH7.4)
(460nm) (422nm) (460nm)BSA(牛血清蛋白) 56.7 50.4 43.2HSA(人血清蛋白) 55.3 -- 55.9Human serum(人血清) 57.2 -- 58.9Bovine serum(牛血清) 57.5 47.9 45.7H2O(450nm) -- -- 49.5
胆红素二牛磺酸钠(DTB)的制备:
1.胆红素(胆红素IXα)
胆红素来自市场购买的,因纯度太低,必须经过提纯、重结晶。提纯方法参考文献《生物化学杂志》1972年129卷797-800页(A.F.McDonagh and F.Assisi,Biochem.J.,129 797-800,1972)并做改进。具体方法如下:将市场购得的胆红素500mg加入500mL脱去稳定剂的氯仿中,在氮气流下加热回流半小时,然后冷却至室温。过滤溶液,用0.1M NaHCO3洗氯仿溶液(3×100mL)。然后通过双层滤纸过滤,以除去氯仿中水。在30℃下真空旋转蒸发浓缩氯仿溶液。然后往浓缩的氯仿溶液中加甲醇,至出现混浊,放入冰箱,至出现结晶,过滤。用含少量氯仿的甲醇洗,然后在真空下干燥。根据原料来源不同,回收率为50-90%,纯度为98%以上(以克分子消光系数为65000计),整个操作要在暗处进行。所有溶剂预先通氩气半小时。
2.胆红素二牛磺酸钠(DTB)的合成
我们所用的起始原料为胆红素与牛磺酸钠盐。依据多肽的合成原理使胆红素与牛磺酸结合。其化学反应路线如下所示,合成方法如下:胆红素(1.2g)在乙酸乙酯中加入三乙胺0.6mL,氯甲酸乙酯0.45mL,搅拌2小时,然后加入牛磺酸钠盐(NH2CH2CH2SO3Na)的甲醇溶液(0.51g牛磺酸钠盐在20mL甲醇中),搅拌充分,过夜、离心、干燥,得固体1.5g(产率87%),在甲醇和乙酸乙酯中进行重结晶,真空干燥,得产品DTB。重结晶的收率为98%,纯度大于95%。DTB的结构的确证
我们是通过常规的物理方法确证DTB的化学结构的。
①红外光谱DTB的红外光谱见附图1。图1是经过两次重结晶纯化并干燥后的DTB样品制作溴化钾压片测得的。特征鉴别处有①酰胺的形成:酰胺NH面内弯曲振动的第一倍频3300cm-1;酰胺I吸收带1640cm-1;酰胺II吸收带1560cm-1;②磺酸盐的特征带1050cm-1和1200cm-1。余下各峰与胆红素本身的红外谱极其相似。
②可见吸收光谱图2是DTB在含人血清蛋白pH7.4的磷酸缓冲液中的可见吸收光谱。由于胆红素在与牛磺酸以化学键结合以后发色团部分没有变化,所以吸收光谱与胆红素基本类似。
DTB合成路线图
③核磁共振谱采用重水作溶剂400MHz高分辨核磁共振谱仪上进行测量。主要峰及归属列表2如下:
表2.DTB的400MHz核磁共振谱数据(内标TMS=0ppm)
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化学位移 峰多重度及偶合常数 氢数目 归属 |
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1.915 s 6 吡咯CH31.930 s 6 吡咯CH32.927 t 6.8Hz 2 -C
H 2CH2CONH-3.101 t 6.8Hz 2 -C
H 2CH2CONH-3.267 t 6.8Hz 2 -CH2C
H 2CONH-3.356 t 6.8Hz 2 -CH2C
H 2CONH-3.483 t 6.8Hz 2 -C
H 2CH2SO3Na3.501 t 6.8Hz 2 -C
H 2CH2SO3Na3.964 m 4 -CH2C
H 2SO3Na |
注:由于样品中存在少量的水以及氘代试剂的纯度限制,核磁谱中水峰(HDO在~5ppm处)的吸收强度特别大,致使烯氢本身由于偶合等原因强度很低,不能很好地分辨;而10-CH2上氢被溶剂峰覆盖,10-CH2应在4.5ppm附近,本谱中没有分辨出来。
④质谱分析由于DTB的分子量很大,而且DTB分子中有很多易断裂的化学键,因此,DTB不能用电子轰击(EI)方法测定DTB的质谱。DTB的质谱分析是用快原子轰击(FAB)负离子质谱进行的。得到的负离子峰的质量数为855。其负离子团可能具有如下结构:
由于10-CH2的旋转,胆红素的骨架上羰基可分别与匹配的水分子形成氢键而稳定负离子团。
从上面数据分析可以得出结论:我们制备的DTB的化学结构是正确的。即为化学反应式中所列的化学结构。
DTB的纯度分析
①绝对纯度
制备的DTB经两次结晶后,经五氧化二磷真空干燥(1mmHg)10小时,进行DTB的绝对纯度分析。ε460nm=47400。
②相对含量比
用高压液相色谱对制备的DTB进行分析。采用C18反相分析柱在450mm处检测,用92%的0.1mol正辛胺甲醇溶液和8%水做淋洗剂,参见《美国化学会志》1982年104卷6865页(A.F.McDonagh,L.A.Palma,F.R.Trull and D.A.Lightner,J.Am.Chem.Soc.,104,6865,1982)。
本发明的技术方案中所用黄胆红酸(XBR)的结构如式(IV)所示:
其中M=CH3;E=CH2CH3;P=CH2CH2COOH黄胆红酸(XBR)的合成方法为:
乙酰乙酸乙酯的肟与戊二酮在醋酸-锌粉还原下缩合成4-乙酰基-3,5-二甲基-1氢吡咯-2-羧酸乙酯,进一步经还原、水解、脱羧、氧化、溴化得到5-溴甲叉基-4-乙基-3-甲基-2-氧代-2,5-二氢吡咯,该吡咯与2,4-二甲基-5-羧基-1氢吡咯-3-丙酸在甲醇中酸催化回流缩合成黄胆红酸甲酯,然后用NaOH水溶液水解,就得到黄胆红酸(XBR)。参考文献《杂环化学杂志》1984年21卷139-144页(D.A.1ightner,J.S.Ma et.al.,J.Heterocyclic Chem.,21 139-144,1984.)。
结构参数:IR(KBr)v3360,3200,2500,1705,1670,1630cm-1。1HNMR(DMSO-d6):δ1.10(t,3H),1.81(s,3H),2.07(s,3H),2.22(s,3H),2.25-2.80(m,6H),5.93(s,1H),9.67(br s,1H),10.18(broad s,1H),11.83(br s,1H)。Uv-vis:λmax(CHCl3)=408nm,ε=28000,λmax(CH3OH)=416nm,ε=34000。
中胆红素XIIIα(MBR)的结构如式(V)所示:
其中M=CH3;E=CH2CH3;P=CH2CH2COOH中胆红素XIIIα的合成方法为:
黄胆红酸甲酯经2,3-二氯-5,6-二氰基-1,4-对苯二醌(DDQ)氧化缩合成中胆绿素XIIIα二甲酯,最后经硼氢化钠还原、水解成中胆红素XIIIα,纯度为99%以上。参考文献《杂环化学杂志》1987年24卷1573-1579页(R.T.Trull,R.W.Franklin and D.A.Lightner,J.Heterocyclic Chem.,24 1573-1579 1987)。
结构参数:IR(液膜):v3420,3260,2966,1704,1689,1629cm-1。1HNMR(氘代氯仿):δ1.12(t,6H,J=7Hz),1.85(s,6H,2、18位CH3),1,85(s,6H,7、13位CH3),2.48(q,4H,J=7Hz),2.78(m,8H,-CH2CH2COOH),4.06(s,2H,10位-CH2-),6.04(s,2H,5、10位=CH),9.15(s,2H,吡咯NH),10.52(s,2H,内酰胺NH),13.31(s,2H,COOH)ppm;MS:M+587.7。UV-Vis(氯仿):λmax=431nm,ε=60000。13CNMR(氘代氯仿):8.54(q),9.62(q),15.29(q),17.64(t),19.74(t),23.96(t),34.81(t),98.19(d),119.72(s),122.43(s),123.00(s),123.39(s),128.28(s),130.81(s),147.67(s),172.42(s),174.46(s)。
本发明之化合物可用于制备治疗艾滋病药物。
胆红素二牛磺酸钠盐(DTB)抗艾滋病毒药物试剂的配置:
将胆红素二牛磺酸钠盐(DTB)直接溶在无血清的RPMI 1640培养液中(0.5mg/mL),配成所需浓度(见表3和表4)。
黄胆红酸(XBR)抗艾滋病毒药物试剂的配置:
准确称重,配制成二甲基亚砜(DMSO)的饱和溶液,浓度为12.3mg/mL.实验时用无血清的RPMI 1640培养基稀释至所需浓度(见表3和表4)。
中胆红素XIIIα(MBR)抗艾滋病毒药物试剂的配置:
准确称重,配制成二甲基亚砜(DMSO)的饱和溶液,浓度为11.6mg/mL.实验时用无血清的RPMI 1640培养基稀释至所需浓度(见表3和表4)。
本发明所述化合物,特别是DTB,可以用传统方法制备成胶囊、片剂、注射剂等。
本发明的效果:
我们对合成的多种胆红素衍生物进行了抗HIV病毒了筛选,体外实验证明几种胆红素衍生物具有抑制艾滋病毒的效果,其中DTB效果最好,它的半数抑制浓度(IC50)为3.75μg/mL,浓度为40μg/mL时抑制率为100%,浓度为10μg/mL时抑制率为90%。细胞毒性实验表明DTB的细胞毒性为零。对小老鼠的急毒性实验表明,对小鼠灌胃给药相当于体外抗病毒有效剂量的390倍以上,无任何毒性。DTB是鸡胆和鱼胆中的组分,在传统中药中也有使用。利用我们的合成方法,易于大量合成和生产。
这些化合物,特别是DTB,用传统方法制备成胶囊、片剂、注射剂时,取得抑制艾滋病毒的同样效果。
这些化合物,特别是DTB,与AZT等配伍用作为抗艾滋病药物,也取得抑制艾滋病毒的同样效果。
以下的实施例进一步说明本发明之药物化合物的药理和毒理作用。
实施例1本发明之化合物的抗HIV病毒实验
本实验采用体外实验方法,观察淋巴细胞株感染HIV-1后,药物抑制病毒在细胞内复制的作用。1.实验材料
病毒为HIV-1,该病毒是法国巴斯德研究所Montagnier教授赠送,实验中所用病毒量浓度为1×104 TCID50/mL(TCID50为50%致细胞病变剂量);用CEM细胞保存HIV-1病毒,由中国预防医学科学院病毒学研究所HIV实验室传代培养。
药物用DTB、XBR和MBR。实验时用无血清的RPMI 1640培养液溶解,配成所需浓度(见表3和表4)。2.实验方法(1)病毒和细胞培养:
将新鲜培养的MT4细胞(5×105/mL)与HIV-1病毒液(103TCID50/mL)共培养,在CO2培养箱中37℃作用1-1.5小时,以RPMI 1640完全培养液(含10%小牛血清和抗菌素)洗去未感染细胞的游离病毒后,再用完全培养液校正细胞浓度(5×105/mL)备用。(2)HIV-1 p24抗原表达的测定:
采用一种微量ELISA方法,以定量测定体外培养细胞上清液中HIV病毒的p24抗原,以表示病毒量的多少。操作按试剂盒说明书。
结果根据OD值,Cut Off值及标准曲线,计算出各孔所含病毒量(即pg/mL)。(3)抗HIV-1病毒实验,测定药物的半数抑制浓度(IC50):
细胞量为5×105/mL,加一定量HIV-1病毒,37℃作用60-90分钟,离心,弃去上清,加无血清的RPMI 1640,使细胞悬浮,如上法离心弃去上清,再加双倍血清的RPMI 1640培养液配成5×105/mL。采用96孔板进行实验,将药物分别稀释至不同浓度,每个浓度设四个反应孔,并设病毒对照和细胞对照反应孔,每孔加100μL药和100μL感染病毒的细胞,37℃孵育箱中放置,三天后换液,每孔吸除100μL上清,加入100μL与原孔相同的药液,或培养液,六天后收集各孔上清,按上述p24抗原分析法,测定各孔所含病毒的量,按下列公式计算抑制率。根据各浓度组的抑制率,计算出半数抑制浓度(IC50),并按公式做统计。
实验结果如下:
表3抗病毒活性
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化合物 |
原液稀释 |
浓度μg/mL |
OD值 |
抑制率 |
|
XBR |
1/2001/4001/800 |
43.2521.6310.81 |
0.0580.0880.112 |
80.56%72.22%47.22% |
|
MBR |
1/2001/800 |
29.007.25 |
0.0680.100 |
78.89%54.44% |
|
DTB |
1/12.51/501/2001/800 |
40.0010.002.500.625 |
0.0150.0300.1320.147 |
100.0%90.00%43.33%30.56% |
|
病毒对照组 | | |
2.5 | |
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DTB的IC50≈3.75μg/mL |
(4)细胞霉性实验:
将MT4细胞以双倍血清的培养液配成5×105/mL,种入96孔板,每孔加100μL,另加入不同浓度的药液100μL,对照组不加药,改加无血清RPMI 1640营养液100μL,37℃培养三天,各孔吸除100μL上清液,加入0.25%MTT(蓝四唑,用pH7.2磷酸缓冲液配制),每孔20μL,37℃培养4小时。黄色的MTT在活细胞的线粒体作用下形成紫色的结晶,每孔加100μL DMSO溶解结晶,然后在酶标仪上,用570nm波长测定光密度值(0D值),再按下列公式计算杀细胞率:实验结果如下:
表4细胞毒性
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化合物 |
原液稀释 |
浓度μg/mL |
OD值 |
杀细胞率 |
|
XBR |
1/2001/4001/800 |
43.2521.6310.81 |
0.2470.30650.3405 |
29.32%12.30%2.58% |
|
MBR |
1/2001/4001.800 |
29.0014.507.25 |
0.260.3150.313 |
25.61%9.87%10.44 |
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DTB |
1/12.51/501/2001/4001/800 |
40.0010.002.501.250.625 |
0.3610.3700.3950.3720.492 |
0%0%0%0%0% |
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细胞对照组 | | |
0.3495 | |
实施例2本发明之化合物的毒理实验
小鼠急性毒性实验:
动物:昆明远交系小鼠(中国医学科学院动物学研究所实验动物繁育场提供)雌雄各半,体重为18-20克,雌雄分笼饲养。实验前,小鼠于实验室内饲养观察3-5天自由摄食摄水。
药物:DTB,加水溶解。
方法:小鼠灌胃给药,给药后观察表现、死亡情况,记录三天的死亡率。
结果:小鼠给药量为25mg/20克体重,给药后小鼠活动正常,无任何毒性,三天无死亡,此剂量相当于体外抗病毒有效剂量的390倍以上。
实施例3将胆红素二牛磺酸钠用本领域中的公知技术作成胶囊。
实施例4将胆红素二牛磺酸钠用本领域中的公知技术作成片剂。
实施例5将胆红素二牛磺酸钠用本领域中的公知技术作成注射剂。